Originalarbeiten Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes P. Deplazes1, S. Staebler1, B. Gottstein2 1Institut für Parasitologie der Universität Zürich, 2Institut für Parasitologie der Universität Bern Zusammenfassung Travel medicine of parasitic diseases in the dog Summary Hunde werden von ihren Besitzern zunehmend auf Auslandreisen mitgenommen, so dass die Kleintier-Reisemedizin an Bedeutung gewinnt. Dazu gehören sowohl die Pro- bzw. Metaphylaxe gegen verschiedene Infektionskrankheiten als auch deren Diagnose und Therapie. Insbesondere nach Rückreise aus Südeuropa, den Subtropen oder Tropen können Hunde mit exotischen Parasiten infiziert sein. Die höchsten Risiken bestehen bei importierten Rasse-, Hüte- und vor allem Findelhunden, welche zunehmend organisiert eingeführt werden. Die vorliegende Übersicht soll neue, praxisorientierte klinische Aspekte parasitärer Reiseerkrankungen präsentieren. Zudem wird auf die zoonotische Bedeutung einiger Parasitosen eingegangen sowie auf das Etablierungspotenzial für die Schweiz. Companion animals are increasingly brought along by their owners to foreign countries.Thus, small animal travel medicine is becoming more important. The field includes both prophylaxis and metaphylaxis against various infectious diseases, as well as their diagnosis and treatment. Dogs returning from Southern Europe, but also from more tropical regions, may be infected with exotic pathogens. In addition, imported pedigree or working dogs, and especially stray dogs imported through welfare organisations, are at high risk.The present overview summarises the clinical and practical aspects of exotic parasitic diseases that may affect such dogs,and the risk of such diseases becoming autochthonously transmitted in Switzerland.Furthermore,the zoonotic potential of these infections will be considered. Schlüsselwörter: Babesia, Leishmania, Dirofilaria, Angiostrongylus vasorum, Echinococccus Keywords: Babesia, Leishmania, Dirofilaria, Angiostrongylus vasorum, Echinococccus Einleitung Patientengut und Endemiegebiete Reisemedizinische Probleme haben in den letzten Jahrzehnten vor allem im Kleintierbereich stark zugenommen. Die Tierärzteschaft ist nicht nur zunehmend mit exotischen Erkrankungen konfrontiert, sie wird auch vermehrt von einer gut informierten Kundschaft in ihrer pro- bzw. metaphylaktischen Beratungsfunktion gefordert. Demzufolge gehört das Thema in den zentralen Bereich der kontinuierlichen Weiterbildung von Tierärztinnen und Tierärzten. Einige importierte Reiseerkrankungen, wie zum Beispiel die Tollwut oder die Echinococcose, sind wichtige Zoonosen und somit von grosser seuchenpolizeilicher Bedeutung. Bei einigen Parasiten besteht aufgrund eines relativ grossen Einschleppungsrisikos auch die Gefahr der anschliessenden Etablierung eines Übertragungskreislaufes in der Schweiz. Neue Fortschritte wurden in den letzten Jahren bei der Diagnose und Prophylaxe wichtiger Reiseerkrankungen des Hundes erzielt. Die Beratung, welche am Anfang der Planung einer Reise mit Hunden oder Katzen stattfindet, richtet sich nach der Feriendestination sowie der Reisezeit und Reisedauer, und sollte auch die Einreisebestimmungen in EU-Länder und die Rückreiseformalitäten in die Schweiz berücksichtigen (Informationen dazu unter www.bvet.admin.ch). Nebst den vorgeschriebenen Impfungen gibt es heute aus parasitologischer Sicht eine grosse Palette von empfehlenswerten reiseprophylaktischen Massnahmen für Hunde (siehe Kapitel: «Reisemedizinische Empfehlungen für Hunde» und Tab. 3). P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 Der organisierte Import zahlreicher Hunde aus Tierheimen des mediterranen Raumes und der Verkauf dieser Tiere, teilweise ohne genügende Angaben über ihre Herkunft und den Krankheits- bzw. Gesundheitszustand, stellt ein Problem dar (Zahner und Bauer, 2004). Einen Einblick in diese Thematik liefert eine nicht randomisierte Untersuchung, in welcher in 447 Schweiz.Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern DOI 12.1024/0036-7281.148.09.447 Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes verschiedener Erreger ist leider weltweit noch immer lückenhaft dokumentiert (Tab. 1). Daten aus Europa lassen jedoch in einigen Fällen die Erstellung von grobenVerbreitungskarten zu (Abb. 1: Leishmaniose;Abb. 2: Echinococcose, E. granulosus). einem Diskussionsforum im Internet BesitzerInnen von Hunden im deutschsprachigen Raum (D,A, CH) zur Vorgeschichte ihres Tieres befragt wurden. Von 111 Hunden, die im Leishmania-Test seropositiv waren, handelte es sich bei deren 103 um Importhunde und nur bei 8 um reisebegleitende Hunde. Die Mehrzahl der seropositiven Hunde stammte aus Spanien (67%), die übrigen aus Italien, Frankreich und Griechenland.Von 95 seropositiven Hunden stammten 47% aus deutschen Tierheimen, 21% aus Tierhei- Erregerbiologie und Gefahr der Verbreitung eingeschleppter Parasitosen Eine zentrale Rolle bei der Übertragung vieler reisemedizinisch wichtiger Parasiten spielen Vektoren, vor allem Arthropoden. Daher ist die Biologie dieser Parasiten an die Lebensweise ihrer Überträger gebunden. Eine mögliche Ausbreitung von vektorübertragenen Parasitosen in Zentraleuropa ist nicht nur vom grundsätzlichen Vorkommen der Vektoren abhängig, sondern auch von klimatischen Bedingungen. Dazu gehören die durchschnittliche, mittlere Tagestemperatur in einem Gebiet, welche die Entwicklung von Vektor und Parasit ermöglicht sowie die Luftfeuchtigkeit (Genchi et al., 2005). Für einige parasitäre Reiseerkrankungen haben sich die epidemiologischen Grundlagen in Zentraleuropa stark gewandelt.Vektorübertragene Parasiten wie Dirofilarien (Genchi et al., 1998), Leishmanien (Capelli et al., 2004) oder Thelazien (Otranto et al., 2003) haben sich zum Beispiel in Italien Richtung Norden ausgebreitet und erreichen zum Teil bereits die Südschweiz. Inwieweit sich diese Parasiten auch nördlich der Alpen festsetzen können, ist noch offen. Ein grösseres Etablierungspotenzial haben sicherlich Bandwürmer wie Echinococcus granulosus und Taenia-Arten sowie Angiostrongylus vasorum. Letzterer wird bereits autochthon in verschiedenen Gebieten der Schweiz übertragen (Basel, Südtessin, unteres Rhonetal). Daher sollten Hunde, die aus Südeuropa nach Zentraleuropa einreisen oder importiert werden, unbedingt vorgängig auf verschiedene Parasiten – einschliesslich Zecken – untersucht und gegebenenfalls behandelt werden. Bevorzugt sollte man Hunde bereits im Herkunftsland mit hochwirksamen Antiparasitika behandeln. Entsprechende Vorschriften gelten bereits für Anthelminthika-Behandlungen bei Einfuhr nach Grossbritannien, Schweden und Finnland. Derartige Massnahmen sind zur Vermeidung des Einschleppens von zum Teil zoonotisch bedeutsamen Bandwürmern wie E. granulosus und T. multiceps, aber auch bei T. hydatigena und T. ovis wegen ihrer fleischhygienischen und leistungsvermindernden Aspekten von Bedeutung. Abbildung 1: Nördliche Endemiegrenze der caninen Leishmaniose (L. infantum) (––: dokumentierte Fälle [Trotz-Williams und Trees, 2003;Velo et al., 2003;Amusategui et al., 2004; Papadopoulou et al., 2005; Zivicnjak et al., 2005] und persönliche Mitteilungen [Mazedonien: M. Schnyder; Bulgarien: B. Gottstein]); ·······: vermutete Grenze. men in Südeuropa, 14% wurden im Ausland zugekauft, 14% privat aus zweiter Hand und nur 4% von ausländischen Züchtern erworben. Interessant war die Tatsache, dass 28% dieser Hunde beim Erwerb ab Tierheim bereits an Leishmaniose erkrankt waren (Mettler et al., 2005a). Die geographische Verbreitung Babesiose Abbildung 2:Approximative Verbreitung von E. granulosus in Europa (ausgefüllt Felder entsprechen einem endemischen, Punkte einem sporadisch/punktuellen Vorkommen, modifiziert nach Romig et al. [2006]). P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 Gemäss heutigem Wissensstand treten in Europa zwei Unterarten von Babesia canis auf: B. canis canis und B. c. vogeli, wobei ersterer als pathogener gilt 448 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes Tabelle 1: Importierte Parasitosen des Hundes:Verbreitung und Klinik. Erkrankung (Erreger) Babesiose (Babesia canis ssp., selten B. gibsoni) Endemiegebiete (Europa, Nordafrika) CH:Westschweiz, vereinzelt im Mittelland Vermehrt auch in Zentraleuropa (Deutschland, Österreich, Frankreich) und weit verbreitet im ganzen Mittelmeerraum; in osteuropäischen Staaten Klinik Perakute oder akute Infektion: Ab 7.–21.Tag p.i. Fieber, Mattigkeit,Appetitlosigkeit,Anämie, Ikterus, Haemoglobulinurie: «Notfall» Chronische Infektion: Geschwächte, abgemagerte Tiere mit intermittierendem Fieber,Apathie und Anämie während Monaten Leishmaniose (Leishmania infantum, selten andere Arten) Im Mittelmeerraum bis zum 46. Grad (Höhe Bordeaux,Val d’Aosta und Arco; nördliche Grenze siehe Abb. 1) und Küstengebiete Nordafrikas Inkubationszeit: Monate bis Jahre Symptomatik beginnend mit Lymphadenopathie, Fieber, reduzierter Belastbarkeit und Mattigkeit Chronische Infektion: Gewichtsverlust, schuppigen nicht juckenden Hautveränderungen (Ohrränder, Nasenspiegel und Augen), Krallenhypertrophie, Keratokonjunktivitis, Niereninsuffizienz Trypanosomose (Trypanosoma brucei, T. congolense,T. evansi) Tropisches und subtropisches Afrika Fieber,Anämie, Leukopenie,Thromzytopenie, Korneatrübung, Meningoencephalitis; oft akute letale Verläufe Hepatozoonose (Hepatozoon canis) Mittelmeerraum (Portugal, Italien, Frankreich Griechenland, gehäuft in Nordafrika) Akute Infektion: Fieber, Lymphadenopathie, Anorexie, gefolgt von Myositis Chronische Infektion: Intermittierendes Fieber, Lymphadenopathie,Anämie, Durchfall, Erbrechen, Hyperästhesie, Muskelschmerzen und muskuläre Nacken- und Rumpfversteifung Dirofilariose (Dirofilaria immitis) CH: Einzelfälle im Tessin! Im ganzen Mittelmeerraum mit Hochendemiegebieten in Norditalien und Toskana (Poebene!). In Frankreich bis nördlich von Paris Schwacher Befall asymptomatisch Erste Manifestation 5–7 Monate p.i. beginnend, mit Leistungsabfall,Anstrengungsdyspnoe, Husten Chronische Erkrankung mit progredientem Verlauf: Gewichts- und Konditionsverlust, chronischer Husten,Tachykardie. «Cavasyndrom»,Tachypnoe, Haemoglobinurie, erhöhter Blutharnstoff u.a. Hautfilariose (Dirofilaria repens) Mit verschiedener Prävalenz ähnlich wie bei D. immitis Meistens asymptomatisch, selten knotige Hautverdickungen Angiostrongylose (Angiostrongylus vasorum) CH: Nordwestschweiz, Südtessin und unteres Rhonetal Sporadisch in Mitteleuropa, Italien, Südwestfrankreich, Irland, Südwestengland, Dänemark Sehr variabel; meistens Husten, respiratorische und cardiovaskuläre Symptome,Verbrauchs-koagulopathie (Hämatome,Anämie), selten zentralnervöse Störungen Thelaziose (Thelazia callipaeda) CH:Tessin Italien (Frankreich) Epiphora, Konjunktivitis, Keratitis Echinococcose (Echinococcus granulosus, «Schafstamm») Grossbritannien, Süditalien, Sardinien, Iberische Halbinsel, Balkan,Türkei, Zypern, Nordafrika (siehe Abb. 2) Asymptomatisch, Präpatenz ca. 45 Tage, Lebensdauer intestinaler Stadien ca. 1 Jahr Taeniose (Taenia multiceps,T. ovis) Wie bei E. granulosus Asymptomatisch, Präpatenz 5–6 Wochen Lebensdauer intestinaler Stadien: mehrere Jahre P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 449 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes Italien wurde kürzlich die Ausbreitung der Leishmaniose Richtung Norden dokumentiert. Im Jahre 1983 galt der Norden Italiens (ausser Ligurien) als frei von Leishmaniose. Im Verlaufe der 90er–Jahre etablierten sich stabile Leishmaniose-Herde in der Emilia Romagna, der Toskana, Umbrien, Marken und den Abruzzen, mit zwei zusätzlichen Herden in Venetien und Piemont. Durch die Überwachung mittels «LeishMap» konnten im Jahre 2003 neue Herde in der Lombardei (Brescia) sowie im Südtirol (Arco) aufgefunden werden. Zusätzlich hatten sich bereits bekannte Herde ausgeweitet (Aostatal, Piemont, Venetien und Emilia Romgana) (Capelli et al., 2004). Die Überträgermücke Phlebotomus pernicosus liess sich in fast allen Regionen ebenfalls nachweisen. Der Vektor kommt auch in weiten Gebieten Europas nördlich der Endemiegrenze der Leishmaniose (Abb. 1) vor, wenn auch in geringen Populationsdichten. So wurde Phlebotomus perniciosus in der Südschweiz (Knechtli und Jenni, 1989), in Nordfrankreich (Lewis, 1982) und kürzlich in Deutschland (Rheinland-Pfalz) (Naucke und Schmitt, 2004) gefunden. P. mascittii, eine ebenfalls am Menschen und Hund blutsaugende Art, wurde in Süddeutschland im Raum Baden-Württemberg nachgewiesen (Naucke und Pesson, 2000). Allerdings ist die Vektorkompetenz dieser Art noch nicht belegt. Die Leishmaniose kann beim Hund auch nicht-vektoriell übertragen werden. Beschrieben wurden diaplazentare Übertragung auf Welpen (Moritz und Steuber, 1999; Masucci et al., 2003) sowie die experimentelle Infektion von Hunden durch Bluttransfusion (Owens et al., 2001). Beides dürfte jedoch von sehr geringer epidemiologischer Bedeutung sein. Auch eine direkte, mechanische Übertragung von Hund zu Hund (durch Bisse) wurde diskutiert. Sie wird insbesondere bei Hunden in den USA, welche für die Fuchsjagd eingesetzt werden, vermutet (Duprey et al., 2006). Seit den 70er-Jahren gibt es in der Schweiz und Deutschland Berichte über vermutlich autochthone Leishmaniose-Fälle nicht nur beim Hund, sondern auch beim Pferd und beim Menschen (Mettler et al., 2005a). Abbildung 3: Babesia canis in Erythrozyt im Blutausstrich, GiemsaFärbung. (Hauschild und Schein, 1996) (Abb. 3). Kleine Piroplasmen werden als B. gibsoni klassifiziert, aber es fehlt noch eine genaue molekulargenetische Absicherung der entsprechenden europäischen Isolate (Zahler et al., 2000). Die canine Babesiose war früher eine typische Reiseerkrankung im Zusammenhang mit einem Aufenthalt im Mittelmeerraum, sie tritt jedoch zunehmend autochthon auch in der Schweiz, Deutschland und Österreich auf (Sager et al., 2005).Tierärzte aus der Praxis berichten, dass die Anzahl von Babesiose-Fällen zum Beispiel in der Umgebung des Genfersees stark zugenommen hat. In letzter Zeit wurden auch Fälle in den Kantonen Solothurn (Sager et al., 2005) und Aargau sowie dem Bodenseegebiet und Rheintal gefunden, welche nicht auf Reisetätigkeit zurückgeführt werden konnten. Die wichtigsten Überträgerzecken – Dermacentor reticulatus in der Westschweiz und Rhipicephalus sanguineus im Tessin – sind weit verbreitet. Da die Babesien auch leicht mittels Bluttransfusionen übertragen werden können, ist bei Blutspendern, die aus den besagten Regionen stammen, eine vorgängige serologische Untersuchung zu empfehlen.Andere Infektionsmöglichkeiten, wie pränatale diaplazentare Transmission (insbesondere bei B. gibsoni), sind ebenfalls möglich und müssen epidemiologisch mitberücksichtigt werden. Die Babesiose des Hundes ist eine der ganz wenigen Parasitosen, bei denen im Handel erhältliche Vakzinen zur Verfügung stehen.Verbunden mit einer Vektorbekämpfung sollte damit die klinisch manifeste Babesiose heutzutage gut zu kontrollieren bzw. zu verhindern sein. Durch den andauernden Import zahlreicher Leishmania-infizierter Hunde, die auch nach klinisch erfolgreicher Chemotherapie Parasitenträger bleiben, wird unter anderem in der Schweiz ein Risiko aufgebaut, indem bei geeigneten Sommertemperaturen lokale Schmetterlingsmücken Leishmanien auf andere Hunde oder sogar auf den Menschen übertragen könnten. Der bereits erhobene Vorwurf, dass die Tierärzteschaft an der Ausbreitung der Leishmaniose in endemiefreie Gebiete beiträgt, muss ernst genommen werden. Abklärungen über das Vorkommen von Leishmania-übertragenden Phlebotomen in unseren Breitengraden sind dringend notwendig. Werden solche Gebiete Leishmaniose Die Verbreitung der Leishmaniose (Abb. 1) ist eng mit dem Vorkommen ihrer Überträgermücken, den Schmetterlingsmücken (Phlebotomen), verknüpft. In P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 450 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes Dirofilariose bekannt, so gilt es, eine Übertragung der Erreger – ausgehend von infizierten Hunden – z.B. durch das Anlegen eines Deltamethrin-Halsbandes (Maroli et al., 2001) während der Mückensaison zu verringern. Ebenso weist Permethrin in verschiedenen Applikationen und Dosierungen eine hohe Repellent- sowie eine insektizide Wirkung auf (Molina et al., 2001).Auch wenn diese Massnahme für Leishmania-infizierte Hunde wissenschaftlich noch nicht erhärtet ist, könnte sie die Tierärzteschaft von den oben aufgeführten Vorwürfen entlasten, bis fundiertere epidemiologische Daten vorliegen. Die mittleren Temperaturen in den Sommermonaten reichen in verschiedenen Teilen des Tessins aus, um eine autochthone Übertragung von Dirofilarien durch Stechmücken zu ermöglichen (Genchi et al., 1998; Genchi et al., 2005). Tatsächlich konnten im Tessin vereinzelt sowohl Dirofilaria immitis als auch D. repens bei Hunden nachgewiesen werden. Bei einigen dieser Fälle wurden auch autochthon erfolgte Übertragungen vermutet (Bucklar et al., 1998; Petruschke et al., 2001). Interessanterweise liess sich jedoch in den letzten Jahren keine Häufung von autochthonen Fällen im Tessin oder dem angrenzenden Norditalien dokumentieren (C. Genchi und F. Naegeli, persönliche Hepatozoonose Über die gegenwärtige Epidemiologie von Hepatozoon canis in Europa ist nur wenig bekannt. Hunde infizieren sich durch die perorale Aufnahme von Schildzecken (hauptsächlich R. sanguineus, eventuell auch Ixodes hexagonus). Bei Hunden mit chronischen, oft subklinischen Infektionen persistieren die Gamonten über Monate bis Jahre in Blut-Leukozyten und stellen somit eine Infektionsquelle für die Zecken dar (Abb. 4). R. sanguineus kommt autochthon im Tessin vor und wird immer wieder fokal auch nördlich der Alpen nachgewiesen. Die Igelzecke I. hexagonus hingegen ist in Zentraleuropa, besonders in Siedlungsräumen, weit verbreitet. Die limitierenden epidemiologischen Faktoren, wie durchschnittliche Tagestemperaturen, sind für H. canis leider nicht bekannt. Einige anekdotische Informationen aus der Praxis lassen jedoch vermuten, dass es nördlich der Alpen, wenn auch selten, zu einer Parasitenübertragung kommen kann. Abbildung 5: Mikrofilarie von Dirofilaria spp. im Blutausstrich, Giemsa-Färbung. Mitteilung). Auch wenn erst kürzlich der erste autochthone Fall mit einer D. repens-Infektion in Deutschland beschrieben wurde (Hermosilla et al., 2006), gibt es bisher keine Anzeichen einer Ausbreitung der Dirofilariose nördlich der Alpen. In Nordamerika hingegen fand eine langsame Ausbreitung von D. immitis vom Süden der USA bis nach Kanada statt, wobei vermutet wird, dass sich sowohl Parasit als auch Vektor an die kühleren Temperaturen langsam adaptiert haben (Eckert, 2000). Aus epidemiologischen Überlegungen empfehlen wir, Hunde mit Dirofilarien-Befall auch gegen Mikrofilarien zu therapieren (Tab. 5,Abb. 5). Angiostrongylose Abbildung 4: Gamont von Hepatozoon canis in einem Granulozyt im Blutausstrich, Giemsa-Färbung. P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 Angiostrongylus vasorum weist einen heteroxenen Zyklus zwischen Fuchs und Hund als Endwirte und Wegschnecken verschiedener Gattungen als Zwischenwirte auf. Mehrere endemische Gebiete sind in Italien, Südwestfrankreich, Irland, Südwestengland und Dänemark bekannt mit Prävalenzen bis zu 39 % 451 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes wiesen (Deplazes, 2006). Einige T. callipaeda-Fälle wurden auch in Zürich in der Abteilung für Ophthalmologie diagnostiziert (Spiess, persönliche Mitteilung), und erst kürzlich berichteten Hermosilla et al. (2004) über den ersten, wahrscheinlich aus Italien importierten Fall in Deutschland. In einer laufenden Doktorarbeit konnte das autochthone Vorkommen von T. callipaeda bei Hunden und Füchsen in verschiedenen Regionen des Tessins dokumentiert werden (Malacrida et al., 2006). Dabei handelt es sich wahrscheinlich um eine Expansion des norditalienischen Endemiegebietes. Inwieweit sich dieser Parasit auch nördlich der Alpen ausbreiten könnte, ist noch nicht bekannt, da erst kürzlich die Fruchtfliege (Phortica variegata) als Zwischenwirt in Süditalien identifiziert wurde (D. Otranto, persönliche Mitteilung). Hingegen erwies sich die normale Stubenfliege (Musca domestica) als nicht empfänglich (Otranto et al., 2005). Für eine weiterführende Risikoabschätzung fehlen aber noch viele biologische Grundlagen zu diesem Parasiten. bei Füchsen (Deplazes, 2006). Sporadische autochthone Fälle wurden in diversen europäischen Ländern unter anderem in der Schweiz bereits früher beschrieben (Eckert und Lämmler, 1972), und vereinzelt werden infizierte Hunde in die Schweiz importiert (Ribière et al., 2001). Erst kürzlich scheint jedoch eine Häufung von Fällen in der Nordschweiz und dem angrenzenden Süddeutschland, im Tessin und im unteren Rhonetal aufzutreten (Staebler et al., 2005). Zudem konnte A. vasorum bei zwei Füchsen in der Region Basel nachgewiesen werden, was das autochthoneVorkommen in der Wildtierpopulation bestätigt (Gottstein, 2001). Ob diese Infektionen von importierten Fällen ausgingen oder ob der Parasit schon endemisch vorkam und in der stark gewachsenen Fuchspopulation bessere Voraussetzungen für eine Ausbreitung fand, ist nicht bekannt. Ein anschauliches Beispiel für die Ausbreitungsmöglichkeit des Parasiten liefert Dänemark:Vermutlich von infizierten Hunden ausgehend, welche wahrscheinlich aus Frankreich in die Region Kopenhagen importiert wurden, verbreitete sich A. vasorum über weite Teile von Dänemark innerhalb von weniger als 20 Jahren. Bedingt durch die hohe Fuchsdichte in Mitteleuropa ist davon auszugehen, dass sich der Erreger in naher Zukunft stärker ausbreiten könnte, womit auch mehr Fälle beim Hund zu erwarten wären. Bandwürmer (E. granulosus, T. ovis, T. multiceps u.a.) Die Prävalenz der beim Hund vorkommenden grossen «Taenien» hat innerhalb der letzten beiden Jahrzehnten in der Schweiz stark abgenommen, wahrscheinlich bedingt durch den erhöhten Standard der Fleischkontrolle und den Einsatz wirksamer Anthelminthika.Ausdruck dafür ist auch die sinkende Prävalenz des Cysticercenbefalles beim Schaf. Autochthon kommt bei Schafen und selten bei Schweinen die durch T. hydatigena verursachte Cysticercus tenuicollisCysticercose vor.Von noch grösserer fleischhygienischer Bedeutung ist die Taenia ovis-Cysticercose des Schafes.Selten können ganze Herden massiv mit Muskelfinnen dieser Bandwurmart durchseucht sein. Über die Epidemiologie von T. ovis in Europa ist sehr wenig bekannt. Denkbar ist, dass die sporadischen Epidemien in Einzelherden durch importierte Hütehunde erfolgten. Noch seltener konnte bisher der Erreger der so genannten «Drehkrankheit» des Schafes, der Coenurose, diagnostiziert werden. Nach jahrzehntelangem Fehlen dieser Erkrankung tauchte die Coenurose in einem bündnerischen Milchschafbestand bei mehreren Auen im Mai 2003 auf (Schweizer et al., 2006). Die Diagnose wurde durch den morphologischen Nachweis der eigrossen CoenurusZysten im Hirn mehrerer Schafe bestätigt. Aus der Anamnese ging hervor, dass der innovative Bauer anfangs März 2003 zwei Hunde der Rasse «Pastore Abruzzese» aus Italien (Abruzzen) importiert und zum Schutz vor Wölfen zusammen mit der Herde gehalten hatte. Bei beiden Tieren erfolgte noch in Italien eine dokumentierte zweimalige Entwurmung Thelaziose Der Augenwurm Thelazia callipaeda (Abb. 6), ein Nematode, befällt in der Regel Hunde, gelegentlich aber auch andere Caniden, Katzen, Kaninchen und selten auch den Menschen. Dieser Parasit ist vor allem im Fernen Osten verbreitet (Russland, China, Japan, Indien u.a.). Er wurde aber kürzlich mit hoher Prävalenz bei Hunden in Süditalien (bis zu 42%) und Norditalien (23%) sowie bei Füchsen (5%) nachge- Abbildung 6:Adulte Thelazia callipaeda im Auge eines Hundes (Copyright F. Malacrida). P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 452 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes Tabelle 2: Importierte Parasitosen des Hundes: Übertragung, zoonotische Bedeutung und Etablierungspotenzial. Erreger Übertragung und zoonotische Bedeutung Blutmahlzeit der Zecken, vorwiegend - Dermacentor reticulatus (B. canis canis) - Rhipicephalus sanguineus (B. canis vogeli) Keine Zoonose Etablierungspotenzial für die Schweiz Hoch; ist ans Zeckenvorkommen gebunden: R. sanguineus ist im Tessin etabliert und kommt vereinzelt nördlich der Alpen vor, kann in Räumen und im Auto über Monate überleben. D. reticulatus: besonders in der Westschweiz (Genf) weit verbreitet Leishmania