Zur Nosologie von im Leipziger Zoo gehaltenen Meerkatzen

Werbung
Aus dem
Zoologischen Garten Leipzig
Zur Nosologie von im Leipziger Zoo gehaltenen Meerkatzen
(Gattungen Cercopithecus, Erythrocebus, Miopithecus)
Eine Analyse des Krankheitsgeschehens von 1955 bis 2006 unter Berücksichtigung von
Immobilisation und Narkose
Inaugural-Dissertation
zur Erlangung des Grades eines
Doctor medicinae veterinariae (Dr. med. vet.)
durch die Veterinärmedizinische Fakultät
der Universität Leipzig
eingereicht von
Barbara Schütte
aus Werl
Leipzig, 2008
Mit Genehmigung der Veterinärmedizinischen Fakultät der Universität Leipzig
Dekan:
Prof. Dr. Dr. h.c. Karsten Fehlhaber
Betreuer:
Prof. Dr. Klaus Eulenberger
Gutachter:
Prof. Dr. Klaus Eulenberger
Zoologischer Garten Leipzig
Prof. Dr. Heinz-Adolf Schoon
Institut für Veterinär-Pathologie
Veterinärmedizinische Fakultät der Universität Leipzig
Dr. Jens-Christian Rudnick
Tierklinik GmbH Rostock
Zoo Rostock
Tag der Verteidigung: 19. August 2008
Meinen Eltern
Inhaltsverzeichnis
Inhaltsverzeichnis
Abkürzungsverzeichnis........................................................................................................... V
1 Einleitung ............................................................................................................................... 1
2 Literaturübersicht................................................................................................................. 3
2.1 Allgemeines über Meerkatzen.......................................................................................... 3
2.2 Infektionen ....................................................................................................................... 6
2.2.1 Bakterielle Infektionen .......................................................................................... 6
2.2.2 Virale Infektionen................................................................................................ 11
2.2.3 Mykosen .............................................................................................................. 16
2.3 Parasitosen...................................................................................................................... 17
2.4 Organkrankheiten ........................................................................................................... 25
2.4.1 Krankheiten der Atmungsorgane......................................................................... 25
2.4.2 Krankheiten der Verdauungsorgane .................................................................... 26
2.4.3 Krankheiten der Leber......................................................................................... 28
2.4.4 Krankheiten des exokrinen Pankreas................................................................... 29
2.4.5 Krankheiten des Herz-Kreislauf-Systems ........................................................... 30
2.4.5.1 Blut ....................................................................................................... 31
2.4.6 Krankheiten der Harnorgane ............................................................................... 31
2.4.7 Krankheiten des Nervensystems.......................................................................... 32
2.4.8 Krankheiten der Sinnesorgane............................................................................. 32
2.4.9 Krankheiten des Endokriniums ........................................................................... 33
2.4.10 Krankheiten der Bewegungsorgane................................................................... 33
2.4.11 Krankheiten der Haut und des Haarkleides ....................................................... 34
2.4.12 Krankheiten des lymphatischen Systems .......................................................... 35
I
Inhaltsverzeichnis
2.5 Fortpflanzung ................................................................................................................. 36
2.5.1 Physiologie der Fortpflanzung ............................................................................ 36
2.5.2 Pathologie der Fortpflanzung und der Fortpflanzungsorgane ............................. 38
2.6 Neoplasien ...................................................................................................................... 39
2.7 Immobilisation ............................................................................................................... 40
3 Tiere, Material und Methoden........................................................................................... 43
3.1 Tiere und Material .......................................................................................................... 43
3.2 Methoden........................................................................................................................ 46
4 Ergebnisse ............................................................................................................................ 49
4.1 Überblick ........................................................................................................................ 49
4.2 Infektionskrankheiten..................................................................................................... 51
4.2.1 Bakterielle Infektionskrankheiten ....................................................................... 51
4.2.2 Virale Infektionskrankheiten ............................................................................... 54
4.2.3 Mykosen .............................................................................................................. 55
4.3 Parasitenbefall ................................................................................................................ 56
4.4 Organkrankheiten ........................................................................................................... 58
4.4.1 Krankheiten der Atmungsorgane......................................................................... 58
4.4.2 Krankheiten der Verdauungsorgane .................................................................... 62
4.4.3 Krankheiten der Leber......................................................................................... 66
4.4.4 Krankheiten des exokrinen Pankreas................................................................... 67
4.4.5 Krankheiten des Herz-Kreislauf-Systems ........................................................... 67
4.4.5.1 Blut ....................................................................................................... 68
II
Inhaltsverzeichnis
4.4.7 Krankheiten des Nervensystems.......................................................................... 71
4.4.8 Krankheiten der Sinnesorgane............................................................................. 72
4.4.9 Krankheiten des Endokriniums ........................................................................... 73
4.4.10 Krankheiten der Bewegungsorgane................................................................... 73
4.4.11 Krankheiten der Haut und des Haarkleides ....................................................... 74
4.4.12 Krankheiten des lymphatischen Systems .......................................................... 76
4.4.13 Traumata............................................................................................................ 76
4.5 Fortpflanzung ................................................................................................................. 78
4.5.1 Physiologie der Fortpflanzung ............................................................................ 78
4.5.2 Pathologie der Fortpflanzung und der Fortpflanzungsorgane ............................. 78
4.6 Neoplasien ...................................................................................................................... 81
4.7 Unspezifische Krankheitsfälle........................................................................................ 82
4.8 Fälle des Zucht und Haltungsmanagements................................................................... 84
4.9 Immobilisation ............................................................................................................... 86
5 Diskussion ............................................................................................................................ 87
5.1 Schlussfolgerungen ........................................................................................................ 92
6 Zusammenfassung............................................................................................................... 94
7 Summary .............................................................................................................................. 96
8 Literaturverzeichnis............................................................................................................ 98
III
Inhaltsverzeichnis
9 Anhang ............................................................................................................................... 120
Verzeichnis der aufgeführten Tabellen .............................................................................. 120
Verzeichnis der aufgeführten Abbildungen ....................................................................... 121
Danksagung........................................................................................................................... 139
IV
Abkürzungsverzeichnis
Abkürzungsverzeichnis
Ag
Ak
ALAT
AP
ASAT
ChE
CK
ELISA
G
ggr.
GGT
hgr.
Ig
i.m.
LDH
MCH
MCHC
MCV
mgr.
p.o.
RBC
SA
s.c.
SIV
SRV
STLV
T
T4
Antigen
Antikörper
Alanin-Amino-Transferase
Alkalische Phosphatase
Aspartat-Amino-Transferase
Cholinesterase
Kreatinkinase
Enzyme linked Immunosorbent Assay
Giga (109)
geringgradig
Gamma-Glutamyl-Transferase
hochgradig
Immunglobulin
intramuskulär
Lactatdehydrogenase
Mean corpuscular hemoglobin
Mean corpuscular hemoglobin concentration
Mean corpuscular volume
mittelgradig
per os
Red blood cells
Simian agent
subkutan
Simian immune deficiency Virus
Simian Retrovirus
Simian T-cell Leukemia (lymphotropic) Virus
Terra (1012)
Thyroxin
V
VI
Einleitung
1 Einleitung
Zur Ordnung der Primaten gehört neben anderen auch die Familie der
Meerkatzenverwandten, zu der u. a. die Meerkatzen mit zahlreichen Arten und Unterarten
zählen. Ursprünglich sind diese Tiere Bewohner von Wäldern oder offenen Savannen in
Afrika südlich der Sahara (FIEDLER et al. 1967).
Ein Grund für die Haltung und Zucht einiger Arten in zoologischen Gärten ist die
Arterhaltung dieser z. T. stark bedrohten Tiere. Wie alle Primaten stehen die Meerkatzen als
in ihrem Bestand gefährdet im Anhang II des Washingtoner Artenschutzabkommens (KUHN
1988). Eine der Voraussetzungen für die erfolgreiche Zucht und Haltung sowie das Erbringen
eines Beitrages zum Schutz der vom Aussterben bedrohten Tierarten ist die Gewährleistung
eines gesunden Tierbestandes. Dies verlangt Kenntnisse über vorkommende Krankheiten,
auch im Sinne einer Risikobestimmung in Bezug auf deren Auftreten und ihr zoonotisches
Potential.
Außerdem sind Meerkatzen aufgrund ihres munteren Wesens und ihrer mannigfaltigen,
interessanten Fellfärbungen bei Besuchern beliebt und werden auch deswegen in vielen Zoos
gezeigt.
Für Pflegepersonal oder andere Kontaktpersonen, die mit Meerkatzen umgehen, bestehen
gewisse Risiken hinsichtlich der Übertragung von Zoonosen. Insbesondere gilt dies beim
Auftreten von Biss- oder Kratzverletzungen oder auch unzureichendem Hygienemanagement.
Die Einschleppung des Marburg-Virus aus Uganda nach Europa im Jahre 1967 durch den
Import von Grünen Meerkatzen zeigte durch mehrere menschliche Todesfälle, welche
Gefahren von Wildfängen ausgehen können (STILLE et al. 1968). Heutzutage hat zwar der
Import von Wildfängen zwecks Zurschaustellung der Tiere in Zoos an Bedeutung verloren,
vielmehr handelt es sich bei der Population in zoologischen Gärten immer mehr um in
menschlicher Obhut nachgezogene Tiere. Dennoch beweist der Fall der von
EULENBERGER et al. (2001) beschriebenen Quarantäne von Monameerkatzen, die illegal
aus Nigeria eingeführt und am Frankfurter Flughafen konfisziert worden waren, dass
entsprechende Institutionen auf das Management von Wildfängen mit unbekanntem
Gesundheits- bzw. Infektionsstatus eingerichtet sein sollten.
In der vorliegenden Arbeit soll zum einen ein Überblick gegeben werden über die in der
internationalen Fachliteratur beschriebenen, bei Meerkatzen vorkommenden Infektions- und
Organkrankheiten sowie fortpflanzungsphysiologische, hämatologische und klinischchemische Daten. Darüber hinaus wird eine Übersicht über Möglichkeiten der Immobilisation
und Narkose gegeben.
Zum anderen werden die veterinärmedizinischen Erfahrungen aus 50 Jahren
Meerkatzenhaltung im Zoologischen Garten Leipzig anhand von Fällen inklusive
bakteriologischer, virologischer, mykologischer, parasitologischer, hämatologischer, klinischchemischer und pathologischer Untersuchungen wie auch Sektionsbefunden sowie der
Narkoseerfahrungen erläutert und der Fachliteratur gegenübergestellt.
1
Einleitung
Anhand der Kenntnisse aus dem Leipziger Zoo in Verbindung mit der Literatur sollen
Empfehlungen für das Management von bei Meerkatzen vorkommenden Infektions- und
Organkrankheiten erarbeitet und damit auch dem Praktiker eine Übersicht über das
potenzielle Krankheitsgeschehen bei diesen Tieren gegeben werden.
2
Literaturübersicht
2 Literaturübersicht
2.1 Allgemeines über Meerkatzen
Seiner taxonomischen Einordnung nach gehört der Mensch zur Ordnung der Herrentiere
(Primaten). Deshalb ist diese Säugetiergruppe für uns Menschen von besonderer Bedeutung
(THENIUS 1988a). Eine Großgliederung der Herrentiere unterscheidet 2 Kategorien:
Halbaffen mit Nasenspiegel (Strepsirhini) und Herrentiere ohne Nasenspiegel (Haplorhini) zu
denen u.a. die Altwelt- oder Schmalnasenaffen (Catarrhini) mit der Familie der
Meerkatzenverwandten (Cercopithecidae), der Familie der Gibbons (Hylobatidae), der
Familie der Großen Menschenaffen (Pongidae) und der Familie der Menschen (Hominidae)
gehören (KUHN 1988). Zur Überfamilie Cercopithecoidea (Hundsaffen, geschwänzte
Altweltaffen) gehören die Meerkatzenartigen einschließlich der Schlank- und Stummelaffen
(THENIUS 1988b). Innerhalb der Unterfamilie der Meerkatzenartigen (Cercopithecinae) kann
man zwei Gattungsgruppen unterscheiden. Auf der einen Seite stehen die Gattungen
Mangaben (Cercocebus), Makaken (Macaca), Paviane (Papio), Backenfurchenpaviane
(Mandrillus) und Dscheladas (Theropithecus). Die andere Gruppe umfasst die in dieser Arbeit
behandelten Gattungen Meerkatzen (Cercopithecus), Zwergmeerkatzen (Miopithecus) und
Husarenaffen (Erythrocebus) (Tabelle 1, S. 5) sowie außerdem die Sumpfmeerkatzen
(Allenopithecus) (HOOF 1988).
Das Wort „Meerkatze“ ist schon aus dem 16. Jahrhundert überliefert. Früher meinte man, es
könne als Bezeichnung für „katzenähnliche“ Affen, die „übers Meer“ zu uns eingeführt
wurden, gedeutet werden. Dabei handelt es sich wohl um eine Verballhornung des indischen
Wortes „Markata“, das Affe bedeutet und von dem auch der Name Makak abzuleiten ist
(FIEDLER et al. 1967).
Die vielfältigen Meerkatzenarten lassen sich alle auf etwa 8 Artengruppen zurückführen. Dies
sind die Mona-Gruppe (Mona-, Campbells, Kronen-, Wolfs, Dents Meerkatze), die CephusGruppe (Blaumaul-, Rotschwanz-, Rotohr-, Rotbauch-, Kleine Weißnasenmeerkatze), die
Mitis-Gruppe (Diadem-, Weißkehl-, Große Weißnasenmeerkatze), die l’Hoesti-Gruppe
(Preuß-Bartmeerkatze, Vollbartmeerkatze), die Hamlyni-Gruppe (Eulenkopfmeerkatze), die
Neglectus-Gruppe
(Brazzameerkatze),
die
Diana-Gruppe
(Diana-,
Roloway-,
Dryasmeerkatze) und die Aethiops-Gruppe (Grüne, Gelbgrüne, Vervetmeerkatze) (HOOF
1988).
Die Meerkatzenartigen unterscheiden sich alle sehr auffällig in ihrer Zeichnung v. a. im
Gesichtsbereich. In ihren Proportionen und ihrer Größe präsentieren sie sich dagegen relativ
einheitlich. Die Körpermasse weist zwar eine Bandbreite von 1 bis 10 kg auf, die meisten
Arten liegen jedoch im Bereich von 4 bis 5 kg. Der Geschlechtsdimorphismus in der Größe ist
bei den meisten Arten deutlich, aber moderat. Ihre Verbreitung umfasst praktisch ganz Afrika
südlich der Sahara (GEISSMANN 2003). Die eigentlichen Meerkatzen sind überwiegend
Waldbewohner (BURTON u. BURTON 1994; MACDONALD et al. 2001), Husarenaffen
3
Literaturübersicht
leben terrestrisch und sind sehr gute Läufer und auch Grüne Meerkatzen kommen oft an den
Boden (MACDONALD et al. 2001).
Die Vertreter der Mona-Gruppe sind relativ klein und typische Bewohner des Regenwaldes,
die in Gruppen von bis zu 50 Tieren mit mehreren erwachsenen Männchen leben. Sie sind
überwiegend frugivor, fressen aber auch Insekten und Blätter. Die Vertreter der CephusGruppe sind mittelgroß und leben in Gruppen von ca. 20 Tieren, die von einem erwachsenen
Männchen geführt werden, im untersten Stockwerk des Laubdaches. Sie fressen überwiegend
Früchte und Insekten. Blaumaulmeerkatzen ernähren sich hauptsächlich vom Nussmark der
Ölpalme. Zur Mitis-Gruppe gehören verhältnismäßig große Meerkatzen, die sich von den
Vertretern der beiden vorgenannten Gruppen durch ihre Zurückhaltung und ihr gelassenes
Temperament unterscheiden. Es handelt sich um ausgesprochene Baumbewohner, die vor
allem Fruchtesser sind. Sie leben in Gruppen von 10 bis 40 Tieren, zu denen nur ein
erwachsenes Männchen gehört. Die beiden zur l’Hoesti-Gruppe gehörenden Arten leben weit
voneinander entfernt. Ihre Vertreter sind Bewohner der hohen Gebirgswälder und ernähren
sich von Beeren und Kräutern, zu deren Suche sie sich auf den Boden begeben. Die Tiere
leben in kleinen Gruppen mit einem erwachsenen Mann. Eulenkopfmeerkatzen leben in
Gebirgswäldern östlich vom Oberlauf des Kongostromes, über diese Art ist ansonsten noch
relativ wenig bekannt. Die kräftigen Brazzameerkatzen leben in kleinen Gruppen in
Sumpfwäldern und feuchten Wäldern an Flüssen. Sie ernähren sich hauptsächlich von
Früchten. Die Vertreter der Diana-Gruppe leben in Gruppen von bis zu 30 Tieren in den
höchsten Stockwerken des Urwaldes und ernähren sich dort ebenfalls vor allem von Früchten.
Es handelt sich um große, sehr lebhafte und energische Tiere. Vertreter der Aethiops-Gruppe
leben weit verbreitet, hauptsächlich in offenem Gelände, wobei sie sich aber nie zu weit von
Wasserstellen und auch Bäumen entfernen, auf denen sie gegebenenfalls Schutz suchen. Zur
Abspaltung der Zwergmeerkatze von der Gattung Cercopithecus hat die Tatsache geführt,
dass die Weibchen auffällige Regelschwellungen zeigen. Außerdem gibt es auch serologische
und ethologische Unterschiede. Zwergmeerkatzen leben in Gruppen von ca. 70 bis 150 Tieren
in Sumpf- und Mangrovenwäldern entlang der Küste, wobei sie sich hauptsächlich von
Pflanzen, aber auch von Insekten und anderem Kleingetier ernähren. Der Husarenaffe ist ein
ausgesprochener Bodenbewohner und von seiner Anatomie her dem schnellen Laufen
angepasst. Husarenaffen leben in weit zerstreuten Gruppen von ca. 30 Tieren und ernähren
sich, je nach Angebot, von Gräsern, Sämereien, Früchten und auch Insekten, Kleinvögeln und
Eiern (HOOF 1988). Meerkatzen ziehen oft in gemischten Gruppen aus mehreren Arten
herum und fressen gemeinsam (GEISSMANN 2003).
Einige Meerkatzenarten, v.a. die Grüne Meerkatze, werden zu Versuchstierzwecken gezüchtet
oder auch in der Wildbahn gefangen (ABEL et al. 1989).
Die verschiedenen Meerkatzenarten sind in unterschiedlichem Maße bedroht. Die Bedrohung
reicht von nicht bzw. kaum gefährdet bis hin zu stark bedroht (IUCN 2006). Gründe dafür
sind Biotopzerstörung (Landwirtschaft, die sich in die Lebensräume vorschiebt), Jagd und in
geringerem Maße auch der Export lebender Tiere. Wegen der Zerstörung ihrer natürlichen
4
Literaturübersicht
Biotope stehen alle nichtmenschlichen Primatenarten als in ihrem Bestand gefährdet im
Anhang II des Washingtoner Artenschutzabkommens (KUHN 1988). Die Art Cercopithecus
diana ist sogar in den Anhang I (unmittelbar bedrohte Art, Handel verboten) aufgenommen
worden (CITES 2006).
Heute werden in deutschen Zoos Diana-, Roloway-, Eulenkopf-, Diadem-, Mona-, Brazza-,
Große Weißnasen-, Kleine Weißnasen-, Rotschwanzmeerkatzen sowie Husarenaffen
gehalten. International außerdem noch Campbell-, Blaumaul-, Vollbart-, Kronen-, Wolfs-,
Sumpf- und Zwergmeerkatzen (ISIS 2006).
Tabelle 1: Meerkatzenartige (HOOF 1988)
Deutscher Name
Monameerkatze
Campbellmeerkatze
Kronenmeerkatze
Wolfs Meerkatze
Dents Meerkatze
Blaumaulmeerkatze
Rotschwanzmeerkatze
Rotohrmeerkatze
Rotbauchmeerkatze
Kleine Weißnasenmeerkatze
Diademmeerkatze
Weißkehlmeerkatze
Große Weißnasenmeerkatze
Vollbartmeerkatze
Preuß-Bartmeerkatze
Eulenkopfmeerkatze
Brazzameerkatze
Dianameerkatze
Roloway Meerkatze
Dryasmeerkatze
Grüne Meerkatze o.
Malbruck Meerkatze
Gelbgrüne Meerkatze
Vervetmeerkatze
Zwergmeerkatze
Husarenaffe
Sumpfmeerkatze
Wissenschaftlicher Name
Cercopithecus mona
Cercopithecus campbelli
Cercopithecus pogonias
Cercopithecus wolfi
Cercopithecus denti
Cercopithecus cephus
Cercopithecus ascanius
Cercopithecus erythrois
Cercopithecus erythrogaster
Cercopithecus petaurista
Cercopithecus mitis
Cercopithecus albogularis
Cercopithecus nictitans
Cercopithecus l’hoesti
Cercopithecus preussi
Cercopithecus hamlyni
Cercopithecus neglectus
Cercopithecus diana
Cercopithecus diana roloway
Cercopithecus dryas
Cercopithecus aethiops
Cercopithecus sabaeus
Cercopithecus pygerythrus
Miopithecus talapoin
Erythrocebus patas
Allenopithecus nigroviridis
5
Literaturübersicht
2.2 Infektionen
Nach MAYR (2002) versteht man unter einer Infektion (lat. inficere = hineinbringen) oder
Ansteckung das Eindringen (aktiv oder passiv) in einen Makroorganismus (Wirt), das Haften
und die identische Vermehrung von fakultativ oder obligat pathogenen Erregern in diesem
Wirt.
Von einer Infektionskrankheit spricht man dann, wenn es als Folge einer Infektion zu einer
abartigen Reaktionsweise im Sinne einer gestörten Leistungsfähigkeit kommt, die sich in
klinisch fassbaren Krankheitserscheinungen äußert (KRÜGER 2002).
2.2.1 Bakterielle Infektionen
Die Darstellung der bakteriellen Infektionserreger findet Anlehnung an die Systematik von
KRÜGER (2002).
MUNSHI et al. (2003) schildern die Isolierung von Brachyspira aalborgi aus Kotproben von
zwei in einem australischen Zoo gehaltenen Grünen Meerkatzen. B. aalborgi gilt als
Verursacher der intestinalen Spirochätose des Menschen, wobei unklar ist, ob die Besiedlung
der kolorektalen Schleimhaut mit diesen Spirochäten wirklich eine Krankheit ist, oder ob es
sich um eine apathogene Kolonisation der Mukosa handelt (KNOPF et al. 2003). COWLEY
u. HILL (1985) beschreiben das Bild der intestinalen Spirochätose bei Grünen Meerkatzen
ohne klinische Erkrankung. Das mögliche zoonotische Potenzial dieser Organismen sollte
jedoch nicht außer acht gelassen werden (MUNSHI et al. 2003).
BAULU et al. (1987) wiesen bei Grünen Meerkatzen auf Barbados eine hohe Prävalenz von
Ak gegen Leptospira sp. nach. Da jedoch der Großteil der gefundenen Ak gegen das Serovar
Ballum (L. borgpetersenii (SELBITZ 2002)) gerichtet war, gehen die Autoren in diesem Fall
davon aus, dass Meerkatzen keine Hauptansteckungsquelle für Menschen, sondern eher für
die eigene Gattung darstellen. Als wichtigste Erreger von humanen Leptospirosen gelten
Serovare der Spezies L. interrogans (KRAUSS et al. 2004). TSCHIRCH (1989) beschreibt
einen Ausbruch von Leptospirose bei in einem Zoologischen Garten gehaltenen
Bärenmakaken.
Von Husarenaffen sind sowohl klinisch inapparente Infektionen mit Campylobacter jejuni
beschrieben (LUECHTEFELD et al. 1981b) als auch Erkrankungen mit, teilweise
rezidivierender, blutig-schleimiger Diarrhoe und Rektumprolaps (BRYANT et al. 1983) bis
hin zu Todesfällen (GOODWIN et al. 1983). Die Diagnose wird durch mikrobiologische
Untersuchung von Kotproben bzw. Rektalabstrichen (LUECHTEFELD et al. 1981a;
GOODWIN et al. 1983) oder serologisch (ELISA) gestellt (BRACK et al. 1995). GOODWIN
et al. (1983) beobachteten bei den erkrankten Tieren eine Anämie sowie Anstiege von
Leukozytenzahl und Blut-Harnstoff-Werten. Histopathologische Untersuchungen von
Bioptaten verschiedener Darmabschnitte und –lymphknoten zeigen u.a. in Jejunum und Ileum
kurze, verdickte Zotten mit abgeflachtem Epithelsaum, erweiterte Lymphgefäße und
Entzündungszellinfiltrationen sowie in Zäkum und Kolon ggr. bis mgr. Epithelhyperplasie
und ein Wandödem. Außerdem sind auf der Oberfläche der Epithelzellen, in der Lamina
6
Literaturübersicht
propria und in den Krypten zahlreiche spiral- bis kommaförmige Organismen zu erkennen
(BRYANT et al. 1983). Zur Therapie werden Erythromycin und Oxytetracyclin (BRYANT et
al. 1983) sowie Ciprofloxacin erfolgreich eingesetzt (BRACK et al. 1995). KUGLER (1999)
untersuchte im Rahmen einer Arbeit zur Vorkommenshäufigkeit von Campylobacter jejuniKeimträgern in Primatenbeständen zoologischer Gärten u.a. auch Kotproben verschiedener
Meerkatzen, von denen aber keine positiv war.
Pseudomonas aeruginosa ist an verschiedenen lokalen Infektionskrankheiten beteiligt, es
kommen aber ebenso auch septikämische Allgemeininfektionen vor. Der Keim ist besonders
als Eitererreger gefürchtet (SELBITZ 2002). Bei einer Grünen Meerkatze wurde eine durch
Pseudomonas aeruginosa hervorgerufene Myokarditis und Bronchopneumonie diagnostiziert
(STILLS et al. 1979b).
Bordetella bronchiseptica verursacht bei verschiedenen Tierarten Erkrankungen des
Respirationstraktes (SELBITZ 2002), beim Menschen treten Infektionen mit diesem Erreger
sporadisch und mit unterschiedlicher klinischer Symptomatik auf (KRAUSS et al. 2004).
KLEIN et al. (1987) isolierten B. bronchiseptica aus Geweben von fünf Grünen Meerkatzen,
die an einer akuten Bronchopneumonie erkrankt oder gestorben waren. Als klinische
Symptome traten Hypothermie, Dehydratation, Bradykardie und Dyspnoe hervor, außerdem
fielen Hypoglykämie, Leukopenie und ggr. Imbalancen des Elektrolythaushaltes auf. Eine
Chemotherapie sollte nach Antibiogramm erfolgen (SELBITZ 2002), KRAUSS et al. (2004)
empfehlen Aminoglykoside, Penicilline oder Cephalosporine.
Für Infektionen mit Francisella tularensis sind prinzipiell alle Tierarten empfänglich, es
entwickeln sich fieberhafte Allgemeinerkrankungen mit uncharakteristischen Symptomen
(SELBITZ 2002). Die Ansteckung des Menschen erfolgt ausschließlich durch infizierte Tiere.
Dabei kommen asymptomatische Infektionen vor, aber auch solche mit klinischen
Manifestationen, die von lokalen Hautulzera an der Eintrittsstelle mit regionärer
Lymphadenopathie bis zu schweren systemischen Krankheitsverläufen (z.B. pleuropulmonal
oder typhös) reichen (KRAUSS et al. 2004). NAYAR et al. (1979) beschreiben einen
Ausbruch von Tularämie in einem Zoo, bei dem eine Zwergmeerkatze schwer erkrankte, eine
weitere starb und ein Tierarzt nach Biss eines infizierten Tieres ebenfalls erkrankte. Von
Großen Weißnasenmeerkatzen sind asymptomatische, aber auch klinisch manifeste bzw.
tödlich verlaufende Infektionen bekannt (CALLE et al. 1993). Zur Therapie werden
Ampicillin und Vitamin B (NAYAR et al. 1979) bzw. Gentamycin, Oxytetracyclin und
Ringer-Lactat-Lösung (CALLE et al. 1993) eingesetzt.
Innerhalb der Gattung Escherichia ist nur die Spezies Escherichia coli von nennenswerter
Bedeutung. E. coli tritt in einer Vielzahl von Stämmen auf, die sowohl Bestandteil der
Normalflora als auch Ursache einer Vielzahl intestinaler und extraintestinaler Erkrankungen
bei Menschen und Tieren sein können. Eine nachgewiesene Bedeutung als Zoonoseerreger
besitzen lediglich Kolistämme aus der EHEC-Gruppe (Enterohämorrhagische E. coli)
(SELBITZ 2002). Stämme, die bei einer Wirtsspezies pathogen sind, müssen diese
Eigenschaft nicht zwangsläufig auch bei anderen Spezies entfalten (BRACK 1987).
7
Literaturübersicht
Infektionen mit einem E. coli Stamm führten in einer Husarenaffengruppe zu rezidivierenden,
teils schleimigen Durchfällen über einen Zeitraum von 2 Monaten (WOLF et al. 1971).
YAMASHIROYA et al. (1971) isolierten aus dem Kot einer Grünen Meerkatze den
enteropathogenen E. coli Stamm O86:B7.
Infektionen mit sämtlichen Salmonella sp. außer S. paratyphi A und S. typhi kommen bei
allen Primaten vor. Klinisch zeigt sich Diarrhoe mit oder ohne Fieber, Symptome können aber
auch oft fehlen (BRACK et al. 1995). Aus dem Kot von Grünen und Weißnasenmeerkatzen in
Nigeria wurde S. weybridge und aus dem Kot eines Husarenaffen S. offa isoliert (FALADE u.
DUROJAIYE 1976). Aus Milz, Leber und Lymphknoten einer verstorbenen
Blaumaulmeerkatze konnte Salmonella pullorum isoliert werden (SHIMAKURA 1959).
Trotz der weiten Verbreitung von Yersinia pseudotuberculosis und Yersinia enterocolitica
im Tierreich konnten Infektketten Tier-Mensch durch kulturelle und/oder serologische
Untersuchungen bisher nicht sicher belegt werden (KRAUSS et al. 2004).
Y. pseudotuberculosis ist der Erreger der Pseudotuberkulose und zeichnet sich durch eine
hohe Überlebensfähigkeit in Wasser, organischen Materialien, Lebensmitteln und im
Erdboden aus (SELBITZ 2002). Die Infektion kann sowohl über kontaminiertes Futter
(ALLCHURCH 2003) als auch durch direkten Kontakt erfolgen (SELBITZ 2002). Als
Infektionsquelle sind z.B. Nager, die in Freigehegen vorkommen, in Betracht zu ziehen
(DSIKIDSE et al. 1972). Infektionen bei Meerkatzen zeichnen sich durch Apathie,
Appetitlosigkeit, beschleunigte Atmung und Fieber sowie im fortgeschrittenen Stadium durch
Lähmungserscheinungen und tonisch-klonische Krämpfe aus (FROLKA 1980). Es wurden
auch wässrig-blutige Durchfälle (HIRAI et al. 1974) sowie Hämorrhagien der Haut und bei
trächtigen Tieren Aborte beschrieben (DSIKIDSE et al. 1972). Die Infektion verläuft oft
tödlich (HIRAI et al. 1974), vereinzelt nach perakutem Verlauf (FROLKA 1980).
Pathologisch-anatomisch und -histologisch fallen als Hauptbefunde eine akute ulzerative
Enterokolitis, Hyperämie und Schwellung der Mesenteriallymphknoten, eventuell
Lymphadenitis simplex oder purulenta, Nekrosen in Leber und Milz, Hepato- und
Splenomegalie sowie ggf. eine akute erosive Endometritis auf (BRACK 1987). Die
antibiotische Therapie sollte nach einem Resistenztest erfolgen (BRACK et al. 1995). Es
werden Penicillin-Streptomycin-Kombinationen (PLESKER u. CLAROS 1992) sowie
Penicillin oder Rolitetrazyklin (FROLKA 1980) eingesetzt, als prophylaktische Maßnahme
kann eine bestandsspezifische Vakzine zur Anwendung kommen (POELMA u. DE VOOGD
1969).
Die klinischen Erscheinungen (BRACK 1987) und auch das Sektionsbild (SELBITZ 2002)
bei Infektionen mit Y. enterocolitica ähneln der Y. pseudotuberculosis-Infektion. Als klinische
Symptome sind darüber hinaus Ikterus und Hypothermie beschrieben (SKAVLEN et al.
1983). SKAVLEN et al. (1985) beschreiben zwei Fälle von tödlich verlaufenden Septikämien
durch Y. enterocolitica bei Husarenaffen. Bei der antibiotischen Therapie ist zu beachten, dass
Y. enterocolitica anders als Y. pseudotuberculosis zu den β-Laktamaseproduzenten gehört
(BRACK 1987).
8
Literaturübersicht
Die Vertreter der Gattung Shigella sind die Erreger der Shigellosen des Menschen, wobei es
sich um akute Darminfektionen handelt, denen gegenüber außerdem nur noch Affen
empfänglich sind. Bei anderen Tierarten spielen diese Keime keine Rolle (SELBITZ 2002).
Die gefährliche Shigellenruhr kann v. a. bei Menschenaffen zum Problem werden, bei
anderen Altweltaffenspezies verläuft die Infektion zum Teil symptomlos. Die zoonotische
Bedeutung ist hervorzuheben, in Stuttgart mussten sich 1989 im Rahmen einer
Shigellenepidemie im Menschenaffenhaus mehrere Pfleger einer stationären Intensivtherapie
unterziehen (BRACK et al. 1995). Verschiedene Autoren berichten vom Nachweis von
Shigellen bei Meerkatzen (LAPIN u. KRILOVA 1977; KRILOVA 1980), darunter Shigella
flexneri (KRILOVA u. LAPIN 1979; JELINEK 1984). Im Rahmen einer Arbeit zur
Erforschung der Vorkommenshäufigkeit von Shigella-Keimträgern bei Primaten in
zoologischen Gärten wurden auch Kotproben von verschiedenen Meerkatzen untersucht, die
jedoch alle negativ waren (WINGER 1995).
Citrobacter sp. kommen gelegentlich bei Infektionen von Tieren und Menschen vor
(SELBITZ 2002). Citrobacter freundii löste in Verbindung mit Trichuris trichiura bei einem
Husarenaffen eine tödlich verlaufende Erkrankung aus (OCHOLI et al. 1989).
Staphylococcus aureus tritt sowohl als Krankheitserreger, als auch als Bestandteil der
physiologischen oralen, nasalen, vaginalen und intestinalen Flora auf (BRACK 1987). Bei
einer adulten Grünen Meerkatze verursachte eine Infektion mit S. aureus eine thrombotische
Endokarditis mit einer abszedierende Bronchopneumonie und Niereninfarkten (WOOD et al.
1978). POLEY (1969) schildert den Nachweis von S. aureus hämolyticus im Rachenabstrich
einer Zwergmeerkatze. Eine erneute Untersuchung nach dreitägiger Behandlung mit
Gentamycin verlief negativ. BRACK et al. (1995) empfehlen zur Therapie außerdem
Trimethoprim-Sulfamethoxazol,
Tetracycline,
Erythromycin,
Neomycin
und
Chloramphenicol.
Bakterien der Gattung Streptococcus besiedeln vorrangig Haut und Schleimhäute von
Mensch und Tier. Die Manifestation von Streptokokkeninfektionen wird in den meisten
Fällen von begünstigenden Faktoren gefördert (SELBITZ 2002). ß-hämolysierende
Streptokokken wurden aus den Tonsillen von klinisch unauffälligen Grünen Meerkatzen
isoliert (JELINEK et al. 1977).
Clostridium tetani ist ein auch im Darm gesunder Menschen und Tiere vorkommendes
Bodenbakterium (SELBITZ 2002), das bei Altweltaffen einen tödlich verlaufenden
Wundstarrkrampf erzeugen kann (BRACK et al. 1995). WOLTERS (1982) beschreibt einen
mutmaßlichen Fall von Tetanus bei einem Husarenaffen. Im Mittelpunkt der Therapie steht
die Verabreichung von antitoxischen Serumpräparaten, Antibiotikagaben sind ebenfalls
indiziert (SELBITZ 2002). Die Prophylaxe besteht in der Immunisierung mit Tetanus-Toxoid
(RIDEOUT 2003).
Erysipelothrix rhusiopathiae (Synonym E. insidiosa (SELBITZ 2002)) ist der Erreger des
Rotlaufs bei Schweinen und anderen Tieren, wie auch Primaten einschließlich des Menschen
9
Literaturübersicht
(BRACK 1987). Bei letzterem bilden sich meist diffuse Hautveränderungen und nur als
seltene Komplikation Sepsis und Endokarditis aus (KRAUSS et al. 2004). WALLACH
(1977) beschreibt Klinik und Pathologie einer septikämisch verlaufenden Infektion zweier
Dianameerkatzen mit Todesfolge. Zur Therapie empfehlen BRACK et al. (1995) Penicillin.
Vertreter der Gattung Mycobacterium sind grampositive Stäbchen, die sich besonders durch
ihre Säure- und Alkoholfestigkeit auszeichnen. Sie gehören als Erreger der Tuberkulosen bei
Tieren und Menschen, der Paratuberkulose der Tiere und der Lepra des Menschen zu den
wichtigsten bakteriellen Infektionserregern (SELBITZ 2002). Tuberkulose wird durch M.
tuberculosis, M. bovis oder M. africanum hervorgerufen (BRACK et al. 1995). Es handelte
sich hierbei immer schon um eine gefährliche Krankheit, die in zoologischen Gärten zu einem
kostspieligen Geschehen werden kann (FIENNES 1972). Bis 1990 war die Inzidenz der
Tuberkulose beim Menschen weltweit gesehen rückläufig, seitdem steigt sie aber wieder um
bis zu 10 % pro Jahr an (HELLENBRAND 2003). Die Symptome bei der Erkrankung von
Affen sind oft unspezifisch oder fehlen lange Zeit (BRACK et al. 1995). Es kann zu
Veränderungen im Verhalten der Tiere, zu Schwäche oder Apathie, Appetitverlust, Diarrhoe
oder Gewichtsverlust kommen. Manchmal fallen Husten, stumpfes Haarkleid oder auch
Haarverlust auf (FIENNES 1972). Spezifische Organsymptome treten oft erst in weit
fortgeschrittenen Stadien auf (BRACK et al. 1995). Ein Husarenaffe, der mit M. bovis
infiziert war, zeigte einige Tage vor seinem Tod Anzeichen einer Pneumonie (WILSON et al.
1984). Die Übertragung des Erregers erfolgt durch Tröpfcheninfektion, als Infektionsquelle
kommen andere Affen oder auch Menschen in Frage. Infizierte Tiere stellen aber
andersherum ebenso ein Gesundheitsrisiko für den Menschen dar (BRACK 1987). Zur
Diagnostik dienen zum einen Tuberkulintests, die jedoch oft falschpositive Ergebnisse liefern
(ISAZA 2003), des Weiteren gibt es Serotests, die sehr empfindlich sind, aber unter
Umständen auch auf M. avium ansprechen (BRACK et al. 1995). Röntgenologisch können
Tuberkel leicht übersehen werden, da hier bei Affen kaum Kalkeinlagerungen vorhanden
sind. Bei positiver Tuberkulinreaktion können Untersuchungen von Bronchialsekret und
Magenspülproben zur Diagnosesicherung beitragen (ISAZA 2003). Pathologisch-anatomische
Veränderungen, besonders die Lokalisation der Läsionen variieren je nach Infektions- und
Generalisationsweg (FIENNES 1972). Häufig sind granulomatöse Pneumonien mit
histologisch erkennbar zentral verkäsenden Tuberkeln und ausgeprägter bronchialer
Lymphadenopathie (ISAZA 2003). Nach BRACK et al. (1995) sollten tuberkulosekranke
oder hinreichend verdächtige Tiere euthanasiert werden. Die Therapie für besonders wertvolle
Tiere, v. a. Menschenaffen, umfasst drei Monate Isonicotinsäurehydrazid (INH), Ethambutol
und Rifampicin, danach drei Monate INH und Rifampicin und weitere drei Monate nur INH.
Zur Prophylaxe kommt die BCG-Vakzination zum Einsatz, die jedoch heute umstritten ist, da
sie falschpositive Tuberkulinreaktionen hervorruft und der Schutz nur über einen begrenzten
Zeitraum gewährleistet ist (BRACK et al. 1995). Als Präventivmaßnahme sollten bei allen
neu hinzukommenden Affen Tuberkulintests durchgeführt werden (WILSON et al. 1984).
10
Literaturübersicht
Des Weiteren sollte auf strikte Quarantänemaßnahmen geachtet und jeder Kontakt mit
möglicherweise tuberkuloseinfizierten Menschen verhindert werden (ISAZA 2003).
Als Mykobakteriosen werden Mykobakterieninfektionen verstanden, die nicht zu
Geflügeltuberkulose, Paratuberkulose, Lepra oder den Tuberkulosen im engeren Sinne
gehören. Am häufigsten werden Infektionen mit Erregern des M.-avium-intracellulareKomplexes (MAC-Komplex), zu denen neben M. avium spp. und M. intracellulare auch M.
scrofulaceum gehört, diagnostiziert (SELBITZ 2002). Solche Infektionen werfen häufig bei
Tuberkulintests differenzialdiagnostische Probleme hinsichtlich echter Tuberkulosen auf
(RENQUIST u. POTKAY 1979; WYATT et al. 1989). Erreger des MAC- Komplexes sind als
Ursache von Zoonosen gegenwärtig nicht gesichert, man vermutet Erde und Wasser als
Infektionsquellen (KRAUSS et al. 2004). Die Symptome bei Affen sind selten pulmonal,
sondern meist die einer therapieresistenten, chronischen, enteralen Infektion mit
Gewichtsverlust, Entkräftung und manchmal peripherer Lymphadenopathie und
Splenomegalie (BRACK 1987). Es kommen auch Infektionen ohne klinische Symptome vor
(WYATT et al. 1989). COSTALLAT et al. (1978) beschreiben die Infektion eines
Husarenaffen mit atypischen Mykobakterien, der nach Erkrankung mit unspezifischer
Symptomatik starb. Pathologisch-anatomisch und –histologisch wurden u.a. vergrößerte
Lymphknoten, ein Granulom in der Skelettmuskulatur, eine chronische interstitielle
Pneumonie mit Verlust organspezifischer Strukturen und Auftreten von atypischen,
mehrkernigen Zellen sowie zahlreiche, in nekrotisches Material eingebettete, kalzifizierte
Herde in der Milz gefunden. Eine wirksame Therapie gegen atypische Mykobakterien ist bis
heute nicht bekannt (BRACK et al. 1995).
Vertreter der Gattung Mycoplasma wurden in Rachen- und Genitalabstrichen von aus
Äthiopien importierten Grünen Meerkatzen gefunden. Es wurde angenommen, dass sie zur
physiologischen Flora der Tiere gehören (MADDEN et al. 1970). Nach MADDEN et al.
(1974) handelte es sich um die neue Spezies Mycoplasma moatsii.
2.2.2 Virale Infektionen
Die Darstellung der viralen Infektionserreger erfolgt in Anlehnung an die Klassifikation von
KAADEN (2002).
Die durch das Orthopoxvirus simiae hervorgerufenen Affenpocken (KAADEN 2002)
kommen endemisch in Zentral- und Westafrika vor. Als Reservoirwirte fungieren Meerkatzen
und Colobiden (BRACK et al. 1995). Es bilden sich generalisierte Haut- und/oder
systemische Erkrankungen aus (GREENWOOD 2003), wobei Menschenaffen schwerer
erkranken als andere Affenarten (BRACK 1987). Die Mortalität ist eher gering einzuschätzen
(VITALI 1980). Therapeutisch sollten Antibiotika zur Verhinderung von
Sekundärinfektionen eingesetzt werden (BRACK et al. 1995).
Die Familie der Herpesviridae umfasst über 100 Virusarten, die bei Säugetieren, Vögeln und
Reptilien vorkommen und eine enge Bindung an die jeweilige Wirtsspezies sowie die
11
Literaturübersicht
Fähigkeit zu lebenslanger Persistenz mit Reaktivierungen aufweisen (KRAUSS et al. 2004).
Aufgrund ihrer biologischen Eigenschaften werden die Herpesviren in drei Subfamilien
eingeteilt: die Subfamilie Alphaherpesvirinae umfasst u.a. das humane Herpesvirus, welches
früher als Herpes simplex bezeichnet wurde (human herpesvirus 1, 2), das Varicella-ZosterVirus sowie das Herpes-B- und SA8-Virus der Affen. Der Subfamilie Betaherpesvirinae sind
alle Cytomegalieviren (CMV) der Säuger zugeordnet, bekanntester Vertreter der
Gammaherpesvirinae ist das Epstein-Barr-Virus (Erreger des PFEIFFERschen Drüsenfiebers)
(KAADEN 2002).
Das Herpesvirus simiae (Herpes-B-Virus, cercopithecine herpesvirus 1) kommt in Asien
endemisch bei Makaken vor (BRACK 1998; BRACK et al. 1995; HUFF u. BARRY 2003).
Infizierte Makaken sind meist symptomlose Virusträger, die aber in Zoologischen Gärten als
Ansteckungsquelle für z.B. Meerkatzen oder auch Menschen fungieren können (THOMPSON
et al. 2000). Es ist beschrieben, dass Arbeiter in einer Forschungseinrichtung, die Kontakt zu
Makaken hatten, sich mit dem Virus infizierten und erkrankten. Eine der Personen starb
(DAVENPORT et al. 1994). Ein Risiko für die Übertragung vom Affen auf den Menschen
sind vor allem Biss- und Kratzwunden (NIßLEIN u. HUNSMANN 1997). Die Inzidenz der
humanen Infektion, die mit grippeähnlichen Symptomen einhergeht, ist zwar gering, ohne
rechtzeitige antivirale Therapie liegt die Todesrate jedoch bei >70%. Bei Überlebenden sind
neurologische Spätfolgen außerdem nicht ungewöhnlich (HUFF u. BARRY 2003). Als
klinische Symptome zeigen sich bei Meerkatzen Anorexie, Lethargie (WILSON et al. 1990),
Ödeme im Gesichtsbereich, Erosionen bzw. Ulzerationen an Lippen, Zunge und Gaumen
(THOMPSON et al. 2000) und Salivation (BRACK 1977). Die Infektionen verlaufen oft
tödlich (LOOMIS et al. 1981; WILSON et al. 1990). THOMPSON et al. (2000) schildern den
Fall einer Brazzameerkatze, die 12 Jahre nach Ausbruch einer B-Virus Infektion klinische
Symptome einer Reaktivierung zeigte. Die Diagnose wird mittels Virusnachweis oder
Serologie (starke Kreuzreaktionen mit Herpesvirus hominis und SA-8) gestellt (BRACK et al.
1995). Pathologisch-anatomisch und –histologisch finden sich Akanthose und ballonierende
Degeneration der Mundschleimhäute mit intranukleären Einschlusskörperchen im
Randbereich der Ulzera (BRACK 1987), fokale Nekrosen in verschiedenen Organen und
intranukleäre Einschlusskörperchen in den Hepatozyten (WILSON et al. 1990). Erkrankte
Tiere sollten, im Hinblick auf das zoonotische Risiko, euthanasiert werden (BRACK et al.
1995).
Meerkatzen-Herpes wird durch das SA8-Virus hervorgerufen und kommt in Afrika
endemisch bei Pavianen und Meerkatzen vor (BRACK et al. 1995). Vermutlich ist der
ursprüngliche Wirt die Grüne Meerkatze, bei der klinisch vesikuläre Stomatitiden (PLESKER
u. COULIBALY 2002) und Ulzerationen in der Mundhöhle beobachtet wurden (BRACK
1977).
Fälle von Affenwindpocken sind von Monameerkatzen (DORRESTEIN et al. 1998),
Husarenaffen (MCCARTHY et al. 1968; GARD et al. 1983) und Grünen Meerkatzen
(CLARKSON et al. 1967; LEHNER et al. 1984) beschrieben. Erreger sind Varicella-Viren,
12
Literaturübersicht
wie das artspezifische Simian Varicella Virus (LEHNER et al. 1984), das Liverpool Vervet
Virus (LVV) (CLARKSON et al. 1967; BRACK 1977) oder das Patas Monkey Herpesvirus
(PHV) (MCCARTHY et al. 1968; BRACK 1977). Klinisch tritt ein juckendes,
windpockenartiges, makulopapulöses, rosarot gefärbtes Exanthem mit nachfolgender
Bläschenbildung und gelegentlichen Ulzerationen in den Vordergrund (BRACK et al. 1995).
Außerdem sind Apathie, Inappetenz und Dyspnoe zu beobachten. Die Kontagiosität scheint
nicht sehr hoch zu sein (LEHNER et al. 1984), die Todesrate kann aber über 50 % betragen
(BRACK et al. 1995). Bei LVV und PHV tritt der Tod meist 48 h nach Erscheinen der ersten
Symptome ein (JOSLIN 2003). Auch perakute Verlaufsformen treten auf (LEHNER et al.
1984). Bei Husarenaffen wurde eine Disseminierte Intravaskuläre Koagulopathie im
Anschluss an die Erkrankung beobachtet (GARD et al. 1983). Zur Therapie kann Acyclovir
eingesetzt werden (BRACK et al. 1995). In einer Affen-Auffangstation in den Niederlanden
litten im Zuge einer Affenwindpockenepidemie mehrere Mitglieder des Personals an
Störungen des Allgemeinbefindens und Übelkeit (DORRESTEIN et al. 1998).
Das Wirtsspektrum der Cytomegalieviren der Säuger ist in der Regel auf eine Tierspezies
beschränkt, die Organmanifestationen sind jedoch variabel (KAADEN 2002). Beim Vervet
Cytomegalovirus und beim SA 6-Virus handelt es sich um Cytomegalieviren, die aus
Nierengewebe von Grünen Meerkatzen isoliert wurden. Es können jedoch keine klinischen
oder pathologischen Erscheinungen mit diesen Viren in Zusammenhang gebracht werden
(BRACK 1977).
