Untersuchungsprogramm
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ͲD>ͲϭϳϭϮϬͲϬϭͲϬϬ L abo r Ende r s Prof. Dr. med. Gisela Enders & Kollegen MVZ Medizinische Diagnostik 2012 2013 L abo r Ende r s U nt er suchung sprogr amm Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Rosenbergstraße 85 · 70193 Stuttgart Postfach 10 12 36 · 70011 Stuttgart Tefefon 07 11/63 57-0 Telefax 07 11/63 57-202 [email protected] www.labor-enders.de Untersuchungsprogramm 2012 / 2013 STUTTGART Rosenbergstraße 85 · 70193 Stuttgart Email: [email protected] Internet: www.labor-enders.de ͲD>ͲϭϳϭϮϬͲϬϭͲϬϬ Telefon (Zentrale) Telefax (Zentrale) 07 11 / 63 57-0 07 11 / 63 57-202 Bakteriologie / Mykologie Endokrinologie Klinische Chemie / Hämatologie Hygiene Infektionsserologie Forensische Toxikologie Molekularbiologie Molekular-/ Pharmakogenetik Mutterschaftsvorsorge Parasitologie / Tbc-Diagnostik Pränataldiagnostik Versandmaterial, Fahrdienst 07 11 / 63 57-152 07 11 / 63 57-210 07 11 / 63 57-211 07 11 / 63 57-153 07 11 / 63 57-0 07 11 / 63 57-110 07 11 / 63 57-140 07 11 / 63 57-268 07 11 / 63 57-0 07 11 / 63 57-154 07 11 / 63 57-120 07 11 / 63 57-104 ESSLINGEN Hirschlandstraße 97 · 73730 Esslingen Telefon Telefax Befundauskunft 07 11 / 31 03-32 51 07 11 / 31 03-33 44 07 11 / 31 03-32 60 Akkreditiert nach DIN EN ISO/IEC 15189, 17025 und CAP CLIA Clinical Laboratory Improvement Amendments CLIA ID Number 99D1030870 So erreichen Sie uns: mit dem Auto: Richtung BietigheimBissingen Richtung Heilbronn B 10 Richtung Pforzheim Richtung Backnang Ludwigsburg B 27 A 81 B 14 Waiblingen Leonberg B 295 Labor Enders Richtung Schorndorf B 14/B 29 Esslingen Richtung Karlsruhe A8 B 10 Richtung Ulm Sindelfingen Richtung Singen B 29 Stuttgart Böblingen LeinfeldenEchterdingen B 27 A8 B 313 Richtung München Mit öffentlichen Verkehrsmitteln ab Hauptbahnhof: - mit Bus Linie 42 in Richtung Erwin-Schöttle-Platz bis zur Haltestelle Rosenbergplatz - S-Bahn in Richtung Schwabstraße (Linie 1-6) bis Haltestelle Schwabstraße, anschließend mit Bus Linie 42 Richtung Schlossplatz bis zur Haltestelle Rosenbergplatz 2 slin Bu Labor Enders ie 4 Haltestelle Rosenbergplatz S S-Bahn Haltestelle Schwabstraße Inhaltsverzeichnis Dienstzeiten und Telefonnummern ................................................................................ III Stichwortverzeichnis ....................................................................................................... V Allgemeines ...................................................................................................................... 1 Abkürzungen ........................................................................................................... 1 Allgemeine Hinweise ............................................................................................... 3 Schnelldiagnostik ..................................................................................................... 7 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge ............................................................... 9 Infektionsserologie / Virologie .................................................................................. 9 Mutterschaftsvorsorge / Pränataldiagnostik .......................................................... 75 Infektionserreger nach Symptomen ....................................................................... 80 Infektionserreger bei neonatalen Symptomen ....................................................... 91 Nukleinsäure-Diagnostik ............................................................................................... 95 Infektiologie ........................................................................................................... 95 Molekulargenetik ................................................................................................. 100 Pharmakogenetik und weitere prognostische Therapie-Marker .......................... 106 Arzneimittelrelevante pharmakogenetische Diagnostik ....................................... 111 Immunologie / Autoimmunerkrankungen .................................................................. 121 Zelluläre Immunologie ......................................................................................... 121 Immunglobuline / Komplementsystem ................................................................. 125 Entzündungsaktivität ........................................................................................... 127 Autoantikörper ..................................................................................................... 129 Rheumaserologie ................................................................................................ 144 Autoimmunerkrankungen (Profile) ....................................................................... 145 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie .................................................... 153 Funktionstests ..................................................................................................... 153 Endokrinologie ..................................................................................................... 160 Andrologie ........................................................................................................... 172 Gerinnung ............................................................................................................ 174 Hämatologie ........................................................................................................ 179 Blutgruppen-Serologie ......................................................................................... 183 Kardiale Marker ................................................................................................... 186 Klinische Chemie ................................................................................................. 187 Proteine / Transportproteine im Serum ................................................................ 196 Liquordiagnostik .................................................................................................. 198 Diabetes-Diagnostik ............................................................................................ 200 Allergiediagnostik ................................................................................................ 201 Vitamine & Spurenelemente ................................................................................ 202 Knochenstoffwechsel ........................................................................................... 205 Tumormarker ....................................................................................................... 206 Medikamente ....................................................................................................... 210 Urindiagnostik (ohne Infektionserreger) .............................................................. 220 Stuhl-Diagnostik (ohne Infektionserreger) ........................................................... 226 Forensische Toxikologie .............................................................................................. 229 Betäubungsmittelanalytik ..................................................................................... 229 Mikrobiologie ................................................................................................................ 237 Allgemeine Bakteriologie ..................................................................................... 237 Mykobakterien-Diagnostik (Tbc) .......................................................................... 247 Mykologie ............................................................................................................ 249 Parasitologie ........................................................................................................ 250 Hygieneuntersuchungen ...................................................................................... 262 Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung ............................................................. 267 Biozidprüfungen ................................................................................................... 267 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR I II Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Dienstzeiten und Telefonnummern Stuttgart Allgemeine Dienstzeiten: - Montag - Freitag 8:00 - 19:00 Uhr - Samstag 8:00 - 13:00 Uhr Probenannahme: - Montag - Freitag 8:00 - 19:30 Uhr - Samstag 8:00 - 12:00 Uhr Blutentnahme: - Montag - Freitag 9:00 - 16:00 Uhr Befundauskunft Zentrale 0711 6357-0 Infektionsserologie / Virologie Prof. Dr. med. Gisela Enders 0711 6357-121 Sekretariat: 0711 6357-120 Dr. med. M. Enders 0711 6357-117 Dr. med. F. Tewald 0711 6357-119 Dr. med. A. Bissinger 0711 6357-157 Klinische Chemie / Endokrinologie Dr. med. R. Alkier 0711 6357-211 Dr. med. K.-J. Lüthgens 0711 6357-210 Drogen und Medikamente Dr. rer. nat. V. Dangel 0711 6357-110 Prof. Dr. rer. nat. M. Möller 0711 6357-110 Immunhämatologie Dr. med. S. Rauch 0711 6357-228 Mikrobiologie Dr. med. T. Regnath 0711 6357-150 Dr. rer. nat. U. Bührlen 0711 6357-245 Parasitologie Prof. Dr. Dr. P. Kimmig 0711 6357-139 Dr. med. F. Tewald 0711 6357-119 Molekularbiologie Dr. rer. nat. G. Schalasta 0711 6357-140 Dr. rer. nat. M. Schmid 0711 6357-142 Molekulargenetik / Pharmakogenetik Dr. med. A. Vergopoulos Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 0711 6357-268 III Dienstzeiten und Telefonnummern Zelluläre Immunologie / Durchflusszytometrie Dr. rer. biol. hum. T. Meier 0711 6357-131 Probeneingang Dr. rer. nat. M. Bläse 0711 6357-267 Qualitätsmanagement Frau Dr. rer. nat. G. Wagner (QMB) 0711 6357-214 Frau Dr. rer. nat. D. Dirmeier (Stellvertretung) 0711 6357-214 Probenabholung, Transportkoordination und Versandmaterial, Herr Schmauß 0711 6357-104 Nachforderungen / Auftragsergänzungen per Fax 0711 6357-202 oder per Telefon 0711 6357-0 Abrechnung Rechnungsabteilung für Krankenhäuser, Laborärzte und stationäre Privatpatienten 0711 6357-235 Rechnungsabteilung für ambulante Privatpatienten und IGeL-Leistungen 0711 6357-236/244 Rechnungsabteilung für Kassenpatienten 0711 6357-237 Verwaltung Verwaltung, Herr Schneider 0711 6357-234 Personalabteilung, Frau P. Wagner 0711 6357-230 Buchhaltung, Herr Heide 0711 6357-258 EDV-Abteilung 0711 6357-231 Esslingen Probenannahme: - Montag - Sonntag 0:00 - 24:00 Uhr Sprechstunden: - Montag - Freitag 9:00 - 12:00 / 14:00 - 16:00 Uhr Befundauskunft 0711 3103-3260 Sekretariat Prof. Dr. med. R. Braun 0711 3103-3251 Abrechnung 0711 3103-3252 Durchwahl Prof. Dr. med. R. Braun 0711 3103-3250 Impressum 16. Auflage, Stand: 2013-05-07 (12:06) Verantwortlich für Inhalt und Redaktion: Dr. med. F. Tewald. Alle Rechte vorbehalten. Nachdruck, auch nur auszugsweise, nur mit Genehmigung der Verfasser. © Copyright Labor Enders IV Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Stichwortverzeichnis 5-Fluorouracil (Pharmakogenetik) 117 6-Mercaptopurin (Pharmakogenetik) 117 6-Thioguanin (Pharmakogenetik) 117 A-DNAse B 144 Abacavir (Pharmakogenetik) 119 ABCB1 109 Abklatschplatten (Hygieneuntersuchung) 262 Aborte, habituelle 78 Abstriche (Hygieneuntersuchung) 262 Abszessabstrich (Mikrobiologie) 240 Abszesse im Zahn-/Kieferbereich 243 ACE 100 ACE (Angiotensin Converting Enzyme) 187 Acenocoumarol (Pharmakogenetik) 115 Acetaminophen (Pharmakogenetik) 111 Acetylcholinesterase im Fruchtwasser 160 Acetylcholinrezeptor-AK 129 Acetylsalicylsäure (Pharmakogenetik) 111 AChR-AK (Acetylcholinrezeptor-AK) 129 Acrodermatitis chronica atrophicans 14 ACTH (Adrenocorticotropes Hormon) 160 ACTH-Stimulationstest (Kurztest) 153 Addison-Krankheit 147 Adenosinmonophosphat-Desaminase 1 106 Adenovirus-Infektionen 9 ADH (Antidiuretisches Hormon) 160 Adrenalin im Plasma 166 Adrenalin im Urin 165 Adrenocorticotropes Hormon (ACTH) 160 AFP (alpha-Fetoprotein) 161 AFP (Tumormarker) 206 AFP im Fruchtwasser 161 AHA (Histone-AAK) 134 AHG-Test, direkt (DAT) 183 AICAR-Transformyl./IMP-Cyclohydrolase 106 AIDS (HIV) 43 AIH (Autoimmunhepatitis) 145 Ajmalin (Pharmakogenetik) 111 AKS (Antikörpersuchtest) 183 Aktinomyzeten (Mikrobiologie) 244 Albumin im Serum 196 Albumin im Stuhl 226 Albumin im Urin 220 Aldosteron 160 Aldosteron, frei im Urin 160 Aldosteron-18-Glucuronid im Urin 161 Aldosteron-Suppressionstest 154 Alkal. Phosphatase, Plazenta-Isoenzym 208 Alkalische Leukozyten-Phosph. (ALP) 182 Alkalische Phosphatase (AP) 188 Alkalische Phosphatase, Isoenzyme 188 Alkoholscreening im Urin 229 allergenspezifisches IgE (RAST) 201 Allopurinol (Pharmakogenetik) 119 ALP (alk. Leukozyten-Phosphatase) 182 alpha-1-Antitrypsin im Serum 187 alpha-1-Antitrypsin im Stuhl 226 alpha-1-Antitrypsin-Defizienz 100 alpha-1-Antitrypsin-Genotypisierung 100 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR alpha-1-Fetoprotein (AFP) 161 alpha-1-Fetoprotein im Fruchtwasser 161 alpha-1-Fetoprotein, Tumormarker 206 alpha-1-Mikroglobulin im Urin 220 alpha-1-Protease-Inhibitor 187 alpha-1-Protease-Inhibitor-Genotyp 100 alpha-2-Makroglobulin im Urin 220 alpha-Glucosidase im Seminalplasma 172 alpha-HBDH 191 alpha-Tocopherol (Vitamin E) 204 Alprenolol (Pharmakogenetik) 114 ALT (GOT) 191 Aluminium im Serum 187 Alveolen-Basalmembran-AAK 129 AMA (antimitochondriale AAK) 129 AMH (Anti-Müller-Hormon) 161 Amikacin 210 Aminoacyl-tRNA-Synthetase-AAK 135 Aminolävulinsäure, delta- 224 Aminosäuren im Serum 187 Aminosäuren im Urin 221 Amiodaron 210 Amiodaron (Pharmakogenetik) 111 Amitriptylin 210 Amitriptylin (Pharmakogenetik) 112 AMLA (Herzmuskel-AAK) 134 Ammoniak im Plasma 187 Amodiaquin (Pharmakogenetik) 119 Amöbiasis 250 Amoxicillin (Pharmakogenetik) 112 AMP-Desaminase 100 AMP-Desaminase-Mangel 100 AMPD 100 Amphetamin (Pharmakogenetik) 119 Amphetamine im Serum (Bestätigung) 234 Amphetamine im Serum (Screening) 233 Amphetamine im Urin (Bestätigung) 231 Amphetamine im Urin (Screening) 229 Amphiphysin-AAK 129 Amphotericin B 210 Amprenavir (Pharmakogenetik) 119 Amylase 187 Amylase, Isoenzyme 188 Amyloid, beta- im Liquor 199 Amyloid-A-Protein im Serum (SAA) 128 ANA (antinukleäre AAK) 129 Anämieabklärung 180 Anästhetika (Pharmakogenetik) 116 Analgetika (Pharmakogenetik) 111 Anaplasma phagocytophilum 25 ANCA, perinukleär (p-ANCA) 137 ANCA, zytoplasmatisch (c-ANCA) 130 Ancylostoma duodenale (Hakenwurm) 257 Androstandiol-Glucuronid 161 Androstendion 161 Anforderungsscheine 3 Angel Dust im Serum (Bestätigung) 235 Angel Dust im Serum (Screening) 234 Angel Dust im Urin (Bestätigung) 232 Angel Dust im Urin (Screening) 230 Angioneurotisches Ödem, hereditäres 126 V Stichwortverzeichnis Angiotensin Converting Enzyme (ACE) 187 Angiotensin-Converting-Enzym-Gen 100 ANNA-1 134 ANNA-2 139 Anthrazykline (Pharmakogenetik) 117 Anti-alveoläre Basalmembran-AAK 129 Anti-Faktor Xa-Aktivität 176 Anti-Jo-1-Syndrom 145 Anti-Müller-Hormon 161 Anti-Phospho-Lipid-Syndrom$APS (Anti-Phospho-Lipid-Syndrom) 130 131 177 Anti-Phospholipid-Autoantikörper 131 Anti-Streptodornase B (A-DNAse B) 144 Anti-Synthetase-Syndrom 145 Antiarrhythmika (Pharmakogenetik) 111 Antiasthmatika (Pharmakogenetik) 112 Antibiotika (Pharmakogenetik) 112 Antidepressiva (Pharmakogenetik) 112 Antidiabetika (Pharmakogenetik) 113 Antidiuretisches Hormon (ADH) 160 Antiemetika (Pharmakogenetik) 113 Antiepileptika (Pharmakogenetik) 113 Antiglobulintest, direkt (DAT) 183 Antiglobulintest, indirekt (IAT) 183 Antihistaminika (Pharmakogenetik) 114 Antihumanglobulintest, direkt (DAT) 183 Antihypertonika (Pharmakogenetik) 114 Antikoagulantien (Pharmakogenetik) 115 Antikörpersuchtest 183 Antimitochondriale AAK (AMA) 129 Antimykotika (Pharmakogenetik) 115 Antinukleäre AAK (ANA) 129 Antiphospholipidsyndrom 145 Antistaphylolysin (ASTAL) 144 Antistreptolysin O (ASL) 144 Antithrombin-Aktivität 177 Antithrombin-III-Aktivität (AT III) 177 Antitrypsin 187 Anxiolytika (Pharmakogenetik) 118 AP (Alkalische Phosphatase) 188 AP, knochenspezifisch 205 AP, Plazenta-Isoenzym 208 AP-Isoenzyme 188 APC-Ratio 177 APC-Resistenz 177 APC-Resistenz, Genotyp 104 ApoB-Genotypisierung 100 ApoE-Genotypisierung 100 Apolipoprotein A1 (HDL-Protein) 188 Apolipoprotein B (LDL-Protein) 188 APS (Antiphospholipidsyndrom) 145 Arbovirosen 10 Aripiprazol (Pharmakogenetik) 116 Arthritiden, Arthralgien (DD) 89 Arthritis rheumatoide 150 Arthropode-borne Viruses (Arboviren) 10 ASCA (Saccharomyces-AK) 139 Ascaris lumbricoides (Spulwurm) 257 Asialoglycoprotein-Rezeptor-AAK 130 ASL (Antistreptolysin O) 144 ASLA (Herzmuskel-AAK) 134 VI ASMA 133 Aspergillose (Mikrobiologie) 249 Aspergillus-Antigen 11 Aspergillus-Infektionen 10 AST (GOT) 190 ASTAL (Antistaphylolysin) 144 Astrovirus-Infektionen 11 AT-III-Aktivität 177 Atazanavir (Pharmakogenetik) 119 ATIC 106 Atomoxetin (Pharmakogenetik) 112 Atorvastatin (Pharmakogenetik) 118 Atypische Cholinesterase 190 Atypische Mykobakterien 247 Augeninfektionen (DD) 89 Augeninfektionen (Mikrobiologie) 244 Autoimmunhämolytische Anämie 146 Autoimmunhepatitis (Diagnostik) 145 Azathioprin (Pharmakogenetik) 115 Azelastin (Pharmakogenetik) 114 B-type natriuretic peptide (BNP) 186 Babesien 250 Bakterielle Ruhr (Shigellose) 64 Bakterien (Nukleinsäurediagnostik) 97 Bakterizidie-Prüfung 267 BAL (Mikrobiologie) 238 BAL (Zelldifferenzierung) 122 Banden, oligoklonale, im Liquor 198 Bang, Morbus (Brucellose) 15 BAP 205 Barbiturate im Serum (Bestätigung) 234 Barbiturate im Serum (Screening) 233 Barbiturate im Urin (Bestätigung) 231 Barbiturate im Urin (Screening) 229 Bartonellen 11 Basale Mastzell-Tryptase 201 Basalmembran-AAK (-Alveolen) 129 Basalmembran-AAK (-Glomerulum) 133 Basedow’sche Erkrankung 148 Basophilen-Degranulationstest 121 Bazilläre Angiomatose 11 BCR/ABL-Translokation 101 Becherzell-AAK 130 Befundinterpretationen 6 Befundmitteilung 6 Belegzellen-AAK (Parietalzellen-AAK) 137 Bence-Jones-Protein i. S. (Kappa) 196 Bence-Jones-Protein i. S. (Lambda) 197 Bence-Jones-Proteine im Urin 221 Benzatropin (Pharmakogenetik) 119 Benzodiazepine im Serum (Bestätigung) 234 Benzodiazepine im Serum (Screening) 233 Benzodiazepine im Urin (Bestätigung) 231 Benzodiazepine im Urin (Screening) 229 Benzoylecgonin im Serum (Bestätigung) 234 Benzoylecgonin im Serum (Screening) 233 Benzoylecgonin im Urin (Bestätigung) 231 Benzoylecgonin im Urin (Screening) 230 beta-2-Glykoprotein-1-AAK 130 beta-2-Mikroglobulin im Serum 206 beta-2-Mikroglobulin im Urin 220 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Stichwortverzeichnis beta-Amyloid im Liquor 199 beta-Crosslaps 205 beta-hCG 162 Bilharziose 258 Bilirubin (gesamt) 189 Bilirubin direkt 188 Biotin (Vitamin H) 204 Biozidie 267 Biphasische Hämolysine 184 Bisoprolol (Pharmakogenetik) 114 BK-Virus (Polyomaviren) 59 BKS (BSG) 127 Blasenbilharziose (Mikrobiologie) 258 Blut im Stuhl 226 Blut-Liquor-Schranke (nach Reiber) 198 Blutbild, groß 179 Blutbild, klein 179 Blutgruppe 183 Blutgruppenbestimmung, genetisch 104 Blutgruppeneigenschaften, weitere 183 Blutkörperchensenkungsgeschw. 127 Blutkultur 238 Blutprodukte (Hygieneuntersuchung) 264 Blutsenkung (BSG) 127 Blutzucker 200 BNP 186 Bocavirus 41 Bordetella parapertussis 12 Bordetella pertussis 13 Bornholm-Krankheit 26 Borreliose 14 Boutonneuse-Fieber (Rickettsien) 61 brain-natriuretic pept., N-term. (BNP) 186 Brill-Zinsser-Krankheit (Rickettsien) 61 Bromazepam 210 Bromazepam (Pharmakogenetik) 118 Bromid 210 Bronchialsekret (Mikrobiologie) 238 Bronchiolitis, neonatal (DD) 92 Brucellose 15 Brugia malayi 253 BSG 127 Bufuralol (Pharmakogenetik) 114 Bullöses Pemphigoid 146 Buprenorphin im Serum (Bestätigung) 235 Buprenorphin im Urin (Bestätigung) 231 Buprenorphin im Urin (Screening) 229 Bupropion (Pharmakogenetik) 112 c-ANCA 130 C-Peptid 162 C-reaktives Protein 127 C-reaktives Protein, hochsensitiv 127 C. difficile-Toxin 241 C1-Esterase-Inhibitor (Aktivität) 126 C1-Esterase-Inhibitor (Konzentration) 126 C2-Komplement 126 C3-Komplement 126 C4-Komplement 126 CA 12-5 206 CA 15-3 206 CA 19-9 206 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR CA 72-4 207 CA-50 207 Calcitonin 170 Calcium im Serum 189 Calcium im Urin 221 Calcium-Sensing-Rezeptor-AAK 137 Calciumkanal (P/Q-Typ)-AAK 131 Caliciviren 54 Calprotectin im Stuhl 226 Campylobacter-Antigen (Mikrobiologie) 242 Campylobacter-Infektionen 16 Candida-Infektionen (Serologie) 17 Candidose (Mikrobiologie) 249 Cannabinoide im Serum (Bestätigung) 234 Cannabinoide im Serum (Screening) 233 Cannabinoide im Urin (Bestätigung) 231 Cannabinoide im Urin (Screening) 229 CAP 6 Capecitabin (Pharmakogenetik) 117 Captopril (Pharmakogenetik) 114 Captopril-Test 154 Carbamazepin 211 Carbamazepin (Pharmakogenetik) 113 Carbamazepin, frei 211 Carcino-embryonales Antigen (CEA) 207 Cardiolipin-AAK 131 Carisoprodol (Pharmakogenetik) 116 Carnitin im Seminalplasma 172 Carnitin, frei im Serum 189 Carvedilol (Pharmakogenetik) 114 Cat scratch disease (Katzenkratzkrankh.) 11 CCP-AAK 131 CD38 auf CD8-T-Lymphozyten 123 CD4-Lymphozyten 122 CDT 236 CEA (Carcino-embryonales Antigen) 207 Celecoxib (Pharmakogenetik) 117 Celiprolol (Pharmakogenetik) 114 CEN/TC 216/WG1 267 Cephazolin (Pharmakogenetik) 112 Cervixabstrich (Mikrobiologie) 243 CF (Cystische Fibrose) 105 CFS (Chronic Fatigue Syndrome) 88 CGA (Chromogranin A) 207 CH-100-Aktivität 125 CH-50-Aktivität siehe CH100 125 CHE (Cholinesterase) 189 Chikungunya-Virus 17 Chinidin (Pharmakogenetik) 111 Chlamydia trachomatis 19 Chlamydophila psittaci 18 Chlorid im Serum 189 Chlorpheniramin (Pharmakogenetik) 114 Chlorpromazin (Pharmakogenetik) 116 Cholesterin 189 Cholesterin, HDL 191 Cholesterin, LDL 192 Cholinesterase (CHE) 189 Cholinesterase im Fruchtwasser 160 Cholinesterase, atypische 190 Chordiazepoxid (Pharmakogenetik) 118 VII Stichwortverzeichnis Chromogranin A (CGA) 207 Chromosomenanalyse 79 Chron.-entzündl. demyelin. PNP 146 Churg-Strauss-Syndrom (Vaskulitis) 152 Ciclosporin (Pharmakogenetik) 115 Ciclosporin A 211 CIDP 146 Citalopram (Pharmakogenetik) 112 Citrat im Seminalplasma 172 Citrat im Urin 221 Citrullin-AAK (Anti-CCP) 131 CK (Creatinkinase) gesamt 186 CK-Isoenzyme 186 CK-MB (herzspezifisch) 186 Clarithromycin (Pharmakogenetik) 112 Clavulansäure (Pharmakogenetik) 112 CLIA 6 Clobazam 211 Clobazam (Pharmakogenetik) 118 Clomipramin 211 Clomipramin (Pharmakogenetik) 112 Clonazepam 211 Clonazepam (Pharmakogenetik) 118 Clonidin-Test 154 Clopidogrel (Pharmakogenetik) 115 Clostridientoxine (Mikrobiologie) 241 Clostridium difficile 242 Clostridium tetani 20 Clozapin 212 Clozapin (Pharmakogenetik) 116 CMV (Cytomegalie-Virus) 22 CO-Hämoglobin 179 Cobalamin 203 Cocain im Serum 233 Cocain im Serum (Bestätigung) 234 Cocain im Urin (Bestätigung) 231 Cocain im Urin (Screening) 230 Codein (Pharmakogenetik) 111 Coeruloplasmin 196 Colitis ulcerosa (Autoantikörper) 146 College of American Pathologists (CAP) 6 Coombstest, direkt (DCT) 183 Coombstest, indirekt (AKS) 183 Coronavirus (NL63) 21 Cortisol (Pharmakogenetik) 115 Cortisol im Serum 162 Cortisol im Urin 162 Corynebacterium diphtheriae 21 Cotinin im Urin 232 Coxiella burnetii 21 Coxsackie-ECHO-Viren 26 Coxsackie-Viren 26 Creatinkinase (CK) gesamt 186 Crithidia luciliae-(ds-DNS-AAK) 131 CRMP5-AAK 131 Crohn, Morbus (AAK) 148 Crosslaps 205 Crosslinks (Pyridinoline) im Urin 205 CRP 127 CRP, hochsensitiv (hsCRP) 127 Cryptococcus neoformans (Antigen) 237 VIII Cryptococcus neoformans (Kultur) 237 Cryptococcus-neoformans-DNA 237 CTU-Screening 229 CTx 205 Cumarin-Derivate 107 CV2-AAK 131 CXCL10 109 Cyclisches citrulliniertes Peptid-AAK 131 Cyclobenzaprin (Pharmakogenetik) 116 Cyclophosphamid (Pharmakogenetik) 117 Cyclosporin A 211 CYFRA 21-1 207 Cystatin C 190 Cysteinyldopa im Plasma 207 Cysteinyldopa im Urin 207 Cystische Fibrose 105 Cytochrom P450 1A1 106 Cytochrom P450 1A2 106 Cytochrom P450 2B6 106 Cytochrom P450 2C19 107 Cytochrom P450 2C8 107 Cytochrom P450 2C9 107 Cytochrom P450 2D6 107 Cytochrom P450 3A5 107 Cytochrom P450-AK (LKM-AAK) 135 Cytomegalie-Virus 22 D weak (Rhesus), genetisch 104 D-Dimere 178 D-Xylose-Belastungstest 155 Dapson (Pharmakogenetik) 112 Darmbilharziose 259 Darminfektionen (Mikrobiologie) 241 DAT (direkter Antiglobulintest) 183 Daunomycin (Pharmakogenetik) 117 DCT 183 Debrisoquin (Pharmakogenetik) 114 Dehydroepiandrosteron 162 Dehydroepiandrosteron-Sulfat 162 Delavirdin (Pharmakogenetik) 119 delta-Aminolävulinsäure 224 Delta-Virus (Hepatitis D) 38 Dengue-Fieber 24 Dermatophyten (Mikrobiologie) 249 Desinfektionsmittel (Hygieneunters.) 