Derzeitiger Stellenwert der Polkörperbiopsie - green-ivf

Werbung
MEDIZIN
ÜBERSICHTSARBEIT
Polkörperdiagnostik – ein Schritt in
die richtige Richtung?
Katrin van der Ven, Markus Montag, Hans van der Ven
ZUSAMMENFASSUNG
Einleitung: Die Polkörperdiagnostik (PKD) ist eine neue
Methode zur indirekten genetischen Untersuchung von
Eizellen. Sie wird im Rahmen einer In-vitro-Fertilisationsbehandlung durchgeführt. Die Polkörperdiagnostik ist
labortechnisch anspruchsvoll und kein Routineverfahren,
das unkritisch in großem Umfang eingesetzt werden sollte,
denn ausreichende klinische Daten liegen nicht vor.
Methoden: Selektive Aufarbeitung der Literatur und Auswertung eigener Daten zur Polkörperbiopsie.
Ergebnisse: Das Haupteinsatzgebiet der PKD ist der Nachweis von Chromosomen-Fehlverteilungen (Aneuploidiediagnostik) und mütterlicher Translokationen in Eizellen.
Paternale genetische Faktoren sind nicht und monogene
Erkrankungen nur eingeschränkt diagnostizierbar.
Diskussion: Die Wertigkeit der PKD als Ergänzung zur Steigerung der Erfolgsraten der In-vitro-Fertilisation muss in
klinischen Studien noch belegt werden. Im Fall mütterlicher Translokationen erscheint die PKD zur Senkung der
Abortraten schon heute anwendbar. Durch Fortentwicklung
der Biopsietechniken und molekulargenetischen Diagnostik werden künftig mit der PKD umfassendere Untersuchungen möglich sein.
Dtsch Arztebl 2008; 105(11): 190–6
DOI: 10.3238/arztebl.2008.0190
Schlüsselwörter: Polkörperdiagnostik, Aneuploidie-Testung,
In-vitro-Fertilisation, Kinderwunsch, Eizelle
D
ie Polkörperdiagnostik (PKD) ist eine Methode
zur genetischen Untersuchung von Eizellen
noch vor Abschluss der Befruchtung (Präkonzeptionsdiagnostik) (1). Die Entnahme und Untersuchung des
ersten und zweiten Polkörpers ermöglicht eine indirekte Aussage über die genetische Konstitution der Eizelle. Im Gegensatz dazu offeriert die Präimplantationsdiagnostik (PID) durch Entnahme und Analyse
einzelner Blastomeren die direkte Untersuchung des
Erbguts eines entstehenden Embryos (2). PKD und
PID sind nur im Rahmen einer In-vitro-Fertilisationstherapie durchführbar. Die Verfahren erlauben den
Nachweis von numerischen Chromosomenfehlverteilungen (Aneuploidien), Translokationen und monogenen Erkrankungen. Ziele dieser Methoden sind, die
Erfolgsraten der assistierten Reproduktion zu verbessern sowie Schwangerschaften und Geburten schwer
erkrankter Kinder zu vermeiden.
Aufgrund der höheren diagnostischen Aussagekraft
hat sich international die Präimplantationsdiagnostik
durchgesetzt. In Deutschland gilt die PID als nicht mit
dem Deutschen Embryonenschutzgesetz vereinbar.
Deshalb hat sich parallel zur anhaltenden ethischen
und juristischen Debatte über Inhalt und Nutzen dieser gesetzlichen Regelung die Polkörperdiagnostik
etabliert.
Neben der methodischen Darstellung werden im
Folgenden auf der Basis einer selektiven Literaturaufarbeitung Möglichkeiten und Wertigkeit der Polkörperbiopsie für verschiedene diagnostische Fragestellungen im zeitlichen und rechtlichen Rahmen des
Deutschen Embryonenschutzgesetzes erläutert und
diskutiert.
Meiose mit Bildung des ersten
und zweiten Polkörpers
Abteilung für Gynäkologische Endokrinologie und Reproduktionsmedizin,
Zentrum für Geburtshilfe und Frauenheilkunde, Universitätsklinikum Bonn:
Prof. Dr. med. van der Ven, PD Dr. rer. nat. Montag, Prof. Dr. med. van der Ven
190
Der diploide Chromosomensatz der Eizelle wird kurz
vor der Ovulation durch Vollendung der ersten Reifeteilung auf einen haploiden Chromosomensatz reduziert (Grafik 1). Ein Chromosomensatz verbleibt in
der Eizelle, während der zweite Chromosomensatz
unter Bildung des ersten Polkörpers aus dem Zytoplasma ausgeschleust wird.
Nach Eindringen eines Spermiums folgt die zweite Reifeteilung. Dabei spalten sich die zweifädigen
Chromosomen weiter in Chromatiden auf und ein
Chromatidensatz wird unter Bildung des zweiten Polkörpers ausgeschleust. Die Zahl der Chromosomen
 Jg. 105
 Heft 11
 14. März 2008
Deutsches Ärzteblatt
MEDIZIN
beziehungsweise Chromatiden in Polkörpern und Eizelle ist nach regulär abgelaufener erster und zweiter
Reifeteilung gleich. Die Polkörper haben für die weitere embryonale Entwicklung keine nachgewiesene
Bedeutung und stehen für diagnostische Maßnahmen
zur Verfügung.
