Zentrallabor

Wochenplan für die Studenten
Allgemeines:
Bücher + Telefon ( relevante Nummern auf dem Wochenplan) dürfen benutzt
werden; immer wenn das Telefon klingelt ist es für euch 
Mikroskop am PC bitte nicht nutzen; die anderen Mikroskope nach Gebrauch mit
Alkohol sauber machen
Im Adlerhorst und in der Zyto müssen keine Kittel getragen werden, essen und
trinken ist erlaubt
Die Unterlagen, die über die Woche bearbeitet werden müssen ( Fälle Adele + Alfred
+ Scully, Englische Beschreibung des Vorganges eines Blutausstriches, Blutausstriche
H1 – H6, Infos zu den wichtigsten Parasiten ) , befinden sich als Kopievorlagen in den
Ordnern
An den Tagen, an denen Nachmittags keine Fortbildung ist, ist bis 13 Uhr
Anwesenheitspflicht dann könnt ihr euch eine Unterschrift von uns aus der Zyto
holen oder wenn niemand da ist den MTAs Bescheid sagen, dass ihr geht
-
-
Montag
Selbststudium für die Fälle Alfred, Adele und Scully mit den Unterlagen -> überlegen
welches die Haupterkrankungen des Tieres sind, aber auch ein bisschen drum herum
lesen.
Zum Beispiel: Ca : Welches Hormon reguliert den Calciumhaushalt?
Wo wird dieses Hormon gebildet?
Harnstoff: wie kann man die DD einteilen? ( prärenal..)
-
-
Dienstag
Labor / Zytologie nach der Visite ( siehe Plan)
Selbststudium (..evtl. schon Blutausstriche H1 – H6 bearbeiten + und die Parasiten,
die in einem blauen Kasten mit drin sind anschauen)
Vorgehen bei einem Blutausstrich ( siehe englische Anleitung und Zettel zum
Ausfüllen): 1. Beurteilung der Leukozyten Zahl in der 100er Vergrößerung im
Monolayer
2. in der Fahne gucken ob Thrombozytenaggregate oder Parasiten
vorhanden sind
3. Beurteilung der Leukozyten, Erys und Thrombozyten im Monolayer in
der 1000er Vergrößerung
-
Mittwoch
Labor/ Zytologie/Selbststudium nach der Visite und Selbststudium
14.15 Uhr Besprechung der Fälle im Adlerhorst
-
Donnerstag
Labor/ Zytologie; Bearbeitung des Zytoquiz ( mit dem rotem Kasten! ) und
Selbststudium
14.15 Uhr Besprechung der Blutausstriche H1 – H6
-
Freitag
-
nach der Visite kommt ihr zu uns in die Zytologie und bekommt 1-2 Blutausstriche
und Fälle als „ kleinen Test“. Wenn ihr mit der Bearbeitung fertig seid, sagt ihr uns
Bescheid und wir besprechen diese und das Zytoquiz zusammen
PLAN FÜR LABORWOCHE Vormittage: (d.h. direkt nach der Frühbesprechung bis Mittagspause) Name Student A Student B Student C Student D Student E Montag Selbststudium Klin. Fälle Selbststudium Klin. Fälle Selbststudium Klin. Fälle Selbststudium Klin. Fälle Selbststudium Klin. Fälle Dienstag Mittwoch Zytologie Labor Zytologie Labor Labor Labor Zytologie Selbststudium Blutausstriche Selbststudium Blutausstriche Selbststudium Blutausstriche Nachmittage: Mittwoch 14:15 Uhr: Klinische Fälle im Adlerhorst Donnerstag 14:15 Uhr: Blutausstriche im Adlerhorst Telefonnummern: Büro Zytologie Diagnostik: 38784 Büro Dr. Bauer: 38608 Büro Assistenten: 38637 Büro Keller: 38645 Donnerstag Selbststudium Blutausstriche Selbststudium Blutausstriche Freitag Evaluation Evaluation Zytologie Evaluation Zytologie Evaluation Labor Evaluation Bitte für die Blutausstriche diese Vorlage kopieren! Befundauswertung Hämatologie PatientenNr. ____________ Spezies ____________ 1. Erythrozyten (Tipp: Schaue mit der 1000x‐Vergrößerung) Alter ____________ ‐ Größe / Hämoglobingehalt (z.B. normozytär‐normochrom) _________________________________________________________________ ‐ Anisozytose ‐ Polychromasie Nein + ++ +++ + ++ +++ ‐ Poikilozytose (z.B. Sphärozyten, Fragmentozyten) _________________________________________________________________ 2. Leukozyten ‐ Schätzung der Leukozytenzahl (Tipp: Schaue mit der 100x‐Vergrößerung) Leukopenie physiologisch Leukozytose ‐ Differentialzellbild (physiologisch; Abweichungen z.B. Neutrophilie, Eosinophilie) __________________________________________________________________ ‐ Morphologie (physiologisch; Abweichungen z.B. Linksverschiebung) __________________________________________________________________ ‐ Toxizität Neutroph. Granuloz. (Döhle‐Körperchen; basophiles, schaumiges Zytoplasma) __________________________________________________________________ 3. Thrombozyten ‐ Schätzung der Thrombozytenzahl (Tipp: Schaue mit der 1000x‐Vergrößerung) Thrombopenie physiologisch Thrombozytose ‐ Thrombozytenaggregate (Tipp: Suche in der Fahne mit der 100x‐Vergrößerung) __________________________________________________________________ 4. Parasiten Nein Ja  Welche? ________________________________ Symptomatische Diagnosen: ________________________________________ ________________________________________ ________________________________________ mögliche Ätiologie / Differentialdiagnosen ? _________________________________________________________________________ _________________________________________________________________________ _________________________________________________________________________ Downloaded from inpractice.bmj.com on June 19, 2014 - Published by group.bmj.com
COMPANION ANIMAL PRACTICE
Practical assessment of blood
smears in dogs and cats
Rand Wilson
Rand Wilson graduated with a
Doctorate of Veterinary Medicine
from Colorado State University
in 1988. After nearly 10 years in
practice, he undertook a combined
residency and PhD studies in
clinical pathology. He currently
works as a diagnostic clinical
pathologist at IDEXX. He is a
diplomate of the American Board
of Veterinary Practitioners and a
member of the RCVS.
Complete blood count (CBC) or haematological analysis is an integral part of
the diagnostic work-up in dogs and cats, and involves assessment of a freshly
prepared blood smear (also known as a blood film). Despite the widespread
availability of automated analysers, the value of a basic blood smear should
not be forgotten and should be incorporated into routine blood testing in
clinical practice. This article describes a step-by-step approach to blood smear
evaluation, which is simple, inexpensive and quick to perform.
Preparation
Standardisation and homology between anyone preparing a blood smear is a desirable goal. Achieving
uniformity and minimising the inherent variability
associated with making blood smears will result in
greater accuracy in both qualitative and quantitative
assessments and differential counting:
■■ Blood smears should be made soon after collection
of blood into an appropriate anticoagulant tube
(EDTA or other). Use only new, clean slides;
■■ Place a small drop of blood near one end of the
slide. A common mistake is to place too large a
drop/too much blood on the slide – smaller is better. A completed smear that covers two-thirds to
three-quarters of the entire slide often creates the
best monolayers for evaluation;
■■ Place a spreading slide on the first slide, with the
edge at an angle of about 30°, and draw back until
■■
■■
■■
■■
gently touching the drop of blood in the acute angle
between the slides;
Allow the blood to spread along the edge of the
slide by smoothly and quickly sliding the spreader
slide across the first slide in one motion;
A well-formed blood smear will have a flame
or thumb print shape (ideally not a rectangular
shape), with a thin feathered edge. The edge should
be smooth, uniform and progressively thinner than
the body of the smear, with a ‘thumb nail’ appearance (thickest end of the smear near the drop site)
(Fig 1). This will minimise distortion of cells and
lead to an even distribution throughout the smear
and monolayer/reading area;
A rule of thumb is to prepare at least two good
smears per patient;
Finally, practice makes perfect.
Patient ID
Date
Evaluation
F
A
Smears should first be examined at low power (x4) to
determine whether any large atypical structures (eg,
microfilarial worms) are present, after which three
main segments or compartments should be analysed:
■■ Thrombon (platelet line);
■■ Leukon (white blood cell line);
■■ Erythron (red blood cell line).
M
Patient ID
Date
Thrombon
B
doi:10.1136/inp.d5352
402
Fig 1: Anatomy of the peripheral blood smear.
(a) Examination of the feathered edge (F) will identify
platelet clumps, large cells and microfilaria.
(b) Assessment of the monolayer/reading area (M)
allows the number of platelets and leucocytes to be
estimated, as well as morphological evaluation
In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
Evaluate the thrombon at low power (x4). Examine the
feathered edge to check for any large cells or clumps
that may have been dragged there during the making
of the smear, and for any platelet clumps (small or
large) (Fig 2). If any clumps are found, it is likely that
the automated platelet count and/or estimated smear
count will be inaccurate. This is more common in cats,
which tend to exhibit platelet clumps and clots more
frequently. If platelet clumps are present, a fresh sample
may be required to obtain an accurate platelet count/
estimate.
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COMPANION ANIMAL PRACTICE
Fig 2: Platelet clumps. Stain Wright’s,
magnification x1000
Once it has been established that no clumps are
present, examine the smear at high power (x100)
within the monolayer/reading area to estimate platelet
numbers and verify the automated count. Count the
number of platelets in five to 10 fields and calculate
the average per field of view. There are several different conversion factors, which are variable and depend
on the literature quoted, the lens/objective/power
used and the species involved. However, in general,
there should be a minimum of eight to 10 platelets per
high-power field. A semiquantitative estimate can be
obtained by multiplying the number of platelets by a
conversion factor of 20,000 cells/µl, which will roughly estimate the total number of platelets/µl.
Finally, use a scanning evaluation to look for
giant/enlarged platelets (Fig 3), which, if present, suggests (in most species other than cats) a bone marrow
response to a peripheral demand for platelets. There
are some differences in the definition of a ‘giant’
platelet, but the author uses the definition ‘any platelet that is the same size or larger than an associated
red blood cell’. The presence of large/giant platelets
does not require concurrent thrombocytopenia to be
relevant, as other factors, such as inflammation (generally chronic) or concurrent regenerative anaemia,
may affect this.
Fig 3: Giant/enlarged platelet
Quickly examine the feathered edge to identify any
large, atypical cells or other large structures. This is
usually carried out at the same time as when the sample
is examined for platelet clumps. Cells typically found
at the feathered edge include mast cells, large atypical
white cells (eg, blasts) and contaminant epithelial cells.
Scan the monolayer/reading area to identify all leucocyte types that are normally present. A manual differential cell count can also be performed to verify the
machine automated differential, or at least to quickly
validate its ‘accuracy’. For example, the automated
differential may often confuse nucleated red blood
cells with lymphocytes or, occasionally, monocytes
with bands or metamyelocytes. The person performing this evaluation should be able to recognise polymorphonuclear leucocytes, lymphocytes, monocytes,
eosinophils and basophils.
It is also important to identify band and toxic
neutrophils (Figs 4, 5). Bands are neutrophils with
unsegmented nuclei and, by definition, the nucleus is
‘band’-shaped with a generally constant nucleus width
(slight indentations may be present but the cell may still
be considered a ‘band’ cell). The narrowest section of
the nucleus should be more than one-third the diameter of the widest section. Toxic neutrophils (sometimes
referred to as ‘toxicity’ or ‘toxic change’) are characterised by the following changes:
■■ Cytoplasmic basophilia, which are mature neutrophils that generally have clear to light pink cytoplasm;
■■ Presence of Dohle bodies, which are seen as small,
blue cytoplasmic dots or blebs;
■■ Foamy/moth-eaten cytoplasm;
■■ Nuclear degeneration.
These changes are listed to some degree in order
of the severity of toxicity. The severity of overall cellular changes are generally graded as mild, moderate
or marked, or as 1+, 2+, 3+ or 4+ toxicity.
The presence of band and toxic neutrophils is commonly called ‘left-shifting’ or a ‘left shift’, and indicates rapid maturation and early release of premature
cells from the bone marrow. This generally occurs
in response to increased peripheral demand and is
strongly suggestive of inflammation/inflammatory
disease. The number/percentage of toxic neutrophils
can be documented at this stage.
Fig 4: Band neutrophil
Fig 5: Toxic neutrophil
Leukon
In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
403
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COMPANION ANIMAL PRACTICE
10 µm
10 µm
Fig 6: Reactive lymphocytes
Fig 7: Atypical lymphoblasts
Finally, identify whether any reactive lymphocytes
(Fig 6), and potentially other atypical leucocytes, are
present. Reactive lymphocytes exhibit increased cytoplasmic basophilia, sometimes with an increased volume of cytoplasm, and can be smaller or larger than
other lymphocytes. Atypical leucocytes can be unclassified or from any cell lines (granulocytic, monocytic,
lymphocytic, erythrocytic or megakaryocytic) (Fig 7).
Regenerative anaemia
Erythron
Non-regenerative anaemia
Evaluation and classification of anaemia
Non-regenerative anaemia is commonly caused by:
■■ Acute blood loss or destruction lasting less than
three to four days (pre-regeneration);
■■ Chronic diseases, which are most frequently seen
in cases of renal disease with decreased erythropoietin production;
■■ Chronic inflammation, generally considered to be
inflammatory cytokine-related suppression of red
blood cell production;
■■ Bone marrow alterations (hypoplasia/aplasia) due
to neoplastic diseases/leukaemias, toxic damage or
infectious bone marrow diseases/myelitis.
Perform a general scan of the monolayer/reading area,
and assess the overall red blood cell mass to determine
whether anaemia is present. This also helps to validate
the automated red blood cell data, principally the red
blood cell count and haematocrit or packed cell volume (PCV) (Fig 8). If a discrepancy exists, consider
performing a manual spun PCV at this time. Compare
this with the automated machine count to gauge the
overall size of the red blood cell mass; a rough estimate
may be obtained from the smear itself.
Anaemia should be classified as regenerative or
non-regenerative. Check the automated data for the
inclusion of a reticulocyte count. In the absence of a
reticulocyte count, an in-house new methylene blue
(NMB)-stained slide can be made from the blood sample to count the number/percentage of reticulocytes
manually. Follow the directions that accompany the
NMB stain, or simply add the stain to an unstained
smear, let it sit for one to two minutes, rinse gently, and
air dry. Otherwise, examine the regular blood smear
for clues of regeneration (Table 1); this may often be
faster and more practical, as many clinics do not have
NMB stain readily available.
