Genexpression und Funktion der Gene in der Keimbahn der Maus

Schöler, Hans R. | Genexpression und Funktion der Gene in der Keimbahn der Maus
Tätigkeitsbericht 2004
Entwicklungs- und Evolutionsbiologie/Genetik, Struktur- und Zellbiologie
Genexpression und Funktion der Gene in der Keimbahn der Maus
Schöler, Hans R.
Max-Planck-Institut für molekulare Biomedizin, Münster
Abteilung - Zell- und Entwicklungsbiologie
Korrespondierender Autor: Schöler, Hans R.
E-Mail: [email protected]
Zusammenfassung
Säuger müssen, um sich fortzupflanzen und dadurch die Aufrechterhaltung der Art zu gewährleisten,
Oozyten und Spermien bilden. Embryonale Stammzellen differenzieren in Kultur in Oogonien, die in
Meiose (Reifeteilung) eintreten und gemeinsam mit anheftenden Zellen follikelähnliche Strukturen
bilden können. Diese können im weiteren Verlauf Gebilde hervorbringen, die große Ähnlichkeit mit
frühen embryonalen Entwicklungsstadien der Maus besitzen. Oogenese, die Entwicklung zum reifen Ei,
in Kultur ist für unterschiedliche biologische und medizinische Bereiche von Bedeutung. Biologische
Studien, die durch dieses System erleichtert werden könnten, sind unter anderem Funktionsstudien zur
Induktion von Urkeimzellen, zur Wechselwirkung von somatischen Zellen und Keimzellen oder Studien
zur genetischen Reprogrammierung nach Kerntransfer in Eizellen. Ein großes Potenzial sehen die
Wissenschaftler um Hans R. Schöler aber auch in der medizinischen Anwendung. Sie vermuten, dass
durch Oogenese in Kultur Grundlagen der Fertilität und Probleme der Infertilität besser untersucht
werden können und durch dieses In-vitro-System der Einfluss von Wirk- und Schadstoffen auf die
Gametogenese, die Entwicklung der Geschlechtszellen, bestimmt werden kann. Ein Hauptaugenmerk
wird sein, die künstlichen Eizellen zum Kerntransfer und zur Gewinnung körpereigener embryonaler
Stammzellen einzusetzen.
Abstract
In order to reproduce and to ensure species perpetuation, mammals must produce germ cells, i.e., oocyte
and sperm cells. In culture, embryonic stem cells differentiate into oogonia, enter meiosis and produce
support cells that have follicle-like structures. They further develop into structures very similar to those
found in early stages in mouse embryonic development. The use of oocytes derived in culture is important
for biological research and various medical applications. This in vitro system can facilitate biological
studies, for example, functional studies for induction of PGCs, interaction between somatic cells and
germ cells or studies in genetic reprogramming after nuclear transfer into oocytes. We also see a very
large potential in medical applications. We believe that through the derivation of oocytes in culture,
fundamental understanding of fertility and problems in infertility can be best researched, and through
this in vitro system positive and harmful affects can be ascertained. A major initiative will be to use these
artificially derived oocytes for nuclear transfer, to study gene function and genetic reprogramming in a
defined system and for production of one’s own embryonic stem cells.
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Einleitung
Die theoretische und experimentelle Unterscheidung von "Körper" (Soma) und "Keim" hat
Wissenschaftler seit Anbeginn der Embryologie fasziniert. Eine Theorie, die 1885 von August Weismann
vorgestellt wurde, besagt, dass der Keim in Organismen durch ein Plasma mit spezifischen Determinanten
bestimmt wird. Gemäß dieser Theorie können die Körper von Metazoen als vergängliche
Transportsysteme für die zur Fortpflanzung notwendigen Keime betrachtet werden. Die Fusion von
Eizelle und Spermium führt zur Bildung eines neuen Keimes, der nach kurzer Zeit sowohl Körper als
auch Keimzellen hervorbringt. Der Körper nährt und schützt die Keimzellen, während diese sich in
spezialisierte Gameten entwickeln, die nach Fusion beider Typen von Gameten wieder einen neuen Keim
bilden, und der Lebenszyklus startet erneut.