Nach der Fertilisation entwickeln sich in der Eizelle der männliche und weibliche Vorkern, die das maternale und paternale Erbmaterial enthalten. 16 bis
20 h später lösen sich die Vorkernmembranen als Vorbereitung auf die erste Zellteilung auf. Hiermit ist
nach biologischer Definition der Befruchtungsvorgang abgeschlossen.
Regelungen des deutschen
Embryonenschutzgesetzes
Das Embryonenschutzgesetz von 1990 gibt den zeitlichen und therapeutischen Rahmen für Verfahren der
künstlichen Befruchtung in Deutschland vor.
Als Embryo im Sinne des Embryonenschutzgesetzes gilt bereits die befruchtete, entwicklungsfähige
menschliche Eizelle vom Zeitpunkt der „Kernverschmelzung“ an, ferner jede einem Embryo entnommene totipotente Zelle. Embryonen dürfen einzig zum
Zweck des Embryotransfers erzeugt werden. Nach der
derzeitigen Interpretation dürfen maximal drei Eizellen befruchtet und maximal drei Embryonen einzeitig
auf die Mutter übertragen werden. Da die Polkörperbiopsie zeitlich vor der „Verschmelzung“ der Vorkerne stattfindet, stellt sie eine Maßnahme der Präkonzeptionsdiagnostik dar und ist mit dem Embryonenschutzgesetz kompatibel. Für die Durchführung der
PKD steht jedoch nur ein enger zeitlicher Rahmen von
maximal 20 h zwischen Eindringen des Spermiums
und Sichtbarwerden der Vorkerne zur Verfügung
(Grafik 2).
Zur Erweiterung des engen Zeitrahmens, den das
deutsche Embryonenschutzgesetz vorgibt, könnte theoretisch eine Kryokonservierung der Eizellen im Vorkernstadium bis zum Abschluss der genetischen Diagnostik
erfolgen. Trotz guter Überlebens- und Entwicklungsraten kryokonservierter Eizellen nach Polkörperbiopsie konnten bislang nur wenige fortlaufende klinisch
nachweisbare Schwangerschaften erzielt werden.
Aufgrund ungelöster kryobiologischer Probleme stellt
dieses Vorgehen zurzeit noch keine akzeptable Strategie dar.
Entstehung und Häufigkeit von
Aneuploidien
Aneuploidien, das heißt Abweichungen von der regulären Chromosomenzahl, entstehen überwiegend
durch Fehlverteilungen der Chromosomen während
der Meiose (Grafik 3). Bis zu 80 Prozent der Aneuploidien entstehen während der ersten Reifeteilung.
Die Häufigkeit von Aneuploidien in Eizellen steigt
nach dem 35. Lebensjahr stark an. Bei einer 40-Jährigen sind schätzungsweise 50 bis 70 Prozent der reifen Eizellen von einer Chromosomenanomalie betroffen (3).
 Jg. 105
 Heft 11
 14. März 2008
Deutsches Ärzteblatt
TABELLE 1
Polkörperdiagnostik (PKD) versus Präimplantationsdiagnostik (PID)
Polkörperdiagnostik
Präimplantationsdiagnostik
Vorteile
Vorteile
Polkörper sind keine embryonalen Zellen
Maternales und paternales Erbgut
beurteilbar
Polkörper verzichtbar für weitere
embryonale Entwicklung
Breiteres Indikationsspektrum
Ggf. größere diagnostische Sicherheit
durch Untersuchung mehrerer Zellen
Nachteile
Nachteile
Information nur über maternales Erbgut
Entnahme embryonaler Zellen
Eingeschränktes diagnostisches Spektrum
Potenzielle Einschränkung der
embryonalen Entwicklungsmöglichkeiten durch Blastomerenbiopsie
Dies erklärt das steigende Abortrisiko bei Patientinnen mit höherem mütterlichem Alter. Ein natürlicher Verlust von Embryonen mit abweichendem
Chromosomensatz setzt bereits in frühen embryonalen Entwicklungsphasen ein und gilt als einer der
verantwortlichen Faktoren für die vergleichsweise geringe Fertilität des Menschen (4). Neuere Daten belegen jedoch auch bei jungen Frauen erhebliche individuelle Unterschiede bezüglich der Zahl chromosomal
auffälliger Eizellen und Embryonen (5, 6, 7). Über
90 Prozent der embryonalen Chromosomenanomalien
sind maternalen Ursprungs.
Die Aneuploidieraten in Spermien sind bei normalem väterlichen Karyotyp als gering einzustufen (1
bis 2,5 Prozent), steigen aber mit zunehmender Einschränkung der Spermaqualität signifikant an. Trotzdem tragen Spermien mit abweichender Chromosomenkonstitution selbst bei Verfahren der künstlichen
Befruchtung nur geringfügig zum embryonalen Aneuploidierisiko bei (8).
Indikationen zur Polkörperbiopsie
In Deutschland zielt die Polkörperdiagnostik hauptsächlich auf verbesserte Behandlungserfolge der assistierten Reproduktion und nur in Einzelfällen auf die
spezifische Diagnostik monogener Erkrankungen (9,
10) oder maternaler Translokationen (11).