Vertreter der Familie der Adenoviridae rufen bei Grünen Meerkatzen Pneumonien und
Enteritiden mit hoher Morbidität und Mortalität hervor (KIM et al. 1967). Pathologischhistologisch zeigt sich dabei eine interstitielle Pneumonie mit Nekrosen und intranukleären
Einschlusskörperchen (BOYCE et al. 1978), sowie intranukleäre Einschlusskörperchen in
Gallengangs- und Pankreasgangepithelien, Leber, Milz und Darm. Es gibt keine wirksame
Therapie (BRACK et al. 1995).
Hepatitis A- und Hepatitis B-Viren sind nur für Menschen und Affen infektiös, können aber
durch andere Tiere übertragen werden (BRACK 1987). Bei Spontaninfektionen sind die
klinischen Symptome meist nur schwach ausgeprägt. Es fallen erhöhte
Transaminasenaktivitäten sowie leichte respiratorische und gastrointestinale Symptome auf
(BRACK et al. 1995). Von Grünen Meerkatzen sind spontane Hepatitis A-Infektionen
beschrieben (EICHBERG u. KALTER 1980). Hepatitis A-Antikörper wurden bei einer
Blaumaulmeerkatze aus dem Zoo Leipzig und bei Grünen Meerkatzen aus anderen deutschen
zoologischen Gärten nachgewiesen (HORNUNG 1993). Bei einer großflächigen
Untersuchung von Serumproben aus verschiedenen Primatenhaltungen auf Hepatitis BAntikörper war unter den Tieraffen nur eine Probe einer Grünen Meerkatze positiv (HECKEL
1998; HECKEL et al. 2001). Die Prophylaxe für beide Infektionen beim Menschen besteht in
einer aktiven Schutzimpfung. Der für Menschen entwickelte Hepatitis A-Impfstoff ist auch
für nichthumane Primaten geeignet (BRACK et al. 1995).
13
Literaturübersicht
Infektionen mit Rotaviren verursachen bei Neugeborenen vieler Tierarten und beim
Menschen streng lokalisierte Infektionen des Intestinaltraktes, die durch akute
Durchfallerkrankungen mit Depression und Schwäche gekennzeichnet sind (KAADEN 2002).
OTSYULA et al. (1996) schildern die Blutuntersuchungen von wildgefangenen und in
Gefangenschaft geborenen Grünen, Diadem- und Brazzameerkatzen auf RotavirusAntikörper. Die Infektionshäufigkeiten in der Wildbahn und in Gefangenschaft sind
annähernd gleich. Die ebenfalls ähnlichen Ergebnisse bei Jung- und Alttieren unterstreichen
die Tatsache, dass die Infektionen schon im frühen Alter stattfinden. Bei nicht bakteriell
komplizierten Infektionen wirkt sich die Zufuhr von Elektrolytlösungen günstig auf den
Krankheitsverlauf aus (KAADEN 2002).
Eine tödlich verlaufende Krankheit bei Makaken ist das Simian Hemorrhagic Fever, welches
durch das SHF-Virus (Togavirus) hervorgerufen wird. Reservoirwirt für diesen Erreger ist
der Husarenaffe (BRACK et al. 1995).
Die Familie Filoviridae besteht nur aus dem Genus Filovirus und 2 offiziellen Spezies, dem
Marburg- und dem Ebola-Virus (KAADEN 2002). Diese beiden Spezies sind Erreger von
hämorrhagischen Fiebererkrankungen beim Menschen in Afrika, wurden aber auch schon in
europäische Gebiete eingeschleppt. Das Erregerreservoir der Filoviren wurde bisher nicht
entdeckt (KRAUSS et al. 2004), bei Grünen Meerkatzen konnten keine persistierenden
Infektionen nachgewiesen werden (FISHER-HOCH et al. 1992). Es wird aber vermutet, dass
subklinische Infektionen sowohl beim Menschen als auch bei nichthumanen Primaten
vorkommen können (BIELITZKI 1999). 1967 wurde das Marburg-Virus erstmals mit
Grünen Meerkatzen aus Uganda nach Europa eingeschleppt. Nach Kontakt mit Blut oder
Organen der Tiere bzw. bei den Sekundärfällen nach Kontakt mit Patientenblut (STILLE et
al. 1968) erkrankten insgesamt 31 Menschen von denen 7 starben (BRACK et al. 1995). Die
klinischen Symptome bei experimentell infizierten Meerkatzen sind die einer teils tödlich
verlaufenden, fieberhaften Erkrankung (BRACK 1987). Bei menschlichen Erkrankungsfällen
dominieren hohes Fieber, Kopf- und Gliederschmerzen sowie Exantheme mit Hämorrhagien.
Außerdem können Störungen der Nierenfunktion und manchmal schwere Durchfälle auftreten
(BONIN 1969). Die Letalität liegt bei Primärinfektionen bei 30 %. Die Diagnose wird mittels
Serologie gestellt, es gibt keine Therapie (BRACK et al. 1995). LEROY et al. (2004)
beschreiben den Nachweis von Ebola-Virus-Antikörpern im Serum einer wild gefangenen
Brazzameerkatze aus Kamerun. Dies ist der erste Fall dieser Art bei Meerkatzen.
Zur Familie der Retroviridae gehören u.a. SRV-1 und -2 (D-Typ-Viren), STLV (C-TypVirus), SIV (Lentivirus) und das Simian Foamy Virus (Spumavirus) (BRACK et al. 1995;
KAADEN 2002). WOLFE et al. (2004) belegen am Beispiel des Simian Foamy Virus, dass
eine Übertragung von Retroviren zwischen verschiedenen Spezies, so auch Mensch und Affe,
möglich ist. SRV (Simian Retrovirus) -1 und -2 wurden zuerst aus asiatischen Makaken
isoliert. Klinische Symptome bestehen in Schädigungen des Immunsystems mit Anämie,
Leukopenie, Diarrhoe, Lymphadenopathien, Muskelschwäche und Lymphomen (SRV-1)
bzw. abdominalen Fibromatosen (SRV-2) (BRACK 1989). STLV (Simian T-cell Leukemia
14
Literaturübersicht
(lymphotropic) Virus) -Infektionen sind von Sumpf- (RIGOULET et al. 2000), Grünen
(FINCHAM et al. 1989), Gelbgrünen und Diademmeerkatzen sowie Husarenaffen
beschrieben (BRACK 1989). Die Übertragung durch Sexualkontakt ist nachgewiesen
(JOSLIN 2003). Infizierte Tiere zeigen in der Regel keine auffallenden klinischen Symptome,
in manchen Fällen gehen die Infektionen aber mit lymphoproliferativen Erkrankungen oder
(malignen) Lymphomen einher (BRACK 1987). SIV (Simian immune deficiency Virus) –
Infektionen sind bei Grünen (HARTUNG et al. 1992; JOLLY et al. 1996; JOY et al. 2001)
und Gelbgrünen Meerkatzen (BIBOLLET-RUCHE et al. 1996), Brazzameerkatzen
(BIBOLLET-RUCHE et al. 2004), Monameerkatzen (BARLOW et al. 2003; COURGNAUD
et al. 2003), Blaumaulmeerkatzen (COURGNAUD et al. 2003), Diademmeerkatzen (EMAU
et al. 1991; HIRSCH et al. 1993; ELLIS et al. 2004), Großen Weißnasenmeerkatzen
(COURGNAUD et al. 2002; COURGNAUD et al. 2003), Vollbartmeerkatzen (BEER et al.
1999; HIRSCH et al. 1999; BEER et al. 2000), Rotschwanzmeerkatzen (VERSCHOOR et al.
2004), Zwergmeerkatzen (RÜBEL et al. 1988) und Husarenaffen (BIBOLLET-RUCHE et al.
1996) entdeckt worden. Obwohl von jeder Spezies eine eigene Variante des SIV isoliert
wurde, wird angenommen, dass diese Varianten auch zwischen verschiedenen Spezies
übertragbar sind (BIBOLLET-RUCHE et al. 1996). In den natürlichen Wirten scheinen die
Infektionen asymptomatisch zu verlaufen (HIRSCH et al. 1999). Sowohl HIV-1 (GAO et al.
1999) als auch HIV-2 (HIRSCH et al. 1989) sollen ihren Ursprung in verschiedenen SIVVarianten haben. Da die zoonotische Bedeutung von SIV weiter diskutiert wird, empfehlen
sich bei der Erstvorstellung von Neuzugängen besondere Vorsichtsmaßnahmen im Umgang
und eine serologische Untersuchung auf das Vorliegen von SIV-Antigen (SASSNAU 1993).
SIV vermehrt sich, wie auch HIV, in T-Lymphozyten. Wenn klinische Symptome auftreten,
werden neben der Immunsuppression auch langsam progressive Lymphadenopathien oder
Lymphome beobachtet. Diese können, wie auch opportunistische Sekundärinfektionen, zum
Tode führen (BRACK 1989). Pathologisch-anatomisch und –histologisch fallen
Lymphfollikel-Hyperplasien gefolgt von -Atrophien, Enzephalitiden, Thymusatrophie und
maligne Lymphome auf (BRACK et al. 1995).
Die Gattung Cardiovirus, welche die Encephalomyocarditis (EMC) – Viren umfasst, gehört
zur Familie der Picornaviridae (KAADEN 2002). Infektionen mit dem EMC-Virus sind bei
Grünen und Brazzameerkatzen beobachtet worden (JOSLIN 2003). Als Reservoir für diesen
Erreger gelten Ratten, andere Nager, Schweine (BRACK 1987) und Schaben. Infektionen
erfolgen über kontaminiertes Futter, wobei junge Tiere empfänglicher sind als ältere (JOSLIN
2003). Die Erkrankung tritt weltweit sporadisch auf, Endemiegebiete befinden sich in den
südlichen USA. Meist treten plötzliche Todesfälle auf, gelegentlich zeigen sich kurz vorher
Paralysen (BRACK et al. 1995). Pathologisch-anatomisch und –histologisch werden eine
interstitielle Myokarditis mit Myokardnekrosen, Lungenödem und eine meist nur
geringgradige Enzephalitis diagnostiziert (BRACK 1987). BACKUES et al. (1999)
immunisierten in einem Zoo in den USA Diana- und Zwergmeerkatzen gegen EMC mittels
15
Literaturübersicht
einer aus attenuiertem Mengo-Virus hergestellten Vakzine. Mengo-Virus lässt sich
serologisch nicht von EMC unterscheiden.
2.2.3 Mykosen
In einer Gruppe von 4 Vollbartmeerkatzen im Zoo von Edinburgh trat eine nachgewiesene
Trichophyton Dermatophytose auf. Die Tiere zeigten Alopezie ohne Juckreiz, Hyperkeratose
und Schuppenbildung der Haut v. a. an Kopf und Vordergliedmaßen. Eine Behandlung mit
Enilconazol (Imaverol®) lokal und Terbinafin (Lamisil®) systemisch war erfolgreich
(KEEBLE et al. 2006).
PAULY (2004) berichtet von einer nachgewiesenen Cladosporium-Mykose bei einer
Monameerkatze. Bei Cladosporium spp. handelt es sich um fakultativ pathogene,
saprophytäre Bodenpilze (WEISS u. TEIFKE 1999). Das Tier wurde mit einer
umschriebenen, unvollständigen Alopezie an den Unterarmen, Unterschenkeln, dem Schwanz
und dem Rücken vorgestellt. Die Haut an den betroffenen Stellen schuppte und es trat
Juckreiz auf. Therapeutisch brachte eine Biotin-Substitution und eine 2malige Impfung mit
Insol® Dermatophyton nur einen Teilerfolg. Auf die Gabe von Antimykotika wurde bewusst
verzichtet, da die Leberwerte des Affen erhöht waren (PAULY 2004).
Infektionen mit Cryptococcus neoformans sind von Brazzameerkatzen (FIENNES 1967),
Rotschwanzmeerkatzen (HELKE et al. 2006) und Husarenaffen (SLY et al. 1977)
beschrieben. Der Erreger findet sich weltweit, gehäuft in mit Vogelkot verunreinigten Böden
(BRACK et al. 1995). Eine direkte Übertragung von C. neoformans zwischen Tieren und/oder
Menschen ist nicht beschrieben (SLY et al. 1977). Die Infektion erfolgt über Hautwunden,
den Respirations- oder Digestionstrakt (BRACK 1987). Klinisch können Apathie, Inappetenz
(HELKE et al. 2006), Krampfanfälle (SLY et al. 1977; DUNCAN 2003; HELKE et al. 2006),
Husten sowie offene Hautläsionen mit gelatinösem Inhalt (SLY et al. 1977) auftreten. Die
Diagnose wird mittels Antigen-Nachweis (Latex-Agglutinations-Test) in Serum oder Liquor
cerebrospinalis (SLY et al. 1977), Nachweis mukopolysaccharidhaltiger Kapseln um
Hefezellen (Tuschefärbung) oder In-vitro-Züchtung (BRACK et al. 1995) gestellt. Bei
pathologisch-anatomischen und -histologischen Untersuchungen werden Cryptococcus sp. in
Herz, Auge, Pankreas (HELKE et al. 2006), ZNS (SLY et al. 1977; HELKE et al. 2006),
Hirn- und Rückenmarkshäuten, Lunge, Schilddrüse, Nebenniere und Unterhaut (SLY et al.
1977) gefunden. Es kommt zur Ausbildung von Granulomen oder gelatinösen Zysten
(BRACK et al. 1995), so dass sich in den einzelnen Organen granulomatöse bzw. gelatinöse
Entzündungen entwickeln können. Zur Therapie sollte Amphotericin B eingesetzt werden.
Flurocytosin ist ein weiterer gebräuchlicher und weniger toxischer Wirkstoff, der jedoch den
Nachteil besitzt, dass C. neoformans ihm gegenüber relativ schnell Resistenzen entwickelt
(BRACK 1987).
16
Literaturübersicht
2.3 Parasitosen
Nach ROMMEL et al. (2000) wird als Parasitose der Befall eines Wirtes (Tier oder Mensch)
mit Parasiten bezeichnet, unabhängig davon, ob dieser Befall Krankheitserscheinungen
auslöst oder nicht. Als Infektion wird in der Parasitologie die Ansiedlung und der Aufenthalt
eines Parasiten auf oder in einem Wirt bezeichnet (ROMMEL et al. 2000).
Die Darstellung der Parasiten erfolgt in Anlehnung an die Systematik von ROMMEL et al.
(2000) und ECKERT et al. (2005). Eine tabellarische Übersicht zu Literaturangaben liefert
Tabelle 2 (S. 123), Antiparasitika sind in Tabelle 3 (S. 131) aufgelistet.
Endoparasiten
Protozoa
Die bei Säugern parasitierenden Arten der Gattung Trypanosoma werden in zwei große
Gruppen eingeteilt, die pathogenen Salivaria und die mehrheitlich apathogenen Stercoraria.
Protozoen der T. brucei-Gruppe gehören zu den Salivaria und gelten als Erreger verschiedener
komplexer Erkrankungen. Sie werden durch Insekten (Glossiniden, Tabaniden) übertragen
(ECKERT et al. 2005). JENEBY et al. (2002) konnten bei klinisch gesunden Grünen und
Diademmeerkatzen in Kenia serologisch T. brucei-Ag und T. brucei-Ak feststellen, es wurden
jedoch keine Trypanosomen im Blutausstrich nachgewiesen. Bei einer Zwergmeerkatze
wurden im Blutausstrich Trypanosomen der Untergattung Megatrypanum gefunden
(GARNHAM 1977), diese gehören zur Sektion der Stercoraria und gelten allgemein als
apathogen oder bedingt pathogen (ECKERT et al. 2005). Die zoonotische Bedeutung dieser
Parasiten ist eng an die geographische Verbreitung der Vektoren geknüpft (KRAUSS et al.
2004). Wichtigster Punkt der Prophylaxe ist die Insektenbekämpfung (JOSLIN 2003;
ECKERT et al. 2005).
In einem Fall konnte bei einer Grünen Meerkatze in Kenia eine kutane Leishmaniose durch
Leishmania major nachgewiesen werden (BINHAZIM et al. 1987).
Der weit verbreitete Flagellat Chilomastix mesnili (BURROWS 1972) (Familie
Retortamonadidae (ROMMEL et al. 2000)) wurde im Kot von Rotschwanzmeerkatzen aus
Uganda (GILLESPIE et al. 2003; GILLESPIE et al. 2004) sowie in Kotproben von
Husarenaffen und einer Campbellmeerkatze aus dem Zoo Barcelona nachgewiesen
(GRACENEA et al. 1998).
Die Gattung Giardia (Familie Diplomonadidae) umfasst weltweit verbreitete
Dünndarmparasiten von Säugern, Vögeln und Reptilien. Trophozoiten (bewegliche vegetative
Formen) besiedeln die Schleimhautoberfläche von Duodenum und Jejunum, sie vermehren
sich durch Zweiteilung und bilden Zysten, die mit dem Kot in die Außenwelt gelangen
(ECKERT et al. 2005). Die Zysten als infektiöses Stadium können bei mangelnder Hygiene in
Trinkwasser und auf Nahrungsmittel gelangen und so auch den Menschen infizieren
(KRAUSS et al. 2004). Entwicklungsstadien von Giardia lamblia wurden im Kot von
Rotschwanzmeerkatzen gefunden (GILLESPIE et al. 2003; GILLESPIE et al. 2004).
Infektionen mit Giardia-Arten verlaufen meist asymptomatisch. Bei besonders starken
17
Literaturübersicht
Infektionen tritt gelegentlich mukoider Durchfall auf, die Fettverdauung kann beeinträchtigt
sein, so dass die Tiere abmagern (BURROWS 1972). Zur Therapie werden in diesen Fällen
Imidazol-Derivate eingesetzt (BRACK et al. 1995).
Zu der im Darm parasitierenden Familie der Entamoebidae (Ordnung Amoebida) gehören
u.a. die Gattungen Entamoeba, Iodamoeba und Endolimax (ROMMEL et al. 2000).
Entamoeba coli, E. hartmanni, E. histolytica und Iodamoeba buetschlii werden häufig in
Kotproben von Meerkatzen nachgewiesen (BEAVER et al. 1988; MCGREW et al. 1989;
APPLETON et al. 1994; GRACENEA et al. 1998; MUNENE et al. 1998; MURIUKI et al.
1998; KARERE u. MUNENE 2002; GILLESPIE et al. 2003; GILLESPIE et al. 2004;
LEGESSE u. ERKO 2004). E. coli, E. hartmanni und Iodamoeba buetschlii gelten dabei als
apathogen (BRACK et al. 1995).
Auch Entamoeba chattoni und Endolimax nana sind apathogene Amöbenarten (BURROWS
1972), die gelegentlich bei parasitologischen Kotuntersuchungen von Meerkatzen gefunden
werden (APPLETON et al. 1994; GRACENEA et al. 1998).
Entamoeba histolytica kommt zunächst in der gewebsneutralen Minutaform (ca. 15 µm groß)
als Kommensale im Darm vor (AHNE 2000), von wo aus die Parasiten in enzystierter Form
mit dem Kot in die Außenwelt gelangen (ECKERT et al. 2005). Störungen der
Darmphysiologie stimulieren die Umwandlung der Minutaform in die pathogene Magnaform
(ca. 40 µm groß), die in die Dickdarmwand eindringt und durch Histolyse zu schweren
Darmschäden mit heftigem Durchfall (Amöbenruhr) führen kann (AHNE 2000). Im
Gegensatz zu Infektionen bei Neuweltaffen verursachen aber selbst invasive Infektionen bei
Altweltaffen oft keine klinischen Symptome (BEAVER et al. 1988).
Bei der Amöbiose handelt es sich um eine gefährliche Zoonose an der jährlich bis zu 100.000
Menschen sterben (KRAUSS et al. 2004).
Zur Therapie werden bei chronischem Verlauf neben diätetischen Maßnahmen NitroImidazol-Derivate wie Metronidazol, Carnidazol oder Dimetridazol eingesetzt (BRACK et al.
1995). Bei akuten Krankheitsfällen ist Paromomycin das Mittel der Wahl, eine Behandlung
mit Imidazol-Derivaten muss angeschlossen werden (BRACK et al. 1995).
Cyclospora sp. gehören zur Familie der Eimeriidae (ECKERT et al. 2005) und wurden in
Kotproben von Grünen Meerkatzen in Äthiopien und Kenia gefunden (EBERHARD et al.
1999; EBERHARD et al. 2001; LEGESSE u. ERKO 2004). Beim Menschen können
Infektionen mit diesen Parasiten wässrige Durchfälle hervorrufen (ORTEGA et al. 1994).
Die Gattung Cryptosporidium gehört zur Unterklasse der Coccidia (ROMMEL et al. 2000).
Sie umfasst Arten, deren Sporogonie in der Außenwelt oder auch im Wirtstier stattfinden
kann wodurch endogene Autoinfektionen verursacht werden können (ECKERT et al. 2005).
Die Kryptosporidiose des Menschen hat weltweit große Bedeutung als Darmerkrankung
immungeschwächter Patienten (KRAUSS et al. 2004). MURIUKI et al. (1997) und
MURIUKI et al. (1998) fanden Oozysten von Cryptosporidium sp. im Kot von Grünen
Meerkatzen in Kenia. Dabei fiel auf, dass bei einem Großteil der Tiere die Infektion nicht mit
Diarrhoe einherging, sondern asymptomatisch verlief. Auch von verschiedenen
18
Literaturübersicht
Meerkatzenarten im Zoo Barcelona wurden klinisch unauffällige Infektionen mit
Cryptosporidium sp. beschrieben (GOMEZ et al. 1992).
Vertreter der Gattung Sarcocystis gehören zu den so genannten zystenbildenden Kokzidien,
die in der Muskulatur ihrer herbi- oder omnivoren Zwischenwirte Zysten bilden
(ungeschlechtliche Vermehrung) (ROMMEL et al. 2000). Der Parasit wurde in der
quergestreiften Muskulatur einer Zwergmeerkatze gefunden (KARR u. WONG 1975), die
Infektion verläuft aber meist asymptomatisch (BAKER 1972). Der Mensch ist Endwirt und
infiziert sich durch den Verzehr von rohem, zystenhaltigem Fleisch (KRAUSS et al. 2004).
Die durch Gnitzen (Ceratopogoniden) übertragenen Arten der Gattung Hepatocystis (Familie
Plasmodiidae) sind vor allem Parasiten afrikanischer Affen und einiger anderer Tierarten
(ECKERT et al. 2005). Sie bilden in der Leber riesige Meronten (Ø bis 4mm), die
Entwicklung von Gamonten findet in Erythrozyten statt (ECKERT et al. 2005).
Entwicklungsstadien von Hepatocystis sp. darunter H. kochi und H. oriheli wurden in
Blutausstrichen und Leberpräparaten von Meerkatzen in Afrika gefunden (YAMASHIROYA
et al. 1971; GARNHAM 1977; LEATHERS 1978; TURNER et al. 1982).
Der Ziliat Balantidium coli (ROMMEL et al. 2000) wurde im Kot von Brazza- (KARERE u.
MUNENE 2002), Diadem- und Grünen Meerkatzen in Kenia nachgewiesen (MURIUKI et al.
1998; MUNENE et al. 1998). Im Gegensatz zu Menschenaffen verläuft die Infektion bei
Tieraffen oft asymptomatisch (BURROWS 1972). Auch beim Menschen ist der Verlauf oft
symptomlos, es kann aber auch zu ruhrartigen Krankheitsbildern kommen (KRAUSS et al.
2004). Als Therapie kommen Imidazol-Derivate, Paromomycin oder Tetracyclin zum Einsatz
(BRACK et al. 1995).
Vertreter der vermutlich apathogenen Gattung Blastocystis, deren taxonomische Position
noch unsicher ist (ROMMEL et al. 2000), wurden im Kot von Brazza- und Grünen
Meerkatzen im Osaka City Zoo (ABE et al. 2002) und bei Grünen Meerkatzen in Äthiopien
gefunden (LEGESSE u. ERKO 2004).
Helminthen
Saugwürmer (Trematoden) der Gattung Schistosoma sind zweiwirtige (Zwischenwirte:
Süßwasserschnecken), getrenntgeschlechtliche Parasiten, die in Blutgefäßen von Menschen
und Säugetieren schmarotzen (ECKERT et al. 2005). Schistosomiasis ist v.a. in Afrika ein
ernstzunehmendes Gesundheitsproblem (ELSE u. SATZGER 1982). Schistosoma mansoni
lebt in den Mesenterialvenen, die Eier penetrieren die Gefäßwand und brechen nach
Akkumulation im perivaskulären Gewebe ins Darmlumen durch. In der Außenwelt schlüpft
das Miracidium, das sich im Zwischenwirt über mehrere Stufen zur Zerkarie entwickelt. Die
Zerkarien verlassen den Zwischenwirt und suchen im Wasser aktiv einen Endwirt, in den sie
durch die Haut eindringen (BRACK 1987). Infektionen von Meerkatzen wurden bei
Obduktionen (KUNTZ et al. 1977) und koprologischen Untersuchungen nachgewiesen
(CHEEVER et al. 1970; FULLER et al. 1979; TSCHERNER 1989; MURIUKI et al. 1998).
Schistosoma haematobium wandert von den Darm- zu den Beckenvenen und gibt seine Eier
19
Literaturübersicht
in die harnableitenden Wege ab (BRACK 1987). Infektionen wurden bei Diademmeerkatzen
beobachtet (ELSE u. SATZGER 1982).
Trematoden der Gattung Dicrocoelium durchleben einen dreiwirtigen Zyklus mit Herbivoren
(z.B. Schafe, Ziegen) als Haupt- sowie Landschnecken und Ameisen als Zwischenwirte
(AHNE 2000). Das Krankheitsbild besteht in einer chronischen Entzündung der Gallengänge
und –blase (ROMMEL et al. 2000). Entwicklungsstadien dieser Parasiten wurden im Kot von
verschiedenen Meerkatzenarten in Uganda gefunden (GILLESPIE et al. 2003; GILLESPIE et
al. 2004).
Mittel der Wahl zur Therapie von Infektionen mit Trematoden ist Praziquantel (BRACK et al.
1995).
Als Spargana werden die Plerocercoide (Drittlarven) von Spirometra sp. (Familie
Diphyllobothriidae) bezeichnet, es handelt sich dabei um dreiwirtige Zestoden. Werden 2.
Zwischenwirte (Amphibien, Reptilien, Vogel- und Säugetierarten) von einem nicht als
Endwirt geeigneten Vertebraten (z.B. Affe, Mensch) verzehrt, so siedeln sich die Spargana in
inneren Organen dieser paratenischen Wirte an (ECKERT et al. 2005). Bei Meerkatzen
wurden Spargana im Rahmen von Obduktionen in Muskulatur, Unterhaut (KUNTZ et al.
1970) und auf serösen Häuten der abdominalen Organe (CHAI et al. 1997) gefunden.
Infektionen dieser Art sind häufig klinisch unauffällig, es kann aber im Zuge der
Larvenwanderung zu lokalen Entzündungen und Ödemen kommen (MYERS 1972).
Die Entwicklung von Mesocestoides sp. ist nur unvollständig erforscht, es wird ein 3-WirteZyklus angenommen. Im Gegensatz zu früheren Angaben (erster Zwischenwirt: Moosmilbe)
sind die ersten Zwischenwirte nicht bekannt. In den zweiten Zwischenwirten (zahlreiche
Vertebratenarten) entwickeln sich Tetrathyridien (Infektionslarven) in serösen Höhlen und
verschiedenen Organen. Durch den Verzehr befallener Zwischenwirte werden die Endwirte
infiziert (ECKERT et al. 2005). Bei Obduktionen von Grünen Meerkatzen wurden
Tetrathyridien in Brust- und Bauchhöhle gefunden (PRIEMER 1980; FINCHAM et al. 1995).
APPLETON et al. (1994) fanden bei koprologischen Untersuchungen von Diademmeerkatzen
in Südafrika Eier von Anoplocephala sp. (Familie Anoplocephalidae (ROMMEL et al.
2000)).
Ebenfalls zur Familie der Anoplocephalidae gehören die Vertreter der Gattung Bertiella
(ROMMEL et al. 2000). Es handelt sich hier um Parasiten, deren Zwischenwirte Milben der
Ordnung Oribatida sind (MYERS 1972). Bertiella studeri ist offenbar der häufigste
Bandwurm der Affen (TSCHERNER 1989). Funde dieser Zestoden bei Monameerkatzen
(CROCKETT 1985) sowie Rotschwanzmeerkatzen (GILLESPIE et al. 2003; GILLESPIE et
al. 2004) wurden beschrieben.
Als Cysticercus wird das Finnenstadium von Taenia sp. bezeichnet (ECKERT et al. 2005).
SULAIMAN et al. (1986) fanden bei Obduktionen von Grünen Meerkatzen und Husarenaffen
diese Entwicklungsstadien, bei denen es sich vermutlich um solche von Taenia hydatigena
20
Literaturübersicht
handelte, auf den serösen Häuten der Bauchorgane, dem Mesenterium und in einem Fall auch
auf Perikard und Pleura.
FOWLER et al. (1974) beschreiben eine Infektion mit Echinococcus sp. bei einem
Husarenaffen (siehe Kapitel 2.4.10).
Mittel der Wahl zur Therapie von Bandwurminfektionen ist Praziquantel, bei Gewebeformen
ist unter Umständen chirurgisches Entfernen in Betracht zu ziehen (BRACK et al. 1995).
Starker Befall mit Vertretern der Gattung Strongyloides (Zwergfadenwürmer) ist v. a. bei
Jungtieren Ursache von Erkrankungen mit Haut-, Lungen- oder Darmsymptomen und sogar
Todesfällen (ECKERT et al. 2005). Besonders gefährdet von dieser bedrohlichsten
parasitären Krankheit in Primatenbeständen sind Menschenaffen, Gibbons und Krallenaffen
(BRACK et al. 1995). Eigenheit von Strongyloides stercoralis ist, dass nur weibliche
Vertreter im Dünndarm ihrer Wirte leben. Besonders gefährlich ist die Fähigkeit dieser
Parasiten zur Autoinvasion, d.h. die Larven schlüpfen bereits im Darm und erreichen
Invasionsreife, daher können sie sich umgehend wieder ansiedeln. Im Kot sind daher auch
keine Eier nachweisbar, es sind Larven-Nachweisverfahren notwendig (TSCHERNER 1989).
Im Gegensatz zu Strongyloides stercoralis gelingt der Nachweis von Strongyloides
fuelleborni jedoch anhand der Eier im Kot (TSCHERNER 1989). Die Infektion der Wirte
durch frei lebende Larven erfolgt häufiger perkutan als durch orale Aufnahme (BRACK
1987). Entwicklungsstadien von Strongyloides sp. werden oft im Kot von Meerkatzen
nachgewiesen, schwere klinische Erkrankungen jedoch nicht beschrieben (PANDEY 1978;
MCGREW et al. 1989; APPLETON et al. 1994; MURIUKI et al. 1998; MUNENE et al.
1998; KARERE u. MUNENE 2002; MUTANI et al. 2003; GILLESPIE et al. 2003;
GILLESPIE et al. 2004). Strongyloides stercoralis wie auch Strongyloides fuelleborni können
durch frei lebende Larvalstadien von Affen auf den Menschen übertragen werden (BRACK
1987). Zur Therapie von Strongyloides-Infektionen werden Mebendazol und Thiabendazol
eingesetzt (BRACK et al. 1995). EULENBERGER et al. (1990) setzten bei Menschenaffen
erfolgreich Ivermectin ein.
Die Ordnung Strongylida enthält bedeutsame Gruppen von Nematoden, die im Magen-DarmTrakt oder in der Lunge verschiedener Haus- und Wildtierarten oder des Menschen
parasitieren und als Magen-Darm-Strongyliden oder Lungen-Strongyliden bezeichnet werden
(ECKERT et al. 2005).
Koprologische Nachweise von Vertretern der Gattung Strongylus wurden von Meerkatzen
im Zoo Lumbumbashi (PANDEY 1978) und im Freiland (MURIUKI et al. 1998; GILLESPIE
et al. 2004) beschrieben.
Die Ösophagostomose (Knötchenwurmbefall) tritt bei Altweltaffen auf und führt bei starkem
Befall zu Diarrhoe, Gewichtsverlust und Schwäche (BRACK et al. 1995). Die Parasiten
verursachen Granulome oder Zysten in der Tela submucosa bzw. Tunica muscularis des
Dickdarms und seltener auch an anderen Stellen (ORIHEL u. SEIBOLD 1972). Sekundäre
Besiedlung dieser Läsionen mit Bakterien kann zu Ulzerationen mit anschließender
21
Literaturübersicht
Perforation des Darmes führen (ORIHEL u. SEIBOLD 1972). Oesophagostomum sp.
darunter auch Oesophagostomum stephanostomum (GILLESPIE et al. 2003) wurden im Kot
von Meerkatzen aus Afrika und Barbados gefunden (APPLETON et al. 1994; MUNENE et
al. 1998; MUTANI et al. 2003; GILLESPIE et al. 2004; LEGESSE u. ERKO 2004). Infizierte
Primaten gelten als Ausgangsquelle für Oesophagostomum-Infektionen des Menschen, die
v.a. in Afrika auftreten (KRAUSS et al. 2004). Zur Therapie hat sich Ivermectin als
hochwirksam erwiesen (BRACK et al. 1995).
Ein naher Verwandter der Oesophagostomum-Arten ist Ternidens derminutus mit ähnlicher
Biologie und Lokalisation im Wirt (TSCHERNER 1989). APPLETON et al. (1994) fanden
bei Obduktionen von 3 Diademmeerkatzen Vertreter dieser Art im Darmkanal der Tiere.
GILLESPIE et al. (2003) wiesen Entwicklungsstadien von Ternidens sp. im Kot von
Rotschwanzmeerkatzen nach.
Vertreter der Gattung Necator gehören zur Familie der Ancylostomatidae (Hakenwürmer).
In der Humanmedizin stellt der intestinale Befall mit Necator americanus vor allem in den
Subtropen und Tropen ein Problem dar (ECKERT et al. 2005). Neben der akuten intestinalen
Infektion mit Übelkeit, Kopfschmerz, Kolik und Durchfall und dem chronischen Bild mit den
Folgen des ständigen Blutverlustes sind Hakenwürmer auch Verursacher des Larva migrans
cutanea Syndroms (BRACK 1987). McGREW et al. (1989) fanden Necator sp. im Kot eines
wildlebenden Husarenaffen und einer Grünen Meerkatze im Senegal, MUTANI et al. (2003)
fanden Hakenwurmeier im Kot von Gelbgrünen Meerkatzen.
Die Gattung Trichostrongylus der Familie Trichostrongylidae parasitiert im Magen-DarmTrakt von Vertebraten (ECKERT et al. 2005). Subklinische Infektionen kommen bei
Meerkatzen in Zoologischen Gärten vor (SAAD et al. 1983; NESIC et al. 1991). APPLETON
et al. (1994) fanden bei Obduktionen von zwei Diademmeerkatzen Trichostrongylus axei im
Magen-Darm-Kanal der Tiere. Infektionen des Menschen sind aus allen Erdteilen bekannt
und verlaufen ebenfalls oft symptomlos (KRAUSS et al. 2004).
Die Gattungen Ascaris und Toxascaris gehören zu den Vertretern der Superfamilie
Ascaridoidea (Spulwürmer) (ECKERT et al. 2005). Die Infektion mit Ascaris sp. erfolgt
durch die orale Aufnahme larvenhaltiger Eier, im Wirt erfolgt eine Körperwanderung mit
Verletzung von Leber- und Lungengewebe (ECKERT et al. 2005). Infektionen von in einem
Zoologischen Garten gehaltenen Dianameerkatzen (NESIC et al. 1991) und von direkt aus
dem Freiland gefangenen Gelbgrünen Meerkatzen (MUTANI et al. 2003) wurden
beschrieben. Für Toxocara sp. gehören Affen zu den paratenischen Wirten, sie infizieren sich
durch die Aufnahme larvenhaltiger Eier (ECKERT et al. 2005). Vom Darm aus begeben sich
die geschlüpften Larven auf eine somatische Wanderung und gelangen dadurch in
verschiedene Organe, bevorzugt die Muskulatur und das ZNS (ECKERT et al. 2005). SAAD
et al. (1983) fanden Entwicklungsstadien von Toxocara sp. in Kotproben von Grünen
Meerkatzen und Husarenaffen in einem Zoo im Sudan.
Die Gattung Enterobius (Madenwürmer) gehört zur Familie der Oxyuridae (ECKERT et al.
2005). Enterobius vermicularis ist der weltweit verbreitete Madenwurm des Menschen, er
22
Literaturübersicht
wird durch Schmier- und Schmutzinfektion übertragen (AHNE 2000). Parasiten dieser
Gattung konnten im Kot von Meerkatzen nachgewiesen werden (APPLETON 1989; NESIC
et al. 1991; APPLETON et al. 1994; MUNENE et al. 1998; GILLESPIE et al. 2004).
Zur Ordnung Spirurida (Rollschwänze) gehören unter anderem Physaloptera sp.,
Streptopharagus sp., Gongylonema sp. und Loa sp.. Spiruriden finden sich als Parasiten oft
in den Wänden des Verdauungstraktes, in anderen Geweben, serösen Höhlen und der Orbita.
Sie sind in ihrer Entwicklung an Arthropoden als Zwischenwirte gebunden (ECKERT et al.
2005).
Vertreter der Gattung Physaloptera wurden im Kot von verschiedenen Meerkatzenarten
nachgewiesen (APPLETON 1989; McGREW et al. 1989; MUTANI et al. 2003; GILLESPIE
et al. 2003). Diese Parasiten werden manchmal in großer Zahl, eingebettet in die Tunica
mucosa des Magens gefunden, sie können Gastritiden und Kolitiden hervorrufen (ORIHEL u.
SEIBOLD 1972).
Zwischenwirte der Spirocercidae, zu denen auch Vertreter der Gattung Streptopharagus
gehören, sind Käfer und Schaben (ECKERT et al. 2005). Entwicklungsstadien von
Streptopharagus sp. wurden im Kot (APPLETON 1989; McGREW et al. 1989; MUNENE et
al. 1998; KARERE u. MUNENE 2002; GILLESPIE et al. 2004) und im Darmkanal
(APPLETON et al. 1994) von Meerkatzen gefunden.
Die Gattung Gongylonema weist einen zweiwirtigen Zyklus mit koprophagen Käfern oder
Schaben als Zwischenwirten auf. Nach oraler Infektion des Endwirtes werden die Larven im
Magen frei und wandern in den Ösophagus zurück, wo sie in die Schleimhaut eindringen und
über Häutungen geschlechtsreif werden (ROMMEL et al. 2000). Bei einer
Weißnasenmeerkatze wurde Gongylonema macrogubernaculum in der Zungenschleimhaut
nachgewiesen (CRAIG et al. 1998). APPLETON et al. (1994) fanden Gongylonema sp. in
Kotproben von Diademmeerkatzen. Gongylonema pulchrum wie auch Abbreviata caucasica
infizieren nicht-humane Primaten genauso wie den Menschen (BRACK 1987).
Parasiten der Art Abbreviata caucasica (Spiruriden) wurden in Kotproben von
Diademmeerkatzen aus Südafrika gefunden (APPLETON et al. 1994). Sie sind auf Käfer,
Grashüpfer oder Schaben als Zwischenwirte angewiesen. Es gibt weder Berichte über
klinische Symptome bei Infektionen mit dieser Art bei Affen, noch beim Menschen (BRACK
1987).
ADDISON et al. (1986) beschreiben zwei Fälle bei denen in den Konjunktivalsäcken von, in
einem Zoologischen Garten gehaltenen, Husarenaffen Oxyspirura youngi gefunden wurde.
Als klinische Symptome können bei einem solchen Spiruridenbefall Konjunktivitis, Keratitis
oder auch ein Ulcus corneae auftreten. Therapeutisch werden Mebendazol, Thiabendazol,
Fenbendazol, Febantel, Ivermectin oder zur lokalen Anwendung Vitadral-Augenöl, im
Verhältnis 4:1 mit Ivermectin versetzt, eingesetzt (BRACK et al. 1995).
Der nur in Afrika verbreitete Augenwurm des Menschen Loa loa hat seinen Namen erhalten,
weil seine Mikrofilarien nicht selten im Auge angetroffen werden. Morphologisch nicht von
23
Literaturübersicht
der menschlichen Loa loa unterscheidbare Filarien sind auch bei Meerkatzen gefunden
worden (TSCHERNER 1989).
Häufige Parasiten der Affen in Zoos und Primatenzentren sind Vertreter der Gattung
Trichuris (Peitschenwürmer) (TSCHERNER 1989). Sie durchlaufen einen einwirtigen
Zyklus und gelangen durch orale Aufnahme larvenhaltiger Eier in den Wirt. Trichuris sp.
siedeln sich im Dickdarm an und verursachen bei starkem Befall hämorrhagische
Dickdarmentzündungen (ECKERT et al. 2005). Entwicklungsstadien werden häufig in
Kotproben von Meerkatzen gefunden (JASKOSKI u. KRZEMINSKI 1960; PANDEY 1978;
SAAD et al. 1983; MCGREW et al. 1989; MUNENE et al. 1998; MURIUKI et al. 1998;
GILLESPIE et al. 2003; MUTANI et al. 2003; GILLESPIE et al. 2004; LEGESSE u. ERKO
2004), darunter auch solche von Trichuris trichiura (APPLETON u. WHITE 1989; OCHOLI
et al. 1989; APPLETON et al. 1994), als dessen Hauptwirt der Mensch gilt (TSCHERNER
1989). Therapeutisch können Levamisol, Mebendazol, Fenbendazol und Ivermectin
eingesetzt werden (BRACK et al. 1995).
Infektionen von Meerkatzen mit Vertretern der Gattung Capillaria (Haarwürmer) werden
selten beschrieben (APPLETON et al. 1994; GILLESPIE et al. 2003). Diese Gattung umfasst
Arten, die sich entweder monoxen oder heteroxen entwickeln und in den inneren Organen von
Vertebraten parasitieren. Sie verursachen meist katarrhalische Entzündungen der
Schleimhäute (ECKERT et al. 2005).
Ektoparasiten
PLESKER (2000) beschreibt den Fall einer 20jährigen Grünen Meerkatze mit einer
generalisierten Psoergates-Milben Infestation. Das Tier zeigte weiß-beige, trockene,
schuppige Auflagerungen auf der Haut des gesamten Körpers. Therapeutisch wurde
erfolgreich Ivermectin eingesetzt.
24
Literaturübersicht
2.4 Organkrankheiten
Infektiöse Ursachen von Organkrankheiten werden in diesem Kapitel mit erwähnt, näher
darauf eingegangen wurde bereits in den Kapiteln 2.2 und 2.3.
2.4.1 Krankheiten der Atmungsorgane
Nase und Nasennebenhöhlen, Kehlkopf
Rhinitiden treten bei Affen häufig nach Transporten, Klimabelastungen oder auch im
Zusammenhang mit menschlichen Grippeepidemien auf. Zur Therapie werden in erster Linie
Vitamine sowie Immunstimulantien und nur eventuell Antibiotika empfohlen (BRACK et al.
1995).
JELINEK (1984) schildert die Ergebnisse der Obduktionen von insgesamt 830 Grünen
Meerkatzen. Dabei wurden in 8 Fällen purulente Entzündungen der Kieferhöhle festgestellt,
die mit Fistelbildung durch die äußere Haut einhergingen. In 3 Fällen handelte es sich um
bilaterale Geschehnisse. Solche Entzündungen der Nasennebenhöhlen (Sinusitis) entstehen
häufig im Anschluss an entzündliche Prozesse der Nasenschleimhaut, nicht selten sind sie
aber auch Folge von Frakturen oder Zahnfachentzündungen (WEISS u. RUDOLPH 1999).
Bei einer Grünen Meerkatze trat ein undifferenziertes Karzinom im Bereich der Nasenhöhle
auf (BENIASHVILI 1989), bei einer Diademmeerkatze wurde ein Adenom im Bereich des
Larynx gefunden (TARARA et al. 1984).
Bronchien und Lunge
Bronchopneumonien bzw. Pneumonien können parasitäre (z.B. Strongyloides spp.)
(BRACK et al. 1995), bakterielle (z.B. Bordetella spp. (KLEIN et al. 1987), Mycobacterium
spp. (WILSON et al. 1984)), mykotische (z.B. Cryptococcus neoformans) (SLY et al. 1977)
und virale (z.B. Adenoviren) (BOYCE et al. 1978) Ursachen haben. Oft entwickelt sich eine
Pneumonie als Komplikation anderer Erkrankungen, sie kann aber auch als primäre Infektion
auftreten (FIENNES et al. 1972). Die Therapie richtet sich nach der jeweiligen Ursache.
STILLS und RADER (1982) beschreiben eine katarrhalisch-eitrige Bronchopneumonie mit
linksseitigem Empyem bei einer Grünen Meerkatze. Aus dem Inhalt des Empyems wurden αhämolysierende Streptokokken und Eikenella corrodens isoliert.
Bei Sektionen von 339 Rotschwanzmeerkatzen waren Pneumonien die zweithäufigsten
Befunde nach Darmerkrankungen. Sie wurden hauptsächlich bei Jungtieren festgestellt, die
jünger als ein Jahr waren (LAPIN u. KRILOVA 1977).
Bei einer Anthrakose handelt es sich um die Ablagerung von Kohlenstaubteilchen (≤ 2µm)
im Lungeninterstitium. Makroskopisch sind vorwiegend multiple schwarze Punkte oder
schmale zackige Linien zu erkennen. Meist kommt es zu keiner Reaktion von Seiten des
Lungengewebes oder nur zu lokalen Fibrosen (WEISS u. RUDOLPH 1999). Als
Nebenbefund wird die Anthrakose bei Obduktionen von Meerkatzen aus verschiedenen
Tierparks beschrieben (ALTMANN et al. 1974; HAUPT et al. 1975).
25
Literaturübersicht
Primäre Lungentumoren kommen bei nicht-humanen Primaten nur selten vor (O'GARA u.
ADAMSON 2006). SULEMAN et al. (1984) schildern den Fall einer Diademmeerkatze, bei
der ein Bronchialkarzinom diagnostiziert wurde. Nach kurzem Krankheitsverlauf mit
Abgeschlagenheit, respiratorischer Symptomatik und Fieber verstarb das Tier. Bei der Sektion
wurde zusätzlich noch eine hochgradige akute katarrhalisch-eitrige Pneumonie festgestellt, es
ergab sich kein Hinweis auf das Vorliegen von Metastasen. Sekundär kann die Lunge, z.B.
bei Vorliegen eines Lymphosarkoms, in das tumoröse Geschehen mit einbezogen werden
(JAYO et al. 1990).
Mediastinum
Bei der Obduktion eines weiblichen Husarenaffen wurde ein großer Abszess im Bereich des
Mediastinums entdeckt, der jedoch zu keinerlei klinischer Symptomatik geführt hatte
(LANDSDOWN 1990).
2.4.2 Krankheiten der Verdauungsorgane
Mund- und Rachenhöhle
Wiederholte Befunde bei Obduktionen von Meerkatzen sind Entzündungen der Mundhöhle
(Stomatitiden). Es handelt sich teilweise um katarrhalische Entzündungen (JELINEK 1984).
Ulzerative Stomatitiden kommen u.a. bei Herpesinfektionen vor (BRACK 1977;
THOMPSON et al. 2000). Ferner berichten BORST et al. (1972) von einer hgr.
nekrotisierenden Glossitis und Ösophagitis mit unbekannter Genese bei einer
Rotohrmeerkatze. STILLS et al. (1979b) beschreiben den Fall einer Grünen Meerkatze, bei
der es nach chirurgischer Entfernung von Epuliden schnell zu einem Rezidiv kam.
Zähne
Bei Karies kommt es zu einer lokalen Entkalkung des Zahnschmelzes mit nachfolgender
enzymatischer Auflösung des organischen Materials der harten Zahnsubstanzen. Ursachen
sind von Mundhöhlenbakterien aus der Nahrung gebildete Säuren und bakterielle Enzyme.
Für das Auftreten von Karies ist wohl auch eine gewisse Disposition notwendig (WEISS
1999b). JELINEK (1984) berichtet von Karies in fortgeschrittenem Stadium bei einer Grünen
Meerkatze. Die klinische Symptomatik reicht von unauffällig, über Störung der
Nahrungsaufnahme bis zu Zahnabszessen und –fisteln. Therapeutisch werden die Behandlung
oder Extraktion der Zähne und prophylaktisch eine zuckerarme Fütterung empfohlen
(BRACK et al. 1995). Blutungen des Zahnfleisches können ein Zeichen für eine bestehende
Periodontitis sein (COHEN u. BOWEN 1972). Im Verlauf dieser Erkrankung kann es zur
Lockerung oder zum Verlust der Zähne kommen (JELINEK 1984). BRACK et al. (1995)
empfehlen als therapeutische Maßnahme Vitamin-C-Supplementierung und Antibiotika bei
bakterieller Infektion.
26
Literaturübersicht
Magen
Eine akute Magendilatation ist kein außergewöhnlicher Befund bei Altweltaffen und geht
hier meist mit Dyspnoe und Schleimhautzyanose einher (STILLS u. RADER 1982). Ursachen
sind oft Fütterungsfehler, besonders Überfütterung mit konzentrierter Nahrung. Die Therapie
besteht in sofortigem Futterentzug, Magenentleerung (mittels Sonde, Punktion oder
Chirurgie), Ampicillin oral und kreislaufunterstützenden Mitteln (BRACK et al. 1995). Akute
und subakute Gastritiden sind von Grünen Meerkatzen beschrieben, genauso wie
umschriebene, chronische, durch Physaloptera spp. hervorgerufene Entzündungen des
Magens (JELINEK 1984). Nicht selten werden bei Sektionen von Meerkatzen Magenulzera
festgestellt (SULEMAN et al. 1995). Bei der Entstehung dieser Ulzera wird Stress,
hervorgerufen durch das Fangen von Tieren aus der Wildbahn (SULEMAN et al. 2000) oder
die Haltungsbedingungen als solche (TARARA et al. 1995), eine entscheidende Rolle
zugesprochen. Therapeutisch stehen Stressminderung und reizarmes Futter im Vordergrund.
Des Weiteren kann Cimetidin eingesetzt werden. Die Prophylaxe besteht in artgerechter
Haltung und der Vermeidung von sozialen Stressfaktoren (BRACK et al. 1995).
