Hinweis Bei dieser Datei handelt es sich um eine Wissenschaftliche Hausarbeit (1. Staatsexamensarbeit), die am Fachbereich Chemie der Philipps-Universität Marburg angefertigt wurde. Weitere Wissenschaftliche Hausarbeiten können auf der Seite http://www.chids.de/veranstaltungen/wiss_hausarbeit.html eingesehen und heruntergeladen werden. Zudem stehen auf der Seite www.chids.de weitere Versuche, Lernzirkel und Experimentalvortäge bereit. Dr. Ph. Reiß Erste Staatsprüfung für das Lehramt an Gymnasien Wissenschaftliche Hausarbeit im Fach Chemie Vorgelegt von Stefan Dönges Thema: Ausgewählte aufwandsarme Versuche und Unterrichtsmaterialien für die Organische Chemie zur Anwendung im Chemieunterricht. Gutachter: Dr. Philipp Reiß Datum: 14.05.2010 Inhaltsverzeichnis Inhaltsverzeichnis I. EINLEITUNG: ................................................................................................ 6 II. THEORIETEIL ............................................................................................... 8 Alkanole: .......................................................................................................................... 8 Carbonylverbindungen:................................................................................................... 19 Kohlenhydrate: ............................................................................................................... 26 Aminosäuren und Proteine: ............................................................................................ 34 III. EXPERIMENTELLER TEIL ............................................................................43 Hinweise ............................................................................................................................... 44 Versuche zu Alkanolen: ................................................................................................... 45 Versuch 1: Versuch zur Mischbarkeit von Alkoholen..................................................... 46 Versuch 2: Volumenkontraktion: 50 + 50 = 100 ? .......................................................... 56 Versuch 3: Fließgeschwindigkeiten verschiedener Alkohole ......................................... 63 Versuch 4: Reagenzglasgewitter .................................................................................... 68 Versuch 5: Reaktion von Glycerin mit Kaliumpermaganat ............................................ 73 Versuch 6: Qualitative Elementaranalyse: Kohlenstoff und Wasserstoff ...................... 79 Versuch 7: Qualitative Elementaranalyse: Sauerstoff - Nachweis mittels Magnesium . 85 Versuch 8: Reaktion von Ethanol mit Natrium ............................................................... 91 Versuch 9: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat ..................................................................................... 99 Versuch 10: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Lucas Reagenz ...................................................................................................... 109 Versuch 11: Unterscheidung Ethanol und Methanol durch Borsäure ........................... 120 Versuch 12: Vergleich zwischen Alkoholen und Phenolen am Beispiel von Ethanol und Phenol......................................................................................................... 126 Versuch 13: Alkoholische Gärung................................................................................... 136 Versuch 14: Veresterung ................................................................................................ 144 2 Inhaltsverzeichnis Versuche zu Carbonylverbindungen: ..............................................................................149 Versuch 1: Lösungsvermögen von Aceton ................................................................... 150 Versuch 2: Silberspiegelprobe: ..................................................................................... 155 Versuch 3: Fehlingprobe .............................................................................................. 158 Versuch 4: Iodoformprobe ........................................................................................... 161 Versuch 5: Aldehydnachweis im Zigarettenrauch........................................................ 168 Versuch 6: Schiffsche Probe ......................................................................................... 176 Versuch 7: Benzaldehyd mit Aceton: ........................................................................... 180 Versuch 8: Oxidation von Methanol und Ethanol an Kupferkontakt ........................... 187 Versuch 9: Bakelit - Herstellung (Darstellung eines Phenoplasten)............................. 193 Versuche zu Kohlenhydraten: ........................................................................................205 Versuch 1: Silberspiegelprobe ...................................................................................... 206 Versuch 2: Fehlingprobe .............................................................................................. 213 Versuch 3: Seliwanoffprobe ......................................................................................... 224 Versuch 4: Zuckerverkohlung ....................................................................................... 231 Versuch 5: Zauberschrift .............................................................................................. 237 Versuch 6: Stärkenachweis in Mehl und Reis .............................................................. 241 Versuch 7: Unterscheidung von Glucose und Fructose durch Mittels Iod .................. 249 Versuch 8: Untersuchung der Inhaltsstoffe einer Kartoffel ......................................... 256 Versuch 9: Gummibärcheninferno ............................................................................... 263 Versuch 10: Hydrolyse von Stärke.................................................................................. 271 Aminosäuren und Proteine: ...........................................................................................276 Versuch 1: Xanthoproteinreaktion ............................................................................... 277 Versuch 2: Biuretreaktion ............................................................................................ 284 Versuch 3: Ninhydrinreaktion mit verschiedenen Substanzen .................................... 290 Versuch 4: Stickstoffnachweis durch Thermolyse ....................................................... 299 Versuch 5: Schwefelnachweis durch Thermolyse ........................................................ 305 Versuch 6: Oxidation von Cystein zu Cystin ................................................................. 311 Versuch 7: Maillardreaktion ......................................................................................... 321 Versuch 8: Löslichkeit von Tyrosin ............................................................................... 330 Versuch 9: Denaturierung von Hühnereiweiß und Milch ............................................ 335 Versuch 10: Tyndall – Effekt einer Eiklarlösung ............................................................. 344 3 Inhaltsverzeichnis IV. UNTERRICHTSMATERIALIEN ................................................................... 348 Arbeitsblätter zum Thema Alkanole ...............................................................................349 Arbeitsblatt: Mischbarkeit von Alkoholen ...................................................................... 349 Arbeitsblatt: Volumenkontraktion: 50 + 50 = 100 ? ....................................................... 352 Arbeitsblatt: Mehrwertige Alkohole ............................................................................... 357 Arbeitsblatt: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat .................................................................................. 363 Arbeitsblatt: Reaktion von Ethanol mit Natrium ............................................................ 367 Arbeitsblatt: Alkoholische Gärung .................................................................................. 372 Arbeitsblatt: Allgemeines zum Thema Alkohole ............................................................ 375 Arbeitsblatt: Richtig oder Falsch..................................................................................... 380 Arbeitsblatt: Strukturaufklärung - Spektroskopie .......................................................... 383 Arbeitsblätter zum Thema Carbonylverbindungen .........................................................388 Arbeitsblatt: Aldehyde und Ketone ................................................................................ 388 Arbeitsblatt: Oxidation von Ethanol am Kupferkontakt ................................................. 391 Arbeitsblatt: Bakelitdarstellung ...................................................................................... 394 Arbeitsblatt: Wissenstest - Carbonylverbindungen ....................................................... 397 Arbeitsblatt: Abschlussrätel - Carbonylverbindungen ................................................... 400 Arbeitsblätter zum Thema Kohlenhydrate ......................................................................404 Arbeitsblatt: Unterscheidung von Glucose und Fructose .............................................. 404 Arbeitsblatt: Zuckernachweis durch Fehling .................................................................. 408 Arbeitsblatt: Zuckernachweis durch Tollensprobe......................................................... 412 Arbeitsblatt: Disaccharide .............................................................................................. 417 Arbeitsblatt: Allgemeines zum Thema Kohlenhydrate................................................... 423 Spiel: Frage und Anwortspiel – Thema Kohlenhydrate ...................................... 429 Arbeitsblätter zum Thema Aminosäuren ........................................................................435 Arbeitsblatt: Nachweisreaktionen .................................................................................. 435 Arbeitsblatt: Peptidbindung ........................................................................................... 441 Arbeitsblatt: Bindungsarten in Proteinen....................................................................... 444 Arbeitsblatt: Denaturierung von Proteinen ................................................................... 447 Arbeitsblatt: Löslichkeit von Tyrosin .............................................................................. 452 Arbeitsblatt: Oxidation von Cystein................................................................................ 457 Arbeitsblatt: Abschlussrätsel – Proteine ........................................................................ 462 4 Inhaltsverzeichnis V. LITERATURVERZEICHNIS .......................................................................... 467 VI. ANHANG ................................................................................................ 477 Bedeutung der Gefahrensymbolem sowie der R- und S-Sätze der verwendeten Chemikalien ........................................................................................................................ 477 Gefahrensymbole ............................................................................................................... 477 R-Sätze ................................................................................................................................ 477 S-Sätze ................................................................................................................................ 480 5 III. Einleitung I. Einleitung: Der schulische Alltag der Gegenwart ist geprägt von 45 minütigen Kurzstunden mit anschließenden schnellen Raumwechseln. Dies ist für Lehrer1 und Schüler gleichermaßen eine Belastung. Doch gerade die Chemielehrer stehen durch den praktischen Anteil des Faches noch zusätzlich in der Pflicht, in dieser kurzen Zeit (teilweise nur 10 Minuten zwischen zwei Schulstunden) praktische Versuche vorzubereiten, die den Schülern bestimmte chemische Zusammenhänge vermitteln sollen. Das dies zu zusätzlicher Belastung führt, ist nachvollziehbar. Experimente im Chemieunterricht sind aufgrund ihres hohen pädagogischen Stellenwertes, gerade im Schülerversuch, ein wichtiges Instrument in der Lehre und aus dem Chemieunterricht eigentlich nicht wegzudenken. Sie dienen dazu: - einen Alltagsbezug herzustellen, - einen erkennbaren Beitrag zur Allgemeinbildung zu leisten, - die lehrplanrelevanten wichtigen fachlichen Inhalte zu vermitteln und zu untermauern - die Schüler so oft wie möglich selbst aktiv werden zu lassen. Denn gerade die Experimente des Chemieunterrichts bleiben, aufgrund ihrer fesselnden Wirkung, häufig in Erinnerung. So faszinieren das Feuer, der Rauch, die Farben und der Knall sicher viele Schüler. Kaum einem anderen Fach gelingt es derart, die Schüler, aufgrund des engen Alltagsbezugs und der Möglichkeit zu spektakulären Experimente, zu faszinieren und zu fesseln, wie der Chemie. Allerdings sprechen gegen das häufige Experimentieren im Unterricht, vor allem die Argumente des Zeitmangels in der Vorbereitung, der immense Zeitbedarf des Experimentes im Unterricht selbst, wie auch der finanzielle Aufwand der Experimente und die benötigten Geräte und Ausrüstungen, die vorhanden sein müssen. So steht der Chemielehrer vor der Aufgabe, möglichst viel praktischen Anteil in die Stunde mit einfließen zu lassen und fesselnde lehrplanrelevante Versuche für den 1 Im Folgenden werden ausschließlich die maskulinen Formen personenbezeichnender Substantive verwendete, diese schließen die feminine Form jeweils mit ein. Andernfalls wird gesondert darauf hingewiesen. 6 III. Einleitung Unterricht bereit zu stellen, obwohl ihm dies, aufgrund des Zeitmangels, oft kaum möglich ist. Diese wissenschaftliche Hausarbeit möchte eine Auswahl lehrplanrelevanter Schulversuche bereitstellen, die ohne großen Zeitbedarf auch in der engen zeitlichen Abfolge des Schulalltags vorbereitbar sind um so dem Lehrer eine Hilfestellung geben zu können. Im Abschnitt ‚Experimenteller Teil‘ werden zahlreiche Versuche vorgestellt, die die Theorie zu den Themen Alkanole, Carbonylverbindungen, Kohlenhydrate sowie Aminosäuren und Proteine im Chemieunterricht unterstützen können. Die Versuche sind den einzelnen Abschnitten des Theorieteils zugeordnet und durch Verweise mit diesem Verknüpft. Je nach Art des Versuches können sie als Demonstrationsversuch oder Schülerversuch durchgeführt werden. Zur Unterstützung für den Lehrer, werden der Zeitbedarf, die benötigten Chemikalien und die Beschreibung der Versuchsdurchführung deutlich gekennzeichnet folgt eine fachliche Auswertung, die die relevanten Inhalte die mit dem jeweiligen Versuch verbunden sind, aufzeigt. Daran schließt dann jeweils eine kurze didaktisch Betrachtung sowie Hinweise zur Entsorgung. An den Experimentellen Teil der Arbeit folgen abschließend Unterrichtsmaterialien, die eine vertiefende Auseinandersetzung mit den im Experiment aufgegriffenen Inhalten ermöglichen sollen. 7 II. Alkanole Theorieteil II. Theorieteil In diesem Abschnitt der Arbeit werden die in der Arbeit aufgegriffenen lehrplanrelevanten Themen - Alkanole, Carbonylverbindungen, Kohlenhydrate und Aminosäuren und Proteine - charakterisiert und jeweils kurz deren wichtigsten theoretischen Hintergründe aufgeführt. Darüberhinaus wurde versucht, mit Verweisen, den theoretischen Hintergrund mit dem Hauptteil – dem, ‚Experimentellen Teil‘ - der Arbeit zu verknüpfen. Alkanole: Alkanole sind eine Stoffklasse der organischen Chemie. Es ist die offizielle IUPAC Bezeichnung für Stoffe, deren funktionelle Gruppe, die so genannte Hydroxygruppe ist. H O Abb.1a: Hydroxygruppe R Die Hydroxygruppe ist an ein sp3 – hybridisiertes Kohlenstoffatom H O C H 109° H H Abb.1b: Alkohol, allgemein gebunden, das keine höherwertigen Substituenten trägt. Sie ist eine der wichtigsten funktionellen Gruppen der organischen Chemie und beeinflusst stark die chemischen und physikalischen Eigenschaften der Verbindungen.2 Diese Eigenschaften sollen im Kapitel Experimenteller Teil – Alkanole anhand ausgewählter Versuche beschrieben und diskutiert werden. Allgemein kann man die Alkohole als Derivate der gesättigten Kohlenwasserstoffe bezeichnen, bei denen ein Wasserstoffatom durch eine Hydroxygruppe ersetzt wurde. Diese Hydroxygruppe ist im Gegensatz zum unpolaren Alkylrest der Verbindung polar. 2 Vgl. Mortimer, S.550. 8 II. Alkanole Theorieteil Abb.2a: Schematische Darstellung der Polarität der Hydroxygruppe Abb.2b: Schematische Darstellung der Polarität der Hydroxygruppe Die einfachen kurzkettigen Alkohole - wie Methanol und Ethanol - mischen sich nicht nur unbegrenzt in Wasser, sondern zeigen teilweise auch ein ähnliches Reaktionsverhalten. Der Grund ist, wie sich schon vermuten lässt, die polare Hydroxygruppe. Eine polare OH – Bindung ist nämlich auch im Wasser zu finden. O H H Abb.3: Polarität des Wassermoleküls So reagieren die einfachsten Vertreter der Stoffklasse der Alkohole, Methanol und Ethanol (ähnlich wie Wasser) mit unedlen Metallen (wie Natrium) unter Wasserstoffentwicklung (Vgl. Versuch 8: Reaktion von Ethanol mit Natrium). Dabei bildet sich aus dem Alkohol die starke Base - Alkoholat.3 Bei den Siedetemperaturen wirkt sich die Hydroxygruppe ebenfalls stark auf die Alkohole aus. So weisen die Alkohole, wie auch Wasser, einen deutlich erhöhten Siedepunkt gegenüber vergleichbaren Verbindungen auf. 3 Vgl. Deckwer et al.. 9 II. Alkanole Theorieteil Beispiel: Name Summenformel Methan CH4 Strukturformel Siedepunkt H H -161°C C H H Methanol H CH3OH 65 °C H H C O H Ethan C2H6 H Ethanol CH3CH2OH H H C C H H H H -89 °C H 78 °C H H Wasser H2O Schwefel- H2S C C H H O 100 °C O H H -60 °C S H H wasserstoff Abb.4a-f: Lewisdarstellung verschiedener Substanzen und deren Siedepunkte Der Grund für die deutlich erhöhten Siedepunkte der Alkohole gegenüber den entsprechenden Alkanen ist in der Ausbildung von Wasserstoffbrückenbindungen zu finden.4 Wasserstoffbrückenbindugen sind umso stärker, je größer der Elektronegativitätsunterschied ist. Ähnlich wie beim Wasser kommt es durch die Polarität der Hydroxygruppe (Abb.2a) zu einer intermolekularen Anordnung der Alkohole zu Ketten und größeren Anhäufungen (Abb.6). 4 Vgl. Mortimer. S.551. 10 II. Alkanole Theorieteil O H C H H H Abb.5: Darstellung der Polarität der Hydroxygruppe Der Grund für die Polarität liegt in der unterschiedlichen Elektronegativität (EN) von Sauerstoff (O), Wasserstoff (H) und Kohlenstoff (C). Die Elektronegativität ist das Maß für die Anziehung des Atoms auf das bindende Elektronenpaar einer Atombindung.5 Ein stark elektronegatives Atom - wie das Sauerstoffatom - zieht daher das Bindungselektronenpaar stärker an und wird dadurch partiell negativ geladen. Auch das Bindungselektronenpaar zwischen Sauerstoff und Kohlenstoff ist betroffen. Hier ist der Elektronegativitätsunterschied allerdings nicht so groß, so dass das Kohlenstoffatom weniger positiviert wird. Auswirkungen dieses Effektes auf die Eigenschaften der Alkohole sollen im Experimentellen Teil Versuche zur „Mischbarkeit von Alkoholen“, sowie dem Versuch „50 + 50 = 100?“ diskutiert werden (Vgl. Versuch 1: Mischbarkeit verschiedener Alkohole, Versuch 2: 50 + 50 = 100?). Die durch die Ausbildung von Wasserstoffbrücken entstehenden lokalen Ordnungen sind in folgender Abbildung dargestellt: Abb.5: Wasserstoffbrückenbindungen im Ethanol (Rot dargestellt) 5 Vgl. INT.1. 11 II. Alkanole Theorieteil Die intermediär auftretenden Wasserstoffbrückenbindungen haben zur Folge, dass die einzelnen Moleküle weniger frei beweglich sind, was den Übergang vom flüssigen in den gasförmigen Zustand behindert. Die Bindungsenergien dieser Wasserstoffbrücken liegen im Bereich von 40 kJ/mol.6 Aufgrund der Geschwindigkeiten, die die Moleküle der Flüssigkeit besitzen, sind diese Bindungen zwischen zwei Molekülen nur von kurzer Dauer. Jedes Alkoholmolekül wird allerdings auf seinem Weg durch die Lösung ständig wieder von anderen Molekülen angezogen. Dass heißt, es bilden sich beinahe augenblicklich neue Bindungen aus. Die temperaturabhängige Bewegung der Teilchen wird brownsche Molekularbewegung genannt. Mit zunehmender Anzahl an Hydroxygruppen erhöht sich auch deren Siedepunkt. Außerdem steigt die Viskosität der Verbindung an. Während Alkohole, die nur eine Hydroxygruppe tragen (einwertige Alkohole genannt), eine ähnliche Viskosität wie Wasser aufweisen nimmt die Viskosität durch die stärkeren Wechselwirkungen zu. Der Grund für die stärkeren Wechselwirkungen liegt in der erhöhten Anzahl polarer Gruppen pro Molekül (Vgl. Versuch 3: Fließgeschwindigkeiten verschiedener Alkohole). Alkohole, die mehr als eine Hydroxygruppe tragen, werden als mehrwertige Alkohole bezeichnet. Jedes Kohlenstoffatom kann jedoch nicht mehr als eine Hydroxygruppe tragen; dies besagt die so genannte Erlenmeyer-Regel. Verbindungen, die an einem Kohlenstoffatom mehr als eine Hydroxygruppe tragen, gelten als nicht stabil.7 Versucht man zwei Hydroxygruppen an ein Kohlenstoffatom zu binden, entsteht unter Wasserabspaltung eine Carbonylverbindung (Vgl.Abb.6). H - H2O O C H H O H H C O H Abb.6: Erlenmeyerregel – Instabilität der Diole Nicht alle Diole (Verbindungen die an einem Kohlenstoffatom gleich 2 Hydroxygruppen tragen) sind instabil. Sind stark elektronenziehende Gruppen in der Nachbarschaft des 6 7 Vgl. Riedel, 7.Aufl. S.207. Vgl. Asselborn et al., S.248. 12 II. Alkanole Theorieteil Diolen-Kohlenstoffatoms vorhanden, sind diese als stabil anzusehen.8 Beispiel ist das stabile Ninhydrin (auch 1,2,3-Indantrion Monohydrat genannt).9 O OH OH O Abb.7: Ninhydrin Nomenklatur: Die Namen einfacher Alkohole leiten sich von dem der homologen Reihe der Alkane ab. An den Namen des Kohlenwasserstoffs, der namensgebend ist, wird die Endung – ol angehangen sowie eine Zahl vorangestellt, die die Stellung der Hydroxygruppe wiedergibt. Beispiele: H H C OH Methanol H H H H H H C C C H H H OH Propan-1-ol H H H C C H H OH Ethanol H H H H C C C C H H H H OH Butan-1-ol Abb.8: Homologe Reihe der Alkohole Bei den beiden einfachsten Alkoholen, Methanol und Ethanol, ist die Kennzeichnung der Stellung der Hydroxygruppe durch eine eingefügte Zahl nicht notwendig, da es jeweils nur eine Möglichkeit für die Stellung der Hydroxygruppe gibt. Anders sieht es bei den beiden anderen Alkoholen wie Propan-1-ol und Butan-1-ol aus. Isomerie bei Alkanolen: Das in Abb.8 dargestellte Propan-1-ol besitzt die Summenformel C3H8O. Es existiert jedoch noch ein weiterer Alkohol, der die gleiche Summenformel hat, sich jedoch in chemischen Reaktionen sowie physikalischen Eigenschaften von diesem unterscheidet. 8 9 Vgl. INT.2. Vgl. HessGISS. 13 II. Alkanole Theorieteil Name Summenformel Propan C3H8O -1-ol Propan Siedepunkt10 Strukturformel H C3H8O -2-ol H H H H C C C H H OH H H H C C C H OH H -97 °C H -82 °C H Das unterschiedliche Reaktionsverhalten dieser Verbindungen soll im Experimentellen Teil in Versuch 9 und 10 zur Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole näher untersucht werden (Vgl. Versuch 10: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Lucas - Reagenz) und (Vgl. Versuch 9: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat). Die beiden Isomere Propan-1-ol und Propan-2-ol, unterscheiden sich im Siedepunkt wie auch im Reaktionsverhalten aufgrund der Stellung der Hydroxygruppe erheblich voneinander. Man unterteilt die Alkohole daher in drei Gruppen11 und 12: - Primäre Alkohole: Hier ist das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe trägt, nur mit einem weiteren Kohlenstoffatom verbunden. H Bsp.: Ethanol H H C C H H OH H , Propan-1-ol H H H C C C H H OH H . 10 Vgl. Mortimer, S.551. Vgl. Asselborn et al., S.248 12 Vgl. Mortimer, S.551. 11 14 II. Alkanole Theorieteil - Sekundäre Alkohole: Hier ist das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe trägt, mit zwei weiteren Kohlenstoffatomen verbunden. H Bsp.: Propan-2-ol - H H H C C C H OH H H Tertiäre Alkohole: Hier ist das Kohlenstoffatom, dass die Hydroxygruppe trägt, mit drei weiteren Kohlenstoffatomen verbunden. H Bsp.: Tert.Butanol H CH3 H C C C H OH H H (auch 2-Methyl-2-Propanol genannt) Abb.9 a-d: verschiedene Alkohole Löslichkeit: Das Löslichkeitsverhalten der Alkohole unterscheidet sich mit zunehmender Kettenlänge erheblich. Diese Eigenschaft der Alkohole soll im Experimentellen Teil in den Versuchen 1 und Versuch 2 ausführlicher diskutiert werden (Vgl. Versuch 1: Mischbarkeit der Alkohole) und (Vgl. Versuch 2: 50 + 50 = 100?). An dieser Stelle sei vorweggenommen, dass die Löslichkeit der Alkohole in Wasser von der Länge des Alkylrests abhängt sowie von der Anzahl an Hydroxygruppen (Vgl. Abb.10). 15 II. Alkanole Theorieteil R Mischbarkeit mit Wasser nimmt ab H H C O H H H H C C H H H H H C C C H H H H H H H C C C C H H H H H H H H H C C C C C H H H H H H H H H H H C C C C C C H H H H H H H H H H H O H O H O H O H O H Abb.10: Homologe Reihe der Alkohole und deren Mischbarkeit Doch nicht alle Verbindungen, die eine R–OH Gruppe tragen, gehören zu der Stoffgruppe der Alkohole. Ist R, statt eines Alkylrest ein aromatisches System, so gehört dieses zur Klasse der Phenole. Diese reagieren anders als die Alkohole mit wässrigen Lösungen schwach sauer. Ein Grund ist, dass die negative Ladung des Phenolations durch das π-Elektronensystem delokalisiert und damit stabilisiert werden kann (Vgl. Abb.11). OH O - H3O O O O + + H2O Abb.11: Stabilisierung des Phenolations 16 II. Alkanole Theorieteil Im Experimentellen Teil der Arbeit sollen die Unterschiede nochmal etwas genauer beleuchtet werden. Außerdem ist ein Versuch zur einfachen Unterscheidung von Alkoholen und Phenolen aufgelistet (Vgl. Versuch 12: Vergleich von Alkoholen und Phenolen). Reaktionsvielfalt: Die Reaktionsmöglichkeiten der Alkohole sind sehr vielfältig. Fast alle schulrelevanten Stoffklassen können aus Alkoholen synthetisiert werden 13. Diese Reaktionsvielfalt soll in Abb. 13 verdeutlicht werden: Abb.13: Reaktionsvielfalt der Alkohole14 Reaktionen zu einigen dieser Stoffklassen sind im Experimentellen Teil der Arbeit zu finden: (Vgl. Abschnitt Carbonylverbindungen, Versuch 8: Oxidation von Ethanol an Kupferkontakt), (Vgl. Abschnitt Alkanole, Versuch 9: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat), (Vgl. Versuch 4: Reagenzglasgewitter), (Vgl. Versuch 10: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Lucas-Reagenz), (Vgl. Versuch 11: Unterscheidung von Methanol mit Ethanol durch Borsäure). 13 14 Vgl. INT.2. Vgl. INT.2. 17 II. Theorieteil Alkanole Darüber hinaus soll auch im Experimentellen Teil der Arbeit auf die für das Verständnis wichtigen Elementaranalysen, die den Schülern und Schülerinnen15 dabei helfen sollen, die Zusammensetzung der Alkohole besser zu verstehen, eingegangen werden: (Vgl. Versuch 6: Bestimmung des Kohlenstoff und Wasserstoffgehaltes (qualitativ)), (Vgl. Versuch 7: Sauerstoff – Nachweis mittels Magnesium), (►Vergleiche Versuch 8: Umsetzung von EtOH mit Na), (Vgl. Versuch 11: Unterscheidung zwischen Ethanol und Methanol mittels Borsäure). Für die Umsetzung im Unterricht sind darüber hinaus noch im Abschnitt ‚IV – Unterrichtsmaterialien‘ Arbeitsblätter, die eine vertiefende Auseinandersetzung mit den im ‚Experimentellen Teil‘ der Arbeit aufgegriffenen Inhalt ermöglichen sollen. Die Arbeitsblätter stellen lediglich ein Hilfsmittel für eine vertiefende Aufarbeitung der Versuche im Unterricht dar. Sie erheben keinen Anspruch auf Vollständigkeit. Die Arbeitsblätter können sowohl im ganzen als auch zur teilweisen Verwendung im Unterricht finden oder auch nur zur Anregung dienen. 15 Im Folgenden wird der Einfachheit halber häufig auf die Unterscheidung zwischen femininer und maskuliner Form von Schülerinnen und Schüler verzichtet und nur die männliche Form verwendet. 18 II. Carbonylverbindungen Theorieteil Carbonylverbindungen: Die Kohlenstoff-Sauerstoff-Bindung, Carbonylgruppe genannt, ist eine weitere funktionelle Gruppe. Sie gilt als die wichtigste funktionelle Gruppe der Organischen Chemie.16 Carbonylverbindungen spielen vor allem in der präparativen Chemie eine bedeutende Rolle, da sie sehr reaktiv sind, sich selbst leicht herstellen lassen und aus ihnen eine Vielzahl von Verbindungen zugänglich sind. Viele spielen auch bei biochemischen Vorgängen eine bedeutende Rolle. So tragen viele Naturstoffe eine Carbonylgruppe - Hormone, Vitamine, Medikamente oder Aromastoffe sind nur einige Beispiele für Naturstoffe, die eine Carbonylgruppe tragen und eine wichtige Rolle im täglichen Leben spielen. Darüber hinaus kommen Carbonylverbindungen aber auch in beträchtlichem Umfang industriell zum Einsatz (als Lösungsmittel). In dieser Arbeit soll sich auf zwei Klassen von Carbonylverbindungen konzentriert werden: Die Aldehyde, bei denen mindestens ein Wasserstoffatom an das CarbonylKohlenstoffatom gebunden ist, und die Ketone, bei denen die Carbonylgruppe mit zwei Kohlenstoffatomen verbunden ist (Vgl. Abb.14).17 HO O O O C C C OH Carbonylgruppe R H Aldehyd R R 1 Keton Abb.14: Übersicht - Carbonsäuren Aldehyde werden nach IUPAC – Nomenklatur als Derivate der Alkane behandelt. Bei der Namensgebung wird an den Namen des Alkans die Endung -al angehängt. So ergibt sich für diese Gruppe der IUPAC – Name Alkanal. Im Folgenden soll allerdings auf den Namen Aldehyd zurückgegriffen werden.18 Aldehyde besitzen - wie Abb.14 zeigt - eine endständige Carbonylgruppe. Diese beeinflusst stark die Eigenschaften der Verbindungen. Im ‚Experimentellen Teil‘ der Arbeit sollen verschiedene Nachweismethoden für die Aldehydgruppe aufgezeigt werden (Vgl. Versuch 2: Silberspiegelprobe), (Vgl. Versuch 3: Fehlingprobe), 16 Vgl. Bruice, S.829. Vgl. Vollhardt, S.782. 18 Vgl. Asselborn et al., S.262. 17 19 II. Carbonylverbindungen Theorieteil (Vgl. Versuch 5: Aldehydnachweis im Zigarettenrauch) und (Vgl. Versuch 6: Schiffsche Probe). Ketone indes, werden von der IUPAC als Alkanone bezeichnet. Bei der Namensgebung wird an den Alkannamen die Endung -on angehängt. Anders als bei den Aldehyden, ist die Carbonylgruppe im Keton nicht endständig. Das Kohlenstoffatom der Carbonylgruppe ist mit zwei weiteren Kohlenstoffatomen verbunden (Vgl. Abb.15).19 O Propanon C H3C Trivialname: Aceton CH3 Abb.15: Strukturformel von Propanon Das dargestellte Aceton (Propanon) ist das einfachste Keton. Es findet in der Industrie vor allem Anwendung als Lösungs- und Extraktionsmittel. Vor einigen Jahren fand es sich in Form von Nagellackentferner in vielen Haushalten wieder. Die Wichtigkeit der Verbindungsklasse geht auf die hohe Reaktivität der Carbonylverbindungen zurück. Diese lässt sich durch folgende zwei Mesomeregrenzformeln darstellen: HO HO C HO C O O HO Abb.16: Polarität der Carbonylgruppe Die Polarität, die Ungleichverteilung der Ladung, der C=O Doppelbindung ist noch stärker ausgeprägt als bei Alkoholen, da sich die elektronenziehende Wirkung stärker auf die Bindung als auf die -Bindung auswirkt. Der Grund liegt in der stärkeren Polarisierbarkeit der Bindungselektronen durch den Sauerstoff, welche auf den 19 Vgl. Asselborn et al., S. 263. 20 II. Carbonylverbindungen Theorieteil größeren Koeffizienten des p-Orbitals im π-Orbital am O-Atom zurück zu führen ist (Vgl. Abb.17). 20 E HO * C O HO HO C O HO Abb.17: Polarität der Carbonylgruppe Im antibindenden *-Orbital sind die Größenverhältnisse umgekehrt. Dies erklärt auch, warum das Dipolmoment – das sich aus der Polarisierbarkeit ergibt – im angeregten Zustand deutlich geringer ist (Vgl.Abb.17).21 Der Elektronegativitätsunterschied zwischen Sauerstoff und Kohlenstoff bedingt die Polarität der Gruppe. Das Sauerstoffatom der Verbindung besitzt eine höhere Elektronegativität als der Kohlenstoff, so dass der Carbonyl-Kohlenstoff partiell positiv (+) und der Carbonyl-Sauerstoff partiell negativ (-) geladen ist (Vgl. Abb.18). Darüber hinaus ermöglichen auch die zwei freien Elektronenpaare am Sauerstoffatom verschiedene Reaktionsmöglichkeiten, die zusammen mit weiteren wichtigen Reaktionsarten der Carbonylverbindungen im Folgenden näher beleuchtet werden sollen: 20 21 Vgl. INT.3. Vgl. INT.3. 21 II. Carbonylverbindungen Theorieteil I. nucleophiler Angiff HO C II. elektrophiler Angriff z.B.: Protonierung O H3C C H3C H III. Deprotonierung durch Basen Abb.18: Reaktionsübersicht Übersicht: I. nucleophiler Angriff: HO Nu - + C OH Nu O HO C O - OH Abb.18a: nucleophiler Angriff Durch die positive Partialladung am Carbonyl-Kohlenstoffatom greifen Nucleophile bevorzugt an dieser Stelle an. II. elektrophiler Angriff: HO HO C HO O + H H C HO O HO + H C O HO Abb.18b: elektrophiler Angriff Darüber hinaus kann das Carbonyl-Sauerstoffatom durch die negative Partialladung (Vgl.Abb.18 und Abb.16) gut elektrophil agieren. Hier am Beispiel der Protonierung aufgezeigt: 22 II. Carbonylverbindungen Theorieteil III. Deprotonierung durch Basen: HO HO HO C O C H3C + C H3C B B H +HC C O H3C C 3 H O C CH3 CH3 Abb.18c: Deprotonierung durch Basen Eine starke Base, die selbst jedoch nicht als Nucleophil reagieren kann, greift das relativ acide (pKs = 20)22 -Wasserstoffatom an. Dies führt in der Folge zur Bildung eines Enolates. Vergleicht man und Wasserstoffatome auf ihre Acidität hin, so fällt der große Unterschied zwischen beiden auf. Enolat HO H C B O C H H H C C H H pKs = 19-20 B H + H C O H C O C CH3 CH3 Resonazstabilisierung H pKs = 40-50 H O B B H + C H C H H C H schlecht stabilisiertes Carbanion Abb.19: Deprotonierungsreaktionen Während der Wasserstoff einen pKs von ungefähr 20 aufweist, ist der Wasserstoffdeutlich weniger acide. Der Wasserstoff besitzt hingegen nur einen pKs 22 Vgl. INT.4. 23 II. Carbonylverbindungen Theorieteil von 40 bis 50.23 Der Grund für die Unterschiede in der Acidität liegen in der Möglichkeit durch Resonanzstabilisierung, wobei sich das bildende Carbanion einem Enolat stabilisiert! Diese Möglichkeit der Resonanzstabilisierung entfällt bei dem sich durch Deprotonierung des -Wasserstoffes bildenden Carbanion (Vgl. Abb.19). Das Kohlenstoffatom der Carbonylgruppe zeigt wie auch das Kohlenstoffatom im Alken eine sp2-Hybridisierung, was zu einem 120° - Winkel in der Ebene führt. Diese sp2Hybridisierung ist im Folgenden Orbitalbild der Carbonylgruppe dargestellt: Abb.20a: Orbitalbild der Carbonylgruppe Abb.20b: Orbitalbild der Carbonylgruppe24 Aldehyde, also Verbindungen, die eine endständige Carbonylgruppe tragen, lassen sich durch Oxidation primärer Alkohole mit einem geeigneten Reagenz herstellen (Vgl. Versuch 8: Oxidation von Methanol und Ethanol an Kupferkontakt). Wird allerdings ein zu starkes Oxidationsmittel verwendet, so wird der primäre Alkohol nicht nur bis zum Aldehyd oxidiert, sondern in der Folge weiter zur Carbonsäure (Vgl. Abschnitt Alkohole, Versuch 9: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat). Das erste Glied der homologen Reihe der Alkanale ist das Methanal, auch Formaldehyd genannt. 23 24 Vgl. INT.4. Vgl. Abbildungsverzeichnis, [12]. 24 II. Carbonylverbindungen Theorieteil O Formal dehyd Methanal C H H Abb.21: Strukturformel - Formaldehyd Formaldehyd stellt einen wichtigen Grundstoff der chemischen Industrie dar. In Deutschland werden pro Jahr rund 500.000 Tonnen hergestellt. Der größte Teil wird zur Herstellung von Kunststoffen wie Aminoplasten und Phenoplasten benötigt.25 Im ‚Experimentellen Teil‘ der Arbeit soll daher exemplarisch auf die Herstellung von Bakelit eingegangen werden (Vgl. Versuch 9: Bakelit Herstellung). Neben der unterschiedlichen Reaktivität unterscheiden sich die Aldehyde und Ketone auch von den Alkoholen in ihren physikalischen Eigenschaften: So liegen aufgrund des Fehlens von intermolekularen Wasserstoffbrückenbindungen die Siedepunkte der Aldehyde tiefer als die der entsprechenden Alkohole, trotzdem jedoch noch höher als die der Alkane. Für die Umsetzung im Unterricht sind darüber hinaus noch im Abschnitt ‚IV – Unterrichtsmaterialien‘ Arbeitsblätter angefügt, die eine vertiefende Auseinandersetzung mit den im ‚Experimentellen Teil‘ der Arbeit aufgegriffenen Inhalten ermöglichen sollen. 25 Vgl. Asselborn et al., S.262. 25 II. Kohlenhydrate Theorieteil Kohlenhydrate: Die Naturstoffklasse der Kohlenhydrate nimmt eine zentrale Rolle für das Leben auf der Erde ein. Kohlenhydrate werden von Lebewesen aller Art zur Energiegewinnung und Energiespeicherung genutzt. Sie stellen einen wichtigen Bestandteil unserer Nahrung dar und dienen als Reservestoff. Kohlenhydrate werden durch Photosynthese-prozesse in Pflanzen gebildet. Hierbei erzeugen chlorophyllhaltige Organismen (wie Pflanzen und einige Bakterien), die mittels Photosynthese einem der ältesten chemischen Prozesse, aus Wasser und Kohlendioxid mittels Lichtenergie, die energiereichen Kohlenhydrate. Die Lichtenergie wird mit Hilfe lichtabsorbierender Farbstoffe, wie dem Chlorophyll, aufgenommen. Neben den wichtigen Kohlenhydraten produzieren die photosyntheseaktiven Pflanzen auch Sauerstoff, der für Mensch und Tier lebensnotwendig ist.26 Schematisch lässt sich dieser Vorgang, der zur Bildung der organischen Substanzen führt, folgendermaßen beschreiben: h 6 CO2 (g) + 6 H2O C6H12 O6 (s) + 6 O2 (g) Abb.22: Netto Gleichung der oxygenen Photosynthese27 Durch Photosyntheseprozess werden, von der gesamten Pflanzenwelt innerhalb eines Jahres, schätzungsweise 60 Milliarden Tonnen organisches Material aufgebaut.28 So bildet sich aus einem Buchensamen mit einer Gesamtmasse von ungefähr 0,2 g in 100 Jahren ein Baum der 5000 kg wiegt. Der gesamte Kohlenstoffanteil der Masse des Baumes, der in organischem Material gebunden ist, stammt dabei aus dem Kohlendioxid der Luft (Vgl. Abb.22). Ein stattlicher Baum mit rund 200.000 Blättern (1200 m2 Fläche, 180 g Chlorophyll) produziert so an einem einzigen Sonnentag als Nebenprodukt 9400 l Sauerstoff. Die Photosynthese ist dabei der einzige Lieferant des so immens wichtigen Sauerstoffs.29 26 Vgl. INT.5. Vgl. Deckwer et al.. 28 Vgl. Bibliographisches Institut und F.A. Brockhaus AG. 29 Vgl. Deckwer et al.. 27 26 II. Kohlenhydrate Theorieteil In den Stoffwechselprozessen der Lebewesen oder Pflanzen können diese Kohlenhydrate zur Energiegewinnung und damit zur Aufrechterhaltung der Körperfunktionen verwendet werden. Die Kohlenhydrate dienen als Nährstoffe, die dem Körper zur Energiegewinnung zugeführt werden müssen. Die Nährstoffe werden dann in Stoffwechselprozessen durch Oxidation abgebaut, wobei die chemisch gespeicherte Energie für den Organismus verfügbar wird. Als Endprodukte dieser Stoffwechselprozesse im Organismus entstehen so Kohlendioxid und Wasser. Die Pflanzen benötigen diese Endprodukte wiederrum zum Aufbau der Kohlenhydrate, so dass der Kreislauf von Neuem beginnen kann (Vgl. Abb.23 und Abb.24). Abb.23: Schematisches Energiediagramm der oxygenen Photosynthese Photosynthese Sauerstoff Lichtenergie Kohlendioxid Wasser Kohlenhydrate Stoffw echsel Zellatmung im Organismus Sauerstoff Proteine Fette Zellatmung im Organismus Abb.24: Stoffkreislauf 30 30 Vgl. Asselborn et al., S.358. 27 II. Kohlenhydrate Theorieteil Allgemein werden Kohlenhydrate in Mono-, Di-, Oligo- und Polysaccharide unterteilt, da die Eigenschaften der einzelnen Kohlenhydrate unteranderem durch ihre Molekülgröße mitbestimmt werden.31 Zur Klasse der Monosaccharide gehören die bekannten Stoffe Fructose und Glucose (Vgl. Abb.25). Beide Stoffe werden als Hexosen bezeichnet. Formal bilden sich diese durch Oxidation von mehrwertigen Alkoholen (Vgl. Abb.25). Bei der Fructose handelt es sich um eine Ketohexose, während die Glucose eine Aldohexose ist. H +I O CH 2OH Oxidation H H OH HO HO H 0 CH 2OH Oxidation OH O +II H HO H H OH H OH H OH H OH H OH H OH CH 2OH CH 2OH CH 2OH Glucose Sorbit Fructose Aldohexose (Aldose) Polyalkohol Ketohexose (Ketose) Abb.25: Fischer Projektion der Oxidationsprodukte von Sorbit Die Namen ‚Aldo‘ und ‚Keto‘ spielen dabei auf ihre funktionelle Gruppe an. So besitzt die Aldohexose Glucose eine endständige Aldehydgruppe, während die Fructose eine Ketogruppe trägt. Wie in Abb.25 zu erkennen ist, unterscheiden sich die beiden bekanntesten Monosaccharide - die beide die Summenformel C6H12O6 tragen - durch ihre funktionelle Gruppe. Im ‚Experimentellen Teil‘ der Arbeit soll durch Nachweisreaktionen eine Unterscheidung der beiden Einfachzucker aufgezeigt werden (Vgl. Versuch 7: Unterscheidung von Fructose und Glucose und Vgl. Versuch 3: Seliwanoffprobe). Diese Unterscheidung sollte aufgrund der unterschiedlichen Gruppen einfach möglich sein. So lässt sich die Aldehydgruppe beispielsweise durch milde Reagenzien wie Silber(I) oder Kupfer(II) leicht zur Carbonsäure oxidieren, während die Ketogruppe der Fructose nicht mit diesen Reagenzien oxidiert werden kann (Vgl. Versuch 1: Silberspiegelprobe und Vgl. Versuch 2: Fehlingprobe). Doch durch die sogenannte Keto – Enol – Tautomerie vermag es die Fructose sich in Glucose 31 Vgl. Asselborn et al., S.359. 28 II. Kohlenhydrate Theorieteil oder Mannose umzuwandeln, diese beide ebenfalls eine reduzierend wirkende Gruppe besitzen. Dadurch wird es möglich, dass die Nachweisreaktion, die lediglich auf oxidierbare Gruppen testet, ebenfalls positiv verläuft. Aus diesem Grund ist eine Unterscheidung nur durch den Vergleich des zeitlichen Verlaufs der Reaktion möglich, oder durch den Einsatz selektiv wirkender Reaktanden. So beispielsweise der „GOD – Test“, der mittels eines Enzyms auf Glucose testet, oder der „Seliwanoffprobe“, die ebenfalls eine Unterscheidung von Ketosen und Aldosen ermöglicht. Die Monosaccharide lassen sich dabei in verschiedenen Arten darstellen; die wohl Wichtigsten, die auch zum Darstellen der Kohlenhydrate in dieser Arbeit herangezogen wurden, sollen exemplarisch am Beispiel der -D-Glucose vorgestellt werden: OH H O H HO +I H O H in Haworth-Form H H HO H H * * * * OH -D-Glucose H OH OH OH H OH OH CH 2OH D - Glucose in Fischerprojektion H OH HO HO H H O H -D-Glucose in Sesselform OH OH H *asymmetrisches C-Atom Abb.26: Verschiedene Darstellungsformen der Glucose Die in Fischerprojektion dargestellte offenkettige Form (Aldehydform) der Glucose liegt in Lösung lediglich zu 0,1% vor.32 Nur in dieser offenkettigen Form wirkt Glucose reduzierend. Die in der Darstellung wohl etwas kompliziertere Sesselform gibt, zusammen mit der Haworth-Projektion der Glucose, etwas von ihrer dreidimensionalen Anordnung der Seitengruppen wieder. In der offenkettigen Form sind auch die vier asymmetrischen Kohlenstoffatome der DGlucose erkennbar (gekennzeichnet mit (einem) *). Ein asymmetrisch substituiertes Kohlenstoffatom trägt jeweils vier unterschiedliche Substituenten. Eine Verbindung die mindestens ein solches Stereozentrum trägt, gilt als optisch aktiv. Dies bezeichnet die 32 Vgl. Asselborn et al., S.360. 29 II. Kohlenhydrate Theorieteil Fähigkeit eines solchen Stereozentrums, linear polarisiertes Licht in seiner Schwingungsebene zu drehen.33 Untersuchungen von Glucoselösungen im Polarimeter haben Hinweise darauf gegeben, dass D-Glucose in wässriger Lösung in zwei verschiedenen Ringstrukturen vorliegen muss, da Glucoselösungen das Phänomen der Mutarotation aufweisen. In einer frisch hergestellten Glucoselösung verändert sich der Drehwinkel des linear polarisierten Lichtes kontinuierlich, bis sich nach einiger Zeit ein konstanter Wert einstellt. Dieses sich Ändern des Drehwinkels wird Mutarotation genannt und deutete auf das Einstellen eines chemischen Gleichgewichtes zwischen den zwei Stereoisomeren -Glucose und -Glucose hin. H OH HO HO H H H OH H O HO HO H OH OH H H -D-Glucose in Sesselform H O OH OH H -D-Glucose in Sesselform Abb.27: Alpha- und Beta-Glucose in Sesselform 34 Durch Ringöffnung kann sich in wässriger Lösung eine Form in die andere umwandeln. Dabei besitzen die beiden Stereoisomere jeweils unterschiedliche Drehwinkel, so dass dies, zusammen mit dem Wissen über die Möglichkeit der Umlagerung, die Veränderung des Drehwinkels erklärt. Die monosacchariden Bausteine lassen sich darüberhinaus auch noch durch die Anzahl der C-Atome in der Kette unterteilen. So gibt es neben der wohl wichtigsten Gruppe von Monosacchariden, den Hexosen, noch weitere: 33 34 Vgl. Asselborn et al., S.365. Vgl. Deckwer et al.. 30 II. Kohlenhydrate Theorieteil Name der Anzahl der C-Atome in Summenformel Gruppe der Kette Triosen 3 C3H6O3 Tetrosen 4 C4H8O4 Pentosen 5 C5H10O5 Hexosen 6 C6H12O6 Heptosen 7 C7H14O7 Allgemein X CxH2xOx Verhältnis C-H-O : 1-2-1 Abb.28: Verschiedene Darstellungsformen der Glucose Weitere Eigenschaften, die Nomenklatur sowie das Reaktionsverhalten der Monosaccharide, werden ausführlicher in der fachlichen Auswertung der Protokolle zu den jeweiligen Versuchen (der Kohlenhydrate) im ‚Experimentellen Teil‘ der Arbeit diskutiert. Falls eine vertiefende Auseinandersetzung mit dem Thema ‚Kohlenhydrate‘ erfolgen soll, so kann auf die Wissenschaftliche Hausarbeit von Andreas Gerner verwiesen werden, die sich mit Videoexperimenten zum Thema ‚Kohlenhydrate ‚befasst. In Disacchariden sind jeweils zwei Monosaccharide kovalent über eine glycosidische Bindung miteinander verbunden. Zu den wichtigsten Disacchariden zählen: Name Cellobiose Strukturformel Art der Bindung Wirkung? Cellobiose β-(1,4)- OH H HO HO H H H O OH H 1 HO O OH H OH H H 4 Glucose. OH Glucose - Rest Lactose Milchzucker Glucose - Rest Lactose OH HO H HO H H H O HO O 1 H OH H OH H 4 β-(1,4)- H OH H O H OH Galacose - Rest glycosidisch: Glucose, O H H Reduzierend Reduzierend glycosidisch: Galactose, Glucose. Glucose - Rest 31 II. Kohlenhydrate Theorieteil Maltose OH H Malzzucker HO HO H H α-(1,4)O OH H 1 Maltose glycosidisch: H H O HO OH 4 H H Saccharose Rübenzucker Glucose, H O H O HO HO Haushalszucker 1 OH O α-(1,2)- Nicht glycosidisch: reduzierend Glucose, OH OH 2 Glucose . OH OH Saccharose OH Reduzierend Fructose . OH O HO -1-2 - verknüpft Abb.29: Verschiedene Disaccharide, ihre Bindungsart sowie ihre Wirkung Wie in Abb.29 dargestellt, ergeben sich verschiedene Möglichkeiten wie die einzelnen Monosaccharidbausteine miteinander verknüpft werden können. Hier sind nur die wichtigsten Disaccharide aufgelistet. Vor allem die Saccharose, der sogenannte Haushaltszucker, ist ein wichtiger Vertreter dieser Klasse und sicher fast in jedem Haushalt zu finden. Saccharose setzt sich, wie in Abb.29 zu erkennen ist, aus einem Glucose- und einem Fructosebaustein zusammen, welche α,β-1,2-verknüpft sind. Saccharose wirkt obwohl sie unteranderm aus Glucose aufgebaut ist, nicht wie diese reduzierend, da beide Monosaccharide so miteinander verknüpft sind, so dass auch bei Ringöffnung keine reduzierbare wirkende Aldehydgruppe gebildet werden kann.35 Anders ist es bei den drei anderen Disacchariden. Alle drei wirken reduzierend und zeigen eine positive Silberspiegel- und Fehlingprobe (Vgl. Versuch 1: Silberspiegelprobe und Vgl. Versuch 2: Fehlingprobe) an. Sind in einem Molekül mehr als 10 und bis zu mehreren tausend Monosaccharide über glycosidische Bindung miteinander verbunden, so spricht man von einem Polysaccharid. Bei diesem handelt es sich um einen Biopolymerestoff, der zur 35 Vgl. Asselborn et al., S.363ff. 32 II. Kohlenhydrate Theorieteil Energiespeicherung in Flora und Fauna Verwendung finden. Darüber hinaus dienen sie, wie die Cellulose – das verbreitetste Polysaccharid – als Gerüststoff und sind in den Zellwänden der Pflanzen form- und festigkeitsgebend. Cellulose besteht aus β-(1,4)verknüpften Glucoseeinheiten und ist wasserunlöslich. Ein weiteres wichtiges Polysaccharid, welches in Pflanzen als Reservestoff und damit als Energiespeicher dient, ist die Stärke. Sie setzt sich allgemein aus zwei Anordnungen zusammen, der Amylose und dem Amylopektin. Verschiedene Versuche zu diesem wichtigen Polysaccharid sind im ‚Experimentellen Teil‘ der Arbeit zu finden (Vgl. Versuch 6: Stärkenachweis in Mehl und Reis), (Vgl. Versuch 8: Untersuchung der Inhaltsstoffe einer Kartoffel) und (Vgl. Versuch 10: Hydrolyse von Stärke). Für die Umsetzung im Unterricht sind darüber hinaus in Abschnitt ‚IV – Unterrichtsmaterialien‘ Arbeitsblätter zu finden, die eine vertiefende Auseinandersetzung mit den Themen im ‚Experimentellen Teil‘ der Arbeit ermöglichen sollen. 33 II. Aminosäuren und Proteine Theorieteil Aminosäuren und Proteine: Aminosäuren bestehen aus einem zentralen Kohlenstoffatom, an dem sich als funktionelle Gruppen eine Aminogruppe (-NH2) und eine Säuregruppe (Carboxylgruppe -COOH) befinden. Sie sind demnach bifunktionell. Diese beiden Gruppen führen zur Namensgebung der Aminosäure die schon auf die beiden funktionellen Gruppen des Moleküls hinweist.36 Im ‚Experimentellen Teil‘ der Arbeit sollen verschiedene Nachweisreaktionen dabei helfen, einen Einblick in den Aufbau der Aminosäuren zu bekommen. Trotz der denkbaren Vielfalt der möglichen Aminosäuren (heute sind mehr als 250 nicht- proteinogene Aminosäuren bekannt, die biologische Funktionen haben) finden lediglich 20 Aminosäuren Verwendung in Körper.37 Diese liegen auch fast ausschließlich in L-Form vor.38 Allgemein kann man die proteinogenen Aminosäuren, also die Aminosäuren die in Proteinen vorkommen, folgendermaßen darstellen: NH2 H OH H2N R O OH R H O Abb.30: Allgemeine Darstellung der Aminosäure Die Aminogruppe sitzt dabei an dem Kohlenstoffatom, das der Carboxylgruppe benachbart ist, dem C2 – Atom. Diese wird als sogenannte - Position bezeichnet.39 36 Vgl. Deckwer et al.. Vgl. INT.6. 38 Vgl. Asselborn et al., S.372. 39 Vgl. Asselborn et al., S.372. 37 34 II. Aminosäuren und Proteine Theorieteil Allgemein gesehen lassen sich die Aminosäuren aufgrund ihrer Eigenschaften in folgende vier Gruppen einteilen: Unpolare Aminosäuren O O H2N H2N OH O H2N OH OH CH3 . Gl ycin (Gly) L - Ala nin(Ala) . L - Va li n(Val) O O H2N O H2N OH O H N OH H2N OH OH . . . . L - Leuci n (Leu) Proli n (Pro) L - Is ol euci n(ile) L - Phenyla la nin(Phe) Abb.31a: Unpolare Aminosäuren Polare Aminosäuren O O O H2N O OH H2N H2N H2N OH OH OH . SH OH OH S CH3 L - Cys tei n (Cys) L - Se ri n (Ser) O H2N L - Methi oni n(Met) O H2N OH L - Threonin(Thr) O O OH H2N H2 N OH OH O OH L - Tyros i n (Tyr) H2N O L - Gluta mi n(Gln) N H NH2 L - As pa ra gin(Asn) L - Tryptopha n(Try) Abb.31b: Polare Aminosäuren Die unpolaren Aminosäuren lösen sich aufgrund eines unpolaren Restes (mit R bezeichnet) schlecht in Wasser (Vgl. Experimenteller Teil, Aminosäuren und Proteine, Versuch zur Löslichkeit von Tyrosin). Die Löslichkeit der Aminosäuren in 35 II. Aminosäuren und Proteine Theorieteil Wasser hängt stark vom pH-Wert der Lösung ab, so dass sich bei Veränderung des pHWertes auch die Löslichkeit verändert. Wichtiger ist jedoch die Einteilung nach dem Protolyseverhalten in Wasser. So unterteilt man die Aminosäuren darüber hinaus in saure und basische Aminosäuren. (Vgl. Abb.31c und Abb.31d): Saure Aminosäuren O H2N O H2N OH OH O HO OH O L - As paragins äure(Asp) L - Glutami ns äure(Glu) Abb.31c: Saure Aminosäuren Basische Aminosäuren O H2N O H2N OH O H2N OH OH N NH HN NH2 H2N L - Lys i n (Lys) NH L - Argi ni n (Arg) L - His ti di n(His) Abb.31d: Basische Aminosäuren Von diesen 20 proteinogenen Aminosäuren müssen 8 durch die Nahrung aufgenommen werden. Sie können nicht vom Körper selbst synthetisiert werden. Diese sogenannten essentiellen Aminosäuren sind: Valin, Leucin, Isoleucin, 36 II. Aminosäuren und Proteine Theorieteil Phenylalanin, Threonin, Lysin, Tryptophan, Cystein, Methionin.40 Die einzelnen Aminosäuren besitzen als funktionelle Gruppen eine Aminogruppe (NH2) und eine Carboxylgruppe (-COOH). Bei der Aminogruppe spricht man auch von einem N – Terminalen Ende, bei der Carboxylgruppe von einem C- terminalen Ende. Abb.32: Aminosäure Die 20 proteinogenen Aminosäuren unterscheiden sich dabei jeweils durch ihren Rest (-R). (Vgl.Abb.31a-d). Diese können vereinfacht durch folgende Darstellungen wiedergegeben werden. Abb.33: vereinfachte Darstellung der Aminosäuren Diese Art der Darstellung hat den Vorteil, die Bildung von Peptiden und Polypeptiden 40 Vgl. Asselborn et al., S.373. 37 II. Aminosäuren und Proteine Theorieteil besser darstellen zu können. Durch diese Art der didaktischen Reduktion kann evtl. der Einstieg in das Themenfeld der Aminosäuren und Peptide für die Schüler und Schülerinnen erleichtert werden. Im Folgenden soll der besseren Darstellbarkeit für die in Abb.31a-d abgebildeten Aminosäuren wiederholt auf diese Art der Darstellung zurückgegriffen werden. Das Vermögen der Aminosäuren sich miteinander verbinden zu können, so dass Polymeremoleküle entstehen, ist eine grundlegend und eine der wichtigsten Eigenschaften im Themenfeld der Aminosäuren. Hierbei bilden jeweils zwei O .... ..... .... .... NH .... .... Aminosäuren über eine Peptidbindung ein Dipeptid. Diese Möglichkeit der Verbindung ist in Abb.34 dargestellt. Formal entsteht ein Peptid durch eine Kondensationsreaktion der Carboxylgruppe (-COOH) eines Aminosäure-Moleküls mit der Aminogruppe (-NH2) eines weiteren Aminosäuremoleküls. (Vgl. Abb.34) H H N N H O O R 1 H R O N OH OH H R H O NH R + H 2O HO Abb.34: Peptidbindung Nach der Bildung eines Dipeptides ist jedoch nicht zwangsläufig Schluss. Es kann durch weitere Kondensationsreaktionen zu weiteren Peptidbindungen und damit zu Polypeptiden kommen. (Vgl.Abb.36 und Abb.37). Abb.35: Peptidbindung 38 II. Aminosäuren und Proteine Theorieteil Jedes Peptid, ob Di-, Oligo-, oder Polypeptid, das auf diese Art entsteht, weist jeweils 2 endständige Bausteine auf. Ein N-Terminales und ein C-Terminales Ende. Beim CTerminalen Ende handelt es sich um die Carboxylgruppe, beim N-Terminalen um die Aminogruppe. Beide sind befähigt, durch Kondensationsreaktionen in der Folge weiter zu reagieren. Aus diesem Grund können sich immer längere Peptidketten bilden. Handelt es sich um Peptide aus 2 bis 9 Bausteinen, spricht man von einem Oligopeptid, sind es 10 bis 100 Aminosäure - Bausteine die über die Peptidbindungen verbunden sind, handelt es sich um ein Polypeptide, bei über 100 Aminosäure-Bausteinen spricht man von einem Protein. Abb.36: Polypeptid Eine alternative Schreibweise zur Wiedergabe dieser Sequenz der Aminosäuren, die häufig Verwendung findet, ist die Auflistung der Kürzel der Aminosäuren (Vgl.Abb.31ad). beispielsweise: ….-Ala-Gly-Gly-Val-Ala-Lys-Leu-Try-Lys-Ala-Gly-Lys-Val-Asn-Cys-Asn-Asn-Cys-Leu-… Abb.37: Polypeptid Die Bildung von Peptiden läuft jedoch nicht freiwillig und spontan ab sondern ist endergonisch. Das heißt, dass sowohl bei der Laborsynthese als auch bei der biologischen Synthese die beteiligten Gruppen (Carboxyl und Aminogruppe) zunächst aktiviert werden müssen. Die sich bildende Peptidbindung ist jedoch eine stabile Bindung. Die Stabilität der Peptidbindung kann unter anderem durch die Mesomerie erklärt werden: R O R O R R N R R H R - R R + N R R R H Abb.38: Stabilisierung der Peptidbindung 39 II. Aminosäuren und Proteine Theorieteil Wie man bereits in Abb. 36 und Abb. 37 erkennen kann, ergeben sich allein durch die Anordnung der Aminosäurebausteine eine unglaublich große Variationsvielfalt. In einem Protein mit nur 100 Aminosäurebausteinen ergibt sich rechnerisch bereits eine Kombinationsmöglichkeit von 20100 ≈ 10130. Die Wirklichkeit bestätigt diesen theoretischen Exkurs; denn tatsächlich sind Proteine die Naturstoffe mit der größten Mannigfaltigkeit.41 Doch nicht allein die Abfolge der Aminosäure-Bausteine im Peptid oder im Protein, die als Primärstruktur bezeichnet wird, bestimmt seine Eigenschaft, sondern auch seine Beschaffenheit lässt Rückschlüsse auf die Wirkung zu. So spielt vor allen Dingen die ‚Anordnung im Raum‘ eine wichtige Rolle. Pauling und Corey bereits in den 1930er Jahren erkannt, dass kristalline Peptide sich in regelmäßigen räumlichen Mustern anordneten, einer schraubenartigen -Helix oder einer als -Faltblatt-Struktur bezeichneten Anordnung ausgestalteten (Vgl. Abb.39a und 39b). -Helix-Struktur -Faltblatt-Struktur Abb.39a: Räumliche Anordnung der Peptidkette in -Helix-Struktur 42 Abb.39b: Zwei Peptidketten in -Faltblatt – Struktur angeordnet 43 41 Vgl. Asselborn et al., S.376. Vgl. Abbildungsverzeichnis [0a] 43 Vgl. Abbildungsverzeichnis [0b] 42 40 II. Aminosäuren und Proteine Theorieteil Diese regelmäßigen Anordnungen ergeben sich durch verschiedene mögliche Wechselwirkungen zwischen den Seitenketten, die Beispielsweise zur Ausbildung von Wasserstoffbrücken-Bindungen zwischen den Peptidketten führen. Man bezeichnet eine derartige Ausbildung einer lokalen räumlichen Struktur als Sekundärstruktur. Vergleicht man Proteine mit identischer Primärstruktur, stellt man fest, dass sie immer die gleiche dreidimensionale Struktur aufweisen. Diese nennt man Tertiärstruktur. Abb.40: Tertiärstruktur44 Die in Abb.40 dargestellte Tertiärstruktur beschreibt die dreidimensionale Struktur eines Proteins. Hierbei zeigt sich, dass die charakteristische lokale Ordnung in der Sekundärstruktur zu einer Fernordnung im System führt. Die Tertiärstruktur entsteht durch Verwindung der Sekundärstruktur. Wichtige Kräfte, die zur Bildung dieser Fernordnung beitragen, sind die sogenannten London-Kräfte - die schon angesprochenen Wasserstoffbrückenbindungen - sowie auch die Bildung von Disulfidbindungen sowie elektrostatischen Wechselwirkungen. Im Versuch zur Oxidation von Cystein zu Cystin wird auf die Bildung der Disulfidbrücken, die stark zur Ausbildung von Tertiärstrukturen beitragen, eingegangen werden (Vgl. hierzu, Experimenteller Teil, Punkt Aminosäuren und Proteine, Versuch 6: Oxidation von Cystein zu Cystin). Darüber hinaus soll der Versuch zum Schwefelnachweis durch Thermolyse einen Einblick darin geben, wo sich solche schwefelhaltigen Aminosäuren 44 Vgl. Abbildungsverzeichnis [0c]. 41 II. Theorieteil Aminosäuren und Proteine in unserm Umfeld zu einem sehr hohen Prozentsatz befinden (Vgl. hierzu: Experimenteller Teil, Aminosäuren und Proteine, Versuch 5: Schwefelnachweis durch Thermolyse). Besteht ein Protein aus mehreren Polypeptidketten, die sich jede für sich nach eigenen Regeln anordnen - trotzdem jedoch noch eine gemeinsame Ordnung bilden spricht man von einer Quartärstruktur. Diese Quartärstruktur die Proteine kann durch verschiedene äußere Einflüsse irreversibel zerstört werden. Man spricht in diesem Fall von einer Denaturierung, welche auch den Verlust der biologischen Funktion mit sich bringt. Der Versuch zur Denaturierung von Hühnereiweiß und Milch durch verschiedene Stoffe soll einen Einblick in dieses Themenfeld bieten (Vgl. hierzu: Experimenteller Teil, Punkt Aminosäuren und Proteine, Versuch 9: Denaturierung von Hühnereiweiß). Proteine finden im Organismus vielschichtige Anwendung und sind an fast allen biochemischen Aktivitäten des Organismus beteiligt, zum Beispiel beim Transport anderer Stoffe, zu deren Speicherung, zur Abwehr von Fremdstoffen, zur Signalübertragung oder aber auch einfach zur Stützstruktur im Körper. Darüber hinaus regeln sie den Stoffwechsel im Körper, indem sie chemische Reaktionen katalytisch beeinflussen. Der menschliche Körper besitzt zehntausende verschiedene Proteine, die alle eine spezifische Struktur und Funktion aufweisen. Sie machen mehr als 50 % des Trockengewichtes der meisten menschlichen Zellen aus.45 In Kapitel III, dem Experimentellen Teil der Arbeit, sollen einige der aufgelisteten Eigenschaften anhand von Versuchen ausführlicher behandelt werden. Darüber hinaus sollen auch wichtige Nachweisreaktionen, die einfach und schnell Anwendung im Chemieunterricht finden können, vorgestellt und diskutiert werden. Im Kapitel IV – Unterrichtsmaterialien finden sich Arbeitsblätter, die der vertiefenden Verwendung im Unterricht dienen können. 45 Vgl. INT.7. 42 III. Experimenteller Teil III. Experimenteller Teil Der Experimentelle Teil der Arbeit stellt den umfangreichsten und wichtigsten Teil der Arbeit - die sich mit den aufwandsarmen Versuchen für den Chemieunterricht beschäftigt - dar. Sie sind - bis auf wenige Ausnahmen - in kurzer Zeit vorzubereiten, umzusetzen und nachzubereiten. Diese Ausnahmen sind jedoch kenntlich gemacht und durch Begründungen ergänzt, die deren Platz in dieser Arbeit, trotz des größeren Zeitaufwands, rechtfertigen. Die angegebenen Zeiten für Vorbereitung, Durchführung und Nachbereitung sind als Richtwerte anzusehen, und keinesfalls verbindlich und dienen lediglich der Orientierung. Um die Zeitangaben realisieren zu können, sollten sich die benötigten Apparaturen in der Nähe befinden, vollständig sein und alle benötigten Chemikalien griffbereit stehen. Auch orientieren sie sich eher am Zeitbedarf eines geübten Experimentators. Sind diese Bedingungen nicht gegeben, erhöht sich der Zeitbedarf etwas. Bei der Auswahl der Versuche standen die Schulrelevanz, sowie der geringe Zeitbedarf im Vordergrund. So soll es ermöglicht werden, mit Hilfe der Versuchsbeschreibungen Versuche zu finden, die sich möglichst schnell auch in kurzen Pausen vorbereiten lassen. Hierdurch soll der unterrichtliche Einsatz von Versuchen, ob nun Demonstrationsversuche oder Schülerversuche, trotz des engen Zeitfensters im Schulalltag, erhöht werden. In den folgenden Kapiteln sind die Versuche nach Themengebieten – orientiert am hessischen G8 Lehrplan für das Fach Chemie - sortiert. Jedem Versuch ist eine Nummer zugeordnet, so dass sich schneller orientiert werden kann. Darüber hinaus sind Verweise zwischen den einzelnen Versuchen untereinander eingefügt, so dass auf ein mehrfaches Wiedergeben des gleichen Sachverhaltes möglichst verzichtet werden kann. Zum besseren Navigieren in der Arbeit, ist das Inhaltsverzeichnis mit Verlinkungen versehen, so dass durch einen Klick auf die Seitenzahl, mit der linken Maustaste bei gedrückter „Strg“-Taste, ein Sprung an die entsprechende Stelle in der Arbeit gelingt. Die Auswahl der Versuche orientierte sich darüber hinaus auch an der Umsetzbarkeit der Versuche im Schulalltag, so dass auf Versuche, die den Einsatz teurer, exotischer 43 III. Experimenteller Teil Chemikalien oder Geräte benötigen, verzichtet wurde. Auch hier besteht kein Anspruch auf Vollständigkeit. Die benötigten Geräte und Chemikalien sind immer zu Beginn der Versuchsbeschreibung genannt, so dass sich schnell und einfach ein Überblick geschaffen werden kann, was benötigt wird. Darüberhinaus sind auch die Gefahrensymbole, sowie die Verknüpften R- und S-Sätze der jeweiligen Chemikalien angegeben, so dass sich auch hier schnell ein Überblick über die möglichen Gefahren der verwendeten Stoffe geschaffen werden kann. Auf die Ausformulierung der R- und S- Sätze im Protokoll wurde jedoch verzichtet, die R und S – Sätze sind als Anhang am Ende der Arbeit zu finden. Zum Einstufen der eingesetzten Chemikalien auf Verwendbarkeit in der Schule wurde auf das Programm HessGISS 2008/2009, V.13.0 der Unfallkasse Hessen und dem hessisches Kultusministerium zurück gegriffen. Der Einfachheit halber wurde von mir stets folgende Einteilung verwendet. * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich ** Schülerexperimente nur in SII erlaubt *** keine Schülerexperimente erlaubt In wie weit nun jedoch ein Versuch als Schülerversuch oder doch als Demonstrationsversuch durch den Lehrer durchgeführt wird, liegt im eigenen ermessen. Hinweise: Für die folgenden Versuche des Experimentellen Teils der Arbeit ist zu sagen: Dass ich diese Versuche sowie alle Ausarbeitungen der Arbeit mit größtmöglicher Sorgfalt durchgeführt und verfasst habe. Ich trotzdem nicht garantieren kann, dass alle Anleitungen oder die theoretischen Ausführungen fehlerfrei sind, und ich daher keine Verantwortung für den Fall, dass die Versuche wiederholt werden, übernehmen kann. Alle Versuche dürfen nur unter fachkundiger Anleitung in dafür ausgestatteten Räumen unter Beachtung entsprechender Sicherheitsvorkehrungen (Schutzbrille, Kittel, ggf. das Arbeiten in Abzügen usw.) durchgeführt werden. Zudem können sich Risikoeinschätzungen und Sicherheitsratschläge mit der Zeit ändern – konsultieren Sie vor der Durchführung entsprechende Datenbanken. 44 III. Experimenteller Teil Alkanole Versuche zu Alkanolen: Eigenschaften: Versuchs- Name des Versuch Nummer: 1 Versuch zur Mischbarkeit von Alkoholen 2 Volumenkontraktion: 50 + 50 = 100 ? 3 Fließgeschwindigkeit verschiedener Alkohole – Mehrwertige Alkohole Reaktionen: Versuchs- Name des Versuch Nummer: 4 Reagenzglasgewitter 5 Reaktion von Glycerin durch Kaliumpermanganat Oxidation von Methanol und Ethanol am Kupferkontakt (siehe auch Aldehyde) 14 Veresterung Elementaranalyse / Strukturaufklärung: Versuchs- Name des Versuch Nummer 6 Qualitative Elementaranalyse: Kohlenstoff und Wasserstoff 7 Qualitative Elementaranalyse: Sauerstoff – Nachweis mittels Magnesium 8 Reaktion von Etanol mit Natrium 9 Unterscheidung prim. sek. und tert. Alkohole durch Kaliumpermanganat 10 Unterscheidung prim. sek. und tert. Alkohole durch Lucas -Reagenz Vergleiche: Versuchs- Name Nummer 11 Unterscheidung Ethanol und Methanol mittels Borsäure 12 Vergleich zwischen Alkoholen und Phenolen Darstellung: Versuchs- Name Nummer 13 Alkoholische Gärung 45 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 1: Versuch zur Mischbarkeit von Alkoholen Zeitaufwand: Vorbereitung: 5 Minuten Durchführung: 5 Minuten Nachbereitung: 5 Minuten Materialien : Pro Gruppe: Reagenzglasgestell 6 Reagenzgläser 5 Pipetten Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Ethanol (w = 96 %) C2H5OH (l) R: 11 F S: 7 - 16 * Butan-1-ol * Hexan-1-ol * Heptan * R: 10-22-37/38-41-67 C4H9OH (l) S: 7/9-13-26-37/39-46 Xn R: 22 C6H13OH (l) S: 24/25 Xn C7H16 (l) F , Xn R: 11 -38-65-67-50/53 S: 9-16-29-33-60-61-62 N 46 III. Alkanole Experimenteller Teil Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Kupfersulfat CuSO4 Penthydrat *5 Xn R: 22-36/38-50/53 ,N H2O S: 22-60-61 * Dest. Wasser H2O * Sudanrot R: 36/37/38-68 C22H16N4O (s) * S: 26-36/37 Xn * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 46 Versuchsaufbau: Vorbereitungen: 1. + 2.Schritt: Spatel mit Sudanrot Pipette Heptan Becherglas gefüllt mit Heptan, angefärbt mit Sudanrot 3.Schritt: 4. – 6. Schritt: Et RG 1 – 3 gefärbt mit Sudanrot RG 4 – 6 gefärbt mit CuSO4 RG 1 - 6 Ethanol (Et) 46 Bu Hex Et Bu Hex Butanol Hexanol (Hex) (Bu) Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 47 III. Alkanole Experimenteller Teil Durchführung: 1. Verteile 6 Reagenzgläser (RG) in 2 Dreiergruppen auf dem Reagenzglasständer 2. Fülle RG 1 – 3 jeweils 2 cm hoch mit Heptan, das zuvor vom Lehrer mit Sudanrot gefärbt wurde 3. Fülle RG 4 – 6 jeweils 2 cm mit destilliertem Wasser, das zuvor vom Lehrer mit Kupfersulfat gefärbt wurde 4. Gib zu RG 1 und 4 jeweils 2 cm Ethanol 5. Gib zu RG 2 und 5 jeweils 2 cm Butanol 6. Gib zu RG 3 und 6 jeweils 2 cm Hexanol 7. Notiere deine Beobachtungen Beobachtungen: RG 1: Keine Phasentrennung zu erkennen. RG 2: Keine Phasentrennung zu erkennen. RG 3: Keine Phasentrennung zu erkennen. RG 4: Keine Phasentrennung zu erkennen. RG 5: Deutliche Phasentrennung zu erkennen. RG 6: Deutliche Phasentrennung zu erkennen. Fachliche Auswertung: RG 1: Keine Phasentrennung zu erkennen. Stoffe mischen sich RG 2: Keine Phasentrennung zu erkennen. Stoffe mischen sich RG 3: Keine Phasentrennung zu erkennen. Stoffe mischen sich RG 4: Keine Phasentrennung zu erkennen. Stoffe mischen sich RG 5: Deutliche Phasentrennung zu erkennen. Stoffe sind nicht mischbar RG 6: Deutliche Phasentrennung zu erkennen. Stoffe sind nicht mischbar 48 III. Alkanole Experimenteller Teil Doch warum mischen sich Stoffe miteinander? Die Reagenzgläser (RG) 1 – 3 sind mit Heptan gefüllt, einem unpolaren langkettigen Kohlenwasserstoff. In diesem gibt es aufgrund des geringen EN-Unterschiedes zwischen den Atomen und der gleichmäßigen Verteilung im Raum kein Dipolmoment (siehe Abb.5). Ein Dipolmoment entsteht, wenn ein Atom einer Atombindung aufgrund der höheren Elektronegativität (EN) die Bindungselektronen stärker an sich heranzieht, wodurch im Molekül ein negativer Pol (𝜹-) und positiver Pol (𝜹+) entsteht. Sind diese räumlich von einander getrennt, spricht man von einem permanenten Bindungsmoment oder einem lokalen Dipolmoment. Das Dipolmoment ist als Produkt des Ladungsunterschieds (q) mit dem Abstand (d) definiert. Dipolmoment = q ∙ d (1) Ein Beispiel hier für ist das HCl – Molekül. Abb.1a Valenzstrichformel des HCl – Moleküls Abb.1b Schematische Darstellung der Elektronendichte im HCl – Molekül. In einem zweiatomigen Molekül entspricht das aus dem Elektronegativitätsunterschied entstehende Bindungsmoment auch gleich dem Dipolmoment. Liegen allerdings - wie in unserem Fall - mehrere polare Bindungen vor, so ergibt sich das Dipolmoment durch vektorielle Addition der einzelnen Bindungsmomente. Ein Beispiel hierfür ist das CO2 – Molekül, in dem zwar starke Bindungsmomente aufgrund des großen Unterschiedes der Elektronegativitäten zwischen Kohlenstoff (C) und Sauerstoff (O) 49 III. Alkanole Experimenteller Teil vorliegen, beide sich jedoch aufgrund der linearen Struktur gegenseitig aufheben (Vgl.Abb.2). O C O kein Dipol Abb.2 Lineare Struktur des CO2 – Moleküls Für die Mischbarkeit der Substanzen gilt der Grundsatz: „similia smilibus solvuntur“ („Ähnliches wird in Ähnlichem gelöst“ oder „Ähnliches löst Ähnliches“). Die Ähnlichkeit spielt auf die Polarität der sich mischenden Stoffgruppen an. 47 und 48 Daher gilt es nun die beteiligten Stoffe auf ihre Polarität hin zu untersuchen. Wasser: Ein permanentes Dipolmoment liegt beim Wassermolekül (H2O) vor, welches in RG 4 – 6 als Lösungsmittel verwendet wurde. Aufgrund des großen Elektronegativitätsunterschiedes zwischen Sauerstoff (liegt bei 3,5) und Wasserstoff (liegt bei 2,2)49 im Wassermolekül zieht der stärker elektronegativere Sauerstoff die Bindungselektronen stärker an, wodurch der Sauerstoff partiell negativ (δ−) geladen wird. Während dessen wird Wasserstoff partiell positiv (δ+). So entsteht - wie in Abb.3a dargestellt - das Dipolmoment des Wassers. O H H Abb.3a Dipolmoment Wasser Abb.3b Schematische Darstellung der Polarität des Wassermoleküls 47 Vgl. Mortimer, S.198. Vgl. INT.1. 49 Vgl. INT.3. 