Im Rahmen der assistierten Reproduktion müsste
die Identifikation chromosomal normaler Eizellen
durch die Polkörperdiagnostik höhere Implantationsund Geburtenraten ermöglichen.
Dies könnte insbesondere für Patientinnen von Vorteil sein, bei denen erhöhte Raten aneuploider Eizellen zu erwarten sind. Dies ist etwa der Fall bei höherem Lebensalter oder bei maternalen Translokationen,
und eventuell auch dann, wenn eine Implantation nach
Embryotransfer („Implantationsversagen“) wiederholt ausbleibt oder bei ungeklärten rezidivierenden
Spontanaborten.
191
MEDIZIN
Meiose mit Bildung
des ersten und
zweiten Polkörpers
(PK)
GRAFIK 1
Labortechnische Voraussetzungen
und diagnostische Sicherheit
Labortechnisch kritische Aspekte der Polkörperdiagnostik umfassen:
die atraumatische Eröffnung der äußeren Eizellhülle (Zona pellucida)
die zeitgerechte Entnahme der vollständigen Polkörper
die präzise und umfassende genetische Diagnostik.
Das Eizelltrauma nach laservermittelter Eröffnung
der Zona pellucida wird mit circa 0,5 bis 1 Prozent
angegeben (12). Essenziell bleiben jedoch eine umfangreiche Laborroutine und technische Erfahrung
der beteiligten Biologen und Genetiker. Bei der Aneuploidiediagnostik kann sich der theoretische Vorteil
der PKD statistisch und klinisch erst auswirken, wenn
Zeitlicher Ablauf
der Polkörperdiagnostik; NVK,
Nukleolus-Vorläuferkörperchen
192
GRAFIK 2
methodenimmanente technische Risiken, wie zum
Beispiel Eizelltraumata und Fehldiagnosen, minimiert
werden.
Bei der Präimplantationsdiagnostik wurde beobachtet, dass bei Entnahme von ein oder zwei Blastomeren eine signifikante Reduktion des Implantationspotenzials der Embryonen resultieren kann (13, 14,
15). Das methodische Vorgehen muss im Hinblick auf
die Polarität des frühen Embryos kritisch hinterfragt
werden, weil bereits im Vier-Zellstadium alle Blastomere Differenzierungsmarker aufweisen (16). Die
Entfernung einzelner Blastomere könnte die Polarität
des Embryos und damit sein weiteres Entwicklungspotenzial beeinflussen, auch wenn für die verbleibenden Zellen des Präimplantationsembryos eine gewisse
kompensatorische Plastizität postuliert wird. Bei der
PKD werden lediglich Polkörper entnommen, die keine physiologische Bedeutung für die weitere Embryonalentwicklung haben. Ob aus diesem Grund die PKD
der PID im Rahmen der Aneuploidiediagnostik überlegen ist, müssen Studien zeigen.
Methoden zum Nachweis chromosomaler
Fehlverteilungen
Nach Biopsie des ersten und zweiten Polkörpers erfolgt die Darstellung verschiedener Chromosomen
(zumeist der Chromosomen 13, 16, 18, 21, 22) mit
einer Mehrfachproben-Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH). Meiotische Fehlverteilungen der genannten Chromosomen sind häufige Ursache für
Monosomien und Trisomien bei klinisch nachweisbaren Schwangerschaften und führen in hohem Prozentsatz zu Fehlgeburten. Bei der fluoreszenzmikroskopischen Auswertung wird bestimmt, wie viele Kopien
der untersuchten Chromosomen/Chromatiden im ersten beziehungsweise zweiten Polkörper vorhanden
sind.
Aus dem Ergebnis kann man indirekt auf den Chromosomensatz der Eizelle schließen. Mit der gegenwärtigen FISH-Technik können bis zu sechs Chromosomen in einer Bestimmung erfasst werden (17). Im
Zeitrahmen, den das Embryonenschutzgesetz vorgibt,
sind maximal zwei Bestimmungsansätze mit der Analyse von insgesamt zehn bis zwölf Chromosomen
durchführbar, was diese Untersuchungsmethode erheblich limitiert. Die Aussagekraft des Verfahrens
wird weiterhin durch den sogenannten FISH-drop-out
eingeschränkt, bei dem eine FISH-Sonde das zu untersuchende Chromosom nicht darstellt, obwohl es eigentlich vorhanden ist. Die Häufigkeit des FISHdrop-out wird mit zwei bis drei Prozent pro untersuchtes Chromosom veranschlagt.
Weitere Methoden zur simultanen Darstellung aller
Chromosomen wurden in diesem Zusammenhang bereits geprüft, sind aber entweder aus technischen
Gründen nicht praktikabel (18, 19) oder in der Zeitvorgabe des Embryonenschutzgesetzes trotz kürzlich
erreichter technischer Fortschritte noch nicht anwendbar (zum Beispiel comparative genomische Hybridisierung [CGH] und Chiptechnologie) (20–24).
 Jg. 105
 Heft 11
 14. März 2008
Deutsches Ärzteblatt
MEDIZIN
Diagnostik monogener Erkrankungen
Die Polkörperdiagnostik kann zur Untersuchung monogener Erkrankungen herangezogen werden, ist aber
der Präimplantationsdiagnostik in Praktikabilität und
Diagnosesicherheit klar unterlegen. Physiologische
Abläufe während der Meiose – wie der Austausch genetischen Materials zwischen den homologen Chromosomen in der Prophase der ersten Reifeteilung
(Crossing-over) gegebenenfalls kombiniert mit einer
vorzeitigen Chromatidensegregation – reduzieren die
Aussagekraft dieser Methode und machen die Analyse
des ersten und zweiten Polkörpers zur Sicherung einer
korrekten Diagnose zwingend notwendig.