Regenerative anaemia is generally considered to be
indicative of blood loss or blood destruction (Fig 9).
Blood loss is defined as haemorrhage lasting more than
three to four days. Blood destruction may be due to
immune-mediated haemolytic anaemia, oxidative damage (Heinz body anaemia) or fragmentation anaemia
(acanthocytes, keratocytes or schistocytes).
Evaluation of red blood cell morphological
changes
Red blood cell morphological changes will often be
non-specific, but certain factors may suggest more specific aetiologies (Table 2). A poikilocyte is the general
(primarily non-specific) term for abnormally shaped
cells. Miscellaneous inclusions (Fig 10) may be artefactual or may be significant pathological inclusions, for
example, parasitic and viral inclusions. Differentiation
between artefacts and real inclusions may be challenging and often require more expertise and experience.
50 µm
Fig 8: Normal red blood cell mass
404
In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
50 µm
Fig 9: Marked anaemia
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COMPANION ANIMAL PRACTICE
Table 1: Characteristics suggestive of regenerative anaemia
Definition
Polychromasia and anisocytosis
Polychromatophilic red blood cells are immature red blood
cells characterised by a distinctive blue staining on a new
methylene blue-stained slide. Reticulocytes are generally
larger than the average mature red blood cell; a few of
these may be present in normal smears from dogs and cats
In the case of anisocytosis, variations in red blood
cell size is often related to the presence of larger
polychromatophilic cells, and sometimes also to the
presence of spherocytes (small dense red blood cells)
Both polychromasia and anisocytosis may be
subjectively graded according to presence and severity as
mild, moderate or marked, or 1+, 2+, 3+, 4+
Rubricytosis/nucleated red blood cells
The presence of rubricytosis/nucleated red blood cells
(nRBCs) is often supportive and related to a regenerative
response. Differentiating nRBCs from lymphocytes can
be challenging, and will require some previous training.
However, in general, nRBCs have a cytoplasm that is similar
to red blood cell cytoplasm – that is, a qualitatively different
staining characteristic than lymphoid cytoplasm, and more
condensed and uniform nuclei, and, often, basophilic nuclei
are darker than lymphoid ones. In the smear pictured on the
left, a nRBC can be seen at bottom right
10 µm
Howell-Jolly bodies
Howell-Jolly bodies are nuclear remnants from cell division.
They are small basophilic, round structures in mature red
blood cells, which may take some previous training and
practice to identify
Basophilic stippling
Basophilic stippling is demonstrated by aggregated
ribosomes
10 µm
Stain for all smears is Wright’s/modified Wright’s
In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
405
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COMPANION ANIMAL PRACTICE
Table 2: Morphological changes commonly seen on blood smears
Definition
Spherocytes
Small, dense red blood cells with a lack of central pallor.
They primarily result from antibody-mediated removal/loss
of membrane, and generally indicate immune-mediated
haemolytic anaemia. They can sometimes be seen in
animals with other fragmentation anaemias
10 µm
Autoagglutination
Aggregates and clumping of red blood cells usually occurs
due to coating with antibodies, which is generally related to
immune-mediated haemolytic anaemia
Autoagglutination needs to be differentiated from
increased rouleaux, which can be carried out with the help
of a saline agglutination test (Box 1)
10 µm
Rouleaux
Often caused by increased proteins in the blood that do not
coat individual red blood cells, and often results in a ‘stack
of coins’ appearance, rather than large irregular clumps of
cells
10 µm
Heinz bodies
10 µm
406
In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
Aggregates of denatured haemoglobin caused by oxidative
damage, which appear as slightly pale structures, often
near the edge of the red blood cell membrane causing
a membrane defect or protrusion (‘nose’). These can be
confirmed using new methylene blue-stained slides that are
used for reticulocyte evaluation, and will be visible as pale
blue, round structures (easier to identify than on regular
stained smears). Scattered, low numbers of Heinz bodies
can occasionally be seen in normal cats; however, when
seen in cases of anaemia, they often indicate a relationship
with oxidative damage and toxicity. Examples of Heinz
body-inducing agents include acetaminophen, garlic,
onion, propylene glycol and phenothiazine toxicity. In cats,
Heinz bodies can sometimes be seen in cases of diabetes,
hyperthyroidism and lymphoma, but are considered
uncommon
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COMPANION ANIMAL PRACTICE
Table 2 continued
Definition
Eccentrocytes
Red blood cells with a fusion of opposed regions of
oxidised/damaged membrane that leave a pale region on
one side of affected cells. These tend to be more common
in cases of oxidative damage in dogs than cats
Keratocytes and schistocytes
Keratocytes (helmet cells, blister cells) and schistocytes
(red blood cell fragments) are created by the same rigid
structures and traumatic forces within the vascular
system that damage red blood cells. They are often
suggestive of fragmentation anaemias that are seen in
cases of disseminated intravascular coagulation, vasculitis,
haemangiosarcoma and endocarditis
10 µm
Acanthocytes
Spur cells with typically low numbers of irregular and
blunted spikes, ‘arms’ or ‘paddles’ protruding from the edge
of the red blood cells. These need to be differentiated from
echinocytes (see below), which can be due to artefactual
crenation. They are often related to splenic and hepatic
disorders and, in particular, haemangiosarcoma
10 µm
Echinocytes
Burr cells with typically larger numbers of more uniform,
pointy spikes/spicules protruding from the edge of red
blood cells. They are often related to artefacts, but large
numbers can be suggestive of pathological conditions
when crenation is ruled out. The most classic type is type III
echinocytosis, which is seen in cases of rattlesnake bites and
envenomation
10 µm
Stain for all smears is Wright’s/modified Wright’s
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COMPANION ANIMAL PRACTICE
A
10 µm
10 µm
B
C
10 µm
Fig 10: Examples of miscellaneous inclusions. (a) Mycoplasma (Haemobartonella) species, (b) distemper viral inclusions, (c) Babesia gibsoni
Box 1: Saline agglutination test
A saline agglutination test
can be used to differentiate
autoagglutination and rouleaux.
This involves mixing a drop of saline
with a drop of blood and checking
to see whether agglutination
and aggregation of red blood
cells remain. Autoagglutination is
suggestive of immune-mediated
haemolytic anaemia and not
rouleaux. This test can be performed
at several ratios/dilutions from 1:2 to
1:10, as occasionally rouleaux may
persist at lower dilutions
Box 2: Incorporation of blood smear
evaluation into daily practice
Blood
Saline
solution
Agglutination
Rouleaux
■■ Verify the numerical data and counts obtained
from a machine analysis
■■ Verify the differential leucocyte count
■■ Verify the platelet count
■■ Characterise the thrombon – note the presence of
clumps and giant/enlarged forms
■■ Characterise the leukon – note the presence of left
shift, toxicity, atypical cells
■■ Characterise the erythron – this allows
confirmation, evaluation and identification
of anaemia as well as an assessment of red
blood cell morphology (aetiopathogenesis
of anaemia)
If in doubt, a blood sample should be sent to a clinical
pathologist for verification.
Summary
The preparation and evaluation of a blood smear
should be considered as an invaluable diagnostic tool,
which can be inexpensive, non-time consuming, and
easily performed on a routine clinical basis (Box 2).
Blood smears often add considerable diagnostic information, which can help the practitioner offer the best
medical care to patients.
Acknowledgements
The author would like to thank IDEXX
Laboratories and Robin Allison for images
used in this article.
Further reading
REBAR, A. H., MACWILLIAMS, P. S.,
FELDMAN, B. F., METZGER, F. L.,
POLLOCK, R. V. H. & ROCHE, J. (2002)
Guide to Hematology in Dogs and Cats. IDEXX
in-house publications, Teton NewMedia
STOCKAM, S. L. & SCOTT, M. A. (2008)
Fundamentals of Veterinary Clinical Pathology,
2nd edn. Blackwell Publishing
THRALL, M. A., BAKER, D. C. & LASSEN,
E. D. (2004) Veterinary Hematology and
Clinical Chemistry. Lippincott, Williams &
Wilkins
ALLISON, R. W. & MEINKOTH, J. H. (2007)
Hematology without the numbers: in-clinic
blood film evaluation. Veterinary Clinics of North
America: Small Animal Practice 37, 245-266
In Practice September 2011 | Volume 33 | 402–409
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Practical assessment of blood smears in
dogs and cats
Rand Wilson
In Practice 2011 33: 402-409
doi: 10.1136/inp.d5352
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BLUTAUSSTRICHE (Besprechung Do. 14:15 Uhr im Adlerhorst): H1: Snoopy, Hund, Mischling, 7 Jahre, mk Vor 3 Tagen Stöckchenverletzung, seitdem Apathie und Anorexie Tipp: Achten sie besonders auf die Leukozytenanzahl und Morphologie. Was können die Ursachen sein? H2: Arkos, Hund, Golden Retriever, 7 Monate, m Seit Welpenalter Ataxie und Umfallen, intermittierend Diarrhoe, Hämatokrit (Htc) von 23%, Blutausstrich nach Bluttransfusion Tipp: Achten sie insbesondere auf die Erythrozytenmorphologie (Größe, Hämoglobingehalt, morphologische Veränderungen). Worauf könnten die Veränderungen Hinweisen? H3: Lena, Hund, Appenzeller Sennenhund, 9 Jahre, wk Mattigkeit, blasse Schleimhäute, Hämatokrit (Htc) von 18% Tipp: Achten sie insbesondere auf die Erythrozytenmorphologie (Größe, Hämoglobingehalt, morphologische Veränderungen). Worauf könnten die Veränderungen Hinweisen? H4: Luna, Katze, Europäisch Kurzhaar (EKH), 5 Jahre, wk Mattigkeit, Inappetenz, Temperatur (T): 39,5°C, Hämatokrit (Htc) von 15% Tipp: Achten sie insbesondere auf die Erythrozytenmorphologie (Größe, Hämoglobingehalt, morphologische Veränderungen). Worauf könnten die Veränderungen Hinweisen? H5: Lacky, Katze, Europäisch Kurzhaar (EKH), 15 Jahre, mk Anorexie, Apathie, Hämaturie, Hämatokrit (Htc) von 12% Tipp: Achten sie insbesondere auf die Erythrozytenmorphologie (Größe, Hämoglobingehalt, morphologische Veränderungen). Worauf könnten die Veränderungen Hinweisen? H6: Carlo, Hund, Mischling, 7 Monate, m Akutes Erbrechen, Durchfall Tipp: Achten sie besonders auf die Leukozytenanzahl und Morphologie. Was können die Ursachen sein? Bei Patienten mit vorberichtlicher Anämie  in regenerativ / nicht regenerativ klassifizieren! Fall HP 2 Die canine Anaplasmose Infektionserreger beim Hund ‐
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Anaplasma phagocytophilum o Infektion v.a. der neutrophilen Granulozyten Anaplasma platys o Infektion der Thrombozyten o Kommt im Mittelmeerraum vor Kleine, obligat intrazelluläre Bakterien Übertragung durch Zecken → Ko‐Infektion mit Borrelia burgdorferi häufig! ‐
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Ixodes ricinus → Anaplasma phagocytophilum o Die Zecken müssen mindestens 24 Stunden lang auf dem Wirt saugen, damit A. phagocytophilum erfolgreich übertragen wird! Rhipicephalus sanguineus (braune Hundezecke) → Anaplasma platys Klinik der caninen Anaplasmose ‐
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Akute oder chronische Erkrankung Unspezifische Symptome o Fieber, Apathie, Anorexie Gelenkschmerzen, Uveitis Splenomegalie, Hepatomegalie, Lymphadenomegalie Blutuntersuchung ‐
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Häufig: Thrombozytopenie Anämie Hypoalbuminämie Hyperglobulinämie Diagnostische Tests ‐
Blutausstrich o In den Granulozyten! o Können nicht von anderen Erregern unterschieden werden (z.B. Ehrlichia)  Diese Einschlüsse als „Morulae“ beschreiben o In der Ausstrichfahne sind sie einfacher zu finden! o Von Döehle‐Körperchen unterscheiden!  Die Döehle‐Körperchen sind dunkler und befinden sich am Rand des Zytoplasmas 
Die Morulae sind größer (ca. 20 Bakterien in einem Phagosom) und können in der Mitte der Zelle sichtbar sein Morulae in den neutrophilen Granulozyten Döehle‐Körperchen ‐
‐
Serologie o Schnell‐Test verfügbar o Hinweis auf einen Kontakt mit dem Erreger PCR o Blut, Milz (Rückzugsgebiet!) o Negatives Ergebnis schließt keine Infektion aus! Therapie Doxycyclin Fall HP 1 Die Babesiose beim Hund: eine endemische Krankheit in Deutschland Babesienarten des Hundes und Vektor ‐
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Babesia canis canis – Dermacentor reticulatus (anwesend in Deutschland) Babesia canis vogeli – Rhipicephalus sanguineus (Braune Hundezecke) Babesia canis rossi – Haemaphysallis leachi (Sahara) Babesia gibsoni Die Erkrankung beim Hund o
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o