infantum Blutmahlzeit der Schmetterlingsmücken (Phlebotomus-Arten) Zoonose im Endemiegebiet, besonders bei Immungeschwächten; direkte Übertragung vom Hund wenig wahrscheinlich, iatrogene Übertragung möglich Gering: zeitlich limitiert, fokal beim Auftreten von Schmetterlingsmücken möglich Hepatozoon canis Verzehr von infizierten Zecken: Rhipicephalus Ist ans Zeckenvorkommen gebunden, im sanguineus (Ixodes hexagonus) Tessin hoch Keine Zoonose Dirofilaria immitis Vektorielle Übertragung bei Blutmahlzeit durch Stechmücken (Culex,Aedes,Anopheles) Zoonose: meistens rel. harmlose, kleine Herde in der Lunge Dirofilaria repens Vektorielle Übertragung wie bei D. immitis Hoch im Tessin, nördlich der Alpen gering Zoonose: Augenfilariose, subkutane Knoten (meistens rel. harmlos) B. canis canis ssp, B. gibsoni Angiostrongylus vasorum Bei Verzehr von infizierten Schnecken (Arion rufus, u.a.) Keine Zoonose Hoch im Tessin, nördlich der Alpen gering Hoch: Zwischenwirt und Füchse als Endwirte ubiquitär vorhanden. Im Südtessin, Region Basel und unterem Rhonetal bereits etabliert Thelazia callipaeda Genauer Vektor in Europa unbekannt, wahrscheinlich Diptera Zoonose: Einzelfälle in Asien beschrieben Hoch: im Tessin bereits autochthon nördlich der Alpen noch unbekannt Echinococcus granulosus, «Schafstamm» Endwirte (EW):Verzehr von finnenhaltigen Innereien von Schafen Zwischenwirte (ZW): p.o.Aufnahme von Eiern aus dem Kot der EW Zoonose: Zystische Echinococcose Hoch: besonders für die Schafpopulation Taenia multiceps EW:Verzehr von finnenhaltigem Nervengewebe (Schafhirn) ZW: p.o.Aufnahme von Eiern aus dem Kot der EW Zoonose: Einzelfälle von T. multiceps (Coenurose) beim Menschen beschrieben (sehr selten) Mittelgradig: besonders für die Schafpopulation Taenia ovis EW:Verzehr von finnenhaltiger Muskulatur ZW: p.o.Aufnahme von Eiern aus dem Kot der EW Keine Zoonose Hoch: besonders für die Schafpopulation P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 453 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes Bedeutung der zoonotischen Übertragung mit einem Febantelhaltigen Präparat, was den Bauern bewog, die Hunde nicht sofort nochmals zu entwurmen. Bei der Abklärung dieses Falles gelang der Nachweis von Taeniiden-Eiern in Kotproben aus der Umgebung. Nach der diagnostischen Entwurmung der Hunde schied ein einjähriger Rüde unter anderem die Bandwürmer T. multiceps und einige hundert gravide E. granulosus aus. Einen Überblick über das zoonotische Potenzial der aufgeführten Erreger liefert Tabelle 2. Eine besondere Bedeutung kommt sicherlich E. granulosus zu, bedingt durch den meist engen Kontakt zwischen Hund und Mensch sowie der gleichzeitigen Ausscheidung von infektiösen Eiern im Kot der Hunde, welche auch häufig im Fell der Tiere haften bleiben. Leishmania infantum und Dirofilaria immitis hingegen haben eine diesbezüglich etwas geringere Bedeutung, da zusätzlich eine Klima-abhängige Entwicklung in den Vektoren notwendig ist. Zudem ist der Mensch wenig empfänglich für diese im Mittelmeerraum vorherrschenden Parasitenarten. Der beim Rind noch vor 20 Jahren regelmässig vorkommende E. granulosus-Befall, verursacht durch den so genannten «Rinderstamm» von E. granulosus (neulich E. ortleppi genannt), kommt in der Schweiz autochthon faktisch nicht mehr vor. Zudem gilt auch die schweizerische Schafpopulation als frei vom so genannten «Schafstamm» von E. granulosus. Da die epidemiologischen und biologischen Voraussetzungen für die Verbreitung des «Schafstammes» auch nördlich der Alpen durchaus noch gegeben sind und dieser Stamm ein besonders grosses zoonotisches Potenzial aufweist (Eckert und Deplazes, 2004), sollte eine Einschleppung dieser Parasitose aus dem Mittelmeerraum durch eine konsequente anthelminthische Behandlung importierter Hunde unbedingt unterbunden werden. Bewiesenes oder vermutetes Einschleppen von E. granulosus durch importierte, infizierte Hunde wurde wiederholt nachgewiesen. Bei der Untersuchung von Findelhunden zum Beispiel im Tessin zeigte ein Hütehund massiven Befall mit E. granulosus («Schafstamm») sowie mit D. immitis. Mit grösster Wahrscheinlichkeit stammte dieser Hund aus Italien (Deplazes et al., 1995). Ein gut dokumentierter anderer Fall von einem kleinen E. granulosus-Ausbruch bei Schafen basierte auf dem Zukauf des mit E. granulosus befallenen «Pastore Abruzzese» aus Italien mit gleichzeitigem T. multiceps-Befall (Schweizer et al., 2006). Bei der Untersuchung der an Coenurose verendeten Schafe fielen wenige Millimeter grosse Läsionen in der Leber auf, die molekular als kleine E. granulosus-Zysten des «Schafstammes» identifiziert wurden. E. granulosus, jedoch besonders die oben erwähnten Taenia-Arten des Hundes (T. hydatigena,T. ovis und T. multiceps) haben ein sehr grosses Reproduktionspotenzial. So scheiden zum Beispiel Hunde mit T. hydatigena-Befall über 5 Jahre lang sehr regelmässig tausende von Proglottiden aus (Deplazes und Eckert, 1988). Daher können Einzelhunde über sehr lange Zeit riesige Flächen kontaminieren und so den Zyklus dieser Parasiten aufrechterhalten. Wiederholte Einzelbeobachtungen sprechen dafür, dass immer wieder mit Taenien oder Echinococcen infizierte Hunde in die Schweiz importiert werden, welche so eine Wiederansiedlung oder Neuausbreitung dieser Cestoden nördlich der Alpen ermöglichen. P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 Reisemedizinische Empfehlungen für Hunde (modifiziert nach [Deplazes, 1998]) Prophylaxe bei Hunden mit Aufenthalt im Mittelmeerraum, Tropen und Subtropen In der Tabelle 3 sind die wichtigsten pro- und metaphylaktischen Möglichkeiten zusammengefasst. • Babesiose: Die seit vielen Jahren bekannte und gut verträgliche Pirodog®-Impfung schützt vor schweren klinischen Erkrankungen, jedoch nicht sicher vor Infektionen. Die Impfung ist nicht gegen alle B. canis-Stämme gleich wirksam, insbesondere auch nicht gegen die seltener vorkommende B. gibsoniArt. Ein im Januar 2006 eingeführter neuer Impfstoff (Nobivac® Piro, Intervet) verwendet lösliche Antigene von sowohl B. canis canis als auch B. canis rossi, so dass das Schutzspektrum nun verschiedene Stämme oder Genotypen erfassen sollte. Unabhängige klinische und epidemiologische Erfahrungen mit dieser Impfung stehen noch aus. Hunde, welche mit der früheren Vakzine bereits geimpft worden waren, müssen mit der neuen Vakzine von Grund auf neu geimpft werden. Chemoprophylaxe: Imidocarb-diproprionat: Imizol® und Carbesia® können gemäss Literatur zur Chemoprohylaxe eingesetzt werden, praktisch findet dieser Ansatz jedoch kaum Verwendung. Die Schutzwirkung beträgt 2–6 Wochen bei einer Dosierung von 3–6 mg/kg Kgw. s.c. Tetrazykline (Doxycyclin): Nach täglicher Gabe von 20 mg/kg Kgw p.o. traten keine klinischen Symptome der Babesiose nach Infektion mit einem europäischen Isolat auf (Vercammen et al., 1996a), praktische Erfahrungen mit diesem Wirkstoff fehlen jedoch, so dass dieser Ansatz noch nicht empfohlen werden kann. • Leishmaniose: Ein mit Pyrethroiden (Deltamethrin) imprägniertes Halsband (Scalibor®) schützt Hunde in Hochendemiegebieten während Mona- 454 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes • Dirofilariose: Die sehr einfach zu verabreichende, risikolose und hochwirksame Dirofilaria-Prophylaxe mit makrozyklischen Laktonen (ML), sollte während der Mückensaison durchgeführt werden (eine bestehende Dirofilaria-Infektion bzw. Mikrofilarämie ist jedoch vorher auszuschliessen!). Einige ML schützen in prophylaktischer Dosierung zusätzlich gegen intestinale Nematoden, nicht jedoch gegen Bandwürmer. Diese Lücke wird durch neue Kombinationspräparate gefüllt, welche Praziquantel enthalten (s.Tab. 3). ten vor Schmetterlingsmückenstichen (96% Reduktion), nicht immer jedoch vor Infektion (Maroli et al., 2001; Nogueira et al., 2005). Permethrin in unterschiedlichen Dosierungen und Applikationen ist ein gutes Repellent und besitzt eine insektizide Wirkung (Molina et al., 2001). Diese Möglichkeit ist als Beitrag zur Expositionsprophylaxe empfehlenswert. Eine Impfung (Leishmune®; in der Schweiz nicht registriert) wurde kürzlich in Südamerika entwickelt. Die präliminären Resultate einer ersten klinischen Studie waren vielversprechend (Nogueira et al., 2005). Allerdings baucht es noch weitere, unabhängige Studien, um die Wirksamkeit dieser Impfung zu bestätigen, insbesondere auch im Hinblick auf europäische Leishmania-Arten. • Prophylaxe gegen Zeckenbefall: Applikation von Akarizid-Spray, Puder oder Spot-on und Anlegen von Akarizid-Halsbändern.Nicht alle Halsbänder, Tabelle 3: Prophylaxe bei Hunden für Reisen in den Mittelmeerraum. Parasitose Babesiose Möglichkeiten der Prophylaxe (Auswahl an Medikamenten) • Impfprophylaxe (Pirodog®, Nobivac® Piro). 2 Injektionen im Abstand von 3–6 Wochen, Immunität 3–4 Wochen nach Grundimmunisierung. Impfschutz vor klinischer Erkrankung ca. 6 Monate, danach Booster empfohlen 1),2) • Chemoprophylaxe: Imidocarb-diproprionat (Imizol®*, Carbesia®*) 3–6 mg/kg Kgw. s.c. Verabreicherung bei Reiseantritt. Schutzwirkung ca. 4 Wochen. 3) Tetrazykline (Doxycyclin): tägliche Gabe von 20 mg/kg Kgw p.o. 4) • Prophylaxe gegen Zecken (siehe unten) Leishmaniose • Repellentien gegen Insekten bzw. rasch wirkende Insektizide vermindern das Infektionsrisiko. Deltamethrin (Scalibor-Protectorband®) und Permethrin (Exspot®,Advantix®) reduzieren Phlebotomen-Exposition und vermindern daher Leishmania-Übertragung 5),6). • Meiden von Endemiegebieten (Risikoabschätzung bei Kurzaufenthalten!) • Impfung (Leishmune®*):Wirkung für Europa noch nicht erprobt 7),8) Hepatozoonose • Spezifische Prophylaxe nicht vorhanden; Prophylaxe gegen Zeckenbefall (siehe unten) Dirofilariose • Chemoprophylaxe mit makrozyklischen Laktonen: Ivermectin (Heartgard®*), Milbemycinoxim (Milbemax®, Interceptor®, Sentinel Spectrum®, Program plus®), Selamectin (Stronghold®) und Moxidectin (Advocate®) 9) Für alle gilt: Erste Applikation innerhalb von 30 Tagen nach Einreise in ein Endemiegebiet, alle 30 Tage während Mückenexposition, letzte Applikation 30 Tage nach letzter Exposition Echinococcose Taeniose • keine rohen Innereien (E. granulosus) resp. Nervengewebe (Schafhirn; T. multiceps) füttern • alle 6 Wochen Praziquantel (z.B. Droncit®, Caniquantel®) verabreichen 9) Zecken: (auch Prophylaxe gegen Babesiose und Hepatozoonose) Diverse Akarizid-Halsbänder (Auswahl) mit Wirkung auf Zecken (Dauer nach Firmenangaben): • Bendiocarb: Parasitex®,Wirkung gegen Zecken ca. 5 Monate • Amitraz: Preventic®,Wirkung gegen Zecken ca. 4 Monate • Deltamethrin: Scalibor®,Wirkung gegen Zecken ca. 5–6 Monate Spot-on mit: • Permethrin: exspot®,Wirkung gegen Zecken ca. 3–4 Wochen • Fipronil: Frontline®,Wirkung gegen Zecken ca. 1 Monat Angiostrongylose Schneckenverzehr unterbinden. Bisher keine bewiesene Prophylaxe bekannt. Thelaziose Noch keine bekannt. 1) (Schetters et al., 2006), 2) (Eckert und Deplazes, 1996), 3) (Vercammen et al., 1996b), 4) (Vercammen et al., 1996a), et al., 2001), 6) (Molina et al., 2001), 7) (Saraiva et al., 2006), 8) (Nogueira et al., 2005), 9) (Lit., Deplazes, 2006). * In der Schweiz nicht zugelassen. 