48 50 III. Alkanole Experimenteller Teil Ebenso kann man der Hydroxygruppe (-OH) eines Moleküls eine polare Eigenschaft zusprechen. Abb.4a Schematische Darstellung der Polarität des Hydroxygruppe Abb.4b: Schematische Darstellung der Polarität des Hydroxygruppe Im Folgenden sollen nun polare Gruppen mit einem blauen Kreis dargestellt werden; unpolare hingegen mit einem orange-abgerundeten Viereck. Wassermoleküle bilden untereinander starke Wasserstoffbrückenbindungen aus. Diese sind elektrostatische Wechselwirkungen, die auf den beschriebenen Unterschied der Elektronegativitäten und den daraus resultierenden Dipolmoment hervorgehen (Vgl.Abb.4c und 4d). Abb.4c: Wasserstoffbrückenbindungen H H O H H O Abb.4d: Wasserstoffbrückenbindungen 51 III. Alkanole Experimenteller Teil Die Ausbildung dieser Wasserstoffbrücken zwischen den einzelnen Molekülen führt dazu, dass die Wassermoleküle nicht einzeln vorliegen. Je nach Dichte und Temperatur stehen 2, 4 oder 8 Wassermoleküle in direkter Nachbarschaft und sind über die Wasserstoffbrücken miteinander verbunden. Diese Tatsache ist auch dafür verantwortlich, dass Wasser einen solch hohen Siedepunkt besitzt und anders als beispielsweise die Wasserstoffverbindungen der anderen Chalkogene (wie das H2S) bei Normalbedingungen flüssig ist. Dagegen handelt es sich bei dem Schwefelwasserstoff (H2S) um ein Gas. Heptan: Abb.5: Lewis – Darstellung von Heptan - kein großer Unterschied in den EN von C (Kohlenstoff) und H (Wasserstoff) kein großes Bindungsmoment Ausbildung von Wasserstoffbrücken nicht möglich - sowie gleichmäßige räumliche Verteilung der Bindungsmomente kein permanentes Dipolmoment Versucht man Heptan und Wasser zu vermischen, so stellt man fest, dass sich diese schnell wieder voneinander trennen und keine homogene Lösung entsteht.50 Dies lässt sich folgendermaßen erklären: Würde sich Wasser und Heptan miteinander mischen, so müssten die Wasserstoffbrückenbindungen die sich zwischen den Wassermolekülen ausbilden können, nicht aber zwischen Wasser und Heptan ausbilden können, gegen viel schwächere van-der-Waals Wechselwirkungen eingetauscht werden. Der Zusammenhalt der Wassermoleküle über starke Wasserstoffbrücken stellt einen energetisch günstigen Zustand dar, so dass und sich keine homogene Mischung aus Heptan und Wasser bildet, sondern die Hexanmoleküle eine eigene Phase bilden. Dies bewirkt, dass die Grenzfläche, an denen die energetisch ungünstigeren Van-der-Waals-Wechselwirkungen zwischen beiden Molekülen 50 Vgl. Deckwer et al.. 52 III. Alkanole Experimenteller Teil ausgebildet werden, möglichst klein gehalten wird (Vgl. hierzu auch, fachliche Auswertung zu Versuch 2, Volumenkontraktion 50 + 50 = 100?). Hexanol: Abb.6: Lewis – Darstellung von Hexanol Im Hexanol liegt neben dem unpolaren Alkylrest (orange dargestellt) noch die polare Hydroxygruppe vor (blau dargestellt). Dadurch, dass der allerdings unpolare Alkylrest überwiegt, ist das Molekül trotz der polaren Alkylgruppe als unpolar anzusehen. Dies erklärt die Löslichkeit von Hexanol in Heptan und die Phasentrennung mit Wasser. Butanol: Abb.7: Lewis – Darstellung von Butanol Im Butanol liegt - wie im Hexanol auch - neben dem unpolaren Alkylrest noch die polare Hydroxygruppe. Zwar ist der Alkylrest kürzer, doch überwiegt auch in diesem Molekül der unpolare Charakter, so dass auch Butanol als unpolar eingestuft werden kann. Dies erklärt die Löslichkeit von Hexanol in Heptan und die Phasentrennung mit Wasser. 53 III. Alkanole Experimenteller Teil Die Mischbarkeit der Alkohole mit Wasser lässt sich folgendermaßen zusammenfassen: Abb.8: Schematische Darstellung der Mischbarkeit verschiedener Alkohole mit Wasser Ergebnis: Mit zunehmender Kettenlänge nimmt die Mischbarkeit mit Wasser ab! Darüber hinaus kann auch erklärt werden, warum sich das zur besseren Veranschaulichung des Effektes verwendet Kupfersulfat (CuSO4) nur im Wasser löste, und dieses Blau anfärbte, während Sudanrot sich nur im unpolaren Heptan löste und dieses Rot färbte. Auch hier gilt wieder der Grundsatz: „Ähnliches löst Ähnliches“.51 CuSO4 ist ein Salz und wie jedes Salz aus Ionen aufgebaut: dem positiv geladenen Cu2+ Kation und dem negativ geladenen SO42- Anion, beides polare Teilchen. Demnach ist zum Lösen nur ein polarer Wasserstoffbrückenbindungen Stoff geopfert wie Wasser werden, ziehen geeignet. die Während Ionen die die polaren Lösungsmittelmoleküle an (die Anionen den positiven Part des Lösungsmittelmoleküls und die Kationen den negativen), so dass sich letztlich Ion-Dipol-Anziehungskräfte zwischen den Teilchen ausbilden können.52 Das Sudanrot hingegen ist ein komplexes organisches Molekül, das als unpolar zu bezeichnen ist. Daher auch die Löslichkeit nur im „Ähnlichen“ unpolaren Heptan. 51 52 Vgl. Mortimer, S.198. Vgl. Mortimer, S.198f. 54 III. Alkanole Experimenteller Teil Didaktische Auswertung: Der Versuch zur „Mischbarkeit“ der Alkohole mit verschiedenen Lösungsmitteln ist sehr gut als Schülerversuch geeignet. Alle verwendeten Chemikalien sind laut HessGISS zur Benutzung in Sek.I und Sek.II freigegeben. Der Aufwand ist relativ gering, die Anforderungen an die Schüler nicht zu hoch und auch Reagenzgläser und Chemikalien sollten in ausreichender Zahl vorhanden sein. Die Schüler und Schülerinnen können frei und selbstständig arbeiten und die Ergebnisse nach Abschluss der freien Arbeitszeit gemeinsam im Plenum erarbeitet werden. Dieser Versuch könnte im Rahmen der Alkohole, welche im hessischen Lehrplan bereits in der 10G unter Punkt Alternative 2 aufgelistet ist, durchgeführt werden. Hierbei können die Eigenschaften der Alkohole und der Einfluss der Hydroxygruppe auf das Löslichkeitsverhalten untersucht und damit auch mit denen der Alkane verglichen werden. Wegen seines geringen Zeitaufwandes kann dieser Versuch an jeder anderen Stelle, wenn es um „Mischbarkeit“ oder polare und unpolare Eigenschaften geht, durchgeführt werden. Die entstehenden Phasen sind durch die Möglichkeit des Einfärbens durch Kupfersulfat und Sudanrot gut zu beobachten, sodass kein Zweifel darüber besteht, ob die Stoffe mischbar sind oder nicht. Für die Auswertung des Versuchs brauchen die Schüler nur wenige Vorkenntnisse. Dass sich Öle nicht mit Wasser mischen lassen, dürfte jeder schon mal zu Hause beobachtet haben. Kenntnisse über die Wasserstoffbrückenbindungen und über die Van-der-Waals-Kräfte, erleichtern die Auswertung des Versuchs allerdings merklich. Die Kenntnisse über diese beiden Phänomene könnten an dieser Stelle erarbeitet oder aufgefrischt werden. Entsorgung: Alle Lösungen werden im organischen Lösungsmittelabfall entsorgt. Literatur: INT.1: http://www.chemgapedia.de/vsengine/vlu/vsc/de/ch/11/aac/vorlesung/kap_7/vlu/loesung en.vlu/Page/vsc/de/ch/11/aac/vorlesung/kap_7/kap7_5/kap7_51/kap7_51a.vscml.html (Zugriff: 02.04.10). INT.2: http://www.lenntech.de/element-und-wasser/loeslichkeit.htm (Zugriff: 02.04.10). INT.3: http://www.uniterra.de/rutherford/tab_en.htm (Zugriff: 02.04.10). 55 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 2: Volumenkontraktion: 50 + 50 = 100 ? Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 2 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Materialien: 2 Messzylinder 100 mL Spatel 3 Messzylinder 50 mL Erlenmeyerkolben 100 mL Chemikalien: Stoffbezeichnung Summenformel Gefahrensymbole R- und S-Sätze Ethanol (w = 96 %) C2H5OH (l) R: 11 F S: 7 - 16 - R: - * Dest. Wasser * Octan-1-ol * Sudanrot * H2O S: R: 36/38 C8H17OH (l) Xi R: 36/37/38-68 C22H16N4O (s) S: 26-36/37 Xn * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 53 S: 23.2 Menge 50 mL 50 mL 50 mL etwas 53 HessGiss 2008/2009 56 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: Messzylinder 3, zu füllen mit Inhalt Messzylinder 1 + 2 Ethanol -angefärbt- Messzylinder 1, zu füllen mit 50 mL dest. Wasser Messzylinder 2, zu füllen mit 50 mL Ethanol Messzylinder 5, zu füllen mit Inhalt Messzylinder 1 + 3 Octanol -angefärbt- Messzylinder 1, zu füllen mit 50 mL dest. Wasser Messzylinder 4 , zu füllen mit 50 mL Ocatan-1-ol Durchführung: 54 1. Färbe die organischen Flüssigkeiten (Ethanol und Octan-1-ol) mit etwas Sudanrot an. 2. Miss mit Hilfe zweier 50 mL Messzylinder jeweils genau 50 mL Ethanol und 50 mL Octan-1-ol ab (Messzylinder 2 und 4) 3. Miss anschließend genau 50 mL dest. Wasser ab und gib es in den 100 mL Standzylinder 3. 4. Miss erneut 50 mL Wasser ab, und gib sie in Standzylinder 5 5. Fülle nun in Standzylinder 3 den rot gefärbten Ethanol aus Messzylinder 2 6. Und gib in den Standzylinder 5 die 50 mL Octan-1-ol aus Messzylinder 4 7. Notiere die Volumina der beiden 100 mL Standzylinder genau 55 Beobachtungen: Ethanol ist eine klare, farblose, wasserähnliche Flüssigkeit, die sich nach Zugabe von Sudanrot rot färbt. Das Ethanol vermischt sich vollständig mit dem Wasser. Es entsteht eine homogene, rötliche Lösung. Das Volumen beträgt etwa 97 - 98 ml. 54 55 Vgl. INT.1. Vgl. INT.2. 57 III. Alkanole Experimenteller Teil Oktan-1-ol ist ebenfalls eine klare Flüssigkeit. Nach Zugabe von Sudanrot färbt sie sich Rot. Nach Zugabe des Alkohols zum vorgelegten Wasser im 100 mL Standzylinder bildet sich eine Emulsion. Nach kurzer Zeit trennt sich der rötlich gefärbte Alkohol wieder vom Wasser. Es entstehen 2 getrennte Phasen. Die wässrige Phase ist farblos. Das Volumen beträgt 100 ml. Fachliche Auswertung: Sudanrot ist ein rötlichbraunes Pulver. Es gehört zur Gruppe der Azo-Farbstoffe. Der Farbstoff mit „Sudan“ ist ein synthetisch hergestellter Farbstoff der Firma BASF, die sich den Namen Sudan haben eintragen lassen.56 Es gibt 4 Substanzen die den Namen Sudan tragen: Sudan I (gelbe Farbe), Sudan II (orangene Farbe), Sudan IV, (scharlachrote Farbe) und das in diesem Versuch verwendete Rote Sudan III. Wie alle Sudan – Substanzen ist auch Sudanrot trotz seiner Hydroxygruppe ein unpolares Molekül, das sich gut in anderen unpolaren Stoffen - wie Fetten, Ölen, Wachsen oder Kohlenwasserstoffen - löst.57 N N N N OH Abb.1: Sudanrot Daher färbt Sudanrot auch jeweils nur die unpolare Phase an, nicht jedoch die wässrige. Dies erklärt dann auch die klare Farbtrennung bei der Vermischung von 50 mL Octan-1-ol und dest. 50 mL Wasser. Hier wird nur das unpolare Octan-1-ol rötlich gefärbt, nicht jedoch die wässrige Phase mit dem Wasser. 56 57 Vgl. INT.2. Vgl. INT.2. 58 III. Alkanole Experimenteller Teil Abb.2: Lewisdarstellung von Octan-1-ol Im Octan-1-ol Molekül überwiegt - wie in Abb.2 zu sehen ist - der unpolaren Alkylrest, (orange dargestellt) gegenüber der polaren Hydroxygruppe (blau). Dies erklärt dann auch, warum das Molekül als unpolar anzusehen ist und dessen Löslichkeit (Vgl. Versuch 1, Mischbarkeit der Alkohole). Eine Erklärung für die deutlich sichtbare Phasentrennung zwischen Wasser und Octan-1-ol ist, dass die Wassermoleküle - entgegen ihrem Bestreben in die alle Richtungen Wasserstoffbrückenbindungen auszubilden - in Richtung des organischen Moleküls keinen solchen Bindungen ausbilden können. Anders verhält sich dies in reinem Wasser, hier können die Wassermoleküle in alle Richtungen Wasserstoffbrücken ausbilden, da sie ausgenommen der Ränder, in alle Richtungen von anderen Wassermolekülen umgeben sind. Doch aufgrund des langen, unpolaren und damit hydrophob wirkenden Alkylrests können die polaren Wassermoleküle in dessen Nähe keine Wasserstoffbrückenbindungen aufbauen. Demnach ist es aus energetischer Sicht für das System aus Wasser und Octan-1-ol günstiger, wenig „Berührungsfläche“ zwischen einander zu bilden. Damit wird dann der Energieverlust, den der Verlust der Möglichkeit Wasserstoffbrücken aufzubauen mit sich bringt, minimiert. Aus diesem Grund ist eine klare Phasentrennung günstiger als eine Durchmischung, in der es häufiger zu direktem Kontakt zwischen polarem Wasser und unpolarem Octan-1-ol kommen käme. Anders sieht dies bei dem ebenfalls von dem Sudanrot rot gefärbten Ethanol aus. In diesem Fall vermischen sich nicht nur beide miteinander, sondern hier tritt auch das Phänomen der Volumenkontraktion auf. So werden aus 50 mL Wasser und 50 mL Ethanol nur 97 - 98 mL Gesamtvolumen. Warum ist das so? Hier hilft die Lewisdarstellung des Moleküls weiter: 59 III. Alkanole Experimenteller Teil Ethanol: Abb.3: Lewis – Darstellung von Ethanol Im Ethanolmolekül liegt - wie in allen Alkoholen - neben dem unpolaren Alkylrest noch die polare Hydroxygruppe vor. Zwar überwiegt im Ethanol der polare Einfluss der Hydroxygruppe (was das Vermischen von Ethanol mit Wasser erklärt) doch vermag das Molekül aufgrund seines Verhältnisses zwischen polarer Hydroxygruppe und unpolarem Alkylrest auch das Sudanrot zu lösen, so dass es sich nach dessen Zugabe rot verfärbt. Dies ist auch beim Octan-1-ol zu beobachten. Doch anders als beim Octan-1-ol, welches sich nicht mit dem Wasser mischt (hier bilden sich 2 Phasen) vermischt sich das Ethanol gut mit Wasser praktisch in jedem Verhältnis mit diesem. Die Farbe dient allerdings nur zur Verdeutlichung der unterschiedlichen Mischbarkeiten der verwendeten Stoffe. Sie hat keinerlei Einfluss auf das Phänomen der Volumenkontraktion. Auch ohne Sudanrot würde das Phänomen „50 + 50 = 100“ auftreten. Dieses Phänomen lässt sich mit Hilfe einer kleinen didaktischen Reduktion des Gegenstands sehr schön veranschaulichen: Füllt man in einen Messzylinder 50 mL Linsen, in einen weiteren 50 mL Erbsen und schüttet anschließend beide zusammen in einen 100 mL Standzylinder, schüttelt gut durch und vergleicht die Volumina. So fällt bei diesem Versuch auf, dass 50 + 50 nicht immer 100 sein muss. Hier wird allerdings sofort klar, dass die kleineren Linsen in die Zwischenräume, die zwischen den größeren Erbsen vorhanden sind, hinein rutschen können. Der Versuch zeigt in plastischer Weise die Verringerung des Volumens. Dies ist eine stark vereinfachte Erklärung des Phänomens der „Mischbarkeit“ von Ethanol und Wasser. In diesem Fall sind es allerdings nicht die „Zwischenräume“, sondern hier spielt die Anziehungskraft und das engere „Zusammenrutschen“, eine Rolle. 60 III. Experimenteller Teil Alkanole Das folgende Schaubild soll dieses verdeutlichen: Abb.4: Ausschnitt aus der Lösung von Ethanol und Wasser Wasserstoffbrückenbindungen (hier Rot dargestellt) sorgen dafür, dass sich Wasser- und Ethanolmoleküle im Gemisch stärker anziehen, als sie es in den reinen Flüssigkeiten tun würden. Zwar gibt es im reinen Wasser – wie auch in reinem Ethanol – Wasserstoffbrückenbindungen, die sich zwischen den Molekülen ausbilden, doch vermögen es die kleineren Wassermoleküle sich zwischen die größeren Ethanolmoleküle einzulagern. Deswegen kann man bei deren Vermischung eine Volumenkontraktion beobachten. Didaktische Auswertung: Der Versuch greift - wie der Versuch zur Mischbarkeit von Alkoholen (Vgl. Versuch 1) erneut die unterschiedlichen Löslichkeiten der Alkohole auf. Doch anders als im Vorangegangen soll es hier auch noch um das Phänomen der Volumenkontraktion gehen. Hier kann erneut auf das Thema der Wasserstoffbrückenbindugen eingegangen werden. Die unterschiedliche Löslichkeit des Farbstoffs ist ein interessanter Aspekt dieses Versuches. Darüber hinaus kann an dieser Stelle - falls dies nicht schon bei den „Mischbarkeiten“ behandelt wurde - der Hintergrund der Phasentrennung zwischen polaren und unpolaren Flüssigkeiten erklärt werden. Der Versuch ist Dank der Zugabe von Sudanrot, welches allein der Verdeutlichung der „Mischbarkeiten“ dient, besser zu verstehen. Er sollte aufgrund des geringen Aufwandes und der relativ ungiftigen Chemikalien möglichst Anwendung als reiner Schülerversuch in Kleingruppen finden. Es ist eindrucksvoller und lerneffektiver, einen Versuch durchzuführen, als nur dabei zuzuschauen. 61 III. Experimenteller Teil Alkanole Entsorgung: Alle Lösungen werden im organischen Lösungsmittelabfall entsorgt. Literatur: 58 Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/organische_stoffklassen/alkohole.html?o7... – Ausarbeitung zum Experimentalvortrag von Volker Wenke. (Zugriff: 02.04.10). INT.2: http://www.chemikalienlexikon.de/cheminfo/suda-lex.htm (Zugriff: 02.04.10). 58 Die Literaturangaben am Ende eines jeden Protokolls beinhalten lediglich spezielle und für das Thema relevante Quellen. Allgemeine Literaturhinweise sind am Ende der Arbeit zu finden; weitere im Protokoll verwendete Quellen wurden entsprechend kenntlich gemacht. 62 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 3: Fließgeschwindigkeiten verschiedener Alkohole Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 5 Minuten Nachbereitung: 3 Minuten Materialien : 2 – 4 Büretten a 50 mL Stoppuhr 2- 4 Trichter 2 – 4 Erlenmeyerkolben 50 mL Stativmaterial Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Ethanol (w = 96 %) CH3CH2OH (l) R: 11 F S: 7 - 16 * Glycerin (w=0,87) - R: - (1,2,3-Propantriol) C3H8O3 (l) S: - * Propan-1-ol * 1,2-Ethandiol * C3H7OH (l) R: 11-41-67 F , Xi C2H6O2 (l) R: 22 10 mL 10 mL 10 mL Xn * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 59 S: 7-16-24-26-39 10 mL 59 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 63 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: Bürette Jeweiliger Alkohol Alkohole 1 – 4 auf Bürette zu Durchführung: 60 1. Befülle eine Bürette mit jeweils 10 mL des angegebenen Alkohols. 1: Ethanol, 2: 1,2-Ethandiol, 3: Propan-1-ol, 4: Glycerin 2. Öffne den Hahn und lasse die gesamte Flüssigkeit in den Erlenmeyerkolben fließen. 3. Stoppe die Zeit. (Die aufgefangenen reinen Flüssigkeiten können erneut verwendete werden). ------4. (optional: öffne jeweils 2 Büretten gleichzeitig und vergleiche die Geschwindigkeit mit der jeweils der Alkohol ausfließt.) (optional: Mit mehr Flüssigkeit wird der Effekt deutlicher, daher können auch 25 oder 30 mL der Flüssigkeiten genommen werden) Beobachtungen: Die Auslaufgeschwindigkeiten der Alkohole nimmt von Glycerin > 1,2 Ethandiol > Propan-1-ol > Ethanol ab. Die Fließgeschwindigkeiten können ein wenig variieren. Alle verwendeten 60 Vgl. Asselborn et al.. 64 III. Alkanole Experimenteller Teil Alkohole sind klare, farblose Flüssigkeiten, die sich jedoch schon beim Einfüllen durch ihre Zähigkeit unterscheiden. Fachliche Auswertung: Die unterschiedlichen Fließgeschwindigkeiten der Alkohole können über das Phänomen der Viskosität erklärt werden. Die Viskosität ist das Maß für die „Zähflüssigkeit“ einer Flüssigkeit. Je höher diese ist, desto schlechter ist ihr Fließverhalten. Man kann sie daher als dickflüssig oder zähfließend beschreiben. Die Fließgeschwindigkeit nimmt also mit steigender Viskosität ab. Besitzt hingegen ein Stoff eine niedrige Viskosität - wie Ethanol - so hat er eine hohe Fließfähigkeit. Die Viskosität einer zähen, hoch viskosen Flüssigkeit kann durch die stärker aneinander gebunden Moleküle in den Flüssigkeiten beschrieben werden. Sie werden damit unbeweglicher. Vereinfacht lässt sich das durch einen inneren Reibungswiderstand, der die Flüssigkeit am Fließen hindert, beschreiben. Eine im Alltag bekannte hochviskose Flüssigkeit ist Honig. Dieser weist ein zähes Fließverhalten auf. 61 Die dynamische Viskosität einer Flüssigkeit bei 20°C wird in [mPa∙s] angegeben werden. Diese beträgt bei Wasser 1,0087, bei Ethanol 1,19, bei Glycerin (50%) schon 6,05, reines Glycerin (100%) 1480 und bei Honig sogar 10000 [mPa∙s].62 Die vier verwendeten Alkohole, Ethanol, 1,2-Ethandiol, Propan-1-ol und Glycerin, unterscheiden sich neben ihrer Kettenlänge hauptsächlich in der Anzahl ihrer Hydroxygruppen (Vgl.Abb.1a und Abb.1b). Ethanol H 1,2-Ethandiol H H C C H OH H H H H C C OH OH H Abb.1a: Lewisdarstellung der verwendeten Alkohole 61 62 Vgl. INT.1. Vgl. INT.1. 65 III. Alkanole Experimenteller Teil Propan-1-ol H Glycerin (1,2,3-Propantriol) H H H C C C H H OH H H H H H C C C OH OH OH H Abb.1b: Lewisdarstellung der verwendeten Alkohole Die unterschiedlichen Auslaufgeschwindigkeiten der Alkohole (die von Glycerin, über 1,2Ethandiol, über Propan-1-ol bis hin zu Ethanol abnehmen) lässt sich mit Hilfe der stärkeren Wechselwirkungen zwischen den Molekülen erklären. Je mehr Hydroxygruppen der Alkohol aufweist, desto stärker werden die einzelnen Moleküle zusammen gehalten (zwischen den Molekülen können sich mehr Wasserstoffbrückenbindungen ausbilden). Diese Wasserstoffbrückenbindungen sorgen für stärkere Wechselwirkungen zwischen den einzelnen Molekülen, was dazu führt, dass die Flüssigkeit in gewisser Weise stärker am Fließen gehindert wird. Je mehr Hydroxygruppen der Alkohol demnach besitzt, desto viskoser ist er auch. So nimmt die Fließgeschwindigkeit von Glycerin - welches 3 Hydroxygruppen besitzt - zum Ethanol hin, der nur lediglich eine Hydroxygruppe besitzt, ab. Vereinfacht kann dies durch folgende Abbildung dargestellt werden: Fließgeschwindigkeit nimmt zu Viskosität nimmt ab Abb.2: Vergleich Wasserstoffbrückenbindungen und der Viskosität 66 III. Experimenteller Teil Alkanole Die Viskosität einer Flüssigkeit hängt allerdings stark von der Temperatur ab. Sie sinkt mit steigender Temperatur. Der Grund ist, dass die Teilchengeschwindigkeit mit erhöhter Temperatur zunimmt und dadurch die Wechselwirkungen, die der Fließfähigkeit der Flüssigkeit entgegenwirken, kürzer wirken können. Didaktische Auswertung: Mit Hilfe dieses einfachen Versuches, der die unterschiedlichen Fließgeschwindigkeiten einwertiger Alkohole mit mehrwertigen vergleichen lässt, kann den Schülern die Eigenschaft der Viskosität näher gebracht werden. Der Versuch lässt sich einfach und schnell durchführen und kann von den Schülern und Schülerinnen selbst in Kleingruppen durchgeführt werden. Die verwendeten Flüssigkeiten können, insofern sie nicht mit den anderen Stoffen in Berührung gekommen sind, durchaus wieder verwendet werden. So können die Kosten eingespart werden. Für die Durchführung des Versuchs sind verschiedene Varianten denkbar: Um den Schülern und Schülerinnen die Möglichkeit zu geben, die Versuche selbst durchzuführen, sollten verschiedene Stationen aufgebaut werden. In Kleingruppen können auf vier, besser sechs Stationen die Versuche durchgeführt werden. Durch Bildung von Kleingruppen sind die Schüler und Schülerinnen näher am Versuch und müssen beim Versuchsablauf selbst Hand anlegen. Weiterhin könnte eine letzte Station dafür zu nutzen, vier Büretten gleichzeitig mit den Alkoholen zu befüllen, um so die unterschiedlichen Laufzeiten direkt vergleichen zu können. Um den Effekt etwas hervorzuheben, sollte in dieser Station das Volumen auf 30 mL erhöht. Entsorgung: Die verwendeten Lösungen können im Sammelbehälter für organischen Abfall entsorgt werden. Wenn sie jedoch nicht verschmutzt sind, können sie zurück in das entsprechende Aufbewahrungsgefäß gegeben werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.wasser-wissen.de/abwasserlexikon/v/viskositaet.htm (Zugriff: 04.04.2010). 67 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 4: Reagenzglasgewitter Zeitaufwand: Materialien : Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 2 Minuten Nachbereitung: 5 Minuten Pro Gruppe: Reagenzglas Pipette Spatel Reagenzglasgestell Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Ethanol (w = 96 %) C2H5OH (l) R: 11 F S: 7 - 16 * Schwefelsäure (konz.) * Kaliumpermanganat * R: 35 H2SO4 S: 26-30-45 C KMnO4 (s) O , Xn , R: 8-22-50/53 S: 60-61 3 mL 3 mL Ca. 0,5 g N * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 63 63 HessGiss 2007/2008 68 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt: Pipette mit konz. 2. Schritt: Schwefelsäure 3. Schritt: Pipette mit Ethanol Spatel mit KMnO4 Ethanol H2SO4 (konz) Durchführung:64 1. Fülle ein sauberes Reagenzglas 2 cm hoch mit konz. Schwefelsäure. 2. Überschichte die konz. Schwefelsäure vorsichtig mit 4 cm Ethanol. Achte darauf, dass sich die beiden Flüssigkeiten nicht vermischen und eine klare Phasentrennung vorliegt. 3. Wirf nun kleine Kaliumpermanganatstücke in das Reagenzglas. Beobachtungen: Die Kaliumpermanganatstücke sinken durch die Ethanolschicht bis zur Schwefelsäureschicht ab. Dort treten rasch violette, grüne und braune Schlieren an den weiter zu Boden gleitenden Kaliumpermanganatstücken auf. Begleitet wird dies von kleinen Bläschen, die nach oben aufsteigen. Die Zahl der aufsteigenden Bläschen steigt. An der Grenzfläche zwischen Schwefelsäure und Ethanol kommt es nun immer wieder zu blitzartigen Entladungen. Begleitet sind diese von schwachen Knallgeräuschen. Nach kurzer Zeit, nach ca. 5 Minuten ist die Reaktion beendet. 64 Vgl. INT.3. 69 III. Alkanole Experimenteller Teil Fachliche Auswertung: Aufgrund der unterschiedlichen Dichten vermischen sich die beiden Flüssigkeiten bei vorsichtigem Überschichten nicht sofort. Konzentrierte Schwefelsäure (H2SO4) besitzt eine 𝒈 𝒈 Dichte von 1,8356 𝒄𝒎𝟑 , während Ethanol nur eine Dichte von 0,79 𝒄𝒎𝟑 besitzt.65 Dies erklärt die Phasentrennung, an der die eigentlich Reaktion abläuft. Konzentrierte Schwefelsäure (H2SO4) reagiert nach folgender Reaktionsgleichung mit dem Kaliumpermanganat, zu Mangan(VII)-Oxid (Mn2O7), einem grün - schwarzen Öl. 66 Mn 2O7 (l) + 2 K 2 KMnO 4 (s) + H 2SO4 (konz.) + 2(aq) + SO 4 (aq) + H 2O Abb.1a: Bildung des Mangan(VII)-Oxid Mangan besitzt in dieser Verbindung - wie auch im Permanganat - die Oxidationsstufe (+VII) und hat demnach d0 – Konfiguration.67 O O O Mn Mn O O O O Abb.1b: Mangan(VII)-Oxid Mangan(VII)-Oxid (Mn2O7) liegt molekular vor und ist eine instabile Verbindung, ein hochexplosives Öl. Es besteht aus eckenverknüpften – MnO4 – Tetraedern.68 Beim Erwärmen zersetzt es sich allerdings explosionsartig zu elementarem Sauerstoff und Braunstein (Vgl.Abb.2a). +VII -II 2 Mn 2O7 (l) +IV -II 0 4 MnO 2 (s) + 3 O 2 (g) Abb.2 a: Mangan(VII)-Oxid 65 Vgl. INT.1 . Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.831. 67 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.831f. 68 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.831. 66 70 III. Alkanole Experimenteller Teil Der entstandene elementare, gasförmige Sauerstoff steigt nach oben auf, was die Bläschenbildung erklärt. Des Weiteren oxidiert er an der Phasengrenzschicht Ethanol zu Kohlendioxid CO2 und Wasser H2O. Hierdurch lässt sich die Funkenbildung erklären. Diese erklärt auch die weitere Eigenschaft des Mangan(VII)-Oxids, dass es mit den meisten organischen Verbindungen unter Entzündung oder gar explosionsartig reagiert. Die Reaktion an der Phasengrenzschicht lässt sich wie folgt beschreiben: H H -III H C C H H +IV -II 0 -I O + 3 O2 H (g) 2 CO2 -II (g) + 3 H 2O (l) Abb.2: Reaktionsgleichung – Reaktion von Ethanol mit Sauerstoff Die farbigen Schlieren sind auf Manganverbindungen in verschiedenen Oxidationsstufen zurückzuführen. So sind die violetten Schlieren durch das eingesetzte Permanganation (MnO4- - Mangan in der Oxidationsstufe (VII)), die braunen Schlieren auf das sich bildenden Braunstein (MnO2 - Mangan in der Oxidationsstufe (IV)), und die grünen Schlieren auf das sich zwischenzeitlich bildende Mangan (VI) – Oxid (MnO42-) zu erklären. Didaktische Auswertung: Dieser Versuch zählt wohl eher zur Kategorie der effektvollen Showversuche. Er lässt sich in dieser Art und Weise nur schwer im Lehrplan einordnen. Lediglich die Tatsache der ablaufenden Oxidation des Ethanols ließe sich mit dem Lehrplan vereinbaren. Trotzdem sollte er aufgrund des geringen Aufwandes und der eindrucksvollen Effekte seinen Platz im Chemieunterricht finden, da er sicher einer der Versuche ist, die den Schülern und Schülerinnen auch noch nach Jahren in Erinnerung bleiben. Auch die farbige Schlierenbildung, die auf Manganverbindungen in unterschiedlichen Oxidationsstufen zurückzuführen sind, kann den Schülern und Schülerinnen anschaulich den Ablauf der 71 III. Alkanole Experimenteller Teil Redoxreaktion demonstrieren. An dieser Stelle könnte noch einmal die Bestimmung von Oxidationsstufen wiederholt werden. Entsorgung: Nach beendeter Reaktion lässt man das Gemisch abkühlen und zieht dann mit einer Pipette die obere organische Ethanolphase ab. In einem kleinen Becherglas kann nun der Ethanol verdunsten oder im organischen Lösungsmittelabfall entsorgt werden. Die verunreinigte Schwefelsäure-Phase wird mit Wasser (evtl. Eis) verdünnt und mit Lauge neutralisiert. Die Manganreste, die in den verschiedensten Oxidationsstufen vorliegen, können mit Natriumthiosulfat in gefahrlose Reduktionsprodukte überführt werden. Die Entsorgung erfolgt in den wässrigen Schwermetallabfällen. Literatur: Chemie und Schule (CUS): 4/1996: „Showversuche“, S.18 Internetquellen: INT.1: http://biade.itrust.de/biade/lpext.dll/Infobase/uberschrift33174/glied133175.htm?f=templa tes&fn=documentframe.htm&q=[F%20KName%3AKaliumpermanganat%2B]&x=Advanced&2.0#LPHit1 (Zugriff: 04.04.2010). INT.2: http://www.chemieexperimente.de/zauber/gewitter.html (Zugriff: 02.04.2010). INT.3: http://www.tibicen.de/chemie/blitze.htm (Zugriff: 02.04.2010). 72 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 5: Reaktion von Glycerin mit Kaliumpermaganat Zeitaufwand: Vorbereitung: 3 Minuten Durchführung: 2 Minuten Nachbereitung: 5 Minuten Materialien : Pro Gruppe: Blech Spatel Pipette Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Glycerin (w = 0,87) (1,2,3,-Propantriol) - R: - C3H8O3 (l) S: - 4 mL * Kaliumpermanganat * KMnO4 (s) O , Xn , R: 8-22-50/53 S: 60-61 6g N * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 69 Versuchsaufbau: ACHTUNG! Versuch sollte im Abzug durchgeführt werden! 1.Schritt: 2.Schritt: Pipette mit Glycerin Spatel Blech mit KMnO4 69 Blech mit KMnO4 HessGiss 2007/2008 73 III. Alkanole Experimenteller Teil Durchführung: 70 1. Verteile 6 g feingepulvertes Kaliumpermanganat auf einer feuerfesten Unterlage. Hierzu kann ein Blech oder der Deckel einer Dose verwendet werden. 2. Tropfe anschließend 4 mL Glycerin aus einer Pipette auf das Kaliumpermanganat. Beobachtungen: Das feingepulverte Kaliumpermanganat ist charakteristisch violett gefärbt. Glycerin ist eine klare, zähe Flüssigkeit. Nach kurzer Zeit startet die Reaktion des Gemisches unter starker Rauchentwicklung. Wenig später sind erste Flammen zu sehen. Die hellvioletten Flammen greifen nach kurzer Zeit auf die gesamte Fläche über, die mit Glycerin beträufelt wurde. Nach Ende der Reaktion bleibt ein dunkelbrauner Rückstand zurück. Des Weiteren sind am Rand violette Spuren des Ausgangsmaterials zu erkennen, sowie weiße und grüne Rückstände zu finden. Fachliche Auswertung: Das tief purpurfarbene71 Kaliumpermanganat (KMnO4) wird durch das Glycerin zu Braunstein (MnO2) reduziert. Das Glycerin selbst wird unter einer stark exothermen Reaktion zu Kohlendioxid oxidiert. H -I C OH H H 0 C C OH H -I OH (l) H 3 +VII + 14 KMnO4 +IV +IV (s) 14 MnO2 (s) +IV + 7 K2CO 3 (s) + 2 CO 2 (g) + 14 H2O (l) Abb.1: Gesamtreaktion Redox – Gleichung: H -I C H H 3 H H -I C OH 0 C +VII +14 KMnO4 (s) 7 K2O (s) +IV + 14 MnO2 +IV (s) + 9 CO2 (g) + 14 H2O (l) OH OH (l) Abb.2: Reaktionsgleichung 70 71 Vgl. INT.3. Riedel, Anorganische Chemie – S.831 74 III. Alkanole Experimenteller Teil In der Folge reagiert dann das Kohlendioxid mit dem Kaliumoxid (K2O) zum weißen Kaliumcarbonat (K2CO3). Diese ist wohl die weiße Substanz im Rückstand. Der grüne Rückstand könnte auf das Mangan (VI) – Oxid (MnO42-) zurück zu führen sein. Dieses ist jedoch nur in stark alkalischen Lösungen beständig und disproportioniert leicht in: +VI 3 MnO 4 +VII 2(aq) +4H + 2 MnO 4 (aq) +IV - (aq) + MnO 2 (aq) + 2 H 2O Abb.3: Gesamtreaktion Der Mechanismus der Alkoholoxidation durch Kaliumpermanganat soll exemplarisch am Beispiel der Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat diskutiert werden (Vgl. hierzu Fachliche Auswertung Versuch 9). Es laufen jedoch neben dieser Reaktion verschiedene Nebenreaktionen ab, die allerdings im Chemieunterricht nicht behandelt werden. Die Reaktion, deren Mechanismus in der fachlichen Auswertung zu Versuch 9 dargestellt ist, verläuft wohl über die Bildung von: O + III HO +II O O + III OH Abb.4: mögliche intermediär auftretende Verbindung72 In der Folge wird dieses dann durch das starke Oxidationsmittel Kaliumpermanganat (KMnO4-), welches eine tiefpurpurne, kristalline Substanz ist, zu Kohlendioxid weiter oxidiert. Die Oxidationskraft des Permanganats hängt vom pH – Wert der Reaktion ab. In saurem Medium wird das farblose [Mn(H2O)6]2+ gebildet. In diesem liegt Mangan in der Oxidationsstufe (+II) vor. In neutraler und schwach basischer Lösung entsteht Braunstein, 72 Vgl. INT.3. 75 III. Alkanole Experimenteller Teil (MnO2). Hier hat Mn die Oxidationsstufe (+IV). In stark alkalischem Milieu, wird das grüne MnO42- - Ion gebildet. In unserem Fall wird die Reaktion bis zum Braunstein verlaufen.73 Verwendung findet das starke Oxidationsmittel unteranderem in der Wasseraufbereitung. Es ist - wie man bereits aus den R – Sätzen (50/53) herauslesen kann - „sehr giftig für Wasserorganismen, kann in Gewässern längerfristig schädliche Wirkungen haben. Es kann aus diesem Grund natürlich auch zur Aufbereitung bzw. Reinigung für Wasser verwendet werden. Darüber hinaus findet es aufgrund der im Versuch dargestellten oxidierenden Wirkung auch Anwendung in der Medizin. So können beispielsweise oberflächliche Hautverletzungen mit Kaliumpermanganatlösungen desinfiziert werden. Auch bei der Behandlung von Fußpilz findet es Anwendung. Der verwendete Alkohol ist Glycerin, auch 1,2,3,-Propantriol genannt. Es handelt sich bei diesem um einen dreiwertigen Alkohol. Da für Glycerin die Erlenmeyerregel gilt, die besagt, dass Verbindungen mit zwei Hydroxygruppe an einem Kohlenstoffatom instabil sind,74 lässt sich das als sehr stabil anzusehende Glycerin, das drei Hydroxygruppen trägt, folgendermaßen darstellen: H H H -I H C H 0 C H C OH -I C HO H C H H OH OH C OH H HO Abb.5: Glycerin in verschiedenen Darstellungsformen Der Name der Verbindung leitet sich aus griechischen ab. Dort steht das Wort glykeros für süß; als süßlich wird auch der Geschmack von Glycerin beschrieben. Es handelt sich bei reinem oder konzentriertem Glycerin um eine sirupartige, hochviskose Flüssigkeit die als ungiftig beschrieben gilt. Dies führt dazu, dass sie vielseitig einsetzbar ist und sogar in der Vergangenheit als Süßstoff Verwendung fand. 73 74 Riedel, 7.Aufl., S.832 Vgl. Asselborn et al., S.245. 76 III. Alkanole Experimenteller Teil Die hohe Viskosität der Verbindung ist auf den Einfluss der drei Hydroxygruppen zurückzuführen. Vergleiche hierzu Versuch 3 – Fließgeschwindigkeiten der verschiedenen Alkohole. Neben der Viskosität steigt auch mit höherer Anzahl an Hydroxygruppen der Siedepunkt. Der Einfluss der OH – Gruppen soll am folgen Beispiel gezeigt werden: Name der Verbindung Propan-1-ol Siedepunkt75 und 76 Struktur 97,2 °C H 1,2-Propandiol 188 °C H Glycerin (1,2,3,-Propantriol) 290 °C H H H H C C C OH H H H H H C C C OH OH H H H H C C C OH OH OH H H H Abb.6: Siedepunkte verschiedener Alkohole und ihre Struktur Wie in Abb.6 zu erkennen ist steigt der Siedepunkt der Alkohole mit erhöhter Anzahl an Hydroxygruppen stark an. So hat Propan-1-ol noch einen Siedepunkt der unter dem vom Wasser liegt, während 1,2,3-Propantriol schon einen Siedepunkt von beinahe 300 °C besitzt. Glycerin dient vor allem als Grundsubstanz für Salben und Cremes. Darüber hinaus spielt es jedoch vor allem eine wichtige Rolle in den Grundbausteinen von Fetten und Ölen und damit auch in unserer Ernährung. In Fetten und Ölen ist es mit den langkettigen Alkansäuren über eine Esterbindung zu einem Triglyceride verbunden. 75 76 Vgl. INT.2. Vgl. INT.1. 77 III. Experimenteller Teil Alkanole Didaktische Auswertung: Dieser Versuch zeigt eindrucksvoll die starke Oxidationskraft von Kaliumpermanganat und die Gefährlichkeit bei Kontakt mit verschiedenen organischen Substanzen, mit denen es wie im Versuch - teilweise unter Selbstentzündung reagiert. Trotzdem zählt der Versuch wohl eher zur Kategorie der Showversuche. Falls jedoch der Versuch zur Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat nicht durchgeführt wurde, könnte durch diesen auf den Mechanismus der Oxidation von Alkoholen eingegangen werden, und diese exemplarisch hier diskutiert werden. Aufgrund der plötzlich einsetzenden teils heftigen Reaktion sollte dieser Versuch jedoch besser als Lehrerversuch und im Abzug durchgeführt werden. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt werden. Die Manganreste, die in den verschiedensten Oxidationsstufen vorliegen, können mit Natriumthiosulfat in gefahrlose Reduktionsprodukte überführt werden. Die Entsorgung erfolgt anschließend im wässrigen Schwermetallabfall. Literatur: Chemie und Schule (CUS): 4/1996: „Showversuche“, S.18 Internetquellen: INT 1: http://www.seilnacht.com/Lexikon/ (Zugriff: 05.04.2010). INT 2: http://biade.itrust.de/biade/lpext.dll/Infobase/uberschrift46815/glied146818.htm?f=templa tes&fn=document-frame.htm&2.0#JD_phy013620 (Zugriff: 05.04.2010). INT 3: http://www.chids.de/dachs/praktikumsprotokolle/PP0050kaliumpermanganat_und_glycerin .pdf (Zugriff: 05.04.2010). 78 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 6: Qualitative Elementaranalyse: Kohlenstoff und Wasserstoff Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 3 Minuten Materialien : Stativmaterial Spatel Becherglas 300 mL Abdampfschale 2 Erlenmeyerkolben a 300 mL * Streichholz *möglichst ohne Wasserflecken Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Ethanol (w = 96 %) CH3CH2OH (l) R: 11 F S: 7 - 16 * Entwässertes Kupfersulfat Xn * Calciumhydroxid * R: 22-36/38-50/53 CuSO4 (s) , N R: 41 Ca(OH)2 (s) S: 22-24-26-39 Xi * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 77 S: 22-60-61 5 - 10 mL 2g 0,5 g 77 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 79 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.+2.Schritt: 3.Schritt: Erlenmeyerkolben zum auffangen der Gase Abdampfschale mit Ethanol Spatel mit Kupfersulfat (wasserfrei) Erlenmeyerkolben zum Auffangen der Gase Stativ Durchführung: Herstellen der Lösung: Calciumhydroxid – Lösung (Kalkwasser)78 und 79: Löse 0,5 g Calciumhydroxid (Ca(OH)2) in 250 mL heißem destilliertem Wasser und filtriere anschließend ab. (Die Lösung kann auch noch zusätzlich erwärmt werden). 0. Fülle 100 mL der klaren, filtrierten Calciumhydroxid-Lösung in einen der Erlenmeyerkolben. Schwenke diesen vorsichtig mit der Lösung. Gieße anschließend die Lösung zurück in das Becherglas (verwende für diesen Versuch möglichst einen sauberen, wasserfleckenfreien Erlenmeyerkolben). Befestige den Kolben wie dargestellt in der Apparatur. 1. Fülle 5 mL Ethanol in eine Abdampfschale. Entzünde den Ethanol und fange die Verbrennungsgase mit Hilfe eines Erlenmeyerkolbens auf (Vgl. Versuchsaufbau). 78 Vgl. INT.1. Zwar ist der Kohlendioxidnachweis mittels Barytwasser genauer, doch wird an dieser Stelle aufgrund der geringeren Giftigkeit gegenüber dem Ba(OH)2 auf das Ca(OH)2 zurückgegriffen. 79 80 III. Alkanole Experimenteller Teil 2. Befestige den zweiten Erlenmeyerkolben in der Apparatur. Fange erneut die Verbrennungsgase auf. Warte 2 Minuten 3. Streue mit Hilfe eines Spatels etwas wasserfreies Kupfer(II)Sulfat in den feuchten Erlenmeyerkolben. Beobachtungen: Die Calciumhydroxid-Lösung ist vor der Filtration eine trübe Flüssigkeit. Nach dem Filtrieren ist sie klar. Beide Erlenmeyerkolben waren ohne Wasserflecken. Der Ethanol brennt nach dem entzünden mit dem Streichholz mit gelblicher Flamme. Am Rand des mit dem Calciumhydroxid gespülten Erlenmeyerkolbens bildete sich ein schwarzer Belag. Weiterhin trübten sich die Wasserflecken der Hydroxidlösung ein. Der zweite Erlenmeyerkolben zeigte nach einiger Zeit einen schwarzen Belag, außerdem ist eine Tröpfchenbildung zu erkennen. Das weiße, wasserfreie Kupfersulfat färbte sich nach Kontakt mit den Tröpfchen Blau. Fachliche Auswertung: Der Ethanol in der Abdampfschale brennt nach dem Entzünden. Die dabei entstehenden Gase können durch einfache Versuche nachgewiesen werden. Bei ausreichender Sauerstoffzufuhr wird der Alkohol vollständig zu Kohlenstoffdioxid und Wasser umgesetzt. Der Kohlenstoff wird dabei oxidiert, während der Sauerstoff in der Umgebungsluft reduziert wird. Bei der vollständigen Verbrennung von Ethanol entsteht Wasser und Kohlendioxid. Die Reaktion wird folgendermaßen beschrieben: H H -III H 0 -I C C H H O (g) + 3 O 2 (g) -II +IV -II 3 H2O (g) + 2 CO 2 (g) H Abb.1: Verbrennungsreaktion 81 III. Alkanole Experimenteller Teil Die entstehenden Verbrennungsprodukte Wasser und Kohlendioxid können nun wie folgt nachgewiesen werden: Kohlenstoffnachweis: Ca(OH) 2 (aq) + CO2 (g) CaCO3 (s) + H2O Abb.2: Kohlenstoffnachweis Kohlendioxid reagiert mit einer gesättigten Calciumchloridlösung zu Calciumcarbonat, welches ausfällt und für die Trübung der zuvor klaren Lösung verantwortlich ist. Dieser Nachweis kann als Kohlenstoffnachweis dienen, da das Kohlenstoffatom des Kohlendioxids nur aus dem Ethanol stammen kann. Wasserstoffnachweis: CuSO4 (s) + 5 H2O [Cu(H2O)4] SO4 * H2O (s) Abb.3: Wasserstoffnachweis Entwässertes Kupfersulfat ist ein weißes, geruchloses Pulver. Kommt es mit Wasser in Kontakt, bildet sich Kupfersulfatpenthydrat, das eine charakteristische Blaufärbung aufweist. In diesem Penthydrat ist das Kupfer(II)-Kation von 4 Wassermolekülen quadratisch-planar umgeben. Das fünfte Wassermolekül des Penthydrates ist über eine Wasserstoffbrückenbindung an das Sulfation sowie das Koordinationswasser gebunden.80 Diese Reaktion kann als Wasserstoffnachweis im Ethanol dienen, da der Wasserstoff des Wassers nur aus dem Ethanol stammen kann. Indirekt deutet auch schon die Tröpfchenbildung an der Glaswand auf das entstandene Wasser hin. Dieses kondensiert an der kühlen Glaswand. Doch durch den spezifischen Nachweis mittels wasserfreiem Kupfersulfat kann dieses eindeutig als Wasser identifiziert werden. 80 Vgl. Riedel, 7.Auflage, S.751. 82 III. Alkanole Experimenteller Teil Bei unvollständiger Verbrennung entstehen neben dem Kohlendioxid noch Kohlenmonoxid und andere Kohlenstoffoxide, sowie Ruß. Der Ruß ist durch die schwarzen Beläge an der Gefäßwand zu erkennen. Ruß besteht aus schlecht kristallisiertem und mehr oder weniger verunreinigtem mikrokristallinem Graphit. Industriell wird er aufgrund seiner charakteristischen schwarzen Farbe als Pigment für Farben verwendet. Des Weiteren findet er Verwendung in Autoreifen, da er die Abriebfähigkeit des Reifens erhöht.81 Um den Sauerstoff des Ethanols nachweisen zu können, muss eine andere Reaktion eingesetzt werden (vgl. Sauerstoffnachweis mittels Magnesium). Verbesserungsvorschlag: Zwar waren die Effekte schwach zu erkennen. Da die Verbrennungsgase des Ethanols nicht zwingend und in ausreichender Menge in den Erlenmeyerkolben geleitet werden konnten, ist diese Variante nur bei Zeitmangel zu empfehlen. Den folgenden Aufbau habe ich während einer Schulstunde meines SPS I - Praktikums schon auf Tauglichkeit überprüft. Die Effekte die zum Nachweis der entstehenden Verbrennungsgase dienen, sind deutlich zu erkennen. Anstelle der Saugpumpe kann natürlich auch eine Wasserstrahlpumpe verwendet werden. Stativmaterial Kühlfalle (Wasser mit Eis) Trichter Abdampfschale mit Ethanol Wasserstrahlpumpe CalciumhydroxidLösung Abb.4: Schematischer Versuchsaufbau 81 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.515. 83 III. Alkanole Experimenteller Teil Vorbereitung: 10 - 12 Minuten Durchführung: 5 Minuten Nachbereitung: 10 - 15 Minuten Didaktische Auswertung: Bei diesem Versuch kann mittels einfacher Nachweise eine Verbrennungsreaktion aufgestellt, bzw. die zuvor aufgestellte Gleichung bestätigt werden. Die Versuche sind weitgehend ungefährlich und können von erfahrenen Schülern selbst durchgeführt werden. Stellt man jedoch Aufwand und Nutzen für den Schüler gegenüber, so könnte man zu dem Schluss kommen, dass ein Demonstrationsversuch durch den Lehrer sicher ausreichend wäre. Entsorgung: Die Calciumhydroxidlösung wird mit Hilfe von verdünnter Salzsäure neutralisiert und kann anschließend im Ausguss entsorgt werden. Das Kupfersulfat muss im Schwermetallabfall entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT 1: http://www.seilnacht.com/Chemie/ch_caoh2.htm (05.04.2010). 84 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 7: Qualitative Elementaranalyse: Sauerstoff - Nachweis mittels Magnesium Zeitaufwand: Vorbereitung: 5 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 5 Minuten Materialien : Bunsenbrenner gebogenes Glasrohr Schwerschmelzbares Reagenzglas Reagenzglas Durchbohrter Stopfen Streichholz / Glimmspan Messpipette Peleusball Spatel Plattenstativ Doppelmuffe Stativstange Stativklemme Indikatorpapier Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Magnesiumspäne * Sand * R: 15-17 Mg (s) - F S: - 7/8-43.6 - R: S: - Ethanol (w = 96 %) C2H5OH (l) R: 11 F S: 7 - 16 * * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 82 1g 2g 1 mL 82 HessGiss 2007/2008 85 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: 3.Schritt: Reagenzglas mit dem aufgefangenen Gas Magnesium Reagenzglas zum Auffangen des Gases Sand mit Ethanol Streichholz Bunsenbrenner schwerschmelzbares Reagenzglas (RG) Durchführung: 83 Vorbereitungen: 0. Befestige das schwerschmelzbare Reagenzglas (RG) mit Hilfe eines Plattenstatives und einer Halterung stabil oberhalb eines Bunsenbrenners. Befülle das Reagenzglas mit 2 g Sand. Befeuchte den Sand mit 1 mL Ethanol. Fülle anschließend mit Hilfe eines Spatels vorsichtig 1 g Magnesiumpulver wie im Versuchsaufbau dargestellt ein. Achte darauf, dass das Magnesiumpulver den feuchten Sand nicht direkt berührt. Verschließe das Reagenzglas mit Hilfe des durchbohrten Stopfens durch welchen ein gebogenes Glasrohr geführt ist. 1. Erwärme kurz den mit Ethanol getränkten Sand vorsichtig mit dem Brenner. Erhitze nun mit rauschender Flamme die Magnesiumspäne bis zur Rotglut. Erwärme dabei auch hin und wieder das Ethanol – Sand Gemisch vorsichtig (KURZ!). 2. Fange das sich entwickelnde Gas mit Hilfe eines 2. Reagenzglases auf, das auf das Ableitungsrohr aufgesetzt ist. 3. Halte ein brennendes Streichholz unter die Öffnung des 2. Reagenzglases. 4. (Optional): Lass das schwerschmelzbare Reagenzglas abkühlen, halte anschließend ein Stückchen feuchtes Indikatorpapier auf das abreagierte Magnesiumpulver. 83 Vgl. Schuphan/Knappe, S.102. 86 III. Alkanole Experimenteller Teil Beobachtungen: Durch das starke Erhitzen der silberfarbenen Magnesiumspäne glühen diese nach kurzer Zeit Rot auf. Nachdem immer wieder auch das Ethanol-Sand-Gemisch mit dem Brenner erwärmt wurde, ist der Sand trocken. Nach dem Abkühlen sind die Magnesiumspäne weiß gefärbt. Außerdem hat sich am Rand ein schwarzer Belag gebildet. Beim Entzünden des aufgefangenen Gases kann ein leises „blobendes“ Geräusch wahrgenommen werden. An der Reagenzglaswand scheiden sich vereinzelt kleine Tröpfchen ab. Das feuchte Indikatorpapier reagiert mit dem weißen Belag der Magnesiumspäne basisch und zeigt eine bläuliche Farbe. Fachliche Auswertung: Zu Beginn wird das Ethanol-Sand-Gemisch vorsichtig kurz erwärmt. Dies führt dazu, dass durch die steigende Durchschnittstemperatur mehr Moleküle die Energie besitzen die flüssige Phase zu verlassen und in die Gasphase überzutreten. Dadurch wird der Sauerstoff der Umgebungsluft verdrängt, so dass es nicht zur Reaktion zwischen Magnesium und dem Disauerstoff der Luft kommen kann. Stattdessen reagiert der Ethanol mit den Magnesiumspänen nach folgender Gleichung: H H -III H -I C C H H O -II 0 0 + Mg +II -II 2 C (s) + MgO (s) 0 (s) + 3 H2 (g) H (g) +I Abb.1: Reaktionsgleichung Ethanol mit Magnesium Es wird demnach Magnesium zum Magnesium(+II) und der Kohlenstoff des Ethanols oxidiert, während die Wasserstoffe des Ethanols zum elementaren Wasserstoff reduziert werden. Der entstandene Wasserstoff kann mittels Knallgasprobe identifiziert werden. Nach dem Anzünden durch das Streichholz reagiert er Wasserstoff mit dem Sauerstoff der Umgebungsluft rasant zu Wasser. 0 0 2 H2 (g) + O 2 (g) -I +II 2 H2O (g) Abb.2: Knallgasreaktion 87 III. Alkanole Experimenteller Teil Diese Reaktion wird als Knallgasreaktion bezeichnet (Abb.2.) Sie ist eine stark exotherme 𝐤𝐉 Reaktion84, ΔHB° = - 286 𝐦𝐨𝐥, die explosionsartig abläuft.85 Das sich bildende Wasser ist daher bei diesen Bedingungen gasförmig, scheidet sich aber schnell an der kühlen Reagenzglaswand ab. Dies erklärt die Entstehung der feinen Tröpfchen. Diese Reaktion ist eine verzweigte Kettenreaktion und kann wie folgt beschrieben werden: Der erste Schritt, Gleichung (3), erfordert Energie. Es muss daher mindestens eine Temperatur von 400°C vorherrschen, oder ein Katalysator, beispielsweise Platin86, anwesend sein. Energie () H H 2H H + O2 HO + O O + H2 HO + H HO + H 2 H2O + H HO + H H2O O + H2 H2O (1) - Kettenstart (2 – 4) - Kettenreaktion mit Kettenverzweigung (5 – 6) Kettenabbruchsreaktionen Abb.3: Reaktionsmechanismus der radikalischen Kettenreaktion87 Die Kettenabbruchsreaktionen (Rekombination) finden nur dann statt, wenn ein Teil der Energie durch Stöße mit anderen Teilchen oder der Gefäßwand absorbiert wird.88 Mit Hilfe der beschriebenen Knallgasprobe kann ein aufgefangenes Gas - wie das im Reagenzglas - einfach und schnell auf Wasserstoff getestet werden. Sollte es sich um Wasserstoff handeln, wird er dem Reagenzglas, das mit der Öffnung nach unten gehalten wird, aufgrund der geringeren Dichte nicht entweichen. Wird nun eine Zündquelle - wie das Streichholz - unterhalb der Öffnung gebracht, so sind mehrere Varianten denkbar: 84 Vgl. Riedel, 7. Aufl, S.382 Vgl. INT.2. 86 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.382. 87 Vgl. INT.2. 88 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.382. 85 88 III. Alkanole Experimenteller Teil - Handelt es sich um reinen Wasserstoff, kommt es lediglich zu einer ruhigen Verbrennung oder teilweise auch zu einer leichten Verpuffung. - Ist es ein Wasserstoff – Sauerstoffgemisch, erfolgt die Reaktion rasend schnell und es ist ein pfeifendes, blobendes Geräusch zu vernehmen.89 - Es wäre natürlich auch denkbar, dass es sich nicht um Wasserstoff handelt. In diesem Fall brennt es, sofern es sich um ein brennbares Gas handelt, langsam ab. Andernfalls, wie beim Stickstoff oder Kohlendioxid bleibt eine Reaktion gänzlich aus. Das entstandene Magnesiumoxid (MgO) wird durch seinen basischen Charakter beim Kontakt mit Wasser identifiziert (Vgl.Abb.4). MgO (s) Mg(OH) 2 + H 2O Mg(OH) 2 + H2O (s) Mg 2+ (s) (aq) + 2 OH (aq) Abb.4: Reaktion von Magnesiumoxid mit Wasser90 Das sich bei dieser Reaktion bildende Hydroxid (OH-) färbt in der Folge das Indikatorpapier bläulich. 89 90 Vgl. INT.2. Vgl. Neumüller, S.45. 89 III. Experimenteller Teil Alkanole Didaktische Auswertung: Dieser Versuch ist eine weitere qualitative Elementaranalyse und ergänzt somit die in Versuch 6 dargestellten Analysen auf Kohlenstoff und Wasserstoff. Wie im hessischen G8 Lehrplan in 10G unter Punkt 2.2 in den „verbindlichen Themen“ gefordert, kann er zum Einsatz im Themengebiet der Alkanole als beschriebene Elementaranalyse kommen. Damit kann er gemeinsam mit anderen Versuchen den Weg zur Summenformel von Ethanol ebnen. Es handelt sich zwar um einen einfachen Versuch, doch ist es aufgrund der Handhabbarkeit beim Arbeiten mit schwerschmelzbaren Reagenzgläsern anzuraten, diesen Versuch lediglich als Demonstrationsversuch durch den Lehrer durchzuführen. Häufig kommt es dazu, dass die teureren Reagenzgläser springen. Außerdem ist die Reinigung der schwerschmelzbaren Reagenzgläser nach dem Versuch aufwendig. Entsorgung: Der Sand, das Magnesiumoxid und der Kohlenstoffrest können im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt werden. Literatur: Tausch / von Wachtendonk, , Stoff-Formel-Umwelt - Chemie Sekundarstufe II, Kapitel 1.1: Qualitative Elementaranalyse, (S. 2): Versuch 2.8. Internetquellen: INT.1: www.chids.de (Zugriff: 06.04.2010). INT.2: http://www.rzuser.uni-heidelberg.de/~ltemgoua/chemie/Knallgas.html (Zugriff: 06.04.2010). 90 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 8: Reaktion von Ethanol mit Natrium Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 2 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Materialien : 2 Reagenzgläser Messer Reagenzglasständer Filterpapier Pinzette Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Natrium * R: 14/15-34 Na (s) F S: 5-8-43.7-45 ,C Ethanol (w = 96 %) C2H5OH (l) R: 11 F S: 7 - 16 * * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 91 1 cm3 5 mL 91 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 91 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau:92 1.Schritt: 2.Schritt: Pinzette Messer Na Natrium Natrium 3.Schritt: Spatel mit Natriumwürfel 4.Schritt: Reagenzglas (RG2) zum Auffangen der Gase Ethanol mit Natrium Reagenzglas mit Ethanol Durchführung: 1. Entnimm mit Hilfe einer Pinzette etwas Natrium aus dem Vorratsfläschchen und lege es auf ein Filterpapier. 2. Schneide mit einem Messer ein ca. 1 cm3 großes Stück heraus. Befreie durch Kratzen mit dem Messer den Natriumbrocken von der Oxidschicht. 3. Gib den Natriumwürfel in das mit 3 mL Ethanol (w = 0,96) gefüllte Reagenzglas. 4. Fange das sich entwickelnde Gas wie im Versuchsaufbau beschrieben mit Hilfe eines leeren Reagenzglases auf. 92 Vgl. INT.1, S.14f. 92 III. Alkanole Experimenteller Teil 5. Entzünde einen Glimmspan und halte diesen unterhalb der Reagenzglasöffnung (RG2). Beobachtungen: Das Natriumstück läuft nach dem Entnehmen aus dem Vorratsgefäß schnell grau und matt an. Durch Kratzen mit dem Messer bekommt es seinen metallischen Glanz zurück. Es handelt sich um ein weiches Metall, das sich butterähnlich schneiden lässt. Nach der Zugabe des Natriums zum Ethanol beginnt eine teils heftige Gasentwicklung. Das entstehende farblose Gas steigt schnell nach oben und kann problemlos mit dem zweiten Reagenzglas aufgefangen werden. Der glimmende Holzspan erzeugt beim Einbringen in das Reagenzglas Nr.2 ein „blobendes“ Geräusch. Außerdem bilden sich kleine Tröpfchen an der Glaswand. - Fachliche Auswertung: Der durchgeführte Versuch soll bei der Strukturaufklärung des Ethanol-Moleküls dienen. Die Versuche zur Analyse der Verbrennungsgase haben gezeigt, dass sie aus Wasser und Kohlendioxid bestehen; demnach muss das Molekül Kohlenstoff und Wasserstoffatome besitzen. Als heißer Ethanoldampf über das heiße Magnesiumpulver (Versuch 7) geleitet wurde, kam es zur Reaktion, bei der sich neben Wasserstoff und Kohlenstoff auch noch Magnesiumoxid (MgO) gebildet hat; demnach muss das Ethanol zusätzlich auch noch Sauerstoff enthalten. Mittels quantitativer Analysen und einer Molmassenbestimmung lässt sich sagen, dass das Ethanol eine molare Masse von 46 u besitzt und die Summenformel C2H6O haben muss: Berücksichtigt man nun die Bindigkeit von Kohlenstoff, Wasserstoff und Sauerstoff, sind folgende Strukturformeln möglich: H H H H -I -III C C H H -II C O H H (l ) O H H H C -II H (l ) Abb.1: Lewisdarstellung der beiden Funktionsisomere Ethanol und Dimethylether 93 93 An dieser Stelle wird bewusst auf die Beschriftung der Moleküle verzichtet, da dieser Versuch ja der Strukturaufklärung und damit der Zuordnung dienen soll. 93 III. Alkanole Experimenteller Teil Mit Hilfe des beobachteten Versuchs lässt sich nun unterscheiden, welche der abgebildeten Strukturformel dem des Ethanols entspricht. Denn Natrium reagiert nur mit dem Ethanol, nicht jedoch mit dem Dimethylether.94 Genauer gesagt reagiert es mit dem Wasserstoffatom der Hydroxygruppe, das aufgrund des großen Elektronegativitätsunterschieds polarisiert ist. Zuerst einmal soll geklärt werden, warum Natrium so reaktiv ist: Natrium ist ein unedles Metall, besitzt ein negatives Standardpotential von -2,71 V,95 reagiert daher sofort unter Wasserstoffbildung mit der Feuchtigkeit der Umgebungsluft zum Natriumhydroxid und läuft dabei matt bzw. grau an. 0 +I +I 2 Na (s) + 2 H 2O 0 + - 2 Na (aq) + 2 OH (aq) + H 2 (g) Abb.2: Reaktion von Natrium mit Wasser Wegen der Reaktivität von Natrium mit Wasser, wird dieses, wie auch die anderen Alkalimetalle, in wasserunlöslichem Petroleum oder Paraffinöl aufbewahrt, dies schütz sie vor Kontakt mit Wasser und dem Sauerstoff der Umgebungsluft. Für die Größe des Standardpotentials eines Redoxpaares (hier von Na/Na+) ist die Energiebilanz zwischen festem Metall (mit Na(s) gekennzeichnet) und den Metallionen, hier Na+(aq), entscheidend. Dieser Übergang muss über die Einzelschritte hinweg betrachtet werden. Im Einzelnen laufen folgende 3 Einzelreaktionen ab: 1. Na (s) 2. Na (g) + 3. Na Na (g) + Na (g) + e Sublimationsenthalpie erforderlich. - Ionisierungsenergie muss aufgebracht werden. + (g) Na (aq) Hydratationsenthalpie wird gewonnen Die große Hydratationsenthalpie des harten Lithiums nach dem HSAB Konzept nach Lewis, ist beispielsweise der Grund, warum Lithium ein so stark negatives Standardpotential besitzt. Das Lithiumkation ist nach diesem Konzept als „Hart“ zu bezeichnen, da es eine hohe 94 95 Natrium reagiert auch mit Dimetylether, wenn dieser nicht wasserfrei ist. Vgl. Riedel, 7. Aufl. 94 III. Alkanole Experimenteller Teil Ladungsdichte aufweisen kann; entscheidend ist hier das große Ladungs/RadienVerhältnis.96 Das Natriumkation ist wie auch das Lithium eine „Lewissäure“. Auch hier führt der 3. Schritt – die große Hydrationsenthalpie – zum stark negativen Standardpotential. Im elementaren Zustand hat Natrium einen silberweißen, metallischen Glanz, der aber nach kurzem Kontakt mit der Luft verschwindet. Natrium besitzt lediglich eine Härte von 0,5. Kann daher leicht mit einem Messer geschnitten werden. An der Schnittstelle kann man seinen elementaren, silberweißen Glanz sehen. Bei der durchgeführten Reaktion reagiert das Natrium mit dem Alkohol (hier dem Ethanol) unter Bildung von elementarem Wasserstoff und dem Alkanolat (hier Natriumethanolat). Diese Reaktion ähnelt derjenigen der Alkalimetalle mit Wasser, verläuft aber weniger heftig ab (vgl.Abb.3, 4 und 5). Reduktion: +I 0 2 C2H5OH (aq) + 2 e - - 2 C2H5O (aq) + H 2 (g) Abb.3: Reduktionsreaktion Oxidation: +I 0 + 2 Na (aq) + 2 e 2 Na (s) - Abb.4: Oxidationsreaktion Gesamtreaktion: 0 +I 2 C2H5OH (aq) + 2 Na 2 H H H C C H H 0 (s) 0 2 Na (s) O H +I (l) 2 C 2H 5O - H 2H (aq) + +I 2 Na H C C H H O - + (aq) + H2 +I + + 2 Na (g) 0 (aq) + H 2 (g) Abb.5: Gesamtreaktion 96 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.340. 95 III. Alkanole Experimenteller Teil Das sich bildende Ethanolat ist, wie alle Alkoholate, eine starke Base. Dies führt dazu, dass der PH – Wert steigt weil Hydroxid – Ionen gebildet werden.97 - C2H5O (aq) + H 2O - C2H5OH (aq) + OH (aq) Abb.6: Reaktion des Ethanolats mit Wasser Natrium wird, wie in Gleichung (4 + 5) zu sehen ist, oxidiert und anschließend solvatisiert. Dies erklärt auch, warum nach Abschluss der Reaktion kein elementares Natrium mehr im Reagenzglas vorhanden ist. Alkohole verhalten sich gegenüber starken Säuren und Basen amphoter, so wie Wasser. Sie sind allerdings weniger stark basisch und weniger stark sauer als Wasser. Daraus folgt, dass die sich ergebenden konjugierten Säuren (Abb.6a) stärker sauer sind als, H3O+ und die konjugierten Basen (Abb.6b) stärker basisch sind, als OH-.98 H R O + H Abb.6a R - O Abb.6b Mittels Knallgasprobe kann der entstandene Wasserstoff identifiziert werden. Nach dem Anzünden reagiert der Wasserstoff mit dem Sauerstoff der Umgebungsluft rasant zu Wasser. 0 0 2 H2 (g) + O 2 (g) -I +II 2 H2O (g) Abb.7: Knallgasprobe Die Knallgasreaktion (vgl.Abb.7) ist eine exotherme Reaktion (ΔHB° = - 242 𝐤𝐉 99 ) 𝐦𝐨𝐥 die explosionsartig abläuft. Das sich bildende Wasser ist daher bei diesen Bedingungen gasförmig, scheidet sich aber schnell an der kühlen Reagenzglaswand ab und bildet feine Tröpfchen. Die genaue Kettenreaktion ist im Abschnitt „Fachliche Auswertung von Versuch 7“, Qualitative Elementaranalyse: Sauerstoff Nachweis mittels Magnesium dargestellt. 97 Vgl. Mortimer (2001), S. 549f. Vgl. ebd., S. 550. 99 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.382. 98 96 III. Alkanole Experimenteller Teil Die Kettenabbruchsreaktionen (Rekombination) finden nur dann statt, wenn ein Teil der Energie durch Stöße mit anderen Teilchen oder an der Gefäßwand absorbiert wird.100 Die Reaktion wird sich aufgrund der hohen Temperaturen (bis zu 3000°C), die erreicht werden können, im sogenannten Knallgasgebläse zu Nutze gemacht. Um Explosionen zu vermeiden, werden die Gase - allerdings getrennt voneinander - in den Verbrennungsraum geleitet. Auf diese Weise können Stoffe mit hohen Schmelzpunkten verarbeitet werden.101 Der Versuch kann zur Strukturaufklärung der Alkohole herangezogen werden. Gerade die beiden in der Schule Verwendung findenden Funktionsisomere Ethanol und Dimethylether, die beide mit der Summenformel C2H6O beschrieben werden, können auf diesem Wege unterschieden werden. Die Zuordnung kann aufgrund der gewonnenen Erkenntnisse getroffen werden. H H H H -I -III C C H H -II C O H H Ethanol O H H H C -II H (l ) (l ) Dimethylether Abb.8: funktionsisomere Ethanol und Dimethylether Ethanol reagiert in der beschriebenen Art und Weise mit dem Alkalimetall, während reiner, wasserfreier Dimethylether nicht reagiert. Natrium kann sogar zur Trocknung von Dimethylether verwendet werden. Dabei reagiert das Alkalimetall nur mit dem enthaltenen Wasser, nicht jedoch mit dem Ether. Didaktische Auswertung: Der Versuch kann im Themenfeld der Strukturaufklärung von Alkoholen im Unterricht Anwendung finden, hier kann er die qualitativen Elementaranalysen (Versuch 6 und 7) erweitern. Verankert ist das Thema der Strukturaufklärung im hessischen G8 Lehrplan unter 100 101 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.382. Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.382. 97 III. Experimenteller Teil Alkanole 10G, Thema Alkanole, unter Punkt 2.2. Der Versuch kann den Schülern und Schülerinnen auf einfachem Wege bei der Unterscheidung zwischen den beiden Funktionsisomeren helfen. Nach HessGISS sind die eingesetzten Substanzen zur Arbeit im Schülerversuch geeignet, so dass auch der Einsatz als Schülerversuch denkbar wäre. Hierbei ist jedoch abzuwägen, ob den Schüler und Schülerinnen der Umgang mit Natrium zuzutrauen ist. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für organische Abfälle entsorgt werden. Literatur: INT.1: http://www.chids.de/dachs/expvortr/748Alkohole_Wenke.doc (Zugriff: 09.04.2010). 98 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 9: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat Zeitaufwand: Materialien : Vorbereitung: 5 Minuten Durchführung: 2 Minuten Nachbereitung: 5 Minuten Variante 1: 3 Petrischalen Pipette 3 Messpipetten (10 mL) Pipettenhütchen Overheadprojektor Peleusball Waage Variante 2: 3 Erlenmeyerkolben (50 mL) Peleusball 3 Messpipetten (10 mL) Pipettenhütchen Pipette Stoppuhr Waage Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Kaliumpermanganat – Lösung (c = 0,0006 𝒎𝒐𝒍 𝑳 ) 10 mL bei KMnO4 (aq) O , Xn , R: 8-22-50/53 S: 60-61 * 15 mL bei Var.2 N Propan-1-ol * Var.1; R: 11-41-67 C3H7OH (l) F , Xi S: 7-16-24-26- s.u. 39 Propan-2-ol (Isopropylalkohol) * R: 11-36-67 C3H7OH (l) F , Xi S: 7-16-24/25- s.u. 26 99 III. Alkanole Experimenteller Teil Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Tert.Butanol (2-Methyl-propan-2-ol) C4H9OH (l) R: 11-20 F , Xn S: 9-16 * 10 mL bei NatriumhydroxidLösung (c = 1 𝒎𝒐𝒍 𝑳 ) s.u. NaOH C R: 35 Var.1; S:26-37/39-45 15 mL * bei Var.2 * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 102 Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: Pipette mit alkalischer KMnO4 – Lösung Messpipette 1.Schale: Propan-1-ol 102 2.Schale: Propan-2-ol 3.Schale: tert.Butanol 1.Schale: 2.Schale: 3.Schale: HessGiss 2007/2008 100 III. Experimenteller Teil Alkanole Durchführung: 103 Variante 1: Herstellung der Lösungen: Alkalische Kaliumpermanganatlösung (0,0006 molar): 0. Löse 0,0948 g KMnO4 in einem Liter Wasser. Um das Volumen gering zu halten, Alternativ: Löse 0,000948 g KMnO4 in 10 mL Wasser die geringe Konzentration ist wichtig, da sonst die Farbeffekte überlagert werden könnten Gib zur KMnO4 – Lösung 10 mL einer 1 - molaren Natriumhydroxid-Lösung zu. Natronlauge (1 molar): Falls nicht vorhanden Löse 0,4 g festes Natriumhydroxid in 10 mL Wasser. 1. Verteile 3 Petrischalen auf dem Overhead-Projektor. Fülle die Schalen mit den jeweiligen Alkoholen: 1.Schale mit Propan-1-ol, 2.Schale mit Propan-2-ol und die 3. Schale mit tert.Butanol. Schalte den Overheadprojektor ein. 2. Gib zu den jeweiligen Alkoholen nun eine Pipettenfüllung der Kaliumpermanganat Lösung. 3. Beobachte kurz und schalte anschließend den Projektor aus. Variante 2: 0. Es werden 15mL der 0,0006 molaren Kaliumpermanganat - Lösung benötigt. Gib zu dieser KMnO4 – Lösung 15 mL der 1 molaren Natriumhydroxid-Lösung. 1. Verteile die Lösung gleichmäßig auf 3 Erlenmeyerkolben. 2. Fülle in die Erlenmeyerkolben nun jeweils eine Pipettenfüllung eines der verschiedenen Alkohole. Schwenke vorsichtig und vermische alles gut durch. 3. Miss jeweils die Zeit bis eine Veränderung eintritt. 103 Vgl INT.1. 101 III. Alkanole Experimenteller Teil Beobachtungen: Die 3 Alkohole sind klare, wasserähnliche Flüssigkeiten. Nach Zugabe des Kaliumpermanganats waren in den Schalen folgende Beobachtungen zu sehen: 1. Schale (Propan-1-ol): Die Lösung färbt sich nach Zugabe von Kaliumpermanganat kurz violett anschließend bilden sich grüne Schlieren, die sich bald braun verfärben. Die violette Farbe verschwindet. 2. Schale (Propan-2-ol): Die Lösung färbt sich nach Zugabe von Kaliumpermanganat kurz violett, anschließend bilden sich grüne Schlieren. Eine Weiterfärbung zum Braun bleibt hier aus. 3. Schale: (Tert.Butanol) Die Lösung färbt sich nach Zugabe von Kaliumpermanganat kurz violett. Weitere Verfärbungen sind erst nach 30 Sekunden zu sehen. Fachliche Auswertung: Alkohole, wie die drei verwendeten, sind Verbindungen der allgemeinen Formel R-OH. Dies ist ihre charakteristische gemeinsame Gruppe, die ihre Eigenschaften stark beeinflusst. Die so genannte funktionelle Gruppe ist bei den Alkoholen die Hydroxygruppe. R kann bei dieser Verbindungsklasse eine Alkylgruppe oder eine substituierte Alkylgruppe sein. Sie kann sowohl offenkettig, wie bei den gemäß Abb.2-4 verwendetet, als auch cyclisch sein (Vgl. Abb.1). OH Abb.1: Cyclohexanol Zunächst einmal muss geklärt werden, worin sich die drei Alkohole unterscheiden. Propan-1-ol: H3C -I OH H H H H C C C (l) H (l) H H OH Abb.2: Propan-1-ol Bei Propan-1-ol auch (1-Propanol genannt) handelt es sich um einen primären Alkohol. Das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe (OH) trägt, ist nur mit einem weiteren C – Atom 102 III. Alkanole Experimenteller Teil verbunden. Diese primären Alkohole können durch starke Oxidationsmittel - wie das verwendete Permanganat - bis zur Carbonsäure oxidiert werden. Propan-2-ol: OH C H3C H H H C C C H OH H 0 H H CH 3 (l) H (l) Abb.3: Propan-2-ol Propan-2-ol - wie diese Verbindung nach IUPAC–Nomenklatur bezeichnet werden sollte stellt einen sekundären Alkohol dar. Hier ist das Kohlenstoffatom, das die OH – Gruppe trägt, mit 2 weiteren Kohlenstoffatomen verbunden. Man spricht daher von einem sekundären Kohlenstoffatom. Sekundäre Alkohole können von starken Oxidationsmitteln bis zum Keton oxidiert werden. Tert.Butanol: (2-Methylpropan-2-ol) OH C H3C H CH3 H C C C H OH H +I H CH 3 CH3 (l) H (l) Abb.4: Tert.Butanol Beim abgebildeten tert.Butanol (Abb.4), auch 2-Methyl-Propan-2-ol genannt, handelt es sich um einen tertiären Alkohol. Das Kohlenstoffatom, welches hier die Hydroxygruppe trägt, ist noch mit drei weiteren Kohlenstoffatomen (hier Methylgruppen) verbunden. 103 III. Alkanole Experimenteller Teil Oxidation primärer Alkohole: (1. Schritt) O H O -I O Mn + H3C -I +VII O O O O Mn H O O H H O H3C O H3C H O +VII Mn O +I O H3C + H O O +V Mn O H O O O Abb.5: hypothetischer Mechanismus der Oxidation primärer Alkohole – 1.Schritt 104 und 105 Der abgebildete Mechanismus gilt im Detail als nicht geklärt, stellt aber eine plausible Erklärung für die Bildung des Propanals dar. Im ersten Schritt der Reaktion des primären Alkohols (hier Propan-1-ol) wird zunächst ein Ester mit dem Permanganation gebildet (Abb.5). Bei der anschließenden Esterspaltung wird das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe trägt, von –I auf +I ‚hochoxidiert‘. Es entsteht aus dem primären Alkohol demnach im 1.Schritt ein Aldehyd, genauer, das Propanal (Abb.6a). Während dessen wird Mangan(VII) zu Mangan(V) reduziert. Die auftretende Farbänderung der tief violetten Permanganat–Lösung kommt durch die sich während der Redoxreaktion ändernden Oxidationsstufen des Manganions zustande. Je nach Oxidationsstufe weisen Manganverbindungen unterschiedliche Farben auf. So besitzen die Manganate (die farbigen Salze der hypothetischen Mangansäuren) unterschiedliche Farben: 106 Manganat(II) ist farblos. (Bsp.: MnO22-). Manganat(IV) ist braun. (Bsp.: MnO32-). Die bekannteste und wohl auch stabilste Mangan(IV) Verbindung, MnO2, trägt auch den Trivialnamen ‚Braunstein‘, was auf die Farbe der Lösung hindeutet. 104 Vgl. Brückner, S.742f. Vgl. INT.1 106 Vgl. Deckwer et al.. 105 104 III. Alkanole Experimenteller Teil Manganat(V) ist blau. (Bsp.: MnO43-). Manganat(VI) ist grün. (Bsp.: MnO42-).107 Mangan(VII) ist tiefviolett. (Bsp.: MnO4-). Die sich wohl zumindest intermediär bildende Mangan(V)-Verbindung wird daher eine blaue Farbe aufweisen108 und 109 und kann damit noch nicht für die Erklärung der grünen Färbung der Lösung herangezogen werden. Es könnte nun aber in der Folge zu einer Komproportionierung zwischen Mangan(V) und dem eingesetzten Mangan(VII) kommen (Vgl.Abb.6a): H +VII MnO4 O +V + Mn (aq) H O O O +VI O 2 O Mn H O (aq) v iolette blau O (aq) grün Abb.6a: mögliche Komproportionierungsreaktion Die sich bildende Mangan(VI)-Verbindung würde die grüne Farbe der Lösung erklären. Im 2. Schritt wird das Aldehyd-Propanal (Oxidationsstufe des Kohlenstoffatoms: (+I)) zur Propansäure, einer Carbonsäure, oxidiert. In dieser trägt das Carbonylkohlenstoffatom die Oxidationsstufe (+III). Gleichzeitig wird Mangan(VI) zu Mangan(IV) reduziert (Vgl. Abb.6b). Die Braunfärbung der Lösung lässt sich durch die Reduktion des Manganats (MnO 42-) zu Braunstein (MnO2) erklären: Der Mechanismus verläuft ähnlich dem des 1. Schrittes. Zunächst wird jedoch das Aldehydhydrat gebildet. 