Bei monogenen Erkrankungen erfolgt der Nachweis der krankheitsspezifischen Mutation über eine
Polymerase-Kettenreaktion (PCR). Neben der Kontaminationsgefahr bei Einzelzell-PCR sind methodeninhärente Probleme, wie die ausschließliche Amplifikation eines der zu untersuchenden Krankheitsallele
(Allele-drop-out) zu berücksichtigen. Ein Amplifikationsversagen tritt bei Einzelzell-PCRs in 10 bis
20 Prozent der Fälle auf (25) und kann unerkannt zu
Fehldiagnosen führen.
Ein grundsätzlicher Nachteil der Polkörperdiagnostik besteht darin, dass nur das mütterliche Erbgut untersucht und eine Aussage über mögliche paternale
Faktoren nicht getroffen werden kann. Dies wäre bei
maternalen autosomal-dominanten oder x-chromosomalen Erkrankungen maternalen Ursprungs akzeptabel, weil alle mutationstragenden Eizellen unabhängig von der genetischen Konstitution des Vaters zu einem erkrankten Kind führen.
Auch bei der Diagnostik rezessiver Erbgänge müssen
alle mutationstragenden Eizellen (statistisch 50 Prozent) verworfen werden, obwohl die Krankheit sich nur
bei 25 Prozent der entstehenden Embryonen manifestieren würde. Der Grund dafür ist, dass nur 50 Prozent der
Spermien ebenfalls die Krankheitsanlage tragen.
Entstehung
numerischer
Chromosomenaberrationen
(Trisomie/Monosomie) bei der
Bildung des ersten
Polkörpers
GRAFIK 3
Prädiktiver Wert der Polkörperbiopsie
bei der Aneuploidiediagnostik
Schätzungen zur Diagnosesicherheit der Polkörperbiopsie basieren auf Daten aus Abortmaterial. Ausgehend von chromosomenspezifischen Trisomieraten
in Abortmaterial wurde veranschlagt, dass durch
Analyse der Chromosomen 13, 16, 18, 21 und 22
etwa 50 Prozent der Chromosomenaberrationen, die
bei Fehlgeburten im ersten Trimenon auftreten, erfasst
würden (e1). Die geringe Zahl der durch Polkörperbiopsie mit FISH erkennbaren Chromosomen
stellt also eine klare Limitation der Methode dar.
Vergleichende Untersuchungen von Eizellen mitsamt zugehörigen ersten Polkörpern durch FISH
und CGH zeigten, dass bei Einsatz von fünf FISHSonden nur 37 Prozent der tatsächlich vorhandenen
Chromosomenanomalien erkannt wurden. Die Nachweisrate steigt beim Einsatz von zwölf FISH-Son-
TABELLE 2
Ergebnisse der PKD zur Aneuploidie-Testung bei Frauen zwischen 35 und 39 Jahren und
mindestens 2 vorausgegangenen IVF-Versuchen
PKD-Gruppe
Kontrolle
Behandlungszyklen
159
163
Statistik
Alters-Median
37,8
36,9
n.s.
Transferrate
89,3 % (142/159)
90,2 % (147/163)
n.s.
Embryonen/Transfer
1,77 (251/142)
2,02 (297/147)
P < 0,05
Biochemische SS-Rate/Transfer
31,7 % (45/142)
31,9 % (47/147)
n.s.
Klinische SS-Rate/Transfer
28,9 % (41/142)
21,8 % (32/147)
n.s.
Implantationsrate
17,5 % (44/251)
11,8 % (35/297)
P < 0,05
Abortrate
19,5 % (8/41)
28,1 % (9/32)
n.s.
Geburtenrate/Zyklus
20,8 % (33/159)
14,1 % (23/163)
n.s.
Geburtenrate/Transfer
23,2 % (33/142)
15,6 % (23/147)
P = 0,1
Zur statistischen Analyse wurden ANOVA und Chi-square-Test eingesetzt;
PKD, Polkörperdiagnostik; IVF, In-vitro-Fertilisation; n.s., nicht signifikant
 Jg. 105
 Heft 11
 14. März 2008
Deutsches Ärzteblatt
193
MEDIZIN
TABELLE 3
Ergebnisse der PKD zur Aneuploidie-Testung bei Frauen 40 Jahren
PKD-Gruppe
Kontrolle
Behandlungszyklen
103
110
Transferrate
80,6 % (83/103)
92,7 % (102/110)
Statistik
n.s.
Embryonen/Transfer
1,75 (145/83)
2,03 (207/102)
P < 0,05
Biochemische SS-Rate/Transfer
20,5 % (17/83)
18,6 % (19/102)
n.s.
Klinische SS-Rate/Transfer
14,5 % (12/83)
14,7 % (15/102)
n.s.
Implantationsrate
9,7 % (14/145)
7,2 % (15/207)
n.s.
Abortrate
14,3 % (2/14)
46,7 % (7/15)
P = 0,06
Geburtenrate/Zyklus
9,8 % (10/103)
7,3 % (8/110)
n.s.