5) (Maroli P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 455 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes Tabelle 4: Labor-Diagnostik wichtiger parasitärer Importerkrankungen des Hundes. Parasitose Diagnostik in der tierärztlichen Praxis Weiterführende Untersuchungen in spezialisierten Labors Diagnose der Unterart mit PCR1) Untersuchungsmaterial Babesiose (Babesia canis ssp., B. gibsoni) Während akuter Phase: gefärbte Blutausstriche (Unterscheidung zwischen Chronische Infektionen mit Serologie grossen und kleinen (IFAT) Babesien) 1–2ml EDTA-Blut Leishmaniose (Leishmania infantum) Nachweis amastigoter Stadien in Lymphknotenoder KnochenmarksPunktat. Serologie mit «Schnelltests» geeignet für die Diagnose klinischer Fälle Parasitennachweis in in-vitro-Kulturen aus Lymphknoten- oder Knochenmarkspunktaten (erlaubt biochemische Charakterisierung) PCR aus Lymph- und Knochenmarkspunktarten oder Hautbiopsien (Sensitivität aus Blut erniedrigt) 2),3) Erregernachweis: Lymphknoten- oder Knochenmarkspunktat (Hautbiopsie) in steriler physiologischer Lösung oder Kulturmedium Serologie mit verfeinertem Test (ELISA, Westernblot) auch für die sensitive Diagnose asymptomatischer Infektionen 4),5) Serologie: 1ml Serum oder Plasma 1ml Serum oder Plasma Trypanosomose (Trypanosoma brucei, T. congolense,T. evansi) Nachweis der trypomastigoten Stadien im Blutausstrich Serologie mit Nachweis von Antikörpern oder Antigenen (in Europa kaum angeboten) 6) 1–2ml EDTA-Blut (1ml Serum oder Plasma) Hepatozoonose (Hepatozoon canis, H. americanus) Chronische Infektion (5 Wochen p.i.): Nachweis der Gamonten in mononukleären Zellen im Blutausstrich Akute Infektionen: Meronten-Nachweis in Lymphknoten-, Knochenmarks- oder Muskelbiopsien Lymphknoten-, Knochenmarks- oder Muskelbiopsie Chronische Infektionen: siehe links; Serologie selten etabliert, PCR für Artdiagnose möglich 6) 4 ml EDTA-Blut Dirofilariose (Dirofilaria immitis, D. repens) Mikrofilariennachweis im Artdiagnose anhand der Morphologie Blutausstrich oder im mit der «sauren Phosphatasefärbung» Difil-Test ab dem 7. Monat (aufwändig) oder PCR 7) p.i.:Artdiagnose schwierig Relativ spezifischer Antigennachweis im Serum für Infektionen mit adulten D. immitis (ab 5. Monat p.i.) 7) Larvennachweis in Angiostrongylose (Angiostrongylus vasorum) Bronchialsekret oder mit dem Trichterverfahren aus frischen Kotproben 2–4 ml EDTA-Blut 1ml Serum oder Plasma Morphologische Diagnose aller Stadien (Larven im Gewebe nach Verdauung, isolierte Adulte) 8) 5–10g frischer Kot, Bronchialsekret Befallene Organe Thelaziose (Thelazia callipaeda) Nematodennachweis im Konjunktivalsack und unter der Nickhaut Morphologische Diagnose der adulten Stadien oder PCR für alle Stadien Aufgefundene Nematoden Echinococcose/Taeniose (Echinococcus granulosus, E. multilocularis, Taenia hydatigena, T. multiceps,T. ovis und andere) Taeniiden-Einachweis mittels Flotationsmethode. Gattungsspezifische Diagnose anhand der Morphologie ausgeschiedener Proglottiden Gattungsspezifischer Nachweis von Koproantigenen z.B. von Echinococcus-Arten PCR und Sequenzierung erlaubt eine artspezifische und bei Echinococcus granulosus eine stammesspezifische Diagnose 9) 4g frischer oder bei -20°C gefrorener, unfixierter Kot 1) (Sager et al., 2005), 2) (Mathis und Deplazes, 1995), 3) (Muller et al., 2003), 4) (Gottstein et al., 1988), 5) (Mettler et al., 2005b), und Deplazes, 2006), 7) (Lit., Deplazes, 2006), 8) (Staebler et al., 2005), 9) (Mathis und Deplazes, 2006). 6) (Lit.,Tenter P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 456 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes Vorgehen bei importierten Hunden die zur Flohbekämpfung eingesetzt werden (insektizid), haben eine ausreichende Wirksamkeit gegen Zecken (akarizid)! Auch sind nicht alle Präparate gleich wasserbeständig! Achtung, die meisten Präparate mit guter Wirksamkeit gegen Zecken sind für Katzen nicht geeignet (s.Tab. 3). Anamnestische Angaben: • Aus welcher Region stammt der Hund (Nation; Stadt oder Land) • Handelt es sich um einen Findel-, Zucht- oder Arbeitshund • Wurde das Tier einzeln durch den neuen Halter oder durch eine Organisation importiert mit dem Zweck, die Tiere weiter zu platzieren? • Impfausweis kritisch beurteilen! (zusätzliche Bestätigungen über Parasitenstatus sind nicht immer zuverlässig!) • Besteht zurzeit Zeckenbefall? Wenn ja, Zecken sofort entfernen und eventuell bestimmen lassen! Wichtig ist die Aufklärung der neuen Tierhalter, weil sich gewisse Infektionen, wie zum Beispiel die Leishmaniose, erst nach Jahren manifestieren und die Behandlungen langwierig und teuer sein können. Tierärztliche Untersuchung nach Kurzaufenthalt in Endemiegebieten Für Kontrolluntersuchungen nach Kurzaufenthalt in potenziellen Endemiegebieten sollten bei «gesunden» Hunden folgende Punkte berücksichtigt werden: Anamnestische Angaben: • Zeitraum des Aufenthaltes, Berücksichtigung der Mückensaison (Zecken können das ganze Jahr aktiv sein!) • Wurde eine Pro- oder Metaphylaxe durchgeführt? • Aufenthaltsort in städtischen oder ländlichen Gegenden? • Zeigte der Hund während des Aufenthaltes Krankheitssymptome? • Wurde Zeckenbefall beobachtet? • Besteht zurzeit Zeckenbefall? Wenn ja, Zecken sofort entfernen und eventuell bestimmen lassen! • Wurde rohes Fleisch oder Schlachtabfälle verfüttert? Liegt bei Hunden nach Auslandaufenthalt und ohne Prophylaxe einVerdacht auf Dirofilaria-Exposition vor, empfiehlt sich eine zweimalige Behandlung mit einem ML in der prophylaktischen Dosierung (Tab.5). Wenn nach der klinischen Untersuchung (Hämatologie/Blutchemie) keine Anhaltspunkte für das Vorliegen einer Parasitose gefunden werden, erübrigen sich sofortige Massnahmen. Wichtig: Die Inkubationszeit der verschiedenen Parasitosen schwankt zwischen einigen Tagen und Jahren (s. Tab. 1). Für den Ausschluss einer Dirofilariose oder Leishmaniose muss daher eine Zweituntersuchung nach ca. 6–8 Monaten (vorausgesetzt, dass vorher keine Krankheitserscheinungen auftreten) vereinbart werden (konkretes zur Diagnostik siehe Tab.4). P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 Parasitologische Untersuchungen (Diagnostik und Material siehe Tab. 4): • Parasitologische Kotuntersuchung (inklusive Baermann-Trichter); eventuell sofort auch gegen Bandwürmer wirksame anthelminthische Behandlung anordnen (Achtung:Bei möglicher Infektion mit E. granulosus muss der Kot bis 3 Tage nach Behandlung von den Besitzern fachgerecht eingesammelt und entsorgt werden). • Blutuntersuchung: Blutausstriche auf Babesien, Hepatozoon, Mikrofilarien und Trypanosomen untersuchen. • Serologie auf Leishmaniose und Babesiose; Antigennachweis im Serum/Plasma auf Dirofilariose. Grund dafür ist, dass bei allen drei Parasitosen auch asymptomatische Infektionen vorliegen können. Behandlung parasitärer Reiseerkrankungen des Hundes Siehe Tabelle 5. 457 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes Tabelle 5: Behandlung parasitärer Reiseerkrankungen des Hundes. Parasitose Babesiose Auswahl von Chemotherapeutika • Imidocarb-diproprionat: Imizol®*, Carbesia®*. 1x 3–6mg/kg Kgw. s.c. ev. nach 14 Tagen wiederholen • Phenamidin: Oxopirvedine®* 15mg/kg Kgw. s.c. Wiederholung nach 48h bei persistierender Symptomatik Leishmaniose • Erste Wahl: Allopurinol:Allopur®*, Mephanol®*, Zyloric®* (u.a.) in einer Dosierung von 1x täglich 20mg/Kg Kgw. für Monate bis Jahre • Zweite Wahl: N-Methylglucaminantimonat: Glucantime®* 1. und 2.Tag: 100mg/kg Kgw. s.c. oder langsam i.v. 3. bis 10.Tag: 200–300mg/kg Kgw. s.c. oder langsam i.v. 11.bis 25.Tag: Therapiefreies Intervall von 14 Tagen 26.bis 33.Tag: Wiederholung der Therapie wie an Tagen 3–10. • Dritte Wahl: Stibogluconat-Natrium: Pentostam®* 10–20mg/kg Kgw. 1x täglich während 10 Tagen streng i.v. Behandlung in Intervallen von 10 Tagen einmal bis mehrfach wiederholen 1) Mit allen erwähnten Präparaten gelingt eine Elimination der Infektion i.d.R. nicht, die Hunde bleiben daher Infektionsquellen für Schmetterlingsmücken, früher oder später treten i.d.R. Rezidive auf. Dirofilariose Gegen adulte und 5. Stadien: Melarsamin: Immiticide®*, tief i. m.. (1) Subklinische Form: 2.2mg/kg Kgw. 2x im Abstand von 3h; (2) Milde Form: 2.5mg/kg Kgw. 2x im Abstand von 24 h, zusätzlich Aspirin für 2 Wochen (3) Schwere Form: Symptomatische Vorbehandlung, dann 2.5mg/kg Kgw. unterstützt von symptomatischer Therapie, ca. 2 Monate später wie bei (2) vorgehen 2) Gegen Mikrofilarien: Makrozyklische Laktone: z.B. Stronghold®, Milbemax® und andere 2) Angiostrongylose • Fenbendazol (Panacur®) 50mg/kg Kgw über 5 Tage oder 20mg/kg Kgw 2 x täglich für 2–3 Wochen • Mebendazol (Telmin KH®) 50–100mg/kg Kgw 2x täglich über 5–10 Tage • Milbemycin (Interceptor®*, Milbemax®) 0.5mg/kg Kgw 1x wöchentlich über 4 Wochen 3) Thelaziose • Moxidectin 1% (Cydectin®*), 1–2 Tropfen in’s Auge 4) • Moxidectin 2.5% pour-on (Advocate®*) 5) Die einmalige Chemotherapie ist der mechanischen Entfernung der Adulten vorzuziehen. Echinococcose, Taeniose • Praziquantel: z.B. Droncit®, Caniquantel®, 5mg/kg Kgw. (bei nachgewiesener E. granulosus Infektion aus Sicherheitsgründen nach 2–4 Tagen wiederholen).Achtung Infektionsgefahr bis 3 Tage nach Therapie ausgeschiedenen Kot entsorgen! 2) Hepatozoonose Akute Infektion:Trimethoprim/Sulfonamid (Borgal®) täglich über 6 Tage Chronische Infektion: Imidocarb-diproprionat: Carbesia®* 6mg/kg Kgw. s.c. 2x im Abstand von 14 Tagen in Kombination mit Tetrazyklinen (5mg/kg Kgw., 2 x täglich über 7 Tage) oder Tetracyclinhydrochlorid (3x täglich 22mg/kg Kgw.) 1) Für H. americanum wird auch eine Kombinationstherapie mit Trimethoprim/Sulfonamid, Clindamycin und Pyrimethamin über 14 Tage eingesetzt. 1) (Lit.,Tenter und Deplazes, 2006), 2) (Lit., Deplazes, 2006), 3) (Lit., Staebler et al., 2005), 4) (Lia et al., 2004), (Bianciardi und Otranto, 2005). * In der Schweiz für Hunde nicht zugelassen. 5) P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 458 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes Maladies parasitaires exotiques chez le chien Malattie parassitarie dei cani nella medicina dei viaggi Les propriétaires emmènent de plus en plus souvent leur chien à l’étranger de sorte que la médecine des voyages chez les petits animaux gagne d’importance. Cela concerne aussi bien la prophylaxie et la métaphylaxie contre diverses maladies infectieuses que leur diagnostique et leur traitement. Les chiens peuvent, en particuliers au retour d`un voyage au sud de l’Europe ou aux zones subtropicales ou tropicales, être infectés par des parasites exotiques. Le risque est particulièrement élevé chez des races importées et principalement chez les chiens trouvés qui sont de plus en plus introduits en Suisse de façon organisée. Le présent travail documente des nouveaux aspects cliniques des maladies parasitaires exotiques axés sur la pratique. En outre, l’importance en tant que zoonose de quelques parasitoses est évoquée ainsi que les possibilités de leur établissement en Suisse. I cani vengono sempre più frequentemente portati in viaggi all’estero dai loro proprietari. Questo comporta un aumento dell’importanza della medicina dei viaggi. Una pro e metafilassi contro diverse malattie infettive diventa quindi di rigore come pure la diagnosi e la terapia. Bisogna tener presente che di ritorno da viaggi in Europa meridionale, nei subtropici o tropici i cani possono essere stati infettati da parassiti esotici. I rischi maggiori in Svizzera esistono nel caso importazioni di cani di razza e in particolare di trovatelli. Il riassunto qui riportato presenta aspetti nuovi, di malattie parassitarie dei viaggi orientati alla prassi clinica. Inoltre viene approfondito il significato zooonotico di alcune parassitosi e il potenziale di un loro insediamento in Svizzera. 