Determinanten der Keimbahn
Drosophila, C.elegans und die Maus: Im Tierreich scheinen in Eizellen vorhandene Determinanten ein
weit verbreitetes System für die Festlegungen von Keimzellen zu sein, wie die "P-Granules" von C.
elegans oder die "Polar Granules" von Drosophila. In Säugern jedoch konnten solche Determinanten
nicht nachgewiesen werden und es ist fraglich, ob sie überhaupt Determinanten besitzen, die denen von
C. elegans oder Drosophila entsprechen. Während Determinanten bereits sichtbar in Eizellen dieser
Spezies vorliegen und eine sehr frühe Trennung von Körper- und Keimzellen zu beobachten ist, findet
eine Aufspaltung von Körper und Keimzellen bei Säugern erst während der Bildung der Keimblätter
(Gastrulation) statt. Auch scheinen diese Zellen des Säugerembryos vor der Gastrulation noch nicht in
ihrem Differenzierungspotenzial eingeschränkt. Im Mausembryo werden etwa 6.5 Tage nach der
Befruchtung in dem proximalen Bereich des embryonalen Zylinders Keimzellen induziert, wobei Signale
aus dem extraembryonalen Ektoderm eine wichtige Rolle spielen. Während dieser Spezifikationsphase
können die Vorläuferzellen neben Urkeimzellen noch in somatische Zelltypen differenzieren, wie etwa
extraembryonales Mesoderm und Allantois (Urharnsack). Werden Zellen des Mausembryos noch vor
der Gastrulation in den proximalen Bereich des embryonalen Zylinders transplantiert, so können sie
gemäß ihrem neuen Ort zu Urkeimzellen differenzieren, obwohl sie am ursprünglichen Ort einen anderen
Zelltyp gebildet hätten.
Keimbahn der Säuger und Pluripotenz
Pluripotenz im Säugerembryo: Befunde dieser Art legen nahe, dass die Keimbahn von Säugern in zwei
Phasen unterteilt werden kann. In der ersten Phase, die bis etwa zur Gastrulation dauert, sind die Zellen
der Keimbahn noch nicht festgelegt und können entsprechend ihrer Position im Embryo unterschiedliche
Zelltypen des Körpers oder Keimzellen bilden. Die Fähigkeit von Zellen nahezu alle Zelltypen
hervorbringen zu können, wird als Pluripotenz bezeichnet. Der Phase pluripotenter Zellen der Keimbahn
folgt die Phase unipotenter Zellen. In dieser zweiten Phase sind die Zellen der Keimbahn festgelegt und
als Keimzellen identifizierbar.
Pluripotenz in der Kulturschale: Während pluripotente Zellen im Embryo nur während einer begrenzten
Periode auftreten, kann man aber pluripotente Zellen einiger Säuger dauerhaft in Kultur nehmen und
durch entsprechende Bedingungen die Differenzierung in Körperzellen verhindern. Dies ist zuerst bei
der Maus, später bei bestimmten Affen und auch beim Menschen gelungen. Leitet man Zelllinien von
pluripotenten Zellen in frühen Embryonen, so genannten Blastozysten ab, werden sie embryonale
Stammzellen (ES-Zellen) genannt. ES-Zellen sind das Ergebnis einer kulturbedingten Transformation
pluripotenter Zellen des Embryos und daher nicht mit ihnen gleichzusetzen. Der wichtigste Unterschied
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ist der, dass - im Gegensatz zu den nur kurzzeitig im Embryo vorkommenden pluripotenten Zellen - ESZellen bei sachgemäßer Behandlung in Kultur nahezu unbegrenzt vermehrt werden können. Es gibt aber
wesentliche Eigenschaften, die beibehalten werden. Dies ist zum einen, dass ES-Zellen auch in Kultur
pluripotent sind, da sie je nach Bedingung in unterschiedliche Zelltypen des Körpers differenziert werden
können. Zum anderen können sie sich, wenn sie in Blastozysten injiziert werden, in den Verband
pluripotenter Zellen des Embryos einfügen und alle Zelltypen des Körpers, aber auch Keimzellen bilden.