Bis auf gutartige adenomatöse Polypen sind Magentumoren bei Affen eher selten
(BENIASHVILI 1989). YANAI et al. (1997) schildern den Fall einer 20 Jahre alten
weiblichen Brazzameerkatze aus einem Zoo mit einem metastasierenden Adenokarzinom im
Bereich der Pars cardiaca des Magens. Das Tier starb nach einer Krankheitssymptomatik mit
Anorexie, Abmagerung und Apathie. Die Bauchhöhle des Tieres enthielt ca. 30 ml eitriger
Flüssigkeit. Der von einer fibrösen Kapsel umgebene Tumor zeigte ein extensives,
infiltratives Wachstum mit Adhäsionen an Leber, Milz und Zwerchfell. Metastasen wurden in
den regionären Lymphknoten, Leber, Milz, Lunge und dem Peritoneum gefunden.
Darm
Bei einem 5 Jahre alten, männlichen Husarenaffen wurde eine Invaginatio ileo-caecalis
festgestellt (WISSER u. IPPEN 1981). Der Befund der Torsio caeci ist von Grünen
Meerkatzen beschrieben. Im Falle einer 11 Jahre alten, männlichen Grünen Meerkatze
handelte es sich um eine Drehung im Ileozäkalbereich in Richtung des Uhrzeigersinnes um
720°. Eine ebenfalls männliche, 16 Jahre alte Grüne Meerkatze verstarb aufgrund einer
Rotation im Uhrzeigersinn, die das Ileum und das Caecum einbezog. Die Ätiologie ist in
beiden Fällen unklar (COUILLARD et al. 2004). WISSER und IPPEN (1981) beschreiben
den Fall eines Volvulus mesenterialis colii bei einer Grünen Meerkatze. Das Tier hatte nach
einer unter Allgemeinanästhesie durchgeführten Wundbehandlung über mehrere Tage bis zum
Tod tympanische Erscheinungen gezeigt. Die Sektion ergab, dass das Colon descendens kurz
vor dem Übergang ins Rektum um 720° im Uhrzeigersinn gedreht war. Die Prognose ist im
Falle solcher Lageveränderungen vorsichtig zu stellen. Eine rasche chirurgische Intervention
und Schocktherapie können aber irreversible Schädigungen verhindern (FINCHAM et al.
1992).
27
Literaturübersicht
Bei einer juvenilen, männlichen Grünen Meerkatze wurde eine Obstruktion durch einen
Phytobezoar im Bereich des Colon descendens festgestellt. Das Tier zeigte ein vermindertes
Allgemeinbefinden und war dehydriert. Bei rektaler Palpation konnte eine harte
Umfangsvermehrung ausgemacht werden. Intra operationem wurde festgestellt, dass große
Teile des Colon descendens bereits nekrotisch verändert waren. Der Phytobezoar bestand aus
Stroh, welches den Tieren zur Beschäftigung angeboten wurde (SEIER et al. 2005).
SEIBOLD et al. (1972) schildern eine Art Malabsorptionssyndrom bei Zwergmeerkatzen.
Die Symptome bestehen in fortschreitendem Gewichtsverlust und intermittierendem
Durchfall. Bei der pathohistologischen Untersuchung des Darmes fallen eine hgr.
Zottenatrophie und eine glanduläre Hyperplasie auf.
Bei Husarenaffen aus einer Kolonie wurden bei 74 % der Tiere bei der Obduktion an den
Mesenterialgefäßen arteriosklerotische Veränderungen gefunden. Damit in Zusammenhang
könnten die ischämischen Darminfarkte im Bereich des Kolons stehen, die ebenfalls bei
diesen Tieren diagnostiziert wurden (JOKINEN u. JEROME 1985).
Diarrhöen kommen bei Meerkatzen relativ häufig vor (HIRD et al. 1984). Als Ursache
kommen Fütterungsfehler, Stress (BRACK et al. 1995) und auch infektiöse Agentien wie
Bakterien (GOODWIN et al. 1983), Viren (OTSYULA et al. 1996) und Parasiten (ORIHEL
u. SEIBOLD 1972; BEAVER et al. 1988) in Frage. Zur Diagnosefindung können
parasitologische, bakteriologische und virologische Kotuntersuchungen durchgeführt werden.
Die Therapie der Diarrhoe richtet sich nach der Ursache. Es kommen Antibiotika, ImidazolDerivate, Anthelmintika und Antidiarrhoeika (auch pflanzlich) zum Einsatz. Flüssigkeits-,
Elektrolyt- und Glukosezufuhr sollten die Therapie unterstützen (BRACK et al. 1995).
Kolitiden (KRILOVA u. LAPIN 1979; JOKINEN u. JEROME 1985) und Enteritiden sind
ein häufiger Sektionsbefund bei Meerkatzen (JELINEK 1984).
2.4.3 Krankheiten der Leber
Erkrankungen der Leber werden bei Meerkatzen oft erst im Rahmen von Obduktionen
diagnostiziert.
Missbildungen der Leber sind nicht bekannt, es sind aber zwei Fälle von Grünen Meerkatzen
mit Gallengangszysten und einer unvollständigen Verdopplung der Gallenblase beschrieben
(JELINEK 1984).
THAM et al. (1992) berichten von einer männlichen Brazzameerkatze, die hgr. diffuse
hepatische Veränderungen im Sinne einer Cholangiohepatitis durch sekundäre
Amyloidablagerungen aufwies. LANDSDOWN (1990) erwähnt im Rahmen einer
Aufstellung des Obduktionsmaterials von Husarenaffen aus 12 Jahren insgesamt 9 Fälle mit
einer fettigen Leberzelldegeneration im histologischen Bild.
Durch Mykotoxine im Futter kann eine Hepatitis hervorgerufen werden (FINCHAM et al.
1991). Hinweise auf Infektionen mit dem Hepatitis-A- (HORNUNG 1993) und Hepatitis-BVirus (HECKEL 1998) bei Meerkatzen ohne klinische Symptome wurden im Rahmen von
Ak-Titer Erhebungen festgestellt.
28
Literaturübersicht
Leberabszesse sind bei Grünen Meerkatzen gefunden worden (JELINEK 1984). Sie können
durch Entamoeba histolytica oder auch Bakterien wie Yersinia enterocolitica, Staphylococcus
aureus und hämolysierende Streptokokken verursacht werden (BRACK et al. 1995).
Eine junge Eulenkopf- und eine junge Zwergmeerkatze verstarben plötzlich. Bei der
Obduktion zeigte sich bei beiden Tieren ein hgr. Befall der Leber mit Pentastomidenlarven
(KRUCKENBERG et al. 1972). Durch Parasiten verursachte pathologische Veränderungen
der Leber können oft schon makroskopisch erkannt werden (JELINEK 1984).
Eine biliäre Zirrhose ist von einer Grünen Meerkatze beschrieben (KRILOVA u. LAPIN
1979). Dabei handelt es sich um eine Leberzirrhose, die sich auf der Basis eines Verschlusses
der extrahepatischen Gallenwege entwickelt hat (HERMANNS 1999b).
JELINEK (1984) fand bei Obduktionen an Grünen Meerkatzen 5 Fälle von chronischer
Cholangitis und Cholecystitis. In zwei Fällen fanden sich dabei Konkremente in der
Gallenblase. Bei 29 Tieren wurde eine Dilatation der Gallenblase gefunden, ohne dass die
Passage durch den Ductus choledochus beeinträchtigt gewesen wäre. Es wird vermutet, dass
die Tiere vor ihrem Tod längere Zeit inappetent waren.
Primäre hepatozelluläre Tumoren sind selten bei nichthumanen Primaten (REINDEL et al.
2000). Bei einer Aufstellung der Obduktionsbefunde von 1065 Affen (32 Arten) trat ein
einziger Fall eines hepatozellulären Karzinoms bei einer Grünen Meerkatze auf (SEIBOLD u.
WOLF 1973). Sekundär kann die Leber z.B. im Rahmen von Lymphosarkomen (JAYO et al.
1990) oder einer Lymphogranulomatose (MORITA 1974) in das tumoröse Geschehen
einbezogen werden.
2.4.4 Krankheiten des exokrinen Pankreas
KRILOVA und LAPIN (1979) berichten von einer Pankreasatrophie in Verbindung mit
zystischen Veränderungen als Befund bei der Obduktion einer Grünen Meerkatze. Eine
Atrophie des Pankreas kann einerseits durch chronischen Eiweißmangel (marantische
Atrophie) oder durch unzureichende Produktion von enteralen Hormonen (Cholezystokinin,
Sekretin) aufgrund einer chronischen Enteropathie (Inaktivitätsatrophie) bedingt sein
(HERMANNS 1999a).
Eine Pankreatitis kann im Gefolge systemischer Krankheiten, wie viralen Infektionen,
Parasitosen oder Diabetes mellitus auftreten (BRACK et al. 1995). LANDSDOWN (1990)
erwähnt in einer Aufstellung von Obduktionsbefunden bei Husarenaffen 9 Fälle mit einer
chronischen Pankreatitis und 2 mit einer interstitiellen Pankreasfibrose.
Bei einer 29 Jahre alten weiblichen Eulenkopfmeerkatze aus dem Leipziger Zoo wurde ein
Adenokarzinom des exokrinen Pankreas, mit Metastasierung in die Uterusserosa, das die
Nebenniere umgebende Fettgewebe und die Inguinallymphknoten, diagnostiziert. Die
Symptome, die das Tier zeigte, waren weitgehend unspezifisch. Erhöhte Amylaseaktivitäten
im Serum und eine Glukosämie gaben jedoch Hinweis auf eine Beteiligung des Pankreas am
Krankheitsgeschehen. Das Tier wurde euthanasiert (EULENBERGER et al. 2004).
29
Literaturübersicht
2.4.5 Krankheiten des Herz-Kreislauf-Systems
Zu den bei Meerkatzen aufgetretenen Missbildungen des Herzens gehört ein
Kammerseptumdefekt mit einer Dysplasie der Trikuspidalklappe bei einem Husarenaffen.
Das Tier starb im Alter von 6 Monaten nach kurzer Symptomatik mit hgr. Dyspnoe und
Zyanose (SAO-LING et al. 2004).
Ein Panzerherz ist ein von einem dicken Gewebsmantel, Kalk oder anderen Produkten einer
Herzbeutelentzündung umschlossenes, in seinen Bewegungen dadurch behindertes Herz
(KRONBERGER 1991b). Bei der Sektion einer männlichen Weißnasenmeerkatze aus einem
Tierpark
wurde
ein
Panzerherz
diagnostiziert.
Hervorgerufen
wurde
die
Herzbeutelentzündung durch Larvenstadien (Zoenurusblasen) eines Bandwurmes der Gattung
Multiceps (HAUPT et al. 1975).
WOOD et al. (1978) schildern den Fall einer Grünen Meerkatze mit einer durch
Staphylokokken verursachten Endokarditis. Das Tier starb und bei der Obduktion konnten
große murale Thromben im Bereich des rechten Ostium atrioventriculare und des Truncus
pulmonalis sowie kleine Thromben an den Segeln der Pulmonal- und der Mitralklappe
gefunden werden. Außerdem befanden sich große Abszesse in den rechten Lungenlappen und
es waren Infarkte im Bereich der Lunge und der Nieren zu sehen.
Bei der Obduktion einer Grünen Meerkatze wurden Myokardinfarkte beobachtet, die
wahrscheinlich durch Atherosklerose der Koronargefäße verursacht wurden (KRILOVA u.
LAPIN 1979). Eine Myokarditis kann bakterielle, virale oder parasitäre Ursachen haben
(BRACK et al. 1995). Eine Grüne Meerkatze verstarb nach einer durch Pseudomonas
aeruginosa bedingten Myokarditis, die im Zusammenhang mit einer akuten nekrotisierenden
Bronchopneumonie auftrat (STILLS et al. 1979b). Systematische histopathologische
Untersuchungen des Myokards von 117 klinisch unauffälligen Grünen Meerkatzen zeigten in
99 Fällen (84,6 %) pathologische Abweichungen, die von nicht-entzündlichen Veränderungen
über Hypertrophie der Herzmuskelfasern bis zu Myokarditiden in verschiedener Ausprägung
reichten (JELINEK et al. 1977).
Eine 18 Jahre alte, männliche Monameerkatze aus einem zoologischen Garten verstarb
aufgrund einer Kardiomyopathie in deren Folge sich ein muraler Thrombus im linken
Ventrikel sowie ein Thrombus in der Arteria iliaca externa entwickelten. Letzterer führte zur
Parese der Hintergliedmaßen (DAVIS u. GAMBLE 2004).
Zu den bei Meerkatzen aufgetretenen Missbildungen der Blutgefäße gehören die
Ausbildung einer dritten Koronararterie bei Grünen Meerkatzen (NIKOLIC et al. 2004) und
ein doppelter Aortenbogen, bestehend aus zwei symmetrischen, sich zu einer Aorta
vereinigenden Teilen, bei einer Zwergmeerkatze (STILLS et al. 1979a).
Bei der Ätiologie der Atherosklerosen haben viele unterschiedliche Faktoren wie Alter,
Geschlecht und Blutlipidspiegel einen Einfluss (MALINOW 1965). Die Atherosklerose der
Affen kommt ätiologisch derjenigen des Menschen ziemlich nahe (LAPIN u. JAKOVLEVA
30
Literaturübersicht
1964). Das Vorkommen ist bei Husarenaffen (MAHLEY et al. 1980), Zwerg-, Brazza-,
Weißnasen- und Grünen Meerkatzen (MALINOW 1965) beschrieben.
Unter einem Aneurysma versteht man jegliche Form einer irreversiblen Erweiterung von
Arterien (DAHME 1999). KRILOVA (1980) erwähnt in einer Aufstellung der
Sektionsbefunde von Grünen Meerkatzen zwei Aortenaneurysmen.
2.4.5.1 Blut
Bei Meerkatzen gibt es die Blutgruppen A, B und AB, wobei Gruppe A weit häufiger
vorkommt als die anderen beiden. Es gibt keine Hinweise auf Meerkatzen, die die Blutgruppe
0 tragen. Der Nachweis der Erythrozyten-Ag über serologische Untersuchungen bereitet
Schwierigkeiten, wogegen die Bestimmung mittels Speicheluntersuchung erfolgreich ist
(MOOR-JANKOWSKI u. WIENER 1972; DOWNING et al. 1973; JOLLY et al. 1977).
Hämatologische (HUSER 1970; SLY et al. 1978) und klinisch-chemische Daten
(ALTSHULER u. STOWELL 1972; CRISSEY et al. 1999; NGURE et al. 2000; LAIR et al.
2000) wurden von verschiedenen Autoren für unterschiedliche Arten zusammengestellt
(KESSLER et al. 1983; BARONETZKY-MERCIER 1992; BRACK et al. 1995; ISIS 2002)
(Tabelle 4, S. 134).
Es muss jedoch die Schwierigkeit erwähnt werden, die Blutwerte „normaler“ Affen zu
messen. Der Stress, dem die Tiere während des Fangens und der Fixation ausgesetzt sind,
bzw. die Einflüsse der zur Immobilisation verwendeten Medikamente haben teilweise nicht
kalkulierbare Einflüsse auf die Parameter der Blutuntersuchung (HAWKEY et al. 1978).
Grüne Meerkatzen haben höhere Serum-Amylase Werte als andere Tieraffen. Außerdem
haben männliche Tiere dieser Art signifikant höhere Werte als weibliche (ALTSHULER u.
STOWELL 1972). Die hämatologischen Veränderungen innerhalb des ersten Lebensjahres
von Husarenaffen entsprechen denen beim Menschen. Erhöhte Hämatokrit- und
Hämoglobinwerte ergeben sich aus dem anfänglichen Bestehen von großen Erythrozyten, die
noch fetales Hämoglobin enthalten (SLY et al. 1978). KESSLER et al. (1983) zeigen auf, dass
für einige Parameter signifikante Unterschiede zwischen männlichen und weiblichen sowie
zwischen graviden und nicht graviden Husarenaffen bestehen.
Altersabhängige Veränderungen der Immunglobulin-Blutspiegel bei Grünen Meerkatzen sind
beschrieben. So ist IgG (maternalen Ursprungs) und IgM (fetalen Ursprungs) zum Zeitpunkt
der Geburt bereits vorhanden, IgA wird über die erste Muttermilch, die einen sehr hohen
Gehalt aufweist, aufgenommen (FUJIMOTO et al. 1988).
2.4.6 Krankheiten der Harnorgane
Physiologische Harnparameter von Primaten, darunter Weißkehlmeerkatzen, ermittelte
KRAUSE (1990).
JELINEK (1984) berichtet aus den Sektionsbefunden von 830 Grünen Meerkatzen von einem
Tier mit einer Aplasie der rechten Niere und 9 Tieren mit Zysten im Nierenparenchym. Bei
31
Literaturübersicht
einer Monameerkatze wurde bei einer sonografischen Untersuchung des Abdomens als
Nebenbefund eine große Nierenzyste festgestellt (DAVIS u. GAMBLE 2004).
Bei einer 13 Jahre alten, männlichen Brazzameerkatze mit einem Diabetes mellitus wurde, im
Rahmen einer sekundären systemischen Amyloidose, eine Amyloidnephrose festgestellt.
Nephritiden können durch Proteus mirabilis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas
aeruginosa oder E. coli hervorgerufen werden, kommen bei Affen jedoch nicht sehr häufig
vor (ROBERTS 1972). Die Infektion erfolgt meist hämatogen, seltener aszendierend
(BRACK et al. 1995). BORST et al. (1972) erwähnen eine tödlich verlaufende
Glomerulonephritis bei einer Meerkatze aus dem Zoo Rotterdam. Bei Sektionen von 76
Husarenaffen wurde in einem Fall eine Pyelonephritis, in einem Fall eine chronische Pyelitis
und in 44 Fällen eine chronische interstitielle Nephritis diagnostiziert (LANDSDOWN 1990).
BRACK et al. (1995) empfehlen zur Therapie von Infektionen des Urogenitaltraktes DiaNephritex® (Ciprofloxacin).
Bei neoplastischen Erkrankungen wie Lymphosarkomen (JAYO et al. 1990) oder
Lymphogranulomatosen (MORITA 1974) kann auch die Niere mit einbezogen werden.
Eine 16 Jahre alte, männliche Dianameerkatze entwickelte, höchstwahrscheinlich infolge
einer chronischen Niereninsuffizienz, ein Krankheitsbild, das durch Apatit-Kristall
Ablagerungen im Bereich des Karpus, des Ischiums und des Tarsus gekennzeichnet war
(LINTHOUDT et al. 1992).
LANDSDOWN (1990) berichtet aus dem Obduktionsgut von 76 Husarenaffen von 18 Fällen
mit einer chronischen Zystitis.
2.4.7 Krankheiten des Nervensystems
VANDEVELDE (1973) beschreibt den Fall eines älteren Husarenaffen mit Epilepsie und
Choreo-Athetose, die durch eine diffuse Makrogliose und Pseudokalkablagerungen in den
Stammganglien hervorgerufen wurde. Ätiologie und Pathogenese der Krankheit konnten nicht
geklärt werden.
Bei Obduktionen von Husarenaffen wurde in 10 Fällen eine fokale oder diffuse Meningitis
festgestellt. Hinweise auf klinische Symptome lagen nicht vor (LANDSDOWN 1990).
Bei einer experimentellen Verabreichung von Mykotoxinen an Grüne Meerkatzen konnte im
Anschluss u. a. eine Demyelinisierung von Nervenfasern beobachtet werden (FINCHAM et
al. 1991).
2.4.8 Krankheiten der Sinnesorgane
Katarakte werden in primäre, d.h. isolierte, und in sekundäre, d.h. mit anderen intraokularen
oder systemischen Krankheitsprozessen assoziierte Formen eingeteilt. Die Grenze ist jedoch
unscharf (SCHÄFFER 1999).
THAM et al. (1992) berichten von einer Katarakt bei einer Brazzameerkatze mit einem
Diabetes mellitus. Eine männliche Monameerkatze aus einem Zoo fiel durch
32
Literaturübersicht
Aktivitätsabnahme, vermindertes Klettern und vorsichtiges Tasten in der Anlage auf. Es
wurde auf beiden Augen eine mature Katarakt festgestellt. Daraufhin wurde bei dem Tier
beidseitig operativ der Linsenkern zertrümmert und entfernt sowie eine Kunstlinse in die
erhaltene Linsenkapsel implantiert. Eine Woche nach dem Eingriff zeigte das Tier das
normale Verhalten eines gesunden Affen (PFEIL et al. 1997). Ein ähnliches Vorgehen im
Falle einer Kleinen Weißnasenmeerkatze mit einer diabetischen Katarakt beschreiben
DUTTON et al. (2003b). Allerdings konnten bei dem Tier keine Kunstlinsen implantiert
werden, da die Linsenkapsel auf beiden Seiten während der Entfernung des Linsenkernes
zerriss. Einen Tag post operationem war das Tier aber in der Lage, auf Dinge zu reagieren, die
vorher ignoriert worden waren.
2.4.9 Krankheiten des Endokriniums
Ein Diabetes mellitus ist von verschiedenen Meerkatzenarten beschrieben (THAM et al.
1992; DUTTON et al. 2003b; EULENBERGER et al. 2004). Dieser Begriff beschreibt im
klinischen Sinne nur einen Symptomenkomplex und weist zunächst nur auf Störungen
innerhalb eines weitgespannten Systems der Stoffwechselregulation hin. Störungen können
sowohl vom Inselapparat des Pankreas selbst als auch von neurogenen, neurohormonellen
oder auch nur hormonellen Einflüssen ausgehen (SCHMIDT u. DAHME 1999). Wie in der
Humanmedizin wird bei den Affen zwischen Typ I Diabetes und Typ II Diabetes
unterschieden, wobei Typ II häufiger auftritt (WALZER 1999). Symptomatisch sind v.a.
Hyperglykämie und Glukosurie (BRACK et al. 1995). DUTTON et al. (2003a) empfehlen die
Diagnostik mittels Bestimmung von glucosyliertem Hämoglobin.
EULENBERGER et al. (2004) beschreiben den Fall einer 29 Jahre alten, weiblichen
Eulenkopfmeerkatze mit einem Diabetes mellitus. Es wird vermutet, dass es sich in diesem
Fall um einen schon länger bestehenden Altersdiabetes handelte, der durch die Verdrängung
der Langerhansschen Inseln durch neoplastische Zellen eines Pankreaskarzinoms noch
verstärkt wurde. Das Tier wies kurz vor seinem Tod einen Blutglukosespiegel von 37,6
mmol/l auf.
Die Therapie richtet sich nach der Ausprägung des Diabetes mellitus. Bei asymptomatischen
Tieren kann eine Diät, welche die Schwankungen der Blutglukosekonzentration minimiert
und zur Gewichtsreduzierung führt, ausreichen. Ansonsten kommt bei einem Typ I Diabetes
humanes Insulin zum Einsatz, wobei gerade zu Therapiebeginn eine Überwachung der
Patienten im Hinblick auf eine Hypoglykämie unabdingbar ist. Bei einem Typ II Diabetes
können Sulfonylharnstoffe, die die endogene Insulinsekretion stimulieren sollen, eingesetzt
werden (WALZER 1999).
2.4.10 Krankheiten der Bewegungsorgane
In einer Gruppe von Grünen Meerkatzen zeigten über einen Zeitraum von 9 Jahren 7
Jungtiere Anzeichen einer Rachitis. Vier der betroffenen Tiere waren Mitglieder ein und
derselben Familie, in der auch 2 Fälle von Osteomalazie auftraten. Die Erscheinungen wie
33
Literaturübersicht
Skoliose, Lordose, Verformung der Gliedmaßen und Zahnausfall traten trotz zusätzlicher
Kalzium- und Vitamin D-Gaben auf. In derselben Kolonie traten bei einer 20 Jahre alten
weiblichen Meerkatze eine schwere Osteoporose mit Hyperplasie der Parathyreoidea und ein
weniger schwerer Fall von Osteoporose bei einem 21jährigen weiblichen Tier auf. Keines der
Tiere hatte Zugang nach draußen (PLESKER u. ZWERGER 2002).
JELINEK (1984) berichtet aus dem Obduktionsgut von 830 Grünen Meerkatzen von einem
Tier mit Kyphose und Skoliose mit traumatisch bedingter Synostosenbildung zwischen den
Wirbelkörpern.
Ein Husarenaffe aus einem zoologischen Garten fiel durch fortschreitende Lahmheit der
Hintergliedmaßen auf. Radiologisch konnten Verschattungen im Bereich des Wirbelkanals im
Abschnitt der Lendenwirbelsäule festgestellt werden. Als sich 8 Monate später eine Parese
der Hintergliedmaßen manifestiert hatte, ergab die mikroskopische Untersuchung von
Zerebrospinalflüssigkeit Protoscolices von Echinococcus sp.. Nach dem Tod des Tieres
wurde bei der Obduktion eine Bandwurmzyste im Rückenmarkskanal im Bereich des vierten
Lendenwirbels gefunden. Eine Besonderheit des Krankheitsbildes des Husarenaffen bestand
darin, dass er die Lahmheit der Hintergliedmaßen längere Zeit durch „handstandartiges“
Laufen auf den Vordergliedmaßen kompensierte (FOWLER et al. 1974).
Bei einer Grünen Meerkatze wurde ein Chondrom im Bereich eines Brustwirbels gefunden
(JELINEK 1984).
JELINEK (1984) erwähnt ferner 20 Fälle von traumatisch bedingten, purulenten
Entzündungen der Muskulatur oder der Gelenke bei Grünen Meerkatzen.
2.4.11 Krankheiten der Haut und des Haarkleides
Erkrankungen der Haut und Störungen im Haarkleid sind vielfach Anzeichen von Mangeloder Fehlernährung und/oder Haltungsfehlern (Luftfeuchtigkeit, Raumtemperatur,
Langeweile) (BRACK et al. 1995).
Bei weiblichen Husarenaffen werden Pigmentierungsänderungen während des
Fortpflanzungsgeschehens beobachtet, die v. a. Haut- und Haarpartien im Gesichtsbereich
betreffen. Während der Gravidität entfärbt sich die vorher dunkel pigmentierte Haut des
Nasenrückens und der Nasenflügel zu blassen, fleischfarbenen Flächen. Die kurzen,
spärlichen, auf der Nase stehenden Härchen sind dann weiß. Außerdem verändert sich die
schwarzbraune Augenbrauen- und Zügelbehaarung in eine rötliche. Die Verfärbungen sind
während der Hochträchtigkeit am deutlichsten ausgeprägt und werden erst nach Geburt und
Säugezeit wieder dunkel. Untersuchungen zu Ursache, Bedeutung und Funktion der
Pigmentierungsänderungen fehlen. Als Grund wird der veränderte Hormonhaushalt
angenommen (SCHRÖPEL 1989).
JUAN-SALLES et al. (2001) schildern zwei Fälle von Zwergmeerkatzen mit Alopezie,
Hyperkeratose und Hyperpigmentation im Bereich von Rücken und Schwanz bzw.
Schwanz und Hintergliedmaßen. Obwohl keines der Tiere einen ausgeprägten Zinkmangel
34
Literaturübersicht
aufwies, gingen die o. g. Veränderungen nach Zink-Supplementierung über das Trinkwasser
zurück. Im ersten Fall wurde zusätzlich eine Protein-Supplementierung vorgenommen.
Von 154 untersuchten Grünen Meerkatzen wurden bei 27 männlichen und 2 weiblichen
Tieren kutane Läsionen am äußeren Genitale gefunden. In den Fällen, in denen die Haut
rötlich statt blau erschien, konnte histologisch eine akute bzw. subakute nicht eitrige
Dermatitis diagnostiziert werden. In anderen Fällen, in denen die betroffenen Partien dunkel
bis schwarz verfärbt waren, konnten histologisch Melanozyten nachgewiesen werden.
Klinische und histologische Untersuchungen zeigten, dass die Pigmentierung nach einer
Entzündung auftritt (JELINEK 1985).
Bei einer Grünen Meerkatze in Kenia wurde eine kutane Leishmaniose diagnostiziert
(BINHAZIM et al. 1987).
ALTMANN (1974) berichtet von einer orthotopen Autotransplantation der Haut bei einem
Husarenaffen nach einer schweren Verletzung.
2.4.12 Krankheiten des lymphatischen Systems
JELINEK (1984) berichtet von einer Hämosiderose der Milz bei Grünen Meerkatzen. Diese
Braunfärbung des Organs findet man bei hämolytischen Anämien und auch bei manchen
bakteriellen Infektionen. Sie entsteht durch eine stärkere Beladung der mononukleären
Phagozyten mit Hämosiderin (WEISS 1999a).
Bei der Sektion eines weiblichen Husarenaffen, der vor seinem Tod gesund wirkte, wurde
eine stark vergrößerte, multinodular veränderte Milz festgestellt. Es wird vermutet, dass es
sich dabei um ein multifokales Hämangiom handelte (LANDSDOWN 1982).
Unter der Hodgkin Krankheit versteht man eine Wucherung des Retikulumzellsystems mit
Fieber und Abmagerung bis zur Kachexie (KRONBERGER 1991a). Von einer Grünen
Meerkatze ist ein Fall dieser Krankheit beschrieben. Das Tier starb 2 Monate nach dem
Import aus Uganda ohne erkennbare klinische Symptome. Bei der Sektion fielen v. a. eine
generalisierte Lymphknotenschwellung sowie Schwellungen von Leber, Milz und Nieren auf,
außerdem ein Hydrothorax und Aszites sowie eine Anämie (MORITA 1974).
Lymphosarkome kommen bei Meerkatzen vor (NGATIA u. NJIRO 1988) und können mit
dem Simian T-cell Leukemia (lymphotropic) Virus in Zusammenhang stehen
(SAKAKIBARA et al. 1986; JAYO et al. 1990; SATO et al. 1999).
35
Literaturübersicht
2.5 Fortpflanzung
2.5.1 Physiologie der Fortpflanzung
Die Bedeutung der Zucht nichthumaner Primaten, darunter auch Meerkatzen, hat v.a. für
Forschungs- und experimentelle Zwecke eine relativ große Bedeutung erlangt (KAPLAN et
al. 1981). ELSE (1985) berichtet, dass wild gefangene Grüne Meerkatzen ca. 1 Jahr
Anpassungszeit benötigen, um sich erfolgreich in Gefangenschaft fortzupflanzen.
Physiologische Daten zur Fortpflanzung der Meerkatzen wurden von zahlreichen Autoren
zusammengestellt (LAPIN u. JAKOVLEVA 1964; GOSWELL u. GARTLAN 1965;
BUTLER 1966; ROWELL 1970; KRAEMER u. VERA CRUZ 1972; ROWELL 1977;
WINTERER et al. 1985; HOOF 1988; BRACK et al. 1995; SEIER et al. 2000; CHO et al.
2002). Angaben zu Geburtsgewicht, Geschlechtsreife, Zykluslänge, Trächtigkeitsdauer,
Säugezeit und Zwischengeburtsintervall finden sich in Tabelle 5 (S. 37).
Die Graviditätsdiagnostik mittels Ultraschall ist ab dem 33. Trächtigkeitstag möglich, der
Plasmaprogesteronspiegel steigt ca. vom 39. bis 49. Trächtigkeitstag an (SEIER et al. 2000).
Das endokrine Profil des Husarenaffen während der Trächtigkeit ist dem des Menschen sehr
ähnlich (WINTERER et al. 1985).
NARUSHIMA et al. (1997) schildern die physiologischen Veränderungen der Vaginalflora
während des Zyklus bei Grünen Meerkatzen.
ALDRICH-BLAKE (1968) berichtet von einem fertilen Hybriden zwischen zwei
verschiedenen Arten, einer Diadem- und einer Rotschwanzmeerkatze. Es handelte sich um ein
adultes weibliches Tier, das ein Jungtier mit sich führte.
36
Literaturübersicht
Zwischengeburtsintervall
Säugezeit
Trächtigkeitsdauer
Art
Zykluslänge
Geburtsgewicht
Geschlechtsreife
Tabelle 5: Fortpflanzungsphysiologische Daten von Meerkatzen nach Literaturangaben
in
in g
Jahren in d
in d
in d in d
Meerkatzen
ca. 400 2-4 27-30 180-213 - ca. 365
Brazzameerkatze
250
177-187 Dianameerkatze
150
Diadem140
meerkatze
Grüne
Meerkatze
Zwergmeerkatze
Husarenaffe
392-500
-
-
-
-
-
-
-
30
180-213
-
-
-
-
32
157
318±51
-
-
-
-
3
-
-
-
-
3-4
417-642
-
138
31±6,5 166±6,4
±37
503
±189
Autor
BRACK et al. (1995)
HOOF (1988)
HOOF (1988)
ROWELL (1970)
LAPIN u.
JAKOVLEVA
(1964)
KRAEMER u.
VERA CRUZ (1972)
SEIER et al. (2000)
CHO et al. (2002)
-
-
KRAEMER u.
VERA CRUZ (1972)
49210
-
ROWELL (1977)
170
-
-
GOSWELL u.
GARTLAN (1965)
30
170
-
-
KRAEMER u.
VERA CRUZ (1972)
-
138-173
-
-
WINTERER et al.
(1985)
-
196
31-35 158-166
37
Literaturübersicht
2.5.2 Pathologie der Fortpflanzung und der Fortpflanzungsorgane
Bei einer Grünen Meerkatze wurde ein beidseitiger Kryptorchismus festgestellt. Eine
weitere Grüne Meerkatze wies ein, wahrscheinlich traumatisch bedingtes, Granulom im
Bereich von Skrotum und Tunica vaginalis auf (JELINEK 1984).
MINOIA u. BUFO (1982) schildern den Fall einer Grünen Meerkatze mit einem beidseitigen
Seminom.
JELINEK (1984) erwähnt in der Aufstellung von Obduktionsbefunden von 830 Grünen
Meerkatzen den Fall eines weiblichen Tieres mit einem akzessorischen Uterus. Dieser war 1
x 0,6 cm groß und besaß Verbindung zu beiden Eileitern. Das histologische Bild war
identisch mit dem eines normalen Uterus eines Affen. Ovarialzysten kommen bei
Meerkatzen vor (LANDSDOWN 1990). Eine Brazzameerkatze verstarb nach unspezifischer
Symptomatik an einer durch E. coli hervorgerufenen Pyometra. Bei diesem Tier fielen
außerdem noch Anzeichen für eine Endometriose auf. So wurde endometriales Gewebe in
der Serosa des Uterus gefunden (COOPER 1972).
Eine Zwergmeerkatze wies eine Leukoplakie im Bereich der Vagina auf (KRAEMER u.
VERA CRUZ 1972). Es handelt sich dabei um eine Verdickung und eine Verhornung des
Epithels der Schleimhäute mit typischer weißer Verfärbung ohne Beläge (LIPPMANN 1991).
Bei einer Grünen Meerkatze wurde ein ovarielles Teratom festgestellt (BASKIN et al. 1982).
Dieser seltene Tumor fällt dadurch auf, dass er Abkömmlinge aller drei Keimblätter enthält
(WEISS u. KÄUFER-WEISS 1999). Weitere in der Literatur beschriebene Neoplasien des
weiblichen Geschlechtsapparates sind ein seltener Epitheloider Trophoblasttumor im
Uterus einer Rotschwanzmeerkatze (COOPER et al. 2005), ein Leiomyom im Uterus einer
Weißgrünen Meerkatze (ALTMANN et al. 1974) und ein Plattenepithelkarzinom im
Bereich der Zervix einer Grünen Meerkatze. Letzteres metastasierte in die regionären
Lymphknoten, das Mesenterium und das große Netz (KRILOVA u. LAPIN 1979).
Als Placenta praevia wird eine im unteren Uterinsegment (statt im Korpus) inserierende
Plazenta bezeichnet, die je nach Ausprägungsgrad den Geburtsweg verlegen kann. Es besteht
die Gefahr der vorzeitigen Ablösung und damit lebensbedrohlicher Blutungen gegen Ende der
Gravidität (SCHMIDT-MATTHIESEN u. HEPP 1998). Diese pathologische Form der
Plazenta ging bei einem hochtragenden Husarenaffen mit massiven vaginalen Blutungen
einher. Mittels sofort durchgeführtem Kaiserschnitt konnte eine lebende Frucht entwickelt
werden, die Rekonvaleszenz des Muttertieres verlief problemlos (WOLF 1971). Die Plazenta
eines 4,5 Jahre alten weiblichen Husarenaffen aus einem Zoo wies Infarkte auf, die 60-70 %
des Organs betrafen. Der Affe hatte ein totes Jungtier zur Welt gebracht und wies Zeichen
einer Eklampsie auf (GILLE et al. 1977).
Unter Eklampsie versteht man lebensbedrohliche Krampfzustände, die mit dem Ende der
Gravidität bzw. der Geburt im Zusammenhang stehen (STELDINGER et al. 2005). Das
Krankheitsbild bei Husarenaffen ist durch Ödeme, Proteinurie, Hypoproteinämie und
Hypertonie gekennzeichnet. Es sind v.a. Primipara betroffen (PALMER et al. 1979).
38
Literaturübersicht
ROBERTS u. WOLF (1971) beschreiben das Bild der Schwangerschaftshydronephrose bei
Husarenaffen. Bei der auch beim Menschen in der Schwangerschaft auftretenden
Harnstauungsniere ist meist keine Behandlung erforderlich, da sich die Veränderungen nach
der Entbindung spontan zurückbilden (BALTZER u. MICKAN 1994).
Ein Abort bei einer Grünen Meerkatze wurde durch einen Knoten in der Nabelschnur
ausgelöst, der so fest war, dass kein Blutaustausch mehr stattfinden konnte (BRADY 1983).
Von einer Monameerkatze ist ein durch Listerien verursachter Abort beschrieben (VETESI et
al. 1973).
Geburtsstörungen gehören zu den eher seltenen Ereignissen in Zoologischen Gärten
(EULENBERGER 2000). PILKINGTON (1987) beschreibt eine Dystokie infolge absolut zu
großer Frucht bei einer Brazzameerkatze. Da konservative geburtshilfliche Versuche am
narkotisierten Tier erfolglos waren, wurde ein Kaiserschnitt durchgeführt, bei dem eine frisch
tote Frucht entwickelt wurde. Bei einer primiparen Dianameerkatze kam es, vermutlich durch
den intensiven Geburtsschmerz, zu einer reflektorischen Wehenhemmung. Neunzig Minuten
nach Distanzinjektion von Carbetocin (0,0014 mg) konnte die Geburt eines lebenden
männlichen Fetus beendet werden (EULENBERGER 2000).
STEHLIK (1974) schildert den Fall einer Uterusruptur mit Todesfolge bei einer in der
Geburt befindlichen Grünen Meerkatze. Das Tier wurde tot, mit dem in den Geburtswegen
stecken gebliebenen Jungen, aufgefunden. Ursachen der Ruptur waren wahrscheinlich die
Steißlage in Verbindung mit dem relativ großen Kopf des Jungtieres. Bei einer anderen
hochtragenden Grünen Meerkatze verlief eine traumatisch bedingte Uterusruptur tödlich
(PLESKER et al. 2003).
2.6 Neoplasien
Neoplastische Veränderungen sind in den entsprechenden Organkapiteln mit aufgeführt.
39
Literaturübersicht
2.7 Immobilisation
Als Immobilisation wird eine durch Applikation von Muskelrelaxantien hervorgerufene
Unbeweglichkeit des Tieres infolge Lähmung der quergestreiften Muskulatur bezeichnet
(GÄNGEL 1991).
Die Immobilisation von Wildtieren ist eine wichtige Voraussetzung zur Durchführung von
diagnostischen Untersuchungen, Behandlungen und Operationen. Zur Applikation der
entsprechenden Medikamente zur Immobilisation werden Distanzinjektionssysteme, wie das
in Zoologischen Gärten meistens verwendete Blasrohr, aber auch Injektionspistolen und –
gewehre, eingesetzt (GÖLTENBOTH 1995).
Bei den meisten in der Literatur beschriebenen Immobilisationen von Meerkatzen handelt es
sich um Injektionsnarkosen (BREE 1972; HAWKEY et al. 1978; GARCHA et al. 1979;
PLESKER et al. 2003; KALEMA-ZIKUSOKA et al. 2003), es werden aber auch
Inhalationsnarkosen durchgeführt (CLUTTON u. RICHARDS 1983; PFEIL et al. 1997;
DAVIS u. GAMBLE 2004). Einen Überblick liefert Tabelle 6 (S. 42).
Inhalationsnarkosen können mit Isofluran nach einleitender Prämedikation mit Ketamin
(PFEIL et al. 1997; DAVIS u. GAMBLE 2004) oder mit Halothan nach Prämedikation mit
Althesin (CLUTTON u. RICHARDS 1983) erfolgen. Alle Inhalationsanästhetika wirken
hypnotisch und verursachen eine unterschiedlich ausgeprägte Muskelrelaxation. Allesamt
wirken sie außerdem atem- und kreislaufdepressiv und erzeugen keine Analgesie (ALEF
2003). Atropin kann bei Inhalationsnarkosen zur Hemmung der Bronchialsekretion s.c.
appliziert werden (LÖSCHER 2002a).
Phencyclidin ist ein Präparat, das sich mit seiner Sicherheit und Wirkung bei nahezu allen
Affenarten bewährt hat. Es ist allerdings seit 1979 in Deutschland nicht mehr im Handel
(BRACK et al. 1995).
Ein chemisches Derivat des Halluzinogens Phencyclidin ist das Ketamin (LÖSCHER
2002b), das sich als wichtigstes Narkotikum bei Affen durchgesetzt hat (BRACK et al. 1995).
Es handelt sich bei Ketamin um ein Anästhetikum, das zu einem Zustand mit starker
Analgesie, oberflächlichem Schlaf und Katalepsie (Zustand hochgradiger motorischer
Antriebslosigkeit bei erhöhtem Muskeltonus) führt. Es tritt also auch bei ausreichend hoher
Dosierung keine Muskelrelaxation ein. Auf eine genaue Einhaltung der Dosis muss geachtet
werden, da der Patient sich im Zustand der Katalepsie nicht gegen schmerzhafte Eingriffe
wehren kann, aber noch schmerzempfindlich ist. Bei viszeralen Schmerzen
(Bauchoperationen) ist die anästhetische Wirkung von Ketamin nicht ausreichend. Vorteil des
Ketamins ist das Fehlen atem- und kreislaufdepressiver Wirkungen (LÖSCHER 2002b). Vom
Menschen sind in reiner Ketamin-Anästhesie unangenehme Traumerlebnisse berichtet
worden, für die keine Amnesie besteht (EBERT et al. 2002). Ketamin kann intramuskulär
injiziert werden. Die Wirkung tritt nach 3 bis 6 Minuten ein (BRACK et al. 1995) und kann
bis zu 90 Minuten andauern, die Nachschlafdauer beträgt bis zu 6 Stunden (STUNKARD u.
MILLER 1974).
40
Literaturübersicht
Durch die kombinierte Anwendung von Ketamin und Xylazin kann die Immobilisation
vertieft und verlängert werden (BRACK et al. 1995). Xylazin ist das einzige Nicht-Opioid,
das in seiner Wirkungsstärke dem Morphin vergleichbar ist. Neben der analgetischen
Komponente wirkt Xylazin auch ausgeprägt sedativ/hypnotisch, zentral muskelrelaxierend,
stark blutdrucksenkend und sekretionshemmend (LÖSCHER 2002b). RIETSCHEL (1991)
empfiehlt die Anwendung von 5 mg Ketamin plus 0,5 mg Xylazin/kg KM für verschiedene
Affenarten. Die so genannte „Hellabrunner Mischung“ weist eine Konzentration von 125 mg
Xylazin und 100 mg Ketamin pro ml auf. Auch diese Kombination wird erfolgreich zur
Immobilisation von Primaten eingesetzt (MÄRKLE et al. 1991). Unterschiedliche
Mischungsverhältnisse und Dosierungen der Ketamin/Xylazin-Kombinationen werden in der
Regel gut von den Tieren vertragen. Wichtiger erscheint, dass die Tiere vor jeder
Immobilisation nicht beunruhigt oder gar in Panik versetzt werden (RIETSCHEL 1991). Ein
Zusatz von Hyaluronidase (150 I.E./Injektionspfeil) wird v.a. bei höheren Konzentrationen
des Anästhetikums empfohlen, um den Eintritt der Wirkung zu beschleunigen und mit einer
geringeren Dosis auszukommen (GÖLTENBOTH 1995). Der Vorteil des α2Rezeptoragonisten Xylazin liegt in seiner Antagonisierbarkeit durch Yohimbin oder
Atipamezol. Unter der Bezeichnung Rompun® ist Xylazin als Trockensubstanz zur
Anwendung bei Zoo- und Wildtieren im Handel (LÖSCHER 2002b).
Auch eine Kombination von Ketamin mit dem α2-Rezeptoragonisten Medetomidin eignet
sich zur Immobilisation von Primaten. Antidot ist Atipamezol (BERTHIER et al. 1996). Es
empfiehlt sich, jeweils die Hälfte des Antidots i.v. und i.m. zu verabreichen (JOSLIN 2003).
Weitere Kombinationsmöglichkeiten sind Ketamin/Medetomidin/Butorphanol (KALEMAZIKUSOKA et al. 2003) und Ketamin/Pentobarbital (GARCHA et al. 1979).
Tiletamin ist ein Ketamin-Abkömmling (EBERT et al. 2002), der v.a. in Kombination mit
Zolazepam zu gleichen Teilen als schnell wirkendes Allgemeinanästhetikum fungiert
(BRACK et al. 1995). Mit solch einer Neuroleptanalgesie kann in niedrigen Dosen eine
adäquate Immobilisation mit Muskelrelaxation erreicht werden. Die Wirkung tritt nach 20 bis
30 Minuten ein. Gegen eine eventuell auftretende Salivation wird Atropin als Prämedikation
empfohlen (BUSH et al. 1977).
Althesin (Saffan®) ist in Deutschland nicht auf dem Markt, wird aber von vielen
Kleintierpraktikern aus England importiert und als Kurznarkotikum für Katzen eingesetzt. Es
handelt sich um ein Gemisch aus 2 Steroiden (Alphaxalon und Alphadolon). Vorteil ist der
rasche Wirkungseintritt, die kurze Erholungszeit und die große therapeutische Breite.
Aufgrund des verwendeten Lösungsvermittlers (Cremophor EL) kommt es besonders bei
Hunden zu einer starken Histaminfreisetzung, aber auch bei Katzen kann dies als
Nebenwirkung gelegentlich auftreten (LÖSCHER 2002b). Althesin kann bei Meerkatzen
einzeln als Narkotikum (HAWKEY et al. 1978) oder als Prämedikation zur
Inhalationsnarkose (CLUTTON u. RICHARDS 1983) eingesetzt werden.
41
Literaturübersicht
Tabelle 6: Immobilisationen von Meerkatzen nach Literaturangaben
Art
Husarenaffe
Arzneimittel
Dosierung
Ketamin
18,3 mg/kg
Kgw
nichthumane Ketamin
Primaten
Ketamin +
Monameerkatze
Isofluran
Ketamin +
Monameerkatze
Isofluran
Ketamin +
Grüne
Meerkatze
Xylazin
Ketamin +
Xylazin
Ketamin +
Sumpfmeerkatze
Medetomidin
Ketamin +
Husarenaffe Medetomidin +
Butorphanol
Ketamin +
Grüne
Meerkatze
Pentobarbital
Tiletamin
Husarenaffe
Rolowaymeerkatze
TiletaminZolazepam (1:1)
Midazolam +
Husarenaffe Medetomidin +
Butorphanol
Phencyclidin
Husarenaffe
Husarenaffe
Phencyclidin
nichthumane Phencyclidin
Primaten
Althesin
Husarenaffe
Grüne
Meerkatze
Althesin +
Halothan
5-20 mg/kg
Kgw
10 mg/kg Kgw
9 mg/kg Kgw
Applikation Wirkungs- Autor
dauer
i.m.
7 min
HAWKEY et al.
(1978)
i.m.
< 90 min
STUNKARD u.
MILLER (1974)
i.m.
PFEIL et al. (1997)
Inhalation
i.m.
DAVIS u.
GAMBLE (2004)
Inhalation
i.m.
PLESKER et al.
(2003)
i.m.
RIETSCHEL
(1991)
i.m.
BERTHIER et al.
(1996)
i.m.
30 min
KALEMAZIKUSOKA et al.
(2003)
10 mg/kg Kgw
6 mg/kg Kgw
5 mg/kg Kgw
0,5 mg/kg Kgw
11 mg/kg Kgw
30µg/kg Kgw
3 mg/kg Kgw
40 µg/kg Kgw
0,4 mg/kg Kgw
15 mg/kg Kgw i.m.
30 mg/kg Kgw
3-4 mg/kg
i.m.
Kgw
i.m.
3 mg/kg Kgw
0,3 mg/kg Kgw i.m.
40 µg/kg Kgw
0,4 mg/kg Kgw
1,1 mg/kg Kgw i.m.
1,81 mg/kg
Kgw
i.m.
1-3 mg/kg
Kgw
i.m.
13,8 mg/kg
Kgw
i.m.
9,5 mg/kg Kgw i.m.
2%
Inhalation
42
4-5 h
GARCHA et al.
(1979)
~ 38 min
25-40 min
-
BREE (1972)
BUSH et al. (1977)
KALEMAZIKUSOKA et al.
(2003)
>1h
FOWLER et al.
(1974)
14 min
HAWKEY et al.
(1978)
7 min
-
STUNKARD u.
MILLER (1974)
HAWKEY et al.
(1978)
CLUTTON u.
RICHARDS (1983)
Tiere, Material und Methoden
3 Tiere, Material und Methoden
3.1 Tiere und Material
Die Untersuchungspopulation setzt sich aus verschiedenen Meerkatzenarten zusammen
(Tabelle 7), die in der Zeit von 1955 bis 2006 im Zoologischen Garten Leipzig gehalten
worden sind bzw. noch gehalten werden. Die analysierte Population umfasst rund 150 Tiere.