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Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461 461 Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern Zellmorphologie Bezeichnung Erythrozyt (Diskozyt) Vorkommen, Bedeutung normale Zelle Hund Katze Retikulozyt normale Zelle (Neu-­‐Methylenblau) Hund Junger Erythrozyt, regenerative Anämie, viel RNS è polychrom. (bläuliche) Färbung Sphärozyt immunvermittelte hämolytische Anämie Fragmentozyt, Schistozyt Metabolische Störungen, Eisenmangel, DIC, Gefäßererkrankungen (Hämangiosarkom), mechanische Zerstörung (z.B. Kathertereingriffe) Keratozyt Polychromatische Zelle Echinozyt, Stechapfelform Artefakt, Hypernatriämie Akantozyt auch im Zusammenhang mit Hämangiosarkom, Lipidstoffwechselstörungen (z.B. bei Leber-­‐, Nierenerkrankungen) Targetzelle unspez., (Kodozyt) regenerative Anämie, ohne Polychromasie: verminderter Hb-­‐Gehalt oder Cholesterolaufnahme (z.B. Leber-­‐, Milz-­‐ oder Nierenerkrankung) Exzentrozyt oxidativer Stress, oxidative Toxine èHämoglobinschädingung (z.B. Vit. K, Zwiebeln, Methylenblau, Azetaminophen, Propofol, Propylenglykol, Heinz-­‐Körperchen (Neu-­‐Methylenblau) Diabetes mellitus), Katze: Hyperthyreose Howell-­‐Jolly-­‐ Körperchen Kernrest regenerative Anämie, Splenektomie, Dyserythropoese KLINISCHE FÄLLE (Besprechung Mi. 14:15 Uhr im Adlerhorst): Abkürzungen: WBC: White Blood Cells RBC: Red Blood Cells LUC: Large Unstained Cells CHr: Korpuskuläres Hämoglobin der Retikulozyten Hgb: Hämoglobin MCV: Mean Cell Volume RDW: Red Cell Distribution Width MCH: Mean Cell Hemoglobin MCHC: Mean Cell Hemoglobin Concentration (aus Formel berechnet) CHCM: Cell (Corpuscular) Hemoglobin Concentration Mean (vom ADVIA gemessen) PLT: Platelets __________________________________________________________________________ Fall 1: Katzenkater, Katze, EKH, 6 J, mk Seit 3 Monaten Inappetenz, Gewichtsabnahme, PU/PD In der klinischen Untersuchung pappige Schleimhäute, ansonsten unauffällig Fall 2: Adele, Hund, Airedale Terrier, 4 J, wk Seit 4-­‐5 Tagen blasse Schleimhäute, Hämaturie, Mattigkeit In der klinischen Untersuchung blasse Schleimhäute, Temp. 40°C, Ikterus, sowie kleiner starker Puls mit 140/Min. Fall 3: Scully, Katze, Türkisch Angora, 15 J, wk Chronischer, schon vorbekannter Katzenschnupfenkomplex Seit 3-­‐4 Tagen Nasenausfluss, Niesen, zusätzlich Mattigkeit, Anorexie In der klinischen Untersuchung pappige Schleimhäute, Temp. 39,4°C, generalisiert mittelgradig vergrößerte Lymphknoten, beidseits purulenter Nasenausfluss, mgr. verschärfte Lungenauskultation Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie & klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz) Katzenkater, Europäisch Kurzhaar, Schwarz, Alfred *01.05.200 5 Befundblatt 1 / Seite 1 78467; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. John) Parameter Referenz feline Prankreasspezifische Lipase (Snap) Zytologie 1 Probe Hämatologie WBC 6,0-18,0 10^9/l Neutrophile 2,5-12,5 10^9/l Lymphozyten 1,5-7,0 10^9/l Monozyten 0,04-0,85 10^9/l Eosinophile 0,00-1,50 10^9/l Basophile 0-0,04 10^9/l LUC 0,03-0,58 10^9 / l RBC 5,0-10,0 10^12/l berechnetes Hgb 4,9-9,3 mmol/l Htc 0,24-0,45 l/l Retikulozyten absolut ADVIA 0-40 10^9/l CHr 0,9-1,3 fmol/l MCV 40-55 fL RDW % berechneter MCH 0,77-1,1 fmol/l berechneter MCHC 18,4-22,0 mmol/l CHCM 16,48-22,29 mmol/l PLT 180-550 10^9/l große PLT PLT mittl. Granularität g/dL PLT-Aggregate Klinische Chemie Harnstoff 7,14-10,7 mmol/l Kreatinin 0-168 umol/l Na ionisiert 141-150 mmol/l CL110-125 mmol/l Kalium ionisiert 3,6-4,8 mmol/l Calcium Nova 1,19-1,41 mmol/l Phosphor 0,8-1,9 mmol/l Magnesium ionisiert 0,53-0,65 mmol/l Magnesium gesamt 0,6-1,3 mmol/l Gesamteiweiss 54,7-78,0 g/l Albumin 21,0-33,0 g/l Globulin 26,0-51,0 g/l Glukose 3,89-6,11 mmol/l Fructosamine Pentra2 210-349 umol/l Bilirubin gesamt 0-3,4 umol/l Cholesterin 2,46-3,37 mmol/l Triglyceride 0,57-1,14 mmol/l Alkalische Phosphatase0-39,7 U/l ALT 0-70 U/l GLDH 0-11,3 U/l Creatinkinase < 205 (143) U/l Urin-Sediment und Stick Spezifisches Gewicht manuell > 1035 Erythrozyten 0-5 /400x Vergr. Leukozyten 0-5 /400x Vergr. Epithelzellen Kristalle variabel /100x Vergr. Zylinder Bakterien /100x Vergr. Urin-Stick-Clinitek Urin-pH-Wert Clinitek Urin-Bilirubin-Clinitek Urin-Erythrozyten-Clinitek negativ Uringlukose-Clinitek negativ Urin-Keton-Clinitek negativ 10.06.2014 - 09:20 06.09.11 12:58 06.09.11 15:01 06.09.11 15:29 90095594 A * 90080209 A * 90095546 A * normal vorläufig 8,1 5,97 1,89 0,23 0,00 0,00 0,00 8,12 6,9 0,33 13,10 1,14 40,80 15,7 0,86 21,09 21,22 520 34 25,6 971 + + + + + + + + + 5,25 71 138 92 2,38 1,16 0,94 0,42 0,57 81,9 32,3 49,6 21,20 480 40,72 8,38 4,04 107 338 6 227 1050 <5 <5 vorhanden vorhanden nicht vorhanden nicht vorhanden 6,5 3+ 3+ 3+ 2+ Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie & klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz) Katzenkater, Europäisch Kurzhaar, Schwarz, Alfred *01.05.200 78467; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. John) Parameter Urin-Protein Clinitek Referenz mg/dL 06.09.2011-90095594 Notfall Plasma ikterisch Na ionisiert: 144 mmol/l am Nova gemessen Kalium ionisiert: 2,60 mmol/l am Nova gemessen Glukose: 1. Messung :21,44 mmol/l Alkalische Phosphatase: 1. Messung :110 U/l ALT: 1. Messung :339 U/l 06.09.2011-90080209 Epithelzellen: einige PLattenepithelien Kristalle: vereinzelt Bilirubinkristalle 06.09.2011-90095546 Notfall Befundblatt 1 / Seite 2 10.06.2014 - 09:20 06.09.11 12:58 06.09.11 15:01 06.09.11 15:29 90095594 A * 90080209 A * 90095546 A * 3+ Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie & klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz) Adele, Airedale Terrier, Quentmeier, Vanessa *15.05.2007, (W Befundblatt 1 / Seite 1 77902; Dissertation Eva Reith (Zi. Engelmann) 29.08.11 16:21 30.08.11 11:59 Parameter Referenz 90095568 A * 90091784 A Anaplasma phagocytophila PCR(Biocontrol) 07.09.2011 Dirofilarien/Borrelien/Ehrlichien/Anaplasmen(SNAP) Ehrlichia canis PCR Biocontrol 07.09.2011 Thrombelastogramm Hämatologie Blutgruppenbestimmung positiv WBC 5,48-13,74 10^9/l + 61,5 WBC korrigiert 6,0-17,0 10^9 / l + 52,6 Neutrophile 2,78-8,73 10^9/l + 43,84 Neutro reif manuell gesamt % 74,0 Neutro reif manuell gesamt 3,0-11,5 10^9/l + 38,92 Stabkernige manuell % 7,0 Stabkernige manuell 0,0-0,5 10^9/l + 3,68 Meta-Myeloz manuell 0,0 10^9/l + 2,10 Meta-Myelozyten % 4,0 Lymphozyten 0,72-4,71 10^9/l 3,77 Lymphozyten manuell gesamt % 4,0 Lymphozyten manuell gesamt 1,0-3,6 10^9/l 2,10 Monozyten 0,06-0,83 10^9/l + 4,59 Monozyten manuell gesamt % 11,0 Monozyten manuell gesamt 0,04-1,35 10^9/l + 5,79 Eosinophile < 1,47 10^9/l 0,22 Eosinophile manuell % 0 Eosinophile manuell 0,0-1,25 10^9/l 0,00 Basophile 0-0,11 10^9/l + 0,26 Basophile manuell % 0 Basophile manuell % 0,0 LUC 0,0-0,04 10^9 / l + 8,80 LUC manuell % 0 Blasten manuell % 0 BLAS manuell absolut 10^9 / l 0,0 Blasten absolut 10^9 / l 0,000 Normoblasten manuell % 17 RBC 5,5-8,5 10^12/l 1,82 berechnetes Hgb 8,06-12,21 mmol/l 3,0 Htc 0,39-0,56 l/l 0,13 Retikulozyten absolut ADVIA 0-60 10^9/l + 147,60 CHr 1,43-1,71 fmol/l 1,23 MCV 62,61-73,50 fL 72,20 RDW 10,76-12,80 % + 17,9 berechneter MCH 1,35-1,62 fmol/l + 1,66 berechneter MCHC 20,82-23,53 mmol/l 22,99 CHCM 20,82-23,53 mmol/l 19,91 PLT 150-500 10^9/l 107 große PLT 0-52 35 PLT mittl. Granularität 15,28-20,59 g/dL 18,9 PLT-Aggregate 244 Morphologie Blutausstrich Stärke Ery-Anisozytose0-1 (0-3) + Blasten qualitative Beurteilung 0 Ery Poikilozytose (0-+++) + % Ery-Polychromasie 3 % ++ % Sphärozyten <4% ca. 40% % Ery-Howell-Jolly-Körperchen % (+) Neutro-Toxizität (0-10%, 11-30%; >30%) 10% % reakt. Lymphozyten qualitativ 3% Thrombozyten qualitative Beurteilung erniedrigt Klinische Chemie Harnstoff 3,3-9,82 mmol/l + 14,66 Kreatinin 53-122 umol/l 43 10.06.2014 - 09:21 31.08.11 09:07 01.09.11 14:27 90091790 A * 90097801 A * negativ s. easyvet + + + + + + + + + + + + + + + + - 96,8 76,8 61,93 82,0 62,98 7,0 5,38 0,77 1,0 10,29 1,0 0,77 11,49 9,0 6,91 0,17 0 0,00 0,84 0 0,0 12,12 0 0 0,0 0,000 26 1,09 2,2 0,09 353,70 1,69 79,70 28,5 2,07 26,03 18,39 154 56 20,2 277 ++ 0 ++ ++ 40-50% (+) 20% 1% normal + - 14,39 33 Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie & klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz) Adele, Airedale Terrier, Quentmeier, Vanessa *15.05.2007, (W 77902; Dissertation Eva Reith (Zi. Engelmann) 29.08.11 16:21 30.08.11 11:59 Parameter Referenz 90095568 A * 90091784 A Na ionisiert 141-146 mmol/l 142 CL104-112 mmol/l 112 Kalium ionisiert 3,35-4,37 mmol/l 3,14 Calcium Nova 1,23-1,43 mmol/l 1,29 Phosphor 0,79-2,10 mmol/l + 2,29 Magnesium ionisiert 0,47-0,63 mmol/l 0,51 Magnesium gesamt 0,6-1,3 mmol/l 1,09 Gesamteiweiss 55,3-69,84 g/l + 76,4 Albumin 29,6-37,01 g/l 26,9 Globulin 22,9-35,6 g/l + 49,5 Glukose 3,3-6,53 mmol/l 5,62 Bilirubin gesamt 0-3,6 umol/l + 191,12 Cholesterin 3,3-8,6 mmol/l 7,35 Triglyceride 0,08-0,75 (nüchtern) mmol/l + 1,78 Alkalische Phosphatase0-130 U/l + 192 ALT 0-85 U/l + 365 GLDH 0-9,9 U/l + 24 Creatinkinase < 143 U/l + 672 Gerinnung aPTT STA 9,85-14,22 sec + 14,5 PT STA 6,52-8,16 sec + 8,90 PT normalisiert (INR) STA 0,7 D-Dimere cardiac reader <0,1 µg/dL ug/dL 29.08.2011-90095568 Plasma stark hämolytisch Neutro reif manuell gesamt: davon 14 Hyposegmentierte Monozyten manuell gesamt: davon 5 aktiviert Ery Poikilozytose (0-+++): makrozytäre normo- und polychromatische Erythrozyten Neutro-Toxizität (0-10%, 11-30%; >30%): basophiles, schaumiges Zytoplasma der Neutrophilen Thrombozyten qualitative Beurteilung: KEINE THROMBOZYTENAGGREGATE Bilirubin gesamt: durch Hämolyse Alkalische Phosphatase: 1. Messung :189 ALT: 1. Messung :361 31.08.2011-90091790 Plasma sehr stark hämolytisch Neutro reif manuell gesamt: davon 12 Hyposegmentierte Monozyten manuell gesamt: davon 4 aktiviert Ery Poikilozytose (0-+++): makrozytäre normo- und polychromatische Erythrozyten Neutro-Toxizität (0-10%, 11-30%; >30%): basophiles, schaumiges Zytoplasma der Neutrophilen Bilirubin gesamt: durch Hämolyse D-Dimere cardiac reader: wegen hämolyse nicht auswertbar Befundblatt 1 / Seite 2 10.06.2014 - 09:21 31.08.11 09:07 01.09.11 14:27 90091790 A * 90097801 A * 144 + 117 3,01 1,33 + 2,33 0,49 1,14 + 81,1 26,9 + 54,2 4,89 + 332,93 7,39 + 4,01 + 228 + 264 + 11 + 460 nicht messbar Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie & klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz) Adele, Airedale Terrier, Quentmeier, Vanessa *15.05.2007, (W 77902; Dissertation Eva Reith (Zi. Engelmann) 01.09.2011-90097801 Dirofilarien/Borrelien/Ehrlichien/Anaplasmen(SNAP): Unter Vorbehalt da sehr starl hämolytisches Serum Befundblatt 1 / Seite 3 10.06.2014 - 09:21 Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie & klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz) Scully, Türkisch Angora, Englert, Yannike *01.01.1996, (W) 35830; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. müller) Parameter Referenz Hämatologie WBC 6,0-18,0 10^9/l WBC korrigiert 6,0-18,0 10^9 / l Neutrophile 2,5-12,5 10^9/l Neutro reif manuell gesamt % Neutro reif manuell gesamt 2,5-12,5 10^9/l Stabkernige manuell % Stabkernige manuell 0,0-0,6 10^9/l Meta-Myeloz manuell 0,0 10^9/l Meta-Myelozyten % Lymphozyten 1,5-7,0 10^9/l Lymphozyten manuell gesamt % Lymphozyten manuell gesamt 1,5-7,0 10^9/l Monozyten 0,04-0,85 10^9/l Monozyten manuell gesamt % Monozyten manuell gesamt 0,04-0,85 10^9/l Eosinophile 0,00-1,50 10^9/l Eosinophile manuell % Eosinophile manuell 0,0-1,50 10^9/l Basophile 0-0,04 10^9/l Basophile manuell % Basophile manuell % LUC 0,03-0,58 10^9 / l LUC manuell % Blasten manuell % BLAS manuell absolut 10^9 / l Blasten absolut 10^9 / l Normoblasten manuell % RBC 5,0-10,0 10^12/l berechnetes Hgb 4,9-9,3 mmol/l Htc 0,24-0,45 l/l Retikulozyten absolut ADVIA 0-40 10^9/l CHr 0,9-1,3 fmol/l MCV 40-55 fL RDW % berechneter MCH 0,77-1,1 fmol/l berechneter MCHC 18,4-22,0 mmol/l CHCM 16,48-22,29 mmol/l PLT 180-550 10^9/l große PLT PLT mittl. Granularität g/dL PLT-Aggregate Morphologie Blutausstrich Stärke Ery-Anisozytose0-1 (0-3) Blasten qualitative Beurteilung Ery Poikilozytose (0-+++) % Ery-Polychromasie 1 % % Sphärozyten 0% % Ery-Howell-Jolly-Körperchen % Neutro-Toxizität (0-10%, 11-30%; >30%) % reakt. Lymphozyten qualitativ Thrombozyten qualitative Beurteilung Klinische Chemie Harnstoff 7,14-10,7 mmol/l Kreatinin 0-168 umol/l Na ionisiert 141-150 mmol/l CL110-125 mmol/l Kalium ionisiert 3,6-4,8 mmol/l Calcium Nova 1,19-1,41 mmol/l Phosphor 0,8-1,9 mmol/l Befundblatt 1 / Seite 1 10.06.2014 - 09:22 22.08.11 12:41 22.08.11 12:42 23.08.11 09:27 90091095 A * 90095473 A 90095472 A * + + + + + - - 38,3 38,3 36,22 95,0 36,38 4,0 1,53 0,00 0,0 0,95 1,0 0,38 0,64 0,0 0,00 0,43 0 0,00 0,02 0 0,0 0,08 0 0 0,0 0,000 0 8,13 7,1 0,35 16,80 1,07 43,10 13,5 0,88 20,54 20,35 87 22 25,1 179 + 0 0 0 0 0 10% 1% erniedrigt + + + 25,56 174 146 103 3,66 1,15 2,36 Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie & klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz) Scully, Türkisch Angora, Englert, Yannike *01.01.1996, (W) Befundblatt 1 / Seite 2 35830; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. müller) 22.08.11 12:41 22.08.11 12:42 Parameter Referenz 90091095 A * 90095473 A Magnesium ionisiert 0,43-0,65 mmol/l + 0,88 Magnesium gesamt 0,6-1,3 mmol/l + 1,57 Gesamteiweiss 54,7-78,0 g/l + 92,5 Albumin 21,0-33,0 g/l 19,8 Globulin 26,0-51,0 g/l + 72,7 Glukose 3,89-6,11 mmol/l + 6,63 Bilirubin gesamt 0-3,4 umol/l + 4,51 Cholesterin 2,46-3,37 mmol/l + 3,58 Triglyceride 0,57-1,14 mmol/l 0,54 Alkalische Phosphatase0-39,7 U/l 9 ALT 0-70 U/l 44 GLDH 0-11,3 U/l 1 Creatinkinase < 205 (143) U/l + 393 Gerinnung aPTT STA 9,85-14,22 sec + 16,8 PT STA 6,52-8,16 sec + 11,20 Urin-Sediment und Stick Spezifisches Gewicht manuell > 1035 Erythrozyten 0-5 /400x Vergr. Leukozyten 0-5 /400x Vergr. Epithelzellen Kristalle