107 Vgl. Deckwer et al.. Vgl. Holleman/Wieberg, 102.Aufl., S.1618ff. 109 Vgl. Deckwer et al.. 108 105 III. Alkanole Experimenteller Teil Oxidation primärer Alkohole: (2. Schritt – Hydratbildung) O H H3C + OH H3C O H OH H Aldehyd Aldehydhydrat Abb.6b: Bildung des Aldehydhydrates H +I OH O H3C +VI O +H + H3C Mn + OH + O O O +III O OH Mn + 2 H2O O 1-Propansäure Mangan(VI) +IV Braunstein Abb.6c: Reaktionsmechanismus des Oxidationsprozesses eines primären Alkohols –2. Schritt Wahrscheinlicher als die dargestellte Variante des Oxidationsprozesses über eine Esterbildung, ist, dass der Prozess in Form einer Ein-Elektronen-Reduktion am Mangan abläuft. Demnach wird Elektron für Elektron aufgenommen. Der Mechanismus stellt also lediglich eine Möglichkeit der Reaktion dar. Er ist keinesfalls gesichert. Oxidation sekundärer Alkohole: (1. Stufe) O H O O 0 H3C + H O Mn H3C H O O O H3C O O H H O H3C O H O H3C -I H3C +VII Mn O H O +VII Mn O H3C +II O +V Mn O + CH3 H O O O Abb.7: Reaktionsmechanismus des Oxidationsprozesses eines sekundären Alkohols Der sekundäre Alkohol (hier das Propan-2-ol) wird durch die Permanganat – Lösung bis zum Keton (hier dem Propanon) oxidiert. Dabei wird Permanganat (Mangan (+VII)) zum 106 III. Alkanole Experimenteller Teil Manganat(+V) reduziert. Dieser Schritt verläuft mechanistisch wie der 1.Schritt des Redoxprozesses beim primären Alkohol. In der Folge kann es, wie in Abb.6a dargestellt, zu einer Komproportionierungsreaktion zwischen Mangan(V) und dem eingesetzten Mangan(VII) kommen. Das sich bildende Mangan(VI) kann zur Erklärung der grünen Farbe der Lösung herangezogen werden. Eine Folgereaktion wie im 2. Schritt des Oxidationsprozesses von primärem Alkohol bleibt hier allerdings aus, da das Aldehydhydrat nicht gebildet werden kann. Eine Weiteroxidation des Ketons ist nur durch einem C-C-Bindungsbruch möglich. Auch an dieser Stelle sei darauf hingewiesen, dass die Reaktion wahrscheinlicher durch eine Ein-Elektronen-Reduktionsreaktion am Mangan abläuft als nach der dargestellten Variante des Oxidationsprozess über eine Esterbildung. Oxidation tertiärer Alkohole: Hier findet keine Reaktion des Alkohols mit der Permanganat–Lösung statt. Die evtl. auftretenden geringen Farbveränderungen sind wohl auf Verunreinigungen der Alkohole zurückzuführen. OH +I H3C + +VII MnO4 (aq) CH3 CH3 (l) (tertiärer Alkohol) Didaktische Auswertung: Dieser Versuch eignet sich sehr gut, um Schülern das unterschiedliche Reaktionsverhalten von Alkoholen zu demonstrieren. Da alle Chemikalien bereits ab der Sekundarstufe 1 zugelassen sind, ist der Versuch sowohl als Demoversuche durch den Lehrer als auch als Schülerversuch denkbar. Wird der Versuch als Demonstrationsversuch im Unterricht durchgeführt, sollte er in Variante 1 mit Petrischalen und einem Overheadprojektor (Tageslichtprojektor) durchgeführt werden. Ist der Versuch als Schülerversuch in Gruppenarbeit angedacht, 107 III. Experimenteller Teil Alkanole könnte auf Variante 2 zurückgegriffen werden. Hier wird mit Erlenmeyerkolben und Stoppuhr gearbeitet. Ebenfalls wäre noch eine Variante 3 denkbar, in welcher chemikaliensparend im Reagenzglasmaßstab gearbeitet wird. Eine Anleitung für Schüler mit Arbeitsblatt sind im Teil IV. Unterrichtsmaterialien zu finden. Der Versuch, der als einfach und effektvoll beschrieben werden kann, könnte in den verschiedensten Teilen des Lehrplans Anwendung finden. Neben der Anwendung im Themengebiet der Alkohole könnte er aber auch zur Überleitung zum Themengebiet der Aldehyde und Ketone dienen. Auch zur Darstellung dieser ist der Alkohol als Edukt denkbar. Der Versuch knüpft an das Vorwissen der Schüler zu den Themen Redoxreaktion, sowie die Bestimmung von Oxidationszahlen in organischen Molekülen, an. Entsorgung: Die Lösungen müssen neutralisiert und mit Natriumthiosulfat umgesetzt werden und können anschießend neutral im Behälter für organische Lösungsmittel entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/experimente/005oxidierbarkeit_prim_sek_ter_alkohole.xml (Zugriff: 06.04.2010). 108 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 10: Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Lucas Reagenz Zeitaufwand: Vorbereitung: 4 Minuten Durchführung: 10 Minuten Nachbereitung: 3 Minuten 3 Reagenzgläser Becherglas Spatel 3 Stopfen Reagenzglasständer Pipette Materialien : Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Zinkchlorid (wasserfrei) R: 22-34-50/53 ZnCl2 (s) S: 26-36/37/39 C * ,N -45-60-61 Salzsäure (konz.) (w=0,37) R: 34-37 HCl (konz.) S: 26-36/37/39 C * 20 mL -45 Propan-1-ol * 28 g R: 11-41-67 C3H7OH (l) F S: , Xi 7-16-24-26- 1 mL 39 Propan-2-ol (Isopropylalkohol) R: 11-36-67 C3H7OH (l) F S: , Xi * C4H9OH (l) R: 11-20 F , Xn S: 9-16 * * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 110 1 mL 26 Tert.Butanol (2-Methyl-2-propanol) 7-16-24/25- 1 mL 110 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 109 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: Pipette mit Lucas-Reagenz (6 mL) Reagenzglasgestell mit: 1. 1-Propanol 2. 2-Propanol 3. tert. Butanol 1. Durchführung: 2. 3. 111 und 112 Herstellung der Lösungen: Lucas–Reagenz: Löse in einem Becherglas unter Kühlung 27 g wasserfreies Zinkchlorid (ZnCl2) in 18 mL konzentrierter Salzsäure (HCl).113 1. Fülle 3 Reagenzgläser jeweils mit 1 mL der Alkohole. Gib in das 1. Reagenzglas (RG), Propan-1-ol, in das 2. (RG) Propan-2-ol und in das 3. (RG) tert.Butanol. 2. Füge nun jeweils 6 mL Lucas-Reagenz zu, schüttle kurz und beobachte bis zu 10 Minuten. Beobachtungen: Die Alkohole in reiner Form sind klare, wasserähnliche Flüssigkeiten. Sie mischen sich mit Wasser und weisen eine ähnliche Viskosität auf. Nach der Zugabe des Lucas-Reagenz trüben sich die ehemals klaren Lösungen. Die Trübung der Lösung trat bei tert. Butanol sofort ein, während die beiden anderen Lösungen zunächst unverändert klar blieben. Nach ca. 1 Minute war eine Phasentrennung in Reagenzglas 3, das mit tert. Butanol gefüllt war, zu erkennen. Das Propan-2-ol wurde ebenfalls langsam trüb. Es 111 Vgl. Asselborn et al., S.252. Vgl. INT.1. 113 Vgl. Asselborn et al., S.252. 112 110 III. Alkanole Experimenteller Teil schieden sich langsam ölige Tropfen ab. Reagenzglas 1, das mit dem primären Alkohol gefüllt warm, zeigte auch nach 10 Minuten keine Trübung. Fachliche Auswertung: Der Versuch dient, wie der Versuch Nr.9, der Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole. Es handelt sich bei der ablaufenden Reaktion um eine Substitutionsreaktion, genauer gesagt um eine säurekatalysierte nucleophile Substitution am gesättigten Kohlenstoff. Der Versuch basiert auf den unterschiedlichen Substitutionsgeschwindigkeiten der OH-Gruppe durch Chlorid-Ionen. Das Chlorid-Ion (Cl-) hat einen pKB – Wert von 20, denn allgemein gilt (pKS + pKB = 14) 114. Der pKB kann demnach aus dem pKS – Wert der Salzsäure, der in der Literatur mit – 6 angegeben ist, einfach errechnet werden. Da sich die Nucleophilie proportional zur Basizität des Teilchens verhält, lässt sich daraus folgern, dass das Chlorid aus eigener Kraft wohl nicht die Hydroxygruppe verdrängen und damit die Substitution einleiten kann.115 und 116 Durch die Zugabe der konzentrierten Salzsäure (HCl(konz.)) HCl (aq) + H2O + H3O (aq) + Cl (aq) Abb.1: Reaktion von Salzsäure mit Wasser wird die schlechte Abgangsgruppe OH-, welche durch Chlorid substituiert werden soll, durch das sich bildende (H3O+) Oxonium-Ion (Abb.1) zunächst protoniert (Abb.2). H R O (l) + H3O H + + (aq) R O (aq) + H2O H Abb.2: Protonierung der Hydroxygruppe Daraus entsteht nun die deutlich bessere Abgangsgruppe Wasser, so dass im nächsten Schritt die Substituierung eingeleitet werden kann. 114 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.327. Vgl. INT.2, S.91. 116 Vgl. Brückner, S.57. 115 111 III. Alkanole Experimenteller Teil H + R O H (aq) + Cl - R (aq) Cl (l) + H2O Abb.3: Substitutionsreaktion und Wasserabspaltung Das verwendete Zinkchlorid (ZnCl2) des Lucas-Reagenz hat gleich zwei Aufgaben. Es erhöht die Reaktivität des Alkohols und die der Salzsäure, denn Zinkchlorid allein reagiert in wässriger Lösung - wie auch die Salzsäure - sauer. Der Grund ist, dass es sich aus einer Kationensäure, dem (Zn2+ - Kation) und der schwachen Anionenbase Chlorid zusammensetzt.117 Doch die Kombination von Salzsäure und Zinkchlorid lässt noch zusätzlich das tetraetrisch aufgebaute Tetrachlorozinkat-Anion [ZnCl4]2- sowie 2 H+ entstehen.118 und 119 Ohne die Anwesenheit von Zinkchlorid würde eine Reaktion wohl lediglich bei dem gut zu stabilisierenden tertiären Alkohol (tert.Butanol) ablaufen. Doch so wird auch die Substitution am sekundären Alkohol eingeleitet. Die beschriebenen Reaktionsschritte lassen sich wie folgt zusammenfassen: R O - H2O H H + +H R schnell O + R H + + ClR Cl + H2O langsam schnell Abb.4: Reaktionsschritte im Überblick Nun gilt es zu verstehen in wie weit sich die unterschiedlichen Alkylgruppen der drei Alkohole (hier mit R dargestellt) auf die Reaktivitäten auswirken. Dies erklärt dann auch die unterschiedlichen Reaktionsgeschwindigkeiten der Substitutionsreaktion. 120 117 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.332. Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.684. 119 Vgl. INT.1. 120 Vgl. INT.2. 118 112 III. Alkanole Experimenteller Teil Tertiäre Alkohole, wie das verwendete tert. Butanol (Vgl. Abb.5) reagieren nach einem SN1 – Mechanismus (Abb.6a); das heißt: nach einem Zeitgesetz 1. Ordnung. Das tert.Butanol (auch 2-Methylpropan-2-ol genannt), hat folgende Struktur: OH C H3C H CH3 H C C C H OH H +I H CH 3 CH3 H (l) (l) Abb.5: Tert.Butanol H3C H3C C OH + H3O H3C + - H2O H3C H3C H3C H C O + CH3 - H2O + Cl C H H3C CH3 Carbeniumion/ tert. Butanol CH3 + Cl- Carbokation C CH3 CH 3 2-Chlor-2-Methyl-Propan Abb.6a: Reaktionsmechanismus der SN1 – Reaktion Die nach einem SN1 – Mechanismus ablaufende Reaktion läuft sehr schnell ab, so dass sich beinahe augenblicklich eine Trübung und Phasentrennung zeigt. Der Angriff des nucleophils - Chlorid auf das Carbenium-Ion (siehe Abb.6b) kann von beiden Seiten erfolgen. Der Grund ist, dass dieses Carbenium-Kation ein leeres p – Orbital aufweist, welches senkrecht zur Ebene, die durch die Substituenten aufgespannt wird, liegt. CH3 + H3C C CH3 Abb.6b: Darstellung des leeren p-Orbitals im Carbenium-Ion. Daher ist auch ein Angriff durch ein Nucleophil wie die des Chlorids von beiden Seiten gleich wahrscheinlich. Dies hat dann auch einen Verlust der stereochemischen Information zur 113 III. Experimenteller Teil Alkanole Folge. Dies gilt natürlich nur insofern, wenn zuvor ein stereochemisches Zentrum vorgelegen hat. In dem gezeigten Beispiel des verwendeten Eduktes tert.Butanol war dies nicht der Fall. Die unterschiedlichen Reaktionsgeschwindigkeiten primärer, (hier Propan-1-ol), sekundärer (hier Propan-2-ol) und tertiärer (hier tert.Butanol) Alkohole, kommt durch die unterschiedlich gute Stabilisierung der Carbenium-Ionen; die zwischenzeitlich gebildet werden, zustande. Es gilt; je besser dieses Carbenium-Ion stabilisiert ist, desto leichter bildet es sich. Tertiäre Alkohole reagieren ausschließlich und sehr schnell nach einem SN1Mechanismus, bei sekundären Alkoholen sind die Reaktionsbedingungen entscheidend und primäre Alkohole wie das Propan-1-ol können überhaupt nicht nach einem SN1Mechanismus reagieren. Der primäre Alkohol (Propan-1-ol (Vgl. Abb.7)), der keine Reaktion mit dem Lucas-Reagenz zeigt, reagiert nicht nach einem SN1 Mechanismus. Bei primären Alkoholen wäre allerdings eine Reaktion nach einem SN2 Mechanismus denkbar (Vgl. Abb.8). Bei einer SN2-Reaktion handelt es sich um eine Einstufenreaktion, bei der beide Reaktionspartner am Primärschritt beteiligt sind. Sie verläuft bimolekular. Das Nucleophil greift dabei das Kohlenstoffatom von der gegenüberliegenden Seite der Abgangsgruppe an. Dieser Angriff ist bei einem primären Alkohol aufgrund der geringeren sterischen Hinderung gegenüber einem tertiären Alkohol begünstigt. Da das Propan-1-ol trotz des denkbaren SN2 Mechanismus keine Reaktion zeigt, liegt daran, dass SN2-Reaktionen durch starke Nucleophile und aprotisch polare Lösungsmittel begünstigt werden. Wasser, das hier als Lösungsmittel verwendet wird, ist hingegen ein protisch polares Lösungsmittel. Daher wird so ein möglicher SN2 Mechanismus behindert. Eine Reaktion mit dem primären Alkohol bleibt trotz des denkbaren S N2 Mechanismus aufgrund der ungünstigen Reaktionsbedingungen aus. Protische Lösungsmittel, wie das verwendete protisch polare Wasser, begünstigen auch noch zusätzlich den SN1 Mechanismus. 114 III. Alkanole Experimenteller Teil Propan-1-ol: -I H3C OH H H H H C C C H H OH (l) H (l) Abb.7: Propan-1-ol Bei Propan-1-ol handelt es sich um einen primären Alkohol. Das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe (-OH) trägt, ist nur mit einem weiteren C – Atom verbunden. Es liegt also keine große sterische Hinderung für den Angriff des Nucleophils vor. H H C H3C H H C + H3O Cl H - H2O H + C H3C H3C C H O H H - H2O Cl C H OH + H H H H Propan-1-ol H + Cl- H O C H3C H H C H H Übergangszustand 1-Chlor-Propan Abb.8: Reaktionsmechanismus der SN 2 – Reaktion des primären Alkohols Propan-1-ol Der mögliche SN2 Mechanismus läuft folgendermaßen ab: Nach dem die Hydroxygruppe protoniert und somit zu einer geeigneten Abgangsgruppe wird, entsteht durch Angriff des Nucleophils Chlorid ein trigonal-bipyramidaler Übergangszustand. In diesem Übergangszustand sind die Bindungen zum Wasser noch nicht vollständig gelöst und die zum Chlorid noch nicht vollständig geknüpft. Durch die Wasserabspaltung wird dann das Produkt 1-Chlor-Propan erhalten. Bei SN 2 - Reaktionen treten das angreifende Nucleophil und die Abgangsgruppe gleichzeitig ein bzw. aus. Die Entscheidung, wann die Reaktion nach SN 1 und wann SN 2 abläuft, hängt von verschiedenen Faktoren ab. Zum einen von der Art des Lösungsmittels, der Nucleophilie des angreifenden Teilchen sowie von zwei weiteren wichtigen Faktoren die bei dieser Reaktion entscheidend sind: Nämlich zum einen, wie stabil das gebildete Carbenium-Ion ist und zum anderen, in welcher sterischen Umgebung sich das angegriffene Kohlenstoffatom befindet. 115 III. Alkanole Experimenteller Teil So bilden sich leicht stabile Carbenium-Ionen wie das tert. Butylkation, das während der SN 1 Reaktion entsteht. Aufgrund dieser relativ hohen Stabilität sowie des polaren protischen Lösungsmittels wird eine Reaktion über einen SN1 Mechanismus begünstigt. Carbenium-Ionen, die sich aus primären Alkoholen - wie dem theoretisch denkbaren Propylkation - bilden könnten, entstehen nicht, da ihre Bildung zu viel Energie benötigen würde. Sie laufen daher bei geeigneten Reaktionsbedingungen nach einem S N 2 – Mechanismus ab. CH3 CH3 + + C H3C H > H3C C >> + H3C H CH3 C H Abb.9: Stabilität verschiedener Carbenium-Ionen Der andere beeinflussende Faktor, der den Mechanismus nach dem die Reaktion abläuft mit bestimmt, ist die sterische Umgebung des Kohlenstoffatoms, das die Hydroxygruppe trägt. Je größer diese sterische Hinderung für einen nucleophilen Angriff ist, umso unwahrscheinlicher wird eine Reaktion des Typs SN2. Tertiäre Kohlenstoffatome - wie das im tert.Butanol - reagieren nicht mehr nach SN 2,121 so dass ein SN1 – Mechanismus begünstigt ist. Abb.10: Sterische Effekte auf die SN 2-Reaktivität 122 121 122 Vgl. Brückner, S.68. Vgl. Brückner, S.68. 116 III. Alkanole Experimenteller Teil In Abb.10 werden die sterischen Wechselwirkungen der Substituenten dargestellt. Während im tetraetrischen System lediglich 3 Wechselwirkungen in der Größenordnung von ca.109° zu berücksichtigen sind, wächst diese Zahl auf 6 Wechselwirkungen in der Umgebung des angegriffenen Kohlenstoffatoms. Nicht nur die Zahl nimmt zu, sondern es kommt zusätzlich zu einer Winkelkomprimierung auf nur noch 90°. Die erhöhten sterischen Wechselwirkungen bei voluminösen Substituenten destabilisieren demnach den Übergangszustand. Es erhöht sich zudem noch die Aktivierungsenergie EAkt. Daraus resultiert dann eine Verminderung der Geschwindigkeitskonstanten kSN2. . . + C . +H H . . O -H + . C O . + H H +C l -C l O + H2 Bildung des Carbeniumkations O - H2 . langsamster Schritt . + Cl C . Durch Chloridangriff: Ausbildung eines Übergangzustandes . . + Cl- . . C . Gleichzeitiger Cl- – Ein und H2O – Austritt. - H2O Sehr schneller, kaum messbarer Verlauf . H O .. H . Cl C . Cl Beim langsamsten Schritt, dem Am geschwindigkeitsbestimmenden Schritt geschwindigkeitsbestimmenden Schritt, ist sind zwei Molekülarten beteiligt: nur eine Molekülart (hier H2O) beteiligt. (H2O und Cl-) = = > Monomulekulare Reaktion = = > Bimolekulare Reaktion Zeitgesetz 1. Ordnung gilt. Zeitgesetz 2. Ordnung gilt. Abb.11: Schematische Darstellung der ablaufenden SN1 - und SN2 - Reaktionen 117 III. Alkanole Experimenteller Teil Nach welchem Mechanismus die Reaktionen von sekundären Alkoholen, wie dem in Abb.11 dargestellten Propan-2-ol erfolgt, hängt stark von den Versuchsbedingungen ab. So wäre sowohl ein SN1-als auch ein SN2-Mechanismus denkbar. In diesem Fall bildet sich aus dem Propan-2-ol das 2-Chlor-Propan. Der sekundäre Alkohol reagiert dabei schon nach wenigen Minuten; der entstehende Chlorkohlenwasserstoff trübt zunächst die Lösung, scheidet sich dann aber als wasserunlösliche Phase ab. Dies ist an der Tröpfchenbildung in der Lösung zu erkennen. Propan-2-ol: OH C H3C H H H C C C H OH H 0 H H CH 3 (l) H (l) Abb.11: Propan-2-ol Propan-2-ol stellt einen sekundären Alkohol dar. Hier ist das Kohlenstoffatom, das die OH – Gruppe trägt, mit 2 weiteren Kohlenstoffatomen verbunden. Man spricht daher von einem sekundären Kohlenstoffatom. Die Unterscheidung der drei Alkohole in primär, sekundär und tertiär kann demnach durch die unterschiedlich schnell ablaufenden Reaktionen getroffen werden. Am schnellsten reagiert der tertiäre Alkohol (hier das tert.Butanol) gefolgt vom sekundären Alkohol (dem Propan-2-ol). Gar nicht reagiert der primäre Alkohol (Propan-1-ol) mit dem Lucas-Reagenz. Die nach der Trübung auftretende Phasentrennung lässt sich durch den stärker unpolaren Charakter der entstehenden Halogenalkane erklären. Diese sind aufgrund ihrer stärker unpolaren Struktur schlecht im polaren Medium Wasser mischbar und daher teilweise wasserunlöslich. Als wichtig anzumerken ist, dass für diesen Versuch nur Alkohole verwendet werden können, die sich mit wässrigen Lösungen mischen lassen. Langkettige, wasserunlösliche Alkohole können daher nicht verwendet werden. 118 III. Alkanole Experimenteller Teil Didaktische Auswertung: Dieser Versuch kann zusammen mit dem Versuch zur Oxidation von Alkoholen durch Kaliumpermanganat gut zur Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole verwendet werden. Er ist einfach und unkompliziert. Die unterschiedlichen Reaktionsgeschwindigkeiten, die auf die unterschiedlichen Reaktionsmechanismen und die unterschiedlichen Strukturen der Alkohole zurückgehen, werden in dem Versuch deutlich. Er kann sowohl im Lehrerversuch zur Demonstration, als auch - wie man bei HessGISS 08/09 nachlesen kann - aufgrund der geringen Giftigkeit als Schülerversuch durchgeführt werden. Der Versuch ist aber aufgrund des theoretischen Hintergrundes - auf dem er basiert - sehr zu empfehlen. Bei dieser Gelegenheit auf die verschiedenen Reaktionsmechanismen der nucleophilen Substitution nach SN1 und SN2 eingegangen werden. Des Weiteren können die Mechanismen der Reaktionen, wie auch die Faktoren, die einen bestimmten Mechanismus begünstigen oder behindern, beispielhaft besprochen werden. Falls dies schon im Themengebiet der Halogenalkane behandelt wurde, wäre das eine Auffrischung. Dieser Versuch sollte meiner Meinung nach im Themenfeld der Alkohole unbedingt durchgeführt werden, da er inhaltlich als wertvoll zu bezeichnen ist. Entsorgung: Die Lösungen müssen neutralisiert werden und können anschließend neutral im organischen Abfall entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT 1: http://www.chids.de/dachs/experimente/003unterscheidung_prim_sek_ter_alkohole.xml (Zugriff: 08.01.2010). INT 2: http://www.chm.tu-dresden.de/oc/med/WS06_07/v7.pdf (Zugriff: 08.01.2010). INT.3: http://www.chemgapedia.de/vsengine/supplement/Vlu/vsc/de/ch/2/vlu/alkohole/alkohole _reaktionen.vlu/Page/vsc/de/ch/2/oc/stoffklassen/systematik_funktionelle_gruppen/alkoho le/substitution.vscml/Fragment/d8007a3e2112f7698ad1e116620f15bc-f.html (Zugriff: 23.01.2010) 119 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 11: Unterscheidung Ethanol und Methanol durch Borsäure Zeitaufwand: Materialien : Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 2 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten 2 Porzelanschalen Spatel 1 Messpipetten Streichholz Becherglas 100 mL 2 Glasstäbe 1 Pipette Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Borsäure *** H3BO3 (s) T R: 60-61 Spatel- Zusatz: S: 53-45 spitze Fortpflanzungsgefährdend Fruchtschädigend R: 11-23/24/25Methanol * CH3OH (l) T 39/23/24/25 ,F S: 7-16-36/37- Zusatz: Ersatzstoffprüfung durchführen Ethanol (w = 96 %) CH3CH2OH (l) 45 R: 11 F S: 7 - 16 * * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 5 mL 5 mL 123 *** keine Schülerexperimente erlaubt 123 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 120 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: Spatel mit Borsäure Messpipette mit Ethanol Porzellanschalen Porzellanschalen 3.Schritt Porzellanschalen mit Alkohol/Borsäure Gemisch Streichholz Durchführung: 124 ACHTUNG: Der Versuch sollte auf Grund der Toxizität der eingesetzten Substanzen in jedem Fall im Abzug durchgeführt werden. 1. Pipettiere mit Hilfe einer Messpipette 5 mL in die erste der beiden Porzellanschalen. Pipettiere in die zweite Schale 5 mL Methanol. 2. Gib zu jedem der beiden Alkohole jeweils zwei Spatelspitzen Borsäure. Vermische alles durch rühren mit einem Glasstab. 3. Entzünde mittels Streichholzes den Dampf. 124 Vgl. INT.3. 121 III. Alkanole Experimenteller Teil Beobachtungen: Die beiden Alkohole sind wasserähnliche, klare Flüssigkeiten. Auch nach Zugabe der Borsäure ist zunächst kein Unterschied zu erkennen. Ethanol in Schale 1 verbrennt mit einer gelblichen, Methanol in Schale 2 mit einer grünen Flamme. Bei der Verbrennung des Reaktionsgemisches in Schale 2 ist eine leichte Rauchentwicklung zu erkennen. Diese ist allerdings kein schwarzer, rußender Rauch. Fachliche Auswertung: Ethanol reagiert unter diesen Bedingungen nicht mit der Borsäure, sondern liegt unverändert als Alkohol vor. In diesem existiert eine C-C Bindung. Bei der Verbrennung entsteht neben den Hauptbestandteilen Wasser und Kohlendioxid auch noch Ruß, der in der Flamme gelb glüht. Daher verbrennt Ethanol unter typisch gelber Flamme. Schale 1: H OH -I C H -III C 0 + 3 O2 H H +VI -II -II 2 CO2 + 3 H2O (g) (g) (g) (g) H Abb.1: Verbrennungsreaktion von Ethanol Methanol hingegen reagiert auch bei Abwesenheit eines Katalysators mit der Borsäure. Es bilden sich verschiedene Borsäuremethylester (1 – 3 fach substituiert). Diese verbrennen aufgrund des hohen Boranteils mit kräftig hellgrüner Flamme. Da in dieser Verbindung keine C-C – Bindungen vorliegen, kann bei der Verbrennung bei ausreichender Sauerstoffzufuhr kein Ruß entstehen. Schale 2: H3C -II O CH3 -II B 0 O + 9 O2 (g) 2 +III +IV -II 6 CO2 (g) + 9 H2O (g) + B2 O 3 (s) O -II CH3 (g) Abb.2: Verbrennungsreaktion von Methanol 122 III. Alkanole Experimenteller Teil Wie die Reaktionsgleichung zur Verbrennungsreaktion zeigt, entsteht festes Boroxid (B 2O3), welches durch die heißen aufsteigenden Gase als Aerosol mitgerissen wird. Dies sorgt für die leicht weißrauchende Flamme.125 H H3C H HO O OH + O (l) H - B B + CH3 O HO OH OH (l) (aq) (aq) - H 2O H3C O CH3 B H3C O O B Weiterreaktion O CH3 möglich OH HO (aq) (aq) Borsäuretrimethylester Borsäuremethylester Abb.3: Mechanismus der Veresterung von Borsäure mit Methanol Das freie elektronenpaar der Hydroxygruppe des Methanols greift bei dieser Reaktion das elektronenarme Boratom der Borsäure nucleophil an. Dadurch entsteht das tetraetrische Zwischenprodukt. Nach der Wasserabspaltung entsteht der einfach veresterte Methylester der Borsäure. Im Folgenden sind Reaktionen mit den übrig gebliebenen OH – Gruppen der Borsäure nach dem gleichen Mechanismus möglich. Als Produkt entsteht dann zusätzlich Borsäuredimethylester und Borsäuretrimethylester. Würde man zusätzlich einige Tropfen konzentrierter Schwefelsäure, die als Katalysator fungieren kann, zugeben, würde auch das Ethanol mit der Borsäure zu einem Ester reagieren. 125 Vgl. INT.1. 123 III. Alkanole Experimenteller Teil Borsäure, genauer die Orthoborsäure,126 ist eine schwache einprotonige Säure, (pKS = 9,28).127 Sie wirkt allerdings nicht selbst als Protonendonator, wie die Schreibweise H 3BO3 den Anschein erwecken könnte, sondern als Lewis-Säure. Sie ist demnach ein Elektronenpaarakzeptor128. So reagiert sie mit Wasser nach folgender Reaktionsgleichung: H3BO3 (s) + 2 H2O B(OH) 4 (aq) + H3O + (aq) Abb.4: Reaktion von Borsäure mit Wasser129 Mechanistisch ist es ein nucleophiler Angriff des freien Elektronenpaars des Wassers auf das elektronenarme und damit als Lewis-Säure auftretende Boratom der Borsäure. H O H H B H O + O O H2O H - B O + O +H (aq) H O O H H H (aq) Abb.5: Reaktion von Borsäure mit Wasser Didaktische Auswertung: Dieser Versuch kann aufgrund der Toxizität der verwendeten Stoffe nur als Demostrationsversuch durch den Lehrer durchgeführt werden. Er sollte in jedem Fall im Abzug durchgeführt werden! Doch trotz der Giftigkeit der eingesetzten Substanzen (Borsäure und Methanol) sollte der Versuch seinen Platz im Unterricht finden, da er nicht aufwändig ist, eindeutige Ergebnisse liefert und mechanistisch auf wichtige Veresterungsreaktionen eingeht. Diese könnte an dieser Stelle besprochen werden, oder dann ausführlich im Themengebiet der Carbonsäuren. Des Weiteren wird hier die Orthoborsäure verwendet die eine Säure ist - hier jedoch nicht im eigentlichen Broenstedtschen Verständnis von Säuren auftritt sondern als Elektronenpaarakzeptor und demnach als Lewis – Säure gilt. Nun könnte an dieser Stelle, falls dies nicht schon zuvor 126 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.579. Vgl. INT.2. 128 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.580. 129 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.580. 127 124 III. Experimenteller Teil Alkanole geschehen ist, mit Hilfe der Reaktionsgleichung eine andere Betrachtungsweise der Säure – Base-Chemie den Schülern anschaulich gemacht werden. (Abb.4) Entsorgung: Die Lösungen können einfach ausbrennen. Evtl. zurückbleibende Rückstände können mit Wasser aufgenommen und neutral im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.ph-heidelberg.de/wp/schallie/minilab/borest.htm (Zugriff: 04.04.2010). INT.2: http://www.chemieonline.de/labor/pkx.php?action=liste&typ=2&buchstabe=B (Zugriff: 04.04.2010). INT.3: http://www.thomasmusolf.de/fuer_schueler_und_eltern/Chemie/Klasse%2010%20Kohlenst offchemie/V%20Alkanole/Methanol%20Ethanol.htm (Zugriff: 04.04.2010). 125 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 12: Vergleich zwischen Alkoholen und Phenolen am Beispiel von Ethanol und Phenol Zeitaufwand: Materialien : Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 3 Minuten Pro Gruppe: 2 Reagenzgläser Spatel 2 Pipetten mit Hüttchen Reagenzglasgestell Becherglas 50 mL Becherglas 100 mL Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Ethanol (w = 96 %) CH3CH2OH (l) R: 11 F S: 7 - 16 * 3 mL R: 23/24/25-34— Phenol * C6H5OH (s) T ,C 48/20/21/22-68 Zusatz: S: 24/25-26-28.6- Erbgutverändernd (Kat.M3), 0,5 g 36/37/39-45 Gefahr durch Hautresorption Eisen(III)-Chlorid * Dest. Wasser R: 22-34 FeCl3 (s) C H2O - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 130 S: 26-27-36/37/39 - 5g 95 mL 130 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 126 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt: 2. Schritt: Eisen(III)-Chlorid Lösung Phenol - Lösung 1.RG 2.RG Ethanol 1.RG Ethanol 2.RG Phenol - Lösung Durchführung: 131 Herstellen der Lösungen: Eisen(III)-Chlorid – Lösung: Löse in einem 100 mL Becherglas 5 g Eisen(III)-Chlorid in 45 mL Wasser, rühre anschließend mit einem Glasstab, bis sich alles gelöst hat. Phenol – Lösung: In einem 50 mL Becherglas werden 0,5 g festes Phenol in 50 mL dest. Wasser durch schütteln gelöst. 1. Gib in ein Reagenzglas 3 mL Ethanol und in ein weiteres 3 mL Phenol – Lösung. 2. Gib anschließend 15 Tropfen der Eisen(III)-Chlorid – Lösung hinzu. 131 Vgl. INT.2 und INT.3. 127 III. Alkanole Experimenteller Teil Beobachtungen: Ethanol - wie auch die wässrige Phenollösung - sind klare, farblose Flüssigkeiten. Nach Zugabe der Eisen(III)-Chlorid Lösung färbt sich der Inhalt in Reagenzglas 1, das mit Ethanol gefüllt ist, in der typisch gelben Farbe des Eisenchlorids. Bei Zugabe des Eisen(III)-Chlorids zur Phenol – Lösung ist hingegen eine intensive Blaufärbung zu erkennen. Die Blaufärbung ist als Dunkelblau zu beschreiben. Fachliche Auswertung: Phenol, auch Monohydroxybenzol genannt, ist relativ gut wasserlöslich. Es können bei 25°C ca. 87 g pro Liter Wasser gelöst werden.132 Bei dem Hydroxy – Derivate des Benzols handelt es sich - anders als den auf den ersten Blick verwandten Alkoholen - um eine Säure. Sie weist einen pKS von 10 auf; Ethanol hingegen nur einen pKS von 16. Damit wirken Phenole deutlich acider als Alkohole. Der Grund für die Acide – Wirkung der Hydroxygruppe ist deren Wechselwirkung mit dem delokalisierten 𝝅 – Elektronensystem des aromatischen Ringes.133 O H O H O O H H Abb.1: Grenzformel des Phenols Durch diese Wechselwirkung, die durch die in Abb.1 dargestellte Grenzformel beschrieben werden kann, wird die Polarität der der O – H Bindung verstärkt, so dass eine Protonen Abgabe vereinfacht wird. Die Reaktion des Phenols mit Wasser lässt sich folgendermaßen beschreiben: O H O H H + O + + H O H H Abb.2: Reaktion von Phenol mit Wasser – Protolyse des Phenols 132 133 Vgl. INT.1. Vgl. Asselborn et al., S.286 128 III. Alkanole Experimenteller Teil Ein weiterer Grund für das Acide – Verhalten der Phenole ist in der hohen Stabilität des entstehenden Phenolat – Ions zu suchen.134 O O O O Abb.3: Grenzformel des Phenolat Anions Wie in Abb.3 zu erkennen ist, ist die entstehende negative Ladung über das ganze Molekül delokalisiert, was dessen Stabilität erklärt. Anders ist das bei den Alkoholationen, die aus den Alkoholen entstehen. Hier ist die negative Ladung lediglich am Sauerstoffatom lokalisiert, so dass sie nicht derart stabil sind. Aus diesem Grund sind Alkoholate starke Basen. Da sich Alkohole und Phenole in ihren Eigenschaften doch stärker unterscheiden als dies auf den ersten Blick der Fall ist, werden diese aromatischen Systeme, die eine oder mehrere Hydroxygruppe tragen, in einer eigenen Stoffklasse zusammengefasst. Sie trägt den Namen des einfachsten Vertreters, Phenol. Sie werden daher Phenole genannt und zählen somit nicht zur Gruppe der Alkohole. Weitere Bespiele für Phenole sind: OH OH OH OH OH OH Phenol 1,3 - Dihydroxybenzol (Resorcin) HO 1,2 - Dihydroxybenzol OH 1,3,5 - Trihydroxybenzol Abb.4: Verschiedene Phenole Die intensive Farbreaktion, die nach Zugabe der Eisen(III)-Lösung zur phenolhaltigen Lösung zu beobachten ist, ist auf die Bildung eines Komplexes zwischen Phenol und Eisen(III) 134 Vgl. Asselborn et al., S.286 129 III. Alkanole Experimenteller Teil zurückzuführen.135 Für diese Komplexbildung spielt ebenfalls der saure Charakter (das Vermögen des Phenols in wässriger Lösung ein Proton abzuspalten) eine wichtige Rolle. So ist es in der Folge möglich, dass Phenol mit der harten Lewissäure Eisen(III) über das negativ geladene Sauerstoffatom des Phenols einen Komplex auszubilden vermag. Dieser Komplex könnte in wässriger Lösung folgende Gestalt haben und als Hexaphenolatoferrat(III) bezeichnet werden: 3- O O Fe O 3- PhO O OPh PhO Fe O PhO OPh OPh O vereinfachte Darstellung Abb.5a: Möglicher Hexaphenolatoferrat(III)-Komplex Bei der abgebildeten Darstellung handelt es sich jedoch um einen hypothetischen Komplex, der kristallographisch mittels Röntgenstrukturanalyse in dieser Art nicht nachgewiesen wurde.136 Da die Reaktion in wässriger Lösung stattfindet, sind auch Komplexe denkbar, bei denen die Phenolationen als Liganden durch Wasser-Liganden substituiert sind. So wären auch unter anderem die folgenden beiden Komplexe möglich: 135 136 Vgl. INT.2. Vgl. Suchanfrage CSD Database. 130 III. Alkanole Experimenteller Teil O H2O O H2O OH 2 Fe O OH 2 Fe O O O OH 2 O Abb.5b: mögliche Aqua, Phenol-Eisen(III)-Komplexe Der in Abb.5a dargestellte theoretisch denkbare Hexaphenolatoferrat(III)-Komplex - wie auch die beiden in Abb.5b dargestellten Eisen(III) – Komplexe, wären allerdings Oxidationsmittel. Der Grund ist, dass ihm zum Erfüllen der 18-Elektronenregel 1 Elektron fehlen würde. Diese Regel besagt, dass die im Periodensystem der Elemente vor einem Edelgas stehenden Übergangselemente der Langperiode bestrebt sind, durch die Aufnahme von Elektronen durch die Komplexbildung die 18 Außenelektronen - wie im Edelgas - zu erreichen.137 Diese kann dann allgemein als (d10s2p6) beschrieben werden. Die 18-Elektronenregel wurde von 1923 von Sidgwick aufgestellt und lässt sich durch viele stabile Komplexe - die dieser Regel gehorchen - bestätigen. So zum Beispiel das Ferrocen: Abb.6: Sandwichkomplex - Ferrocen 138 137 138 Vgl. Holleman Wieberg, 102. Aufl., S.1349. Vgl. Deckwer et al.. 131 III. Alkanole Experimenteller Teil Ferrocen setzt sich formal aus einem Eisen(II) – Kation und zwei Cyclopentadien - Anionen zusammen (C5H5-) (Vgl. Abb.7). Dieses, als aromatisches Anion zu bezeichnende Molekül kann wie folgt aus Cyclopentadien dargestellt werden:139 H H +I - H 0 + Na +I 0 + Na + 1/2 H2 .... Abb.7: Darstellungs Möglichkeit des Cyclopentadien - Anions Ferrocen bildet sich bei Reaktion zweier Cyclopentadien – Anionen mit Eisen(II) unter Bildung von – Komplexen, das in Abb.6 dargestellt ist. Der (C5H5-)-Ligand ist hierbei über seine – Elektronen (6e-) mit dem Eisen(II) Atom verbunden. Da jeder der Liganden jeweils 6 Elektronen mit in den Komplex bringt, sowie das Eisen(II)-Atom ebenfalls 6 Elektronen zur Verfügung hat, erfüllt dieser Komplex die 18-Elektronenregel. Dies erklärt auch die extrem hohe Stabilität dieser „außergewöhnlichen“ Verbindung. Es handelt sich beim Ferrocen um eine diamagnetische, kristalline Substanz, die sich erst oberhalb von 500 °C zersetzt.140 Eine weitere Verbindung, die aufgrund der Erfüllung der 18-Elektronenregel sehr stabil ist, ist das Bisbenzolchrom. Hierbei handelt es sich um einen Komplex aus elementarem Chrom, dass selbst 6 Elektronen mitbringt mit zwei Benzolringen, (die ebenfalls jeweils mit ihren 6 Pi – Elektronen beteiligt sind), somit ergibt sich wieder die Summe von 18 Elektronen. Abb.8: Bisbenzolchrom 139 140 Vgl. Mortimer, S.550. Vgl. Mortimer, S.550. 132 III. Alkanole Experimenteller Teil Aufgrund des harten Eisen(III)-Ions ist nicht zu erwarten, dass sich eine Art SandwichKomplex - wie beispielsweise im Ferrocen - bildet, da die 18-Elektronenregel141 bei einem solchen Komplex nicht erfüllt würde, sowie das ein Komplex durch die Bildung einer Bindung der harte Lewissäure Eisen(III) mit dem aromatischen Ring des Phenols als eher unwahrscheinlich anzusehen ist. Gerade vor dem Hintergrund, dass ein negativ geladenes Sauerstoffatom als Donoratom zur Verfügung stehen könnte - was eher als Donoratom mit dieser harten Lewissäure Eisen(III) in Verbindung tritt - als die Elektronen des aromatischen Systems. Ein Indiz hierfür ist, in Tab. 118 wie im Lehrbuch Holleman-Wieberg, dargestellt, das ein möglicher Phenolligand über das Sauerstoffatom als Donoratom auftritt.142 Diese Annahme wurde auch durch die Suchanfrage an die CSD – Datenbank vom 23.03.2010, die auf dem Stand vom Feb.2010 ist, bestätigt. In dieser Anfrage wurden keine -Komplexe zwischen Eisen(III) und Phenol gefunden die bisher kristallographisch aufgeklärt sind.143 Dass es solche - Komplexe mit Phenol jedoch grundsätzlich gibt, wurde in derselben Suchanfrage bestätigt. Diese sind jedoch nur mit „weicheren“ Lewissäure wie Rh(I), Ru(I) oder Cr (0) bekannt. Ein Beispiel für einen solchen Komplex ist: Cp* CF 3 Ru HO SO3 - + OH Abb.9: (5-Pentamethyl-cyclopentadienyl)(6-1,4-hydroquinone)-ruthenium-trifluoromethanesulfonate144 141 Vgl. Holleman Wieberg, 102.Aufl., S.1349. Vgl. Holleman Wieberg, 102.Aufl., S.1317. 143 Vgl. Suchanfrage CSD Database. 144 Vgl. Suchanfrage CSD Database. 142 133 III. Alkanole Experimenteller Teil Es gibt aber auch Eisen(III)-Komplexe, die die 18-Elektronenregel nicht erfüllen, jedoch trotzdem als einigermaßen stabil anzusehen sind. So zum Beispiel das oktaedrisch koordinierte [Fe(CN)6]3-. 145 Dieses ist - wie auch der denkbare Hexaphenolatoferrat – Komplex aus Abb.5 - ein Komplex der nur 17 Außenelektronen besitzt und damit als mildes Oxidationsmittel auftritt.146 Bei einigen Komplexen mit 17 Außenelektronen kommt es durch Knüpfung einer Metall – Metall Bindung zur Vervollständigung der 18 Außenelektronen beider Komplexe. So zum Beispiel im Mn(CO)5, das durch Knüpfung einer zusätzlichen Mn – Mn Bindung die 18 Elektronenregel erfüllt.147 Diese Art der Vervollständigung wird durch Dimerisierung erreicht (Vgl.Abb.9). CO OC CO OC Mn OC CO Mn CO OC OC CO (CO) 5Mn Mn(CO)5 Abb.10: Dimerisierung im [Mn(CO)5]2 Allgemein ist abschließend hervorzuheben, dass der in Abb.5a und 5b dargestellte Komplex nur eine hypothetische Möglichkeit für einen Eisen(III)Phenolkomplex darstellt, die jedoch keineswegs gesichert ist. Kristallographisch aufgeklärte Komplexe, bei denen der aromatische Ring über eine Bindung als Ligand auftritt, sind nur mit „weicheren“ Lewissäuren wie Ru(I) und Cr(0) bestätigt.148 Durch diese relativ einfache Reaktion ist eine Unterscheidung zwischen Ethanol und Phenol möglich. Ein anderer möglicher Weg, der zur Unterscheidung genutzt werden könnte, ist die Reaktion beider Substanzen mit Wasser. So bleibt der pH-Wert bei Ethanol – Wasser annähernd konstant, während eine Phenol-Wasser Lösung sauer wird und einen niedrigen pH – Wert aufweist. 145 Vgl. Holleman Wieberg, 102.Aufl., S.1351. Vgl. Deckwer et al.. 147 Vgl. Holleman Wieberg, 102.Aufl., S.1351. 148 Vgl. Suchanfrage, CSD Database. 146 134 III. Experimenteller Teil Alkanole Didaktische Auswertung: Mit Hilfe dieser Reaktion kann effektvoll Ethanol von Phenol unterschieden werden, jedoch soll in dem Versuch mehr als nur die einfache Unterscheidung von Ethanol und Phenol demonstriert werden. Die Unterscheidung wäre mit Hilfe einer einfachen pH-Wert Messung einfacher möglich. Des Weiteren kann nach Zugabe des Phenols zum Wasser durch eine einfache pH – Wert Messung auf das Acide Verhalten dieser Verbindungsklasse eingegangen werden, vergleichsweise wie auch bei der vereinfachten Variante der pH – Wertmessung. Entsorgung: Die Lösungen können neutral in den Behälter für organische Abfälle entsorgt werden. Literatur: Suchanfrage CSD Version 5.31 update (Feb.2010). Internetquellen: INT 1: http://www.ineosphenol.de/eCommerce/msds_pdf/europe_german/IPH_PHS_EUR_G.pdf (Zugriff:26.03.2010) . INT.2: http://www.chemieunterricht.de/dc2/phenol/v07-1.htm (Zugriff:26.03.2010) . INT.3: http://www.chids.de/dachs/expvortr/226Phenole_Conradi_Scan.pdf (Zugriff:26.01.2010) . 135 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 13: Alkoholische Gärung Zeitaufwand: Materialien : Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 5 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Variante 1: 2 PE – Spritzflaschen 500 mL 2 Mundstücke mit 2 durchbohrte Stopfen Rückschlagventil 1 Topf 1 Löffel Variante 2: 2 PE – Spritzflaschen 500 mL 2 Gärröhrchen 2 durchbohrte Stopfen 1 Topf Löffel (Feststofftrichter) Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Trockenhefe - * Haushaltszucker (Saccharose) * Wasser * Calciumhydroxid * C12H24O12 (s) H2O - - - - Jeweils 1 Päckchen Jeweils 1 Löffel R: 41 Ca(OH)2 Xi S: 22-24-26-39 * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 149 149 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 136 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: PE – Flasche 1 und PE - Flasche 3: PE – Flasche 2 und PE - Flasche 4: Spatel 1/3 lauwarmes Wasser Variante 1: Variante 2: Gärröhrchen Luftballon PE – Flasche gefüllt mit Wasser, Zucker und Hefe PE – Flasche gefüllt mit Wasser, Zucker und Hefe Topf mit warmem Wasser Topf mit warmem Wasser Durchführung: 150 Variante 1 und Variante 2 unterscheiden sich lediglich in der Nachweismethode: 1. Fülle je eine PE – Spritzflasche (ohne Spritzeinsatz) zu einem Drittel mit lauwarmem Wasser. 2. Fülle in jede PE – Flasche (1-4) ein Päckchen Trockenhefe (Verwendung eines Feststofftrichters vorteilhaft). 3. Gib zu Flasche 1 und 3 zusätzlich einen Esslöffel Haushaltszucker. (siehe Versuchsaufbau). 4. Stell die Flaschen in einen Topf mit lauwarmem Wasser. 150 Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al.. 137 III. Alkanole Experimenteller Teil Variante 1: 1. Verschließe die PE – Falsche mit einem Stopfen. Durch das Loch ein Mundstück das mit Hilfe eines PE – Schlauches mit einem Rückschlagventil verbunden ist. Darüber ist ein Luftballon gezogen. Rückschlagventil Mundstück Luftballon Stopfen Abb.1: Skizze des Aufsatz 2. Beobachte den Ballon beider Flaschen 3. Vergleiche. Variante 2: 1. Verschließe die PE – Falsche mit einem Stopfen, durch den ein Gärröhrchen geführt ist. Das Gärröhrchen ist mit einer klaren gesättigten Calciumhydroxid – Lösung gefüllt. 2. Vergleiche. Beobachtungen: Variante 1: Der über die 1. PE – Flasche gestreifte Ballon (die mit Trockenhefe und Zucker gefüllt wurde) beginnt sich nach kurzer Zeit zu füllen. Der Ballon, der über die 2. PE Flasche (die nur mit Trockenhefe gefüllt wurde) zeigt keine Veränderung. Variante 2: Die klare Flüssigkeit, die in das Gärröhrchen gefüllt wurde, trübt sich bei der 3. PE – Flasche nach kurzer Zeit. Keine Trübung ist in der Flasche 4 zu beobachten. Fachliche Auswertung: Trockenhefe ist ein gefriergetrocknetes Pulver aus Hefepilzen. Diese sich in Ruhe befindlichen Hefepilze werden durch den Kontakt mit warmem Wasser und Zucker wieder aktiv. Sie bekommen „Hunger“ und vermehren sich schnell. Ihre Nahrung ist der 138 III. Alkanole Experimenteller Teil Haushaltszucker, die Saccharose.151 Diese ist ein Disaccharid, das aus 2 monosacchariden Bausteinen - der Glucose und der Fructose - besteht. Dabei verstoffwechseln die Hefepilze die Monomeren Bestandteile und gewinnen aus dessen Abbau Energie. Als Abbauprodukte entstehen Kohlendioxid und Ethanol. Starkvereinfacht kann diese Reaktion durch folgende Gleichung dargestellt werden:152 [Hefepilze] C6H12 O 6 2 CO 2 (aq) Glucose (g) + 2 CH3CH 2OH (aq) Kohlendioxid Ethanol Abb.2a: stark vereinfachte Darstellung der alkoholischen Gärung Ethanol ist das Produkt einer relativ komplizierten chemischen Reaktion mit zahlreichen Zwischenschritten. Es bildet sich dabei über zehn Zwischenschritte aus der Glucose. In der Folge reagiert die sich zwischenzeitlich bildende Benztraubensäure unter Abspaltung von Kohlenstoffdioxid in mehreren Zwischenschritten zu Ethanal. Dieses wiederum wird dann letztlich zu Ethanol reduziert (Vgl.Abb.2b).153 OH O H HO H H - 4H H H3C 2 H OH OH Pyrovat decarboxylase O O OH H 2 H3C O - 2 CO2 OH H +I 2 H3C Alkohol dehydrogenase OH Oxidation O -I 2 H3C H H NADH + - + NAD + 2 e + 2 H |x2 Abb.2b: Schematische Darstellung der alkoholischen Gärung 151 Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al., S.17. Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al., S.18. 153 Vgl. INT.1. 152 139 III. Alkanole Experimenteller Teil Auf diese Art (alkoholische Gärung genannt) kann auf einfachem Wege Trinkalkohol dargestellt werden. Es ist der einzige zugelassene Weg für dessen Herstellung. Dieser Prozess der alkoholischen Gärung ist schon seit Jahrhunderten bekannt und findet in der Natur ganz ohne menschliches Zutun überall da statt, wo z.B. aufgeplatztes Obst oder süße Säfte bestimmten Bedingungen ausgesetzt sind. Der entstandene Ethanol kann mittels Geruchsprobe identifiziert werden. Die Lösung weist schon nach kurzer Zeit einen typischen Ethanolgeruch auf. Lässt man die Versuchsflasche des Versuchs über Nacht stehen und begutachtet diese am nächsten Tag erneut, ist der Geruch noch intensiver geworden. Dass bei der alkoholischen Gärung neben dem Ethanol noch ein Gas entsteht, wird im Versuch in Variante 1 an einen sich während der Reaktion füllenden Ballons gezeigt. Dieser füllt sich während der Reaktion stetig (ohne Rückschlagventil funktioniert dies allerdings nicht). Bei Variante 2 kann dann das entstehende Gas als Kohlendioxid identifiziert werden. Kohlendioxid reagiert mit einer gesättigten Calciumhydroxid-Lösung zu Kalk, welcher die zuvor klare Lösung trübt (Vgl.Abb.3a). Ca(OH) 2 (aq) + CO2 (g) CaCO3 (s) + H2O Abb.3a: Kohlendioxidnachweis durch Calciumhydroxid-Lösung Der größte Teil des in Deutschland hergestellten Ethanols wird nicht als Reinstoff gewonnen, sondern durch alkoholische Gärung hergestellt und in Form alkoholischer Getränke konsumiert. Die Menge des so in Deutschland in einem Jahr konsumierten Alkohols betrug 1993 700 Mio. Liter. Während für andere Zwecke im gleichen Zeitraum lediglich 300 Mio. Liter benötigt wurden.154 Technisch wird allerdings der größte Teil des weltweit benötigten Ethanols durch Hydratisierung von Ethen gewonnen. H3PO4 / SiO2 H2C CH2 (g) + H2O (g) 300 °C, 70 bar CH3CH2OH (g) Abb.3b: Reaktionsgleichung der technischen Ethanoldarstellung 154 Vgl. Asselborn et al., S.246. 140 III. Alkanole Experimenteller Teil In der Natur vermögen es Essigsäurebakterien den Ethanol mit Hilfe des Sauerstoffs der Umgebungsluft zu Essigsäure zu oxidieren. -I H3C -II 0 OH + O2 H2O + +III O -II H3C OH Abb.3c: Reaktion von Ethanol mit Sauerstoff Toxizität: Ethanol (der Trinkalkohol) bildet mit verschiedenen Aromastoffen und Wasser den Hauptbestandteil alkoholischer Getränke. Diese werden in Form von Weinen, Bieren, Spirituosen, Schaumweinen oder den vielen anderen Formen täglich in großen Mengen konsumiert. Dabei zählt Ethanol aufgrund seiner physiologischen Wirkung zu den Hypnotika. Ethanol in konzentrierter Form (w=0,96) wird als fruchtschädigend und fortpflanzungsgefährdent eingestuft.155 Ethanol ist giftig, daher findet er auch Anwendung in der Desinfektion. Die letale Dosis wird auf 0,4 % im Blut geschätzt.156 Die Stadien der Vergiftung reichen von anfänglicher Euphorie, Enthemmung, Redseligkeit, Desorientierung über Wahrnehmungsstörungen bis zum Koma und können bis zum Tod führen. Weitere Symptome können Halluzinationen, Delirium und dämmerartige Zustände sein. Ebenso tückisch ist die Tatsache das Ethanol die Blutgefäße erweitert und daher ein Wärmegefühl vortäuscht, jedoch tatsächlich die Körpertemperatur herabsetzt. Dies führt in kalten Winternächten häufig zu Erfrierungsopfern unter Obdachlosen, welche aufgrund des wärmenden Gefühls, das hochprozentige Getränke liefern können, die Gefahr der Kälte evtl. unterschätzen und erfrieren. 157 Geringe Dosen, auch über einen längeren Zeitraum täglich gelten zwar als unbedenklich, doch birgt der Genuss von alkoholischen Getränken auch ein hohes Suchtpotential, welches sich in Form von Alkoholismus auswirkt. Der Körper verstoffwechselt mit Hilfe des Enzyms Alkoholdehydrogenase den Alkohol zu den Hauptprodukten Wasser und Kohlendioxid. Dieser Vorgang findet zu 95 % in der Leber statt. Nachgewiesen werden kann der Alkohol im menschlichen Organismus über Alkoholtester, diese messen den Alkoholgehalt in der Atemluft, welche proportional mit der Menge im Blut zusammenhängt, und über bestimmte Bluttests. 155 Vgl. HessGISS Vgl. Vollhardt. S.367. 157 Vgl. Deckwer et al.. 156 141 III. Alkanole Experimenteller Teil Bei dem im Versuch verwendeten Zucker handelt es sich um den sogenannten Haushaltszucker, der auch als Saccharose bezeichnet wird. Neben diesem gibt es eine ganze Reihe anderer wichtiger Zucker (Vgl. II.Theorieteil – Kap. Kohlenhydrate). Die verwendete Saccharose gehört zur Gruppe der Disaccharide, den Zweifachzuckern. Sie setzt sich aus den Monosacchariden Glucose und Fructose zusammen (Vgl. Abb.4). Saccharose Glucose - Rest OH H H OH H HO H HO OH 1 OH Fructose - Rest H O O HO HO HO O 1 OH O H OH H OH 2 OH OH 2 OH OH O HO -1-2 - verknüpft Abb.4: Saccharose Weitere wichtige Zucker werden im Theorieteil, Kapitel der Kohlenhydrate behandelt. Didaktische Auswertung: Dieser Versuch kann einfach und schnell das Verfahren der alkoholischen Gärung zeigen. Es stellt damit einen Zugang zur Herstellung von Trinkalkohol dar. Da sich hier auf die Grundchemikalien beschränkt wird, können die Schüler/Schülerinnen recht einfach an den Prozess der Gärung, die seit Jahrhunderten in Europa Verwendung findet, herangeführt werden. Dieser Versuch kann daher als Einstieg in diesen Themenkomplex verwendet werden. Anschließend kann ggf. ausführlicher auf das Verfahren der Gärung in Bier- und Weinherstellung eingegangen werden. Anwendung kann dieser Versuch sowohl im Themenfeld der Alkohole, als auch im Themenfeld der Kohlenhydrate finden. Ist genügend Zeit, kann mit einem kleinen engagierten Kurs in der Oberstufe auch einmal die Weinherstellung, beispielsweise eines exotischen Bananenweines im, Großversuch durchgeführt werden. 142 III. Experimenteller Teil Alkanole Entsorgung: Die Lösungen können bedenkenlos im Ausguss entsorgt werden. Sollten aber in keinem Fall verzehrt werden, da Kontakt mit verunreinigten Behältern nicht ausgeschlossen werden kann. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.seilnacht.com/Lexikon/gaerung.html (Zugriff: 06.04.2010). 143 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuch 14: Veresterung Zeitaufwand: Materialien : Vorbereitung: 3 Minuten Durchführung: 3 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Pro Gruppe: 3 Reagenzgläser Bunsenbrenner 3 Pipetten mit Hütchen Reagenzglasgestell Reagenzglasklammer Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Ethanol (w = 96 %) CH3CH2OH (l) F * Pentan-1-ol * Hexan-1-ol * C5H11OH (s) Xn C6H13OH Xn Schwefelsäure (konz.) S: 7 - 16 unten R: 10-20-37/38 Siehe S: 36/37-46 unten R: 22 Siehe S: 24/25 unten S: 26-30-45 C * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 158 Siehe R: 35 H2SO4 (konz.) * R: 11 jeweils 2-3 Tropfen 158 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 144 III. Alkanole Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt: 2. Schritt: Essigsäure 3. Schritt: Schwefelsäure Reagenzglasklammer 1. RG 2. RG 3. RG 1. RG 2. RG 3. RG Bunsenbrenner Durchführung: 159 1. Gib in je ein Reagenzglas werden a) 2 fingerbreit Pentan-1-ol und 2 fingerbreit Essigsäure. b) 2 fingerbreit Hexan-1-ol und 2 fingerbreit Essigsäure. c) 2 fingerbreit Ethanol und 2 fingerbreit Essigsäure. 2. Füge 2-3 Tropfen konz. Schwefelsäure zu. 3. Erwärme das Reagenzglas mit Hilfe eines Bunsenbrenners vorsichtig unter Schwenken 1 Minute lang. VORSICHT, Siedeverzug! 4. Fächle dir nach dem Abkühlen eine Geruchsprobe zu. Beobachtungen: Die Farbe der Lösung bleibt unverändert, jedoch der Geruch unterscheidet sich nach Zugabe der Schwefelsäure und dem anschließenden Erhitzen deutlich. Alkohol Säure Geruch Produktname Pentanol Essigsäure Eisbonbon Essigsäurepentylester Hexanol Essigsäure Birne Essigsäurehexanylester Ethanol Essigsäure UHU Essigsäureethylester 159 Vgl INT.1. 145 III. Alkanole Experimenteller Teil Nicht jeder verbindet mit dem wahrgenommenen Geruch auch denselben Duft. So wurde von dem einen Birnengeruch wahrgenommen, von einem anderen als Wurstbrotgeruch beschrieben. Fachliche Auswertung: Bei der durchgeführten Reaktion handelt es sich um eine Veresterung. Die entstandenen Reaktionsprodukte sind typische Fruchtester, die an Hand ihres charakteristischen Geruchs identifiziert werden können. Dabei reagiert jeweils eine Carbonsäure (hier die Essigsäure) mit einem der Alkohole säurekatalysiert zu einem Ester und Wasser: O + + H3C R OH H O H3C OH O R + H2O Abb.1: Überblick der Veresterungsreaktion Schaut man sich den Reaktionsmechanismus im Detail an, ist zu erkennen, dass es sich um eine säurekatalysierte Veresterung handelt. Im ersten Schritt erfolgt eine Protonierung des Sauerstoffatoms der Carboxyl-Gruppe. Dies geschieht dadurch, dass das freie Elektronenpaar des Sauerstoffatoms eine Verbindung mit dem Proton eingeht. Es entsteht ein mesomeriestabilisiertes Carbenium-Ion: O + O +H + H H O O H + H3C OH - H+ H3C OH H3C C OH H3C O + H Abb.2: Dihydroxycarbenium-Ion (delokalisiert) Im zweiten Schritt erfolgt ein nucleophiler Angriff des Alkoholmoleküls an das positivierte und somit aktive C-Atom des Carbenium-Ions. Das Sauerstoffatom geht so eine Bindung über sein freies Elektronenpaar mit dem C-Atom ein. In der Folge kommt es zur internen Umlagerung des Protons, so dass ein Oxonium-Ion entsteht160 (Abb.3). 160 Vgl. Asselborn et al., S.271. 146 III. Alkanole Experimenteller Teil H3C O + C H3C H H H + OH O HO R OH H3C + O HO + OH H O R R Abb.3: Bildung des Oxoniumions Im letzten Reaktionsschritt wird zunächst Wasser abgespalten und im Anschluss das Proton, das als Katalysator fungierte, wieder abgegeben. Das Sauerstoffatom zieht aufgrund seiner höheren Elektronegativität die Bindung zum Wasserstoffatom näher zu sich heran zieht und bildet damit eine Doppelbindung zum C-Atom aus. H H3C O HO O - H2O + O H + H O + + H2O C R H3C H3C O O H R O H3C H O + R R O - H+ + +H R O CH3 Abb.4: Bildung des Oxoniumions Bei der Veresterung handelt es sich um einen Additions-Eliminierungs-Mechanismus. Die säurekatalysierte Veresterung ist reversibel. Die Esterhydrolyse oder ‚Verseifung‘ verläuft unter Zugabe des Katalysators H+ in umgekehrter Richtung mit demselben Mechanismus ab. Die Bildung des Esters ist eine Gleichgewichtsreaktion. Die Reaktionsgeschwindigkeit und damit die Einstellung des Gleichgewichts werden durch Temperaturerhöhung beschleunigt. Didaktische Auswertung: Dieser Versuch sollte im Themengebiet der Carbonsäuren nicht fehlen, kann aber auch schon im Themenfeld der Alkohole Einsatz finden. Er ist einfach durchzuführen, relativ ungefährlich und könnte laut Angaben von HessGISS sogar als ‚Schülerversuch‘ durchgeführt werden. Aufgrund der Verwendung von konzentrierter Schwefelsäure sollte der Versuch 147 III. Experimenteller Teil Alkanole allerdings nur mit einer ruhigen und konzentriert arbeitenden Klasse durchgeführt werden. Auch die Zugabe der konzentrierten Schwefelsäure durch den Lehrer wäre denkbar, so dass ein unsachgemäßer Umgang dieser Chemikalie minimiert wird. Der Versuch könnte der Einführung in das Stoffgebiet der Ester dienen. So könnte anhand dieses Versuches der Mechanismus der Esterbildung besprochen werden. Die Veränderung tritt hier nicht in Form einer sichtbaren Farbänderung auf sondern (was für viele Schüler neu sein dürfte) in Form einer Änderung des Geruches. Die sich bildenden Fruchtester sind anhand ihres charakteristischen Geruchs zu identifizieren. Erwähnt werden sollte bei der Auswertung noch, dass ein Ester nicht mit einem Aromastoff gleichzusetzen ist. Weiterführend könnte die saure - bzw. alkalische Esterhydrolyse besprochen werden. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für organische Abfälle entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/lernzirkel/lz008carbonsaeuren_doenges_schmidt_wanka.zip (Zugriff: 04.05.2010). 148 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen Versuche zu Carbonylverbindungen: Eigenschaften: Versuchs- Name des Versuch Nummer: Lösungsvermögen von Aceton 1 Nachweisreaktion / Reaktionen allgemein: Versuchs- Name des Versuch Nummer: Silberspiegel (siehe auch Kohlenhydrate) 2 Fehling – Probe (siehe auch Kohlenhydrate) 3 Iodoformprobe 4 Aldehydnachweis im Zigarettenrauch 5 Schiffsche Probe 6 Benzaldehyd mit Aceton 7 Elementaranalyse / Strukturaufklärung: Versuchs- Name des Versuch Nummer: Oxidation von Methanol und Ethanol an Kupferkontakt 8 9 (siehe auch Alkohole) Bakelit Herstellung 149 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuch 1: Lösungsvermögen von Aceton Zeitaufwand: Vorbereitung: 3 Minuten Durchführung: 5 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : Demonstrationsreagenzglas Stopfen Messpipette mit Peleusball Reagenzglas Bunsenbrenner Spatel Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Paraffinöl R: 36 * S: 26 Sudanrot * Aceton * Dest. Wasser * Xi R: 36/37/38-68 C22H16N4O (s) S: 26-36/37 Xn R: 11-36-66-67 CH3COCH3 (l) F H2O , Xi - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 161 S: 9-16-26-46 - 3 - 5 mL etwas 20 mL 10 mL 161 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 150 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: 3.Schritt: Paraffinöl Spatel mit Sudanrot Reagenzglas mit Paraffinöl Reagenzglasklammer Bunsenbrenner Sudanrot 4.Schritt: 5.Schritt: Messpipette Reagenzglasklammer Messpipette Reagenzglas mit rot gefärbtem Paraffinöl Demoreagenzglas mit 20 mL Aceton Demoreagenzglas mit Aceton und rot gefärbtem Paraffinöl Spritzflasche mit dest. Wasser Durchführung: 1. Fülle in ein Reagenzglas 2 cm hoch Paraffinöl. 2. Erwärme das Öl kurz in der Bunsenbrennerflamme. 3. Gib eine Spatelspitze Sudanrot zu. Das Öl sollte eine deutliche Rotfärbung aufweisen. 151 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen 4. Fülle 20 mL Aceton in ein Demoreagenzglas und gib 3 mL des rot gefärbten Paraffinöls zu. Verschließe das Demoreagenzglas mit einem Stopfen und schüttle kräftig. 5. Gib anschließend 5 mL Wasser zu. Beobachtungen: Das Paraffinöl ist eine klare, farblose, ölige und dünne Flüssigkeit. Durch Zugabe von Sudanrot färbt sich das Öl rot. Aceton ist ebenfalls eine klare, farblose Flüssigkeit, die als wasserähnlich beschrieben werde kann. Das Öl setzt sich nach Zugabe zum Aceton zunächst ab, so dass außer einiger roter Schlieren das Aceton zunächst farblos und klar bleibt. Erst durch das schütteln bildet sich eine gleichmäßige, rote Färbung der Lösung. Nach Zugabe von Wasser fällt es wieder aus und bildet zunächst mit dem Aceton-Wassergemisch eine Emulsion. Nach einiger Zeit setzt sich das Öl jedoch am Boden ab. Fachliche Auswertung: Propan-2-on ist der IUPAC Name der Verbindung, die unter dem Namen Aceton in vielen Laboren verbreitet ist. Es ist das einfachste Keton (Vgl. Abb.1) und zählt damit zur Verbindungsklasse der Carbonylverbindungen. Aceton ist unbegrenzt mit Wasser, Alkoholen, Benzol und Ether mischbar.162 Darüber hinaus dient es auch als Lösungsmittel für Fette, Öle, Harze oder andere organische Stoffe wie beispielsweise Cellulose. Auch Styropor kann problemlos gelöst werden (Vgl. Kasten – Exkurs). Allgemein zählt es zu den aprotisch polaren Lösungsmitteln, das heißt, dass es durch die Carbonylgruppe ein Dipolmoment besitzt, ähnlich dem des Wassers, jedoch nicht wie dieses dazu in der Lage ist, ein Proton aus der funktionellen Gruppe abzuspalten.163 Exkurs: Demonstrationsversuch – Lösungsvermögen von Aceton 1. Fülle in ein 150 mL Becherglas (Enghals) mit 60 mL Aceton. 2. Zerreiße ein großes Stück Styropor. 3. Tauche die Styroporstücke langsam in das Aceton. 162 163 Vgl. INT.1 und INT.2. Vgl Deckwer et al.. 152 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Bei der Unterscheidung zwischen polaren und unpolaren Lösungsmitteln kann die Dielektrizitätskonstante ( zur Hilfe gezogen werden. Als polar wird ein Stoff eingestuft, bei dem die Dielektrizitätskonstante über 15 liegt.164 Als sehr stark polar einzuordnen sind beispielswiese N-Methylformamid, Formamid sowie Wasser. Alle drei besitzen eine Dielektrizitätskonstante um die 100.165 Hexan, welches als unpolar eingestuft werden kann, hingegen weist lediglich ein von 2 auf. (Vgl.Abb.1) O H Wasser = 78 C H O O H C CH3 NH H n - Methylformamid = 182 NH2 Formamid 110. O C H3C CH 2 CH3 Aceton = 20,7 H3C CH 2 CH 2 CH3 CH 2 Hexan = 2 Abb.1: Auswahl polarer Lösungsmittel Das Paraffinöl ist wie Hexan eine unpolare Substanz. Daher kann es durch das ebenfalls unpolare Sudanrot, welches sich hervorragend in dem Öl löst, rot angefärbt werden Vgl. Themengebiet der Alkanole und Versuch zur Mischbarkeit der Alkohole). In diesem Versuch werden die Aspekte zur Löslichkeit verschiedener Stoffe ausführlich diskutiert. Wird nun das Rot gefärbte Paraffinöl in das acetongefüllte Reagenzglas gegossen, so setzt sich dieses Öl zunächst aufgrund der höheren Dichte am Boden ab. Zu erkennen ist dies in Form eines roten Öltropfens am Reagenzglasboden. Die Dichte des Acetons beträgt 0,7845 g/cm3, während die des Paraffinöls mit 0,81 – 0,89 g/cm3 angegeben ist.166 Wird nun geschüttelt, löst sich das unpolare Paraffinöl im Aceton. Der Grund ist unter anderem darin zu suchen, dass das Aceton zwei unpolare, wenn auch sehr kurze Alkylreste 164 Deckwer et al.. Vgl. INT.3, S.171. 166 Vgl. INT.4 und INT.5. 165 153 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen (-CH3) besitzt, die denen des Paraffinöls ähneln. So entsteht durch das Schütteln eine homogene, rotgefärbte Lösung. Gibt man nun Wasser zur Lösung, wird das Lösungsvermögen des Acetons stark herabgesetzt und es kommt zum Entmischen des zuvor gelösten, roten Paraffinöls. Bei genauerer Betrachtung kann man davon ausgehen, dass sich das polare Wasser sehr gut mit dem Aceton mischt, da es - wie bereits beschrieben - ebenfalls als polar anzusehen ist. Somit werden die deutlich schlechter gelösten Paraffinmoleküle aus der Lösung verdrängt und es entsteht zunächst eine Emulsion. Wird eine Weile gewartet, setzt sich das Paraffinöl aufgrund des Dichteunterschiedes nach kurzer Zeit am Boden des Reagenzglases ab. Didaktische Auswertung: Dieser Versuch zeigt das Lösungsvermögen von Aceton. Es schließt an Betrachtungen an, die bereits im Themengebiet der Alkohole gemacht wurden. Auf diese Betrachtungen kann daher zurückgegriffen werden, wenn das Phänomen der Löslichkeit an dem neuen Stoff Aceton - dem einfachsten Keton - diskutiert werden soll. Im Allgemeinen ist dieser Versuch durchaus als Schülerversuch durchführbar, da die verwendeten Chemikalien bei Einhaltung der üblichen Sicherheitsstandards problemlos in Schülerhände gegeben werden können. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für organischen Abfälle entsorgt werden. Literatur: INT.1: http://www.seilnacht.com/Chemie/ch_aceto.htm (Zugriff: 22.03.2010). INT.2: http://biade.itrust.de/biade/lpext.dll?f=templates&fn=main-hit-h.htm&2.0 (Zugriff: 22.03.2010). INT.3: http://books.google.de/books?id=yhvnJHyEUCcC&pg=PA171&lpg=PA171&dq=NMethylformamid+dielektrizit%C3%A4tskonstante&source=bl&ots=v4pwhy6qoO&sig=g2g9lTmgKz7If 58REP7OolIAqP4&hl=de&ei=MqnS_nRHMuksAbIxInlAQ&sa=X&oi=book_result&ct=result&resnum=4&ved=0CA4Q6AEwAw#v=on epage&q=N-Methylformamid%20dielektrizit%C3%A4tskonstante&f=false (Zugriff: 22.03.2010). INT.4: http://www.quma.de/ger/beschrei/dielektr.htm (Zugriff: 22.03.2010). INT.5: http://www.seilnacht.com/Chemie/ch_paraf.htm (Zugriff: 22.03.2010). INT.6: http://www.seilnacht.com/Chemie/ch_aceto.htm (Zugriff: 22.03.2010). 154 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuch 2: Silberspiegelprobe: Zeitaufwand: Materialien : Vorbereitung: 5 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 5 Minuten Variante 1: Variante 2 3 Spritzflaschen (klein) 1 neues Reagenzglas 1 neues Reagenzglas Messpipette 3 Aufbewahrungsgefäße Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Glucose * Kaliumhydroxid * Silbernitrat * C6H12O6 - R: 22-35 KOH (s) S: 26-36/37/39-45 C R: 34-50/53 AgNO3 (s) C S: 26-45-60-61 , N Ammoniak (w=0,25) * NH3 (aq) S: 26-36/37/39-45C , N 1,7 g etwas 61 R: 36/37/38 (NH4)2SO4 S: 26-36 Xi * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 167 1,8 g R: 34-50 * Ammoniumsulfat 2,5 g 0,6 g 167 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 155 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuchsaufbau: Variante 1: (Schritte 1 – 3) Zu versilberndes - NEUES - Reagenzglas Variante 2: (Schritte 1 – 3) Zu versilberndes -NEUES -Reagenzglas Bei den beiden dargestellten Varianten 1 und 2 handelt es sich um denselben Versuch, der je nach Belieben in zwei verschiedenen Art und Weisen durchgeführt werden kann. Diese unterscheiden sich hauptsächlich in den Behältnissen. Durchführung: Herstellung der Lösungen: Lösung 1: Fülle 2,5 g Glucose in 100 mL Wasser (Pro Gruppe werden 3,5 mL benötigt). Lösung 2: Fülle 1,8 g Kaliumhydroxid in 100 mL Wasser (pro Gruppe werden 3,5 mL benötigt). Lösung 3: Löse 1,7 g Silbernitrat in 100 mL Wasser, gib tropfenweise eine 25 % igen AmmoniakLösung zu bis der entstehende braune Niederschlag wieder verschwindet. Gib zu dieser Lösung 0,6 g Ammoniumsulfat und Fülle auf 200 mL auf. Die Lösung sollte in einer braunen Flasche aufbewahrt werden. 156 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Durchführung des Versuchs: 1. Gib 3,5 mL von Lösung 1 in ein neues Reagenzglas. 2. Gib 3,5 mL von Lösung 2 hinzu und schüttle gut durch. 3. Gib anschließend 7 mL von Lösung 3 hinzu und schüttle 2 Minuten lang. ----- 4. (optional: Die Flüssigkeit im Reagenzglas kann VORSICHTIG mit Hilfe des Brenners zum Sieden gebracht werden.) Fachliche Auswertung: Siehe Abschnitt Kohlenhydrate, Versuch 1 – Silberspiegelprobe. Entsorgung: Die Reaktionslösungen werden, da sie Silberkationen enthalten, zunächst mit konz. Salzsäure salzsauer gemacht. Das ausfallende Silberchlorid setzt sich über Nacht am Boden ab. Der Überstand enthält nur noch geringste Spuren von Silber und kann daher abdekantiert werden. Der Niederschlag wird auf diese Art eingeengt und zum Silberabfall gegeben. Der bereits abdekantiert Überstand, kann nun neutralisiert und im anorganischen Schwermetallabfall entsorgt werden. Wichtig ist, dass die ammoniakalische Silbernitratlösung immer frisch hergestellt wird, da sich bei längerer Lagerung hochexplosives Silbernitrid (Ag3N) bilden kann.168 168 Vgl. Abschnitt Kohlenhydrate, Versuch 1: Silberspiegelprobe, INT.2. 157 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuch 3: Fehlingprobe Zeitaufwand: Vorbereitung: 5 Minuten Durchführung: 6 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : 3 Reagenzgläser (50 mL) Spatel Messzylinder 100 mL 1 Becherglas (250 mL) 4 Bechergläser (100 mL) Messpipette und Peleusball Bunsenbrenner und Dreifuß Pipette Chemikalien: Stoffbezeichnung Glucose * Saccharose * Fructose * Summenformel C6H12O6 (s) C12H22O11 (s) C6H12O6 (s) Kalium-NatriumTartrat Gefahrensymbole R- und S-Sätze - - - - * * - 1g R: 22-26/38-50/53 Xn S: 22-60-61 ,N * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 169 1g S: 26-37/39-45 C CuSO4 * 5 H2O (s) - R: 35 NaOH (s) Kupfersulfat Penthydrat 1g S: 22-24/25 * Natriumhydroxid - R: - KNa[C4H4O6] (s) Menge 35 g 10 g 7g 169 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 158 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt 2. Schritt Jeweils 1 g des Zuckers + 1.Glucose 10 mL dest. Wasser 2.Saccharose 2. 1. 3. 3.Fructose 3. Schitt: 4. Schritt: 1. 2. 3. Lösung aus Fehling I und II (1:1) 5. Schritt: Variante 1: Zuckerlösungen 1-3 mit Fehling Wasserbad Variante 2: Bunsenbrenner 159 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen Durchführung: Herstellung der Lösungen: Fehling - Lösungen:170 Fehling 1: Fülle 7 g Kupfersulfat in 100 mL dest. Wasser (pro Gruppe wird 1 mL benötigt). Fehling 2: Fülle 35 g Kalium-Natrium-Tartrat und 10 g Natriumhydroxid in 100 mL dest. Wasser. (pro Gruppe wird 1 mL benötigt). Gib jeweils 10 mL Fehling I und 10 mL Fehling II in ein Becherglas. 1. Löse jeweils 1 g Glucose, Saccharose und Fructose in 10 mL Wasser. 2. Fülle je ein Reagenzglas 2 cm hoch mit den hergestellten Zuckerlösungen. 3. Zu den Zuckerlösungen werden 2 mL der hergestellten Fehling (Fehling I + II) – Lösung gegeben 4. Stelle die Reagenzgläser in ein Wasserbad, erwärme es mäßig mit Hilfe des Bunsenbrenners. Fachliche Auswertung: Siehe Abschnitt Kohlenhydrate, Versuch 2 – Fehlingprobe. Entsorgung: Alle Lösungen die in Kontakt mit Fehling gekommen sind, werden neutral im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt. 170 Vgl. Versuch Fehlingprobe – Themengebiet Kohlenhydrate. 160 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuch 4: Iodoformprobe Zeitaufwand: Vorbereitung: 3 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : Demoreagenzglas Reagenzglasgestell Peleusball Becherglas 100 mL Messpipette 2x Bunsenbrenner Reagenzglasklammer Becherglas 50 mL Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Natriumhydroxid * Kaliumiodid * Iod * Dest. Wasser * Aceton * R: 35 NaOH (s) S: 26-37/39-45 C KI (s) - R: 20/21-50 I2 (s) Xn H2O ,N - R: 11-36-66-67 CH3COCH3 (l) F S: 9-16-26-46 , Xi * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 171 S: 23.2-25-61 ca. 1 g 10 g 5g 125 mL 5 mL 171 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 161 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: Messpipette Becherglas mit 5 mL 0,1-molarer Natronlauge Demoreagenzglas Aceton dest. Wasser 3.Schritt: Demoreagenzglas 4. Schritt: Reagenzglasklammer mit Demoreagenzglas Messpipette Bunsenbrenner Demoreagenzglas Becherglas mit Lugolscher Lösung Durchführung: 172 Herstellung der Lösungen: Lugolsche Lösung (5 % ig): Löse in einem 100 mL Messkolben 10 g Kaliumiodid in 30 mL Wasser. Gib anschließend 5 g Iod zu und fülle bis zur Eichmarke mit entionisierten Wasser auf. Natronlauge (0,1 molar): Löse 0,2 g festes Natriumhydroxid in 5 mL dest. Wasser. 172 Vgl. INT.1 162 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen 1. Fülle 5 mL Aceton in das Demoreagenzglas und gib 25 mL dest. Wasser hinzu. 2. Gib nun 5 mL der 0,1 molaren Natronlauge hinzu. 3. Erwärme das Gemisch leicht über dem Bunsenbrenner. 4. Gib anschließend 8 mL der Lugolschen – Lösung hinzu und schüttle. Beobachtungen: Das Kaliumiodid ist ein weißes Pulver. Nach Zugabe von Kaliumiodid und Iod zum dest. Wasser entsteht eine tiefbraune Lösung. Die Mischung aus Aceton, dest. Wasser und 0,1 molarer Natronlauge ist eine farblose, klare Flüssigkeit. Durch Zugabe der Lugolschen Lösung zum heißen Gemisch, bildet sich unter Schütteln ein gelber Niederschlag. Dieser verschwindet nach kurzer Zeit wenn nicht weiter geschüttelt wird. Fachliche Auswertung: Die Iodoformprobe ist ein Test auf Methylketone, wie beispielsweise das verwendete Aceton. Bevor es spektroskopische Methoden zur Strukturaufklärung gab, war die Iodoformprobe, die zur Gruppe der Haloformreaktionen gehört, ein gängiger Test auf die Ketonverbindungsklasse. Bei gelber Färbung, die auf Iodoform zurückgeht, konnte auf einfache Weise die Anwesenheit der Methylketone nachgewiesen werden.173 Neben Methylketonen verläuft die Reaktion auch bei Alkoholen - die eine H3C-CHOH-Gruppe tragen - positiv. Daher ist darauf zu achten, dass bei positivem Nachweis die Anwesenheit dieser Alkoholen ausgeschlossen werden kann um zu gewährleisten, dass es sich wirklich um ein Methylketon handelt. 173 Vgl. Bruice, S.983. 163 III. O C H H (aq) + OH O - H 2O - H C H3C Carbonylverbindungen Experimenteller Teil O C (aq) H3C C C H H3C C H H H (aq) Aceton +I I O I C H3C C H +I H (aq) Abb.1: Mechanismus der Haloformreaktion – 1. Schritt Die Bildung des Iodoforms geht über verschiedene Schritte, wobei die Reaktion allgemein einem Mechanismus der basenvermittelten Halogenierung unterliegt. 174 Zuerst abstrahiert Hydroxid eines der Protonen am -Kohlenstoffatom, woraufhin sich ein Enolation bildet, das in der Folge ein elektrophiles Teilchen angreift, hier das Iod (Vgl. Abb.1). Diese beiden Schritte wiederholen sich so lange, bis die beiden verbliebenen Wasserstoffatome durch Halogenionen ersetzt sind. Die Folgereaktionen verlaufen dabei immer rascher, da das Halogenion (hier das Iod) die Acidität der Wasserstoffatome noch erhöht. Es bildet sich demnach das trihalogensubstituierte Keton (Vgl. Abb.2). 