Geburtenrate/Transfer
12,0 % (10/83)
7,8 % (8/102)
n.s.
Zur statistischen Analyse wurden ANOVA und Chi-square-Test eingesetzt;
PKD, Polkörperdiagnostik
den auf 67 Prozent der durch CGH diagnostizier-baren Aneuploidien der Eizell-/Polkörperpaare (13, 22,
23).
Die zusätzliche Analyse des zweiten Polkörpers
verbessert die Nachweisraten chromosomaler Fehlverteilungen deutlich. Eine Untersuchungsreihe an
10 317 Oozyten aus 1 551 IVF-Zyklen (e2) fand bei
FISH-Analyse des ersten und zweiten Polkörpers für
fünf Chromosomen (Chromosom 13, 16, 18, 21, 22)
eine Aneuploidierate von 61,8 Prozent. Ein Drittel der
entdeckten Aneuploidien entstand während der zweiten Reifeteilung und war somit nur im zweiten Polkörper nachweisbar (6, e2, e3).
Während die Aneuploidieraten in Eizellen mit dem
mütterlichen Alter steigen (6, e3), zeigen postmeiotische Anomalien, die während der mitotischen Teilungen des frühen Embryos entstehen (zum Beispiel
Chromosomenmosaike) in allen Altersgruppen vergleichbare Inzidenzen.
Postmeiotische Chromosomenanomalien, nicht jedoch Aneuploidien, korrelieren eindeutig mit veränderter Morphologie und reduzierter Teilungsgeschwindigkeit der betroffenen Embryonen (e3). Da
laut Embryonenschutzgesetz die Auswahl der Eizellen für den späteren Embryotransfer bereits im Vorkernstadium erfolgen muss, können die genannten
Beurteilungskriterien der Embryonenqualität in
Deutschland klinisch nicht genutzt werden.
Der Karyotyp der reifen Eizelle ist nach neueren
Studien der hauptsächliche determinierende Faktor
des Entwicklungspotenzials der resultierenden Embryonen. Die Mehrzahl der euploiden Eizellen entwickelt sich zu euploiden Embryonen, die wiederum
in einem wesentlich höheren Prozentsatz das Blastozystenstadium erreichen als Embryonen mit Chromosomenanomalien (93 versus 21 Prozent) (e4). Die
Aneuploidiediagnostik ist somit gerade in Deutschland ein wichtiges Instrument zur Identifikation von
Eizellen mit hohem Entwicklungspotenzial.
194
Während Chromosomenanomalien mit Ursprung in
der Meiose alle Zellen des Embryos betreffen, können
postmeiotische Aneuploidien im Hinblick auf die Zahl
betroffener Blastomeren und die Auswirkungen auf
die weitere Entwicklung des Embryos heterogen sein.
Die hohe Diskordanz der Chromosomenbefunde,
die im Rahmen der PID an verschiedenen Blastomeren desselben Embryos erhoben wurden (7, e5), und
die Festlegung adäquater Konsequenzen bei pathologischen Befunden stellen derzeit ein signifikantes
praktisches Problem der Präimplantationsdiagnostik
dar (e5, e6).
Ergebnisse der PKB
zum Aneuploidiescreening
Wie bei der Präimplantationsdiagnostik (12, 15, e6,
e7) ist der Nutzen der Aneuploidietestung bei der Polkörperbiopsie im Hinblick auf eine Steigerung der Erfolgsraten der extrakorporalen Befruchtung zurzeit
noch umstritten.
International wird die Polkörperdiagnostik zum
Aneuploidienachweis in großem Umfang nur von der
Arbeitsgruppe um Verlinsky eingesetzt. Die umfangreichste retrospektive Ergebnisdokumentation dieser
Gruppe umfasst mehr als 1 200 Behandlungszyklen
bei Patientinnen mit einem Durchschnittsalter von
38,5 Jahren und nicht näher definierter reproduktionsmedizinisch „schlechter Prognose“. Die klinische
Schwangerschaftsrate aller Zyklen mit Embryotransfer nach Analyse von fünf Chromosomen wurde mit
22 Prozent angegeben. Durchschnittlich wurden 2,35
Embryonen übertragen (e8). Eine Kontrollgruppe
wird nicht präsentiert.
Das Deutsche IVF-Register (DIR), das alle in
Deutschland durchgeführten IVF-Zyklen prospektiv
erfasst, zeigt für alle Patientinnen über 35 Jahre nach
regulärer IVF ohne Polkörperdiagnostik eine klinische Schwangerschaftsrate pro Embryotransfer von
21,3 Prozent (DIR 2003). Eine Auswertung der PKD
 Jg. 105
 Heft 11
 14. März 2008
Deutsches Ärzteblatt
MEDIZIN
bei 460 Frauen aus einem deutschen IVF-Zentrum erbrachte, wie in der Arbeit von Verlinsky (e6), klinische Schwangerschaftsraten, die bei fehlender eigener
Kontrollgruppe sogar unter den Vergleichsdaten des
DIR liegen (e9).