Tabelle 7: Meerkatzenarten in
Die Haltung der Tiere geschieht im Tieraffenhaus des
der Untersuchungspopulation
Zoologischen Gartens Leipzig. Abbildung 1 (S. 44) zeigt
Monameerkatze
einen schematischen Grundriss dieses Hauses. Es
Campbellmeerkatze
handelt sich um ein geschlossenes, denkmalgeschütztes
Blaumaulmeerkatze
Gebäude aus dem Jahre 1901, welches mehrere
Weißkehlmeerkatze
Einzelgehege (heute noch 6 für Meerkatzen, in der
Weißnasenmeerkatze
Abbildung unterlegt), bestehend aus Innen- und
Dunkle Weißnasenmeerkatze
Außengehege, beinhaltet. Die Innengehege haben eine
Vollbartmeerkatze
durchschnittliche Größe von 12 m², die Außengehege
Eulenkopfmeerkatze
von 10 m² und die durchschnittliche Höhe im gesamten
Brazzameerkatze
Bereich der Gehege beträgt 3 m. Der Maximalbesatz pro
Dianameerkatze
Einzelgehege liegt bei 3 adulten und 2 juvenilen
Roloway Meerkatze
Meerkatzen. Die einzelnen Innengehege sind in 2 bis 3
Gelbgrüne Meerkatze
unabhängige Gehege unterteilbar, größtenteils sind sie
Weißgrüne Meerkatze
aber auch untereinander zu verbinden. Die
Malbruck Meerkatze
Gehegeeinfriedung besteht teilweise aus gemauerter
Lalandesmeerkatze
Wand, teilweise aus Glas und teilweise aus Gittern. Die
Zwergmeerkatze
Wände der Gehege sind innen wie auch außen gefliest,
Husarenaffe
der Boden besteht innen und außen aus geglättetem
Beton. Die Gehege sind mit Sitzbrettern, Kletterbäumen
aus naturbelassenem Holz und Klettergerüsten aus Derbstangen ausgestaltet. Die
Verbindungsklappen zwischen Innen- und Außengehege sind durch die Tiere bedienbar. Der
Einfall von Tageslicht wird über Fenster oberhalb des Besucherganges gewährleistet.
43
Tiere, Material und Methoden
Abbildung 1: Schematischer Grundriss des Tieraffenhauses
Auf dem aktuellen Futterplan der Tiere stehen Obst (Apfel, Trauben, Kiwi, Honigmelone,
Ananas, Birne, Apfelsine), Gemüse (Karotte, Blumenkohl, Lauch, Kohlrabi, Paprika, Sellerie)
in roher oder gekochter Form, gekochte Kartoffeln, Salat, Petersilie, eine Körnermischung,
Zwieback, Fleisch, Mehlwürmer, Ei und Milchprodukte (Joghurt, Quark). Bis zum Jahre 1990
erhielten die Tiere einen so genannten Affenkuchen (gemäß der Fütterungsempfehlungen aus
Philadelphia), der in der zooeigenen Futterküche täglich frisch gebacken wurde und dem
bedarfsgerecht Supplemente zugegeben wurden. Bis zum Jahre 2003 erhielten die Tiere eine
Milchsuppe, in die Vitamine und Mineralstoffe eingerührt wurden. Heute wird dem Futter das
Vitamin- und Mineralstoffpräparat Phoskana 12® zugesetzt. Es werden 4 über den Tag
verteilte Mahlzeiten verabreicht. Ansonsten erhalten die Tiere Tee, dem seit 2002 kein Zucker
mehr zugegeben wird und seit 2001 erhalten die Affen nachts Wasser.
44
Tiere, Material und Methoden
Die Analyse des Krankheitsgeschehens erfolgte anhand der Krankenblätter, anhand von
Einträgen in die Visitebücher, der Obduktionsprotokolle, und der Befunde von
parasitologischen, mikrobiologischen und virologischen Untersuchungen sowie
hämatologischen und klinisch-chemischen Befunden. Das Material umfasst den Zeitraum von
1955 bis 2006. Ergebnisse von weiterführenden Untersuchungen wurden entsprechenden
Einträgen in Krankenblättern oder Visitebüchern zugeordnet.
Es wurden neben Harn-, Liquor- und Röntgenuntersuchungen 396 parasitologische, 398
mikrobiologische, 26 virologische und 59 Blutuntersuchungen (Hämatologie, klinische
Chemie) sowie 65 Obduktionen und 6 andere Untersuchungen aus der Pathologie erfasst.
45
Tiere, Material und Methoden
3.2 Methoden
Die Analyse des umfangreichen Datenmaterials erfolgte mit Hilfe des ExcelTabellenkalkulationsprogramms. Dabei wurden die in Tabelle 8 dargestellten Parameter
berücksichtigt. Jede Dokumentation im vorliegenden Material, die Symptome, klinische
Untersuchungen oder therapeutische bzw. prophylaktische oder metaphylaktische
Maßnahmen umfasste, wurde als Fall gewertet und verfolgt. Rückfälle im Heilungsprozess
wurden als neuer Fall beurteilt, wenn mehr als 1 Monat seit der Erstdokumentation vergangen
war. Jeder Fall erhielt eine vierstellige Nummer, die sich aus den letzten 2 Ziffern des Jahres
und der laufenden Nummer des Falles in diesem Jahr zusammensetzte.
Tabelle 8: Parameter der Datenanalyse
Fall
Tier
Zeitraum
Einordnung Krankheit
Krankheit
Diagnostik
Therapie
Bezeichnung
Fall-Nummer
Name
Herkunft
Geburtsdatum
Alter
Geschlecht
Spezies
Datum Beginn Krankheit
Datum Ende Krankheit
Krankheitsdauer
Kategorie
Unterkategorie
Diagnose
Symptome
Ausgang
Bakteriologie
Mykologie
Virologie
Parasitologie
Pathologie
Hämatologie/
klinische Chemie
weitere Untersuchungen
Therapie
Narkose
46
Beschreibung
vierstellig
sechsstellig
Jahre (Funktion)
1,0; 0,1; unbekannt
sechsstellig
sechsstellig
Tage (Funktion)
Organsystem; Trauma;
unspezifischer Fall; Zuchtund Haltungsmanagement
s. Tab. 9
letal, Heilung, Besserung
Röntgen, usw.
Tiere, Material und Methoden
Jeder Fall wurde einer Kategorie und Unterkategorie beigeordnet (Tabelle 9) und einmalig
gezählt. Wenn mehrere Organsysteme in einen Fall einbezogen waren, wurde das im
Vordergrund der Krankheit stehende ausgewählt, und der Fall dieser Unterkategorie
zugeordnet.
Tabelle 9: Kategorien und Unterkategorien
Kategorie
Unterkategorie
Krankheiten: Atmungsorgane,
Verdauungsorgane, Leber, exokrines
Pankreas, Herz-Kreislauf-System,
Harnapparat, Nervensystem, Sinnesorgane,
endokrines System, Bewegungsorgane, Haut
und Haarkleid, lymphatisches System,
Pathologie der Fortpflanzung
Organsystem
Traumata
Fälle, deren Symptome keinem Organsystem
allein zuzuordnen waren; symptomlose
Todesfälle
Gesundheitsprophylaxe, Physiologie der
Fortpflanzung, Transport,
Transpondersetzung
Unspezifischer Fall
Zucht- und Haltungsmanagement
Die Auswertung der Daten erfolgte in zwei Schritten. Bei der ersten orientierenden Analyse
wurden die ausgemachten Fälle in Kategorien und Unterkategorien eingeteilt und deren
Häufigkeitsverteilung ermittelt.
Im zweiten Schritt wurden die Fälle in den einzelnen Kategorien bzw. Unterkategorien nach
Diagnosen organisiert und unter Berücksichtigung verschiedener Kriterien (Anzahl der Fälle,
Zeitraum, Letalität, Geschlechterverteilung, Alter, Artenverteilung, Krankheitsdauer,
Symptome, weiterführende Untersuchungen, Therapie, Obduktionsbefunde) zusammengefasst
beschrieben.
Unabhängig von der einmaligen Zählung jedes Falles wurden Auswertungen von
bakteriologischen, mykologischen, virologischen, parasitologischen und pathologischen
Untersuchungen zur Ermittlung des Vorkommens und der Häufigkeit der Befunde
durchgeführt. Angaben zu Narkosen wurden gesondert erfasst und ausgewertet.
Die Ergebnisse werden in Kapiteln, die der oben beschriebenen Kategorisierung entsprechen,
dargestellt.
Die Berechnung von Referenzwerten für hämatologische und klinisch-chemische
Blutuntersuchungen von Meerkatzen im Leipziger Zoo erfolgte durch Ermittlung des 2,5. und
47
Tiere, Material und Methoden
97,5. Perzentils einer Reihe von Blutwerten gesunder Tiere. Diese Berechnung wurde mit
Hilfe des Statistikprogramms SPSS durchgeführt.
48
Ergebnisse
4 Ergebnisse
4.1 Überblick
Die Untersuchungspopulation aus 51 Jahren Meerkatzenhaltung im Zoologischen Garten
Leipzig besteht aus ca. 150 Tieren (ca. 63 männliche, 79 weibliche und 8 Tiere unbekannten
Geschlechts), die 17 unterschiedlichen Arten angehören.
Die Analyse umfasst insgesamt 387 Fälle.
Tabelle 10: Verteilung der Fälle nach
Diese setzen sich zusammen aus 333
Geschlecht
Krankheitsfällen und 54 Fällen des ZuchtAnzahl der Fälle
und Haltungsmanagements.
männlich
168
Die Verteilung der Geschlechter bei den
weiblich
211
untersuchten Fällen wird in Tabelle 10
unbekannt
8
aufgezeigt.
Einen Überblick über die Artenverteilung in Bezug auf die Fälle gibt Tabelle 11.
%
43
55
2
Tabelle 11: Verteilung der Fälle nach Spezies
Brazzameerkatze
Eulenkopfmeerkatze
Dianameerkatze
Roloway Meerkatze
Monameerkatze
Gelbgrüne Meerkatze
Weißgrüne Meerkatze
Malbruck Meerkatze
Vollbartmeerkatze
Lalandesmeerkatze
Anzahl
der Fälle
62
98
74
7
33
1
2
1
4
3
%
16
25,3
19,1
1,8
8,5
0,3
0,5
0,3
1
0,8
Blaumaulmeerkatze
Weißnasenmeerkatze
Dunkle
Weißnasenmeerkatze
Weißkehlmeerkatze
Campbellmeerkatze
Zwergmeerkatze
Husarenaffe
unbekannt
Anzahl
der Fälle
%
27
24
7
6,2
5
14
16
13
1
2
1,3
3,6
4,1
3,4
0,3
0,5
Bei der Betrachtung der Krankheitsfälle (Abbildung 2, S. 50) zeigen sich die größten
Häufigkeiten bei den Krankheiten des Verdauungsapparates (37,2 %). Die Gruppe der
traumatisch bedingten Krankheiten (13,2 %) berücksichtigt zahlreiche Bissverletzungen.
Ferner kamen Krankheiten des Atmungsapparates (12,9 %) relativ häufig vor, genauso wie
Störungen der Fortpflanzungsfunktionen (10,2 %), deren Gruppe auch die neonatalen
Erkrankungen mit einbezieht. Bei den unspezifischen Krankheiten (9,9 %) handelt es sich um
eine heterogene Gruppe von Symptomen, die keiner der anderen Gruppen zuzuordnen waren.
Die übrigen Organsysteme waren weniger häufig betroffen.
49
Ergebnisse
Haut und Haarkleid;
6,6%
Unspezifischer Fall;
9,9%
Nervensystem; 3,0%
Herz-KreislaufSystem; 2,4%
Pathologie der
Fortpflanzung; 10,2%
Bewegungsorgane;
2,1%
Atmungsorgane;
12,9%
Harnapparat; 0,9%
Sinnesorgane; 0,6%
Leber; 0,3%
Traumata; 13,2%
Pankreas; 0,3%
Verdauungsorgane;
37,2%
Endokrines System;
0,3%
Abbildung 2: Krankheitsfälle in Bezug auf die primäre Erkrankung
Tabelle 12: Todesfälle
Im berücksichtigten Zeitraum traten in der
Anzahl
Untersuchungspopulation 69 Todesfälle auf
Gruppe
%
Tiere
(Tabelle 12), wobei in 12 Fällen aus den
Atmungsorgane
15
22
Unterlagen hervorging, dass die Tiere
Verdauungsorgane
13
19
euthanasiert wurden. Die Todesfälle
Fortpflanzung
11
16
ereigneten sich in den Jahren 1958 bis 2002.
Unspezifische Fälle
7
10
In 65 Fällen lagen Obduktionsberichte vor.
Herz-Kreislauf-System
7
10
Im Ganzen endeten rund 18 % der
Nervensystem
6
9
untersuchten
Krankheitsfälle
der
Traumata
4
6
Meerkatzen tödlich.
Harnapparat
3
4
Die meisten Todesfälle, nämlich 6,
Leber
1
1
ereigneten sich im Jahre 1969, gefolgt von
den Jahren 1961 und 1965 mit jeweils 5
Pankreas
1
1
Todesfällen. 1992 fanden 4 Todesfälle in der
Endokrinium
1
1
Untersuchungspopulation statt.
Der Anteil von Todesfällen aufgrund von Krankheiten der Atmungsorgane (22 %) ist am
größten, wobei 8 der 15 Todesfälle mit einer Tuberkulose in Zusammenhang standen. Es
folgen die Krankheiten der Verdauungsorgane (19%) und die Krankheiten der Kategorie
Fortpflanzungsstörungen mit neonatalen Verlusten (16%).
Einen Überblick über die Obduktionsdiagnosen liefert Tabelle 13 (S. 138).
50
Ergebnisse
4.2 Infektionskrankheiten
4.2.1 Bakterielle Infektionskrankheiten
Im Zeitraum von 1960 bis 2004 wurden 382 Kot- und 12 andere Proben bakteriologisch
untersucht. Außerdem wurden bei 65 Obduktionen 33mal bakterielle Infektionserreger aus
den Organen isoliert.
In 68 (18 %) der untersuchten Kotproben wurden pathogene Erreger gefunden. Tabelle 14
(S.52) gibt einen Überblick über die dokumentierten Befunde. Als pathogene E. coli sind
Serovare zusammengefasst, die aus dem Kot von Meerkatzen isoliert wurden und als
pathogen für Menschen, Kälber oder Ferkel eingestuft (z. B. O25:K11, O147:K89,
O101:K30) worden waren. In den 60er Jahren wurden 71 Kotproben untersucht, von denen
alle negativ waren. In den 70er Jahren wiesen 8 % (5 von 62) der untersuchten Proben einen
pathogenen Keimgehalt auf. In den 80er Jahren waren von 125 untersuchten Proben 20 (16%)
positiv. In den 90er Jahren wurden 65 Proben untersucht, von denen 20% (13) einen
pathogenen Keimgehalt aufwiesen. In den ersten 5 Jahren des neuen Jahrtausends wurden
insgesamt 59 Proben untersucht, von denen 30 positiv waren. Von diesen 59 Proben wurden
34 (davon 25 positiv) im Rahmen der von EULENBERGER et al. (2001) beschriebenen
Monameerkatzenquarantäne entnommen und untersucht.
Das Vorkommen von Klebsiella sp., Aeromonas sp. und Mycobacterium fortuitum bei
Meerkatzen ist in der Literatur nicht beschrieben.
In 14 untersuchten Kotproben wurde ein hgr. Gehalt an Klebsiella sp. festgestellt. In drei
Fällen handelte es sich um eine Campbellmeerkatzengruppe, die Durchfall bei ungestörtem
Allgemeinbefinden zeigte. Die Tiere gesundeten nach Therapie mit einer SulfonamidTrimetoprim- und einer Penicillin-Streptomycin-Kombination, unterstützt durch pflanzliche
Antidiarrhoika. Zehnmal wurde ein hochgradiger Gehalt an Klebsiella pneumoniae und 2mal
ein hochgradiger Gehalt an Klebsiella oxytoca im Rahmen der von EULENBERGER et al.
(2001) beschriebenen Monameerkatzenquarantäne festgestellt. Neben diesem Befund wurden
noch weitere pathogene Bakterien (u.a. ein hgr. Gehalt an Salmonella choleraesuis ssp.
indica), Pilze und Parasiten im Kot gefunden, die Tiere befanden sich in einem sehr
schlechten Zustand und zeigten u.a. auch Durchfall. Sie waren direkt aus Nigeria kommend
auf dem Frankfurter Flughafen konfisziert worden.
Aus dem Kot einer männlichen Dianameerkatze wurde neben Pseudomonas aeruginosa auch
Aeromonas caviae isoliert. Das Tier zeigte Durchfall, gesundete aber nach Therapie mit
Baytril® und einer Penicillin-Streptomycin-Kombination sowie Vitaminsupplementierung.
Aus dem Kot von einer klinisch gesunden männlichen Eulenkopfmeerkatze und einer
ebenfalls klinisch gesunden weiblichen Dianameerkatze wurde 1984 einmalig Mycobacterium
fortuitum isoliert.
51
Ergebnisse
Tabelle 14: Befunde im Rahmen bakterieller Kotuntersuchungen
Befund
Anzahl
Bemerkung
Campylobacter sp.
7
4mal hgr.
2mal mgr.;
Campylobacter coli
7
5mal hgr.
Pseudomonas sp.
1
hgr.
Pseudomonas aeruginosa
7
2mal mgr.
koliforme Keime mit Hämolyse
2
2mal mgr.
pathogene E. coli
22
Enterobacter agglomerans
1
hgr.
Enterobacter gergoviae
1
hgr.
Enterobacter cloacae
1
hgr.
1mal ggr.;
Klebsiella sp.
7
1mal mgr.;
3mal hgr.
Klebsiella pneumoniae
11
10mal hgr.
Klebsiella oxytoca
3
2mal hgr.
Salmonella typhimurium
4
Salmonella enteritidis
2
Salmonella manhattan
1
ggr.
Salmonella choleraesuis ssp. indica
1
hgr.
Proteus sp.
17
2mal mgr.
Proteus mirabilis
5
5mal hgr.
Yersinia enterocolitica
5
1mal ggr.
Shigella flexneri
2
Citrobacter freundii
1
mgr.
Aeromonas caviae
1
Staphylococcus aureus
6
1mal mgr.
Staphylococcus simulans
1
Mycobacterium fortuitum
2
Fehlen einer fäkalen Normalflora
unspezifischer Keimgehalt
19
182
Außer den Kotproben wurden noch 12 weitere Proben bakteriologisch untersucht. Dabei
handelte es sich um 2 Vaginalabstriche, in denen Aeromonas sp., Kolikeime und
Streptokokken gefunden wurden, 2 Tupfer des Abszessinhaltes verschiedener Tiere, aus
denen Staphylokokken bzw. Pseudomonas aeruginosa isoliert werden konnte; eine negative
Haarprobe, in der lediglich Staphylococcus epidermidis gefunden wurde, einen negativen
Rachenabstrich sowie einen Maulhöhlentupfer, aus dem β-hämolysierende Streptokokken
isoliert wurden. Weiterhin wurden von den o. g. in Quarantäne befindlichen Monameerkatzen
6 Rachenabstriche untersucht, in denen Haemophilus parainfluenzae, Staphylococcus aureus,
52
Ergebnisse
Klebsiella pneumoniae, E. coli, Corynebacterium ulcerans und Neisseria sp. vorhanden
waren. Die Tiere zeigten zusätzlich zu dem schlechten Allgemeinzustand teilweise auch
Husten und Dyspnoe.
Haemophilus parainfluenzae, Corynebacterium ulcerans und Neisseria sp. sind in der
Literatur bei Meerkatzen nicht beschrieben.
Tabelle 15 gibt einen Überblick über die bakteriologischen Befunde, die im Rahmen von
Obduktionen bei der bakteriologischen Untersuchung der Organe erhoben wurden. Aufgrund
teilweise fehlender Angaben war eine Zuordnung zu einzelnen Organen nicht möglich.
Auf bakteriell bedingte klinische Erkrankungen wird in den entsprechenden Kapiteln der
Organkrankheiten näher eingegangen.
Tabelle 15: Bakteriologische Befunde im Rahmen von Obduktionen
Befund
gram-negative Keime
Campylobacter coli
Pseudomonas aeruginosa
Anzahl
1
2
1
E. coli
8
koliforme Keime
Salmonella anatum
Salmonella typhimurium
(Salmonellose)
Proteus mirabilis
3
1
Bemerkung
3mal ggr.
1mal mgr.
4mal hgr.
hgr.
3
3
Yersinia (Pasteurella)
pseudotuberculosis
(Pseudotuberkulose)
3
Pasteurella sp.
Pasteurella multocida
Staphylococcus aureus
Staphylococcus intermedius
Streptokokken (α-hämolysierend)
Diplokokken
1
2
1
1
3
1
1mal anhand der
Bakterienmorphologie
mgr.
ggr.
ggr.
Mikrokokken
4
2mal ggr.
1mal mgr.
1mal hgr.
Clostridium perfringens
(toxinbildend)
Tuberkulose
säurefeste Stäbchen
Mykobakterien
Mycobacterium bovis
Mycobacterium avium
unspezifischer Keimgehalt
1
hgr.
10
1
1
4
1
2
mgr.
53
Ergebnisse
4.2.2 Virale Infektionskrankheiten
Im Untersuchungszeitraum wurden 26 virologische Untersuchungen durchgeführt. Es
handelte sich dabei um 19 Blutuntersuchungen und 7 Untersuchungen von Kotproben.
Achtzehn der Blutuntersuchungen und sämtliche Kotuntersuchungen wurden im Zuge einer
von EULENBERGER et al. (2001) beschriebenen Quarantäne von illegal aus Nigeria
eingeführten Monameerkatzen durchgeführt.
Serologische Untersuchungen der zunächst 10 Tiere verliefen für STLV, SIV, SRV und
Ebola-Virus negativ. Ein Tier reagierte intermediär auf α-Herpes Virusantigen und 8 Tiere
reagierten positiv auf Hepatitis A. Bei Nachuntersuchungen der verbliebenen 8 Tiere zwei
Monate später waren alle Hepatitis A positiv. Bei den zwei zuerst negativ untersuchten Tieren
wurden sowohl IgM als auch IgG nachgewiesen, während bei den übrigen nur noch IgG
gefunden wurde.
Bei gleichzeitiger Untersuchung von 3 Sammelkotproben der Monameerkatzen wurden in 2
Proben Rotavirus-spezifische Genomsequenzen ermittelt. Die Nachuntersuchungen von 4
Sammelkotproben 5 Wochen später verliefen negativ.
Die Tiere befanden sich zu Anfang in einem denkbar schlechten Zustand und sowohl die
parasitologischen als auch die mikrobiologischen Kotuntersuchungen wiesen auf das
Vorhandensein zahlreicher pathogener Agentien hin. Therapeutisch wurden neben
Anthelmintika, Antibiotika und Präparaten zur Vitamin- und Aminosäurensupplementierung
Paramunitätsinducer (Baypamun®), Interferon und Probiotika (Mutaflor®) eingesetzt.
Im Rahmen der Arbeit von HORNUNG (1993) wurden u.a. Serumproben einer Eulenkopfund einer Blaumaulmeerkatze aus dem Leipziger Zoo auf Hepatitis A-Virus-Antikörper
untersucht. Im Falle der Eulenkopfmeerkatze war das Ergebnis negativ, das Serum der
Blaumaulmeerkatze wurde positiv untersucht. Es wurde IgG, nicht jedoch IgM nachgewiesen.
HECKEL (1998) untersuchte im Rahmen seiner Arbeit u.a. Serumproben von 7 Brazza-,
Diana- und Eulenkopfmeerkatzen aus dem Leipziger Zoo auf Hepatitis B-Virus-Antikörper.
Die Ergebnisse waren negativ.
54
Ergebnisse
4.2.3 Mykosen
Im Untersuchungszeitraum wurden 4 mykologische Untersuchungen von 2 Haarproben und 2
Bürstenabstrichen eingeleitet. Grund der Untersuchung war in allen 4 Fällen eine aufgetretene
Alopezie. In einem Fall wurde Microsporum gypseum isoliert. Das Tier wurde gewaschen und
mit Vitaminen versorgt. Die Alopezie veränderte sich nicht. Die restlichen Untersuchungen
verliefen negativ.
Tabelle 16: Mykologische Befunde
Bei 19 mikrobiologischen Kotuntersuchungen aus
Befund
Anzahl
den Jahren 1968 und 2001 wurden mykologische
Kot
Befunde erhoben (Tabelle 16).
In der Literatur sind bei Meerkatzen Infektionen
Hefen
1
mit Microsporum sp., Hefen oder Schimmelpilzen
Candida sp.
1
nicht beschrieben.
Candida albicans
15
Im Jahre 1968 wurden in der Kotprobe einer
Candida guilliermondii 3
Brazzameerkatze
Hefen
und
in
einer
Schimmelpilze
2
Sammelkotprobe von 1,2 Brazzameerkatzen
Bürstenabstrich
Schimmelpilze gefunden. Den vorliegenden
Microsporum gypseum 1
Unterlagen ist kein Hinweis auf klinische
Erkrankungen der Tiere zu entnehmen.
Bei einer Eulenkopfmeerkatze mit wässrigem Durchfall wurde neben dem Fehlen einer
fäkalen Normalflora ein starker Gehalt an Schimmelpilzen im Kot entdeckt. Das Tier
gesundete nach Gabe von Probiotika (Ponsocol®).
Bei 16 mikrobiologischen Untersuchungen von Sammelkotproben und Kottupfern von in
Quarantäne gehaltenen Monameerkatzen wurden, neben verschiedenen bakteriellen Erregern,
Candida albicans und Candida guilliermondii gefunden. Außerdem wurde C. albicans in
Rachenabstrichen von zwei Tieren gefunden. Die Tiere befanden sich in einem sehr
schlechten Zustand. Der Fall wurde bereits von EULENBERGER et al. (2001) beschrieben.
Im Jahre 2002 wurde im Kot der Monameerkatzengruppe neben dem Fehlen einer fäkalen
Normalflora ein mgr. Gehalt an Candida sp. festgestellt. Die Tiere zeigten Durchfall, der nach
Therapie mit Itraconazol, Elektrolyttränke, Huminsäuren und Laktobazillen verschwand.
55
Ergebnisse
4.3 Parasitenbefall
Das Untersuchungsgut umfasst 396 parasitologische Untersuchungsbefunde, wobei es sich
um 167 positive und 229 negative handelt. Es wurden parasitologische Kotuntersuchungen
und Untersuchungen des Magen-Darm-Traktes im Rahmen von Sektionen berücksichtigt.
Es wurden 26 verschiedene Parasitenarten isoliert. Dabei kommen Protozoen, Nematoden,
Trematoden, Akanthozephalen und Zestoden bzw. deren Entwicklungsstadien vor. Tabelle 17
stellt die beteiligten Parasiten in der Reihenfolge
Tabelle 17: Parasitenbefunde
abnehmender Häufigkeit dar.
Parasit
gesamt
In 107 Fällen handelte es sich um
Amöbenzysten
74
Monoinfektionen, in 31 Fällen wurden 2 Spezies
Trichuris sp.
33
nachgewiesen, 15mal 3 Spezies und 4mal waren 4
Subulura sp.
28
Spezies an der Infektion beteiligt.
Strongyloides sp.
25
In den 50er und 60er Jahren wurden 76 % (38 von
Bursanematoden
9
50) der untersuchten Proben positiv befundet,
Entamoeba histolytica
9
wobei Strongyloides sp. dominierten, gefolgt von
Entamoeba coli
8
Amöben und Subulura sp.. In den 70er Jahren
Spiruriden
8
waren 58 % der untersuchten Proben positiv (46
Iodamoeba buetschlii
6
von 80). Die Amöben nahmen hier den ersten
Rang ein, gefolgt von Trichuris sp.. Auch in den
Balantidium sp.
5
80er Jahren dominierten die Amöben bei den 40%
Blastocystis sp.
4
(47 von 118) positiv untersuchten Proben.
Oxyuren
4
Während in den 90er Jahren nur 20 % (20 von
Capillaria sp.
3
101) der untersuchten Proben positiv waren
Hakenwürmer
3
(Amöben, Subulura sp. und Blastocystis sp.),
Zestoden
2
dominieren in den ersten Jahren des neuen
Flagellaten
2
Jahrtausends Trichuris sp. bei 36 % (17 von 47)
Prosthenorchis sp.
2
positiv untersuchten Proben.
Ancylostoma duodenale
1
Folgende, im Untersuchungsgut gefundene
Chilomastix mesnili
1
Parasiten sind in der Literatur bei Meerkatzen
Dicrocoelium sp.
1
nicht
beschrieben:
die
Kratzergattung
Echinococcus sp.
1
Prosthenorchis, die Gattung Subulura aus der
Endolimax sp.
1
Ordnung Oxyurida und die Hakenwurmart
Mesocestoides sp.
1
Ancylostoma duodenale.
Necator americanus
1
Eier von Vertretern der Gattung Prosthenorchis
Strongyliden
1
wurden 1976 im Kot einer männlichen
Trichostrongyliden
1
Brazzameerkatze gefunden. Die zur Auswertung
vorliegenden Unterlagen geben keinen Hinweis
auf eine klinische Erkrankung des Tieres. In der Sammelkotprobe einer männlichen und einer
weiblichen Roloway-Meerkatze wurden 1984 Prosthenorchis sp. nachgewiesen. Die Tiere
56
Ergebnisse
zeigten Durchfall bei ungestörtem Allgemeinbefinden. Eine erneute parasitologische
Kotuntersuchung nach Therapie mit einer Sulfonamid-Trimetoprim-Kombination und
Elektrolyttränke verlief negativ.
Subulura sp. wurden im Zeitraum von 1964 bis 1972 in 8 Fällen von klinisch erkrankten
Meerkatzen isoliert. Es handelte sich dabei aber vorwiegend um Primärerkrankungen, die
ätiologisch nicht mit dem Nematodenbefall in Zusammenhang standen, wie Tuberkulose,
Pseudotuberkulose, Perikarditis und ein Fall einer Septikämie. In einem Fall einer Enteritis
ging der ggr. Subulura- mit einem Amöbenbefall einher, wobei die Amöben als ätiologisches
Agens betrachtet wurden und die Behandlung dementsprechend erfolgte. Im Falle eines
Tieres mit unspezifischer Symptomatik (vermindertes Allgemeinbefinden und Abmagerung)
wurden im Kot vereinzelt Subuluraeier nachgewiesen. Das Tier gesundete nach
Vitaminsubstitution.
In einer Sammelkotprobe von 10 Monameerkatzen, die aus Nigeria stammend am Flughafen
Frankfurt/M. konfisziert worden waren, wurden bei der parasitologischen Untersuchung
neben Trichuris sp. Entwicklungsstadien von Ancylostoma duodenale und/oder Necator
americanus gefunden. Die Differenzierung dieser beiden Hakenwurmarten ist nicht sicher
möglich. Daneben zeigte auch die mikrobiologische Kotuntersuchung das Vorhandensein
zahlreicher pathogener Keime. Die Tiere befanden sich in einem äußerst schlechten Zustand.
Der Fall wurde bereits von EULENBERGER et al. (2001) beschrieben.
Zur Therapie der Parasitosen wurden im Falle einer Amöbiasis Metronidazol und früher auch
Wismutsalze eingesetzt. Bei Nematodenbefall wurden Fenbendazol oder Ivermectin
eingesetzt und bei Vorliegen von Zestoden spezielle Bandwurmpräparate (Nemural®). Es
bleibt zu erwähnen, dass in vielen Fällen Amöbeninfektionen unbehandelt blieben,
vorwiegend wenn es sich um Infektionen mit apathogenen Arten handelte. Außerdem blieben
in den ersten Jahren des Untersuchungszeitraumes Parasitosen in Ermangelung wirksamer
Präparate häufiger unbehandelt.
Auf Fälle mit klinischen Erscheinungen durch Parasitenbefall wird in den entsprechenden
Kapiteln der Organkrankheiten näher eingegangen.
57
Ergebnisse
4.4 Organkrankheiten
4.4.1 Krankheiten der Atmungsorgane
Von den 333 untersuchten Krankheitsfällen betrafen 43 Fälle Krankheiten der
Atmungsorgane (Tabelle 18). Diese Gruppe (12,9 %) rangiert damit, knapp hinter der Gruppe
der Traumata, an dritter Stelle der klinischen Krankheiten. 35 % der Fälle endeten tödlich. An
diesen Fällen waren ca. 31 verschiedene Tiere aus 13 verschiedenen Arten beteiligt.
Die Fälle ereigneten sich in den
Tabelle 18: Häufigkeit der Krankheiten der
Jahren 1958 bis 1996. Es wurden 13
Atmungsorgane
mikrobiologische, 9 parasitologische,
Diagnose
Anzahl letal
eine hämatologische und klinischTuberkulose
9
8
chemische, außerdem 4 radiologische
Pseudotuberkulose
2
2
Untersuchungen
sowie
15
Lungenechinokokkose
1
1
Obduktionen durchgeführt.
Rhinitis
8
Am
häufigsten
traten
den
Tonsillitis/Pharyngitis
1
Respirationstrakt
betreffende
Katarrh der oberen Luftwege
6
Tuberkulosefälle (21 %), gefolgt von
Bronchitis
7
Rhinitiden (19 %) und Bronchitiden
Bronchopneumonie
2
(16 %) auf. Folgende Krankheiten
Pneumonie
5
3
sind in der Literatur nicht
Futteraspiration
1
1
beschrieben: Lungenechinokokkose,
Pleuritis
1
Tonsillitis,
Pharyngitis
und
gesamt
43
15
Futteraspiration.
In der Untersuchungspopulation traten 9 Fälle von Tuberkulose mit vorwiegend
respiratorischer Symptomatik auf. Sie ereigneten sich in den Jahren 1958 bis 1970. Acht Fälle
endeten tödlich, wobei 4 Tiere euthanasiert wurden. Ein Tier wurde aus der Behandlung
entlassen, als es in einen anderen Bestand wechselte. Es erkrankten 8mal männliche sowie
einmal ein weibliches Tier. Von 7 der Tiere ist das Alter nicht bekannt, die anderen beiden
waren 4 und 5 Jahre alt. Es handelte sich um 3 Diana-, 2 Blaumaul- und jeweils eine Brazza-,
Mona-, Malbruck- und Weißnasenmeerkatze. Die Krankheitsdauer betrug 1 bis 496,
durchschnittlich 106 Tage. Sieben Tiere zeigten ein gestörtes Allgemeinbefinden, ein Tier
war im Allgemeinbefinden ungestört. Außerdem traten Husten (6 Fälle), Inappetenz (2 Fälle),
Dyspnoe (2 Fälle), Nasenausfluss (2 Fälle) und giemende Lungengeräusche (1 Fall) auf. Ein
Tier fiel durch vermehrte Salivation auf, war abgemagert, hatte blasse Schleimhäute und wies
bei der Auskultation der Lunge Rasselgeräusche auf. Ein anderes Tier zeigte neben Husten
auch Nierenpalpationsschmerzen, eine erhöhte Bauchdeckenspannung und bräunlichklebrigen Urin. Die Obduktion dieses Tieres erbrachte neben dem Befund der Tuberkulose
auch eine interstitielle Nephritis und eine Tubulonephrose. In 3 Fällen wurde aufgrund eines
Röntgenbefundes
die
Tuberkulose
diagnostiziert.
Therapeutisch
wurden
58
Ergebnisse
Isonicotinsäurehydrazid und Antibiotika (Penicillin, Benzylpenicillin-StreptomycinKombinationen, Polymyxin B) sowie Vitaminpräparate (Vit C, Vit B, Folsäure) und
verschiedene Tees (Fenchel, Pfefferminze, Bärentraubenblätter, schwarzer Tee) eingesetzt.
Bei den 8 durchgeführten Obduktionen wurde makroskopisch bzw. histologisch die Diagnose
der Tuberkulose gestellt. Außer in der Lunge traten tuberkulöse Herde in Leber, Milz, Nieren,
Dickdarm, Lymphknoten und sämtlichen serösen Häuten auf. Bei 6 mikrobiologischen
Untersuchungen im Zuge der Obduktionen wurden Mykobakterien (4mal M. bovis und 1mal
Mycobacterium sp.) oder lediglich säurefeste Stäbchen nachgewiesen (1mal). Wie schon von
EULENBERGER et al. (1992) beschrieben, wurden ab 1959 im Leipziger Zoo alle Tieraffen
einmalig einer BCG-Schutzimpfung unterzogen (intrakutane Applikation von 2mal 0,1 ml
BCG-Impfstoff an der Innenseite der Oberschenkel oder am Unterarm). In den Jahren 1969–
1982 wurden diese Impfungen im Abstand von 3 bis 4 Jahren wiederholt.
In den Jahren 1967 und 1984 trat jeweils ein letaler Fall von Pseudotuberkulose auf. Eine
4jährige männliche Weißnasenmeerkatze und eine männliche Dianameerkatze ohne
Altersangabe erkrankten. Beide Tiere zeigten im klinischen Bild vorwiegend respiratorische
Symptome, weswegen die Fälle in diesem Kapitel besprochen werden. Die Krankheitsdauer
betrug 470 bzw. 20 Tage. Beide Tiere zeigten ein gestörtes Allgemeinbefinden. Außerdem
traten in dem einen Fall Abmagerung, Erkältungssymptome, ein Kehlgangsödem und
Durchfall, in dem anderen Fall Inappetenz, Dyspnoe, Nasenausfluss, verschärfte
Lungengeräusche, klebrig-bräunlicher Urin, Kyphose und Muskelzittern auf. Das Blutbild
eines der Tiere wies eine ggr. Anämie und Leukozytose auf. Therapeutisch wurden
Antibiotika (Benzylpenicillin-Streptomycin, Chloramphenicol p.o., Sulfonamid-TrimetoprimKombinationen), Analgetika (Metamizol), steroidale Antiphlogistika (Prednisolon),
Expektorantien (Bromhexin), Diuretika (Mannitol, Hydrochlorothiazid), Dicophedrin®
(Digitoxin, Ephedrin, Coffein) sowie Vitamin- und Kalziumpräparate und Traubenzucker
verabreicht. Bei den Obduktionen wurden miliare Herde in Leber, Milz und Lymphknoten
gefunden. Yersinien wurden in einem Falle mikrobiologisch isoliert und im anderen Fall
morphologisch vermutet. An dieser Stelle sei auch auf den in Kapitel 4.4.2 besprochenen Fall
von Pseudotuberkulose hingewiesen.
Eine männliche Brazzameerkatze starb 1967 nach nur wenige Stunden dauernder
unspezifischer Symptomatik. Bei der Obduktion wurde eine massive Echinokokkose
festgestellt, mit mehreren bis zu 6 cm großen Zysten in der Lunge und einer kleineren Zyste
in der Leber. Außerdem wurde bei dem Tier eine Leberverfettung diagnostiziert.
In den Jahren 1963 bis 1996 ereigneten sich 8 Fälle, bei denen allein eine Rhinitis auftrat. In
allen Fällen konnten die Tiere geheilt entlassen werden. In 2 Fällen erkrankte ein männliches
Tier, 3mal ein weibliches und 3mal wurde das Geschlecht nicht dokumentiert. In 4 Fällen
wurde das Alter der Tiere erfasst, es betrug durchschnittlich 6 Jahre. Es waren 4mal
Dianameerkatzen und jeweils einmal eine Brazza-, Vollbart-, Lalandes- und Dunkle
Weißnasenmeerkatze betroffen. Die Krankheitsdauer betrug 1 bis 34, durchschnittlich 10
Tage. Häufigstes Symptom war Nasenausfluss (6 Fälle), gefolgt von Niesen (2 Fälle). Ein
59
Ergebnisse
Tier zeigte ein gestörtes Allgemeinbefinden und eines kümmerte. Therapeutisch kamen vor
allem Vitamin C und Hustensaft, teilweise auch Antibiotika (Penicillin, SulfonamidTrimetoprim-Kombinationen) und Antitussiva (Atussin®) zum Einsatz.
Eine 4jährige männliche Campbellmeerkatze erkrankte 1978 an einer Pharyngitis mit
Tonsillitis. Die Krankheitsdauer betrug 9 Tage. Auffällig waren ein vermindertes
Allgemeinbefinden, Inappetenz, Salivation und Foetor ex ore. Das Tier wurde antibiotisch mit
einer Penicillin-Streptomycin-Sulfonamid Kombination behandelt und erhielt außerdem
Silibon® und Vitaminpräparate.
Sechs Katarrhe der oberen Luftwege traten auf. Die Fälle ereigneten sich von 1963 bis
1977 und dauerten 6 bis 50, durchschnittlich 17 Tage. Alle Tiere gesundeten. Bei dreien der
Fälle handelt es sich um eine Gruppe von Dianameerkatzen, die gleichzeitig erkrankten. Das
Geschlechterverhältnis war ausgeglichen und nur bei einem 2jährigen Tier wurde das Alter
dokumentiert. Außer den Dianameerkatzen erkrankten je einmal eine Dunkle Weißnasen-,
Weißkehl- und Campbellmeerkatze. In allen Fällen trat Nasenausfluss auf, ein Tier zeigte
dabei ein gestörtes Allgemeinbefinden. Außerdem fielen Husten (4 Fälle), Dyspnoe,
Abmagerung und Alopezie (je 1 Fall) auf. Zur Behandlung wurden Antibiotika (Penicillin,
Sulfonamide,
Penicillin-Streptomycin-Sulfonamid
Kombinationen),
Expektorantien
®
(Thymian-Präparate, Bromhexin), Prednisolon, Dicophedrin
und Vitaminpräparate
eingesetzt.
In den Jahren 1962 bis 1980 wurden 7 Bronchitisfälle dokumentiert, die alle ausheilten. Es
waren 5mal männliche und 2mal weibliche Tiere mit einem Durchschnittsalter von 4 ½
Jahren (3 Altersangaben) betroffen. Es handelte sich je 2mal um Brazza- und Dunkle
Weißnasenmeerkatzen sowie je einmal um eine Eulenkopf-, Diana- und Weißkehlmeerkatze.
Die Krankheitsdauer betrug 7 bis 291, durchschnittlich 57 Tage. In 2 Fällen enthalten die
Unterlagen keine Angaben zur Krankheitssymptomatik, in den übrigen Fällen trat durchweg
Husten auf. Nur ein Tier war im Allgemeinbefinden gestört. Therapeutisch kamen vor allem
Expektorantien (Bromhexin, Guaifenesin, Thymian) aber auch Antibiotika (Penicillin und
Sulfonamide) zum Einsatz. Ein Tier wurde über 9 Monate metaphylaktisch mit
Isonicotinsäurehydrazid behandelt, in den vorliegenden Unterlagen wurde kein
Tuberkuloseverdacht festgehalten.
Zwei Fälle mit Bronchopneumonien ereigneten sich in den Jahren 1972 und 1973. In beiden
Fällen erholte sich der Patient wieder. In einem Fall handelte es sich um eine männliche
Eulenkopfmeerkatze, im anderen Fall fehlen jegliche Angaben. Die Krankheitsdauer betrug 4
bis 48, durchschnittlich 26 Tage. Ein Tier zeigte ein gestörtes Allgemeinbefinden und
außerdem fielen Dyspnoe, Nasenausfluss, Husten und verschärfte Lungengeräusche auf. Ein
Tier zeigte außerdem Durchfall. In beiden Fällen wurden zur Therapie Antibiotika
(Chloramphenicol, Oxytetrazyklin, Penicillin-Streptomycin-Sulfonamid Kombinationen)
eingesetzt und außerdem noch Vitamin C, Thymian als Expektorans, Dicophedrin® und
schwarzer Tee bei dem Tier mit Durchfall.
60
Ergebnisse
Von 1962 bis 1971 traten 5 Fälle von Pneumonien auf. Drei davon verliefen tödlich. Es
erkrankten 4 weibliche und 1 männliche Meerkatze unbekannten Alters. Es handelte sich um
Brazza-, Eulenkopf-, Vollbart- und 2 Dianameerkatzen. Die Krankheitsdauer betrug
durchschnittlich 3 Tage (0 bis 8). In einem Fall wurden keine Symptome dokumentiert. In den
übrigen Fällen fiel ein vermindertes Allgemeinbefinden bis hin zu Apathie auf (4 Fälle),
außerdem Inappetenz (1 Fall), Dyspnoe (3 Fälle), Nasenausfluss (1 Fall) und eingefallene
Augen (1 Fall). Dazu wies ein Tier Hautverletzungen auf. Zur Behandlung wurden
Antibiotika (Penicillin-Streptomycin Kombinationen und Sulfonamide), Vitaminpräparate,
Tees (Fenchel, Bärentraubenblätter) und ein Analeptikum eingesetzt. Bei den 3 Obduktionen
wurde in einem Falle neben der akuten katarrhalischen Pneumonie ein hgr.
Endoparasitenbefall festgestellt. Ein anderes Tier wies neben der Pneumonie eine hgr.
Leberverfettung auf. Bei der mikrobiologischen Untersuchung der Organe konnten einmal αhämolysierende Diplokokken, einmal E. coli und im dritten Fall Aerobacter sp. nachgewiesen
werden.
1977 starb eine männliche Weißkehlmeerkatze aufgrund einer Futteraspiration. Das Tier
hatte seit einem Tag ein hgr. abgeschlagenes Allgemeinbefinden gezeigt. Bei der Obduktion
zeigte sich eine hgr. Futteraspiration bis in die kleinsten Bronchien hinein und dazu ein hgr.
Finnenbefall in Pleura, Peritoneum, den Meningen bis hin zum Bulbus olfactorius. Es
handelte sich um Finnen eines Bandwurms der Gattung Mesocestoides. Außerdem wurden
koliforme Keime aus den Organen isoliert.
Eine weibliche Blaumaulmeerkatze litt 1965 an einer Pleuritis. Die Krankheitsdauer betrug
135 Tage. Das Tier zeigte neben einem verminderten Allgemeinbefinden auch Inappetenz,
Abmagerung, blasse Schleimhäute, Husten und eine erhöhte Bauchdeckenspannung. Zunächst
Bestand ein Tuberkuloseverdacht, der jedoch röntgenologisch entkräftet wurde. Zur Therapie
wurden Antibiotika (Sulfonamide), Thymian als pflanzliches Expektorans und je ein
Analgetikum und Antiphlogistikum (Phenylbutazon mit Aminophenazon) sowie begleitend
Vitamine, Kalzium- und Aminosäurenpräparate eingesetzt.
61
Ergebnisse
4.4.2 Krankheiten der Verdauungsorgane
124 der untersuchten 333 Krankheitsfälle betrafen Krankheiten der Verdauungsorgane
(Tabelle 19). Mit 37,2 % rangiert diese Gruppe damit an erster Stelle der ausgewerteten
Organkrankheiten. In 10 % der Fälle verstarben die Tiere. An diesen Fällen waren ca. 81
Tiere aus 12 verschiedenen Arten
Tabelle 19: Häufigkeit der Krankheiten der
beteiligt.
Verdauungsorgane
Die Fälle ereigneten sich in den
Diagnose
Anzahl letal
Jahren 1961 bis 2005. Es wurden 112
Salmonellose
10
3
mikrobiologische,
72
paraPseudotuberkulose
1
1
sitologische, 14 hämatologische und
Mykobakteriose
1
1
klinisch-chemische
und
2
Stomatitis
4
radiologische Untersuchungen sowie
Gingivitis
3
15 pathologische, darunter 13
Epuliden
2
Obduktionen, durchgeführt.
Parodontose
1
Am häufigsten kamen Enteritiden vor
Zahnfistel/Zahnwurzelabszess
2
(79%). Alle anderen Krankheiten
Enteritis
97
6
waren
weit
weniger
häufig.
Kolik
1
Parodontose, Prolapsus recti und
Prolapsus recti
1
1
Hernia diaphragmatica sind in der
Hernia diaphragmatica
1
1
Literatur bei Meerkatzen nicht
gesamt
124
13
beschrieben.
In der Untersuchungspopulation trat in 10 Fällen eine Salmonellose auf. Diese Fälle
ereigneten sich in den Jahren 1965 bis 1997, dreimal endete die Erkrankung tödlich. Es waren
3mal männliche und 7mal weibliche Tiere mit einem Durchschnittsalter von 7 Jahren
betroffen, wobei zwei der Tiere unbekannten Alters waren. Es handelte sich 5mal um
Eulenkopf-, 3mal um Diana- und je einmal um eine Vollbart- und eine Brazzameerkatze. Die
Krankheitsdauer betrug 0 bis 808 Tage (durchschnittlich 101 Tage), wobei im letzteren Fall
häufige Rezidive die Ursache für diesen langen Zeitraum waren. Alle Patienten zeigten als
Symptom Diarrhoe, teilweise wässrig (2 Fälle) und teilweise blutig (1 Fall). Weitere
Symptome waren ein gestörtes Allgemeinbefinden (9 Fälle), Inappetenz (7 Fälle), Vomitus,
Dyspnoe, Gesichtsödem, Epistaxis und epileptiforme Anfälle (jeweils 1 Fall). Bei 25
mikrobiologischen Untersuchungen (23mal Kot, 2mal Organe im Rahmen der Obduktion)
wurde 4mal Salmonella typhimurium und 6mal Salmonella enteritidis nachgewiesen. Bei den
S. enteritidis - Infektionen handelte es sich um eine Bestandserkrankung bei der 3 Diana- und
3 Eulenkopfmeerkatzen betroffen waren. In einem Fall kam es neben wiederholten S.
typhimurium Infektionen auch immer wieder zu Infektionen mit Entamoeba histolytica,
Blastocystis hominis u.a. Endoparasiten. Bei diesem Krankheitsfall, der sich insgesamt über
808 Tage erstreckte, zeigte eine Blutuntersuchung zu Anfang der Erkrankung eine deutliche
Leukozytose und ausgeprägte Aktivitätserhöhung verschiedener Serumenzyme (ASAT, LDH,
62
Ergebnisse
AP, CK, GGT, α-Amylase). Kurz vor seinem Tod zeigte das Tier häufiges Nasenbluten. Eine
Blutuntersuchung zeigte eine Anämie mit Leukozytose, Hypoproteinämie mit Erhöhung der
β-Globuline sowie Erhöhungen der Kreatinin, Harnstoff und Harnsäurewerte. Laut Obduktion
hatte das Tier an einer chronischen interstitiellen Nephritis, nichteitrigen Myokarditis und
Hepatitis gelitten. Die Bilder der anderen beiden in dieser Gruppe durchgeführten
Obduktionen zeigten beide das typische Bild einer Salmonellose mit Enteritis und Schwellung
von Leber und Milz sowie Nekroseherden in diesen beiden Organen, wenn auch nur in einem
Fall Salmonellen in den Organen nachgewiesen werden konnten. Therapeutisch wurden
Antibiotika (Chloramphenicol, Erythromycin, Cephachlor), Antiemetika (Metoclopramid),
Paramunitätsinducer (Baypamun®), Elektrolytlösungen und Eichenrindenextrakt (pflanzliches
Antidiarrhoikum als Adstringens) eingesetzt, außerdem wurden die Vitamingaben erhöht.