174 Vgl. Bruice, S.983. 164 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil O O O C C H3C I C H3C C H I H + I + - + OH C I O C C H (aq) I I H3C H H O C (aq) H3C (aq) O I I C + H2O - + OH C H3C I C (aq) H3C C I I I + I + H2O (aq) I O I C H3C C I +I I (aq) (aq) Triiodketon Gesamtreaktion: O O H C H3C + 3 I2 C H H - (aq) + 3 OH - I C (aq) (aq) H3C +3I (aq) + 3 H2O C I I (aq) Abb.2: Mechanismus der Haloformreaktion – 2. Schritt In der Folge greift das Hydroxidion das Carbonylkohlenstoffatom an, was nach der anschließenden Protolyse zur Bildung eines Carboxylations und des gelben Iodoforms (Triiodmethans) führt (Vgl. Abb.3): 175 175 Vgl. Bruice, S.983. 165 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil O O I I C H3C + OH (aq) C I I + O C H (aq) O I C I I OH I C C (aq) O H3C H3C I I H3C + C OH (s) (aq) C I I (aq) (aq) Carboxylation Iodoform Abb.3: Mechanismus der Haloformierung – Bildung des gelben Iodoforms Die Reaktion läuft auf die zuvor beschriebene Weise ab, wenn ein Überschuss des Halogens hier des Iods - in basischer Lösung mit einem Methylketon in Kontakt kommt. Dabei ersetzt das Halogen - wie in Abb.1-3 erkennbar ist – die drei -Wasserstoffatome.176 Da sich Iod sehr schlecht in Wasser lösen lässt (nur 0,3 g pro Liter sind löslich)177 muss Iod auf andere Art und Weise in Lösung gebracht werden. Hierfür bietet sich eine wässrige Iodidlösung an, in der ist Iod deutlich besser löslich. Iod (I2) reagiert in einer Lewis – Säure – Base Reaktion mit dem Iodid. Es tritt in dieser Lösung als Elektronenpaarakzeptor und damit als Lewis – Säure auf. Die Reaktion kann schematisch wir folgt beschrieben werden: - I I + :I I Akzeptor Elektronenpaar Donator I I Abb.4: Bildung des Polyiodidkomplexes178 176 Vgl. Bruice, S.983. Vgl. INT.2. 178 Vgl. Hollemann – Wieberg, 91. – 100. Aufl., S.402. 177 166 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Neben dem sich bildenden I3- können in der Folge noch verschiedene Polyiodidanionen gebildet werden (Vgl. Abschnitt Kohlenhydrate, Versuch 5: Zauberschrift). Das sich bildende Iodoform wurde früher - gelöst in Diethylether - als Desinfektionsmittel verwendet. Heute wird es wegen der Schädlichkeit bei Überdosierung sowie des Preises nicht mehr in der Medizin verwendet. Didaktische Auswertung: Die Iodoformprobe ist eine Nachweisreaktion für Methylketone und kann im Themenfeld der Carbonylverbindungen (gem. hessischen Lehrplan in 11G.1) Anwendung finden. Mit Hilfe dieser Reaktion kann den Schülern ein weiteres interessantes Phänomen der Carbonylverbindungen nähergebracht werden, nämlich die Acidität der - Wasserstoffatome. In diesem Fall werden diese gegen Iodatome ausgetauscht. In der Folge kommt es dann zur Bildung des gelben Iodoforms. Da die eingesetzten Chemikalien als relativ ungefährlich einzustufen sind, kann dieser Versuch durchaus als Schülerversuch in Kleingruppen durchgeführt werden. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für organische Lösungsmittel entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/expvortr/419AldehydeKetone_Heitmann_Scan.pdf (Zugriff: 19.03.2010). INT.2: http://www.seilnacht.com/Lexikon/53Iod.htm (Zugriff: 19.03.2010). 167 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuch 5: Aldehydnachweis im Zigarettenrauch Zeitaufwand: Vorbereitung: 8 - 10 Minuten179 Durchführung: 5 Minuten Nachbereitung: 10 Minuten Materialien : Kolbenprober + Halterung Ionentauschersäule Dreiwegehahn Stopfen Trockenrohr Messkolben 100 mL Schlauchstücke zur Verbindung Stativmaterial Pinzette Chemikalien: Stoffbezeichnung Summenformel Schiff’s Reagenz * Calciumchlorid * R- und S-Sätze - Glaswolle Zigarette Watte Petrolether (zur Reinigung) * Gefahrensymbole C Gemisch - Etwas R: 34 S: 26-36/37/39/45 15 mL - 1 Etwas R: 11 S: 9-16-29-33 F R: 36 S: 22-24 CaCl2 (s) Xi * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich Menge 180 179 Dieser Versuch ist etwas aufwändiger in der Vorbereitung, Durchführung und Nachbereitung, besitzt jedoch durch das Thema ‚Rauchen‘ einen hohen Alltagsbezug und der Verwendung eines typischen Aldehydnachweises auf dieses Themenfeld. Darüber hinaus hat der einen wichtigen, vielleicht wachrüttelnden Effekt auf die Schüler, was den Zeitaufwand in meinen Augen rechtfertigt. 180 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 168 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 181 Zigarette Stopfen Trockenrohr mit Calciumchlorid Säule mit in Schiffscherlösung getauchter Watte Kolbenprober Dreiwegehahn Stellungen des Dreiwegehahns: 181 Vgl. INT.7. 169 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen Durchführung: Herstellung der Schiffschen Lösung 182 (falls diese noch nicht vorliegen sollte): Löse 0,2 g Fuchsin in 900 mL dest. Wasser. Gib 15 mL einer 38%-igen Natriumhydrogensulfitlösung zu. Nach 10 Minuten werden bis zur Entfärbung ca. 10 mL konz. Salzsäure zugegeben. Fülle bis zur Eichmarke auf (diese Lösung kann für verschiedene andere Versuche aufbewahrt werden). 1. Baue die Apparatur wie in der Skizze dargestellt auf. Fülle das Trockenrohr mit wasserfreiem Calciumchlorid. Befülle die Säule in folgender Reihenfolge: Glaswolle, Watte, die mit Schiffscherlösung getränkt ist, und erneut Glaswolle. 2. Entzünde die Zigarette und ziehe den Rauch in den Kolbenprober, bringe dafür den Dreiwegehahn in Stellung 1 (Vgl. Versuchsaufbau). 3. Setzte anschließend den Hahn in Stellung 2, so dass der Rauch in die Säule mit der Watte geblasen wird. 4. Wiederhole diese Vorgänge solange, bis die Zigarette abgeraucht ist. Beobachtungen: Die Zigarette glimmt beim Einziehen des Probers auf. Der Rauch wird durch das zu Beginn weiße Calciumchloridgranulat geleitet und sammelt sich im Kolbenprober. Nach dem Öffnen des Hahnes in Stellung 2 kann der Rauch durch die Watte die zwar feucht, jedoch farblos ist, ins Freie geleitet werden. Nach einigen Durchgängen färbt sich die Watte allmählich rosa, das farblose Calciumchlorid färbt sich gelblich. Nach dem Abrauchen der Zigarette ist im Dreiwegehahn die Bildung eines schwarzen Belages zu erkennen, der fast den gesamten Querschnitt einnimmt. 182 Vgl. INT.1. 170 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen Fachliche Auswertung: Eine Zigarette ist ein Tabakprodukt, das aus getrockneten und feingeschnittenen Tabakblättern hergestellt wird. Der Tabak ist dabei in Papier gerollt und kann durch Entzünden und Einatmen konsumiert werden. Das Rauchen des Tabaks ist schon seit Jahrhunderten bekannt und wurde von spanischen Eroberern nach Europa gebracht.183 In Deutschland rauchen heute ca. ein Viertel der über 14-jährigen. Etwa ist die Hälfte der rauchenden Männer und etwa ein Drittel der rauchenden Frauen sind als stark rauchend einzustufen. Das heißt, sie konsumieren mehr als 20 Zigaretten pro Tag.184 Das konsumieren von Zigaretten führt in Deutschland zu mehr Todesfällen als Verkehrsunfälle, Selbstmorde, Todesfälle von Aids, Alkoholkonsum, und Todesopfer durch den Konsum von illegalen Drogen zusammen! Die Zahl der Menschen die jährlich durch die Folgen des Rauchens sterben, wird auf 140.000 geschätzt.185 Dabei sind zahlreiche Krebserkrankungen als Grund für den tödlichen Krankheitsverlauf zu nennen. Die Krebserkrankungen treten dabei gehäuft auf den Wegen auf, die der Zigarettenrauch durch den Körper geht: Rachen, Kehlkopf, Lunge, Magen, Niere und Blase sind häufig von Krebs befallen. Darüber hinaus sind noch weitere Krankheitsbilder bekannt, die auf das Rauchen zurückzuführen sind, so zum Beispiel: Asthma, Bronchitis, Leberzirrhose, Magen und Darmgeschwüre, Hautalterungen, schlechte Wundheilung, Schwächung des Immunsystems, sowie ein erhöhtes Schlag- und Herzinfarktrisiko sind nur einige der Krankheiten. Beim Rauchen einer Zigarette wird durch das „Ziehen“ am Filter die Temperatur in der Glutspitze der glimmenden Zigarette auf bis zu 900 °C gebracht. Bei diesen Temperaturen kommt es zur thermischen Zersetzung von Tabak und dem Papier. Die dabei entstehenden Gase werden durch den Filter in die Lungen geleitet und dadurch inhaliert. Dabei entstehen eine ganze Reihe verschiedener Stoffe, die teils als Gas, teils aber auch als Aerosole - also feinverteilte Feststoffe - im Gasstrom vorliegen. Diese Mischung wird auf rund 4800 verschiedenster chemischer Substanzen geschätzt.186 Darunter finden sich einige, die stark toxisch auf den Organismus wirken, andere sogar karzinogen, also als krebserregend eingestuft sind. Die Anzahl der Substanzen, die als 183 Vgl. INT.8. Vgl. INT.6. 185 Vgl. INT.6. 186 Vgl. INT.3. 184 171 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil krebserzeugend eingestuft sind oder im Verdacht stehen, krebserzeugend zu sein, wird mit mehr 70 angegeben. Unter diesen toxischen und karzinogenen Substanzen finden sich einige wie: 187 Verbindungen Toxisch / karzinogen Menge Acetaldehyd Toxisch und karzinogen 0,4 – 1,4 g Acrolein Toxisch Spuren Acrylamid Karzinogen Formaldehyd Toxisch, Verdacht auf 0,02 – 0,1 mg karzinogene Wirkung Kohlenmonoxid Toxisch 14 – 23 mg Stickstoffoxide Toxisch 100 – 600 g Butadien Karzinogen 20 – 25 g Benzol Karzinogen, Toxisch 12 – 50 g Methanol Toxisch Cyanwasserstoff (Blausäure) Toxisch Nikotin Toxisch, 400 – 500 g suchterzeugende 2 – 4 g Wirkung Naphthalin Verdacht auf karzinogene Wirkung Aromatische Amine Teilweise karzinogen N-Nitrosamine Karzinogen Schwefelwasserstoff Karzinogen 20 – 90 g Darüber hinaus führen einige dieser Substanzen zu Ablagerungen im Bindegewebe, Bronchien, Luftröhre, Kehlkopf und Mundhöhle, durch welche über Jahre entzündliche Reaktionen hervorgerufen werden können. Diese wiederum stehen ebenfalls im Verdacht, einzelne Zellen zu entarten und damit Krebs hervorzurufen. Zu dieser Kategorie zählt auch der Teer. 187 Vgl. INT.4, INT.5 und INT.8. 172 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Die Teerablagerung in der Versuchsapparatur ist nach Beendigung des Versuchs und dem „Konsum“ nur einer Zigarette eindrucksvoll zu erkennen. Vor allem im Dreiwegehahn sind deutliche Spuren des braun-schwarzen Belags sichtbar. Durch diesen Versuch kann nun die Anwesenheit verschiedener Aldehyde - wie Beispielsweise des suchtauslösenden und karzinogen wirkenden Acetalaldehyds in dem Stoffgemisch des Zigarettenrauchs - nachgewiesen werden. Dieser Nachweis gelingt mit Hilfe der Watte, die in Schiffsche Lösung getaucht wurde. Die Watte färbt sich bei Kontakt mit Aldehyden violett. Die Reaktion kann sich exemplarisch folgendermaßen vorgestellt werden188 (Vgl. Versuch zur Oxidation von Aldehyden). H N H H H2N H2N N H O SO3H H3C C O H H3C C H SO3H CH3 H2N CH3 Farbloses, sulfoniertes Fuchsin NH2 Fuchsin (violett) Abb.1: Reaktion von sulfoniertem Fuchsin mit einem Aldehyd Dieser exemplarisch dargestellte Reaktionsmechanismus, der als Nachweis für Aldehyde gilt, kann nun auch für die im Rauch der Zigarette enthaltenen Aldehyde herangezogen werden. Durch chemische Analysen konnten bisher einige Aldehyde nachgewiesen werden, so zum Beispiel Formaldehyd, Acetaldehyd, Glyoxal, Acrolein und Furfural. Der Nachweis mittels Schiffscherlösung testet lediglich auf die Anwesenheit von Aldehyden im Allgemeinen; eine genauere Aufgliederung, welche der Aldehyde im Rauch enthalten sind, können so nicht getroffen werden. 188 Vgl. INT.7. 173 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen Ausführlicher werden der Mechanismus sowie die Bildung der Schiffschenlösung im Protokoll zur Oxidation von Ethanol ausgeführt (Vgl. Versuch: Oxidation von Methanol und Ethanol an Kupferkontakt). Didaktische Auswertung: Der Versuch dauert zwar im Aufbau deutlich länger als die meisten anderen Versuche, er sollte jedoch aufgrund des starken Alltagsbezugs und der Gefahren, die durch das Rauchen bestehen, seinen Platz im Unterricht finden. Denn gerade dem Chemieunterricht kommt meiner Meinung nach eine besondere Aufgabe zu die Schüler und Schülerinnen auf die Gefahren des Rauchens hinzuweisen. Er dient also nicht nur dem Aldehydnachweis durch Schiffschelösung, was ihn im Themengebiet der Carbonylverbindungen verankert und im hessischen G8 Lehrplan in 11G.1 zu finden ist, sondern er zeigt darüber hinaus die ernüchternde Seite des Rauchens. So färbt sich das Trockenmittel Calciumchlorid durch die Inhaltsstoffe des Zigarettenrauches gelblich und riecht stark nach dem giftigen Nikotin, das man von Raucherhänden kennt. Darüber hinaus kommt auch die Wirkung des Teers zum Vorschein. Der „Konsum“ von nur einer Zigarette vermag den gesamten Dreiwegehahn zu verstopfen. Er ist komplett mit einer schwarzen, teerigen Masse ausgefüllt. Doch lässt sich mit diesem Versuch noch etwas Weiteres zeigen, nämlich die Widerstandsfähigkeit dieses Teers, der sich im Körper der Raucher absetzt. Die Versuche, den Teer mit heißem Königswasser, einer Mischung aus 3 Teilen konzentrierter Salzsäure und 1 Teil Salpetersäure, zu lösen schlug selbst nach dem Einweichen über 2 Tage fehl. Selbst diese höchst reaktive heiße, oxidierend wirkende Säure, die es vermag Gold zu lösen, blieb in diesem Fall ohne Erfolg. Hier wird deutlich, wie widerstandsfähig dieser Rückstand des Rauches ist. Dem einen oder anderen Schüler sollte so vielleicht die negative Wirkung des Rauchens auf die Lunge und Körpergewebe, in denen sich dieser Teer festsetzt, deutlich werden. Um den Dreiwegehahn wegen der Verschmutzung dennoch nicht entsorgen zu müssen, bedarf es einem Lösungsmittelgemisch aus Petrolether. Durch mehrmaliges Spülen mit dieser Flüssigkeit wird der Hahn wieder gängig. Vor diesem Hintergrund, der über den einfachen Aldehydnachweis hinausgeht finde ich den Mehraufwand im Aufbau und der Nachbereitung gerechtfertigt und bin der Meinung, dass der Versuch seinen Platz im Unterricht finden sollte. Vielleicht kann man auf diese Art dem 174 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen einen oder anderen Schüler die Gefahren des Rauchens auf eine ersichtliche Art und Weise kenntlich machen. Entsorgung: Die in Schiffscherlösung getauchte Watte wird getrocknet und zusammen mit dem Calciumchlorid des Trockenrohres und der Glaswolle im Feststoffabfall entsorgt. Der Petrolether zum Reinigen der Lösungen können neutral im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.seilnacht.com/Chemie/reagenz.htm (Zugriff: 18.03.2010) INT.2: http://www.rauchstoppzentrum.ch/0189fc92f11229701/0189fc93040dae802/index.html (Zugriff: 18.03.2010). INT.3: http://www.lungenaerzte-im-netz.de/lin/show.php3?id=40&nodeid (Zugriff: 18.03.2010). INT.4: http://www.lungenaerzte-im-netz.de/lin/linpopup/show.php3?id=130&nodeid=1 (Zugriff: 18.03.2010). INT.5: http://www.lungenaerzte-im-netz.de/lin/linpopup/show.php3?id=131&nodeid=1 (Zugriff: 18.03.2010). INT.6: http://www.lungenaerzte-im-netz.de/lin/show.php3?id=72&nodeid= (Zugriff: 18.03.2010). INT.7: http://www.chids.de/dachs/expvortr/419AldehydeKetone_Heitmann_Scan.pdf (Zugriff: 18.03.2010). INT.8: http://www.suchtmittel.de/info/zigaretten/000342.php (Zugriff: 18.03.2010). 175 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuch 6: Schiffsche Probe Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : Reagenzglas 4 x Reagenzglasgestell Messpipette Peleusball Pipette Chemikalien: Stoffbezeichnung Ethanol (w = 96 %) * Wasser * Propanal * Wässrige Formaldehydlösung (37%-ig) * Summenformel Gefahrensymbole C2H5OH (l) F H2O - C3H6O (l) F HCHO(aq) Schiffsche Reagenz * , Xi T Erbgutverändernd (Kat.M3), Gefahr durch Hautresorption Menge R: 11 S: 7 - 16 2 mL - 2 mL R: 11-36/37/38 S: 9-16-29 2 mL R: 23/24/25-34-40-43 S: 26-36/37/39-45-51 2 mL R: 34 S: 26-36/37/39/45 C * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 189 R- und S-Sätze 25 Tropfen 189 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 176 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuchsaufbau: Reagenzglasgestell mit leeren Reagenzgläsern Schiffsche Lösung wässrige Wasser Formaldehyd -lösung Ethanol Propanal Durchführung: Herstellung der Schiffschen Lösung:190 (falls diese noch nicht vorliegen sollte) Löse 0,2 g Fuchsin in 900 mL dest. Wasser. Gib 15 mL einer 38% -igen Natriumhydrogensulfitlösung zu. Nach 10 Min werden bis zur Entfärbung ca. 10 mL konz. Salzsäure zugegeben. Fülle bis zur Eichmarke auf (diese Lösung kann für verschiedene andere Versuche aufbewahrt werden). 1. Fülle jeweils 2 mL der zu untersuchenden Substanz in ein Reagenzglas. 2. Gib 5 Tropfen der Schiffschen – Lösung zu. Beobachtungen: Bei allen verwendeten Lösungen handelt es sich um klare, wasserähnliche Flüssigkeiten. Die ‚Schiffsche – Lösung‘ ist ebenfalls eine klare Lösung. Nach Zugabe dieser Lösung zu den zu untersuchenden Substanzen färbt sie sich bei Formaldehyd und Propanal rosa – violett, während bei Ethanol und Wasser keine Farbveränderung zu beobachten ist. Fachliche Auswertung: Die Schiffsche – Lösung dient - wie im Versuch 5 dargestellt - dem Aldehydnachweis im Zigarettenrauch. Der Versuch zur Schiffschenprobe kann aber auch allgemein als Aldehydnachweis eingesetzt werden, so können z.B. verschiedene Substanzen durch Zugabe von Schiffscher-Lösung auf Aldehyde getestet werden. 190 Vgl. INT.1. 177 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Das Ausbleiben einer Farbreaktion bei Zugabe zu Ethanol und Wasser zeigt, dass es sich bei diesen Verbindungen nicht um Aldehyde handelt. Bei genauer Betrachtung der Moleküle zeigt sich, dass diese auch keine Aldehydgruppe besitzen (Vgl. Abb.1): H O H H H OH H H H Ethanol Wasser Abb.1: Lewisdarstellung von Ethanol und Wasser Propanal und Formaldehyd hingegen besitzen eine Aldehydgruppe (Vgl. Abb.3), so dass diese mit der Schiffschen-Lösung zum violetten Fuchsin reagieren können (Vgl. Abb.2). Die Bildung des rosa - violetten Farbstoffes geht auf die folgende Reaktion zurück: H N H H H2N H2N N H O SO3H H C O H H C H SO3H CH3 H2N CH3 NH2 farbloses, sulfoniertes Fuchsin Fuchsin (violett) Abb.2: Reaktion von sulfoniertem Fuchsin mit Formaldehyd O O H3C H2C Formaldehyd (Methanal) Propanal O H H Abb.3: Propanal und Formaldehyd in Lewisdarstellung 178 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen Der ausführliche Mechanismus der Reaktion von Schiffscher-Lösung mit Aldehyden ist in der fachlichen Auswertung zu Versuch 5 (Aldehydnachweis im Zigarettenrauch) und Versuch 8 (Oxidation von Methanol und Ethanol am Kupferkontakt) beschrieben. Didaktische Auswertung: Der Versuch stellt eine Kurzvariante des Versuchs Nr.5 dar. Er kann immer dann eingesetzt werden, wenn es darum geht, Substanzen auf Aldehyde zu testen. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.seilnacht.com/Chemie/reagenz.htm (Zugriff: 18.03.2010). 179 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuch 7: Benzaldehyd mit Aceton: Zeitaufwand: Vorbereitung: 2- 3 Minuten Durchführung: 7 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : Demoreagenzglas Reagenzglasgestell Messpipette Becherglas 100 mL Peleusball Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Natronlauge (w = 10%) NaOH (aq) * Benzaldehyd * Aceton * R: 35 S: 26-37/39-45 C R: 22 C6H5CHO (l) S: 24 Xn R: 11-36-66-67 CH3COCH3 (l) F S: 9-16-26-46 , Xi Ethanol (w = 96 %) C2H5OH (l) R: 11 F S: 7 - 16 * Eis * H2O (s) - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 191 - 10 mL 10 mL 5 mL 20 mL Zum kühlen 191 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 180 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: Messpipette Demoreagenzglas mit Reaktionsgemisch Demoreagenzglas gefüllt mit 10 mL Benzaldehyd Benzaldehyd Ethanol Aceton Natronlauge w = 10 % 3. Schritt Demoreagenzglas mit Reaktionsgemisch Eiswasser Becherglas Durchführung: 192 1. Fülle in ein Demoreagenzglas 10 mL Benzaldehyd, gib anschließend 20 mL Ethanol und 5 mL Aceton zu. Schüttle anschließend vorsichtig bis eine homogene Lösung entsteht. 2. Füge nun 10 mL Natronlauge (w = 10 %) hinzu. VORSICHT, das Reaktionsgemisch erwärmt sich stark. 3. Stelle das Reagenzglas 3 bis 5 Minuten in ein mit Eiswürfeln gefülltes Becherglas. 192 Vgl. INT.4. 181 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Beobachtungen: Bei den eingesetzten Lösungen (Natronlauge, Aceton, Benzaldehyd und Ethanol) handelte es sich um klare Flüssigkeiten. Benzaldehyd riecht stark nach Marzipan. Das Reaktionsgemisch erwärmt sich nach Zugabe von Natronlauge stark, außerdem ist eine gelb – orangne Färbung zu erkennen. Beim Abkühlen im Eisbad zeigt sich allmählich eine Trübung. Es fällt ein gelber Stoff aus. Nach bereits 5 Minuten ist ein dicker kristalliner Brei entstanden. Fachliche Auswertung: Benzaldehyd ist der einfachste aromatische Aldehyd. Durch Oxidation wird er zur Benzoesäure oxidiert. Es handelt sich beim Benzaldehyd um eine klare Flüssigkeit mit marzipanartigem Geruch. O H Benzaldehyd Abb.1: Benzaldehyd In dem Versuch reagiert Benzaldehyd mit dem Keton (Aceton) in einer basenkatalysierten Aldolreaktion. Dabei bildet sich zunächst Benzalaceton, der in der Folge zu Dibenzalaceton weiterreagieren kann. O CH3 O H + Benzaldehyd O H3C CH3 Benzalaceton Aceton Abb.2: Reaktion von Benzaldehyd mit Aceton Im ersten Schritt der Aldolreaktion reagiert Aceton mit der Base, hier der Natronlauge. Dabei wird ein -Wasserstoffatom durch das Hydroxidion abgespalten, wodurch ein konjugationstabilisiertes Anion sowie Wasser entsteht (Vgl. Abb.3a, Schritt 1). 182 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Mechanismus 1. Schritt: O O H3C C H - H2O H H3C + OH H O C C H3C H H H H stabilisiertes Anion Aceton Grenzstruktur Abb.3a: Mechanismus der Aldol-Reaktion – 1.Schritt Das stabilisierte Anion kann in der Folge das positivierte Carbonylkohlenstoffatom des Benzaldehydes nucleophil angreifen, von dem es im Überschuss umgeben ist. Diese Aldehydgruppe des Benzaldehydes ist nicht enolisierbar, so dass der Angriff auf diese stattfindet193 (Vgl. Abb.3b): Aldolkondensation 2. Schritt: O O O O H H + H3C C CH3 H H Alkoholat - Anion + HOH CH3 HO O - H 2O - O H + OH CH3 Hydroxyverbindung ("gemischtes Aldol") Benzalaceton - H 2O H H O O H CH3 "Enolisiertes Aldol" 193 3. Schritt: Abb.3b: Mechanismus der AldolReaktion – 2. und 3. Schritt Vgl. INT.1. 183 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Aus dem Enolatanion und dem Benzaldehyd bildet sich zunächst ein stark basisches Alkoholat-Anion. Dieses wird vom Lösungsmittel protoniert, wodurch ein gemischtes Aldol entsteht (Vgl. Abb.3b.).194 Im 3. Schritt kann dieses Aldol nun wieder enolisieren, wodurch in der Folge ein Wassermolekül eliminiert wird und sich letztlich das Benzalaceton bildet (Vgl.Abb.3b – 3. Schritt). In der Folge kann von dem Benzalaceton wieder am -Kohlenstoffatom ein Proton durch die starke Base Hydroxid abstrahiert werden, wodurch sich - wie in Abb.3a dargestellt - ein stabilisiertes Enolation bildet (Vgl. Abb.3a). Die weiteren Schritte entsprechen ebenfalls den des Mechanismus der Benzalacetonbildung (Vgl. Abb.3a und 3b). stabilisiertes Anion Benzalaceton O O - CH3 + OH O H - H2O H C R H C H O OH H2O O H - + OH Benzaldehyd Aldehydalkoh ol (Aldol) H H O O Kondensation O - H 2O Dibenzalaceton Abb.4: Folgereaktion - Bildung des Dibenzalacetons Durch Kondensation bildet sich langsam, das ungesättigte Keton, Dibenzalaceton. 194 Vgl. Vollhardt, S.854f. 184 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Bei der abgelaufenen Reaktion handelt es sich um eine Aldol-Reaktion die basenkatalysiert verläuft. Im Allgemeinen wird von einer Aldolreaktion gesprochen, wenn es sich um eine Addition eines Enolats oder Enolations handelt, welches nucleophil eine Carbonylgruppe angreift. Bei einer Aldolkondensation - wie dies hier der Fall ist - erfolgt anschließend noch eine Eliminierung von Wasser, so dass sich eine α,β-ungesättigte Carbonylverbindung bildet. Aldolreaktionen sind wichtige Reaktionen für die Bildung von Kohlenstoff-KohlenstoffBindungen und ein somit wichtiges Reaktionsprinzip in der organischen Chemie. Didaktische Auswertung: Durch diesen Versuch kann ein weiteres Themenfeld der Carbonylverbindungen erarbeitet werden, nämlich die Aldolreaktionen. Bei diesen handelt es sich um eine Variante, die eine immens wichtige Rolle in der organischen Chemie spielt, nämlich die Knüpfung neuer Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindungen. Der Versuch kann zum Erarbeiten des Reaktionsmechanismus herangezogen werden. Außerdem kann mit dem Versuch in die Enolatchemie eingeführt werden. Es muss darauf hingewiesen werden dass der Versuch einen weiterführenden Charakter hat und in einem Leistungskurs Chemie durchaus zum Thema gemacht werden kann, nicht jedoch selbst im hessischen Lehrplan verankert ist. Weder die Aldolreaktionen noch die Enolatchemie sind in dem Lehrplan als Thema genannt. Die Mechanismen, die dem Versuch zugrunde liegen, sind schwierig und bedürfen für die Durchführung ausreichend Zeit. Der Versuch selbst ist zwar als einfach und zugleich effektvoll nähme jedoch aufgrund des anspruchsvollen Themas zu viel Unterrichtszeit in Anspruch. Aus den genannten Gründen muss man den Versuch als Schulversuch als nur bedingt tauglich ansehen. 185 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für organische Abfälle entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.chemikalienlexikon.de/cheminfo/namensrk/knoevena.htm (Zugriff: 31.03.2010). INT.2: http://www.versuchschemie.de/ptopic,117655.html (Zugriff: 31.03.2010). INT.3: http://www.chemikalienlexikon.de/aroinfo/2172-aro.htm (Zugriff: 31.03.2010). INT.4: http://www.uni-siegen.de/fb8/oc/oc1/lehre/praeparate/dibenzalaceton.pdf (Zugriff: 31.03.2010). 186 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuch 8: Oxidation von Methanol und Ethanol an Kupferkontakt Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 2 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Materialien : Becherglas (250 mL) Tiegelzange Bunsenbrenner Pinzette Pipette Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Ethanol (w = 96 %) C2H5OH (l) R: 11 F * Schiff’s Reagenz R: 34 * C Kupferblech / - Kupferdraht S: 7 - 16 Cu (s) S: 26-36/37/39/45 * - langes Stück - - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 195 5 – 10 mL 5 – 6 cm * Wattebausch 20 mL 1 Stück 195 HessGiss 2008/2009 187 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt 2. Schritt 3. Schritt: Pinzette Tiegelzange Kupferblech Kupferblech Bunsenbrenner Watte, getränkt in Schiffscher-Lsg Ethanol Durchführung: 196 Herstellung der Schiffschen Lösung:197 Löse 0,2 g Fuchsin in 900 mL dest. Wasser. Gib 15 mL einer 38%-igen Natriumhydrogensulfitlösung zu. Nach 10 Min werden bis zur Entfärbung ca. 10 mL konz. Salzsäure zugegeben. Fülle dann bis zur Eichmarke auf. ------1. Glühe das Kupferblech 1 Minute lang in der Brennerflamme aus. 2. Tauche das Kupferblech mit Hilfe der Tiegelzange in das Becherglas mit Ethanol. 3. Glühe das Kupferblech erneut in der Brennerflamme aus. 4. Tauche das Blech erneut in das Becherglas mit Ethanol; wiederhole Schritt 3 und 4 einige male. ------ Variante 1: 5. Tauche ein Stück Watte mit Hilfe einer Pipette in etwas Schiffsche – Lösung. 6. Tauche nun den mit Schiffscher – Lösung getränkte Watte in das Becherglas. ------ Variante 2: 7. Gib vorsichtig 5 Tropfen Schiffscher-Lösung in das Becherglas. 8. Notiere die Beobachtungen. 196 197 Vgl. Asselborn et al., S.250. Vgl. INT.1. 188 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Beobachtungen: Das Kupferblech glüht in der Brennerflamme rot auf, färbt sich aber nach kurzer Zeit schwarz. Nach dem Eintauchen des Kupferbleches in den Ethanol wird das schwarze Blech wieder hell – Kupferfarben. (Variante 1) Der farblose Wattebausch ist nach dem Eintauchen in die Schiffsche – Lösung noch immer farblos, färbt sich aber nach Berührung mit der Ethanollösung im Becherglas, rosa – rot. Bei Variante 2 schlägt die Farbe der Ethanol-Lösung bei Zugabe von Schiffscher – Lösung von farblos zu rosa - violette um. Fachliche Auswertung: Beim Erhitzen des Kupferbleches in der Brennerflamme entsteht das schwarze Kupfer(II)Oxid: 0 0 2 Cu (s) + O 2 (g) +II -II 2 CuO (s) Abb.1: Reaktion von Kupfer mit Sauerstoff Kommt das schwarze Kupfer(II)-Oxid mit dem Ethanol in Berührung, wird Kupfer(II) zu elementarem Kupfer reduziert und nimmt die eigentliche Lachskupfer - Farbe an. Das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe trägt, wird indes von –I auf + I hoch-oxidiert. Aus dem Ethanol (einem Alkohol) entsteht Ethanal, (ein Aldehyd). H H H +II -I H C C H H Ethanol (Alkohol) + CuO (s) O H (l) +I H C H O 0 C + Cu (s) + H 2O (l) H (l) Ethanal (Aldehyd) Abb.2: Reaktion von Kupferoxid mit Ethanol 189 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Herstellung der Schiffs-Reagenz (Fuchsinschweflige Säure). Das Fuchsin wird durch die konzentrierte Salzsäure protoniert: H H2N H N H2N H N H Cl + CH3 Cl CH3 NH2 NH2 Fuchsin (violett) Abb.3a: Protonierung des Fuchsins Im Folgenden wird Fuchsin durch die schweflige Säure sulfoniert: H H2N N H Cl N H H H2N + H2O / SO2 - HCl SO3H CH3 NH2 H2N CH3 Farblos Abb.3b: Sulfonierung des Fuchsins198 Dabei entsteht die farblose Nachweisreagenz der Schiffs-Reagenz. Im Folgenden reagiert diese mit dem Ethanal, in dem die Sulfongruppe (-SO3H) abgespalten und an das Ethanal angelagert wird. 198 Vgl. Grosse Austing. 190 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil H N H H H2N H2N N H O SO3H H3C C O H H3C C H SO3H CH3 H2N CH3 NH2 Violett Die Stabilität der Verbindung kann durch das chinoide System erklärt werden: H H + H2N H + N N N H H H + + Cl Cl CH3 CH3 NH2 NH2 H2N NH2 + Cl CH3 + N H H . Abb.4: Stabilität des Chinoiden Systems 199 199 Vgl. Grosse Austing. 191 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen Die Lage des chinoiden - Systems ist nicht festgelegt. Jeder der Ringe kann durch Mesomerie die Chinoide - Gruppe tragen. Die Bildung des rosa-violetten Farbstoffs zeigt die Anwesenheit von Aldehyden in der Lösung. Reines Ethanol zeigt diese Farbreaktion bei Kontakt mit Schiffscherlösung nicht, (Vgl. Versuch 6, Schiffsche Probe). Didaktische Auswertung: Der Versuch ist nach dem Hessischen G8 Lehrplan in die Jahrgangsstufe 11G.1 einzuordnen. Dort findet er Anwendung zum Themenfeld der Reaktionen, bzw. der Redoxreaktionen von Alkoholen (Vgl. hessischer Lehrplan, G8). Er kann bei der Überleitung vom Thema der Alkohole hin zum Thema der Carbonylverbindungen Verwendung finden aber auch einfach als Einstieg in das Themengebiet der Carbonyle. Der Aufwand des Versuches ist nicht groß und kann aufgrund der eingesetzten Chemikalien sowohl als Schülerversuch, als auch als Demonstration durch den Lehrer durchgeführt werden. Es ist jedoch darauf zu achten, dass aufgrund des Arbeitens mit dem Brenner und brennbaren Flüssigkeiten nur geübte Schüler experimentieren sollten. Weiterhin sollte mit kleinen Mengen gearbeitet werden. Es ist darauf zu achten, dass die Brenner die Behältnisse der brennbaren Flüssigkeiten nicht in direkter Nähe zu einander stehen. Was den theoretischen Hintergrund angeht, ist zu sagen, dass der Versuch zwar aus chemischer Betrachtungsweise sehr interessant ist, jedoch die Schüler der 11. Klasse wegen des komplexen Mechanismus der Farbbildung der SchiffschenLösung sehr fordert. Entsorgung: Die Lösungen müssen im organischen Lösungsmittelabfall entsorgt werden. Literatur: INT.1: http://www.seilnacht.com/Chemie/reagenz.htm (Zugriff: 27.02.2010). INT.2: http://www.chids.de/dachs/expvortr/419AldehydeKetone_Heitmann_Scan.pdf (Zugriff: 26.02.2010). 192 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuch 9: Bakelit - Herstellung (Darstellung eines Phenoplasten) Zeitaufwand: Vorbereitung: 3 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : Reagenzglas Messpipette Peleusball Reagenzglasgestell Spatel Waage Bunsenbrenner Reagenzglasklammer Summen- R- und S-Sätze Chemikalien: Stoffbezeichnung Gefahrensymbole Menge formel R: 23/24/25-34— Phenol * C6H5OH (s) T 48/20/21/22-68 ,C 1,5 g Zusatz: Erbgutverändernd (Kat.M3), Gefahr durch Hautresorption S: 24/25-26-28.636/37/39-45 Wässrige Formaldehydlösung (37%-ig) HCHO(aq) R: 23/24/25-34-40-43 T Erbgutverändernd (Kat.M3), * R: 34-37 HCl (konz.) * S: 26-36/37/39 -45 C * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 200 2 mL Gefahr durch Hautresorption Salzsäure (konz.) (w=0,37) S: 26-36/37/39-45-51 20 mL 200 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 193 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: Messpipette Spatel mit Phenol Reagenzglas Phenol FormaldehydLösung (38 %-ig) Reagenzglas mit Phenol + Formaldehyd Salzsäure (konz.) 3.Schritt: Reagenzglas der Lösung Reagenzglasklammer Bunsenbrenner Durchführung: 201 1. Fülle 1,5 g Phenol und 2 mL in ein Reagenzglas. (Die Formaldehydlösung sollte möglichst frisch sein). 2. Gib vorsichtig und langsam 1,5 mL konz. Salzsäure zu. 3. Erwärme das Gemisch mit Hilfe des Bunsenbrenners. (Optional) 4. Wickle das abgekühlte Reagenzglas in ein Tuch ein; zerschlage es vorsichtig mit einem Hammer. So kann das Produkt isoliert werden. 201 Vgl INT.1 und INT.5. 194 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Beobachtungen: Phenol ist ein farbloser bis leicht rötlicher kristalliner Feststoff. Beim Öffnen des Aufbewahrungsgefäßes fällt sofort der charakteristische Geruch auf. Dieser ist als aromatisch bis süßlich zu beschreiben. Durch Zugabe der Salzsäure zum Phenol (Formaldehydgemisch), ist eine leichte Schaumbildung zu erkennen. Durch das Erhitzen mit dem Brenner bildet sich ein rosa, teilweise braun gefärbter Feststoff. Fachliche Auswertung: Bei dem entstandenen rosa – braun gefärbten Stoff handelt es sich um ein Phenolharz, einem Kunststoff der zur Kategorie der Phenolplasten gehört. Er entsteht durch eine Polykondensationsreaktion und trägt den Namen Bakelit®. Bakelit ist der erste synthetisch hergestellte Kunststoff. Im ersten Schritt dieser Reaktion wird Formaldehyd durch Zugabe der konzentrierten Salzsäure protoniert (Vgl. Abb.1): H3O HCl (aq) + H 2O + (aq) + - Cl (aq) O C H H + + H (aq) + H O H H (aq) + H2O H O - H2O O C H H C+ H H (aq) Abb.1: Protonierung des Formaldehyds In der Folge reagiert das so aktivierte Formaldehyd mit dem Phenol nach einem Mechanismus der elektrophilen aromatischen Substitution am substituierten Aromaten. Dabei wirkt die Hydroxygruppe des Phenols, die als Erstsubstituent aufgefasst werden kann, ortho- und paradirigierend (vereinfacht in Abb.2 dargestellt). 195 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil OH Abb.2: Dirigierende Wirkung der Hydroxygruppe des Phenols Die OH-Gruppe des Phenols wirkt dabei auf den Aromaten aktivierend und übt auf diesen einen Elektronenschub aus. Sie wird daher als Donorgruppe bezeichnet. Verschiedene andere Erstsubstituenten und deren Einfluss auf den Aromaten sind in der folgenden Abbildung dargestellt.202 Sie werden je nach Einfluss in elektronenschiebende (Donorgroups) oder elektronenziehende (Electron-withdrawing-groups, EWG‘s) eingeteilt. Elektronenschub (aktivierend) Donor: -O - + M, +I Do -NR 2, -NH 2 -OR, -OH + M, - I -OC(=O)R, -SR -Ph -Alkyl, -COO - +I ----- Standard: -H EWG: -CH 2Cl -I +I -Cl, -Br -I +M + -NR 3 , -NH 3 + EWG -I -C(=O)R -C N -SO 3H - M, - I -NO 2 Elektronenzug (desaktivierend) Abb.3: Induktiver und mesomere Substituenteneffekt verschiedener funktioneller Gruppen 202 Vgl. Brückner, S.215. 196 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Dieser Einfluss des Substituenten auf den Aromaten, der in Abb.3 dargestellt ist, hängt von zwei Faktoren ab: Dem induktiven Effekt (I), den die Gruppe ausübt (in unserem Fall die OHGruppe) und dem Mesomeren oder auch Resonanzeffekt genannt (M). Das Sauerstoffatom der OH – Gruppe des Phenols, das in direkter Nachbarschaft zum Kohlenstoffatom des aromatischen Ringes steht, übt einen (-I) Effekt auf die Elektronendichte des aromatische Rings aus. Sie wirkt daher, wenn man nur diesen Faktor betrachten würde, elektronenziehend und müsste als EWG eingestuft werden. Jedoch wirkt sich der zweite Faktor - der Resonanzeffekt (+M) - deutlich stärker aus. Er ist als elektronenschiebend zu betrachten, so dass in der Summe der Effekte (+ M und –I Effekt) die OH- Gruppe als elektronenschiebend anzusehen ist. Daher ist sie als Donorgruppe einzustufen. Diese beiden Effekte sind in Abb.4 dargestellt: H OH O Induktiver Effekt (-I) (weniger Ausgeprägt) H H + O + O H + O Resonazeffekt (+ M) (überwiegt) Abb.4: Induktiver - und Resonanzeffekt am Phenol Der Resonanzeffekt, der in diesem Fall den Einfluss der funktionellen Gruppe so viel stärker beeinflusst, wirkt aktivierend und führt aufgrund der energieärmeren Zwischenstufe bei dem Angriff eines elektrophiles in Ortho- und Parastellung zur Bildung einer energetisch günstigeren Zwischenstufe. Das ist auch der Grund für die Regioselektivität.203 Der + M-Effekt wirkt aktivierend und damit elektronenschiebend auf den „Benzolkern“.204 Die Regioselektivität der Reaktion lässt sich bereits in dieser Resonanzformel erahnen. Die negative Ladung ist in den verschiedenen Resonanzformeln jeweils in ortho- oder paraPosition delokalisiert, so dass in diesen Positionen bevorzugt der elektrophile Angriff vonstatten gehen kann. 203 204 Vgl. Brückner, S.213. Vgl. Vollhardt, S.739. 197 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Die Regioselektivität, die die Donorgruppe OH auf den Aromaten ausübt, ist in der folgenden Abbildung gezeigt. Die Blau dargestellten Zahlen in der Abbildung stellen vereinfacht die Ladungsverteilung im Wheland – Komplex - so wird die Zwischenstufe auch genannt - dar. Auf diese Weise kann der Einfluss der Donorgruppe auf die Regioselektivität der Reaktion anschaulich beschrieben werden. Des Weiteren zeigt die Abbildung, dass aufgrund dieser unterschiedlichen Ladungsverteilung die durch die Donorgruppe im Aromaten erzeugt wird, sich auch unterschiedliche Reaktionsgeschwindigkeiten ergeben (Vgl. Abb.5) + + E + E + Do k> k Benzol kBenzol Do + 0,25 + 0,10 Do Do H + 0,30 E E > > H E H Do Do > H E Do E etwas mehr als viel mehr als E E Para Ortho Meta Abb.5: Einfluss der Donorgruppe auf Regioselektivität und Reaktivität 198 III. Jeder Carbonylverbindungen Experimenteller Teil donorsubstituierte Wheland-Komplex (Vgl.Abb.5) ist aufgrund der H elektronenschiebenden Wirkung stabiler als die Referenzverbindung E und reagiert daher auch deutlich schneller mit dem angreifenden Elektrophil. Die größtmögliche Stabilisierung des Komplexes wird jedoch erreicht, wenn das am stärksten positivierte Kohlenstoffatom in direkter Nachbarschaft zur Donorgruppe steht. Dies soll durch die Blau dargestellten Zahlen verdeutlicht werden. Um diese zu verstehen muss sich der WhelandKomplex eines donorsubstituierten Aromaten in der Resonanzformel genauer betrachtet werden. (Vgl. Abb.6a – 6c): Donor Donor Donor PARA - Angriff H E H E H E wichtigste Resonanzformel Abb.6a: Resonanzformeln des aromatischen Peptides nach dem Para-Angriff Durch einen Para – Angriff entsteht eine Resonanzformel, in der das Kohlenstoff, das die positive Ladung trägt, direkt benachbart zur Donorgruppe steht. Diese ist daher die wichtigste der drei Resonanzformeln und die am besten stabilisierte.205 Dies ist durch den höchsten Zahlenwert in Abb.5 dargestellt. Beim Angriff eines Elektrophils in meta – Position bildet sich hingegen kein solch stabiles Kation, das durch die direkte Nachbarschaft zur elektronenschiebenden Donorgruppe begünstigt ist. (Vgl. Abb.6b). Daher kann man dieser Angriffsposition einen niedrigeren Zahlenwert zuordnen. (Vgl. Abb.5). 205 Vgl. Vollhardt, S.743. 199 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Donor Donor Donor E H E E META - Angriff H H Abb.6b: Resonanzformeln des aromatischen Peptides nach Meta-Angriff Für den Ortho-Angriff ergibt sich folgender Wheland-Komplex, der durch die nachstehende Resonanzformel beschrieben werden kann: Donor Donor E H Donor E E ORTHO - Angriff H H wichtigste Resonanzformel Abb.6c: Resonanzformeln des aromatischen Peptides nach Ortho-Angriff Auch in dieser Resonanzformel steht die donorsubstituierte Gruppe in direkter Nachbarschaft zum am stärksten positiv geladenen Kohlenstoffatom im Ring. Daher ist auch diese Position für die elektrophile aromatische Substitution begünstigt. Diese aktivierende Wirkung der Hydroxygruppe lässt sich auch an der relativen Geschwindigkeit der Nitrierung an Benzolring mit verschiedenen Substituenten zeigen: 200 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil R C6H5R: Abb.7: Substituierter Benzolring Relative Geschwindigkeiten der Nitrierung bei unterschiedlich substituierten Benzolringen:206 R: OH CH3 H Cl CO2CH2CH3 CF3 NO2 - 1000 25 1 0,033 0,0037 2,6 x 10-5 6 x10-8 Als Regel lässt sich daraus ableiten: Je elektronenreicher die aromatische Verbindung ist, desto schneller erfolgt der elektrophile Angriff. Umgekehrt wird die Reaktionsgeschwindigkeit bei einem elektronenarmen Aromaten herabgesetzt.207 Von einer etwas anderen Seite wird dies im Themengebiet der Aminosäuren in der fachlichen Auswertung zum Versuch der Xanthoproteinreaktion beschrieben (Vgl. Versuch 1, Xanthoproteinreaktion). 206 207 Vgl. Vollhardt, S.738. Vgl. Vollhardt, S.738. 201 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Das in Abb.1 dargestellte aktivierte Formaldehyd reagiert nun in der Folge als elektrophil. Diese Reaktion lässt sich wie folgt beschreiben: OH H OH H H OH OH H + C OH H OH O H + H OH H H H H OH H OH H H -H H + OH OH H OH H H H OH HO H - + OH -H 2O OH OH + Formaldehyd + Phenol .... - H 2O OH ... ... ... OH OH ... OH ... OH ... Abb.8: 2.Reaktionsschritt der Phenolharzbildung208 208 Vgl. Grosse Austing, S.3. 202 III. Carbonylverbindungen Experimenteller Teil Der sich daraus bildende Kunststoff formt ein dreidimensionales Netzwerk aus. Ein Ausschnitt dieses Netzwerkes kann folgendermaßen aussehen: 209 Abb.9: dreidimensionales Netzwerk des sich bildenden Kunststoffes 210 Das aktivierte Formaldehyd reagiert mit dem aromatischen Ring des Phenols unter Bildung eines Whelandkomplexes in Orthoposition. Durch Abspaltung des Protons entsteht zunächst das zweifachsubstituierte Produkt aus Formaldehyd und Phenol. In der Folge kann dieses Produkt dann weiterreagieren, so dass sich ein hochvernetzter Kunststoff entsteht (Vgl. Abb.8). Dieser sich bildende Kunststoff trägt den Namen Bakelit und zählt zur Stoffklasse der Polymere, genauer gesagt zählt er zu den Duroplasten. Duroplastische Kunststoffe zeigen auch beim Erwärmen keine Formveränderung sondern bleiben bis zur Zersetzungstemperatur formbeständig. Bakelit ist einer der ersten großtechnischen synthetisierten Kunststoffe. Er zählt zu den Phenoplasten, da er sich aus der beschriebenen Reaktion aus Formaldehyd und Phenol durch Protonenkatalyse bildet. Didaktische Auswertung: Der Versuch könnte aufgrund der Verwendung des Formaldehyds als Edukt im Themenfeld der Carbonylverbindungen Anwendung finden, da es die Wichtigkeit der Carbonyle zeigt und einen ersten Eindruck in die Reaktionsvielfalt gibt. Formaldehyd ist zwar eine giftige 209 210 Vgl. INT.2. Vgl. Abbildungsverzeichnis [12]. 203 III. Experimenteller Teil Carbonylverbindungen Verbindung, zählt jedoch zu den wichtigsten organischen Verbindungen der chemischen Industrie. Weltweit betrug 2007 die Formaldehydproduktion 21 Mio. Tonne. 211 Hieran wird die Bedeutung dieser Verbindung deutlich. Mit Hilfe dieses Versuches soll daher einen Einblick in die Reaktionsvielfalt dieser Verbindungsklasse gezeigt werden. Der Versuch lässt sich jedoch auch problemlos im Themenfeld der synthetischen Makromoleküle - wie es im hessischen G8 Lehrplan heißt - unterbringen. In diesem kann auch die elektrophile aromatische Substitution zum Gegenstand des Unterrichts gemacht werden, was nach dem hessischen Lehrplan G8 nicht unbedingt Thema der Carbonylverbindungen ist. In den Themenkomplex passt er sicher besser, da das entstehende Produkt zur Kategorie der Kunststoffe zählt und als erster industriell hergestellter Kunststoff gilt. Der materielle Aufwand, wie auch der Zeitaufwand für die Durchführung des Versuches sind minimal. Er kann daher problemlos in den Unterricht eingebunden werden. Jedoch ist bei dem Einsatz von Formaldehyd und dem Phenol im Schülerversuch Vorsicht geboten. Der Einsatz als Schülerversuch ist laut HessGISS möglich, jedoch aufgrund der Toxizität, wie auch der Verdacht auf karzinogene Wirkung in diesem Fall der Demoversuch durch den Lehrer vor zu ziehen. Entsorgung: Der entstandene Kunststoff, wie auch die verunreinigten Glasabfälle, können im Feststoffabfall entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/praktikumsprotokolle/PP0013Darstellung_von_Bakelit.pdf (Zugriff: 12.03.2010). INT.2: http://www.zum.de/Faecher/Gk/RP/13315_Bakelit___ein_Polykondensat__der_erste_Kunststof_.pdf (Zugriff: 12.03.2010). INT.3: http://www.chemie.fu-berlin.de/chemistry/kunststoffe/pkond.htm (Zugriff: 15.03.2010). INT.4: http://www.seilnacht.com/Lexikon/k_phenol.html (Zugriff: 15.03.2010). INT.5: http://www.chemieunterricht.de/dc2/katalyse/vkat-060.htm (Zugriff: 12.03.2010). 211 Vgl. Deckwer et al.. 204 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Versuche zu Kohlenhydraten: Nachweisreaktionen: Versuchs- Name des Versuch Nummer: 1 Silberspiegel (siehe auch Aldehyde und Ketone) 2 Fehling – Probe (siehe auch Aldehyde und Ketone) 3 Seliwanoffprobe 4 5 6 7 8 Zuckerverkohlung Zauberschrift Stärkenachweis in verschiedenen Mehlen und Reis Unterscheidung Glucose und Fructose durch Iod Untersuchung der Inhaltsstoffe einer Kartoffel Reaktionen: Versuchs- Name des Versuch Nummer: 9 Gummibärcheninferno 10 Hydrolyse von Stärke Maillard Reaktion (siehe Aminosäuren) 205 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 1: Silberspiegelprobe Zeitaufwand: Materialien : Vorbereitung: 5 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 5 Minuten Variante 1: Variante 2 3 Spritzflaschen (klein) 1 neues Reagenzglas 1 neues Reagenzglas Messpipette 3 Aufbewahrungsgefäße Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Glucose * Kaliumhydroxid * Silbernitrat * C6H12O6 - R: 22-35 KOH (s) S: 26-36/37/39-45 C R: 34-50/53 AgNO3 (s) C S: 26-45-60-61 , N Ammoniak (w=0,25) R: 34-50 NH3 (aq) * S: 26-36/37/39-45C * Ammoniumsulfat , N 61 R: 36/37/38 (NH4)2SO4 S: 26-36 Xi * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 212 2,5 g 1,8 g 1,7 g Einige Tropfen 0,6 g 212 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 206 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuchsaufbau: Variante 1: Variante 2: Zu versilberndes NEUES Reagenzglas Zu versilberndes NEUES Reagenzglas Durchführung: 213 Herstellung der Lösungen: Lösung 1: Fülle 2,5 g Glucose in 100 mL Wasser (pro Gruppe werden 3,5 mL benötigt). Lösung 2: Fülle 1,8 g Kaliumhydroxid in 100 mL Wasser (Pro Gruppe werden 3,5 mL benötigt). Lösung 3: Löse 1,7 g Silbernitrat in 100 mL Wasser, gib tropfenweise einer 25 % igen Ammoniak-Lösung zu bis der entstehende braune Niederschlag wieder verschwindet. Zu dieser Lösung werden 0,6 g Ammoniumsulfat gegeben und auf 200 mL aufgefüllt. Die Lösung sollte in einer braunen Flasche aufbewahrt werden. (WICHTIG! Immer frisch herstellen, da sich bei längerer Lagerung explosives Silbernitrid (Ag 3N) bilden kann). 214 213 214 Vgl. Asselborn et al., S.369. Vgl. INT.2. 207 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Durchführung: 1. Gib 3,5 mL von Lösung 1 in ein neues Reagenzglas. 2. Gib 3,5 mL von Lösung 2 hinzu und schüttle gut durch. 3. Gib anschließend 7 mL von der Lösung 3 hinzu und schüttle 2 Minuten lang ----4. (optional: Erwärme die Flüssigkeit im Reagenzglas VORSICHTIG mit Hilfe des Brenners.) Beobachtungen: Die hergestellte Glucoselösung war farblos. Die ammoniakalische Silbernitratlösung zu Beginn braun, durch weitere Zugabe verschwand der sich bildende braune Niederschlag zunächst wieder. Eine leichte Braunfärbung war dennoch zu beobachten. Durch Vermischen der Lösungen 1 bis 3 bildete sich zunächst erneut ein braun – schwarzer Niederschlag, der die gesamte Lösung trübte, nach einer Minute war schon ein metallisches Schimmern an der Reagenzglaswand zu erkennen; nach einer weiteren Minute hat sich ein deutlicher silberfarbener Überzug an der Glaswand gebildet. Dieser blieb auch an der Reagenzglaswand haften, nach dem die Lösung ausgegossen wurde. Fachliche Auswertung: Die sogenannte Silberspiegelprobe, auch bekannt als Tollensprobe, ist eine Nachweisreaktion für Aldehyde und reduzierende funktionelle Gruppen. Aus diesem Grund kann sie als Nachweisreaktion für die Aldehydgruppe der Glucose verwendet werden. Sie ist zu Ehren des Chemikers Bernhard Tollens nach ihm benannt worden.215 Glucose ist ein Einfachzucker, ein sogenanntes Monosaccharid. Die Struktur lässt sich folgendermaßen darstellen: 215 Vgl. Deckwer et al.. 208 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil +I H O OH 1 H 2 HO 3 H 4 H 5 OH H H OH H H H OH OH OH CH 2OH Fischer - Projektion H OH HO HO H O H HO H H OH O H OH OH Haworth Projektion der 𝜶- Sesselprojektion der 𝜶- Pyranoseform der Glucose Pyranoseform der Glucose Abb.1a-c: verschiedene Darstellungsformen der Glucose In der offenkettigen Form, der Aldehydform, liegt Glucose in Lösung nur zu 0,1% vor. 216 Nur in dieser offenkettigen Form wirkt sie daher reduzierend. Aus diesem Grund muss mit konzentrierten Lösungen gearbeitet werden.217 Die Glucose liegt in Allgemeinen vorwiegend als 6-Ring vor (vgl.Abb.1b und 1c), das heißt, die Aldehydgruppe hat mit dem Sauerstoff der Hydroxygruppe des letzten chiralen C-Atom ein intermolekulares Halbacetal gebildet. Die in Abb.1a dargestellte Fischer-Projektion der Glucose zeigt die 𝐃-Glucose. Das ‚D‘ bedeutet, dass die Hydroxygruppe, die am weitesten vom ersten asymmetrischen Kohlenstoffatom, dem C2 – Atom entfernt ist, auf der rechten Seite steht. Das ‚D‘ im Namen der D – Glucose leitet sich vom lateinischen Wort dexter (rechts) ab. Allgemein kann man die Reaktion von Glucose mit dem Silberkation folgendermaßen zusammenfassen: H +I +I + + 2 Ag (aq) C R +III O O (aq) R 0 C + 2 Ag O H (aq) Abb.2: Reaktion von Silber(I) mit Glucose Doch was läuft im Einzelnen bei dieser Reaktion ab? 216 217 Vgl. Asselborn et al., S.360. Vgl. Asselborn et al., S.360. 209 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Die Glucose wird zur Carbonsäure (der Gluconsäure) oxidiert, während Silber(I) zu elementarem Silber reduziert wird (Vgl.Abb.3): Oxidation +I H O H OH HO +III HO H H + H2O H OH H OH OH HO (aq) O + +2H H H OH H OH CH 2OH - (aq) +2e CH 2OH (aq) (aq) Gl ucos e Gl ucons ä ure Reduktion +I [Ag(NH3)2] + 0 - (aq) +e Ag (s) + 2 NH3 |x2 (aq) Si lberdiami n - Komplex Abb.3: Betrachtung des Reduktionsund Oxdiationsvorgangs der Tollensprobe Durch die Oxidation der Glucose zur Gluconsäure entstehen Protonen (Vgl.Abb.3) Zur Verschiebung des Gleichgewichtes zugunsten der Bildung der Gluconsäure müssen die Protonen dem System entzogen werden, so dass im alkalischen Medium gearbeitet werden muss. Dies erklärt, warum eine Base zu gesetzt werden muss, nicht jedoch warum diese Base Ammoniak sein muss. H2O AgNO3 + 2 Ag - (aq) + Ag (s) + 2 OH (aq) (aq) + NO3 - Ag2O (aq) (s) + H2O Abb.4: 1.Schematischer Lösungsvorgang von Silbernitrat 2.Reaktion von Silber(I) mit den Hydroxidionen 210 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Würde man anstelle von Ammoniak als Base lediglich Natronlauge verwenden, würden die Hydroxidionen die gelösten Silberkationen als braunes Silberoxid ausfällen (Abb.4). Dies würde jedoch verhindern, dass die Silberionen frei zur Glaswand ‚wandern‘ und sich nach der Reaktion mit der Glucose als elementares Silber an dieser abscheiden könnten. Daher dient der Ammoniak, der sowohl als Base auftritt und somit die Funktion der Gleichgewichtsverschiebung übernimmt, auch dazu, die Silberionen in Form des löslichen Silberdiaminkomplexes in gelöstem Zustand in Lösung zu halten. NH3 (aq) + Ag2O (s) + 4 NH3 H2O (aq) + H2O NH4 + (aq) + - OH 2 [Ag(NH3)2] + (aq) (aq) + - 2 OH (aq) Abb.5: Bildung des Silberdiaminkomplexes Dieses komplexierte Silberkation ist das eigentliche Oxidationsmittel. Warum sich der Silberspiegel jedoch an der Glaswand bildet, erklärt Dagmar Wiechoczek auf der Seite von Prof. Blumes Bildungsserver folgendermaßen: „Glas wirkt wie ein Ionenaustauscher. Es adsorbiert auf diese Weise Silber-Ionen. An diesen Stellen setzt die Reduktion ein und bildet viele Kristallkeime, die den festhaftenden Überzug bilden.“218 Eine halbquantitative spezifische Nachweismöglichkeit für Glucose ist der sogenannte Glucose-Oxidase-Test (GOD – Test), der in der Medizin Anwendung findet. Des Weiteren kann die Fehlingprobe sowie die Schiffsche-Probe, die auf Aldehydgruppen hin testet, als Nachweismethode herangezogen werden. (Vgl. Abschnitt Carbonylverbindungen: Versuch Fehlingprobe, Vgl. Abschnitt Carbonylverbindungen: Versuch Schiffsche-Probe). Didaktische Auswertung: Dieser Versuch, der als Nachweis für die reduzierend wirkende Aldehydgruppe dient und als Zuckernachweis eingesetzt werden kann, sollte meiner Meinung nach von jedem Schüler während seiner Schulzeit einmal selbst durchgeführt werden. Es ist sicher für jeden Schüler etwas besonderes, ein Reagenzglas mit Silber zu überziehen. Allerdings dürfte der 218 INT.2. 211 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Kostenfaktor, der durch den Verbrauch von Silbernitrat und neuen Reagenzgläsern entsteht ein Problem darstellen. Des Weiteren wäre es möglich, alte bzw. gebrauchte Reagenzgläser zu verwenden, die zuvor mit Aceton gereinigt wurden. Dies könnte zwar die Reaktion verlangsamen, evtl. auch den Einsatz eines Wärmebades erfordern, aber doch die Kosten senken. Der theoretische Hintergrund des Versuches ist - wie man erkennen kann - wichtig und Lehrplanrelevant. Er ist im hessischen G8 Lehrplan in der Jahrgangsstufe 11 im GK und LK unter dem Punkt Nachweisrektionen für Kohlehydrate vorgegeben. Sicher macht es auch viele Schüler neugierig was bei dieser Reaktion im Einzelnen abgelaufen ist. Da die Versilberung von Christbaumschmuck auf die gleiche Weise wie die Versilberung im Reagenzglas vonstatten geht, wäre die Versuchsdurchführung vor Weihnachten für die Schüler noch einmal etwas besonderes. Entsorgung: Die Reaktionslösungen werden, da sie Silberkationen enthalten, zunächst mit konz. Salzsäure salzsauer gemacht. Das ausfallende Silberchlorid setzt sich über Nacht am Boden ab. Der Überstand enthält nur noch geringste Spuren von Silber und kann daher abdekantiert werden. Der Niederschlag wird auf diese Art eingeengt und zum Silberabfall gegeben. Der bereits abdekantiert Überstand, kann nun neutralisiert und im anorganischen Schwermetallabfall entsorgt werden. Wichtig ist, dass die ammoniakalische Silbernitratlösung immer frisch hergestellt wird, da sich bei längerer Lagerung ein hochexplosives Silbernitrid (Ag3N) bilden kann.219 Literatur: Internetquellen: INT 1: http://www.chemie.uni-regensburg.de/Organische_Chemie/Didaktik/Keusch/D-Tollensd.htm (Zugriff: 23.03.2010). INT 2: http://www.chemieunterricht.de/dc2/tip/12_00.htm (Zugriff: 23.03.2010). 219 Vgl. INT.2. 212 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 2: Fehlingprobe Zeitaufwand: Vorbereitung: 5 Minuten Durchführung: 6 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : 3 Reagenzgläser (50 mL) Spatel Messzylinder 100 mL 1 Becherglas (250 mL) 4 Bechergläser (100 mL) Messpipette + Peleusball Bunsenbrenner + Dreifuß Pipette Chemikalien: Stoffbezeichnung Glucose * Saccharose * Fructose * Summenformel C6H12O6 (s) C12H22O11 (s) C6H12O6 (s) Gefahrensymbole R- und S-Sätze - - - Kalium-NatriumTartrat * * - 1g R: 22-26/38-50/53 Xn S: 22-60-61 ,N * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 220 1g S: 26-37/39-45 C CuSO4 * 5 H2O (s) - R: 35 NaOH (s) Kupfersulfat Penthydrat 1g S: 22-24/25 * Natriumhydroxid - R: - KNa[C4H4O6] (s) Menge 35 g 10 g 7g 220 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 213 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt 2. Schritt Jeweils 1 g des Zuckers + 1.Glucose 1. 10 mL dest. Wasser 2.Saccharose 3. 2. 3.Fructose 3. Schitt: 4. Schritt: 1. 2. 3. Lösung aus Fehling I und II (1:1) 5. Schritt: Variante 1: Zuckerlösungen 1-3 mit Fehling Wasserbad Variante 2: Bunsenbrenner 214 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Durchführung: Herstellung der Lösungen: Fehling - Lösungen: 221 und 222 Fehling 1: Fülle 7 g Kupfersulfat in 100 mL dest. Wasser (pro Gruppe wird 1 mL benötigt). Fehling 2: Fülle 35 g Kalium-Natrium-Tartrat und 10 g Natriumhydroxid in 100 mL dest. Wasser (pro Gruppe wird 1 mL benötigt). 1. Löse jeweils 1 g Glucose, Saccharose und Fructose in 10 mL Wasser 2. Fülle je ein Reagenzglas 2 cm hoch mit den hergestellten Zuckerlösungen 3. Gib jeweils 10 mL Fehling I und 10 mL Fehling II in ein Becherglas. 4. Gib zu den Zuckerlösungen 2 mL der hergestellten Fehling (Fehling I + II) – Lösung. 5. Stelle die Reagenzgläser in ein Wasserbad, erwärme mäßig mit Hilfe des Bunsenbrenners. Beobachtungen: Die Zucker (Glucose, Saccharose und Fructose) sind weiße, pulverartige Feststoffe, die sich in Wasser lösen. Die Zuckerlösungen sind klare Flüssigkeiten. Fehling I ist eine hellblaue, Fehling II eine klare Lösung. Die 1 zu 1 - Mischung aus Fehling I und II ergibt eine tiefblau gefärbte Lösung. Die klaren Zuckerlösungen färben sich nach Zugabe von Fehling ebenfalls tiefblau. Durch das Erwärmen im Becher färbt sich die Fructoselösung (Lösung 3) gelb – orange und es bildet sich ein Niederschlag. Die Glucoselösung (Lösung 1) färbt sich zunächst grünlich und verändert sich allmählich zu einer braunen Lösung, in der ein orange–roter Niederschlag zu erkennen ist. Die Saccharoselösung (Lösung 3) zeigt keine Veränderung. 221 Vgl. INT.1. Vgl. Asselborn et al., S.369. 222 215 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Fachliche Auswertung: Bei den verwendeten Zuckern handelt es sich um Vertreter der Stoffklasse der Kohlenhydrate. Glucose und Fructose sind wichtige Monosaccharide. Glucose ist als Traubenzucker und Fructose als Fruchtzucker bekannt. Kohlenhydrate im Allgemeinen spielen eine wichtige Rolle bei der Energiegewinnung und Energiespeicherung in der Fauna und Flora. Sie sind wichtige Nahrungsbestandteile. Die Kohlenhydrate lassen sich in Mono-, Di-, Oligo- und Polysaccharide unterteilen. Ihr Abbau im menschlichen Körper dient der lebenswichtigen Energiegewinnung. Sie werden in der Natur durch Photosynthese Prozesse hergestellt und dienen Pflanzen als Baustoff und Energieträger. Die Pflanzen stellen dabei aus Wasser (H2O) und Kohlendioxid (CO2) und der Energiegewinnung aus dem Sonnenlicht die wichtigen, energiereichen, Kohlenhydrate her. Durch den Photosyntheseprozess werden von der gesamten Pflanzenwelt - so wird geschätzt innerhalb eines Jahres, 60 Milliarden Tonnen organisches Material aufgebaut.223 Ein Beispiel: Ein Buchensamen wiegt etwa 0,2 g, wobei etwa die Hälfte (0,1 g) Kohlenstoff bildet. Aus diesem Samen geht in rund 100 Jahren ein Baum hervor, der etwa 5000 kg wiegt. In diesem Baum macht der Kohlenstoff einen Anteil von rund 1250 kg aus. Der Kohlenstoff, der in organisches Material, gebunden ist stammt dabei aus dem Kohlendioxid der Luft. Vereinfacht kann diese Photosynthese - Reaktion, die zur Bildung der organischen Substanzen wie den Kohlenhydraten führt, folgendermaßen dargestellt werden: h 6 CO2 (g) + 6 H2O C6H12 O6 (s) + 6 O2 (g) Abb.0: Netto Gleichung der oxygenen Photosynthese So baut eine Sonnenblume bei voller Sonnenbestrahlung im Schnitt 1,823 g Stärke pro m2 Blattfläche auf. Als „Abfallprodukt“ dieses Prozesses entsteht der für die Pflanzen unbrauchbare Sauerstoff. 223 Vgl. Bibliographisches Institut und F.A. Brockhaus AG. 216 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Glucose lässt sich folgendermaßen darstellen: D-Glucose: OH H O H OH H H OH HO +I H HO H OH H OH H OH - D - Glucose OH H OH CH 2OH H H OH H H OH H H OH HO OH Fischer - Projektion Kettenform O H OH H O C H O OH HO H H OH - D - Glucose Haworth - Formel Pyranoseform (Halbacetal) Abb.1: Strukturformeln der D-Glucose Glucose liegt nur zu einem geringen Prozentsatz (von ca. 0,1 %) in Lösung als offenkettige Aldehydform vor. Der Großteil der Glucose liegt in Ringform, der sogenannten Pyranoseform, als Halbacetal vor. Dabei kann sich, wie in Abb.1 dargestellt, die AlphaGlucose (-Glucose) in die Beta-Glucose (-Glucose) umwandeln. Die Haworth-Darstellung der Glucose gibt die Ringstruktur des Moleküls wieder. Glucose ist eine Aldohexose und gehört damit zur Gruppe der Aldehyde.224 Der Unterschied zwischen D und L – Glucose wird in der fachlichen Auswertung zum Versuch der Silberspiegelprobe beschrieben (Vgl. Versuch: Silberspiegelprobe). 224 Vgl. Asselborn et al., S.360. 217 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil D-Fructose: H H O H H OH HO HO OH H OH OH OH O +II HO OH H CH 2OH H HO OH O H H H OH H OH CH 2OH H H H OH HO OH H HO Kettenform (Ketose) O OH H OH O H HO H OH OH H OH Furanoseform Pyranoseform Abb.2: Strukturformeln der D-Fructose Bei der Fructose, die in Honig und Früchten enthalten ist, handelt es sich um einen Isomeren Zucker der D-Glucose. Fructose ist eine Ketohexose und gehört damit zur Stoffklasse der Ketone. Kristalline Fructose liegt in Ringform sowohl in 𝜶-Form oder in 𝜷-Form vor. Bei den Ringformen handelt es sich in kristalliner Form um 6 Ringe, den sogenannten Pyranosen. Löst man diese jedoch, stellt sich durch die in Abb.2 dargestellten Umlagerungen ein Gleichgewicht von 57 % 𝜷-Pyranose, 3 % 𝜶-Pyranose, 31% 𝜷-Furanose, 9% 𝜶-Furanose und weniger als 1% als offenkettige Ketoform ein.225 Diese Umlagerung kann durch das Phänomen der Mutarotation sichtbar gemacht werden. Bei der Mutarotation ändert sich der Drehwinkel einer frisch angesetzten Lösung eines optisch aktiven Zuckers mit der Zeit. Diese Drehwinkeländerung kann durch ein Polarimeter beobachtet werden. Die beiden C6H12O6 Isomere (Monosaccharide Fructose und Glucose) können durch die Seliwanoff Reaktion oder den sogenannten GOD – Test unterschieden werden (Vgl. Versuch: Seliwanoff Reaktion). Als Baustein der Saccharose, dem dritten verwendeten Zucker liegt sie hingegen als Furanose (5-Ring) vor. Saccharose ist in Abb.9 dargestellt. 225 Vgl. Asselborn et al., S.361. 218 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Die Fehlingprobe ist, wie die Silberspiegelprobe, ein Nachweis auf reduzierend wirkende Gruppen. In der Glucose findet sich diese in Form der Aldehydgruppe. Diese kann nach folgender Reaktion zur Carbonsäure (der Gluconsäure) oxidiert werden (Vgl. Abschnitt Kohlenhydrate, Versuch 2, Silberspiegelprobe): Oxidation: +III H +I R - + 2 OH C R O O + H2O + 2 e C (aq) OH (aq) (aq) Reduktion: +I +II Cu 2+ - (aq) +I + 2 Cu Cu +1e (aq) + |x2 (aq) +I Cu 2O(s) + H2O - 2 OH + (aq) Gesamtreaktion: H +III +II +I 2+ + 2 Cu C R O (aq) - (aq) + 4 OH (aq) R O +I Cu 2O(s) + 2 H2O C OH (aq) Abb.3 und 4: Redoxreaktion eines Aldehydes mit Cu(II) Der rote Niederschlag der Reaktion ist auf das sich bildende Kupfer(I)-Oxid (Cu2O) zurückzuführen. Dieser Nachweis ist - wie auch die Silberspiegelprobe - kein spezifischer Nachweis für Glucose, da lediglich auf reduzierend wirkende Gruppen getestet wird. Anders beim GOD – Test: Bei diesem erfolgt die selektive Oxidation von Glucose durch das Enzym Glucose-Oxidase. Die Fructose zeigt bei der Fehlingprobe ebenfalls ein positives Ergebnis, obwohl sie keine reduzierend wirkende Gruppe besitzt (Vgl.Abb.2). Aufgrund der Möglichkeit der Umlagerung in alkalischer Lösung zu Glucose und Mannose verläuft die Nachweisreaktion trotzdem positiv. Die Umlagerungsprodukte weisen eine reduzierend wirkende Aldehydgruppe auf (Vgl. Abb.1, Abb.5). 219 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Die Umlagerung der Fructose im alkalischen Medium kann dabei wie folgt beschrieben werden: O H C H H OH H C OH C O C C OH HO C H H C OH HO C H H C OH H C OH - < OH > HO C H H C OH H C OH H C OH H C OH CH 2OH CH 2OH CH 2OH D - Glucose O H C D - Fructose Endiol HO C H HO C H H C OH H C OH CH 2OH D - Mannose Abb.5: Umlagerung von Fructose in Mannose und Glucose Bei der Fehlingprobe wird sich die schwächere Oxidationskraft der Cu(II) – Ionen in alkalischem Medium zu Nutze gemacht. In diesem Medium werden sie nur bis zum Cu(I) reduziert und fallen als Kupfer(I)-oxid (Cu2O) aus (Vgl.Abb.4). Kupfer(I)-Oxid weist dabei eine charakteristische rote Farbe auf, an der der positive Nachweis auf reduzierend wirkende Zucker / Gruppen abgelesen werden kann. 226 Das zusätzlich verwendete Kalium-Natrium-Tartrat hat, wie der Ammoniak im Versuch zur Tollensprobe (Vgl. Abschnitt Kohlenhydrate, Versuch 1, Silberspiegelprobe), die Aufgabe, den oxidierend wirkenden Teil - hier das Kupfer(II) - in Lösung zu halten. Ohne Zugabe dieses Tartrates, würden die Kupfer(II)-Ionen mit dem Hydroxid zu schwerlöslichem Cu(OH)2 reagieren und ausfallen. Demnach würde eine Reaktion lediglich am Boden des Reaktionsgefäßes ablaufen. Die deutliche rot-orange Färbung der Lösung würde sicherlich ausbleiben. 226 Vgl. INT.1. 220 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Tartrat ist das Salz der Weinsäure. Es bildet mit Kupfer(II) den charakteristisch tiefblau gefärbten, Kupfertartratkomplex (Vgl.Abb.6). Die Komplexbildung lässt sich folgendermaßen beschreiben: KNaC4H4O6 (s) 2+ 2 Cu (aq) + C 4H4O 6 2 [C4H4O6] 2(aq) 2- (aq) + Na + (aq) + + K (aq) [Cu2(C 4H4O6)2(H 2O)4] + 4 H2O (aq) dunkelblau Abb.6: Bildung des Tartratkomplex H2O O O O 2+ O - Cu C C OH C OH H2O H2O HO C HO C 2+ C C Cu O O - H2O O C O - (aq) Abb.7a: Kupfer(II)-Tartratkomplex [Ditartratotetraaquadikupfer(II)] 227 In der Literatur ist jedoch noch eine weitere mögliche Darstellung des Kupfer(II)Tartratkomplexes zu finden. So wird der sich im alkalischen Milieu bildende Komplex, als quadratisch-planar beschrieben. 228 Saccharose: Saccharose ist der dritte verwendete Zucker. Der Name leitet sich vom lateinischen Wort ‚Saccharum‘ ab, was soviel wie Zucker bedeutet. Saccharose ist als Haushaltszucker bekannt und findet als dieser vielseitig Verwendung in unserm Alltag. Der jährliche pro-Kopf- 227 228 Vgl INT.4. Vgl. Hollemann / Wieberg, 102. Aufl., S.1447. 221 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Verbrauch (2005/2006) in Deutschland liegt bei 34 kg. Die weltweite Jahresproduktion liegt bei ca. 160,6 Millionen Tonnen. Neben seinem charakteristisch süßen Geschmack dient er auch als Energiequelle für viele Organismen. Beinahe alle Organismen können Saccharose als Nahrungsquelle nutzen.229 Anders als Glucose und Fructose ist Saccharose ein Disaccharid mit der Summenformel C12H22O11 und setzt sich aus den Monosaccharidbausteinen Glucose und Fructose zusammen. Beide sind 𝜶-𝜷,(1,2) glycosidisch miteinander verbunden (Vgl.Abb.8). Saccharose OH HO HO O 1 OH O OH OH 2 OH O HO -1-2 - verknüpft Abb.8: Strukturformel der Saccharose Zwar reagieren - wie der Versuch gezeigt hat - die Monosaccharidenbausteine (Fructose und Glucose) positiv mit Fehling, doch zeigt Saccharose – anders, als dies auf Anhieb zu erwarten wäre - keine positive Fehlingprobe und auch die Silberspiegelprobe verläuft negativ. Saccharose zählt zu den nichtreduzierend wirkenden Zuckern. Der Grund ist, dass - anders als in reiner Glucose - keine offenkettigen Aldehydformen (Vgl.Abb.2) - welche reduzierend wirken könnten - vorliegen, sondern bedingt durch die glycosidische Verknüpfung beider Monosaccharide keine Ringöffnung mehr möglich ist. In Ringform wirkt die Glucose nicht reduzierend. Saccharose ist sehr gut wasserlöslich, es lösen sich in 1 Liter bei 20 °C 2400g.230 Die Fehlingprobe testet einfach und schnell auf reduzierend wirkende Gruppen und kann daher mit Hilfe anderer Nachweismethoden zur Unterscheidung verschiedener Zucker herangezogen werden. 229 230 Vgl. Deckwer et al.. Vgl. Deckwer et al.. 222 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Didaktische Auswertung: Der Versuch ist als Nachweis für reduzierend wirkende Kohlenhydrate, wie auch der Versuch zur Silberspiegelprobe, ein wichtiger Bestandteil im Themenfeld der Kohlehydrate und sollte in diesem auf jeden Fall Anwendung finden. Im hessischen G8 Lehrplan sind die Kohlenhydrate in 11G.2 – Kohlenstoffchemie II verankert. Der Versuch lässt sich bei den verbindlichen Inhalten: ‚Reaktion/Nachweisreaktionen‘ in Thema Kohlenhydrate einordnen. Die Effekte sind gut zu erkennen, die Chemikalien mindergiftig.231 Die Unterscheidung der verschiedenen Zucker kann aufgrund der unterschiedlichen Farbigkeit der Lösungen, sowie eines auftretenden Niederschlags an Kupfer(I)-Oxid erkannt werden. Daher kann der Versuch problemlos als Schülerversuch eingesetzt werden. Es ist allerdings darauf hinzuweisen, dass es trotz einer Farbveränderung der Lösung (welche einen positiven Nachweis deutlich anzeigt) sein kann, dass sich der rote Niederschlag des Kupfer(I)-Oxides nicht immer sofort einstellt. Nach wenigen Minuten sollte der Niederschlag aber in jedem Fall sichtbar werden. Die Durchführung sowie die anschließende Auswertung des Versuchs kann sicherlich eine Doppelstunde in Anspruch nehmen. Gerade die Erklärungen zu der Keto-Enol-Tautomerie (Vgl.Abb.6), die den positiven Nachweis der Fructose erklärt, ist nicht ganz einfach zu verstehen. Alles in allem jedoch ist es ein sehr schöner Versuch, der das Themenfeld der Kohlenhydrate bereichert. Entsorgung: Alle Lösungen, die in Kontakt mit Fehling gekommen sind, werden neutral im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt. Literatur: Internetquellen: INT 1: http://www.uni-regensburg.de/Fakultaeten/nat_Fak_IV/Organische_Chemie/Didaktik/Keusch/DFehling-d.htm (Zugriff: 27.02.2010). INT 2: http://www.chm.tu-dresden.de/oc/med/WS06_07/v7.pdf (Zugriff: 27.02.2010). INT.3: http://www.axel-schunk.de/experiment/edm0503.html (Zugriff: 27.02.2010). INT.4: http://www.chids.de/dachs/expvortr/712MenueOC_Boeckler.doc (Zugriff: 27.02.2010). 231 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 223 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 3: Seliwanoffprobe Zeitaufwand: Vorbereitung: 4 Minuten Durchführung: 6 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : Reagenzglas 2x Bunsenbrenner Reagenzglasgestell Becherglas 2x (100 mL + 250 mL) Dreifuß Drahtnetz Messpipette Peleusball Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Fructose * C6H12O6 (s) - - (Resorcin) 1,3-Dihydroxybenzol Xn * Glucose * R: 22-36/38-50 C6H4(OH)2 (s) C6H12O6 (s) S: 26-61 , N - - Salzsäure (konz.) (w=0,37) * H2O (l) - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 232 S: 26-36/37/39-45 C * Dest. Wasser R: 34-37 HCl (konz.) - 1 Spatelspitze 10 mg 1 Spatelspitze 20 mL 40 mL 232 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 224 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: 1. Glucose 2. Fructose Wasserbad mit den Reagenzgläsern Dreifuß mit Drahtnetz Becherglas mit des Wasser + Messpipette Bunsenbrenner Durchführung: 0. Erhitze Wasser in einem Wasserbad mit Hilfe eines Bunsenbrenners bis zum Sieden. Herstellen der Seliwanoff-Reagenz: Löse 10 mg Resorcin (1,3-Dihydroxybenzol) in 20 mL konz. Salzsäure. Verdünne anschließend mit 40 mL dest. Wasser. 