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akute und schwere Erkrankung Inkubationszeit: 1‐3 Wochen nach dem Zeckenbiss Hohes Fieber, Apathie und Anorexie Hämolyse → Anämie, Hämoglobinurie, +/‐ Ikterus Thrombozytopenie, Hypoalbuminämie später: Schock, neurologische Symptome, Multiorganversagen chronische Erkrankung möglich  Abmagerung, Fieber, Apathie, Anämie o
Blutausstrich!!  Insbesondere: kapilläres peripheries Blut  In den Erythrozyten  Häufig paarweise als birnenförmige Einschlüsse (4‐6μm) Diagnose o
o
Serologie  Bei einer akuten Erkrankung nicht sinnvoll! • Am Anfang der Erkrankung sind keine Antikörper nachweisbar!  Chronische Erkrankung: positiver Titer PCR  Sensitive und spezifische Methode Womit darf man die Babesien nicht verwechseln? → Thrombozyten, die auf den Erythrozyten liegen! Ist die Babesiose eine Zoonose? → NEIN Gibt es ein infektiöses Risiko durch Bluttransfusionen? → JA. Blutspender müssen getestet werden (Serologie) Was ist die Therapie? → Imidocarb (Carbesia®) Wie kann man die Krankheit bekämpfen? → Impfstoff & Vektorbekämpfung Fall HP 3 Die Herzwurmerkrankung beim Hund (Dirofilariose) Eine Reisekrankheit ‐
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Prävalenz ++ in den Mittelmeerländern Dirofilaria immitis Vektor = Stechmücke Lebenszyklus ‐
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‐
Die Stechmücke nimmt von dem infizierten Hund die Mikrofilarie auf (L1) In der Stechmücke: Entwicklung der infektiösen L3 o Kein infektiöses Risiko durch eine Mikrofilarien (L1) enthaltende Bluttransfusion! Die Stechmücke sticht ein Tier und überträgt L3 o Die L3 infizieren den neuen Wirt Wanderung in der Subkutis bis zu den Pulmonalarterien (dauert ca. 100 Tage) Die Larven entwickeln sich zu adulten Herzwürmern (Makrofilarien) Nach 6 Monaten produzieren die weiblichen Makrofilarien neue Mikrofilarien o Beginn der Herzwurminfektion! o Mikrofilarien werden ins Blut entlassen Pathophysiologie ‐
‐
Adulte Würmer in den Pulmonalarterien → reaktive Gefäßläsionen Entwicklung eines pulmonalen Hochdrucks o Einengung des Lumens kleinerer Lungenarterien o Proximale Dilatation der Gefäße o Thrombus‐Risiko! o Mechanische Obstruktion des rechtsventrikulären Ausflusstrakts möglich Diagnostische Tests ‐
‐
Blutausstrich o Routineblutausstrich  Mit der kleinen Vergrößerung den Ausstrich durchmustern (100x‐Vergr.)  Insbesondere in der Ausstrichfahne und am Rand des Ausstriches o Anreicherung der Mikrofilarien durch einen speziellen Filter  = der modifizierte Knott‐Test  Lyse der Erythrozyten  Zentrifugation → Anreicherung der Mikrofilarien Herzwurmantigentest o Screening‐Test o Nachweis von Mikrofilarien mindestens 6 Monate nach einer Infektion! o Hohe Sensitivität o Schwach positive Ergebnisse immer verifizieren!  Test wiederholen Klinik ‐
‐
Viele asymptomatische Fälle o → Screening‐Test wichtig! Symptome o Anstrengungsbedingte Dyspnoe o Schwäche o Synkopen o Husten o Hämoptysis o Kurzatmigkeit o Gewichtsverlust o Kongestives Rechtsherzversagen Adultizide Therapie ‐
Melarsamin o Tiefe intramuskuläre Injektion o Strikte Ruhe nach der Therapie  → pulmonäre Thrombembolie als Komplikation! o Nach 4 Monaten den Antigentest wiederholen Mikrofilarizide Therapie ‐
‐
‐
4 Wochen nach der adultiziden Therapie anfangen Ivermectin, Milbemycin Rasches Absterben einer großen Zahl Mikrofilarien o Komplikationen möglich, aber häufig mild Fall HP 4 Die Trypanosomose : eine Reisekrankheit des Hundes Die afrikanische Trypanosomose ‐
Trypanosoma evansi, Trypanosoma brucei, Trypanosoma congolense Die amerikanische Trypanosomose (v.a. Süd‐, aber auch Nordamerika) ‐
‐
‐
Trypanosoma cruzi „Chagas disease“ Kardiologische Symptome: Arrhythmien, Myokarditis Vektor ‐
‐
Afrika: Tsetsefliegen Tabaniden Klinik der afrikanischen Trypanosomose ‐
‐
Akute oder chronische Erkrankung (Trypanotoleranz des Immunsystems) Fieber, Apathie, Anorexie, Anämie, Leukopenie, Blutungen, Uveitis, Meningoenzephalomyelitis Diagnose ‐
Blutausstrich o Bei akuten Fällen geeignet (hohe Parasitämie) o Längliche Parasiten mit einem Flagellum und einem Kinetoplast o Darf nicht mit gequetschten aktivierten Thrombozyten verwechselt werden! ‐
‐
‐
Serologie PCR Ist eine Impfung verfügbar? o NEIN, da diese Parasiten eine hochgradige Antigenvariation aufweisen. Originalarbeiten
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
P. Deplazes1, S. Staebler1, B. Gottstein2
1Institut
für Parasitologie der Universität Zürich, 2Institut für Parasitologie der Universität Bern
Zusammenfassung
Travel medicine of parasitic diseases in the dog
Summary
Hunde werden von ihren Besitzern zunehmend
auf Auslandreisen mitgenommen, so dass die Kleintier-Reisemedizin an Bedeutung gewinnt. Dazu
gehören sowohl die Pro- bzw. Metaphylaxe gegen
verschiedene Infektionskrankheiten als auch deren
Diagnose und Therapie. Insbesondere nach Rückreise aus Südeuropa, den Subtropen oder Tropen
können Hunde mit exotischen Parasiten infiziert
sein. Die höchsten Risiken bestehen bei importierten Rasse-, Hüte- und vor allem Findelhunden,
welche zunehmend organisiert eingeführt werden.
Die vorliegende Übersicht soll neue, praxisorientierte klinische Aspekte parasitärer Reiseerkrankungen präsentieren. Zudem wird auf die zoonotische Bedeutung einiger Parasitosen eingegangen
sowie auf das Etablierungspotenzial für die Schweiz.
Companion animals are increasingly brought along
by their owners to foreign countries.Thus, small animal travel medicine is becoming more important.
The field includes both prophylaxis and metaphylaxis
against various infectious diseases, as well as their diagnosis and treatment. Dogs returning from Southern Europe, but also from more tropical regions, may
be infected with exotic pathogens. In addition, imported pedigree or working dogs, and especially stray
dogs imported through welfare organisations, are at
high risk.The present overview summarises the clinical and practical aspects of exotic parasitic diseases
that may affect such dogs,and the risk of such diseases
becoming autochthonously transmitted in Switzerland.Furthermore,the zoonotic potential of these infections will be considered.
Schlüsselwörter: Babesia, Leishmania, Dirofilaria, Angiostrongylus vasorum, Echinococccus
Keywords: Babesia, Leishmania, Dirofilaria, Angiostrongylus
vasorum, Echinococccus
Einleitung
Patientengut und Endemiegebiete
Reisemedizinische Probleme haben in den letzten
Jahrzehnten vor allem im Kleintierbereich stark zugenommen. Die Tierärzteschaft ist nicht nur zunehmend mit exotischen Erkrankungen konfrontiert,
sie wird auch vermehrt von einer gut informierten
Kundschaft in ihrer pro- bzw. metaphylaktischen
Beratungsfunktion gefordert. Demzufolge gehört
das Thema in den zentralen Bereich der kontinuierlichen Weiterbildung von Tierärztinnen und Tierärzten. Einige importierte Reiseerkrankungen, wie
zum Beispiel die Tollwut oder die Echinococcose,
sind wichtige Zoonosen und somit von grosser
seuchenpolizeilicher Bedeutung. Bei einigen Parasiten besteht aufgrund eines relativ grossen Einschleppungsrisikos auch die Gefahr der anschliessenden Etablierung eines Übertragungskreislaufes
in der Schweiz. Neue Fortschritte wurden in den
letzten Jahren bei der Diagnose und Prophylaxe
wichtiger Reiseerkrankungen des Hundes erzielt.
Die Beratung, welche am Anfang der Planung einer
Reise mit Hunden oder Katzen stattfindet, richtet
sich nach der Feriendestination sowie der Reisezeit
und Reisedauer, und sollte auch die Einreisebestimmungen in EU-Länder und die Rückreiseformalitäten in die Schweiz berücksichtigen (Informationen
dazu unter www.bvet.admin.ch). Nebst den vorgeschriebenen Impfungen gibt es heute aus parasitologischer Sicht eine grosse Palette von empfehlenswerten reiseprophylaktischen Massnahmen für Hunde
(siehe Kapitel: «Reisemedizinische Empfehlungen für
Hunde» und Tab. 3).
P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461
Der organisierte Import zahlreicher Hunde aus Tierheimen des mediterranen Raumes und der Verkauf
dieser Tiere, teilweise ohne genügende Angaben über
ihre Herkunft und den Krankheits- bzw. Gesundheitszustand, stellt ein Problem dar (Zahner und
Bauer, 2004). Einen Einblick in diese Thematik liefert
eine nicht randomisierte Untersuchung, in welcher in
447
Schweiz.Arch.Tierheilk.
©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern DOI 12.1024/0036-7281.148.09.447
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
verschiedener Erreger ist leider weltweit noch immer
lückenhaft dokumentiert (Tab. 1). Daten aus Europa
lassen jedoch in einigen Fällen die Erstellung von grobenVerbreitungskarten zu (Abb. 1: Leishmaniose;Abb.
2: Echinococcose, E. granulosus).
einem Diskussionsforum im Internet BesitzerInnen
von Hunden im deutschsprachigen Raum (D,A, CH)
zur Vorgeschichte ihres Tieres befragt wurden. Von
111 Hunden, die im Leishmania-Test seropositiv
waren, handelte es sich bei deren 103 um Importhunde und nur bei 8 um reisebegleitende Hunde. Die
Mehrzahl der seropositiven Hunde stammte aus Spanien (67%), die übrigen aus Italien, Frankreich und
Griechenland.Von 95 seropositiven Hunden stammten 47% aus deutschen Tierheimen, 21% aus Tierhei-
Erregerbiologie und Gefahr der Verbreitung
eingeschleppter Parasitosen
Eine zentrale Rolle bei der Übertragung vieler reisemedizinisch wichtiger Parasiten spielen Vektoren, vor
allem Arthropoden. Daher ist die Biologie dieser Parasiten an die Lebensweise ihrer Überträger gebunden. Eine mögliche Ausbreitung von vektorübertragenen Parasitosen in Zentraleuropa ist nicht nur vom
grundsätzlichen Vorkommen der Vektoren abhängig,
sondern auch von klimatischen Bedingungen. Dazu
gehören die durchschnittliche, mittlere Tagestemperatur in einem Gebiet, welche die Entwicklung von
Vektor und Parasit ermöglicht sowie die Luftfeuchtigkeit (Genchi et al., 2005).
Für einige parasitäre Reiseerkrankungen haben sich
die epidemiologischen Grundlagen in Zentraleuropa
stark gewandelt.Vektorübertragene Parasiten wie Dirofilarien (Genchi et al., 1998), Leishmanien (Capelli
et al., 2004) oder Thelazien (Otranto et al., 2003)
haben sich zum Beispiel in Italien Richtung Norden
ausgebreitet und erreichen zum Teil bereits die Südschweiz. Inwieweit sich diese Parasiten auch nördlich
der Alpen festsetzen können, ist noch offen. Ein grösseres Etablierungspotenzial haben sicherlich Bandwürmer wie Echinococcus granulosus und Taenia-Arten
sowie Angiostrongylus vasorum. Letzterer wird bereits
autochthon in verschiedenen Gebieten der Schweiz
übertragen (Basel, Südtessin, unteres Rhonetal). Daher
sollten Hunde, die aus Südeuropa nach Zentraleuropa
einreisen oder importiert werden, unbedingt vorgängig auf verschiedene Parasiten – einschliesslich Zecken
– untersucht und gegebenenfalls behandelt werden.
Bevorzugt sollte man Hunde bereits im Herkunftsland
mit hochwirksamen Antiparasitika behandeln. Entsprechende Vorschriften gelten bereits für Anthelminthika-Behandlungen bei Einfuhr nach Grossbritannien, Schweden und Finnland. Derartige Massnahmen
sind zur Vermeidung des Einschleppens von zum Teil
zoonotisch bedeutsamen Bandwürmern wie E. granulosus und T. multiceps, aber auch bei T. hydatigena und
T. ovis wegen ihrer fleischhygienischen und leistungsvermindernden Aspekten von Bedeutung.
Abbildung 1: Nördliche Endemiegrenze der caninen Leishmaniose
(L. infantum) (––: dokumentierte Fälle [Trotz-Williams und Trees,
2003;Velo et al., 2003;Amusategui et al., 2004; Papadopoulou et
al., 2005; Zivicnjak et al., 2005] und persönliche Mitteilungen
[Mazedonien: M. Schnyder; Bulgarien: B. Gottstein]); ·······:
vermutete Grenze.
men in Südeuropa, 14% wurden im Ausland zugekauft, 14% privat aus zweiter Hand und nur 4% von
ausländischen Züchtern erworben. Interessant war die
Tatsache, dass 28% dieser Hunde beim Erwerb ab
Tierheim bereits an Leishmaniose erkrankt waren
(Mettler et al., 2005a). Die geographische Verbreitung
Babesiose
Abbildung 2:Approximative Verbreitung von E. granulosus in
Europa (ausgefüllt Felder entsprechen einem endemischen, Punkte
einem sporadisch/punktuellen Vorkommen, modifiziert nach Romig
et al. [2006]).
P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461
Gemäss heutigem Wissensstand treten in Europa
zwei Unterarten von Babesia canis auf: B. canis canis
und B. c. vogeli, wobei ersterer als pathogener gilt
448
Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
Tabelle 1: Importierte Parasitosen des Hundes:Verbreitung und Klinik.
Erkrankung (Erreger)
Babesiose
(Babesia canis ssp.,
selten B. gibsoni)
Endemiegebiete
(Europa, Nordafrika)
CH:Westschweiz, vereinzelt im
Mittelland
Vermehrt auch in Zentraleuropa
(Deutschland, Österreich,
Frankreich) und weit verbreitet
im ganzen Mittelmeerraum; in
osteuropäischen Staaten
Klinik
Perakute oder akute Infektion: Ab 7.–21.Tag p.i.
Fieber, Mattigkeit,Appetitlosigkeit,Anämie, Ikterus,
Haemoglobulinurie: «Notfall»
Chronische Infektion: Geschwächte, abgemagerte
Tiere mit intermittierendem Fieber,Apathie und
Anämie während Monaten
Leishmaniose
(Leishmania infantum,
selten andere Arten)
Im Mittelmeerraum bis zum 46.
