Bakteriologie/Mykologie/Parasitologie Einsendungshinweise

Bakteriologie/Mykologie/Parasitologie
Schöpfstr. 41
6020 Innsbruck
Probenannahme: Mo.-Fr. 08:00-18:00
Sa. 08:00-11:00 & 16:00-17:00
So. und Feiertags 08:00-10:00
Einsendungshinweise
Folgende Materialien können untersucht werden:
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BLUT
Intravasale KATHETER-SPITZEN
HAARE, NÄGEL
LIQUOR
SPUTUM,TRACHEAL-SEKRET,BRONCHIAL-SEKRET,BRONCHIAL-LAVAGE (BAL)
RACHENABSTRICHE
HARN
BIOPSIEN
STUHL
PUNKTATE
Diverse ABSTRICHE
Untersuchung auf Tuberkulose
- BLUT WAS und WIEVIEL?
WANN?
Eine Blutkultur (BK Set) besteht Vor Antibiotikagabe und max.3
aus aerober und anaerober (*) Proben /24 Stunden
Flasche.
Abnahmezeitpunkt kann
peripherer Vene:
prinzipiell frei gewählt werden.
Erwachsene: 5-10 ml/Flasche, Bei Patienten unter
Kinder: 1-5 ml/Flasche
Antibiotikagabe sollte die
Blutabnahme möglichst kurz vor
*Geburtshilfe,
der nächsten Antibiotikagabe
Abdominalchirurgie, Onkologie, sein.
V.a.Endocarditis
ZWISCHENLAGERUNG
BITTE BEACHTEN!
Rasche Anlieferung in das Desinfektion von Haut und
Labor
Flaschenstoppel. Palpation
der Vene nach Desinfektion
Lagerung bei
vermeiden.
Raumtemperatur
Desinfektionsmittel(sofern als System
einwirkzeit beachten. Keine
BactAlert verwendet wird) Abnahme aus liegendem
Katheter.
Spezielle Fragestellungen
(z.B. V.a.Brucellose) und
bisherige Antibiotikatherapie
auf der Zuweisung angeben.
- Intravasale KATHETER-SPITZEN WAS und WIEVIEL?
WANN?
Distales Ende vom Katheter
Bei Verdacht auf Kathetersteril abschneiden (ca. 3 cm)
assoziierte Infektion.
und in steriles Röhrchen mit 0,5 Keine routinemäßige
ml 0,9 % NaCl geben.
Einsendung ohne klinische
Symptome.
ZWISCHENLAGERUNG
Lagerung bei 4°C
BITTE BEACHTEN!
Der Nachweis einer
Katheterkolonisation reicht
nicht aus, um die Diagnose
einer Katheter-assoziierten
Bakteriämie oder Sepsis zu
stellen, wenn nicht
gleichzeitig positive
Blutkulturen vorliegen.
- HAARE, NÄGEL WAS und WIEVIEL?
Nagel und Hautgeschabsel
vom Rand eines Herdes
gewinnen, Haare mit Pinzette
epilieren.
ZWISCHENLAGERUNG
WANN?
Bei Verdacht auf Pilzinfektionen Lagerung bei
Raumtemperatur
BITTE BEACHTEN!
In sterile Gefäße einbringen.
- LIQUOR WAS und WIEVIEL?
Sterile Abnahme, 1-3ml in
steriles Röhrchen;
für den Nachweis von Pilzen
und Mykobakterien besser 10
ml einsenden.
WANN?
Vor Antibiotikatherapie,
gleichzeitig sollte eine Blutkultur
abgenommen werden.
ZWISCHENLAGERUNG
Lagerung bei
Raumtemperatur
(geringere Aktivierung
autolytischer Enzyme)
BITTE BEACHTEN!
Ehestmöglicher Transport ins
Labor. Falls längere Lagerung
(z.B. über Nacht) erforderlich,
den Liquor in eine
Blutkulturflasche geben.