264 Desipramin (Pharmakogenetik) 112 Desmethylcitalopram (Pharmakogenetik) 112 Desmoglein-AAK 138 Desogestrel (Pharmakogenetik) 115 Desoxypyridinolin im Urin 205 Dexamethason-Hemmtest 156 Dextromethorphan (Pharmakogenetik) 119 DHEA 162 DHEA-S 162 DHF (Dengue-hämorrhagisches Fieber) 24 DHT (Dihydrotestosteron) 162 Diabetes mellitus (Autoantikörper) 146 Diazepam 212 Diazepam (Pharmakogenetik) 118 Dibucainzahl 190 Dicker Tropfen (Malaria) 256 Diclofenac (Pharmakogenetik) 117 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Stichwortverzeichnis Didanosin (Pharmakogenetik) 119 Differenzial-Blutbild 179 Digitoxin 212 Digoxin 212 Digoxin (Pharmakogenetik) 119 Dihydralazin (Pharmakogenetik) 114 Dihydrocodein (Pharmakogenetik) 111 Dihydropyrimidin-Dehydrogenase 107 Dihydrotestosteron (DHT) 162 Diltiazem (Pharmakogenetik) 111 DIN EN ISO 15189 6 DIN EN ISO/IEC 17025 6 Diphenhydramin (Pharmakogenetik) 114 Diphtherie 21 Direktes Bilirubin 188 DNAse-B-Antikörper (Streptokokken) 144 DNS-AAK, ds- 132 Dobrava-Virus 32 Dolasetron (Pharmakogenetik) 113 Donath-Landsteiner-Antikörper 184 Donepezil (Pharmakogenetik) 119 Dopamin im Urin 165 Doppelstrang-DNS-AAK (ds-DNS-AAK) 132 Down-Risiko im 1. und 2. Trimester 168 Doxepin 212 Doxepin (Pharmakogenetik) 112 Doxorubicin (Pharmakogenetik) 117 DPD 107 Drei-Tage-Fieber 42 Drogenscreening im Serum 233 Drogenscreening im Urin 229 Dronabinol (Pharmakogenetik) 113 ds-DNS-AAK 131 132 DSS (Dengue-Schock-Syndrom) 24 Duloxetin (Pharmakogenetik) 112 Dystrophie, neonatal (DD) 91 E1 (Estron) 163 E2 (Estradiol) 163 E3 (freies Estriol) 163 EBV (Epstein-Barr-Virus) 28 Echinokokkose 251 ECHO-Viren 26 ECP (eosinophiles kationisches Protein) 201 Ecstasy im Serum (Bestätigung) 234 Ecstasy im Serum (Screening) 233 Ecstasy im Urin (Bestätigung) 231 Ecstasy im Urin (Screening) 229 Efavirenz (Pharmakogenetik) 119 EHEC 26 EHEC (Mikrobiologie) 241 Ehrlichiose 25 Eisen im Serum 202 Eisen im Urin 221 Eisenbindungskapazität 181 Eisenresorptionstest 156 Eiweiß, gesamt im Serum 196 Eiweiß, gesamt im Urin 221 Elastase 1 im Serum 194 Elastase, pankreatisch im Stuhl 227 Elektrophorese, Serum-Eiweiß- 197 Elephantiasis 253 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Elispot Tuberkulose 248 Elpho 197 EN 13704:2002-05 267 EN 14476: 2011-12 267 EN 14561: 2006-08 267 EN 1500: 2011-04 267 ENA-AAK (extrahierb. nukleäre Ag) 132 Encainid (Pharmakogenetik) 111 Endokarditis (DD) 85 Endokrinologie (Schnelldiagnostik) 8 Endomysium-AAK 132 Endoskope (Hygieneuntersuchung) 264 Endotoxin-/Pyrogennachweis (Hygiene) 265 Entamoeba histolytica 250 Enteritis (Schnelldiagnostik) 7 Enteritis, neonatal (DD) 93 Entero-Viren 26 Enterobius vermicularis (Oxyuren) 257 Enterohämorrhag. E. coli (EHEC) 26 Entzündungsneigung 103 Enzephalitis, postinfektiös (DD) 84 Enzephalomyelitis (DD) 83 eosinophiles kationisches Protein (ECP) 201 Epidermale Basalmembran-AAK 137 Epstein-Barr-Virus-Infektion (EBV) 28 Erb-Oppenheim-Glodflam-Syndrom 148 Ersttrimester-Screening 168 Erythema infectiosum (Parvovirus B19) 57 Erythema migrans 14 Erythromycin (Pharmakogenetik) 112 Erythropoietin 163 Erythroviren (Parvoviren) 57 Erythrozyten, fetale im mütterlichen Blut 123 Escitalopram (Pharmakogenetik) 112 Esomeprazol (Pharmakogenetik) 118 Esterasefärbung im Blut 182 Estradiol (Pharmakogenetik) 115 Estriol 163 Etanercept (Pharmakogenetik) 119 EtG (Ethylgluc.) im Urin (Bestätigung) 231 EtG (Ethylgluc.) im Urin (Screening) 230 Ethinylestradiol (Pharmakogenetik) 115 Ethosuximid 212 Ethylglucuronid im Urin (Bestätigung) 231 Ethylglucuronid im Urin (Screening) 230 Etoposide (Pharmakogenetik) 117 Everolimus (Pharmakogenetik) 115 Exanthema subitum (HHV6) 42 Exantheme (DD) 85 Exantheme, lokalisiert (DD) 86 extrahierb. nukleäre Ag (ENA), AAK gg. 132 Extremitätenfehlbildungen (DD) 91 F-Zellen 123 Fadenwürmer 253 Faktor IX 176 Faktor VIII 175 Faktor Xa-Aktivität, Anti- 176 Faktor-II-Mutationsanalyse 104 Faktor-V-Mutation Typ Leiden 104 Faktor-VIII-Ristocetin-Cofaktor 175 Faktoren, weitere (Gerinnung) 176 IX Stichwortverzeichnis Familiär defektes Apolipoprotein B-100 100 Familiäres Mittelmeerfieber 101 Fasciola hepatica 252 Fehlbildungen (DD) 91 Feigwarzen 54 Felbamat 213 Ferritin 180 Ferritinindex 180 fetale Erythrozyten im mütterlichen Blut 123 Fette im Stuhl 227 Fexofenadin (Pharmakogenetik) 114 FHA-AK 13 Fibrinogen 174 Fievre boutonneuse (Rickettsien) 61 Filarien 253 Filarien-AK 253 FK 506 (Tacrolimus) 217 Flecainid (Pharmakogenetik) 111 Fleckfieber (Rickettsien) 61 Flucloxacillin (Pharmakogenetik) 112 Flunarizin (Pharmakogenetik) 119 Flunitrazepam (Pharmakogenetik) 118 Fluoxetin (Pharmakogenetik) 112 Flupentixol (Pharmakogenetik) 116 Fluphenazin (Pharmakogenetik) 116 Flurbiprofen (Pharmakogenetik) 117 Flussblindheit 253 Flutamid (Pharmakogenetik) 117 Fluvastatin (Pharmakogenetik) 118 Fluvoxamin (Pharmakogenetik) 112 FMF (Familiäres Mittelmeerfieber) 101 Folat 204 Folsäure 204 Francisella tularensis 30 freie Granulozyten-Antikörper 132 freie Kappa-Leichtketten i. S. 196 freie Lambda-Leichtketten i. S. 197 freie Leichtketten (BJP) im Urin 221 freies Aldosteron im Urin 160 freies Carnitin im Serum 189 freies Hämoglobin im Serum 182 Fructose im Seminalplasma 172 Fructose-Intoleranz 101 Frühsommer-Meningoenzephalitis 30 FSH (Follikel-stimulierendes Hormon) 163 FSH-Rezeptor 108 FSME (Frühsommer-Meningoenzephal.) 30 fT3 169 fT4 169 FTA-ABS (Syphilis) 65 Fuchsbandwurm (E. multilocularis) 251 G6PDH (Glucose-6-Phopshat-Dehyd.) 180 Gabapentin 213 GAD-65-AAK (GADA) 133 GADA (Glutamat-Decarbox.-AAK) 133 Galaktomannan-Test 11 Galantamin (Pharmakogenetik) 119 Gallensäuren im Serum 190 gamma-GT 190 Gamma-Trace-Protein (Cystatin C) 190 Ganciclovir 213 X Gangliosid-AAK 132 Gasser-Syndrom 26 Gastrin 163 Gastritis, atrophische (Autoantikörper) 146 Gastroenteritis (DD) 81 GB-Virus C 31 GBM-AAK (Glomerul. Basalmemb.-AAK) 133 Gehörgangsabstrich (Mikrobiologie) 242 Gelenkinfektionen (Mikrobiologie) 245 Gelenkpunktat (klinische Chemie) 194 Gelenkpunktat (Mikrobiologie) 245 Genitalherpes (HSV 2) 39 Genitalinfektionen (Mikrobiologie) 243 Gentamicin 213 Gerinnungsfaktor IX 176 Gerinnungsfaktor VIII 175 Gerinnungsfaktor-Xa-Aktivität, Anti- 176 Gerinnungsfaktoren, weitere 176 Gesamt-IgE im Serum 201 Gesamt-Triglyceride 194 Gesamtbilirubin 189 Gesamteiweiß im Serum 196 Gesamteiweiß im Urin 221 Gesamthämolyt. Kompl.-Akt. (CH100) 125 Gesamtproteine im Urin 221 Geschirrspülmaschinen (Hygiene) 263 Gestationsdiabetes 101 Gestose (HELLP) 77 Gewebstransglutaminase-AAK 142 142 GGT 190 Giardia lamblia 254 Giardiasis 254 Gilbert-Syndrom 103 Glaskörperpunktat (Mikrobiologie) 245 Glatte Muskulatur-AAK (SMA) 133 GLDH 190 Gliadin-AK im Serum 133 Glibenclamid (Pharmakogenetik) 113 Gliclazid (Pharmakogenetik) 113 Glimepirid (Pharmakogenetik) 113 Glipizid (Pharmakogenetik) 113 Glomerul.-Basalmemb.-AAK (GBM-AK) 133 Glucagon 163 Glucose 200 Glucose im Urin 222 Glucose-6-Phosphat-Dehyd. (G6PDH) 180 Glukagon 163 Glukose 200 Glutamat-Decarboxylase-AAK (GADA) 133 Glutensens. Enteropathie (Antikörper) 152 Glyburid (Pharmakogenetik) 113 Glykoprotein-1-AAK, beta-2- 130 GnRH-Test 157 Goldflam-Syndrom (Myasthenie) 148 Gonokokken 31 Gonorrhoe 244 GOT (AST) 190 GPT (ALT) 191 Granulozyten-AAK, perinukl. (p-ANCA) 137 Granulozyten-AAK, zytopl. (c-ANCA) 130 Granulozyten-AK, freie 132 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Stichwortverzeichnis Granulozytenfunktionstest 121 Grippe (Influenza) 46 Großer Leberegel 252 Großes Blutbild 179 Gruber-Widal 64 Gürtelrose 70 Guillain-Barré-Syndrom 147 H+/K+-ATPase-AAK 137 habituelle Aborte 78 Hämochromatose 101 Hämodialyseflüssigkeiten (Hygiene) 264 Hämoglob.-Haptoglob.-Komplex im Stuhl 226 Hämoglobin 179 Hämoglobin im Stuhl 226 Hämoglobin, frei im Serum 182 Hämoglobin-Elektrophorese 181 Hämoglobinstrukturvarianten (Molekulargenetik) 101 Hämolytisch-urämisches Syndrom 26 Haemophilus influenzae Typ b 32 Haloperidol (Pharmakogenetik) 116 Ham-Test (PNH-Diagnostik) 122 Hand-Fuß-Mund-Krankheit 26 Hantaan-Virus 32 Hantaviren 32 Haptoglobin 181 Harnsäure im Serum 191 Harnsäure im Urin 222 Harnsediment 225 Harnstein-Analyse 222 Harnstoff im Serum 191 Harnstoff im Urin 222 Harnwegsinfektionen (Mikrobiologie) 240 Hasenpest (Tularämie) 30 Hashimoto-Thyreoiditis 151 Hautabstrich (Mikrobiologie) 239 HAV (Hepatitis A) 35 Hb, frei im Serum 182 Hb-Elektrophorese 181 HbA1c-Fraktion 200 HBDH, alpha- 191 HbF-Zellen 123 HBsAg 35 36 HBV (Hepatitis B) 35 hCG (humanes Chorion-Gonadotropin) 162 hCG (Tumormarker) 206 HCV (Hepatitis C) 37 HDL-Cholesterin 191 HDV (Hepatitis D) 38 Helferzellen 122 Helicobacter pylori 34 246 HELLP-Syndrom 77 Heparin-ind. Thrombopenie Typ II (HIT II) 185 Hepatitiden, infektiös (DD) 82 Hepatitis A 35 Hepatitis B 35 Hepatitis C 37 Hepatitis D 38 Hepatitis E 38 Hepatitis G (GB-Virus C) 31 Hepatitis, neonatal (DD) 93 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR hereditäres angioneurotisches Ödem 126 hereditäres Quincke-Ödem (C1-Inhib.) 126 Herpangina Zahorsky (Coxsackie-Viren) 26 Herpes gestationis 147 Herpes zoster (VZV) 70 Herpes-gestationis-Faktor 133 Herpes-simplex-Virus 1/2 (HSV 1/2) 39 Herzmuskel-AAK 134 HEV (Hepatitis E) 38 Hexobarbital (Pharmakogenetik) 116 hGH (human Growth Hormon, STH) 171 HHV6 (Humanes Herpes-Virus Typ 6) 42 HHV7 (Humanes Herpes-Virus Typ 7) 42 HHV8 (Humanes Herpes-Virus Typ 8) 43 Hib (Haemophilus influenzae Typ b) 32 HIES (Hydroxy-Indol-Essigsäure) 166 HIPA-Test (HIT II) 185 Histidyl-tRNA-Synthetase-AAK 135 Histone-AAK 134 HITA-Test (HIT II) 185 HIV 43 HLA Klasse I-Antigene (A,B,C) 102 HLA Klasse II-Antigene (DR, DQ) 102 HLA-A*31:01 108 HLA-B*27 124 HLA-B*27 (PCR) 102 HLA-B*51 103 HLA-B*57:01 108 HLA-DQ2/DQ8 105 HLA-DQB1 108 HLA-DQB1*06:02 103 HMPV (Metapneumovirus) 45 HNO-Infektionen (Mikrobiologie) 242 hochsensitives CRP 127 Holo-TC 203 Holotranscobalamin 203 Homocystein 177 Homovanillinsäure im Urin (HVA) 166 Hormone (Pharmakogenetik) 115 hPLAP 208 HPV (humane Papilloma-Viren) 54 hsCRP (hochsensitives CRP) 127 HSV 1/2 (Herpes-simplex-Virus 1/2) 39 HSV Typ 1/2-IgG-AK 40 40 HSV-IgG-Immunoblot 39 HTC 203 hTG 170 HTLV 1/2 (Humane T-Zell-Leukämie-V.) 41 Hu-AAK 134 Human Placental Alkaline Phosphatase 208 Humane Papilloma Viren (HPV) 54 Humane T-Zell-Leukämie-V. 1/2 (HTLV) 41 Humanes Bocavirus 41 Humanes Chorion-Gonadotr. (beta-hCG) 162 Humanes Chorion-Gonadotr. (TM) 206 Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV6) 42 Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV7) 42 Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV8) 43 Humanes Immundefiz. Virus (HIV) 43 Humanes Metapneumovirus (HMPV) 45 Humanes Parechovirus 56 XI Stichwortverzeichnis Hundebandwurm (E. granulosus) 251 Hundespulwurm (Toxocara canis) 260 HUS (Hämolyt.-uräm. Syndrom) 26 HVA im Urin (Homovanillinsäure) 166 HVS im Urin (Homovanillinsäure) 166 Hydralazin (Pharmakogenetik) 114 Hydrocodon (Pharmakogenetik) 111 Hydrocortison (Pharmakogenetik) 115 Hydroxy-Indol-Essigsäure (5-HIES) 166 Hydroxyprogesteron 167 Hydroxyprogesteron, 17-alpha- 167 Hydroxyzin (Pharmakogenetik) 114 Hyperbilirubinämie 103 Hypercholesterinämie 100 Hyperhomocysteinämie 109 Hyperlipoproteinämie (Typ III) 100 IA2-Autoantikörper 142 IAA (Insulin-AAK) 134 IAT (indirekter Antiglobulintest) 183 Ibuprofen (Pharmakogenetik) 117 ICA (Inselzell-AAK) 134 Idiopatische membranöse GN 147 IFE (Immunfixationselpho im Serum) 196 IgA im Serum 125 IgA im Stuhl 227 IgA, sekretorisch 125 IgE im Serum, gesamt 201 IgE-RAST 201 IGeL (Abrechnung) 5 IGeL in Schwangerschaft 75 IGF-1 (Insulin-like Growth Factor 1) 164 IGF-BP3 164 IgG im Serum 125 IgG im Urin 222 IgG-Subklassen 125 IgM im Serum 125 IGRA 248 IL-2R (löslicher Interleukin-2-Rezeptor) 127 IL-6 (Interleukin 6) 127 IL28B 108 Imatinib (Pharmakogenetik) 117 Imipramin 213 Imipramin (Pharmakogenetik) 112 Immunfixationselektrophorese im Serum 196 Immunglobulin A im Serum 125 Immunglobulin A im Stuhl 227 Immunglobulin A, sekretorisch (scIgA) 125 Immunglobulin E im Serum 201 Immunglobulin G im Serum 125 Immunglobulin G im Urin 222 Immunglobulin M im Serum 125 Immunglobulin-G-Subklassen 125 Immunglobuline 125 Immunhyperthyreose 148 Immunstatus, zellulärer 122 Immunstatusbestimmung 45 Immunsuppressiva (Pharmakogenetik) 115 Impferfolgskontrolle 45 Indinavir (Pharmakogenetik) 119 Indometacin (Pharmakogenetik) 117 Indoramin (Pharmakogenetik) 114 XII Infektionen, pränatale 76 Influenza-Viren 46 INH (Isoniazid) 213 Inhibin B 164 INR (International Normalized Ratio) 174 Inselzell-AAK (ICA) 134 Insulin 164 Insulin-Auto-AK (IAA) 134 Insulin-like Growth Factor 1 (IGF-1) 164 Insulin-Rezeptor-AAK 134 Insulinom-Abklärung 157 Insulinresistenz-Index (HOMA) 164 Intaktes Proinsulin 167 Integriertes Screening auf Trisomie 21 169 Interferon-gamma-release Assay (IGRA) 248 Interleukin 1A 103 Interleukin 1B 103 Interleukin 28B 108 Interleukin 6 127 Interleukin-1-Rezeptorantagonist 103 Interleukin-2-Rezeptor, löslicher 127 Interzellularsubstanz-AAK 138 Intraoperativer Abstrich (Mikrobiologie) 240 Intrinsic-Faktor-AAK 135 Iod 202 IP-10 109 Irbesartan (Pharmakogenetik) 114 Irinotecan (Pharmakogenetik) 117 Isoelektrische Fokussierung, Liquor 198 Isoenzyme der Amylase 188 Isoenzyme der AP 188 Isoenzyme der CK 186 Isoenzyme der LDH 192 Isoniazid 213 Isoniazid (Pharmakogenetik) 112 Itraconazol 214 Itraconazol (Pharmakogenetik) 115 JC-Virus (Polyomaviren) 59 JCA 147 JIA 147 Jo-1-AAK 135 Jod 202 Juvenile idiopathische Arthritis 147 Kälteagglutinine 184 Kala Azar (Leishmaniose) 255 Kalium im Serum 191 Kalium im Urin 222 Kaposi-Sarkom (HHV8) 43 Kappa-Leichtketten 196 Karyotypisierung 79 Katecholamine im Plasma 166 Katecholamine im Urin 165 Katzenkratzkrankheit 11 KCE (Keratokonjunktivitis epid.) 9 Keratokonjunktivitis epid. (Adenoviren) 9 Keuchhusten 13 Kinderlähmung (Poliomyelitis) 58 Kleihauer-Bethke-Test 123 kleines Blutbild 179 knochenspezifische AP 205 Kochsalzausscheidung im Urin 222 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Stichwortverzeichnis Koffein (Pharmakogenetik) 112 Kokain im Serum (Bestätigung) 234 Kokain im Serum (Screening) 233 Kokain im Urin (Bestätigung) 231 Kokain im Urin (Screening) 230 Kokainmetabolit im Serum (Bestätigung) 234 Kokainmetabolit im Serum (Screening) 233 Kokainmetabolit im Urin (Bestätigung) 231 Kokainmetabolit im Urin (Screening) 230 Komplementaktivität, gesamth. (CH100) 125 Komplementsystem 125 Konjunktivalabstrich (Mikrobiologie) 244 Konjunktivitis, neonatal (DD) 92 Kreatinin im Serum 192 Kreatinin im Urin 225 Kreatinin-Clearance 223 Kreuzprobe 184 Krupp 21 Kryofibrinogen 196 Kryoglobuline 197 Kryptosporidien 254 KU-Antigen-AAK 135 Kupfer im Serum 202 Kupfer im Urin 202 LA (Lupus-Antikoagulans) 177 La/SSB-AAK 141 Labetalol (Pharmakogenetik) 114 Lactat im Plasma 192 Lactat-Dehydrogenase (LDH) 192 Lactoferrin im Stuhl 226 Lactose-Intoleranz Mutationsanalyse 102 Lactose-Toleranz-Test 157 Laktat im Plasma 192 Lambda-Leichtketten im Serum 197 Lambert-Eaton-Syndrom 147 Lambliasis 254 Lamivudin (Pharmakogenetik) 119 Lamotrigin 214 Lansoprazol (Pharmakogenetik) 118 Lapatinib (Pharmakogenetik) 117 LC1-AAK 135 LCM-Virus 49 LDH (Lactat-Dehydrogenase) 192 LDH-Isoenzyme 192 LDL-Cholesterin 192 Leber-Nieren-Mikrosomen-AAK 135 Lebercytosol-Antigen-1-AAK 135 Leberegel, großer 252 Legionärskrankheit 47 Legionellen 47 Legionellen im Wasser (Hygiene) 262 Legionellen-Antigen im Urin 238 Leichtketten, freie (BJP) im Urin 221 Leichtketten, Typ Kappa i. S. 196 Leichtketten, Typ Lambda i. S. 197 Leiden-Mutation (Faktor V) 104 Leishmaniose 255 Leitlinie der DVV/RKI 267 Leptospirose 48 Leukämie-/Lymphomtypisierung 122 Leukozyten-Phosphatase, alk. (ALP) 182 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Levetiracetam 214 Levomepromazin (Pharmakogenetik) 116 Levuzidie-Prüfung 267 Leydig-Zellen-AAK 141 LH (luteinisierendes Hormon) 167 LH-RH-Test 157 LH/FSH-Stimulationstest 157 Lidocain (Pharmakogenetik) 116 Lipase 192 Lipid-Elektrophorese 193 Lipoprotein (a) 193 Lipoprotein-Elektrophorese 193 Liquorkultur (Mikrobiologie) 237 Listerien 48 Lithium 214 LKM-AAK (Leber-Nieren-Mikros.-AAK) 135 Loa loa 253 löslicher Interleukin-2-Rezeptor (sIL2-R) 127 Löslicher Transferrin-Rezeptor 202 Loratadin (Pharmakogenetik) 114 Lorazepam 214 Lornoxicam (Pharmakogenetik) 117 Losartan (Pharmakogenetik) 114 Lovastatin (Pharmakogenetik) 118 Lp (a) (Lipoprotein a) 193 LSD im Serum (Bestätigung) 235 LSD im Urin (Bestätigung) 231 LSD im Urin (Screening) 230 LTT (Lactose-Toleranz-Test) 157 Lues 64 Lupus-Antikoagulans 177 Lupus-Inhibitoren (Lupus-Antikoagulans) 177 luteinisierendes Hormon 167 Lyme Disease 14 Lymphadenitis (DD) 86 Lymphadenopathie-Syndrom (DD) 87 Lymphogranuloma inguinale/venereum 19 Lymphozyt. Choriomeningitis-Virus 49 Lymphozytendifferenzierung 121 Lymphozytenfunktionen 123 Lymphozytenproliferation 123 Lyssa (Tollwut) 66 M. Addison 147 M. Bang (Brucellose) 15 M. Basedow 148 M. Bechterew 102 124 M. Behcet 103 M. Bornholm 26 M. Crohn (Autoantikörper) 148 M. Meulengracht 103 M. Pfeiffer (EBV) 28 M. Wegener (Vaskulitis) 152 M. Weil (Leptospirose) 48 M. Whipple 70 Ma2-AAK (Ta-AAK) 141 Magnesium im Serum 193 Magnesium im Urin 223 Magnesium, intraerythrozytär 193 MAK (TPO-AK) 142 Makro-CK 193 Malaria 256 XIII Stichwortverzeichnis Malaria-Diagnostik 256 Maltafieber (Brucellose) 15 Maprotilin (Pharmakogenetik) 112 Masern 50 Mastzell-Tryptase 201 Material für den Antikörpersuchtest 4 Material für die Blutgruppenbestimmung 4 Material für Immunzytologie 5 Material für Mikrobiologie 5 Material für NAT 5 Material für Serologie, MuVo 4 Material für Virusnachweis 4 MDR1 109 Medikamenten-ind. Immunhämolyse 185 MEFV (Familiäres Mittelmeerfieber) 101 Meloxicam (Pharmakogenetik) 117 Meningitis (DD) 83 Meningitis, neonatal (DD) 92 Meningokokken 51 Mephenytoin (Pharmakogenetik) 113 Mephobarbital (Pharmakogenetik) 113 Messunsicherheit 6 Mesuximid (N-Desmethylmesuximid) 214 Metamphetamin (Pharmakogenetik) 119 Metanephrine im Plasma 165 Metanephrine im Urin 167 Metapneumovirus 45 Methadon (Pharmakogenetik) 119 Methadon im Serum (Bestätigung) 235 Methadon im Serum (Screening) 233 Methadon im Urin (Bestätigung) 231 Methadon im Urin (Screening) 230 Methämoglobin 179 Methotrexat (Pharmakogenetik) 117 Methsuximid 214 Methylentetrahydrofolat-Dehydrogenase 109 Methylentetrahydrofolat-Reduktase 104 109 Methylphenidat 214 Methylphenidat (Pharmakogenetik) 119 Methylphenobarbital (Pharmakogenetik) 113 Metoclopramid (Pharmakogenetik) 113 Metoprolol (Pharmakogenetik) 114 Mexiletin (Pharmakogenetik) 111 MGT-30 (Titin)-AAK 136 Mi-2-Autoantikörper 136 Mianserin (Pharmakogenetik) 112 Midazolam 215 Midazolam (Pharmaogenetik) 118 Mikroangiopathie, thrombotische 26 Mikroglobulin, beta-2 206 Mikroglobulin, ß2 im Urin 220 Mikroskopische Polyangiitis (Vaskulitis) 152 Mikrosomale SD-AK (TPO-AK) 142 Mikrozephalie (DD) 91 Miller-Fischer-Syndrom 147 Minaprin (Pharmakogenetik) 112 Mirtazapin (Pharmakogenetik) 112 Mischkollagenose (Autoantikörper) 147 Missbildungen (DD) 91 Mitochondriale AAK (AMA) 129 Mittelmeerfleckfieber (Rickettsien) 61 XIV Moclobemid (Pharmakogenetik) 112 Modafinil (Pharmakogenetik) 119 MODY2 101 Montelukast (Pharmakogenetik) 112 Morbus Addison 147 Morbus Bang (Brucellose) 15 Morbus Basedow 148 Morbus Bechterew 102 124 Morbus Behcet 103 Morbus Bornholm 26 Morbus Crohn (Autoantikörper) 148 Morbus Meulengracht 103 Morbus Pfeiffer (EBV) 28 Morbus Whipple 70 Morphin (Pharmakogenetik) 111 Morphin/Opiate (Bestätigung) 235 Morphin/Opiate im Serum (Screening) 234 Morphin/Opiate im Urin (Bestätigung) 232 Morphin/Opiate im Urin (Screening) 230 MPO-AAK (Myeloperoxidase-AAK) 136 MPU-Screening 229 MRSA-DNA 263 MTHFD-Mutationsanalyse 109 MTHFR-Mutationsanalyse 104 109 Müdigkeitssyndrom (DD) 88 Mukoviszidose 105 Multi-Drug-Resistance 1 109 Multifokale Motorneuropathie 148 Mumps 51 Murines Fleckfieber (Rickettsien) 61 MuSK-AAK 138 Muskelrelaxantien (Pharmakogenetik) 116 Muskelspezifische Tyrosinkinase-AAK 138 Mutterschaftsvorsorge 75 MuVo (Mutterschaftsvorsorge) 75 Myasthenia gravis (Autoantikörper) 148 Mycoplasma genitalium 52 Mycoplasma hominis 52 Mycoplasma pneumoniae 53 Myelin assoz. Glycoprotein-AAK 136 Myeloperoxidase in Granulozyten 182 Myeloperoxidase-AAK (MPO-AAK) 136 Mykobakterien-Diagnostik 247 Mykoplasmen (Mikrobiologie) 244 Myoglobin im Serum 193 Myoglobin im Urin 223 Myokarditis (DD) 85 Myokarditis, neonatal (DD) 92 Myositis (DD) 90 N-Acetyltransferase 2 109 Nachweis parodontopathogener Erreger 243 Naples-Virus (Sandfly Fever) 64 Naproxen (Pharmakogenetik) 117 Narkolepsie 103 Narkotika (Pharmakogenetik) 116 Nasennebenhöhlen (Mikrobiologie) 242 NAT2 (N-Acetyltransferase 2) 109 Nateglinid (Pharmakogenetik) 113 Natrium im Serum 193 Natrium im Urin 223 Nebennierenrinden-AAK 136 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Stichwortverzeichnis Nebenschilddrüsen-AAK 137 Nebivolol (Pharmakogenetik) 114 Necator americanus (Hakenwurm) 257 Nefazodon (Pharmakogenetik) 112 Neisseria gonorrhoeae 31 Neisseria meningitidis 51 Nelfinavir (Pharmakogenetik) 119 Nematoden 253 257 Nematoden-AK IFT 253 Neopterin 127 Nephropathia epidemica 32 Neuroborreliose 14 Neuroleptika (Pharmakogenetik) 116 Neuronenkerne-AAK (Hu) 134 Neuronenkerne-AAK (Ri) 139 Neuronspezifische Enolase (NSE) 208 Neutralisationsteste 54 Neutrophilen-AAK, zytoplasm. (c-ANCA) 130 Nevirapin (Pharmakogenetik) 119 NH3 im Plasma 187 Nicardipin (Pharmakogenetik) 114 Nicht-steroidale Antirheumatika (Pharmakogen.) 117 Nierenstein-Analyse 222 Nierenversagen (DD) 88 Nikotin-Metabolit im Urin 232 Nilotinib (Pharmakogenetik) 117 Nilutamid (Pharmakogenetik) 117 Nitrazepam (Pharmakogenetik) 118 NL63-Coronavirus 21 NMP 22 (Nukleäres Matrix-Protein 22) 208 NNR-AAK (Nebennierenrinden-AAK) 136 Noradrenalin im Plasma 166 Noradrenalin im Urin 165 Norbuprenorphin im Serum (Bestätigung) 235 Norbuprenorphin im Urin (Bestätigung) 231 Norclobazam (Pharmakogenetik) 118 Norclomipramin (Pharmakogenetik) 112 Norclozapin (Pharmakogenetik) 116 Nordiazepam (Pharmakogenetik) 118 Nordoxepin (Pharmakogenetik) 112 Norfluoxetin (Pharmakogenetik) 112 Normbereiche 6 Normetanephrin im Urin 165 Noroviren 54 Nortilidin im Serum (Bestätigung) 235 Nortilidin im Urin (Bestätigung) 232 Nortriptylin (Pharmakogenetik) 112 Norwalk-like-Virus 54 Norzolpidem im Serum (Bestätigung) 235 Norzolpidem im Urin (Bestätigung) 232 Norzopiclon im Serum (Bestätigung) 236 Norzopiclon im Urin (Bestätigung) 232 NSAR (Pharmakogenetik) 117 NSE (Neuronspezifische Enolase) 208 nt-pro-BNP 186 NT-Screening 168 Nukleäres Matrix-Protein 22 (NMP 22) 208 Nukleosomen-AAK 137 Östradiol 163 Östriol 163 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Östron 163 oGTT (oraler Glucose-Toleranz-Test) 158 OH-Progesteron, 17- 167 okkultes Blut im Stuhl 226 Olanzapin 215 Olanzapin (Pharmakogenetik) 116 Oligoklonale Banden im Liquor 198 Omeprazol (Pharmakogenetik) 118 Onchocerca volvolus 253 Ondansetron (Pharmakogenetik) 113 Onkologie (Pharmakogenetik) 117 Opiate im Serum (Bestätigung) 235 Opiate im Serum (Screening) 234 Opiate im Urin (Bestätigung) 232 Opiate im Urin (Screening) 230 Opipramol (Pharmakogenetik) 112 oraler Glucose-Toleranz-Test (oGTT) 158 Orchitis (DD) 90 Orient-Beule (Leishmaniose) 255 Ornithose (Cp. psittaci) 18 Osmolalität im Serum 194 Osmolalität im Urin 223 Osmotische Resistenz 180 Ostase 205 Oxalsäure im Urin 223 Oxazepam 215 Oxcarbazepin 215 Oxcarbazepin (Pharmakogenetik) 113 Oxycodon (Pharmakogenetik) 111 p-ANCA 137 P-Glykoprotein 109 p24-Antigen (HIV) 44 Paclitaxel (Pharmakogenetik) 117 PAI-1 110 PAI-1-Polymorphismus 104 Panarteriitis nodosa (Autoantikörper) 148 Pankreas-Acinusepithel-AAK 137 Pankreatische Elastase 1 im Serum 194 Pankreatische Elastase 1 im Stuhl 227 Pankreatitis, infektiös (DD) 90 Pantoprazol (Pharmakogenetik) 118 Papageienkrankheit (Cp. psittaci) 18 Papilloma-Viren, humane (HPV) 54 PAPP-A 168 Pappataci-Fieber 64 Paracetamol 215 Paracetamol (Pharmakogenetik) 111 Parainfluenza-Viren 55 Paraneoplastische Syndrome 148 Paraoxonase 1 109 Parapertussis 12 Parathormon, intakt (PTH) 167 Parathormon-related Protein (PTHrP) 209 Parechoviren 56 Paresen infektiöser Genese (DD) 84 Parietalzellen-AAK 137 Parodontitis 103 243 Parodontitis-Risiko 103 Parotitis epidemica (Mumps) 51 Parotitis, infektiös (DD) 90 Paroxetin (Pharmakogenetik) 112 XV Stichwortverzeichnis Paroxys. nächtl. Hämoglobinurie (PNH) 122 Paroxysmale Kältehämoglobinurie 184 partielle Thromboplastinzeit (PTT) 174 Parvovirus B19 57 PAS-Färbung im Blut 182 PBC (Autoantikörper) 149 PCA-1 (Yo-AAK) 143 PCT (Procalcitonin) 128 PE 1 (Pankr. Elastase 1) im Stuhl 227 pegINF-alpha (Pharmakogenetik) 119 Pemphigoid-AAK 137 Pemphigoid-gestationis-AAK 133 Pemphigus foliaceus 149 Pemphigus vulgaris (Autoantikörper) 149 Pemphigus-AAK 138 Penbutolol (Pharmakogenetik) 114 Penis-/Vulva-Läsionen (DD) 88 Perazin (Pharmakogenetik) 116 Periprothet. Infektion (Mikrobiologie) 245 Perphenazin (Pharmakogenetik) 116 Pertussis (Keuchhusten) 13 Pertussis-Toxin-AK 13 Pfeiffersches Drüsenfieber (EBV) 28 Pharmakogenetische Diagnostik 111 Pharyngitis (DD) 80 Phenacetin (Pharmakogenetik) 111 Phencyclidin im Serum (Bestätigung) 235 Phencyclidin im Serum (Screening) 234 Phencyclidin im Urin (Bestätigung) 232 Phencyclidin im Urin (Screening) 230 Phenformin (Pharmakogenetik) 113 Phenobarbital 215 Phenobarbital (Pharmakogenetik) 113 Phenprocoumon (Pharmakogenetik) 115 Phenytoin 215 Phenytoin (Pharmakogenetik) 113 Philadelphia-Chr. (molekulargen.) 