Interessanterweise lassen sich Urkeimzellen, (prämigratorische und frühe migratorisiche Keimzellen)
durch geeignete Kulturbedingungen ebenfalls zu Zellen transformieren, die ES-Zellen ähneln. Wegen
ihrer unterschiedlichen Herkunft werden sie EG-Zellen (embryonale Keimzellen, engl. Embryonic Germ
Cells) genannt.
Das Oct4-Gen als Markierungshilfsmittel für die Keimbahn von Säugern
Expression: Oct4 ist das einzig bekannte Gen, das spezifisch in der Keimbahn von der Maus exprimiert
wird.
Abb. 1 : Die Keimbahn von Säugern. Das Oct4-Gen wird in den Zellen der Keimbahn exprimiert (im Schema:
Zygote, pluripotente Zellen und Keimzellen). Sobald Zellen die Keimbahnachse verlassen, beobachtet man eine
Abnahme der Oct4-Genaktivität.
Bild : Max-Planck-Institut für molekulare Biomedizin/Schöler
Oct4-Transkripte und Protein findet man bereits in der Eizelle, nicht aber im Spermium. Nach der
Befruchtung nimmt die Menge an RNA und Protein bis zum Vierzell-Stadium ab, danach beginnt die
zygotische Expression des Oct4-Gens. Während der weiteren Entwicklung des frühen Mausembryos
wird Oct4 in den pluripotenten Zellen des Embryos exprimiert. Mit der Abnahme an Genaktivität geht
auch der Verlust an Pluripotenz einher. Das erste Mal, dass eine Abnahme stattfindet, ist in den äußeren
Blastomeren der Morula. Das sind diejenigen Zellen des Embryos, die in trophektodermale Zellen
differenzieren. Die inneren Zellen, die den Epiblast (auch Embryonalknoten, primitives oder
embryonales Ektoderm genannt) bilden, exprimieren Oct4 bis zur Gastrulation. Nur in den Zellen des
zur gleichen Zeit entstehenden Hypoblasten (auch primitives oder embryonales Entoderm genannt)
nimmt die Oct4-Genaktivität ab. Nach der Gastrulation findet man Oct4 ausschließlich in Keimzellen.
Allerdings findet man Oct4 nicht durchgängig während der Keimzelldifferenzierung, da dessen Aktivität
noch vor der Meiose der männlichen und weiblichen Keimzellen abnimmt. Oct4 wird zu Beginn der
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meiotischen Prophase I (13-14 Tage nach der Befruchtung) in der Maus reprimiert. Das Oct4-Gen wird
während der Oogenese wieder aktiv, wohingegen es während der Spermatogenese nicht wieder
angeschaltet wird. In den Oozyten wachsender Follikel findet man direkt nach der Geburt Oct4Transkripte und Protein und zwar unabhängig vom Reifungsgrad der Follikel.
POU-Familie: Das Oct4-Protein ist Mitglied der POU-Familie von Transkriptionsfaktoren. Diese Familie
ist dafür bekannt, dass sie eine Vielzahl von biologischen Prozessen regulieren. Das große Spektrum an
Aktivitäten steht aber in krassem Gegensatz zu der kleinen Zahl an Genen, die die Familie ausmachen.
So findet man nur 15 POU-Gene im humanen Genom, fünf im Genom von Drosophila und vier in dem
von C. elegans. Es wurde beschrieben, dass Oct4 seine Funktion molekular auf unterschiedliche Art
ausübt. Eine Möglichkeit, mit der Oct4 sein Spektrum an Aktivitäten erweitert, ist durch Interaktion mit
anderen Transkriptions- und Kofaktoren. Die in Wechselwirkung tretenden Proteine können Mitglieder
derselben Familie sein oder Mitglieder anderer Familien. So dienen bestimmte Proteinoberflächen als
Plattform für die Interaktionen mit Transkriptionsfaktoren unterschiedlicher Familien, wobei zum Teil
dieselben Aminosäuren für die jeweiligen Wechselwirkungen verwendet werden. So kann Oct4
beispielsweise mittels einer Oberfläche mit Oct1, Oct6 oder einem zweiten Oct4 interagieren, aber auch
mit Sox2. Die Oberfläche von Sox2 wiederum, die an Oct4 bindet, kann mit Mitgliedern einer dritten
Familie von Transkriptionsfaktoren, den PAX-Proteinen, interagieren. Die Bedeutung der einzelnen
Wechselwirkungen im Kontext der Zelle und dem sich entwickelnden Organismus muss allerdings noch
belegt werden.