- SPUTUM, TRACHEAL-SEKRET, BRONCHIAL-SEKRET, BRONCHIAL-LAVAGE (BAL) WAS und WIEVIEL?
Sterile Probengefäße
verwenden, ca. 3-5ml.
Für Spülungen sterile RingerLaktatlösungen verwenden.
ZWISCHENLAGERUNG
WANN?
Lagerung bei 4°C
Morgensputum ist zu
bevorzugen. Kurz vor Abhusten
sorgfältige Mundreinigung.
Bei Verdacht auf Pneumonie
zusätzlich Blutkulturabnahme.
BITTE BEACHTEN!
Keinen Speichel einsenden.
Bei Verdacht auf Legionellen/
Pneumokokken- Pneumonie
Harn einschicken
(Legionellen/ PneumokokkenAntigen).
Bei Verdacht auf
Pneumocystis BAL
einschicken.
- RACHENABSTRICHE WAS und WIEVIEL?
WANN?
Mit sterilem Tupfer Material aus Diphterieverdacht bitte auf
dem Entzündungsbereich
Überweisungsschein angeben.
entnehmen.
ZWISCHENLAGERUNG
Lagerung bei 4°C
BITTE BEACHTEN!
Bei Pertussis-Verdacht
speziellen Abnahmetupfer
anfordern.
- HARN WAS und WIEVIEL?
Mittelstrahlharn und
Einmalkatheterharn:
Reinigen der Genitalien mit
Wasser und Seife, Harn in
sterilem Probengefäß
auffangen. Erste Harnportion
ablassen, da häufig mit
Mikroorganismen des äußeren
Genitale kontaminiert.
Dauerkatheter (DK): Abnahme
von 5 – 10 ml Harn von
desinfizierter Entnahmestelle.
WANN?
Am besten vor Antibiotikatherapie abnehmen.
Morgenharn einsenden.
Bei DK-Wechsel Abnahme aus
neuem DK
ZWISCHENLAGERUNG
Lagerung bei 4°C
Lagerung der
Eintauchnährböden
(Uricult®) bis zum
Transport bei 37°C
Pyelonephritis/Urosepsis
zusätzlich Blutkultur abnehmen.
BITTE BEACHTEN!
Keine Untersuchung von
Harnkatheterspitzen
Keine 24 Stunden
Sammelharnuntersuchungen
Nie vom Sammelbehälter
abnehmen.
Bei Verdacht auf Bilharziose
Mittagsharn einsenden.
- BIOPSIEN WAS und WIEVIEL?
WANN?
In sterilem Röhrchen (fallweise Bei Verdacht auf Infektion
mit sterilem NaCl um
Austrocknung zu vermeiden)
ZWISCHENLAGERUNG
Ehestmöglicher Transport
ins Labor
Lagerung bei
Raumtemperatur
Helicobacter-Kultur:
Magenbiopsie immer in
Transportmedium
einschicken.
BITTE BEACHTEN!
Bitte vermerken, wenn
mikroskop. Präparat oder
Anaerobier-Kultur erwünscht.
Erst 2-4 Wochen nach
Absetzen der Therapie ist
eine kulturelle Anzucht
möglich.
- STUHL WAS und WIEVIEL?
Standardmäßig wird auf
Salmonellen, Shigellen,
Campylobacter untersucht, bei
Kindern bis 7 Jahren und
blutigen Stühlen auf
enterohämorrhagische E. coli,
bei blutigen und flüssigen
Stühlen auch auf Yersinien.
WANN?
Untersuchung auf
darmpathogene Keime bei
Patienten mit stationärem
Aufenthalt über 3 Tage nur bei
entsprechender Indikation.
ZWISCHENLAGERUNG
Für alle Stuhlproben gilt:
ehestmöglicher Transport
ins Labor
Lagerung bei 4°C
BITTE BEACHTEN!
Pro Tag 1 Untersuchung, bis
zu 3 Untersuchungen an
verschiedenen Tagen. Stuhl
sofort in das Labor bringen,
nicht sammeln.