101 Phosphat im Serum 194 Phosphat im Urin 224 Phosphatase, alkalische (AP) 188 Phosphatase, alkalische, Isoenzyme 188 Phospholipid-Autoantikörper 138 Phospolipase A2-Rezeptor-AAK 138 Phyllochinone 204 Pilze (Nukleinsäurediagnostik) 98 Pilze im Stuhl (Mikrobiologie) 241 Pilzinfektionen der Haut (Mikrobiologie) 249 Pimozid (Pharmakogenetik) 116 Pindolol (Pharmakogenetik) 114 Piroxicam (Pharmakogenetik) 117 Placental Growth Factor (PlGF) 167 PLAP 208 Plasmathrombinzeit (PTZ) 174 Plasminogen-Akt.-Inhib.Polymorph. 104 Plasmodien 256 Plazenta-Isoenzym der AP 208 Pleurodynie (DD) 90 PlGF 167 PM-Scl-AAK 138 PML (progr. multifok. Leukenzephalop.) 59 PMN-Elastase im Stuhl 226 XVI Pneumocystis carinii (P. jiroveci) 58 Pneumocystis jiroveci 58 Pneumokokken 58 Pneumonie (DD) 81 Pneumonie, neonatal (DD) 92 PNH-Diagnostik 122 PNS 148 Poliomyelitis 58 Poly-/Dermatomyositis (Auto-AK) 149 Polyagglutinabilität 185 Polyneuropathie 146 Polyomaviren 59 Polyradikulitis (DD) 84 PON1 109 Porphobilinogen 224 Porphyrie-Diagnostik 224 Porphyrine im Urin, gesamt 224 Porphyrine, Differenzierung 224 Posaconazol (Pharmakogenetik) 115 Post-partum-Thyreoiditis 149 pp65-Antigen 23 Präeklampsie 77 Pränatale Diagnostik 76 pränatale Infektionen 76 Prajmalin (Pharmakogenetik) 111 Prazepam (Pharmakogenetik) 118 Pregabalin 216 Pregnancy-associated Plasma Protein A 168 Primär skleros. Cholangitis (Auto-AK) 149 Primäre biliäre Zirrhose (Autoantikörper) 149 Primidon 216 Primidon (Pharmakogenetik) 113 Probenkennzeichnung 4 Probentransport 5 Procainamid (Pharmakogenetik) 111 Procalcitonin 128 Progesteron 167 Progesteron (Pharmakogenetik) 115 Progesteron, 17-OH- 167 Progressive syst. Sklerose (Auto-AK) 150 Proguanil (Pharmakogenetik) 119 Proinsulin, intakt 167 Prolaktin 168 Promethazin (Pharmakogenetik) 114 Propafenon (Pharmakogenetik) 111 Propofol (Pharmakogenetik) 116 Propranolol (Pharmakogenetik) 114 Prostata-spezifisches Antigen (PSA) 208 Protein C-Aktivität 176 Protein C-Antigen 177 Protein S, Antigen gesamt 178 Protein S-100 209 Protein, Retinol-bindendes im Urin 225 Protein-Elektrophorese im Serum 197 Proteinase-3-(PR3)-AAK 138 Proteindifferenzierung im Urin 220 Proteine, gesamt im Urin 221 Prothrombin-Mutationsanalyse 104 Protonenpumpenhemmer (Pharmakog.) 118 Protozoen (Nukleinsäurediagnostik) 98 Protriptylin (Pharmakogenetik) 112 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Stichwortverzeichnis PSA (Prostata-spezifisches Antigen) 208 PSA im Seminalplasma 172 PSC (Auto-AK) 149 Pseudokrupp 32 55 Pseudomonas-aeruginosa-Antikörper 59 Psittakose (Chlamydophila psittaci) 18 PSS (Auto-AK) 150 PTH, intakt (Parathormon) 167 PTHrP (Parathormon-related Protein) 209 PTT (partielle Thromboplastinzeit) 174 PTZ (Plasmathrombinzeit) 174 PuCA-1-AAK 143 PuCA-2-AAK 142 Purkinjezellen (Tr)-AAK 142 Purkinjezellen-AAK 143 Pustelabstrich (Mikrobiologie) 240 Puumala-Virus 32 Pyridinoline im Urin 205 Pyridoxin 203 Pyrimethamin 216 Pyruvat 194 Q-Fieber 21 Quadruple-Test 168 Qualitätsmanagement 6 Quantiferontest 248 Quetiapin 216 Quetiapin (Pharmakogenetik) 116 Quick (TPZ) 174 Quincke-Ödem, hereditäres (C1-Inhib.) 126 Quinidin (Pharmakogenetik) 111 Rabeprazol (Pharmakogenetik) 118 Rabies (Tollwut) 66 Rachen-/Tonsillenabstrich (Mikrobiologie) 242 RAJI-Zelltest 144 Ranitidin (Pharmakogenetik) 114 Rapamycin (Sirolimus) 217 Rapid-progressive GN (Autoantikörper) 150 RAST (allergenspezifisches IgE) 201 RBP (Retinol-bindendes Protein) im Urin 225 Reiber-Schema (Blut-Liquor-Schranke) 198 Remoxiprid (Pharmakogenetik) 116 Renin 168 Resistenz d. Fakt.V g. akt. Prot.C (APCR) 177 Resistenz, osmotische 180 Respirationstraktinfekte (Mikrobiologie) 238 Respiratory Syncytial Virus (RSV) 60 Retikulozyten 180 Retinol 203 Retinol-bindendes Protein im Urin 225 Rezeptor-Tyrosinkinase-AAK 138 RF 144 Rh-Faktor (Rhesus-Faktor) 183 Rh-Formel (Rhesus-Formel) 183 Rh-Untergruppen 183 Rhesus D weak 104 Rhesus-Typisierung, genetisch 104 Rheumafaktor 144 rheumatische Erkrankungen 102 Rheumatoide Arthritis (Autoantikörper) 150 Rheumatoides Epitop 102 Rhinoviren 60 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Ri-AAK 139 Ribavirin (Pharmakogenetik) 119 Riboflavin 203 ribosomales P-Protein (Ribosomen-AAK) 139 Ribosomen-AAK 139 Rickettsien 61 Rifamp(ic)in (Pharmakogenetik) 112 Rifampicin 216 Riluzol (Pharmakogenetik) 119 Rinderbandwurm 259 Ringelröteln (Parvovirus B19) 57 Risperidon 216 Risperidon (Pharmakogenetik) 116 Ristocetin-Cofaktor 175 Ritonavir (Pharmakogenetik) 119 RNP-AAK 143 RNP70-AAK 139 Ro/SSA-AAK 141 Rocky-Mount.-Spotted Fever (Rickettsien) 61 Röteln 62 Ropivacain (Pharmakogenetik) 116 Rosuvastatin (Pharmakogenetik) 118 Rotaviren 61 RPR 65 RSV (Respiratory Syncytial Virus) 60 Rubella 62 S-100-Protein 209 SAA (Serum-Amyloid A) 128 Saccharomyces-cerevisiae-AK 139 Säure-Serum-Test (ersetzt d. PNH-Diag.) 122 Salmonellen 63 Salmonellen-AK 64 Sandfly Fever 64 Saquinavir (Pharmakogenetik) 119 SCC (Squamous Cell Carc.-assoc.-Ag) 209 Schilddrüsen-AAK 139 Schilddrüsen-Diagnostik 169 Schistosomen 258 Schnelldiagnostik 7 Schweinebandwurm 259 scIgA (Immunglob. A, sekr.) 125 Scl-70-AAK 140 SD-AK (Schilddrüsen-AAK) 139 Sediment, Urin 225 Selegilin (Pharmakogenetik) 119 Selen 202 Seoul-Virus 32 Sepsis (Mikrobiologie) 238 Sepsis, neonatal (DD) 91 Serotonin im Plasma 170 Sertindol (Pharmakogenetik) 116 Sertralin (Pharmakogenetik) 112 Serum-Amyloid A (SAA) 128 Serumeiweiß-Elektrophorese 197 Sexualhormon-bindendes Glob.(SHBG) 170 sFlt-1 170 sFlt-1/PlGF-Quotient 171 shared epitope 102 Sharp-Syndrom 147 SHBG (Sexualhormon-bindendes Glob.) 170 Shigellose 64 XVII Stichwortverzeichnis Sicca-Syndrom (Autoantikörper) 151 Sichelzellanämie (Hb-Elpho) 181 Sichelzelltest 181 Sicilian Virus (Sandfly Fever) 64 sIL2-R (löslicher Interleukin-2-Rezeptor) 127 Sildenafil (Pharmakogenetik) 119 Simvastatin (Pharmakogenetik) 118 Sin-nombre-Virus 32 Sirolimus (Pharmakogenetik) 115 Sirolimus (Rapamycin) 217 Sjögren-Syndrom (Autoantikörper) 151 Skelettmuskulatur-AAK 140 Sklerodermie (Auto-AK) 150 SLA (soluble-liver-Ag-AAK) 140 SLE (Autoantikörper) 151 Slow-Virus-Krankheiten 87 Sm-AAK 140 SMA (Glatte Muskulatur-AAK) 133 Soluble-liver-Ag (SLA-)-AK 140 Somatomedin C (IGF-1) 164 Somatotropes Hormon (STH) 171 Soordiagnostik (Mikrobiologie) 249 sp-100-AAK 140 Spartein (Pharmakogenetik) 111 Spermatozoen-AAK 140 Spermiogramm 172 Spondylitis ankylosans 102 Sporozidie-Prüfung 269 Sprue (Antikörper) 152 Sputum (Mikrobiologie) 239 Squamous Cell Carc.-assoc.-Ag (SCC) 209 ss-DNA-AAK 140 SSA-AAK 141 SSB-AAK 141 SSPE (Masern) 50 Stachelzell-Desmosomen-AAK 138 Statine (Pharmakogenetik) 118 Status, Urin 225 Stavudin (Pharmakogenetik) 119 Steinanalyse 222 Sterilisatoren (Hygieneuntersuchung) 263 Sterillösungen (Hygieneuntersuchung) 264 Steroidhormone (Pharmakogenetik) 115 sTfR (löslicher Transferrinrezeptor) 202 STH (Somatotropes Hormon) 171 STORCH 76 Streptokokken, beta-hämolysierende 243 Streptokokken-DNAse 144 Strongyloides stercoralis 257 Subakut skleros. Panenzephal. (Masern) 50 Subutex® im Serum (Bestätigung) 235 Subutex® im Urin (Bestätigung) 231 Subutex® im Urin (Screening) 229 Sulfadiazin 217 Sulfamethoxazol (Pharmakogenetik) 112 Sulfasalazin (Pharmakogenetik) 119 Sulfonamide (Pharmakogenetik) 112 Sultiam 217 Suprofen (Pharmakogenetik) 117 Synovialdiagnostik 194 Syphilis 64 XVIII Syst. Lupus erythem. (Autoantikörper) 151 T-Helferzellen 122 T-SPOT.TB 248 T3, freies 169 T4, freies 169 Ta-AAK 141 Tacrin (Pharmakogenetik) 119 Tacrolimus 217 Tacrolimus (Pharmakogenetik) 115 Taenien 259 TAK (Thyreoglobulin-AAK) 141 Talinolol (Pharmakogenetik) 114 Tamoxifen (Pharmakogenetik) 117 Tamsulosin (Pharmakogenetik) 119 Tartrat-res. Saure Phosphat. 5b 205 Tau-Protein im Liquor 199 TB-Elispot 248 TBE (Tick-borne Encephalitis, FSME) 30 Teicoplanin 217 Temazepam 217 Temgesic® im Serum (Bestätigung) 235 Temgesic® im Urin (Bestätigung) 231 Temgesic® im Urin (Screening) 229 Teniposid (Pharmakogenetik) 117 Tenoxicam (Pharmakogenetik) 117 Terbinafin (Pharmakogenetik) 115 Testis, Leydig-Zellen-AAK 141 Testosteron 171 Testosteron (Pharmakogenetik) 115 Testosteron, freies 171 Tetanus 20 Tetrabenazin (Pharmakogenetik) 119 TG (Thyreoglobulin) 170 Thalassämie [beta] (Molekulargenetik) 101 Thalassämie-Abklärung (Hb-Elpho) 181 Theobromin (Pharmakogenetik) 112 Theophyllin 217 Theophyllin (Pharmakogenetik) 112 Thiamin 203 Thiopurin-Methyltransferase 110 Thioridazin (Pharmakogenetik) 116 Thrombinzeit 174 Thrombophiliediagnostik 176 Thromboplastinzeit (Quick, TPZ) 174 Thromboplastinzeit, partielle (PTT) 174 Thromboserisiko, Abklärung 176 Thrombozyten 175 Thrombozyten-AAK 141 Thrombozytenfunktionstest 175 Thrombozytenhemmer (Pharmakogen.) 115 Thrombozytopenie, autoimmune 151 Thyreoglobulin (TG) 170 Thyreoglobulin-AAK (TAK) 141 Thyreoiditis post partum 149 Thyreoiditis, chronisch lymphozytär 151 Thyreoperoxidase-AK 142 Thyroxin, freies 169 Tick-borne Encephalitis (FSME) 30 Ticlopidin (Pharmakogenetik) 115 Tilidin (Pharmakogenetik) 111 Tilidin im Serum (Bestätigung) 235 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Stichwortverzeichnis Tilidin im Urin (Bestätigung) 232 Timolol (Pharmakogenetik) 114 Tiotropium (Pharmakogenetik) 119 Tissue Polypeptide Antigen (TPA) 209 Titin-AAK (MGT-30-AAK) 136 Tizanidin (Pharmakogenetik) 116 TNF alpha 104 110 TNFalpha-Genotyp 104 TNFalpha-Inhibitoren 110 Tobramycin 218 Tocopherol (Vitamin E) 204 Tolbutamid (Pharmakogenetik) 113 Tollwut 66 Tolterodin (Pharmakogenetik) 119 Topiramat 218 Topiramat (Pharmakogenetik) 113 Topoisomerase-I-AAK (Scl-70-AAK) 140 Torasemid (Pharmakogenetik) 114 TORCH 76 Toscana-Virus (Sandfly Fever) 64 Toxocara canis 260 Toxoplasmose 67 TPA (Tissue Polypeptide Antigen) 209 TPMT 110 TPO-AK 142 TPPA (Luessuchreaktion) 65 TPZ (Thromboplastinzeit, Quick) 174 Tr-AAK 142 Trachealsekret (Mikrobiologie) 239 Tracheobronchitis, Krupp (DD) 80 TRAK (TSH-Rezeptor-AK) 142 Tramadol (Pharmakogenetik) 111 Tramadol im Serum (Bestätigung) 235 Tramadol im Urin (Bestätigung) 232 Tranquillantia (Pharmakogenetik) 118 Transferrin 180 Transferrin im Urin 225 Transferrin-Rezeptor, löslicher 202 Transferrinsättigung 181 Transglutaminase-AK 142 142 TRAP-5b 205 Trazodon (Pharmakogenetik) 112 Treponema pallidum 64 TRH-Test 158 169 Trichinella spiralis 260 Trichinose 260 Trichomonas vaginalis 261 Trichomonas vaginalis Abstrich/Kultur 261 Trichomoniasis 261 Trichuris trichura (Peitschenwurm) 258 Trifluperidol (Pharmakogenetik) 116 Triglyceride, gesamt 194 Trijodthyronin, freies 169 Trimipramin 218 Trimipramin (Pharmakogenetik) 112 Trinkwasser (Hygiene) 262 Triple-Test 168 Tripper (Gonorrhoe) 244 Trisomie-21-Risikoabschätzung 168 Tropheryma-whipplei-DNA 70 Tropisetron (Pharmakogenetik) 113 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Troponin T 186 TropT (Troponin T) 186 Tryptase 201 TSH nach Stimulation 169 TSH, basal 169 TSH-Rezeptor-AK (TRAK) 142 Tsutsugamushi-Fleckfieber (Rickettsien) 61 tTG 142 142 Tuberkulose (Diagnostik) 247 Tularämie (Hasenpest) 30 Tumornekrosefaktor alpha 104 110 Turner-Syndrom 79 TWAR (C. pneumoniae)$Chlamydia pneumoniae 17 Typhus (Salmonellen) 63 Tyrosinphosphatase-AAK (IA2) 142 U1-RNP-AAK 143 U3-nRNP/Fibrillarin-AAK 143 UDP-Glucuronosyltransferase 1 103 uE3 (freies Estriol) 163 UGT1A1 103 Ullrich-Turner-Syndrom 79 Unteraufträge 6 Untersuchungsdauer (Bakteriologie) 237 uPA 110 Urapidil (Pharmakogenetik) 114 Ureaplasma urealyticum 70 Ureaplasmen (Mikrobiologie) 244 Uricult (Mikrobiologie) 240 Urin, nativ (Mikrobiologie) 240 Urinsediment 225 Urinstatus 225 Vaginalabstrich (Mikrobiologie) 244 Valproinsäure 218 Valproinsäure (Pharmakogenetik) 113 Vancomycin 218 Vanillinmandelsäure im Urin (VMA) 166 Varizella-Zoster-Virus (VZV) 70 Vaskulitis (Autoantikörper) 152 Vasopressin (ADH) 160 VDRL 65 Venlafaxin (Pharmakogenetik) 112 Verapamil (Pharmakogenetik) 111 Versand 5 Verträglichkeitsprobe 184 Vigabatrin 218 Vinblastin (Pharmakogenetik) 117 Vinca-Alkaloide (Pharmakogenetik) 117 Vincristin (Pharmakogenetik) 117 VIP (Vasoaktives Intestinales Polypeptid) 209 Viren (Nukleinsäurediagnostik) 95 Virostatika (Pharmakogenetik) 119 Viruslast, HBV 36 Viruslast, HCV 37 Viruslast, HIV 44 Viruzidie-Prüfung 268 Vitamin A 203 Vitamin B 1 203 Vitamin B 12 203 Vitamin B 2 203 Vitamin B 6 203 XIX Vitamin C 204 Vitamin D, (25-OH) 204 Vitamin D, 1,25(OH)2 204 Vitamin E (alpha-Tocopherol) 204 Vitamin H (Biotin) 204 Vitamin K 204 Vitamin K-Epoxidreduktase 110 VKORC1 110 VMA im Urin (Vanillinmandelsäure) 166 VMS im Urin (Vanillinmandelsäure) 166 von-Willebrand-Faktor (VWF) 175 Voriconazol (Pharmakogenetik) 115 VWF (von-Willebrand-Faktor) 175 VZV (Varizella-Zoster-Virus) 70 Wachstumshormon (STH) 171 Wachstumshormon- (STH-) Stim.-Test 159 Warfarin (Pharmakogenetik) 115 Wasserproben (Hygieneuntersuchung) 262 Weak D 104 Weiterleitung 6 West-Nil-Virus 72 Whipple, Morbus 70 Willebrand-Faktor (VWF) 175 Windpocken (VZV) 70 WNV (West-Nile-Virus) 72 Wolhynisches Fieber 11 Wuchereria bancrofti 253 Würmer 253 257 Wundinfektionen (Mikrobiologie) 239 Wundstarrkrampf (Tetanus) 20 XTC/Ecstasy im Serum (Bestätigung) 234 XTC/Ecstasy im Serum (Screening) 233 XTC/Ecstasy im Urin (Bestätigung) 231 XTC/Ecstasy im Urin (Screening) 229 Xylose im Blut 195 Xylose im Urin 225 Xylose-Belastungstest 155 Yersiniosen 73 Yo-AAK 143 Zafirlukast (Pharmakogenetik) 112 Zahorsky-Krankheit (Coxsackie-Viren) 26 Zeckenfieber (Rickettsien) 61 Zeckenübertragene Erkrankungen 74 Zellkern-AAK (ANA) 129 Zentromere-AAK 143 Zervizitis, Vulvovaginitis (DD) 88 Ziegenpeter (Mumps) 51 Zink im Seminalplasma 173 Zink im Serum 202 Zirkulierende Immunkomplexe 144 ZNS-Infektionen (Mikrobiologie) 237 Zöliakie 105 Zöliakie (Antikörper) 152 Zolmitriptan (Pharmakogenetik) 119 Zolpidem (Pharmakogenetik) 118 Zolpidem im Serum (Bestätigung) 235 Zolpidem im Urin (Bestätigung) 232 Zonisamid 219 Zopiclon (Pharmakogenetik) 118 Zopiclon (therapeutisch) 219 Zopiclon im Serum (Bestätigung) 236 Zopiclon im Urin (Bestätigung) 232 Zoster (VZV) 70 Zotepin (Pharmakogenetik) 116 Zuclopentixol (Pharmakogenetik) 116 Zwergfadenwurm (S. stercoralis) 257 Zystische Fibrose 105 Zystitis, hämorrhagisch (DD) 88 Zystizerkose 259 Zytogenetik 79 Zytokinbildung der Lymphozyten 123 Allgemeines Abkürzungen Aggl Ag AAK AAS AK BAL CEDIA CLIA DNA/DNS EA ECL ECLIA EIA ELA Elispot ELPHO ENZ (F) FEIA FTA-ABS FPIA GC HAH (HHT) HPLC HYBR IEF IFT IGeL IHAT ILMA IRMA ISAGA ISE LIA LTT MEIA M-EIA MS NAT NT OMIM PCR RAST RIA RNA/RNS RRA SDA SNP Tm Agglutination Antigen Autoantikörper Atom-Absorptions-Spektrometrie Antikörper Bronchoalveoläre Lavage Cloned Enzyme Donor Immuno Assay Chemolumineszenz Immuno Assay Desoxyribonukleinsäure Early Antigen Elektrochemolumineszenz Elektrochemolumineszenz Immuno Assay Enzyme Immuno Assay Enzyme linked Antigen Assay Enzyme Linked Immuno Spot Technique Elektrophorese enzymatische Bestimmung Fremdleistung Fluoreszenz-Enzym-Immuno-Assay Fluoreszenz-Treponema-Absorptionstest Fluoreszenz-Polarisation-Immuno-Assay Gaschromatographie Haemagglutinations-Hemmtest Hochleistungs-Flüssigkeitschromatographie Hybridisierung Isoelektrische Fokussierung Immunfluoreszenztest Individuelle Gesundheits-Leistung Indirekter Hämagglutinationstest Immunoluminometrischer Assay Immunoradiometrischer Assay Immunosorbent Agglutinations Assay Ionenselektive Elektrode Lumineszenz Immuno Assay Lactose-Toleranz-Test Mikropartikel-verstärkter Immunoassay Membran Enzym Immunoassay Massenspektrographie Nukleinsäure amplifizierende Technik Neutralisationstest Online Mendelian Inheritance in Man Polymerase chain reaction Radio-allergo sorbent Test Radio Immuno Assay Ribonukleinsäure Radio Rezeptor Assay Strand Displacement Amplification Single Nucleotide Polymorphism Schmelzpunktanalyse Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 1 Allgemeines TMA TPPA TRACE VDRL WB 2 Transcription Mediated Amplification Treponema pallidum Partikelagglutinationstest Time Resolved Amplified Cryptate Emission Veneral Disease Research Laboratory Test Western Blot Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Allgemeines Allgemeine Hinweise Vorwort Sehr geehrte Frau Kollegin, sehr geehrter Herr Kollege! Unser Leistungsverzeichnis für 2012/2013 ist neu überarbeitet und liegt Ihnen in gewohnter Form vor. Es liefert Ihnen wichtige Zusatzinformationen zu den von uns angebotenen Untersuchungen wie zum Beispiel die benötigte Menge an Untersuchungsmaterial, die Ansatzhäufigkeit, präanalytische Besonderheiten und die Referenzbereiche für Erwachsene. Alters- und geschlechtsabhängige Normwerte können Sie dem Befund entnehmen. Für konstruktive Kritik sind wir Ihnen sehr dankbar. Sie können diese an Herrn Dr. Tewald (0711/6357-119) weiterleiten. Wir hoffen auf weitere gute Zusammenarbeit. Ihr Labor Enders Anforderungsscheine Unsere Untersuchungsaufträge sind im Kopfbereich den Überweisungsscheinen angepasst, wodurch der Eindruck mittels Patientenchipkarte möglich ist. Patientendaten bitte mit Adrema oder in Blockschrift lesbar eintragen. Bei Kassenpatienten auf dem Überweisungsschein sämtliche gewünschte Untersuchungen eintragen. Unsere Anforderungsscheine stehen Ihnen auch unter http://www.labor-enders.de/formulare.html zur Verfügung. Da die Scheine eingescannt werden, bitten wir Sie zur Vermeidung von Einlesefehlern, auf eine ausreichende Druckqualität (Schwärzung) zu achten. Bitte Absenderangaben nicht vergessen (Stempel). Bei Privatpatienten und IGeL-Untersuchungen bitte vollständige Postanschrift der Patienten für die Rechnungszustellung angeben. Anforderungsschein I (Infektiologie) Bei Infektionsverdacht: Anamnese wie Erkrankungsbeginn, Symptome, Schwangerschaft (vollendete Schwangerschaftswoche und Tage), Vorbefunde, bisherige Therapie, Auslandsaufenthalte, passive oder aktive Impfungen zusätzlich auf unserem Untersuchungsauftrag I (Infektiologie) angeben. Anforderungsschein II (Klinische Chemie) Der Untersuchungsauftrag II dient der Anforderung klinisch-chemischer, endokrinologischer und weiterer Parameter. Hier sind auch die Abnahmebedingungen für die einzelnen Parameter vermerkt. Anforderungsschein für die Forensische Toxikologie Dieses Formular enthält Anforderungen zur Bestimmung von Betäubungsmitteln im Rahmen der forensischen Toxikologie aus Serum (Fahrtüchtigkeit) und Urin (Fahreignung). Anforderungsschein für gynäkologische Endokrinologie Dieser Anforderungungsschein ist speziell für die Fragestellung der gynäkologischen Endokrinologie entwickelt worden. Bitte geben Sie hier die für die Interpretation des Befundes notwendigen klinischen Angaben an. Weitere Anforderungsscheine Weitere Formulare für spezielle Fragestellungen wie z.B. Down-Screening, HPV-Diagnostik, Untersuchung von Zecken, Molekulargenetik / Pharmakogenetik usw. sind ebenfalls erhältlich bzw. auf unserer Internetseite herunterladbar. Für alle humangenetischen Untersuchungen ist eine Einwilligungserklärung nötig, die bei uns angefordert oder im Internet heruntergeladen werden kann. Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 3 Allgemeines Probenkennzeichnung Jedes Röhrchen (nicht die Versandhülle!) bitte mit Namen, Vornamen und Geburtsdatum des Patienten sowie dem Abnahmedatum und Zeitpunkt beschriften. Bei mehreren Proben, z.B. Tagesprofil o.ä., auf den Röhrchen in jedem Fall zusätzlich den Abnahmezeitpunkt angeben. Bei (mehreren) Abstrichproben, Punktaten etc. bitte den Entnahmeort kennzeichnen. Bei Sondermaterialien wie z.B. Fetalblut, Fruchtwasser, Urin oder Brochoalveoläre Lavage (BAL) zusätzlich die Materialart angeben, da wir diese Materialarten im Labor durch Begutachtung nicht eindeutig identifizieren können. Untersuchungsmaterial für Infektionsserologie, Hämatologie, Klinische Chemie, Endokrinologie, Mutterschaftsvorsorge, Pränataldiagnostik Serum (Monovette, weiße Kappe) 20 - 60 min. gerinnen lassen, 10 min. bei ca. 3000 U/min zentrifugieren, Überstand (Serum) in Probenröhrchen überführen und wie angegeben versenden bzw. lagern. Serum in Gelmonovette (braune Kappe) 20 - 60 min. gerinnen lassen, 10 min. bei ca. 3000 U/min zentrifugieren und wie angegeben versenden bzw. lagern. Kein Abkippen notwendig. Vollblut (geronnen) Blut abnehmen, sofort in Probenröhrchen mit Schraubverschluss geben bzw. Blut mit (Gel)-Monovette, Vakutainer ohne gerinnungshemmende Zusätze abnehmen und darin belassen. Nicht einfrieren (Hämolyse). Ausnahme: zentrifugierte Gelmonovetten EDTA-Blut Blut mit EDTA-Monovette abnehmen, sofort gut durchmischen. Plasma EDTA-, Heparin-, Citrat- oder NaF-Vollblut durchmischen, sofort 15 min. bei ca. 3000 U/min zentrifugieren, Überstand (Plasma) in Probenröhrchen überführen (mit Pipette, nicht abkippen) und wie angegeben versenden bzw. lagern. Blutausstrich 1-2 gleichmäßig dünne Blutausstriche anfertigen, 10 min. lufttrocknen und beschriften. Nicht fixieren! In Versandhülle für Objektträger verschicken. Präanalytik-Fibel Genaue Angaben zur Präanalytik einzelner Parameter finden Sie auch in unserer Präanalytik-Fibel, die Sie von unserer Internetseite herunterladen können. Untersuchungsmaterial für Blutgruppenserologie Für die Blutgruppenbestimmung inkl. Antikörpersuchtest und direktem Antiglobulintest (direktem Coombstest) Das Material für die Blutgruppenserologie muss mit Namen, Vornamen und Geburtsdatum beschriftet sein. EDTA-Blut Blut mit EDTA-Monovette abnehmen, sofort gut durchmischen. Monovetten immer mit Name, Vorname und Geburtsdatum beschriften! Untersuchungsmaterial für Virusnachweis Virusnachweis mittels Zellkultur, Schnellanzucht und Antigen-ELISA Für virologische und bakteriologische oder parasitologische Untersuchungen bitte getrennte Proben in separaten Entnahmegefäßen einsenden. Bitte verwenden Sie: - Für Liquor, Urin, Sekrete, Gelenkpunktat, Sputum, bronchoalveoläre Lavage, Fruchtwasser und Aszites sterile Blutröhrchen ohne Zusätze (weiße Kappe) - Für Biopsieproben sterile Röhrchen mit Zusatz von ca. 