Grad (Höhe Bordeaux,Val
d’Aosta und Arco; nördliche
Grenze siehe Abb. 1) und
Küstengebiete Nordafrikas
Inkubationszeit: Monate bis Jahre
Symptomatik beginnend mit Lymphadenopathie,
Fieber, reduzierter Belastbarkeit und Mattigkeit
Chronische Infektion: Gewichtsverlust, schuppigen nicht juckenden Hautveränderungen (Ohrränder, Nasenspiegel und Augen), Krallenhypertrophie,
Keratokonjunktivitis, Niereninsuffizienz
Trypanosomose
(Trypanosoma brucei,
T. congolense,T. evansi)
Tropisches und subtropisches
Afrika
Fieber,Anämie, Leukopenie,Thromzytopenie,
Korneatrübung, Meningoencephalitis; oft akute
letale Verläufe
Hepatozoonose
(Hepatozoon canis)
Mittelmeerraum (Portugal,
Italien, Frankreich Griechenland,
gehäuft in Nordafrika)
Akute Infektion: Fieber, Lymphadenopathie,
Anorexie, gefolgt von Myositis
Chronische Infektion: Intermittierendes Fieber,
Lymphadenopathie,Anämie, Durchfall, Erbrechen,
Hyperästhesie, Muskelschmerzen und muskuläre
Nacken- und Rumpfversteifung
Dirofilariose
(Dirofilaria immitis)
CH: Einzelfälle im Tessin!
Im ganzen Mittelmeerraum mit
Hochendemiegebieten in
Norditalien und Toskana (Poebene!). In Frankreich bis
nördlich von Paris
Schwacher Befall asymptomatisch
Erste Manifestation 5–7 Monate p.i. beginnend,
mit Leistungsabfall,Anstrengungsdyspnoe, Husten
Chronische Erkrankung mit progredientem
Verlauf: Gewichts- und Konditionsverlust, chronischer Husten,Tachykardie. «Cavasyndrom»,Tachypnoe, Haemoglobinurie, erhöhter Blutharnstoff u.a.
Hautfilariose
(Dirofilaria repens)
Mit verschiedener Prävalenz
ähnlich wie bei D. immitis
Meistens asymptomatisch, selten knotige Hautverdickungen
Angiostrongylose
(Angiostrongylus vasorum)
CH: Nordwestschweiz, Südtessin
und unteres Rhonetal
Sporadisch in Mitteleuropa,
Italien, Südwestfrankreich, Irland,
Südwestengland, Dänemark
Sehr variabel; meistens Husten, respiratorische und
cardiovaskuläre Symptome,Verbrauchs-koagulopathie (Hämatome,Anämie), selten zentralnervöse
Störungen
Thelaziose
(Thelazia callipaeda)
CH:Tessin
Italien (Frankreich)
Epiphora, Konjunktivitis, Keratitis
Echinococcose
(Echinococcus granulosus,
«Schafstamm»)
Grossbritannien, Süditalien,
Sardinien, Iberische Halbinsel,
Balkan,Türkei, Zypern, Nordafrika (siehe Abb. 2)
Asymptomatisch, Präpatenz ca. 45 Tage, Lebensdauer
intestinaler Stadien ca. 1 Jahr
Taeniose
(Taenia multiceps,T. ovis)
Wie bei E. granulosus
Asymptomatisch, Präpatenz 5–6 Wochen
Lebensdauer intestinaler Stadien: mehrere Jahre
P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461
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Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
Italien wurde kürzlich die Ausbreitung der Leishmaniose Richtung Norden dokumentiert. Im Jahre 1983
galt der Norden Italiens (ausser Ligurien) als frei von
Leishmaniose. Im Verlaufe der 90er–Jahre etablierten
sich stabile Leishmaniose-Herde in der Emilia Romagna, der Toskana, Umbrien, Marken und den
Abruzzen, mit zwei zusätzlichen Herden in Venetien
und Piemont. Durch die Überwachung mittels
«LeishMap» konnten im Jahre 2003 neue Herde in der
Lombardei (Brescia) sowie im Südtirol (Arco) aufgefunden werden. Zusätzlich hatten sich bereits bekannte Herde ausgeweitet (Aostatal, Piemont, Venetien und Emilia Romgana) (Capelli et al., 2004). Die
Überträgermücke Phlebotomus pernicosus liess sich in
fast allen Regionen ebenfalls nachweisen. Der Vektor
kommt auch in weiten Gebieten Europas nördlich der
Endemiegrenze der Leishmaniose (Abb. 1) vor, wenn
auch in geringen Populationsdichten. So wurde Phlebotomus perniciosus in der Südschweiz (Knechtli und
Jenni, 1989), in Nordfrankreich (Lewis, 1982) und
kürzlich in Deutschland (Rheinland-Pfalz) (Naucke
und Schmitt, 2004) gefunden. P. mascittii, eine ebenfalls am Menschen und Hund blutsaugende Art,
wurde in Süddeutschland im Raum Baden-Württemberg nachgewiesen (Naucke und Pesson, 2000).
Allerdings ist die Vektorkompetenz dieser Art noch
nicht belegt. Die Leishmaniose kann beim Hund auch
nicht-vektoriell übertragen werden. Beschrieben
wurden diaplazentare Übertragung auf Welpen (Moritz und Steuber, 1999; Masucci et al., 2003) sowie die
experimentelle Infektion von Hunden durch Bluttransfusion (Owens et al., 2001). Beides dürfte jedoch
von sehr geringer epidemiologischer Bedeutung sein.
Auch eine direkte, mechanische Übertragung von
Hund zu Hund (durch Bisse) wurde diskutiert. Sie
wird insbesondere bei Hunden in den USA, welche
für die Fuchsjagd eingesetzt werden, vermutet (Duprey et al., 2006). Seit den 70er-Jahren gibt es in der
Schweiz und Deutschland Berichte über vermutlich
autochthone Leishmaniose-Fälle nicht nur beim
Hund, sondern auch beim Pferd und beim Menschen
(Mettler et al., 2005a).
Abbildung 3: Babesia canis in Erythrozyt im Blutausstrich, GiemsaFärbung.
(Hauschild und Schein, 1996) (Abb. 3). Kleine Piroplasmen werden als B. gibsoni klassifiziert, aber es fehlt
noch eine genaue molekulargenetische Absicherung
der entsprechenden europäischen Isolate (Zahler et
al., 2000). Die canine Babesiose war früher eine typische Reiseerkrankung im Zusammenhang mit einem
Aufenthalt im Mittelmeerraum, sie tritt jedoch zunehmend autochthon auch in der Schweiz, Deutschland und Österreich auf (Sager et al., 2005).Tierärzte
aus der Praxis berichten, dass die Anzahl von Babesiose-Fällen zum Beispiel in der Umgebung des Genfersees stark zugenommen hat. In letzter Zeit wurden
auch Fälle in den Kantonen Solothurn (Sager et al.,
2005) und Aargau sowie dem Bodenseegebiet und
Rheintal gefunden, welche nicht auf Reisetätigkeit
zurückgeführt werden konnten.
Die wichtigsten Überträgerzecken – Dermacentor reticulatus in der Westschweiz und Rhipicephalus sanguineus
im Tessin – sind weit verbreitet. Da die Babesien auch
leicht mittels Bluttransfusionen übertragen werden
können, ist bei Blutspendern, die aus den besagten
Regionen stammen, eine vorgängige serologische
Untersuchung zu empfehlen.Andere Infektionsmöglichkeiten, wie pränatale diaplazentare Transmission
(insbesondere bei B. gibsoni), sind ebenfalls möglich
und müssen epidemiologisch mitberücksichtigt werden. Die Babesiose des Hundes ist eine der ganz wenigen Parasitosen, bei denen im Handel erhältliche
Vakzinen zur Verfügung stehen.Verbunden mit einer
Vektorbekämpfung sollte damit die klinisch manifeste
Babesiose heutzutage gut zu kontrollieren bzw. zu
verhindern sein.
Durch den andauernden Import zahlreicher
Leishmania-infizierter Hunde, die auch nach klinisch erfolgreicher Chemotherapie Parasitenträger
bleiben, wird unter anderem in der Schweiz ein Risiko aufgebaut, indem bei geeigneten Sommertemperaturen lokale Schmetterlingsmücken Leishmanien auf andere Hunde oder sogar auf den
Menschen übertragen könnten. Der bereits erhobene Vorwurf, dass die Tierärzteschaft an der Ausbreitung der Leishmaniose in endemiefreie Gebiete
beiträgt, muss ernst genommen werden. Abklärungen über das Vorkommen von Leishmania-übertragenden Phlebotomen in unseren Breitengraden
sind dringend notwendig. Werden solche Gebiete
Leishmaniose
Die Verbreitung der Leishmaniose (Abb. 1) ist eng mit
dem Vorkommen ihrer Überträgermücken, den
Schmetterlingsmücken (Phlebotomen), verknüpft. In
P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461
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Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
Dirofilariose
bekannt, so gilt es, eine Übertragung der Erreger –
ausgehend von infizierten Hunden – z.B. durch das
Anlegen eines Deltamethrin-Halsbandes (Maroli et
al., 2001) während der Mückensaison zu verringern. Ebenso weist Permethrin in verschiedenen
Applikationen und Dosierungen eine hohe Repellent- sowie eine insektizide Wirkung auf (Molina et
al., 2001).Auch wenn diese Massnahme für Leishmania-infizierte Hunde wissenschaftlich noch nicht
erhärtet ist, könnte sie die Tierärzteschaft von den
oben aufgeführten Vorwürfen entlasten, bis fundiertere epidemiologische Daten vorliegen.
Die mittleren Temperaturen in den Sommermonaten
reichen in verschiedenen Teilen des Tessins aus, um
eine autochthone Übertragung von Dirofilarien
durch Stechmücken zu ermöglichen (Genchi et al.,
1998; Genchi et al., 2005). Tatsächlich konnten im
Tessin vereinzelt sowohl Dirofilaria immitis als auch D.
repens bei Hunden nachgewiesen werden. Bei einigen
dieser Fälle wurden auch autochthon erfolgte Übertragungen vermutet (Bucklar et al., 1998; Petruschke
et al., 2001). Interessanterweise liess sich jedoch in den
letzten Jahren keine Häufung von autochthonen Fällen im Tessin oder dem angrenzenden Norditalien dokumentieren (C. Genchi und F. Naegeli, persönliche
Hepatozoonose
Über die gegenwärtige Epidemiologie von Hepatozoon canis in Europa ist nur wenig bekannt. Hunde
infizieren sich durch die perorale Aufnahme von
Schildzecken (hauptsächlich R. sanguineus, eventuell
auch Ixodes hexagonus). Bei Hunden mit chronischen, oft subklinischen Infektionen persistieren die
Gamonten über Monate bis Jahre in Blut-Leukozyten und stellen somit eine Infektionsquelle für die
Zecken dar (Abb. 4). R. sanguineus kommt autochthon im Tessin vor und wird immer wieder fokal
auch nördlich der Alpen nachgewiesen. Die Igelzecke I. hexagonus hingegen ist in Zentraleuropa,
besonders in Siedlungsräumen, weit verbreitet. Die
limitierenden epidemiologischen Faktoren, wie
durchschnittliche Tagestemperaturen, sind für
H. canis leider nicht bekannt. Einige anekdotische
Informationen aus der Praxis lassen jedoch vermuten, dass es nördlich der Alpen, wenn auch selten, zu
einer Parasitenübertragung kommen kann.
Abbildung 5: Mikrofilarie von Dirofilaria spp. im Blutausstrich,
Giemsa-Färbung.
Mitteilung). Auch wenn erst kürzlich der erste autochthone Fall mit einer D. repens-Infektion in
Deutschland beschrieben wurde (Hermosilla et al.,
2006), gibt es bisher keine Anzeichen einer Ausbreitung der Dirofilariose nördlich der Alpen. In Nordamerika hingegen fand eine langsame Ausbreitung
von D. immitis vom Süden der USA bis nach Kanada
statt, wobei vermutet wird, dass sich sowohl Parasit als
auch Vektor an die kühleren Temperaturen langsam
adaptiert haben (Eckert, 2000). Aus epidemiologischen Überlegungen empfehlen wir, Hunde mit Dirofilarien-Befall auch gegen Mikrofilarien zu therapieren (Tab. 5,Abb. 5).
Angiostrongylose
Abbildung 4: Gamont von Hepatozoon canis in einem Granulozyt
im Blutausstrich, Giemsa-Färbung.
P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461
Angiostrongylus vasorum weist einen heteroxenen Zyklus zwischen Fuchs und Hund als Endwirte und
Wegschnecken verschiedener Gattungen als Zwischenwirte auf. Mehrere endemische Gebiete sind in
Italien, Südwestfrankreich, Irland, Südwestengland
und Dänemark bekannt mit Prävalenzen bis zu 39 %
451
Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern
Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
bei Füchsen (Deplazes, 2006). Sporadische autochthone Fälle wurden in diversen europäischen Ländern
unter anderem in der Schweiz bereits früher beschrieben (Eckert und Lämmler, 1972), und vereinzelt werden infizierte Hunde in die Schweiz importiert (Ribière et al., 2001). Erst kürzlich scheint jedoch eine
Häufung von Fällen in der Nordschweiz und dem angrenzenden Süddeutschland, im Tessin und im unteren Rhonetal aufzutreten (Staebler et al., 2005).
Zudem konnte A. vasorum bei zwei Füchsen in der
Region Basel nachgewiesen werden, was das autochthoneVorkommen in der Wildtierpopulation bestätigt
(Gottstein, 2001). Ob diese Infektionen von importierten Fällen ausgingen oder ob der Parasit schon
endemisch vorkam und in der stark gewachsenen
Fuchspopulation bessere Voraussetzungen für eine
Ausbreitung fand, ist nicht bekannt. Ein anschauliches
Beispiel für die Ausbreitungsmöglichkeit des Parasiten
liefert Dänemark:Vermutlich von infizierten Hunden
ausgehend, welche wahrscheinlich aus Frankreich in
die Region Kopenhagen importiert wurden, verbreitete sich A. vasorum über weite Teile von Dänemark
innerhalb von weniger als 20 Jahren. Bedingt durch
die hohe Fuchsdichte in Mitteleuropa ist davon auszugehen, dass sich der Erreger in naher Zukunft stärker ausbreiten könnte, womit auch mehr Fälle beim
Hund zu erwarten wären.
wiesen (Deplazes, 2006). Einige T. callipaeda-Fälle
wurden auch in Zürich in der Abteilung für Ophthalmologie diagnostiziert (Spiess, persönliche Mitteilung), und erst kürzlich berichteten Hermosilla et al.