1. Gib in je ein Reagenzglas eine Spatelspitze des zu untersuchenden Zuckers und 3 mL dest. Wasser. Reagenzglas 1: Glucose + 3 mL Wasser, Reagenzglas 2: Fructose + 3 mL Wasser. 2. Gib jeweils 5 mL des Seliwanoff-Reagenz zu. 3. Stelle die Reagenzgläser für 3 Minuten in das siedende Wasserbad. Beobachtungen: Die Zuckerlösungen sind farblos. Auch nach Zugabe der salzsauren Resorcin-Lösung bleiben beide farblos. Nach 1 – 2 Minuten im siedenden Wasserbad färbt sich die Fructose Lösung hellrosa bis rot. Die Glucose Lösung bleibt farblos. 225 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Fachliche Auswertung: Die Seliwanoffprobe ist ein weiterer Zuckernachweis. Sie kann zur Unterscheidung zwischen Ketosen (wie der Fructose) und Aldosen (wie der Glucose) herangezogen werden. Denn anders als die Fehling- und Silberspiegelprobe läuft sie nicht im alkalischen Milieu ab. In diesem erfolgt nämlich durch Keto-Enol-Tautomerie eine rasche Umlagerung von Fructose in Glucose oder Mannose, die beide reduzierend wirkende Gruppen besitzen (Vgl.Abb.1). So dass nach kurzer Zeit selbst bei der an sich nicht reduzierend wirkenden Fructose ein positiver Silberspiegel auftreten wird. O H C H H OH H C OH C O C C OH HO C H H C OH HO C H H C OH H C OH - OH HO C H H C OH H C OH H C OH H C OH CH 2OH CH 2OH CH 2OH D - Glucose O H C D - Fructose Endiol HO C H HO C H H C OH H C OH CH 2OH D - Mannose Abb.1: Keto – Enol – Tautomerie Die Seliwanoffprobe testet nicht auf reduzierend wirkende Zucker, sondern zeigt durch die Bildung eines charakteristischen Farbstoffes durch Kondensationsreaktion von dem sich im sauren Milieu aus Fructose bildenden 5-(Hydroxymethyl)Furfural mit der Nachweisreagenz Resorcin einen positiven Nachweis an. Im sauren Milieu verläuft die Umlagerung von Glucose in Fructose deutlich langsamer, so dass durch das zeitlich unterschiedliche Auftreten des Rosafarbstoffes die beiden Stoffe unterschieden werden können. Bei der Glucoselösung braucht die Bildung deutlich länger, während diese bei Fructose schon nach 1 – 2 Minuten erreicht ist. Der Grund ist, dass sich 226 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil die im sauren Milieu benötigten Furfurale erst aus Aldosen deutlich langsamer bilden.233 Daher ist dieser Versuch deutlich besser zur Unterscheidung zwischen Fructose und Glucose geeignet. Mehrfachzucker - wie die Saccharose - werden durch das Erhitzen in saurer Lösung gespalten und liegen daher als Monosaccharide vor, so dass die Voraussage einer positiven Reaktion durch die Betrachtung seiner Monosaccharidbausteine vollzogen werden kann. Wie in Abb.1 zu erkennen ist, unterscheiden sich Fructose (die zur Klasse der Ketosen gehört) und Glucose (die eine Aldose ist) durch die Stellung ihrer Carbonylgruppe. Während die Carbonylgruppe bei der Glucose endständig ist (demnach das Kohlenstoffatom, das die Carbonylgruppe trägt nur mit einem Kohlenstoffatom verbunden ist) ist sie bei Fructose einer Ketose - nicht endständig (hier ist das Carbonylkohlenstoffatom mit zwei weiteren Kohlenstoffatomen verbunden). Diese Endständigkeit der Carbonylgruppe wird Aldehydgruppe genannt und zeichnet nicht nur die Glucose aus, sondern alle Aldosen. Die Aldehydgruppe ist auch der Grund für die reduzierende Wirkung der Aldosen (Vgl. Protokoll zur Fehlingprobe und Silberspiegelprobe). Ganz anders ist dies bei Ketosen, diese besitzen keine Carbonylgruppe in endständiger Position. Ihre funktionelle Gruppe wird daher als Ketogruppe bezeichnet. Die Ketogruppe an sich wirkt nicht reduzierend. Die Kohlenhydrate (Fructose und Glucose) die beide die Summenformel C6H12O6 besitzen und durch diesen Versuch unterschieden werden sollen, weisen neben der unterschiedlichen Kettenform, die zu Ehren des Chemikers Emil Fischer auch als Fischerprojektion bekannt ist, auch Unterschiede in der Ringform auf. In dieser Halbacetalform liegt der größte Teil der beiden Zucker in Lösung vor. Glucose beispielsweise liegt nur zu einem geringen Prozentsatz von ca. 0,1 % in Lösung als offenkettige Aldehydform vor. Der Großteil der Glucose liegt in Pyranoseform als Halbacetal vor.234 Dieses ist in Haworth-Projektion in Abb.2 dargestellt: 233 234 Vgl. INT.1. Vgl. Asselborn et al., S.360. 227 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil OH O H HO +I H H H H Haworth - Projektion O H H OH OH HO OH OH H H OH H OH CH 2OH H OH HO HO H H H O Sesselkonformation H OH OH Abb.2: D-Glucose in offenkettiger und Pyranoseform. Dargestellt in Fischer- und Haworth-Projektion sowie Sesselkonformation Die Fructose liegt hingegen hauptsächlich als Furanose und nicht als Pyranose vor. Dargestellt in Abb.3. HO OH O H HO HO H OH H OH OH O H HO OH H OH H Abb.3: Fructose in Furanoseform, dargestellt in Haworth-Projektion Gerade das Vorliegen der Fructose in Furanoseform ist entscheidend für die Unterscheidung beider Stoffe durch die Seliwanoffreagenz. Durch Erhitzen im siedenden Wasserbad wandelt sich die in der Furanose vorliegende Fructose in das 5-(Hydroxymethyl)Furfural um: HO OH O H HO HO O O OH H OH H - 3 H2O Abb.4: Bildung des Hydroxymethylfurfurals235 235 Vgl. INT.1. 228 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Das sich unter diesen Bedingungen bildende 5-Hydroxymethylfurfural reagiert dann in der Folge mit dem Resorcin in einer Kondensationsreaktion zu dem roten Farbstoff. Diese Reaktion kann schematisch wie folgt dargestellt werden: HO OH HO O O O O + 2 + 2 H2O OH 5-Hydroxymethyl furfural O Res orci n OH Abb.5: Seliwanoffreaktion – Bildung des roten Farbstoffes 236 Unter diesen stark sauren Bedingungen reagiert Hydroxymethylfurfural mit dem Resorcin unter Wasserabspaltung zu dem dargestellten Molekül, das für die rosa Farbe der Lösung verantwortlich ist. Glucose kann selbst keine Furanoseform bilden, so dass bei der Glucoselösung der positive Nachweis nicht gelingt. Didaktische Auswertung: Die Seliwanoffprobe ergänzt die schon behandelten Nachweise der Fehling- und Tollensprobe um einen wichtigen Aspekt. Zum einen testet sie nicht allein auf reduzierend wirkende Gruppen, sondern macht sich die Bildung eines Furfurals aus Fructose bei starker Hitze zu Nutze. Dieses sich bildende Furfural bildet mit dem Resorcin einen charakteristischen rosa-roten Farbstoff. Des Weiteren kann mit Hilfe dieses Versuches eine Unterscheidung zwischen Fructose und Glucose vollzogen werden, da sich der Versuch in saurem Medium abspielt, was die Umlagerungsreaktionen der Zucker behindert. Daher bietet sich dieser Versuch sehr für das Themengebiet der Kohlenhydrate an, da er über den einfachen Nachweis des Zuckers hinaus in der Unterscheidung zwischen diesen beiden Monosacchariden Anwendung finden kann. 236 Vgl. INT.2. 229 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Der Versuch erweitert den Katalog der einfachen und unkomplizierten Nachweisreaktionen von Zuckern und erfüllt daher auch die im hessischen G8 Lehrplan unter 11G.2 geforderten Themengebiete wie Nachweise, Strukturen und Unterscheidung der unterschiedlichen Kohlenhydrate. Des Weiteren ist eine Anwendung als Schülerversuch denkbar, da den einzusetzenden Chemikalien keine Beschränkung auferlegt sind. Das einzige Manko des Versuchs steckt in der Verwendung des Resorcins, das zur Bildung des Farbstoffs benötigt wird. Es könnte sein, dass dieses nicht in allen Schulen vorrätig ist. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für organischen Abfälle entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.axel-schunk.de/experiment/edm0602.html (Zugriff: 24.02.2010). INT.2: http://www.chids.de/dachs/expvortr/657Zucker_Fritsch_Scan.pdf (Zugriff: 24.02.2010). 230 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 4: Zuckerverkohlung Zeitaufwand: Vorbereitung: 1 Minute Durchführung: 3 Minuten Nachbereitung: 5 - 7 Minuten Materialien : Becherglas mit kleinem Durchmesser Messpipette 10 mL Glasstab Löffel Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Schwefelsäure (konz.) S: 26-30-45 C * Haushaltszucker (Saccharose) R: 35 H2SO4 (konz) 10 mL C12H22O11 (s) - 30 g - 3 mL * Wasser dest. * H2O - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 237 237 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 231 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt: 2. Schritt: Löffel mit Haushaltszucker Pipette mit dest. Wasser Messpipette (10 mL) Becherglas eng (250 mL) Konzentrierte Schwefelsäure Durchführung: 238 Achtung: Der Versuch muss aufgrund sich bildender Schwefelsäure- / Schwefeldioxid – Dämpfe in jedem Fall im Abzug durchgeführt werden! 1. Fülle 30 g Haushaltszucker (Saccharose) in ein 250 mL Becherglas mit engem Querschnitt. 2. Gib 3 Pipettenfüllungen dest. Wasser hinzu (ca. 3 mL). 3. Füge anschließend 10 mL konzentrierte Schwefelsäure zu. Beobachtungen: Der Haushaltszucker ist eine weiße kristalline Substanz. Die 30 g bedecken lediglich den Boden des Becherglases. Nach Zugabe des destillierten oder entionisierten Wassers zeigt sich keine große Veränderung. Nach Zugabe der konzentrierten Schwefelsäure färbt sich der weiße Zucker zunächst leicht gelblich, dann rotbraun und schließlich nach rund einer Minute schwarz. Innerhalb von wenigen Minuten nimmt das Volumen des Zuckers stark zu. Eine schwarze Säule wächst aus dem Becherglas heraus. 238 Vgl. INT.2. 232 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Fachliche Auswertung: Konzentrierte Schwefelsäure ist eine starke Säure mit einem pKs – Wert von – 3.239 Sie zählt zu den stärksten Säuren. Neben ihrer Säurestärke wirkt sie des Weiteren wasserentziehend (hygroskopisch) und wird deshalb unter anderem als Trocknungsmittel eingesetzt.240 Die Eigenschaft, dass Schwefelsäure Wasser an sich zu ziehen vermag, kann einfach durch folgendes Experiment demonstriert werden: Kleiner Demonstrationsversuch (Exkurs): Vergleicht man ein mit Wasser gefülltes Gefäß nach einigen Tagen mit einem Gefäß, das mit konzentrierter Schwefelsäure gefüllt ist, so stellt man fest, dass die Masse von Wasser durch Verdunstung abgenommen hat, während die Schwefelsäure durch die Hygroskopie, Wasser aus der Umgebungsluft an sich gezogen hat und damit die Masse zu genommen hat.241 Auf viele organische Stoffe, wie auch auf den verwendeten Haushaltszucker wirkt sie verkohlend.242 Sie zählt wie auch die Perchlorsäure (HClO4) zu den oxidierenden Säuren; heiße Schwefelsäure löst Beispielsweise edle Metalle wie Kupfer, Silber oder Quecksilber. Schwefelsäure findet vielseitig Verwendung in der chemischen Industrie, so dass sie zu den meist produzierten chemischen Grundstoffen zählt. Ihre Produktionsmenge wird sogar als Index für den Leistungs- und Entwicklungsstand eines Landes herangezogen. Dies verdeutlicht nochmals ihre Wichtigkeit. Verwendung findet sie in der Düngemittelherstellung, beispielsweise zur Herstellung von „Superphosphat“, einem wichtigen Düngemittel.243 Hierbei dient die halbkonzentrierte Schwefelsäure dazu, das beinahe unlösliche Calciumphosphat (Ca3(PO4)2) in eine lösliche Verbindung zu überführen (Vgl.Abb.1): Ca3(PO4)2 (s) + 2 H2SO4 (halbkonz) 2 CaSO4 (s) + Ca(H2PO4)2 (s) Abb.1: Darstellung von „Superphosphat“ 239 Vgl.INT.1. Vgl. Deckwer et al.. 241 Vgl. INT.3. 242 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.449. 243 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.499. 240 233 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil 60 % der Weltweiten Schwefelsäureproduktion wird zur Herstellung von Superphosphat verbraucht.244 Weiterhin findet sie auch in verdünnter Form (ca.33%) Anwendung als „Batteriesäure“ in Bleiakkumulatoren, wie sie in „Autobatterien“ Verwendung finden. Bei der durchgeführten Reaktion, wird die Saccharose, ein Disaccharid durch die konzentrierte Schwefelsäure verkohlt. Die Saccharose (C12H22O11) kann durch folgende Formel dargestellt werden: Glucose - Rest OH H H OH HO H HO OH H Fructose - Rest O 1 O HO O HO HO H Saccharose OH 1 OH OH O H OH 2 OH OH H 2 OH OH O HO -1-2 - verknüpft -1-2 - verknüpft Abb.2: Saccharose Die Reaktion der Saccharose mit der Schwefelsäure kann vereinfacht wie folgt erklärt werden: 245 C12 H22 O11 C (s) H2SO4 (konz) 12 C (s) + 11 H2O (s) + H2SO4 (konz) CO 2 (g) + SO2 (g) + 2 H2O Abb.3: Reaktion von Schwefelsäure mit Zucker 244 245 Vgl. Riedel, 7. Aufl. S.499. Vgl. Hollemann/Wieberg, 102.Aufl., S.588. 234 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Das Bestreben reiner Schwefelsäure zum Wasserentzug ist sogar so groß, dass sie sich teilweise selbst entwässert: 246 2 H2SO4 + (konz) H3O - (solv) + HS2O7 -5 (solv) K = 5 * 10 Abb.4: Selbstentwässerung von reiner Schwefelsäure Das Aufschäumen des Reaktionsgemisches kann durch die Bildung von gasförmigem CO2 und SO2 erklärt werden (Vgl.Abb.3). Hierdurch schäumt das Gemisch stark auf und vergrößert sein Volumen immens. Didaktische Auswertung: Dieser Versuch könnte als Einstiegsversuch in das Themenfeld der Kohlenhydrate dienen. Es kann einfach und schnell gezeigt werden, dass der Zucker Kohlenstoff enthält. Mit dem großen schwarzen Festkörper assoziiert man leicht Kohle, was auf das Vorhandensein von Kohlenstoff schließen lässt. Der Versuch sollte aber aufgrund der Verwendung von konzentrierter Schwefelsäure als Demonstrationsversuch durch den Lehrer durchgeführt werden. Des Weiteren muss aufgrund der Bildung von SO2 – Dämpfen (Vgl.Abb.3) unbedingt im Abzug gearbeitet werden. Darüber hinaus kann mit diesem Versuch, neben dem Einstieg in die Kohlenhydratchemie, auch noch eine Bezugnahme auf die Wichtigkeit der Schwefelsäure als Chemikalie in der chemischen Industrie gemacht werden. Auch kann an diesem Beispiel die hygroskopische Eigenschaft der Schwefelsäure diskutiert werden, was neben der Säurestärke einen weiteren Grund für die Gefährlichkeit der Chemikalie für Mensch und Umwelt darstellt. Der Aufwand für die Vorbereitung und die Durchführung sind gering, jedoch ist die Entsorgung und Aufarbeitung des Reaktionsgemisches recht aufwendig, so dass es bei Zeitproblemen an dieser Stelle auf die Arbeit von Andreas Gerner verwiesen werden kann. Gerner beschäftigt sich mit dem Filmen von Experimenten in ‚High Definition Qualität‘ zum Themenfeld der Kohlenhydrate. Dieser Versuch wurde in seiner Arbeit in sehr guter Qualität 246 Vgl. Hollemann/Wieberg, 102.Aufl., S.588. 235 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate aufgenommen und kann an dieser Stelle, bei der Schülerexperimente nicht anzuraten sind, durchaus Verwendung finden. Entsorgung: Nach beendeter Reaktion wird der Feststoff in einem großen Becherglas vorsichtig mit 200 – 300 mL Wasser versetzt und gut verrührt. Die Lösung wird neutralisiert. Der Feststoff wird durch einen Büchnertrichter abgesaugt und anschließend getrocknet. Die Lösung wird so lange mit entionisiertem Wasser gewaschen, bis das Waschwasser sulfatfrei ist. Dies überprüft man mit der salpetersauren BaCl2-Lösung. Die Lösung kann dann neutral in den Behälter für anorganische Lösungsmittel. Als Produkt erhält man zusätzlich reine Aktivkohle, die ggf. im Feststoffabfall entsorgt werden kann. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.tgs-chemie.de/pks-werte.htm (Zugriff: 19.02.2010). INT.2: http://www.experimentalchemie.de/versuch-013.htm (Zugriff: 19.02.2010). INT.3: http://www.chemieunterricht.de/dc2/tip/12_98.htm (Zugriff: 19.02.2010). 236 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 5: Zauberschrift Zeitaufwand: Vorbereitung: 5-6 Minuten Durchführung: 5 Minuten Nachbereitung: 5 Minuten Materialien : Gleichspannungsquelle Unterlage aus Stoff Kabel (Strippen) 2x Elektroden 2x Chemikalien: Stoffbezeichnung Kaliumiodid * Kartoffel * Summenformel KI (s) Gefahrensymbole - R- und S-Sätze Menge - wenige Gramm - ½ * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich Versuchsaufbau: Schematischer Aufbau: Elektrode 2: Angeschlossen an den + Pol Elektrode 1: Angeschlossen an den - Pol Gleichspannungsquelle Kartoffelscheibe bestreut mit KI (frisch geschnitten) 237 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Durchführung: 247 1. Baue die Apparatur wie dargestellt auf. 2. Halbiere eine Kartoffel. 3. Bestreue die Kartoffel gleichmäßig mit einer Prise Kaliumiodid (KI). Warte bis sich dieses aufgelöst hat. (wichtig, nicht zu viel nehmen, sonst wird später alles braun). 4. Stecke die Elektrode 1 die am – Pol angeschlossen ist, in die Kartoffel. Berühre mit der Elektrode 2, die am + Pol angeschlossen ist, vorsichtig die Oberfläche. 5. Schalte die Gleichspannungsquelle ein und regle auf 10 V hoch. 6. Bewege die Elektrode 2 wie einen Stift über die Kartoffelscheibe. Beobachtungen: Die Kartoffel ist nach dem Anschneiden feucht. Die weißen Kaliumiodid - Kristalle lösen sich schnell auf. Die Kartoffel zeigt eine schwarz – braun Färbung an Elektrode 2. An Elektrode 1 ist eine Schaumbildung zu erahnen. Fachliche Auswertung: Die Kartoffel ist ein wichtiges Nahrungsmittel in Europa. Sie besteht zu 70 – 80 % aus Wasser und ca. 15 % aus Stärke. Die Stärke setzt sich dabei aus Amylose und Amylopektin ( Vgl. Versuch 6, Stärkenachweis im Reis) zusammen, wobei der prozentuale Anteil je nach Sorte unterschiedlich ist. Weitere Bestandteile sind: Eiweiße, Ballaststoffe, Spurenelemente, Vitamine (hauptsächlich Vitamin C) sowie zu einem sehr geringen Prozentsatz auch etwas Fett. Die ‚Braun – schwarz‘ Färbung während der Reaktion ist auf die Bildung von Polyiodidionen (Ix-) zurückzuführen. Während der Elektrolyse entsteht aus Iodid (I -) elementares Iod (I2). Dabei laufen an den Elektroden folgende Reaktionen ab: 247 Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al., S.89. 238 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Anode (hier Elektrode 2, der + Pol): - 2I I2 (s/aq) (s/aq)) + - 2e Kathode (hier Elektrode 1, der – Pol): - 2 H2O + 2 e - 2 OH (aq) + H2 (g) In der Folge reagiert das Iod (I2) in einer Lewis – Säure – Base Reaktion mit dem Iodid. Es tritt als in dieser als Elektronenpaarakzeptor (damit als Lewis – Säure) auf. Die Reaktion kann schematisch wir folgt beschrieben werden: - I I + :I I Elektronenpaar Akzeptor Donator I I Abb.1: Bildung des Polyiodidkomplexes248 Neben dem sich bildenden I3- können in der Folge noch verschiedene Polyiodidanionen gebildet werden (Vgl. Abb.2): I2 I3 - (s) +I (aq) (aq) + I2 (s) I3 I5 (aq) (aq) Abb.2: Lösung von Iod als Polyiodid in der Lugolschen Lösung Die Polyiodidanionen wie I3-, I5-, I7- oder I9- sind linear angeordnete Moleküle.249 Die Braunfärbung geht auf den sich bildenden ‚Charge-Transfer-Komplex‘ zurück.250 Didaktische Auswertung: Dieser Versuch kann wohl eher in die Kategorie „Showversuch“ eingestuft werden. Da sich der Versuch - der an sich wohl auch ebenso in der anorganischen Chemie beheimatet ist auf der Oberfläche einer Kartoffel abspielt, welche als Nahrungsmittel einen immens hohen Stellenwert besitzt, und damit eine wichtige Rolle in unserem Alltag spielt, kann man an ihm 248 Vgl. Hollemann – Wieberg, 91. – 100. Aufl., S.402. Vgl. Hollemann – Wieberg, 91. – 100. Aufl., S.402f. 250 Vgl. Hollemann – Wieberg, 91. – 100. Aufl., S.402f. 249 239 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate dennoch einige Dinge besprechen. Die ablaufende Reaktion ist eine erzwungene Redoxreaktion. Hier kann an den Stoff der Mittelstufe angeknüpft und wiederholt werden. Dieser Versuch könnte aber auch als Abschluss einer Einheit über die Bestandteile einer Kartoffel folgen (Vgl. Versuch 8: Untersuchung einer Kartoffel). Entsorgung: Die Kartoffel trocknen lassen und im Feststoffabfall entsorgen. Literatur: Chemikumsskript. (2008). S.89. Internetquellen: INT 1: http://www.seilnacht.com/Chemie/ch_ki.htm (Zugriff: 08.04.10). 240 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 6: Stärkenachweis in Mehl und Reis Zeitaufwand: Vorbereitung: 4 Minuten Durchführung: 2 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Materialien : Pro Gruppe: Dreifuß Pipette Spatel Reagenzglas Becherglas 250 mL Messkolben Bunsenbrenner oder Magnetrührer mit Rührfisch Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Lugolsche – Lösung (Iod – KaliumiodidLösung) KI3(aq) R: 20/21-50 Xn ,N 2–3 S: - Tropfen R: - 1 Spatel- S: - Spitze * Mehl, Kartoffelstärke, Reis, etc. - * * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 251 251 HessGiss 2008/2009 241 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt: 2. Schritt: Pipette Spatel mit der zu untersuchenden Substanz Reagenzglas mit Stärkelösung Becherglas mit Wasser Dreifuß mit Drahtnetz Bunsenbrenner Lugolsche -Lösung Durchführung: Herstellen der Lösungen: Lugolsche – Lösung (5 % ig) (diese Lösung kann Problemlos in einem dunklen Gefäß aufbewahrt werden): Löse in einen 100 mL Messkolben 10 g Kaliumiodid in 30mL Wasser. Gib anschließend 5 g Iod zu und fülle bis zur Eichmarke mit entionisiertem Wasser auf. 1. Erwärme 300 mL Wasser in einem Becherglas mit Hilfe eines Bunsenbrenners. Vorsicht: Siedeverzug! Gib 1 Spatelspitze Stärke in das heiße Wasser und erhitze anschließend bis zum Sieden. 2. Fülle mit Hilfe einer Pipette 4 mL Stärke – Lösung in ein Reagenzglas. 3. Gib 2 – 3 Tropfen der 5 % igen Lugolschen – Lösung zu. 4. (optional: Bringe die Flüssigkeit im Reagenzglas VORSICHTIG mit Hilfe des Brenners zum Sieden). Beobachtungen: Nach Zugabe der Stärke zum heißen Wasser entsteht eine trübe Lösung. Die Trübung verringert sich nach dem Aufkochen. Die Lugolsche – Lösung hat eine braune Färbung. Nach Zugabe von 2 – 3 Tropfen der iodhaltigen ‚Lugolschen Lösung‘ färbt sich die leicht trübe ‚Stärke – Lösung‘ tief blau. Die Farbe verschwindet nach starkem Erhitzen. 242 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Fachliche Auswertung: Stärke ist ein Polysaccharid und kann mit der Summenformel (C6H10O5)n beschrieben werden. Es ist aus ‚Monomeren 𝜶 - D – Glucose‘ Einheiten aufgebaut und über sogenannte glykodische Bindungen miteinander verknüpft. Sie zählt damit zur Klasse der Kohlenhydrate und setzt sich im Allgemeinen aus zwei Komponenten zusammen. Der Amylosestruktur, hier sind lineare Ketten (Abb.1a) zu einer helikalen (schraubenartigen) Struktur (Vgl.Abb.1b) verknüpft. In diesem Polysaccharid sind 300 – 600 GlucoseMonomeren -1,4-glykosidisch miteinander verbunden. Die Amylosestruktur macht 20 – 30 % der Gesamtstärke aus. -1,4-glykosidisch Bindungen OH H .... H OH H OH HO H OH 1 OH H O 4 H OH H H OH OH OH H 1 O 4 H OH H OH OH H .... OH Abb. 1a: lineare Kette von 𝜶 - D – Glucose Einheiten, -1,4-glykosidisch verknüpft Diese linearen Ketten ordnen sich durch Wasserstoffbrückenbindungen zu einer helikalen Struktur an: Abb.1b: helikale Struktur der Amylose252 252 Vgl. Abbildungsverzeichnis, [1]. 243 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Vereinfacht können diese Einheiten folgendermaßen dargestellt werden: Abb.1c: vereinfachte Darstellung der Amylose Struktur 70 – 80 % der Stärke besteht aus so genanntem Amylopektin, ebenfalls ein Polysaccharid. Hier sind die Monomeren Glucose Einheiten nicht nur zu linearen Ketten angeordnet sondern auch verzweigt. Zu der -1,4-glykosidischen Bindung der Amylose kommen noch 1,6-glykosidische Bindungen hinzu. Diese sorgen für die Verzweigung der Ketten (Abb.2a): OH H ... 1 O 4 H OH H H H O H OH H H 1 H O 4 H OH H H 1 H O 4 H OH H H 1 -1,6-glykosidisch Bindung O 6 OH OH OH OH OH OH OH OH OH OH .... OH 1 H O 4 H OH H OH OH H OH -1,4-glykosidisch Bindung Abb.2a: Struktur des Amylopektins 244 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Abb.2b: Vereinfachte Darstellung der Amylopektinstruktur Mit Hilfe des sogenannten ‚Iod-Stärke-Nachweises‘ lässt sich nun die Amylose Struktur der Stärke einfach und charakteristisch nachweisen. Die hierfür benötigte „Lugolsche-Lösung“ dient dazu, Iod, welches sich fast nicht in Wasser löst, in Lösung zu bringen. Hierfür wird Iod (I2) zu einer Iodidhaltigen (I-) Lösung gegeben. Dabei bilden sich unter anderem I3- Moleküle. Diese können in der Folge durch Lewissäurebaserekationen noch verschiedene andere Polyiodidanionen bilden. Ausführlicher wird diese Bildung des „löslichen“ Iods in der fachlichen Auswertung zu Versuch 5, Zauberschrift beschrieben (Vgl. Versuch 5: Zauberschrift). Wird nun die Iod-Lösung zur stärkehaltigen Lösung gegeben, so tritt eine charakteristische Blaufärbung auf. Diese lässt sich dadurch erklären, dass die Iod- bzw. Polyiodidmoleküle sich in die helikale Struktur der Amylose einlagern; man spricht deshalb auch von einer Einschlussverbindung (Vgl. Abb.3 und Abb.4). Durch sogenannte Charge-Transfer-Übergänge entsteht dabei dann die charakteristische Blaufärbung. Die Iod-Moleküle treten in dieser Einschlussverbindung nun als Elektronendonor auf, wodurch Elektronendichte auf die Amylose übertragen wird. Hierdurch kann nun Licht aus dem langwelligeren Bereich absorbiert werden. Die Komplementär-Farbe nehmen wir nun als blau wahr. Abb.3: Iod– Stärke - Komplex253 253 Vgl. Abbildungsverzeichnis, [2]. 245 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Abb.4: Iod – Stärke - Komplex254 Stärke wird in den Zellen der Pflanzen gelagert und im Bedarfsfall enzymatisch in die leichter zu transportierende Glucose gespalten. Sie stellt für die Pflanzen demnach ein Energiespeicher dar. Aus diesem Grund ist sie auch ein wichtiger Bestandteil unserer Nahrung. Stärke macht mit mehr als 50 % der Kohlenhydrate, die wir über unsere Nahrung zu uns nehmen, einen gewichtigen Anteil unserer Speise aus. Je nach Art der Nahrung schwankt allerdings der Anteil der Stärke. Diese liegt in unseren Speisen entweder frei vor, wie Beispielsweise bei Kartoffeln, oder sie ist in eine Proteinmatrix eingebettet. Die Verdauung des Menschen beginnt bereits beim Kauen im Mund. Im menschlichen Speichel und im Pankreassaft ist die Amylase (ein Enzym) an der Spaltung der Nahrung beteiligt. Sie ist in der Lage, die langen Kohlenhydratketten der Stärke in das Disaccharid Maltose hydrolytisch zu spalten. Erst durch die Spaltung der Ketten in Mono- und Dimere Einheiten ist eine einfache Verstoffwechslung möglich. Die Amylase greift die 1,4-glycosidischen Bindungen an und baut so Stück für Stück die langen Ketten ab. Sie vermag es sowohl pflanzliche Stärke als auch tierische Stärke aufzuspalten.255 Die Arbeit der Amylase kann man durch längeres 254 255 Vgl. Abbildungsverzeichnis, [3]. Vgl. Deckwer et al.. 246 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Kauen zum Beispiel von Brot beobachten. Durch das lange kauen entsteht ein süßlicher Geschmack der an den Geschmack von Zucker erinnert. 256 Ein weiteres in der Natur weit verbreitetes Polysaccharid ist die Cellulose. Sie ist die wasserunlösliche Gerüstsubstanz von Pflanzen. Auch hier ist der Monomerebaustein Glucose. Allerdings sind diese monomeren Bausteine (hier 𝜷-1,4-glycosidisch) miteinander verknüpft (Vgl.Abb.5). Dies führt zu einer linearen Struktur. Die linearen Ketten sind parallel zueinander in einer faserartigen Sekundärstruktur zusammengelagert.257 Die Ketten werden durch Wasserstoffbrückenbindungen zusammengehalten. OH OH H H H OH HO H H O 4 OH H H OH O1 O 4 OH H H H H OH H H H O1 O 1 H OH H H O 4 H OH OH H H O ... OH OH ß-1,4 - glykosidische Bindung Abb.5a: Struktur der Cellulose In dem dargestellten Cellulosemolekül sind die einzelnen Glucosemoleküle 𝜷-1,4glycosidisch miteinander verbunden, dabei ist jeder zweite Monomerebaustein jedoch um 180° verdreht. Die Struktur kann jedoch in diesem Fall anschaulicher durch die Sesselkonformation wiedergegeben werden: OH H HO H HO H H H O OH 1 H HO O OH H H 4 H OH O H OH n Abb.5b: Ausschnitt aus der Cellulosekette - in Sesselkonformation Doch anders als bei der Stärke vermag es das menschliche Verdauungssystem bei der Cellulose nicht, diese in energiespendende Anteile zu zerlegen. Der Mensch und auch viele 256 257 Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al., S.169. Vgl. INT.1. 247 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Tiere besitzen kein Enzym, um Cellulose zu spalten und damit zu verstoffwechseln. Daher dient die Cellulose lediglich als Ballaststoff im Nahrungshaushalt. Anders sieht dies bei Kühen aus. Sie besitzen im Darmtrakt Bakterien, die Enzyme produzieren, die wiederum eine Hydrolyse des Makromoleküls Cellulose in verdaubare Bestandteile ermöglichen. Didaktische Auswertung: Die Iod-Stärke-Probe durch Lugolsche – Lösung ist ein einfach durchzuführender charakteristischer Nachweis für Stärke und kann leicht von Schülern durchgeführt werden. Die Vorbereitungen bedürfen keines großen Aufwandes. Es gilt lediglich einmal für alle Gruppen eine Lugolsche - Lösung herzustellen. Der anschließende Versuch kann in Kleingruppen durchgeführt werden. Hierfür wäre denkbar, dass verschiedene Lebensmittel auf ihren Stärkeinhalt hin untersucht werden können. Die Lebensmittel können von den Schülern von Zuhause mitgebracht werden. Es würden sich hierfür Mehl, Kartoffel, Brot, Mondamin Stärkepulver oder Reis anbieten. Der Reis sollte allerdings zuvor einige Minuten aufgekocht werden. Der Versuch kann dann einfach mit dem Reiswasser durchgeführt werden. Um nicht nur positive Nachweise zu erhalten, ist natürlich auch ein Testen von Zucker, Kochsalz, Butter oder anderen Haushaltsprodukten möglich. Anhand dieser Reaktion kann man auf die räumliche Struktur der Stärke zu sprechen kommen. Falls es gelingen sollte, einen speziellen asiatischen Reis zu bekommen, der aus reinem Amylopektin besteht, könnte das Versuchsergebnis mit herkömmlichem Reis aus dem Supermarkt verglichen werden (beim asiatischen Reiswasser mit reinem Amylopektin sollte die charakteristische Blaufärbung ausbleiben). Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT 1: http://www.biotechberatung.de/teach/chemie/orgchem/Zucker/Zucker.htm#Polysaccharid e (Zugriff: 26.02.2010). 248 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 7: Unterscheidung von Glucose und Fructose durch Mittels Iod Zeitaufwand: Vorbereitung: 4 Minuten Durchführung: 5 Minuten Nachbereitung: 3 Minuten Materialien : Messpipette Reagenzglasgestell Peleusball 3 Reagenzgläser Pipette 3 Bechergläser (50 mL) Waage Aufbewahrungsgefäß Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Lugolsche – Lösung (Iod – KaliumiodidLösung) KI3(aq) R: 20/21-50 Xn ,N S: - 2 mL * Fruchtzucker (Fructose) C6H12O6 (s) - 2,5 g - 2,5 g * Traubenzucker (Glucose) C6H12O6 (s) * Natriumcarbonat * R: 36 Na2CO3 (s) Xi * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 258 S: 22-36 3g 258 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 249 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt: 2. Schritt: Reagenzglas, gefüllt mit Lugolscher Lösung Reagenzglasgestell Lugolsche - Lösung 3. Schritt: Soda - Lösung 4. Schritt: Reagenzglas, gefüllt mit Iod-Sodalösung Reagenzglas, gefüllt mit Iod-Sodalösung Fructose - Lösung Glucose - Lösung Fructose - Lösung Glucose - Lösung Durchführung: Herstellung der Lösungen: Lugolsche – Lösung (5 %) (Diese Lösung kann problemlos in einem dunklen Gefäß aufbewahrt werden): Löse in einen 100 mL Messkolben 10 g Kaliumiodid in 30mL Wasser. Gib anschließend 5 g Iod zu und fülle bis zur Eichmarke mit entionisiertem Wasser auf. Glucose Lösung: Fülle 2,5 g Glucose in 10 mL Wasser. Fructose Lösung: Fülle 2,5 g Fructose in 10 mL Wasser. Natriumcarbonatlösung (gesättigte Sodalösung): Löse 3 g Natriumcarbonat in 10 g dest. Wasser. 250 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil 1. Gib 2 mL der Lugolschen Lösung in ein Reagenzglas. 2. Gib soviel Sodalösung zu, bis sich die Mischung hellgelb färbt. 3. Fülle in ein Reagenzglas 2 mL Fructoselösung, in ein weiteres 2 mL Glucoselösung. 4. Gib zu jedem Reagenzglas 2 mL der Iod-Soda-Lösung. Beobachtungen: Die Lugolsche Lösung (Iod-Kaliumiodid-Lösung) ist braun. Nach Zugabe der Natronlauge färbt sie sich zunächst an der Eintropfstelle, nach dem Umrühren schließlich überall gelblich. Nach Zugabe der Glucoselösung entfärbt sich die Lösung; nach Zugabe der Fructoselösung bleibt diese Entfärbung zunächst aus und entfärbt sich erst mit etwas Verzögerung. Fachliche Auswertung: Die Lugolsche Lösung dient dazu Iod, das sehr schlecht wasserlöslich ist, in eine lösliche Verbindung zu überführen. Liegen jedoch Iodid-Ionen vor, so gelingt die Lösung des Iods durch die Bildung von Polyiodidionen: I2 I3 - (s) +I - I3 (aq) (aq) + I2 (s) I5 (aq) (aq) Abb.1: Lösung von Iod als Polyiodid in der Lugolschen Lösung - I I + :I I Akzeptor Elektronenpaar Donator I I Abb.2: Bildung des Polyiodidkomplexes259 Iod tritt in diesem Komplex als Lewis-Säure auf. Das Iod-Ion ist der Elektronenpaar Donator, demnach die Lewis Base. Die intensive Braunfärbung der Lösung kommt durch den sich bildenden Charge-Transfer-Komplex (CT-Komplex) zustande. 259 Vgl. Hollemann/Wieberg, 91. – 100. Aufl., S.402. 251 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Die als Polyiodidionen vorliegenden Iod (I2) - Moleküle disproportionieren durch Zugabe von Natronlauge zu Iodid (I-) und Hypoiodit (OI-) (Vgl. Abb3.): 0 I2 -I - (aq) + OH I (aq) +I (aq) + OI (aq) Abb.3: Disproportionierungsreaktion von Iod260 Hypoiodit ist ein schwaches Oxidationsmittel. Es vermag die Aldehydgruppe der Glucose zur Carbonsäure zu oxidieren: Oxidation +I H O H OH HO HO H H H OH H OH - + 2 OH HO (aq) +III O OH H OH H OH CH 2OH - + H2O + 2 e H CH 2OH (aq) (aq) Reduktion +I IO -I - (aq) + + 2H (aq) + - 2e I - (aq) + H2O Abb.4: Reaktion von Hypoiodit mit Glucose Die Reaktion verläuft mit der Fructoselösung deutlich langsamer als mit der Glucoselösung. Der Grund ist, dass die Fructose selbst keine oxidierbare Gruppe - wie die Aldehydgruppe der Glucose -enthält. Fructose kann sich jedoch im alkalischen Milieu, in Mannose und Glucose umwandeln (Vgl.Abb5). Dieser Prozess wird Keto-Enol-Tautomerie genannt. 260 Vgl. Riedel, 7. Aufl., S.415. 252 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil O H C H H C +II C OH H H C OH HO C H H C OH H C OH C OH C OH HO C H O - OH HO C H H C OH H C OH H C OH H C OH CH 2OH CH 2OH CH 2OH D - Glucose O H C D - Fructose Endiol HO C H HO C H H C OH H C OH CH 2OH D - Mannose Abb.5: Umwandlung von Fructose in Mannose und Glucose Die Bildung eines Gleichgewichtes aus Fructose, Glucose und einem Teil Mannose ist dafür verantwortlich, dass Hypoiodit zu Iodid reduziert werden kann. 253 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Der Mechanismus dieser Umlagerung lässt sich wie folgt beschreiben: R R O 1 2 C R C R - Das α-C-Atom + C +H R (aq) basischer R - 1 C R R R 2 1 C - R C R + (aq) R 2 R 1 Lösung in ein R des Enolat-Anions. R 2 an R 2 Mesomeriestabilisierung Anlagerung des Protons C C - C R OH +H 1 C - C C O O R C gibt Proton ab. 1 O R C 2 O R 1 H R 2 Abspaltung eines Protons: O OH- das Enolat-Anion, Bildung des Enols.261 Abb.6: Keto-Enol-Tautomerie in alkalischer Lösung Mannose und Glucose Informationen zu den verwendeten Zuckern sind im Protokoll zur Fehlingprobe und im Theorieteil, Abschnitt Kohlenhydrate zu finden. Didaktische Auswertung: Dieser Versuch dient der Unterscheidung zwischen Fructose und Glucose. Beide tragen die gleiche Summenformel, unterscheiden sich jedoch aufgrund der unterschiedlichen funktionellen Gruppen im Reaktionsverhalte, wie auch in den physikalischen Eigenschaften, wie Schmelzpunkt und Dichte. Wie schon die beiden Versuche zur Silberspiegelprobe und zum Fehling-Nachweis wird auch hier die Verbindung vom Aldehyd zur Carbonsäure oxidiert. Auf den ersten Blick dürfte die Fructose gar nicht mit der Hypoiodithaltigen Lösung reagieren, da sie selbst keine oxidierbare Aldehydgruppe trägt. Doch durch den Bezug auf die Keto-Enol-Tautomerie kann die stattfindende Reaktion erklärt werden. Falls diese den 261 Vgl. Bruice, S. 978. 254 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Schülern noch nicht erläutert wurde, kann sie an diesem Beispiel besprochen werden. Andernfalls könnte sie der Wiederholung dienen. Anhand dieses Versuches kann auch die Disproportionierungsneigung von Halogenen in alkalischem Milieu und die verschiedenen Redoxvorgänge wieder aufgegriffen werden. Der Versuch ist für den Unterrichtsehr zu empfehlen. Im Anschluss an diesen Versuch würde sich der ebenfalls zur Unterscheidung von Fructose und Glucose dienende Versuch der Seliwanoffprobe anfügen. Dieser ist ein spezifischer Nachweis für Ketohexosen. Da jedoch bewusst im ‚sauren Milieu‘ gearbeitet wird, wird die Umlagerung (Vgl.Abb.5) von Glucose in Fructose und umgekehrt behindert. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt werden. Die Lugolsche Lösung kann aufbewahrt werden. Die Zuckerlösungen können im Ausguss entsorgt werden. Literatur: Experimente mit Supermarktprodukten: eine chemische Warenkunde / Georg Schwedt. INT.1: http://www.seilnacht.com/Chemie/ch_naco.htm (Zugriff: 15.04.2010). 255 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 8: Untersuchung der Inhaltsstoffe einer Kartoffel Zeitaufwand: Vorbereitung: 5 - 9 Minuten Durchführung: 15 Minuten 262 Nachbereitung: 5 Minuten Materialien : Tropfpipetten Gemüsereibe Messer 500 mL Becherglas 2x Spatel Glasstab Reagenzglasständer Magnetrührer + Rührfisch Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Lugolsche – Lösung (Iod – KaliumiodidLösung) * Kartoffel * Wasser * R: 20/21-50 S: - KI3(aq) Xn H2O (aq) Natronlauge * NaOH (aq) Kupfersulfat Penthydrat * CuSO4 * 5 H2O (s) ,N - C Xn * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich - 1 - 75 mL R: 34 S: 26-37/39-45 1 molar R: 22-26/38-50/53 S: 22-60-61 ,N 2–3 Tropfen 7g 263 262 Dieser Versuch dauert zwar deutlich länger als die meisten anderen Versuche, gehört jedoch trotzdem zum Themengebiet der aufwandsarmen Schulversuche, da hier mehrere Versuche zu einem vereint sind. Die gesamte Vorbereitungszeit ist vor diesem Hintergrund als gering einzustufen. Es besteht ein großer Alltagsbezug und der Versuch kann aufgrund der geringen Giftigkeit der eingesetzten Chemikalien problemlos als Schülerversuch durchgeführt werden. Die Vorbereitungsarbeiten, wie das Herstellen des Kartoffelwassers (nimmt den größten Teil der Vorbereitungszeit in Anspruch), könnte bereits im Klassenverband durchgeführt werden, wodurch sich die Schüleraktivität erhöht und die Vorbereitungszeit sinkt. 263 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 256 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt264: 2. Schritt: Geriebene Kartoffel Gemüsereibe Becherglas mit warmem Wasser Geriebene Kartoffel 3. Schritt: Magnetrührer mit Rührfisch 4. Schritt: Leinentuch (dient als Filter) Durchführung: 265 Vorbereitungen: 0. Fülle ein 250 mL Becherglas mit 75 mL entionisiertem oder destilliertes Wasser. Erwärme es auf einem Magnetrührer auf über 50 °C (BEACHTE: Das Wasser sollte nicht sieden, jedoch über 50°C heiß werden). 1. Schäle eine Kartoffel und zerkleinere sie anschließend mit einer Gemüsereibe. 2. Gib die geriebene Kartoffel in das Becherglas, das auf dem Magnetrührer steht. Stelle die Rührfunktion auf die mittlere Stufe und erwärme 5 Minuten lang. Währenddessen können die Lösungen angesetzt werden. 264 265 Vgl. INT.1. Vgl. INT.5. 257 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Herstellung der Lösungen: Lugolsche Lösung (5%ig): Löse in einem 100 mL Messkolben 10 g Kaliumiodid in 30 mL Wasser. Gib anschließend 5 g Iod zu und fülle bis zur Eichmarke mit entionisiertem Wasser auf. Buiret - Reagenz: Löse 1,25 g Kupfersulfat-Penthydrat (CuSO4*5H2O) in 5 mL Wasser. Gib anschließend 5 mL der 1-molaren Natronlauge zu. 3. Filtriere das Kartoffelwasser in ein 500 mL Becherglas. Gieße hierfür das Kartoffelwasser durch ein Leinentuch und presse es dann aus. Bei trüber Lösung (Anwesenheit von Schwebteilchen) ist die ausgepresste Lösung noch 2 – 3 Minuten stehen zu lassen damit sich die Schwebeteilchen absetzten können. Dekantiere nach 2 – 3 Minuten ab. 4. Fülle 2 mL der klaren Lösung in ein Reagenzglas und verteile sie an die Arbeitsgruppen. Es werden 2 Stück pro Gruppe benötigt. Untersuchung auf Eiweiß: 5. Tropfe 8 Tropfen der Biuret – Lösung (1 molare Natronlauge + 1 molare Kupfersulfatlösung) hinzu. Untersuchung auf Stärke: 6. Übergieße den Bodensatz der Kartoffellösung mit 2 mL Wasser und versetzte die Lösung mit 3 Tropfen Lugolscher Lösung. Das Herstellen des zu untersuchenden „Kartoffelwassers“ kann auch schon im Klassenverband durchgeführt werden. Hierdurch verringert sich nicht nur die Vorbereitungszeit durch den Lehrer immens, die Schüler werden zudem noch aktiv an den Arbeiten beteiligt. 258 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Beobachtungen: Nach Zugabe der geriebenen Kartoffel zum Wasser ist anfangs keine Trübung der Lösung zu erkennen, das Wasser bleibt zunächst klar. Erst durch längeres Erwärmen beginnt sich die Lösung gelblich zu trüben. Nach dem Auspressen entsteht je nach Länge des Aufkochens eine klare oder trübe Lösung. Die Schwebeteilchen setzten sich nach kurzer Zeit am Boden ab. Schwemmt man diese mit etwas Wasser auf und gibt 2 – 3 Tropfen der Lugolschen – Lösung hinzu, färbt sich die leicht trübe Lösung tiefblau. Das klare, abdekantierte, „Kartoffelwasser“ zeigt nach Zugabe der Biuret – Reagenz sofort eine Blaufärbung, die nach kurzer Zeit ins Violette umschlägt. Fachliche Auswertung: Die Kartoffel ist eine wichtige Nahrungsquelle. Der Prokopfverbrauch in Deutschland liegt bei rund 60 kg im Jahr. Zwar ist der Verbrauch in letzter Zeit stark gesunken (vor 50 Jahren lag der Verbrauch noch bei der dreifachen Menge) doch trotz alledem bleibt die Kartoffel ein wichtiger Bestandteil unserer Nahrung.266 (Vgl.Abb.1) Abb.1: Prokopfverbrauch von Speiskartoffeln in Deutschland267 266 267 Vgl. INT.2 Vgl. Abbildungsverzeichnis, [4]. 259 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Neben der Verwendung der Kartoffel als Nahrungsmittel findet sie auch immer mehr technisch Anwendung. So steigt der Anteil der Kartoffel, die industriell verarbeitet und im „Non-Food“ Bereich verwendet wird. Hier vor allem in der Papier-, Textil- und Kunststoffindustrie. So werden immer mehr speziell gentechnisch veränderte Kartoffel entwickelt, deren Stärkegehalt an die Bedürfnisse der Industrie angepasst ist. Der Anteil der Stärke, die im „Non-Food“ Bereich verwendet werden, steigt stetig.268 Dass Kartoffel Stärke enthalten, kann durch den zweiten Teil des Versuchs nachgewiesen werden. Allerdings ist die Kartoffelstärke in kaltem Wasser schlecht löslich, so dass erwärmt werden muss. Bei Temperaturen oberhalb von 50 °C quillt die Stärke auf und es bildet sich eine kolloidale Lösung. Bei dem anschließenden Nachweis handelt es sich um die bereits angesprochene Anwendung der Iod-Stärke-Probe. (Vgl. Versuch 6: Stärkenachweis im Reis). Bei diesem spezifischen Nachweis wird Iod in die helikale Struktur der Amylose eingelagert. Der sich daraus ergebende Charge-Transfer-Komplex aus Iod und Stärke ist für die intensive Blaufärbung verantwortlich (Vgl. Versuch 6: Stärkenachweis im Reis). Der erste Teil des Versuchs dient einem Eiweißnachweis. So enthält die Kartoffel neben Stärke (15%), Wasser (70-80%) auch noch Spurenelemente, Vitamin C und eben dieses Eiweiß. Die Biuretprobe ist ein spezifischer Nachweis für Eiweiß, bzw. genauer gesagt für die Anwesenheit von Peptidbindungen. Das Eiweiß gehört zur Klasse der Polypeptide. Sie bestehen aus Aminosäuren, die über sogenannte Peptidbindungen miteinander verbunden sind. Mit diesen bildet Kupfer einen Komplex, der für die charakteristische DunkelviolettFärbung der Lösung verantwortlich ist (Vgl. Abschnitt Aminosäuren und Proteine, Versuch 2: Biuretreaktion von Glycin). 268 Vgl. INT.2. 260 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Der sich bildende Kupferbiuretkomplex kann folgendermaßen dargestellt werden:269 O R R .... NH NH O 2+ .... Cu .... O HN NH .... R R O Abb.2a: Vereinfachte Darstellung des Kupferbiurettekomplex O 2 - HN O NH NH + [Cu(H2O)6] - 2+ (aq) OH2 (aq) O O - HN - NH NH Cu - 2+ NH -NH HN O + 4 H2O O OH2 Abb.2b: Kupfer(II)-Biuretkomplex in wässrigem Millieu Die Nachweisgrenze ist sehr gering, so dass man selbst bei einem prozentual geringen Eiweißanteil wie bei der Kartoffel (der Anteil liegt lediglich bei 2%) dieses trotzdem noch qualitativ nachweisen kann. Didaktische Auswertung: Der Gesamtaufwand des Versuchs ist etwas umfangreicher, doch sind hier mehrere Teilversuche zu einem vereint. Es werden gleich zwei Nachweisreaktionen abgehandelt. 269 Suchanfrage CSD Database. 261 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Daher sollte der Zeitbedarf für die Durchführung des Versuches unter einem etwas anderen Blickwinkel betrachtet werde. Gerade durch seinen hohen Alltagsbezug zu einem wichtigen Nahrungsmittel, das in welcher Form auch immer sicher den Schülern bekannt sein sollte, wird er für den Chemieunterricht dadurch interessant. Mit diesem Versuch können so leicht zwei Bestandteile qualitativ nachgewiesen werden. Dieser Versuch könnte daher auch als Überleitung vom Themengebiet der Kohlenhydrate hin zum Themengebiet der Aminosäuren und Proteine dienen. Ein weiterer großer Pluspunkt ist, dass sich der Versuch uneingeschränkt als Schülerversuch eignet. So werden weder große Aufbauten, noch teure, giftige oder stark ätzende Chemikalien benötigt. Wird der Versuch als Schülerversuch in den Unterricht eingebunden, sollten die Schüler in den Vorbereitungsprozess mit eingebunden werden, da auch dieser Teil ein wichtiger Bestandteil des Versuchs ist. Außerdem wird so die Vorbereitungszeit des Versuches reduziert. Der Versuch zählt trotz des etwas größeren Umfanges zu den aufwandsarmen Handversuchen der organischen Chemie. Ausgehend von diesem Versuch kann auch die großindustrielle Stärkeproduktion im Unterricht besprochen werden, woran dann eine Überleitung durch den Biuretnachweis in das Themenfeld der Aminosäuren, Proteine und Eiweiße möglich ist. Entsorgung: Die Lösungen, die mit Biuret oder Lugolscher-Lösung versetzt wurden, müssen neutralisiert werden und können anschließend im Sammelbehälter für anorganische Abfälle entsorgt werden. Die Kartoffelreste sowie das unberührte Kartoffelwasser können im Hausmüll bzw. im Ausguss entsorgt werden. Literatur: Suchanfrage CSD Database, 04.05.2010. Internetquellen: INT 1: http://www.shoppingkarl.de/images/product_images/popup_images/23265_0.jpg (Zugriff: 18.02.2010). INT.2: http://www.biosicherheit.de/de/kartoffel/26.doku.html (Zugriff: 18.02.2010). INT.3: http://www.biosicherheit.de/de/kartoffel/staerke/30.doku.html (Zugriff: 18.02.2010). INT.4: http://www.seilnacht.com/Lexikon/biuret.html (Zugriff: 18.02.2010). INT.5: http://www.chemie.uni-regensburg.de/Organische_Chemie/Didaktik/Keusch/D-Starch-d.htm (Zugriff: 18.02.2010). 262 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 9: Gummibärcheninferno Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 3 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : Bunsenbrenner Reagenzglasklammer Reagenzglas Spatel Waage Becherglas Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Gummibärchen - - * Kaliumchlorat R: 9-20/21-51/53 KClO3 (s) * O , Xn S: 13-16-61 ,N * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 1 Stück 5g 270 Versuchsaufbau: Variante 1: Variante 2: Reagenzglasklammer Gummibärchen Heißes, geschmolzenes Kaliumchlorat Bunsenbrenner 270 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 263 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Durchführung: ACHTUNG: Der Versuch sollte hinter einer Schutzscheibe im Abzug durchgeführt werden! In der Nähe des Versuchs dürfen sich keine brennbaren Stoffe befinden. Die Unterlage muss feuerfest sein, beispielsweise Fliesen. Kaliumchlorat reagiert mit vielen organischen Stoffen sehr heftig, teilweise explosionsartig. Kaliumchlorat ist ein sehr starkes Oxidationsmittel!271 VORSICHT: Die Reaktion kann so heftig ablaufen, dass Teile des brennenden Gummibärchens oder Teile der Kaliumchloratschmelze mit dem entstehenden Kohlendioxid und Wasser aus dem Reagenzglas geschleudert werden können. Daher sollte das Reagenzglas leicht schräg eingespannt und nicht in Richtung der Beobachter weisen.272 1. Wiege 5 g Kaliumchlorat ab und fülle es in ein sauberes Reagenzglas. 2. Erwärme es vorsichtig mit Hilfe des Brenners bis es schmilzt. 3. Entferne den Brenner und werfe ein Gummibärchen in die Schmelze. Variante 1 und 2 unterscheiden sich nur dadurch, dass bei Variante 2 das Reagenzglas durch Stativmaterial befestigt ist. Beobachtungen: Kaliumchlorat ist ein weißes Pulver. Durch die Wärme des Brenners beginnt es allmählich zu schmelzen. Nach kurzer Zeit ist es vollständig geschmolzen. Die Schmelze ist beinahe klar. Die Reaktion beginnt sofort nach Zugabe des Gummibärchens. Sie ist durch eine grelle Flamme und ein Rauschen wahrnehmbar. Die Feuer- und Hitzeentwicklung übersteigt die einer normalen Verbrennung bei weitem. Die Flammen schlagen teilweise bis zum Rand des Reagenzglases. Außerdem ist eine weiße Rauchentwicklung erkennbar. Die Reaktion hält beinahe 2 Minuten an. 271 272 Vgl. INT.1. Vgl. INT.1. 264 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Fachliche Auswertung: Bei dem durchgeführten Versuch handelt es sich um eine Verbrennungsreaktion des Gummibärchens. Das Gummibärchen besteht zu einem hohen Prozentsatz aus Zucker und Gelatine, des Weiteren sind Farb- und Aromastoffe zugesetzt. Weitere Bestandteile sind Stärke und pflanzliche Öle. Die genaue Zusammensetzung ist natürlich ein Firmengeheimis und variiert von Marke zu Marke.273 Zucker, die zur Klasse der Kohlenhydrate zählen, sind wichtige Bestandteile unserer Nahrung (Vgl. Abschnitt Carbonylverbindungen, Versuch 3, Fehlingprobe.) und dienen der Energiegewinnung in unserem Körper. Die dabei im Körper ablaufende Reaktion kann als „stille Verbrennung“ bezeichnet werden. Sie läuft in verschiedenen Stufen ab und dient der Aufrechterhaltung der Körperfunktionen. Anders ist das bei den im Alltag zu beobachtenden Verbrennungsprozessen. Hier ist beispielsweise das Verbrennen von Kerzen zur Lichterzeugung, von Methan oder Öl in Heizungen, die der Wärmegewinnung dienen. Die Verbrennung von Benzin im Motor, in dem thermische Energie in mechanische umgewandelt wird, dient der Fortbewegung in Fahrzeugen. Aber auch das Verbrennen von Holz oder Kohle auf dem Grill oder im Herd, das der Zubereitung von Speisen dient, sind wichtige alltägliche Reaktionen. Hierbei wird die Energie des Verbrennungsprozesses durch Strahlungs- und Wärmeenergie freigesetzt und damit wahrnehmbar. Abb.1: schematischer Reaktionsverlauf einer exothermen Reaktion274 273 274 Vgl. INT.2. Vgl. Abbildungsverzeichnis, [5]. 265 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Die aufgezählten Verbrennungsreaktionen sind stark exotherme Vorgänge. Sie können durch die in Abb.1 dargestellte Graphik beschrieben werden. Die Ausgangsstoffe (Edukte) werden durch Energieaufnahme oder durch das Erhitzen in einen aktivierten Zustand überführt. Diese Energie muss den Ausgangsstoffen zugeführt werden, um sie zur Reaktion zu bringen, das heißt sie zu aktivieren. Sie wird daher auch als Aktivierungsenergie bezeichnet. Bei exothermen Reaktionen ist der folgende Schritt nun mit einer Energieabgabe (im Falle der Verbrennung mit einer Wärme- und Strahlungsenergieabgabe) verbunden. Die sich bildenden Produkte sind im Vergleich zu den Edukten als energiearm zu bezeichnen. Mit Hilfe des durchgeführten Versuches kann nun anschaulich und spektakulär der Energiegehalt eines Lebensmittels demonstriert werden. Während bei der normalen Verbrennung von Kohle oder Holz der Sauerstoff der Umgebungsluft als Oxidationsmittel dient und zu einem gemächlichen Reaktionsverlauf führt, entsteht der Sauerstoff, der im Reagenzglas für die extrem schnelle und heiße Verbrennung verantwortlich ist, durch thermische Zersetzung von Kaliumchlorat oberhalb von 400 °C. 275 Diese Reaktion kann dabei wie folgt beschrieben werden: +V 4 KClO3 (l) -I +VII 3 KClO4 (l) + KCl (s) Abb.2a: Zersetzung von Kaliumchlorat Das feste Kaliumchlorat, das einen Schmelzpunkt von 357 °C hat, beginnt ab dieser Temperatur zu schmelzen. Bei Temperaturen oberhalb von 550 °C zersetzt sich Chlorat in einer Disproportionierungsreaktion zu Chlorid (Cl-) und Perchlorat (ClO4-). Das entstandene Kaliumchlorat zersetzt sich dann selbst zu Kaliumchlorid und Sauerstoff: 276 +VII-II 3 KClO4 (l) 0 6 O2 (g) -I + 3 KCl (s) Abb.2b: Zersetzung von Kaliumchlorat 275 276 Vgl. Merck, 2005. Vgl. INT.3. 266 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Als Bruttoreaktion kann diese Reaktion wie folgt zusammengefasst werden: +V-II 4 KClO3 -I 0 4 KCl (s) + 6 O 2 (g) (l) Abb.2c: Zersetzung von Kaliumchlorat277 Der dabei entstehende Sauerstoff ist das Oxidationsmittel, das aufgrund der hohen Konzentration in der Schmelze die heftige Verbrennungsreaktion unterhält. Die Verbrennungsreaktion des enthaltenen Zuckers (der Glucose (Vgl. INT.2)), lässt sich folgendermaßen beschreiben: C6H12O6 (s) + 6 O2 (g) 6 H2O (g) + 6 CO2 (g) Abb.3: Verbrennungsreaktion von Glucose Bei der Verbrennungsreaktion des Gummibärchens entstehen neben den beiden Hauptprodukten - Wasser (H2O) und Kohlendioxid (CO2) - noch; Kohlenmonoxid (CO) sowie Stickoxide (NOx). Reiner Zucker, wie Saccharose oder Glucose, lässt sich jedoch nicht ohne weiteres verbrennen. Zucker schmilzt und karamellisiert, anstatt vollständig zu Kohlendioxid oxidiert zu werden. Selbst wenn man einen Bunsenbrenner direkt auf einen kleinen Zuckerberg hält, kann die Verbrennung nicht ohne Weiteres eingeleitet werden. Man benötigt beispielsweise katalytische Mengen von Zigarettenasche. Eine kleine Menge der Asche unter den Zucker gemischt reicht aus um die Aktivierungsenergie herabzusetzen und die Reaktion einzuleiten. 277 Vgl. Neumüller, 2008, S.15. 267 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Einschub --------------------------------- Kleiner Nebenversuch (Exkurs): 1. Verbrennung von Zucker 2. Schlange des Pharaos 278 1. Lege etwas Zucker auf einen Verbrennungslöffel und halte ihn in die rauschende Brennerflamme. Beobachte was passiert (Vergleiche andere Substanzen wie Mehl, Salz, Öl und teste diese auf ihre Brennbarkeit)! 2. Tränke Emser Pastillen in Ethanol. Lege 3 Pastillen in eine mit einer Mischung aus Sand und Zigarettenasche gefüllten Schale und entzünde sie. Beobachte die Reaktion! Zu [1]: Einfacher Haushaltszucker (Saccharose) verbrennt nicht sondern karamellisiert. Es ist ein karamellartiger Geruch zu vernehmen. Zu [2]: Emser Pastillen bestehen zum größten Teil aus Natriumhydrogencarbonat (NaHCO3) und Zucker (C6H12O6). Werden nun die Emserpastillen durch die Verbrennung des Ethanols erzeugte Wärme über 65 °C erhitzt, so zerfällt das darin enthaltene Natriumhydrogencarbonat nach folgender Gleichung: 2 NaHCO3 (s) Na2CO 3 (s) + CO2 (g) + H2 O Abb.4: Zersetzungsreaktion des Hydrogencarbonats Durch das Erwärmen schmilzt der Zucker. Teilweise beginnt er aber durch die katalytische Wirkung der Zigarettenasche zu brennen. C6H12 O6 (s) C6H12 O6 (s) + 6 O2 6 C (s) + 6 H2O (g) 6 H2O (g) (g) + 6 CO2 (g) Abb.5: Verbrennungsreaktion und Verkohlungsreaktion279 278 279 Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al., S.50f. Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al., S.50f. 268 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Es türmt sich eine bis zu 15 cm hohen schwarze ‚Schlange‘ aus Kohlenstoff auf. Sie wird durch das sich während der Reaktionen (Abb.4 und Abb.5) bildende Kohlendioxid „aufgebläht“.280 ______________________________________________________________________ Zurück zur Gummibärchenreaktion, dem Gummibärcheninferno: Die während der Reaktion hörbaren Geräusche aus dem Reagenzglas, die mit zischend, knisternd oder knarrend beschrieben werden können, kommen durch das sich bildende Kohlendioxid, das der heißen Schmelze als Gas entweicht. Die weißen Dämpfe stammen wahrscheinlich vom Kaliumchlorid, das sich während der Zersetzungsreaktion bildet. Es wird als Aerosol mit den aufsteigenden heißen Gasen ‚mitgerissen‘. Didaktische Auswertung: Bei dem durchgeführten Versuch handelt es sich um einen reinen Showversuch. Er lässt sich in die Kategorie von Verbrennungsreaktionen einordnen. Man kann daher an ihm die typischen Eigenschaften von Verbrennungsreaktion (Vgl. Fachliche Auswertung) zum Thema machen. Diese Verbrennungsreaktion wird allerdings nicht durch den Sauerstoff der Umgebungsluft genährt bzw. unterhalten, sondern er entsteht bei der thermischen Zersetzung von Kaliumchlorat. Aus diesem Grund wird in der heißen Schmelze nicht nur die Zündtemperatur für die Verbrennung erreicht, sondern aufgrund der hohen Sauerstoffdichte auch noch eine extrem schnellen Reaktion. Das Gummibärchen könnte auch durch einen anderen oxidierbaren organischen Stoff - wie Zucker, Schokolade etc. - ersetzt werden. Der Versuch ist, obwohl er in die Kategorie Showversuch einzuordnen ist, trotzdem ein Versuch, der seinen Platz im Chemieunterricht finden sollte, da es sich um ein spektakuläres Experiment handelt. Aufgrund der schwierigen Handhabbarkeit des Kaliumchlorats und dessen Gefahren, sollte der Versuch als reiner Demoversuch durch den Lehrer durchgeführt werden. 280 Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al., S.50f. 269 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Der Versuch könnte auch als Einstiegsexperiment in die Kohlenhydratchemie dienen und so den Schülern einen Eindruck vermitteln, wie viel Energie doch in so einem kleinen Gummibärchen steckt. Außerdem könnte an diesem Beispiel die Wirkung von brandfördernden Substanzen - wie Kaliumchlorat (KClO3), Kaliumnitrat (KNO3) - gesprochen werden. Entsorgung: Die Reste des Kaliumchlorates werden mit Salzsäure verkocht und anschließend neutralisiert. Das neutralisierte Produkt kann im Ausguss entsorgt werden. Literatur: Chemikumsskript. Internetquellen: INT.1: http://www.experimentalchemie.de/versuch-011.htm (Zugriff: 26.03.2010). INT.2: http://www.ciao.de/Haribo_Goldbaren__Test_2021825 (Zugriff: 26.03.2010). INT.3: http://www.seilnacht.com/Chemie/ch_kclo4.htm (Zugriff: 28.03.2010). 270 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuch 10: Hydrolyse von Stärke Zeitaufwand: Vorbereitung: 3 Minuten Durchführung: 6 Minuten Nachbereitung: 3 Minuten Materialien : Magnetrührer mit Rührfisch Spatel Becherglas 100 mL Reagenzglas 2x Pipette 2x Messpipette Filter, Filterpapier Trichter Reagenzglasständer Reagenzglasstopfen Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Lugolsche – Lösung (Iod – KaliumiodidLösung) KI3(aq) R: 20/21-50 Xn ,N S: - 2–3 Tropfen * Lösliche Stärke - * Dest. Wasser * H2O (l) - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 281 - 1g - 75 mL 281 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 271 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1. Schritt: (Lösen der Stärke) 4. Schritt: (Zugabe der Lugolschen Lösung) 2. Schritt: 3. Schritt: (heiß filtrieren) (umfüllen) 5. Schritt: (Speichelzugabe) Durchführung: 282 1. Löse 1 g lösliche Stärke in 50 mL heißem entionisiertem oder destilliertem Wasser und koche es kurz auf. Stelle während dessen die Lugolsche Lösung her: Herstellung der Lösung: Lugolsche Lösung (5%ig): Fülle 2,5 g Kaliumiodid (KI) in 25 mL dest. Wasser, anschließend werden 1,25 g Iod (I 2) zugegeben. 282 Vgl. INT.3. 272 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil 2. Filtriere die Lösung ab. Gieße sie hierzu in einen Filter der in einem Trichter steckt. 3. Fülle mit Hilfe einer Messpipette 5 mL der Lösung in je ein Reagenzglas. 4. Gib nun 2 – 3 Tropfen der zuvor hergestellten Lugolschen Lösung zu. 5. Gib anschließend mit Hilfe einer Pipette und einem Reagenzglas etwas Speichel zu. Verschließe das Reagenzglas mit einem Stopfen und schüttle vorsichtig durch. Beobachtungen: Das weiße Stärkepulver löst sich in dem erwärmten Wasser auf. Es entsteht eine trübe Lösung. Durch Filtration wird die Lösung klar. Nach Zugabe der Lugolschen – Lösung, die selbst eine braune Färbung aufweist, färbt sich die Stärkelösung Tiefblau. Durch Zugabe von ausreichend Speichel verschwindet die blaue Farbe der Lösung nach einiger Zeit. Fachliche Auswertung: Stärke ist ein Polysaccharid und kann mit der Summenformel (C6H10O5)n beschrieben werden. Es setzt sich aus Monomeren 𝜶 - D – Glucose Einheiten zusammen, die über sogenannte glykodische Bindungen miteinander verknüpft sind. Es ist demnach ein Polykondensationsprodukt der D-Glucose und zählt damit zur Klasse der Kohlenhydrate. Stärke setzt sich allgemeinen aus drei Komponenten zusammen, der Amylose, dem Amylopektin (Vgl. Versuch 6: Stärkenachwies in Reis Abb.1a und 1b) und einer Zwischenfraktion.283 Beide setzten sich zwar aus 𝜶 - D – Glucose Einheiten zusammen, doch sind sie unterschiedlich miteinander verknüpft. Stärke besteht zu 70 - 80 % aus dem wasserunlöslichen Amylopektin. Wird Stärke mit heißem Wasser versetzt oder in ihm aufgekocht, bleibt Amylopektin zurück und trübt die Lösung, während Amylose in Lösung geht. In diesem Polysaccharid sind 300 – 600 Glucose-Monomeren -1,4-glykosidisch miteinander verbunden. 284 und 285 Damit ergibt sich eine molare Masse von 50.000 – 150.000 g.286 Die monomeren Bausteine der Glucose werden bei der Photosynthese von Pflanzen gewonnen. Diese werden von der Pflanze in speicherbare Kohlenhydrate, Beispielsweise der 283 Vgl. Deckwer et al.. Vgl. Asselborn et al., S.366. 285 Vgl. INT.1. 286 Vgl. Deckwer et al.. 284 273 III. Kohlenhydrate Experimenteller Teil Stärke, umgewandelt und dienen der Pflanze als Energiereserve. Durch enzymatischen Abbau können diese Reserven wieder abgerufen werden.287 Die in heißem Wasser lösliche Amylose kann durch Zugabe von Iod nachgewiesen werden. Das Iod lagert sich dabei in die helikale Struktur der Stärke ein, was durch eine Blaufärbung der Lösung deutlich wird (Vgl. Versuch 6: Stärkenachweis in Reis). Solange die Lösung nun nicht stark erhitzt wird, bleibt die intensive Blaufärbung erhalten. Wird jedoch Speichel zugegeben, kann die polysaccharide Stärke in seine Bausteine zerlegt werden. Dies geschieht durch enzymatische Spaltung des Polysaccharides. Als Enzym findet im Speichel und dem Pankreassaft die sogenannte Amylase Verwendung. Diese vermag es, die -1,4-glykosidisch verknüpften polymeren Kohlenhydrate statistisch zu spalten, so dass unter anderem Maltose entsteht. Die -1,6-Bindung wird nicht zerlegt.288 Maltose ist ein Disaccharid das sich aus zwei -1,4-glykosidisch verknüpften Glucose Molekülen zusammensetzt.289 OH H OH OH H OH H 1 HO H H O 4 OH OH H OH H H OH OH Abb.1a: Haworth Darstellung des Disaccharides Maltose Maltose H OH HO HO H H H O OH Glucose - Rest 1 H H O HO OH 4 H H H O H OH OH Glucose - Rest Abb.1b: Sesselkonformation des Disaccharides Maltose 287 Vgl. Asselborn et al., S.366. Vgl. Deckwer et al.. 289 Vgl. Asselborn et al., S.362. 288 274 III. Experimenteller Teil Kohlenhydrate Wird die Amylose, der lösliche Teil der Stärke, nun enzymatisch in Disaccharide gespalten, geht die helikale Struktur der Amylose verloren. Hierdurch kann Iod, genauer gesagt das Polyiodid (Vgl. Versuch 5: Zauberschrift) nicht mehr in die helikale Struktur eingelagert werden, was das Verschwinden der blauen Farbe erklärt. Didaktische Auswertung: Dieser Versuch geht über den einfachen Stärkenachweis durch Iod hinaus. Er zeigt die Funktionsweise des Speichels zur enzymatischen Spaltung der Stärke in verwertbare Bausteine. Der im Themenfeld der Kohlenhydrate angesiedelte Versuch funktioniert gut und ist durch die Farbveränderung - die gut beobachtbar ist - eindeutig. An diesem Versuch kann der Stärkenachweis durch Iod kurz wiederholt werden. Des Weiteren kann einfach und schnell die Funktionsweise von Enzymen demonstriert werden. Der Versuch ist aufgrund seines Alltagsbezugs sehr zu empfehlen. Es kann so verdeutlicht werden, welch wichtige Aufgabe der Speichel als erste Instanz unserer Verdauung hat. Da keine teuren oder giftigen Chemikalien verwendet werden müssen, eignet sich der Versuch auch durchaus auch als Schülerversuch. Entsorgung: Die Iod-haltigen Lösungen werden mit einer gesättigten Natriumthiosulfat-Lösung versetzt und können deshalb neutral im Abguss entsorgt werden. Die Stärke Lösung kann ebenfalls bedenkenlos in den Ausguss gegeben werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.lebensmittellexikon.de/p0000110.php (Zugriff: 20.02.2010). INT.2: http://www.laborlexikon.de/Lexikon/Infoframe/a/Amylase.htm (Zugriff: 20.02.2010). INT.3: http://www.chemie.uni-regensburg.de/Organische_Chemie/Didaktik/Keusch/DStarch-d.htm (Zugriff: 20.02.2010). 275 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Aminosäuren und Proteine: Nachweise: VersuchsNummer: 1 2 3 4 5 Name des Versuch Xanthoproteinreaktion Biuret Reaktion (Glycin als Komplexbildner) Ninhydrin Reaktion mit verschiedenen Substanzen (Eiweißlösung, Glycin, Reis) Stickstoffnachweis durch Thermolyse (Indikatorpapier) [S.120] Schwefelnachweis durch Thermolyse (PbAcetat-Papier) [S.120] Reaktionen: Versuchs- Name des Versuch Nummer: 6 Oxidation von Cystein zu Cystin 7 Maillard Reaktion (siehe Kohlenhydrate) Sonstiges: Versuchs- Name des Versuch Nummer 8 Löslichkeit von Tyrosin (Amphoteres Verhalten) 9 Denaturierung von Hühnereiweiß und Milch durch verschiedene Stoffe (Früchtetee, EtOH) 10 Tyndall – Effekt einer Eiklarlösung 276 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 1: Xanthoproteinreaktion Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 1 Minute Nachbereitung: 2 Minuten Dieser Versuch wird am besten zusammen mit der Biuretprobe durchgeführt! Materialien : Reagenzglas 2x Reagenzglasgestell Reagenzglasklammer Pipette + Hütchen 2x Becherglas 250 mL Bunsenbrenner Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Konz. Salpetersäure w = 100 % O * Hühnerei * Dest. Wasser * Natriumchlorid * R: 8-35 HNO3 (konz) - H2O NaCl (s) ,C - - - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 290 S: 23.2-26-36-45 5 Tropfen - 1 Stück - 250 mL - 2,5 g 290 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 277 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: Pipette Reagenzglas mit Eiklarlösung Eiklarlösung Pipette Verd. Eiklarlösung Konz. Salpetersäure Durchführung: 291 Herstellung der Lösung: Eiweißlösung: Wiege 2,5 g Natriumchlorid ab, löse es in 250 mL dest. Wasser (dies entspricht ungefähr dem Wert einer isotonischen Kochsalzlösung). Gib anschließend das Eiweiß eines Hühnereis hinein und verrühre es (Diese ‚isotonische Eiweißlösung‘ sollte für die Xanthoproteinreaktion aufbewahrt werden). 1. Fülle ein Reagenzglas zur Hälfte mit der Eiweißlösung, das zweite zur Hälfte mit der isotonischen Kochsalzlösung. 2. Gib 5 Tropfen konz. Salpetersäure zu. 3. Erhitze die Reagenzglasfüllung vorsichtig über der Brennerflamme. ----4. (optional) Führe den Versuch mit weiteren eiweißhaltigen Haushaltsprodukten durch. 291 Vgl. Asselborn et al., S.374. 278 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Beobachtungen: Die Eiweißlösung ist eine klare bis leicht trübe Flüssigkeit. Nach Zugabe einiger Tropfen der Salpetersäure entsteht zunächst ein weißer Niederschlag, der sich allerdings schnell gelb – orange verfärbt. Fachliche Auswertung: Bei der durchgeführten Reaktion handelt es sich um eine Nitrierungsreaktion, genauer gesagt um eine elektrophile aromatische Substitution. Die gelbe Färbung der Lösung geht auf das entstandene Nitroderivat zurück. Doch woher stammen die Aromaten? Unter den 20 proteinogenen Aminosäuren besitzen die folgende drei einen aromatischen Rest: O O H2N H2N OH OH L - Tyros i n (Tyr) O H2N OH OH N H L - Phenyl al ani n(Phe) L - Tryptophan(Try) Abb.1: aromatische Aminosäuren292 Exemplarisch soll nun die Nitrierungsreaktion am Phenylalanin (Phe) aufgezeigt werden. Die Grundstruktur der Aminosäure wird dabei als Rest (-R) dargestellt, so dass die eigentlich ablaufende Reaktion in den Vordergrund gestellt werden kann. Das zur Nitrierung benötigte Nitroniumion (NO2+) entsteht durch die Autoprotolyse Reaktion der konzentrierten Salpetersäure. Dabei gibt ein Salpetersäuremolekül ein Proton an ein anderes Salpetersäuremolekül ab. Durch die anschließende Wasserabspaltung entsteht dann das benötigte Nitroniumion (schematisch in Abb.2 und 2a dargestellt). 292 Vgl. Deckwer et al.. 279 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil H O O + H N + H+ O + + H O N O - H2O O + N O O Abb.2: Bildung des Nitroniumions Allgemein kann dann die elektrophile aromatische Substitution wie folgt beschrieben werden: O H2N R OH L - Phenyla lani n(Phe) (Phe) R H N O O R R R R - H+ + H O + N O H N O H N O O O O N O R H N O O Abb.2b: Elektrophile aromatische Substitution Die Peptidkette des Polypeptides (oder wie in Abb.2 dargestellt die Grundstruktur der Aminosäure), die hier als Erstsubstituent auftritt, dirigiert das Nitroniumion (NO2+), das als 280 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil elektrophil agiert, in para-Position. Die Peptidkette aufgrund eines +I Effektes als „Electron Donaiting Group“ zu bezeichnen (EDG). Sie wirkt damit elektronenspendend. Diese EDG sorgt von sich aus schon in der Regioselektivität, dass para- und ortho- Positionen bevorzugt werden. Aufgrund des sterisch sehr anspruchsvollen Erstsubstituenten, wird jedoch die paraPosition bevorzugt. (Vgl.Abb.3 und 4a-c) Allgemein gilt: EDG Abb.3: Einfluss des Erstsubstituenten Der Grund für die para- und orthodirigierung steckt in der besseren Stabilisierung des sich bildenden -Komplexes (Vgl.Abb.4a-c): R R R PARA - Angriff H N O O H N O O H N O O wichtigste Resonanzformel Abb.4a: Resonanzformeln des aromatischen Peptides nach Para-Angriff In der mittleren der drei Resonanzformeln entsteht ein Hexadienyl-Kation, das die positive Ladung direkt neben der Alkylgruppe trägt. Diese ist die wichtigste der drei Resonanzformeln und die am besten stabilisierte, da sie etwas vom Charakter eines tertiären Carbenium-Ions besitzt. Ihr kommt daher mehr Bedeutung zu als den anderen beiden, die die positive Ladung nur an einem sekundären Kohlenstoffatom tragen.293 293 Vgl. Vollhardt, S.743. 