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung. 4 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Allgemeines - Für Stuhlproben Stuhlröhrchen (braune Kappe) - Für Genital-, Augen- und Rachenabstriche Röhrchen mit Virustransportmedium (grüne Kappe). Für Augenabstriche die Tupfer mit steriler physiologischer Kochsalzlösung anfeuchten. Abstrich abnehmen, Tupfer in Virustransportmedium eintauchen, Stiel abbrechen und das Röhrchen fest verschließen. - Für den HPV-Nachweis im Genitalabstrich bitte die speziellen Entnahme/Transportsysteme verwenden. Beachte : Proben bis zum Versand kühlen und wenn möglich gekühlt (Kühlkissen, Styroporbehälter) nicht gefroren! - versenden. Für pränatale Diagnostik: Versand per Eilsendung (Postexpress). Der gekühlte und schnelle Transport dient zur Vermeidung falsch negativer Befunde. Informationen zu Entnahme- und Transportbedingungen sowie entsprechendes Versandmaterial können bei uns angefordert werden. Untersuchungsmaterial für Bakteriologie, Mykologie, Parasitologie Bitte Transportzeiten beachten, ggf. per Eilzustellung versenden. Versandinformationen und geeignete Versandmaterialien können kostenfrei angefordert werden. Siehe auch mikrobiologischer Teil des Untersuchungsprogramms. Untersuchungsmaterial für Immunologie / Immunzytologie EDTA-Blut bzw. Heparin-Blut per Eilboten versenden, da die Proben nicht älter als 24h sein sollten. Probenentnahme und sofortiger Versand von Montag bis Donnerstag. Proben bitte telefonisch ankündigen. Untersuchungsmaterial für Molekularbiologie / Molekular- / Pharmakogenetik (NAT) NAT (z.B. PCR,TMA) sind sehr sensitive Techniken. Um Kontaminationen, d.h. falsch-positive Ergebnisse zu vermeiden, sollten Proben (Blut, Liquor etc.) unter Verwendung frischer Einmalhandschuhe entnommen und in separate Probengefäße (EDTA-Röhrchen oder Monovetten) eingebracht werden. Das Wiederöffnen der Gefäße und Umfüllen ist strikt zu vermeiden, ebenso der Gebrauch von Heparinröhrchen. Heparin hemmt die PCR-Reaktion! Eine Einverständniserklärung des Patienten bzw. dessen gesetzlichen Vertreters ist zu allen genetischen Untersuchungen erforderlich! IGeL Die Kosten für Individuelle Gesundheits-Leistungen werden Ihren Patienten privat zum 1,0 fachen Satz der GOÄ in Rechnung gestellt. Ausführliche Informationen finden Sie in unserem gesonderten IGeL-Programm. Bitte aktuelle Adresse des Patienten angeben! Versand und Probentransport Fahrdienst Nach Vereinbarung werden Proben beim Einsender durch unseren Fahrdienst abgeholt und fachgerecht zum Labor transportiert. Probenversand Soweit keine speziellen Hinweise auf die Art und Weise des Versandes angegeben sind, kann die Probe als Briefpost in unseren Versandtüten (sind bereits vorfrankiert) versandt werden. Kurierservice Auf Wunsch veranlassen wir eine tägliche Probenabholung durch unseren Kurierservice oder per Postexpress im gesamten Bundesgebiet. Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 5 Allgemeines Weiterleitung / Unteraufträge Wir behalten uns vor, Untersuchungen im Sinne einer qualitativ hochwertigen Laboranalytik, soweit sie nicht im eigenen Laboratorium verfügbar sind, in einem anderen Labor durchführen zu lassen. Hierbei handelt es sich ausschließlich um Labore, welche die hohen Qualitätsanforderungen nach DIN EN ISO/IEC 17025 bzw. DIN EN ISO 15189 erfüllen. Diese weitergeleiteten Aufträge werden im Leistungsverzeichnis mit (F) gekennzeichnet. Auf Anfrage kann Name und Anschrift des jeweiligen Fremdlabors mitgeteilt werden. Qualitätsmanagement Im Jahre 2001 wurde das Labor Prof. Dr. med. Gisela Enders & Kollegen als Prüflabor nach DIN EN ISO/IEC 17025:2005 akkreditiert und drei Jahre später, im Januar 2004 nach der neuen Norm DIN EN ISO 15189:2007. Nicht nur die Erfüllung der europäischen, sondern auch die der amerikanischen Qualitätsnormen haben wir uns zum Ziel gesetzt. Daher ist unser Labor seit Februar 2004 durch das "College of American Pathologists (CAP)" und seit März 2005 nach den Richtlinen des "Clinical Laboratory Improvement Amendments" (CLIA) akkreditiert. Seit dem Jahr 2009 ist unser Labor zusätzlich nach DIN EN ISO/IEC 17025:2005 für die Betäubungsmittelanalytik für forensische Zwecke akkreditiert. Normbereiche und Befundinterpretation Normbereiche werden auf unserem Befundbericht in Abhängigkeit von Geschlecht, Alter, Schwangerschaftswoche und Zyklustag angegeben. Die Interpretationen der Untersuchungsergebnisse entsprechen dem neuesten Kenntnisstand. Sie beziehen sich auf die jeweils angegebenen Normbereiche bzw. internationale Standards und werden mit den jeweiligen Analysewerten angegeben. Im Bereich der Infektionsserologie ist die Angabe allgemeingültiger Normbereiche nicht immer möglich bzw. sinnvoll. Unsere regelmäßig aktualisierten Infos zur jeweiligen Fragestellung, z. B. Infektion in der Schwangerschaft, bei Neugeborenen, Kindern, Erwachsenen, Impfungen, rationale Chemotherapie u. a. m. fügen wir unseren entsprechenden Befunden bei. Messunsicherheit Die Messunsicherheit beschreibt die Streuung von Messergebnissen. In jedem Abschnitt der Analyse bis zur abschließenden Messung treten Abweichungen vom wahren Wert auf. Wir ergreifen kontinuierlich Maßnahmen und führen regelmäßig Kontrollen durch, um Abweichungen und Schwankungen zu minimieren. Unabdingbar hierfür ist auch Ihre Mithilfe: Bitte geben Sie uns Informationen zu Probenabnahmebedingungen und Lagerung! Wir möchten Sie darauf hinweisen, dass wir jederzeit Auskünfte zur Messunsicherheit auf Anfrage erteilen, damit die medizinische Interpretation labordiagnostischer Ergebnisse sinnvoll und patientenorientiert erfolgen kann. Befundmitteilung Schriftliche Befunde werden in der Regel durch unseren Fahrdienst oder per Post zugestellt. Auf Wunsch erfolgt die Befundübermittlung (zusätzlich bzw. ausschließlich) per Fax bzw. durch Datenfernübertragung (Mailbox) nach Absprache. Wichtige Untersuchungsergebnisse wie z. B. Immunstatus bei Infektionskontakt, Medikamentenspiegel und beta-hCG bei Schwangeren, positive Blutkulturen, positive Liquorbefunde, Nachweis von Enteritiserregern und andere wichtige Ergebnisse sowie von Ihnen besonders gekennzeichnete Aufträge werden schnellstmöglich telefonisch mitgeteilt bzw. gefaxt. Bitte Telefonnummer bzw. Fax-Nummer, unter der Sie am entsprechenden Tag zu erreichen sind, nicht vergessen! 6 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Allgemeines Schnelldiagnostik Schnelldiagnostik (Untersuchungsdauer) Die in diesem Kapitel aufgeführten Tests werden bei zeitgerechtem Probeneingang am selben Tag analysiert. Unabhängig davon werden selbstverständlich der Großteil an klinisch-chemischen und endokrinologischen Parametern am selben Tag bestimmt. Bordetella pertussis PCR (s. S. 14 ) Mo-Fr bis 12.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr (Material: tiefer Nasen- oder Rachenabstrich, Trachealsekret) Indikation: V.a. Pertussis CMV (pp65-Ag) (s. S. 22 ) Mo-Fr bis 14.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr (Material: EDTA-Blut) Indikation: Bei Immunsupprimierten und V. a. Reaktivierung Enteritis (Schnelldiagnostik) Mo-Fr bis 14.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr Stuhlprobe zur Abklärung bei akuter Enteritis (des Kleinkindes) Rotavirus (s. S. 61 ) Noro-Viren (s. S. 54 ) Adenovirus (s. S. 9 ) Hepatitis B (HBsAg) (s. S. 35 ) Mo-Fr bis 16.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr Indikation: Nadelstichverletzungen und kurz vor Geburt bei unbekanntem Status für Hepatitis B HIV-Test (s. S. 43 ) Mo-Fr bis 14.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr (Bei dringender Indikation) HSV 1/2 PCR (s. S. 40 ) Mo-Fr bis 12.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr (Material: Liquor, Abstrich) Indikation: V. a. Herpes-Enzephalitis Varizellen-AK (s. S. 70 ) Mo-Fr bis 16.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr (Material: Serum, Vollblut) Indikation: Bei Kontakt in der Schwangerschaft, in Kliniken und bei Immunsuppression Influenza-Virus A/B (Ag-Nachweis) (s. S. 46 ) Mo-Fr bis 14.00, Sa bis 10.00 (Material: Rachenabstrich, bei Kindern Nasenabstrich) Indikation: V. a. Influenza-Infektion Influenza-Virus RT-PCR (s. S. 46 ) Mo-Fr bis 12.00, Sa bis 10.00 (Material: Rachenabstrich, bei Kindern Nasenabstrich) Indikation: V. a. Influenza-Infektion Parvovirus B19-AK (s. S. 57 ) Mo-Fr bis 11.00 Uhr Indikation: Immunstatus (bei Kontakt in der Schwangerschaft) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 7 Allgemeines Pneumocystis jiroveci (s. S. 239 ) Mo-Fr bis 14.00 Uhr (Material: BAL) Indikation: Pneumonie bei Immunsupprimierten RSV RT-PCR (s. S. 60 ) Mo-Fr bis 12.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr (Material: Trachealsekret) Indikation: Pneumonie, Tracheitis, Bronchiolitis (insbesondere bei Säuglingen, Kleinkindern) Malariadiagnostik (s. S. 256 ) Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr (Mikroskopisch und Schnelltest) Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malaria-Endemiegebieten Ammoniak (s. S. 187 ) Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr (Material: EDTA-Plasma) Indikation: dekompensierte Leberinsuffizienz PCT (Procalcitonin) (s. S. 128 ) Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr Verdacht auf Sepsis, Verlaufskontrolle unter antibiotischer Therapie Endokrinologie Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr Indikation: Schwangerschaftsüberwachung; V. a. Extrauteringravidität; nach Abrasio beta-hCG (s. S. 162 ) Östradiol (E2) (s. S. 163 ) LH (s. S. 167 ) Progesteron (s. S. 167 ) 8 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Infektionsserologie / Virologie Acrodermatitis chronica atrophicans (s. S. 14 ) (Borreliose) Adenovirus-Infektionen Bis heute sind mehr als 50 humanpathogene Serotypen identifiziert. Adenoviren infizieren Schleimhäute und sind verantwortlich für akute, hochfieberhafte respiratorische Infekte, Pharyngotonsillitiden, infektiöse Keratokonjunktivitiden, Gastroenteritiden, hämorrhagische Zystitiden u. a. Inkubationszeit: 2 - 10 Tage Die Diagnose wird vor allem durch den Erregernachweis gestellt. Der Erregernachweis im Konjunktivalabstrich ist meldepflichtig (Keratokonjunktivitis epidemica, hoch kontagiös)! Adenovirus-IgG-AK EIA Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Pharyngitis, Atemwegserkrankung, Lymphadenitis, Keratokonjunktivitis, hämorrhagische Zystitis, Polyhydramnion, Enteritis (bei Kleinkindern) Referenzbereich: <10 U/ml Adenovirus-IgA-AK EIA Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Pharyngitis, Atemwegserkrankung, Lymphadenitis, Keratokonjunktivitis, hämorrhagische Zystitis, Polyhydramnion, Enteritis (bei Kleinkindern) Referenzbereich: <11 U/ml Adenovirus-Antigennachweis im Stuhl Material: Stuhl Menge: erbsgroß Methode: Ag-EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Gastroenteritis (vor allem bei Kleinkindern) Referenzbereich: negativ Adenovirus-Schnellanzucht auf Hep2-Zellen Probenmaterial in Virustransportmedium (grüne Kappe) einsenden. Material: Rachenabstrich, Bronchiallavage, Bronchialsekret, Augenabstrich Methode: Schnellkultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Pharyngitis, Atemwegserkrankung und Keratokonjunktivitis Adenovirus-Anzucht in Zellkultur Anzucht auf Graham (293)-Zellen und diploiden Fibroblasten Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Rachenabstrich, Stuhl, Urin, Fruchtwasser Methode: Kultur Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4-7 Tage) Referenzbereich: negativ Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 9 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Adenovirus-DNA Stuhl (erbsgroß), Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml, nativ), Augenabstriche (trocken, in 1 ml NaCl, oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: Stuhl, Liquor, Fruchtwasser, Augenabstrich Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Adenovirus-Infektion Referenzbereich: negativ Afipia felis (Katzenkratzkrankheit siehe Bartonellen) (s. S. 11 ) (Früher als Erreger der Katzenkratzkrankheit vermutet. Möglicherweise doch für einen kleinen Teil der Erkrankungen verantwortlich, jedoch ist keine Serologie verfügbar.) AIDS (s. S. 43 ) Amöbiasis (Entamoeba histolytica) (s. S. 250 ) Anaplasmose (s. S. 25 ) Die granulozytäre Form der Ehrlichiose wird jetzt als Anaplasmose bezeichnet. Ancylostoma duodenale (s. S. 257 ) Hakenwurm. Arbovirosen (arthropode-borne viruses) Eine inhomogene Gruppe von mehr als 300 Viren. Hierzu gehören Alphaviren, Flaviviren, Bunyaviren und das Genus Orbivirus der Reoviridae. Im weiteren Sinne werden auch (nicht durch Arthropoden übertragene) Viren der Arenaviridae, Filoviridae und Rhabdoviridae als Arboviren bezeichnet. Die Übertragung erfolgt in der Regel über Mücken (Culicinae, Aedes, Anopheles, Culicoides, Phlebotomus) oder Zecken (Ixodoidea, Dermacentor, Haemaphysalis). Dengue-Virus (s. S. 24 ) Flavivirus FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 ) Flavivirus West-Nil-Virus (WNV) (s. S. 72 ) Flavivirus Lyssa-Virus (Tollwut) (s. S. 66 ) Rhabdovirus Pappatacifieber-Virus (Sandflyfever) (s. S. 64 ) Phlebovirus Chikungunya-Virus (CHIKV) (s. S. 17 ) Togavirus Ascaris lumbricoides (s. S. 257 ) Spulwurm. Aspergillus-Infektionen Aspergillen wachsen auf verwesendem organischen Material (z. B. Pflanzenabfälle). Die Sporen werden in der Regel inhaliert (z. B. defekte Belüftungssysteme). Der Pilz kann eine allergische bronchopulmonale Aspergillose, ein Aspergillom oder beim immunsupprimierten Patienten eine invasive bzw. systemische Aspergillose verursachen. In >90% der Fälle wird eine Erkrankung durch A. fumigatus verursacht. 10 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Aspergillus fumigatus-AK IHAT Erfasst werden auch AK gegen A. niger, A. nidulans, A. terreus, A. flavus Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IHAT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Aspergillom i. d. Lunge, NNH-Mykose Referenzbereich: <1:80 Titer Aspergillus Galaktomannan-Antigen EIA Material: Serum, Vollblut, Bronchoalveoläre Lavage Menge: 1 ml Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. invasive Aspergillose Referenzbereich: < 0.5 Index Mikrobiologischer Nachweis von Aspergillus sp. (s. S. 249 ) (kulturell und mikroskopisch) Astrovirus-Infektionen Das Virus verursacht, vor allem bei Kleinkindern, eine akute Gastroenteritis. Inkubationszeit: 1 - 3 Tage Astrovirus-Antigennachweis im Stuhl Material: Stuhl Menge: erbsgroß Methode: Ag-EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Astrovirus-Infektion, akute Diarrhoe Referenzbereich: negativ Babesiose (s. S. 250 ) Bartonellen Die Katzenkratzkrankheit (cat scratch disease) wird durch Bartonella henselae verursacht (seltener eventuell auch durch Afipia felis). Bartonella henselae wird überwiegend durch Biss- und Kratzwunden von Katzen übertragen. Hauptsymptome sind eine überwiegend einseitige, regionäre Lymphadenitis. Im Verlauf der Erkrankung können Kopfschmerzen, Gliederschmerzen, Appetitlosigkeit und/oder Übelkeit auftreten. Weitere Symptome können Arthralgien, Exantheme, Thrombopenie und Parotisschwellung sein. Bartonella quintana ist der Erreger des Wolhynischen Fiebers (sehr selten). Die Übertragung von B. quintana erfolgt über den Kot von Kleiderläusen. Beide Erreger können beim Immunsupprimierten die bazilläre Angiomatose verursachen, bei der es zu einer vasoproliferativen Störung der Haut, Schleimhäute, Lymphknoten und der inneren Organe kommt. Inkubationszeit (Katzenkratzkrankheit): variabel 2 - 4 Wochen Bartonella-henselae-IgG-AK IFT Katzenkratzkrankheit Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Bartonellose, Katzenkratzkrankheit, Lymphadenitis, bazilläre Angiomatose Referenzbereich: <1:64 Titer Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 11 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Bartonella-henselae-IgM-AK IFT Katzenkratzkrankheit Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Bartonellose, Katzenkratzkrankheit, Lymphadenitis, bazilläre Angiomatose Referenzbereich: <1:20 Titer Bartonella-quintana-IgG-AK IFT Wolhynisches Fieber (hier selten) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Plötzlich einsetzende Fieberschübe von etwa 3-5 Tagen Dauer, Arthralgien, Kopfschmerzen Referenzbereich: <1:64 Titer Bartonella-quintana-IgM-AK IFT Wolhynisches Fieber (hier selten) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Plötzlich einsetzende Fieberschübe von etwa 3-5 Tagen Dauer, Arthralgien, Kopfschmerzen Referenzbereich: <1:20 Titer Bartonella-henselae/quintana-DNA Biopsie (nativ) z.B von Haut oder Lymphknoten, Abstrich (trocken, in 1 ml NaCl, oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe). Material: Biopsie, Wundabstrich, Hautabstrich, Lymphknoten Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Bartonellose, Katzenkratzkrankheit, bazilläre Angiomatose Referenzbereich: negativ Bazilläre Angiomatose (s. S. 11 ) (Bartonellen-Infektion bei Immunsupprimierten) Bilharziose (s. S. 258 ) BKV (s. S. 54 ) BK-(Polyoma-)Virus Bordetella parapertussis Gramnegative aerobe Stäbchen, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Der Erreger verursacht ein Pertussis-ähnliches Krankheitsbild. Die Erkrankung verläuft in der Regel leichter als Infektionen mit B. pertussis. Inkubationszeit: 7 - 14 Tage Serologie siehe Bordetella pertussis (s. S. 13 ) Die serologische Diagnostik erfolgt mittels Antiköpernachweis gegen Filamentöses Hämagglutinin. Das Fehlen von Pertussis-Toxin-AK deutet auf eine Infektion mit B. parapertussis hin. 12 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Bordetella-parapertussis-DNA Nasopharyngialabstrich, Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl, oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe), Trachealsekret (mind. 1 ml), Abstriche in Gel sind ungeeignet! Material: Nasopharyngealabstrich, Rachenabstrich, Trachealsekret Methode: PCR Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Tracheitis, Bronchitis, pertussiformer Husten. Früher Nachweis des Erregers, auch bei Kontaktfällen (im Sinne einer Umgebungsuntersuchung) in der Inkubationszeit. Erregernachweis nach antibiotischer Anbehandlung, bei geimpften Personen. Referenzbereich: negativ Bordetella pertussis (Keuchhusten) Gramnegative aerobe Stäbchen, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Die Erkrankung ist sehr ansteckend, vor allem ungeimpfte Säuglinge bis 6 Monate können schwer erkranken. Die Erkrankung verläuft in drei Stadien, Stadium catarrhale, Stadium convulsivum, Stadium decrementi. Antikörper sind meist erst 2-3 Wochen nach Beginn des konvulsiven Stadiums nachweisbar. Die frühzeitige Diagnostik erfolgt mittels Erregernachweis (PCR). Inkubationszeit: 7 - 14 (- 20) Tage B. pertussis-(Pertussis-Toxin)-IgG-AK EIA Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver! Zur Beurteilung der Serologie ist die Angabe der Impfanamnese erforderlich! Material: Serum, EDTA-Blut, Citrat-Plasma, Heparinblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Infektion mit B. pertussis, Impferfolgskontrolle (eingeschränkt) Referenzbereich: altersabhängige Referenzbereiche, siehe Befund. Einheit: IE/ml B. pertussis-(Pertussis-Toxin)-IgA-AK EIA Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver! Material: Serum, EDTA-Blut, Citrat-Plasma, Heparinblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Pertussis, stakkatoartiger Husten z. T. mit Erbrechen, Bronchitis, Tracheitis; bei Neugeborenen: Pneumonie Referenzbereich: altersabhängige Referenzbereiche, siehe Befund IE/ml Bordetellen-(FHA)-IgG-AK EIA Antikörper gegen Filamentöses Hämagglutinin Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver! Zur Beurteilung der Serologie ist die Angabe der Impfanamnese erforderlich! Material: Serum, EDTA-Blut, Citrat-Plasma, Heparinblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Infektion mit Bordetellen (B. pertussis oder B. parapertussis), Impferfolgskontrolle (eingeschränkt) Referenzbereich: altersabhängige Referenzbereiche, siehe Befund. Einheit: IE/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 13 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Bordetellen-(FHA)-IgA-AK EIA Antikörper gegen Filamentöses Hämagglutinin Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver! Material: Serum, EDTA-Blut, Citrat-Plasma, Heparinblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Infektion mit Bordetellen (B. pertussis oder B. parapertussis) Referenzbereich: altersabhängige Referenzbereiche, siehe Befund. Einheit: IE/ml Bordetella-pertussis-DNA Nasopharyngialabstrich, Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl, oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe), Trachealsekret (mind. 1 ml), Abstriche in Gel sind ungeeignet! Material: Nasopharyngealabstrich, Rachenabstrich, Trachealsekret Methode: PCR Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Pertussis, pertussiformer Husten. Früher Nachweis des Erregers, auch bei Kontaktfällen (im Sinne einer Umgebungsuntersuchung) in der Inkubationszeit. Erregernachweis nach antibiotischer Anbehandlung bei geimpften Personen. Referenzbereich: negativ Borreliose (Lyme disease) Häufigste von Zecken übertragene Krankheit der nördlichen Hemisphäre. Die Erkrankung wird durch die Spirochäte Borrelia burgdorferi sensu lato verursacht. In Europa existieren mehrere Subspezies die als humanpathogen gelten: B. afzelii, B. garinii, B. burgdorferi sensu stricto, B. spielmannii und B. bavariaensis. Als möglicherweise humanpathogen gelten: B. bissettii, B. lusitaniae und B. valaisiana. Die Erkrankung verläuft in Stadien. 1. früh-lokalisiert (Tage bis Wochen nach Zeckenstich): Erythema migrans; 2. früh-disseminiert (Wochen bis Monate nach Stich): z. B. Meningitis, Karditis, Radikulitis; 3. spät-disseminiert (Monate bis Jahre nach Stich): Acrodermatitis chronica atrophicans, Lyme-Arthritis, chronische ZNS-Infektionen. Inkubationszeit: Erythema migrans: 1 - 3 (6) Wochen, Folgestadien: Monate bis Jahre Borrelien-IgG-AK EIA In der Frühphase der Erkrankung weniger sensitiv, jedoch im Vergleich zu früheren Tests verbessert durch Zusatz von rekombinantem VlsE zum Vollantigen. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zeckenstich, Erythema migrans, Facialisparese, Arthralgien, Meningitis, Radikulitis, Akrodermatitis chronica atrophicans (ACA) Referenzbereich: <5 U/ml Borrelien-IgM-AK EIA Ein negatives Ergebnis schließt eine Infektion in der Frühphase nicht aus! Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zeckenstich, Erythema migrans, Facialisparese, Arthralgien, Meningitis, Radikulitis Referenzbereich: negativ 14 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Borrelien-IgG-AK Blot Rekombinante Antigene mehrerer Spezies inklusive VlsE Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Borrelien-IgM-AK Blot Rekombinante Antigene mehrerer Spezies inklusive VlsE Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Borrelien-IgG EIA, Liquor/Serum (Antikörperindex) Es wird ein Liquor-/Serumpaar vom selben Abnahmetag benötigt. Material: Liquor, Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute/chronische Neuroborreliose Referenzbereich: <1.5 Antikörperindex (AI) Borrelien-IgM EIA, Liquor/Serum (Antikörperindex) Es wird ein Liquor-/Serumpaar vom selben Abnahmetag benötigt. Material: Liquor, Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute/chronische Neuroborreliose Referenzbereich: <1.5 Antikörperindex (AI) Borrelien-DNA Liquor (mind. 0,5 ml). Haut- und Synoviabiopsien müssen nativ sein, sie sollten in wenig NaCl-Lösung in sterilen Transportgefäßen versandt werden. Zecken bitte ebenfalls nativ mit wenig Flüssigkeit (z. B. NaCl oder auch Leitungswasser) in sterilem Röhrchen einsenden. Spezieller Anforderungsschein im Internet unter http://www.labor-enders.de/uploads/media/Zeckenanforderung_01.pdf. Material: Biopsie, Liquor, Punktat, Zecke Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. akute (Liquor bei V. a. Meningitis) bzw. chronische (Hautbiopsie bei V. a. ACA, Synoviabiopsie bei V. a. Lyme-Arthritis) Infektion mit Borrelien Referenzbereich: negativ Brucellose Maltafieber, M. Bang Brucellen sind sehr widerstandsfähige gramnegative Bakterien. Erregerreservoire sind Schafe/Ziegen (B. melitensis ), Rinder (B. abortus ) und Schweine (B. suis ). Meist eingeschleppte Infektion z. B. aus dem Mittelmeerraum (Genuss von rohem Käse oder Milch), Mexiko, Südamerika; auch berufliche Exposition (Landwirte, Tierärzte, Hirten). Die Brucellose kann subklinisch, akut oder chronisch verlaufen. Symptome einer akuten Brucellose sind: trockener Husten, Nachtschweiß, Arthralgien, Gewichtsverlust, Muskelschmerzen, später Fieberschübe. Unbehandelt kommt es zu einem undulierenden, remittierenden Fieber oder septischer Kontinua. Weitere intestinale Symptome, Lymphadenitis und Blutbildveränderungen können hinzukommen und im Rahmen eines chronischen Verlaufes auch zu Neurobrucellose führen. Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 15 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Inkubationszeit: sehr variabel (eine Woche bis mehrere Monate), im Mittel 2 - 3 Wochen Meldepflichtige Erkrankung! Brucellen-AK Immunocapture-Agglutinationstest Erfasst werden: Brucella abortus, B. melitensis und B. suis Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Agglutination Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Infektionsverdacht, Fieber, trockener Husten Referenzbereich: <1:320 Titer Brucellen IgG-AK EIA Erfasst werden: Brucella abortus, B. melitensis und B. suis Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Infektionsverdacht, Fieber, trockener Husten Referenzbereich: <20 U/ml Brucellen IgM-AK EIA Erfasst werden: Brucella abortus, B. melitensis und B. suis Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Infektionsverdacht, Fieber, trockener Husten Referenzbereich: <15 U/ml Mikrobiologischer Nachweis z. B. in der Blutkultur (s. S. 238 ) Campylobacter-Infektionen Gemeinsam mit den Salmonellen häufigster bakterieller Erreger einer akuten infektiösen Enteritis. In Ausnahmefällen kann es zu Meningitis, Sepsis, Abszessen, Pneumonie, Guillain-Barré-Syndrom oder postinfektiöser Arthritis kommen. Die Übertragung erfolgt fäkal-oral, durch kontaminierte Lebensmittel (z. B. rohe Milch, Eier, Fleisch) sowie durch Kontakt mit infizierten Tieren (Abort beim Schaf und Rind; Enteritis bei Tieren). Saisonale Häufung von Infektionen mit Campylobacter spp. in den Sommermonaten. Inkubationszeit: 2 - 7 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Campylobacter-IgG-AK EIA Erfasst werden: C. jejuni ,C. coli Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma, Heparinplasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Indikation: reaktive Arthritis, Guillain-Barré-Syndrom Referenzbereich: <20 U/ml Campylobacter-IgA-AK EIA Erfasst werden: C. jejuni ,C. coli Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma, Heparinplasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Indikation: reaktive Arthritis, Guillain-Barré-Syndrom Referenzbereich: <20 U/ml Mikrobiologische Stuhluntersuchung auf Campylobacter (s. S. 241 ) 16 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Candida-Infektionen Candida spp. gehören zu den Hefepilzen; über 90% der Erkrankungen werden durch C. albicans verursacht. Die Übertragung erfolgt vertikal durch Schmierinfektion (z. B. Hände, Windeln, Stuhl), iatrogen (z. B. Katheter). Infektionen besonders bei immunsupprimierten Patienten. Candida-AK IHAT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: IHAT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Soor, Pneumonie, Oesophagitis (n. Beatmung) insbesondere bei Immunsupprimierten; Vaginitis, Vulvitis Referenzbereich: <1:160 Titer Candida albicans Antigennachweis Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Soor, Pneumonie, Oesophagitis (nach Beatmung) insbesondere bei Immunsupprimierten; Vaginitis, Vulvitis, V. a. Candidose, Fungämie Referenzbereich: <62,5 pg/ml Mikrobiologischer Nachweis von Candida sp. (s. S. 249 ) (kulturell und mikroskopisch) Chikungunya-Virus Das Chikungunya-Virus (CHIKV) ist ein behülltes RNA-Virus und gehört zur Gattung Alphavirus aus der Familie der Togaviridae. Beim Menschen verursacht es das Chikungunya-Fieber. Vorkommen in Afrika, Indien und Südostasien, in den letzten Jahren starke Ausbreitung des Erregers, u. a. auf die Inseln im Indischen Ozean. Übertragung durch Stechmücken der Gattung Aedes. Der Erreger verursacht eine fieberhafte Erkrankung mit Gelenkbeschwerden. Antikörper sind 5 Tage nach Symptombeginn nachweisbar, vorher kann die Diagnose nur durch RT-PCR aus EDTA-Plasma gestellt werden. Inkubationszeit: 3 - 7 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Chikungunyavirus-IgG-AK IFT (F) Material: Serum, Vollblut Menge: 2 ml Methode: IFT Referenzbereich: <1:10 Titer Chikungunyavirus-IgM-AK IFT (F) Material: Serum, Vollblut Menge: 2 ml Methode: IFT Referenzbereich: negativ Chlamydia pneumoniae Chlamydophila pneumoniae (Zeitweise verwendete Nomenklatur) Zunächst als C. psittaci (TWAR) Stamm bezeichnet. Obligat intrazelluläre Bakterien, häufigste Ursache einer atypischen Pneumonie im Jugendalter. Weitere Manifestationen sind: Sinusitis, Pharyngitis, Otitis media. Eine kardiale Beteiligung ist möglich. Die Übertragung erfolgt aerogen (Tröpfcheninfektion) von Mensch zu Mensch. Ca. 50% der Erkrankungen verlaufen subklinisch, Reinfektionen kommen vor. Eine Beteiligung von C. pneumoniae an der Arteriosklerose wird diskutiert. Inkubationszeit: ungefähr 30 Tage (gelegentlich kürzer) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 17 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Chlamydia-pneumoniae-IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Pneumonie, trockener Husten, Bronchitis, Pharyngitis Referenzbereich: <1:32 Titer Chlamydia-pneumoniae-IgA-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Pneumonie, trockener Husten, Bronchitis, Pharyngitis Referenzbereich: <1:32 Titer Chlamydia-pneumoniae-DNA 1-2 ml Sputum, Bronchial- oder Trachealsekret (mind. 1 ml), Abstrich (trocken, in 1 ml NaCl, oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe). Material: Sputum, Bronchialsekret, Trachealsekret, Abstrich Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Atypische Pneumonie, V. a. Chlamydien-Pneumonie Referenzbereich: negativ Chlamydia-pneumoniae-IgG-AK Immunoblot Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF, YwbM Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Chlamydia-pneumoniae-IgA-AK Immunoblot Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF, YwbM Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Chlamydophila psittaci (Psittakose, Ornithose) Erreger der Papageienkrankheit (Psittakose) bzw. Ornithose (bei Nicht-Papageien). Übertragung durch Vogelkot (Staub). Der Erreger verursacht eine atypische Pneumonie. Selten letale Verläufe. Inkubationszeit: 7 - 14 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Chlamydia-psittaci-IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Atypische Pneumonie besonders nach Ziervogelkontakt Referenzbereich: <1:16 Titer 18 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Chlamydia-psittaci-AK IFT Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Atypische Pneumonie besonders nach Ziervogelkontakt Referenzbereich: <1:16 Titer Chlamydia-psittaci-DNA (F) 1-2 ml Sputum, Bronchial- oder Trachealsekret, Abstrich (trocken, in 1 ml NaCl, oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe). Material: Trachealsekret, Sputum, Bronchialsekret Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: Atypische Pneumonie, besonders bei Kontakt mit Vögeln. Referenzbereich: negativ Chlamydia-psittaci-IgG-AK Immunoblot Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Chlamydia-psittaci-IgA-AK Immunoblot Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Chlamydia trachomatis Es existieren verschiedene Serovare unterschiedlicher Pathogenität: A-C (Auge), D-K und L1-L3 (Genitaltrakt). Die Übertragung erfolgt durch Schmierinfektion, sexuellen Kontakt oder perinatal. Häufigste sexuell übertragbare Erkrankung weltweit. L1-L3 verursachen das Lymphogranuloma inguinale/venerum. Die chronische Infektion mit C. trachomatis kann zu Vernarbung der Adnexe und damit zu Sterilität führen. Durch Infektion des kleinen Beckens kann es zu Verwachsungen des Peritoneums kommen. Folge sind chronische Unterbauchbeschwerden. Bei Neugeborenen können Pneumonien vorkommen (10-20 %). Periinfektiös kann eine reaktive Arthritis auftreten. Chlamydia-trachomatis-IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Cervicitis, Urethritis, Adnexitis, Sterilität, chronische Unterbauchbeschwerden, Arthritis, Pneumonie (beim Neugeborenen) Referenzbereich: <1:16 Titer Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 19 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Chlamydia-trachomatis-IgA-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Cervicitis, Urethritis, Adnexitis, Sterilität, chronische Unterbauchbeschwerden, Arthritis, Pneumonie (beim Neugeborenen) Referenzbereich: <1:16 Titer Chlamydia-trachomatis-RNA ca. 2 ml frischer Erststrahlurin in APTIMA-Urinprobentransportgefäß (kein Mittelstrahlurin!). Abstriche von Zervix, Urethra in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit blauem Schaft). Augenabstriche bei Neugeborenen in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit weißem Schaft), ca. 1 ml Ejakulat (nativ in sterilem Röhrchen). Material: Cervixabstrich, Urin, Urethralabstrich, Augenabstrich, Ejakulat Methode: TMA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. genitale Chlamydien-Infektion: Cervicitis, Urethritis, Adnexitis, Konjunktivitis, Pneumonie (beim Neugeborenen), Mutterschaftsvorsorge, Screening im Rahmen der Empfängnisregelung (bis zum vollendeten 25. Lebensjahr) Referenzbereich: negativ Chlamydia-trachomatis-IgG-AK Immunoblot Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF, HSP60 Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Chlamydia-trachomatis-IgA-AK Immunoblot Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF, HSP60 Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Clostridium tetani (Tetanus) Synonym: Wundstarrkrampf Grampositives anaerobes Bakterium, resistent gegen Hitze und gebräuchliche Antiseptika. Bei jeder Verletzung besteht das Risiko einer Schmierinfektion, besonders wenn Schmutz, Erdreich oder Faeces in die Wunde gelangen. Der Tetanus wird üblicherweise in vier Formen eingeteilt: generalisiert, lokalisiert, zephalisch (d. h. am Kopf lokalisiert) und neonatal. Ein überstandener Tetanus hinterläßt keine dauerhafte Immunität. Inkubationszeit: 3 Tage bis 3 Wochen (abhängig von der Eintrittspforte auch länger) Erkrankung und Krankheitsverdacht sind meldepflichtig! Mikrobiologischer Nachweis von C. tetani (s. S. 239 ) 20 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Tetanus-Antitoxin Nur geeignet zum AK-Nachweis nach Impfung; bei Infektionsverdacht: Toxinnachweis im Spezial-Referenzlabor Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung Referenzbereich: <0,01 IE/ml CMV (s. S. 22 ) Cytomegalie-Virus Coronavirus (NL63) Dieses Coronavirus wurde im Jahre 2004 von niederländischen Wissenschaftlern im Nasensekret eines Säuglings mit Bronchiolitis gefunden. Heute weiß man, dass das Spektrum der klinischen Symptome bei Kleinkindern von Durchfallerkrankung, milder Erkältung über Pseudokrupp bis zu schwerer Bronchitis und Pneumonie reicht. Coronavirus NL63 wurde bei 5 % von mit Atemwegserkrankungen hospitalisierten Kindern nachgewiesen. Coronavirus-(NL63)-RNA Bronchiallavage oder Trachealsekret (mind. 1 ml), Rachenabstrich (trocken, 1 ml NaCl, oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe), Stuhl (erbsgroß). Material: Bronchiallavage, Rachenabstrich, Trachealsekret, Stuhl Methode: RT-PCR Indikation: V. a. Infektion bei akuter Atemwegssymptomatik Referenzbereich: negativ Corynebacterium diphtheriae (Diphtherie) Grampositives Stäbchen; die Übertragung erfolgt aerogen, einziges Erregerreservoir ist der Mensch. Man unterscheidet lokal begrenzte Formen, wie die Rachen-, Nasen- und Kehlkopfdiphtherie (Krupp), die mit lokalen Lymphknotenschwellungen und Fieber einhergehen, von den malignen systemischen Formen, die durch das Diphtherietoxin verursacht werden. Diese systemischen Formen führen zur Schädigung von Herz, Nieren und ZNS. Es kommt zu schlaffen Lähmungen, z. B. Augenmuskel- und Facialisparesen wie auch Paresen der Schluck- und Zwerchfellmuskulatur. Inkubationszeit: 2 - 5 (1 - 7) Tage Erkrankung und Verdacht sind meldepflichtig! Diphtherie-Toxin-AK NT Nur geeignet zum AK-Nachweis nach Impfung; bei V. a. Infektion Erregernachweis (Kultur) und Toxinnachweis! Meldepflichtige Erkrankung! Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Neutralisationstest Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 5-10 Tage) Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung Referenzbereich: <0.010 IE/ml Kultureller Nachweis von C. diphtheriae (s. S. 242 ) Coxiella burnetii (Q-Fieber) Sehr widerstandsfähiges gramnegatives Bakterium aus der Familie der Rickettsien. Übertragung durch infizierte Tiere (hauptsächlich Schaf, Rind, Ziege) über deren Kot (Staub), Wolle, Häute etc. durch Inhalation von erregerhaltigem Staub. Chronische Infektionen (z.B. Endokarditis) sind nicht selten, werden aber oft nicht erkannt. Hier sind Schwangere besonders gefährdet, bei ihnen wird die Infektion häufig chronisch. Bei einer Coxiella-burnetii-Infektion in der Schwangerschaft besteht ein erhöhtes Abortrisiko, es kann zu Frühgeburt und intrauteriner Wachstumsretardierung kommen. Inkubationszeit: 2 - 4 Wochen Eine Infektion mit C. burnetii ist meldepflichtig! Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 21 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Q-Fieber IgG Phase II AK EIA Phase II-Antikörper: Sind in jeder Krankheitsphase nachweisbar, auch bei einer zurückliegende Infektion. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Suchtest Referenzbereich: <20 U/ml Q-Fieber IgM Phase II AK EIA Phase II-Antikörper: Hinweis auf akute Infektion Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Suchtest Referenzbereich: <0.9 Index Q-Fieber IgG Phase I AK EIA Phase I-Antikörper: Treten im Verlauf der (chronischen) Infektion auf Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: <0.9 Index Q-Fieber IgA Phase I AK EIA Phase I-Antikörper: Hinweis auf chronische Infektion Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: <0.9 Index Coxsackie-Viren (Enteroviren) (s. S. 26 ) Cytomegalie-Virus (CMV) CMV gehört zur Familie der Herpesviren (Humanes Herpes-Virus Typ 5). CMV ist die häufigste Ursache prä- und perinataler Virusinfektionen. Mehr als 90 % der Infektionen mit CMV verlaufen subklinisch. Übertragung horizontal über Speichel, Urin, Zervixsekret, Blut oder Blutprodukte sowie transplantierte Organe und vertikal (konnatale Infektion). Reaktivierungen (vor allem bei Immunsupprimierten) und Reinfektionen (mit neuem Stamm) kommen vor. Inkubationszeit: variabel, 3 - 12 Wochen CMV-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: unspezifische Symptome, rezidivierendes Fieber, Lymphadenitis In Schwangerschaft: Screening, auffälliger US, grippaler Infekt Beim Neugeborenen: pränatale/frühpostnatale Auffälligkeiten Bei Immunsuppression: Retinitis, Hepatitis, Pneumonie Referenzbereich: <200 mPEIU/ml 22 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge CMV-IgM-AK ELA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: ELA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Verdacht auf akute Infektion; unspezifische Symptome, rezidivierendes Fieber, Lymphadenitis In Schwangerschaft: auffälliger Ultraschall, auffällige mütterliche Serologie, grippaler Infekt Beim Neugeborenen: pränatale/frühpostnatale Auffälligkeiten Referenzbereich: <1.5 Index CMV-IgG-AK Avidität Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Aviditätstest Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V. a. CMV-Infektion) Referenzbereich: siehe Befund CMV-AK Neutralisationstest Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Neutralisationstest Ansatz: Di, Do (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V. a. CMV-Infektion) Referenzbereich: <1:4 Titer CMV-IgG-AK rekombinanter Blot Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V. a. CMV-Infektion) Referenzbereich: negativ (qualitativ) CMV-IgG-AK EIA im Liquor Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird. Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der Serum-AK. Material: Liquor Menge: 200 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: ZNS-Beteiligung Referenzbereich: <10 mPEIU/ml CMV-pp65-Antigen-Nachweis Nachweis von pp65-Antigen in Leukozyten mittels direkter Immunfluoreszenz Material muss innerhalb 24 h verarbeitet werden! Bei Kindern ist eine Menge von 4 ml EDTA-Blut ausreichend. Material: EDTA-Blut Menge: 10 ml Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. CMV-Reaktivierung unter immunsuppressiver Therapie oder bei Immundefekt Referenzbereich: negativ Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 23 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge CMV-Schnelltest (EA-Nachweis) Schnellanzucht (Dauer 24 h) Material nativ (oder in sterilem Röhrchen), bei Abstrichen bitte Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Urin, Fruchtwasser, Rachenabstrich, Trachealsekret Methode: Schnellkultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. CMV-Infektion, prä-, frühpostnatale CMV-Infektion Referenzbereich: negativ CMV-Anzucht in Zellkultur auf diploiden Fibroblasten Material nativ oder in Virustransportmedium (grüne Kappe) versenden. Material: Urin, Fruchtwasser, Trachealsekret, Rachenabstrich Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: bis 4 Wochen) Indikation: V. a. CMV-Infektion, prä-, frühpostnatale CMV-Infektion Referenzbereich: negativ CMV-DNA EDTA-Blut (2-3ml), Nabelschnurblut, Vollblut, Fruchtwasser (2-5 ml), Urin (5-10 ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Abstriche (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: Urin, Fruchtwasser, EDTA-Blut, Vollblut, Nabelschnurblut, Liquor, Abstrich Methode: PCR (auch quantitativ) Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. CMV-Infektion (besonders in Schwangerschaft und bei Neugeborenen); bei Immunsuppression: Retinitis, Hepatitis, Pneumonie Referenzbereich: negativ CMV-spezifische T-Lymphozyten Nachweis erregerspezifischer T-Lymphozyten: Messung zytokinsezernierender Lymphozyten (z. B. IFN-gamma) nach Antigenstimulation in vitro Abnahme Mo-Mi, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Vorherige telefonische Anmeldung erbeten! Nur Heparinblut möglich! Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden. Material: Heparinblut Menge: 9 ml Methode: Elispot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Nachweis einer zellulären Immunität gegen CMV z. B. bei unklarer Serologie Dengue-Fieber Denguevirus gehört zur Familie der Flaviviren, es existieren 4 Serotypen. Vorkommen weltweit in tropischen und warmen Gebieten, die Übertragung erfolgt durch Aedes Mücken. Es treten zwei Verlaufsformen auf: 1. Klassisches Dengue-Fieber (DF), fieberhafte Erkrankung meist selbstlimitierend. 2. Dengue-hämorrhagisches Fieber (DHF) bzw. bei schwerem Verlauf mit Dengue-Schock-Syndrom (DSS). Inkubationszeit: 3 - 6 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Dengue-Virus-IgG-AK EIA Der Test erfasst alle 4 Serotypen, kann zwischen diesen aber nicht differenzieren. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Fieber, Gelenk-, Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre Schmerzen, nach Aufenthalt in Südostasien, der Karibik, Südamerika, Australien Referenzbereich: <1.0 Index 24 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Dengue-Virus-IgM-AK EIA Der Test erfasst alle 4 Serotypen, kann zwischen diesen aber nicht differenzieren. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Fieber, Gelenk-, Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre Schmerzen, nach Aufenthalt in Südostasien, der Karibik, Südamerika, Australien Referenzbereich: <1.0 Index Dengue-Virus-Antigennachweis EIA NS1-Antigennachweis positiv in den ersten 14 Tagen der Erkrankung (Sensitivität vergleichbar mit der Erreger PCR). Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Fieber, Gelenk-, Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre Schmerzen, nach Aufenthalt in Südostasien, der Karibik, Südamerika, Australien Referenzbereich: negativ Diphtherie (s. S. 21 ) EBV (s. S. 28 ) Epstein-Barr-Virus Echinokokken (s. S. 251 ) ECHO-Viren (Enteroviren) (s. S. 26 ) (ECHO: entero-cytopathogenic-human-orphan) Ehrlichiose und Anaplasmose Die Erreger der HGA (Humane granulozytäre Anaplasmose) und HME (Humane monozytäre Ehrlichiose) werden durch Zecken übertragen. In Europa handelt es sich meist um HGA (Anaplasma phagocytophilum), in Amerika kommen beide Arten vor. Der Erreger verursacht ein Influenza-ähnliches Krankheitsbild. Häufig subklinischer Verlauf. Kreuzreaktionen zwischen den einzelnen Ehrlichienarten kommen vor. Inkubationszeit: ungefähr 7 (1 - 21) Tage Anaplasma phagocytophilum-IgG-AK IFT Erreger der humanen granulozytären Anaplasmose (HGA, früher humane granulozytäre Ehrlichiose) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zeckenstich (ohne Erythema migrans), Kopfschmerzen, Muskelschmerzen, Übelkeit, Leukopenie, Thrombozytopenie, erhöhter Serum-Aminotransferasespiegel Referenzbereich: <1:64 Titer Anaplasma phagocytophilum-IgM-AK Erreger der humanen granulozytären Anaplasmose (HGA, früher humane granulozytäre Ehrlichiose) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zeckenstich (ohne Erythema migrans), Kopfschmerzen, Muskelschmerzen, Übelkeit, Leukopenie, Thrombozytopenie, erhöhter Serum-Aminotransferasespiegel Referenzbereich: <1:20 Titer Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 25 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Ehrlichia chaffeensis-IgG-AK IFT Erreger der humanen monozytäre Ehrlichiose (HME) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Zeckenstich (ohne Erythema migrans), Kopfschmerzen, Muskelschmerzen, Übelkeit, Leukopenie, Thrombozytopenie, erhöhter Serum-Aminotransferasespiegel Referenzbereich: <1:128 Titer Anaplasmen/Ehrlichien-DNA (F) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: Zur Akutdiagnostik bei klin. apparentem Verlauf nach Zeckenstich Referenzbereich: negativ Enterohämorrhagische E. coli (EHEC, HUS) Hämolytisch-urämisches Syndrom Enterohämorrhagische E.-c.-Stämme (u. a. O157) bilden ein Zytotoxin (Verotoxin) und können besonders bei Kleinkindern eine thrombotische Mikroangiopathie u. a. mit akutem Nierenversagen auslösen. Meldepflichtige Erkrankung! Escherichia coli O157 IgG Immunoblot (F) Material: Serum Menge: 1 ml Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. HUS (hämolytisch-urämisches Syndrom, Gasser-Syndrom) Referenzbereich: negativ (qualitativ) Escherichia coli O157 IgM Immunoblot (F) Material: Serum Menge: 1 ml Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. HUS (hämolytisch-urämisches Syndrom, Gasser-Syndrom) Referenzbereich: negativ (qualitativ) Stuhluntersuchung auf EHEC (s. S. 241 ) Enteroviren (Coxsackie-, ECHO- , Enteroviren) Das Genus Enterovirus beinhaltet mehr als 80 humane Serotypen, die entsprechend der neuen Klassifikation in 4 Spezies geteilt sind: Humanes Enterovirus A, B, C und D. Eine präzise Zuordnung von Erreger-Serotyp und Krankheit ist nicht möglich, obwohl bekannt ist, dass z. B. die Hand-Fuß-Mund-Krankheit durch Coxsackie A-Viren und die Bornholm-Krankheit durch Coxsackie-B-Viren häufig verursacht werden. Nicht-Polio-Enteroviren sind für eine Fülle verschiedenster Krankheitsbilder verantwortlich. Am häufigsten sind unspezifische, fieberhafte Erkrankungen der oberen Luftwege mit Kopfund Muskelschmerzen, Pharyngitis, Tonsillitis, Laryngitis, Lymphadenopathie und Bronchitis. Gastrointestinale Beschwerden wie Brechdurchfall stehen nicht im Vordergrund. Saisonale Häufung in den Sommer- und Herbstmonaten. Inkubationszeit: 3 - 6 (2 - 35) Tage. Der Erregernachweis z. B. aus Stuhl oder Liquor ist die Methode der Wahl. 26 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Enterovirus-IgG-AK EIA Das ELISA-Testsystem enthält eine Antigenpräparation aus ECHO-Virus Typ 6 und Coxsackievirus Typ B5. Diese sind als ausreichend kreuzreagierend beschrieben um auch Infektionen durch andere Enterovirus-Serotypen zu erfassen. Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Exanthem, Hand-Fuß-Mund-Krankheit, Meningitis, Myokarditis, Facialisparese, Gastroenteritis, Myalgien, Myokarditis, Pleurodynie (Bornholm-Krankheit) Referenzbereich: <80 U/ml Enterovirus-IgM-AK EIA Das ELISA-Testsystem enthält eine Antigenpräparation aus ECHO-Virus Typ 6 und Coxsackievirus Typ B5. Diese sind als ausreichend kreuzreagierend beschrieben um auch Infektionen durch andere Enterovirus-Serotypen zu erfassen. Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Exanthem, Hand-Fuß-Mund-Krankheit, Meningitis, Myokarditis, Facialisparese, Gastroenteritis, Myalgien, Myokarditis, Pleurodynie (Bornholm-Krankheit) Referenzbereich: <30 U/ml Enterovirus-Schnellanzucht auf Colonkarzinom- und RD-Zellen Liquor: min. 0,5 ml, Stuhl: erbsgroß. Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Liquor, Stuhl, Rachenabstrich, Bronchoalveoläre Lavage, Fruchtwasser Methode: Schnellkultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: seröse Meningitis, Myokarditis, Exanthem, Pleuritis, Hand-Fuß-Mund-Krankheit, Facialisparese, Gastroenteritis, Myalgien, Enteritis Enterovirus-Anzucht in Zellkultur auf diploiden Fibroblasten und Colonkarzinomzellen Liquor: min. 0,5 ml, Stuhl: erbsgroß. Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Stuhl, Liquor, Rachenabstrich, Bronchiallavage, Fruchtwasser Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-8 Tage) Indikation: seröse Meningitis, Myokarditis, Exanthem, Pleuritis, Hand-Fuß-Mund-Krankheit, Facialisparese, Gastroenteritis, Myalgien, Enteritis Enterovirus-RNA Der Test erfasst folgende Viren: Coxsackie-, ECHO- und Polio-Viren. Nicht erfasst werden Parechoviren. EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut, Liquor (mind. 0,5 ml), Stuhl (erbsgroß), native Biopsie (in 1 ml NaCl), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: EDTA-Blut, Vollblut, Liquor, Stuhl, Biopsie, Rachenabstrich Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: seröse Meningitis; unklare Peri-, Myokarditis, akute/chronische Kardiomyopathie; Enteritis Referenzbereich: negativ Humane Parechovirus-RNA (s. S. 56 ) Früher bezeichnet als ECHO-Virus 22/23 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 27 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Epstein-Barr-Virus-Infektion (M. Pfeiffer) Das Epstein-Barr-Virus gehört zur Familie der Herpesviren (Humanes Herpes-Virus Typ 4). Es verursacht die infektiöse Mononukleose. Charakteristisch sind die mononukleären Zellen im Blutbild. Nach einer durchgemachten Infektion persistiert das Virus lebenslang in ruhenden B-Zellen (v. a. im Knochenmark). Hier kann EBV jederzeit reaktiviert werden. Solche Reaktivierungen verlaufen bei immunkompetenten Patienten in der Regel klinisch inapparent, sie gehen mit einer Virusausscheidung im Speichel und häufig auch nachweisbarer EBV-DNA im Blut einher. Selten kommen lymphoproliferative Erkrankungen (bei Immunsupprimierten) und Tumoren (Burkitt-Lymphom, Nasopharynx-Ca) vor. Inkubationszeit: 10 - 30 Tage EBV (VCA)-IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Pfeiffer´sches Drüsenfieber, infektiöse Mononukleose, multiple Lymphknotenschwellung, Angina, Hepatitis, polyklonale B-Zell-Lymphome?; bei Immunsuppression: Reaktivierung möglich Referenzbereich: <1:32 Titer EBV (VCA)-IgM-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Pfeiffer´sches Drüsenfieber, infektiöse Mononukleose, multiple Lymphknotenschwellung, Angina, Hepatitis, polyklonale B-Zell-Lymphome?; bei Immunsuppression: Reaktivierung möglich Referenzbereich: <1:32 Titer EBV-Nuclear-Antigen (EBNA1)-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Ausschluss akute, kürzliche Infektion innerhalb der letzten 6-8 Wochen Referenzbereich: <9 AU/ml EBV-IgG-AK Blot (rekombinanter Immunoblot) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest zur Abklärung unklarer serologischer Befunde Referenzbereich: siehe Befund EBV-IgG-Avidität Blot (rekombinanter Immunoblot) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes bei unklaren serologischen Befunden Referenzbereich: siehe Befund 28 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge EBV-IgM-AK Blot (rekombinanter Immunoblot) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest zur Abklärung unklarer serologischer Befunde Referenzbereich: siehe Befund EBV-Early-Antigen-IgG-AK IFT (EA-d und EA-r) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. reaktivierte EBV-Infektion; V. a. EBV-assoziiertes lymphoproliferatives Syndrom, Nasopharynx-Ca, Burkitt-Lymphom Zusatztest Referenzbereich: <1:16 Titer EBV Early-Antigen-IgA-AK IFT Material: Serum Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Nasopharynx-Carcinom Referenzbereich: <1:16 alpha-Titer EBV (VCA)-IgA-AK IFT Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: EBV-assoziierter Tumor (z.B. Nasopharynx-CA), auch als "Tumormarker" Referenzbereich: <1:16 Titer EBV (VCA)-IgG-AK IFT im Liquor Bitte immer eine zeitgleich entnommene Serumprobe zur Bestimmung des spezifischen Antikörperindex (AI) mit einsenden. Material: Liquor Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: ZNS-Beteiligung Referenzbereich: <1:4 Titer EBV-DNA EDTA-Blut (2 ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: EDTA-Blut, Liquor, Rachenabstrich Methode: PCR (auch quantitativ) Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Reaktivierung, z. B. bei Immunsuppression Referenzbereich: negativ Erythema (chronicum) migrans (s. S. 14 ) Borreliose Fasciola hepatica (Großer Leberegel) (s. S. 252 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 29 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Fleckfieber (s. S. 61 ) Rickettsien Francisella tularensis (Tularaemie) Gramnegatives Bakterium; vor allem in Osteuropa und Nordamerika bei Nagern verbreitete Zoonose ("Hasenpest"), selten in Deutschland. Die Infektion erfolgt bei Tieren durch Arthropoden, beim Menschen durch Kontakt mit lebenden oder toten infizierten Tieren (Wildzubereitung) sowie seltener durch Inhalation von infektiösem Material. Kleine Hautdefekte können auch als Eintrittspforte fungieren. Inkubationszeit: 3 - 5 (1 - 14) Tage Meldepflichtige Erkrankung! Francisella tularensis IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Infektion über Wildbretzubereitung, sehr selten, ulzeroglanduläres/okuloglanduläres Bild, selten Pneumonie Referenzbereich: <10 U/ml Francisella tularensis IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Infektion über Wildbretzubereitung, sehr selten, ulzeroglanduläres/okuloglanduläres Bild, selten Pneumonie Referenzbereich: <10 U/ml Frühsommer-Meningoenzephalitis (FSME-Virus) Das FSME-Virus gehört zu den Flaviviren, die Übertragung erfolgt durch Zecken. Hochendemiegebiete in Deutschland sind Baden-Würrtemberg, Bayern sowie die südlichen Teile von Hessen und Thüringen. In Europa vor allem Österreich, Polen, Schweden und Russland. Zweiphasiger Verlauf. 1. Phase: nach Zeckenstich Fieber, Kopfschmerzen, Besserung nach ca. 1 Woche. 2. Phase: hohes Fieber, Meningitis, Meningoenzephalitis, Enzephalomyelitis. Inkubationszeit: 7 (- 20) Tage Meldepflichtige Erkrankung! FSME-Virus-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung, Zeckenstich, Meningitis, Enzephalitis, Sommergrippe, nach Aufenthalt in Endemiegebieten Referenzbereich: <63 vieu/ml FSME-Virus-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: V. a. akute Infektion mit FSME-Virus Referenzbereich: negativ (<63) vieu/ml 30 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge FSME-Virus IgG-AK Avidität Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes Referenzbereich: siehe Befund % FSME-Virus-IgG-AK EIA im Liquor Material: Liquor Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: ZNS-Beteiligung Referenzbereich: negativ FSME-Virus-RNA EDTA-Blut (2 ml), Liquor (mind. 0,5 ml). Zecke bitte nativ in wenig Flüssigkeit einsenden (z. B. einige Tropfen NaCl in neutralem Röhrchen). Material: EDTA-Blut, Liquor, Zecke Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. FSME Referenzbereich: negativ FSME (s. S. 30 ) Frühsommer-Meningoenzephalitis Fuchsbandwurm (s. S. 251 ) Echinokokkus multilocularis, alveoläre Echinokokkose. GB-Virus C (Hepatitis G) GB-Virus C (GBV-C) wurde früher als Hepatitis-G-Virus bezeichnet, verursacht jedoch keine Hepatitis. Es handelt sich um ein Flavivirus, das mit dem Hepatitis-C-Virus verwandt ist. Die Übertragung ist vermutlich durch Blutkontakt, sexuell und von der Mutter auf das Kind möglich. Bislang konnte jedoch keine Krankheit mit diesem Virus in Verbindung gebracht werden, die pathogene Bedeutung ist daher unklar. Eine Koinfektion mit GBV-C verbessert bei HIV-infizierten Patienten die Prognose. GBV-C (Hepatitis-G-Virus) RNA Material: EDTA-Blut, EDTA-Plasma, Serum, Vollblut Menge: 2 ml Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung im Rahmen einer HIV-Infektion Referenzbereich: negativ Gonokokken (Neisseria gonorrhoeae) Gramnegative Diplokokken, ausschließlich humanpathogen. Übertragung durch sexuellen Kontakt sowie perinatal. Inkubationszeit: 2 - 5 (7) Tage Mikrobiologischer Nachweis von N. gonorrhoeae (s. S. 243 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 31 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Neisseria-gonorrhoeae-RNA ca. 2 ml frischer Erststrahlurin in APTIMA-Urinprobentransportgefäß (kein Mittelstrahlurin!). Abstriche von Zervix, Urethra in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit blauem Schaft). Augenabstriche bei Neugeborenen in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit weißem Schaft), ca. 1 ml Ejakulat (nativ in sterilem Röhrchen). Material: Genitalabstrich, Urin, Augenabstrich Methode: TMA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: männliche Urethritis, Zervizitis, Adnexitis, inguinale Lymphadenitis Referenzbereich: negativ Granulozytäre Anaplasmose (s. S. 25 ) (vormals Ehrlichiose) Gürtelrose (Zoster) (s. S. 70 ) Reaktivierte Infektion mit Varizella-Zoster-Virus. Haemophilus influenzae Typ b Gramnegative Stäbchen, die aerogen oder durch direkten Kontakt übertragen werden. Invasive Erkrankungen werden in den meisten Fällen durch H. influenzae Kapseltyp b verursacht. In den ersten beiden Lebensjahren liegt der Häufigkeitsgipfel der Hib-Meningitis, im 3. bis 4. Jahr derjenige der Hib-Epiglottitis (bakt. Pseudokrupp). Inkubationszeit: wenige Tage Bei V. a. Infektion ist der Erregernachweis die Methode der Wahl. Meldepflichtige Erkrankung! Haemophilus influenzae Typ b IgG-AK EIA nur geeignet vor und nach Impfung! Nicht zur Diagnose einer Infektion geeignet. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Immunstatus; bei Symptomen: Erregernachweis Referenzbereich: <0.15 µg/ml Mikrobiologischer Nachweis von H. influenzae (s. S. 238 ) Hand-Fuß-Mund-Krankheit (s. S. 26 ) Enteroviren (Coxsackie A10, A16, Entero 71) Hantaviren (Hantaan, Puumala, Dobrava, Seoul u. a.) In Deutschland überwiegend Infektionen mit Puumalaviren (Nephropathia epidemica). Erregerreservoir sind hauptsächlich Wühlmäuse und Ratten; Endemiegebiet: z. B. Schwäbische Alb. Weitere Hantaviren sind u. a. die Typen Hantaan (Südostasien, Südeuropa), Dobrava (Balkanstaaten, Ostdeutschland) und Seoul (Ostasien, selten weltweit). Eine weitere Gruppe von Hantaviren (Sin Nombre, Black Creek Canel, New York, Andes, Laguna Negra und weitere) verursacht das Hantavirus pulmonary syndrome (HPS), welches in Nord- und Südamerika vorkommt. Es besteht eine hohe Kreuzreaktivität zwischen den einzelnen Typen. Inkubationszeit: 10 - 30 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Hantaan-Virus-IgG-AK EIA Material: Vollblut, Serum, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis Referenzbereich: <1.0 Index 32 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Hantaan-Virus-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis Referenzbereich: <1.0 Index Puumala-Virus-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Nephropathia epidemica, hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis Referenzbereich: <1.0 Index Puumala-Virus-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Nephropathia epidemica, hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis Referenzbereich: <1.0 Index Hanta-Virus-IgG-AK Blot Es werden Antikörper gegen folgende Subtypen nachgewiesen: Hantaan, Seoul, Dobrava, Puumala. Wegen ausgeprägter Kreuzreaktionen ist eine Differenzierung in der Akutphase oft nicht möglich. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest bei positivem EIA und bei V. a. Infektion mit Dobrava-Virus Referenzbereich: negativ Hanta-Virus-IgM-AK Blot Es werden Antikörper gegen folgende Subtypen nachgewiesen: Hantaan, Seoul, Dobrava, Puumala. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest bei positivem EIA und bei V. a. Infektion mit Dobrava-Virus Referenzbereich: negativ Hantavirus-RNA (F) Abrechnung erfolgt nur nach GOÄ! EDTA-Blut (2-3ml), Vollblut, Urin (5-10 ml) Material: EDTA-Blut, Vollblut, Urin Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis Referenzbereich: negativ HAV (s. S. 35 ) Hepatitis A Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 33 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge HBV (s. S. 35 ) Hepatitis B HCV (s. S. 37 ) Hepatitis C HDV (s. S. 38 ) Hepatitis D Helicobacter pylori Gramnegatives Bakterium, dessen wichtigstes Erregerreservoir die menschliche Magenschleimhaut ist. Ca. 90% aller Ulcera oder Schleimhautentzündungen bei Erwachsenen werden durch H. pylori verursacht. Die Übertragung erfolgt vermutlich oro-oral oder fäko-oral. Rezidive (ca. 2%) kommen nach Eradikation des Erregers vor. In Folge der chronischen Infektion kann sich ein MALT-Lymphom entwickeln. H. pylori-Antigennachweis im Stuhl (s. S. 246 ) Der Helicobacter pylori-Antigennachweis im Stuhl ist eine Alternative zum Atemtest mit annähernd gleicher Sensitivität und Spezifität. Die Probengewinnung ist jedoch wesentlich unkomplizierter. Helicobacter pylori-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: chronische Gastritis, Duodenalulcus Referenzbereich: <10 U/ml Helicobacter pylori-IgA-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: chronische Gastritis, Duodenalulcus Referenzbereich: <10 U/ml Helicobacter pylori-IgG-AK Blot Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ Helicobacter pylori-IgA-AK Blot Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ H. pylori-PCR (einschl. Clarithromycinresistenz) (s. S. 246 ) Mikrobiologische Untersuchung auf Helicobacter (s. S. 246 ) 34 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Hepatitis A Hüllenloses RNA-Virus aus der Familie der Picornaviren. Die Übertragung erfolgt fäkal-oral. Besonders in der Inkubationszeit ist der Stuhl hochinfektiös. In Deutschland auftretende Fälle sind meist Einschleppinfektionen aus Ländern mit unzureichender Hygiene. Inkubationszeit: 28 (14 - 48) Tage Meldepflichtige Erkrankung! Immunisierung möglich, Indikation siehe STIKO-Empfehlungen. Hepatitis-A-Gesamt-AK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Ikterus, Hepatitis, Auslandsaufenthalt, Immunstatus, Impferfolgskontrolle Referenzbereich: negativ Hepatitis-A-IgM-AK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute/kürzliche Infektion mit Hepatitis A-Virus Referenzbereich: negativ Hepatitis-A-Virus-RNA EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut, Stuhl (erbsgroß). Material: Stuhl, EDTA-Blut, Vollblut Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. akute Infektion, Virämie, Kontakt (Inkubation), Nachweis der Infektiosität Referenzbereich: negativ Hepatitis B Umhülltes DNA-Virus aus der Familie der Hepadnaviren. Die Übertragung erfolgt vorwiegend parenteral durch Blutkontakt (z. B. Nadelstichverletzungen), sexuellen Kontakt, perinatal, selten intrauterin. Chronische Verläufe kommen vor, dann besteht ein deutliches Risiko für die Entwicklung einer Leberzirrhose oder eines hepatozellulären Karzinoms (HCC). Therapieoptionen mit alpha-Interferonen und/oder mit Nukleosid-/Nukleotidanaloga bestehen. Inkubationszeit: 90 (40 - 180) Tage Meldepflichtige Erkrankung! (akute Infektion) HBsAg (Hepatitis B Surface Antigen) Schnelltest nach telefonischer Rücksprache (siehe Schnelldiagnostik) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 4 Stunden) Indikation: V. a. Infektion, Infektionsstatus besonders in Gravidität Referenzbereich: negativ Anti-HBc-Gesamt-AK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Infektionsverdacht, Abgrenzung: Z.n. Impfung bzw. Wildviruskontakt Referenzbereich: negativ Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 35 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Anti-HBc-IgM-AK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Infektionsverdacht, Abklärung einer akuten bzw. chronischen Infektion Referenzbereich: negativ Anti-HBs-AK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: vor bzw. nach Impfung gegen Hepatitis B Virus, Impfschutz, Nachweis mit anti-HBc bei ausgeheilter Hepatitis B Referenzbereich: <10 U/l Anti-HBe-AK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung Infektiosität, abgelaufene Hepatitis B Referenzbereich: negativ HBe-Antigen Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: CLIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Bestimmung der Infektiosität bei positivem HBs-Antigen, Progressionsmarker bei chronischer Infektion, Entscheidungshilfe bzgl. Therapie Referenzbereich: negativ HBsAg (Hepatitis B Surface Antigen) quantitativ Material: Serum, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Verlaufskontrolle unter Therapie Referenzbereich: negativ Hepatitis-B-Viruslast Material: EDTA-Blut, Vollblut Menge: 2-3 ml Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Grad der Infektiosität, Entscheidungshilfe bzgl. Therapie, Therapiemonitoring Referenzbereich: negativ Hepatitis-B-Virus Genotypisierung Material: EDTA-Blut, Vollblut Menge: 2-3 ml Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Entscheidungshilfe bzgl. Therapie, Epidemiologie 36 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Hepatitis-B-Resistenzbestimmung (genotypisch) Material: EDTA-Blut, Vollblut Menge: 5 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage) Indikation: Versagen der antiviralen Therapie, Resistenzbestimmung vor antiviraler Therapie. Bei Infektion trotz Impfung zur Beantwortung der Frage, ob eine Vaccine-Escape-Mutante vorliegt. Hepatitis C Umhülltes RNA-Virus aus der Familie der Flaviviren. Die Übertragung erfolgt überwiegend parenteral (z.B. durch Blutkontakt, i.v. Drogenabusus, Nadelstichverletzung), eine perinatale Transmission ist möglich, jedoch selten. Akute Infektionen verlaufen häufig subklinisch. Chronische Verläufe sind häufig und haben ein deutliches Risiko für die Entstehung einer Leberzirrhose oder eines hepatozellulären Karzinoms. Therapieoptionen mit alpha-Interferon, Ribavirin und Proteaseinhibitoren bestehen. Inkubationszeit: 8 (2 - 26) Wochen Meldepflichtige Erkrankung! (Neuinfektionen oder bislang nicht gemeldete Infektionen). Hepatitis-C-Antikörper Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Infektionsverdacht, insbesondere bei Risikopatienten (Drogen), Nadelstichverletzung bzw. nach früherer Transfusion Referenzbereich: negativ Hepatitis-C-IgG Immunoblot Material: EDTA-Blut, Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: erforderlicher Bestätigungstest bei nachgewiesenen Antikörpern im EIA Referenzbereich: negativ Hepatitis-C-Virus-RNA qualitativ Material: EDTA-Blut, Vollblut Menge: 2-3 ml Methode: RT-PCR Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V.a. replizierende Hepatitis C, Ausschluss akute Hepatitis C Referenzbereich: negativ Hepatitis-C-Viruslast Material: EDTA-Blut, Vollblut Menge: 2-3 ml Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Therapiemonitoring/Dynamik unter Therapie, Quantifizierung der Infektiosität Referenzbereich: negativ Hepatitis-C-Virus Genotypisierung Material: EDTA-Blut, Vollblut Menge: 2-3 ml Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Entscheidungshilfe bzgl. Therapie, epidemiologische Klärung Inosin-Triphosphatase (Pharmakogenetik) (s. S. 108 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 37 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Interleukin 28B (Pharmakogenetik) (s. S. 108 ) IP-10 (prognostischer Therapie-Marker) (s. S. 109 ) Hepatitis D RNA-Virus, das vom HBsAg umhüllt wird und zur Replikation auf das Hepatitis-B-Virus angewiesen ist. Die Superinfektion verschlechtert die Prognose der Hepatitis B deutlich. Die Übertragungswege sind ähnlich wie bei Hepatitis B, jedoch meist parenteral (i. v. Drogenabusus). Meist chronische Verläufe, Therapieoptionen wie bei der chronischen Hepatitis B mit jedoch deutlich geringerem Erfolg. Meldepflichtige Erkrankung! (akute Infektion) Hepatitis-D-Gesamt-AK Untersuchung nur sinnvoll bei HBsAg-positiven Patienten Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung bei Erstdiagnose einer Hepatitis B, foudroyant verlaufende Hepatitis, V. a. Superinfektion bei chronischer Hepatitis B-Infektion (HBsAg-Träger) Referenzbereich: negativ Hepatitis-D-Virus-RNA (F) Material: EDTA-Blut, Vollblut Menge: 2-3 ml Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. replizierende Hepatitis D, Superinfektion bei chronischer Hepatitis B (HBsAg-Träger) Referenzbereich: negativ Hepatitis E Nicht umhülltes RNA-Virus aus der Familie der Caliciviren. Die Übertragung erfolgt fäkal-oral. In Deutschland sowohl Einschleppinfektionen aus Ländern mit unzureichender Hygiene als auch autochthone Infektionen (Zoonose: Schweine, Wildschweine u.a.). Prolongierte Verläufe (eventuell auch chronische Verläufe) sind bei ausgeprägter Immunsuppression möglich. Inkubationszeit: 3 - 8 Wochen Meldepflichtige Erkrankung! Hepatitis-E-IgG-AK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung Hepatitis/Ikterus Referenzbereich: negativ Hepatitis-E-IgM-AK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung Hepatitis/Ikterus, Hinweis auf frische Infektion. Referenzbereich: negativ 38 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Hepatitis-E-Virus-RNA EDTA-Blut (2-3 ml),Vollblut, Stuhl (erbsgroß) Material: EDTA-Blut, Vollblut, Stuhl Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung Hepatitis/Ikterus, Nachweis der Infektiosität Referenzbereich: negativ Hepatitis G (GB-Virus C) (s. S. 31 ) Herpes-simplex-Virus Typ 1, 2 Infektionen mit HSV Typ 1 betreffen meist Haut und Schleimhaut (z.B. Stomatitis aphthosa) oberhalb des Nabels, während HSV Typ 2 meist im Genitalbereich nachweisbar ist. In den letzten Jahren nimmt der Anteil von HSV-1-Infektionen im Genitalbereich stetig zu. Rekurrierende Infektionen äußern sich meist als Herpes labialis oder Herpes genitalis. Bei perinataler Übertragung: Herpes neonatorum. Weitere Manifestationen: Konjunktivitis, Enzephalitis, Ekzema herpeticatum, Hepatitis Unter Immunsuppression schwere Verläufe (auch Reaktivierungen) möglich. Inkubationszeit: wenige Tage bis Wochen HSV Typ 1/2 IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis; bei Kleinkindern und Säuglingen: Enzephalitis, Krampfanfälle, Hepatitis, Herpes neonatorum Referenzbereich: <1:230 alpha-Titer HSV Typ 1/2 IgM-AK EIA Vor Entbindung bei V. a. Herpes genitalis Erregernachweis (Zellkultur, PCR) vorrangig. Kleinkindern: Rachenabstrich, Augenabstrich zum Erregernachweis Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: V. a. akute Infektion mit HSV, Stomatitis, Herpes labialis, Herpes genitalis, Enzephalomyelitis, Hepatitis, Herpes neonatorum Referenzbereich: <2.0 Index HSV-IgG-AK Immunoblot Der Test ermöglicht die Unterscheidung zwischen HSV-1- und/oder HSV-2-Antikörpern. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Differenzierung zwischen Infektion mit HSV Typ 1 und Typ 2 (z.B. "first episode" Typ 2 bei vorbestehender Typ-1-Infektion) Referenzbereich: negativ (qualitativ) HSV Typ 1/2 IgG-AK EIA im Liquor Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst Ergebnis verfälscht wird. Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der Serum-AK. Material: Liquor Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: ZNS-Beteiligung Referenzbereich: negativ alpha-Titer Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 39 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge HSV Typ 1/2 Schnellanzucht auf diploiden Fibroblasten Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Abstrich Methode: Schnellkultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tage) Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis, Herpes-Konjunktivitis, Stomatitis HSV Typ 1/2 Anzucht in Zellkultur Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Abstrich Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-5 Tag) Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis, Herpes-Konjunktivitis, Stomatitis HSV Typ 1,2 DNA EDTA-Blut (2-3 ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml), Abstrich (Bläschen-/Genitalabstrich) in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe. Material: Liquor, Abstrich, EDTA-Blut, Fruchtwasser Methode: PCR Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis (präpartal), Herpes neonatorum, V. a. Herpesenzephalitis bzw. Meningitis Referenzbereich: negativ HEV (s. S. 38 ) Hepatitis E HGV (s. S. 31 ) Hepatitis G, GB-Virus C HHV 6 (s. S. 42 ) Humanes Herpes Virus Typ 6 HHV 7 (s. S. 42 ) Humanes Herpes Virus Typ 7 HHV 8 (s. S. 43 ) Humanes Herpes Virus Typ 8 HIV-1, HIV-2 (s. S. 43 ) Humanes Immundefizienz Virus HPV (s. S. 54 ) Humanes Papilloma-Virus HSV 1/2 (s. S. 39 ) Herpes simplex-Virus HTLV-1/-2 (s. S. 41 ) Humane T-Zellleukämieviren 1-2 40 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Humane T-Zell-Leukämie-Viren (HTLV) Viren aus der Familie der Retroviridae. HTLV-1 ist Verursacher einer T-Zell-Leukämie bei Erwachsenen und wird mit eine progressiven demyelinisierende Myelopathie (mit spastischen Paresen) assoziiert. HTLV-1 ist endemisch in Japan, Zentralafrika, Neuguinea und der Karibik. Übertragung durch Blutprodukte, i. v.