(2004) über den ersten, wahrscheinlich aus Italien importierten Fall in Deutschland. In einer laufenden
Doktorarbeit konnte das autochthone Vorkommen
von T. callipaeda bei Hunden und Füchsen in verschiedenen Regionen des Tessins dokumentiert werden (Malacrida et al., 2006). Dabei handelt es sich
wahrscheinlich um eine Expansion des norditalienischen Endemiegebietes. Inwieweit sich dieser Parasit
auch nördlich der Alpen ausbreiten könnte, ist noch
nicht bekannt, da erst kürzlich die Fruchtfliege (Phortica variegata) als Zwischenwirt in Süditalien identifiziert wurde (D. Otranto, persönliche Mitteilung).
Hingegen erwies sich die normale Stubenfliege
(Musca domestica) als nicht empfänglich (Otranto et al.,
2005). Für eine weiterführende Risikoabschätzung
fehlen aber noch viele biologische Grundlagen zu
diesem Parasiten.
Bandwürmer (E. granulosus, T. ovis, T. multiceps u.a.)
Die Prävalenz der beim Hund vorkommenden grossen «Taenien» hat innerhalb der letzten beiden Jahrzehnten in der Schweiz stark abgenommen, wahrscheinlich bedingt durch den erhöhten Standard der
Fleischkontrolle und den Einsatz wirksamer Anthelminthika.Ausdruck dafür ist auch die sinkende Prävalenz des Cysticercenbefalles beim Schaf. Autochthon
kommt bei Schafen und selten bei Schweinen die
durch T. hydatigena verursachte Cysticercus tenuicollisCysticercose vor.Von noch grösserer fleischhygienischer Bedeutung ist die Taenia ovis-Cysticercose des
Schafes.Selten können ganze Herden massiv mit Muskelfinnen dieser Bandwurmart durchseucht sein.
Über die Epidemiologie von T. ovis in Europa ist sehr
wenig bekannt. Denkbar ist, dass die sporadischen
Epidemien in Einzelherden durch importierte Hütehunde erfolgten. Noch seltener konnte bisher der Erreger der so genannten «Drehkrankheit» des Schafes,
der Coenurose, diagnostiziert werden. Nach jahrzehntelangem Fehlen dieser Erkrankung tauchte die
Coenurose in einem bündnerischen Milchschafbestand bei mehreren Auen im Mai 2003 auf (Schweizer et al., 2006). Die Diagnose wurde durch den morphologischen Nachweis der eigrossen CoenurusZysten im Hirn mehrerer Schafe bestätigt. Aus der
Anamnese ging hervor, dass der innovative Bauer anfangs März 2003 zwei Hunde der Rasse «Pastore
Abruzzese» aus Italien (Abruzzen) importiert und
zum Schutz vor Wölfen zusammen mit der Herde
gehalten hatte. Bei beiden Tieren erfolgte noch in
Italien eine dokumentierte zweimalige Entwurmung
Thelaziose
Der Augenwurm Thelazia callipaeda (Abb. 6), ein Nematode, befällt in der Regel Hunde, gelegentlich aber
auch andere Caniden, Katzen, Kaninchen und selten
auch den Menschen. Dieser Parasit ist vor allem im
Fernen Osten verbreitet (Russland, China, Japan, Indien u.a.). Er wurde aber kürzlich mit hoher Prävalenz bei Hunden in Süditalien (bis zu 42%) und
Norditalien (23%) sowie bei Füchsen (5%) nachge-
Abbildung 6:Adulte Thelazia callipaeda im Auge eines Hundes
(Copyright F. Malacrida).
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Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
Tabelle 2: Importierte Parasitosen des Hundes: Übertragung, zoonotische Bedeutung und Etablierungspotenzial.
Erreger
Übertragung und zoonotische
Bedeutung
Blutmahlzeit der Zecken, vorwiegend
- Dermacentor reticulatus (B. canis canis)
- Rhipicephalus sanguineus (B. canis vogeli)
Keine Zoonose
Etablierungspotenzial für die
Schweiz
Hoch; ist ans Zeckenvorkommen gebunden:
R. sanguineus ist im Tessin etabliert und kommt
vereinzelt nördlich der Alpen vor, kann in
Räumen und im Auto über Monate überleben. D. reticulatus: besonders in der Westschweiz (Genf) weit verbreitet
Leishmania infantum
Blutmahlzeit der Schmetterlingsmücken
(Phlebotomus-Arten)
Zoonose im Endemiegebiet, besonders bei
Immungeschwächten; direkte Übertragung
vom Hund wenig wahrscheinlich, iatrogene
Übertragung möglich
Gering: zeitlich limitiert, fokal beim Auftreten
von Schmetterlingsmücken möglich
Hepatozoon canis
Verzehr von infizierten Zecken: Rhipicephalus Ist ans Zeckenvorkommen gebunden, im
sanguineus (Ixodes hexagonus)
Tessin hoch
Keine Zoonose
Dirofilaria immitis
Vektorielle Übertragung bei Blutmahlzeit
durch Stechmücken (Culex,Aedes,Anopheles)
Zoonose: meistens rel. harmlose, kleine
Herde in der Lunge
Dirofilaria repens
Vektorielle Übertragung wie bei D. immitis
Hoch im Tessin, nördlich der Alpen gering
Zoonose: Augenfilariose, subkutane Knoten
(meistens rel. harmlos)
B. canis canis ssp,
B. gibsoni
Angiostrongylus vasorum Bei Verzehr von infizierten Schnecken (Arion
rufus, u.a.)
Keine Zoonose
Hoch im Tessin, nördlich der Alpen gering
Hoch: Zwischenwirt und Füchse als Endwirte
ubiquitär vorhanden. Im Südtessin, Region
Basel und unterem Rhonetal bereits etabliert
Thelazia callipaeda
Genauer Vektor in Europa unbekannt, wahrscheinlich Diptera
Zoonose: Einzelfälle in Asien beschrieben
Hoch: im Tessin bereits autochthon
nördlich der Alpen noch unbekannt
Echinococcus
granulosus,
«Schafstamm»
Endwirte (EW):Verzehr von finnenhaltigen
Innereien von Schafen
Zwischenwirte (ZW): p.o.Aufnahme von
Eiern aus dem Kot der EW
Zoonose: Zystische Echinococcose
Hoch: besonders für die Schafpopulation
Taenia multiceps
EW:Verzehr von finnenhaltigem Nervengewebe (Schafhirn)
ZW: p.o.Aufnahme von Eiern aus dem Kot
der EW
Zoonose: Einzelfälle von T. multiceps
(Coenurose) beim Menschen beschrieben
(sehr selten)
Mittelgradig: besonders für die
Schafpopulation
Taenia ovis
EW:Verzehr von finnenhaltiger Muskulatur
ZW: p.o.Aufnahme von Eiern aus dem Kot
der EW
Keine Zoonose
Hoch: besonders für die Schafpopulation
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Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
Bedeutung der zoonotischen Übertragung
mit einem Febantelhaltigen Präparat, was den Bauern
bewog, die Hunde nicht sofort nochmals zu entwurmen. Bei der Abklärung dieses Falles gelang der Nachweis von Taeniiden-Eiern in Kotproben aus der Umgebung. Nach der diagnostischen Entwurmung der
Hunde schied ein einjähriger Rüde unter anderem
die Bandwürmer T. multiceps und einige hundert
gravide E. granulosus aus.
Einen Überblick über das zoonotische Potenzial der
aufgeführten Erreger liefert Tabelle 2. Eine besondere
Bedeutung kommt sicherlich E. granulosus zu, bedingt
durch den meist engen Kontakt zwischen Hund und
Mensch sowie der gleichzeitigen Ausscheidung von
infektiösen Eiern im Kot der Hunde, welche auch
häufig im Fell der Tiere haften bleiben. Leishmania infantum und Dirofilaria immitis hingegen haben eine
diesbezüglich etwas geringere Bedeutung, da zusätzlich eine Klima-abhängige Entwicklung in den Vektoren notwendig ist. Zudem ist der Mensch wenig
empfänglich für diese im Mittelmeerraum vorherrschenden Parasitenarten.
Der beim Rind noch vor 20 Jahren regelmässig
vorkommende E. granulosus-Befall, verursacht durch
den so genannten «Rinderstamm» von E. granulosus
(neulich E. ortleppi genannt), kommt in der Schweiz
autochthon faktisch nicht mehr vor. Zudem gilt auch
die schweizerische Schafpopulation als frei vom so genannten «Schafstamm» von E. granulosus. Da die epidemiologischen und biologischen Voraussetzungen
für die Verbreitung des «Schafstammes» auch nördlich
der Alpen durchaus noch gegeben sind und dieser
Stamm ein besonders grosses zoonotisches Potenzial
aufweist (Eckert und Deplazes, 2004), sollte eine Einschleppung dieser Parasitose aus dem Mittelmeerraum durch eine konsequente anthelminthische
Behandlung importierter Hunde unbedingt unterbunden werden. Bewiesenes oder vermutetes Einschleppen von E. granulosus durch importierte, infizierte Hunde wurde wiederholt nachgewiesen. Bei
der Untersuchung von Findelhunden zum Beispiel
im Tessin zeigte ein Hütehund massiven Befall mit E.
granulosus («Schafstamm») sowie mit D. immitis. Mit
grösster Wahrscheinlichkeit stammte dieser Hund aus
Italien (Deplazes et al., 1995). Ein gut dokumentierter anderer Fall von einem kleinen E. granulosus-Ausbruch bei Schafen basierte auf dem Zukauf des mit E.
granulosus befallenen «Pastore Abruzzese» aus Italien
mit gleichzeitigem T. multiceps-Befall (Schweizer et
al., 2006). Bei der Untersuchung der an Coenurose
verendeten Schafe fielen wenige Millimeter grosse
Läsionen in der Leber auf, die molekular als kleine E.
granulosus-Zysten des «Schafstammes» identifiziert
wurden.
E. granulosus, jedoch besonders die oben erwähnten
Taenia-Arten des Hundes (T. hydatigena,T. ovis und T.
multiceps) haben ein sehr grosses Reproduktionspotenzial. So scheiden zum Beispiel Hunde mit T. hydatigena-Befall über 5 Jahre lang sehr regelmässig tausende von Proglottiden aus (Deplazes und Eckert,
1988). Daher können Einzelhunde über sehr lange
Zeit riesige Flächen kontaminieren und so den Zyklus dieser Parasiten aufrechterhalten. Wiederholte
Einzelbeobachtungen sprechen dafür, dass immer
wieder mit Taenien oder Echinococcen infizierte
Hunde in die Schweiz importiert werden, welche so
eine Wiederansiedlung oder Neuausbreitung dieser
Cestoden nördlich der Alpen ermöglichen.
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Reisemedizinische Empfehlungen für Hunde
(modifiziert nach [Deplazes, 1998])
Prophylaxe bei Hunden mit Aufenthalt im Mittelmeerraum, Tropen und Subtropen
In der Tabelle 3 sind die wichtigsten pro- und metaphylaktischen Möglichkeiten zusammengefasst.
• Babesiose: Die seit vielen Jahren bekannte und gut
verträgliche Pirodog®-Impfung schützt vor schweren klinischen Erkrankungen, jedoch nicht sicher
vor Infektionen. Die Impfung ist nicht gegen alle B.
canis-Stämme gleich wirksam, insbesondere auch
nicht gegen die seltener vorkommende B. gibsoniArt. Ein im Januar 2006 eingeführter neuer Impfstoff (Nobivac® Piro, Intervet) verwendet lösliche
Antigene von sowohl B. canis canis als auch B. canis
rossi, so dass das Schutzspektrum nun verschiedene
Stämme oder Genotypen erfassen sollte. Unabhängige klinische und epidemiologische Erfahrungen
mit dieser Impfung stehen noch aus. Hunde, welche
mit der früheren Vakzine bereits geimpft worden
waren, müssen mit der neuen Vakzine von Grund
auf neu geimpft werden.
Chemoprophylaxe: Imidocarb-diproprionat: Imizol® und Carbesia® können gemäss Literatur zur
Chemoprohylaxe eingesetzt werden, praktisch findet dieser Ansatz jedoch kaum Verwendung. Die
Schutzwirkung beträgt 2–6 Wochen bei einer
Dosierung von 3–6 mg/kg Kgw. s.c. Tetrazykline
(Doxycyclin): Nach täglicher Gabe von 20 mg/kg
Kgw p.o. traten keine klinischen Symptome der Babesiose nach Infektion mit einem europäischen Isolat auf (Vercammen et al., 1996a), praktische Erfahrungen mit diesem Wirkstoff fehlen jedoch, so dass
dieser Ansatz noch nicht empfohlen werden kann.
• Leishmaniose: Ein mit Pyrethroiden (Deltamethrin) imprägniertes Halsband (Scalibor®) schützt
Hunde in Hochendemiegebieten während Mona-
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Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
ten vor Schmetterlingsmückenstichen (96% Reduktion), nicht immer jedoch vor Infektion (Maroli
et al., 2001; Nogueira et al., 2005). Permethrin in
unterschiedlichen Dosierungen und Applikationen
ist ein gutes Repellent und besitzt eine insektizide
Wirkung (Molina et al., 2001). Diese Möglichkeit
ist als Beitrag zur Expositionsprophylaxe empfehlenswert. Eine Impfung (Leishmune®; in der
Schweiz nicht registriert) wurde kürzlich in Südamerika entwickelt. Die präliminären Resultate
einer ersten klinischen Studie waren vielversprechend (Nogueira et al., 2005). Allerdings baucht es
noch weitere, unabhängige Studien, um die Wirksamkeit dieser Impfung zu bestätigen, insbesondere
auch im Hinblick auf europäische Leishmania-Arten.
• Dirofilariose: Die sehr einfach zu verabreichende,
risikolose und hochwirksame Dirofilaria-Prophylaxe
mit makrozyklischen Laktonen (ML), sollte während der Mückensaison durchgeführt werden (eine
bestehende Dirofilaria-Infektion bzw. Mikrofilarämie ist jedoch vorher auszuschliessen!). Einige ML
schützen in prophylaktischer Dosierung zusätzlich
gegen intestinale Nematoden, nicht jedoch gegen
Bandwürmer. Diese Lücke wird durch neue Kombinationspräparate gefüllt, welche Praziquantel enthalten (s.Tab. 3).