Eine 1½jährige männliche Monameerkatze erkrankte 1966 an Pseudotuberkulose. Die
Erkrankung endete tödlich, die Dauer betrug 18 Tage. Das Tier zeigte Inappetenz bei
vermindertem Allgemeinbefinden und sehr dünnem ockerfarbenem Kot, wobei es nach
Behandlung mit Antibiotika (Penicillin, Neomycin, Sulfonamide) und Vitaminsubstitution
zwischenzeitlich 10 Tage lang symptomfrei war. Bei der Obduktion wurden miliare Herde
und Nekrosen in Leber und Milz gefunden, es wurde Yersinia pseudotuberculosis isoliert. An
dieser Stelle sei auch auf die in Kapitel 4.4.1 besprochenen Fälle von Pseudotuberkulose
hingewiesen.
1982 erkrankte eine weibliche Dianameerkatze an einer Mykobakteriose. Die
Krankheitsdauer betrug 4 Tage, das Tier verstarb. Es zeigte ein vermindertes
Allgemeinbefinden, Diarrhoe und zeitweise Dyspnoe. Therapeutisch wurden
Chloramphenicol und Vitamin C verabreicht. Im Rahmen der Obduktion konnte aus den
Organen Mycobacterium avium isoliert werden.
In den Jahren 1961 bis 1997 traten 4 Fälle von Stomatitis auf. Das Geschlechterverhältnis der
Tiere war ausgeglichen, zweimal wurde das Alter dokumentiert (1½ bzw. 24 Jahre). Es waren
jeweils eine Eulenkopf-, Diana-, Blaumaul- und Zwergmeerkatze betroffen. Die
Krankheitsdauer betrug 3 bis 13 Tage, durchschnittlich 8 Tage. Als Symptom trat in allen
Fällen eine vermehrte Salivation auf, bei zwei Tieren waren Ulzera in der Mundschleimhaut
zu sehen. Außerdem waren in jeweils einem Fall vermindertes Allgemeinbefinden,
Inappetenz, Abmagerung, Diarrhoe, Vomitus, Würgen, Belag auf der Zunge und
Herabhängen der Unterlippe zu sehen. Bei einem Tier wurde Karies entdeckt. Alle Fälle
heilten aus. Therapeutisch wurden systemisch Antibiotika (Penicilline) und lokal
Antihistaminika (Diphenhydramin), Kamille und Antiseptika angewendet. Unterstützend
wurden außerdem Vitamin-, Kalzium- und Aminosäuren-, humane γ-Globulin-Präparate und
Chlorophyll verabreicht. Ein Tier erhielt ein Präparat mit Pankreasenzymen.
In der Zeit von 1962 bis 1978 litten zwei männliche und ein weibliches Tier an einer
Gingivitis. Es handelte sich um eine Brazza-, eine Eulenkopf- und eine Weißnasenmeerkatze.
In einem Fall wurde das Alter des Tieres mit 7 Jahren angegeben. Die Krankheitsdauer betrug
durchschnittlich 9 Tage (6 bis 13 Tage). Als Symptome trat in zwei Fällen eine Rötung des
63
Ergebnisse
Zahnfleisches und in einem Fall vermehrter Speichelfluss auf. Zur Behandlung wurde in
einem Fall ein Antibiotikum (Benzylpenicillin-Streptomycin-Kombination) verabreicht,
ansonsten wurden lokale Spülungen mit Kamillentee und eine Vitaminsubstitution
durchgeführt.
Eine 16 Jahre alte männliche Dianameerkatze zeigte 2004 Anzeichen einer Parodontose. Die
Krankheitsdauer betrug 6 Tage. Das Tier war inappetent bei vermindertem
Allgemeinbefinden, weiteres Symptom war Foetor ex ore. Bei der Blutuntersuchung traten
ggr. Anämie und Linksverschiebung sowie erhöhte Werte für Kreatinin, Bilirubin, Kalzium
und die CK-Aktivität zutage. Das Tier gesundete nach Therapie mit Antibiotika (Penicillin,
Enrofloxacin) und Infusion von Ringer-Lactat-Lösung.
1992 und 1998 litten eine männliche bzw. eine weibliche Eulenkopfmeerkatze an einem
fistelnden Zahnwurzelabszess. Die Tiere waren 21 und 25 Jahre alt. Die Krankheitsdauer
betrug 105 und 35 Tage. Ein Tier erholte sich, das andere verstarb. In beiden Fällen konnten
bei ungestörtem Allgemeinbefinden Schwellungen im Gesichtsbereich beobachtet werden.
Ein Tier magerte ab und hatte außerdem Karies. Mikrobiologische Untersuchungen des
Abszessinhaltes erbrachten einmal β-hämolysierende Streptokokken und einmal coryneforme
Keime mit Pseudomonas aeruginosa. Die bei dem 25jährigen Tier durchgeführte
Blutuntersuchung ergab erhöhte Serumaktivitäten von ChE, AP, CK, GGT und α-Amylase.
Therapeutisch wurden die Abzsesshöhlen chirurgisch eröffnet und die betroffenen Zähne
extrahiert. Weiterhin wurden lokal und systemisch Antibiotika (Penicillin, Enrofloxacin,
Cephalosporine,
Sulfonamide)
eingesetzt.
Die
weitere
Therapie
umfasste
entzündungshemmende Medikamente (Prednisolon), Immunstimulantien, Vitamine und
Infusionen mit elektrolyt-, glucose- und aminosäurenhaltigen Lösungen. Bei dem
verstorbenen 21jährigen Tier wurde im Rahmen der Obduktion ein Herz-Kreislaufversagen
nach Kachexie und Herzmuskelschaden diagnostiziert.
In den Jahren 1997 und 1999 traten bei ein und derselben männlichen Brazzameerkatze
Epuliden auf. Das Tier war 13 bzw. 15 Jahre alt. Beim ersten Auftreten eines etwa
kirschgroßen Epulis im Oberkieferbereich zeigte das Tier Schwierigkeiten beim Fressen.
Nach chirurgischer Entfernung unter Allgemeinanästhesie mittels Elektrokauter wurde
histopathologisch ein Epulis fibromatosa et ossificans mit unregelmäßiger Abgrenzung zum
umgebenden Gewebe diagnostiziert. Beim aufgetretenen Rezidiv an gleicher Stelle 2 Jahre
später, das ebenfalls entfernt wurde, wurde ein Epulis acanthomatosa diagnostiziert. Im
Gegensatz zu der oben erwähnten ist diese Form die einzige, die den darunter liegenden
Knochen infiltrieren kann. Im Gegensatz zur ersten traten nach der zweiten OP massive
Wundheilungsstörungen im Bereich der oberen Schneidezähne auf, so das ein Incisivus sogar
ausfiel. Das Tier wurde antibiotisch (Penicillin, Enrofloxacin, Spiramycin) und analgetisch
(Metamizol) versorgt, lokal wurden Kamille, Deshisan® und Tetracain angewendet.
Unterstützend wurden außerdem homöopathische Präparate (Prae Plantanum, Coffea
praeparata) und Vitamine verabreicht. Im Zuge der Epulidenentfernung mussten bei dem Tier
beide Male die deformierten und übermäßig langen Finger- und Fußnägel gekürzt werden.
64
Ergebnisse
Von 1964 bis 2005 traten in der Untersuchungspopulation 97 Enteritisfälle auf. Davon
endeten 6 letal. Das Geschlechterverhältnis war ausgeglichen, das Durchschnittsalter der
Tiere lag bei 7 Jahren. In der Reihenfolge abnehmender Häufigkeit waren folgende Arten
betroffen: Eulenkopf-, Diana-, Brazza-, Zwerg-, Mona-, Roloway-, Campbell-, Weißnasen-,
Weißkehl- und Blaumaulmeerkatzen. Die durchschnittliche Krankheitsdauer betrug 34 Tage
(0 bis 227 Tage). In 6 Fällen zeigten die Tiere keinerlei Symptome, 2mal wurde dabei durch
eine Kotuntersuchung eine Entamoeba histolytica Infektion nachgewiesen. In den anderen 4
Fällen wurde die Enteritis erst bei der Obduktion diagnostiziert. In 87 Fällen wurde Diarrhoe
als Symptom beobachtet, davon 13mal wässrig, 7mal blutig, 4mal gelblich und einmal
säuerlich riechend. Weitere Krankheitssymptome waren ein vermindertes Allgemeinbefinden
(10 Fälle), Inappetenz (11 Fälle), Abmagerung (9 Fälle), Dyspnoe (2 Fälle), Kolikanzeichen,
Alopezie, Gesichtsödem (jeweils in 2 Fällen), blasse Schleimhäute, Koprostase nach
Durchfall, Bläschen auf der Zunge, Kyphose und Zittern (jeweils 1 Fall). In 43 Fällen wurde
eine infektiöse Genese nachgewiesen. Es wurden 75 mikrobiologische Untersuchungen
durchgeführt, 26 davon waren negativ, 12mal war keine fäkale Normalflora vorhanden und
3mal wurde ein unspezifischer Keimgehalt gefunden. Weitere Befunde waren verschiedene
als pathogen eingestufte E. coli Serovare (7 Fälle) wie O25:K11, O147:K89 (B), O78:K80
(B), außerdem wurden koliforme Keime (12 Fälle), toxinbildende C. perfringens (1 Fall),
Streptokokken (4 Fälle), aerobe Sporenbildner (9 Fälle), Proteus sp. (3 Fälle), Klebsiella sp.
(3 Fälle), Pseudomonas aeruginosa (2 Fälle), Aeromonas caviae (1 Fall) und Candida sp. (7
Fälle) ermittelt. Von 59 parasitologischen Untersuchungen waren 14 negativ. Ansonsten
wurden Trichuris sp. (12 Fälle), Amöbenzysten allgemein (11 Fälle), Entamoeba coli (11
Fälle), Entamoeba histolytica (10 Fälle), Strongyloides sp. (7 Fälle), Bursanematoden (6
Fälle), Trichostrongylus sp. (4 Fälle), Subulura sp. (3 Fälle), Anoplozephaliden (3 Fälle),
Iodamoeba buetschlii (3 Fälle), Prosthenorchis sp. (2 Fälle), Spiruriden (1 Fall) und
Trematoden (1 Fall) gefunden. Es wurden 3 Blutuntersuchungen durchgeführt, von denen
eine unauffällig war. Die anderen beiden zeigten eine Leukozytose und Erhöhung der
Serumaktivität der α-Amylase. Jeweils in einer Probe fielen auf: Anämie, Erhöhung der α1und β-Globulin-Fraktionen, Erhöhung der Serumaktivitäten von AP, ALAT, ASAT, LDH und
AP. Vier in dieser Gruppe durchgeführte Obduktionen erbrachten folgende Diagnosen:
Amöbiose, Gastroenteritis mit Koli- und Pasteurellensepsis, hgr. Kachexie, hämorrhagische
Kolitis durch C.-perfringens-Intoxikation, Gastroenteritis. Therapeutisch wurde bei den
Enteritiden häufig darauf geachtet, dass eine Diät (Quark, Joghurt, Möhrenbrei, geriebener
Apfel, Banane) eingehalten wurde. Des Weiteren wurden Antibiotika (Chloramphenicol,
Sulfonamide,
Sulfonamid-Trimetoprim-Kombinationen,
Cephachlor,
Metronidazol,
Penicilline, Benzylpenicillin-Streptomycin-Kombinationen, Neomycin, OTC, Polymyxin B,
Enrofloxacin, Tylosin), Antimykotika (Itraconazol), Anthelmintika (Thiabendazol,
Fenbendazol, Mebendazol, Nemural®, Levamisol), Adsorbentien und Adstringentien
(Wismutsalze, Huminsäuren, Eichenrindenextrakt, Heilerde), Probiotika (Symbioflor®,
Ponsocol®,
Diarstop®),
Spasmolytika
(Metamizol,
Schöllkraut),
Antiemetika
65
Ergebnisse
(Metoclopramid), Opioide (Loperamid), Antiphlogistika (Diclofenac, Prednisolon),
Homöopathika (Prae Plantanum, Coffea praeparata, Viruvetsan (DHU)) und „Hausmittel“ wie
Bitterschokolade, Leinsamen, Fenchel- und Schwarztee eingesetzt. Außerdem wurde auch
hier auf eine hinreichende Versorgung mit Vitaminen, Spurenelementen und Aminosäuren
geachtet.
Eine 8½ Jahre alte weibliche Dianameerkatze zeigte 1992 Anzeichen einer Kolik. Über
insgesamt 9 Tage zeigte das Tier Appetitlosigkeit und nahm intervallweise Stellungen ein, bei
denen die inneren Organe entlastet wurden (Hocke, Bauchlage). Eine mikrobiologische
Kotuntersuchung verlief negativ. Eine Blutuntersuchung ergab erhöhte Bilirubin- und LDHWerte. Nach Therapie mit Spasmolytika (Buscopan comp.®, Schöllkraut), Antibiotika
(Doxycyclin), Analgetika (Metamizol), Glukokortikoiden (Prednisolon), Infusion eines
Plasmaexpanders und Zufuhr von Elektrolyten, Glukose und Vitaminen gesundete das Tier.
Eine weibliche Vollbartmeerkatze verstarb 1963 an den Folgen eines Prolapsus recti. Der
Vorfall konnte zunächst unter Allgemeinanästhesie reponiert und der Anus mit einer
Tabaksbeutelnaht verschlossen werden. In den folgenden Tagen war das Tier munter, fraß
und setzte Kot ab. Die Naht wurde nach 6 Tagen entfernt. Einen Monat nach dem ersten
Prolaps kam es jedoch zu einem Rezidiv mit flächenhaften Blutungen. Es wurde erneut eine
Narkose zur Resektion und Reponierung durchgeführt unter der das Tier verstarb. Bei der
Obduktion wurden zusätzlich noch eine beginnende Schrumpfnierenbildung und eine hgr.
Dilatation beider Herzkammern festgestellt.
Ohne vorherige Krankheitsanzeichen verstarb 1964 ein männlicher Husarenaffe. Bei der
Obduktion wurde ein Zwerchfelldefekt mit Verlagerung von Magen, Milz und Teilen des
Darmkonvolutes in die Brusthöhle diagnostiziert.
4.4.3 Krankheiten der Leber
Im Untersuchungszeitraum trat ein Fall einer Lebererkrankung auf. Das entspricht 0,3 % der
Fälle.
1960 zeigte eine weibliche Lalandesmeerkatze plötzlich ein hgr. gestörtes Allgemeinbefinden
mit taumelndem Gang und zeitweiser Lähmung der Hintergliedmaßen. Das Tier verstarb
innerhalb von drei Stunden. Bei der Obduktion wurde eine toxische Hepatose diagnostiziert.
Als Ursache wurde die Aufnahme eines verdorbenen Nahrungsmittels angenommen. Dieses
Krankheitsbild ist in der Literatur bei Meerkatzen nicht beschrieben.
66
Ergebnisse
4.4.4 Krankheiten des exokrinen Pankreas
Im Untersuchungszeitraum trat in der Untersuchungspopulation ein Fall einer Erkrankung des
exokrinen Pankreas auf. Das entspricht 0,3 % der Fälle.
Eine 29 Jahre alte, weibliche Eulenkopfmeerkatze wurde 2002 euthanasiert, da sie an einem
Diabetes mellitus und einem nach außen aufgebrochenen Tumor im unteren Bauchbereich litt.
Zusätzlich zeigte das Tier eine beginnende Schwanzspitzennekrose. Pathologisch-anatomisch
und –histologisch wurde ein Adenokarzinom der Gangepithelien des Pankreas mit
Metastasierung in Uterus, Lymphknoten und das die Nebenniere umgebende Fettgewebe
diagnostiziert. Durch das neoplastische Pankreasgewebe kam es zu einer Verdrängung der
Langerhansschen Inseln. Dieser Fall wurde bereits von EULENBERGER et al. (2004)
beschrieben.
4.4.5 Krankheiten des Herz-Kreislauf-Systems
8 (2,4 %) der untersuchten 333 Krankheitsfälle betrafen Krankheiten des Herz-KreislaufSystems (Tabelle 20). Alle Fälle endeten tödlich. Es handelte sich um 8 Tiere aus 5
unterschiedlichen Arten.
Tabelle 20: Häufigkeit der Krankheiten des Herz-Kreislauf-Systems
Diagnose
Herz-Kreislauf-Versagen
Volumenmangelschock
Herzbeuteltamponade
Myokarddegeneration
Endokarditis
Ruptur der A. mesenterialis caudalis
gesamt
Anzahl
2
1
1
2
1
1
letal
2
1
1
2
1
1
8
8
Die Fälle ereigneten sich in den Jahren 1959 bis 1991. Es wurden 3 mikrobiologische und 2
parasitologische Untersuchungen sowie 8 Obduktionen durchgeführt. In der Literatur sind
Herz-Kreislauf-Versagen, Volumenmangelschock, Ruptur eines Aneurysmas, eine
Herzbeuteltamponade und Myokarddegenerationen bei Meerkatzen nicht beschrieben.
Zwei Tiere starben 1961 bzw. 1991 aufgrund eines Herz-Kreislauf-Versagens. Es handelte
sich um eine männliche Gelbgrüne Meerkatze unbekannten Alters und eine weibliche 7
Monate alte Eulenkopfmeerkatze. Im ersten Fall betrug die Krankheitsdauer 3 Tage, das
zweite Tier verstarb plötzlich nach einer BCG-Impfung. Symptomatisch war nur im ersten
Fall ein vermindertes Allgemeinbefinden aufgefallen. Daraufhin wurde das Tier mit einem
Antikonvulsivum (Pentamethylentetrazol) sowie Vitamin- und Chlorophyll-Präparaten
behandelt. Außerdem erhielt es zur Tuberkulose-Prophylaxe INH. Im Rahmen der Obduktion
67
Ergebnisse
wurden im ersten Fall gram-negative Keime isoliert und im zweiten Fall ein mgr.
Oxyurenbefall festgestellt.
Eine männliche Weißnasenmeerkatze verstarb 1975 aufgrund eines Volumenmangelschocks.
Das Tier wies ausgedehnte Verletzungen auf, u.a. war ein größeres Blutgefäß im Bereich der
Kniekehle eröffnet. Es war zunächst eine Wundtoilette durchgeführt und Digitoxin
verabreicht worden.
Eine weibliche Weißnasenmeerkatze unbekannten Alters verstarb 1961 aufgrund einer
Herzbeuteltamponade. Über 2 Tage war das Tier apathisch, wies eine Tachyarrhythmie und
einen reduzierten Pupillarreflex auf. Therapeutisch waren ein Analeptikum, ein
Antikonvulsivum und ein Vitamin B + Folsäure-Präparat eingesetzt worden.
Eine Zwergmeerkatze unbekannten Alters und eine männliche Weißnasenmeerkatze
verstarben 1959 bzw. 1961 an den Folgen von Myokarddegenerationen (Diagnose seitens
der Pathologie). Die Krankheitsdauer betrug 0 bzw. 3 Tage. Im ersten Fall zeigte das Tier
keine Krankheitsanzeichen vor seinem Tod, im zweiten Fall befand sich das Tier plötzlich in
Seitenlage und war apathisch.
1967 erkrankte eine 2½jährige weibliche Weißnasenmeerkatze an einer Endokarditis und
verstarb plötzlich ohne vorherige Krankheitssymptome. Im Rahmen der Obduktion wurde in
allen Organen ein mgr. unspezifischer Keimgehalt festgestellt.
Eine männliche Brazzameerkatze starb 1986 plötzlich aufgrund von innerem Verbluten nach
Ruptur der Arteria mesenterialis caudalis. Bei der Obduktion waren keine äußerlichen
Traumen am Tierkörper feststellbar, im Bereich der Ruptur befand sich ein Aneurysma.
4.4.5.1 Blut
Aus 20 Blutproben von 12 verschiedenen Tieren wurden Referenzwerte für Meerkatzen im
Leipziger Zoo erstellt. Die Blutproben wurden in den Jahren von 1984 bis 2005 von klinisch
gesunden adulten Tieren aus 5 verschiedenen Arten im Rahmen von Transporten,
Transpondersetzungen o.ä. entnommen. Die Ergebnisse zeigt Tabelle 21 (S. 69).
68
Ergebnisse
Tabelle 21: Hämatologische und klinisch-chemische Referenzwerte
Referenzbereich
Parameter
Einheit
n
min
max
16
0,38
0,62
Hämatokrit
l/l
16
9
16
Hämoglobin
mmol/l
16
3,12
7,05
RBC
T/l
16
1,30
4,07
MCH
fmol
16
68,7
135
MCV
fl
16
18,6
31,8
MCHC
mmol/l
16
3,25
10,3
Leukozyten
G/l
14
0
9
Eosinophile Granulozyten
%
14
0
3
Basophile Granulozyten
%
14
0
7
Stabkernige Granulozyten
%
14
14
62
Segmentkernige Granulozyten %
14
27
71
Lymphozyten
%
14
0
10
Monozyten
%
11
3,3
8,8
Glukose
mmol/l
13
48,9
77
Gesamteiweiß
g/l
14
30,5
53,2
Albumin
g/l
12
61,9
69,3
Albumin
rel.
12
1
9
α1-Globulin
rel.
12
7,2
19,1
α2-Globulin
rel.
12
5,5
15,8
ß-Globulin
rel.
12
5,9
14,3
γ-Globulin
rel.
15
57
132
Kreatinin
µmol/l
13
141
159
Natrium
mmol/l
13
3,1
6,2
Kalium
mmol/l
13
1,88
2,67
Calcium
mmol/l
11
97,0
117
Chlorid
mmol/l
15
0,62
2,11
anorg. Phosphat
mmol/l
13
11,1
28,4
Eisen
µmol/l
11
1,3
3,7
Bilirubin
µmol/l
15
1,01
4,47
Cholesterol
mmol/l
15
0,43
4,34
Triglyzeride
mmol/l
14
3
38
ChE
µkat/l
14
0,19
1,6
ALAT
µkat/l
15
0,35
1,4
ASAT
µkat/l
15
2,52
14,8
LDH
µkat/l
15
0,46
6,24
AP
µkat/l
13
2,52
12,1
CK
µkat/l
15
0,39
1,08
GGT
µkat/l
15
2,45
19,9
α-Amylase
µkat/l
15
2
7,4
Harnstoff
mmol/l
2
9
49
Harnsäure
µmol/l
12
0,54
1,62
Selen
µmol/l
13
1,4
4,96
Vitamin A
µmol/l
14
5,72
25
Vitamin E
µmol/l
2
11
11,3
Thyroxin
pmol/l
2
5,05
8,12
T3
pmol/l
69
Ergebnisse
4.4.6 Krankheiten der Harnorgane
Drei der untersuchten 333 Krankheitsfälle (1 %) betrafen Krankheiten der Harnorgane
(Tabelle 22). Alle Fälle endeten
Tabelle 22: Häufigkeit der Krankheiten der Harnorgane
letal.
Diagnose
Anzahl letal
Schrumpfnieren sind in der
Schrumpfnieren
2
2
Literatur bei Meerkatzen nicht
chronische interstitielle Nephritis
1
1
beschrieben.
gesamt
3
3
1987 und 1994 trat je ein Krankheitsfall auf, bei dem Schrumpfnieren diagnostiziert wurden.
Es handelte sich um eine männliche Weißkehlmeerkatze unbekannten Alters und eine
24jährige weibliche Campbellmeerkatze. Die Krankheitsdauer betrug 0 bzw. 56 Tage.
Symptome waren in beiden Fällen vermindertes Allgemeinbefinden und Abmagerung sowie
in einem Fall zusätzlich Inappetenz, Dyspnoe und Diarrhoe. In einem Fall wurde eine
hämatologische Untersuchung durchgeführt, bei der sich eine ggr. Anämie zeigte. Das Tier
wurde zunächst antibiotisch (Penicillin, Chloramphenicol) und mit Vitamin-B-Komplex
behandelt. Nachdem radiologisch die Schrumpfnierendiagnose gestellt worden war, wurde
das Tier euthanasiert. In dem anderen Fall wurde ein um das 10fache erhöhter
Blutharnstoffgehalt festgestellt. In diesem Fall wurde bei der Obduktion eine hgr.
Schrumpfnierenbildung mit begleitender Urämie diagnostiziert.
Eine männliche Eulenkopfmeerkatze starb 1974 plötzlich ohne vorherige Anzeichen einer
Krankheit. Hauptbefund bei der Obduktion war neben einem schlechten Ernährungszustand
eine chronische interstitielle Nephritis.
70
Ergebnisse
4.4.7 Krankheiten des Nervensystems
Von den 333 untersuchten Krankheitsfällen betrafen 10 Fälle Krankheiten des Nervensystems
(3 %). Tabelle 23 zeigt die Häufigkeiten, unterteilt in klinische Verdachtsdiagnosen und
tatsächliche pathologische Diagnosen. 60 % der Fälle endeten tödlich. An den Fällen waren
10 Tiere aus 5 verschiedenen Arten
Tabelle 23: Häufigkeit der Krankheiten
beteiligt.
des Nervensystems
Diagnose
klinische Verdachtsdiagnose
Epilepsie
Rückenmarkstuberkulose
Pathologie
Hirnödem
nichteitrige Enzephalitis
degenerativer Hirnschaden
Hämorrhagien im Bereich
des Rückenmarks
Herzmuskelnekrosen / keine
Veränderungen im Bereich des
Nervensystems
Salmonellose
Die Fälle ereigneten sich in den Jahren
1960
bis
2004.
Es
wurden
4
mikrobiologische, 3 parasitologische, 3
hämatologische und klinisch-chemische,
eine
radiologische,
eine
Liquoruntersuchung und 6 Obduktionen
durchgeführt. In einem Fall erfolgte eine
Narkose.
Folgende Befunde sind in der Literatur
bei Meerkatzen nicht beschrieben:
Hirnödem, Enzephalitis, degenerativer
Hirnschaden, Hämorrhagien im Bereich des
Rückenmarks.
Anzahl
6
1
1
1
1
1
1
1
gesamt
10
Im Untersuchungszeitraum traten 6
klinische Fälle von Epilepsie auf. Sie
ereigneten sich in den Jahren 1960 bis 2004. 2 Fälle endeten tödlich, wobei die pathologische
Diagnose in einem Fall Salmonellose und im anderen Fall Hirnödem lautete. Es erkrankten 4
männliche und 2 weibliche Tiere. 4 der Tiere waren jünger als ein Jahr, 2 Tiere waren adult.
Es erkrankten Brazza- (3 Fälle), Eulenkopf-, Diana- und Weißkehlmeerkatzen (je 1 Fall). Die
durchschnittliche Krankheitsdauer betrug 9 Tage (1 bis 25 Tage). Neben den epileptiformen
Anfällen (6 Fälle) traten ein vermindertes Allgemeinbefinden (1 Fall), Erkältungsanzeichen (1
Fall) und ein verzögerter Pupillarreflex auf. Es wurden 2 Blutuntersuchungen durchgeführt,
bei einer fielen eine Hypokalzämie und Hypovitaminose A sowie eine Hyperphosphat- und
Hyperbilirubinämie und eine Erhöhung der Aktivität der alkalischen Phosphatase auf, bei der
anderen eine Leukopenie und Selenmangel sowie eine Hyperkalzämie und eine Erhöhung des
Kreatininwertes. Bei letzterem Tier waren außerdem Erythrozyten und Eiweiß im Harn
nachweisbar. Wie bereits von EULENBERGER (1996) beschrieben, wurden den Jungtieren
der Meerkatzen zur Vermeidung epileptiformer Anfälle im Alter von 3 Monaten einmalig
200000 I.E. Vitamin D2 s.c. verabreicht. Therapeutisch wurden ansonsten Kalziumpräparate
verabreicht und als Antikonvulsiva wurden Phenobarbital und Droperidol eingesetzt. Des
Weiteren wurden Antibiotika (Benzylpenicillin-Streptomycin-Kombinationen, Enrofloxacin,
Chloramphenicol), Glukokortikoide (Prednisolon), Infusionen mit Elektrolyt-, Glucose-,
71
Ergebnisse
Bicarbonat- und auch so genannten Leberschutzlösungen, Chlorophyll-Präparate, humane γGlobulin-Präparate und auch Homöopathika (Arnica, Pulsatilla, Hamamelis) eingesetzt.
1961 wurde bei einer männlichen Blaumaulmeerkatze nach Röntgen- und Untersuchung von
Zerebrospinalflüssigkeit eine Rückenmarkstuberkulose diagnostiziert. Das Tier zeigte
Symptome von einer Paraparese bis hin zur Paraplegie und wurde mit Vitamin- und
Kalziumpräparaten sowie antibiotisch mit einer Benzylpenicillin-Streptomycin-Kombination
behandelt. Nach einer Krankheitsdauer von 25 Tagen wurde das Tier euthanasiert. Bei der
Sektion waren keine Veränderungen an Rückenmark oder Wirbelsäule nachweisbar, es
wurden lediglich Herzmuskelnekrosen festgestellt.
Eine 2½ Jahre alte weibliche Dianameerkatze mit einer Hinterhandlähmung und gestörtem
Allgemeinbefinden wurde 1969 nach 10 Tagen Krankheitsdauer euthanasiert. Bei der
Obduktion des Tieres wurde neben dem Hauptbefund einer nichteitrigen Enzephalitis auch
noch eine Pneumonie, Hepatitis und Nephritis diagnostiziert.
1979 verstarb eine 4 Wochen alte weibliche Eulenkopfmeerkatze nach 19tägiger
Krankheitsdauer. Klinische Symptome waren ein vermindertes Allgemeinbefinden, das Tier
trank kaum noch, hatte außerdem Durchfall, eine Stomatitis mit starker Salivation und einen
verzögerten Pupillarreflex. Das Tier erhielt Möhrenbrei sowie Fenchel- und Kamillentee. Bei
der Obduktion wurde ein degenerativer Hirnschaden festgestellt.
1997 verstarb eine 11 Jahre alte männliche Eulenkopfmeerkatze. Das Tier hatte einen Tag
lang tonisch-klonische Krämpfe gezeigt und dabei auch festgelegen. Das Tier wurde
antibiotisch (Penicillin) und mit Glukokortikoiden (Prednisolon) und humanen γ-GlobulinPräparaten behandelt. Dazu wurden Glucose- und Aminosäurenlösungen per Infusion
verabreicht. Bei der Obduktion wurden massive Blutungen im Bereich des Rückenmarkes
der Hals- und Brustwirbelsäule, und daneben eine Tubulonephrose und Koprostase
diagnostiziert.
4.4.8 Krankheiten der Sinnesorgane
Von den 333 untersuchten Krankheitsfällen betrafen 2 Fälle Krankheiten der Sinnesorgane
(Tabelle 24). Dies entspricht 0,6 %. Ein Othämatom ist in der Literatur bei Meerkatzen
nicht beschrieben.
Tabelle 24: Häufigkeit der Krankheiten
1992 fiel bei einer 1½jährigen männlichen
der Sinnesorgane
Brazzameerkatze eine zunächst ein-, später dann
Diagnose
Anzahl
beidseitige Trübung der Augen auf, die als
Cataracta diffusa
1
Cataracta diffusa angesprochen wurde. Als
Othämatom
1
Verdachtsdiagnose wurde eine Clamydiengesamt
2
infektion in Betracht gezogen, es liegen aber keine
Unterlagen
über
eine
mikrobiologische
Untersuchung vor. Das Tier wurde antibiotisch mit Doxycyclin und Sulfonamiden behandelt.
Das Krankheitsbild veränderte sich nicht.
72
Ergebnisse
Eine 2 Jahre alte männliche Monameerkatze litt 2002 an einem Othämatom. Das Tier
gesundete ohne Behandlung.
4.4.9 Krankheiten des Endokriniums
Im Untersuchungszeitraum trat in der Untersuchungspopulation ein Fall (0,3 %) einer
Erkrankung des Endokriniums auf. Ein Schilddrüsenkarzinom ist in der Literatur bei
Meerkatzen nicht beschrieben.
Es handelte sich um eine 23½ Jahre alte, männliche Campbellmeerkatze, die 1997 nach 8
Tagen Krankheitsdauer verstarb. Die Symptomatik bestand in gedämpftem
Allgemeinbefinden, Dyspnoe und Kyphose. Eine Schwellung im Kehlgangsbereich wurde
dokumentiert. Das Tier wurde antibiotisch (Erythromycin) und mit einem
Sympathomimetikum behandelt. Bei der Obduktion wurde ein follikuläres Karzinom der
Schilddrüse mit Metastasierung in Pleura, Interkostalmuskulatur und Lunge diagnostiziert.
Weitere Obduktionsbefunde waren Pleurafibrose mit chronischer nekrotisierender
Pneumonie, Chylothorax und dadurch bedingte Kompressionsatelektase der linken
Lungenhälfte, Hydroperikard und Myokardschwielen, Hepatitis, katarrhalische Enteritis und
chronische Peritonitis. Aus der Lunge konnte Staphylococcus intermedius isoliert werden.
4.4.10 Krankheiten der Bewegungsorgane
Von den 333 untersuchten Krankheitsfällen betrafen 7 Fälle (2,1 %) Krankheiten der
Bewegungsorgane (Tabelle 25). Traumatisch bedingte Krankheiten der Bewegungsorgane
werden im Kapitel 4.4.13 beschrieben.
4 der Fälle der Krankheiten der Bewegungsorgane heilten aus, in 3 Fällen wurde lediglich
eine Besserung beobachtet. An den Fällen waren 7 Tiere aus 2 verschiedenen Arten beteiligt.
Tabelle 25: Häufigkeit der Krankheiten der
Die Fälle ereigneten sich in den
Bewegungsorgane
Jahren 1961 bis 2004. Es wurden
Diagnose
Anzahl
eine hämatologische und klinischLahmheit (nicht genauer diagnostiziert)
4
chemische
sowie
eine
Spondylose
1
Röntgenuntersuchung
Muskelnarbe
1
durchgeführt. Eine Narkose war
Muskelschwäche
1
erforderlich.
Am
häufigsten
waren Lahmheiten, deren Ursache
gesamt
7
nicht näher ergründet wurde, alle
anderen waren Einzelfälle.
Von 1970 bis 2004 zeigten vier Tiere eine Lahmheit, die nach einer Krankheitsdauer von
durchschnittlich 22 Tagen (5 bis 37 Tage) ausheilte. Das Geschlechterverhältnis war
ausgeglichen und das durchschnittliche Alter lag bei 9 Jahren. Es waren 3 Eulenkopf- und
eine Blaumaulmeerkatze betroffen. Außer der Lahmheit trat bei nur einem Tier ein gestörtes
Allgemeinbefinden auf. In einem Fall wurde eine Röntgenuntersuchung durchgeführt, die
73
Ergebnisse
jedoch keinen besonderen Befund erbrachte. Eine Blutuntersuchung ergab eine Anämie mit
erniedrigtem Eisenwert sowie eine Erhöhung der Bilirubin- und GGT-Werte. In zwei Fällen
heilten die Lahmheiten ohne Behandlung aus, in den anderen wurden Antiphlogistika
(Meloxicam, Prednisolon), Heparin, Vitaminpräparate (E-Selen, AD3EC), Homöopathika und
in einem Fall auch ein Antibiotikum (Penicillin-Streptomycin-Kombination) eingesetzt.
1961 zeigte eine männliche Blaumaulmeerkatze eine Muskelschwäche, die sich nach einer
Krankheitsdauer von 28 Tagen besserte. Symptom war eine Paraparese. Therapeutisch
wurden
eine
Benzylpenicillin-Streptomycin-Kombination
sowie
Vitaminund
Kalziumpräparate verabreicht. Zusätzlich erhielt das Tier metaphylaktisch INH.
Eine andere männliche Blaumaulmeerkatze zeigte 1966 Anzeichen einer Spondylose.
Symptomatisch waren eine Lordose und Schmerzen bei Palpation der Lendengegend. Nach
antiphlogistischer und analgetischer Behandlung mit einem Phenylbutazon-AminophenazonKombinationspräparat und Verabreichung von Vitaminen besserte sich das Krankheitsbild.
Eine 2jährige weibliche Eulenkopfmeerkatze fiel 1997 durch Schonen der rechten Hand auf.
Bei der Untersuchung wurde festgestellt, dass sich in der Muskulatur des Unterarmes eine
knotige Vernarbung einer alten Verletzung befand. Das Krankheitsbild verbesserte sich nach
lokaler Anwendung von Franzbranntwein.
4.4.11 Krankheiten der Haut und des Haarkleides
22 Fälle, das sind 6,6 % der Krankheitsfälle, betrafen Krankheiten der Haut und des
Haarkleides (Tabelle 26). Traumatisch bedingte Krankheiten der Haut werden im Kapitel
4.4.13 beschrieben.
Tabelle 26: Häufigkeit der Krankheiten von
17 der Fälle mit Krankheiten der Haut und des
Haut und Haarkleid
Haarkleides heilten aus, in 5 Fällen wurden die
Diagnose
Anzahl
Tiere aus der Behandlung entlassen. An diesen
Mikrosporie
1
Fällen waren ca. 20 Tiere aus 10
Hautläsion
2
verschiedenen Arten beteiligt.
allergische Dermatitis
2
Die Fälle ereigneten sich in den Jahren 1958
Gesichtsödem
1
bis 2002. Es wurden 2 mykologische
Phlegmone
1
Untersuchungen
von
Bürstenabstrichen
Abszess
1
eingeleitet
und
3
Blutuntersuchungen
Lipom
3
durchgeführt.
übermäßig lange Zehnägel
1
Am häufigsten wurde bei den Meerkatzen eine
Alopezie
9
Alopezie beobachtet (41 %), gefolgt von
Fellfressen
1
Lipomen (13,6 %), Hautläsionen und
Allergien (je 9,1 %). Bei allen anderen
gesamt
22
Diagnosen handelte es sich um Einzelfälle.
Folgende Krankheiten sind in der Literatur bei Meerkatzen nicht beschrieben:
Mikrosporie, Lipom, Fellfressen.
74
Ergebnisse
1966 wurde bei einer männlichen Monameerkatze eine Mikrosporie diagnostiziert. Bei
ungestörtem Allgemeinbefinden zeigte das Tier eine sich auf Rücken und Hals ausbreitende
Alopezie. Anhand eines Bürstenabstriches wurde Microsporum gypseum nachgewiesen. Nach
Waschungen mit dem Ektoparasitikum Lindan und Vitaminsubstitution besserte sich das
Krankheitsbild nicht, so dass das Tier in unverändertem Zustand aus der Behandlung
entlassen wurde.
Bei zwei männlichen Meerkatzen (Lalandes- bzw. Weißkehlmeerkatze) traten 1965 bzw.
1984 verschorfte Hautläsionen auf. In einem Fall war der Schwanz, im anderen Fall das
Skrotum betroffen. In dem einem Fall wurde keine Therapie durchgeführt, im anderen Fall
die betroffene Stelle mit einem Antiseptikum betupft. Nach 98 bzw. 18 Tagen wurden die
Tiere geheilt aus der Behandlung entlassen.
1984 und 1990 traten je ein Fall von einem als Allergie angesprochenen Krankheitsbild auf.
Es waren eine 3jährige männliche Eulenkopfmeerkatze und eine weibliche Brazzameerkatze
betroffen. Das erste Tier zeigte plötzlich auftretende Petechien im haarlosen Gesichtsbereich,
das andere Tier Fellschäden und Rötungen der Haut, beide bei ungestörtem
Allgemeinbefinden. Die Tiere erhielten B-Komplex-Vitamine und Vitamin C sowie in einem
Fall ein Leinsamen Körnergemisch mit dem Futter verabreicht, worauf sie gesundeten.
1973 trat bei einer 6½ Jahre alten männlichen Monameerkatze ein Gesichtsödem im Bereich
des Auges auf. Das Krankheitsbild war nach 14 Tagen ohne Therapie verschwunden.
Eine 8jährige weibliche Brazzameerkatze litt 1992 an einer Phlegmone im Bauchbereich. Die
Krankheitsdauer betrug 13 Tage. Therapeutisch wurden Deshisan-Wundpuder lokal und
Amoxicillin systemisch angewendet.
1963 entwickelte sich bei einer weiblichen Weißnasenmeerkatze im Bereich der dorsalen
Mittelhand ein Abszess. Das Tier zeigte keinerlei Krankheitssymptome. Der Abszess wurde
eröffnet, entleert und die Abszesshöhle mit einem Sulfonamid-Puder aufgefüllt. Nach 7 Tagen
wurde das Tier geheilt entlassen.
Von 1958 bis 2002 traten bei drei Tieren Lipome im Bauchbereich auf. Es handelte sich um
zwei männliche und ein weibliches Tier mit einem durchschnittlichen Alter von 12 Jahren.
Betroffen waren je eine Zwerg-, Brazza- und Eulenkopfmeerkatze. Es fiel in allen Fällen
lediglich die Umfangvermehrung auf. Die Diagnose wurde in einem Fall mittels Palpation, in
den beiden anderen per Sonographie gestellt.
Eine 16 Jahre alte männliche Brazzameerkatze wurde im Jahr 2000 in Narkose gelegt, weil
die übermäßig langen, schon röhrenförmigen Zehennägel korrigiert werden mussten. 1
und 3 Jahre zuvor waren im Zuge von Epulidenentfernungen bei dem Tier bereits solche
Korrekturen notwendig gewesen.
In den Jahren 1966 bis 1992 trat in 8 Fällen eine Alopezie auf. Es waren drei männliche sowie
sechs weibliche Tiere betroffen. Das Durchschnittsalter bei in 5 Fällen dokumentiertem Alter
lag bei 12 Jahren. Es erkrankten 4 Diana-, 3 Campbell- sowie je eine Eulenkopf- und Dunkle
Weißnasenmeerkatze. In 5 Fällen gesundeten die Tiere, in 4 Fällen wurden sie in
unverändertem Zustand aus der Behandlung entlassen. In nur einem Fall trat als zusätzliches
75
Ergebnisse
Symptom Juckreiz auf. Bei 4 Fällen handelt es sich um eine 1966 erkrankte Familie an
Dianameerkatzen und bei 3 Fällen um eine Campbellmeerkatzen-Familie. Es wurde eine
mikrobiologische Untersuchung eines Bürstenabstriches veranlasst, das Ergebnis war negativ.
Dreimal wurde ein Trichophytieverdacht geäußert, aber nicht bestätigt. In einem Fall wurde
keine Therapie durchgeführt. Im Falle der erkrankten Dianameerkatzen wurde erfolgreich
eine Methioninsubstitution vorgenommen, die Campbellmeerkatzen erhielten Griseofulvin
über 30 Tage, welches jedoch zu keiner Verbesserung führte. Außerdem wurden
unterstützend bei Alopezien Vitamin C und Biotin sowie essentielle Aminosäuren
supplementiert.
Bei einer 3jährigen weiblichen Campbellmeerkatze traten 1991 Fellschäden auf, die auf
Fellfressen bzw. Fellzupfen aus Nervosität zurückgeführt wurden. Therapeutisch wurde eine
Dauermedikation mit Biotin, Pantothensäure und Präparaten mit essentiellen Aminosäuren
begonnen. Nach 96 Tagen waren die Symptome abgeklungen.
4.4.12 Krankheiten des lymphatischen Systems
Im untersuchten Zeitraum traten in der Untersuchungspopulation keine Krankheitsfälle auf,
die in erster Linie das lymphatische System betrafen.
4.4.13 Traumata
Von den 333 untersuchten Krankheitsfällen gehörten 44 Fälle (13,2 %) zur Gruppe der
traumatisch bedingten Krankheiten. Diese Gruppe rangiert damit an zweiter Stelle der
klinischen Krankheiten. 4 Fälle endeten tödlich.
Tabelle 27: Häufigkeiten der Traumata
An diesen Fällen waren 32 verschiedene Tiere
Diagnose
Anzahl letal
aus 9 Arten beteiligt.
Bissverletzung
26
1
Rissverletzung
5
1
Die Fälle ereigneten sich in den Jahren 1960 bis
Schnittverletzung
1
2003. Es wurden 5 mikrobiologische
weitere Verletzungen
4
Untersuchungen durchgeführt, 3 davon im
Rahmen von Obduktionen. Außerdem wurden 2
Quetschung
2
Blutuntersuchungen und 3 Obduktionen
Fraktur
5
1
veranlasst. 2 Narkosen waren notwendig.
Hämatom
1
1
Am häufigsten traten Bissverletzungen (59 %)
gesamt
44
4
auf, andere Traumata waren weniger häufig.
Von 1960 bis 2003 traten in der Untersuchungspopulation 38 Fälle von Verletzungen auf. Es
handelte sich um 26 Biss-, 5 Riss-, 4 nicht näher beschriebene Verletzungen, 2 Quetschungen
und 1 Schnittverletzung. 2 Fälle endeten tödlich. In 32 Fällen waren weibliche und in 6 Fällen
männliche Tiere betroffen. Das durchschnittliche Alter betrug 9 Jahre. Es waren in der
Reihenfolge abnehmender Häufigkeit Eulenkopf-, Brazza-, Diana-, Mona-, Blaumaul-,
Weißnasen-, Roloway-, Zwerg- und Weißgrüne Meerkatzen betroffen. Die Krankheitsdauer
76
Ergebnisse
betrug 0 bis 66 Tage, durchschnittlich 12 Tage. Von den Verletzungen betroffen waren die
Hände (12 Fälle), einem Tier wurde die Fingerkuppe abgebissen, außerdem wurden Arme (10
Fälle), Kopf (6 Fälle), Schwanz (4 Fälle), Beine (3 Fälle), Rücken (3 Fälle) und die Zehen (1
Fall) verletzt. Symptome waren: vermindertes Allgemeinbefinden (6 Fälle), Schwellungen,
Lahmheiten (je 5 Fälle), eitrige Entzündungen (4 Fälle), Inappetenz (2 Fälle), Abmagerung
und Durchfall (je 1 Fall). Ein Tier abortierte nach schweren Bissverletzungen und verstarb
später an einer Septikämie. Es wurden 2 Tupfer von eitrig entzündeten Wunden
mikrobiologisch untersucht. In beiden Fällen wurde Staphylococcus aureus isoliert, die
Behandlung erfolgte nach Antibiogramm. Bei zwei Blutuntersuchungen wurde lediglich in
einem Fall eine Leukozytose festgestellt. Das Tier litt an einer eitrig entzündeten Bisswunde.
Bei zwei durchgeführten Obduktionen wurde in einem Fall eine Septikämie durch infizierte
Bisswunden und in einem Fall ein Kreislaufversagen wegen hohen Blutverlustes nach tiefen
Muskelzerreißungen als Todesursache diagnostiziert. Es wurden bei Verletzungen insgesamt
5 Wunden genäht und 1 Abszess eröffnet. Therapeutisch fanden Antibiotika lokal als Salbe,
Spray oder Puder (Sulfonamide, Tetrazykline, Gentamycin, Penicillin) oder systemisch
(Tetrazykline,
Penicillin-Streptomycin-Kombinationen,
Sulfonamide,
Enrofloxacin)
Anwendung, des Weiteren Glukokortikoide (Prednisolon) und Analgetika (Metamizol) und in
2 Fällen ein Analeptikum (Pentetrazol). Außerdem wurden lokal Jodpräparate als Salbe oder
Tinktur, Heilsalben auf pflanzlicher Basis, Vitamin A-Salbe und Wundpuder (Deshisan®)
aufgetragen sowie Kamillenbäder und Einreibungen mit Franzbranntwein durchgeführt..
Ferner erhielten die Tiere in einigen Fällen Paramunitätsinducer (Baypamun®) und humane γGlobulin- sowie Vitamin-, Eisen- und Methionin-Präparate. In 7 Fällen wurde auf eine
Therapie verzichtet.
Von 1962 bis 1995 traten 5 Fälle mit Frakturen auf. Eines der Tiere starb. Es handelte sich
um 2 männliche und 3 weibliche Brazza-, Diana-, Mona- und Eulenkopfmeerkatzen. In 3
Fällen wurde das Alter dokumentiert. Die Tiere waren 1 bis 15 Jahre alt. Die Krankheitsdauer
betrug 9 bis 41 Tage, durchschnittlich 21 Tage. Die Frakturen betrafen die Schwanzwirbel (2
Fälle), die Phalanx II eines Ringfingers, einen Unterarm und eine Schädelbasis mit Atlas. Das
Allgemeinbefinden war bei allen Tieren ungestört. Das Tier, welches einen Schädelbasisbruch
erlitten hatte, fiel durch geschwollene Augenlider auf und zeigte lediglich kurz vor seinem
Tod Nasenbluten, das Tier mit der Unterarmfraktur schonte den Arm. In einem Fall wurde ein
Teil des Schwanzes nach der Fraktur amputiert. Ansonsten bestand die Therapie in lokaler
Behandlung, sofern die Haut verletzt war mit Antibiotika (Sulfonamide), Jodsalbe und wenn
die Haut unverletzt war, mit lokalen Anwendungen von essigsaurer Tonerde und
Franzbranntwein. Weiterhin wurden systemisch Antibiotika (Penicillin-StreptomycinKombinationen, Tylosin, Enrofloxacin) und Glukokortikoide (Prednisolon) verabreicht.
Eine neugeborene männliche Eulenkopfmeerkatze starb 1992 an den Folgen eines traumatisch
bedingten, großflächig ausgedehnten Hämatoms im Bereich des Schädeldaches.
77
Ergebnisse
4.5 Fortpflanzung
4.5.1 Physiologie der Fortpflanzung
Die erfassten fortpflanzungsphysiologischen Fälle sind im Kapitel 4.8 Fälle des Zucht und
Haltungsmanagements dargestellt.
4.5.2 Pathologie der Fortpflanzung und der Fortpflanzungsorgane
In diesem Kapitel werden Krankheiten der Fortpflanzungsorgane, Pathologie der Trächtigkeit
und der Geburt sowie neonatale Erkrankungen besprochen.