Zum Nachweis des effektiven Nutzens der PKD
zur Aneuploidiediagnostik sind daher kontrollierte
Studien oder zumindest die Einbeziehung einer zentrumsbezogenen Kontrollgruppe zwingend erforderlich. Unter dieser Maßgabe haben die Autoren nach
Optimierung der Labortechniken eigene, prospektiv
in einem DIR-kompatiblen Erfassungsprogramm dokumentierte Behandlungsdaten nach Zyklen mit
und ohne PKD ausgewertet. Die Ergebnisse für die
Untergruppe der Frauen im Alter von 35 bis 39 Jahre
mit mindestens zwei vorausgegangenen IVF-/ICSIBehandlungsversuchen sind in Tabelle 2 dargestellt.
Diese Daten zeigen, dass trotz einer geringeren
Zahl transferierter Embryonen in der PKD-Gruppe
signifikant höhere Implantationsraten erzielt werden
konnten.
Eine Auswertung für Patientinnen über 39 Jahre
lässt erkennen, dass nach Durchführung einer PKD
bei vergleichbarer klinischer Schwangerschaftsrate
die Abortrate abnimmt (Tabelle 3). Diese Ergebnisse
weisen darauf hin, dass ein indikationsbezogener Einsatz der PKD, zum Beispiel bei erhöhtem Patientenalter, durchaus vorteilhaft sein könnte. Weitere Untersuchungen an größeren Patientenkollektiven und unter
standardisierten Laborbedingungen sind aber zur klinischen und wissenschaftlichen Evaluierung der PKD
unbedingt erforderlich. Eine eingeleitete Multicenterstudie konnte aufgrund unterschiedlicher Laborroutine und Biopsietechniken nicht fortgesetzt werden.
Ausblick
Die Polkörperdiagnostik ist eine neue Methode zur indirekten genetischen Untersuchung der Eizelle, deren
therapeutischer Nutzen bei individuellen Patientengruppen noch eindeutig belegt werden muss. Obwohl
bereits in mehreren deutschen Labors etabliert, ist die
Polkörperbiopsie technisch anspruchsvoll und keine
Routinemethode, die unkritisch in großem Umfang
eingesetzt werden sollte.
Parallel zur klinischen Evaluierung und Definition
klarer Indikationsgruppen ist eine weitere Optimierung der Labortechniken wünschenswert. Dazu
gehören Verbesserungen der Biopsietechniken und
der Kryokonservierung von Eizellen nach Polkörperbiopsie sowie die Erhöhung der Zahl untersuchter relevanter Chromosomen bei der Aneuploidiediagnostik. Unbestritten ist, dass in den nächsten Jahren die
Weiterentwicklung molekulargenetischer Methoden
auch die klinische Bedeutung der Polkörperdiagnostik
beeinflussen wird.
Als wesentlicher Nachteil der Polkörperdiagnostik
gegenüber der Präimplantationsdiagnostik durch Blastomerenbiopsie wird bestehen bleiben, dass paternale Faktoren nicht und monogene Erkrankungen nur
eingeschränkt diagnostizierbar sind. Zu betonen ist
 Jg. 105
 Heft 11
 14. März 2008
Deutsches Ärzteblatt
weiterhin, dass die Polkörperbiopsie keine vorgezogene Pränataldiagnostik darstellt und diese nicht ersetzen kann.
In Kenntnis dieser Einschränkungen ist die Polkörperdiagnostik zum Beispiel zur Aneuploidietestung
dennoch ein Schritt in die richtige Richtung als indikationsbezogene Ergänzung einer Sterilitätstherapie
unter den limitierten Bedingungen des deutschen Embryonenschutzgesetzes.
Interessenkonflikt
Die Autoren erklären, dass kein Interessenkonflikt im Sinne der Richtlinien
des International Committee of Medical Journal Editors besteht.
Manuskriptdaten
eingereicht: 6. 7. 2006, revidierte Fassung angenommen: 16. 10. 2007
LITERATUR
1. Verlinsky Y, Ginsberg N, Lifchez A, Vale J, Moise J, Strom CM:
Analysis of the first polar body: preconception genetic diagnosis.
Hum Reprod 1990; 5: 826–9.
2. Handyside AH, Pattinson JK, Penketh RJ, Delhanty JD, Winston
RM, Tuddenham EG: Biopsy of human preimplantation embryos
and sexing by DNA amplification. Lancet 1989; 18: 347–9.
3. Hassold T, Jacobs PA, Leppert M, Sheldon M: Cytogenetic and
molecular studies of trisomy 13. J Med Genet 1987; 24: 725–32.
4. Bahce M, Cohen J, Munne S: Preimplantation genetic diagnosis
of aneuploidy: were we looking at the wrong chromosomes? J Assist Reprod Genet 1999; 16: 176–81.
5. Munné S, Sandalinas M, Magli C, Gianaroli L, Cohen J, Warburton
D: Increased rate of aneuploid embryos in young women with previous aneuploid conceptions. Prenat Diagn 2004; 24: 638–43.
6. Munné S, Sandalinas M, Escudero T et al.: Improved implantation
after preimplantation genetic diagnosis of aneuploidy. Reprod
Biomed Online 2003; 7: 91–7.
7. Baart EB, Martini E, van den Berg I et al.: Preimplantation genetic
screening reveals a high incidence of aneuploidy and mosaicism
in embryos from young women undergoing IVF. Hum Reprod
2006; 21: 223–33.