Funktion: In einer Reihe von Säugern, wie auch beim Menschen, wurden Gene identifiziert, die Orthologe
zu dem Oct4 der Maus darstellen, so auch beim Menschen. Dagegen besitzen beispielsweise weder
Drosophila noch C. elegans ein Oct4-Gen. Die Rolle des POU-Domänen-Transkriptionsfaktors Oct4 in
der Keimbahn der Maus ist essentiell, dessen Verlust hat je nach Entwicklungsstadium unterschiedliche
Auswirkungen. Fehlt die Funktion sehr früh in der Embryonalentwicklung, dann entstehen im Embryo
nicht pluripotente Zellen, sondern stattdessen trophektodermale Zellen. Somit weichen die Zellen der
Keimbahn auf die früheste Nicht-Keimbahnlinie während der Entwicklung aus. Wie wir kürzlich
nachweisen konnten, führt das Fehlen von Oct4 in der zweiten Phase zum Zelltod (Apoptose) von
Urkeimzellen. Somit wird Oct4 in der ersten Phase der Keimbahn zur Aufrechterhaltung der Pluripotenz
embryonaler Zellen benötigt, in der zweiten zum Überleben der Keimzellen.
Regulatorische Elemente: Oct4 übt nicht nur unterschiedliche Funktionen in der frühen und späten Phase
der Keimbahn aus, sondern es werden auch unterschiedliche regulatorische Elemente im 5’ Bereich des
Promoters verwendet, um die Expression des Gens zu gewährleisten. Diese Elemente konnten zuerst
durch eine grobe Deletionsanalyse bestimmt werden, später im Detail durch den Sequenzvergleich
verschiedener Oct4-Gene. Dazu wurde das Oct4-Gen des Menschen mit den orthologen Genen der Maus
und des Rindes verglichen. So ergab die Grobkartierung, dass das proximale Element für die Expression
in pluripotenten Zellen wichtig ist, das distale Element für die Expression in Keimzellen. Der
Sequenzvergleich ermöglichte es den Wissenschaftlern in Münster, die Grenzen zwischen Elementen für
die Expression in pluripotenten Zellen und in Keimzellen präziser zu definieren und dadurch die Aktivität
noch besser voneinander zu trennen. So enthält nun das proximale Element zwei Regionen, die in den
unterschiedlichen Säugern konserviert sind (CR2 und CR3), das distale Element eine konservierte Region
(CR4).
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Abb. 2 : Schematische Darstellung des Oct4-Reportergens gcOct4-GFP. Gezeigt sind vier konservierte Sequenzen
(CR1 bis 4) im 5’ regulatorischen Bereich. CR2 und 3 wurden durch Deletion entfernt, um Spezifität in Keimzellen
zu erhalten (mit Rechteck markiert). Die konservierten Regionen überlappen mit zwei regulatorischen Elementen,
die zuvor beschrieben wurden. Einem distalen Enhancer (DE), der spezifisch für Keimzellen ist, und einem
proximalen Enhancer (PE), der spezifisch für die pluripotenten Zellen des Epiblasten ist.
Bild : Max-Planck-Institut für molekulare Biomedizin/Schöler
CR2 und CR3 besitzen zum Teil dieselben DNA- Bindungsstellen für Transkriptionsfaktoren. Durch
Deletion der Region mit dem distalen Element generierten Schöler und sein Team genomische
Fragmente, die nur in den pluripotenten Zellen der Maus aktiv sind, durch Deletion des proximalen
Elementes solche, die während der Mausentwicklung in frühen Keimzellstadien, nicht aber in
pluripotenten Zellen aktiv sind.