variabel /100x Vergr. Zylinder Bakterien /100x Vergr. Bakterien im Urin gefärbt Urin-Stick-Clinitek Urin-pH-Wert Clinitek Urin-Bilirubin-Clinitek Urin-Erythrozyten-Clinitek negativ Uringlukose-Clinitek negativ Urin-Keton-Clinitek negativ Urin-Protein Clinitek mg/dL Katzen-Infektionserkrankungen (Snap-Test) FELV/FIV snap negativ 10.06.2014 - 09:22 23.08.11 09:27 90095472 A * - 1021 >5 >5 nicht vorhanden nicht vorhanden nicht vorhanden vorhanden s. b. 6,5 Negativ 3+ Negativ Negativ 2+ 22.08.2011-90091095 Neutro reif manuell gesamt: davon 21 Hyposegmentierte Neutro-Toxizität (0-10%, 11-30%; >30%): Döhle- Körperchen Thrombozyten qualitative Beurteilung: KEINE THROMBOZYTENAGGREGATE Harnstoff: 1.Messung: 25,55 Gesamteiweiss: 1.Messung: 92,3 23.08.2011-90095472 Spezifisches Gewicht manuell: Zytologie Urin Sediment (May Grünwald Giemsa gefärbt): -hochgradige septisch purulente Entzündung mit massenhaft extrazellulären und intrazellulären monomorphen Stäbchen (Rat zur BU mit Resistenztest und antibiotische Therapie) -keine epithelialen Zellverbände vorhanden Erythrozyten: vereinzelt Erythrozyten Leukozyten: massenhaft Leukozyten Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie & klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz) Scully, Türkisch Angora, Englert, Yannike *01.01.1996, (W) 35830; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. müller) 23.08.2011-90095472 Bakterien im Urin gefärbt: massenhaft Stäbchen-Bakterien Befundblatt 1 / Seite 3 10.06.2014 - 09:22 Zytologie Quiz 1 Welche drei Kategorien an Tumoren unterscheidet man zytologisch? A ___________________________________________________ B ___________________________________________________ C ___________________________________________________ 2 Um welche Hautumfangsverehrung handelt es sich? Mastzelltumor Histiozytom Melanom 3 Um welche Hautumfangsvermehrung handelt es sich? Plattenepithelkarzinom Lipom Adenom hepatoider Drüsen 4 Was findet sich in der bronchoalveolären Lavage (BAL)? (mehrere Antworten sind möglich) eosinophile Entzündung purulente Entzündung Bakterien Becherzellhyperplasie Lungenwürmer Lungenmakrophagen 5 Welche Diagnose ist bei dieser Lymphknotenzytologie richtig? eosinophile Lymphadenitis purulente Lymphadenitis Lymphom physiologischer Lymphknoten 6.1 Welche Diagnose ist bei der vorliegenden Synovialzytologie richtig? purulente Arthritis degenerative Gelenkserkrankung physiologische Synovia 6.2 Ein Hund wird Lahmheit, Halsbiegeschmerz und Fieber unbekannter Genese als Patient vorstellig. Nach Punktion der Gelenke wird eine purulente Arthritis diagnostiziert. Die angeforderte bakteriologische Untersuchung (BU) ist negativ. Zusätzlich wird der Liquor des Tieres untersucht. Es findet sich eine, ebenfalls sterile, purulente Entzündung (Meningitis). Wie lautet die Diagnose für das oben beschriebene Krankheitsbild? _______________________________________________________ 7 In welche drei Kategorien können Ergüsse eingeteilt werden? A ________________________________________________ B ________________________________________________ C ________________________________________________ 8 In welche Kategorie gehören die folgenden Ergüsse? A Totalprotein: 3,5 g/dl SG: 1.035 Zellzahl: 7000/µl ______________________________________________ B Totalprotein: 2,7g/dl SG: 1.020 Zellzahl: 500/µl ______________________________________________ C Totalprotein: 0,8g/dl SG: 1.010 Zellzahl: 100/µl ______________________________________________ Wochenplan für die Studenten Allgemeines: Bücher + Telefon ( relevante Nummern auf dem Wochenplan) dürfen benutzt werden; immer wenn das Telefon klingelt ist es für euch Mikroskop am PC bitte nicht nutzen; die anderen Mikroskope nach Gebrauch mit Alkohol sauber machen Im Adlerhorst und in der Zyto müssen keine Kittel getragen werden, essen und trinken ist erlaubt Die Unterlagen, die über die Woche bearbeitet werden müssen ( Fälle Adele + Alfred + Scully, Englische Beschreibung des Vorganges eines Blutausstriches, Blutausstriche H1 – H6, Infos zu den wichtigsten Parasiten ) , befinden sich als Kopievorlagen in den Ordnern An den Tagen, an denen Nachmittags keine Fortbildung ist, ist bis 13 Uhr Anwesenheitspflicht dann könnt ihr euch eine Unterschrift von uns aus der Zyto holen oder wenn niemand da ist den MTAs Bescheid sagen, dass ihr geht - - Montag Selbststudium für die Fälle Alfred, Adele und Scully mit den Unterlagen -> überlegen welches die Haupterkrankungen des Tieres sind, aber auch ein bisschen drum herum lesen. Zum Beispiel: Ca : Welches Hormon reguliert den Calciumhaushalt? Wo wird dieses Hormon gebildet? Harnstoff: wie kann man die DD einteilen? ( prärenal..) - - Dienstag Labor / Zytologie nach der Visite ( siehe Plan) Selbststudium (..evtl. schon Blutausstriche H1 – H6 bearbeiten + und die Parasiten, die in einem blauen Kasten mit drin sind anschauen) Vorgehen bei einem Blutausstrich ( siehe englische Anleitung und Zettel zum Ausfüllen): 1. Beurteilung der Leukozyten Zahl in der 100er Vergrößerung im Monolayer 2. in der Fahne gucken ob Thrombozytenaggregate oder Parasiten vorhanden sind 3. Beurteilung der Leukozyten, Erys und Thrombozyten im Monolayer in der 1000er Vergrößerung - Mittwoch Labor/ Zytologie/Selbststudium nach der Visite und Selbststudium 14.15 Uhr Besprechung der Fälle im Adlerhorst - Donnerstag Labor/ Zytologie; Bearbeitung des Zytoquiz ( mit dem rotem Kasten! ) und Selbststudium 14.15 Uhr Besprechung der Blutausstriche H1 – H6 - Freitag - nach der Visite kommt ihr zu uns in die Zytologie und bekommt 1-2 Blutausstriche und Fälle als „ kleinen Test“. Wenn ihr mit der Bearbeitung fertig seid, sagt ihr uns Bescheid und wir besprechen diese und das Zytoquiz zusammen PLAN FÜR LABORWOCHE Vormittage: (d.h. direkt nach der Frühbesprechung bis Mittagspause) Name Student A Student B Student C Student D Student E Montag Selbststudium Klin. Fälle Selbststudium Klin. Fälle Selbststudium Klin. Fälle Selbststudium Klin. Fälle Selbststudium Klin. Fälle Dienstag Mittwoch Zytologie Labor Zytologie Labor Labor Labor Zytologie Selbststudium Blutausstriche Selbststudium Blutausstriche Selbststudium Blutausstriche Nachmittage: Mittwoch 14:15 Uhr: Klinische Fälle im Adlerhorst Donnerstag 14:15 Uhr: Blutausstriche im Adlerhorst Telefonnummern: Büro Zytologie Diagnostik: 38784 Büro Dr. Bauer: 38608 Büro Assistenten: 38637 Büro Keller: 38645 Donnerstag Selbststudium Blutausstriche Selbststudium Blutausstriche Freitag Evaluation Evaluation Zytologie Evaluation Zytologie Evaluation Labor Evaluation Bitte für die Blutausstriche diese Vorlage kopieren! Befundauswertung Hämatologie PatientenNr. ____________ Spezies ____________ 1. Erythrozyten (Tipp: Schaue mit der 1000x-­‐Vergrößerung) Alter ____________ -­‐ Größe / Hämoglobingehalt (z.B. normozytär-­‐normochrom) _________________________________________________________________ -­‐ Anisozytose -­‐ Polychromasie Nein + ++ +++ + ++ +++ -­‐ Poikilozytose (z.B. Sphärozyten, Fragmentozyten) _________________________________________________________________ 2. Leukozyten -­‐ Schätzung der Leukozytenzahl (Tipp: Schaue mit der 100x-­‐Vergrößerung) Leukopenie physiologisch Leukozytose -­‐ Differentialzellbild (physiologisch; Abweichungen z.B. Neutrophilie, Eosinophilie) __________________________________________________________________ -­‐ Morphologie (physiologisch; Abweichungen z.B. Linksverschiebung) __________________________________________________________________ -­‐ Toxizität Neutroph. Granuloz. (Döhle-­‐Körperchen; basophiles, schaumiges Zytoplasma) __________________________________________________________________ 3. Thrombozyten -­‐ Schätzung der Thrombozytenzahl (Tipp: Schaue mit der 1000x-­‐Vergrößerung) Thrombopenie physiologisch Thrombozytose -­‐ Thrombozytenaggregate (Tipp: Suche in der Fahne mit der 100x-­‐Vergrößerung) __________________________________________________________________ 4. Parasiten Nein Ja è Welche? ________________________________ Symptomatische Diagnosen: ________________________________________ ________________________________________ ________________________________________ mögliche Ätiologie / Differentialdiagnosen ? _________________________________________________________________________ _________________________________________________________________________ _________________________________________________________________________ Downloaded from inpractice.bmj.com on June 19, 2014 - Published by group.bmj.com Companion animal practice Practical assessment of blood smears in dogs and cats Rand Wilson Preparation Standardisation and homology between anyone preparing a blood smear is a desirable goal. Achieving uniformity and minimising the inherent variability associated with making blood smears will result in greater accuracy in both qualitative and quantitative assessments and differential counting: ■■ Blood smears should be made soon after collection of blood into an appropriate anticoagulant tube (EDTA or other). Use only new, clean slides; ■■ Place a small drop of blood near one end of the slide. A common mistake is to place too large a drop/too much blood on the slide – smaller is better. A completed smear that covers two-thirds to three-quarters of the entire slide often creates the best monolayers for evaluation; ■■ Place a spreading slide on the first slide, with the edge at an angle of about 30°, and draw back until Patient ID Date Rand Wilson graduated with a Doctorate of Veterinary Medicine from Colorado State University in 1988. After nearly 10 years in practice, he undertook a combined residency and PhD studies in clinical pathology. He currently works as a diagnostic clinical pathologist at IDEXX. He is a diplomate of the American Board of Veterinary Practitioners and a member of the RCVS. Complete blood count (CBC) or haematological analysis is an integral part of the diagnostic work-up in dogs and cats, and involves assessment of a freshly prepared blood smear (also known as a blood film). Despite the widespread availability of automated analysers, the value of a basic blood smear should not be forgotten and should be incorporated into routine blood testing in clinical practice. This article describes a step-by-step approach to blood smear evaluation, which is simple, inexpensive and quick to perform. F A ■■ ■■ ■■ ■■ gently touching the drop of blood in the acute angle between the slides; Allow the blood to spread along the edge of the slide by smoothly and quickly sliding the spreader slide across the first slide in one motion; A well-formed blood smear will have a flame or thumb print shape (ideally not a rectangular shape), with a thin feathered edge. The edge should be smooth, uniform and progressively thinner than the body of the smear, with a ‘thumb nail’ appearance (thickest end of the smear near the drop site) (Fig 1). This will minimise distortion of cells and lead to an even distribution throughout the smear and monolayer/reading area; A rule of thumb is to prepare at least two good smears per patient; Finally, practice makes perfect. Evaluation Smears should first be examined at low power (x4) to determine whether any large atypical structures (eg, microfilarial worms) are present, after which three main segments or compartments should be analysed: ■■ Thrombon (platelet line); ■■ Leukon (white blood cell line); ■■ Erythron (red blood cell line). M Patient ID Date Thrombon B doi:10.1136/inp.d5352 402 Fig 1: Anatomy of the peripheral blood smear. (a) Examination of the feathered edge (F) will identify platelet clumps, large cells and microfilaria. (b) Assessment of the monolayer/reading area (M) allows the number of platelets and leucocytes to be estimated, as well as morphological evaluation In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409 Evaluate the thrombon at low power (x4). Examine the feathered edge to check for any large cells or clumps that may have been dragged there during the making of the smear, and for any platelet clumps (small or large) (Fig 2). If any clumps are found, it is likely that the automated platelet count and/or estimated smear count will be inaccurate. This is more common in cats, which tend to exhibit platelet clumps and clots more frequently. If platelet