• Prophylaxe gegen Zeckenbefall: Applikation
von Akarizid-Spray, Puder oder Spot-on und Anlegen von Akarizid-Halsbändern.Nicht alle Halsbänder,
Tabelle 3: Prophylaxe bei Hunden für Reisen in den Mittelmeerraum.
Parasitose
Babesiose
Möglichkeiten der Prophylaxe (Auswahl an Medikamenten)
• Impfprophylaxe (Pirodog®, Nobivac® Piro). 2 Injektionen im Abstand von 3–6 Wochen,
Immunität 3–4 Wochen nach Grundimmunisierung. Impfschutz vor klinischer Erkrankung
ca. 6 Monate, danach Booster empfohlen 1),2)
• Chemoprophylaxe: Imidocarb-diproprionat (Imizol®*, Carbesia®*) 3–6 mg/kg Kgw. s.c.
Verabreicherung bei Reiseantritt. Schutzwirkung ca. 4 Wochen. 3)
Tetrazykline (Doxycyclin): tägliche Gabe von 20 mg/kg Kgw p.o. 4)
• Prophylaxe gegen Zecken (siehe unten)
Leishmaniose
• Repellentien gegen Insekten bzw. rasch wirkende Insektizide vermindern das Infektionsrisiko. Deltamethrin (Scalibor-Protectorband®) und Permethrin (Exspot®,Advantix®)
reduzieren Phlebotomen-Exposition und vermindern daher Leishmania-Übertragung 5),6).
• Meiden von Endemiegebieten (Risikoabschätzung bei Kurzaufenthalten!)
• Impfung (Leishmune®*):Wirkung für Europa noch nicht erprobt 7),8)
Hepatozoonose
• Spezifische Prophylaxe nicht vorhanden; Prophylaxe gegen Zeckenbefall (siehe unten)
Dirofilariose
• Chemoprophylaxe mit makrozyklischen Laktonen: Ivermectin (Heartgard®*), Milbemycinoxim (Milbemax®, Interceptor®, Sentinel Spectrum®, Program plus®), Selamectin (Stronghold®) und Moxidectin (Advocate®) 9)
Für alle gilt: Erste Applikation innerhalb von 30 Tagen nach Einreise in ein Endemiegebiet,
alle 30 Tage während Mückenexposition, letzte Applikation 30 Tage nach letzter Exposition
Echinococcose
Taeniose
• keine rohen Innereien (E. granulosus) resp. Nervengewebe (Schafhirn; T. multiceps) füttern
• alle 6 Wochen Praziquantel (z.B. Droncit®, Caniquantel®) verabreichen 9)
Zecken:
(auch Prophylaxe
gegen Babesiose
und Hepatozoonose)
Diverse Akarizid-Halsbänder (Auswahl) mit Wirkung auf Zecken (Dauer nach Firmenangaben):
• Bendiocarb: Parasitex®,Wirkung gegen Zecken ca. 5 Monate
• Amitraz: Preventic®,Wirkung gegen Zecken ca. 4 Monate
• Deltamethrin: Scalibor®,Wirkung gegen Zecken ca. 5–6 Monate
Spot-on mit:
• Permethrin: exspot®,Wirkung gegen Zecken ca. 3–4 Wochen
• Fipronil: Frontline®,Wirkung gegen Zecken ca. 1 Monat
Angiostrongylose
Schneckenverzehr unterbinden. Bisher keine bewiesene Prophylaxe bekannt.
Thelaziose
Noch keine bekannt.
1)
(Schetters et al., 2006), 2) (Eckert und Deplazes, 1996), 3) (Vercammen et al., 1996b), 4) (Vercammen et al., 1996a),
et al., 2001), 6) (Molina et al., 2001), 7) (Saraiva et al., 2006), 8) (Nogueira et al., 2005), 9) (Lit., Deplazes, 2006).
* In der Schweiz nicht zugelassen.
5) (Maroli
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Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
Tabelle 4: Labor-Diagnostik wichtiger parasitärer Importerkrankungen des Hundes.
Parasitose
Diagnostik in der
tierärztlichen Praxis
Weiterführende
Untersuchungen in
spezialisierten Labors
Diagnose der Unterart mit PCR1)
Untersuchungsmaterial
Babesiose
(Babesia canis ssp.,
B. gibsoni)
Während akuter Phase:
gefärbte Blutausstriche
(Unterscheidung zwischen Chronische Infektionen mit Serologie
grossen und kleinen
(IFAT)
Babesien)
1–2ml EDTA-Blut
Leishmaniose
(Leishmania infantum)
Nachweis amastigoter
Stadien in Lymphknotenoder KnochenmarksPunktat. Serologie mit
«Schnelltests» geeignet für
die Diagnose klinischer
Fälle
Parasitennachweis in in-vitro-Kulturen
aus Lymphknoten- oder Knochenmarkspunktaten (erlaubt biochemische
Charakterisierung)
PCR aus Lymph- und Knochenmarkspunktarten oder Hautbiopsien (Sensitivität aus Blut erniedrigt) 2),3)
Erregernachweis:
Lymphknoten- oder
Knochenmarkspunktat (Hautbiopsie)
in steriler physiologischer Lösung oder
Kulturmedium
Serologie mit verfeinertem Test (ELISA,
Westernblot) auch für die sensitive
Diagnose asymptomatischer
Infektionen 4),5)
Serologie:
1ml Serum oder
Plasma
1ml Serum oder
Plasma
Trypanosomose
(Trypanosoma brucei,
T. congolense,T. evansi)
Nachweis der trypomastigoten Stadien im Blutausstrich
Serologie mit Nachweis von Antikörpern oder Antigenen (in Europa kaum
angeboten) 6)
1–2ml EDTA-Blut
(1ml Serum oder
Plasma)
Hepatozoonose
(Hepatozoon canis,
H. americanus)
Chronische Infektion
(5 Wochen p.i.): Nachweis
der Gamonten in mononukleären Zellen im
Blutausstrich
Akute Infektionen: Meronten-Nachweis
in Lymphknoten-, Knochenmarks- oder
Muskelbiopsien
Lymphknoten-,
Knochenmarks- oder
Muskelbiopsie
Chronische Infektionen: siehe links;
Serologie selten etabliert, PCR für
Artdiagnose möglich 6)
4 ml EDTA-Blut
Dirofilariose
(Dirofilaria immitis,
D. repens)
Mikrofilariennachweis im Artdiagnose anhand der Morphologie
Blutausstrich oder im
mit der «sauren Phosphatasefärbung»
Difil-Test ab dem 7. Monat (aufwändig) oder PCR 7)
p.i.:Artdiagnose schwierig
Relativ spezifischer Antigennachweis im
Serum für Infektionen mit adulten
D. immitis (ab 5. Monat p.i.) 7)
Larvennachweis in
Angiostrongylose
(Angiostrongylus vasorum) Bronchialsekret oder mit
dem Trichterverfahren aus
frischen Kotproben
2–4 ml EDTA-Blut
1ml Serum oder
Plasma
Morphologische Diagnose aller Stadien
(Larven im Gewebe nach Verdauung,
isolierte Adulte) 8)
5–10g frischer Kot,
Bronchialsekret
Befallene Organe
Thelaziose
(Thelazia callipaeda)
Nematodennachweis im
Konjunktivalsack und
unter der Nickhaut
Morphologische Diagnose der adulten
Stadien oder PCR für alle Stadien
Aufgefundene
Nematoden
Echinococcose/Taeniose
(Echinococcus granulosus,
E. multilocularis,
Taenia hydatigena,
T. multiceps,T. ovis
und andere)
Taeniiden-Einachweis
mittels Flotationsmethode.
Gattungsspezifische
Diagnose anhand der
Morphologie ausgeschiedener Proglottiden
Gattungsspezifischer Nachweis von
Koproantigenen z.B. von
Echinococcus-Arten
PCR und Sequenzierung erlaubt eine
artspezifische und bei Echinococcus
granulosus eine stammesspezifische
Diagnose 9)
4g frischer oder bei
-20°C gefrorener,
unfixierter Kot
1)
(Sager et al., 2005), 2) (Mathis und Deplazes, 1995), 3) (Muller et al., 2003), 4) (Gottstein et al., 1988), 5) (Mettler et al., 2005b),
und Deplazes, 2006), 7) (Lit., Deplazes, 2006), 8) (Staebler et al., 2005), 9) (Mathis und Deplazes, 2006).
6) (Lit.,Tenter
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Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
die zur Flohbekämpfung eingesetzt werden (insektizid), haben eine ausreichende Wirksamkeit gegen
Zecken (akarizid)! Auch sind nicht alle Präparate
gleich wasserbeständig! Achtung, die meisten Präparate mit guter Wirksamkeit gegen Zecken sind für
Katzen nicht geeignet (s.Tab. 3).
Vorgehen bei importierten Hunden
Anamnestische Angaben:
• Aus welcher Region stammt der Hund (Nation;
Stadt oder Land)
• Handelt es sich um einen Findel-, Zucht- oder Arbeitshund
• Wurde das Tier einzeln durch den neuen Halter
oder durch eine Organisation importiert mit dem
Zweck, die Tiere weiter zu platzieren?
• Impfausweis kritisch beurteilen!
(zusätzliche Bestätigungen über Parasitenstatus sind
nicht immer zuverlässig!)
• Besteht zurzeit Zeckenbefall? Wenn ja, Zecken sofort entfernen und eventuell bestimmen lassen!
Wichtig ist die Aufklärung der neuen Tierhalter, weil
sich gewisse Infektionen, wie zum Beispiel die
Leishmaniose, erst nach Jahren manifestieren und die
Behandlungen langwierig und teuer sein können.
Tierärztliche Untersuchung nach Kurzaufenthalt in
Endemiegebieten
Für Kontrolluntersuchungen nach Kurzaufenthalt in
potenziellen Endemiegebieten sollten bei «gesunden»
Hunden folgende Punkte berücksichtigt werden:
Anamnestische Angaben:
• Zeitraum des Aufenthaltes, Berücksichtigung der
Mückensaison (Zecken können das ganze Jahr aktiv
sein!)
• Wurde eine Pro- oder Metaphylaxe durchgeführt?
• Aufenthaltsort in städtischen oder ländlichen Gegenden?
• Zeigte der Hund während des Aufenthaltes Krankheitssymptome?
• Wurde Zeckenbefall beobachtet?
• Besteht zurzeit Zeckenbefall? Wenn ja, Zecken sofort entfernen und eventuell bestimmen lassen!
• Wurde rohes Fleisch oder Schlachtabfälle verfüttert?
Liegt bei Hunden nach Auslandaufenthalt und ohne
Prophylaxe einVerdacht auf Dirofilaria-Exposition vor,
empfiehlt sich eine zweimalige Behandlung mit
einem ML in der prophylaktischen Dosierung (Tab.5).
Wenn nach der klinischen Untersuchung (Hämatologie/Blutchemie) keine Anhaltspunkte für das Vorliegen einer Parasitose gefunden werden, erübrigen sich
sofortige Massnahmen.
Wichtig: Die Inkubationszeit der verschiedenen
Parasitosen schwankt zwischen einigen Tagen und
Jahren (s. Tab. 1). Für den Ausschluss einer Dirofilariose oder Leishmaniose muss daher eine Zweituntersuchung nach ca. 6–8 Monaten (vorausgesetzt, dass
vorher keine Krankheitserscheinungen auftreten) vereinbart werden (konkretes zur Diagnostik siehe Tab.4).
P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461
Parasitologische Untersuchungen
(Diagnostik und Material siehe Tab. 4):
• Parasitologische Kotuntersuchung (inklusive Baermann-Trichter); eventuell sofort auch gegen Bandwürmer wirksame anthelminthische Behandlung
anordnen (Achtung:Bei möglicher Infektion mit E.
granulosus muss der Kot bis 3 Tage nach Behandlung
von den Besitzern fachgerecht eingesammelt und
entsorgt werden).
• Blutuntersuchung: Blutausstriche auf Babesien, Hepatozoon, Mikrofilarien und Trypanosomen untersuchen.
• Serologie auf Leishmaniose und Babesiose; Antigennachweis im Serum/Plasma auf Dirofilariose.
Grund dafür ist, dass bei allen drei Parasitosen auch
asymptomatische Infektionen vorliegen können.
Behandlung parasitärer Reiseerkrankungen des
Hundes
Siehe Tabelle 5.
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Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
Tabelle 5: Behandlung parasitärer Reiseerkrankungen des Hundes.
Parasitose
Babesiose
Auswahl von Chemotherapeutika
• Imidocarb-diproprionat: Imizol®*, Carbesia®*. 1x 3–6mg/kg Kgw. s.c. ev. nach 14 Tagen
wiederholen
• Phenamidin: Oxopirvedine®* 15mg/kg Kgw. s.c. Wiederholung nach 48h bei persistierender Symptomatik
Leishmaniose
• Erste Wahl: Allopurinol:Allopur®*, Mephanol®*, Zyloric®* (u.a.) in einer Dosierung von
1x täglich 20mg/Kg Kgw. für Monate bis Jahre
• Zweite Wahl: N-Methylglucaminantimonat: Glucantime®*
1. und 2.Tag: 100mg/kg Kgw. s.c. oder langsam i.v.
3. bis 10.Tag: 200–300mg/kg Kgw. s.c. oder langsam i.v.
11.bis 25.Tag: Therapiefreies Intervall von 14 Tagen
26.bis 33.Tag: Wiederholung der Therapie wie an Tagen 3–10.
• Dritte Wahl: Stibogluconat-Natrium: Pentostam®* 10–20mg/kg Kgw. 1x täglich während
10 Tagen streng i.v. Behandlung in Intervallen von 10 Tagen einmal bis mehrfach wiederholen 1)
Mit allen erwähnten Präparaten gelingt eine Elimination der Infektion i.d.R. nicht,
die Hunde bleiben daher Infektionsquellen für Schmetterlingsmücken, früher oder
später treten i.d.R. Rezidive auf.
Dirofilariose
Gegen adulte und 5. Stadien: Melarsamin: Immiticide®*, tief i. m..