Etablierung eines keimzellspezifischen In-vitro-Differenzierungssystems
Das keimzellspezifische Transgen gcOct4-GFP: Das Konzept der positionsabhängigen Differenzierung
pluripotenter Zellen hat die Forscher veranlasst, nach Bedingungen zu suchen, um in der Kulturschale
Keimzellen aus embryonalen Stammzellen zu gewinnen. Bis zu dem Zeitpunkt war es zwar möglich
gewesen, Abkömmlinge der drei Keimblätter von ES-Zellen abzuleiten, Keimzellen konnten aber nicht
identifiziert werden. Eine wichtige Vorraussetzung ES-Zellen zu differenzieren war es, Keimzellen
lebend nachweisen zu können. Dies bewerkstelligten Schöler und seine Leute, indem sie das
keimzellspezifische Transgen mit einer cDNA für ein grün fluoreszierendes Protein (GFP) verknüpften.
Die Spezifität des Oct4 GFP-Transgens (gcOct4-GFP) wurde getestet, indem aus transformierten ESZellen nach Injektion in Blastozysten transgene Mäuse generiert wurden. Diejenigen ES-Zellen wurden
für die Untersuchungen in der Kulturschale eingesetzt, die in transgenen Mäusen Keimzellen, nicht aber
Epiblastenzellen grün färbten. Die grüne Markierung erlaubte es zum einen, geeignete Bedingungen für
die Bildung von Keimzellen aus ES-Zellen zu etablieren, zum anderen die unterschiedlichen
Keimzellstadien während der Embryogenese zu verfolgen. Das gcOct4-GFP-Transgen diente dabei
lediglich zur Festlegung der Bedingungen. Nachdem diese einmal etabliert wurden, wurden sie mit ESZellen reproduziert, die kein Transgen besaßen. Zusammengefasst bestehen die Bedingungen darin, dass
ES-Zellen ohne Nährzellen auf unbeschichtete Kulturschalen dicht ausplattiert werden. Es bilden sich
innerhalb weniger Tage Kolonien, in deren Zentren sich grüne Keimzellkolonien befinden.
Oct4 und Vasa: Während der Mausentwicklung nimmt die Aktivität des Oct4-Gens noch vor der Meiose
sowohl der weiblichen als auch der männlichen Keimzellen ab. Die Meiose beginnt, nachdem sich die
Keimzellen - nach ihrer Wanderung durch den sich entwickelnden Embryo - bereits etwa zwei Tage in
den Keimleisten befinden. Eine Identifikation von Keimzellen aus ES-Zellen in der Kulturschale ohne
den Verbund mit somatischen Zellen der Gonade und ohne GFP-Markierung war nicht möglich und
machte die Verwendung weiterer spezifischer Gene notwendig. Als besonders geeignet für die
Untersuchungen stellte sich das Vasa-Gen heraus. Das Vasa-Protein wird erstmals in postmigratorischen
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Keimzellen gebildet und ist auch in späteren Keimzellstadien nachweisbar. In dem Schema von Hans
Schöler entsprechen grüne Zellen, die kein Vasa bilden, Urkeimzellen vor Erreichen der Keimleisten.
Bei denjenigen Zellen, die sowohl Oct4 als auch Vasa exprimieren, handelt es sich um frühe
postmigratorische Keimzellen bis etwa zu Beginn der Meiose. Danach können Keimzellen nicht mehr
durch GFP, sondern nur noch durch Vasa identifiziert werden.
Oct4 und der Oberflächenrezeptor c-kit zur Identifikation von Urkeimzellen: Durch Verwendung von
Antikörper gegen c-kit lässt sich in Kombination mit GFP eine Population von Zellen sortieren, die sehr
frühen Keimzellen entspricht. Diese Population besitzt weder Marker für Vasa noch für meiotische Gene.
Während der Mausentwicklung besitzt jeder Embryo zu diesem frühen Zeitpunkt etwa 100 Zellen. Daher
eignen sich die in Kultur gewonnenen Keimzellen besonders gut für solche Versuche, die nicht mit
kleinen Zellzahlen auskommen, wie bestimmte biochemische oder zellbiologische Ansätze. Der Gruppe
in Münster soll dieses System dazu dienen zu bestimmen, welches genetische Programm in frühen
Keimzellen etabliert wird.