clumps are present, a fresh sample may be required to obtain an accurate platelet count/ estimate. Downloaded from inpractice.bmj.com on June 19, 2014 - Published by group.bmj.com Companion animal practice Fig 2: Platelet clumps. Stain Wright’s, magnification x1000 Once it has been established that no clumps are present, examine the smear at high power (x100) within the mono­layer/reading area to estimate platelet numbers and verify the automated count. Count the number of platelets in five to 10 fields and calculate the average per field of view. There are several different conversion factors, which are variable and depend on the literature quoted, the lens/objective/power used and the species involved. However, in general, there should be a minimum of eight to 10 platelets per high-power field. A semiquantitative estimate can be obtained by multiplying the number of platelets by a conversion factor of 20,000 cells/µl, which will roughly estimate the total number of platelets/µl. Finally, use a scanning evaluation to look for giant/enlarged platelets (Fig 3), which, if present, suggests (in most species other than cats) a bone marrow response to a peripheral demand for platelets. There are some differences in the definition of a ‘giant’ platelet, but the author uses the definition ‘any platelet that is the same size or larger than an associated red blood cell’. The presence of large/giant platelets does not require concurrent thrombocytopenia to be relevant, as other factors, such as inflammation (generally chronic) or concurrent regenerative anaemia, may affect this. Fig 3: Giant/enlarged platelet Quickly examine the feathered edge to identify any large, atypical cells or other large structures. This is usually carried out at the same time as when the sample is examined for platelet clumps. Cells typically found at the feathered edge include mast cells, large atypical white cells (eg, blasts) and contaminant epithelial cells. Scan the monolayer/reading area to identify all leucocyte types that are normally present. A manual differential cell count can also be performed to verify the machine automated differential, or at least to quickly validate its ‘accuracy’. For example, the automated differential may often confuse nucleated red blood cells with lymphocytes or, occasionally, monocytes with bands or metamyelocytes. The person performing this evaluation should be able to recognise polymorphonuclear leucocytes, lymphocytes, monocytes, eosinophils and basophils. It is also important to identify band and toxic neutrophils (Figs 4, 5). Bands are neutrophils with unsegmented nuclei and, by definition, the nucleus is ‘band’-shaped with a generally constant nucleus width (slight indentations may be present but the cell may still be considered a ‘band’ cell). The narrowest section of the nucleus should be more than one-third the diameter of the widest section. Toxic neutrophils (sometimes referred to as ‘toxicity’ or ‘toxic change’) are characterised by the following changes: ■■ Cytoplasmic basophilia, which are mature neutrophils that generally have clear to light pink cytoplasm; ■■ Presence of Dohle bodies, which are seen as small, blue cytoplasmic dots or blebs; ■■ Foamy/moth-eaten cytoplasm; ■■ Nuclear degeneration. These changes are listed to some degree in order of the severity of toxicity. The severity of overall cellular changes are generally graded as mild, moderate or marked, or as 1+, 2+, 3+ or 4+ toxicity. The presence of band and toxic neutrophils is commonly called ‘left-shifting’ or a ‘left shift’, and indicates rapid maturation and early release of premature cells from the bone marrow. This generally occurs in response to increased peripheral demand and is strongly suggestive of inflammation/inflammatory disease. The number/percentage of toxic neutrophils can be documented at this stage. Fig 4: Band neutrophil Fig 5: Toxic neutrophil Leukon In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409 403 Downloaded from inpractice.bmj.com on June 19, 2014 - Published by group.bmj.com Companion animal practice 10 µm 10 µm Fig 6: Reactive lymphocytes Fig 7: Atypical lymphoblasts Finally, identify whether any reactive lymphocytes (Fig 6), and potentially other atypical leucocytes, are present. Reactive lymphocytes exhibit increased cytoplasmic basophilia, sometimes with an increased volume of cytoplasm, and can be smaller or larger than other lymphocytes. Atypical leucocytes can be unclassified or from any cell lines (granulocytic, monocytic, lymphocytic, erythrocytic or megakaryocytic) (Fig 7). Regenerative anaemia Erythron Non-regenerative anaemia Evaluation and classification of anaemia Non-regenerative anaemia is commonly caused by: ■■ Acute blood loss or destruction lasting less than three to four days (pre-regeneration); ■■ Chronic diseases, which are most frequently seen in cases of renal disease with decreased erythro­ poietin production; ■■ Chronic inflammation, generally considered to be inflammatory cytokine-related suppression of red blood cell production; ■■ Bone marrow alterations (hypoplasia/aplasia) due to neoplastic diseases/leukaemias, toxic damage or infectious bone marrow diseases/myelitis. Perform a general scan of the monolayer/reading area, and assess the overall red blood cell mass to determine whether anaemia is present. This also helps to validate the automated red blood cell data, principally the red blood cell count and haematocrit or packed cell volume (PCV) (Fig 8). If a discrepancy exists, consider performing a manual spun PCV at this time. Compare this with the automated machine count to gauge the overall size of the red blood cell mass; a rough estimate may be obtained from the smear itself. Anaemia should be classified as regenerative or non-regenerative. Check the automated data for the inclusion of a reticulocyte count. In the absence of a reticulocyte count, an in-house new methylene blue (NMB)-stained slide can be made from the blood sample to count the number/percentage of reticulocytes manually. Follow the directions that accompany the NMB stain, or simply add the stain to an unstained smear, let it sit for one to two minutes, rinse gently, and air dry. Otherwise, examine the regular blood smear for clues of regeneration (Table 1); this may often be faster and more practical, as many clinics do not have NMB stain readily available. Regenerative anaemia is generally considered to be indicative of blood loss or blood destruction (Fig 9). Blood loss is defined as haemorrhage lasting more than three to four days. Blood destruction may be due to immune-mediated haemolytic anaemia, oxidative damage (Heinz body anaemia) or fragmentation anaemia (acanthocytes, keratocytes or schistocytes). Evaluation of red blood cell morphological changes Red blood cell morphological changes will often be non-specific, but certain factors may suggest more specific aetiologies (Table 2). A poikilocyte is the general (primarily non-specific) term for abnormally shaped cells. Miscellaneous inclusions (Fig 10) may be artefactual or may be significant pathological inclusions, for example, parasitic and viral inclusions. Differentiation between artefacts and real inclusions may be challenging and often require more expertise and experience. 50 µm Fig 8: Normal red blood cell mass 404 In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409 50 µm Fig 9: Marked anaemia Downloaded from inpractice.bmj.com on June 19, 2014 - Published by group.bmj.com Companion animal practice Table 1: Characteristics suggestive of regenerative anaemia Definition Polychromasia and anisocytosis Polychromatophilic red blood cells are immature red blood cells characterised by a distinctive blue staining on a new methylene blue-stained slide. Reticulocytes are generally larger than the average mature red blood cell; a few of these may be present in normal smears from dogs and cats In the case of anisocytosis, variations in red blood cell size is often related to the presence of larger polychromatophilic cells, and sometimes also to the presence of spherocytes (small dense red blood cells) Both polychromasia and anisocytosis may be subjectively graded according to presence and severity as mild, moderate or marked, or 1+, 2+, 3+, 4+ Rubricytosis/nucleated red blood cells The presence of rubricytosis/nucleated red blood cells (nRBCs) is often supportive and related to a regenerative response. Differentiating nRBCs from lymphocytes can be challenging, and will require some previous training. However, in general, nRBCs have a cytoplasm that is similar to red blood cell cytoplasm – that is, a qualitatively different staining characteristic than lymphoid cytoplasm, and more condensed and uniform nuclei, and, often, basophilic nuclei are darker than lymphoid ones. In the smear pictured on the left, a nRBC can be seen at bottom right 10 µm Howell-Jolly bodies Howell-Jolly bodies are nuclear remnants from cell division. They are small basophilic, round structures in mature red blood cells, which may take some previous training and practice to identify Basophilic stippling Basophilic stippling is demonstrated by aggregated ribosomes 10 µm Stain for all smears is Wright’s/modified Wright’s In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409 405 Downloaded from inpractice.bmj.com on June 19, 2014 - Published by group.bmj.com Companion animal practice Table 2: Morphological changes commonly seen on blood smears Definition Spherocytes Small, dense red blood cells with a lack of central pallor. They primarily result from antibody-mediated removal/loss of membrane, and generally indicate immune-mediated haemolytic anaemia. They can sometimes be seen in animals with other fragmentation anaemias 10 µm Autoagglutination Aggregates and clumping of red blood cells usually occurs due to coating with antibodies, which is generally related to immune-mediated haemolytic anaemia Autoagglutination needs to be differentiated from increased rouleaux, which can be carried out with the help of a saline agglutination test (Box 1) 10 µm Rouleaux Often caused by increased proteins in the blood that do not coat individual red blood cells, and often results in a ‘stack of coins’ appearance, rather than large irregular clumps of cells 10 µm Heinz bodies 10 µm 406 In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409 Aggregates of denatured haemoglobin caused by oxidative damage, which appear as slightly pale structures, often near the edge of the red blood cell membrane causing a membrane defect or protrusion (‘nose’). These can be confirmed using new methylene blue-stained slides that are used for reticulocyte evaluation, and will be visible as pale blue, round structures (easier to identify than on regular stained smears). Scattered, low numbers of Heinz bodies can occasionally be seen in normal cats; however, when seen in cases of anaemia, they often indicate a relationship with oxidative damage and toxicity. Examples of Heinz body-inducing agents include acetaminophen, garlic, onion, propylene glycol and phenothiazine toxicity. In cats, Heinz bodies can sometimes be seen in cases of diabetes, hyperthyroidism and lymphoma, but are considered uncommon Downloaded from inpractice.bmj.com on June 19, 2014 - Published by group.bmj.com Companion animal practice Table 2 continued Definition Eccentrocytes Red blood cells with a fusion of opposed regions of oxidised/damaged membrane that leave a pale region on one side of affected cells. These tend to be more common in cases of oxidative damage in dogs than cats Keratocytes and schistocytes Keratocytes (helmet cells, blister cells) and schistocytes (red blood cell fragments) are created by the same rigid structures and traumatic forces within the vascular system that damage red blood cells. They are often suggestive of fragmentation anaemias that are seen in cases of disseminated intravascular coagulation, vasculitis, haemangiosarcoma and endocarditis 10 µm Acanthocytes Spur cells with typically low numbers of irregular and blunted spikes, ‘arms’ or ‘paddles’ protruding from the edge of the red blood cells. These need to be differentiated from echinocytes (see below), which can be due to artefactual