34 der untersuchten 333 untersuchten Krankheitsfälle (10,2 %) wurden in diese Gruppe
eingeordnet (Tabelle 28). 12 der Fälle endeten tödlich. An den 34 Fällen waren ca. 21 Tiere
aus 7 verschiedenen Arten beteiligt.
Die Fälle ereigneten sich in den
Tabelle 28: Häufigkeit der Fortpflanzungskrankheiten
Jahren 1969 bis 2002. Es
Diagnose
Anzahl letal
wurden 9 mikrobiologische, 3
Funiculitis
1
parasitologische und 6 BlutOrchitis
1
untersuchungen durchgeführt. 7
Endometritis
1
1
Narkosen waren erforderlich,
Menstruationsbeschwerden
8
2
dabei
wurden
3
innere
unphysiologische Vaginalblutung
4
geburtshilfliche Untersuchungen
Abort
4
vorgenommen. Dreimal wurde
Eklampsie/Puerperalstörungen
1
ein Jungtier per Kaiserschnitt
Trächtigkeitstoxikose/Tuberkulose
1
1
entwickelt.
Verkalkungen in der Plazenta
1
Am
häufigsten
traten
Schwergeburt
2
1
Menstruationsbeschwerden auf
(23,5
%),
gefolgt
von
Dystokie
4
2
unphysiologischen
VaginalTotgeburt
2
2
blutungen,
Aborten
und
Fruchtwasseraspiration
2
2
Dystokien (jeweils 11,8 %).
Lebensschwäche
1
1
Samenstrangentzündung,
Handaufzucht
1
Orchitis,
Endometritis,
gesamt
34
12
Menstruationsbeschwerden,
unphysiologische Vaginalblutungen, Trächtigkeitstoxikosen, Verkalkungen in der Plazenta,
Fruchtwasseraspiration und Lebensschwäche wurden in der Literatur bei Meerkatzen
bisher nicht beschrieben.
Eine 14½ Jahre alte männliche Eulenkopfmeerkatze litt 1991 an einer Funiculitis
(Samenstrangentzündung). Die Krankheitsdauer betrug 20 Tage. Die Symptome bestanden in
einer starken Verdickung der Samenstränge, die am narkotisierten Tier festgestellt werden
konnte. Außerdem war dieser Bereich vermehrt warm. Bei der Blutuntersuchung des Tieres
78
Ergebnisse
fielen erhöhte Kreatinin- und Harnstoffwerte sowie erhöhte Serumaktivitäten von AP und
GGT auf. Das Tier wurde 6 Tage lang antibiotisch mit Nalidixinsäure und Chloramphenicol,
antiphlogistisch mit Prednisolon, analgetisch mit Metamizol und unterstützend mit einem
Paramunitätsinducer (Baypamun®) und humanem γ-Globulin behandelt. Das Tier gesundete.
Eine 20jährige männliche Eulenkopfmeerkatze litt 1992 an einer Orchitis. Das Tier genas
nach 19 Tagen. Krankheitssymptome waren ein gestörtes Allgemeinbefinden und eine
Schwellung beider Hoden, wobei die rechte Seite stärker betroffen war. Per Blasrohr wurden
Chloramphenicol, Prednisolon und Dexamethason verabreicht.
Eine weibliche Meerkatze verstarb 1971 ohne vorherige Krankheitssymptomatik. Bei der
Obduktion wurden eine Endometritis mit Beteiligung von Kolikeimen und eine interstitielle
Hepatitis diagnostiziert.
Von 1982 bis 2002 traten 8 Fälle von Menstruationsbeschwerden bei weiblichen
Meerkatzen auf, wobei eine Blaumaulmeerkatze 6mal betroffen war. Bei den anderen Fällen
handelte es sich um eine 23jährige Eulenkopf- und eine 20jährige Weißkehlmeerkatze, wobei
letztere schon seit mehreren Jahren an Menstruationsbeschwerden litt, was aber nur im
Rahmen des einen Falles mit dokumentiert wurde. 2 Fälle endeten tödlich. Die Beschwerden
äußerten sich in gestörtem Allgemeinbefinden (5 Fälle), unphysiologisch starker
Menstruationsblutung (5 Fälle), Kyphose (4 Fälle), Inappetenz, Bauchschmerzen (je 2 Fälle)
und in einzelnen Fällen waren Abmagerung, ständige Schmierblutungen, stumpfes Haarkleid
und Durchfall zu beobachten. Zwei Blutuntersuchungen waren ohne besonderen Befund,
genauso wie 3 mikrobiologische Untersuchungen (1mal Kot, 2mal im Rahmen der
Obduktionen). Die Tiere wurden in 3 Fällen nicht behandelt. In den anderen Fällen wurden
Spasmolytika (Metamizol, Schöllkraut), Kalzium-, Vitamin K- und Vitamin C-Präparate,
Sekale-Alkaloide (Ergometrin), Kontrazeptiva und auch einmal ein Antibiotikum
(Chloramphenicol) eingesetzt. In beiden letal verlaufenen Fällen wurde bei der Obduktion ein
männerfaustgroßes Leiomyom im Uterus gefunden.
Von 1992 bis 2002 wurde in 4 Fällen eine unphysiologische Vaginalblutung beobachtet. Es
handelte sich um 3 durchschnittlich 18 Jahre alte Eulenkopf- und Dianameerkatzen. Die
Krankheitsdauer betrug im Mittel 13 Tage, die Tiere zeigten alle ein ungestörtes
Allgemeinbefinden. Ein Tier war trächtig, bei einer Ultraschalluntersuchung in Narkose
konnte eine lebende Frucht ausgemacht werden, die ca. 2 Monate später lebend geboren
wurde. In einem Fall wurde keine Therapie vorgenommen. In den anderen Fällen wurden
Vitamin K, Spasmolytika (Metamizol, Schöllkraut), Sekale-Alkaloide (Ergometrin),
Progesteron-Präparate, Antibiotika (Enrofloxacin), Amynin® und humane γ-Globuline
eingesetzt.
Im Zeitraum von 1969 bis 1992 traten 4 Fälle von Aborten auf. Es waren 3 Blaumaul-,
Weißnasen- bzw. Dianameerkatzen betroffen. Ein Tier abortierte 2mal im Abstand von 16
Monaten. Keiner der Fälle endete für die Muttertiere letal. Die Krankheitsdauer im Rahmen
der Aborte betrug 3 bis 45 Tage, durchschnittlich 19 Tage. Neben dem Abort traten Apathie
(2 Fälle) und in einzelnen Fällen Inappetenz, starke Vaginalblutungen und schleimiger
79
Ergebnisse
Vaginalfluor auf. Einmal traten nach dem Abort Puerperalstörungen auf. In einem Fall wurde
keine Therapie durchgeführt, in den anderen wurden Antibiotika (Penicillin-StreptomycinKombinationen), Sekale-Alkaloide p.o., Oxytocin, Kalziumpräparate und Traubenzucker
verabreicht.
Eine 13jährige trächtige Eulenkopfmeerkatze litt 1977 an einer Eklampsie. Die
Krankheitsdauer betrug 1 Tag. Direkt nach der Geburt fiel das Tier durch Apathie und
stumpfes Haarkleid auf, außerdem traten Puerperalstörungen auf. Das Jungtier wurde von der
Mutter getrennt und therapeutisch wurden ein Pentetrazol-Pholedrin-Kombinationspräparat,
Kalzium, Glukokortikoide (Prednisolon) und zur Antibiose eine Penicillin-StreptomycinKombination eingesetzt. Das Tier gesundete.
1969 verstarb eine gravide Brazzameerkatze unbekannten Alters. Klinisch wurde eine
Trächtigkeitstoxikose diagnostiziert. Die Krankheitsdauer betrug 20 Tage. Das Tier zeigte
ein gestörtes Allgemeinbefinden, Tachypnoe, erhöhte Bauchdeckenspannung und ab 10
Tagen vor dem Tod eine Paraplegie. Das Tier wurde mit Spasmolytika (Metamizol),
Strychnin als Analeptikum und Antibiotika (Polymyxin B) behandelt und erhielt ein
Methionin-Präparat. Bei der Obduktion wurde eine Tuberkulose mit miliaren Herden in
Lunge, Leber, Milz und Darm diagnostiziert. Die Scheitel-Steiß-Länge des Fetus betrug 11
cm.
1998 wurden in der Plazenta einer 14jährigen Brazzameerkatze unphysiologische
Kalzifizierungen gefunden. Die Geburt war physiologisch verlaufen und in der Plazenta
fanden sich ansonsten keine Hinweise auf das Vorliegen einer Neoplasie oder einer
Entzündung.
Im Jahre 2000 fanden zwei Schwergeburten statt, von denen eine tödlich für Mutter und
Jungtier verlief. In einem Fall war eine 12jährige Eulenkopfmeerkatze und im anderen Fall
eine 16½ Jahre alte Brazzameerkatze betroffen. Im ersten Fall wurde nicht geburtshilflich
eingegriffen. Das Muttertier zeigte nach der Geburt eine Hemiplegie hinten links und
kümmerte sich nur wenig um das Jungtier. Nach Verabreichung von Coffein trat eine
Besserung ein. Im zweiten Fall wurde das Muttertier morgens mit einer frischtoten Frucht in
den Geburtswegen aufgefunden. Da auch nach Oxytocingabe keine Wehen mehr einsetzten
wurde das Tier gefangen und die Frucht entwickelt. Nach Verabreichung eines
Spasmolytikums (Metamizol), Coffein, eines Antibiotikums (Penicillin-Streptomycin) und
Infusion von Glucose- und Kalzium-Gluconat-Lösungen besserte sich der Zustand des Tieres
zunächst. Am nächsten Morgen verstarb es jedoch. Bei der Obduktion wurde eine hgr.
großtropfige disseminierte degenerative Leberverfettung festgestellt, die möglicherweise
Ausdruck einer Eklampsie war, sowie ein Hämatom im Bereich der Bauchwand und eine alte,
verwachsene Hernia abdominalis.
In 4 Fällen wurde im Zeitraum von 1982 bis 1999 eine Dystokie beobachtet. Es waren 4 Tiere
mit einem durchschnittlichen Alter von 15½ Jahren betroffen, es handelte sich um 2
Eulenkopf-, eine Diana- und eine Campbellmeerkatze. Ein Fall verlief für Mutter- und
Jungtier letal. In einem Fall verstarb das Muttertier und in einem wurde eine frischtote Frucht
80
Ergebnisse
entwickelt, die Mutter überlebte. Im letzten Fall überlebten Mutter- und Jungtier. In je einem
Fall handelte es sich um eine Dystokie infolge absolut zu großer Frucht, Dystokie infolge
relativ zu großer Frucht und Dystokie infolge fehlerhafter Lage. Ein Fall wurde nicht genauer
dokumentiert. Es waren 3 Narkosen notwendig, im Zuge derer 3 innere geburtshilfliche
Untersuchungen und 3 Kaiserschnitte durchgeführt wurden. Es wurden 2 Obduktionen und
eine pathologisch-histologische Untersuchung einer Plazenta durchgeführt. Symptomatisch
waren gestörtes Allgemeinbefinden (1 Fall), Blutungen (1 Fall) und Wehenschwäche (3 Fälle)
zu beobachten. In einem Fall konnten durch Distanzinjektion von Carbetocin erneut Wehen
ausgelöst und die Geburt abgeschlossen werden. In den anderen Fällen wurde eine Sectio
caesarea durchgeführt. Bei den verstorbenen Muttertieren wurde im Zuge der Obduktion
Herz-Kreislaufversagen nach Schock diagnostiziert. In einem Fall konnte aus den Organen
Salmonella anatum isoliert werden.
Aus den Jahren 1970 und 1987 ist je eine Totgeburt dokumentiert. Es handelte sich um eine
Blaumaul- und eine Brazzameerkatze. In einem Fall konnten aus den Organen
Staphylokokken, Streptokokken und Kolikeime isoliert werden. Im anderen Fall wurde eine
Trümmerfraktur des Schädels diagnostiziert, die Lunge des Tieres war noch nicht beatmet.
Im Jahre 1997 und 2000 verstarben 2 neugeborene Brazzameerkatzen aufgrund einer hgr.
Fruchtwasseraspiration.
Eine neugeborene Eulenkopfmeerkatze starb im Jahr 2000 einen Tag nach der Geburt.
Klinisch wurde Lebensschwäche diagnostiziert. Das Tier war nicht fähig, sich an der Mutter
festzuhalten. Bei der Obduktion wurden hgr. epi- und subdurale Blutungen sowie
umfangreiche Blutungen im Neuropil des Kleinhirns gefunden, die mit an Sicherheit
grenzender Wahrscheinlichkeit auf ein stumpfes Trauma zurückzuführen waren.
1993 wurde eine männliche Brazzameerkatze per Hand aufgezogen, da die Mutter das
Jungtier nicht angenommen hatte. Das Tier litt über 26 Tage an intermittierendem Durchfall.
Eine mikrobiologische Kotuntersuchung erbrachte einen hgr. Enterokokkengehalt. Nach
Therapie mit Spasmolytika, Antibiotika (Enrofloxacin), Multivitaminpräparaten und
humanem γ-Globulin gesundete das Tier.
4.6 Neoplasien
Neoplastische Veränderungen sind in den entsprechenden Organkapiteln mit aufgeführt.
81
Ergebnisse
4.7 Unspezifische Krankheitsfälle
Von den 333 untersuchten Krankheitsfällen wurden 33 (9,9 %) der Gruppe der unspezifischen
Krankheiten zugeordnet. Es handelte sich um Fälle, bei denen vorwiegend unspezifische
Krankheitssymptome auftraten oder Symptome, die keinem einzelnen Organsystem
zuzuordnen waren, sowie plötzliche Todesfälle, bei denen auch die Obduktion keine
Diagnose erbrachte. An den Fällen waren ca. 29 Tiere aus 9 verschiedenen Arten beteiligt.
Die 33 unspezifischen Krankheitsfälle traten im Zeitraum von 1960 bis 2001 auf, 6 von ihnen
endeten tödlich. Es waren 19mal männliche und 14mal weibliche Tiere mit einem
durchschnittlichen Alter von 7 Jahren betroffen. Es handelte sich um Mona- (12 Fälle),
Eulenkopf- (9 Fälle), Weißnasen- (3 Fälle), Brazza- (2 Fälle), Blaumaul- (2 Fälle), Weißkehl(2 Fälle) und einzelne Diana-, Zwerg- und Weißgrüne Meerkatzen. Die Krankheitsdauer
betrug 0 bis 519 Tage, durchschnittlich 68 Tage.
In zwei Fällen starben die Tiere ohne vorherige Krankheitsanzeichen. In den anderen Fällen
traten folgende Symptome auf: gestörtes Allgemeinbefinden (25 Fälle), Exsikkose (10 Fälle),
Abmagerung (9 Fälle), Inappetenz (6 Fälle), Kyphose (4 Fälle), Salivation (2 Fälle) und in
einzelnen Fällen Dyspnoe, Fellschäden, Foetor ex ore, Zittern, blasse Schleimhäute,
Zusammenbrechen. Ein Tier war nach einem Ausbruch und durch das darauf folgende
Einfangen völlig unterkühlt und erschöpft.
Es wurden 8 mikrobiologische, 18 virologische, 7 parasitologische, 14 Blut-, eine Röntgenund eine Harnuntersuchung sowie 4 Obduktionen durchgeführt. 20 Narkosen waren
notwendig.
Bei den mikrobiologischen Kotuntersuchungen wurden koliforme Keime (2mal),
Streptococcus sp. (einmal), Pseudomonaden (2mal), Klebsiella sp. (2mal), Campylobacter sp.
und Candida sp. gefunden. Acht virologische Untersuchungen verliefen negativ, 10mal waren
Serumproben positiv im Bezug auf Hepatitis A Antikörper. Von 7 parasitologischen
Kotuntersuchungen waren 2 negativ, ansonsten wurden Entwicklungsstadien von
Trichostrongyliden (einmal), Strongyloides sp. (einmal), Subulura sp. (2mal), Trichuris sp.
(2mal) und Hakenwürmern (2mal) gefunden. Bei den Obduktionen wurde in 2 Fällen eine
Kachexie diagnostiziert und in jeweils einem Fall lediglich eine ggr. Dilatation der linken
Herzkammer bzw. eine ggr. Leberschwellung.
Therapeutisch wurden Präparate mit Kalzium, Multivitaminen, AD3EC-Kombinationen,
Vitamin D, Vitamin C, B-Komplex, Eisen und Cobalamin sowie Methionin eingesetzt. Des
Weiteren wurden Infusionen mit Glucose- und Bicarbonatlösungen, Plasmaexpandern und
Amynin® vorgenommen und Antibiotika wie Chloramphenicol, Sulfonamid-TrimetoprimKombinationen,
Neomycin,
Oxytetrazyklin,
Penicilline,
Penicillin-StreptomycinKombinationen, Polymyxin B, Nitrofurantoin, Cephalosporine und Erythromycin verabreicht.
Einzelne Tiere erhielten Herzmedikamente (Desacetyllanatosid) oder Antikonvulsiva
(Pentamethylentetrazol). Weiterhin wurden Glukokortikoide (Prednisolon) und Analgetika
82
Ergebnisse
(Metamizol) sowie Interferone, Probiotika (Mutaflor®), Paramunitätsinducer (Baypamun®)
und Anthelmintika (Ivermectin) eingesetzt.
83
Ergebnisse
4.8 Fälle des Zucht und Haltungsmanagements
Von den 387 untersuchten Fällen gehörten 54 (14 %) in die Gruppe des Zucht- und
Haltungsmanagements. Diese Gruppe umfasst Fälle, die sich nicht auf kranke Meerkatzen
beziehen, sondern auf gesundheitsprophylaktische Maßnahmen, physiologische Ereignisse
aus dem Fortpflanzungbereich, sofern sie dokumentiert wurden, und tiergärtnerische Abläufe,
wie Implantationen von Transpondern und Transporte.
Tabelle 29: Verteilung der Fälle des ZuchtIm Zeitraum von 1960 bis 2002 wurden in
und Haltungsmanagements
der Untersuchungspopulation 28 Fälle
Anzahl
dokumentiert, die unter dem Oberbegriff
Gesundheitsprophylaxe
28
Gesundheitsprophylaxe zusammengefasst
Physiologie der Fortpflanzung
5
wurden. Das sind 51,9 % der Fälle des
Transport
9
Zucht- und Haltungsmanagementes. Es
Transpondersetzung
12
handelte sich in der Reihenfolge
abnehmender Häufigkeit um Brazza-,
gesamt
54
Eulenkopf-, Diana-, Mona-, Weißnasen-,
Blaumaul- und Weißkehlmeerkatzen. Das Geschlechterverhältnis war ausgeglichen. In 16
Fällen wurden parasitologische Kotuntersuchungen durchgeführt. Es bestand kein klinischer
Verdacht und die Untersuchungen verliefen negativ. In 7 Fällen wurden intrakutane
Tuberkulintests durchführt, die ebenfalls negativ verliefen. Im Jahre 1962 wurde bei 3 Tieren
über 200 Tage eine Tuberkulose-Prophylaxe mit INH durchgeführt, nachdem ein Tier aus
dem Bestand an Tuberkulose verendet war. In einem Fall wurde eine BCG-Impfung
dokumentiert und in einem anderen wurde eine Einstelluntersuchung bei einem neu
angekommenen Tier vorgenommen.
5 Fälle aus der Zeit von 1970 bis 1996 betrafen die Physiologie der Fortpflanzung. Das sind
9,3 % der Fälle des Zucht- und Haltungsmanagements. In einem Fall musste eine in der
Geburt befindliche Monameerkatze von ihren Artgenossen getrennt werden, da diese sie
fortwährend belästigten. In zwei Fällen wurde tragenden Tieren eine Verabreichung von
Vitaminen und Mineralstoffen aufgrund der Trächtigkeit („Trächtigkeitsprophylaxe“)
verordnet. In einem Fall wurde die erfolgreiche mutterlose Aufzucht eines DianameerkatzenJungtieres beschrieben. Bei einer männlichen Brazzameerkatze wurde festgestellt, dass der
Descensus testis physiologisch verlief.
Von 1991 bis 2005 wurden 9 Transporte dokumentiert. Es handelte sich entweder um
Umsetzungen innerhalb des Zoos oder um Abgabe der Tiere in einen anderen Zoo oder
Tiergarten. Es handelte sich 4mal um männliche und 5mal um weibliche Eulenkopf-, Brazza-,
Diana- und Campbellmeerkatzen. Es wurden 5 Narkosen durchgeführt, im Rahmen derer 5
Blutuntersuchungen veranlasst wurden. 3 Kotproben bzw. Kottupferproben wurden
mikrobiologisch und parasitologisch mit negativem Ergebnis untersucht. Ein Tier erhielt im
84
Ergebnisse
Zuge des Transportes 2 Vitaminpräparate, ein anderes wurde entwurmt (Ivermectin) und
erhielt zusätzlich einen Paramunitätsinducer (Baypamun®).
12 Meerkatzen wurde von 1997 bis 2003 ein Transponder implantiert. 11 Tiere waren dabei
jünger als 2 Jahre, eines war 7½ Jahre alt. Es handelte sich um Eulenkopf-, Diana- und
Brazzameerkatzen. Es waren 2 Narkosen erforderlich, wobei einmal das Muttertier
immobilisiert werden musste, damit ein Transponder beim Jungtier gesetzt werden konnte.
Während der Narkosen wurden Blutproben gewonnen, deren Untersuchung ohne besonderen
Befund verlief. Außerdem verliefen die mikrobiologische und die parasitologische
Untersuchung eines Kottupfers negativ. Alle Tiere erhielten im Zuge dieser Maßnahme ein
Vitamin AD3EC- Präparat injiziert.
85
Ergebnisse
4.9 Immobilisation
In der Untersuchungspopulation wurden von 1965 bis 2005 65 Immobilisationen
durchgeführt. In 64 Fällen handelte es sich um Injektionsnarkosen. Aus dem Jahr 1965 ist
eine Narkose mittels Ätherinhalation dokumentiert. Die Injektionen wurden entweder per
Blasrohr oder, wenn die Tiere gefangen werden konnten, per Hand i.m. durchgeführt.
In 34 Fällen kamen Kombinationen des Anästhetikums Ketamin mit dem α2Rezeptoragonisten Xylazin zur Anwendung, 26mal wurde Ketamin mit dem Neuroleptikum
Droperidol kombiniert (Tabelle 30).
Die Ketamin/Droperidol-Narkosen wurden im Rahmen der Monameerkatzenquarantäne
durchgeführt, die bereits von EULENBERGER et al. (2001) beschrieben wurde.
Tabelle 30: In der Studienpopulation verwendete Narkotika
Arzneimittelkombination
Ketamin/
Xylazin
Ketamin/
Droperidol
Dosierung
(mg/kg KM)
10 (4-29)/
1,5 (0,4-10)
15 (8-29)/
0,5 (0,3-1)
Wirkungsdauer
(min)
Planum 2 erreicht
nach (min)
-
-
49 (13-100)
6 (1-11)
Zweimal wurde eine reine Ketamin-Narkose (0,1 bzw. 24 mg/kg KM) durchgeführt. In
Einzelfällen wurden eine Äther-Inhalationsnarkose, eine Narkose mittels Kombination von
Ketamin (13 mg/kg KM) mit dem Ataraktikum Diazepam (6,7 mg/kg KM) und eine
Immobilisation mittels Kombination von Xylazin (0,8 mg/kg KM), Ketamin (12,5 mg/kg) und
Droperidol (0,8 mg/kg KM) vorgenommen.
In 23 Fällen wurden dem Narkotikum bei Distanzinjektionen 150 I.E. des Enzyms
Hyaluronidase beigefügt, um eine schnellere Resorption des Narkosemittels zu erreichen.
Bei Verwendung von Xylazin wurden die
Tabelle 31: In der Studienpopulation
Narkosen in 89 % der Fälle mittels
verwendete α-Adrenolytika
Yohimbin (30 Fälle) oder Tolazolin (2
Arzneimittel Dosierung (mg/kg KM)
Fälle) antagonisiert (Tabelle 31). Die
Yohimbin
0,1 (0,02-1)
Menge des Antidots wurde dabei meistens
Tolazolin
1,4 (1-1,7)
zur einen Hälfte i.v. und zur anderen
Hälfte i.m. oder s.c. appliziert.
In einem Fall wurde die Sedation eines Tieres mit Romifidin dokumentiert.
86
Diskussion
5 Diskussion
Um einen Überblick über das Krankheitsgeschehen im Meerkatzenbestand des Zoologischen
Gartens Leipzig in den 51 Jahren zwischen 1955 und 2006 sowie dessen zoonotisches
Potenzial zu erhalten, wurde sämtliches, das Krankheitsgeschehen betreffende Material aus
den Archiven des Zoos gesichtet, bearbeitet und analysiert.
Grundsätzlich kann gesagt werden, dass im Untersuchungszeitraum, ungeachtet der aus
heutiger Sicht sicherlich nicht optimalen Haltungsbedingungen, eine generell als positiv
einzuschätzende Krankheitssituation herrschte. Ein Grund dafür liegt sicherlich in dem
größtenteils sehr intensiv durchgeführten Hygienemanagement, welches allerdings nur durch
die für die Tiere definitiv suboptimale, wenig strukturierte Gehegeausstattung möglich war.
Neben 68 positiven bakteriologischen wurden auch 20 positive virologische, 21 positive
mykologische und 167 positive parasitologische Untersuchungen ausgewertet.
Erwähnenswert ist, dass davon 31 bakteriologische, alle 20 virologischen, 18 mykologische
und 8 parasitologische positiv befundete Proben im Rahmen der von EULENBERGER et al.
(2001) bereits beschriebenen Quarantäne von illegal aus Nigeria eingeführten
Monameerkatzen enthalten sind. Da unter den Quarantäneumständen zwangsläufig eine sehr
umfangreiche Diagnostik durchgeführt wurde, ist der durch die o. g. Zahlen gewonnene
Eindruck über den Infektionsstatus des eigentlichen Leipziger Meerkatzenbestandes, v. a.
hinsichtlich Bakteriologie, Virologie und Mykologie, auf den ersten Blick verzerrt. Die
Tatsache, dass in den 60er Jahren alle bakteriologisch untersuchten Kotproben ein negatives
Ergebnis brachten, liegt vermutlich daran, dass zu dieser Zeit fast ausschließlich auf
Salmonellen und wenig auf andere Erreger hin untersucht wurde.
In der Analyse fiel auf, dass sowohl einige Infektionserreger, wie auch einige
Krankheitsbilder, die in der Untersuchungspopulation aufgetreten waren, in der Literatur
bisher bei Meerkatzen nicht beschrieben wurden.
Bei einem Großteil der erwähnten Erreger liegt der Grund dafür sicherlich darin, dass es sich
um banale, auch bei vielen anderen Zoo-, Wild- und Haustieren vorkommende Agentien
handelt, die außerdem kein spezifisches Krankheitsbild hervorrufen. Bei einigen der
genannten Krankheitsbilder liegen die Gründe vermutlich ähnlich.
Grundsätzlich ist zu sagen, dass im Leipziger Zoo in 51 Jahren Meerkatzenhaltung keine
Übertragung von Krankheitserregern vom Tier auf den Menschen bekannt geworden ist.
Somit ist das zoonotische Risiko als nicht besonders hoch einzuschätzen. Wie die
umfangreiche Darstellung in der Literatur zeigt, bestehen aber bei der Aufnahme von
Wildfängen, wie den beschlagnahmten Monameerkatzen (EULENBERGER et al. 2001),
vielfältige Infektionsrisiken, so dass in solchen Fällen ein striktes Quarantäne- und
87
Diskussion
Hygieneprogramm eingehalten werden muss, um den Übergang von Zoonosen auf
Kontaktpersonen und von Infektionen auf den übrigen Tierbestand zu verhindern. Das
Quarantäneprogramm sollte eine umfassende Diagnostik beinhalten.
Auffallend bei der Betrachtung der Krankheitsfälle ist zunächst der große Anteil der
Krankheiten der Verdauungsorgane (37,2 %). Bei 78 % (97) dieser 124 Fälle handelt es sich
um Durchfallerkrankungen mit einer geringen Letalität (7 %), wie sie auch in der Literatur
häufig beschrieben werden. Für die Tatsache, dass nur in 43 Fällen eine infektiöse Genese
nachgewiesen wurde, kann es zum einen die Erklärung geben, dass gerade in den ersten
Jahren des Untersuchungszeitraumes keine entsprechende Diagnostik betrieben und eine
Infektion daher nicht erkannt wurde. Zum anderen ist in Betracht zu ziehen, dass es sich bei
den Fällen vorrangig um diätetisch oder durch Stress bedingte Durchfälle gehandelt haben
wird.
Anders als in der Literatur ist in der Untersuchungspopulation der Anteil traumatisch
bedingter Krankheiten erstaunlich groß. Der Umstand der fehlenden Erwähnung in der
Literatur beruht wahrscheinlich auf der Tatsache, dass diese Fälle wenig tierartspezifisch und
meist nicht von besonderer wissenschaftlicher Bedeutung sind. 59 % (26) der 44 in der
Untersuchungspopulation aufgetretenen Fälle berücksichtigen Bissverletzungen, die fast über
den gesamten Untersuchungszeitraum verteilt auftraten. Auffallend ist, dass nur in 2 Fällen
ein männliches Tier und in den übrigen Fällen weibliche Tiere betroffen waren. Ein Grund für
diese Auffälligkeit könnte zum einen sein, dass insgesamt gesehen, begründet durch die
Gruppenzusammenstellung, mehr weibliche Tiere im Bestand gehalten wurden. Auch die
Geschlechterverteilung im Hinblick auf die Gesamtfallzahl weist ja ein Ungleichgewicht
zugunsten der weiblichen Tiere auf. Andererseits ist zu bedenken, dass es sich bei den
aufgetretenen Fällen häufig um Folgen von Rangordnungsstreitigkeiten gehandelt haben wird,
im Rahmen derer die Männchen ihre Dominanz durchgesetzt haben. Aufgrund der begrenzten
Fläche, die den Tieren zur Verfügung stand, sind solche Auseinandersetzungen in
Ermangelung von Ausweichmöglichkeiten sicher oft intensiver ausgefallen als es bei
größeren und besser strukturierten Anlagen geschehen wäre.
Besonderes Augenmerk sollen, v. a. im Hinblick auf das in der Literatur dargestellte
zoonotische Potenzial dieser Krankheit, die im Untersuchungszeitraum aufgetretenen
Tuberkulosefälle finden. Für die Tatsache, dass nach 1970 kein Tuberkulosefall bei den
Meerkatzen wie auch bei den anderen im gleichen Haus gehaltenen Tieraffen mehr
aufgetreten ist, sind vermutlich die bereits von EULENBERGER et al. (1992) beschriebenen
intensiven Bekämpfungsmaßnahmen verantwortlich: Im Jahre 1959 wurden bei allen niederen
Affen diagnostische Tuberkulintests durchgeführt, um einen Überblick über den
Infektionsstatus zu erhalten und um über Selektionen entscheiden zu können. Aus dem
gleichen Grunde wurden in den Jahren 1969 und 1970 röntgenologische Thorax- und
88
Diskussion
Abdominalbefunde erhoben. Überdies erfolgte mit dem Jahre 1959 bei allen erworbenen oder
im Zoo geborenen Affen einmalig eine BCG-Schutzimpfung. Weiterhin wurden die unteren
Gitter der Käfige im Affenhaus zum Besuchergang hin verglast. Ein Grund für das Einstellen
der BCG-Impfungen mit dem Jahre 1982 ist die Tatsache, dass geimpfte Tiere im
Intrakutantest nicht von infizierten unterschieden werden können. Auch wenn im Bestand
geborene und geimpfte Affen nie an Tuberkulose erkrankt sind, ist die Wirkung der Vakzine
nicht endgültig einzuschätzen. Ein wesentlicher Grund für die Tilgung der Tuberkulose im
Meerkatzenbestand des Leipziger Zoos ist sicherlich auch das Verschwinden der Erreger aus
der unmittelbaren Umgebung der Tiere, auch bedingt durch die allgemeine epidemiologische
Situation, unterstützt durch die konsequenten Bekämpfungsmaßnahmen. Da die Inzidenz der
Tuberkulose beim Menschen weltweit seit 1990 wieder um bis zu 10 % pro Jahr ansteigt
(HELLENBRAND 2003), sollte dieser Krankheit dennoch eine gewisse Aufmerksamkeit,
auch im Hinblick auf das zoonotische Potenzial, geschenkt werden.
Von Interesse ist die Tatsache, dass, anders als in der Literatur beschrieben (DSIKIDSE et al.
1972; HIRAI et al. 1974; FROLKA 1980), die Pseudotuberkulosefälle im Leipziger Zoo in 2
von 3 Fällen nicht vorwiegend mit enteralen, sondern mit respiratorischen Symptomen
einhergingen. In beiden Fällen entsprach das Sektionsbild, anders als die klinischen
Symptome, aber durchaus dem in der Literatur beschriebenen. Und da in beiden Fällen außer
einem ggr. Lungenödem und einer Anthrakose keine Veränderungen an den Atmungsorganen
festgestellt worden sind, bleibt der Grund für diese Besonderheit offen. Zu erwägen ist die
Möglichkeit, dass es sich um unwesentliche respiratorische Sekundärerscheinungen gehandelt
hat, die zwar klinisch auffällig waren, bei der Obduktion jedoch keine bedeutenden Befunde
offenbarten.
Die im Jahre 2001 durchgeführte Quarantäne von illegal aus Nigeria eingeführten
Monameerkatzen zeigt, dass subklinische Fälle einer Hepatitis A-Infektion vorkommen, bei
denen dann rasch die gesamte Gruppe durchseucht. Auch durch die Untersuchung einer
Serumprobe von einer Blaumaulmeerkatze aus dem Jahre 1988 wurde festgestellt, dass das
Tier eine Hepatitis A-Infektion durchgemacht hatte (HORNUNG 1993). Aufgrund des
zoonotischen Risikos, das von dieser Infektion ausgeht, ist anzuraten, dass Personen, die
Kontakt zu den Affen haben, und evtl. auch die Tiere selbst, gegen Hepatitis A geimpft sein
sollten.
Auffallend war weiterhin in der Analyse der Krankheitsfälle, dass einem in der Literatur
beschriebenen Fall von Epilepsie bei einem Husarenaffen (VANDEVELDE 1973) 6 bei
Meerkatzen aufgetretene Fälle mit epileptiformen Anfällen im Leipziger Zoo
gegenüberstehen. Bei 4 dieser Fälle, die zwischen 1991 und 1999 auftraten, handelte es sich
um Jungtiere, die jünger als ein Jahr waren. Da die Tiere im Tieraffenhaus zeitweise nur einer
sehr geringen oder evtl. auch gar keiner Sonneneinstrahlung ausgesetzt sind, könnte es sein,
89
Diskussion
dass ätiologisch eine Hypovitaminose D und daraus resultierend eine Hypokalzämie an diesen
epileptiformen Anfällen beteiligt waren. Gestützt wird diese Vermutung durch die Tatsache,
dass nach genereller Einführung einer einmaligen Vitamin D-Applikation bei Tieren im Alter
von 3 Monaten (EULENBERGER 1996) derartige Anfälle nicht mehr aufgetreten sind.
Menstruationsbeschwerden sind bei Meerkatzen in der Literatur nicht beschrieben. Daher ist
es von besonderer Bedeutung, dass in der Untersuchungspopulation im Zeitraum von 1982 bis
2002 acht dieser Fälle auftraten. Bei zwei von drei Tieren wurde im Rahmen der Obduktion
ein Leiomyom im Uterus entdeckt. Folgernd kann empfohlen werden, dass bei Meerkatzen,
die wiederholt unter Menstruationsbeschwerden leiden, gegebenenfalls sonografisch abgeklärt
werden sollte, ob die Krankheitsursache im Vorhandensein eines Uterusleiomyoms besteht.
Eine Infektion mit Microsporum gypseum wurde bisher bei Meerkatzen nicht beschrieben.
Laut ROLLE und MAYR (1993) findet zwar eine Übertragung zwischen Affen im gleichen
Käfig statt, nicht jedoch auf das Pflegepersonal. Folglich sollte kein Infektionsrisiko für die
Pfleger bestehen.
In der Untersuchungspopulation trat ein postmortal diagnostizierter Fall einer toxischen
Hepatose auf. Ein Grund dafür, dass dieses Krankheitsbild in der Literatur bei Meerkatzen
bisher nicht explizit beschrieben wurde, könnte darin liegen, dass die Symptome, je nach
Ausprägungsgrad der Leberschädigung, unterschiedlich aussehen können, nicht zwingend den
Tod zur Folge haben und die Hepatose somit nicht diagnostiziert wird.
Aus den Ergebnissen der hämatologischen und klinisch-chemischen Untersuchungen von 20
Blutproben klinisch gesunder Meerkatzen wurden eigene Referenzwerte für Meerkatzen im
Leipziger Zoo erstellt. Die unterschiedliche Anzahl (n) der Werte, die zur Berechnung der
Referenzwerte für die einzelnen Parameter herangezogen wurden, ergibt sich daraus, dass bei
der Untersuchung einer Blutprobe nicht immer alle Parameter ermittelt wurden. Die Werte
unterscheiden sich v.a. hinsichtlich der Parameter Hämatokrit, Hämoglobin, Kalium,
Kalzium, Chlorid, Bilirubin und der relativen Verteilung der Serumproteine von den in der
Literatur (ALTSHULER u. STOWELL 1972; SLY et al. 1978; KESSLER et al. 1983;
BRACK et al. 1995; NGURE et al. 2000; LAIR et al. 2000; ISIS 2002) angegebenen Werten.
Ein Vergleich der ermittelten Werte mit den in der Literatur angegebenen ist jedoch nicht
ohne weiteres möglich. Zum einen handelt es sich bei den von verschiedenen Autoren
publizierten Werten um solche, die für jeweils nur eine Meerkatzenart erstellt wurden, wobei
es sich teils um in der Wildbahn gefangene und teils um unter Versuchstierbedingungen
lebende Tiere handelte, und zum anderen sind von den einzelnen Autoren jeweils
unterschiedliche Methoden zur Ermittlung der Werte herangezogen worden. Infolgedessen
unterscheiden sich die in der Literatur für Meerkatzen angegeben Referenzwerte schon
untereinander teils sehr deutlich. Bei der Ermittlung der eigenen Referenzwerte wurden
90
Diskussion
dagegen Proben adulter Tiere aus 5 verschiedenen Arten berücksichtigt, die unter
Zoobedingungen lebten bzw. leben und die alle in demselben Labor untersucht worden sind.
Aufgrund der bekannten Tatsache, dass Wildtiere in der Lage sind, Krankheitssymptome sehr
lange zu maskieren, kann nicht ausgeschlossen werden, dass bei den klinisch zwar gesunden
Tieren eventuell subklinische Krankheiten vorlagen, durch die die Ergebnisse beeinflusst sein
könnten. Die im Rahmen der vorliegenden Arbeit ermittelten Grenzwerte sollten demnach bei
der Interpretation von Meerkatzenblutwerten unter Vorbehalt genutzt werden.
In der Literatur werden viele verschiedene Medikamente bzw. Medikamentenkombinationen
und ihre Anwendung zur Immobilisation von Meerkatzen beschrieben (BREE 1972;
STUNKARD u. MILLER 1974; HAWKEY et al. 1978; GARCHA et al. 1979; CLUTTON u.
RICHARDS 1983; RIETSCHEL 1991; BERTHIER et al. 1996; KALEMA-ZIKUSOKA et al.
2003; PLESKER et al. 2003; DAVIS u. GAMBLE 2004). Im Leipziger Zoo wurde, wie z. B.
auch von RIETSCHEL (1991) empfohlen, in den meisten Fällen eine Ketamin/Xylazin
Kombination angewendet. Allerdings betrug die durchschnittliche Dosierung im Leipziger
Zoo 10 mg/kg KM Ketamin + 1,5 mg/kg KM Xylazin. Die Erfahrungen mit dieser
Kombination waren durchweg positiv. Lediglich bei den in Quarantäne befindlichen
Monameerkatzen wurde, da es sich um relativ junge Tiere handelte, statt des
kreislaufdepressiv wirkenden Xylazins das Neuroleptikum Droperidol eingesetzt, welches
eine geringere Kreislaufbeeinträchtigung mit sich bringt. Mit einer Dosierung von
durchschnittlich 15 mg/kg KM Ketamin + 0,5 mg/kg Droperidol wurde auch bei diesen
Tieren eine gute Allgemeinanästhesie erreicht.
91
Diskussion
5.1 Schlussfolgerungen
Mit der vorliegenden Arbeit wird dem praktizierenden Zootierarzt ein Überblick über die bei
Meerkatzen
vorkommenden
Infektionsund
Organkrankheiten
sowie
deren
Behandlungsmöglichkeiten gegeben.
Es werden in der Literatur bei Meerkatzen bisher noch nicht erwähnte Krankheitserreger und
Krankheitsbilder beschrieben, wie Schimmelpilze, Candida sp., Microsporum gypseum,
Klebsiella sp., Aeromonas sp., Mycobacterium fortuitum, Haemophilus parainfluenzae,
Corynebacterium ulcerans, Neisseria sp., Prosthenorchis sp., Subulura sp., sowie
Pharyngitis, Tonsillitis, Lungenechinokokkose, Futteraspiration, Parodontose, Prolapsus recti,
Hernia diaphragmatica, toxische Hepatose, Herz-Kreislauf-Versagen, Volumenmangelschock,
Herzbeuteltamponade, Myokarddegeneration, rupturiertes Aneurysma, Schrumpfnieren,
Hirnödem, Enzephalitis, degenerativer Hirnschaden, Hämorrhagien im Bereich des
Rückenmarks, Othämatom, Schilddrüsenkarzinom, Mikrosporie, Lipom, Fellfressen,
Funiculitis,
Orchitis,
Endometritis,
Menstruationsbeschwerden,
unphysiologische
Vaginalblutung, Trächtigkeitstoxikose, Verkalkungen in der Plazenta, Fruchtwasseraspiration
und Lebensschwäche.
Im Speziellen lassen die Ergebnisse der Arbeit nachstehende Schlussfolgerungen zu.
•
•
Bei Neuzugängen, deren Gesundheits- und Infektionsstatus nicht bekannt ist, muss
durch
umfangreiche
bakteriologische,
mykologische,
virologische
und
parasitologische Diagnostik das eventuelle Vorhandensein von Krankheitserregern
abgeklärt werden, um das Kontaktpersonal vor Zoonosen und den vorhandenen
Tierbestand vor Infektionen zu schützen.
Bei im Bestand auftretenden Durchfällen sollte diagnostisch abgeklärt werden, ob eine
infektiöse Genese vorliegt. Bei negativem Ergebnis ist vorrangig an diätetische
Ursachen oder Stress zu denken.
•
Zur Vermeidung des gehäuften Auftretens von Bissverletzungen sollten im Bedarfsfall
die Gruppenzusammensetzung überprüft und vor allem die Haltungsbedingungen der
Gruppe verbessert werden.
•
Auch wenn der letzte Tuberkulosefall bei Meerkatzen im Leipziger Zoo vor über 30
Jahren aufgetreten ist, sollte diese Krankheit differentialdiagnostisch nicht völlig
vernachlässigt werden. Da seit 16 Jahren die Tuberkuloseinzidenz weltweit wieder
ansteigt, sollte im Bezug auf Neuzugänge und auch im Bezug auf den Kontakt des
Tierbestandes mit Zoobesuchern stets das zoonotische Potenzial bedacht werden.
•
Hepatitis A-Infektionen der Affen stellen ein zoonotisches Risiko für Kontaktpersonen
dar, besonders weil sie bei den Tieren meist asymptomatisch verlaufen. Da auch
andersherum Affen durch erkrankte Menschen infiziert werden können, sollten
zumindest die Kontaktpersonen geimpft sein.
92
Diskussion
•
Bei gehäuftem Auftreten epileptiformer Anfälle in einem Meerkatzenbestand könnte,
gerade wenn die Tiere nur einer geringen Sonneneinstrahlung ausgesetzt sind, die
Ursache in einem Vitamin D-Mangel bzw. daraus resultierender Hypokalzämie liegen.
Prophylaktisch kann bei sonnenlichtarm gehaltenen Tieren im Alter von 3 Monaten
eine einmalige parenterale Vitamin D3 Substitution empfohlen werden.
•
Bei Meerkatzen, die wiederholt unter Menstruationsbeschwerden leiden, sollte
gegebenenfalls sonografisch abgeklärt werden, ob als Krankheitsursache ein
Uterusleiomyom ausgeschlossen werden kann.
•
Die im Rahmen der vorliegenden Arbeit erstellten Referenzwerte für
Blutuntersuchungen können bei der Interpretation von anfallenden MeerkatzenBlutbefunden ein Anhaltspunkt sein. Sie sollten jedoch mit Vorsicht betrachtet
werden, da nicht ausgeschlossen werden kann, dass auch Befunde von subklinisch
erkrankten Tieren mit in die Berechnung eingeflossen sind.
•
Aufgrund der Erfahrungen im Leipziger Zoo kann für Immobilisation und
Allgemeinanästhesie von adulten Meerkatzen eine Kombination von 10 mg/kg KM
Ketamin und 1,5 mg/kg Xylazin und für die Narkose von jüngeren Tieren eine
Kombination von 15 mg/kg KM Ketamin mit 0,5 mg/kg Droperidol empfohlen
werden.
•
Weitere erwähnenswerte Krankheitsbilder in der Untersuchungspopulation waren ein
Diabetes mellitus, der mit einem Pankreaskarzinom in Zusammenhang stand, ein
Schilddrüsenkarzinom und rezidivierende Epuliden, die bei einem Tier gleichzeitig
mit deformierten Finger- und Fußnägeln auftraten.
93
Zusammenfassung
6 Zusammenfassung
Barbara Schütte
Zur Nosologie von im Leipziger Zoo gehaltenen Meerkatzen (Gattungen Cercopithecus,
Erythrocebus, Miopithecus). Eine Analyse des Krankheitsgeschehens von 1955 bis 2006
unter Berücksichtigung von Immobilisation und Narkose
Zoologischer Garten Leipzig, Veterinärmedizinische Fakultät der Universität Leipzig
Eingereicht im März 2008
97 Seiten, 2 Abbildungen, 27 Tabellen, 305 Literaturangaben, Anhang mit 5 Tabellen
Schlüsselwörter: Cercopithecus, Erythrocebus, Miopithecus, Krankheiten, Immobilisation,
Hämatologie, Blutchemie
Um Meerkatzen in zoologischen Gärten erfolgreich halten und nachzüchten zu können und
um Menschen, die Kontakt zu den Tieren haben, vor Zoonosen zu schützen, ist es wichtig,
einen guten Kenntnisstand über die bei diesen Tieren potenziell vorkommenden Krankheiten
zu besitzen.
In dieser Arbeit wird eine Übersicht über die in der Fachliteratur bei Meerkatzen
beschriebenen Infektionen und Krankheiten gegeben und durch die veterinärmedizinischen
Erfahrungen aus 51 Jahren Meerkatzenhaltung im Zoologischen Garten Leipzig ergänzt.
Als Grundlage für die Analyse des Krankheitsgeschehens bei Meerkatzen im Zoologischen
Garten Leipzig dienten Krankenblätter, Einträge in Visitebücher, Obduktionsprotokolle,
Befunde von weiterführenden Untersuchungen und Narkoseprotokolle. Es wurden
medizinische Daten von rund 150 Meerkatzen aus 17 verschiedenen Arten zusammengetragen
und in Form von 387 Fallberichten ausgewertet und dargestellt. Dabei handelte es sich um
333 Krankheitsfälle und 54 Fälle des Zucht und Haltungsmanagements. Überdies wurden
bakteriologische, virologische, mykologische und parasitologische Untersuchungen wie auch
Angaben zu Narkosen nochmals gesondert erfasst und ausgewertet. Des Weiteren wurden im
Rahmen der Arbeit hämatologische und klinisch-chemische Referenzwerte für Meerkatzen im
Zoologischen Garten Leipzig erstellt.
Am häufigsten kamen mit 37,2 % in der untersuchten Population Krankheiten der
Verdauungsorgane vor, wobei es sich in den meisten Fällen um relativ harmlose
Durchfallerkrankungen handelte. Weniger häufig traten traumatisch bedingte Krankheiten
(13,2 %) auf, von denen mehr als die Hälfte der Fälle Bissverletzungen waren. Krankheiten
der Atmungsorgane betrafen 12,9 % der Krankheitsfälle und Störungen der
Fortpflanzungsfunktionen, zu denen auch neonatale Krankheiten gerechnet wurden, 10,2 %.
9,9 % der Krankheitsfälle wurden der Gruppe der unspezifischen Krankheiten zugeordnet, da
es sich um Fälle mit unspezifischer Symptomatik handelte. Andere Krankheiten, wie solche
94
Zusammenfassung
der Haut und des Haarkleides (6,6 %), des Nervensystems (3 %), des Herz-Kreislauf-Systems
(2,4 %), der Bewegungsorgane (2,1 %), des Harnapparates (0,9 %), der Sinnesorgane (0,6 %)
sowie von Leber, Pankreas und Endokrinium (je 0,3 %), waren eher selten. Es wurden 69
Todesfälle gezählt. Die höchsten Tierverluste (15) waren im Zusammenhang mit Krankheiten
der Atmungsorgane zu verzeichnen, wobei der Tuberkulose (8 Todesfälle) hier eine
entscheidende Bedeutung zukam.
In der Literatur bisher nicht beschriebene Infektionen und Krankheiten werden entsprechend
ihrer Bedeutung herausgestellt.
Es werden Empfehlungen zu verschiedenen, in der Analyse besonders aufgefallenen Aspekten
der medizinischen Betreuung von Meerkatzen gegeben. Hierzu zählen z.B. das Management
von Tuberkulose und Hepatitis A, die Vermeidung gehäuft auftretender Bissverletzungen
durch Optimierung von Gruppenzusammensetzung und Haltungsbedingungen, eine mögliche
Prophylaxe epileptiformer Anfälle bei Jungtieren durch Vitamin D3-Substitution und
Uterusleiomyome als Ursache für Menstruationsbeschwerden. Außerdem werden
Empfehlungen zur Immobilisation gegeben.