Die Bildung von Follikeln: Nachdem die Keimzellen in vivo die Keimleisten erreicht und kolonisiert
haben, ändern sie ihre Morphologie drastisch. Während der Wanderung durch den Embryo bilden
Keimzellen nämlich Filopodien und Lamellipodien aus und berühren einander über dentritsche Fortsätze.
In den Keimleisten angelangt, runden sie sich dagegen ab. Das Zurückziehen von den anderen Keimzellen
ist notwendig, damit Keimzellen Kontakte mit anderen Zellen eingehen können. Im Falle der weiblichen
Keimbahn bilden somatische Zellen und Keimzellen Aggregate, die Primordialfollikel genannt werden.
Die an der Keimzelle gelagerten somatischen Zellen differenzieren zu Granulosazellen, die eine wichtige
Rolle bei der Entwicklung der Eizelle aus der ursprünglichen Keimzelle des Follikels, der Oogonie,
haben. In der Kulturschale gibt es zwar auch Hinweise auf Wanderung, allerdings trifft dies nicht auf die
Mehrzahl der Zellen zu. Die Keimzellen bilden oftmals Kolonien von mehreren hundert Zellen.
Interessanterweise runden sich die Keimzellen in diesen Kolonien ebenfalls ab und wie im Embryo geht
dies mit der Expression von Vasa einher. Da diese Kolonien nur aus Keimzellen bestehen, können sie
nicht innerhalb einer Kolonie mit somatischen Zellen in Kontakt treten. Dies geschieht in Kultur auf eine
andere Weise. Da die Kolonien zur Nährlösung hin offen sind, lösen sich die abgerundeten Zellen ab und
bilden Aggregate mit anderen Zellen des Überstandes. Diese Zellen exprimieren keine der getesteten
keimzellspezifischen Gene und daher handelt es sich voraussichtlich um somatische Zellen, die sich an
die Keimzelle(n) heften. Es ist jedoch nicht sicher, ob es sich um Vorläufer für Granulosazellen handelt.
Dies wäre erstaunlich, weil sie sich gleichzeitig in der Schale entwickeln, loslösen und im Überstand an
die Keimzellen heften müssten. Ebenfalls denkbar ist, dass es sich um Vorläufer für andere Zelltypen
handelt, die sich durch die Oogonie in Granulosazellen differenzieren lassen. Aus dem Überstand einer
Schale bilden sich eine Vielzahl von Aggregaten, aus denen sich follikelähnliche Strukturen entwickeln.
Diese Strukturen exprimieren die für deren Reifung notwendigen Gene und bringen schließlich Zellen
hervor, die große Ähnlichkeit mit Eizellen besitzen. Bei längerer Kultur teilen sich die Eizellen in den
follikelähnlichen Strukturen und entwickeln sich letztlich zu Gebilden, die nicht nur wie Blastozysten
aussehen, sondern auch die entsprechenden molekularen Marker exprimieren.
Die Eizellen stellen die Basis für eine Reihe von weiteren Untersuchungen dar. Insbesondere sind die
Wissenschaftler um Hans Schöler daran interessiert, ob sie in der Lage sind, einen somatischen Zellkern
so zu programmieren, dass sich nicht nur Blastozysten bilden, sondern von ihnen auch ES-Zellen
abgeleitet werden können. Durch den Transfer des gesamten Keimbahnzyklus in die Kulturschale hätten
die Wissenschaftler nicht nur ein ideales System, um entwicklungs-, zell- und molekularbiologische
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Fragen stellen zu können, sondern möglicherweise auch die Grundlage für eine neue Art der regenerativen
Medizin geschaffen.
Abb. 3 : Follikelähnliche Strukturen, die von embryonalen Stammzellen der Maus abgeleitet wurden. Die Strukturen
exprimieren Östradiol und die zur Synthese notwendigen steroidogenen Enzyme.
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