Diagnostische Techniken

Werbung
Diagnostische Techniken
Makroskopie
(Licht)Mikroskopie
ƒ Übersichts-, Spezialfärbungen
ƒ Enzymhistochemie
ƒ Immunhistochemie
Elektronenmikroskopie
Durchflußzytometrie
Molekularbiologie
ƒ Proteinnachweis: Western Blot
ƒ DNA-, RNA Quantifizierung
ƒ Mutationsanalyse
Makroskopie
Veränderungen der
ƒ
ƒ
ƒ
ƒ
ƒ
ƒ
ƒ
Form
Begrenzung
Größe
Gewicht
Oberfläche, Struktur
Farbe
Konsistenz
Asservierung von Gewebe und Zellen I
Fixierung
ƒ 4%iges Formalin (gesättigte Lsg. von Formaldehyd in
H2O ca. 40%ig), pH 7.5, Phosphatpuffer, Eindringtiefe
1mm/h
geeignet für:
ƒ Konventionelle gefärbte Schnitte
ƒ Immunhistochemie, ISH
ƒ Gewinnung niedrigmolekularer DNA, RNA
ƒ Alkohol
ƒ Zytologische Präparate, ISH
ƒ Gewinnung niedrigmolekularer DNA, RNA
ƒ 2%iges Glutaraldehyd in Cacodylatpuffer
ƒ Elektronenmikroskopie
Asservierung von Gewebe und Zellen II
Keine Fixierung – Einfrieren
ƒ Eis: Enzymnachweis
ƒ -20°C:
ƒ Gefrierschnitte, Enzymnachweis
ƒ -70°C/Flüssigstickstoff:
ƒ hochmolekulare DNA, RNA
ƒ Flüssigstickstoff-gekühltes Isopropanol
ƒ Immunhistochemie, hochmolekulare DNA, RNA
Speziallösungen:
ƒ Guanidiniumthiocyanid (GTC)
ƒ RNAlater etc.
Einbettungs- und Schneideverfahren
Konventionell:
ƒ Wasserentzug durch „aufsteigende
Alkoholreihe
ƒ Xylol/Toluol
ƒ Paraffinwachs
ƒ Mikrotomschnitte: 4-6µm
ƒ Warmes Wasserbad: „Strecken“
Entkalkung: Säure, EDTA
Polyacrylamid-Einbettung
Gewebearray
Acrylatblock
Färbemethoden
Entparaffinierung: Xylol
Rehydrierung: „absteigende Alkoholreihe“
Färbung
ƒ HE (Hämatoxylin-Eosin)
ƒ Blau: Zellkerne, Bakterien, Kalk, Zytoplasma,
Knorpelgrundsubstanz
ƒ Rot: Zytoplasma, Kollagen, Erythrozyten
Entwässerung
Einbettung, Eindeckung
Spezialfärbungen I
Giemsa
ƒ Blau: feine Chromatinstrukturen, Bakterien
ƒ Rot: Zytoplasma, kollagene Fasern
ƒ Violett: Mastzellen
van Gieson-Elastika
ƒ Gelb: Muskulatur, Zytoplasma,
ƒ Rot: Bindegewebe, Hyalin
ƒ Schwarz: elastische Fasern, Zellkerne
Gomöri
ƒ Schwarz: Retikulinfasern
Giemsa
Gomöri
Spezialfärbungen II
PAS (Perjodsäure-Schiff-Reaktion)
ƒ Rot: neutrale Glykosaminoglykane, Kohlehydrate, Glykogen
ƒ Blau: Zellkerne
Alcianblau: saure Glykosaminoglykane
Sudan-Fettfärbung: rot
Berliner-Blau: Eisen
Gram (Bakterien)
ƒ Blauviolett: gram+ Bakterien
ƒ Rot: gram- Bakterien
Ziehl-Neelsen: Mykobakterien
Kongorot: Amyloid, grün polarisierend
PAS
Berliner Blau
Ladewig
OMS, 82a (Ladewig-Polarisation)
22.10. TU
Enzymhistochemie
Lokalisation von Enzymen im
Schnittpräparat, Zellausstrichen
Enzymaktivität setzt Substrat in sichtbaren
Farbstoff um
Frischgewebe
Anwendungen
ƒ Acetylcholinesterase: Innervationsstörungen
(Mb. Hirschsprung)
ƒ Chloracetat-Esterase: Granulozyten
Immunhistochemie
Lokalisation von Epitopen
ƒ
ƒ
ƒ
ƒ
ƒ
ƒ
Zellbestandteile
Zytoskelett
Zelladhäsionsmoleküle
Hormone
Rezeptoren
Erreger
Phänotypisierung von Tumoren
Immunhistochemie - Technik
Gefrierschnitte
Fixierung – Denaturierung
ƒ Veränderung der Epitope
Vorbehandlung der Schnittpräparate
ƒ Proteolytische Enzyme
ƒ Hitzebehandlung (Mikrowelle, Druckkochtopf)
Markermoleküle
ƒ Fluoreszierender Farbstoff, Enzym, kolloidales Gold
Amplifikation des Signals
ƒ Indirekte Methode, sekundäre Antikörper
ƒ Mehrstufige Methoden:
ƒ PAP: Peroxidase – Antiperoxidase
ƒ APAAP: Alkalische Phosphatase – anti Alkalische Phosphatase
ƒ ABC: Avidin – Biotin - Komplex
CD
CD 20
20
CD
CD 33
CD
CD 71
71
CD
CD 66
66
Elektronenmikroskopie - Technik
Glutaraldehyd u/o Paraformaldehyd –
Fixierung
Osmiumtetroxid – Nachfixierung
Kunststoffeinbettung (Epon, Lowicryl)
Schnittdicke 60-80nm (Diamantmesser)
Kontrastierung: Uranylacetat, Bleicitrat
Elektronenmikroskopie - Anwendungen
Zellorganellen
ƒ Mitochondrien, Peroxisomen,
Endoplasmatisches Retikulum, Golgi,
Lysosomen
Zellmembranen, -verbindungen
Zytoskelett
Einschlusskörper
Erreger: Viren
Vermehrung von Mitochondrien
Gestörte Z-Banden
Kristalline Einschlüsse in Mitochondrien
Viruseinschlußkörper (Zellkern)
Herunterladen