Der praktizierende Tierarzt erhält somit einen Überblick über Infektionen und Krankheiten,
die bei Meerkatzen vorkommen können, sowie deren Bedeutung.
95
Summary
7 Summary
Barbara Schütte
On Nosology of guenons (Genera Cercopithecus, Erythrocebus, Miopithecus) kept in the
Zoological Garden Leipzig. An analysis of diseases from 1955 to 2006 in consideration of
immobilisation and anaesthesia
Zoological Garden Leipzig, Faculty of Veterinary Medicine, University of Leipzig
Submitted in March 2008
97 pages, 2 figures, 27 tables, 305 references, appendix with 5 tables
Keywords: Cercopithecus, Erythrocebus, Miopithecus, diseases, immobilisation,
haematology, serum biochemistry
To hold and breed guenons in Zoological Gardens, it is necessary to have good knowledge
about diseases that also could potentially infect humans who come into contact with them.
This dissertation contains a synopsis of the infections and diseases of guenons found in
specialized literature with additional veterinary medical knowledge gathered over 51 years
experience in holding guenons in the Zoological Garden Leipzig.
The analysis of diseases of guenons in the Zoological Garden Leipzig is based on medical
records, autopsy reports, results of continued studies and anaesthesia records. Medical facts
on ca. 150 guenons of 17 different species were collected, of which 387 case descriptions
were evaluated. From these cases 333 were of illness and 54 of breeding and keeping
management. Parallel, bacteriological, virological, mycological and parasitological studies
and information about anaesthesia were separately listed and analysed. Also included in this
study are haematological and serum biochemistry references for guenons in the Zoological
Garden Leipzig.
With 37,2 %, an infection of the digestive system was the most common illness under the
examined population, mostly harmless cases of diarrhoea. Less common were traumatically
induced illnesses (13,2 %), of which more than half were bite injuries. Other illnesses were
respiratory diseases (12,9 %) and reproduction disorder including neonatal diseases (10,2 %).
Because of non specific symptoms, 9,9 % of illnesses were classed as non specific diseases.
Illnesses of skin and coat (6,6 %), nervous system (3 %), cardiovascular system (2,4 %),
locomotor organs (2,1 %), urinary tract (0,9 %), sense organs (0,6 %) and liver, pancreas and
endocrine system (0,3 % each) were quite uncommon. In 69 cases the guenons died. The
highest cause of death (15) was due to respiratory diseases, of which tuberculosis (8 cases)
played an important role.
Infections and diseases that have not been described in literature before are emphasized due to
96
Summary
their significance.
Advice is also given on different aspects of medical treatment of guenons that were of
particular notice in the analysis. Included are e.g. management of tuberculosis and hepatitis A,
the avoidance of bite injuries through group optimizing and caging quality, prevention of
seizures of young animals through Vitamin D3 substitution and uterine leiomyoma as cause of
menstrual problems. Advice is also given on immobilisation.
The practicing vet will get the general idea of infections and diseases which can be found
under guenons, and their importance.
97
Literaturverzeichnis
8 Literaturverzeichnis
Abe N, Nagoshi M, Takami K, Sawano Y, Yoshikawa H. A survey of Blastocystis sp. in
livestock, pets and zoo animals in Japan. Vet Parasitol. 2002;106(3):203-12.
Abel C, Eppler R, Hlinak P, Weigand G. Therapievorschläge für die Quarantänehaltung von
afrikanischen Grünen Meerkatzen (Cercopithecus aethiops). Z Versuchstierkd.
1989;32(4):167-70.
Addison EM, Forrester DJ, Whitley RD, Curtis MM. Oxyspirura youngi sp.n. (Nematoda:
Thelaziidae) from the patas monkey, Erythrocebus patas. Proceedings of the
Helminthological Society of Washington. 1986;53(1):89-93.
Ahne W. Systematische Zoologie. In: Ahne W, Liebich H-G, Stohrer M, Wolf E, König HE,
Hrsg. Zoologie. Stuttgart, New York: Schattauer; 2000: 169-303.
Aldrich-Blake FP. A fertile hybrid between two Cercopithecus spp. in the Budongo forest,
Uganda. Folia Primatol (Basel). 1968;9(1):15-21.
Alef M. Inhalationsanästhetika und Trägergase. In: Alef M, Oechtering G, Hrsg. Praxis der
Inhalationsanästhesie. Stuttgart: Enke; 2003: 1-17.
Allchurch AF. Yersiniosis in all taxa. In: Fowler ME, Miller RE, Hrsg. Zoo and Wild Animal
Medicine. St.Louis, Missouri: Saunders; 2003: 724-7.
Altmann D. Bericht über eine orthotope Autotransplantation der Haut bei einem Husarenaffen
(Erythrocebus patas). Erkrankungen d. Zootiere: 16. Int. Sympos. Verh.ber. 1974: 265-9.
Altmann D, Kronberger H, Schumann E, Schüppel K-F, Wolf D, Tunger R-J. Ein Beitrag zu
den Geschwülsten der Primaten. Erkrankungen d. Zootiere: 16. Int. Sympos. Verh.ber. 1974:
255-60.
Altshuler HL, Stowell RE. Normal serum biochemical values of Cercopithecus aethiops,
Cercocebus atys, and Presbytis entellus. Lab Anim Sci. 1972;22(5):692-704.
Appleton CC. Transmission of helminth parasites between non-human primates and man in
South Africa. In: Schwibbe M, Hrsg. Primate Report 25. Göttingen: DPZ; 1989: 29-33.
Appleton CC, Krecek RC, Verster A, Bruorton MR, Lawes MJ. Gastro-intestinal parasites of
the Samango monkey, Cercopithecus mitis, in Natal, South Africa. J Med Primatol.
1994;23(1):52-5.
Appleton CC, White BJ. The structure of the shell and polar plugs of the egg of the
whipworm, Trichuris trichiura (Nematoda: Trichuridae) from the Samango monkey
(Cercopithecus albogularis). Onderstepoort J Vet Res. 1989;56(4):219-21.
98
Literaturverzeichnis
Backues KA, Hill M, Palmenberg AC, Miller C, Soike KF, Aguilar R. Genetically engineered
mengo virus vaccination of multiple captive wildlife species. J Wildl Dis. 1999;35(2):384-7.
Baker JR. Protozoa of Tissues and Blood (Other than the Haemosporina). In: Fiennes R, Hrsg.
Pathology of Simian Primates, Part 2, Infectious and Parasitic Diseases. Basel, München:
S.Karger; 1972: 29-56.
Baltzer J, Mickan H. Gynäkologie. Stuttgart, New York: Thieme; 1994.
Barlow KL, Ajao AO, Clewley JP. Characterization of a novel simian immunodeficiency
virus (SIVmonNG1) genome sequence from a mona monkey (Cercopithecus mona). J Virol.
2003;77(12):6879-88.
Baronetzky-Mercier A. Blutbefunde bei Zootieren nach eigenen Untersuchungen und
Literaturangaben [Dissertation med. vet.] Gießen: JLU Gießen; 1992.
Baskin GB, Soike K, Jirge SK, Wolf RW. Ovarian teratoma in an African green monkey
(Cercopithecus aethiops). Vet Pathol. 1982;19(2):219-21.
Baulu J, Everard CO, Everard JD. Leptospires in vervet monkeys (Cercopithecus aethiops
sabaeus) on Barbados. J Wildl Dis. 1987;23(1):60-6.
Beaver PC, Blanchard JL, Seibold HR. Invasive amebiasis in naturally infected New World
and Old World monkeys with and without clinical disease. Am J Trop Med Hyg.
1988;39(4):343-52.
Beer BE, Bailes E, Dapolito G, Campbell BJ, Goeken RM, Axthelm MK et al. Patterns of
genomic sequence diversity among their simian immunodeficiency viruses suggest that
L'Hoest monkeys (Cercopithecus lhoesti) are a natural lentivirus reservoir. J Virol.
2000;74(8):3892-8.
Beer BE, Bailes E, Goeken R, Dapolito G, Coulibaly C, Norley SG et al. Simian
immunodeficiency virus (SIV) from sun-tailed monkeys (Cercopithecus solatus): evidence
for host-dependent evolution of SIV within the C. lhoesti superspecies. J Virol.
1999;73(9):7734-44.
Beniashvili DS. An overview of the World Literature on spontaneous tumors in nonhumanprimates. J Med Primatol. 1989;18(6):423-37.
Berthier JL, Blanvillain C, Bomsel MC, Gerbet S, Chaduc Y. Anaesthesia and immobilisation
in zoo mammals and birds with medetomidine-ketamin combination, and reversal with
atipamezol. EAZWV Proceedings of the 1st meeting. 1996;67-74.
Bibollet-Ruche F, Bailes E, Gao F, Pourrut X, Barlow KL, Clewley JP et al. New simian
immunodeficiency virus infecting De Brazza's monkeys (Cercopithecus neglectus): evidence
for a cercopithecus monkey virus clade. J Virol. 2004;78(14):7748-62.
Bibollet-Ruche F, Galat-Luong A, Cuny G, Sarni-Manchado P, Galat G, Durand JP et al.
Simian immunodeficiency virus infection in a patas monkey (Erythrocebus patas): evidence
99
Literaturverzeichnis
for cross-species transmission from African green monkeys (Cercopithecus aethiops sabaeus)
in the wild. J Gen Virol. 1996;77 ( Pt 4):773-81.
Bielitzki JT. Emerging viral diseases of nonhuman primates. In: Fowler ME, Miller RE, Hrsg.
Zoo and wild animal medicine, Current therapy. Philadelphia: W.B. Saunders Company;
1999: 377-81.
Binhazim AA, Githure JI, Muchemi GK, Reid GD. Isolation of Leishmania major from a
naturally infected vervet monkey (Cercopithecus aethiops) caught in Kiambu District, Kenya.
J Parasitol. 1987;73(6):1278-9.
Bonin O. The Cercopithecus monkey disease in Marburg and Frankfurt (Main), 1967. Acta
Zool Pathol Antverp. 1969;48:319-31.
Borst GH, Vroege C, Poelma FG, Zwart PP, Strik WJ, Peters JC. Pathological findings on
animals in the Royal Zoological Gardens of the Rotterdam Zoo during the years 1963, 1964
and 1965. Acta Zool Pathol Antverp. 1972;56:3-20.
Boyce JT, Giddens WEJr, Valerio M. Simian adenoviral pneumonia. Am J Pathol.
1978;91(2):259-71.
Brack M. Morphological and epidemiological aspects of simian herpesvirus infection. In:
Merkenschlager M, Gärtner K, Hrsg. Schriftenreihe Versuchstierkunde 5. Berlin: Paul Parey
Verlag; 1977.
Brack M. Affen-Aidsviren: Übersicht. J Vet Med B. 1989;36:721-45.
Brack M. Zoonoses of nonhuman Primates - A review. EAZWV Proceedings of the 2nd
meeting. 1998;25-41.
Brack M. Agents Transmissible from Simians to Man. Berlin Heidelberg New York:
Springer-Verlag; 1987.
Brack M, Göltenboth R, Rietschel W. Primaten. In: Göltenboth R, Klös H-G, Hrsg.
Krankheiten der Zoo- und Wildtiere. Berlin: Blackwell Wissenschafts-Verlag; 1995: 25-66.
Brady AG. Knotted umbilical cord as a cause of death in a Cercopithecus aethiops fetus. Lab
Anim Sci. 1983;33(4):375-6.
Bree MM. Clinical evaluation of tiletamine as an anesthetic in six nonhuman primate species.
J Am Vet Med Assoc. 1972;161(6):693-5.
Bryant JL, Stills HF, Lentsch RH, Middleton CC. Campylobacter jejuni isolated from Patas
monkeys with diarrhea. Lab Anim Sci. 1983;33(3):303-5.
Burrows RB. Protozoa of the intestinal tract. In: Fiennes R, Hrsg. Pathology of Simian
Primates, Part 2, Infectious and Parasitic Diseases. Basel, München: S.Karger; 1972: 2-56.
100
Literaturverzeichnis
Burton M, Burton R. International Wildlife Encyclopedia Volume 10. New York: Marshall
Cavendish Corporation; 1994.
Bush M, Custer R, Smeller J, Bush LM. Physiologic measures of nonhuman primates during
physical restraint and chemical immobilization. J Am Vet Med Assoc. 1977;171(9):866-9.
Butler H. Observations on the menstrual cycle of the grivet monkey. (Cercopithecus aethiops
aethiops) in the Sudan. Folia Primatol (Basel). 1966;4(3):194-205.
Calle PP, Bowerman DL, Pape WJ. Nonhuman primate tularemia (Francisella tularensis)
epizootic in a zoological park. J Zoo Wildl Med. 1993;24(4):459-68.
Chai D, Farah I, Muchemi G. Sparganosis in non-human primates. Onderstepoort J Vet Res.
1997;64(3):243-4.
Cheever AW, Kirschstein RL, Reardon LV. Schistosoma mansoni infection of presumed
natural origin in Cercopithecus monkeys from Tanzania and Ethiopia. Bull World Health
Organ. 1970;42(3):486-90.
Cho F, Hiyaoka A, Suzuki MT, Honjo S. Breeding of African green monkeys (Cercopithecus
aethiops) under indoor individually-caged conditions. Exp Anim. 2002;51(4):343-51.
CITES. Convention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora.
2006 (zitiert vom 23.11.2006): <www.cites.org>
Clarkson MJ, Thorpe E, McCarthy K. A virus disease of captive vervet monkeys
(Cercopithecus aethiops) caused by a new herpesvirus. Arch Gesamte Virusforsch.
1967;22(1):219-34.
Clutton RE, Richards DLS. Repeated anaesthesia in the Vervet monkey (Cercopithecus
aethiops). Proceedings of the Association of Veterinary Anaesthetists of Great Britain and
Ireland. 1983;11:145-53.
Cohen B, Bowen WH. Diseases of the oral cavity. In: Fiennes R, Hrsg. Pathology of Simian
Primates, Part 1, General Pathology. Basel, München: S.Karger; 1972: 639-70.
Cooper JE. A case of pyometritis in an East African de Brazza's monkey (Cercopithecus
neglectus). Vet Rec. 1972;91(19):457-8.
Cooper TK, Shih IM, Gabrielson KL. Uterine epithelioid trophoblastic tumour in a red-tailed
guenon (Cercopithecus ascanius). J Comp Pathol. 2005;133(2-3):218-22.
Costallat LF, Pestana de Castro AF, Simon F, Diniz L, Giorgi W. Mycobacteriosis in
monkeys: a report of two cases. Vet Med Small Anim Clin. 1978;73(5):651-5.
Couillard N, Wallace J, Young R, Kock N. Cecal volvulus in two African green monkeys
(Cercopithecus aethiops sabaeus). Comp Med. 2004;54(3):324-6.
101
Literaturverzeichnis
Courgnaud V, Abela B, Pourrut X, Mpoudi-Ngole E, Loul S, Delaporte E et al. Identification
of a new simian immunodeficiency virus lineage with a vpu gene present among different
cercopithecus monkeys (C. mona, C. cephus, and C. nictitans) from Cameroon. J Virol.
2003;77(23):12523-34.
Courgnaud V, Salemi M, Pourrut X, Mpoudi-Ngole E, Abela B, Auzel P et al.
Characterization of a novel simian immunodeficiency virus with a vpu gene from greater
spot-nosed monkeys (Cercopithecus nictitans) provides new insights into simian/human
immunodeficiency virus phylogeny. J Virol. 2002;76(16):8298-309.
Cowley HM, Hill RR. "Intestinal spirochaetosis" of the vervet monkey. Onderstepoort J Vet
Res. 1985;52(1):47-50.
Craig LE, Kinsella JM, Lodwick LJ, Cranfield MR, Strandberg JD. Gongylonema
macrogubernaculum in captive African squirrels (Funisciurus substriatus and Xerus
erythropus) and lion-tailed macaques (Macaca silenus). J Zoo Wildl Med. 1998;29(3):331-7.
Crissey SD, Barr JE, Slifka KA, Bowen PE, Stacewicz-Sapuntzakis M, Langman C et al.
Serum concentrations of lipids, vitamins A and E, vitamin D metabolites, and carotenoids in
nine primate species at four zoos. Zoo Biology. 1999;18(6):551-64.
Crockett EC. Bertiella studeri in a mona monkey (Cercopithecus mona mona) in Nigeria. Vet
Rec. 1985;116(10):268.
Dahme E. Blutgefäße. In: Dahme E, Weiss E, Hrsg. Grundriß der speziellen pathologischen
Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke; 1999: 27-49.
Davenport DS, Johnson DR, Holmes GP, Jewett DA, Ross SC, Hilliard JK. Diagnosis and
management of human B virus (Herpesvirus simiae) infections in Michigan. Clin Infect Dis.
1994;19(1):33-41.
Davis MR, Gamble KC. Clinical challenge: arterial thromboembolism in a Mona monkey
(Cercopithecus mona). J Zoo Wildl Med. 2004;35(4):580-3.
Dorrestein GM, van der Hage MM, Kik MJL, Wolters S, Groen J, van Oosterom RAA. An
outbreak of simian varicella infection in cercopithecidae at a monkey rehabilitation centre in
the netherlands. EAZWV Proceedings of the 2nd meeting. 1998;43-53.
Downing HJ, Benimadho S, Bolstridge MC, Klomfass HJ. The ABO blood groups in vervet
monkeys (Cercopithecus pygerythrus F. Cuvier). J Med Primatol. 1973;2(5):290-5.
Dsikidse EK, Pekerman SM, Gorislawets JJ, Baloewa EJ. Pseudotuberkulose bei roten
Meerkatzen (Erythrocebus patas patas). Z Versuchstierkd. 1972;14(3):147-53.
Duncan M. Fungal Diseases in All Taxa. In: Fowler ME, Miller RE, Hrsg. Zoo and Wild
Animal Medicine. St.Louis, Missouri: Saunders; 2003: 727-32.
102
Literaturverzeichnis
Dutton CJ, Parvin CA, Gronowski AM. Measurement of glycated hemoglobin percentages for
use in the diagnosis and monitoring of diabetes mellitus in nonhuman primates. Am J Vet
Res. 2003a;64(5):562-8.
Dutton M, Marrion R, Bartlet S. Cataract removal in a nonhuman primate. Exotic DVM.
2003b;4(6):15-7.
Eberhard ML, Njenga MN, Silva AJd, Owino D, Nace EK, Won KY et al. A survey for
Cyclospora spp. in Kenyan primates, with some notes on its biology. J Parasitol.
2001;87(6):1394-7.
Eberhard ML, Silva AJd, Lilley BG, Pieniazek NJ. Morphologic and molecular
characterization of new Cyclospora species from Ethiopian monkeys: C. cercopitheci sp.n., C.
colobi sp.n., and C. papionis sp.n. Emerg Infect Dis. 1999;5(5):651-8.
Ebert U, Frey H-H, Schulz R. Pharmakologie des zentralen Nervensystems (ZNS). In: Frey
H-H, Löscher W, Hrsg. Lehrbuch der Pharmakologie und Toxikologie für die
Veterinärmedizin. Stuttgart: Enke Verlag; 2002: 87-138.
Eckert J, Friedhoff KT, Zahner H, Deplazes P. Lehrbuch der Parasitologie für die
Tiermedizin. Stuttgart: Enke Verlag; 2005.
Eichberg J, Kalter S. Hepatitis A and B: Serologic survey of human and nonhuman primate
sera. Lab Anim Sci. 1980;30:541-3.
Ellis BR, Munene E, Elliott D, Robinson J, Otsyula MG, Michael SF. Seroprevalence of
simian immunodeficiency virus in wild and captive born Sykes' monkeys (Cercopithecus
mitis) in Kenya. Retrovirology. 2004;1(1):34.
Else JG. Captive propagation of vervet monkeys (Cercopithecus aethiops) in harems. Lab
Anim Sci. 1985;35(4):373-5.
Else JG, Satzger M. Natural infections of Schistosoma mansoni and S. haematobium in
Cercopithecus monkeys in Kenya. Ann Trop Med Parasitol. 1982;76(1):111-2.
Emau P, McClure HM, Isahakia M, Else JG, Fultz PN. Isolation from African Sykes'
monkeys (Cercopithecus mitis) of a lentivirus related to human and simian immunodeficiency
viruses. J Virol. 1991;65(4):2135-40.
Eulenberger K. Erfahrungen mit Supplementen im Zoologischen Garten Leipzig. VAZ 16.
1996;46-9.
Eulenberger K. Medikamentöse Geburtsbeeinflussung bei Zootieren. Dtsch Tierarztl
Wochenschr. 2000;107(12):512-5.
Eulenberger K, Bachmann C, Bernhard A, Scheller R, Schmäschke R. Quarantäne von illegal
aus Nigeria eingeführten Monameerkatzen (Cercopithecus mona). VAZ 21. 2001;42-8.
103
Literaturverzeichnis
Eulenberger K, Brock D, Adler HJ, Elze K, Seifert S. Zur Effektivität der initialen
Infusionstherapie bei der Behandlung chronisch stoffwechselentgleister Primaten.
Erkrankungen d Zootiere: 32 Int Sympos Verh ber. 1990;11-4.
Eulenberger K, Elze K, Schüppel K-F, Seifert S. Tuberkulose und ihre Bekämpfung bei
Primaten und Feliden im Leipziger Zoologischen Garten von 1951-1990. Erkrankungen d
Zootiere: 34 Int Sympos Verh ber. 1992;7-15.
Eulenberger K, Steiger K, Scheller R, Weissbrich C, Bachmann C, Bernhard A. Klinik,
Labordiagnostik und Pathologie eines Pankreaskarzinoms bei der Eulenkopfmeerkatze und
einer chronisch-aktiven rezidivierenden Pankreatitis beim Bartaffen. VAZ 24. 2004;76-80.
Falade S, Durojaiye OA. Salmonellae isolated from captive animals in Ibadan, Western State
of Nigeria. J Wildl Dis. 1976;12(3):464-7.
Fiedler W, Itani J, Kawai M, DeVore I, Washburn SL. Die Meerkatzen und ihre Verwandten.
In: Grzimek B, Hrsg. Grzimeks Tierleben, Zehnter Band, Säugetiere 1. Zürich: Kindler
Verlag; 1967: 420-82.
Fiennes R. Zoonoses of Primates. London: Weidenfeld and Nicholson; 1967.
Fiennes R. Tuberculosis. In: Fiennes R, Hrsg. Pathology of Simian Primates, Part 2,
Infectious and Parasitic Diseases. Basel, München: S.Karger; 1972: 314-34.
Fiennes R, Lapin BA, Dzhikidze EK, Jakovleva LA. The Respiratory and Alimentary
Systems. In: Fiennes R, Hrsg. Pathology of Simian Primates, Part 1, General Pathology.
Basel, München: S.Karger; 1972: 671-710.
Fincham JE, Hewlett R, Degraaf AS, Taljaard JJF, Steytler JG, Rabie CJ et al. Mycotoxic
peripheral Myelinopathy, Myopathie, and Hepatitis caused by Diplodia-Maydis in vervet
monkeys. J Med Primatol. 1991;20(5):240-50.
Fincham JE, Riet Fvd, Steytler JG, Tungs MTL, Cooper R, Seier JV et al. Increased
peripheral lymphocytes, lymphoid hepatitis and anaemia in African Vervet monkeys
seropositive to retroviruses. J Comp Pathol. 1989;101(1):53-68.
Fincham JE, Seier JV, Lombard CJ. Torsion of the colon in vervet monkeys: association with
an atherogenic Western-type of diet. J Med Primatol. 1992;21(1):44-66.
Fincham JE, Seier JV, Verster A, Rose AG, Taljaard JJ, Woodroof CW et al. Pleural
Mesocestoides and cardiac shock in an obese vervet monkey (Cercopithecus aethiops). Vet
Pathol. 1995;32(3):330-3.
Fisher-Hoch SP, Perez-Oronoz GI, Jackson EL, Hermann LM, Brown BG. Filovirus
clearance in non-human primates. Lancet British Edition. 1992;340:451-3.
Fowler ME, Silverman S, Schulz TA, Baker N. Osseous hydatidosis in a patas monkey. J Am
Vet Med Assoc. 1974;165(9):840-4.
104
Literaturverzeichnis
Frolka J. Zum Vorkommen von Pseudotuberkulose bei Meerkatzen im Zoo Lesna.
Erkrankungen d. Zootiere: 22. Int. Sympos. Verh.ber. 1980: 117-23.
Fujimoto K, Hiyaoka A, Cho F, Honjo S. Age-related changes of immunoglobulin levels in
African green monkeys (Cercopithecus aethiops). J Med Primatol. 1988;17(2):85-93.
Fuller GK, Lemma A, Haile T. Schistosomiasis in man and monkeys in Omo National Park,
southwest Ethiopia. Trans R Soc Trop Med Hyg. 1979;73(1):121-2.
Gängel H. Immobilisation. In: Wiesner E, Ribbeck R, Hrsg. Wörterbuch der
Veterinärmedizin. Jena, Stuttgart: G. Fischer Verlag; 1991: 689.
Gao F, Bailes E, Robertson DL, Chen Y, Rodenburg CM, Michael SF et al. Origin of HIV-1
in the chimpanzee Pan troglodytes troglodytes. Nature. 1999;397(6718):436-41.
Garcha HS, Malone D, Ettlinger G. Susceptibility of vervet monkeys to anesthetic.
Laboratory Primate Newsletter. 1979;18(3):4-5.
Gard EA, Loeb W, Fulmer R. Disseminated Intravascular Coagulation Secondary to Simian
Varicella in the Patas Monkey. Lab Anim Sci. 1983;33(5):481.
Garnham PCC. A new species of Hepatocystis and trypanosomes in Miopithecus talapoin
from the Rio Muni. Trans R Soc Trop Med Hyg. 1977;71(5):386.
Geissmann T. Vergleichende Primatologie. Berlin Heidelberg: Springer-Verlag; 2003.
Gille JH, Moore DG, Sedgwick CJ. Placental infarction: a sign of pre-eclampsia in a patas
monkey (Erythrocebus patas). Lab Anim Sci. 1977;27(1):119-21.
Gillespie TR, Chapman CA, Greiner EC. Effects of selective logging on parasite infection
prevalence and infection risk in African forest primates. Erkrankungen der Zootiere:
Verhandlungsbericht des 41.Internationalen Symposiums über die Erkrankungen der Zoound Wildtiere, Rom 28.Mai-1.Juni. 2003: 363.
Gillespie TR, Greiner EC, Chapman CA. Gastrointestinal parasites of the guenons of Western
Uganda. J Parasitol. 2004;90(6):1356-60.
Göltenboth R. Die medikamentöse Immobilisation der Zoo- und Wildtiere. In: Göltenboth R,
Klös H-G, Hrsg. Krankheiten der Zoo- und Wildtiere. Berlin: Blackwell WissenschaftsVerlag; 1995: 3-8.
Gomez MS, Gracenea M, Gosalbez P, Feliu C, Ensenat C, Hidalgo R. Detection of oocysts of
Cryptosporidium in several species of monkeys and in one prosimian species at the Barcelona
Zoo. Parasitology Research. 1992;78(7):619-20.
Goodwin T, Adams MR, Lehner NDM, Jerome CP. Campylobacter Enteritis in Patas
Monkeys. Lab Anim Sci. 1983;33(5):481.
105
Literaturverzeichnis
Goswell MJ, Gartlan JS. Pregnancy, birth and early infant behaviour in the captive patas
monkey Erythrocebus patas. Folia Primatol (Basel). 1965;3(2):189-200.
Gracenea M, Gomez MS, Fernandez J, Feliu C. Secnidazole vs. paromomycin: comparative
antiprotozoan treatment in captive primates. J Med Primatol. 1998;27(1):38-43.
Greenwood A. Pox Disease in All Taxa. In: Fowler ME, Miller RE, Hrsg. Zoo and Wild
Animal Medicine. St.Louis, Missouri: Saunders; 2003: 737-41.
Hartung S, Boller K, Cichutek K, Norley SG, Kurth R. Quantitation of a lentivirus in its
natural host: simian immunodeficiency virus in African green monkeys. J Virol.
1992;66(4):2143-9.
Haupt W, Schüppel K-F, Kronberger H, Schonfuss G. Panzerherz bei einer Meerkatze
(Cercopithecus nictitans) durch Coenurusblasen. Erkrankungen d. Zootiere: 17. Int. Sympos.
Verh.ber. 1975: 353-6.
Hawkey CM, Dean S, Hart MG. The influence of anaesthetics on the haematology of the
patas monkey, Erythrocebus patas. Lab Anim. 1978;12(3):167-70.
Heckel JO. Verbreitung und Epidemiologie des Hepatitis-B-Virus in Primatenbeständen
[Dissertation med. vet.] München: LMU München; 1998.
Heckel JO, Rietschel W, Hufert FT. Prevalence of hepatitis B virus infections in nonhuman
primates. J Med Primatol. 2001;30(1):14-9.
Helke KL, Denver MC, Bronson E, Mankowski JL. Disseminate Cryptococcosis in a Guenon
(Cercopithecus ascanius). Vet Pathol. 2006;43(1):75-8.
Hellenbrand W. In: Robert Koch-Institut, Hrsg. Gesundheitsberichterstattung des Bundes,
Heft 18. Berlin: 2003.
Hermanns W. Bauchspeicheldrüse, exokriner Anteil. In: Dahme E, Weiss E, Hrsg. Grundriß
der speziellen pathologischen Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke; 1999a: 234-42.
Hermanns W. Leber. In: Dahme E, Weiss E, Hrsg. Grundriß der speziellen pathologischen
Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke; 1999b: 200-33.
Hirai K, Suzuki Y, Kato N, Yagami K, Miyoshi A, Mabuchi Y et al. Yersinia
pseudotuberculosis infection occurred spontaneously in a group of patas monkeys
(Erythrocebus patas). Japanese Journal of Veterinary Science. 1974;36(4):351-5.
Hird DW, Anderson JH, Bielitzki JT. Diarrhea in nonhuman primates: a survey of primate
colonies for incidence rates and clinical opinion. Lab Anim Sci. 1984;34(5):465-70.
Hirsch VM, Campbell BJ, Bailes E, Goeken R, Brown C, Elkins WR et al. Characterization
of a novel simian immunodeficiency virus (SIV) from L'Hoest monkeys (Cercopithecus
l'hoesti): implications for the origins of SIVmnd and other primate lentiviruses. J Virol.
1999;73(2):1036-45.
106
Literaturverzeichnis
Hirsch VM, Dapolito GA, Goldstein S, McClure H, Emau P, Fultz PN et al. A distinct
African lentivirus from Sykes' monkeys. J Virol. 1993;67(3):1517-28.
Hirsch VM, Olmsted RA, Murphey-Corb M, Purcell RH, Johnson PR. An African primate
lentivirus (SIVsm) closely related to HIV-2. Nature. 1989;339(6223):389-92.
Hoof JARAMv. Meerkatzenartige. In: Grzimek B, Hrsg. Grzimeks Enzyklopädie Säugetiere
Bd.2. München: Kindler Verlag; 1988: 208-85.
Hornung S. Untersuchungen zur Epidemiologie und Verbreitung der Hepatitis A bei Affen in
zoologischen Gärten [Dissertation med. vet.] München: LMU München; 1993.
Huff JL, Barry PA. B-Virus (Cercopithecine herpesvirus 1) infection in humans and
macaques: Potential for zoonotic disease. Emerg Infect Dis. 2003;9(2):246-50.
Huser H-J. Atlas of Comparative Primate Hematology. New York: Academic Press; 1970.
Isaza R. Tuberculosis in All Taxa. In: Fowler ME, Miller RE, Hrsg. Zoo and Wild Animal
Medicine. St.Louis, Missouri: Saunders; 2003: 689-96.
ISIS. Normal physiological data. International Species Information System, Minnesota
Zoological Garden; 2002.
ISIS. ISIS Abstracts. 2006 (zitiert vom 23.11.2006): <http://app.isis.org/abstracts/abs.asp>
IUCN. 2006 IUCN Red List of Threatened Species. 2006 (zitiert vom 23.11.2006):
<http://www.iucnredlist.org>
Jaskoski B, Krzeminski W. Incidence and treatment of parasites in a zoological garden. Am J
Vet Res. 1960;21:631-5.
Jayo MJ, Laber-Laird K, Bullock BC, Tulli HM, Reynolds GM. T-cell lymphosarcoma in a
female African green monkey (Cercopithecus aethiops). Lab Anim Sci. 1990;40(1):37-41.
Jelinek F. Local dermatitis with subsequent pigmentation in green monkeys (Cercopithecus
aethiops). Z Versuchstierkd. 1985;27(3-4):121-4.
Jelinek F. Pathological findings from green monkeys (Cercopithecus aethiops) after shorttime captivity. Erkrankungen d. Zootiere: 26. Int. Sympos. Verh.ber. 1984: 1251-262.
Jelinek F, Rotta J, Slonim D. Myocardial lesions in Cercopithecus aethiops monkeys. Z
Versuchstierkd. 1977;19(3):181-7.
Jeneby MM, Suleman MA, Gichuki C. Sero-epizootiologic survey of Trypanosoma brucei in
Kenyan nonhuman primates. J Zoo Wildl Med. 2002;33(4):337-41.
Jokinen MP, Jerome CP. Mesenteric vascular disease and colitis in patas monkeys
(Erythrocebus patas). Lab Anim Sci. 1985;35(5):534.
107
Literaturverzeichnis
Jolly CJ, Phillips-Conroy JE, Turner TR, Broussard S, Allan JS. SIVagm incidence over two
decades in a natural population of Ethiopian grivet monkeys (Cercopithecus aethiops
aethiops). J Med Primatol. 1996;25(2):78-83.
Jolly CJ, Turner TR, Socha WW, Wiener AS. Human-type A-B-O blood group antigens of
Ethiopian vervet monkeys (Cercopithecus aethiops) in the wild. J Med Primatol.
1977;6(1):54-7.
Joslin JO. Other Primates Excluding Great Apes. In: Fowler ME, Miller RE, Hrsg. Zoo and
Wild Animal Medicine. St.Louis, Missouri: Saunders; 2003: 346-81.
Joy A, Vogelnest L, Middleton DJ, Dale CJ, Campagna D, Purcell DF et al. Simian
immunodeficiency virus infections in vervet monkeys (Clorocebus aethiops) at an Australian
zoo. Aust Vet J. 2001;79(6):406-8.
Juan-Salles C, Prats N, Verges J, Ruiz M, Valls X, Gine J et al. Dermatosis in talapoin
monkeys (Miopithecus talapoin) with response to zinc and animal protein. Vet Rec.
2001;149(1):24-5.
Kaaden O-R. Viruskrankheiten der Tiere. In: Rolle M, Mayr A, Hrsg. Medizinische
Mikrobiologie, Infektions- und Seuchenlehre. Stuttgart: Enke Verlag; 2002: 145-376.
Kalema-Zikusoka G, Horne WA, Levine J, Loomis MR. Comparison of the cardiorespiratory
effects of medetomidine-butorphanol-ketamine and medetomidine-butorphanol-midazolam in
patas monkeys (Erythrocebus patas). J Zoo Wildl Med. 2003;34(1):47-52.
Kaplan JR, Anthony M, Wood L. Domestic breeding of patas monkeys (Erythrocebus patas).
Lab Anim Sci. 1981;31(4):409-12.
Karere GM, Munene E. Some gastro-intestinal tract parasites in wild De Brazza's monkeys
(Cercopithecus neglectus) in Kenya. Vet Parasitol. 2002;110(1-2):153-7.
Karr SLJr, Wong MM. A survey of Sarcocystis in nonhuman primates. Lab Anim Sci.
1975;25(5):641-5.
Keeble EJ, Goodman G, Neuber A. Medical management of Trichophyton Dermatophytosis
in L'hoest´s monkeys (Cercopithecus lhoesti) in a zoological collection. EAZWV Proceedings
of the 6th meeting. 2006;7-9.
Kessler MJ, Phoebus EC, Rawlins RG, Turnquist JE, London WT. Blood values of freeranging patas monkeys (Erythrocebus patas). J Med Primatol. 1983;12(4):209-17.
Kim CS, Sueltenfuss ES, Kalter SS. Isolation and characterization of simian adenoviruses
isolated in association with an outbreak of pneumoenteritis in vervet monkeys (Cercopithecus
aethiops). J Infect Dis. 1967;117(4):292-300.
Klein HJ, Hall WC, Pouch WJ. Characterization of an outbreak of Bordetella bronchiseptica
in a group of African green monkeys (Cercopithecus aethiops). Lab Anim Sci.
1987;37(4):524.
108
Literaturverzeichnis
Knopf B, Bethke B, Stolte M. Die intestinale Spirochätose des Menschen. Pathologe.
2003;24(3):192-5.
Kraemer DC, Vera Cruz NC. The female reproductive system. In: Fiennes R, Hrsg. Pathology
of Simian Primates, Part 1, General Pathology. Basel, München: S.Karger; 1972: 841-77.
Krause D. Harnuntersuchung von Primaten des Zoos Hannover unter besonderer
Berücksichtigung ausgewählter klinisch-chemischer Parameter [Dissertation med. vet.]
Hannover: Univ. Hannover; 1990.
Krauss H, Weber A, Appel M, Enders B, von Graevenitz A, Isenberg HD et al. Zoonosen. 3.
Auflage. Köln: Deutscher Ärzte Verlag; 2004.
Krilova RI. Postmortem findings from green monkeys (Cercopithecus aethiops) in 19671977. Erkrankungen d. Zootiere: 22. Int. Sympos. Verh.ber. 1980: 55-7.
Krilova RI, Lapin BA. Senile changes and pathology in some monkey species. Erkrankungen
d. Zootiere: 21. Int. Sympos. Verh.ber. 1979: 291-303.
Kronberger H. Lymphogranulomatose. In: Wiesner E, Ribbeck R, Hrsg. Wörterbuch der
Veterinärmedizin. Jena, Stuttgart: G. Fischer Verlag; 1991a: 899.
Kronberger H. Panzerherz. In: Wiesner E, Ribbeck R, Hrsg. Wörterbuch der
Veterinärmedizin. Jena, Stuttgart: G. Fischer Verlag; 1991b: 1099.
Kruckenberg SM, Cornelius CE, Cook JE. Liver function and disease in primates. In: Fiennes
R, Hrsg. Pathology of Simian Primates, Part 1, General Pathology. Basel, München:
S.Karger; 1972: 711-56.
Krüger M. Allgemeine Bakteriologie. In: Rolle M, Mayr A, Hrsg. Medizinische
Mikrobiologie, Infektions- und Seuchenlehre. Stuttgart: Enke Verlag; 2002: 377-416.
Kugler EC. Vorkommenshäufigkeit von Campylobacter jejuni-Keimträgern und
Epidemiologie der Campylobakteriose in Primatenbeständen zoologischer Gärten
[Dissertation med. vet.] München: LMU München; 1999.
Kuhn H-J. Herrentiere oder Primaten - Einleitung. In: Grzimek B, Hrsg. Grzimeks
Enzyklopädie Säugetiere Bd.2. München: Kindler Verlag; 1988: 14-28.
Kuntz RE, Huang T, Moore JA. Patas monkey (Erythrocebus patas) naturally infected with
Schistosoma mansoni. J Parasitol. 1977;63(1):166-7.
Kuntz RE, Myers BJ, Katzberg AA. Sparganosis and "proliferative" spargana in vervets
(Cercopithecus aethiops) and baboons (Papio sp.) from East Africa. J Parasitol.
1970;56(1):196-7.
Lair S, Crawshaw GJ, Mehren KG, Perrone MA. Evaluation of a human immunometric assay
for the determination of thyroid-stimulating hormone in nonhuman primates. J Zoo Wildl
Med. 2000;31(2):267-8.
109
Literaturverzeichnis
Landsdown ABG. The red patas monkey (Erythrocebus patas): an analysis of pathological
changes and organ/body weight data in laboratory animals in a 12 year period. Scandinavian
Journal of Laboratory Animal Science. 1990;17(1):9-11, 13-5.
Landsdown ABG. Multinodular splenic abnormality in a red patas monkey. Vet Rec.
1982;110(18):429-30.
Lapin BA, Jakovleva LA. Vergleichende Pathologie der Affen. Jena: VEB Gustav Fischer
Verlag; 1964.
Lapin BA, Krilova RI. Spontaneous diseases recorded in post-mortem checks from red longtailed monkeys (Cercopithecus sp.). Erkrankungen d. Zootiere: 19. Int. Sympos. Verh.ber.
1977: 291-4.
Leathers CW. The prevalence of Hepatocystis kochi in African green monkeys. Lab Anim
Sci. 1978;28(2):186-9.
Legesse M, Erko B. Zoonotic intestinal parasites in Papio anubis (baboon) and Cercopithecus
aethiops (vervet) from four localities in Ethiopia. Acta Trop. 2004;90(3):231-6.
Lehner ND, Bullock BC, Jones ND. Simian varicella infection in the African green monkey
(Cercopithecus aethiops). Lab Anim Sci. 1984;34(3):281-5.
Leroy EM, Telfer P, Kumulungui B, Yaba P, Rouquet P, Roques P et al. A serological survey
of Ebola virus infection in Central African nonhuman primates. J Infect Dis.
2004;190(11):1895-9.
Linthoudt Dv, Schuhmacher HR, Burus RB, Hinshaw KC, Pierce V. Apatite crystal
deposition disease in a diana monkey (Cercopithecus diana diana). J Zoo Wildl Med.
1992;23(3):346-52.
Lippmann R. Leukoplakie. In: Wiesner E, Ribbeck R, Hrsg. Wörterbuch der
Veterinärmedizin. Jena, Stuttgart: G. Fischer Verlag; 1991: 866.
Loomis MR, O'Neill T, Bush M, Montali RJ. Fatal herpesvirus infection in patas monkeys
and a black and white colobus monkey. J Am Vet Med Assoc. 1981;179(11):1236-9.
Löscher W. Pharmaka mit Wirkung auf das autonome (vegetative) Nervensystem. In: Löscher
W, Ungemach FR, Kroker R, Hrsg. Pharmakotherapie bei Haus- und Nutztieren. Berlin:
Parey; 2002a: 24-44.
Löscher W. Pharmaka mit Wirkung auf das Zentralnervensystem. In: Löscher W, Ungemach
FR, Kroker R, Hrsg. Pharmakotherapie bei Haus- und Nutztieren. Berlin: Parey; 2002b: 52105.
Luechtefeld NW, Cambre RC, Wang WL. Isolation of Campylobacter fetus subsp jejuni from
zoo animals. J Am Vet Med Assoc. 1981b;179(11):1119-22.
110
Literaturverzeichnis
Luechtefeld NW, Cambre RC, Wang WL. Isolation of Campylobacter fetus subsp jejuni from
zoo animals. J Am Vet Med Assoc. 1981a;179(11):1119-22.
MacDonald D, Connor R, Cowlishaw G, Dickman CR, du Toit J, Harwood J et al. The
Encyclopedia of Mammals Volume II. New York: Facts on File, Inc.; 2001.
Madden DL, Hildebrandt RJ, Monif GR, London WT, McCullough NB, Sever JL. The
isolation and identification of Mycoplasma from Cercopithecus aethiops. Lab Anim Care.
1970;20(3):471-3.
Madden DL, Moats KE, London WT, Matthew EB, Sever JL. Mycoplasma moatsii, a new
species isolated from recently imported grivit monkeys (Cercopithecus aethiops).
International Journal of Systematic Bacteriology. 1974;24(4):459-64.
Mahley RW, Johnson DK, Pucak GJ, Fry DL. Atherosclerosis in the Erythrocebus patas, an
old world monkey. Am J Pathol. 1980;98(2):401-24.
Malinow MR. Atherosclerosis in subhuman primates. Folia Primatol (Basel). 1965;3(4):277300.
Märkle I, von Hegel G, Wiesner H. Erfahrungen mit der "Hellabrunner Mischung" bei Zoound Wildtieren. VAZ 11. 1991;136-41.
Mayr A. Grundlagen der Allgemeinen Medizinischen Mikrobiologie, Infektions- und
Seuchenlehre. In: Rolle M, Mayr A, Hrsg. Medizinische Mikrobiologie, Infektions- und
Seuchenlehre. Stuttgart: Enke Verlag; 2002: 1-64.
McCarthy K, Thorpe E, Laursen AC, Heymann CS, Beale AJ. Exanthematous disease in patas
monkeys caused by a herpes virus. Lancet. 1968;2(7573):856-7.
McGrew WC, Tutin CEG, File SK. Intestinal parasites of two species of free-living monkeys
in far western Africa, Cercopithecus (aethiops) sabaeus and Erythrocebus patas patas.
African Journal of Ecology. 1989;27(3):261-2.
Minoia P, Bufo P. Bilateral seminoma in a vervet monkey (Cercopithecus aethiops). Acta
Medica Veterinaria. 1982;28(4):599-605.
Moor-Jankowski J, Wiener AS. Red cell antigens of primates. In: Fiennes R, Hrsg. Pathology
of Simian Primates, Part 1, General Pathology. Basel, München: S.Karger; 1972: 270-317.
Morita M. An autopsy case of malignant lymphogranulomatosis (so-called Hodgkin's disease)
in Cercopithecus aethiops. Primates. 1974;15(1):47-53.
Munene E, Otsyula M, Mbaabu DAN, Mutahi WT, Muriuki SMK, Muchemi GM. Helminth
and protozoan gastrointestinal tract parasites in captive and wild-trapped African non-human
primates. Vet Parasitol. 1998;78(3):195-201.
111
Literaturverzeichnis
Munshi MA, Taylor NM, Mikosza ASJ, Spencer PBS, Hampson DJ. Detection by PCR and
isolation assays of the anaerobic intestinal spirochete Brachyspira aalborgi from the feces of
captive nonhuman primates. J Clin Microbiol. 2003;41(3):1187-91.
Muriuki SMK, Farah IO, Kagwiria RM, Chai DC, Njamunge G, Suleman M et al. The
presence of Cryptosporidium oocysts in stools of clinically diarrhoeic and normal nonhuman
primates in Kenya. Vet Parasitol. 1997;72(2):141-7.
Muriuki SMK, Murugu RK, Munene E, Karere GM, Chai DC. Some gastro-intestinal
parasites of zoonotic (public health) importance commonly observed in Old World nonhuman primates in Kenya. Acta Trop. 1998;71(1):73-82.
Mutani A, Rhynd K, Brown G. A preliminary investigation on the gastrointestinal helminths
of the Barbados green monkey, Cercopithecus aethiops sabaeus. Rev Inst Med Trop Sao
Paulo. 2003;45(4):193-5.
Myers BJ. Echinococcosis, Coenurosis, Cysticercosis, Sparganosis, etc. In: Fiennes R, Hrsg.
Pathology of Simian Primates, Part 2, Infectious and Parasitic Diseases. Basel, München:
S.Karger; 1972: 124-43.
Narushima S, Itoh K, Sankai T, Takasaka M, Otani I, Yoshikawa Y. Changes in normal
vaginal flora of African green monkeys (Cercopithecus aethiops) during the menstrual cycle.
Exp Anim. 1997;46(1):47-52.
Nayar GPS, Crawshaw GJ, Neufeld JL. Tularemia in a group of nonhuman primates. J Am
Vet Med Assoc. 1979;175(9):962-3.
Nesic D, Pavlovic I, Valter D, Savin Z, Hudina V. Endoparasite fauna of primates at Belgrade
zoo. Veterinarski Glasnik. 1991;45(5):365-7.
Ngatia TA, Njiro SM. Lymphosarcoma in a vervet monkey (Cercopithecus aethiops): case
report. Bulletin of Animal Health and Production in Africa. 1988;36(3):273-4.
Ngure RM, Gateri LM, Ngotho JM, Ndung'u JM. Application of the Vettest 8008 system for
the biochemical analysis of vervet monkey plasma. Vet Rec. 2000;146(21):612-3.
Nikolic V, Teofilovski-Parapid G, Stankovic G, Parapid B, Malobabic S, Stojic V. Third
coronary artery in monkey heart. Acta Veterinaria Hungarica. 2004;52(3):253-7.
Nißlein T, Hunsmann G. Viral diseases in nonhuman primates. In: Schwibbe M, Hrsg.
Primate Report 49. Göttingen: DPZ; 1997: 23-30.
O'Gara RW, Adamson RH. Spontaneous and induced neoplasms in nonhuman primates. In:
Fiennes R, Hrsg. Pathology of Simian Primates, Part 1, General Pathology. Basel, München:
S.Karger; 2006: 190-238.
Ocholi RA, Chima JC, Spencer TH. Concurrent infection of a Patas monkey (Erythrocebus
patas) by Citrobacter freundii and Trichuris trichiura. J Wildl Dis. 1989;25(1):124-5.
112
Literaturverzeichnis
Orihel TC, Seibold HR. Nematodes of the Bowel and Tissues. In: Fiennes R, Hrsg. Pathology
of Simian Primates, Part 2, Infectious and Parasitic Diseases. Basel, München: S.Karger;
1972: 76-103.
Ortega YR, Gilman RH, Sterling CR. A new coccidian parasite (Apicomplexa: Eimeriidae)
from humans. J Parasitol. 1994;80(4):625-9.
Otsyula M, Yee J, Suleman M, Tarara R, Martin J, Woods P et al. Rotavirus infection in
African, non-human primates. Ann Trop Med Parasitol. 1996;90(6):659-61.
Palmer AE, London WT, Sly DL, Rice JM. Spontaneous preeclamptic toxemia of pregnancy
in the patas monkey (Erythrocebus patas). Lab Anim Sci. 1979;29(1):102-6.
Pandey VS. Observations on gastro-intestinal helminths of zoo animals in Lubumbashi, Zaire
- coprological survey. Bulletin of Animal Health and Production in Africa. 1978;26(4):361.
Pauly A. Selten nachgewiesene Infektionserreger bei verschiedenen Primatenspezies. VAZ
24. 2004;67-70.
Pfeil I, Schneider HE, Seiler T. Implantation zweier Kunstlinsen bei einer Monameerkatze
(Cercopithecus mona) mit grauem Star. Erkrankungen d. Zootiere: 38. Int. Sympos. Verh.ber.
1997: 95-6.
Pilkington MD. Dystocia in De Brazza's monkey. Vet Rec. 1987;120(25):603.