(1) Subklinische Form: 2.2mg/kg Kgw. 2x im Abstand von 3h;
(2) Milde Form: 2.5mg/kg Kgw. 2x im Abstand von 24 h, zusätzlich Aspirin für 2 Wochen
(3) Schwere Form: Symptomatische Vorbehandlung, dann 2.5mg/kg Kgw. unterstützt von
symptomatischer Therapie, ca. 2 Monate später wie bei (2) vorgehen 2)
Gegen Mikrofilarien: Makrozyklische Laktone: z.B. Stronghold®, Milbemax® und andere 2)
Angiostrongylose
• Fenbendazol (Panacur®) 50mg/kg Kgw über 5 Tage oder 20mg/kg Kgw 2 x täglich für
2–3 Wochen
• Mebendazol (Telmin KH®) 50–100mg/kg Kgw 2x täglich über 5–10 Tage
• Milbemycin (Interceptor®*, Milbemax®) 0.5mg/kg Kgw 1x wöchentlich über 4 Wochen 3)
Thelaziose
• Moxidectin 1% (Cydectin®*), 1–2 Tropfen in’s Auge 4)
• Moxidectin 2.5% pour-on (Advocate®*) 5)
Die einmalige Chemotherapie ist der mechanischen Entfernung der Adulten vorzuziehen.
Echinococcose,
Taeniose
• Praziquantel: z.B. Droncit®, Caniquantel®, 5mg/kg Kgw. (bei nachgewiesener E. granulosus
Infektion aus Sicherheitsgründen nach 2–4 Tagen wiederholen).Achtung Infektionsgefahr
씮 bis 3 Tage nach Therapie ausgeschiedenen Kot entsorgen! 2)
Hepatozoonose
Akute Infektion:Trimethoprim/Sulfonamid (Borgal®) täglich über 6 Tage
Chronische Infektion: Imidocarb-diproprionat: Carbesia®* 6mg/kg Kgw. s.c. 2x im Abstand
von 14 Tagen in Kombination mit Tetrazyklinen (5mg/kg Kgw., 2 x täglich über 7 Tage) oder
Tetracyclinhydrochlorid (3x täglich 22mg/kg Kgw.) 1)
Für H. americanum wird auch eine Kombinationstherapie mit Trimethoprim/Sulfonamid,
Clindamycin und Pyrimethamin über 14 Tage eingesetzt.
1)
(Lit.,Tenter und Deplazes, 2006), 2) (Lit., Deplazes, 2006), 3) (Lit., Staebler et al., 2005), 4) (Lia et al., 2004),
(Bianciardi und Otranto, 2005).
* In der Schweiz für Hunde nicht zugelassen.
5)
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Reisemedizin parasitärer Erkrankungen des Hundes
Maladies parasitaires exotiques chez le chien
Malattie parassitarie dei cani nella medicina
dei viaggi
Les propriétaires emmènent de plus en plus souvent
leur chien à l’étranger de sorte que la médecine des
voyages chez les petits animaux gagne d’importance. Cela concerne aussi bien la prophylaxie et la
métaphylaxie contre diverses maladies infectieuses
que leur diagnostique et leur traitement. Les chiens
peuvent, en particuliers au retour d`un voyage au
sud de l’Europe ou aux zones subtropicales ou
tropicales, être infectés par des parasites exotiques.
Le risque est particulièrement élevé chez des races
importées et principalement chez les chiens trouvés qui sont de plus en plus introduits en Suisse de
façon organisée. Le présent travail documente des
nouveaux aspects cliniques des maladies parasitaires
exotiques axés sur la pratique. En outre, l’importance en tant que zoonose de quelques parasitoses
est évoquée ainsi que les possibilités de leur établissement en Suisse.
I cani vengono sempre più frequentemente portati
in viaggi all’estero dai loro proprietari. Questo
comporta un aumento dell’importanza della medicina dei viaggi. Una pro e metafilassi contro diverse
malattie infettive diventa quindi di rigore come
pure la diagnosi e la terapia. Bisogna tener presente
che di ritorno da viaggi in Europa meridionale, nei
subtropici o tropici i cani possono essere stati infettati da parassiti esotici. I rischi maggiori in Svizzera
esistono nel caso importazioni di cani di razza e in
particolare di trovatelli. Il riassunto qui riportato
presenta aspetti nuovi, di malattie parassitarie dei
viaggi orientati alla prassi clinica. Inoltre viene
approfondito il significato zooonotico di alcune
parassitosi e il potenziale di un loro insediamento
in Svizzera.
Literatur
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Korrespondenzadresse
Peter Deplazes, Institut für Parasitologie, Universität Zürich,Winterthurerstrasse 266a, 8057 Zürich
E-Mail: [email protected], Fax: +41 44 635 89 07
Manuskripteingang: 22. Mai 2006
Angenommen: 6. Juni 2006
P. Deplazes, S. Staebler, B. Gottstein, Band 148, Heft 9, September 2006, 447–461
461
Schweiz. Arch.Tierheilk. ©2006 by Verlag Hans Huber, Hogrefe AG, Bern
Zellmorphologie Bezeichnung Erythrozyt (Diskozyt) Vorkommen, Bedeutung normale Zelle Hund Katze Retikulozyt normale Zelle (Neu‐Methylenblau) Polychromatische Zelle Junger Erythrozyt, regenerative Anämie, viel RNS  polychrom. (bläuliche) Färbung Sphärozyt immunvermittelte hämolytische Anämie Fragmentozyt, Schistozyt Metabolische Störungen, Eisenmangel, DIC, Gefäßererkrankungen (Hämangiosarkom), mechanische Zerstörung (z.B. Kathertereingriffe) Hund Keratozyt Echinozyt, Stechapfelform Artefakt, Hypernatriämie Akantozyt auch im Zusammenhang mit Hämangiosarkom, Lipidstoffwechselstörungen (z.B. bei Leber‐, Nierenerkrankungen) Targetzelle unspez., (Kodozyt) regenerative Anämie, ohne Polychromasie: verminderter Hb‐Gehalt oder Cholesterolaufnahme (z.B. Leber‐, Milz‐ oder Nierenerkrankung) Exzentrozyt oxidativer Stress, oxidative Toxine Hämoglobinschädingung (z.B. Vit. K, Zwiebeln, Methylenblau, Azetaminophen, Propofol, Propylenglykol, Heinz‐Körperchen (Neu‐Methylenblau) Diabetes mellitus), Katze: Hyperthyreose Howell‐Jolly‐
Körperchen Kernrest regenerative Anämie, Splenektomie, Dyserythropoese KLINISCHE FÄLLE (Besprechung Mi. 14:15 Uhr im Adlerhorst): Abkürzungen: WBC: White Blood Cells RBC: Red Blood Cells LUC: Large Unstained Cells CHr: Korpuskuläres Hämoglobin der Retikulozyten Hgb: Hämoglobin MCV: Mean Cell Volume RDW: Red Cell Distribution Width MCH: Mean Cell Hemoglobin MCHC: Mean Cell Hemoglobin Concentration (aus Formel berechnet) CHCM: Cell (Corpuscular) Hemoglobin Concentration Mean (vom ADVIA gemessen) PLT: Platelets __________________________________________________________________________ Fall 1: Katzenkater, Katze, EKH, 6 J, mk Seit 3 Monaten Inappetenz, Gewichtsabnahme, PU/PD In der klinischen Untersuchung pappige Schleimhäute, ansonsten unauffällig Fall 2: Adele, Hund, Airedale Terrier, 4 J, wk Seit 4‐5 Tagen blasse Schleimhäute, Hämaturie, Mattigkeit In der klinischen Untersuchung blasse Schleimhäute, Temp. 40°C, Ikterus, sowie kleiner starker Puls mit 140/Min. Fall 3: Scully, Katze, Türkisch Angora, 15 J, wk Chronischer, schon vorbekannter Katzenschnupfenkomplex Seit 3‐4 Tagen Nasenausfluss, Niesen, zusätzlich Mattigkeit, Anorexie In der klinischen Untersuchung pappige Schleimhäute, Temp. 39,4°C, generalisiert mittelgradig vergrößerte Lymphknoten, beidseits purulenter Nasenausfluss, mgr. verschärfte Lungenauskultation Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie
& klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz)
Katzenkater, Europäisch Kurzhaar, Schwarz, Alfred *01.05.200 5
Befundblatt 1 / Seite 1
78467; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. John)
Parameter
Referenz
feline Prankreasspezifis
Zytologie 1 Probe
Hämatologie
WBC
6,0-18,0 10^9/l
Neutrophile
2,5-12,5 10^9/l
Lymphozyten
1,5-7,0 10^9/l
Monozyten
0,04-0,85 10^9/l
Eosinophile
0,00-1,50 10^9/l
Basophile
0-0,04 10^9/l
LUC
0,03-0,58 10^9 / l
RBC
5,0-10,0 10^12/l
berechnetes Hgb
4,9-9,3 mmol/l
Htc
0,24-0,45 l/l
Retikulozyten absolut ADV
0-40 10^9/l
CHr
0,9-1,3 fmol/l
MCV
40-55 fL
RDW
%
berechneter MCH
0,77-1,1 fmol/l
berechneter MCHC
18,4-22,0 mmol/l
CHCM
16,48-22,29 mmol/l
PLT
180-550 10^9/l
große PLT
PLT mittl. Granularität g/dL
PLT-Aggregate
Klinische Chemie
Harnstoff
7,14-10,7 mmol/l
Kreatinin
0-168 umol/l
Na ionisiert
141-150 mmol/l
CL110-125 mmol/l
Kalium ionisiert
3,6-4,8 mmol/l
Calcium Nova
1,19-1,41 mmol/l
Phosphor
0,8-1,9 mmol/l
Magnesium ionisiert 0,53-0,65 mmol/l
Magnesium gesamt
0,6-1,3 mmol/l
Gesamteiweiss
54,7-78,0 g/l
Albumin
21,0-33,0 g/l
Globulin
26,0-51,0 g/l
Glukose
3,89-6,11 mmol/l
Fructosamine Pentra2 210-349 umol/l
Bilirubin gesamt
0-3,4 umol/l
Cholesterin
2,46-3,37 mmol/l
Triglyceride
0,57-1,14 mmol/l
Alkalische Phosphatase0-39,7 U/l
ALT
0-70 U/l
GLDH
0-11,3 U/l
Creatinkinase
< 205 (143) U/l
Urin-Sediment und Stick
Spezifisches Gewicht m> 1035
Erythrozyten
0-5 /400x Vergr.
Leukozyten
0-5 /400x Vergr.
Epithelzellen
Kristalle
variabel /100x Vergr.
Zylinder
Bakterien
/100x Vergr.