crenation. They are often related to splenic and hepatic disorders and, in particular, haem­angiosarcoma 10 µm Echinocytes Burr cells with typically larger numbers of more uniform, pointy spikes/spicules protruding from the edge of red blood cells. They are often related to artefacts, but large numbers can be suggestive of pathological conditions when crenation is ruled out. The most classic type is type III echinocytosis, which is seen in cases of rattlesnake bites and envenomation 10 µm Stain for all smears is Wright’s/modified Wright’s In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409 407 Downloaded from inpractice.bmj.com on June 19, 2014 - Published by group.bmj.com Companion animal practice A 10 µm 10 µm B C 10 µm Fig 10: Examples of miscellaneous inclusions. (a) Mycoplasma (Haemobartonella) species, (b) distemper viral inclusions, (c) Babesia gibsoni Box 1: Saline agglutination test A saline agglutination test can be used to differentiate autoagglutination and rouleaux. This involves mixing a drop of saline with a drop of blood and checking to see whether agglutination and aggregation of red blood cells remain. Autoagglutination is suggestive of immune-mediated haemolytic anaemia and not rouleaux. This test can be performed at several ratios/dilutions from 1:2 to 1:10, as occasionally rouleaux may persist at lower dilutions Box 2: Incorporation of blood smear evaluation into daily practice Blood Saline solution Agglutination Rouleaux ■■ Verify the numerical data and counts obtained from a machine analysis ■■ Verify the differential leucocyte count ■■ Verify the platelet count ■■ Characterise the thrombon – note the presence of clumps and giant/enlarged forms ■■ Characterise the leukon – note the presence of left shift, toxicity, atypical cells ■■ Characterise the erythron – this allows confirmation, evaluation and identification of anaemia as well as an assessment of red blood cell morphology (aetiopathogenesis of anaemia) If in doubt, a blood sample should be sent to a clinical pathologist for verification. Summary The preparation and evaluation of a blood smear should be considered as an invaluable diagnostic tool, which can be inexpensive, non-time consuming, and easily performed on a routine clinical basis (Box 2). Blood smears often add considerable diagnostic information, which can help the practitioner offer the best medical care to patients. Acknowledgements The author would like to thank IDEXX Laboratories and Robin Allison for images used in this article. Further reading Rebar, A. H., Macwilliams, P. S., feldman, B. F., Metzger, F. L., pollock, R. V. H. & Roche, J. (2002) Guide to Hematology in Dogs and Cats. IDEXX in-house publications, Teton NewMedia Stockam, S. L. & Scott, M. A. (2008) Fundamentals of Veterinary Clinical Pathology, 2nd edn. Blackwell Publishing Thrall, M. A., baker, D. C. & lassen, E. D. (2004) Veterinary Hematology and Clinical Chemistry. Lippincott, Williams & Wilkins Allison, R. W. & Meinkoth, J. H. (2007) Hematology without the numbers: in-clinic blood film evaluation. Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice 37, 245-266 In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409 409 Downloaded from inpractice.bmj.com on June 19, 2014 - Published by group.bmj.com Practical assessment of blood smears in dogs and cats Rand Wilson In Practice 2011 33: 402-409 doi: 10.1136/inp.d5352 Updated information and services can be found at: http://inpractice.bmj.com/content/33/8/402.full.html These include: References This article cites 1 articles http://inpractice.bmj.com/content/33/8/402.full.html#ref-list-1 Email alerting service Receive free email alerts when new articles cite this article. Sign up in the box at the top right corner of the online article. Notes To request permissions go to: http://group.bmj.com/group/rights-licensing/permissions To order reprints go to: http://journals.bmj.com/cgi/reprintform To subscribe to BMJ go to: http://group.bmj.com/subscribe/ Blutausstriche ( Besprechung DO. 14:15 Uhr im Adlerhorst) H2 Arkos, Hund, Golden Retriever, 7 Monate, m Seit Welpenalter Ataxie und Umfallen, intermittierend Diarrhoe, Hämatokrit von 23%, Blutausstrich nach Bluttransfusion. Tipp: Achten sie besonders auf die Erythrozytenmorpholgie (Größe, Hämoglobingehalt, morphologische Veränderungen). Worauf könnten die Veränderungen hinweisen? H4 Luna, Katze, EKH, 5 Jahre, wk Mattigkeit, Inappetenz, Temperatur 39,5 °C, Hämatokrit von 15% Tipp: : Achten sie besonders auf die Erythrozytenmorpholgie (Größe, Hämoglobingehalt, morphologische Veränderungen). Worauf könnten die Veränderungen hinweisen? H6 Carlo,Hund, Mischling, 7 Monate, m Akutes Erbrechen, Durchfall Tipp: Achten sie besonders auf die Leukozytenanzahl und Morphologie. Worauf könnten die Veränderungen hinweisen? H8 Lotte, Hund – Mischling, 1 Jahr alt, wk Vorstellig wegen Inappetenz, Erbrechen, steifer Gang, Risus sardonicus. Wunde (Bauchnaht)- vor 5 Tagen Kastration , Fieber Tipp: Achten sie besonders auf die Leukozytenanzahl und Morphologie. Worauf könnten die Veränderungen hinweisen? H10 Anna, Hund- Labrador Retriever, 8 Jahre alt, wk Vorstellig wegen Erbrechen, Anorexie, Apathie . Vor einigen Wochen wurde ein Mastzelltumor an der Hintergliedmaße entfernt (Patho : Grad 2 ,low grade Mastzelltumor) Tipp: Achten sie besonders auf die Erythrozytenmorphologie (Größe, Hämoglobingehalt, morphologische Veränderungen) sowie die Leukozytenverteilung. Worauf könnten die Veränderungen hinweisen? H11: Merle, Hund- Bearded Collie, 9 Jahre alt, wk Vorstellig wegen Apathie, Fieber, beim Ultraschall des HTA Milzveränderungen aufgefallen, vor wenigen Tagen geimpft, Hämatokrit 22% Klinisch: matt, blasse Schleimhäute, Herzgeräusch 3/6 systolisch über der Mitralklappe Tipp: Achten sie besonders auf die Erythrozytenmorphologie (Größe, Hämoglobingehalt, morphologische Veränderungen). Worauf könnten die Veränderungen hinweisen? Bei Patienten mit vorberichtlicher Anämie in regenerativ / nicht regenerativ klassifizieren! Fall HP 2 Die canine Anaplasmose Infektionserreger beim Hund -­‐ -­‐ -­‐ Anaplasma phagocytophilum o Infektion v.a. der neutrophilen Granulozyten Anaplasma platys o Infektion der Thrombozyten o Kommt im Mittelmeerraum vor Kleine, obligat intrazelluläre Bakterien Übertragung durch Zecken → Ko-­‐Infektion mit Borrelia burgdorferi häufig! -­‐ -­‐ Ixodes ricinus → Anaplasma phagocytophilum o Die Zecken müssen mindestens 24 Stunden lang auf dem Wirt saugen, damit A. phagocytophilum erfolgreich übertragen wird! Rhipicephalus sanguineus (braune Hundezecke) → Anaplasma platys Klinik der caninen Anaplasmose -­‐ -­‐ -­‐ -­‐ Akute oder chronische Erkrankung Unspezifische Symptome o Fieber, Apathie, Anorexie Gelenkschmerzen, Uveitis Splenomegalie, Hepatomegalie, Lymphadenomegalie Blutuntersuchung -­‐ -­‐ -­‐ -­‐ Häufig: Thrombozytopenie Anämie Hypoalbuminämie Hyperglobulinämie Diagnostische Tests -­‐ Blutausstrich o In den Granulozyten! o Können nicht von anderen Erregern unterschieden werden (z.B. Ehrlichia) § Diese Einschlüsse als „Morulae“ beschreiben o In der Ausstrichfahne sind sie einfacher zu finden! o Von Döehle-­‐Körperchen unterscheiden! § Die Döehle-­‐Körperchen sind dunkler und befinden sich am Rand des Zytoplasmas § Die Morulae sind größer (ca. 20 Bakterien in einem Phagosom) und können in der Mitte der Zelle sichtbar sein Morulae in den neutrophilen Granulozyten Döehle-­‐Körperchen -­‐ -­‐ Serologie o Schnell-­‐Test verfügbar o Hinweis auf einen Kontakt mit dem Erreger PCR o Blut, Milz (Rückzugsgebiet!) o Negatives Ergebnis schließt keine Infektion aus! Therapie Doxycyclin Fall HP 1 Die Babesiose beim Hund: eine endemische Krankheit in Deutschland Babesienarten des Hundes und Vektor -­‐ -­‐ -­‐ -­‐ Babesia canis canis – Dermacentor reticulatus (anwesend in Deutschland) Babesia canis vogeli – Rhipicephalus sanguineus (Braune Hundezecke) Babesia canis rossi – Haemaphysallis leachi (Sahara) Babesia gibsoni Die Erkrankung beim Hund o o o o o o o akute und schwere Erkrankung Inkubationszeit: 1-­‐3 Wochen nach dem Zeckenbiss Hohes Fieber, Apathie und Anorexie Hämolyse → Anämie, Hämoglobinurie, +/-­‐ Ikterus Thrombozytopenie, Hypoalbuminämie später: Schock, neurologische Symptome, Multiorganversagen chronische Erkrankung möglich § Abmagerung, Fieber, Apathie, Anämie o Blutausstrich!! § Insbesondere: kapilläres peripheries Blut § In den Erythrozyten § Häufig paarweise als birnenförmige Einschlüsse (4-­‐6μm) Diagnose o o Serologie § Bei einer akuten Erkrankung nicht sinnvoll! • Am Anfang der Erkrankung sind keine Antikörper nachweisbar! § Chronische Erkrankung: positiver Titer PCR § Sensitive und spezifische Methode Womit darf man die Babesien nicht verwechseln? → Thrombozyten, die auf den Erythrozyten liegen! Ist die Babesiose eine Zoonose? → NEIN Gibt es ein infektiöses Risiko durch Bluttransfusionen? → JA. Blutspender müssen getestet werden (Serologie) Was ist die Therapie? → Imidocarb (Carbesia®) Wie kann man die Krankheit bekämpfen? → Impfstoff & Vektorbekämpfung Fall HP 3 Die Herzwurmerkrankung beim Hund (Dirofilariose) Eine Reisekrankheit -­‐ -­‐ -­‐ Prävalenz ++ in den Mittelmeerländern Dirofilaria immitis Vektor = Stechmücke Lebenszyklus -­‐ -­‐ -­‐ -­‐ -­‐ -­‐ Die Stechmücke nimmt von dem infizierten Hund die Mikrofilarie auf (L1) In der Stechmücke: Entwicklung der infektiösen L3 o Kein infektiöses Risiko durch eine Mikrofilarien (L1) enthaltende Bluttransfusion! Die Stechmücke sticht ein Tier und überträgt L3 o Die L3 infizieren den neuen Wirt Wanderung in der Subkutis bis zu den Pulmonalarterien (dauert ca. 100 Tage) Die Larven entwickeln sich zu adulten Herzwürmern (Makrofilarien) Nach 6 Monaten produzieren die weiblichen Makrofilarien neue Mikrofilarien o Beginn der Herzwurminfektion! o Mikrofilarien werden ins Blut entlassen Pathophysiologie -­‐ -­‐ Adulte Würmer in den Pulmonalarterien → reaktive Gefäßläsionen Entwicklung eines pulmonalen Hochdrucks o Einengung des Lumens kleinerer Lungenarterien o Proximale Dilatation der Gefäße o Thrombus-­‐Risiko! o Mechanische Obstruktion des rechtsventrikulären Ausflusstrakts möglich Diagnostische Tests -­‐ -­‐ Blutausstrich o Routineblutausstrich § Mit der kleinen Vergrößerung den Ausstrich durchmustern (100x-­‐Vergr.) § Insbesondere in der Ausstrichfahne und am Rand des Ausstriches o Anreicherung der Mikrofilarien durch einen speziellen Filter § = der modifizierte Knott-­‐Test § Lyse der Erythrozyten § Zentrifugation → Anreicherung der Mikrofilarien Herzwurmantigentest o Screening-­‐Test o Nachweis von Mikrofilarien mindestens 6 Monate nach einer Infektion! o Hohe Sensitivität o Schwach positive Ergebnisse immer verifizieren! § Test wiederholen Klinik -­‐ -­‐ Viele asymptomatische Fälle o → Screening-­‐Test wichtig! Symptome o Anstrengungsbedingte Dyspnoe o Schwäche o Synkopen o Husten o Hämoptysis o Kurzatmigkeit o Gewichtsverlust o Kongestives Rechtsherzversagen Adultizide Therapie -­‐ Melarsamin o Tiefe intramuskuläre Injektion o Strikte Ruhe nach der Therapie § → pulmonäre Thrombembolie als Komplikation! o Nach 4 Monaten den Antigentest wiederholen Mikrofilarizide Therapie -­‐ -­‐ -­‐ 4 Wochen nach der adultiziden Therapie anfangen Ivermectin, Milbemycin Rasches Absterben einer großen Zahl Mikrofilarien o Komplikationen möglich, aber häufig mild Fall HP 4 Die Trypanosomose : eine Reisekrankheit des Hundes Die afrikanische Trypanosomose -­‐ Trypanosoma evansi, Trypanosoma brucei, Trypanosoma congolense Die amerikanische Trypanosomose (v.a. Süd-­‐, aber auch Nordamerika) -­‐ -­‐ -­‐ Trypanosoma cruzi „Chagas disease“ Kardiologische Symptome: Arrhythmien, Myokarditis Vektor -­‐ -­‐ Afrika: Tsetsefliegen Tabaniden Klinik der afrikanischen Trypanosomose -­‐ -­‐ Akute oder chronische Erkrankung (Trypanotoleranz des Immunsystems) Fieber, Apathie, Anorexie, Anämie, Leukopenie, Blutungen, Uveitis, Meningoenzephalomyelitis Diagnose -­‐ Blutausstrich o Bei akuten Fällen geeignet (hohe Parasitämie) o Längliche Parasiten mit einem Flagellum und einem Kinetoplast o Darf nicht mit gequetschten aktivierten Thrombozyten verwechselt werden! -­‐ -­‐ -­‐ Serologie PCR Ist eine Impfung verfügbar? o NEIN, da diese Parasiten eine hochgradige Antigenvariation aufweisen.