The malonate decarboxylase enzyme system of - ETH E

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Diss. ETH No. 10766
The malonate decarboxylase enzyme system of
Malonomonas rubrai identification, purification and
biochemical characterization of components
A dissertation submitted to the
SWISS FEDERAL INSTITUTE OF TECHNOLOGY ZÜRICH
for the degreeof
DOCTOROF NATURAL SCffiNCES
presentedby
HUBERTFRANZPlUS HILBI
Dip!. Natw. ETH
bom May 30, 1965
citizenofZug (ZG) and Floms (SO)
accepted on the recommendation of
Prof. Dr. P. Dimroth, examiner
Prof. Dr. T. Leisinger, coexaminer
Zürich 1994
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ZUSAMMENFASSUNG
Malonomonas rubra, ein mikroaerotolerantes, strikt Na"-abhängiges Faulschlamm-
Bakterium, wächst anaerob auf Malonat als einziger Kohlenstoff- und Energiequelle.
Malonat Decarboxylase, das Schlüsselenzym dieser Fermentation, setzt dabei das
Substrat quantitativ zu Acetat und CO2 um. Die Energieausbeute dieser Reaktion
beträgt nur -17.4 kJ pro Mol, und daher muss die ATP-Synthese über chemiosmotische Prozesse erfolgen. Die Decarboxylierung von Malonat stellt ein chemisches
Problem dar, weil die C-C-Bindung für die Spaltung aktiviert werden muss. Ziel der
vorliegenden Arbeit war die Aufklärung der Malonat-Aktivierung und die
biochemische Charakterisierung der Malonat-Decarboxylase.
Zellfreier Extrakt von M. rubra decarboxyliert Malonat mit einer beträchtlichen
Aktivität von 2.7 U/mg Protein. Zugabe von ATP und Acetyl-CoA zeigt keine
Wirkung in frisch präpariertem Extrakt Da Malonyl-CoA zehnmallangsamer als freies
Malonat umgesetzt wird, ist letzteres offensichtlich das Substrat Indizien für einen
Radikal-Mechanismus sind keine gefunden worden. Stattdessen wird Malonat
Decarboxylase durch eine Acetylierung aktiviert, ein Mechanismus, der für Citrat
Lyase bekannt war. Aktives Enzym wird vollständig gehemmt durch desacetylierende
Reagentien wie Hydroxylamin, Mercaptoethanol oder Thiocyanat Diese Inhibition ist
sowohl enzymatisch (mittels einer spezifischen Ligase und ATP/Acetat) als auch
chemisch (mit Acetanhydrid) reversibel Dithioerythritol erhöht die reaktivierbare
Aktivität, was auf die Beteiligung eines Thiols schliessenlässt Im Verlauf der Katalyse
wird der Enzym-gebundene Acetyl-Rest durch einen Malonyl-Rest ersetzt Das
aktivierte Substrat der Malonat Decarboxylase ist daher ein Protein-gebundener
Thioester der Malonsäure, nämlich Malonyl-Thio-Acyl-Carrier-Protein (Malonyl-SACP).
Acetyl-S-Acyl Carrier Protein: Malonat Acyl Carrier Protein-SH Transferase
katalysiert die eigentliche Aktivierung von Malonat. Diese Transferase setzt als
nichtphysiologische Substrate auch die entsprechenden Coenzym A (CoA)-Derivate
um. Mit Malonyl-CoA und Acetat als Alternativ-Substraten ist eine lösliche CoA
Transferase gereinigt worden, deren Menge 4 % des Proteins im Extrakt beträgt und
die an der Malonat Decarboxylierung beteiligt ist Das monomere Enzym besitzt ein
apparentes Molekulargewicht von 67'000 und ein pH-Optimum von 5.5. Die KmWerte für die CoA Substrate sind 1.9 mM (Malonyl-CoA) und 6.9 mM (Acetyl-CoA)
und damit etwa zwei Grössenordnungen grösser als diejenigen von physiologischen
CoA Transferasen. Der katalytische Mechanismus läuft nicht über ein kovalentes
Transferase-CoA Intermediat, das für physiologische CoA Transferasen nachgewiesen
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ist. Der Umsatz von CoA Derivativen ohne Beteiligung eines kovalenten Enzym-CoA
Intermediates ist ebenfalls von der Citrate Lyase bekannt
Das Malonat Decarboxylase System enthält neben cytoplasmatischen auch
Membran-gebundene Komponenten. Ausserdem ist Biotin als Cofaktor beteiligt, und
die Umsetzung von Malonat wird im Extrakt spezifisch durch Na" (Km = 0.8 mM)
oder U+ (Km = 3.3 mM) stimuliert Diese Eigenschaften sind typisch für NarTransport Decarboxylasen, die die Decarboxylierungs-Energie zum Aufbau eines
elektrochemischen Na"-Gradienten nutzen. Beim Wachstum von M. rubra auf Malonat
wird ein einziges Biotin Protein von ungewöhnlicher Grösse (120 kD) exprimiert
Aufgrund biochemischer Analysen (Inhibition durch Avidin, Western Blots) als auch
mittels Elektronen-Mikroskopie ist dieses Protein im Cytoplasma lokalisiert worden.