2 ml oder walnussgroße
Portion in Stuhlgefäß
- Spezialanfrage: Clostridium difficile Lagerung bei 4°C
Nachweis von Toxin A+B
(Nachweis nur innerhalb von 48
h nach Abnahme möglich)
2 ml oder walnussgroße
Portion in Stuhlgefäß
- Spezialanfrage: Amöbenruhr Unverzüglicher Transport
des frisch abgesetzten
Stuhls ins Labor
2 ml oder walnussgroße
Portion in Stuhlgefäß
2 ml oder walnussgroße
Portion in Stuhlgefäß oder bei
Oxyuren* Analklebestreifen
2 ml oder walnussgroße
Portion in Stuhlgefäß
- Spezialanfrage: Parasiten und Wurmeier Tixostreifenabklatsch am besten Lagerung bei 4°C
morgens vor der Morgentoilette
abnehmen.
Nachweis von C. difficileToxin in geformten Stühlen
weist auf Trägertum hin.
Gegebenfalls MF (MerthiolatFormalin-Lsg.)
Transportmedium verwenden.
Klebestreifen auf Objektträger
kleben und im Plastikbehälter
versenden.
- Spezialanfrage: Helicobacter Antigen, Rotavirus, Norovirus Lagerung bei 4°C
- PUNKTATE WAS und WIEVIEL?
In steriles Röhrchen 1-5 ml
einspritzen
Nie als Abstrich einsenden
WANN?
Bei V.a. Infektion
ZWISCHENLAGERUNG
Ehestmöglicher Transport
ins Labor
Lagerung bei
Raumtemperatur
BITTE BEACHTEN!
Bitte vermerken, wenn
mikroskop. Präparat oder
Anaerobier-Kultur erwünscht.
Punktat von der
Abszesswand am
aussagekräftigsten.
Bei V.a. Anaerobierinfektion
Transportmedium verwenden.
- Diverse ABSTRICHE WAS und WIEVIEL?
Wundsekret steril abtupfen,
Material vom Wundboden und
Randbereich mit sterilem
Tupfer entnehmen.
Keine Lochien .
- Wunden ZWISCHENLAGERUNG
WANN?
Wundreinigung,
Lagerung bei
Probennahme aus der Tiefe.
Raumtemperatur
Eiter mit Spritze aspirieren.
BITTE BEACHTEN!
Probe der Wahl bei Suche
nach Anaerobiern ist Aspirat.
Eiter kann steril sein.
- Cervix/Vaginalabstrich Für Chlamydien und
Transportmedium:
Gonokokken:
Lagerung bei
Gen-Probe- Transportmedium
Raumtemperatur
anfordern.
Bei Anforderung auf
Anaerobier wird ein
Gardnerella-Nachweis
durchgeführt.
- Hautabstriche: z.B. MRSA Tupfer mit sterilem 0.9% NaCl
Lagerung bei
anfeuchten.
Raumtemperatur
MRSA Screening angeben.
- Untersuchung auf TUBERKULOSE -
M. tuberculosis ist ziemlich resistent gegen Umwelteinflüsse, dennoch ist ein Probentransport innerhalb 24 h anzustreben.
Abstriche sind ungeeignet (zu wenig Material, Austrocknung), besser ist es, Gewebe einzusenden. Ebenso für die
mykobakteriologische Untersuchung ungeeignet sind Sammelproben von Sputum und Harn. Eine deutliche Steigerung der
Sensitivität kann durch mehrmaliges Einsenden (3 Proben) erreicht werden.
BEACHTE: Eine genaue Materialbeschreibung, eine exakte Information zu Grundleiden, Diagnose und Verdachtsdiagnose,
die Angabe zur vorangegangenen bzw. geplanten antimikrobiellen Therapie, sowie die genaue Information bzgl. der
gewünschten Untersuchung ermöglichen eine zielgerichtete Verarbeitung der Proben und eine optimale Befundung.
Angabe der Telefonnummer des Einsenders auf dem Überweisungsschein für eventuelle Rückfragen!
Datum: 28. Juni 2010