8. Gianaroli L, Magli MC, Cavallini G et al.: Frequency of aneuploidy
in sperm from patients with extremely severe male factor infertility. Hum Reprod 2005; 20: 2140–52.
9. Hehr U, Gross C, Paulmann B, Seifert B, Hehr A: Polkörperdiagnostik für monogene Erkrankungen am Beispiel von Chorea Huntington und Norrie-Syndrom. Med Genetik 2004; 4: 422–7.
10. Tomi D, Schultze-Mosgau A, Eckhold J et al.: First pregnancy and
life birth after preimplantation genetic diagnosis by polar body
analysis for mucopolysaccharidosis type I. Reprod Biomed Online
2006; 12: 215–20.
11. Montag M, Schulze-Masgau A, van der Ven K: Polkörperdignostik
bei zytogenetischer Prädisposition. Gynäkologische Endokrinologie 2007; 5: 21–5.
12. Montag M, van der Ven K, van der Ven H: Erste klinische Erfahrungen mit der Polkörperdiagnostik in Deutschland. J Fertil Reprod
2002; 4: 7–12.
13. Cohen J, Wells D, Munné S: Removal of 2 cells from cleavage
stage embryos is likely to reduce the efficacy of chromosomal tests
that are used to enhance implantation rates. Fertil Steril 2007;
87: 496–503.
14. Magli MC, Gianaroli L, Ferraretti AP, Toschi M, Esposito F, Fasolino
MC: The combination of polar body and embryo biopsy does not
affect embryo viability. Hum Reprod 2004; 19: 1163–9.
15. Mastenbroek S, Twisk M, van Echten-Arends J et al.: In vitro fertilization with preimplantation genetic screening. N Engl J Med
2007: 357: 9–17.
195
MEDIZIN
16. Edwards RG und Hansis C: Initial differentiation of blastomeres in
4-cell human embryos and its significance for early embryogenesis and implantation. Reprod Biomed Online 2005: 11: 206–18.
17. Montag M, Limbach N, Sabarstinski M, van der Ven K, Dorn C, van
der Ven H: Polar body biopsy and aneuploidy testing by simultaneous detection of 6 chromosomes. Prenatal Diag 2005; 25:
867–71.
18. Sandalinas M, Marquez C, Munne S: Spectral karyotyping of
fresh, non-inseminated oocytes. Mol Hum Reprod 2002; 8:
580–5.
19. Gutierrez-Mateo C, Benet J, Starrke H et al.: Karyotyping of human oocytes by cenM-FISH, a new 24-colour centromere-specific
technique. Hum Reprod 2005; 20: 3395–401.
20. Voullaire L, Wilton L, McBain J, Callaghan T, Williamson R:
Chromosome abnormalities identified by comparative genomic
hybridization in embryos from women with repeated implantation
failure. Mol Hum Reprod 2002; 8: 1035–41.
21. Wells D, Escudero T, Levy B, Hirschborn K, Delhanty JD, Munne S:
First clinical application of comparative genomic hybridization and
polar body testing for preimplantation genetic diagnosis of aneuploidy. Fertil Steril 2002; 78: 543–9.
22. Gutierrez-Mateo C, Benet J, Wells D et al.: Aneuploidy study
of human oocytes first polar body comparative genomic hybridization and metaphase II fluorescence in situ hybridization analysis.
Hum Reprod 2004; 19: 2859–68.
23. Gutierrez-Mateo C, Wells D, Benet J et al.: Reliability of comparative genomic hybridization to detect chromosome abnormalities in
first polar bodies and metaphase II oocytes. Hum Reprod 2004;
19: 2118–25.
24. Landwehr M, Montag M, van der Ven K, Weber R: Rapid comparative genomic hybridization for prenatal diagnosis and its application to aneuploidy sreening of human polar bodies. Fertil Steril: im
Druck.
25. Rechitsky S, Strom C, Verlinsky O et al.: Accuracy of preimplantation diagnosis of single-gene disorders by polar body analysis of
oocytes. J Assist Reprod Genet 1999; 16: 192–8.
Anschrift für die Verfasser
Prof. Dr. med. Hans van der Ven
Abteilung für Gynäkologische Endokrinologie und Reproduktionsmedizin
Zentrum für Geburtshilfe und Frauenheilkunde
Universitätsklinikum Bonn
Sigmund-Freud-Straße 25, 53105 Bonn
SUMMARY
Polar Body Diagnosis – A Step in The Right Direction?
Introduction: Polar body diagnosis (PBD) is a new diagnostic method
for the indirect genetic analysis of oocytes, which is carried out as
part of in vitro fertilization. The biopsy of polar bodies is technically
demanding and cannot be adopted uncritically a routine practice,
in the absence of robust data to support this laboratory procedure.
Methods: Selective literature review and analysis of own PBD data.
Results: The main application of PBD is the detection of chromosomal
aneuploidies and maternally inherited translocations in oocytes. The
major disadvantage of PBD is that the paternal contribution to the
genetic constitution of the developing embryo cannot be evaluated.
Moreover, the potential value of polar body biopsy for the diagnosis of
monogenetic diseases is limited. Discussion: The role of PBD in improving of success rates in assisted reproduction requires evaluation
in further clinical trials. For maternal translocations, PBD can be used
to reduce the risk of miscarriage. Rapid development in the field of
molecular diagnostic and biopsy techniques will also influence PBD
and will most likely allow wider application of this method in the near
future.