Das Malonat Decarboxylase Enzym System von Malonomonas rubra ist bezüglich
der Substrat-Aktivierung (Acetylierung, ACP-Thiol Transfer) mit der Citrat Lyase
verwandt, und es gleicht den Na+-Transport Decarboxylasen bezüglich der SubstratDecarboxylierung (Carboxyltransfer auf Biotin, Decarboxylierung des CÜ2-Biotin) und
der Energiekonservierung.
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SUMMARY
Malonomonas rubra, a microaerotolerant, strictly Na"-dependent bacterium
isolated from anoxic sediments grows anaerobically on malonate as sole source of
carbon and energy. Malonate decarboxylase, the key enzyme of this fermentation
pathway, decarboxylates the substrate quantitatively to acetate and C02. This reaction
yields only -17.4 kJ per mol and consequently, the ATP synthesis mandatorily involves
chemiosmotic processes. The decarboxylation of malonate imposes a chemical
problem, since the C-C-bond has to be activated for cleavage. Aim of the work
presented here was the elucidation of malonate activation and the biochemical
characterization of malonate decarboxylase.
Cell free extracts of M. rubra decarboxylate malonate with the considerable activity
of 2.7 U/mg protein, Addition of ATP and acetyl-CoA has no effect on freshly
prepared extracts. Since malonyl-CoA is decarboxylated ten times slower than free
malonate, the latter is apparently the substrate. No evidences for a radical mechanism
have been found. Instead. malonate decarboxylase is activated by an acetylation
reaction, a mechanism which is also known for citrate lyase. Active enzyme is
completely inhibited by deacetylating reagents such as hydroxylamine, mercaptoethanol
or thiocyanate. This inhibition is enzymatically (involving a specific ligase and
ATP/acetate) and chemically (with acetic anhydride) reversible. Dithioerythritol
increases the reactivatable acitvity, which implicates the participation of a thiol residue.
During catalysis the enzyme-bound acetyl-residue is exchanged for a malonyl-residue.
The activated substrate of malonate decarboxylase is, therefore, a protein-bound
thioester of malonate, i.e. malonyl-thio-acyl carrier prorein (malonyl-S-ACP).
Acetyl-S-acyl carrier protein: malonate acylcarrier protein-SH transferase catalyzes
the activation of malonate. This transferase also accepts the respective coenzyme A
(CoA) derivatives as nonphysiological substrates. With malonyl-CoA and acetäte as
alternative substrates a soluble transferase has been purified, which amounts to 4 % of
the total prorein in cell free extracts and which participates in the decarboxylation of
malonate. The monomeric enzyme has an apparent molecular weight of 67'000 and a
pH optimum of 5.5. The Km-values for the CoA substrates are 1.9 mM (malonyl-CoA)
and 6.9 mM (acetyl-CoA), respectively, and thus about two orders of magnitude
higher than those of physiological CoA transferases. The catalytic mechanism does not
involve the formation of a covalent transferase-CoA intermediate. which has been
demonstrated for the physiological transferases. CoA derivatives as alternative
substrates and a mechanism of CoA transfer which does not involve the participation
of a covalent enzyme-CoA intermediate are also knownfor citrate lyase.
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The malonate decarboxylase enzyme system contains cytoplasmic and membranebound components. Biotin is involved as cofactor, and in cell free extracts the
decarboxylation ofmalonate is specifically stimulated by Na"- (Km =0.8 mM) or li+ions (Km = 3.3 mM). These features are typical for Naf-transport decarboxylases
which use the decarboxylation energy to build up an electrochemical Nat-gradient,
Upon growth of M. rubra on malonate only one biotin protein is expressed, with the
unusually high molecular mass of 120 kD. This protein has been shown to be located in
the cytoplasm by means of biochemical techniques (inhibition with avidin, Western
blot) and by means of electron microscopy.
The malonate decarboxylase enzyme system of Malonomonas rubra is related to
citrate lyase with respect to substrate activation (acetylation, ACP-thiol transfer) and
similar to the Nar-transport decarboxylases with regard to the decarboxylation of the
substrate (carboxyltransfer to biotin, decarboxylation of a COrbiotin) and the energy
conservation strategy.
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