281 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil R R O O R N N N O O O O ORTHO - Angriff wichtigste Resonanzformel Abb.4b: Resonanzformeln des aromatischen Peptides nach ortho-Angriff Auch nach einem Ortho-Angriff entsteht ebenfalls ein Hexadienyl-Kation mit einer Resonanzformel, die der eines tertiären Carbenium-Ions ähnelt und daher als stabilste der drei Formen angesehen werden kann.294 R R R O O N H O N O H N O H META - Angriff O Abb.4c: Resonanzformeln des aromatischen Peptides nach meta-Angriff Nach einem Meta-Angriff entsteht keine solch stabile Resonanzformel wie bei Ortho- und Para-Stellung, die der eines tertiären Carbenium-Ions entspricht. Daher besitzen die Zwischenstufen, die nach einem Ortho- und Para-Angriff entstehen, eine niedrigere potentielle Energie als die meta-Zwischenstufe, so dass ihre Bildung begünstigt ist. Anders ausgedrückt ist die sich bei einem Meta-Angriff bildende Zwischenstufe energetisch höherliegend, so dass die Bildung des Metaprodukts ungünstiger wird, was zu der Orthound Para-Selektivität führt.295 294 295 Vgl. Vollhardt, S.742f. Vgl. Vollhardt, S.707-S.743. 282 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Die Xanthoproteinreaktion dient allerdings nicht nur als Nachweis für die aromatische Aminosäure, sondern auch für aromatische Aminosäuren in Proteinen. Sie kann daher als Nachweis für alle eiweißhaltigen, aromatischen Aminosäuren angesehen werden.296 Didaktische Auswertung: Die Xanthoproteinreaktion, die als Nitrierungsreaktion der aromatischen Seitenkette verstanden werden kann, ist eine einfache, schnell durchzuführende Reaktion, die als Nachweis für aromatische Aminosäuren dient. Da diese allerdings auch in fast allen Proteinen enthalten sind, kann der Versuch ebenso als Proteinnachweis Verwendung finden. In diesem Fall sollten die Schüler jedoch schon das Themengebiet der Polypeptide und Proteine kennengelernt haben. An dieser Reaktion kann die elektrophile Substitution am Aromaten die in 11 G.1 im hessischen Lehrplan verankert ist, wieder aufgegriffen und wiederholt werden. So könnte an dieser Stelle - falls dies nicht schon zuvor geschehen ist die Zweitsubstitution am Aromaten zum Thema gemacht werden. Darüber hinaus erklärt der Versuch auch, warum beim unkonzentrierten Arbeiten mit konzentrierter Salpetersäure es zu gelben Verfärbungen der Haut kommen kann. Denn auch in diesem Fall läuft eine elektrophile Substitution an den aromatischen proteinogenen Aminosäuren der Haut ab. Sollte der Versuch als Schülerversuch durchgeführt werden, ist jedoch beim Arbeiten mit konz. Salpetersäure auf das Tragen von Handschuhen zu achten. Entsorgung: Die neutralisierte Lösung kann im Ausguss entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.seilnacht.com/Lexikon/xantho.html (Zugriff: 06.03.2010) 296 Vgl. INT.1. 283 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 2: Biuretreaktion Zeitaufwand: Vorbereitung: 3 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : Reagenzglas Reagenzglasgestell Spatel Becherglas 50 mL Pipette 3 x Messkolben 100 mL Becherglas 250 mL Vollpipette 10 mL Messpipette Peleusball Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Natriumhydroxid * Kupfersulfat Penthydrat * Hühnerei * Dest. Wasser * R: 35 NaOH (s) S: 26-37/39-45 C CuSO4 * 5 H2O (s) - H2O R: 22-26/38-50/53 Xn - - - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 297 S: 22-60-61 ,N 4g 2,5 g 1 Stück 297 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 284 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: Messpipette mit dest. Wasser Reagenzglas mit Eiklarlösung Eiklarlösung Pipette dest. Wasser 1 Molare Verd. Eiklarlösung Kupfersulfatlösung Durchführung: 298 Herstellung der Lösungen: Natronlauge (1 molar): Falls diese noch nicht vorhanden sein sollte: Wiege 4 g festes Natriumhydroxid ab. Fülle einen 100 mL Messkolben zur Hälfte mit destilliertem Wasser und löse anschließend festes Natriumhydroxid darin. Fülle bis zur Eichmarke auf. Kupfersulfatlösung (1 molar): Wiege 2,5 g festes Kupfersulfatpenthydrat ab. Miss mit Hilfe einer 10 mL Vollpipette genau 10 mL dest. Wasser ab und gib es in ein 50 mL Becherglas. Löse anschließend das Kupfersulfatpenthydrat darin. Eiweißlösung: Wiege 2,5 g Natriumchlorid ab und löse es in 250 mL dest. Wasser (dies entspricht ungefähr dem Wert einer isotonischen Kochsalzlösung). Gib anschließend das Eiweiß eines Hühnereis hinein und verrühre es mit der Lösung (diese Lösung sollte für die Xanthoproteinreaktion aufbewahrt werden). 1. Gib in ein Reagenzglas 2 mL der Eiweißlösung und fülle mit 5 mL dest. Wasser auf. Schüttle die Lösung. 298 Vgl. Asselborn et al., S.374. 285 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil 2. Gib anschließend 5 Tropfen der Kupfersulfatlösung zu. Beobachtungen: Die Kupfersulfatlösung weist eine hellblaue Färbung auf. Die Eiweißlösung ist eine klare bis leicht trübe Flüssigkeit. Nach Zugabe der der Kupfersulfatlösung färbt sich die Eiklarlösung zunächst dunkelblau und schlägt dann in dunkelblau-violett um. Fachliche Auswertung: Der Name Biuret-Reaktion geht zurück auf den Trivialnamen des Allophansäureamids (Vgl. Abb.1), das ebenfalls Biuret genannt wird. Es bildet sich beim Erhitzen von Harnstoff. Bei der Reaktion mit Kupfer(II)-Ionen geht es eine Komplexreaktion unter Bildung einer tiefblauen Färbung ein. O H2N O NH NH2 Abb.1: Allophansäureamid, Trivialname Biuret Die Komplexbildung des Biurets kann folgendermaßen dargestellt werden: O O O - H2N NH NH2 + 2 OH (aq) - (aq) HN O NH NH + 2 H2O (aq) Abb.2a: Bildung des Komplexes – 1.Teil O 2 - HN O NH NH + [Cu(H2O)6] - 2+ (aq) OH2 (aq) O O - HN - NH NH Cu - 2+ NH -NH HN O + 4 H2O O OH2 Abb.2: Bildung des Kupfer(II)-Biuretkomplex – 2. Teil299 299 Vgl. Suchanfrage CSD Database. 286 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Biuret bildet dabei in alkalischem Milieu mit Kupfer(II) einen tiefblauen Komplex. Kupfer(II) ist dabei quadratisch-planar von zwei Biuret Molekülen umlagert, die als Chelatliganden agieren.300 Der gesamte Komplex hat in wässriger Umgebung allerdings wohl - wie auch der Tetraaminkupfer(II)-Komplex - oktaedrische Gestalt (Vgl. Abb.2 und Abb.3): 2+ OH2 H3N NH 3 Cu H3N NH 3 OH2 Abb.3: Tetraaminkupfer(II)-Komplex In beiden Fällen sind jeweils die Spitzen des Oktaeders mit zwei Wasserliganden besetzt. Der entstehende Komplex wird jedoch eher verzerrt-oktaedrische Gestalt haben. Der Grund liegt im Jahn-Teller-Effekt begründet. Bereits im Jahr 1961 wurde ein Kupfer(II)-Biuretkomplex durch Röntgenstrukturanalyse aufgeklärt, dies ergab die CSD-Suchanfrage vom 04.05.2010. Als Referenz ist hierfür H.C.Freeman, J.E.W.L. Smith zu nennen. Versetzt man nun (wie im durchgeführten Versuch) eine alkalische Kupfersulfat-Lösung mit einer polypeptidhaltigen Lösung (hier einer Eiklarlösung) tritt ebenfalls eine intensive Farbreaktion auf. Hier schlägt diese allerdings aus anfänglichem Blau in Richtung Violett um. 300 Vgl.INT.2. 287 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Der sich dabei bildende Komplex kann wie folgt dargestellt werden: O R O . 2 . . . NH NH NH R O . + [Cu(H2O)6] . - 2+ (aq) + 2 OH (aq) (aq) . . . NH . O OH 2 O NH . R R R . N O O NH Cu NH . . O N . . OH 2 . . R + 6 H2O O Abb.4: Mögliche oktaedrische Form des Kupfer(II)-Peptidkomplexes in alkalischer Lösung Das alkalische Milieu sorgt für die Deprotonierung der Peptidbindung(NH). So können nun die Kupfer(II)-Ionen - ähnlich dem Biuretkomplex (Vgl.Abb.2) - einen verzerrt oktaedrischen Komplex bilden. Dieser ist für die intensive blau-violett-Färbung der Lösung verantwortlich. Außerdem verhindert er das Ausfallen der Kupfer(II)-Ionen als Kupferhydroxid, da Kupfer durch den Chelatliganden - das Polypeptid - komplexiert wurde. Für diese Reaktion kommen allerdings – anders als beim Biuret - nur Peptide mit mindestens 4 Peptidbindungen in Frage.301 In eiweißhaltigen Lösungen sind Polypeptide enthalten, die dieses Kriterium erfüllen. Didaktische Auswertung: Dieser Versuch ist ein klassischer Protein- bzw. Polypeptidnachweis. Er findet im Themenfeld der Aminosäuren Anwendung (siehe G8 Lehrplan von Hessen, Punkt 11.2). Der Versuch ist 301 Vgl. INT.2 288 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine sehr einfach der problemlos als Schülerversuch Anwendung finden kann. Hierzu können die Schüler in Kleingruppen verschiedene Lebensmittel - wie Reis, Milch etc. - auf deren Proteingehalt testen. Der Versuch kann allerdings auch zusammen mit den beiden ebenfalls zu diesem Themenkomplex gehörenden Nachweisreaktionen Xanthoprotein-, und Ninhydrinreaktion (Vgl. Protokoll zu Ninhydrin und Protokoll zu Xanthoprotein), als kleiner Lernzirkel im Klassenverband durchgeführt werden. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für anorganische Abfälle entsorgt werden. Literatur: Suchanfrage CSD Database 04.05.2010. Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/expvortr/715AminosaeurenProteine_Schleipen.doc (Zugriff: 25.02.2010). INT.2: http://www.chids.de/dachs/wiss_hausarbeiten/BiochemieBiotechnologie_Weide.pdf (Zugriff: 25.02.2010). 289 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 3: Ninhydrinreaktion mit verschiedenen Substanzen Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 1 Minute Nachbereitung: 2 Minuten Dieser Versuch wird am besten zusammen mit der Biuretprobe durchgeführt. Materialien : Reagenzglas 2x Reagenzglasgestell Reagenzglasklammer Becherglas 250 mL 2x Dreifuß Drahtnetz Bunsenbrenner Tropfpipette Becherglas 50 mL Chemikalien: Stoffbezeichnung Glycin * Hühnerei * Dest. Wasser * Ninhydrin - Reagenz * Natriumchlorid * Summenformel NH2CH2COOH(s) H2O Gefahrensymbole - Xn - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 302 Menge S: 22-24/25 100 mg - 1 Stück - C9H6O4 (solv) NaCl (s) R- und S-Sätze R: 22-36/37/38 S: 26-36 0,5 g - 2,5 g 302 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 290 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: I. Schritt II. Schritt Becherglas mit Leitungswasser Glycin III. Schritt IV. Isotonische Eiklarlösung Schritt Becherglas mit siedendem Wasser Glycinlösung Eiklarlösung Ninhydrinlösung Bunsenbrenner Durchführung: 303 0. Fülle ein 250 mL Becherglas mit 100 mL Leitungswasser. Erwärme es auf einem Drahtnetz stehend mit der rauschenden Brennerflamme bis zum Sieden. Setze währenddessen folgende Lösung an: Herstellung der Lösungen: Wässrige Ninhydrinlösung (w=0,01): Löse 0,5 g Ninhydrin in einem 50 mL Becherglas in 25 mL dest. Wasser.304 303 304 Vgl. Asselborn et al., S.374. Vgl. INT.1. 291 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Eiweißlösung: Wiege 2,5 g Natriumchlorid ab. Löse es in 250 mL dest. Wasser (dies entspricht ungefähr dem Wert einer isotonischen Kochsalzlösung). Gib anschließend das Eiweiß eines Hühnereis hinein und verrühre es mit der Flüssigkeit (Alternativ kann auch die für die Versuche Biuret und Xanthoproteinreaktion angesetzte Lösung verwendet werden). Glycinlösung: Gib in ein Reagenzglas 100 mg Glycin und fülle bis zur Hälfte mit dest. Wasser auf. 1. Fülle das zweite Reagenzglas zur Hälfte mit der Eiweißlösung. 2. Gib zu beiden Reagenzgläsern 3 mL der Ninhydrinlösung. 3. Stelle die beiden Reagenzgläser in das Wasserbad. Erwärme mit mittlerer Flamme vorsichtig weiter. ----4. (optional) Führe den Versuch mit weiteren eiweißhaltigen Haushaltsprodukten durch. Beobachtungen: Die Eiweißlösung sowie die Glycinlösung sind klare bis leicht trübe Flüssigkeiten. Nach Zugabe des Ninhydrins tritt zunächst keine Farbänderung ein. Nach kurzer Zeit im Wasserbad färbt sich die Glycinlösung tief blau-violette. Die Eiweißlösung färbt sich violette bis leicht rosa. Fachliche Auswertung: Die Ninhydrinprobe - auch Ninhydrin Nachweis genannt - ist ein Test für primäre Aminosäuren. Der Test spricht aber auch auf primäre Amine jeglicher Art an. Von größerer Bedeutung ist jedoch der Nachweis der primären -Aminosäuren, da diese von großer biologischer Bedeutung sind. So können mit diesem Nachweis Beispielsweise Proteine, Polypeptide oder die 20 proteinogenen Aminosäuren selbst nachgewiesen werden. 292 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Die intensive blau-violett Färbung die dabei auftritt, ist auf die Bildung eines ‚RuhmannsPurpur‘ zurückzuführen305 (Vgl.Abb.1): 3 aqivalente Grenzformeln O - O N O O Abb.1: Grenzformel des Ruhmannspurpurs Das entstehende Anion (Vgl. Abb.1) ist durch vier Enolat-Grenzformeln sowie zwei Carbanion-Grenzformeln darstellbar. Wegen des so beschreibbaren delokalisierten Elektronensystems sowie der in Abb.1 dargestellten Kreuzkonjugation ist der Ruhmannspurpur ein Farbstoff, dessen Absorptionsmaximum bei 570 nm liegt.306 305 306 Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al., S.34. Vgl. Brückner, S.391. 293 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil A 3 aqivalente Grenzformeln O + NH 3 H2N - O N O R O O - + O O O O OH Imin - Bildung +A OH O R R NH2 O O O H - O NH 2 O + + OH R OH R - H+ + H2O + N H O O - + H2O, - OH O OH O NH O - C OH R O R + C - R + N N H H O O O - CO 2 OH R O O R + O N H O - O - H2O + N -OH O H O Abb.2: Reaktionsmechanismus des Ninhydrin-Test307 307 Vgl. Brückner, S.390. 294 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Das zum Nachweis eingesetzte Ninhydrin, das der Reaktion auch seinen Namen gibt, ist das Hydrat des Indian-1,2,3-trion (Vgl.Abb.3a): O O + H2O OH O OH O O Indan-1,2,3-trion Ninhydrin (farblos) Abb.3a: Ninhydrin Neben der Möglichkeit zur Verwendung als Nachweisreagenz für primäre -Aminosäuren hat Ninhydrin die besondere Eigenschaft, dass es eine der wenigen Substanzen ist, die nicht der Erlenmeyerregel gehorcht. Diese besagt, dass Verbindungen mit zwei Hydroxygruppen an einem Kohlenstoffatom instabil sind.308 Anders ist es bei Ninhydrin: Dieses besitz in -Stellung jeweils elektronenziehende Gruppen, so dass es nicht - wie Beispielsweise das Hydrat des Formaldehyds - nur in wässrigen Lösungen stabil ist, sondern sich sogar isolieren lässt.309 In wässriger Lösung liegt jedoch das Gleichgewicht fast vollständig auf der Seite des Aldehydhydrates. Anders sieht dies jedoch beispielsweise der wässrigen Lösung von Aceton aus. OH O + H 2O H HO Formaldehyd Aldehydhydrat (Methandiol) 99,9 % 0,1 % O OH + H 2O CH3 Aceton 99,8 % H H H H3C C HO C CH3 CH3 Propan-2-diol 0,2 % Abb.3b: geminale Diolbildung – Reaktion von Aldehyden und Ketonen mit Wasser 308 309 Vgl. Asselborn et al., S.245. Vgl. Bruice, S.932. 295 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Die angegebenen Gleichgewichte liegen jedoch nur in wässriger Lösung vor. Die Gleichgewichtseinstellung kann durch Zugabe von Säure beschleunigt werden. Trotz allem ändert dies nichts daran, dass diese geminalen Diole (auch Hydrate genannt) im Allgemeinen zu instabil sind um isoliert zu werden.310 Sie gehorchen damit der beschriebenen Erlenmeyerregel. Die Ninhydrin-Reaktion dient als Nachweis von Aminosäuren, Polypeptiden und Proteinen. Diese müssen allerdings primäre -Aminosäuren besitzen, so ist bei der proteinogenen Aminosäure Prolin (Abb.4) kein positiver Nachweis zu erwarten.311 Der Grund ist, dass Prolin eine sekundäre -Aminosäure ist. H N O OH Prol i n (Pro) Abb.4: Prolin, eine sekundäre, proteinogene -Aminosäure Auch bei zu langen Peptidketten, wie dies in einer Proteinlösung der Fall wäre, kann der Nachweis länger dauern, da in dieser der prozentuale Anteil primärer -Aminosäuren sehr gering ist und Ninhydrin nur auf -Aminosäuren anschlägt. Durch längeres Erwärmen in einem Wasserbad ist jedoch nach einiger Zeit die Bildung des intensiven Farbstoffes erkennbar. Didaktische Auswertung: Der Versuch ist ein weiterer einfach durchzuführender Aminosäure - sowie Proteinnachweis. Er kann - wie auch die beiden Nachweise Biuret und Xanthoprotein - im Themenkomplex der Aminosäuren Anwendung finden. Neben dem Themengebiet der Aminosäuren kann durch diesen Versuch auch noch die bereits im Themenfeld der Alkanole angesprochene Erlenmeyerregel aufgegriffen werden. Ninhydrin ist eine der wenigen Substanzen, die dieser 310 311 Vgl. Bruice, S.932. Vgl. Brückner, S.390. 296 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Regel widerspricht und dadurch noch auf eine andere Art und Weise chemisch von Interesse ist. In der beschriebenen Variante ist der Versuch sowohl als ‚Schülerversuch‘ als auch als ‚Demonstrationsversuch‘ durch den Lehrer denkbar. Eine andere Variante, die jedoch etwas aufwendiger und kostenintensiver ist, ist folgende: Alternativer Ninhydrinnachweis (Exkurs): Die Schüler legen ihre feuchte Hand, die länger nicht gewaschen wurde, 5 Minuten auf ein Filterpapier. Dieses wird mit Hilfe einer ethanolischen Ninhydrin-Sprühreagenz besprüht und anschließend 3 bis 5 Minuten in einen Trockenschrank gelegt. Alternativ kann es auch 3 Minuten lang mit einem herkömmlichen Haartrockner oder einem Bügeleisen bei niedriger Stufe getrocknet werden. Dabei ist ein deutlicher Handabdruck auf dem Filterpapier zu erkennen. An den Stellen, an denen die Haut am stärksten durch den Schweiß befeuchtet war, sind die intensivsten blau-violette Abdrücke zu erkennen. Der Grund ist, dass im menschlichen Schweiß Proteine, und Polypeptide enthalten sind, die mit Ninhydrin nach dem in Abb.2 beschriebenen Mechanismus einen violetten Farbstoff bilden.312 Bei dieser Variante des Versuchs ist für die Schüler erkennbar, dass Proteine einen engen Bezug zum eigenen Körper haben. An dieser Stelle kann auch auf die verschiedenen Kriminalserien verwiesen werden, in denen dieser Versuch vielseitig Anwendung findet. Es ist jedoch abzuwägen, in welcher Form der Versuch den Schülern geboten werden soll. Unabhängig davon sollte seinen Platz im Unterricht finden. 312 Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke, S.33. 297 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Behälter für organischen Abfall entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www-organik.chemie.uniwuerzburg.de/fileadmin/08020000/pdf/erlebnis/verraeterische_spuren.pdf (Zugriff.28.02.2010). INT.2: http://www.chemgapedia.de/vsengine/vlu/vsc/de/ch/8/bc/vlu/proteinanalytik/chromatogr aphie.vlu/Page/vsc/de/ch/8/bc/proteinanalytik/methoden_protein/ninhydrin_reaktion.vsc ml.html (Zugriff.28.02.2010). INT.3: http://tu-freiberg.de/fakult2/bio/ag_mikrobio/lehre/biochemie_skript_1-2.pdf (Zugriff.28.02.2010). 298 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 4: Stickstoffnachweis durch Thermolyse Zeitaufwand: Materialien : Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Feststofftrichter Schwerschmelzbares Reagenzglas Bunsenbrenner Stativfuß Doppelmuffe Stativklemme Pinzette Universalindikator-Papier Glasstab Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Getrocknetes Hühnereiweiß / Eiweißpulver * Dest. Wasser * (Optional): Calciumhydroxid * (Optional): Cobaltchloridpapier *** - H2O - Xi T ,N * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich *** keine Schülerexperimente erlaubt 313 Siehe unten - 250 mL R: 41 S: 22-24-26-39 Ca(OH)2 (s) CoCl2 (s) - R: 49-60-22-42/43-6850/53 S: 53-45-60-61 Krebserzeugend (Kat.K2), Erbgutverändernd (Kat M3), Fortpflanzungsgefährdend (Kat RF2). 0,5 g Siehe unten 313 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 299 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 314 1.Schritt: 2.Schritt: 3.Schritt: Pinzette Pinzette Feststofftrichter Feuchtes Indikatorpapier Cobaltchlorid -papier Schwerschmelzbares Reagenzglas Bunsenbrenner Bunsenbrenner Durchführung: ACHTUNG: Der Versuch sollte im Abzug durchgeführt werden da sich giftige Dämpfe bilden! Wasserfreies Cobaltchlorid gilt als krebserzeugend, erbgutverändernd und fortpflanzungsgefährdend. Daher sollte selbst beim Einsatz des trockenen Cobaltchloridstreifens auf das Tragen von Handschuhen geachtet werden. Falls kein Cobaltchloridpapier vorhanden ist, kann dies folgendermaßen hergestellt werden: Kobaltchlorid-Papier: (optional) Tauche ein Filterpapier in konzentrierte Cobaltchlorid-Lösung und trockne es anschließend im Trockenschrank (über 40 °C) bis es blau ist. Für Schülerversuche dürfen keine Kobalt-Verbindungen verwendet werden.315 (Aufgrund der akuten Giftigkeit des Cobaltchlorids sollte evtl. auf das Selbstherstellen verzichtet werden, da auf diese Weise lediglich Wasser nachgewiesen werden kann). Auf die Giftigkeit und die Problematik wird in der Quelle INT.3 verwiesen.316 An dieser Stelle wird zum Einsatz von wasserfreiem Kupfersulfatpapier geraten. 314 Vgl. Schuphan/Knappe, S.120. Vgl. INT.1. 316 Vgl. INT.3. 315 300 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Calciumhydroxid-Lösung (Kalkwasser): (optional) Löse 0,5 g Calciumhydroxid werden in 250 mL warmem Wasser gelöst und danach filtriert.317 1. Fülle das Reagenzglas etwa 1 cm hoch mit getrocknetem Hühnereiweiß. 2. Spanne das Reagenzglas waagerecht in der Apparatur ein. Erwärme zunächst vorsichtig mit dem Bunsenbrenner bis sich einige Wassertröpfchen bilden. (optional): Benetze das Cobaltchloridpapier mit den Tröpfchen. 3. Erwärme nun kräftig weiter bis sich ein weißer Nebel bildet. 4. Halte in den weißlichen Nebel wird ein feuchtes Indikatorpapier. 5. (optional): Ein Glasstab, der zuvor in die Calciumhydroxidlösung getaucht wurde, wird in den weißen Nebel gehalten. Beobachtungen: Bei dem getrockneten Eiweiß handelt es sich um ein weißes Pulver. Das wasserfreie Cobaltchloridpapier ist blau gefärbt. Wird es mit den sich bildenden Tropfen in Berührung gebracht, färbt sich das Papier leicht rosarot. Durch das starke Erhitzen des Eiweißes entsteht ein weiß – grauer Rauch. Wird feuchtes Universalindikatorpapier in den Rauch gehalten, färbt sich dieses langsam blau – grün. Ein Tropfen der klaren Calciumhydroxidlösung trübt sich bei kurzem Kontakt mit dem weißen Rauch ein. Fachliche Auswertung: Proteine sind makromolekulare Naturstoffe die aus Aminosäurebausteinen aufgebaut sind. Diese Aminosäurebausteine sind über eine Peptidbindung miteinander verbunden. Jeder einzelne Aminosäurebaustein ist aus Kohlenstoff (C), Wasserstoff (H), Sauerstoff (O) und Stickstoff (N) aufgebaut. Die Aminosäuren Cystein und Methionin besitzen zusätzlich noch Schwefel (S) (Vgl. Versuch 5: Schwefelnachweis durch Thermolyse). 317 Vgl. INT.2. 301 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Werden die getrockneten Eiweißmoleküle (Proteine) nun stark erhitzt, zersetzten sie sich. Dabei entstehen aus den Proteinen durch Pyrolyse - also der vollständigen Zersetzung verschiedene Gase.318 Der weiße Rauch, der beobachtet werden konnte, enthält darüber hinaus allerdings auch verschiedene Feststoffe, die als Aerosole mit den aufsteigenden Gasen mitgerissen werden. Durch das feuchte Universalindikatorpapier kann indirekt Stickstoff in Form von Ammoniak (NH3) nachgewiesen werden. Das feuchte Universalindikatorpapier zeigt mit seiner grün – blau Färbung die Anwesenheit einer Base an. Die Bildung des gasförmigen Ammoniaks ist die beste Erklärung für die basische Reaktion. Die Reaktion, die sich auf dem Indikatorpapier abspielt, kann vereinfacht folgendermaßen dargestellt werden: HIND (aq) + farblos NH3 (g) IND - (aq) + NH4 + (aq) grün - blau Abb.1: Universalindikator Bei einem Universalindikator handelt es sich um ein Gemisch aus den verschiedensten Indikatoren, wobei jeder für sich einen anderen Umschlagsbereich besitzt. Der Kniff des Universalindikators besteht nun darin, dass die Indikatoren so gewählt sind, dass sich die Farbe des Teststreifens (oder der Flüssigkeit) mit jeder pH – Einheit ändert. Man so dann genau sagen kann in welchem pH – Bereich man sich befindet.319 Dies ist deshalb so bemerkenswert, da jeder einzelne Indikator meist nur sehr grobe Richtwerte abgeben kann. So zum Beispiel Phenolphtalein, das im basischen Milieu eine rosa Färbung aufweist, während es im sauren farblos erscheint. Würde man nur Phenolphtalein benutzen, würde es zwar auch die Anwesenheit der Base Ammoniak anzeigen, jedoch für genauere Messungen wäre es ungeeignet. Ein weiterer Vorteil der Anwendung von pH – Papier ist, dass es in Form eines Papierstreifens vorliegt und somit für diesen Versuch sehr gut handhabbar ist. Phenolphtalein ist einer der bekanntesten Indikatoren und zählt zur Klasse der Triphenylmethanfarbstoffe.320 Anwendung findet es als Indikator in 0,1 % -iger alkoholischer Lösung. 318 Vgl. INT.1. Vgl. Asselborn et al., S.118. 320 Vgl. INT.4. 319 302 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil OH O HO - O + 2 OHO + 2 H+ O O - O chinoide Form lactonide Form Abb.2: Phenolphtalein Im sauren Milieu liegt Phenolphtalein321 in lactonider Form vor. Durch Zugabe von Lauge erfolgt oberhalb von pH 8,2 ein Farbumschlag von farblos nach rosa. Dabei öffnet sich der Lactonring und man erhält die chinoide Form. Die Reaktion ist reversibel und kann durch Zugabe von Säure wieder umgekehrt werden (Vgl. Abb.2). Das sich bildende Wasser, das bei diesen Temperaturen gasförmig vorliegt, kondensiert teilweise an den Glaswänden des Reagenzglases. Dies erklärt die beobachtbare Tröpfchenbildung. Kommt nun wasserfreies Cobaltchlorid (CoCl2), das eine blaue Farbe aufweist, mit Wasser in Berührung, bildet sich das rosarote Hexahydrat des Cobaltchlorids. Die intensive Rosa-Färbung des Hexahydrates geht auf die Bildung des Komplexes [Co(H2O)6]2+ zurück.322 Neben dem Wasser (H2O) und dem Ammoniak (NH3) entsteht noch Kohlendioxid (CO2), das durch Kalkwasser nachgewiesen werden kann (Vgl. Abb.3). Ca(OH)2 (aq) + CO2 (g) CaCO3 (s) + H2O Abb.3: Kohlendioxidnachweis durch Kalkwasser Die Trübung des Wassertropfens ist auf die Bildung des schwerlöslichen Kalkes (CaCO3) zurückzuführen. Aufgrund der Schwerlöslichkeit des Calciumcarbonats trübt sich die Lösung schon bei geringen Kohlendioxidmengen. 321 322 Vgl. Deckwer et al.. Vgl. Riedel, 7. Aufl., S.857. 303 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Didaktische Auswertung: Der Versuch erweitert durch eine weitere halbqualitative Analyse den Themenbereich der Elementaranalyse der Aminosäuren. Aufgrund der Giftigkeit von Cobaltchlorid sollte jedoch auf die Selbstherstellung des Cobaltchloridpapiers verzichtet werden. Falls keines festes Papier zur Hand sein sollte, kann auf das weniger giftige Kupfersulfat zurückgegriffen werden. Auch aus diesem lässt sich ein Nachweispapier herstellen. Jedoch ist anzumerken, dass dieses, nach meinen Erfahrungen nicht immer ganz eindeutige Ergebnisse liefert. Der Versuch sollte auch in jedem Fall im Abzug durchgeführt werden, da sich giftige Gase bilden können. Aus diesem Grund eignet sich der Versuch zur Pyrolyse von Eiweißen auch weniger als ‚Schülerversuch‘. Entsorgung: Die Reste können nach dem Abkühlen im Hausmüll entsorgt werden. Das evtl. verwendete Cobaltchloridpapier wird im Feststoff entsorgt; die Calciumhydroxidlösung wird neutralisiert und kann im Ausguss entsorgt werden. Literatur: Schuphan und Knappe – Chemiebuch, S.120. Internetquellen: INT.1: http://www.axel-schunk.de/experiment/edm0710.html (Zugriff: 11.03.2010). INT.2: http://www.seilnacht.tuttlingen.com/Chemie/ch_caoh2.htm (Zugriff: 11.03.2010). INT.3: http://www.seilnacht.tuttlingen.com/Chemie/ch_cocl2.htm (Zugriff: 11.03.2010). INT.4: http://www.seilnacht.com/Chemie/ch_pheth.htm (Zugriff: 11.03.2010). 304 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 5: Schwefelnachweis durch Thermolyse Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 5 Minuten Nachbereitung: 4 Minuten Materialien : Reagenzglas Stativstange Stativfuß Doppelmuffe Stativklemme Bunsenbrenner Filterpapier Pinzette Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Ein Büschel Haare - (3 cm lang) - * Bleiacetatpapier *** Dest. Wasser * R: 61-20/22-33Pb(CH3COO)2 50/53-62 T H2O ,N S: 53-45-60-61 - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 323 *** keine Schülerexperimente erlaubt 323 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 305 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: Pinzette Haarbüschel Stativstange + Stativständer Bunsenbrenner Durchführung: 324 ACHTUNG! Diesen Versuch nur in einem Abzug durchführen! 1. Besorge ein Büschel Haare (ca. 3 cm lang). Baue die Apparatur wie dargestellt auf. 2. Stecke das Büschel Haare in ein Reagenzglas. 3. Erhitze das Reagenzglas mit Hilfe des Brenners unter rauschender Flamme. Erwärme so lange bis sich das Haarbüschel thermisch zersetzen kann. 4. Feuchte mit etwas dest. Wasser einen Streifen Bleiacetatpapier an und halte ihn mit Hilfe einer Pinzette in die Öffnung des Reagenzglases (hierbei sollten ggf. Handschuhe getragen werden). Beobachtungen: Durch das Erhitzen ist ein Brodeln und Blubbern im Reagenzglas zu erkennen. Es bildet sich Kondenswasser an der Glaswand. Das weiße Bleiacetatpapier färbt sich nach kurzer Zeit schwarz. Im Reagenzglas bildet sich ein schwarzer Rückstand. 324 Vgl. Schuphan/Knappe, S. 120. 306 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Fachliche Auswertung: Menschliche Haare besten zu 90 % aus Kreatin, einem wasserunlöslichen Faserprotein.325 Die proteinogene Aminosäure Cystein ist ein Bestandteil des Kreatins. Das Protein Kreatin besteht sogar zu einem ungewöhnlich hohen Anteil aus Cystein, nämlich zu ca. 8%. Damit ist statistisch gesehen jede zwölfte Aminosäure Cystein.326 Aus diesem Grund wird Cystein technisch auch aus kreatinhaltigen Substanzen - wie Horn oder Tierhaaren - gewonnen. O H2N OH SH L - Cys tei n (Cys) Abb.1: Schwefelhaltige Aminosäure Cystein Das Faserprotein Kreatin im Haar ist vorwiegend in einer -Helix aufgebaut. Diese schraubenförmige Struktur ist in Abb.2 dargestellt. Im glatten Haar sind nun mehrere dieser Proteinstränge durch Disulfidbrücken des Cysteinrestes zu einer Kreatinfaser verbunden. Diese Querverbindungen sorgen für die Stabilität im Haar. Durch die Einwirkung von Wärme sowie dem Einsatz von Reduktionsmitteln kann diese Querverbindung teilweise zu 20 – 45 % geöffnet und anschließend eine neue Struktur erzwungen werden. Dieses Phänomen wird sich beim Erstellen einer Dauerwelle zu Nutze gemacht. Hierbei wird durch Wärme die Verwendung eines Reduktionsmittels sowie durch den Einsatz von Lockenwicklern als Formgeber den Haarsträhnen einen neue Struktur aufgezwungen (dargestellt in Abb.2 Punkt 2 – 4).327 und 328 325 Vgl. INT.3. Vgl. Bruice, S.1189. 327 Vgl. INT.1. 328 Vgl. Bruice, S.1189. 326 307 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Abb.2: Schwefelbrücken im Kreatin329 Damit diese neue Struktur dann auch „dauerhaft“ bleibt, wird anschließend der zum Thioalkohol reduzierte Cysteinrest wieder oxidiert, so dass aus zwei Cysteinresten, Cystin gebildet wir. So werden die Proteinstränge in neuer Form wieder über eine Disulfidbrücke (Vgl.Abb.2 Abschnitt 4) verbunden. Dies sorgt dann für Stabilität der neu arrangierten Form.330 Von ewiger Dauer ist diese Dauerwelle jedoch auch nicht. Die nachwachsenden Haare besitzen weiterhin die von Natur aus vorgegebenen Muster. Die Dauerwelle bleibt zwar erhalten, wächst jedoch heraus. Erhitzt man nun die Aminosäure stark, zersetzt sie sich. Man spricht von thermischer Zersetzung. Dabei bildet sich unter anderem Schwefelwasserstoff (H2S). Schwefelwasserstoff ist ein sehr giftiges, unangenehm riechendes Gas.331 Es handelt sich um eine schwache zweiprotonige Säure. Kommt es mit feuchtem Bleiacetatpapier in Berührung, färbt sich dieses schwarz. Die Reaktionen auf dem Bleiacetatpapier kann dabei wie folgt beschrieben werden: 2+ Pb(CH3COO)2 H2 S (s) 2+ (g) + Pb (aq) Pb PbS (s) (aq) + 2 CH3COO (aq) + +2H (aq) Abb.3: Bildung des schwarzen Bleisulfides 329 Vgl. Abbildungsverzeichnis, [6]. Vgl. Bruice, S.1189. 331 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.442. 330 308 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Das sich bildende Bleisulfid (PbS) ist - wie fast alle Sulfide - schwerlöslich und für die schwarze Färbung verantwortlich.332 Das sich bildende Sulfid stammt dabei aus der schwefelhaltigen Aminosäure Cystein. Da Kunsthaar dieses nicht besitzt, kann durch diesen einfachen Versuch echtes von unechtem Haar unterschieden werden. Didaktische Auswertung: Der Schwefelnachweis erweitert den Kreis der Analyseverfahren der Aminosäuren um einen weiteren Versuch. So kann mit diesem Versuch einfach und schnell Schwefel in Haaren nachgewiesen werden. Aufgrund der Verwendung von Haaren als Analysesubstanz besitzt der Versuch auch einen großen Alltagsbezug. Allgemein kann er im Themengebiet der Aminosäuren und Proteine in der Jahrgangsstufe 11 untergebracht werden. Hier dient er der quantitativen Analyse. Darüber hinaus kann an diesem Versuch die Struktur sowie der Aufbau des Proteins Kreatin näher betrachtet werden. Auch das Phänomen der Dauerwellenbildung kann anschaulich beschrieben werden. Hierzu könnte jedoch auch noch der Versuch zur Oxidation von Cystein zu Cystin herangezogen werden, da in diesem die Ausbildung von stabilisierend wirkenden Disulfidbrücken zum Thema gemacht wird. Beide zusammen bilden dann eine gute Grundlage für die nähere Betrachtung. Zu beachten ist jedoch die Verwendung von Bleiacetatpapier. Verwendet man kein gekauftes, sondern stellt es selbst her, ist der Versuch als ‚Schülerversuch‘ aufgrund der Giftigkeit und fruchtschädigenden Wirkung des Bleiacetats nicht mehr geeignet. Doch auch bei der Verwendung des vorgefertigten Bleiacetatpapiers sollten Handschuhe getragen sowie eine Pinzette zum Halten des Papiers verwendet werden. Aufgrund der akuten Toxizität ist dazu zu raten, vorgefertigtes Bleiacetatpapier zu verwenden. Eine Rolle mit 5 Meter Länge kostet im Laborfachhandel ca. 4 Euro.333 Dies ist sicher ein gute Alternative zum selber herstellen aus einer Bleiacetatlösung und Filterpapier. 332 333 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.443. Vgl. INT.4. 309 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Entsorgung: Das Reagenzglas kann nach dem Abkühlen, wie auch das getrocknete Bleiacetatpapier, im Feststoffabfall entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.wdr.de/tv/quarks/global/pdf/haare.pdf (Zugriff: 02.03.2010) (Seite 14). INT.2: http://www.chemieunterricht.de/dc2/fragen/frage-58.htm (Zugriff: 02.03.2010) INT.3: http://www.chemie-im-alltag.de/articles/0083 (06.03.2010). INT.4: http://www.lablaborfachhandel.de/katalogedownloads/indikatorpapier/bleiacetatpapier1rollea5meter.php (Zugriff: 02.03.2010) 310 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 6: Oxidation von Cystein zu Cystin Zeitaufwand: Vorbereitung: 3 Minuten Durchführung: 4 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Materialien : Reagenzglas 2x Reagenzglasgestell Reagenzglasklammer Pipette + Hütchen Dreifuß Drahtnetz Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Eisen(III)-Chlorid Hexahydrat * Dest. Wasser * Natriumacetat * C3H7NO2S(s) R: 22 1g 0,5 g Xn H2O (CH3COO)Na - - - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 334 S: 26-27-36/37/39 C * Cystein R: 22-34 FeCl3 * 6 H2O(s) S: 22-24/25 210 mL 4,1 g 334 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 311 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: Cystein 3.Schritt: Spatel mit Eisen(III)Chlorid Frischhaltefolie 0,1 molare Natriumacetatlösung Natriumacetat Cysteinlösung Durchführung: 335 Herstellung der Lösungen: Natriumacetatlösung (c = 0,5 mol/L): Löse 4,1 g Natriumacetat in 100 mL dest. Wasser. Eisen(III)-Chloridlösung: Löse 1 g Eisen(III)-Chlorid in 10 mL dest. Wasser. 1. Löse in einem 250 mL Erlenmeyerkolben 0,5 g Cystein in 100 mL Natriumacetat – Lösung. 2. Gib zu dieser Lösung nun die Eisen(III)-Chloridlösung. 3. Verschließe das Reaktionsgefäß mit Hilfe einer Frischhaltefolie. 4. Warte 2 – 3 Minuten, dann schüttle das Gefäß vorsichtig. Beobachtungen: Nach Zugabe des Eisen(III)-Chlorids war eine intensive violette Färbung der Lösung zu beobachten. Nach dem 2 Minuten vergangen waren, entfärbte sich die Lösung wieder und 335 Vgl. Weide, S.160. 312 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil war fast farblos. Nach dem Schütteln trat die anfänglich zu beobachtende violette Färbung der Lösung wieder auf. Fachliche Auswertung: Eisen(III)-Chlorid ist eine hygroskopische Substanz; sie liegt meist nicht mehr als das rotgrüne FeCl3, sondern als schmutzig gelbes FeCl3 * 6 H2O vor. Die wasserfreie Variante hat eine molekulare Masse von 162 𝒈 𝒎𝒐𝒍 , während das gelbe Eisen(III)-Chlorid Hexahydrat eine 𝒈 molekulare Masse von 270 𝒎𝒐𝒍 hat. Das Besondere an dem Eisen(III)-Chlorid ist, dass es sauer in wässriger Lösung reagiert. Der Grund ist die starke Kationensäure Eisen(III), die eine sehr harte Lewissäure darstellt, während das Anion (Chlorid) nur eine schwache Anionenbase ist. Die Lösung des Eisen(III)-Chlorids kann strak vereinfacht folgendermaßen dargestellt werden: FeCl3 (s) H2O Fe 3+ (aq) + - 3 Cl (aq) Abb.1: vereinfachte Darstellung des lösens von Eisen(III)-Chlorids Bei genauerer Betrachtung des Vorgangs ist jedoch die Bildung eines Hexaaquakomplexes zu beobachten, dieser kann wie folgt dargestellt werden (vgl. Abb.1): 3+ OH2 [Fe(H2O)6] 3+ H2 O : OH2 Fe H2 O OH2 OH2 Abb.2: Hexaquakomplex des Eisen(III). Die saure Eigenschaft der harten Lewissäure Eisen(III) lässt sich durch die folgende Reaktionsgleichung erklären (Vgl.Abb.3): 313 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil 3+ 2+ OH2 OH2 H2O H2O OH2 Fe H2O O + H + H2O OH2 Fe H2O + H3O + OH H OH2 [Fe(H2O)6] OH2 3+ + H2O [Fe(H2O)5OH] 2+ (aq) + H3O + Abb.3: Hexaquakomplex des Eisen(III). Dieser Reaktion geht eine Komplexbildungsreaktion voraus, die mit Hilfe einer Lewis-SäureBase-Reaktion beschrieben werden kann. Die Deprotonierung des Komplexes, dargestellt in Abb.3, die die saure Reaktion erklären kann, geht auf den Einfluss der starken Kationensäure Eisen(III) zurück. Eisen tritt in dem Komplex als relativ kleines, hoch geladenes Zentralion auf. Dies bewirkt, dass die Wasserliganden im Komplex stark polarisiert werden, was zu einer Schwächung der O-H Bindung führt. Dieser Eisen(III) – Komplex zeigt noch eine weitere interessante Eigenschaft, nämlich das „Altern“ von Lösungen.336 Dieses Phänomen kann durch Olation und Okalation beschrieben werden, soll aber hier nicht weiter ausgeführt werden, da das Eisen(III) schnell zu Eisen(II) reduziert wird, weil dieses Phänomen im durchgeführten Versuch keine gewichtige Rolle spielt.337 Für die intensive Farbigkeit der Lösung ist die Bildung eines Eisen(III)-Komplexes mit dem Cystein verantwortlich. Dieser sich bildende Komplex ist deutlich stabiler als der Eisen(III)Hexaquakomplex. Cystein ist eine schwefelhaltige Aminosäure und ein wichtiger Bestandteil des vorwiegend in Haaren und Horn vorkommenden Proteins Kreatin. Cystein kann im basischen Milieu als dreizähniger Ligand auftreten (vgl. Abb.4). Aus diesem Grund findet die Reaktion auch in acetathaltiger Lösung statt. 336 337 Vgl. Neumüller (2009). Vgl. Neumüller (2009). 314 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Der Schwefelgehalt kann qualitativ durch Thermolyse von Haaren bestimmt werden und durch Bleiacetatpapier nachgewiesen werden (vgl. Versuch 5: Schwefelnachweis durch Thermolyse). O H2N OH SH + OH O H2N (aq) HC O - + H 2O (aq) CH2 SH L - Cys tei n (Cys) (aq) O H2N HC O - CH2 SH Abb.4: Schwefelhaltige Aminosäure Cystein Cystein tritt bei der Reaktion als dreizähniger Ligand auf und verdrängt damit das Wasser aus dem Komplex, dargestellt in Abb.5. Mehrzähnige Liganden werden als Chelatliganden bezeichnet. Das Wort leitet sich dabei vom griechischen „chelat“ ab, was soviel wie Schere bedeutet.338 338 Vgl. Riedel, 7.Aufl., S.681. 315 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil H 3+ C 3+ OH 2 H2C H2O OH 2 +2 H2O O H2N Fe OH 2 H2C H2N SH O - SH O O O C C OH 2 + 6 H 2O Fe SH NH2 O CH 2 C H Abb.5: Eisen(III)-Cysteinkomplex 339 Dieser Eisen(III)-Cysteinkomplex ist für die intensive violette Färbung der Lösung verantwortlich.340 Doch der abgebildete Eisenkomplex bleibt in dieser Form unter diesen Bedingungen nicht lange bestehen, wie das Verschwinden der intensiven violetten Farbe deutlich macht. So wird Eisen(III) (Fe3+) durch Cystein (Cys) zu Eisen(II) (Fe2+) reduziert (Vgl.Abb.6a und 6b). Der Schwefel hat im Cystein-Molekül die Oxidationsstufe –II. Durch die Elektronenabgabe wird eine Disulfidbrücke gebildet. Aus zwei Cystein-Molekülen entsteht Cystin. Oxidation NH2 -II 2 HS CH 2 CH NH2 COO - (aq) OOC CH CH 2 -I -I S S NH2 CH 2 CH COO - + +2H (aq) (aq) + Cystin Cystein (Cys) Reduktion +II +III 2 Fe 3+ - (aq) +2e 2 Fe 2+ (aq) Abb.6a: Reaktionsverlauf des Redoxsystems I Das entstandene Cystin bildet mit dem Eisen(II) keinen farbigen Komplex mehr aus. Daher verschwindet nach einiger Zeit die intensive violette Färbung der Lösung. 339 340 Vgl. Weide, S.162. Vgl. Weide, S.161f. 316 - 2e III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Die so entstehenden Disulfidbrücken haben große Bedeutung bei Form und Stabilität der Tertiär- und Quartärstruktur von Proteinen und finden Beispielsweise beim erstellen von Dauerwellen im täglichen Leben Anwendung (Vgl.Versuch 5: Schwefelnachweis durch Thermolyse). Parallel zu dieser Reaktion kann noch eine weitere Oxidationsreaktion ablaufen. Nämlich die Rückoxidation von Eisen(II) zu Eisen(III) durch den gelösten Sauerstoff in der Lösung: Oxidation +II 2 Fe +III 2+ 2 Fe (aq) 3+ - (aq) +2e Reduktion + 2H 0 + 1/2 O (aq) 2 -II (g) H2O Abb.6b: Reaktionsverlauf des Redoxsystems II Wird die Lösung geschüttelt, so wird die Rückreaktion eingeleitet, da auf diese Weise Sauerstoff in die Lösung gelangen konnte. Dieser kann dann (wie in Abb.6b) die Rückoxidation zu Eisen(III) einleiten. Ist genügend Eisen(III) gebildet worden, kommt es erneut zur charakteristischen violetten Farbbildung in der Lösung. Das gesamte Redoxsystem wird in Abb. 7 beschrieben: Abb.7: Beschreibung des Redoxsystems 341 und 342 341 342 Vgl. INT.1, S.163. Vgl. Abbildungsverzeichnis, [8]. 317 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Die stabilisierende Funktion der Disulfidbrücke und die daraus resultierende Wirkung für Form und Struktur, die die dreidimensionale Struktur der Proteine entscheidend prägt, soll in den folgenden beiden Abb.8 a und Abb.8b schematisch und vereinfacht dargestellt werden. Die Aminosäuren sind durch geometrische Formen dargestellt und mit ihrem Namenskürzel versehen (Vgl. hierzu Einleitung Themengebiet Aminosäuren, II. Theorieteil). Abb.8a: Disulfidbrücken in Form von Interketten- und Zwischenkettendisulfidbrücken Die in Abb.8a dargestellten Disulfidbrücken führen neben verschiedenen anderen Wechselwirkungen dazu, dass sich das Protein in einer charakteristischen Weise 3 Dimensional anordnet (Vgl. Abb. 8b). Abb.8b: Strukturbildende Funktion der Disulfidbrücken 343 und 344 343 344 Bruice, S.1189. Vgl. Abbildungsverzeichnis, [7]. 318 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Die Disulfidbrücken bilden sich, wie auch beim durchgeführten Versuch, durch Oxidation zweier Cysteinreste. Dabei verknüpfen sie dann die Ketten untereinander (wie in Abb.8b und 8c dargestellt) oder sie können auch Polypeptidketten miteinander verknüpfen (Vgl.Abb. 8a), so wie dies im Protein Kreatin (Hauptbestandteil unserer Haare ist) geschieht.345 Abb.8c: Disulfidbrücken vernetzen Teile der Polypeptidketten miteinander 346 und 347 Didaktische Auswertung: Der durchgeführte Versuch zeigt einen anderen Aspekt der Aminosäuren. So wird hier zum einen das Auftreten als Chelatligand zum Thema gemacht, als auch die Möglichkeit als Redoxreagentie zu fungieren. Damit geht dies über die Puffereigenschaft, den Zwitterionencharakter sowie die wichtigste Eigenschaft, der unwahrscheinlich großen Variationsmöglichkeiten der Aminosäuren lange Ketten zu bilden und sich zu komplexen organischen bioaktive Substanzen zusammen zu lagern, hinaus. Anzumerken sei an dieser Stelle, dass die Redoxeigenschaft keine typische Eigenschaft für Aminosäuren ist, sondern sich auf die Seitenkette mit der Schwefelgruppe beschränkt. All dies zusammen genommen zeigt die große Vielfalt der Aminosäuren die im Körper vielfach Anwendung finden. Der Versuch ist aufgrund des geringen Gefahrenpotentials durchaus als ‚Schülerversuch‘ geeignet, kann aber auch als ‚Demonstrationsversuch‘ durch den Lehrer Einzug in den Unterricht finden. Die Schüler bekommen durch diesen Versuch eine andere Seite des Naturstoffes aufgezeigt, die auch eine Überleitung in ein mögliches Wahlthema - Komplexchemie - das in 12G.2 des 345 Vgl. Bruice, S.1189. Bruice, S.1189. 347 Vgl. Abbildungsverzeichnis, [9]. 346 319 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine hessischen G8 Lehrplans verankert ist, darstellen kann. In diesem Fall wird die Möglichkeit des Cysteins aufgezeigt, farbige Komplexe mit dem Eisen(III)–Kation einzugehen. Diese Eigenschaft ändert sich jedoch durch die Oxidation zu Cystin und die Reduktion von Eisen(III) zu Eisen(II). Gerade das - zumindest zu Beginn - reversible dieser Reaktion und die dadurch auftretende Effekte machen den Versuch für die Schüler spannend. Aufgrund seiner schönen Effekte bereichert der Versuch das Themengebiet der Aminosäuren. Zu dem ist er einfach durchzuführen und gibt die Möglichkeit in ein neues Themengebiet überzuleiten. Entsorgung: Die Lösung kann neutral im Sammelbehälter für anorganische Lösungen gegeben werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/wiss_hausarbeiten/BiochemieBiotechnologie_Weide.pdf (Zugriff: 25.02.2010). 320 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 7: Maillardreaktion Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 2 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Materialien : Reagenzglas 2x Bunsenbrenner Reagenzglasklammer Spatel Reagenzglasgestell Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel L-Cystein * Glycin * Glucose * Dest. Wasser * R: 22 C3H7NO2S (s) Xn C2H5NO2 (s) C6H12O6 (s) H2O (l) - - - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 348 S: - 100 mg - 100 mg - 200 mg - 10 – 15 Tropfen 348 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 321 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.+2. Schritt: 3.Schritt: Reagenzglasklammer Spatel mit der jeweiligen Aminosäure Reagenzglas mit dem Glucose-Aminosäuregemisch Reagenzglas Bunsenbrenner Durchführung: 349 1. Gib in ein Reagenzglas 100 mg Glycin, in das andere 100 mg L-Cystein. 2. Fülle anschließend 100 mg Glucose zu und gib 5 Tropfen dest. Wasser in jedes Reagenzglas. Vermische alles durch vorsichtiges Schwenken. 3. Erhitze das Gemisch vorsichtig unter flackernder Flamme (später dann etwas stärker unter halbrauschender Flamme). 4. Nimm nach kurzer Zeit vorsichtig eine Geruchsprobe. Erwärme weiter wenn die Intensität noch nicht ausreichend ist. Verschließe das Reagenzglas, lass es abkühlen und gib es an die Schüler zur Geruchsprobe weiter. ---5. (optional): Gib an die Schüler eine Blindprobe, eine Mischung der jeweiligen Aminosäuren, die mit Glucose angereichert ist. Beobachtungen: Glycin, Glucose und L-Cystein sind farblose kristalline Substanzen. Durch Erhitzen verändert sich die Farbe allmählich und wird leicht gelb. Beim Gemisch aus L-Cystein und Glucose wird die Farbe bräunlich gelb. Die Geruchsprobe zeigt bei Gemisch 1 aus Glucose und Glycin einen karamellartigen Geruch, während das Gemisch 2 nach gebratenem Fleisch riecht. 349 Vgl. INT.1. 322 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Fachliche Auswertung: Die ablaufende Reaktion wird als Maillard Reaktion bezeichnet. Die Maillard Reaktion ist eine im Alltag weit verbreitete, wenn auch unscheinbar ablaufende Reaktion. Sie läuft beim Kochen oder Braten ab und ist unter anderem für die appetitanregenden Düfte nach knusprigem Braten, frischen Brötchen oder süßlichem Karamell sowie die Bräunung der Lebensmittel verantwortlich. Die ablaufenden Reaktionen sind mit verantwortlich für Geschmack und Aromen der zubereiteten Speisen. Doch nicht alle entstehende Produkte sind als völlig unbedenklich anzusehen; so entstehen auch einige Verbindungen, die in Verdacht stehen „in vitro toxisch“ zu sein.350 Benannt ist diese Reaktion nach dem französischen Biochemiker Louis Camille Maillard (1878-1936), der sie 1912 entdeckte und mit ihr experimentierte. Der chemische Ablauf ist äußerst komplex und trotz ausführlicher Untersuchungen aufgrund der vielfachen Variationsmöglichkeiten noch immer nicht endgültig mechanistisch geklärt.351 Vereinfacht lässt sich die Reaktion folgendermaßen beschreiben: Der Zucker (hier die Glucose) der Lebensmittel reagiert bei Temperaturen oberhalb von 140°C mit Proteinen, Aminosäuren und Peptiden. Dabei wird Wasser abgespalten und unterschiedliche neue Produkte gebildet. So unter anderem diejenigen, die uns als flüchtige Aromastoffe bekannt sind und für den wohlriechenden Duft vieler Lebensmittel verantwortlich sind. Für den karamellartigen Geruch der Probe im durchgeführten Versuch ist wohl unteranderem die Bildung des Maltols verantwortlich: O OH O CH3 Abb.1: Maltol Der erste Teil der Reaktion wird als Initiation bezeichnet (Vgl. Abb.2 und Abb.3). Hierbei handelt es sich um eine 1:1 Kondensationsreaktion eines primären oder sekundären Amins mit einer Aldose. In dem durchgeführten Versuch ist es das primäre Amin Glycin mit der Glucose. Vereinfacht kann diese Initiierungsreaktion wie folgt dargestellt werden: 350 351 Zit. Ebermann/Elmadfa, S.665. Vgl. Ebermann/Elmadfa, S.665. 323 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil O OH H O H H OH HO H H OH H OH H H2N HO + HO O NH H O OH OH H H OH H OH OH N H - H2 O OH HO H H OH H OH CH 2OH CH 2OH Glucose CH 2OH Glycin Schiffsche Base Abb.2: Initiierungsreaktion I Hierbei reagiert Glucose mit Glycin unter Wasserabspaltung zu einer ‚Schiffschen Base‘, einer Aminoketose. Die Bildung des für den karamellartigen Geruch der Substanz verantwortlichen Maltols kann nun wie folgt beschrieben werden: O HO OH OH O OH + H2N NH O O OH HO HO OH HO OH OH - Glucosylglycin I Glycin Glucose + + H , H2O OH OH O H OH NH OH + OH O N O + HO OH +H OH - Glucosylglycin III HO OH OH Glucosylimin Abb.3: Initiierungsreaktion II352 352 Vgl. Ebermann/Elmadafa, S.664ff. 324 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil H OH OH + N OH O HO OH OH NH OH NH OH O + O HO OH OH OH OH Glucosylimin H + HO OH O Amadori - Verbindung OH OH weitere Reaktionen möglich + +H N - Protonierung OH + OH Enol OH OH H H N OH O HO O CH2 HO OH + H2N Glycin O OH OH OH OH H3C OH CH3 - 2 H2O Umlagerung HO O O HO Maltol O O Abb.4: Bildung des Maltols353 Die dargestellte komplexe Reaktion ist nur eine der vielen möglichen Reaktionen, die unter dem Namen ‚Maillard Reaktion‘ bekannt sind. Viele dieser Reaktionen laufen bei Temperaturen oberhalb von 140 °C gleichzeitig ab, so dass der entstehende Geruch eine Mischung aus einer Vielzahl von Stoffen ist.354 353 354 Vgl. Ebermann/Elmadafa, S.664ff. Vgl. Ebermann/Elmadafa, S.665f. 325 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Dass neben der in Abb.4 beschriebenen Reaktion noch Weitere ablaufen müssen, ist an der gelb – braun Färbung der Substanz erkennbar. Diese ist wohl durch die Bildung von Melanoidinen erklärbar. Als Melanoidine werden gelbbraune, stickstoffhaltige, organische Verbindungen bezeichnet, die während des Erhitzens von Lebensmitteln entstehen. Eines der bekannten und strukturell aufgeklärten Melanoidine ist das sogenannte PronylLysin. Dieses soll exemplarisch für die Kategorie der Melanoidine stehen, die wohl für die bräunliche Färbung der Substanz mit verantwortlich sind. O H3C O NH CH3 O CH3 N H3C OH HO O Abb.5: Pronyl-Lysin Dieses Pronyl-Lysin - wie auch weitere Melanoidine - sind unter anderem auch für die schöne Braunfärbung der Kruste der Brötchen verantwortlich. Diese Substanzen schützen, so wird angenommen, unseren Körper vor Umweltgiften. Dabei sollen sie im Körper als ‚Radikalfänger‘ dienen.355 Dass diese Reaktionen erst bei Temperaturen oberhalb von 140 °C ablaufen, ist auch eine Erklärung dafür, warum sich viele Aromen in der Mikrowelle nicht entwickeln können. Die Mikrowellenstrahlen versetzten die Wassermoleküle in Schwingung und erhitzen so die Speisen. Auf diesem Wege entstehen allerdings nicht die für den Ablauf der MaillardReaktion benötigten hohen Temperaturen. Neben den positiven Eigenschaften der Stoffe, die sich über eine Maillard-Reaktion bilden können und für Aromen, Geschmack, Farbe und den positiven Einfluss als ‚Radikalfänger‘ verantwortlich sind, können sich bei dieser Reaktion allerdings auch noch toxische und 355 Vgl. INT.2. 326 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil teilweise sogar cancerogene Stoffe bilden. Ein Beispiel für Verbindungen dieser Art, ist das sogenannte Acrylamid, auch als Propensäureamid bekannt (Vgl.Abb.6): NH2 O CH2 Abb.6: Acrylamid Acrylamid wurde bei Tierversuchen als krebserzeugend eingestuft und ist daher auch für den Menschen mit „Verdacht auf krebserzeugende Wirkung“ zu bewerten. Es wird vermutet, dass Acrylamid mit Proteinen und Aminosäuren Verbindungen eingeht und so die Struktur und Funktion von DNA und Hämoglobin beeinflusst. Im Tierversuch wurde sogar eine erbgutverändernde Wirkung auf die Tochtergeneration festgestellt.356 und 357 Wie schon erwähnt, entsteht das Acrylamid als Nebenprodukt der ‚Maillard-Reaktion‘. Besonders hoch ist jedoch dessen Konzentration, wenn Kartoffel und getreidehaltige Stoffe unter Wasserausschluss für längere Zeit über 180 °C erhitzt werden. So ist der Anteil an Acrylamid in ‚Pommes‘ die lange in heißem Fett frittiert wurden, besonders hoch. Der Grund ist wohl auch darin zu suchen, dass diese einen besonders hohen Asparagingehalt aufweisen. So hat man in Laborversuchen festgestellt, dass die Reaktion von Glucose mit Asparagin zur Bildung eines hohen Acrylamidgehaltes führt.358 Asparagin ist eine nicht essentielle Aminosäure. Sie lässt sich durch folgende ‚Lewisschreibweise‘ darstellen:359 O H2N OH O NH2 Abb.7: L - Asparagin Interessanterweise finden sich bei Lebensmitteln, die auf diese Weise hergestellt wurden, besonders hohe Konzentrationen an Acrylamid in der braunen Kruste, die aufgrund ihres 356 Vgl.INT.3. Vgl.INT.4. 358 Vgl.INT.1 359 Vgl.INT.6. 357 327 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Melanoidinegehaltes als „sehr Gesund“360 deklariert wurde. Die Acrylamidbildung kann durch niedrigere Temperaturen während des Zubereitungsprozesses minimiert werden. Durch die ‚Maillard-Reaktion‘ kann es allerdings noch zu einer weiteren bedenklichen Stoffbildung kommen, nämlich durch die Reaktion zwischen sekundären Aminen und Nitrit aus Speichelflüssigkeit oder durch die Reaktion mit nitrithaltigen Salzen. Nitrithaltige Salze, dienen der Haltbarmachung von Lebensmitteln. Sekundären Amine können sich auch während der ‚Maillard-Reaktion‘ bilden. In dieser treten sie unter anderem als Amadori Verbindung auf (Vgl. Abb.4). Durch die Reaktion zwischen Nitrit und den sekundären Aminen kann es im Magen zur Bildung von Nitrosaminen kommen.361 und 362Diese gelten ebenfalls als krebserzeugend. So stecken in der ‚Maillard-Reaktion‘ unbewusster Weise sehr viele im alltäglichen Leben ablaufenden Reaktionen, die sich uns positiven oder negativ auswirken und uns auf verschiedensten Wegen begegnen. Didaktische Auswertung: Dieser Versuch, der sicher ohne jeden großen Aufwand schnell und einfach in den Unterricht integrierbar ist, bietet eine Vielzahl von Aspekten aus dem täglichen Leben. Bei Durchführung des Versuches als ‚Demoversuch‘ durch den kann den Schülern und Schülerinnen die entstehenden Gerüche durch das Herumreichen der Reagenzgläser demonstriert werden. Alternativ kann der Versuch bei einer experimentell gut geschulten Klasse als ‚Schülerversuch‘ durchgeführt werden. Der Hintergrund ist zwar vielseitig und aufgrund des großen Alltagsbezuges auch sehr aufschlussreich, jedoch auch sehr komplex. So ist beispielsweise die ablaufende Reaktion zur Bildung von Maltol (Abb.1), die den karamellartigen Geruch erklären kann, sehr umfangreich und sicher nicht ganz einfach. Diese könnte den Schülern als Einführung in das Themengebiet dienen und die komplexen Folgereaktionen (Abb.2 und Abb.3) außenvorgelassen werden. Gerade die Bildung des toxischen und krebserzeugenden Acrylamids, das bei zu hohen Temperaturen in Friteusen entstehen kann, ist ein weiterer wichtiger Aspekt der ‚Maillard- 360 Vgl.INT.2. Vgl.INT.5. 362 Vgl.INT.1. 361 328 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Reaktionen‘, der den Schülern bewusst gemacht werden kann. So kann der Versuch das Problembewusstsein der Schüler für diese mögliche Reaktion aufzeigen. Der Versuch kann sowohl im Themengebiet der Kohlenhydrate als auch im Themengebiet der Aminosäuren und Proteine Anwendung finden. Entsorgung: Die Rückstände werden abgekühlt, mit Wasser aufgenommen und können anschließend im Ausguss entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/expvortr/663Aminosaeuren_Hartmann_Scan.pdf (Zugriff: 23.02.2010). INT.2: http://www.hronline.de/website/rubriken/ratgeber/index.jsp?rubrik=3628&key=standard_document_339 28736 (Zugriff: 23.02.2010). INT.3: http://biade.itrust.de/biade/lpext.dll?f=templates&fn=main-hit-h.htm&2.0 Oder genauer: INT.4: http://biade.itrust.de/biade/lpext.dll/Infobase/uberschrift00473/glied100477.htm?f=templa tes&fn=document-frame.htm&2.0#JD_rt014330 (Zugriff: 23.02.2010). INT.5: http://www.inform24.de/nitro.html (Zugriff: 23.02.2010). INT.6: http://www.chemie.fu-berlin.de/chemistry/bio/aminoacid/asparagin.html (Zugriff: 23.02.2010). 329 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 8: Löslichkeit von Tyrosin Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 3 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Materialien : Reagenzglas Reagenzglasgestell Becherglas 2x 100 mL Pipette + Hütchen 2x Magnetrührer Rührfisch Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel 1 molare Natronlauge * Dest. Wasser * Tyrosin * S: 26-37/39-45 C * 1 molare Salzsäure R: 34 NaOH (aq) HCl (aq) H2O - - - R: 36/3738 C9H11NO3 S: 26-36 Xi Phenolphtalein in R: 11 Ethanol * 363 0,15 g (Optional) S: 7-16 F * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 40 mL 363 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 330 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 1.Schritt: 2.Schritt: 3.Schritt + 4. Schritt: Rührfisch Magnetrührer Dest. Wasser Durchführung: 364 1. Gib 0,15 g Tyrosin in ein 100 mL Becherglas, schlemme alles mit 40 mL dest. Wasser auf. es entsteht eine trübe Suspension). Stelle das Becherglas auf den Magnetrührer. molarebis HCl 2. Gib nun unterrühren mit Hilfe einer Pipette einige Tropfen Natronlauge1hinzu, die Lösung klar wird. 3. Tropfe erneut unter rühren, vorsichtig, Salzsäure zu bis die Lösung erneut trüb wird. (optional): Versetze die Lösung zuvor mit einigen Tropfen Phenolphtalein und fahre wie beschrieben fort. 4. Gib 5 weitere Tropfen Salzsäure zu und beobachte was passiert. Beobachtungen: Die Tyrosin-Wasser-Lösung ist trüb; nach Zugabe von Natronlaugen wird diese allmählich klar. Durch Zugabe von Salzsäure trübt sie sich anfangs wieder ein. Gibt man immer mehr Salzsäure zu, wird die Lösung erneut klar. 364 Vgl. Asselborn, S.374. 331 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Fachliche Auswertung: Tyrosin (Vgl.Abb.1) zählt zwar zur Gruppe der polaren Aminosäuren, doch trotzdem ist die Löslichkeit aufgrund des sterisch anspruchsvollen unpolaren aromatischen Systems in Wasser eher schlecht. So sind in 1 Liter Wasser nur 0,36 g löslich.365 Dies führt auch dazu, dass sich die 0,15 g Tyrosin nicht in den 40 mL Wasser lösen, sondern sich eine trübe Suspension bildet. Im neutralen Medium liegt Tyrosin als Zwitterion vor (Vgl. Abb.1). Wird nun Natronlauge zugegeben, wird im ersten Schritt die -NH3+ - Gruppe deprotoniert. Bei weiterer Zugabe von Natronlauge dann auch die –OH Gruppe des aromatischen Rings deprotoniert (der pKs – Wert entspricht ungefähr dem des Phenols). Die verschiedenen Stufen sind in Abb.1 dargestellt, sowie die unterschiedlichen pH – Werte. L - Tyros i n (Tyr) O H 3N H2N O O O O O H 3N O 50 % OH OH + -H + H+ 100 % OH H 3N O - H+ + H+ 100 % O 50 % OH - H+ + H+ OH OH + H+ O H2N O - H+ 100 % O O 50 % OH O 14 pH = 5,67 12 H2N 50 % H 3N pH = 9,11 = pKS2 pH = 10,07 10 8 pH<1 pH = 2,2 = pKS1 6 4 2 0 Zugabe von Salzsäure Wasser Zugabe von Natronlauge Abb.1: Tyrosin in wässriger Lösung bei verschiedenen pH - Werten366 365 366 Vgl. INT.3, S.3. Vgl. Asselborn et al., S.373 und INT.2 332 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Aminosäuren - wie auch das verwendete Tyrosin - können aufgrund des Zwitterionencharakters sowohl als Säure als auch als Base fungieren. Aminosäuren sind daher als Ampholyte zu bezeichnen, die Puffereigenschaften besitzen. Bei niedrigem pH – Wert, erreichbar durch Zugabe einer Säure zur Lösung, nimmt die –COO- Gruppe ein Proton auf, so dass sich die kationische Form bildet (Vgl.Abb.1 – Zugabe von Salzsäure). Im alkalischen Milieu hingegen gibt die -NH3+ - Gruppe ein Proton ab und das Zwitterion reagiert zum Anion. Das genaue Gleichgewicht dieser Reaktion hängt vom pH – Wert ab. Bei einem pH – Wert oberhalb von 9,11 überwiegt die anionische Form der Aminosäure (Vgl.Abb.1). Liegt nun ein Großteil in anionischer Form vor (wie im alkalischen Medium) oder der kationischen Form (wie im sauren Milieu) so steigt die Löslichkeit der Aminosäure stark an. Der Punkt, an dem beinahe 100 % als Zwitterion vorliegt, wird als Isoelektrischer Punkt bezeichnet. An diesem ist die Löslichkeit der Aminosäure am schlechtesten. Der Isoelektrische Punkt bei Tyrosin liegt bei pH = 5,67.367 Ähnliches Verhalten kann auch bei Histidin festgestellt werden.368 Didaktische Auswertung: Mit Hilfe dieses Versuches kann anschaulich das amphotere Verhalten von Aminosäuren sowie deren unterschiedliche Löslichkeiten demonstriert werden. Dieser Versuch eignet sich in jedem Fall als Schülerversuch, da die eingesetzten Chemikalien relativ ungefährlich sind und der Versuch am eindrucksvollsten ist, wenn er selbst durchgeführt wird. Auch der Aufwand für die Durchführung in Kleingruppen ist sehr gering. Verankert ist er im Themenfeld der Aminosäuren, Peptide und Polypeptide nach dem G8Lehrplan von Hessen in Klasse 11.2. Er ist sowohl für Grundkurse als auch für Leistungskurse geeignet. Thematisch kann der Versuch dem Feld Struktur und Eigenschaften der Aminosäuren zugeordnet werden. Neben der Eigenschaft der Löslichkeit kann so der Zwitterionencharakter sowie die unterschiedlichen pKs – Werte der Aminosäuren diskutiert werden. An dieser Stelle kann ein kurzer Rückgriff auf den Vergleich zwischen Alkoholen und Phenolen durchgeführt werden (Vgl. Versuch 12: Vergleich Alkohol und Phenol). So kann 367 368 Vgl. Asselborn et al., S.373. Vgl. Bruice, S.1174. 333 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine den Schülern und Schülerinnen nochmal ins Gedächtnis gerufen werden, weshalb Phenole sauer wirken, während die Hydroxygruppe der Alkohole in wässrigem Milieu dies nicht sind. Der Bezug zu diesem Phänomen wird durch die letzte Dissoziationsstufe der Aminosäure hergestellt. Hier spaltet der Phenolrest der Aminosäure das Proton ab. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Ausguss entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/expvortr/715AminosaeurenProteine_Schleipen.doc (Zugriff: 01.03.2010). INT.2: http://www.bentz46.de/pdf/abi/org/aufgaben/Aminosaeuren%20Proteine.pdf (Zugriff: 01.03.2010). INT.3: http://chemdat.merck.de/documents/sds/emd/deu/de/8160/816021.pdf (Zugriff: 01.03.2010). 334 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 9: Denaturierung von Hühnereiweiß und Milch Zeitaufwand: Vorbereitung: 4 Minuten Durchführung: 5 - 10 Minuten369 Nachbereitung: 1 Minute Materialien : Becherglas 50 mL 5 x Becherglas 250 mL Magnetrührer mit Heizplatte 2 x Becherglas 200 mL Pipette Becherglas 100 mL Chemikalien: Stoffbezeichnung Milch * Hühnerei * Dest. Wasser * Früchtetee * Salzsäure (c = 5 mol/L) * Natriumchlorid * Schwarzer Tee * Summenformel Gefahrensymbole R- und S-Sätze - H2O - - HCl (aq) NaCl (s) - Xi - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich Menge - 20 mL - 1 Stück - 350 mL - 1 Stück R: 36/37/38 S: 26-45 6 mL - 1,5 g - 1 Stück 370 369 Dieser Versuch vereint verschiedene Teilversuche zur Wirkung von Hitze und Säuren auf Proteine, die sich sinnvoll verbinden lassen, so dass dieser trotz des etwas umfangreicheren zeitlichen Aufwandes in der Durchführung in das Themengebiet der aufwandsarmen Schulversuche gehört. 370 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 335 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 0.Vorbereitungen: Löffel mit Natriumchlorid Wasser Hühnerei Magnetrührer Magnetrührer Dest. Wasser 1.Schritt: Eiklarlösung 1. 2.Schritt: 2. 3. 4. 5. 3.Schritt: 4.Schritt: Eiweißlösung 1. 3. 2. Magnetrührer Eiweißlösung 5 molare Salzsäure Früchtetee Eiweißlösung 5.Schritt: 6.Schritt: 4. 5. Milch Früchtetee Milch Schwarzer Tee 336 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Durchführung: 371 0. Herstellung der Lösungen: Früchte- und Schwarzer Tee: Erwärme in einem 250 mL Becherglas 200 mL Wasser mit Hilfe der Heizplatte eines Magnetrührers bis zum Sieden. Verteile das siedende Wasser auf zwei Bechergläser. Gib in jeweils ein Glas ein Teebeutel. Lasse den Tee 3 – 5 Minuten im heißen Wasser ziehen es in der Flüssigkeit. Eiweißlösung: Wiege 1,5 g Natriumchlorid ab und löse es in 150 mL dest. Wasser. Gib anschließend das Eiweiß eines Hühnereis hinein und verrühre. 1. Fülle in drei 50 mL Bechergläser jeweils 15 mL der hergestellten Eiweißlösung. In das vierte und fünfte Becherglas werden jeweils 15 mL Milch gegeben. 2. Stelle eines der Bechergläser auf die Heizplatte des Magnetrührers und erwärme es bis deutlich ein Niederschlag zu erkennen ist (alternativ kann auch das Becherglas in siedendes Wasser gestellt werden). (Die weiteren Bechergläser 2 – 5 werden nebeneinander gut sichtbar für die Schüler aufgestellt.) 3. Versetze Eiweißlösung 2 mit 6 mL 5 molarer Salzsäure. 4. Gib zur 3. Eiweißlösung 6 mL Früchtetee. 5. Versetze Becherglas 4, das mit Milch gefüllt ist, ebenfalls mit 6 mL Früchtetee. 6. Versetze Becherglas 5 mit 6 mL schwarzem Tee. Beobachtungen: Die isotonische Eiweißlösung ist eine klare, leicht trübe Lösung. Die Milch weist ihre charakteristische weiße Farbe auf. In Becherglas 1 kommt es nach 3 bis 4 Minuten zu einem weißen Niederschlag. 371 Vgl. Buckel / Dehnen / Dehnicke et al., S.65. 337 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Becherglas 2 zeigt sofort nach Zugabe der Salzsäure die Bildung eines weißen Niederschlags, ebenso Becherglas 3. Die Milch flockt durch Zugabe des warmen Früchtetees aus. Bei Zugabe des warmen Schwarzen Tees ist keine solche Veränderung zu erkennen. Fachliche Auswertung: Milch, wie auch das Eiweiß enthalten Proteine. Diese setzen sich aus Monomeren Aminosäurebausteinen zusammen, die über Peptidketten miteinander verbunden sind. 10 – 100 solcher Peptide werden als Polypeptide bezeichnet. Sind mehr als 100 Aminosäuren über Peptidbindungen miteinander verknüpft, spricht man von einem Protein. Ein Peptid entsteht, wenn die Aminogruppe (-NH2) eines Aminosäuremoleküls mit der Carboxylgruppe einer weiteren Aminosäure reagiert. Es handelt sich dabei, wie in Abb.1 vereinfacht dargestellt um eine Kondensationsreaktion:372 H H N N H O O R Phenyl (Phe) 1 H R O N OH OH H R H O NH R + H 2O HO Alanin (Ala) Abb.1: Bildung eines Dipeptides Da das Dipeptid weiterhin eine endständige Aminogruppe sowie eine endständige Carboxylgruppe trägt (man spricht in diesem Zusammenhang auch von N und C – terminalem Ende) kann durch weitere Kondensationsreaktionen größere Einheiten aus mehreren Bausteinen bestehendes Peptid entstehen. (Vgl. Einleitung Aminosäuren). Proteine als Peptidmoleküle, die aus mehr als 100 Aminosäuren aufgebaut sind, unterscheiden sich nicht nur in ihrer Aminosäuresequenz (Abfolge der miteinander verbundenen Aminosäuren, Primärstruktur genannt), sondern auch in ihrer lokalen räumlichen Abfolge. Diese wird als Sekundärsturktur bezeichnet. Pauling und Corey erkannten bereits in den 30er Jahren des vergangenen Jahrhunderts, dass Proteine mit 372 Vgl. Asselborn et al., S.376. 338 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil gleicher Aminosäuresequenz sich in 2 charakteristischen räumlichen Mustern anordnen, der schraubenartigen Helix, sowie einer als Faltblatt Struktur (Vgl.Abb2.). Abb.2: Ausschnitt aus einer Peptidkette mit Abb.3: Helixkonformation 373 Ausschnitt einer Peptidkette mit Faltblattkonformation374 Darüber hinaus zeigen sie aufgrund ihrer unterschiedlichen Seitengruppen und der daraus möglichen unterschiedlichen Wechselwirkungen eine charakteristische 3-dimensionale räumliche Anordnung des Proteinstranges. Diese Anordnung geht auf verschiedene Wechselwirkungen zwischen den Seitengruppen zurück. So können Londonkräfte, Wasserstoffbrückenbindungen, Disulfidbrücken sowie elektrostatische Wechselwirkungen die Stabilität und Form der Proteine stark beeinflussen. Die stabilen Disulfidbrücken, die sich durch Oxidation der Thioalkohol Gruppe des Cysteins mit einem weiteren Cysteinmolekül 373 374 Vgl. Abbildungsverzeichnis, [10]. Vgl. Abbildungsverzeichnis, [11]. 339 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil bildet, sorgen durch die entstehende kovalente Bindung für hohe Stabilität. Beispielsweise im Kreatin (einem Protein), das in Horn und Haar enthalten ist. (Vgl. Versuch 5: Schwefelnachweis durch Thermolyse / Vgl. Versuch 6: Oxidation von Cystein). Besteht ein Protein aus mehreren Polypeptidsträngen und ordnen sich zu einer globalen Anordnung (beispielsweise um ein zentrales Kation an), spricht man von einer Quartärstruktur eines Proteins. Ausführlicher ist dies in der Theoretischen Einleitung in dem Themengebiet der Aminosäuren beschrieben. Durch das Einwirken von Säuren oder Wärme von über 60 °C auf die Proteine375 kann sich die Struktur der Proteine irreversibel verändern. Der Grund hierfür ist, dass die zur Stabilisierung der dreidimensionalen Struktur benötigten Kräfte nur in engen Grenzen stabil genug sind um diese aufrecht zu erhalten. Einwirkung von außen, sei es durch chemische Stoffe oder physikalische Vorgänge, kann zum teilweisen oder vollständigen Verlust der biologischen Funktionsfähigkeit der Proteine führen. Diese ist durch sichtbare Veränderungen gut wahrnehmbar: Beispielsweise das Ausflocken der Milch oder die Schlierenbildung nach Zugabe von Säuren (oder auch des Früchtetees in der Eiklarlösung) gehen auf diese irreversible Veränderung der Tertiär- und Quartärstruktur zurück. Man spricht in diesem Fall von der Denaturierung. 376 Auch die Bildung von festem weißem Eiweiß geht auf Denaturierung der im Eiweiß enthaltenen Proteine zurück. Dieses Phänomen ist fast täglich beim Zubereiten des Frühstückseis oder dem abendlichen Spiegelei zu beobachten. Säuren und Basen ändern den pH-Wert der Lösungen, so dass die stabilisierenden Ionenbindungen durch das Auftauchen neuer Ionen beeinflusst.377 So vermag es nicht nur die 5-molare Salzsäure durch Veränderung des pH – Wertes die Proteine der Milch zu denaturieren, sondern auch der Früchtetee. Früchtetee wirkt aufgrund der Fruchtsäuren ebenfalls sauer. Doch nicht nur Säuren oder Basen können zur Denaturierung führen, auch Schwermetallionen können diese teilweise irreversible Veränderung hervorrufen. Der Grund ist, dass die Proteine, die als Chelatliganden fungieren 375 Vgl. Asselborn et al., S.377. Vgl. Asselborn et al., S.377. 