Plesker R. A case of a generalised psoergatic acariasis in an African Green Monkey
(Cercopithecus aethiops). EAZWV Proceedings of the 3rd meeting. 2000;171-3.
Plesker R, Claros M. A spontaneous Yersinia pseudotuberculosis-infection in a monkeycolony. Zentralbl Veterinarmed B. 1992;39(3):201-8.
Plesker R, Coulibaly C. A Simian Agent 8-Infection in a group of African Green Monkeys.
In: Schwibbe M, Hrsg. Primate Report 63. Göttingen: DPZ; 2002: 27-31.
Plesker R, Torner M, Coulibaly C. Traumatic uterine rupture in an African Green Monkey
(Chlorocebus aethiops). Erkrankungen d. Zootiere: 41. Int. Sympos. Verh.ber. 2003: 241-3.
Plesker R, Zwerger C. Rickets, osteomalacia and osteoporosis in an indoor non-human
primate facility. In: Schwibbe M, Hrsg. Primate Report 62. Göttingen: DPZ; 2002: 69-78.
Poelma FG, de Voogd GB. Immunisierung von Affen gegen Pasteurella pseudotuberculosis
mit einer Todvakzine aus virulenten Bakterienstämmen. Erkrankungen d. Zootiere: 11. Int.
Sympos. Verh.ber. 1969: 89-91.
Poley D. Erfahrungen mit der Anwendung von Gentamycin bei Affen. Dtsch Tierarztl
Wochenschr. 1969;76(24):695-7.
Priemer J. Funde von Bandwurmlarven der Gattung Mesocestoides (Tetrathyridien) im
Tierpark Berlin. Milu, Berlin. 1980;5(1/2):252-60.
113
Literaturverzeichnis
Reindel JF, Walsh KM, Toy KA, Bobrowski WF. Spontaneously occurring hepatocellular
neoplasia in adolescent cynomolgus monkeys (Macaca fascicularis). Vet Pathol.
2000;37(6):656-62.
Renquist DM, Potkay S. Mycobacterium scrofulaceum infection in Erythrocebus patas
monkeys. Lab Anim Sci. 1979;29(1):97-101.
Rideout B. Clostridial Diseases in All Taxa. In: Fowler ME, Miller RE, Hrsg. Zoo and Wild
Animal Medicine. St.Louis, Missouri: Saunders; 2003: 712-8.
Rietschel W. Erfahrungen bei der Immobilisation von Primaten. VAZ 11. 1991;142-4.
Rigoulet J, Berthier JL, Alves C, Müller-Trutwin MC, Meertens L, Gessain A et al.
Seroprevalence for Simian T-cell Lymphotropic Viruses (STLV-I) in a zoo collection of old
world primates. EAZWV Proceedings of the 3rd meeting. 2000;353-4.
Roberts JA. The urinary system. In: Fiennes R, Hrsg. Pathology of Simian Primates, Part 1,
General Pathology. Basel, München: S.Karger; 1972: 821-40.
Roberts JA, Wolf RH. Hydronephrosis of pregnancy: a naturally occurring disorder in nonhuman primates closely resembling that in man. Folia Primatol. 1971;15(1-2):143-7.
Rolle M, Mayr A. Medizinische Mikrobiologie, Infektions- und Seuchenlehre. 1993.
Rommel M, Eckert J, Kutzer E, Körting W, Schnieder T. Veterinärmedizinische
Parasitologie. 5. Auflage. Berlin: Parey Buchverlag; 2000.
Rowell TE. Reproductive cycles of two Cercopithecus monkeys. J Reprod Fertil.
1970;22(2):321-38.
Rowell TE. Reproductive cycles of the talapoin monkey (Miopithecus talapoin). Folia
Primatol (Basel). 1977;28(3):188-202.
Rübel A, Lutz H, Hauser B, Schupbach J, Schneider J, Joller H. Retrovirusinfektion bei
Zwergmeerkatzen (Cercopithecus talapoin) im Zürcher Zoo: mit Lentiviren kreuzreagierende
Antikörper und reverse Transkriptase nach Lymphozytenstimulation. Erkrankungen d.
Zootiere: 30. Int. Sympos. Verh.ber. 1988: 257-62.
Saad MB, elSinnary KA, elMubarak S, elBadari KS. Endoparasites in wild animals at
Khartoum Zoo. Bulletin of Animal Health and Production in Africa. 1983;31(1):9-15.
Sakakibara I, Sugimoto Y, Sasagawa A, Honjo S, Tsujimoto H, Nakamura H et al.
Spontaneous malignant lymphoma in an African green monkey naturally infected with simian
T-lymphotropic virus (STLV). J Med Primatol. 1986;15(5):311-8.
Sao-Ling L, Jane-Fang Y, Chian-Ren C, Shih-Chien C. Coexisting tricuspid valve dysplasia
and ventricular septal defect in a young patas monkey (Erythrocebus patas). J Zoo Wildl
Med. 2004;35(4):576-9.
114
Literaturverzeichnis
Sassnau R. Affen-AIDS, eine neue Zoonose? Tierarztl Prax. 1993;21(3):271-3.
Sato Y, Matsuura S, Kadota K, Miyazawa I. T-cell lymphoma in a savanna monkey
(Cercopithecus aethiops) probably related to simian T-cell leukemia virus infection. J Vet
Med Sci. 1999;61(1):49-52.
Schäffer E. Auge. In: Dahme E, Weiss E, Hrsg. Grundriß der speziellen pathologischen
Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke; 1999: 424-52.
Schmidt P, Dahme E. Organe der inneren Sekretion (endokrines System). In: Dahme E, Weiss
E, Hrsg. Grundriß der speziellen pathologischen Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke;
1999: 459-84.
Schmidt-Matthiesen H, Hepp H. Gynäkologie und Geburtshilfe. Stuttgart, New York:
Schattauer; 1998.
Schröpel M. Beobachtungen von Pigmentierungsänderungen während des
Fortpflanzungsgeschehens bei weiblichen Husarenaffen (Erythrocebus patas patas). In:
Hohmann H-D, Hrsg. Verhandlungsbericht zur Konferenz Haltung und Zucht von Primaten
anläßlich des 125jährigen Bestehens des Zoologischen Gartens Dresden. Jena: VEB G.Fischer
Verlag; 1989: 45.
Seibold HR, Clewe TH, Wolf RH. Enteropathy resembling sprue in nonhuman primates. Lab
Anim Sci. 1972;22(3):353-61.
Seibold HR, Wolf RH. Neoplasms and proliferative lesions in 1065 nonhuman primate
necropsies. Lab Anim Sci. 1973;23:533-9.
Seier JV, Dhansay MA, Davids A. Risks associated with environmental enrichment: intestinal
obstruction caused by foraging substrate. J Med Primatol. 2005;34(3):154-5.
Seier JV, van der HG, de KM, Chwalisz K. The detection and monitoring of early pregnancy
in the vervet monkey (Cercopithecus aethiops) with the use of ultrasound and correlation with
reproductive steroid hormones. J Med Primatol. 2000;29(2):70-5.
Selbitz H-J. Bakterielle Krankheiten der Tiere. In: Rolle M, Mayr A, Hrsg. Medizinische
Mikrobiologie, Infektions- und Seuchenlehre. Stuttgart: Enke Verlag; 2002: 417-588.
Shimakura S. On Salmonella pullorum isolated from a Moustached Guenon (Cercopithecus
cephus). Primates. 1959;2:107.
Skavlen PA, Stills HF, Jr., Steffan EK, Middleton CC. Naturally occurring Yersinia
enterocolitica septicemia in patas monkeys (Erythrocebus patas). Lab Anim Sci.
1985;35(5):488-90.
Skavlen PA, Stills HFJr, Middleton CC. Yersinia enterocolitica septicemia in Erythrocebus
patas. Lab Anim Sci. 1983;33(5):481.
115
Literaturverzeichnis
Sly DL, London WT, Palmer AE, Rice JM. Growth and hematologic development of the
patas monkey (Erythrocebus patas) to one year of age. J Med Primatol. 1978;7(3):156-64.
Sly DL, London WT, Palmer AE, Rice JM. Disseminated cryptococcosis in a patas monkey
(Erythrocebus patas). Lab Anim Sci. 1977;27(5 Pt 1):694-9.
Stehlik M. Uterusruptur als Todesursache bei einer grünen Meerkatze (Cercopithecus
aethiops L.). Kleintier-Praxis. 1974;19(6):211-3.
Steldinger R, Lengyel E, Beham A. Risikoschwangerschaft und Krankheitsbilder in der
Schwangerschaft. In: Stauber M, Weyerstahl T, Hrsg. Gynäkologie und Geburtshilfe.
Stuttgart: Thieme; 2005: 538-81.
Stille W, Bohle E, Helm E, van RW, Siede W. Über eine durch Cercopithecus aethiops
übertragene Infektionskrankheit ("Grüne-Meerkatzen-Krankheit"). Dtsch Med Wochenschr.
1968;93(12):572-82.
Stills HF, Bond MG, Bullock BC. Bacterial myocarditis in African green monkeys
(Cercopithecus aethiops). Vet Pathol. 1979b;16(3):376-80.
Stills HF, Bond MG, Bullock BC. Double aortic arch in a talapoin monkey (Miopithecus
talapoin). Vet Pathol. 1979a;16(2):266-7.
Stills HF, Rader WR. What is your diagnosis? Acute gastric dilatation with suppurative
bronchopneumonia. J Am Vet Med Assoc. 1982;180(8):949-50.
Stunkard JA, Miller JC. An outline guide to general anesthesia in exotic species. Vet Med
Small Anim Clin. 1974;69(9):1181-6.
Sulaiman S, Williams JF, Wu D. Natural infections of vervet monkeys (Cercopithecus
aethiops) and African red monkeys (Erythrocebus patas) in Sudan with taeniid cysticerci. J
Wildl Dis. 1986;22(4):586-7.
Suleman MA, Tarara R, Mandalia KM, Weiss M. A spontaneous bronchogenic carcinoma in
a Sykes monkey (Cercopithecus mitis stuhlmani). J Med Primatol. 1984;13(3):153-7.
Suleman MA, Tarara RP, Else JG, Sayer PD. Spontaneous acute gastric mucosal erosions and
ulcerations in vervet monkeys (Cercopithecus aethiops). Part I. J Zoo Wildl Med.
1995;26(1):67-71.
Suleman MA, Wango E, Farah IO, Hau J. Adrenal cortex and stomach lesions associated with
stress in wild male African green monkeys (Cercopithecus aethiops) in the post-capture
period. J Med Primatol. 2000;29(5):338-42.
Tarara EB, Tarara RP, Suleman MA. Stress-induced gastric ulcers in vervet monkeys
(Cercopithecus aethiops): the influence of life history factors. Part II. J Zoo Wildl Med.
1995;26(1):72-5.
116
Literaturverzeichnis
Tarara R, Suleman M, Sayer P. An adenoma in the larynx of a sykes monkey. Int J Primatol.
1984;5:384.
Tham VL, Schultz DJ, Randall KM. Amyloidosis and suspect diabetes mellitus in a De
Brazza's guenon (Cercopithecus neglectus). J Zoo Wildl Med. 1992;23(3):353-6.
Thenius E. Affen - Stammesgeschichte. In: Grzimek B, Hrsg. Grzimeks Enzyklopädie
Säugetiere Bd.2. München: Kindler Verlag; 1988b: 112-8.
Thenius E. Herrentiere oder Primaten - Stammesgeschichte. In: Grzimek B, Hrsg. Grzimeks
Enzyklopädie Säugetiere Bd.2. München: Kindler Verlag; 1988a: 28-31.
Thompson SA, Hilliard JK, Kittel D, Lipper S, Giddens WE, Jr., Black DH et al.
Retrospective analysis of an outbreak of B virus infection in a colony of DeBrazza's monkeys
(Cercopithecus neglectus). Comp Med. 2000;50(6):649-57.
Tscherner W. Helminthen des Menschen und der Affen. In: Hohmann H-D, Hrsg.
Verhandlungsbericht zur Konferenz Haltung und Zucht von Primaten anläßlich des
125jährigen Bestehens des Zoologischen Gartens Dresden. Jena: VEB G.Fischer Verlag;
1989: 105-13.
Tschirch W. Leptospirose bei Bärenmakaken (Macaca arctoides). In: Hohmann H-D, Hrsg.
Verhandlungsbericht zur Konferenz Haltung und Zucht von Primaten anläßlich des
125jährigen Bestehens des Zoologischen Gartens Dresden. Jena: VEB G.Fischer Verlag;
1989: 114-6.
Turner TR, Lambrecht FL, Jolly CJ. Hepatocystis parasitemia in wild Kenya vervet monkeys
(Cercopithecus aethiops). J Med Primatol. 1982;11(3):191-4.
Vandevelde M. Epilepsie und Chorea-Athetose bei einem Husarenaffen (Erytrocebus patas)
mit diffuser Erkrankung der Stammganglien. Schweizer Archiv für Tierheilkunde.
1973;115(10):465-70.
Verschoor EJ, Fagrouch Z, Bontjer I, Niphuis H, Heeney JL. A novel simian
immunodeficiency virus isolated from a Schmidt's guenon (Cercopithecus ascanius schmidti).
J Gen Virol. 2004;85(Pt 1):21-4.
Vetesi F, Balsai A, Kemenes F. Listerien-Abort bei einem Nonnenaffen (Cercopithecus
mona). Erkrankungen d. Zootiere: 15. Int. Sympos. Verh.ber. 1973: 275-8.
Vitali E. Viral, bacterial and parasitic diseases of primates in captivity. Erkrankungen d.
Zootiere: 22. Int. Sympos. Verh.ber. 1980: 59-64.
Wallach JD. Naturally occurring erysipelas in captive Diana monkeys (Cercopithecus diana).
Journal of Zoo Animal Medicine. 1977;8(3):14-5.
Walzer C. Diabetes in primates. In: Fowler ME, Miller RE, Hrsg. Zoo and wild animal
medicine, Current therapy. Philadelphia: W.B. Saunders Company; 1999: 397-400.
117
Literaturverzeichnis
Weiss E. Verdauungsorgane. In: Dahme E, Weiss E, Hrsg. Grundriß der speziellen
pathologischen Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke; 1999b: 127-99.
Weiss E. Blutbildende Organe. In: Dahme E, Weiss E, Hrsg. Grundriß der speziellen
pathologischen Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke; 1999a: 50-69.
Weiss E, Käufer-Weiss I. Geschlechtsorgane. In: Dahme E, Weiss E, Hrsg. Grundriß der
speziellen pathologischen Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke; 1999: 278-319.
Weiss E, Rudolph R. Atmungsorgane. In: Dahme E, Weiss E, Hrsg. Grundriß der speziellen
pathologischen Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke; 1999: 70-113.
Weiss E, Teifke JP. Haut. In: Dahme E, Weiss E, Hrsg. Grundriß der speziellen
pathologischen Anatomie der Haustiere. Stuttgart: Enke; 1999: 485-561.
Wilson P, Weavers E, West B, Taylor M, Kavanagh J, Jones P. Mycobacterium bovis
infection in primates in Dublin zoo: epidemiological aspects and implications for
management. Lab Anim. 1984;18(4):383-7.
Wilson RB, Holscher MA, Chang T, Hodges JR. Fatal Herpesvirus simiae (B virus) infection
in a patas monkey (Erythrocebus patas). J Vet Diagn Invest. 1990;2(3):242-4.
Winger A. Vorkommenshäufigkeit von Shigella-Keimträgern und Epidemiologie der
Shigellose bei Primaten in zoologischen Gärten [Dissertation med. vet.] München: LMU
München; 1995.
Winterer J, Palmer AE, Cicmanec J, Davis E, Harbaugh S, Loriaux DL. Endocrine profile of
pregnancy in the patas monkey (Erythrocebus patas). Endocrinology. 1985;116(3):1090-3.
Wisser J, Ippen R. Beitrag zu erworbenen Lageveranderungen des Magen-Darmtraktes bei
Zootieren. Erkrankungen d. Zootiere: 23. Int. Sympos. Verh.ber. 1981: 373-84.
Wolf RH. Placenta previa in a patas monkey (Erythrocebus patas). Folia Primatol (Basel).
1971;14(1):80-3.
Wolf RH, Haught JE, Felsenfeld O, Felsenfeld AD. Slow lactose fermenting Escherichia coli
diarrhea in a group of patas monkeys (Erythrocebus patas). Lab Anim Sci. 1971;21(4):54952.
Wolfe ND, Switzer WM, Carr JK, Bhullar VB, Shanmugam V, Tamoufe U et al. Naturally
acquired simian retrovirus infections in central African hunters. Lancet British Edition.
2004;363(9413):932-7.
Wolters SA. A suspected case of tetanus in a patas monkey (Erythrocebus patas). Tijdschr
Diergeneeskd. 1982;107(24):967.
Wood LL, Bond MG, Bullock BC. Bacterial endocarditis with obstruction of the right
atrioventricular orifice and the pulmonary outflow trace in an African monkey (Cercopithecus
aethiops). Lab Anim Sci. 1978;28(1):85-8.
118
Literaturverzeichnis
Wyatt JD, Baggs RB, Scipioni R. Atypical mycobacteriosis in wild caught, St. Kitts origin,
African green monkeys (Cercopithecus aethiops). Lab Anim Sci. 1989;39(5):476.
Yamashiroya HM, Reed JM, Blair WH, Schneider MD. Some clinical and microbiological
findings in vervet monkeys (Cercopithecus aethiops pygerythrus). Lab Anim Sci.
1971;21(6):873-83.
Yanai T, Noda A, Sakai H, Murata K, Hama N, Isowa K et al. Advanced gastric carcinoma in
a de Brazza's guenon (Cercopithecus neglectus). J Med Primatol. 1997;26(5):257-9.
119
Anhang
9 Anhang
Verzeichnis der aufgeführten Tabellen
Tab. 1
Tab. 2
Tab. 3
Tab. 4
Tab. 5
S. 5
S. 123
S. 131
S. 134
S. 37
Tab. 6
Tab. 7
Tab. 8
Tab. 9
Tab. 10
Tab. 11
Tab. 12
Tab. 13
Tab. 14
Tab. 15
Tab. 16
Tab. 17
Tab. 18
Tab. 19
Tab. 20
Tab. 21
Tab. 22
Tab. 23
Tab. 24
Tab. 25
Tab. 26
Tab. 27
Tab. 28
Tab. 29
Tab. 30
Tab. 31
Tab. 32
S. 42
S. 43
S. 46
S. 47
S. 49
S. 49
S. 50
S. 138
S. 52
S. 53
S. 55
S. 56
S. 58
S. 62
S. 67
S. 69
S. 70
S. 71
S. 72
S. 73
S. 74
S. 76
S. 78
S. 84
S. 86
S. 86
S. 139
Meerkatzenartige
Parasiten bei Meerkatzen nach Literaturangaben
Arzneimittelverzeichnis
Blutwerte von Meerkatzen nach Literaturangaben
Fortpflanzungsphysiologische Daten von Meerkatzen
nach Literaturangaben
Immobilisationen von Meerkatzen nach Literaturangaben
Meerkatzenarten in der Untersuchungspopulation
Parameter der Datenanalyse
Kategorien und Unterkategorien
Verteilung der Fälle nach Geschlecht
Verteilung der Fälle nach Spezies
Todesfälle
Obduktionsdiagnosen nach Häufigkeit
Befunde im Rahmen bakterieller Kotuntersuchungen
Bakteriologische Befunde im Rahmen von Obduktionen
Mykologische Befunde
Parasitenbefunde
Häufigkeit der Krankheiten der Atmungsorgane
Häufigkeit der Krankheiten der Verdauungsorgane
Häufigkeit der Krankheiten des Herz-Kreislauf-Systems
Hämatologische und klinisch-chemische Referenzwerte
Häufigkeit der Krankheiten der Harnorgane
Häufigkeit der Krankheiten des Nervensystems
Häufigkeit der Krankheiten der Sinnesorgane
Häufigkeit der Krankheiten der Bewegungsorgane
Häufigkeit der Krankheiten von Haut und Haarkleid
Häufigkeiten der Traumata
Häufigkeit der Fortpflanzungskrankheiten
Verteilung der Fälle des Zucht und Haltungsmanagements
In der Studienpopulation verwendete Narkotika
In der Studienpopulation verwendete α-Adrenolytika
Vergleich der Fälle
120
Anhang
Verzeichnis der aufgeführten Abbildungen
Abb. 1
Abb. 2
S. 44
S. 50
Schematischer Grundriss des Tieraffenhauses
Krankheitsfälle in Bezug auf die primäre Erkrankung
121
Tabelle 2: Parasiten bei Meerkatzen nach Literaturangaben
Parasitenart
Lokalisation
Art
Herkunft
Autor
Trypanosoma brucei
Serum (Ag/Ak)
Grüne Meerkatze,
Diademmeerkatze
Kenia
JENEBY et al. (2002)
Megatrypanum sp.
Blut
Zwergmeerkatze
Chilomastix mesnili
Kot
Rotschwanzmeerkatze,
Campbellmeerkatze,
Husarenaffe
Uganda,
Zoo Barcelona
GILLESPIE et al. (2003),
GILLESPIE et al. (2004),
GRACENEA et al. (1998)
Giardia lamblia
Kot
Rotschwanzmeerkatze
Uganda
GILLESPIE et al. (2003),
GILLESPIE et al. (2004)
Kot
Grüne Meerkatze,
Husarenaffe,
Rotschwanzmeerkatze,
Diademmeerkatze,
Campbellmeerkatze
MCGREW et al. (1989),
Senegal, Uganda,
GILLESPIE et al. (2003),
Südafrika, Zoo Barcelona APPLETON et al. (1994),
GRACENEA et al. (1998)
Kot, Colon,
Caecum
Grüne Meerkatze,
Rotschwanzmeerkatze,
Husarenaffe,
Brazzameerkatze,
Diademmeerkatze,
Protozoen
Entamoeba histolytica
Äthiopien, Uganda,
Kenia, Zoo Barcelona
BEAVER et al. (1988),
GILLESPIE et al. (2003),
GILLESPIE et al. (2004),
GRACENEA et al. (1998),
LEGESSE u. ERKO (2004),
KARERE u. MUNENE (2002),
MURIUKI et al. (1998)
Anhang
122
Iodamoeba bütschlii
GARNHAM (1977)
Tabelle 2: Fortsetzung
Parasitenart
Lokalisation
Art
Herkunft
Autor
Senegal, Äthiopien,
Uganda, Südafrika,
Kenia, Zoo Barcelona
APPLETON et al. (1994),
GILLESPIE et al. (2003),
GILLESPIE et al. (2004),
GRACENEA et al. (1998),
KARERE u. MUNENE (2002),
LEGESSE u. ERKO (2004),
MCGREW et al. (1989),
MUNENE et al. (1998),
MURIUKI et al. (1998)
Kot
Entamoeba hartmanni
Kot
Diademmeerkatze,
Husarenaffe
Südafrika,
Zoo Barcelona
APPLETON et al. (1994),
GRACENEA et al. (1998)
Entamoeba chattoni
Kot
Diademmeerkatze,
Husarenaffe
Südafrika,
Zoo Barcelona
APPLETON et al. (1994),
GRACENEA et al. (1998)
Endolimax nana
Kot
Diademmeerkatze
Südafrika
APPLETON et al. (1994)
Cyclospora sp.
Cryptosporidium sp.
Kot
Grüne Meerkatze
Äthiopien, Kenia
EBERHARD et al. (1999),
EBERHARD et al. (2001),
LEGESSE u. ERKO (2004)
Kot
Grüne Meerkatze,
Campbellmeerkatze,
Zwergmeerkatze,
Husarenaffe
Äthiopien, Kenia,
Zoo Barcelona
GOMEZ et al. (1992),
LEGESSE u. ERKO (2004),
MURIUKI et al. (1997)
Anhang
123
Entamoeba coli
Grüne Meerkatze,
Husarenaffe,
Rotschwanzmeerkatze,
Diademmeerkatze,
Brazzameerkatze,
Campbellmeerkatze
Tabelle 2: Fortsetzung
Lokalisation
Art
Sarcocystis sp.
quergestreifte
Muskulatur
Zwergmeerkatze
Hepatocystis sp.
Blut, Leber
Grüne Meerkatze
Kenia
TURNER et al. (1982),
YAMASHIROYA et al. (1971)
Hepatocystis kochi
Blut, Leber
Grüne Meerkatze
Äthiopien, Kenia
LEATHERS (1978)
Hepatocystis oriheli
Blut, Leber
Zwergmeerkatze
Rio Muni
GARNHAM (1977)
Balantidium coli
Kot
Brazzameerkatze,
Grüne Meerkatze,
Diademmeerkatze
Kenia
MUNENE et al. (1998),
MURIUKI et al. (1998),
KARERE u. MUNENE (2002)
Blastocystis sp.
Kot
Grüne Meerkatze,
Brazzameerkatze
Osaka City Zoo
ABE et al. (2002)
Blastocystis hominis
Kot
Grüne Meerkatze
Äthiopien
LEGESSE u. ERKO (2004)
Herkunft
Autor
KARR u. WONG (1975)
Helminthen
Trematoden
Schistosoma mansoni
Kot, Organe,
intestinale
Blutgefässe
Grüne Meerkatze,
Husarenaffe
Kenia, Äthiopien,
Tansania, Kenia
CHEEVER et al. (1970),
ELSE u. SATZGER (1982),
FULLER et al. (1979),
KUNTZ et al. (1977),
MURIUKI et al. (1998),
TSCHERNER (1989)
Schistosoma
haematobium
Kot
Diademmeerkatze
Kenia
ELSE u. SATZGER (1982)
Anhang
124
Parasitenart
Tabelle 2: Fortsetzung
Parasitenart
Lokalisation
Art
Herkunft
Autor
Dicrcoeliidae
Kot
Rotschwanzmeerkatze,
Diademmeerkatze,
Uganda
Grüne Meerkatze
GILLESPIE et al. (2004)
Dicrocoelium lanceatum
Kot
Rotschwanzmeerkatze Uganda
GILLESPIE et al. (2003)
Zestoden
CHAI et al. (1997),
KUNTZ et al. (1970)
Mesocestoides
(Tetrathyidien)
Brust- und
Bauchhöhle
Grüne Meerkatze
Tierpark Berlin
aus Äthiopien
FINCHAM et al. (1995),
PRIEMER (1980)
Anoplocephaliden
Kot
Diademmeerkatze
Südafrika
APPLETON et al. (1994)
Bertiella sp.
Kot
Rotschwanzmeerkatze Uganda
GILLESPIE et al. (2003),
GILLESPIE et al. (2004)
Monameerkatze
Nigeria
CROCKETT (1985)
Sudan
SULAIMAN et al. (1986)
Bertiella studeri
Taenia sp.
(Zystizerken)
seröse Überzüge
Grüne Meerkatze,
der Bauchorgane,
Husarenaffe
Lunge, Perikard
Anhang
Ostafrika
125
Spirometra sp.
(Spargana)
Muskulatur,
Unterhaut,
Grüne Meerkatze,
seröse Überzüge
Diademmeerkatze
der Bauchorgane,
Bauchmuskulatur
Tabelle 2: Fortsetzung
Parasitenart
Lokalisation
Art
Herkunft
Autor
Kot
Grüne Meerkatze,
Gelbgrüne Meerkatze,
Brazzameerkatze,
Husarenaffe
Senegal, Kenia,
Barbados,
Zoo Lumbumbashi
(Zaire)
KARERE u. MUNENE (2002),
MCGREW et al. (1989),
MUTANI et al. (2003),
PANDEY (1978)
Nematoden
Strongyloides sp.
Strongyloides fuelleborni Kot
Rotschwanzmeerkatze,
Diademmeerkatze,
Uganda, Kenia,
Vollbartmeerkatze,
Südafrika
Grüne Meerkatze
APPLETON et al. (1994),
GILLESPIE et al. (2003),
MUNENE et al. (1998),
MURIUKI et al. (1998)
Kot
Grüne Meerkatze,
Brazzameerkatze,
Diademmeerkatze
GILLESPIE et al. (2004),
Uganda, Kenia,
MURIUKI et al. (1998),
Zoo Lubumbashi (Zaire)
PANDEY (1978)
Ternidens sp.
Kot
Rotschwanzmeerkatze Uganda
GILLESPIE et al. (2003)
Ternidens deminutus
Darmkanal
Diademmeerkatze
APPLETON et al. (1994)
Oesophagostomum sp.
Kot
Grüne Meerkatze,
Gelbgrüne Meerkatze, Äthiopien, Uganda,
Diademmeerkatze,
Kenia, Südafrika,
Rotschwanzmeerkatze, Barbados
Vollbartmeerkatze
APPLETON et al. (1994),
GILLESPIE et al. (2004),
LEGESSE u. ERKO (2004),
MUNENE et al. (1998),
MUTANI et al. (2003)
Oesophagostomum
stephanostomum
Kot
Rotschwanzmeerkatze Uganda
GILLESPIE et al. (2003)
Südafrika
Anhang
126
Strongylus sp.
Tabelle 2: Fortsetzung
Art
Ancylostomatidae
Kot
Gelbgrüne Meerkatze Barbados
MUTANI et al. (2003)
Necator sp.
Kot
Grüne Meerkatze,
Husarenaffe
MCGREW et al. (1989)
Trichostrongylus sp.
Kot
Grüne Meerkatze,
Kenia, Barbados,
Gelbgrüne Meerkatze,
Zoo Belgrad,
Dianameerkatze,
Zoo Khartoum
Diademmeerkatze
MUNENE et al. (1998),
MUTANI et al. (2003),
NESIC et al. (1991),
SAAD et al. (1983)
Trichostrongylus axei
Pylorus,
Dünndarm
Diademmeerkatze
APPLETON et al. (1994)
Ascaris sp.
Kot
Gelbgrüne Meerkatze Barbados
MUTANI et al. (2003)
Dianameerkatze
Zoo Belgrad
Nesic et al. (1991)
Kot
Grüne Meerkatze,
Husarenaffe
Zoo Khartoum
SAAD et al. (1983)
Kot, Colon,
Caecum
Grüne Meerkatze,
Rotschwanzmeerkatze, Uganda
Diademmeerkatze
Ascaris lumbricoides
Toxocara spp.
Enterobius sp.
Herkunft
Senegal
Südafrika
Autor
APPLETON et al. (1994),
GILLESPIE et al. (2003),
GILLESPIE et al. (2004),
MUNENE et al. (1998)
Anhang
Lokalisation
127
Parasitenart
Tabelle 2: Fortsetzung
Parasitenart
Lokalisation
Herkunft
Autor
Enterobius vermicularis
Dianameerkatze
Zoo Belgrad
NESIC et al. (1991)
Physaloptera sp.
Kot
Grüne Meerkatze,
Gelbgrüne Meerkatze, Senegal, Uganda,
Rotschwanzmeerkatze, Barbados
Husarenaffe
GILLESPIE et al. (2003),
MCGREW et al. (1989),
MUTANI et al. (2003)
Gongylonema sp.
Kot
Diademmeerkatze
APPLETON et al. (1994)
Gongylonema
macrogubernaculum
Zungenmuskulatur
Große
Baltimore Zoo
Weißnasenmeerkatze
CRAIG et al. (1998)
Streptopharagus sp.
Kot
Grüne Meerkatze,
Diademmeerkatze,
Senegal, Uganda,
Rotschwanzmeerkatze,
Kenia
Brazzameerkatze,
Husarenaffe
GILLESPIE et al. (2004),
KARERE u. MUNENE (2002),
MCGREW et al. (1989),
MUNENE et al. (1998)
Streptopharagus
pigmentatus
Kot,
Darmkanal
Diademmeerkatze
Südafrika
APPLETON et al. (1994)
Meerkatzen
Afrika
TSCHERNER (1989)
Diademmeerkatze
Südafrika
APPLETON et al. (1994)
Loa Loa
Abbreviata caucasica
Kot
Südafrika
Anhang
128
Art
Tabelle 2: Fortsetzung
Parasitenart
Herkunft
Trichuris sp.
Kot
Grüne Meerkatze,
Gelbgrüne Meerkatze, Senegal, Äthiopien,
Rotschwanzmeerkatze, Uganda, Kenia,
Diademmeerkatze,
Barbados,
Vollbartmeerkatze,
Zoo Chicago,
Große
Zoo Khartoum,
Weißnasenmeerkatze, Zoo Lumbumbashi
Brazzameerkatze,
(Zaire)
Husarenaffe
GILLESPIE et al. (2003),
GILLESPIE et al. (2004),
JASKOSKI u. KRZEMINSKI (1960),
LEGESSE u. ERKO (2004),
MCGREW et al. (1989),
MUNENE et al. (1998),
MURIUKI et al. (1998),
MUTANI et al. (2003),
PANDEY (1978),
SAAD et al. (1983)
Trichuris trichiura
Kot,
Darmkanal
Diademmeerkatze,
Weißkehlmeerkatze,
Husarenaffe
APPLETON u. WHITE (1989),
APPLETON et al. (1994),
OCHOLI et al. (1989)
Capillaria sp.
Kot
Rotschwanzmeerkatze,
Uganda, Südafrika
Diademmeerkatze
Natal, Südafrika,
Zoo Jos (Nigeria)
Autor
APPLETON et al. (1994),
GILLESPIE et al. (2003)
Anhang
Art
129
Lokalisation
Anhang
Tabelle 3: Arzneimittelverzeichnis
Wirkstoff
Handelsname Appl. Dosierung
®
Quelle
Antiparasitika
Carnidazol
Spartrix
p.o.
10-20 mg/kg Kgw über 3-7 d
BRACK et al.
(1995)
Febantel
Rintal
p.o.
10-20 mg/kg Kgw über 3 d
BRACK et al.
(1995)
Fenbendazol
Panacur,
Hoechst
p.o.
5-20 mg/kg Kgw über 1-5 d
BRACK et al.
(1995)
Ivermectin
Ivomec
p.o.,
s.c.,
i.m.
0,2-0,4 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
Levamisol
Citarin L
p.o.,
s.c.,
i.m.
5 mg/kg Kgw
evtl. Wdh. nach
2-4 Wochen
BRACK et al.
(1995)
Mebendazol
Mebenvet
p.o.
10-100 mg/kg Kgw
über 2-7 d;
bei Strongyloidose:
25-50 mg/kg Kgw über 1 Wo.,
eine Woche behandlungsfrei,
100 mg/kg Kgw über eine Wo.,
eine Woche behandlungsfrei,
50 mg/kg Kgw über eine Wo.
BRACK et al.
(1995)
Metronidazol
Clont, Bayer
p.o.
10-20 mg/kg Kgw bis zu 10 d
BRACK et al.
(1995)
Paromomycin
Humatin
p.o.
50-100 mg/kg Kgw über 5 d
BRACK et al.
(1995)
Praziquantel
Droncit,
Bayer
p.o.
3x 25 mg/kg Kgw
als Zwei-TageBehandlung
BRACK et al.
(1995)
p.o.
10-40 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
p.o.
100 mg/kg Kgw über 5-10 d; bei
Strongyloidose Wdh. nach 14 d
BRACK et al.
(1995)
Tetracyclin
Thiabendazol
Thibenzole
130
Anhang
Tabelle 3: Fortsetzung
Wirkstoff
Handelsname Appl. Dosierung
®
Quelle
Antibiotika
Ampicillin
Binotal
p.o.
10-100 mg/kg Kgw dreimal tägl. BRACK et al.
(1995)
Cephaclor
Panoral
p.o.
10-20 mg/kg Kgw dreimal tägl
BRACK et al.
(1995)
Chloramphenicol Paraxin
p.o.
25 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
Ciprofloxacin
p.o.
1,5-10 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
Dia-Nephritex p.o.
1/10 Tablette/kg
BRACK et al.
(1995)
Paediathrocin p.o.
10-50 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
Paediathrocin p.o.
250 mg 2x tägl.
BRYANT et al.
(1983)
Refobacin
i.m.,
s.c.
1-2 mg/kg Kgw 2x tägl.
BRACK et al.
(1995)
i.m.,
i.v.
50 mg/kg Kgw 2x tägl.
POLEY (1969)
Neomycin-Sulfat Neomycin
p.o.,
i.m.
20 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
Oxytetracyclin
p.o.,
i.m.
20 mg/kg Kgw alle 2 d
BRACK et al.
(1995)
p.o.
900 mg/l über 10 d
ins Trinkwasser
BRYANT et al.
(1983)
s.c.,
i.m.,
p.o.
ohne Angabe,
jeden 2. Tag
BRACK et al.
(1995)
p.o.
20 mg/kg Kgw
10-40 mg/kg Kgw
FROLKA (1980)
BRACK et al.
(1995)
p.o.
s. Packungsbeilage
BRACK et al.
(1995)
Erythromycin
Gentamycin
Penicillin/
Streptomycin
Ciprobay
OTC,
Terramycin
LA
OTC,
Terramycin
LA
TardomyocelComp. III
Rolitetracyclin
Tetracyclin
Bactrim
TrimethoprimSulfamethoxazol
131
Anhang
Tabelle 3: Fortsetzung
Wirkstoff
Handelsname Appl. Dosierung
®
weitere Arzneimittel
Amphotericin
B
Quelle
i.v.,
p.o.
0,1-0,3 mg/kg Kgw,
8 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
Atipamezol
Antisedan
i.v.,
i.m.
1 mg für 8-12 mg Rompun
4-5 mg für 1 mg Medetomidin
BRACK et al.
(1995)
Cimetidin
Tagamet
p.o.,
i.v.
BRACK et al.
(1995)
Ethambutol-2
Myambutol
5-10 mg/kg Kgw
2-10 mg/kg Kgw (sehr langsam
injizieren)
25 mg/kg Kgw
Flurocytosin
Ancotil
150 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
Isoniazid
(INH)
verschiedene
5 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
p.o.
intra- 10-15 mg/kg Kgw
kutan
Rifampicin
Rifa,
Rimactan
BRACK et al.
(1995)
EULENBERGER
et al. (1992)
12 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
DAVIS et al.
(2004)
EULENBERGER
(1996)
Prednisolon
i.v.
1 mg/kg Kgw einmalig
Vitamin D
s.c.
200.000 IE/3 Mon.
altes Jungtier einmalig
Vitamin E
i.m.
12 IE/kg Kgw einmalig
DAVIS et al.
(2004)
Yohimbin
i.v.,
i.m.
0,2-0,3 mg/kg Kgw
BRACK et al.
(1995)
132
Tabelle 4: Blutwerte von Meerkatzen nach Literaturangaben
Autor
ALTSHULER NGURE
u. STOWELL et al.
(1972)
(2000)
Art
Grüne
Meerkatze
Anzahl (n)
40 - 102
LAIR
ISIS (2002) et al.
(2000)
Grüne
Eulenkopf- HusarenMeerkatze meerkatze affe
BRACK
et al.
(1995)
SLY et al. (1978)
KESSLER et al. (1983)
Husarenaffe
Husarenaffe
Husarenaffe
k.A.
60
60
9
18
weiblich
männlich
weiblich
gravid
weiblich
männlich
nicht gravid
Bemerkungen
15
l/l
0,35-0,46
0,38 - 0,51 0,41 - 0,47 0,47 - 0,54 0,25 - 0,37
0,29 - 0,41 0,31 - 0,42
Hämoglobin
mmol/l
7,82-11,2
7,02 - 10,5 8,38 - 9,62 9,5 - 11,1
6 - 8,38
RBC
T/l
5,37-7,39
4,8 - 6,2
5,05 - 5,99 5,64 - 6,88 3,32 - 4,62
4,07 - 5,25 4,67 - 5,53
MCH
fmol
1,47-1,8
1,51 - 1,75 1,51 - 1,8
1,42 - 1,68 1,3 - 1,56
MCV
fl
66,4-77,4
80 - 85
74,3 - 85,9 74,1 - 88,5 71,7 - 83,9
MCHC
mmol/l
20-21,4
18,2 - 21,1 19,9 - 20,9 19,7 - 21
20,3 - 23,4
19,6 - 22,1 16,8 - 23,8
Leukozyten
G/l
5,37-9,18
4,0 - 7,3
3,7 - 6,9
3 - 5,8
3,07 - 8,19
3,92 - 12,24 2,18 - 13,3
Eosinophile
%
1-7
3-5
0,4
0,4
0
0-1
0-1
Basophile
%
0-3
0-1
0,2
0,1
0
0
0
Stabkernige
%
1-8
0-2
0-4
0-9
Segmentk.
%
16-66
44 - 62
30,6
32,7
65 - 86
52 - 81
62 - 68
Lymphozyten %
34-61
30 - 55
67,9
65,8
11 - 33
16 - 43
6 - 55
Monozyten
2-9
1-4
0,9
0,9
0-2
0-6
0-4
%
Umrechnungen in SI-Einheiten nach KRAFT u. DÜRR (1999)
5,34 - 8,07
1,51 - 1,88
6,33 - 8,32
69,1 - 81,1 64,9 - 78,3
Anhang
133
Hämatokrit
Tabelle 4: Fortsetzung
Autor
ALTSHULER NGURE
u. STOWELL et al.
(1972)
(2000)
Art
Grüne
Meerkatze
Anzahl (n)
40 - 102
LAIR
ISIS (2002) et al.
(2000)
BRACK
et al.
(1995)
SLY et al. (1978)
KESSLER et al. (1983)
Husarenaffe
Husarenaffe
60
9
18
weiblich
gravid
weiblich
männlich
nicht gravid
5,1 - 6,2
2,48 - 6,54
2,69 - 4,89 1,85 - 7,65
Grüne
Eulenkopf- Husaren- HusarenMeerkatze meerkatze affe
affe
k.A.
Bemerkungen
60
weiblich männlich
mmol/l
4,4 - 7
Gesamteiweiß
g/l
37 - 65
48,3 - 58,9 58-68
56 - 68
54,1 - 61,7
55,2 - 72,2 59,7 - 73,7
Albumin
g/l
27 - 47
33,6 - 36,6 38-44
31 - 48
22,4 - 32,8
33,7 - 46,1 39,1 - 46,3
Albumin
rel.
47,1 - 61,9
alpha1-Globulin
rel.
alpha2-Globulin
rel.
ß-Globulin
rel.
30,1 - 69
89-159
70 - 149
74,26 - 136 61 - 135
19,3 - 28,7
9,6 - 18,4
Kreatinin
µmol/l
Natrium
mmol/l
149 - 158
146-154
137 - 155
Kalium
mmol/l
4,1 - 5,5
3,1-4,1
4,1 - 4,2
Umrechnungen in SI-Einheiten nach KRAFT u. DÜRR (1999)
66,3 - 165
Anhang
134
Glukose
gamma-Globulin rel.
3,79-7,43
15
Tabelle 4: Fortsetzung
Autor
ALTSHULER NGURE
u. STOWELL et al.
(1972)
(2000)
Art
Grüne
Meerkatze
Anzahl (n)
40 - 102
LAIR
ISIS (2002) et al.
(2000)
BRACK
et al.
(1995)
SLY et al. (1978)
KESSLER et al. (1983)
Husarenaffe
Husarenaffe
60
60
9
18
weiblich
männlich
weiblich
gravid
weiblich
männlich
nicht gravid
1,23 - 1,89
1,77 - 3,09 1,72 - 3,68
1,7 - 3,4
5,13 - 15,1
5,82 - 16,8 6,5 - 19,5
2,63 - 4,19 2,18-3,48
1,0 - 2,2
2,05 - 3,5
2,25 - 3,65 1,97 - 3,63
0,63 - 0,9
0,8 - 5,2
0,6 - 0,65
0,5 - 3,36
0,34 - 1,55 0,36 - 1,17
0,32 - 0,98
2,13 - 4,6
1,78 - 5,12 1,23 - 5,53
Grüne
Eulenkopf- Husaren- HusarenMeerkatze meerkatze affe
affe
k.A.
Bemerkungen
mmol/l
Chlorid
mmol/l
anorg. Phosphat mmol/l
2,12-2,41
2,3 - 2,8
104 - 112
104-112
100 - 106
1,2 - 2,1
0,65-2,13
1,0 - 1,7
Eisen
µmol/l
15,3 - 42,5
Bilirubin
µmol/l
2,39 - 6,84
Cholesterol
mmol/l
2,91 - 4,37
Triglyzeride
mmol/l
ChE
µkat/l
ALAT
µkat/l
0,22 - 0,79
0,11 - 0,59
ASAT
µkat/l
0,58 - 1,23
0,3 - 1,06
2,79-6,89
0,18-1,62
Umrechnungen in SI-Einheiten nach KRAFT u. DÜRR (1999)
Anhang
135
Calcium
15
Tabelle 4: Fortsetzung
Autor
ALTSHULER NGURE
u. STOWELL et al.
(1972)
(2000)
Art
Grüne
Meerkatze
Anzahl (n)
40 - 102
LAIR
ISIS (2002) et al.
(2000)
Grüne
Eulenkopf- HusarenMeerkatze meerkatze affe
BRACK
et al.
(1995)
SLY et al. (1978)
KESSLER et al. (1983)
Husarenaffe
Husarenaffe
Husarenaffe
k.A.
60
60
9
18
weiblich
männlich
weiblich
gravid
weiblich
männlich
nicht gravid
Bemerkungen
µkat/l
AP
µkat/l
CK
µkat/l
GGT
µkat/l
alpha-Amylase
µkat/l
10,9 - 18,9
Harnstoff
mmol/l
5,63 - 9,61
Harnsäure
µmol/l
Selen
µmol/l
Vitamin A
µmol/l
Vitamin E
µmol/l
T4
nmol/l
1,33 - 9,14
6,63 - 11,8 0,78-12,5
3,35 - 12,7
15,5 - 20,2
13,7 - 22,1 2,6 - 38,2
1,58 - 13,59 1,53-2,23
2,25 - 4
3,27 - 8,34
8,02 - 17,4 7,62 - 16,6
3,3 - 5,4
6,87 - 14,5
10,9 - 14
11 - 15
5,9 - 41
2,38 - 50
16,1 - 22
4,76 - 59,5
2,2 - 7,07
2,95-50,3
0,42-1,48
0,2 - 0,7
3,1-3,4
2,86 - 5,54 2,14-7,14
0-60
Umrechnungen in SI-Einheiten nach KRAFT u. DÜRR (1999)
49 - 66
Anhang
136
LDH
15
Anhang
Tabelle 13: Obduktionsdiagnosen nach Häufigkeit
Diagnose
Anzahl
Diagnose
Tuberkulose
10
Finnenbefall
Herz-Kreislauf-Versagen
7
Futteraspiration
Herzschaden
6
Rückenmarkshämorrhagien
Nephritis
5
Hernia diaphragmatica
Pneumonie
5
Herzbeuteltamponade
Kachexie
5
Herzmuskelnekrosen
Hepatitis
4
Hirnödem
Salmonellose
4
Koprostase
Pseudotuberkulose
3
Mykobakteriose
Enteritis
2
Myokarditis
Fruchtwasseraspiration
2
Nephrose
Gastroenteritis
2
Otitis
Leberschaden
2
Pankreaskarzinom
Leberverfettung
2
Perikarditis
Uterusleiomyom
2
rupturiertes Aneurysma
Bissverletzungen
1
Schädelbasisfraktur
Kolitis
1
Schilddrüsenkarzinom
degenerativer Hirnschaden
1
Sepsis
Echinokokkose
1
Totgeburt
Endokarditis
1
toxische Hepatose
Endometritis
1
Trauma
Enzephalitis
1
Tubulonephrose
epi- und subdurale Blutungen
1
Urämie
fetale Atelektase
1
137
Anzahl
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Anhang
Tabelle 32: Vergleich der Fälle
Kategorie/Unterkategorie
Atmungsorgane
Verdauungsorgane
Leber
Pankreas
Herz-Kreislauf-System
Harnapparat
Nervensystem
Sinnesorgane
Endokrines System
Bewegungsorgane
Haut und Haarkleid
Pathologie der Fortpflanzung und
neonatale Erkrankungen
Traumata
Unspezifischer Krankheitsfall
Summe Krankheitsfälle
Zucht- und Haltungsmanagement
Summe gesamt
Anzahl Fälle
43
124
1
1
8
3
10
2
1
7
22
%
12,9
37,2
0,3
0,3
2,4
0,9
3,0
0,6
0,3
2,1
6,6
Todesfälle
15
13
1
1
7
3
6
0
1
0
0
34
10,2
11
44
33
333
54
387
13,2
9,9
100
4
7
69
138
Danksagung
Danksagung
Allen, die mir bei der Fertigstellung dieser Arbeit geholfen haben, möchte ich ganz herzlich
Danke sagen.
Mein ganz besonderer herzlicher Dank gilt Herrn Prof. Dr. K. Eulenberger für die
Überlassung des Themas, die hervorragende Betreuung und die unermüdliche, stets
freundliche und engagierte Unterstützung während der gesamten Arbeit und für eine
unvergesslich interessante Zeit im Zoo.
Herrn Prof. Dr. H.-A. Schoon danke ich sehr herzlich für die fachliche Hilfe und die vielen
nützlichen Ratschläge.
Bei Frau Dr. R. Scheller, Herrn Dr. K.-F. Schüppel und Herrn Prof. Dr. H.-J. Selbitz möchte
ich mich ganz herzlich für die Hilfestellung beim Verständnis und der Interpretation v. a. der
älteren Untersuchungsbefunde bedanken.
Ebenso möchte ich Diana Fahrenholt und Christa Bachmann für die Hilfe bei der doch
manchmal nicht ganz einfachen Materialsuche im Archiv danken.
Herrn A. Richter danke ich für die freundliche und geduldige Unterstützung bei der
statistischen Auswertung der Blutwerte.
Besonders hilfreich waren zu jeder Zeit das gemeinsame Lösen des ein oder anderen
Problems, der Austausch von Erfahrungen und einfach das Gefühl, dass es anderen genau so
geht. Vielen Dank dafür an Conny, Tobias, Jessi, Constance, Beate und Wiebke.
Von ganzem Herzen möchte ich Knut danken, dafür dass er mich während meines ganzen
Studiums und auch während der Doktorarbeit immer mit aller Kraft unterstützt hat und mir
immer das Gefühl gegeben hat, dass ich das schaffe.
Mein allergrößter Dank gilt meiner Familie, die immer an mich geglaubt hat, mich immer
unterstützt hat und die immer für mich da war und ist. Ohne Euch wären mein Studium und
diese Arbeit bestimmt nicht möglich gewesen wäre. Danke!
139
Herunterladen