Urin-Stick-Clinitek
Urin-pH-Wert Clinitek
Urin-Bilirubin-Clinitek
Urin-Erythrozyten-Clinitenegativ
Uringlukose-Clinitek negativ
Urin-Keton-Clinitek
negativ
10.06.2014 - 09:20
06.09.11 12:58 06.09.11 15:01 06.09.11 15:29
90095594 A * 90080209 A * 90095546 A *
normal
vorläufig
8,1
5,97
1,89
0,23
0,00
0,00
0,00
8,12
6,9
0,33
13,10
1,14
40,80
15,7
0,86
21,09
21,22
520
34
25,6
971
+
+
+
+
+
+
+
+
+
5,25
71
138
92
2,38
1,16
0,94
0,42
0,57
81,9
32,3
49,6
21,20
480
40,72
8,38
4,04
107
338
6
227
1050
<5
<5
vorhanden
vorhanden
nicht vorhanden
nicht vorhanden
6,5
3+
3+
3+
2+
Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie
& klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz)
Katzenkater, Europäisch Kurzhaar, Schwarz, Alfred *01.05.200
78467; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. John)
Parameter
Urin-Protein Clinitek
Referenz
mg/dL
06.09.2011-90095594
Notfall
Plasma ikterisch
Na ionisiert:
144 mmol/l am Nova gemessen
Kalium ionisiert:
2,60 mmol/l am Nova gemessen
Glukose:
1. Messung :21,44 mmol/l
Alkalische Phosphatase:
1. Messung :110 U/l
ALT:
1. Messung :339 U/l
06.09.2011-90080209
Epithelzellen:
einige PLattenepithelien
Kristalle:
vereinzelt Bilirubinkristalle
06.09.2011-90095546
Notfall
Befundblatt 1 / Seite 2
10.06.2014 - 09:20
06.09.11 12:58 06.09.11 15:01 06.09.11 15:29
90095594 A * 90080209 A * 90095546 A *
3+
Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie
& klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz)
Adele, Airedale Terrier, Quentmeier, Vanessa *15.05.2007, (W
Befundblatt 1 / Seite 1
77902; Dissertation Eva Reith (Zi. Engelmann)
Parameter
Referenz
Anaplasma phagocytoph
Dirofilarien/Borrelien/Ehr
Ehrlichia canis PCR Bioc
Thrombelastogramm
Hämatologie
Blutgruppenbestimmung
WBC
5,48-13,74 10^9/l
WBC korrigiert
6,0-17,0 10^9 / l
Neutrophile
2,78-8,73 10^9/l
Neutro reif manuell gesa%
Neutro reif manuell gesa
3,0-11,5 10^9/l
Stabkernige manuell %
Stabkernige manuell 0,0-0,5 10^9/l
Meta-Myeloz manuell 0,0 10^9/l
Meta-Myelozyten
%
Lymphozyten
0,72-4,71 10^9/l
Lymphozyten manuell ges
%
Lymphozyten manuell ges
1,0-3,6 10^9/l
Monozyten
0,06-0,83 10^9/l
Monozyten manuell gesam
%
Monozyten manuell gesam
0,04-1,35 10^9/l
Eosinophile
< 1,47 10^9/l
Eosinophile manuell
%
Eosinophile manuell 0,0-1,25 10^9/l
Basophile
0-0,11 10^9/l
Basophile manuell
%
Basophile manuell
%
LUC
0,0-0,04 10^9 / l
LUC manuell
%
Blasten manuell
%
BLAS manuell absolut 10^9 / l
Blasten absolut
10^9 / l
Normoblasten manuell %
RBC
5,5-8,5 10^12/l
berechnetes Hgb
8,06-12,21 mmol/l
Htc
0,39-0,56 l/l
Retikulozyten absolut ADV
0-60 10^9/l
CHr
1,43-1,71 fmol/l
MCV
62,61-73,50 fL
RDW
10,76-12,80 %
berechneter MCH
1,35-1,62 fmol/l
berechneter MCHC
20,82-23,53 mmol/l
CHCM
20,82-23,53 mmol/l
PLT
150-500 10^9/l
große PLT
0-52
PLT mittl. Granularität 15,28-20,59 g/dL
PLT-Aggregate
Morphologie Blutausstrich
Stärke Ery-Anisozytose0-1
Blasten qualitative Beurt
Ery Poikilozytose (0-+++
% Ery-Polychromasie 3 %
% Sphärozyten
<4%
% Ery-Howell-Jolly-Körp%
Neutro-Toxizität (0-10%
% reakt. Lymphozyten q
Thrombozyten qualitativ
Klinische Chemie
Harnstoff
3,3-9,82 mmol/l
Kreatinin
53-122 umol/l
10.06.2014 - 09:21
29.08.11 16:21 30.08.11 11:59 31.08.11 09:07 01.09.11 14:27
90095568 A * 90091784
A 90091790 A * 90097801 A *
07.09.2011
negativ
07.09.2011
s. easyvet
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
-
positiv
61,5
52,6
43,84
74,0
38,92
7,0
3,68
2,10
4,0
3,77
4,0
2,10
4,59
11,0
5,79
0,22
0
0,00
0,26
0
0,0
8,80
0
0
0,0
0,000
17
1,82
3,0
0,13
147,60
1,23
72,20
17,9
1,66
22,99
19,91
107
35
18,9
244
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
-
+
0
+
++
ca. 40%
(+)
10%
3%
erniedrigt
+
-
14,66
43
96,8
76,8
61,93
82,0
62,98
7,0
5,38
0,77
1,0
10,29
1,0
0,77
11,49
9,0
6,91
0,17
0
0,00
0,84
0
0,0
12,12
0
0
0,0
0,000
26
1,09
2,2
0,09
353,70
1,69
79,70
28,5
2,07
26,03
18,39
154
56
20,2
277
++
0
++
++
40-50%
(+)
20%
1%
normal
+
-
14,39
33
Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie
& klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz)
Adele, Airedale Terrier, Quentmeier, Vanessa *15.05.2007, (W
77902; Dissertation Eva Reith (Zi. Engelmann)
29.08.11 16:21 30.08.11 11:59
Parameter
Referenz
90095568 A * 90091784
A
Na ionisiert
141-146 mmol/l
142
CL104-112 mmol/l
112
Kalium ionisiert
3,35-4,37 mmol/l
3,14
Calcium Nova
1,23-1,43 mmol/l
1,29
Phosphor
0,79-2,10 mmol/l
+
2,29
Magnesium ionisiert 0,47-0,63 mmol/l
0,51
Magnesium gesamt
0,6-1,3 mmol/l
1,09
Gesamteiweiss
55,3-69,84 g/l
+
76,4
Albumin
29,6-37,01 g/l
26,9
Globulin
22,9-35,6 g/l
+
49,5
Glukose
3,3-6,53 mmol/l
5,62
Bilirubin gesamt
0-3,6 umol/l
+
191,12
Cholesterin
3,3-8,6 mmol/l
7,35
Triglyceride
0,08-0,75 (nüchtern) mm
+
1,78
Alkalische Phosphatase0-130 U/l
+
192
ALT
0-85 U/l
+
365
GLDH
0-9,9 U/l
+
24
Creatinkinase
< 143 U/l
+
672
Gerinnung
aPTT STA
9,85-14,22 sec
+
14,5
PT STA
6,52-8,16 sec
+
8,90
PT normalisiert (INR) ST
0,7
D-Dimere cardiac reade<0,1 µg/dL ug/dL
29.08.2011-90095568
Plasma stark hämolytisch
Neutro reif manuell gesamt:
davon 14 Hyposegmentierte
Monozyten manuell gesamt:
davon 5 aktiviert
Ery Poikilozytose (0-+++):
makrozytäre normo- und polychromatische Erythrozyten
Neutro-Toxizität (0-10%, 11-30%; >30%):
basophiles, schaumiges Zytoplasma der Neutrophilen
Thrombozyten qualitative Beurteilung:
KEINE THROMBOZYTENAGGREGATE
Bilirubin gesamt:
durch Hämolyse
Alkalische Phosphatase:
1. Messung :189
ALT:
1. Messung :361
31.08.2011-90091790
Plasma sehr stark hämolytisch
Neutro reif manuell gesamt:
davon 12 Hyposegmentierte
Monozyten manuell gesamt:
davon 4 aktiviert
Ery Poikilozytose (0-+++):
makrozytäre normo- und polychromatische Erythrozyten
Neutro-Toxizität (0-10%, 11-30%; >30%):
basophiles, schaumiges Zytoplasma der Neutrophilen
Bilirubin gesamt:
durch Hämolyse
D-Dimere cardiac reader:
wegen hämolyse nicht auswertbar
Befundblatt 1 / Seite 2
10.06.2014 - 09:21
31.08.11 09:07 01.09.11 14:27
90091790 A * 90097801 A *
144
+
117
3,01
1,33
+
2,33
0,49
1,14
+
81,1
26,9
+
54,2
4,89
+
332,93
7,39
+
4,01
+
228
+
264
+
11
+
460
nicht messbar
Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie
& klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz)
Adele, Airedale Terrier, Quentmeier, Vanessa *15.05.2007, (W
77902; Dissertation Eva Reith (Zi. Engelmann)
01.09.2011-90097801
Dirofilarien/Borrelien/Ehrlichien/Anaplasmen(SNAP):
Unter Vorbehalt da sehr starl hämolytisches Serum
Befundblatt 1 / Seite 3
10.06.2014 - 09:21
Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie
& klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz)
Scully, Türkisch Angora, Englert, Yannike *01.01.1996, (W)
35830; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. müller)
Parameter
Referenz
Hämatologie
WBC
6,0-18,0 10^9/l
WBC korrigiert
6,0-18,0 10^9 / l
Neutrophile
2,5-12,5 10^9/l
Neutro reif manuell gesa%
Neutro reif manuell gesa
2,5-12,5 10^9/l
Stabkernige manuell %
Stabkernige manuell 0,0-0,6 10^9/l
Meta-Myeloz manuell 0,0 10^9/l
Meta-Myelozyten
%
Lymphozyten
1,5-7,0 10^9/l
Lymphozyten manuell ges
%
Lymphozyten manuell ges
1,5-7,0 10^9/l
Monozyten
0,04-0,85 10^9/l
Monozyten manuell gesam
%
Monozyten manuell gesam
0,04-0,85 10^9/l
Eosinophile
0,00-1,50 10^9/l
Eosinophile manuell
%
Eosinophile manuell 0,0-1,50 10^9/l
Basophile
0-0,04 10^9/l
Basophile manuell
%
Basophile manuell
%
LUC
0,03-0,58 10^9 / l
LUC manuell
%
Blasten manuell
%
BLAS manuell absolut 10^9 / l
Blasten absolut
10^9 / l
Normoblasten manuell %
RBC
5,0-10,0 10^12/l
berechnetes Hgb
4,9-9,3 mmol/l
Htc
0,24-0,45 l/l
Retikulozyten absolut ADV
0-40 10^9/l
CHr
0,9-1,3 fmol/l
MCV
40-55 fL
RDW
%
berechneter MCH
0,77-1,1 fmol/l
berechneter MCHC
18,4-22,0 mmol/l
CHCM
16,48-22,29 mmol/l
PLT
180-550 10^9/l
große PLT
PLT mittl. Granularität g/dL
PLT-Aggregate
Morphologie Blutausstrich
Stärke Ery-Anisozytose0-1
Blasten qualitative Beurt
Ery Poikilozytose (0-+++
% Ery-Polychromasie 1 %
% Sphärozyten
0%
% Ery-Howell-Jolly-Körp%
Neutro-Toxizität (0-10%
% reakt. Lymphozyten q
Thrombozyten qualitativ
Klinische Chemie
Harnstoff
7,14-10,7 mmol/l
Kreatinin
0-168 umol/l
Na ionisiert
141-150 mmol/l
CL110-125 mmol/l
Kalium ionisiert
3,6-4,8 mmol/l
Calcium Nova
1,19-1,41 mmol/l
Phosphor
0,8-1,9 mmol/l
Befundblatt 1 / Seite 1
10.06.2014 - 09:22
22.08.11 12:41 22.08.11 12:42 23.08.11 09:27
90091095 A * 90095473
A 90095472 A *
+
+
+
+
+
-
-
38,3
38,3
36,22
95,0
36,38
4,0
1,53
0,00
0,0
0,95
1,0
0,38
0,64
0,0
0,00
0,43
0
0,00
0,02
0
0,0
0,08
0
0
0,0
0,000
0
8,13
7,1
0,35
16,80
1,07
43,10
13,5
0,88
20,54
20,35
87
22
25,1
179
+
0
0
0
0
0
10%
1%
erniedrigt
+
+
+
25,56
174
146
103
3,66
1,15
2,36
Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie
& klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz)
Scully, Türkisch Angora, Englert, Yannike *01.01.1996, (W)
Befundblatt 1 / Seite 2
35830; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. müller)
22.08.11 12:41 22.08.11 12:42
Parameter
Referenz
90091095 A * 90095473
A
Magnesium ionisiert 0,43-0,65 mmol/l
+
0,88
Magnesium gesamt
0,6-1,3 mmol/l
+
1,57
Gesamteiweiss
54,7-78,0 g/l
+
92,5
Albumin
21,0-33,0 g/l
19,8
Globulin
26,0-51,0 g/l
+
72,7
Glukose
3,89-6,11 mmol/l
+
6,63
Bilirubin gesamt
0-3,4 umol/l
+
4,51
Cholesterin
2,46-3,37 mmol/l
+
3,58
Triglyceride
0,57-1,14 mmol/l
0,54
Alkalische Phosphatase0-39,7 U/l
9
ALT
0-70 U/l
44
GLDH
0-11,3 U/l
1
Creatinkinase
< 205 (143) U/l
+
393
Gerinnung
aPTT STA
9,85-14,22 sec
+
16,8
PT STA
6,52-8,16 sec
+
11,20
Urin-Sediment und Stick
Spezifisches Gewicht m> 1035
Erythrozyten
0-5 /400x Vergr.
Leukozyten
0-5 /400x Vergr.
Epithelzellen
Kristalle
variabel /100x Vergr.
Zylinder
Bakterien
/100x Vergr.
Bakterien im Urin gefärb
Urin-Stick-Clinitek
Urin-pH-Wert Clinitek
Urin-Bilirubin-Clinitek
Urin-Erythrozyten-Clinitenegativ
Uringlukose-Clinitek negativ
Urin-Keton-Clinitek
negativ
Urin-Protein Clinitek
mg/dL
Katzen-Infektionserkrankungen (Snap-Test)
FELV/FIV snap
negativ
10.06.2014 - 09:22
23.08.11 09:27
90095472 A *
-
1021
>5
>5
nicht vorhanden
nicht vorhanden
nicht vorhanden
vorhanden
s. b.
6,5
Negativ
3+
Negativ
Negativ
2+
22.08.2011-90091095
Neutro reif manuell gesamt:
davon 21 Hyposegmentierte
Neutro-Toxizität (0-10%, 11-30%; >30%):
Döhle- Körperchen
Thrombozyten qualitative Beurteilung:
KEINE THROMBOZYTENAGGREGATE
Harnstoff:
1.Messung: 25,55
Gesamteiweiss:
1.Messung: 92,3
23.08.2011-90095472
Spezifisches Gewicht manuell:
Zytologie Urin Sediment (May Grünwald Giemsa gefärbt):
-hochgradige septisch purulente Entzündung mit massenhaft extrazellulären und intrazellulären monomorphen
Stäbchen (Rat zur BU mit Resistenztest und antibiotische Therapie)
-keine epithelialen Zellverbände vorhanden
Erythrozyten:
vereinzelt Erythrozyten
Leukozyten:
massenhaft Leukozyten
Klinik für Kleintiere, klin. Pathophysiologie
& klin. Laboratoriumsdiagnostik (Prof. Dr. A. Moritz)
Scully, Türkisch Angora, Englert, Yannike *01.01.1996, (W)
35830; Klinik für Kleintiere, Innere Medizin (Zi. müller)
23.08.2011-90095472
Bakterien im Urin gefärbt:
massenhaft Stäbchen-Bakterien
Befundblatt 1 / Seite 3
10.06.2014 - 09:22
Zytologie Quiz
1
Welche drei Kategorien an Tumoren unterscheidet man zytologisch?
A ___________________________________________________
B ___________________________________________________
C ___________________________________________________
2
Um welche Hautumfangsverehrung handelt es sich?
 Mastzelltumor
 Histiozytom
 Melanom
3
Um welche Hautumfangsvermehrung handelt es sich?
 Plattenepithelkarzinom
 Lipom
 Adenom hepatoider Drüsen
4
Was findet sich in der bronchoalveolären Lavage (BAL)? (mehrere Antworten sind möglich)
 eosinophile Entzündung
 purulente Entzündung
 Bakterien
 Becherzellhyperplasie
 Lungenwürmer
 Lungenmakrophagen
5
Welche Diagnose ist bei dieser Lymphknotenzytologie richtig?
 eosinophile Lymphadenitis
 purulente Lymphadenitis
 Lymphom
 physiologischer Lymphknoten
6.1
Welche Diagnose ist bei der vorliegenden Synovialzytologie richtig?
 purulente Arthritis
 degenerative Gelenkserkrankung
 physiologische Synovia
6.2
Ein Hund wird Lahmheit, Halsbiegeschmerz und Fieber unbekannter Genese als Patient
vorstellig. Nach Punktion der Gelenke wird eine purulente Arthritis diagnostiziert. Die
angeforderte bakteriologische Untersuchung (BU) ist negativ.
Zusätzlich wird der Liquor des Tieres untersucht. Es findet sich eine, ebenfalls sterile,
purulente Entzündung (Meningitis).
Wie lautet die Diagnose für das oben beschriebene Krankheitsbild?
_______________________________________________________
7
In welche drei Kategorien können Ergüsse eingeteilt werden?
A ________________________________________________
B ________________________________________________
C ________________________________________________
8
In welche Kategorie gehören die folgenden Ergüsse?
A
Totalprotein: 3,5 g/dl
SG: 1.035
Zellzahl: 7000/µl
______________________________________________
B
Totalprotein: 2,7g/dl
SG: 1.020
Zellzahl: 500/µl
______________________________________________
C
Totalprotein: 0,8g/dl
SG: 1.010
Zellzahl: 100/µl
______________________________________________