377 Vgl. Asselborn et al., S.377. 376 340 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil können, stabile Komplexe mit den Schwermetallionen bilden können ( Vgl. Versuch 6: Oxidation von Cystein). Bildet sich nun ein neuer Komplex zwischen Schwermetallion und dem Protein, bedeutet das ziemlich sicher den Verlust der biologischen Funktion, die eng mit der dreidimensionalen Struktur der Proteine verbunden ist. Auch Reduktionsmittel können die Struktur irreversibel beeinträchtigen. So können durch Reduktionsmittel die Disulfidbrücken im Cystin gespalten werden. Disulfidbrücken haben jedoch einen sehr starken Einfluss, der auf die hohen Stabilität dieser Bindung zurückgeht, auf die dreidimensionale Struktur. Durch Reduktionsmittel können Proteine ebenfalls denaturiert werden. Proteine sind wichtige biochemische Systeme, die im menschlichen - wie auch tierischen Stoffwechsel eine gewichtige Rolle spielen. Allerdings funktionieren sie nur in engen Grenzen, die man als physiologische Bedingungen bezeichnen könnte. Werden diese verändert, kann die Funktionsweise der Proteine irreversiblen Schaden nehmen. Milch und die verwendete isotonische Eiweißlösung bestehen unter anderem aus Proteinen. Die Milch setzt sich Beispielsweise folgendermaßen zusammen: Milchzucker: 4,7 % Milchfett: 3,5 % (bei Vollmilch) Milcheiweiß (Proteine): 3,2 – 3,5 % Vitamine: (Carotin, Vitamin A,B1,B2, C, D und E) Mineralstoffe (Calcium, Kalium, und Phosphate).378 Der Großteil (87,5 %) der Milch besteht jedoch aus Wasser. (Die Werte variieren allerdings je nach Sorte etwas). Die Nährstoffe - wie die Vitamine - sind teils in Wasser, teils in Öl / Fett gelöst. Die Proteine, die in der Milch enthalten sind, werden durch die Zugabe verschiedener Stoffe denaturiert; sichtbar wird dies durch das Ausflocken. Auf diese Weise können nun verschiedene Substanzen der Milch oder Eiweißlösung zugegeben und auf ihre Wirkung auf die Lösungen getestet werden. 378 Vgl. INT.2. 341 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Didaktische Auswertung: Der Versuch vereint verschiedene Versuche zur Denaturierung von Protein- oder Eiweißlösungen. Er weist des Weiteren einen hohen Alltagsbezug durch die Verwendung von Lebensmitteln auf. Aufgrund des geringen Aufwandes, der überschaubaren Gefahren der eingesetzten Stoffe ist er sehr für den Einsatz im Unterricht in Form von ‚Schülerversuchen‘ (evtl. in Lernzirkeln) zu empfehlen. Lernziel des Versuches ist es, den Schülern und Schülerinnen den Aufbau und die Funktion von Proteinen näher zu bringen und sie für dieses Thema zu sensibilisieren. Dies kann dadurch gelingen, dass die Schüler auf die möglichen irreversiblen Veränderungen in Struktur und Eigenschaften der Proteine aufmerksam gemacht werden. Die chemischen und physikalischen Einflüsse auf die wichtige Verbindungsklasse der Proteine kann so einfach und eindeutig aufgezeigt werden. Gerade die starke Veränderung der Eiklarlösung, bei der es durch Erwärmen zum Ausflocken kommt, hat großen Alltagsbezug. An dieser Stelle lässt sich sicherlich gut in das Themengebiet einsteigen. Die irreversiblen Veränderungen sind den meisten Schülern wenn auch unbewusst - bekannt. Sie treten nämlich in dieser Form auch beim Kochen des Frühstückseis, bzw. dem Braten des Spiegeleis auf und verändern das Lebensmittel. Die Frage nach dem Warum könnte viele Schüler dazu bringen, sich näher mit dem Aufbau der Aminosäuren und der Proteine zu beschäftigen. So lassen sich - falls dies noch nicht geschehen ist - mit diesem Versuch den verschiedenen Strukturebenen, mit denen man Proteine beschreiben kann, besprechen bzw. einführen. Eine Durchführung kann nach dem hessischen Lehrplan (G8) sowohl im Grundkurs, wie auch im Leistungskurs im Rahmen der Einheit „Kohlenstoffchemie II: Technisch und biologisch wichtige Kohlenstoffverbindungen“ zum Unterpunkt „Aminosäuren, Peptide, Polypeptide“ erfolgen. Der Versuch ist auch zur Durchführung als ‚Schülerversuch‘ geeignet, da außer der 5molaren Salzsäure keine allzu giftigen Chemikalien Verwendung finden. Jedoch wäre auch eine Erweiterung des Versuches denkbar, in dem auch Schwermetallionen herangezogen werden, die ebenfalls eine irreversible Veränderung der Tertiärstruktur hervorrufen können. Des Weiteren ist positiv zu erwähnen, dass die Effekte rasch auftreten und Bestand haben. Ebenso ist dieser Versuch für die fächerübergreifende Zusammenarbeit mit der Biologie geeignet, die die Aufgaben und Eigenschaften der Proteine im Körper von einer anderen Seite aus beleuchten können. 342 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Ausguss entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.gmundner-milch.at/bilder/thmbn/Frischmilch%20I.jpg (Stand: 07.03.2010). INT.2: http://www.lebensmittellexikon.de/m0000200.php (Stand: 07.03.2010). 343 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuch 10: Tyndall – Effekt einer Eiklarlösung Zeitaufwand: Vorbereitung: 2 Minuten Durchführung: 3 Minuten Nachbereitung: 2 Minuten Materialien : Reagenzglas 3x Reagenzglasgestell Glastrichter Magnetrührer und Rührfisch Taschenlampe Becherglas 2x (250 mL) Chemikalien: Stoffbezeichnung Summen- Gefahrensymbole R- und S-Sätze Menge formel Hühnerei * Natriumchlorid * Dest. Wasser * Glaswolle * - NaCl (s) H2O - - - - - * keine Beschränkungen, d.h. Schülerexperimente in SI und SII möglich 379 - 1 Stück - 2g - 205 mL - etwas 379 Vgl. Belzer / Hildebrandt (2008). 344 III. Aminosäuren und Proteine Experimenteller Teil Versuchsaufbau: 0.Schritt: 1.Schritt: 2.Schritt: Spatel mit NaCl Spitzflasche dest. Wasser Magnetrührer Hühnerei Glastrichter mit Glaswolle Becherglas Eiklarlösung 3.Schritt Reagenzglas Starke Taschenlampe Durchführung: 380 Herstellung der Lösungen: Eiweißlösung: Eiweißlösung: Wiege 2 g Natriumchlorid ab und löse es in 200 mL dest. Wasser. Gib anschließend das Eiweiß eines Hühnereis hinein und verrühre es mit der Flüssigkeit. 380 Vgl. Schuphan / Knappe, S.120. 345 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine 1. Filtriere die hergestellte Eiweißlösung in dem du sie in einen Glastrichter, der mit Glaswolle ausgestopft ist, gibst. Fange die filtrierte Flüssigkeit in einem darunter stehenden Becherglas auf. 2. Fülle ein Reagenzglas zur Hälfte mit Eiklarlösung, das andere zur Hälfte mit dest. Wasser. 3. Halte nacheinander in einem abgedunkelten Raum die beiden Reagenzgläser in den Strahlengang einer starken Taschenlampe. 4. (optional): Um Irritationen bezüglich der Rolle des Kochsalzes zu vermeiden, kann einfach ein Reagenzglas mit einer isotonischen Kochsalzlösung gefüllt werden und wie Reagenzglas 1 und 2 auf ihre optische Aktivität beim Durchgang des Lichtstrahls der Taschenlampe durch die Lösung untersucht werden. Beobachtungen: Bei der der Eiklarlösung kann der Lichtstrahl der Taschenlampe durch die Lösung hindurch verfolgt werden, während das Wasser in Reagenzglas II optisch leer wirkt. Der Lichtstrahl demnach auch von der Seite zu erkennen ist. Fachliche Auswertung: Durch die Zugabe des Eiklars und der anschließenden Filtration durch die Glaswolle entsteht eine klare Lösung, die sich aber doch von der klaren wässrigen Lösung unterscheidet. Genauer betrachtet handelt es sich bei der Eiklarlösung um eine kolloidale Verteilung von Proteinen. Diese werden bei Zugabe von Wasser nicht zerstört sondern bleiben in der Schwebe. Wirken auf den ersten Blick beide Lösungen (evtl. auch die dritte, die reine Kochsalzlösung) noch gleich, so wird der Unterschied beim Einbringen in den Strahlengang der Taschenlampe sichtbar. Der so genannte Faraday-Tyndall-Effekt, beschreibt den Effekt der Lichtstreuung beim Durchgang durch ein trübes Medium. Dabei verursacht eine kolloidale Lösung, (Teilchen deren Größe zwischen der von Atomen bzw. Molekülen und makroskopischen Teilchen liegt) eine Streuung die bei Betrachtung senkrecht zum Strahlengang. Diese Streuung kann dabei beobachtet werden, wodurch der Strahlengang des Lichtstrahls sichtbar wird. 381 381 Vgl. Deckwer et al.. 346 III. Experimenteller Teil Aminosäuren und Proteine In kolloiden Systemen, wie der verwendeten Eiklarlösung sind die Teilchen fein verteil in einer Lösung und quasi in der Schwebe. Das besondere bei kolloidalen Systemen ist, dass die Zahl der energiereichen Oberflächenatome nicht mehr gegen die Zahl der Teilchen im Phaseninneren zu vernachlässigen ist. Die Größe der kolloiden Teilchen liegt zwischen 1 und bis zu 1000 nm. Dieser Effekt ist typisch für kolloidale Systeme. In der Natur ist dieser Effekt bei Nebel zu beobachten. Hier sind feinverteilte Wassertröpfchen in einem Gas zu beobachten. Didaktische Auswertung: Das Phänomen des Tyndall – Effektes, dass bei diesem Versuch zu beobachten ist, tritt nicht nur bei Proteinen auf. Es ist also ein spezifisches für Proteinlösungen, sondern eines das allgemein bei feinverteilten Teilchen in einer Lösung (oder feinen Tröpfchen in einem Gas) zu beobachten ist. Trotzdem ist es ein schöner Versuch, der indirekt zeigt, welche Größe die Proteine doch haben müssen, damit sie diesen Effekt hervorrufen. Der Versuch kann daher im Themenfeld der Aminosäuren und Proteine untergebracht werden. Entsorgung: Die Lösungen können neutral im Ausguss entsorgt werden. Literatur: Internetquellen: INT.1: http://www.chids.de/dachs/expvortr/715AminosaeurenProteine_Schleipen.doc (Zugriff: 05.03.2010). 347 IV. Unterrichtsmaterialien IV. Unterrichtsmaterialien Im folgenden Kapitel sind Unterrichtsmaterialien angefügt, die die Inhalte des vorangegangenen ‚Experimentellen Teils‘ der Arbeit vertiefen sollen. Sie stellen damit eine Ergänzung zu diesem dar. Jedem Arbeitsblatt ist eine kurze Beschreibung vorangestellt, die dabei helfen soll, sich schnell einen Überblick zu verschaffen. An jedes Arbeitsblatt folgt jeweils ein Lösungsblatt. Die Antworten sind dabei farbig hervorgehoben. Die Arbeitsblätter sind so gestaltet, dass sie möglichst ohne große Umgestaltungsarbeiten Anwendung im Unterricht finden können. Bei Bedarf können diese natürlich jederzeit individuell angepasst werden. Ob und in welcher Form diese Arbeitsblätter Anwendung finden, liegt im Ermessen des Lehrers. Zum besseren Navigieren in der Arbeit, ist das Inhaltsverzeichnis mit Verlinkungen versehen, so dass durch einen Klick auf die Seitenzahl, mit der linken Maustaste bei gedrückter „Strg“Taste, ein Sprung an die entsprechende Stelle in der Arbeit gelingt. 348 Arbeitsblatt Mischbarkeit von Alkoholen Arbeitsblätter zum Thema Alkanole Arbeitsblatt: Mischbarkeit von Alkoholen Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt schließt an den Versuch zur ‘Mischbarkeit von Alkoholen‘ an und soll dabei helfen, den Inhalt dieses Versuches zu vertiefen.382 382 Jedem Arbeitsblatt ist eine kurze Infoseite vorangestellt, die der Übersichtlichkeit dienen soll, so dass mit Hilfe des interaktiven Inhaltsverzeichnisses besser in der Arbeit navigiert werden kann. Darüber hinaus soll diese Infoseite einen kurzen Überblick über das Arbeitsblatt verschaffen und die Auswahl erleichtern. Um zu gewährleisten, dass diese Arbeitsblätter möglichst ohne große Umgestaltungsarbeiten einfach in den Unterricht integriert werden können wurde bewusst darauf verzichtet, diese Angaben auf das Arbeitsblatt selbst zu schreiben. 349 Arbeitsblatt Mischbarkeit von Alkoholen Aufgabe: Vervollständige die abgebildete Übersicht! Heptan Mischt sich Misch sich nicht Hydrophil Polar Wasser a) Zeichne die Wechselwirkungen zwischen den Heptan Molekülen. b) Wie lautet jeweils der Name der Wechselwirkung: Mischt sich Misch sich nicht Alkyl-Rest c) Zeichne jeweils die Wechselwirkungen zwischen den einzelnen Molekülteilen des Ethanol Moleküls. Mischt sich Misch sich nicht Ethanol Hydroxygruppe d) Wie lautet jeweils der Name der Wechselwirkung: 350 Lösungsblatt Mischbarkeit von Alkoholen Aufgabe: Vervollständige die abgebildete Übersicht! Hydrophob unpolar H H Mischt sich nicht Heptan H H H H H H H C C C C C C C H H H H H H H H H H H H H C C C C C C C H H H H H H H H b) Wie lautet jeweils der Name der Wechselwirkung? Van-der-Waals-Wechselwirkung Wasserstoffbrückenbindungen Mischt sich Mischt sich Alkyl-Rest Unpolar c) Zeichne jeweils die Wechselwirkungen zwischen den einzelnen Molekülteilen des Ethanol Moleküls. Wasser a) Zeichne die Wechselwirkungen zwischen den Heptan -Molekülen. H H Hydrophil Polar Ethanol Hydroxygruppe Polar Hydrophob Hydrophil H H C C H H H H C OH H H H H C O H H O H H H C H C H H C C H H OH Van-der-WaalsWechselwirkungen H H Wasserstoffbrückenbindungen d) Wie lautet jeweils der Name der Wechselwirkung? 351 Arbeitsblatt 50 + 50 = 100 ? Arbeitsblatt: Volumenkontraktion: 50 + 50 = 100 ? Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt behandelt thematisch das Phänomen der Volumenkontraktion. Mit Hilfe eines Schülerversuches und anschließenden Fragestellungen durch die Schüler und Schülerinnen soll versucht werden, das Phänomen besser zu verstehen. Vorbereitungen durch den Lehrer: Materialien pro Gruppe: Reagenzglasständer Streichhölzer Messer Benötigte Chemikalien: Ethanol (w=0,96): Für jede Gruppe werden 3 - 4 mL benötigt. 2 Reagenzgläser Pipetten Filterpapier Octan-1-ol: Für jede Gruppe werden 3 - 4 mL benötigt. Sudanrot: Zum Anfärben der Alkohole 352 Arbeitsblatt 50 + 50 = 100 ? Versuchsvorschrift: Materialien: Reagenzglasgestell mit Reagenzgläsern, Streichhölzer, Spatel Chemikalien: Wasser, Ethanol, Octan-1-ol Gefahren Hinweise: - Schutzbrille tragen! - Octan-1-ol wirkt reizend, deshalb Hautkontakt vermeiden! Durchführung: 0. Die Alkohole werden vom Lehrer mit Sudanrot eingefärbt. 1. Miss mit Hilfe eines Messzylinders genau 50 mL Ethanol ab. Fülle diese anschließend in einen 100 mL Messzylinder. 2. Miss nun genau 50 mL destilliertes Wasser ab und fülle es zum Ethanol. 3. Notiere das Volumen des Gemisches sowie das Löslichkeitsverhalten. 4. Der 50 mL Messzylinder wird gespült und mit genau 50 mL Octan-1-ol gefüllt. Dieses wird in einen weiteren 100 mL Messzylinder gegossen. (Es darf nichts daneben gehen!) 5. Miss nun erneut genau 50 mL destilliertes Wasser ab und fülle es zum Octan-1-ol. 6. Notiere auch hier das Volumen des Gemisches sowie dessen Löslichkeitsverhalten -------7. Nach Beendigung des Versuchen ist der Inhalt der Messzylinder im vorgesehen Abfallbehälter zu sammeln, dann zu spülen und in die Kästen des Lehrerwagens zurück zu legen. Beantworte die folgenden Fragen in Deinem Heft. Fertige zuvor ein kurzes Ergebnisprotokoll mit Versuchsaufbau und Deinen Beobachtungen an: I. Zeichne die Strukturformeln der verwendeten Alkohole (Ethanol und Octan-1-ol). II. Markiere jeweils polare und unpolare Teile des Moleküls. III. Handelt es sich bei Wasser um eine polaren oder einen unpolaren Stoff? IV. Wie kann man die „Polarität / Unpolarität“ beim Molekül Wasser erklären? Tipp: Denk an die unterschiedlichen Elelektronegativitäten! 353 Arbeitsblatt 50 + 50 = 100 ? V. Welche der folgenden Stoffe lösen sich in Wasser? Begründe kurz! Zucker Kochsalz Olivenöl Vitamine Iod Butter VI. Wie lautet der Merksatz zur Löslichkeit? VII. Wodurch lässt sich die Verkleinerung des Volumens (Volumenkontraktion) erklären? Tipp: Was passiert beim Vermischen von 50 mL Erbsen mit 50 mL Linsen? Wodurch lässt sich hier das auftretende Phänomen erklären? VIII. ZUSATZ: Erkläre kurz was Wasserstoffbrückenbindungen sind. Wie könnten diese bei der Erklärung des Phänomens der Volumenkontraktion helfen? 354 Lösungsblatt 50 + 50 = 100 ? Beantworte die folgenden Fragen in Deinem Heft. Fertige zuvor ein kurzes Ergebnisprotokoll mit Versuchsaufbau und Deinen Beobachtungen an: I. Zeichne die Strukturformeln der verwendeten Alkohole (Ethanol und Octan-1-ol): H H H C C H H OH H H H H H H H H H C C C C C C C C H H H H H H H H Ethanol OH Octan-1-ol II. Markiere polare und unpolare Teile des Moleküls: Ethanol Octan-1-ol III. Handelt es sich beim Wasser um eine polaren oder einen unpolaren Stoff? Wasser ist ein polarer Stoff. IV. Wie kann man die Polarität beim Molekül Wasser erklären? Polare Stoffe, wie Wasser, zeichnen sich durch ein permanentes Dipolmoment aus. Ein Dipolmoment entsteht, wenn ein Atom einer Atombindung aufgrund O H H der höheren EN die Bindungselektronen stärker an sich heranzieht, wodurch im Molekül ein negativer (𝜹-) und positiver Pol (𝜹+) entsteht. Sind diese räumlich voneinander getrennt, spricht man von einem permanenten Bindungsmoment. V. Welche der folgenden Stoffe lösen sich in Wasser? Begründe kurz: Zucker, Kochsalz und die wasserlöslichen Vitamine VI. Wie lautet der Merksatz zur Löslichkeit? Für die Mischbarkeit der Substanzen gilt der Grundsatz „similia smilibus solvuntur“ („Ähnliches wird in Ähnlichem gelöst“). Die Ähnlichkeit spielt auf den Polarität der sich mischenden Stoffgruppen an. 355 50 + 50 = 100 ? Lösungsblatt VII. Wodurch lässt sich die Verkleinerung des Volumens (Volumenkontraktion) erklären? - Beim Vermischen der Erbsen und Linsen ist es die Tatsache, dass sie unterschiedlich groß sind, und die kleineren Linsen in die Zwischenräume der größeren Erbsen rutschen können. Dies ist allerdings nur eine stark vereinfachte Erklärung des Phänomens der Volumenkontraktion. - Bei Wasser und Ethanol spielen die Anziehungskraft und das engere Zusammenrutschen eine Rolle. Das folgende Schaubild soll dieses verdeutlichen: Wasserstoffbrückenbindungen (hier rot dargestellt) sorgen dafür, dass sich Wasser- und Ethanolmoleküle im Gemisch stärker anziehen als sie es in den reinen Flüssigkeiten tun würden. Zwar gibt es im reinen Wasser - wie auch in reinem Ethanol – Wasserstoffbrückenbindungen, die sich zwischen den Molekülen ausbilden, doch vermögen es die kleineren Wassermoleküle sich zwischen die größeren Ethanolmoleküle einzulagern. VIII. ZUSATZ: Erkläre kurz, was Wasserstoffbrückenbindungen sind. Wie könnten diese bei der Erklärung des Phänomens der Volumenkontraktion helfen? Siehe Erklärung VII. 356 Arbeitsblatt Mehrwertige Alkohole Arbeitsblatt: Mehrwertige Alkohole Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt widmet sich dem Themenkomplex der mehrwertigen Alkohole. 357 Arbeitsblatt Mehrwertige Alkohole Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! I.Der einfachste einwertige Alkohol, der als wichtige Grundsubstanz für die chemische Industrie dient, aber auch wegen seiner Giftigkeit bekannt ist, ist _______________. Gib die Summen- und Strukturformel des Moleküls an. Gestalte anschließend das „BallandStickmodell“ farbig: Kohlenstoff (C) schwarz, Sauerstoff (O) rot und Wasserstoff (H) grau. Summenformel: Strukturformel: II.Der einfachste zweiwertige Alkohol ist _______________, auch Glykol genannt. Es wird als Frostschutzmittel verwendet. Gib die Summen- und Strukturformel des Moleküls an. Gestalte anschließend das „BallandStickmodell“ farbig: Kohlenstoff (C) schwarz, Sauerstoff (O) rot und Wasserstoff (H) grau. Summenformel: Strukturformel: III.Der wichtigste dreiwertige Alkohol ist ___________________, auch als Glycerin bekannt. Er kommt als Grundbaustein in Fetten vor. Gib die Summen- und Strukturformel des Moleküls an. Gestalte anschließend das „BallandStickmodell“, farbig: Kohlenstoff (C) schwarz, Sauerstoff (O) rot und Wasserstoff (H) grau. Summenformel: Strukturformel: 358 Arbeitsblatt Mehrwertige Alkohole IV.Fülle die abgebildete Tabelle aus: Zeichne zuerst die Strukturformeln der angegebenen Stoffe. Vergleiche anschließend ihre Eigenschaften. Kennzeichne, durch keilförmige Pfeile, inwieweit sich die jeweiligen Eigenschaften der Alkohole verändern (Zu- bzw. Abnahme). Propan-1-ol Propan-1,3-diol Propan-1,2,3-triol Strukturformel Eigenschaften Siedetemperatur Viskosität Löslichkeit mit Benzin V.Zusatz: Erstelle einen „Steckbrief“ zu einem der in Aufgabe 1 – 4 angegebenen Alkohole. Informiere Dich dazu in Deinem Lehrbuch oder dem Internet. Der Steckbrief sollte folgende Punkte enthalten: Name der Verbindung, Summenformel, Strukturformel, Molare Masse, Schmelztemperatur, Siedetemperatur, Aggregatzustand, Dichte, Brennbarkeit, Löslichkeit in Wasser, Verwendung. Steckbrief: 1,2-Ethandiol 359 Lösungsblatt Mehrwertige Alkohole I.Der einfachste einwertige Alkohol der als wichtige Grundsubstanz für die chemische Industrie dient, wegen seiner Giftigkeit bekannt ist, ist Methanol. Gib die Summen- und Strukturformel des Moleküls an. Gestalte anschließend das „BallandStickmodell“ farbig: Kohlenstoff (C) schwarz, Sauerstoff (O) rot und Wasserstoff (H) grau. Wie ist die Wertigkeit des Alkohols? Summenformel: Strukturformel: H CH4O H C H OH II.Der einfachste zweiwertige Alkohol ist 1,2-Ethandiol, auch Glykol genannt. Es wird als Frostschutzmittel verwendet. Gib die Summen- und Strukturformel des Moleküls an. Gestalte anschließend das „BallandStickmodell“ farbig: Kohlenstoff (C) schwarz, Sauerstoff (O) rot und Wasserstoff (H) grau. Wie ist die Wertigkeit des Alkohols? Summenformel: Strukturformel: H H C C OH OH C2H6O2 H H III.Der wichtigste dreiwertige Alkohol ist 1,2,3-Propantriol, auch als Glycerin bekannt. Er kommt als Grundbaustein in Fetten vor. Gib die Summen- und Strukturformel des Moleküls an. Gestalte anschließend das „BallandStickmodell“, farbig: Kohlenstoff (C) schwarz, Sauerstoff (O) rot und Wasserstoff (H) grau. Wie ist die Wertigkeit des Alkohols? Summenformel: Strukturformel: H H H C C C OH OH OH C3H8O3 H H 360 Lösungsblatt Mehrwertige Alkohole IV.Fülle die abgebildete Tabelle aus: Zeichne zuerst die Strukturformeln der angegebenen Stoffe. Vergleiche anschließend ihre Eigenschaften. Kennzeichne, durch keilförmige Pfeile, inwieweit sich die jeweiligen Eigenschaften der Alkohole verändern (Zu- bzw. Abnahme). Propan-1-ol Propan-1,3-diol Propan-1,2,3-triol Strukturformel H Eigenschaften H H OH C C C H H H H H OH H OH C C C H H H H H OH OH OH C C C H H H H Siedetemperatur Viskosität Löslichkeit mit Benzin V.Zusatz: Erstelle einen „Steckbrief“ zu einem der in Aufgabe 1 – 4 angegebenen Alkohole. Informiere Dich dazu in Deinem Lehrbuch oder dem Internet. Der Steckbrief sollte folgende Punkte enthalten: Name der Verbindung, Summenformel, Strukturformel, Molare Masse, Schmelztemperatur, Siedetemperatur, Aggregatzustand, Dichte, Brennbarkeit, Löslichkeit in Wasser, Verwendung. Steckbrief: 1,2-Ethandiol Name der Verbindung: Summenformel: Molare Masse: Schmelztemperatur: Siedetemperatur: Aggregatzustand: Dichte: Eigenschaften: 1,2-Ethandiol C2H6O2 62 g/mol -16 °C 197 °C flüssig bei 20 °C 1,11 g/cm3 farblose viskose Flüssigkeit. Brennbarkeit: Löslichkeit in Wasser: Löslichkeit in Benzin: Verwendung: gut brennbar, verbrennt vollständig löst sich gut in Wasser schlecht löslich Herstellung von Polyestern (PET), Korrosionsschutzmittel, Kühlmittel, 361 Mehrwertige Alkohole Lösungsblatt Steckbrief: Glycerin Name der Verbindung: Summenformel: Molare Masse: Schmelztemperatur: Siedetemperatur: Aggregatzustand: Dichte: Eigenschaften: 1,2,3-Propantriol C3H8O3 92 g/mol 18,2 °C 290 °C flüssig bei 20 °C 1,26 g/cm3 Wasserfreies Glycerin ist eine hochviskose, sirupartige, stark wasseranziehende, süß schmeckende Flüssigkeit. Brennbarkeit: Löslichkeit in Wasser: Löslichkeit in Benzin: Verwendung: gut brennbar, verbrennt vollständig löst sich gut in Wasser unlöslich wichtige chemische Grundsubstanz zur vielseitigen Anwendung, zum Beispiel der zur Synthese von Kunststoffen, Harzen, Ölen, Sprengstoffen. Glycerin dient des Weiteren als Frostschutzmittel und findet in Kosmetika als Feuchthaltemittel Einsatz. Steckbrief: Methanol Name der Verbindung: Summenformel: Molare Masse: Schmelztemperatur: Siedetemperatur: Aggregatzustand: Dichte: Eigenschaften: Methanol CH4O 32 g/mol -98 °C 65 °C flüssig bei 20 °C 0,79 g/cm3 Wasserähnliche, klare und sehr giftige Flüssigkeit. Verdampft bei 65°C Brennbarkeit: Löslichkeit in Wasser: Löslichkeit in Benzin: Verwendung: gut brennbar, verbrennt vollständig löst sich gut in Wasser unlöslich wichtige chemische Grundsubstanz. Anwendung zur Synthese von Formaldehyd, Essigsäure, MTBE, Harzen. Verwendung als Brennstoff in Motoren in PKW, sowie Rennwagen. 362 Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch KMnO4 Arbeitsblatt: Arbeitsblatt Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt behandelt thematisch die unterschiedlichen Reaktionen primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole mit Kaliumpermanganat. Es ist als Arbeitsblatt mit Schülerversuch ausgelegt an den sich vertiefende Fragen zum Themengebiet anschließen. Vorbereitungen durch den Lehrer: Materialien allgemein: Materialien pro Gruppe: Becherglas 250 mL Sammelbehälter für Abfälle Waage Messpipette 50 mL Reagenzglasgestell 2 Pipetten 3 Reagenzgläser Anzusetzende Lösungen: Kaliumpermanganat-Lösung c = 0,0006 (Für jede Gruppe werden 3 - 4 mL Benötigt). Natronlauge c = 1 𝒎𝒐𝒍 : 𝑳 𝒎𝒐𝒍 : 𝑳 0,005 g KMnO4 in 50 mL dest. Wasser lösen. 𝒎𝒐𝒍 30 mL Natronlauge c = 1 𝑳 zugeben. 1,2 g festes NaOH in 30 mL Wasser 363 Arbeitsblatt Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch KMnO4 Versuchsvorschrift: Materialien: Reagenzglasgestell mit 3 Reagenzgläsern, 3 Pipetten, Pipettenhütchen Chemikalien: Vorbereitete alkalische Kaliumpermanganat-Lösung c =0,0006 Propan-2-ol, Tert.Butanol. Gefahren / Hinweise: Durchführung: 𝒎𝒐𝒍 𝑳 , Propan-1-ol, - Schutzbrille tragen! - Natronlauge wirkt ätzend! - Die Alkohole wirken reizend, Tert.Butanol wirkt gesundheitsschädlich, daher längeren Hautkontakt vermeiden. 1. In jedes der 3 Reagenzgläser werden 3 mL der vorbereiteten alkalischen Kaliumpermanganat – Lösung gegeben. 2. Zu jedem mit KMnO4-Lösung gefüllten Reagenzglas wird eine Pipettenfüllung des Alkohols gegeben: RG 1: Propan-1-ol, RG 2: Propan-2-ol, RG 3: tert.Butanol. 3. Beobachte die Reagenzgläser. Achte auf die Farbänderungen. -------4. Nach beendeten Versuchen: Die Lösungen in den Sammelbehälter für organische Abfälle geben, Reagenzgläser spülen und in die Kästen des Lehrerwagens legen. Beantworte die folgenden Fragen in dein Heft. Fertige zuvor ein kurzes Versuchsaufbau und Beobachtungen an: Protokoll mit Aufgabe: I. Zeichne die Strukturformeln der eingesetzten Alkohole! Kennzeichne, ob es sich dabei um einen primären, sekundären oder tertiären Alkohol handelt! II. Wie hilft dir diese Reaktion bei der Unterscheidung von primären, sekundären und tertiären Alkoholen? III. Wodurch lassen sich die unterschiedlichen Farben der Lösungen erklären? IV. Welche Funktion hat das eingesetzte Kaliumpermanganat? Wie ist die Oxidationsstufe des Mangans im Permanganat? V. Welche Verbindungen entstehen aus dem primären Alkohol und welche aus dem sekundären Alkohol? VI. Welche Reaktion/ Reaktionen zur Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole kennst du noch? 364 Lösungsblatt Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch KMnO4 I. Zeichne sie Strukturformeln der eingesetzten Alkohole. Kennzeichne, ob es sich dabei um einen primären, sekundären oder tertiären Alkohol handelt! H H H H C C C H H OH H H H H H C C C H OH H (l) H H Propan-2-ol C OH H3C (l) Primärer Alkohol: Das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe trägt, ist nur mit einem weiteren Kohlenstoffatom verbunden. C C C H OH H Tert.Butanol (2-Methylpropan-2-ol) OH 0 H H (l) OH H3C CH3 H (l) Propan-1-ol -I H C CH 3 (l) Sekundärer Alkohol: Das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe trägt, ist mit zwei weiteren Kohlenstoffatomen verbunden. H3C +I CH 3 CH3 (l) Tertiärer Alkohol: Das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe trägt, ist mit drei weiteren Kohlenstoffatomen verbunden. II. Wie hilft diese Reaktion bei der Unterscheidung von primären, sekundären und tertiären Alkoholen? Durch die unterschiedlich gefärbten Lösungen können primäre, sekundäre und tertiäre Alkohole unterschieden werden. Die verschiedenen Farben gehen auf die unterschiedlichen Oxidationsstufen des Mangans zurück. Bei primären Alkoholen, hier Propan-1-ol, findet eine Reduktion bis zum Braunstein (Mangan in der Oxidationsstufe +IV) statt. Dieser Braunstein färbt die Lösung charakteristisch braun. Der primäre Alkohol wird hierbei bis zur Carbonsäure oxidiert. Bei sekundären Alkoholen, hier Propan-2-ol, findet eine Reduktion des vorgegebenen Permanganats bis zum Manganat(V) statt. In der Folge kommt es zu einer Komproportionierung in der Mangan(V) und Mangan(VII) zum grünen Mangan(VI) reagieren. Dies färbt die Lösung charakteristisch grün. Der sekundäre Alkohol - Propan-2-ol - wird hierbei zum Keton, also dem Propan-2-on oxidiert. Beim tertiären Alkohol findet keine Reaktion statt. OH +I H3C + +VII MnO4 (aq) CH3 CH3 (l) III. Wodurch lassen sich die unterschiedlichen Farben der Lösungen erklären? Siehe II. 365 Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch KMnO4 Lösungsblatt IV. Welche Funktion hat das eingesetzte Kaliumpermanganat? Wie ist die Oxidationsstufe des Mangans im Permanganat? - Das Permanganat fungiert als Oxidationsmittel, das selektiv mit den unterschiedlichen Alkoholen reagiert. So ist eine Unterscheidung dieser möglich. - +VII MnO4 (aq). Das eingesetzte Permanganat – Ion hat die Oxidationsstufe + VII. V. Was für Verbindungen entstehen aus dem primären Alkohol und was für eine aus dem sekundären Alkohol? - Aus dem primären entsteht zunächst ein Aldehyd, der aber weiter zur Carbonsäure oxidiert werden kann. - Aus dem sekundären Alkohol entsteht ein Keton. Hier ist keine Weiteroxidation möglich. VI. Welche Reaktion/ Reaktionen zur Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole kennst du noch? - Unterscheidung durch Lucas – Reagenz. 366 Arbeitsblatt Reaktion von Ethanol mit Natrium Arbeitsblatt: Reaktion von Ethanol mit Natrium Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt soll bei der Strukturaufklärung von Ethanol helfen. Es beinhaltet einen ‚Schülerversuch‘, dem sich vertiefende Fragen anschließen sollten. Vorbereitungen durch den Lehrer: Materialien pro Gruppe: Reagenzglasständer Streichhölzer Messer 2 Reagenzgläser Pipetten Filterpapier Benötigte Chemikalien: Ethanol (w=0,96): Für jede Gruppe werden 3 - 4 mL benötigt. Natrium: Für jede Gruppe wird ein erbsen-großes Stück benötigt. 367 Reaktion von Ethanol mit Natrium Arbeitsblatt Versuchsvorschrift: Materialien: Reagenzglasständer mit 2 Reagenzgläsern, Streichhölzer, Pinzette, Messer, Filterpapier Chemikalien: Ethanol (w=0,96), Natrium Gefahren / Hinweise: - Schutzbrille tragen! - Natrium wirkt ätzend! Natrium ist leicht entzündlich! Natrium darf nicht in Kontakt mit Wasser kommen! Durchführung: 1. Zuerst wird mit Hilfe einer Pinzette etwas Natrium aus dem Vorratsfläschchen geholt und auf ein Filterpapier gelegt. 2. Nun wird mit einem Messer ein ca. 1 cm3 großes Stück herausgeschnitten. Als nächstes wird durch Kratzen das abgeschnittene Natriumstück von der Oxidschicht befreit. 3. Mit Hilfe eines Spatels wird das Natriumstück in das mit 3 mL Ethanol (w = 0,96) gefüllte Reagenzglas geworfen. 4. Das dabei entstehende Gas wird mit einem leeren Reagenzglas aufgefangen. 5. Ein Holzspan wird durch ein Feuerzeug zum Glimmen gebracht und vorsichtig in das mit dem aufgefangenen Gas gefüllte Reagenzglas getaucht. -------- 6. Nach Beendigung der Versuche: Reagenzgläser spülen und in die Kästen des Lehrerwagens zurück legen. 368 Arbeitsblatt Reaktion von Ethanol mit Natrium Beantworte die folgenden Aufgaben in deinem Heft: Aufgabe 1: I. Zeichne die beiden Funktionsisomere zu: C2H6O II. Zu welchen Stoffgruppen gehören sie? III. Was sind Funktionsisomere? Charakterisiere kurz. Aufgabe 2: I. Vervollständige folgende Reaktionsgleichung: Tipp: Formuliere die Reaktionsgleichung analog zu der aus der Mittelstufe bekannten Reaktion von Natrium mit Wasser. H2O + Na (s) + + + Na (s) + + II. Warum dient dieser Versuch der Strukturaufklärung? Wie reagieren die beiden Funktionsisomere mit dem Alkalimetall? III. Wie lautet der Name der Nachweisreaktion? IV. Welches Element wird nachgewiesen? V. ZUSATZ: Wie läuft die Nachweisreaktion im Detail ab? Beantworte mittels Reaktionsgleichungen! VI. Wo findet diese Reaktion Anwendung? 369 Lösungsblatt Reaktion von Ethanol mit Natrium Aufgabe 1: I. Zeichne die beiden Funktionsisomere zu: C2H6O H H H H -I -III C C H H -II C O H H III. H H C -II H (l ) (l ) Dimethylether: Stoffgruppe der Ether Ethanol: Stoffgruppe der Alkohole II. H O Zu welchen Stoffgruppen gehören sie? Siehe I. Funktionsisomere sind Verbindungen wie das verwendeten Ethanol und der Dimethylether. Sie besitzen zwar dieselbe Summenformel, jedoch unterschiedliche räumliche Strukturen sowie unterschiedliches Reaktionsverhalten. Aufgabe 2: I. Erkläre die ablaufende Reaktion mit Hilfe von Reaktionsgleichungen: Gesamtreaktion: +I 0 2 H2O + 2 Na H 2 H H C C H H O + 0 2 OH (aq) + H 2 - (s) 0 2 Na (s) H 2H H +I (l) +I + (g) + 2 Na H C C H H O - (aq) 0 +I + + 2 Na (aq) + H 2 (g) II. Warum dient dieser Versuch der Strukturaufklärung? Wie reagieren die beiden Funktionsisomere mit dem Alkalimetall? Alkohol reagiert nach der Reaktion von I. Wasserfreier Dimethylether reagiert nicht mit Natrium unter Wasserstoffentwicklung. III. Wie lautet der Name der Nachweisreaktion? Knallgasprobe 370 Lösungsblatt Reaktion von Ethanol mit Natrium IV. Welches Element wird nachgewiesen? Wasserstoff V. ZUSATZ: Wie läuft die Nachweisreaktion im Detail ab? Beantworte mittels Reaktionsgleichungen. Es handelt sich um eine verzweigte Kettenreaktion, die wie folgt beschrieben werden kann: Energie () H H H + O2 HO + O O + H2 HO + H HO + H2 H2 O + H HO + H H2O O + H2 VI. 2H H2O (8) - Kettenstart (9 – 11) - Kettenreaktion mit Kettenverzweigung (12 – 13) Kettenabbruchsreaktionen Wo findet diese Reaktion Anwendung? Raketenantrieb, Brennstoffzellen, Knallgasbrenner. In diesen Beispiel jedoch immer Kontrolliert. 371 Arbeitsblatt Alkoholische Gärung Arbeitsblatt: Alkoholische Gärung Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt stellt ein Rätsel zum Thema Alkoholische Gärung dar. Auf diese Art soll das Themengebiet, das im Versuch Alkoholische Gärung behandelt wurde, für die Schüler vertieft werden. 372 Arbeitsblatt Alkoholische Gärung Aufgabe 1: Löse das Rätsel, finde das Lösungswort! 1 2 3 4 5 6 7 [1] Wie heißt das älteste Verfahren zur Ethanol Gewinnung? [2] Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung: Wie heißt das entstehende Gas? [Hefepilze] C6H12 O 6 + (aq) [3] Häufiger Alkoholkonsum kann zu einer Krankheit führen, wie nennt man diese? [4] Wie kann hochprozentiger, reiner Alkohol gewonnen werden? [5] Wie wird der Trinkalkohol chemisch bezeichnet? [6] Wo findet hochprozentiger Alkohol in der Medizin Anwendung? [7] Mit welcher Maßeinheit wird der Blutalkoholspiegel angegeben? Lösungswort: __ __ __ __ __ __ __ Aufgabe 2: Bearbeite folgende Aufgaben! [1] Wie kann man das bei Aufgabe 1 [2] entstehende Gas nachweisen? [2] Zeichne die Strukturformel von Ethanol. Gib die wichtigen Oxidationsstufen an! 373 Lösungsblatt Alkoholische Gärung Aufgabe 1: Löse das Rätsel, finde das Lösungswort! 1 2 3 4 5 6 7 K O A D E S T I L L A T E D E S I N F E K T P R O M G H L I T I I A L K O H O L E E O N A N L R U N G N D I O X I D H O L I S M U S N O L E [1] Wie heißt das älteste Verfahren zur Ethanol Gewinnung? Gärung [2] Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung: Wie heißt das entstehende Gas? Kohlendioxid C6H12 O 6 [Hefepilze] (aq) 2 CO2 (g) + 2 CH3CH 2OH (aq) [3] Häufiger Alkoholkonsum kann zu einer Krankheit führen, wie nennt man diese? Alkoholismus [4] Wie kann hochprozentiger, reiner Alkohol gewonnen werden. Destillation [5] Wie wird der Trinkalkohol chemische bezeichnet? Ethanol [6] Wo findet hochprozentiger Alkohol in der Medizin Anwendung? Desinfektion [7] Mit welcher Maßeinheit wird der Blutalkoholspiegel angegeben? Promille Lösungswort: A L K O H O L Aufgabe 2: Bearbeite folgende Aufgaben! [1] Wie kann man das bei Aufgabe 1 [2] entstehende Gas Nachweisen? Durch einleiten in Calciumhydroxidwasser (Kalkwasser). [2] Zeichne die Strukturformel von Ethanol. Gib die wichtigen Oxidationsstufen an! H H -I -III H C C H H O H (l ) Ethanol: Stoffgruppe der Alkohole 374 Arbeitsblatt Allgemeines zum Thema Alkohole Arbeitsblatt: Allgemeines zum Thema Alkohole Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt, das in Rätselform gestaltet wurde, umfasst verschiedene Aspekte zum Thema Alkohole und könnte am Ende einer Einheit zu diesem Thema stehen. Es könnte als kleiner Leistungscheck für die Schüler selbst stehen. 375 Arbeitsblatt Allgemeines zum Thema Alkohole Aufgabe 1: Löse das Rätsel, finde das Lösungswort! 1 2 3 4 5 6 7 8b 9 10 11 12 13 [1] Wie heißt das Funktionsisomer von Ethanol? [2] Wie heißt das erste Oxidationsprodukt eines primären Alkohols? Tipp: 1. Kohlenstoff trägt die Oxidationszahl +III. 2. Schiffsche Probe dient als Nachweis. [3] Wie heißt die folgende Verbindung? H3C O CH3 B O O ___________________________ CH3 [4] Wie heißt der einfachste Vertreter der homologen Reihe der Alkohole? (es ist eine hochgiftige Verbindung) [5] Wie heißt das älteste Verfahren der Ethanol Herstellung? [6] Mit Hilfe welcher Chemikalie kann man primäre, sekundäre und tertiäre Alkohole unterscheiden? [7] Wie heißt das Verfahren, mit dem man hochprozentigen, reinen Alkohol herstellen kann? [8] a. Vervollständige folgende Reaktionsgleichung (mit Oxidationszahlen): b. Wie heißt der Nachweis mit dem das entstehende Gas nachgewiesen werden kann? H2O + Na (s) + + + Na (s) + + 376 Arbeitsblatt Allgemeines zum Thema Alkohole [9] Wie heißt der 3-wertige Alkohol 1,2,3-Propantriol mit Trivialnamen? Tipp: 1. Es handelt sich um eine hochviskose Flüssigkeit. 2. Findet in Kosmetikprodukten wegen seiner wasserbindenden Eigenschaft Verwendung. [10] Wie lautet der Name der funktionellen Gruppe der Alkohole? [11] Mit welchem Fachausdruck wird das Verhalten einer Substanz, die sich nicht mit Wasser d mischen lässt, beschrieben? [12] Wie wird Propan-2-ol noch genannt? [13] Wie nennt man das Oxidationsprodukt eines sekundären Alkohols? Lösungswort: __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ Aufgabe 2: (Für die Schnellen) Beantworte die folgenden Aufgaben in deinem Heft! [1] Zeichne die beiden Funktionsisomere zu C2H6O und benenne sie. Gib auch die Oxidationszahlen an. [2] Zeichne die Strukturformel von Ethanal. Um welche Stoffklasse handelt es sich bei dieser Verbindung? [3] Vervollständige folgende Reaktion und gib die Oxidationszahlen an: 2 H2 (g) + O 2 (g) [4] Vervollständige die folgende Tabelle: Name: Strukturformel: H H H H H C C C C H H H H Name: Tert.Butanol Strukturformel: OH Hexan-2-ol OH 377 Lösungsblatt Allgemeines zum Thema Alkohole Aufgabe 1: Löse das Rätsel, finde das Lösungswort! 1 2 3 4 5 6 7 8b 9 10 11 12 13 D I M E T H Y L E A L D E H B O M E T G A E R U L U C A S R E A G E N Z D E S T I L L A T I O K N A L L G A S P R O G L Y C E R I H Y H Y D R O P I S O K E T S Y R H N N B N D H P O T E R D S A E U R E T R I M E T H Y L E S T E R A N O L G E O X Y G R U P P E O B R O P A N O L N Antworten zu Aufgabe [1] bis [7] und [9] bis [13] siehe Kreuzworträtsel. [8a] 0 2 Na (s) +I 2 H2O + H 2H H C C H H +I H +I Lösungswort: + 2 OH (aq) H 0 + 2 Na (s) O 0 + 2 Na (aq) + H 2 (g) - 2H H C C H H O - 0 +I + + 2 Na (aq) + H 2 (g) LEBERZIRRHOSE Aufgabe 2: (Für schnellen) Beantworte die folgenden Fragen in dein Heft! [1] Zeichne die beiden Funktionsisomere zu: C2H6O und benenne sie. Gib auch die Oxidationszahlen an. H H H C H H -I -III C H -II C O H H O H H H C -II H (l ) (l ) [2] Zeichne die Strukturformel von Ethanal! Um welche Stoffklasse handelt es sich bei dieser Verbindung? H H H Es handelt sich um einen Aldehyd. -III C C +I H O 378 Lösungsblatt Allgemeines zum Thema Alkohole [3] Vervollständige folgende Reaktion und gibt die Oxidationszahlen an: 0 0 2 H2 (g) + O 2 (g) -I +II 2 H2O (g) [4] Vervollständige die folgende Tabelle: Name: Strukturformel: Name: Strukturformel: OH Butan-1-ol Tert.Butanol H H H H C C C C H H H H C H3C H +I CH 3 CH3 OH (l) oder: H H CH3 H C C C H OH H H (l) H Hexan-2-ol H C H H C OH H C H H C H H C H H C H Cyclohexanol OH H 379 Arbeitsblatt Richtig oder falsch Arbeitsblatt: Richtig oder Falsch Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt, das verschiedene Aussagen zum Thema Alkohole beinhaltet, soll von den Schülern auf ihre Richtigkeit hin untersucht werden. Das Arbeitsblatt könnte aufgrund des übergreifenden Inhaltes am Ende einer Einheit zum Thema Alkohole stehen und ebenfalls als kleiner Leistungscheck für die Schüler selbst stehen. 380 Arbeitsblatt Richtig oder falsch Aufgabe: (Richtig oder falsch?) Entscheide, ob die folgenden Aussagen richtig oder falsch sind! Bei falschen Aussagen berichtige den Fehler! I. Alkanole haben als funktionelle Gruppe eine Hydroxygruppe, die ihre Eigenschaften und ihr Reaktionsverhalten stark beeinflusst. II. Tertiäre Alkohole tragen 3 Hydroxygruppen, primäre nur eine. III. Natrium reagiert mit einem kurzkettigen Alkohol - ähnlich wie Wasser - unter Wasserstoffentwicklung. Es entsteht dabei eine Base. IV. Propan-1-ol kann durch Kaliumpermanganat zur Carbonsäure oxidiert werden. Dabei bildet sich braunes MnO2. V. ‚Lucas-Reagenz‘ testet die Löslichkeit der Alkohole mit unpolaren Stoffen. Es kann somit eine Aussage über ihre Kettenlänge gemacht werden. VI. Mehrwertige Alkohole Kohlenstoffatom. VII. Glycerin wird auch Propan-1,2,3-triol genannt, wird in Handcremes verwendet und dient als Ausgangsstoff für Sprengstoffe. tragen mehr als eine Hydroxygruppe an einem 381 Richtig oder falsch Lösungsblatt Aufgabe 1: (Richtig oder falsch?) Entscheide, ob die folgenden Aussagen richtig oder falsch sind! Bei falschen Aussagen berichtige den Fehler! I. Alkanole haben als funktionelle Gruppe eine Hydroxygruppe, die ihre Eigenschaften und ihr Reaktionsverhalten stark beeinflusst. Richtig. Die funktionelle Gruppe der Alkohole ist die Hydroxygruppe. Sie verleiht dem Molekül unter anderem polare Eigenschaften. II. Tertiäre Alkohole tragen 3 Hydroxygruppen, primäre nur eine. Falsch. Bei einem tertiären Alkohol ist das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe trägt, mit 3 weiteren Kohlenstoffatomen verbunden. Man bezeichnet es daher als tertiäres Kohlenstoffatom, bzw. den Alkohol als tertiären Alkohol. Bei einem primären Alkohol ist das Kohlenstoffatom, das die Hydroxygruppe trägt, mit nur einem weiteren Kohlenstoffatom verbunden. Diese Tatsache beeinflusst unter anderem auch das Reaktionsverhalten der Alkohol. (Vgl. Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole durch Kaliumpermanganat oder Lucas – Reagenz. III. Natrium reagiert mit einem kurzkettigen Alkohol - ähnlich wie Wasser - unter Wasserstoffentwicklung. Es entsteht dabei eine Base. Richtig. Bei der Reaktion entsteht ein Alkoholat, eine Base, und zusätzlich entwickelt sich Wasserstoff. IV. Propan-1-ol kann durch Kaliumpermanganat zur Carbonsäure oxidiert werden. Dabei bildet sich braunes MnO2. Richtig. V. Lucas-Reagenz testet die Löslichkeit der Alkohole mit unpolaren Stoffen. Es kann somit eine Aussage über ihre Kettenlänge gemacht werden. Falsch. Lucas-Reagenz hilft nur bei der Unterscheidung primärer, sekundärer und tertiärer Alkohole. VI. Mehrwertige Alkohole tragen mehr als eine Hydroxygruppe an einem Kohlenstoffatom. Falsch. Mehrwertige Alkohole tragen zwar mehr als eine Hydroxygruppe, doch sind diese nicht an ein- und demselben Kohlenstoffatom gebunden. Würde der Alkohol mehr als eine Hydroxygruppe an einem Kohlenstoffatom tragen, wäre er als instabil anzusehen (Erlenmeyerregel). VII. Glycerin wird auch Propan-1,2,3-triol genannt, wird in Handcremes verwendet und dient als Ausgangsstoff für Sprengstoffe. Richtig. 382 Strukturaufklärung - Spektroskopie Arbeitsblatt: Arbeitsblatt Strukturaufklärung - Spektroskopie Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt beschäftigt sich mit der Strukturaufklärung durch Spektroskopie. Es zeigt damit einen alternativen Weg zum Versuch 8 (Reaktion von Natrium mit Wasser) auf. 383 Arbeitsblatt Strukturaufklärung - Spektroskopie Beantworte die folgenden Aufgaben in dein Heft: Aufgabe 1: I. Zeichne die beiden Funktionsisomere zu C2H6O II. Zu welchen Stoffgruppen gehören sie? III. Was sind Funktionsisomere? Charakterisiere kurz. Aufgabe 2: I. Welche Möglichkeit zur Unterscheidung der beiden Funktionsisomere hast du bereits kennengelernt? II. Eine weitere Möglichkeit zur Unterscheidung der Funktionsisomere ist die IR – Spektroskopie. Werte die folgenden IR – Spektren aus! Welches gehört zu welchem Funktionsisomer? Wellenzahl in cm–1 4000 3500 3000 2500 2000 1500 % Absorptionsgrad in 1. IR – Spektrum: 1000 Absorptionsgrad in % 2. IR – Spektrum: Wellenzahl in cm–1 4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 384 Arbeitsblatt Strukturaufklärung - Spektroskopie Tipp: Folgende Abbildung soll dir bei der Auswertung helfen: Wellenzahl in cm -1 C H C H C H C C C C C C (Ar) C C C O O H O H O H (H-Brücken bei Alkoholen) C O (H-Brücken bei Carbonsäuren) O H N H S H P H C H N H C F C Cl C Br C I Abb.3: Lage der Absorptionsbanden einiger Bindungen im IR-Spektrum 385 Lösungsblatt Strukturaufklärung - Spektroskopie Beantworte die folgenden Aufgaben in dein Heft: Aufgabe 1: I. Zeichne die beiden Funktionsisomere zu C2H6O H H H H -I -III C C H H -II C O H H O H H H C -II H (l ) (l ) Ethanol Dimethylether II. Zu welchen Stoffgruppen gehören sie? Ethanol gehört zur Stoffgruppe der Alkanole, Dimethylether zur Stoffgruppe der Ether. III. Was sind Funktionsisomere? Charakterisiere kurz. Funktionsisomere besitzen unterschiedliche funktionelle Gruppen trotz gleicher Summenformel Aufgabe 2: I. Welche Möglichkeit zur Unterscheidung der Funktionsisomere hast du bereits kennengelernt? Unterscheidung durch unterschiedliches Reaktionsverhalten mit Natrium. Während Natrium mit Ethanol heftig unter Wasserstoff reagiert zeigt, wasserfreier Dimethylether keine Reaktion. II. Eine weitere Möglichkeit zur Unterscheidung der Funktionsisomere ist die IR – Spektroskopie. Absorptionsgrad in % 1. IR – Spektrum: Aufgrund des Vergleiches mit Abb.3 lässt sich vermuten, dass der Peak bei 3700 auf die Absorption der O-H Gruppe zurückgeht. Somit muss es sich um Ethanol handeln. Dimethylether besitzt keine solche Gruppe, so dass dieses Molekül an dieser Stelle keinen Peak verursachen würde. Wellenzahl in cm–1 4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 386 Absorptionsgrad Wellenzahl in cm–1 4000 3500 3000 2500 2000 1500 in % Lösungsblatt Strukturaufklärung - Spektroskopie 1000 2. IR – Spektrum: Der Vergleich mit Abb.3 lässt vermuten, dass es sich um Dimethylether handeln muss, da keine Bande bei 3700 zu finden ist, die auf eine OH-Gruppe zurückgehen würde. 387 Arbeitsblatt Aldehyde und Ketone Arbeitsblätter zum Thema Carbonylverbindungen Arbeitsblatt: Aldehyde und Ketone Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt beschäftigt sich mit den Oxidationsprodukten von primären und sekundären Alkoholen am Beispiel von Propan-1-ol und Propan-2-ol. Es leitet damit vom Themenkomplex der Alkohole über zum Thema der Carbonylverbindungen. Damit die Schüler dieses Arbeitsblatt selbstständig bearbeiten können, sollten die Aldehydund Ketogruppe als funktionelle Gruppe schon eingeführt worden sein. 388 Arbeitsblatt Aldehyde und Ketone Aufgabe: Bearbeite folgende Aufgaben! I. Vervollständige folgende Tabellen! Ergänze die leeren Felder! Gib jeweils die Oxidationszahlen der funktionellen Gruppen an! A) Primärer Alkohol polar Propan-1-ol hydrophil Aldehyd Carbonsäure polar hydrophil Propansäure H Propylgruppe Ethylgruppe H C C H H O C OH Aldehydgruppe Oxidation B) Sekundärer Alkohol polar Propan-2-ol hydrophil H Oxidation Keton polar hydrophil Methylgruppe Oxidation II. ??? Ist eine Weiterreaktion (Oxidation) vom Keton ohne Strukturverlust möglich? Begründe deine Antwort kurz! Tipp: Die mögliche oder unmögliche Weiterreaktion in B) ist mit ??? gekennzeichnet. 389 Lösungsblatt Aldehyde und Ketone Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! I. Vervollständige die folgenden Tabellen! Ergänze die leeren Felder! Gib jeweils die Oxidationszahlen der funktionellen Gruppen an! A) Primärer Alkohol polar hydrophil Propan-1-ol H Aldehyd H Carbonsäure polar hydrophil Propanal H Propansäure H H O C C C +I H H H polar hydrophil H H O C C C + III H H OH -I H C C C H H H Propylgruppe OH H Hydroxygruppe Ethylgruppe (primär) Aldehydgruppe Ethylgruppe Oxidation B) Sekundärer Alkohol polar Propan-2-ol hydrophil H H C C C H OH H polar hydrophil Propanon H 0 H H H Carboxylgruppe Oxidation Keton H H H C + II C C H O H H Weiteroxidation nur unter C – C – Bindungsbruch möglich == > Strukturverlust! Mögliches Oxidationsprodukt: + IV CO2 Methylgruppe Hydroxygruppe Methylgruppe (sekundär) Ketogruppe - (g) - Oxidation II. Ist eine Weiterreaktion (Oxidation) vom Keton ohne Strukturverlust möglich? Begründe deine Antwort kurz! Siehe Tabelle! 390 Oxidation von Ethanol am Kupferkontakt Arbeitsblatt: Arbeitsblatt Oxidation von Ethanol am Kupferkontakt Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt soll den Versuch „Oxidation von Ethanol am Kupferkontakt“ vertiefen. 391 Arbeitsblatt Oxidation von Ethanol am Kupferkontakt Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! I. Vervollständige die folgenden Reaktionsgleichungen! a. Gib die jeweilige Oxidationsstufe (Oxidationszahl) der Atome in den Verbindungen an! __ Cu (s) + __ O2 (g) b. Gib die jeweilige Oxidationsstufe (Oxidationszahl) der Atome in den Verbindungen an! Benenne die beteiligten Verbindungen (Produkte wie Edukte)! H H H C C H H + CuO (s) O H + Cu (s) + (l) + + + II. Zu welcher Verbindungsklasse gehört das aus dem Alkohol entstandene Produkt in I. b.? ________________________________________ III. a) Wie kann das entstandene Produkt nachgewiesen werden? _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ b) Welche Chemikalien werden hierfür benötigt? Name der Lösung: _______________________ Namen der einzelnen Substanzen: = _____________________________ _____________________________ _____________________________ IV. Welche(r) andere(n) Nachweis(e) für das entstandene Produkt ist/sind Dir noch bekannt? _______________________ ________________________ 392 Lösungsblatt Oxidation von Ethanol am Kupferkontakt Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! I. Vervollständige die folgenden Reaktionsgleichungen! a. Gib die jeweilige Oxidationsstufe (Oxidationszahl) der Atome in den Verbindungen an! 0 0 2 Cu (s) + O 2 (g) +II 2 CuO (s) b. Gib die jeweilige Oxidationsstufe (Oxidationszahl) der Atome in den Verbindungen an! Benenne die beteiligten Verbindungen (Produkte wie Edukte)! H H H +II -I H C C H H Ethanol + CuO (s) O H + (l) Kuopfer(II)-oxid +I H C O 0 C + Cu (s) + H 2O (l) H H Ethanal + (l) Kupfer + Wasser II. Zu welcher Verbindungsklasse gehört das aus dem Alkohol entstandene Produkt in I. b.? Aldehyden III. a) Wie kann das entstandene Produkt nachgewiesen werden? Durch Schiffscheprobe oder indirekt durch Fehling bzw. Tollensprobe. b) Welche Chemikalien werden hierfür benötigt? Name der Lösung: Namen der einzelnen Substanzen: Schiffsche-Lösung Fuchsin Natriumhydrogensulfit – Lösung Salzsäure IV. Welche(r) andere(n) Nachweis(e) für das entstandene Produkt ist/sind dir noch bekannt? -Fehlingprobe -Tollensprobe 393 Arbeitsblatt Bakelitherstellung Arbeitsblatt: Bakelitdarstellung Anmerkungen: Damit dieses Arbeitsblatt von den Schülern eigenständig bearbeitet werden kann, sollte das Thema Aromatenchemie, sowie die aromatische Substitutionsreaktionen bereits behandelt worden sein. Andernfalls könnte es die Schüler überfordern. 394 Arbeitsblatt Bakelitherstellung Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! I. Zu welcher Verbindungsklasse gehört die Verbindung Bakelit? _________________________________ II. Vervollständige folgende Reaktionsgleichung! a) Gib zuerst die Wortgleichung der Reaktion von Salzsäure und Wasser an! Fasse diese dann in einer Reaktionsgleichung zusammen! Salzsäure + + Wasser + + b) Formuliere die Reaktion von Formaldehyd mit der entstandenen Säure! H O + C+ H III. H In der Folge reagiert das aktivierte Formaldehyd mit Phenol. Dabei wird Formaldehyd vom aromatischen Ring nucleophil angegriffen. Formuliere die passende Reaktion! Whelandkomplex H O + C H + H -H H Tipp: 1. Ruf dir für die Beantwortung der Frage dein Wissen über Aromaten und deren Reaktion nochmal ins Gedächtnis. 2. Schlag ggf. nochmal in deinem Chemiebuch unter elektrophiler aromatischer Substitution nach. H + OH HO 395 Lösungsblatt Bakelitherstellung Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! I. Zu welcher Verbindungsklasse gehört die Verbindung Bakelit? Bakelit ist ein duroplastischer Kunststoff auf der Basis eines Phenolharzes. II. Vervollständige folgende Reaktionsgleichung! a) Gib zuerst die Wortgleichung der Reaktion von Salzsäure und Wasser an! Fasse diese dann in einer Reaktionsgleichung zusammen! Salzsäure + HCl (aq) + Wasser Oxonium - Ion H 2O H3O + + Chlorid - + (aq) Cl (aq) b) Formuliere die Reaktion von Formaldehyd mit der entstandenen Säure! O + C H H + + H O H + H2O H (aq) H + H O - H2O O C C+ H H H H (aq) III. In der Folge reagiert das aktivierte Formaldehyd mit Phenol. Dabei wird Formaldehyd vom aromatischen Ring nucleophil angegriffen. Formuliere die passende Reaktion! OH H OH H H OH H O + C H OH OH H OH H + H OH H OH H OH H H H -H H H H H + OH HO 396 Wissenstest – Thema Carbonylverbindungen Arbeitsblatt: Arbeitsblatt Wissenstest - Carbonylverbindungen Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt ist als ein kurzweiliger Wissenstest ausgelegt. Er kann zum Abschluss des Themengebietes der Carbonylverbindungen im Unterricht angewendet werden. 397 Arbeitsblatt Wissenstest – Thema Carbonylverbindungen Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! Kreuze jeweils die richtige(n) Antwort(en) an. I. Aldehyde entstehen bei der Oxidation von Alkoholen können nicht weiter oxidiert werden sind sehr unreaktiv ist das Kurzwort für: das lateinische „alcohol(us) dehydrogenatus“ tragen von der IUPAC den Namen: „Alkanale“ III. Eine Oxidation führt zur Bildung von Aldehyden aus primären Alkoholen führt zur Bildung von Aldehyden aus sekundären Alkoholen ist eine rein anorganische Reaktion muss durch Wärmezufuhr getragen werden V. II. Formaldehyd ist stark giftig und steht unter Verdacht, Krebs auszulösen ist ein gutes Desinfektionsmittel verfeinert viele Saucen ist in vielen Lebensmitteln enthalten wird zum Haltbarmachen in der präparativen Medizin verwendet ist der Trivialname von Methanal IV. Aceton ist in Nagellackentfernern enthalten ist nicht brennbar wird durch Oxidation von Propan-2ol hergestellt ist ein gutes Lösungsmittel und findet in Laboren vielseitig Verwendung ist eine blaue Flüssigkeit Ethanal VI. Carbonylverbindungen bestehen aus ist ein Keton Wasserstoff, Kohlenstoff, Phosphor kann zur Essigsäure weiter oxidiert Wasserstoff, Kohlenstoff und werden Sauerstoff ist ein Aldehyd Wasserstoff, Kohlenstoff, Silicium entsteht während des Alkoholabbaus Wasserstoff, Kohlenstoff, Stickstoff und ist mit für den „Kater“ verantwortlich VII. Aldehyde VIII. können nur schwer nachgewiesen werden können zur Carbonsäure weiter oxidiert werden können durch die Fehlingprobe identifiziert werden können durch die Schiffscheprobe identifiziert werden Ketone sind seltene Verbindungen können durch die Tollensprobe nachgewiesen werden sind Oxidationsprodukte der Alkohole enthalten mehr Sauerstoffatome als der Alkohol, aus dem sie hergestellt wurden erhalten nach der IUPAC das Suffix „-on“ 398 Lösungsblatt Wissenstest – Thema Carbonylverbindungen Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! Kreuze jeweils die richtige(n) Antwort(en) an. I. Aldehyde entstehen bei der Oxidation von Alkoholen können nicht weiter oxidiert werden sind sehr unreaktiv ist das Kurzwort für: das lateinische „alcohol(us) dehydrogenatus“ tragen von der IUPAC den Namen: „Alkanale“ III. Eine Oxidation führt zur Bildung von Aldehyden aus primären Alkoholen führt zur Bildung von Aldehyden aus sekundären Alkoholen ist eine rein anorganische Reaktion muss durch Wärmezufuhr getragen werden V. II. Formaldehyd ist stark giftig und steht unter Verdacht, Krebs auszulösen ist ein gutes Desinfektionsmittel verfeinert viele Saucen ist in vielen Lebensmitteln enthalten wird zum Haltbarmachen in der präparativen Medizin verwendet ist der Trivialname von Methanal IV. Aceton (ist in Nagellackentfernern enthalten) ist nicht brennbar wird durch Oxidation von Propan-2ol hergestellt ist ein gutes Lösungsmittel und findet in Laboren vielseitig Verwendung ist eine blaue Flüssigkeit Ethanal VI. Carbonylverbindungen bestehen aus ist ein Keton Wasserstoff, Kohlenstoff, Phosphor kann zur Essigsäure weiter oxidiert Wasserstoff, Kohlenstoff und werden Sauerstoff ist ein Aldehyd Wasserstoff, Kohlenstoff, Silicium entsteht während des Alkoholabbaus Wasserstoff, Kohlenstoff, Stickstoff und ist mit für den „Kater“ verantwortlich VII. Aldehyde VIII. können nur schwer nachgewiesen werden können zur Carbonsäure weiter oxidiert werden können durch die Fehlingprobe identifiziert werden können durch die Schiffscheprobe identifiziert werden Ketone sind seltene Verbindungen können durch die Tollensprobe nachgewiesen werden sind Oxidationsprodukte der Alkohole enthalten mehr Sauerstoffatome als der Alkohol, aus dem sie hergestellt wurden erhalten nach der IUPAC das Suffix „-on“ 399 Abschlussrätsel - Carbonylverbindungen Arbeitsblatt: Arbeitsblatt Abschlussrätel - Carbonylverbindungen Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt, das in Rätselform gestaltet wurde, umfasst verschiedene Aspekte zum Thema „Carbonylverbindungen“ und könnte am Ende einer Unterrichtsreihe zu diesem Thema stehen. Es könnte daher als kleiner Leistungscheck für die Schüler angesehen werden. 400 Arbeitsblatt Abschlussrätsel - Carbonylverbindungen Aufgabe: Löse das Rätsel, finde das Lösungswort! Lösungswort: __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 [1] Der gesuchte Nachweis testet auf reduzierbare Gruppen im Molekül. Hierfür werden Silberkationen, die in Form von Silbernitrat zugegeben werden, verwendet. Am Ende scheidet sich Silber mit der Oxidationsstufe (0) ab. Trage den Namen dieses Nachweises in Zeile 1 ein. [2] Wer bin ich? Ich bin ein aprotisches Lösungsmittel und in fast jedem Labor zu finden, Früher verwendete man mich im Nagellackentferner, so dass ich beinahe in jedem Haushalt zu Gast war. Ich trage offiziell den Namen Propan-2-on. Hast du mich H erkannt? So trage meinen Namen in Zeile 2 ein. H2N N [3] Wie heißt der Stoff, der folgende Strukturformel trägt und zum Nachweisen von Aldehyden benötigt wird? CH3 NH2 [4] Lässt man Phenol mit Formaldehyd reagieren, bildet sich durch eine Polykondensationsreaktion Bakelit, ein duroplastischer Kunststoff. Dieser zählt zur Klasse der __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ (e). (Einzahl!) [5] Die __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ beschreibt die oxydative Spaltung eines Methylketons mit Chlor, Brom oder Iod in einer alkalischen Lösung an der Methylbindung. 401 Arbeitsblatt Abschlussrätsel - Carbonylverbindungen [6] Wer bin ich? Ich gelte als erster industriell produzierter Kunststoff, zähle zur Klasse der Duroplasten und ich werde aus Phenol und Formaldehyd hergestellt. [7] Wird bei der in [5] gefragten Reaktion in alkalischem Milieu Iod mit Aceton umgesetzt, bildet sich ein charakteristisch gelber Stoff, der früher als Desinfektionsmittel eingesetzt wurde. Wie heißt dieser Stoff? Tipp: Nach dem sich bildenden gelben Stoff ist sogar eine Nachweisreaktion für Carbonylverbindungen benannt. [8] Benenne die folgenden drei Verbindungen! Zu welcher Verbindungsklasse gehören sie? Trage den Namen für 8 ein. O O O O CH3 H3C CH3 H3C CH3 H3C [9] Wie wird der Nachweis für Aldehyde genannt, der zu Ehren eines deutschen Chemikers - nach ihm - benannt wurde. Tipp: Als Nachweisreagenz wird der in Frage [3] dargestellte Stoff sowie Schwefligesäure benötigt. Eine violette Färbung zeigt den positiven Nachweis an. [10] Wer bin ich? Ich bin eine sehr giftige Verbindung und wurde daher als Desinfektionsmittel eingesetzt. Ich stehe allerdings im Verdacht, krebserregend zu sein, so dass beim Umgang mit mir Vorsicht geboten ist. Ich bin einer der wichtigsten organischen Grundstoffe. Die IUPAC nennt mich Methanal. Hast du mich erkannt? Dann trage meinen Namen für 10 ein! Gesucht ist der Trivialname der Verbindung. [11] Wie heißt die folgende Verbindung? Gib die wichtigsten Oxidationszahlen an und trage den Namen für 11 ein. O Tipp: Die Verbindung entsteht beim Alkoholabbauprozess im Körper. H3C H 402 Lösungsblatt Abschlussrätsel: Carbonylverbindungen Aufgabe: (Löse das Rätsel, finde das Lösungswort) Lösungswort: B E N Z A L D E H Y D 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 T O L L E N S P R A F U C H S P H E N O L H A H A L O F O R M R B A K I O C I R E E O K S C F O R M A L D E H A C E T A L A L B E N Z A L D E H Y D E T O N K I O T I D E T T F O F I O N O R M N F S C H E P R O B E H Y D Die Antworten 1 – 7 und 9 – 10 sind direkt im Rätsel zufinden. [8] Benenne die folgenden drei Verbindungen! Zu welcher Verbindungsklasse gehören sie? Trage den Namen für 8 ein. O O O O CH3 H3C CH3 H3C CH3 Aceton Acetylaceton (Acac) Propanon Pentan -2,4 - dion H3C Butanon [11] Wie heißt die folgende Verbindung? Gib die wichtigsten Oxidationszahlen an und trage den Namen bei Zeile 11 ein. O Tipp: Die Verbindung entsteht beim Alkoholabbauprozess im Körper. +I H3C H Ethanal 403 Unterscheidung von Glucose und Fructose Arbeitsblatt Arbeitsblätter zum Thema Kohlenhydrate Arbeitsblatt: Unterscheidung von Glucose und Fructose Anmerkungen: Das Arbeitsblatt schließt an die Versuche zur Glucose und Fructose an. Es soll der Vertiefung dieses Themengebietes dienen. 404 Arbeitsblatt Unterscheidung von Glucose und Fructose Aufgabe: Beantworte die folgenden Aufgaben in deinem Heft: I. Nenne zwei Nachweisreaktionen für Glucose. Reagieren diese auch mit Fructose? Begründe kurz deine Antwort. II. Iod ist in Wasser unlöslich; erkläre, wie man Iod trotzdem in Lösung bekommt. Wie nennt man diese Lösung? III. Fructose kann sich durch sogenannte Keto – Enol - Tautomerie in Glucose umwandeln und zeigt daher reduzierende Wirkung. Vervollständige die folgende Abbildung. Welcher andere Stoff kann sich aus dem fehlenden Endiol (Abbildungsmitte) noch bilden? O H C H H C +II C OH O HO C H H C OH H C OH OH- H C OH HO C H H C OH H C OH CH 2OH D - Glucose CH 2OH D - Fructose Name: IV. a) Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung und b) benenne die beteiligten Stoffe (Edukte und Produkte): a) b) I2 (aq) + OH (aq) + V. Wie nennt man die in Aufgabe VI. dargestellte Reaktion. VI. Nenne einen spezifischen Zuckernachweis für Fructose. + + 405 Lösungsblatt Unterscheidung von Glucose und Fructose Aufgabe: Beantworte die folgenden Aufgaben in deinem Heft: I. - Nenne zwei Nachweisreaktionen für Glucose. Reagieren diese auch mit Fructose? Begründe kurz deine Antwort. Der GOD – Test reagiert nur mit Glucose, nicht mit Fructose. Der Grund ist, dass es sich um einen Enzymatischen Nachweis handelt, der nur mit Glucose positiv verläuft. - Die Tollensprobe reagiert auch mit Fructose. II. Iod ist in Wasser unlöslich; erkläre, wie man Iod trotzdem in Lösung bekommt. Wie nennt man diese Lösung? Durch Zugabe von Kaliumiodid. So bilden sich lösliches Triiodid sowie Polyiodidionen. Die sich bildende braune Lösung heißt Lugolsche Lösung. III. Fructose kann sich durch sogenannte Keto – Enol - Tautomerie in Glucose umwandeln und zeigt daher reduzierende Wirkung auf Nachweise. Vervollständige die folgende Abbildung. Welcher andere Stoff kann sich aus dem fehlenden Endiol noch bilden? O H C H H C +II C OH H C OH C OH HO C H O H C OH HO C H H C OH H C OH - OH HO C H H C OH H C OH H C OH H C OH CH 2OH CH 2OH CH 2OH D - Glucose O H C D - Fructose Endiol HO C H HO C H H C OH H C OH CH 2OH D - Mannose 406 Lösungsblatt Unterscheidung von Glucose und Fructose IV. Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung, benenne die beteiligten Stoffe. (Edukte und Produkte) 0 I2 -I (aq) Iod + + - OH (aq) Hydroxid I +I (aq) Iodid V. Wie nennt man die in Aufgabe VI. dargestellte Reaktion. Disproportionierungsreaktion. VI. Nenne einen spezifischen Zuckernachweis für Fructose. Seliwanoffreaktion. + HOI (aq) + Hypoiodit 407 Arbeitsblatt Zuckernachweis durch Fehling Arbeitsblatt: Zuckernachweis durch Fehling Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt beschäftigt sich vorwiegend mit dem Themengebiet der Fehlingprobe. Es kann daher als vertiefende Ergänzung zu den Versuchen der Fehlingprobe herangezogen werden. 408 Arbeitsblatt Zuckernachweis durch Fehling Aufgabe 1: Beantworte die folgenden Fragen in deinem Heft! I. Skizziere grob die wichtigsten Schritte der Fehlingprobe! Tipp: benötigte Chemikalien, Durchführung, Geräte und Beobachtung II. Was zeigt eine positive Fehlingprobe an? III. Vervollständige die abgebildete Reaktionsgleichung zur Fehlingprobe! Gib die wichtigen Oxidationsstufen der Reaktion an! Gesamtreaktion: H + C R + + Cu2O(s) + O (aq) IV. Zeichne D-Glucose in Haworth Darstellung! V. Nenne zwei weitere Zucker, die reduzierend wirken! VI. Bei der Fehlingprobe wird Natrium-Kalium-Tartrat; (Salz der Weinsäure) benötigt. Welche Aufgabe hat dieses bei der ablaufenden Reaktion? Begründe stichwortartig! VII. Zeichne Saccharose in Haworth-Projektion! VIII. Wie reagiert eine Saccharose-Lösung mit Fehling? Begründe deine Antwort kurz! Aufgabe 2: (Für die schnellen) Beantworte die folgenden Fragen in deinem Heft! I. Zeichne D-Fructose in Fischerprojektion! II. Mit welchem Nachweis lässt sich Fructose von Glucose unterscheiden? Nenne einen Nachweis! 409 Lösungsblatt Zuckernachweis durch Fehling Aufgabe 1: Beantworte die folgenden Fragen in deinem Heft! I. - Skizziere grob die wichtigsten Schritte der Fehlingprobe! Fehling I: Löse Kupfersulfat in dest. Wasser. Fehling II: Löse Kalium-Natrium-Tartrat und Natriumhydroxid in dest. Wasser. Stelle eine Probenlösung her (Beispielsweise eine Glucose Lösung). Gib nun zur Probenlösung gleiche Teile Fehling I und II. Erwärme im Wasserbad. II. Was zeigt eine positive Fehlingprobe an? Bei einer positiven Fehlingprobe ist ein orange–roter Niederschlag zu erkennen. Wie die Silberspiegelprobe ist die Fehlingprobe ein Nachweis für reduzierend wirkende Gruppe, wie beispielsweise die Aldehydgruppe. III. Vervollständige die abgebildete Reaktionsgleichung zur Fehlingprobe! Gib die wichtigen Oxidationsstufen der Reaktion an! Gesamtreaktion: H +III +II +I 2+ + 2 Cu C R IV. O - (aq) + 4 OH R (aq) (aq) C O +I Cu 2O(s) + 2 H2O OH (aq) Zeichne D-Glucose in Haworth Darstellung! OH O H H H OH H HO OH H OH D-Glucose in Pyranoseform V. Nenne zwei weitere Zucker, die reduzierend wirken! Maltose, Glucose, Galactose, (Fructose nach Umlagerung) 410 Lösungsblatt Zuckernachweis durch Fehling VI. Bei der Fehlingprobe wird Natrium-Kalium-Tartrat (Salz der Weinsäure) benötigt. Welche Aufgabe hat dieses bei der ablaufenden Reaktion? Begründe stichwortartig. Tartrat hat die Aufgabe, die Kupferionen in Lösung zu halten. Dies gelingt, weil Kupfer(II) mit Tartrat einen stabilen Komplex bildet. So wird verhindert, dass Kupfer(II) mit dem Hydroxid zu schwerlöslichem Cu(OH)2 reagiert und ausfällt. Wäre dies der Fall, so würde die Reaktion lediglich am Boden des Reaktionsgefäßes ablaufen. Die deutliche rot-orange Färbung der Lösung würde ausbleiben. VII. Zeichne Saccharose in Haworth-Projektion! Glucose - Rest Fructose - Rest OH H HO OH H OH H H OH HO O 1 H O HO H 2 OH H OH -1-2 - verknüpft VIII. Wie reagiert eine Saccharose-Lösung mit Fehling? Begründe deine Antwort kurz! Saccharose ist kein reduzierend wirkender Zucker, so dass eine Reaktion mit Fehling wie auch mit Tollens - ausbleibt. Der Grund ist, dass die reduzierend wirkende Aldehydgruppe der Glucose an der Bindung beteiligt ist, und Fructose in dieser gebundenen Form sich nicht durch ‚Keto – Enol – Tautomerie‘ in einen reduzierend wirkenden Zucker umwandeln kann. Aufgabe 2: (Für die schnellen) Beantworte die Folgenden Fragen in deinem Heft! I. Zeichne D-Fructose in Fischerprojektion! CH 2OH +II HO O H H OH H OH CH 2OH D - Fructose in Fischerprojektion. II. Mit welchem Nachweis lässt sich Fructose von Glucose unterscheiden? Nenne einen Nachweis! Seliwanoffprobe, GOD-Test. 411 Zuckernachweis durch Tollensprobe Arbeitsblatt: Arbeitsblatt Zuckernachweis durch Tollensprobe Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt beschäftigt sich vorwiegend mit dem Themengebiet der Tollensprobe (auch Silberspiegelprobe genannt). Es kann daher als vertiefende Ergänzung zu den Versuchen der Tollensprobe herangezogen werden. 412 Arbeitsblatt Zuckernachweis durch Tollensprobe Aufgabe 1: Beantworte die folgenden Fragen in deinem Heft! I. Zeichne D-Glucose in Kohlenstoffatoms Nr.1! Fischerprojektion! Ergänze die Oxidationszahl des II. Wie lautet der Name der funktionellen Gruppe der Glucose? III. Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung! Gib jeweils die Oxidationszahlen der beteiligten Stoffe (Edukte wie Produkte) an! H + + x Ag C R O (aq) IV. Unter welchem anderen Namen ist die Tollensprobe noch bekannt? V. Für die Tollensprobe wird neben dem Silbernitrat auch Ammoniak benötigt. Welche Aufgabe hat der Ammoniak bei der ablaufenden Reaktion? Begründe mit Hilfe von Reaktionsgleichungen! VI. Formuliere die Redoxreaktion von ammoniakalischer Silbernitratlösung mit Glucose. Tipp: 1. Die Glucose wird zur Gluconsäure oxidiert. 2. Das Silberkation ist das entscheidende Reagenz. Silbernitrat dient lediglich als lösliches Silbersalz. 3. Unterteile die Reaktion in Reduktion und Oxidation, formuliere erst anschließend die Gesamtreaktion. VII. Was zeigt den positiven Nachweis bei der Tollensprobe an? VIII. Welche weitere Nachweisreaktion für reduzierend wirkende Zucker ist dir bekannt? Aufgabe 2: (Für die schnellen) Beantworte die Folgenden Fragen in deinem Heft! I. Zeichne Mannose in Fischerprojektion. II. Mit welchem Nachweis lässt sich spezifisch und halbquantitativ Glucose nachweisen? III. Kann Fructose durch ein mildes Oxidationsmittel wie beispielsweise das Silberkation oxidiert werden? Begründe kurz! 413 Lösungsblatt Zuckernachweis durch Tollensprobe Aufgabe 1: Beantworte die folgenden Fragen in deinem Heft! I. Zeichne D-Glucose in Kohlenstoffatoms Nr.1! Fischerprojektion! Ergänze die Oxidationszahl des +I H O H OH HO H H OH H OH CH 2OH D-Glucose in Fischerprojektion II. Wie lautet der Name der funktionellen Gruppe der Glucose? Aldehydgruppe III. Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung! Gib jeweils die Oxidationszahlen der beteiligten Stoffe (Edukte wie Produkte) an! H +I + + 2 Ag (aq) C R +III O +I O (aq) R 0 C + 2 Ag O H (aq) IV. Unter welchem anderen Namen ist die Tollensprobe noch bekannt? Silberspiegelprobe V. Für die Tollensprobe wird neben dem Silbernitrat auch Ammoniak benötigt, welche Aufgabe hat der Ammoniak bei der ablaufenden Reaktion? Begründe mit Hilfe von Reaktionsgleichungen! Wird Silbernitrat (AgNO3) in Wasser gegeben, dann löst es sich. Die einzelnen Ionen werden aquatisiert (Gleichung 1). Die gelösten Silber(I)-Ionen bilden mit dem Hydroxid der alkalischen Lösung (Gleichung 2) schwerlösliches Silberoxid (Ag2O) (Gleichung 3). Letzteres fällt aus, so dass sich in der Folge kein gleichmäßiger Silberspiegel bilden könnte (Silber(I) wäre lediglich am Boden des Gefäßes zu finden). Deshalb wird Ammoniak zugegeben, das mit dem Silber(I) einen stabilen Komplex bildet, und es so - trotz des alkalischen Milieus -in Lösung hält (Gleichung 4). 414 Lösungsblatt Zuckernachweis durch Tollensprobe H2O 1. AgNO3 2. NH 3 (aq) + + VI. H2O 3. 2 Ag (aq) + 4. (s) Ag2O + Ag (s) (aq) + NH 4 + - 2 OH + 4 NH3 (aq) (aq) + NO3 (aq) - (aq) + OH Ag2O (s) H2O (aq) + H2O 2 [Ag(NH3)2] + - (aq) + 2 OH (aq) Formuliere die Redoxreaktion von ammoniakalischer Silbernitratlösung mit Glucose. Oxidation +I H O H OH HO HO H H + H2O H OH H OH +III OH HO (aq) CH 2OH O + +2H H H OH H OH - (aq) +2e CH 2OH (aq) (aq) Gl ucos e Gl ucons ä ure Reduktion +I [Ag(NH3)2] + 0 - (aq) +e Ag (s) + 2 NH3 |x2 (aq) Si lberdiami n - Komplex Gesamtreaktion: H +I + + 2 Ag (aq) C R VII. +III O +I O (aq) R 0 C + 2 Ag O H (aq) Was zeigt den positiven Nachweis bei der Tollensprobe an? Ein sich an der Gefäßwand bildender Silberspiegel. 415 Lösungsblatt Zuckernachweis durch Tollensprobe VIII. Welche weitere Nachweisreaktion für reduzierend wirkende Zucker ist dir bekannt? - Fehlingprobe - Tollensprobe. Aufgabe 2: (Für die schnellen) Beantworte die folgenden Fragen in deinem Heft! I. Zeichne D-Mannose in Fischerprojektion. +I H O HO H HO H H OH H OH CH 2OH II. Mit welchem Nachweis lässt sich spezifisch und halbquantitativ Glucose nachweisen? Glucose-Oxidase-Test (GOD-Test). III. Kann Fructose durch ein mildes Oxidationsmittel wie beispielsweise das Silberkation oxidiert werden? Begründe kurz! Nein, da Fructose selbst keine oxidierbare Gruppe besitzt, kann es direkt nicht durch Beispielsweise Silber(I) oxidiert werden. Dass Fructose jedoch trotzdem einen positiven Silbernachweis zeigt, liegt an der Möglichkeit der Umlagerung (Keto-EnolTautomerie). Durch diese kann sich ein gewisser Prozentsatz an Fructose in Glucose oder Mannose umlagern (Vgl. Fachliche Auswertung Versuch Fehlingprobe – Themengebiet der Kohlenhydrate – Abb.5). 416 Arbeitsblatt Disaccharide Arbeitsblatt: Disaccharide Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt legt Augenmerk auf die Disaccharide. Es dient daher der Vertiefung dieses Themenkomplexes. 417 Arbeitsblatt Disaccharide Aufgabe 1: Bearbeite die folgenden Fragen! I. Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung! Glucose + + Fructose HO + H OH O HO H OH + OH H a. Wie lautet der Trivialname des entstandenen Disaccharides? ______________________ II. In Gegenwart von verdünnter Salzsäure wird Maltose durch Wasser gespalten. In der Folge lässt sich Glucose nachweisen. a. Wie wird diese Spaltungsreaktion genannt? _________________________ b. Welche Aufgabe hat die verdünnte Salzsäure? _________________________ c. Wie lässt sich Glucose nachweisen? Beschreibe stichwortartig die Reaktionsbedingungen! __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ d. Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung! Maltose + + Wasser OH H + + H2O H OH H OH HO OH H III. + OH Wie lautet der Name des wichtigen Disaccharides, das in der Milch der Säugetiere zu etwa 5 % vorliegt? Tipp: Im Molekül sind eine Galactose-Einheit und eine Glucose Einheit -(1,4)-glycosidisch verbunden. ________________________ 418 Lösungsblatt Disaccharide Aufgabe 1: Bearbeite die folgenden Fragen! I. Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung! + Glucos e OH OH HO O H HO H H H H OH OH OH O H HO + H OH OH + Wasser Saccharose Fructose H OH H HO OH H OH H H OH 1 HO H O O HO + H2O H 2 OH H OH -1-2 - Verknüpft a. Wie lautet der Trivialname des entstandenen Disaccharides? Haushaltszucker II. In Gegenwart von verdünnter Salzsäure wird Maltose durch Wasser gespalten. In der Folge lässt sich Glucose nachweisen. a. Wie wird diese Spaltungsreaktion genannt? Hydrolyse b. Welche Aufgabe hat die verdünnte Salzsäure? Sie wirkt als Katalysator für die Reaktion c. Wie lässt sich Glucose nachweisen? Beschreibe stichwortartig die Reaktionsbedingungen! Durch den GOD – Test, der spezifisch auf Glucose testet. Glucose kann aber auch indirekt nachgewiesen werden durch die Fehlingprobe oder die Tollensprobe. Beide Reaktionen laufen jedoch im alkalischen Milieu ab, so dass die Lösung zuvor alkalisch gemacht werde muss. Reaktionsbedingungen (Vgl. III. Experimenteller Teil, Abschnitt Kohlenhydrate, Versuch 1: Silberspiegelprobe und Versuch 2: Fehlingprobe). d. Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung! + Maltose OH H H OH H HO 1 H OH H O 4 OH H OH H H HO OH - D - Glucose OH OH OH OH + - D - Glucose Wasser H ++ H2O H OH H OH HO H OH H OH + H OH H OH HO OH H OH -1-4 - Verknüpft III. Wie lautet der Name des wichtigen Disaccharides, das in der Milch der Säugetiere zu etwa 5 % vorliegt? Milchzucker oder Lactose genannt. 419 Arbeitsblatt Wissenstest - Kohlenhydrate Arbeitsblatt: Wissenstest - Kohlenhydrate Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt ist als ein kurzweiliger Wissenstest ausgelegt. Er kann deshalb zum Abschluss des Themengebietes der Kohlenhydrate im Unterricht verwendet werden. 420 Arbeitsblatt Wissenstest - Kohlenhydrate Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! Kreuze jeweils die richtige(n) Antwort(en) an (es können mehrere Antworten richtig sein): I. Haushaltszucker wird aus speziellen Rüben gewonnen im Untertagebau abgebaut in Laboren großtechnisch synthetisch hergestellt aus Zuckerrohr gewonnen. II. Kohlenhydrate bestehen im allgemeinen aus folgenden Elementen: Wasserstoff, Kohlenstoff, Phosphor Wasserstoff, Kohlenstoff und Sauerstoff Wasserstoff, Kohlenstoff, Silicium Wasserstoff, Kohlenstoff, Stickstoff IV. Polysaccharide dienen der Energiegewinnung im Körper dienen als Gerüststoff in Pflanzen lassen sich nicht zerlegen entstehen durch Synthese im Labor VI. Stärke besteht aus Kohlenstoff und Stickstoff ist die Gerüstsubstanz von Pflanzen ist eine einheitliche Substanz die nur aus Amylose besteht III. Glucose ist ein Monosaccharid ist eine Ketohexose hat die Summenformel: C6H12O6 wirkt oxidierend V. Saccharose ist kein Disaccharid auch unter dem Namen Traubenzucker bekannt durch Fehlingprobe nachweisbar lässt sich durch saure Hydrolyse in Glucose und Fructose spalten Amylose VIII. besteht aus bis zu 10000 Glucose Einheiten besitzt ein verzweigtes Netz von Glucose-Einheiten lässt sich mit Hilfe von LugolscherLösung identifizieren ist die unlösliche Form der Stärke Die Tollensprobe verläuft positiv X. mit: Glucose, Saccharose, Maltose Glucose, Fructose, Maltose Glucose, Fructose, Cellulose Maltose, Saccharose, Lactose VII. IX. Fehlingprobe ist ein spezifischer Fructosenachweis testet auf oxidierbare Gruppen verläuft im sauren Milieu dient als Glucose- und Aldehydnachweis benötigt Kupfer(II)-Ionen, die in Form von Kupfersulfat zugegeben werden Cellulose ist Gerüstsubstanz für Pflanzen ist ein Polysaccharid dient als Energielieferant im menschlichen Körper kann durch Säure hydrolysiert werden 421 Lösungsblatt Wissenstest - Kohlenhydrate Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! Kreuze jeweils die richtige(n) Antwort(en) an (es können mehrere Antworten richtig sein): I. Haushaltszucker wird aus speziellen Rüben gewonnen im Untertagebau abgebaut in Laboren großtechnisch synthetisch hergestellt aus Zuckerrohr gewonnen. II. Kohlenhydrate bestehen im allgemeinen aus folgenden Elementen: Wasserstoff, Kohlenstoff, Phosphor Wasserstoff, Kohlenstoff und Sauerstoff Wasserstoff, Kohlenstoff, Silicium Wasserstoff, Kohlenstoff, Stickstoff IV. Polysaccharide dienen der Energiegewinnung im Körper dienen als Gerüststoff in Pflanzen lassen sich nicht zerlegen entstehen durch Synthese im Labor VI. Stärke besteht aus Kohlenstoff und Stickstoff ist die nur mäßig wasserlöslich ist eine einheitliche Substanz die nur aus Amylose besteht III. Glucose ist ein Monosaccharid ist eine Ketohexose hat die Summenformel: C6H12O6 wirkt oxidierend V. Saccharose ist kein Disaccharid auch unter dem Namen Traubenzucker bekannt durch Fehlingprobe nachweisbar lässt sich durch saure Hydrolyse in Glucose und Fructose spalten Amylose VIII. besteht aus bis zu 10000 -Glucose Einheiten besitzt ein verzweigtes Netz von Glucose-Einheiten lässt sich mit Hilfe von Lugolscher Lösung identifizieren ist die unlösliche Form der Stärke Die Tollensprobe verläuft positiv X. mit: Glucose, Saccharose, Maltose Glucose, Fructose, Maltose Glucose, Fructose, Cellulose Maltose, Saccharose, Lactose VII. IX. Fehlingprobe ist ein spezifischer Fructosenachweis testet auf oxidierbare Gruppen verläuft im sauren Milieu dient als Glucoseund Aldehydnachweis benötigt Kupfer(II)-Ionen die in Form von Kupfersulfat zugegeben werden Cellulose ist Gerüstsubstanz für Pflanzen ist ein Polysaccharid dient als Energielieferant im menschlichen Körper kann durch Säure hydrolysiert werden 422 Allgemeines zum Thema Kohlenhydrate Arbeitsblatt: Arbeitsblatt Allgemeines zum Thema Kohlenhydrate Anmerkungen: Das in Rätselform gestaltete Arbeitsblatt umfasst verschiedene Aspekte zum Thema Kohlenhydrate und könnte am Ende einer Unterrichtseinheit zum Thema Kohlenhydrate stehen und als kleiner Leistungscheck für die Schüler selbst dienen. 423 Allgemeines zum Thema Kohlenhydrate Arbeitsblatt Aufgabe: Löse das Rätsel, finde das Lösungswort! Lösungswort: __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 [1] Wie heißt die unlösliche Form der Stärke? [2] Wer bin ich? Ich wirke reduzierend, bin wasserlöslich, schmecke süßlich, diene als Energielieferant im Körper, bin ein indirektes Produkt der Photosynthese und zähle zur Klasse der Monosaccharide. Mit dem „GOD – Test“ kann man mich eindeutig nachweisen, während die Seliwanoff-Probe bei mir negativ ausfällt. Hast du mich erkannt? A) Dann zeichne mich in Fischer Projektion und B) trage meinen Namen in Zeile 2 ein. [3] Wie nennt man die Reaktion, bei der sich ein Kupfer-Tartrat-Komplex bildet? (zusammengeschrieben) Tipp: Die Lösung färbt sich bei positivem Nachweis von Dunkelblau zu Orange. [4] Wie nennt man die Lösung für den Stärkenachweis? (zusammengeschrieben) Tipp: 1. Die Lösung ist nach einem französischen Arzt benannt. 2. Die Lösung ist braun gefärbt. 3. Aus ö wird oe [5] Wer bin ich? Ich bin stadtbekannt, bin in jeder Küche zu finden, schmecke süß, bin ein weißer kristalliner Stoff, bin gut wasserlöslich und habe die Summenformel C12H22O11. Hast du mich erkannt? A) Dann sag mir, aus welchen Zuckern setze ich mich zusammen? B) Wie reagiere ich mit der Tollensreagenz? C) Mein Name ist die Lösung für Nr. 5. 424 Arbeitsblatt Allgemeines zum Thema Kohlenhydrate [6] Energiereiche Verbindungen, die dem Menschen als schneller Energielieferant dienen, werden in Pflanzen aus Kohlendioxid und Wasser synthetisiert. Dieser Prozess wird wie genannt? [7] Cellulose gehört zur Stoffgruppe der __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ [8] Wie heißt die im Folgenden abgebildete Form der Stärke? OH H .... H OH H OH 1 HO H OH H O 4 OH H OH H H OH OH 1 H O 4 OH H OH H OH OH H .... OH [9] Glucose, Mannose und Maltose sind Stoffe, die mit Tollens positiv reagieren und einen Silberspiegel bilden. Wie wirken sie auf die gelösten Silberkationen? (gesucht ist das Adjektiv)! [10] Maltose ist ein Disaccharid. Es besteht aus zwei -1,4-glycosidisch miteinander verbundenen Monosaccharidbausteinen Glucose A) Zeichne es in Haworth Projektion. B) Wie nennt man die Spaltungsreaktion, bei der die beiden Monosaccharide entstehen? Trage den Namen bei 10 ein. [11] Die in Haworth Projektion abgebildete Fructose ist eine sogenannte __ __ __ __ __ __ __ __ __ . HO OH O H Tipp: Der Name der Stoffklasse der Kohlenhydrate leitet sich vom cyclischen Molekül Furan ab. O HO OH H OH H [12] Zeichne Fructose in der Fischer Projektion. In dieser Darstellung kann man dann erkennen, dass es sich um eine __ __ __ __ __ __ handelt. 425 Lösungsblatt Allgemeines zu Kohlenhydraten Die Lösung ist jeweils blau dargestellt. Aufgabe: Löse das Rätsel, finde das Lösungswort! Lösungswort: Kohlenhydrat 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 A M Y L O P G L U F L U G S A C C H A R O P H O T O S P O L Y S A C A R H Y F U K E C E O S Y C M E D R E K O H L E N H Y D R A T T S L S I N E I N G P R O B E C H E L O E S U N G T A L U O N O H R O Z L O S E I S I Y S E S D E E S E E E R E N D E [1] Wie heißt die unlösliche Form der Stärke? Amylopektin [2] Wer bin ich? Glucose Ich wirke reduzierend, bin wasserlöslich, schmecke süßlich, diene als Energielieferant im Körper, bin ein indirektes Produkt der Photosynthese und zähle zur Klasse der Monosaccharide. Mit dem „GOD – Test“ kann man mich eindeutig nachweisen, während die Seliwanoffprobe bei mir negativ ausfällt. Hast du mich erkannt? A) Dann zeichne mich in Fischer Projektion und trage meinen Namen in Zeile 2 ein. +I H O H OH HO H H OH H OH CH 2OH D - Glucose [3] Wie nennt man die Reaktion bei der sich ein Kupfer-Tartrat-Komplex bildet? (zusammengeschrieben). Fehlingprobe 426 Lösungsblatt Allgemeines zu Kohlenhydraten [4] Wie nennt man die Lösung für den Stärkenachweis? Lugolschelösung [5] Wer bin ich? Saccharose Ich bin stadtbekannt, bin in jeder Küche zu finden, schmecke süß, bin ein weißer kristalliner Stoff, bin gut wasserlöslich und habe die Summenformel C12H22O11. Hast du mich erkannt? A) Dann sag mir aus welchen Zuckern setze ich mich zusammen? Glucose und Fructose B) Wie reagiere ich mit der Tollensreagenz? C) Mein Name ist die Lösung für Nr. 5: Die Tollensprobe verläuft negativ Saccharose [6] Energiereiche Verbindungen, die dem Menschen als schneller Energielieferant dienen, werden in Pflanzen aus Kohlendioxid und Wasser synthetisiert. Dieser Prozess wird wie genannt? Photosynthese [7] Cellulose gehört zur Stoffgruppe der Polysaccharide. [8] Wie heißt die im Folgenden abgebildete Form der Stärke? Amylose OH H .... H OH H OH HO H OH OH 1 H O 4 H OH H H OH OH OH 1 H O 4 H OH H OH OH H .... OH [9] Glucose, Mannose und Maltose sind Stoffe, die mit Tollens positiv reagieren und einen Silberspiegel bilden. Wie wirken sie auf die gelösten Silberkationen? Reduzierend, sie zählen daher zur Gruppe der reduzierenden Zucker 427 Lösungsblatt Allgemeines zu Kohlenhydraten [10] Maltose ist ein Disaccharid. Es besteht aus zwei -1,4-glycosidisch miteinander verbundenen Monosaccharidbausteinen Glucose A) Zeichne es in Haworth Projektion. Glucose - Rest Fructos e - Rest OH H H OH OH OH H HO 1 H H O 4 OH OH H OH H H HO OH -1-4 - verknüpft B) Wie nennt man die Spaltungsreaktion, bei der die beiden Monosaccharide entstehen? Trage den Namen für 10 ein. Hydrolyse [11] Die in Haworth Projektion abgebildete Fructose ist eine sogenannte Furanose. HO OH O H HO OH H OH H [12] A) Zeichne Fructose in der Fischer Projektion. In dieser Darstellung kann man dann erkennen dass es sich um eine Ketose handelt. 428 Frage und Antwort Spiel - Kohlenhydrate Spiel: Spiel Frage und Anwortspiel – Thema Kohlenhydrate Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt ist als Gruppenspiel ausgelegt. Das Spiel kann als spielerischer Abschluss des Themengebietes der Kohlenhydrate herangezogen werden. Auf diese Weise können die Schüler spielerisch in einem kleinen Wettkampf ihr Wissen testen. Die Regeln sowie die benötigten Materialien sind im folgende aufgelistet. Materialien: - Overheadprojektor, Folienstift, Stoppuhr Vorbereitungen durch den Lehrer: - Unterteile die Klasse in 4 Gruppen. - Jede Gruppe wählt einen Sprecher und sucht sich einen Namen aus. Außerdem werden die Gruppen durchnummeriert. - Stelle einen Overheadprojektor auf. Verdecke die Fragen des Quiz. - Die Namen der Gruppen sowie deren aktueller Punktestand werden an der Tafel festgehalten. - Jeder Schüler sollte ein leeres Blatt und einen Stift vor sich auf den Tisch legen. Spielregeln: - Ziel des Spiels: Punkte für die Beantwortung von Fragen zu erhalten. - Jede Gruppe hat ein Startguthaben von 100 Punkten. Diese Punktezahl gilt es durch richtiges Beantworten der Fragen zu vermehren. Bei falscher Antwort wird der angegebene Wert von den Punkten abgezogen. - Eine falsch beantwortete Frage wird an die nächste Gruppe weitergegeben. Diese kann die Frage beantworten oder aber passen. - Wird gepasst, geht die Frage automatisch an die nächste Gruppe weiter. - Passen alle Gruppen, wird die Antwort vom Lehrer gegeben und keiner erhält Punkte. Start des Spiels: - Die Gruppe mit dem jüngsten Spieler beginnt. - Sie wählt ein Feld aus. Dieses Feld wird mit einem wasserlöslichen Folienstift markiert und ist für den weiteren Spielverlauf nicht mehr wählbar. - Die Frage wird vorgelesen, anschließend hat die Gruppe 1 Minute Zeit, sich zu beraten. Die Antwort wird dann vom Gruppensprecher gegeben. - Ist die Frage richtig beantwortet, werden die Punkte hinzuaddiert und der Wert an der Tafel angepasst. Ist sie falsch beantwortet, werden die Punkte abgezogen. Spielverlauf: - Nach jeder Frage beginnt die nächste Gruppe. Nach Gruppe 1 ist also 2 dran, usw.. Wurde die Frage an eine andere Gruppe weitergegeben, beginnt trotzdem die der beginnenden Mannschaft benachbarte Gruppe. Ende des Spiels: - Sind alle Felder bearbeitet, gewinnt das Team mit den meisten Punkten. Ist die Schulstunde vorher beendet, gewinnt das Team mit den zu diesem Zeitpunkt meisten Punkten. 429 Spiel Frage und Antwort Spiel - Kohlenhydrate Kohlenhydrate 10 15 20 30 35 40 45 45 Aufgabe Nenne ein Monosaccharid! Aufgabe Wie wird Traubenzucker noch genannt? Aufgabe Wie lautet der Haushaltszuckers? wissenschaftliche Name des Aufgabe Nenne zwei Zuckernachweise! Aufgabe Aus welchen Monosaccharid-Bausteinen Saccharose aufgebaut? ist die Aufgabe Nenne eine Aldose (Aldohexose)! Aufgabe Nenne eine Ketose (Ketohexose)! Aufgabe Wie lautet die Summenformel von Fructose? 50 Aufgabe Nenne einen spezifischen Glucose - und einen spezifischen Fructosenachweis? (Dieser soll bei der Unterscheidung beider Stoffe eingesetzt werden können!) 60 Aufgabe Welche Chemikalien werden benötigt? 65 für die Tollensprobe Aufgabe Zeichne D-Glucose in der Fischerprojektion! 430 Frage und Antwort Spiel - Kohlenhydrate 65 70 70 80 85 90 100 Spiel Aufgabe Nenne die beiden in der Natur verbreitetsten Formen aus denen sich Stärke zusammensetzt! Aufgabe Nenne die beiden wichtigsten Polysaccharide! Aufgabe Nenne 3 Disaccharide! Aufgabe Welche Chemikalien werden für die Fehlingprobe benötigt? Aufgabe Zeichne D-Mannose in Fischerprojektion! Aufgabe Wie lautet die genaue Bezeichnung der glycosidischen Bindung der Saccharose? Aufgabe Zeichne D-Glucose in Haworthprojektion! 431 Lösungen Frage und Antwort Spiel - Kohlenhydrate Kohlenhydrate Aufgabe Nenne ein Monosaccharid! 10 Glucose, Fructose, Galactose, …. Aufgabe Wie wird Traubenzucker noch genannt? 15 20 Glucose Aufgabe Wie lautet der Haushaltszuckers? wissenschaftliche Name des Saccharose Aufgabe Nenne zwei Zuckernachweise! 30 35 Fehlingprobe, Tollensprobe, Seliwanoffprobe, GOD - Test Aufgabe Aus welchen Monosaccharid Saccharose aufgebaut? Bausteinen ist die Glucose, Fructose Aufgabe Nenne zwei Aldose (Aldohexosen)! 40 Glucose, Galactose, Mannose Aufgabe Nenne eine Ketose! 45 45 Fructose Aufgabe Wie lautet die Summenformel von Fructose? C6H12O 432 Lösungen Frage und Antwort Spiel - Kohlenhydrate 50 Aufgabe Nenne einen spezifischen Glucose- und einen spezifischen Fructosenachweis? (Dieser soll bei der Unterscheidung beider Stoffe eingesetzt werden können!) Seliwanoffprobe, GOD (Glucose-Oxidase) - Test 60 Aufgabe Welche Chemikalien werden benötigt? für Ammoniak, Silbernitrat, (Ammoniumsulfat) die Tollensprobe Kaliumhydroxid, Aufgabe Zeichne D-Glucose in Fischerprojektion! +I 65 H O H OH HO H H OH H OH CH 2OH 65 70 70 80 Aufgabe Nenne die beiden in der Natur verbreiteten Formen aus denen sich Stärke zusammensetzt! Amylose, Amylopektin Aufgabe Nenne die beiden wichtigsten Polysaccharide! Cellulose, Stärke. Aufgabe Nenne 3 Disaccharide! Maltose, Cellobiose, Saccharose, Lactose, … Aufgabe Welche Chemikalien werden für die Fehlingprobe benötigt? Kalium-Natrium-Tartrat (Salz der Weinsäure); Kupfersulfat, Natriumhydroxid 433 Lösungen Frage und Antwort Spiel - Kohlenhydrate Aufgabe Zeichne D-Mannose in Fischerprojektion! +I 85 H O HO H HO H H OH H OH CH 2OH 90 Aufgabe Wie lautet die genaue Bezeichnung der glycosidischen Bindung der Saccharose? α,β-1,2-glycosidische Bindung Aufgabe Zeichne D-Glucose in Haworthprojektion! OH O H HO 100 H H H H OH OH OH 434 Arbeitsblatt Aminosäuren - Nachweisreaktionen Arbeitsblätter zum Thema Aminosäuren Arbeitsblatt: Nachweisreaktionen Anmerkungen: In diesem Arbeitsblatt wird sich übergreifend mit den Nachweisreaktionen von Aminosäuren und Proteinen beschäftigt. Es dient der vertiefenden Auseinandersetzung mit diesem Themengebiet. Es könnte als Abschluss einer Unterrichtseinheit über verschiedene Nachweisreaktionen herangezogen werden. 435 Arbeitsblatt Aminosäuren - Nachweisreaktionen Aufgabe: Beantworte die folgenden Fragen! I. Ninhydrin dient als Nachweisreagenz für? _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ II. Ninhydrin ist das Hydrat des Indian-1,2,3-trions. Zeichne ausgehend vom des Indian1,2,3-trion die Strukturformel von Ninhydrin. Vervollständige hierfür die folgende Gleichung: O + H2O O O Ninhydrin Indan-1,2,3-trion III. Ninhydrin ist eine der wenigen Stoffe, die der Erlenmeyerregel widersprechen. Was besagt diese Regel? Gib ein Beispiel für ein Stoffpaar, das der Erlenmeyerregel folgt! _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ Beispiel: IV. Das folgende Oligopeptid kann durch welche andere Reaktion (außer der Ninhydrinprobe) nachgewiesen werden? Begründe deine Antwort stichwortartig! O R O R O R . NH NH HO NH NH R O NH R O NH2 R O _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ 436 Arbeitsblatt Aminosäuren - Nachweisreaktionen V. Erkläre kurz den Unterschied zwischen Di-, Oligo-, und Polypeptid! _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ VI. Für die Xanthoproteinreaktion wird welche nicht ganz ungefährliche Chemikalie benötigt? ___________________________ VII. Vervollständige die folgende Reaktion! Um welche Art von Reaktion handelt es sich bei der Nitrierung? Wie wird die Zwischenstufe der Reaktion genannt? [ ] R - H+ + O + N O H Reaktionsart: ________________ Name der Reaktion: _______________________ Tipp: Erinnere dich an die Aromatenchemie. Die Reaktion tritt auch zu Tage, wenn du unvorsichtig mit einer bestimmten konzentrierten Säure arbeitest und Spritzer auf die Haut bekommst. VIII. Nenne eine Aminosäure die mit Hilfe der in VII. dargestellten Reaktion nachgewiesen werden kann. Zeichne sie in der Lewisformel! Was müssen diese Aminosäuren besitzen, um wie in Aufgabe VII. nitriert zu werden? _____________________________________________________________________ _____________________________________________________________________ 437 Lösungsblatt Aminosäuren - Nachweisreaktionen Aufgabe: Beantworte die Folgenden Fragen! I. Ninhydrin dient als Nachweisreagenz für? Dient als Nachweis für primäre Aminosäuren. Der Nachweis spricht aber auch auf primäre Amine jeglicher Art an. Ninhydrin bildet mit den Aminosäuren einen intensiven Farbkomplex. So können mit diesem Nachweis Beispielsweise Proteine, Polypeptide oder die 20 - proteinogenen Aminosäuren selbst nachgewiesen werden. II. Ninhydrin ist das Hydrat des Indian-1,2,3-trions. Zeichne ausgehend vom des Indian1,2,3-trion die Strukturformel von Ninhydrin. Vervollständige hierfür die folgende Gleichung: O O + H2O OH O OH O O Ninhydrin (farblos) Indan-1,2,3-trion III. Ninhydrin ist eine der wenigen Stoffe die der Erlenmeyerregel widersprechen. Was besagt diese Regel? Gib ein Beispiel für ein Stoffpaar, das der Erlenmeyerregel folgt! Die Erlenmeyerregel besagt, dass Verbindungen mit zwei Hydroxygruppen an einem Kohlenstoffatom instabil sind.383 Anders ist es bei Ninhydrin; dieses besitzt in -Stellung jeweils elektronenziehende Gruppen - so dass es nicht, wie Beispielsweise das Hydrat des Formaldehyds nur in wässrigen Lösungen stabil ist sondern sich sogar als dieses isolieren lässt. In wässriger Lösung liegt jedoch ein großer Teil auf der Seite des Aldehydhydrates (Bsp. Formaldehyd). Anders sieht dies beispielsweise bei der wässrigen Lösung von Aceton aus (Vgl. fachliche Auswertung Ninhydrinnachweis). O HO OH H H + H 2O H H Formaldehyd Beispiel: 383 0,1 % Aldehydhydrat (Methandiol) 99,9 % Vgl. Asselborn et al., S.245. 438 Lösungsblatt Aminosäuren - Nachweisreaktionen IV. Das folgende Oligopeptid kann durch welche andere Reaktion (außer der Ninhydrinprobe) nachgewiesen werden? Begründe deine Antwort stichwortartig! O R O R O R . NH NH HO NH NH R NH O R NH2 O R O Allgemein kann ein solches Oligopeptid durch die Biuretreaktion nachgewiesen werden. In dieser Reaktion tritt das Peptid als zweizähniger Chelatligand auf. Dabei ist eine intensive blauviolette Färbung zu beobachten. . . . NH . O OH 2 O NH . R R R . N O O NH Cu NH . . O N . . OH 2 . . R + 6 H2O O Besitzt das Oligopeptid allerdings aromatische Seitenketten, könnte auch die Xanthoproteinreaktion als Nachweis verwendet werden. Hierfür müsste R = ein aromatisches System sein. V. Erkläre kurz den Unterschied zwischen Di-, Oligo-, und Polypeptid. Dipeptide bestehen aus 2 Aminosäuren, die über eine Peptidbindung verbunden sind. Oligopeptide bestehen aus 2 bis 9 Aminosäuren, die über Peptidbindungen miteinander verbunden sind. Polypeptide bestehen aus 10 bis 100 Aminosäuren, die über Peptidbindungen miteinander verbunden sind. VI. Für die Xanthoproteinreaktion wird welche nicht ganz ungefährliche Chemikalie benötigt? Konzentrierte Salpetersäure 439 Lösungsblatt Aminosäuren - Nachweisreaktionen VII. Vervollständige die folgende Reaktion! Um welche Art von Reaktion handelt es sich bei der Nitrierung? Wie wird die Zwischenstufe der Reaktion genannt? [ ] R H N O O R R R R - H+ + O + N O H N O H N O H O O O N O R H N O O Wheland - Komplex (Zwischenstufe) Reaktionsart: Elektrophile aromatische Substitution SE Ar (Zweitsubstitution) Name der Reaktion: Xanthoproteinreaktion VIII. Nenne eine Aminosäure, die mit Hilfe der in VII. dargestellten Reaktion nachgewiesen werden kann. Zeichne sie in Lewisformel! Was müssen diese Aminosäuren besitzen um wie in Aufgabe VII. nitriert zu werden? Die Aminosäuren müssen einen aromatischen Rest besitzen, an der die eigentliche elektrophile aromatische Substitution stattfinden kann. O O H2N H2N OH OH L - Tyros i n (Tyr) O OH H2N OH N H L - Tryptophan(Try) L - Phenyl al ani n(Phe) 440 Arbeitsblatt Aminosäuren - Peptidbindung Arbeitsblatt: Peptidbindung Anmerkung: Das folgende Arbeitsblatt beschäftigt sich mit der Peptidbindung. Es knüpft am Punkt der Aminosäuren an und schließt mit der Bildung eines Tripeptides ab. 441 Arbeitsblatt Aminosäuren - Peptidbindung Aufgabe: Beantworte die folgenden Fragen! I. Die einfachst gebaute Aminosäure ist das Glycin. Zeichne die Strukturformel von Glycin in den nebenstehenden Kasten, kennzeichne in der Strukturformel die funktionellen Gruppen und benenne sie! II. Zeichne in den nebenstehenden Kasten das allgemeine Bauprinzip der Aminosäuren. Kennzeichne auch hier die funktionellen Gruppen! Wodurch unterscheiden sich die verschiedenen Aminosäuren? Beschreibe stichwortartig! ____________________________________________ ____________________________________________ ____________________________________________ ____________________________________________ III. Die unten stehende Grafik zeigt die Strukturformeln von drei Aminosäuremolekülen mit Symbolen für die Reste. a. Zeichne in die anhängenden Symbole die Restgruppen (R) des jeweiligen Aminosäuremoleküls! b. Durch welche Reaktion können diese zu einem Tripeptid verknüpft werden? Trage deine Antwort in den grauen Kasten ein! c. Welche Produkte bilden sind bei dieser Reaktion? Trage deine Antwort in den grauen Kasten ein! Zeichne die Strukturformel für das Tripeptid. Welche Moleküle entstehen noch? Glycin H Alanin H H O N C C H OH H Cystein H H O N C C OH H H H O N C C H OH H a) b) Tripeptid + c) + 442 Lösungsblatt Aminosäuren - Peptidbindung Aufgabe: Beantworte die folgenden Fragen! Glycin Die einfachst gebaute Aminosäure ist das Glycin. Zeichne die Strukturformel von Glycin in den nebenstehenden Kasten, kennzeichne in der Strukturformel die funktionellen Gruppen und benenne sie! H H N O C H C OH H Aminogruppe Carboxyl gruppe I. Zeichne in den nebenstehenden Kasten das allgemeine Bauprinzip der Aminosäuren. Kennzeichne auch hier die funktionellen Gruppen! Wodurch unterscheiden sich die verschiedenen Aminosäuren? Beschreibe stichwortartig! Die Aminogruppe ist an das der Carboxylgruppe H H O benachbarte Kohlenstoffatom gebunden. Aminosäuremoleküle unterscheiden sich durch die am zweiten N C C Kohlenstoffatom gebundenen Reste. H OH R II. Die unten stehende Grafik zeigt die Strukturformeln von drei Aminosäuremolekülen mit Symbolen für die Reste. a. Zeichne in die anhängenden Symbole die Restgruppen (R) des jeweiligen Aminosäuremoleküls! b. Durch welche Reaktion können diese zu einem Tripeptid verknüpft werden? Trage deine Antwort in den grauen Kasten ein! c. Welche Produkte bilden sind bei dieser Reaktion? Trage deine Antwort in den grauen Kasten ein! Zeichne die Strukturformel für das Tripeptid. Welche Moleküle entstehen noch? Glycin H Alanin H H O N C C H OH Cystein H H O N C C H OH H H H O N C C CH 3 CH 2SH a) b) OH Kondensationsreaktion Tripeptid + Wasser c) H H H O H H O H H O N C C N C C N C C H CH 3 OH + 2 H2O CH 2SH 443 Arbeitsblatt Bindungsarten in Proteinen Arbeitsblatt: Bindungsarten in Proteinen Anmerkung: Das folgende Arbeitsblatt beschäftigt sich mit Bindungsarten, die stabilisierend auf die Struktur von Proteine wirken. Es knüpft an den Versuch zur Oxidation von Cystein zu Cystin an. Als Alltagsbezug wird die stabilisierende Wirkung der verschiedenen Bindungsarten am Beispiel der Haare diskutiert. 444 Arbeitsblatt Bindungsarten in Proteinen Aufgabe: Beantworte die Folgenden Fragen! I. Die Peptidkette des Haares werden durch verschiedene Bindungsarten miteinander verbunden und dadurch stabilisiert. Zwei Peptidketten sind in der folgenden Abbildung dargestellt. Gib die jeweilige Bindungsart der dargestellten Bindung zwischen den Peptidketten an und trage sie in das nebenstehende Kästchen ein: Bindungstyp: . CH2 S CH2 S H . O + CH 2 N H CH 2 CH3 H3C CH 2 CH 2 . . O H . . CH 2 . H O . H N . Peptidkette II. Die folgende Redoxreaktion stellt die Wirkung einer Fixierlösung auf die Proteine der Haare dar. Sie dient dazu, die Struktur der Dauerwelle dauerhaft zu fixieren. a) Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung! Gib jeweils die Oxidationszahlen der an der Redoxreaktion beteiligten Atome an! H R O N O NH H HO H 2C S H + H2O 2 S H H 2C HO H NH N H + 2 H 2O O O R b) Wie heißt die Wirksubstanz im Fixiermittel? Gib die wichtigen Oxidationszahlen der Verbindung an! 445 Lösungsblatt Bindungsarten in Proteinen Aufgabe: Beantworte die Folgenden Fragen! I. Die Peptidketten des Haares werden durch verschiedene Bindungsarten miteinander verbunden und dadurch stabilisiert. Zwei Peptidketten sind in der folgenden Abbildungen dargestellt. Gib die jeweilige Bindungsart der dargestellten Bindung zwischen den Peptidketten an und trage sie in das Nebenstehende Kästchen ein: Bindungstyp: . CH2 S CH2 S H . CH 2 O + N H H . CH 2 Disulfidbrücke . CH 2 CH3 H3C CH 2 Ionenbindung . . O Van - der - Waals - Wechselwirkungen CH 2 . H O . H N . Wasserstoffbrückenbinungen Peptidkette II. Die folgende Redoxreaktion stellt die Wirkung einer Fixierlösung auf die Proteine der Haare dar. Sie dient dazu, die Struktur der Dauerwelle dauerhaft zu fixieren. a) Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung! Gib jeweils die Oxidationszahlen der an der Redoxreaktion beteiligten Atome an! H R O N NH H -II S H H HO -II -I + H2O 2 H S -I Wasserstoffperoxid NH N O H2C O R + 2 H 2O S -I HO H O NH H 2C H2C H R O N HO H 2C -II S H O HO H NH N H O O R b) Wie heißt die Wirksubstanz im Fixiermittel? Gib die wichtigen Oxidationszahlen der Verbindung an! Zu finden II a. 446 Arbeitsblatt Denaturierung von Proteinen Arbeitsblatt: Denaturierung von Proteinen Anmerkungen: Im folgenden Arbeitsblatt soll sich dem lehrplanrelevanten Punkt der Denaturierung von Proteinen angenommen werden. Das Arbeitsblatt knüpft an die Versuche zur Denaturierung von Proteinen an. 447 Arbeitsblatt Denaturierung von Proteinen Aufgabe 1: Beantworte die folgenden Fragen! I. Erkläre stichwortartig worum es sich bei einem Protein handelt! ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ II. Was versteht man unter der Primärstruktur eines Proteins? Gib ein Beispiel für diese! ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ III. Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung, benenne die Edukte! H OH O + N + N H H O OH H H2C CH3 OH Edukte + IV. Zu welcher Verbindungsklasse Kondensationsreaktion? gehört das sich bildende Produkt der ________________________________________ V. Welche grundsätzlichen räumlichen Merkmale sind in der Sekundärsturktur bekannt? Tipp: Erkannt und bestimmt wurden sie durch Pauling und Corey in den 30er Jahren. Es handelt sich um 2 mögliche räumliche Anordnungen. _____________________________ _____________________________ 448 Arbeitsblatt Denaturierung von Proteinen VI. Welche Art von Wechselwirkungen / Bindungsarten beeinflussen stark die Form und die Stabilität der Tertiärstruktur von Proteinen? _____________________________ _____________________________ _____________________________ _____________________________ Aufgabe 2: Beantworte die folgenden Fragen in dein Heft! I. Was bedeutet Denaturierung von Proteinen? Beschreibe stichwortartig! II. Nenne 2 Beispiele, mit deren Hilfe Proteine denaturiert werden! III. Nenne ein Alltagsbeispiel für eine Denaturierung! Tipp: Der Gang in die Küche und die Überlegung an die sich dort abspielenden Reaktionen könnten dir helfen. IV. Welche Folgen könnte die Denaturierung von Proteinen im Körper haben? Erkundige dich hierfür in deinem Lehrbuch, dem Internet oder in der Schulbibliothek über Funktionen und Aufgaben von Proteinen im Organismus! 449 Lösungsblatt Denaturierung von Proteinen Aufgabe 1: Beantworte die folgenden Fragen! I. Erkläre stichwortartig worum es sich bei einem Protein handelt! Proteine - auch Eiweißstoffe genannt - sind makromolekulare Naturstoffe, die aus über 100 Aminosäure-Bausteinen aufgebaut sind. Diese Aminosäure-Bausteine sind über Peptidbindungen miteinander verbunden. II. Was versteht man unter der Primärstruktur eines Proteins? Gib ein Beispiel für diese! Die Primärstruktur beschreibt die Aminosäuresequenz (die Abfolge) der einzelnen Aminosäuren in Proteinen. Sie beschreibt nur diese und macht keine Aussage über den räumlichen Aufbau des Proteins. III. Vervollständige die folgende Reaktionsgleichung, benenne die Edukte! H OH H OH H H 2C CH3 CH3 H O N + N H H O O OH Alanin (Ala) + + N N H O OH CH2 OH Tyrosin (Tyr) IV. Zu welcher Verbindungsklasse gehört das sich Kondensationsreaktion? Zur Gruppe der Peptide. Es handelt sich um ein Dipeptid. V. Welche grundsätzlichen räumlichen Merkmale sind in der Sekundärsturktur bekannt? Als Grundstrukturen in Proteinen gibt es die -Helix (in dieser ist die Peptidkette schraubenartig gewunden) sowie die -Faltblatt - Struktur, in der eine zickzackförmig gefaltete Fläche zu beobachten ist. VI. Welche Art von Wechselwirkungen / Bindungsarten beeinflussen stark die Form und die Stabilität der Tertiärstruktur von Proteinen? Wasserstoffbrückenbindungen Van-der-WaalsWechselwirkungen Ionenbindungen H2O bildende Produkt der Disulfidbrücken 450 Denaturierung von Proteinen Lösungsblatt Aufgabe 2: Beantworte die folgenden Fragen in dein Heft! I. Was bedeutet Denaturierung von Proteinen? Beschreibe Stichwortartig! Denaturierung ist die meist irreversible Veränderung der Tertiär- und Quartärstruktur von Proteinen. Diese Strukturen sind nur unter physiologischen Bedingungen sehr stabil, Veränderung dieser Bedingungen kann zur irreversiblen Veränderung der Struktur und damit auch der Funktionsweise der Proteine führen. II. Nenne 2 Beispiele mit deren Hilfe Proteine denaturiert werden! Proteine können durch Säuren, Laugen, Schwermetallionen Wärmeeinwirkung denaturiert werden. oder starke III. Nenne ein Alltagsbeispiel für eine Denaturierung! Die Bildung des festen Eiweißes beim Kochen des Frühstückseis oder dem Braten des Spiegeleis ist ein Beispiel für die Denaturierung von Proteinen durch Wärmeeinwirkung über 60 °C. IV. Welche Folgen könnte die Denaturierung von Proteinen im Körper haben? Erkundige dich hierfür in deinem Lehrbuch, dem Internet oder in der Schulbibliothek über Funktionen und Aufgaben von Proteinen im Organismus. Proteine können im Organismus sehr unterschiedliche Funktionen haben, wie zum Beispiel: Sie dienen der als Antikörper der Immunabwehr des Körpers; sie haben Transportfunktionen (das Hämoglobin transportiert den Sauerstoff transportiert im Körper) sie steuern als Hormone Vorgänge im Körper, besitzen Stütz- und Strukturfunktionen, so zum Beispiel durch das Kollagen; sie dienen der Muskelkontraktion und damit der Fortbewegung (hier wird dieses durch die Veränderlichkeit der Aktin- und Myosinfilamente erreicht). Dies ist nur ein kleiner Bereich der Aufgaben von Proteinen im Körper. Doch allein vor diesem Hintergrund wird deutlich, welch wichtige Funktion sie im menschlichen Organismus haben. Das Erfüllen der verschiedensten Aufgaben im Körper hängt eng mit der Struktur dieser Proteine zusammen, so dass wird deutlich, dass eine irreversible Veränderung dieser den Verlust der Funktionsweise der Proteine zur Folge haben kann. Dies ist unter anderem ein Grund für die Toxizität von Schwermetallionen. 451 Arbeitsblatt Löslichkeit von Tyrosin Arbeitsblatt: Löslichkeit von Tyrosin Anmerkungen: In diesem Arbeitsblatt geht es um die Löslichkeit von Aminosäuren am Beispiel von Tyrosin. Es knüpft damit an den Versuch zur Löslichkeit von Tyrosin an. 452 Arbeitsblatt Löslichkeit von Tyrosin Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! I. Zeichne L-Tyrosin in der Lewisschreibweise! Um was für eine Art von Aminosäure handelt es sich? ____________________________________ ____________________________________ ____________________________________ ____________________________________ ____________________________________ L - Tyrosin II. Beschreibe kurz den durchgeführten Versuch zur Löslichkeit von Tyrosin! ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ ________________________________________________________________________ III. Wie nennt man Stoffe - die wie Wasser - sowohl als Säure als auch als auch als Base reagieren können? IV. Tyrosin ist eine proteinogene Aminosäure, dass heißt, Sie ist eine der -Aminosäuren, die die Bausteine der Proteine in Lebewesen sind. Wie viele proteinogene Aminosäuren gibt es insgesamt? V. Wie wird der pH – Wert bezeichnet, an dem die Zwitterionenkonzentration am höchsten ist? Markiere diese Form im Diagramm in Aufgabe VII. 453 Arbeitsblatt Löslichkeit von Tyrosin VI. Wie ist die Löslichkeit an diesem Punkt (Teilaufgabe V.)? Tipp: Denke an den durchgeführten Versuch! V. Vervollständige die folgende Abbildung, ordne den verschiedenen pH – Werten die entsprechende Lewisformel zu! 50 % L - Tyros i n (Tyr) O H 3N 50 % 100 % OH - H+ - H+ + H+ + H+ 100 % - H+ - H+ + H+ + H+ 100 % OH 50 % O H 3N OH 50 % OH 14 pH = 5,67 12 pH = 9,11 = pKS2 pH = 10,07 10 8 pH<1 pH = 2,2 = pKS1 6 4 2 0 Zugabe von Salzsäure Wasser Zugabe von Natronlauge 454 Lösungsblatt Löslichkeit von Tyrosin Aufgabe: Bearbeite die folgenden Aufgaben! I. Zeichne L-Tyrosin in Lewisschreibweise! Um was für eine Art von Aminosäure handelt es sich? O Aufgrund der polaren Seitengruppe handelt es sich um eine polare Aminosäure. Da sie keine weitere Carboxylgruppe (COOH) trägt, zählt sie nicht zu den sauren Aminosäuren. Auch trägt sie keine weitere Aminogruppe, so dass sie auch nicht zu den basischen Aminosäuren gezählt werden kann. H 3N O OH L-Tyrosin II. Beschreibe kurz den durchgeführten Versuch zur Löslichkeit von Tyrosin. 0,15 g Tyrosin werden versucht in 100 mL dest. Wasser zu lösen. Es entsteht eine trübe Lösung; nicht alles Tyrosin löst sich. (GRUND: Die Löslichkeit von Tyrosin in Wasser ist sehr gering, lediglich 0,36 g lösen sich in 1 Liter Wasser). Durch Zugabe von Natronlauge wird die Lösung klar, alles Tyrosin löst sich. Durch Zugabe von Salzsäure fällt am isoelektrischen Punkt Tyrosin erneut aus, nach weiterer Zugabe von Salzsäure löst es sich wieder. III. Wie nennt man Stoffe - die wie Wasser - sowohl als Säure als auch als Base reagieren können? Stoffe die - wie Wasser - sowohl als Säure als auch als Base reagieren können, nennt man Ampholyte. Auch Aminosäuren zeigen auf Grund ihrer Carboxylund Aminogruppe amphoteres Verhalten. IV. Tyrosin ist eine proteinogene Aminosäure, dass heißt, Sie ist einer der Aminosäuren, die Bausteine der Proteine in Lebewesen sind. Wie viele proteinogene Aminosäuren gibt es insgesamt? Es sind 20 proteinogene Aminosäuren bekannt. V. Wie wird der pH – Wert bezeichnet, an dem die Zwitterionenkonzentration am höchsten ist? Markiere diese Form im Diagramm in Aufgabe VII. Den pH-Wert, an dem die Konzentration der Zwitterionen am höchsten ist, bezeichnet man als isoelektrischen Punkt. VI. Wie ist die Löslichkeit an diesem Punkt (Teilaufgabe V.)? Die Löslichkeit der Aminosäure ist am isoelektrischen Punkt in Wasser am geringsten. 455 Lösungsblatt Löslichkeit von Tyrosin VII. Vervollständige die folgende Abbildung, ordne den verschiedenen pH – Werten die entsprechende Lewisformel zu! L - Tyros i n (Tyr) O H 3N H2N O O O O O H 3N O 50 % OH OH - H+ + +H 100 % OH H 3N O + -H + + H 100 % +H OH OH OH - H+ + O H2N 50 % H 3N 50 % H2N -H + H+ O O O O Isoelektrischer Punkt pH = 5,67 12 100 % 50 % OH 14 O + pH = 9,11 = pKS2 pH = 10,07 10 8 pH<1 pH = 2,2 = pKS1 6 4 2 0 Zugabe von Salzsäure Wasser Zugabe von Natronlauge 456 Arbeitsblatt Oxidation von Cystein Arbeitsblatt: Oxidation von Cystein Anmerkungen: Das folgende Arbeitsblatt dient der vertiefenden Auseinandersetzung mit dem Versuch ‚Oxidation von Cystein‘. Es versucht an diesen Versuch anzuknüpfen und einen Alltagsbezug dieses Themengebietes herzustellen. 457 Arbeitsblatt Oxidation von Cystein Aufgabe 1: Beantworte die folgenden Fragen in dein Heft! I. Zeichne die Aminosäure Cystein in Lewisschreibweise? II. Um welche Art von Aminosäure handelt es sich? Tipp: Reagiert sie in wässriger Lösung sauer oder basisch? Zählt sie zu den polaren oder zu den unpolaren Aminosäuren? Die Seitenkette hilft dir bei der Einteilung. III. Beschreibe die ablaufende Redoxreaktion zwischen Cystein und Eisen(III). Tipp: Es reagieren 2 Cysteinmoleküle mit 2 Eisen(III)-Ionen. Cystein wird dabei Oxidiert. Eine Disulfidbrücke wird gebildet. IV. Wie lautet der Name der sich bildenden Verbindung? V. Wo spielen diese Disulfidbrücken in der Natur eine wichtige Rolle? Nenne ein Beispiel! Aufgabe 2: (Für die schnellen) Beantworte die folgenden Fragen in dein Heft! I. Beim Herstellen einer konzentrierten Eisen(III)-Chlorid Lösung fällt auf, dass sich der pH – Papierstreifen rötlich färbt. Was bedeutet das, und wie kannst du das erklären? Tipp: In wässriger Lösung bildet sich zunächst folgender Hexaquakomplex: 3+ OH 2 H2O OH 2 Fe H2O OH 2 OH 2 Formuliere zunächst die Bildungsreaktion des abgebildeten Komplexes, und erkläre anschließend das beobachtete Phänomen mit Hilfe einer Reaktionsgleichung. II. Mit Hilfe welcher Theorie lässt sich die in Aufgabe 2 - I. beschriebene Reaktion erklären? III. Bei Zugabe von Eisen(III)-Chlorid zu einer basischen cysteinhaltigen Lösung tritt eine intensive violette Färbung auf, wie ist diese zu erklären? 458 Lösungsblatt Oxidation von Cystein Aufgabe 1: Beantworte die folgenden Fragen in dein Heft! I. Zeichne die Aminosäure L-Cystein in Lewisschreibweise? O H2N OH SH II. Um welche Art von Aminosäure handelt es sich? Cystein wird aufgrund ihrer polaren Seitenkette zu den polaren Aminosäuren gezählt.384 Da sie auch keine weitere Carboxygruppe (COOH) [veraltet: Carboxylgruppe] trägt, zählt sie nicht zu den sauren Aminosäuren. Auch trägt sie keine weitere Aminogruppe, so dass sie auch nicht zu den basischen Aminosäuren gezählt werden kann.385 III. Beschreibe die ablaufende Redoxreaktion zwischen Cystein und Eisen(III). Oxidation NH2 -II 2 HS CH 2 CH NH2 COO - (aq) OOC CH CH 2 -I -I S S NH2 CH 2 CH COO - + +2H (aq) - (aq) +2e Cystin Cystein (Cys) Reduktion +II +III 2 Fe 3+ - (aq) 2 Fe 2+ +2e (aq) Die mögliche Rückreaktion, die während des Versuchs auftritt, wird im Protokoll zum Versuch Oxidation von Cystein beschrieben. IV. Wie lautet der Name der sich bildenden Verbindung? NH2 - OOC CH CH2 -I -I S S NH2 CH2 CH COO (aq) Cystin 384 385 Vgl. Asselborn et al., S.373. Vgl. Asselborn et al., S.372. 459 Lösungsblatt Oxidation von Cystein V. Wo spielen diese Disulfidbrücken in der Natur eine wichtige Rolle? Nenne ein Beispiel! Sie dienen der Stabilisierung der Polypeptidketten in Proteinen und sind mit formgebend. Daher sind sie maßgeblich an der Ausbildung der Tertiär- und Quartärstruktur beteiligt. Ein bekanntes Protein mit einem hohen Anteil an Cystein, in welchem die Disulfidbrücken stark zur Form und Stabilisierung beitragen, ist das Kreatin. Dieses findet sich in Horn, Borsten und Haaren. Mit Hilfe der Disulfidbrücken kann auch die ‚Dauerwelle‘ erklärt werden, (Vgl. Protokoll Oxidation von Cystein). Aufgabe 2: (Für die schnellen) Beantworte die folgenden Fragen in dein Heft! I. Beim Herstellen einer konzentrierten Eisen(III)-Chlorid Lösung fällt auf, dass sich der pH – Papierstreifen rötlich färbt. Was bedeutet das, und wie kannst du das erklären? Eisen(III) ist eine starke Kationensäure und reagiert daher in wässriger Lösung sauer. Dies erklärt die rötliche Färbung des pH – Papierstreifens. Die Reaktion kann dabei wie folgt beschrieben werden: 3+ 2+ OH2 OH2 H2O H2O OH2 Fe H2O O + H + H2O OH2 Fe H2O + H3O + OH H OH2 [Fe(H2O)6] II. OH2 3+ + H2O [Fe(H2O)5OH] 2+ (aq) + H3O + Mit Hilfe welcher Theorie lässt sich diese Reaktion erklären? Der Reaktion geht eine Komplexbildungsreaktion voraus, diese kann mit Hilfe einer Lewis-Säure-Base-Reaktion beschrieben werden. Die anschließende Deprotonierung des Komplexes geht auf den Einfluss der starken Kationensäure Eisen(III) zurück. Eisen tritt in dem Komplex als relativ kleines, hoch geladenes Zentralion auf. Dies bewirkt, dass die Wasserliganden im Komplex stark polarisiert werden, was zu einer Schwächung der O-H Bindung führt. 460 Lösungsblatt Oxidation von Cystein III. Bei Zugabe von Eisen(III)Chlorid zu einer basischen Cysteinhaltigen Lösung tritt eine intensive violette Färbung auf, wie ist diese zu erklären? Die Farbigkeit ist auf die Bildung eines Eisen(III)-Cysteinkomplexes zurückzuführen. Bei der Bildung handelt es sich um eine Ligandenaustauschreaktion. Cystein kann in basischem Milieu als 3 zähniger Ligand auftreten. O H2N HC O - CH2 SH Die Komplexbildungsreaktion des Eisen(III)-Cysteinkomplexes, kann dabei wir folgt beschrieben werden: H 3+ C 3+ OH 2 H2O H2C OH 2 Fe H2O +2 OH 2 OH 2 O H2N H2C H2N SH O - SH + 6 H 2O Fe O O O C C SH NH2 O CH 2 C H 461 Abschlussrätsel: Aminosäuren – Proteine Arbeitsblatt: Arbeitsblatt Abschlussrätsel – Proteine Anmerkungen: Dieses Arbeitsblatt, das in Rätselform gestaltet wurde, umfasst verschiedene Aspekte zum Thema „Aminosäuren und Proteine“ und könnte am Ende einer Einheit zu diesem Thema stehen. Es könnte als kleiner Leistungscheck für die Schüler selbst angesehen werden. 462 Abschlussrätsel: Aminosäuren – Proteine Arbeitsblatt Aufgabe: Löse das Rätsel, finde das Lösungswort! Beantworte dafür einfach die folgenden 13 Fragen und trage die jeweilige Antwort in die zugehörige Zeile ein! 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 [1] Wie nennt man die solideste Bindungsart, die der Stabilisierung von Tertiärstrukturen in Proteine dient? Tipp: Sie bildet sich Beispielsweise bei der Oxidation zweier Cysteinmoleküle. [2] Wie heißt das Protein, das Hauptbestandteil unserer Haare ist? [3] Wie nennt man die Abfolge der Aminosäuren in Proteinen? Gib ein Beispiel für eine solche Abfolge von Aminosäuren in gängiger Weise an. Tipp: Es geht um die Primärstruktur der Proteine. aus ä, ü, und ö wird ae, ue und oe. [4] Erhitzt man Proteine mit Salzsäure, werden die Makromoleküle hydrolysiert. Man hat so herausgefunden, dass sie sich aus lediglich 20 Aminosäuren zusammensetzten. Wie nennt man diese 20 Aminosäuren, die Bausteine der Proteine in Lebewesen sind? Trage den Namen in Zeile 4 ein! Es handelt sich dabei um __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ Aminosäuren. [5] Die irreversible Zerstörung der Tertiär- und Quartärstrukturen von Proteinen durch Hitze, Säuren, Laugen oder Schwermetallionen wird wie genannt? [6] Wie heißt die folgende Aminosäure? Trage den Namen in Zeile 6 ein! O H2N Zu welcher Gruppe von Aminosäuren gehört sie? OH O OH 463 Arbeitsblatt Abschlussrätsel: Aminosäuren – Proteine [7] Wie wird die Nachweisreaktion genannt, mit der man die im Schweiß enthaltenen Aminosäuren / Proteine durch einen blau -violetten Farbstoff nachweisen kann? [8] Wie heißt das zum Sauerstofftransport im Körper verwendete Protein? Tipp: - Man bezeichnet es auch als den eisenhaltigen roten Blutfarbstoff in den roten Blutkörperchen. - aus ä, ü, und ö wird ae, ue, oe. [9] Mit welchem Fachausdruck wird das Verhalten von Substanzen beschrieben, die sowohl als Broenstedsäure, wie auch als Broenstedbase reagieren können? Dieses Verhalten ist auch bei Aminosäuren beobachtbar (gesucht ist das Nomen)! [10] Aminosäuren besitzen ein C - und ein N-Terminales Ende. Wie wird die Bindung, die sich aus der Kondensationsreaktion der Amino-(N-Terminal) mit der Carboxylgruppe (C-Terminal) bildet, genannt? Dargestellt ist sie in der folgenden Abbildung (Die Einzahl ist einzutragen)! H 1 O H H R O O N N O N OH + H 2O NH OH H 1 H H R HO R R [11] Die schraubenartige Anordnung der Aminosäuren in der Sekundärstruktur wird als __ __ __ __ __ __ __ bezeichnet! [12] Wie heißt die folgende Aminosäure? Trage den Namen in Zeile 12 ein! O H2N Tipp: Sie ist die kleinste und einfachste der eiweißbildenden Aminosäuren. Sie ist als einzige dieser nicht chiral. OH [13] Wie wird die Nachweisreaktion für Proteine genannt, die sich durch eine intensiv-violette Färbung durch die Bildung eines Kupfer(II)komplexes anzeigt? Dieser Kupfer-Eiweißkomplex ist in der folgenden Abbildung dargestellt! . . . NH . O OH 2 O NH . R R R . N O O NH Cu NH . . O N . . OH 2 . . R + 6 H2O O Lösungswort: __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ __ 464 Lösungsblatt Abschlussrätsel: Aminosäuren – Proteine Aufgabe: Löse das Rätsel, finde das Lösungswort! Beantworte dafür einfach die folgenden 13 Fragen und trage jeweils die Antwort in die zugehörige Zeile ein! 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 D I S K A M I N O S A E U P R O T E I N D E N A U R R O T A N I N H Y H A E A M P H O L L E E G U S D M Y P H E L G L Y C I B I U R F A S E R P R O T E I N E I T E N I A I G D I Q E E R N L B R U E C K E N U E N Z R U N G A G I N S A E U R E O B I N P T I D B I N D U N G K A L T P R O B E [1] Wie nennt man die solideste Bindungsart die zur Stabilisierung von Tertiärstrukturen in Proteine dient? –DISULFIDBRUECKE[2] Wie heißt das Protein das Hauptbestandteil unserer Haare ist? -KREATIN[3] Wie nennt man die Abfolge der Aminosäuren in Proteinen? Gib ein Beispiel für eine solche Abfolge von Aminosäuren in gängiger Weise an. –AMINOSAEURESEQUENZ… -Ala-Gly-Cys-Gly-Leu-Phe-Phe-Tyr-Val-Lys-Gly-Ala- …. [4] Erhitzt man Proteine mit Salzsäure, werden die Makromoleküle hydrolysiert. Man hat so herausgefunden, dass sie sich aus lediglich 20 Aminosäuren zusammensetzten. Wie nennt man diese 20 Aminosäuren die Bausteine der Proteine in Lebewesen sind? Trage den Namen in Zeile 4 ein! Es handelt sich dabei um -PROTEINOGENE- Aminosäuren. [5] Die irreversible Zerstörung der Tertiär- und Quartärstrukturen von Proteinen durch Hitze, Säuren, Laugen oder Schwermetallionen wird wie genannt? -DENATURIERUNG[6] Wie heißt die folgende Aminosäure? Trage den Namen in Zeile 6 ein! -ASPARAGINSÄURE- O H2N O OH Zu welcher Gruppe von Aminosäuren gehört sie? Sie zählen zur Gruppe der sauren Aminosäuren. OH [7] Wie wird die Nachweisreaktion genannt, mit der man die im Schweiß enthaltenen Aminosäuren / Proteine durch einen blau -violetten Farbstoff nachweisen kann? Ninhydrin 465 Lösungsblatt Abschlussrätsel: Aminosäuren – Proteine [8] Wie heißt das zum Sauerstofftransport im Körper verwendete Protein? -HÄMOGLOBIN- [9] Mit welchem Fachausdruck wird das Verhalten von Substanzen beschrieben, die sowohl als Broenstedsäure, wie auch als Broenstedbase reagieren können? Dieses Verhalten ist auch bei Aminosäuren beobachtbar (gesucht ist das Nomen)! -AMPHOLYT[10] Aminosäuren besitzen ein C - und ein N-Terminales Ende. Wie wird die Bindung die sich aus der Kondensationsreaktion der Amino-(N-Terminal) mit der Carboxylgruppe (C-Terminal) bildet, genannt? Dargestellt ist sie in der folgenden Abbildung (Die Einzahl ist einzutragen)! H H H N N H O O R R N OH OH H 1 O NH H 1 R O R + H 2O HO -PEPTIDBINDUNG[11] Die schraubenartige Anordnung der Aminosäuren in der Sekundärstruktur wird als HELIKAL bezeichnet! [12] Wie heißt die folgende Aminosäure? Trage den Namen in Zeile 12 ein! O H2N OH -GLYCIN- [13] Wie wird die Nachweisreaktion für Proteine genannt, die sich durch eine intensiv-violette Färbung durch die Bildung eines Kupfer(II)komplexes anzeigt? Dieser Kupfer-Eiweißkomplex ist in der folgenden Abbildung dargestellt! . . . NH . O OH 2 O NH . R R R . N O O NH Cu NH . . O N . . OH 2 . . R O + 6 H2O -BIURETPROBE- Lösungswort: F A S E R P R O T E I N E 466 V. Literaturverzeichnis Literaturverzeichnis V. Literaturverzeichnis ASSELBORN, WOLFGANG / JÄCKEL, MANFRED / RISCH, KARL T. (2008). Chemie heute – Sekundarberich II. Schroedel Diesterweg Schulbuchverlag GmbH, Hannover. BEZLER, HANS J. / HILDEBRANDT, VOLKER (2007). HessGISS 2008/2009, V.13.0. Unfallkasse Hessen/Hessisches Kultusministerium (Hrsg.), Frankfurt. BREITMAIER, EBERHARD / JUNG, GÜNTHER (2001). Organische Chemie, Grundlagen, Stoffklassen, Reaktionen, Konzepte, Molekülstrukturen, 4. Überarbeitete Auflage. Thieme, Stuttgart. BRUICE, PAULA Y. (2007). Organische Chemie, 5. Aktualisierte Auflage. 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[2] http://ghag.gh.funpic.de/chemielexikon/gfx/IodStaerke.gif (Zugriff: 26.02.2010). 475 V. Literaturverzeichnis Literaturverzeichnis [3] http://members.blackbox.net/hp_links/222/doris.elster/bilder/sonne_6.gif (Zugriff: 26.02.2010). [4] http://www.biosicherheit.de/de/kartoffel/26.doku.html (Zugriff: 18.02.2010). [5] Vgl. Schuphan/Knappe, S. 19. [6] http://www.wdr.de/tv/quarks/global/pdf/haare.pdf (Seite 14), (Zugriff: 02.03.2010). [7] Vgl. Bruice, S.1189. [8] Vgl. http://www.chids.de/dachs/wiss_hausarbeiten/BiochemieBiotechnologie_Weide.pdf, (Seite 163), (Zugriff: 14.03.2010). [9] Vgl. Bruice, S.1189. [10] Vgl. Bruice, S.1207. [11] http://www.medizin.studienkollegen.de/Biochemie/KurzBetaFalt01.htm (Zugriff: 19.04.2010). [12] http://www.zum.de/Faecher/Gk/RP/13315_Bakelit___ein_Polykondensat__der_erste_Kunststof_.pdf (Zugriff: 12.03.2010). 476 VI. Bedeutung der Gefahrensymbole Anhang VI. Anhang Bedeutung der Gefahrensymbolem sowie der R- und S-Sätze der verwendeten Chemikalien Gefahrensymbole: T giftig C Ätzend Xn gesundheitsschädlich Xi Reizend F leichtentzündlich N umweltgefährlich O brandfördernd R-Sätze (Risiko-Sätze – Besondere Gefahren)386 R1 R2 R3 R4 R5 R6 R7 R8 R9 386 In trockenem Zustand explosionsgefährlich Durch Schlag, Reibung, Feuer oder andere Zündquellen explosionsgefährlich Durch Schlag, Reibung, Feuer oder andere Zündquellen besonders explosionsgefährlich Bildet hochempfindliche explosionsgefährliche Metallverbindungen Beim Erwärmen explosionsfähig Mit und ohne Luft explosionsfähig Kann Brand verursachen Feuergefahr bei Berührung mit brennbaren Stoffen Explosionsgefahr bei Mischung mit brennbaren Stoffen Vgl. HessGISS. 477 VI. R 10 R 11 R 12 R 14 R 15 R 16 R 17 R 18 R 19 R 20 R 21 R 22 R 23 R 24 R 25 R 26 R 27 R 28 R 29 R 30 R 31 R 32 R 33 R 34 R 35 R 36 R 37 R 38 R 39 R 40 R 41 R 42 R 43 R 44 R 45 R 46 R 48 R 49 R 50 R 51 R 52 R 53 R 54 R 55 R 56 R 57 R 58 R 59 R 60 R 61 R 62 R 63 R 64 Anhang Bedeutung der Gefahrensymbole Entzündlich Leichtentzündlich Hochentzündlich Reagiert heftig mit Wasser Reagiert mit Wasser unter Bildung leicht entzündlicher Gase Explosionsgefährlich in Mischung mit brandfördernden Stoffen Selbstentzündlich an der Luft Bei Gebrauch Bildung explosionsfähiger / leichtentzündlicher Dampf-Luftgemische möglich Kann explosionsfähige Peroxide bilden Gesundheitsschädlich beim Einatmen Gesundheitsschädlich bei Berührung mit der Haut Gesundheitsschädlich beim Verschlucken Giftig beim Einatmen Giftig bei Berührung mit der Haut Giftig beim Verschlucken Sehr giftig beim Einatmen Sehr giftig bei Berührung mit der Haut Sehr giftig beim Verschlucken Entwickelt bei Berührung mit Wasser giftige Gase Kann bei Gebrauch leicht entzündlich werden Entwickelt bei Berührung mit Säure giftige Gase Entwickelt bei Berührung mit Säure sehr giftige Gase Gefahr kumulativer Wirkung Verursacht Verätzungen Verursacht schwere Verätzungen Reizt die Augen Reizt die Atmungsorgane Reizt die Haut Ernste Gefahr irreversiblen Schadens Verdacht auf krebserzeugende Wirkung Gefahr ernster Augenschäden Sensibilisierung durch Einatmen möglich Sensibilisierung durch Hautkontakt möglich Explosionsgefahr bei Erhitzen unter Einschluss Kann Krebs erzeugen Kann vererbbare Schäden verursachen Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition Kann Krebs erzeugen beim Einatmen Sehr giftig für Wasserorganismen Giftig für Wasserorganismen Schädlich für Wasserorganismen Kann in Gewässern längerfristig schädliche Wirkungen haben Giftig für Pflanzen Giftig für Tiere Giftig für Bodenorganismen Giftig für Bienen Kann längerfristig schädliche Wirkungen auf die Umwelt haben Gefährlich für die Ozonschicht Kann die Fortpflanzungsfähigkeit beeinträchtigen Kann das Kind im Mutterleib schädigen Kann möglicherweise die Fortpflanzungsfähigkeit beeinträchtigen Kann das Kind im Mutterleib möglicherweise schädigen Kann Säuglinge über die Muttermilch schädigen 478 VI. R 65 R 66 R 67 R 68 Anhang Bedeutung der Gefahrensymbole Gesundheitsschädlich: Kann beim Verschlucken Lungenschäden verursachen. Wiederholter Kontakt kann zu spröder oder rissiger Haut führen. Dämpfe können Schläfrigkeit und Benommenheit erzeugen. Irreversibler Schaden möglich Kombinierte Sätze: R 14/15 R 15/29 R 20/21 R 20/22 R 20/21/22 R 21/22 R 23/24 R 23/25 R 23/24/25 R 24/25 R 26/27 R 26/28 R 26/27/28 R 27/28 R 36/37 R 36/38 R 36/37/38 R 39/23 R 39/24 R 39/25 R 39/23/24 Reagiert heftig mit Wasser unter Bildung leicht entzündlicher Gase Reagiert mit Wasser unter Bildung giftiger und hochentzündlicher Gase Gesundheitsschädlich beim Einatmen und bei Berührung mit der Haut Gesundheitsschädlich beim Einatmen und Verschlucken Gesundheitsschädlich beim Einatmen, Verschlucken und bei Berührung mit der Haut Gesundheitsschädlich bei Berührung mit der Haut und beim Verschlucken Giftig beim Einatmen und bei Berührung mit der Haut Giftig beim Einatmen und beim Verschlucken Giftig beim Einatmen, Verschlucken und Berührung mit der Haut Giftig bei Berührung mit der Haut und beim Verschlucken Sehr giftig beim Einatmen und bei Berührung mit der Haut Sehr giftig beim Einatmen und Verschlucken Sehr giftig beim Einatmen, Verschlucken und Berührung mit der Haut Sehr giftig bei Berührung mit der Haut und beim Verschlucken Reizt die Augen und die Atmungsorgane Reizt die Augen und die Haut Reizt die Augen, Atmungsorgane und die Haut Giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Einatmen Giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens bei Berührung mit der Haut Giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Verschlucken Giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Einatmen und bei Berührung mit der Haut R 39/23/25 Giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Einatmen und durch Verschlucken R 39/24/25 Giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens bei Berührung mit der Haut und durch Verschlucken R 39/23/24/25 Giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Einatmen, Berührung mit der Haut und durch Verschlucken R 39/26 Sehr giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Einatmen R 39/27 Sehr giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens bei Berührung mit der Haut R 39/28 Sehr giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Verschlucken R 39/26/27 Sehr giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Einatmen und bei Berührung mit der Haut R 39/26/28 Sehr giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Einatmen und durch Verschlucken R 39/27/28 Sehr giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens bei Berührungmit der Haut und durch Verschlucken R 39/26/27/28 Sehr giftig: ernste Gefahr irreversiblen Schadens durch Einatmen, Berührung mit der Haut und durch Verschlucken R 42/43 Sensibilisierung durch Einatmen und Hautkontakt möglich R 48/20 Gesundheitsschädlich: Gefahr ernster Gesundheitsschäden beilängerer Exposition durch Einatmen R 48/21 Gesundheitsschädlich: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Berührung mit der Haut R 48/22 Gesundheitsschädlich: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Verschlucken 479 VI. Anhang Bedeutung der Gefahrensymbole R 48/20/21 Gesundheitsschädlich: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Einatmen und durch Berührung mit der Haut R 48/20/22 Gesundheitsschädlich: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Einatmen und durch Verschlucken R 48/21/22 Gesundheitsschädlich: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Berührung R 48/20/21/22 Gesundheitsschädlich: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Einatmen, Berührung mit der Haut und durch Verschlucken R 48/23 Giftig: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Einatmen R 48/24 Giftig: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Berührung mit der Haut R 48/25 Giftig: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Verschlucken R 48/23/24 Giftig: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Einatmen und durch Berührung mit der Haut R 48/23/25 Giftig: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Einatmen und durch Verschlucken R 48/24/25 Giftig: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Berührung mit der Haut und durch Verschlucken R 48/23/24/25 Giftig: Gefahr ernster Gesundheitsschäden bei längerer Exposition durch Einatmen, Berührung mit der Haut und durch Verschlucken R 50/53 Sehr giftig für Wasserorganismen, kann in Gewässern längerfristig schädliche Wirkungen haben R 51/53 Giftig für Wasserorganismen, kann in Gewässern längerfristig schädliche Wirkungen haben R 52/53 Schädlich für Wasserorganismen, kann in Gewässern längerfristig schädliche Wirkungen haben R 68/20 Gesundheitsschädlich: Möglichkeit irreversiblen Schadens durch Einatmen R 68/21 Gesundheitsschädlich: Möglichkeit irreversiblen Schadens bei Berührung mit der Haut R 68/22 Gesundheitsschädlich: Möglichkeit irreversiblen Schadens durch Verschlucken R 68/20/21 Gesundheitsschädlich: Möglichkeit irreversiblen Schadens durch Einatmen und bei Berührung mit der Haut R 68/20/22 Gesundheitsschädlich: Möglichkeit irreversiblen Schadens durch Einatmen und durch Verschlucken R 68/21/22 Gesundheitsschädlich: Möglichkeit irreversiblen Schadens bei Berührung mit der Haut und durch Verschlucken R 68/20/21/22 Gesundheitsschädlich: Möglichkeit irreversiblen Schadens durch Einatmen, Berührung mit der Haut und durch Verschlucken S-Sätze (Sicherheitsratschläge)387 S1 S2 S3 S4 S5 S6 S7 S8 387 Unter Verschluss aufbewahren Darf nicht in die Hände von Kindern gelangen Kühl aufbewahren Von Wohnplätzen fernhalten Unter ........ aufbewahren (geeignete Flüssigkeit vom Hersteller anzugeben) Unter ........ aufbewahren (inertes Gas vom Hersteller anzugeben) Behälter dicht geschlossen halten Behälter trocken halten Vgl. HessGISS. 480 VI. S9 S 12 S 13 S 14 S 15 S 16 S 17 S 18 S 20 S 21 S 22 S 23 S 24 S 25 S 26 S 27 S 28 S 29 S 30 S 33 S 35 S 36 S 37 S 38 S 40 S 41 S 42 S 43 S 45 S 46 S 47 S 48 S 49 S 50 S 51 S 52 S 53 S 56 S 57 S 59 S 60 S 61 S 62 S 63 S 64 Anhang Bedeutung der Gefahrensymbole Behälter an einem gut gelüfteten Ort aufbewahren Behälter nicht gasdicht verschließen Von Nahrungsmitteln, Getränken und Futtermitteln fernhalten Von ....... fernhalten (inkompatible Substanzen sind vom Hersteller anzugeben) Vor Hitze schützen Von Zündquellen fernhalten - Nicht rauchen Von brennbaren Stoffen fernhalten Behälter mit Vorsicht öffnen und handhaben Bei der Arbeit nicht essen und trinken Bei der Arbeit nicht rauchen Staub nicht einatmen Gas/Rauch/Dampf/Aerosol nicht einatmen (geeignete Bezeichnung(en) vom Hersteller anzugeben) Berührung mit der Haut vermeiden Berührung mit den Augen vermeiden Bei Berührung mit den Augen sofort gründlich mit Wasser abspülen und Arzt konsultieren Beschmutzte, getränkte Kleidung sofort ausziehen Bei Berührung mit der Haut sofort mit viel ...... abwaschen (vom Hersteller anzugeben) Nicht in die Kanalisation gelangen lassen Niemals Wasser hinzugießen Maßnahmen gegen elektrostatische Aufladungen treffen Abfälle und Behälter müssen in gesicherter Weise beseitigt werden Bei der Arbeit geeignete Schutzkleidung tragen Geeignete Schutzhandschuhe tragen Bei unzureichender Belüftung Atemschutzgerät anlegen Fußboden und verunreinigte Gegenstände mit ...... reinigen (Material vom Hersteller anzugeben). Explosions- und Brandgase nicht einatmen Bei Räuchern/Versprühen geeignetes Atemschutzgerät anlegen u. (geeignete Bezeichnung(en) vom Hersteller anzugeben) Zum Löschen ........(vom Hersteller anzugeben) verwenden (wenn Wasser die Gefahr erhöht, anfügen: "Kein Wasser verwenden") Bei Unfall oder Unwohlsein sofort Arzt hinzuziehen (wenn möglich dieses Etikett vorzeigen) Bei Verschlucken sofort ärztlichen Rat einholen und Verpackung oder Etikett vorzeigen Nicht bei Temperaturen über ..... °C aufbewahren (vom Hersteller anzugeben) Feucht halten mit ..... (geeignetes Mittel vom Hersteller anzugeben) Nur im Originalbehälter aufbewahren Nicht mischen mit ..... (vom Hersteller anzugeben) Nur in gut gelüfteten Bereichen verwenden Nicht großflächig für Wohn- und Aufenthaltsräume zu verwenden Exposition vermeiden - vor Gebrauch besondere Anweisungen einholen Diesen Stoff und seinen Behälter der Problemabfallentsorgung zuführen Zur Vermeidung einer Kontamination der Umwelt geeigneten Behälter verwenden Information zur Wiederverwendung/Wiederverwertung beim Hersteller/Lieferanten erfragen Dieser Stoff und sein Behälter sind als gefährlicher Abfall zu entsorgen Freisetzung in die Umwelt vermeiden. Besondere Anweisungen einholen/Sicherheitsdatenblatt zu Rate ziehen Bei Verschlucken kein Erbrechen herbeiführen. Sofort ärztlichen Rat einholen und Verpackung oder dieses Etikett vorzeigen Bei Unfall durch Einatmen: Verunfallten an die frische Luft bringen und ruhigstellen Bei Verschlucken Mund mit Wasser ausspülen (nur wenn Verunfallter bei Bewusstsein ist) 481 VI. Anhang Bedeutung der Gefahrensymbole Kombinierte S-Sätze S 1/2 S 3/7 S 3/9/14 S 3/9/14/49 S 3/9/49 S 3/14 S 7/8 S 7/9 S 7/47 S 20/21 S 24/25 S 27/28 S 29/35 S 29/56 S 36/37 S 36/37/39 S 36/39 S 37/39 S 47/49 Unter Verschluss und für Kinder unzugänglich aufbewahren Behälter dicht geschlossen halten und an einem kühlen Ort aufbewahren An einem kühlen, gut gelüfteten Ort, entfernt von ..... aufbewahren (die Stoffe, mit denen Kontakt vermieden werden muss, sind vom Hersteller anzugeben) Nur im Originalbehälter an einem kühlen, gut gelüfteten Ort, entfernt von ..... aufbewahren (die Stoffe, mit denen Kontakt vermieden werden muss, sind vom Hersteller anzugeben) Nur im Originalbehälter an einem kühlen, gut gelüfteten Ort aufbewahren An einem kühlen, von ..... entfernten Ort aufbewahren (die Stoffe, mit denen Kontakt vermieden werden muss, sind vom Hersteller anzugeben) Behälter trocken und dicht geschlossen halten Behälter dicht geschlossen an einem gut gelüfteten Ort aufbewahren Behälter dicht geschlossen und nicht bei Temperaturen über .... °C aufbewahren (vom Hersteller anzugeben) Bei der Arbeit nicht essen, trinken, rauchen Berührung mit den Augen und der Haut vermeiden Bei Berührung mit der Haut beschmutzte, getränkte Kleidung sofort ausziehen und Haut sofort mit viel.......abwaschen (vom Hersteller anzugeben) Nicht in die Kanalisation gelangen lassen; Abfälle und Behälter müssen in gesicherter Weise beseitigt werden Nicht in die Kanalisation gelangen lassen; diesen Stoff und seinen Behälter der Problemabfallentsorgung zuführen Bei der Arbeit geeignete Schutzhandschuhe und Schutzkleidung tragen Bei der Arbeit geeignete Schutzhandschuhe, Schutzkleidung und Schutzbrille/Gesichtsschutz tragen Bei der Arbeit geeignete Schutzkleidung und Schutzbrille/Gesichtsschutz tragen Bei der Arbeit geeignete Schutzhandschuhe und Schutzbrille/Gesichtsschutz tragen Nur im Originalbehälter bei einer Temperatur von nicht über .....°C (vom Hersteller anzugeben) aufbewahren 482 VI. Anhang Versicherung Plagiarismuserklärung Ich versichere hiermit, dass die vorliegende Arbeit selbstständig verfasst, keine anderen als die angegebenen Hilfsmittel verwendet und sämtliche Stellen, die den benutzten Werken dem Wortlaut oder dem Sinne nach entnommen sind, mit Quellenangaben kenntlich gemacht sind. Alle wörtlich entnommenen Stellen sind als Zitate kenntlich gemacht. Die Festplatte, auf der der Text der Arbeit gespeichert wurde, befindet sich in meinem Besitz. Marburg, den 10.05.2010: ………….…………………………………………. (Unterschrift) 483