Dtsch Arztebl 2008; 105(11): 190–6
DOI: 10.3238/arztebl.2008.0190
Key words: polar body diagnosis, aneuploidy testing, in vitro fertilization, infertility, oocyte
@
The English version of this article is available online:
www.aerzteblatt-international.de
eLiteratur:
www.aerzteblatt.de/lit1108
REFERIERT
ASS-300 senkt Risiko für Kolonkarzinom
Aspirin in biologisch relevanter Dosis kann die Häufigkeit des kolorektalen Karzinoms reduzieren. Jedoch kann wegen der möglichen Risiken bei
einer Langzeiteinnahme und der Verfügbarkeit alternativer Präventionsstrategien die Aspirineinnahme zur Krebsprävention der Allgemeinbevölkerung nicht empfohlen werden. In Großbritannien wurden in den späten 1970er-Jahren und frühen 1980er-Jahren zwei große randomisierte
Studien durchgeführt – die British Doctors Aspirin Study und die „UK-TIA
Aspirin Study“. Die Langzeitergebnisse (Untersuchungszeitraum > 20
Jahre) der UK-TIA-Studie wurden erst kürzlich präsentiert, weil mit einer
hohen Verzögerung der Aspirinwirkung auf die Entwicklung des kolorektalen Karzinoms gerechnet werden musste. Schließlich dauert der Übergang eines gutartigen Adenoms in ein invasiv wachsendes Karzinom
(Adenom-Karzinom-Sequenz) mindestens 10 Jahre. In der Tat zeigten
die Ergebnisse, dass die Einnahme von 300 g (oder mehr) ASS über
mindestens fünf Jahre die Häufigkeit des kolorektalen Karzinoms um
37 % (Hazard ratio: 0,63; 95-%-KI: 0,47–0,85; von 3,8 % auf 2,5 %
absoluter Häufigkeit) zu senken vermochte. Die krebssenkende Wirkung
des Aspirins war dabei unabhängig von Alter, Geschlecht, ethnischer Zugehörigkeit oder Herkunftsland der untersuchten Personen. Die Wirkung
fand sich auch bei Personen mit Fällen von kolorektalem Karzinom bei
Verwandten ersten Grades, bei denen das Krebsrisiko um das Zwei- bis
Dreifache erhöht ist. Die Autoren kommen zu dem Schluss, dass die Einnahme von 300 mg ASS oder mehr für fünf Jahre bei der primären
Prävention des kolorektalen Karzinoms wirksam ist, allerdings mit einer
w
Latenzzeit von zehn Jahren.
Flossmann E et al.: Effect of aspirin on long-term risk of colorectal cancer: consistent evidence from randomized and observational studies. Lancet 2007; 369: 1603–13.
E-Mail: [email protected]
196
 Jg. 105
 Heft 11
 14. März 2008
Deutsches Ärzteblatt
MEDIZIN
ÜBERSICHTSARBEIT
Polkörperdiagnostik – ein Schritt in
die richtige Richtung?
Katrin van der Ven, Markus Montag, Hans van der Ven
eLITERATUR
e1. Eckel H, Wieacker P: Häufigkeit von Aneuploidien in Gameten und
Embryonen beim Menschen. Med Genetik 2004; 4: 398–403.
e2. Kuliev A, Cieslak J, Verlinsky Y: Frequency and distribution of chromosome abnormalities in human oocytes. Cytogenet Genome Res
2005; 111: 193–8.
e3. Munné S: Chromosome abnormalities and their relationship to morphology and development of human embryos. Reprod Biomed Online
2006; 12: 234–53.
e4. Sher G, Keskintepe L, Keskintepe M et al.: Oocyte karyotyping by
comparative genomic hybridization provides a highly reliable method
for selecting competent embryos, markedly improving in vitro fertilization outcome: a multiphase study. Fertil Steril 2007; 87:
1033–40.
e5. Coulam CB, Jeyendran RS, Fiddler M, Pergament E: Discordance
among blastomeres renders preimplantation genetic diagnosis for
aneuploidy ineffective. J Assist Reprod. Genet 2007; 24: 37–41.
e6. Donoso P, Staessen C, Fauser BCJM, Devroey P: Current value of
preimplantation genetic aneuploidy screening in IVF. Hum Reprod
Update 2007; 13: 15–25.
e7. Munné S, Fischer J, Warner A et al.: Preimplantation genetic diagnosis significantly reduces pregnancy loss in infertile couples: a multicenter study. Fertil Steril 2006; 85: 325–32.
e8. Kuliev A, Cieslak J, Ilkevitch Y, Verlinsky Y: Chromosomal abnormalities in a series of 6,733 human oocytes in preimplantation diagnosis
for age-related aneuploidies. Reprod Biomed Online 2003; 6: 54–9.
e9. Grossmann B, Schwaab E, Khanaga O, Hahn T, Schorsch M, Haaf T:
Aneuploidiediagnostik an Polkörpern nach ICSI bei 460 Frauen mit
multiplen Fehlgeburten, Implantationsversagen oder erhöhtem mütterlichen Alter. Med Genetik 2004; 4: 408–12.
 Jg. 105
 Heft 11
 14. März 2008
Deutsches Ärzteblatt
1
Herunterladen