-Drogenmissbrauch, Stillen. HTLV-2 ist endemisch bei nord- und südamerikanischen Indianern. In Europa Vorkommen bei i.v.-Drogenabhängigen. HTLV-2-Infektionen zeigen in der großen Mehrheit keine Pathogenität. Klinisch manifeste Infektionen können verschiedene Krankheitsbilder verursachen (wie bei HTLV-1): U.a. tropische spastische Paraparese-ähnliche Erkrankungen sowie Leukämien und pulmonale Erkrankungen. HTLV-3 und HTLV-4 wurden erstmals 2005 bei Afrikanern aus Kamerun nachgewiesen. Epidemiologische Daten aus den USA von 2010 liefern bisher keinen Hinweis auf eine weltweite Verbreitung von HTLV-3/4. Spezifische Tests für HTLV-3/4 sind im Routinelabor noch nicht verfügbar. Das 2005 neu beschriebene HTLV-3 sollte nicht mit HIV verwechselt werden, welches kurz nach seiner Entdeckung in den 1980er Jahren ebenfalls als HTLV-3 bezeichnet wurde. HTLV-1/2-AK EIA (Suchtest) Bei reaktivem Testergebnis ist eine Bestätigung mittels Immunoblot erforderlich. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Suchtest zum Ausschluss einer HTLV-1/2-Infektion Referenzbereich: negativ HTLV-1/2-AK Blot (Bestätigungstest) (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 1 ml Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4-5 Tage) Indikation: Bestätigungstest bei reaktivem HTLV-Suchtest HTLV-1/2-RNA (F) Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: bis zu 1 Woche) Indikation: Unklare HTLV-Serologie, Neugeborene HTLV-positiver Mütter Referenzbereich: negativ Humanes Bocavirus Dieses neue Parvovirus wurde im Jahr 2005 am Karolinska-Institut in Stockholm entdeckt. Heute weiß man, dass es Infektionen der tiefen Atemwege bei Kleinkindern verursacht, deren frühe Symptome denen einer Infektion mit Influenzaviren, RSV, Coronaviren oder den ebenfalls erst vor wenigen Jahren entdeckten humanen Metapneumoviren ähneln. Koinfektionen mit diesen wurden beschrieben. In ersten Studien konnte bei bis zu 10 % der wegen akuter Respirationstrakt-Erkrankung hospitalisierten Kleinkinder DNA des humanen Bocavirus nachgewiesen werden. Humanes Bocavirus DNA Bronchiallavage, Trachealsekret (mind. 1 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: Bronchiallavage, Rachenabstrich, Trachealsekret Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Infektion bei akuter Atemwegssymptomatik Referenzbereich: negativ Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 41 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV 6) Exanthema subitum, 3-Tage-Fieber Die Erkrankung ist durch hohes Fieber von drei Tage Dauer und einem anschließend auftretenden, feinfleckigen Exanthem gekennzeichnet. Die Infektion erfolgt im frühen Kindesalter, schon bei Dreijährigen beträgt die Durchseuchungsrate ca. 90%. Die Übertragung erfolgt meist durch infektiösen Speichel. Wie alle Herpesviren persistiert HHV Typ 6 lebenslang. Bei Immunsupprimierten kann es zu Komplikationen kommen. Inkubationszeit: 5 - 15 Tage Humanes Herpes-Virus Typ 6 IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Exanthema subitum bei Kindern <4 Jahre, Hepatitis, Roseola sine eruptione, Otitis, mononukleoseähnliches Syndrom, Meningoenzephalitis? Referenzbereich: <1:16 Titer Humanes Herpes-Virus Typ 6 IgM-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute Infektion, Exanthema subitum bei Kindern <4 Jahre, Hepatitis, Roseola sine eruptione, Otitis, mononukleoseähnliches Syndrom, Meningoenzephaltitis? Referenzbereich: <1:16 Titer Humanes Herpes-Virus Typ 6 IgG IFT im Liquor Material: Liquor Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: ZNS-Beteiligung Referenzbereich: <1:4 Titer Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV 6) DNA Liquor (mind. 0,5 ml), Biopsie (nativ in NaCl), EDTA-Blut (2-3 ml) Material: Biopsie, EDTA-Blut, Liquor Methode: PCR (auch quantitativ) Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest bei V. a. HHV 6-Infektion, z. B. bei Immunsupprimierten Referenzbereich: negativ Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV 7) Die Übertragung des Virus sowie das Krankheitsbild ähneln stark den Infektionen mit HHV Typ 6. Die Möglichkeit von HHV 7 als Erreger der Pityriasis rosea wird diskutiert. Humanes Herpes-Virus Typ 7 IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Exanthema-subitum-ähnliches Bild im frühen Jugendalter Referenzbereich: <1:16 Titer 42 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Humanes Herpes-Virus Typ 7 IgM-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Exanthema-subitum-ähnliches Bild im frühen Jugendalter Referenzbereich: <1:16 Titer Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV 7) DNA Material: EDTA-Blut Menge: 2-3 ml Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest bei V. a. HHV 7-Infektion, z. B. bei Immunsupprimierten Referenzbereich: negativ Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV 8) HHV 8 verursacht das Kaposi-Sarkom. Darüber hinaus ist das Virus mit bestimmten B-Zell-Lymphomen (body-cavity-based-lymphoma) und der Castleman-Erkrankung assoziiert. Alle drei Krankheiten treten bevorzugt bei Immunsupprimierten, insbesondere bei HIV-Infizierten auf. Humanes Herpes-Virus Typ 8 IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Kaposi-Sarkom, Castleman-Erkrankung, Angiosarkom, body cavity based lymphoma (BCBL), multiples Myelom, Posttransplantationstumor Referenzbereich: <1:100 Titer Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV 8) DNA Biopsie (nativ in NaCl), EDTA-Blut (2-3 ml) Material: Biopsie, EDTA-Blut Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Kaposi-Sarkom, Castleman-Erkrankung, Angiosarkom, Posttransplantationstumor Referenzbereich: negativ Humanes Immundefizienz Virus (HIV) Retroviren, meist Infektionen mit HIV-1, sehr selten HIV-2. Infektionen verlaufen immer chronisch (d.h. lebenslang). Effektive Therapieoptionen bestehen (immer Kombinationstherapie), eine Heilung ist weiterhin nicht erreichbar. Ungenügend behandelt ist der Verlauf gekennzeichnet durch einen zunehmenden Immundefekt mit dem Auftreten von opportunistischen Infektionen und Malignomen (AIDS). Übertragung durch Sexualkontakt, Blutkontakt (Nadelstichverletzungen und i.v.-Drogengebrauch), perinatal. Anonyme Meldepflicht des Labors. HIV-Test (HIV-1/2 AK + p24-Ag) Proben werden nur für die Fragestellung einer evtl. Postexpositionsprophylaxe eilig bearbeitet. Sensitiver Suchtest, ein reaktives Ergebnis muss durch einen Bestätigungstest verifiziert werden. Beachte "diagnostisches Fenster": Test frühestens nach 2 Wochen möglich, sichere Aussage des Tests erst 3 Monate nach dem Risikokontakt. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 3 Stunden) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 43 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Indikation: Ausschluss einer HIV-Infektion. Referenzbereich: negativ HIV-1-Antikörperbestätigungstest Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung eines reaktiven HIV-Suchtests, serologische Bestätigung der HIV-1-Infektion Referenzbereich: negativ HIV-2-Antikörperbestätigungstest Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung eines reaktiven HIV-Suchtests, serologische Bestätigung der HIV-2-Infektion Referenzbereich: negativ HIV-p24-Antigennachweis Bei positivem Ergebnis wird die Spezifität mittels Neutralisation bestätigt. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 1 ml Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung eines reaktiven HIV-Suchtests Referenzbereich: negativ HIV-1 Viruslast Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: RT-PCR Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Verlaufs- und Therapiekontrolle bei HIV-Infektion, Nachweis/Ausschluss einer HIV-1-Infektion bei kürzlichem Kontakt sowie bei Neugeborenen von HIV-1-positiven Müttern, nach Risikokontakt ab 10. Tag p.i. Referenzbereich: negativ HIV-2-RNA (F) Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Wochen) Indikation: unklare HIV-Serologie, Therapiekontrolle, Neugeborene von HIV-2 positiven Müttern. Referenzbereich: negativ HIV-1 Genotypische Resistenzbestimmung Getestete Genbereiche: Reverse Transkriptase und Protease Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage) Indikation: Resistenzbestimmung vor antiretroviraler Therapie, Versagen der antiretroviralen HIV-1-Therapie Abacavir Überempfindlichkeit bei HIV-Therapie (HLA-B*57:01) (s. S. 108 ) CD4/CD8-Bestimmung (kl. zellulärer Immunstatus) (s. S. 122 ) CD38 auf CD8-T-Lymphozyten (AIDS-Prognosemarker) (s. S. 123 ) 44 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Humanes Metapneumovirus (HMPV) Das humane Metapneumovirus (HMPV) wurde im Jahre 2001 von der niederländischen Arbeitsgruppe van den Hoogen et al. entdeckt. 2003 konnte das Virus erstmals auch in Deutschland als Erreger respiratorischer Erkrankungen (Bronchiolitis) vor allem bei kleinen Kindern nachgewiesen werden. Es gehört in dieselbe Virusfamilie wie das Respiratory Syncytial Virus (RSV, Paramyxoviridae) und verursacht auch ein ähnliches Krankheitsbild. Genetisch können zwei Subtypen (A und B) unterschieden werden. Die Diagnose wird vor allem durch den Erregernachweis gestellt. Humanes Metapneumovirus (HMPV) RNA Bronchiallavage, Trachealsekret (mind. 1 ml, Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: Bronchiallavage, Rachenabstrich, Trachealsekret Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Infektion Referenzbereich: negativ Hundebandwurm (s. S. 251 ) Echinokokkus granulosus, zystische Echinokokkose Hundespulwurm (s. S. 260 ) Toxocara canis Immunstatusbestimmung Vor bzw. nach Impfung und nach Kontakt, besonders in der Schwangerschaft und bei medizinischem Pflegepersonal sowie vor Immunsuppression CMV (Cytomegalie-Virus) IgG EIA (s. S. 22 ) bei Kontakt in der Schwangerschaft, bei medizinischem Personal, bei Müttern von Frühgeborenen (wg. der Frage des Stillen) Diphtherie-Toxin-AK NT (s. S. 21 ) Epstein Barr-Virus IgG EIA (s. S. 28 ) besonders bei Kontakt in der Schwangerschaft FSME IgG EIA (s. S. 30 ) Haemophilus influenzae b IgG EIA (s. S. 32 ) Hepatitis A-AK EIA (s. S. 35 ) nach Kontakt (z. B. in der Schwangerschaft und bei medizinischem Personal), bei geimpften Kindern/Erwachsenen und nach Auslandsaufenthalt (Immunglobulingabe oder Inkubationsimpfung möglich) Hepatitis B (anti-HBs) (s. S. 35 ) bei Kontakt in der Schwangerschaft, bei medizinischem Personal, Kindern und Erwachsenen (Immunglobulingabe möglich) Herpes-simplex-Virus IgG EIA (s. S. 39 ) bei Kontakt in der Schwangerschaft Influenza-Virus-AK NT (s. S. 47 ) Masern-Virus IgG EIA (s. S. 50 ) bei Kontakt in der Schwangerschaft (Immunglobulingabe möglich) medizinisches Personal mit Kontakt Masernvirus-AK NT (s. S. 50 ) Mumps-Virus IgG EIA (s. S. 51 ) bei Kontakt in der Schwangerschaft Medizinisches Personal mit Kontakt Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 45 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Parvovirus B19 IgG EIA (s. S. 57 ) bei Kontakt in der Schwangerschaft, Pflegepersonal mit Kontakt Pertussis IgG EIA (s. S. 13 ) Pneumokokken IgG EIA (s. S. 58 ) (nur bei Bestimmung vor und nach Impfung sinnvoll!) Polio NT (s. S. 58 ) Röteln HAH (s. S. 62 ) Vor der Schwangerschaft und bei Kontakt sollten die Antikörper bestimmt werden (ggf. mit den entsprechenden Verlaufskontrollen), bei medizinischem Personal mit Kontakt (Immunglobulingabe möglich) Rötelnvirus-IgG EIA (s. S. 63 ) Tetanus IgG EIA (s. S. 20 ) Toxoplasma IgG CLIA (s. S. 67 ) bei Kontakt zu Infektionsquelle in der Schwangerschaft und vor Sterilitätsbehandlung VZV (Varizella-Zoster-Virus) IgG EIA (s. S. 70 ) bei Kontakt in der Schwangerschaft, immunsupprimierten Patienten (Immunglobulingabe möglich) medizinisches Personal mit Kontakt Influenza A-, -B-Virus Im Winter treten gehäuft Infektionen mit Influenza A- und -B-Viren auf. Alle etwa 10-30 Jahre können durch Antigenshift Pandemien auftreten. Jährliche Impfung (im Herbst) mit dem jeweils aktuellen Impfstoff besonders bei älteren Menschen, Immunsupprimierten und Personen mit viel Publikumsverkehr (z. B. Personal von Arztpraxen, Pflegepersonal auf Intensivstationen) ist empfehlenswert. Im akuten Stadium ist der Erregernachweis aus Rachen- oder Nasenabstrich die Methode der Wahl. Inkubationszeit: 2 - 3 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Influenza-Virus Schnelltest Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Rachenabstrich, Nasenabstrich Methode: Ag-Nachweis Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 6 Stunden, Eilprobe:am selben Tag) Indikation: V. a. Influenza-Infektion Referenzbereich: negativ Influenza-Virus-Anzucht in Zellkultur auf MDCK- und HepG-2-Zellen Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Nasopharyngealabstrich, Rachenabstrich Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 7 Tage) Indikation: V. a. Influenza-Infektion Referenzbereich: negativ Influenza A-, B-Virus RNA Liquor (mind. 0,5 ml), Trachealsekret (2 ml), Abstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: Liquor, Rachenabstrich, Trachealsekret Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Influenza-Infektion Referenzbereich: negativ 46 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Influenza-Virus-AK NT Der Test wird mit den im Impfstoff enthaltenen Influenzaviren (A/H1N1, A/H3N2 und B) durchgeführt. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Neutralisationstest Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Immunstatus vor bzw. nach Impfung Referenzbereich: siehe Befund Titer JCV (s. S. 54 ) JC-(Polyoma-)Virus Kala Azar (s. S. 255 ) Viscerale Form der Leishmaniose Kaposi-Sarkom (s. S. 43 ) Humanes Herpes Virus Typ 8 Katzenkratzkrankheit (s. S. 11 ) Bartonella henselae Keuchhusten (s. S. 13 ) Bordetella pertussis Kinderlähmung (s. S. 58 ) Poliomyelitis Legionellen Legionellen werden durch Inhalation erregerhaltiger Aerosole übertragen (infiziertes Wasser, z. B. Duschen oder Klimaanlagen). Sie verursachen eine Erkrankung, die durch grippeähnliche Symptome und Pneumonie gekennzeichnet ist. Nosokomiale Infektionen kommen vor, eine Isolierung der Infizierten ist nicht notwendig, da Übertragungen von Mensch zu Mensch bisher nicht beschrieben sind. Die Methode der Wahl ist der Erregernachweis (z. B. Antigen im Urin), da Antikörper erst mehrere Wochen nach Erkrankungsbeginn zuverlässig nachweisbar sind. Inkubationszeit: 2 - 10 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Legionellen-IgG-AK IFT Pool I: L. pneumophila Serogruppe 1-6, Pool II: L. pneumophila Serogruppe 7-14, Pool III: L. bozemanii, dumoffii, germanii, longbeachae, micdadei, jordanis. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage) Indikation: Pneumonie, grippeähnliche Symptome, Thoraxschmerzen, häufiger bei Immunsuppression und länger hospitalisierten Patienten; Leber-/Nierenbeteiligung; Krankenhaushygiene Referenzbereich: <1:64 Titer Legionellen-Antigennachweis im Urin (s. S. 238 ) Legionella-pneumophila-DNA Sputum, Bronchiallavage, Trachealsekret (je mind. 1 ml), Urin (5-10 ml) Material: Sputum, Urin, Bronchiallavage, Trachealsekret Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Pneumonie; Krankenhaushygiene Referenzbereich: negativ Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 47 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Legionellenkultur aus der BAL (s. S. 238 ) Leishmanien (s. S. 255 ) Leptospirose Leptospiren sind Spirochäten, die durch Mikroverletzungen über die Schleimhäute, aber auch durch die intakte Haut in den Körper gelangen können. Urin von infizierten Tieren ist die hauptsächliche Infektionsquelle für den Menschen (insbesondere durch Kontakt mit kontaminierten Gewässern). Symptome sind: Fieber, Kopfschmerz, Schüttelfrost und Muskelschmerzen. Epidemiologisch stellen Ratten weltweit das wichtigste Erregerreservoir dar. Risikogruppen sind Veterinäre, Kanalarbeiter, Fischer, Wassersportler, Landwirte und Camper. Inkubationszeit: 7 -13 (2 - 26) Tage Meldepflichtige Erkrankung! Leptospiren-AK Mikroagglutination L. canicola, L. copenhageni, L. sejroe, L. grippothyphosa, L. pomona, L. bratislava, L. ballum, L. bataviae Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 1 ml Methode: Agglutination Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Fieber, Myalgien, Wadenschmerzen, Hepatitis, Nephritis, Meningitis, hohes Bilirubin, mäßig erhöhte Transaminasen Referenzbereich: <1:100 Titer Leptospiren-DNA (F) Liquor (mind. 1 ml), EDTA-Blut (2-3 ml), Urin (5 ml) Material: EDTA-Blut, Urin, Liquor Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: bis zu 1 Woche) Indikation: V. a. Leptospirose Referenzbereich: negativ Listerien Gramnegative Stäbchen, die mit dem Kot ausgeschieden werden. Erregerreservoir sind meistens Tiere. Die Infektion mit Listerien erfolgt in der Regel über kontaminierte Lebensmittel (z. B. Milch und Milchprodukte). Eine Listerien-Infektion in Schwangerschaft kann zu Abort, Totgeburt oder einem geschädigten Kind führen; ZNS-Syndrome besonders bei älteren und geschwächten Personen. Bei V. a. Infektion ist der direkte Erregernachweis die Methode der Wahl. Inkubationszeit: Tage bis Wochen Meldepflichtige Erkrankung! Listeria-monocytogenes-(Typ 1O,1H,4bO,4bH)-AK Agglutination (Methode nicht nach DIN EN ISO 15189 akkreditiert) Erregernachweis vorrangig! Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Agglutination Ansatz: Mo bis Do täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Infektion; Infektion eher bei Immungeschwächten, gelegentlich in Gravidität: grippeähnliche Symptome, Schüttelfrost, vorzeitige Wehen, hohes CRP Referenzbereich: <1:320 Titer 48 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Listeria-monocytogenes-DNA Liquor (mind. 0,5 ml), Genitalabstrich (in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe), EDTA-Blut (2-3 ml). Material: EDTA-Blut, Liquor, Abstrich Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Infektion; Infektion eher bei Immungeschwächten, gelegentlich in Gravidität: grippeähnliche Symptome, kurz Schüttelfrost, vorzeitige Wehen, hohes CRP, ZNS-Syndrome, besonders bei älteren und geschwächten Patienten Referenzbereich: negativ Listerienanzucht aus der Blutkultur (s. S. 238 ) (Anzucht auch aus Liquor, Stuhl und Cervixabstrich möglich) Lues (s. S. 64 ) Syphilis Lyme Disease (s. S. 14 ) Borreliose Lymphozytäres Choriomeningitis-Virus (LCMV) Das LCM-Virus gehört zur Familie der Arenaviren. In Nagetieren ist das Virus weitverbreitet. Die Übertragung auf den Menschen erfolgt meist über die Hausmaus und den Goldhamster. In Schwangerschaft kann eine Infektion mit LCMV zu schweren kindlichen Schädigungen führen (z. B. Hydrozephalus, Mikrozephalus). Inkubationszeit: 6 - 13 Tage LCM-Virus-IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Hamsterkontakt (Neukauf eines Spieltieres), Nagerkontakt, Meningitis, Enzephalitis, in Grav: Gefahr der Fruchtschädigung Referenzbereich: <1:16 Titer LCM-Virus-IgM-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Hamsterkontakt (Neukauf eines Spieltieres), Nagerkontakt, Meningitis, Enzephalitis, in Grav: Gefahr der Fruchtschädigung Referenzbereich: <1:16 Titer Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCM) RNA (Methode nicht nach DIN EN ISO 15189 akkreditiert) EDTA-Blut (2-3ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2 - 5 ml, nativ) Material: EDTA-Blut, Fruchtwasser, Liquor Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. LCMV-Infektion Referenzbereich: negativ Malaria (s. S. 256 ) Maltafieber (s. S. 15 ) Brucella melitensis Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 49 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Masern Das Masern-Virus gehört zu den Paramyxoviren, wird durch Tröpfcheninfektion übertragen und ist hochkontagiös. Komplikation: Pneumonie, Enzephalitis (Häufigkeit 1:500 - 1:2000). Bei Personen mit T-Zell-Defekt letaler Ausgang der Pneumonie häufig. Eine weitere, sehr seltene ZNS-Komplikation ist die subakut-sklerosierende Panenzephalitis (SSPE). Charakteristisch für eine SSPE sind sehr hohe IgG-AK-Titer in Serum und Liquor ohne nachweisbare IgM-AK und ohne Nachweis von Masern-RNA im Liquor. Inkubationszeit: 8 - 12 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Masern-Virus-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung, Fieber, trockener Husten, Konjunktivitis, Kopliksche Flecken, makulopapulöses Exanthem, Enzephalitis; V. a. SSPE Referenzbereich: <150 mIU/ml Masern-Virus-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute Masern-Infektion Referenzbereich: <2.0 Index Masern-Virus IgG-AK Avidität Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: Aviditätstest Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tag) Indikation: Zusatztest bei Immunstatus, bei unplausiblem IgM und zur Bestätigung einer frischen bzw. abgelaufenen Infektion. Referenzbereich: siehe Befund % Masern-Virus-IgG-AK im Liquor Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird. Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der Serum-AK. Material: Liquor Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: ZNS-Beteiligung; V. a. SSPE, MRZ-Reaktion bei V.a. MS Referenzbereich: negativ mIU/ml Masern-Virus-AK NT Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Neutralisationstest Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung Referenzbereich: <10 Titer 50 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Masern-Virus-RNA Liquor (mind. 0,5 ml), Abstrich (in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe), EDTA-Blut (2-3 ml). Material: Abstrich, EDTA-Blut, Liquor Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Maserninfektion Referenzbereich: negativ Masern-Virus Genotypisierung Besondere Fragestellung: Bestimmung des vorliegenden Masern-Genotyps zur Abklärung, z.B. der geographischen Herkunft des Isolates. Diese Untersuchung führen wir nicht selbst durch, können diese jedoch veranlassen. Meningokokken (Neisseria meningitidis) Gramnegative Diplokokken, die Übertragung erfolgt durch Tröpfcheninfektion. Der Erkrankungsgipfel liegt bei Kindern zwischen dem 6. und 12. Lebensmonat. Bei V. a. Infektion ist der Erregernachweis die Methode der Wahl. Inkubationszeit: 1 - 10 (meist unter 4) Tage Meldepflichtige Erkrankung! Kultureller Nachweis in der Blutkultur (s. S. 238 ) (Anzucht auch aus Liquor und (Nasen-) Abstrich möglich) Mittelmeerfieber (s. S. 15 ) Brucella melitensis Morbus Bang (s. S. 15 ) Brucella abortus Morbus Bornholm (s. S. 26 ) Synonym: Myalgia epidemica Coxsackie B-Viren Morbus Pfeiffer (Mononukleose) (s. S. 28 ) Mumps Synonym: Parotitis epidemica, Ziegenpeter. Das Mumps-Virus gehört zu den Paramyxoviren und wird durch Tröpfcheninfektion übertragen. Komplikationen: Orchitis, Pankreatitis, Meningitis (bis 10% mit Parotitis, 40-50% ohne Parotitis!). Reinfektionen kommen vor, jedoch sind dann IgM-AK meist nicht nachweisbar. Inkubationszeit: 16 - 18 (12 - 25) Tage Mumps-Virus-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung, Fieber, Parotitis, selten Meningitis, Pankreatitis, Orchitis (in/nach Pubertät); bei Frauen: Oophoritis Referenzbereich: <16 U/ml Mumps-Virus-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute Infektion mit Mumps Referenzbereich: <2.0 Index Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 51 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Mumps-Virus IgG-AK Avidität Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: Aviditätstest Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tag) Indikation: Zusatztest bei Immunstatus, bei unplausiblem IgM und zur Bestätigung einer frischen bzw. abgelaufenen Infektion. Referenzbereich: siehe Befund % Mumps-Virus-IgG-AK EIA im Liquor Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird. Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmmung der Serum-AK. Material: Liquor Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: ZNS-Beteiligung Referenzbereich: negativ U/l Mumps-Virus-RNA Liquor (mind. 0,5 ml), Abstrich (in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe), EDTA-Blut (2-3 ml). Material: Abstrich, EDTA-Blut, Liquor Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Mumps-Infektion Referenzbereich: negativ Mumps-spezifische T-Lymphozyten Nachweis erregerspezifischer T-Lymphozyten: Messung zytokinsezernierender Lymphozyten (z. B. IFN-gamma) nach Antigenstimulation in vitro Abnahme Mo-Mi, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Vorherige telefonische Anmeldung erbeten! Nur Heparinblut möglich! Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden. Material: Heparinblut Menge: 9 ml Methode: Elispot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Nachweis einer zellulären Immunität gegen Mumps z. B. bei unklarer Serologie nach Impfung Mycoplasma hominis / genitalium M. hominis und M. genitalium sind Erreger des Urogenitaltrakts bei Erwachsenen (meist asymptomatische Besiedlung). Die Übertragung erfolgt durch sexuellen Kontakt und perinatal auf das Neugeborene. Nur ein geringer Teil dieser Neugeborenen erkrankt jedoch symptomatisch (postpartales Fieber, selten Meninigitis). Erregernachweis vorrangig! Kultureller Nachweis von M. hominis (s. S. 243 ) Mycoplasma-hominis-DNA Abstrich (in 1 ml NaCl oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe), Urin (5-10 ml), Ejakulat (1 ml). Material: Genitalabstrich, Urin, Ejakulat Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Genitalinfektion, postpartales Fieber beim Neugeborenen Referenzbereich: negativ 52 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Mycoplasma-hominis-AK NT M. hominis kommt in geringer Keimzahl als Standortflora im Genitaltrakt vor! Unter Antibiotikatherapie können bei diesem Test falsch-positive Ergebnisse auftreten. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Neutralisationstest Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: unspezifischer Genitalinfekt, nicht gonorrhoische Urethritis beim Mann, Vaginitis, Cervicitis, Bartholinitis, Infektion der Nieren, postinfektiös reaktive Arthritiden; bei Ngb: postpartales Fieber Referenzbereich: <1:16 Titer Mycoplasma-genitalium-DNA (Methode nicht nach DIN EN ISO 15189 akkreditiert) Genitalabstrich, Urin, respiratorische Sekrete und Abstriche (bei Neugeborenen) Material: Genitalabstrich, Urin Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: negativ Mycoplasma pneumoniae Zellwandlose Bakterien, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Erreger verursacht eine Respirationstrakterkrankung, teilweise mit atypischer Pneumonie. Weitere Organmanifestationen (z. B. ZNS) sind möglich. Eine durchgemachte Infektion hinterlässt keine bleibende Immunität. Inkubationszeit: 1 - 4 Wochen Mycoplasma-pneumoniae-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Ausschluß einer akuten Infektion Referenzbereich: <9 AU/ml Mycoplasma-pneumoniae-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Ausschluß einer akuten Infektion Referenzbereich: <0.80 Index Mycoplasma-pneumoniae-IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest, V. a. Mykoplasmen-Infektion Referenzbereich: <1:64 Titer Mycoplasma-pneumoniae-IgG-AK IFT im Liquor Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird. Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der Serum-AK. Material: Liquor Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. ZNS-Beteiligung, Enzephalitis Referenzbereich: <1:1 Titer Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 53 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Kultureller Nachweis von M. pneumoniae (s. S. 238 ) Mycoplasma-pneumoniae-DNA Liquor (mind. 0,5 ml), Sputum, BAL, Tracheal-/ Bronchialsekret in sterilen Transportgefäßen (je 2 ml), sowie Abstrichtupfer aus Nasopharyngeal- und Rachenbereich in 1 ml NaCl Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Atypische Pneumonie, Bronchitis, Meningoenzephalitis, Otitis media Referenzbereich: negativ Neisseria gonorrhoeae (s. S. 31 ) Gonokokken Neisseria meningitidis (s. S. 51 ) Meningokokken Neutralisationsteste Mittels Neutralisationstest (NT) werden protektive (neutralisierende) Antikörper gegen Infektionserreger bestimmt. Für die Prüfung der vorhandenen Immunität ist nicht immer eine einfache Methode wie z. B. ein Enzym-Immuno-Assay (EIA) geeignet, da der Schutz bei manchen Infektionen nur mit den neutralisierenden Antikörpern korreliert. Das betrifft insbesondere die Immunität gegen Poliovirus und Diphtherie. Auch für die Beurteilung des Immunstatus bei anderen Infektionen ist der NT trotz des Aufwands die Methode der Wahl. CMV-AK NT (s. S. 23 ) Diphtherie-Toxin-AK NT (s. S. 21 ) Influenza-Virus-AK NT (s. S. 47 ) Masern-Virus-AK NT (s. S. 50 ) Polio-Virus-AK NT (s. S. 58 ) Noroviren RNA-Viren aus der Familie der Caliciviridae, die häufig fieberhafte, hartnäckige Durchfallerkrankungen hervorrufen. Sie treten vor allem in den Herbst- und Wintermonaten auf. Erkrankungsgipfel Oktober bis Februar. Inkubationszeit: 1 - 3 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Norovirus-RNA Material: Stuhl Menge: erbsgroße Stuhlmenge Methode: RT-PCR Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Gastroenteritis Referenzbereich: negativ Orientbeule (s. S. 255 ) Kutane Leishmaniose Ornithose (s. S. 18 ) Papageienkrankheit Papilloma-Viren (HPV) Papilloma-Viren verursachen eine Vielzahl von verrucösen Erkrankungen. Besondere Bedeutung haben die "onkogenen" (high risk) Papilloma-Viren (z. B. Typen: 16, 18, 31, 33), die an der Entstehung von Zervix-, Vulva-, Penis- und Analkarzinomen beteiligt sind. Inkubationszeit: 4 Wochen bis mehrere Monate 54 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Papilloma-Viren (High-Risk), Nachweis der viralen Onkogene E6/E7 Abstriche. Benutzen Sie bitte ausschließlich das spezielle APTIMA-Entnahme-/Transportsystem zum HPV-RNA-Nachweis (Bestellung unter 0711-6357104) Material: Genitalabstrich Methode: TMA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Verbesserte Risikoabschätzung bei zytologisch auffälligen und/oder HPV-DNA-positiven Vorbefunden Referenzbereich: negativ Papilloma-Viren (High-Risk HPV) DNA Native Biopsie in NaCl, Abstrich in 1 ml NaCl. Benutzen Sie bitte die speziellen HPV-Abstriche (Bestellung unter 0711-6357104) Material: Biopsie, Genitalabstrich Methode: Hybridisierung Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Absicherung der Zytologie bei PAP IIw/k, PAP III; Spezifizierung bei PAP IIID; Persistenz der HPV-Infektion; Larynx-Papillome (selten); Peniskarzinom Referenzbereich: negativ Papilloma-Viren (Low-Risk HPV) DNA Native Biopsie in NaCl, Abstrich in 1 ml NaCl. Benutzen Sie bitte die speziellen HPV-Abstriche (Bestellung unter 0711-6357104) Material: Biopsie, Genitalabstrich Methode: Hybridisierung Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: s. HPV-High-Risk Referenzbereich: negativ Papilloma-Viren (genotypspezifisch) DNA Native Biopsie in NaCl, für Abstriche benutzen Sie bitte unser spezielles Viren-Transportmedium mit grünem Schraubverschluss (Bestellung unter 0711-6357104) Material: Biopsie, Genitalabstrich Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Absicherung der Zytologie bei PAP IIw/k, PAP III, Spezifizierung bei PAP III D. Vor HPV-Impfung zur Abklärung des vorliegenden Genotyps. Partnerdiagnostik. Papovaviren (Polyoma-, Papillomaviren) (s. S. 59 ) Pappataci-Fieber (s. S. 64 ) Sandfly Fever Parainfluenza-Viren Typ 1,2,3 Parainfluenza-Viren gehören zur Familie der Paramyxoviridae, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Typ 1 und Typ 2 treten meist in jährlichen Zyklen auf (Gipfel im Herbst), während Typ 3 ganzjährig endemisch ist. Parainfluenza-Viren sind meist die Erreger des viralen Pseudokrupp. Der Erregernachweis aus Rachen-oder Nasenabstrich ist die Methode der Wahl. Inkubationszeit: 2 - 4 Tage Parainfluenza-1,2,3-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Infektion des oberen und unteren Respirationstrakts, bei Kindern Hauptursache des Pseudokrupp, bei Erwachsenen milde katarrhalische Infekte der oberen Luftwege, Bronchitis Referenzbereich: <8,5 U/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 55 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Parainfluenza-1,2,3-IgA-AK EIA Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tage) Indikation: s. Parainfluenza-1,2,3-IgG-AK Referenzbereich: <8,5 U/ml Parainfluenza-Virus-Schnellanzucht auf LLCMK2-Zellen Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Nasenabstrich, Rachenabstrich, Broncho-pulmonale Proben Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Parainfluenza-Infektion Referenzbereich: negativ Parainfluenza-Virus-Anzucht in Zellkultur auf LLCMK2-Zellen Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Rachenabstrich, Nasenabstrich, Trachealsekret, Bronchiallavage Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5-7 Tage) Indikation: V. a. Parainfluenza-Infektion Referenzbereich: negativ Parainfluenza-Virus Typ 3 RNA Liquor (mind. 0,5 ml), Bronchiallavage (1 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: Liquor, Bronchiallavage, Rachenabstrich Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V.a. Infektion mit Parainfluenza-Virus Typ 3 Referenzbereich: negativ Parechoviren Parechoviren gehören zur Familie der Picornaviridae. Bisher wurden sechs humane Parechoviren identifiziert: Das humane Parechovirus 1 (vormals ECHO-Virus 22), das humane Parechovirus 2 (vormals ECHO-Virus 23) und die humanen Parechoviren 3-6. Humane Parechoviren verursachen in der Regel eine leichte Gastroenteritis bzw. Respirationstrakt-Erkrankung, werden jedoch auch mit Fällen von Meningoenzephalitis in Verbindung gebracht. Die Infektion ist klinisch häufig nicht von einer Enterovirus-Infektion zu unterscheiden. Es besteht bereits in den ersten Lebensjahren eine hohe Durchseuchung, da diese Viren weit verbreitet sind. Humane Parechovirus-RNA EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut (2-3 ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Stuhl (erbsgroß), native Biopsie (in 1 ml NaCl), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: EDTA-Blut, Vollblut, Liquor, Stuhl, Biopsie, Rachenabstrich Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: seröse Meningitis; unklare Peri-, Myokarditis, akute/chronische Kardiomyopathie; Enteritis Referenzbereich: negativ 56 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Parvovirus B19 (Ringelröteln, Erythema infectiosum) Ringelröteln (5th disease, Erythema infectiosum) zählen zu den meist mild verlaufenden Exanthemerkrankungen im Kindesalter. Übertragung durch Tröpfcheninfektion. Höchste Kontagiosität ca. 7 Tage vor Exanthembeginn. Im Erwachsenenalter verlaufen etwa 30% der Fälle ohne Symptome. Patienten mit hämolytischen Anämien können im Rahmen der Erstinfektion eine transiente aplastische Krise entwickeln. Akute und chronisch verlaufende Arthritiden (v. a. im Erwachsenenalter bei Frauen) sind beschrieben. Bei Schwangeren kann die Infektion zum intrauterinen Fruchttod und/oder Hydrops fetalis führen. Selten kann eine Myokarditis oder Enzephalitis/Enzephalopathie auftreten. Inkubationszeit: 8 - 14 Tage Parvovirus-B19-IgG-AK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Immunstatus; girlandenförmiges Exanthem häufig am Stamm beginnend und an den Wangen, juckend; aplastische Krise bei V. a. Infektion; Hydrops fetalis. Referenzbereich: <3 IU/ml Parvovirus-B19-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Girlandenförmiges Exanthem häufig am Stamm beginnend und an den Wangen, juckend; aplastische Krise bei V. a. Infektion; Hydrops fetalis. Referenzbereich: <0.9 Index Parvovirus-B19-IgG-AK Blot (recomLine) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Parvovirus-B19-IgM-AK Blot (recomLine) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest Referenzbereich: negativ (qualitativ) Parvovirus-B19-DNA Der Test erkennt die humanen Erythrovirus-Genotypen 1, 2 und 3. Fruchtwasser (2 - 5 ml, nativ), Biopsie (nativ mit wenig NaCl), fetales EDTA-Blut (mindestens 0,5 ml), EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut Material: EDTA-Blut, Vollblut, fetales EDTA-Blut, Fruchtwasser, Biopsie Methode: PCR (auch quantitativ) Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Abklärung einer akuten Infektion; Infektion in der Schwangerschaft; Hydrops fetalis. Differentialdiagnose bei Myokarditis (besonders bei Kindern und Jugendlichen) Referenzbereich: negativ Pfeiffersches Drüsenfieber (s. S. 28 ) (EBV-Infektion) Picorna-Viren (s. S. 26 ) Enteroviren Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 57 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Plasmodium falciparum, malariae, ovale, vivax (s. S. 256 ) PML (Progressive multifokale Leukenzephalopathie) (s. S. 59 ) JC-Polyoma-Virus Pneumocystis jiroveci P. jiroveci (vormals P. carinii) wird den Pilzen zugeordnet. Bei abwehrgeschwächten Patienten verursacht der Erreger eine schwere Pneumonie. Typische Symptome sind trockener Husten, Dyspnoe und Fieber. Die Durchseuchungsrate ist schon im frühen Kindesalter sehr hoch. Heute kommen Erkrankungen praktisch nur bei immunsupprimierten Patienten vor. Pneumocystis-jiroveci-Direktnachweis (s. S. 239 ) Direkte Immunfluoreszenz in der BAL Pneumocystis jirovecii (carinii) DNA Bronchiallavage, Sputum, Trachealsekret (je 2 ml), Lungenbiopsie Material: Bronchiallavage, Sputum, Trachealsekret, Biopsie Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Interstitielle plasmazelluläre Pneumonie, trockener Husten, Dyspnoe insbesondere bei Immunsuppression (HIV) Referenzbereich: negativ Pneumokokken Der Erreger Streptococcus pneumoniae wird durch Tröpfcheninfektion übertragen. Weltweit häufigster Erreger von Bakteriämien, besonders bei alten Menschen, Immunsupprimierten: Pneumonien, Meningitiden, Otitiden und Sinusitiden. Seltenere Infektionen sind Endokarditis, Arthritis und Peritonitis. Bei V. a. eine Pneumokokken-Infektion ist der Erregernachweis die Methode der Wahl. Pneumokokken-IgG-AK Bestimmung nur im Rahmen der Impfung sinnvoll! Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: vor/nach Impfung, bei Symptomen: Erregernachweis vorrangig! Referenzbereich: <3.3 mg/l Kultureller Nachweis von S. pneumoniae im Rachenabstrich (s. S. 242 ) (Weitere Materialien: Liquor, Blutkultur) Poliomyelitis (Kinderlähmung) Poliomyelitisviren gehören zu den Enteroviren. Infektionen verlaufen überwiegend asymptomatisch. Im Rahmen der klassischen Poliomyelitis tritt eine schlaffe, meist asymmetrische Lähmung auf. In Europa ist die Poliomyelitis praktisch ausgerottet. Inkubationszeit: 7 - 14 (3 - 35) Tage Meldepflichtige Erkrankung! Polio-Neutralisationstest (WHO) Antikörperbestimmung gegen Typ I, II und III Untersuchungsdauer: 5 Tage Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Neutralisationstest Ansatz: Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 5-10 Tage) Indikation: Immunitätsbestimmung nach Poliomyelitis-Impfung, wichtig vor Auslandsaufenthalt. Referenzbereich: <1:8 Titer 58 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Poliovirus-Anzucht in Zellkultur auf T=A, 20B-Zellen Liquor: min. 0,5 ml, Stuhl: erbsgroß Material: Liquor, Stuhl Methode: Kultur Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 5-7 Tage) Indikation: V. a. Poliovirusinfektion Polyomaviren (BKV, JCV) Polyomaviren gehören wie die Papillomaviren zur Familie der Papovaviridae. Die Übertragung erfolgt vermutlich durch Tröpfcheninfektion und die Durchseuchung ist bereits im Kindesalter sehr hoch. Bei immunsupprimierten Patienten kann BK-Virus zu einer hämorrhagischen Zystitis und bei Transplantierten zur Abstoßung des Transplantates führen, JC-Virus ist der Erreger der progressiven multifokalen Leukenzephalopathie (PML). BK-(Polyoma)-Virus DNA EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut, Urin (5-10 ml). Material: EDTA-Blut, Vollblut, Urin Methode: PCR (auch quantitativ) Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: (haemorrhagische) Zystitis, Verlaufskontrolle nach Nierentransplantation Referenzbereich: negativ JC-(Polyoma)-Virus DNA EDTA-Blut (2-3ml),Vollblut, Liquor (mind. 0,5 ml), Feinnadelbiopsie (nativ, in wenig NaCl). Material: Liquor, Biopsie, EDTA-Blut, Vollblut Methode: PCR (auch quantitativ) Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: PML (Progressive multifokale Leukenzephalopathie), Slow-Virus-Disease Referenzbereich: negativ Pseudomonas-aeruginosa-Antikörper Diese Untersuchungen sind nur bei Patienten mit Cystischer Fibrose (Mukoviszidose) indiziert. Sie sind nicht zur Diagnostik akut verlaufender Erkrankungen durch Pseudomonas aeruginosa geeignet (direkter Erregernachweis!). IgG gegen alkalische Protease (P. aeruginosa) (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: EIA Referenzbereich: <1:500 Titer IgG gegen Elastase (P. aeruginosa) (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: EIA Referenzbereich: <1:500 Titer IgG gegen Exotoxin A (P. aeruginosa) (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: EIA Referenzbereich: <1:500 Titer Bakteriologische Untersuchung aus respiratorischen Sekreten (s. S. 238 ) Psittakose (s. S. 18 ) Papageienkrankheit Puumalaviren (s. S. 33 ) Q-Fieber (s. S. 21 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 59 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Rabies, Lyssa, Tollwut (s. S. 66 ) Respiratory Syncytial Virus (RSV) RSV gehört zu den Paramyxoviren, die Übertragung erfolgt durch Tröpfcheninfektion. Hauptursache der Hospitalisation bei Säuglingen. Das Virus ist einer der wichtigsten und häufigsten Erreger von kindlichen Atemwegserkrankungen, vor allem bei Säuglingen (schwere Pneumonien). Eine Otitis media ist meist die Folge einer RSV-Infektion. Es gibt 2 Subtypen (A und B), der Häufigkeitsgipfel von Erkrankungen durch RSV liegt in den Wintermonaten. Reinfektionen kommen häufig vor und verlaufen überwiegend als Infektion der oberen Luftwege ("common cold"). Die Diagnose wird vor allem durch den Erregernachweis gestellt. Inkubationszeit: 3 - 6 Tage Respiratory Syncytial Virus (RSV) IgG-AK EIA Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: bei Säuglingen: Bronchiolitis; Krupp, Pneumonie Referenzbereich: <10 U/ml Respiratory Syncytial Virus (RSV)IgA-AK EIA Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: bei Säuglingen: Bronchiolitis; Krupp, Pneumonie Referenzbereich: <10 U/ml Respiratory Syncytial Virus (RSV) RNA Bronchiallavage, Trachealsekret (mind. 1 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: Bronchiallavage, Rachenabstrich, Trachealsekret Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Infektion Referenzbereich: negativ Rhinoviren Rhinoviren gehören zu den Picornaviridae. Die Übertragung erfolgt z. B. über kontaminierte Hände oder durch Tröpfcheninfektion. Mit über 100 Serotypen sind sie weltweit verbreitet und treten gehäuft in den Wintermonaten auf. Im Unterschied zu den Enteroviren sind sie säureempfindlich. Neben dem banalen Schnupfen ("common cold") kann das Virus auch (besonders bei Kindern) zu Atemwegserkrankungen (Bronchitis, Bronchopneumonie) führen. Die nur kurz dauernde, typenspezifische Immunität erklärt die häufig wiederkehrenden Schnupfenepisoden im Leben jedes Menschen. Rhinovirus-RNA Bronchiallavage, Trachealsekret (mind. 1 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe). Material: Bronchiallavage, Trachealsekret, Rachenabstrich Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Infektion Referenzbereich: negativ 60 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Rickettsien (R. prowazekii, mooseri, rickettsii, conorii u.a.) Klassisches (epidemisches) Fleckfieber, Murines Fleckfieber, Felsengebirgsfleckfieber (Rocky-Mountain-Spotted Fever), Tsutsugamushi-Fleckfieber (Japanisches Fleckfieber), Mittelmeerfleckfieber (Zeckenbissfieber, Boutonneuse-Fieber), Brill-Zinsser-Krankheit. Läuse und Zecken dienen als Vektoren, aber auch Milben (beim Tsutsugamushi-Fieber) können als Überträger fungieren. Die Mikroorganismen sind weltweit verbreitet, in Europa kommen sie meist in den Mittelmeerländern vor. In den letzten Jahren konnten weitere durch Zecken übertragene Rickettsien (R. slovaca, R. helvetica) identifiziert werden. Diese kommen auch in Mitteleuropa vor. Schwere Organmanifestationen wie Pneumonie, Meningitis, Sepsis und Myokarditis sind selten. Inkubationszeit: 7 - 21 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Rickettsien-AK-IgG IFT Die Antikörperuntersuchung beinhaltet zwei Testansätze. Im ersten Ansatz werden Antikörper der Zeckenbissfieber-Gruppe (spotted fever group)nachgewiesen. Erfasst werden: R. rickettsii, R. conorii, R. akari, R. sibirica, R. australis, R.helvetica, R.slovaca. Im zweiten Ansatz werden Antikörper der Typhus-Gruppe (klassischer Typhus, Typhus murinus) nachgewiesen. Erfasst werden: R. mooseri/typhi, R. prowazekii. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Fieber, makulopapulöses Exanthem (Fleckfieber), Kopfschmerz, Konjunktivitis, Hepatitis nach Vektorexposition (Reiseanamnese!) Referenzbereich: <1:64 Titer Rickettsien-AK-IgM IFT Die Antikörperuntersuchung beinhaltet zwei Testansätze. Im ersten Ansatz werden Antikörper der Zeckenbissfieber-Gruppe (spotted fever group)nachgewiesen. Erfasst werden: R. rickettsii, R. conorii, R. akari, R. sibirica, R. australis, R. helvetica, R. slovaca. Im zweiten Ansatz werden Antikörper der Typhus Gruppe (Klassischer Typhus, Typhus murinus) nachgewiesen. Erfasst werden: R. mooseri/typhi, R. prowazekii. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Fieber, makulopapulöses Exanthem (Fleckfieber), Kopfschmerz, Konjunktivitis, Hepatitis nach Vektorexposition (Reiseanamnese!) Referenzbereich: <1:64 Titer Rinderbandwurm (s. S. 259 ) Ringelröteln (s. S. 57 ) Rotaviren Rotaviren sind weltweit die häufigste Ursache von Durchfallerkrankungen bei Kindern (besonders Säuglingen) und treten vor allem in den Winter- und Frühlingsmonaten auf, Gipfel im März/April. In mehr als der Hälfte der Fälle sind unspezifische respiratorische Symptome zu beobachten. Die Übertragung erfolgt fäko-oral, Reinfektionen kommen vor, da eine durchgemachte Infektion nur eine serotypspezifische Immunität hinterläßt. Inkubationszeit: 1 - 3 Tage Die Erkrankung ist meldepflichtig! Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 61 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Rotavirus-Antigennachweis im Stuhl Material: Stuhl Menge: erbsgroß Methode: Ag-EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag) Indikation: V. a. Rotavirus-Infektion, akute Diarrhoe Referenzbereich: negativ Rotavirus-RNA-Nachweis im Stuhl Material: Stuhl Menge: erbsgroß Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Rotavirus-Infektion, akute Diarrhoe Referenzbereich: negativ Röteln Das Rötelnvirus gehört zur Familie der Togaviren. Die Übertragung des Rötelnvirus erfolgt durch Tröpfcheninfektion und pränatal. Postnatal erworbene Röteln verlaufen im allgemeinen leicht, bis zu 50% der Infektionen bei Kindern sind sogar asymptomatisch. Das Virus ist hoch teratogen, je früher in der Schwangerschaft eine Primärinfektion stattfindet, desto schwerer sind die kindlichen Schädigungen. Reinfektionen kommen vor. Als Spätfolge kann eine progressive Rötelnpanenzephalitis (ähnlich der SSPE) auftreten. Inkubationszeit: 14 - 21 Tage Anonyme Meldepflicht einer Rötelnembryopathie! Röteln-Virus-AK HAH Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: HAH (HHT) Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Immunstatus (besonders in Gravidität), vor/nach Impfung, nach Kontakt Referenzbereich: <1:8 Titer Röteln-Virus-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Zusatztest zur Bestimmung der Immunitätslage bei niedrigem HAH-Titer Referenzbereich: <4.1 IE/ml Röteln-Virus-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: V. a. akute Infektion mit Rötelnvirus, kleinfleckiges Exanthem, Nackenlymphknotenschwellung, Embryopathieverdacht Referenzbereich: <0.900 Index Röteln-Virus-IgM-AK CLIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest zur Abklärung einer akuten Infektion Referenzbereich: <15 AU/ml 62 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Röteln-Virus-IgM-AK (nach RF-Absorption) EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Zusatztest zur Abklärung einer akuten Infektion Referenzbereich: <1.0 Index Röteln-Virus-IgG-AK EIA Avidität Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Aviditätstest Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes Referenzbereich: siehe Befund % Röteln-Virus-IgG-AK Immunoblot Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes Referenzbereich: siehe Befund Röteln-Virus-IgG-AK EIA im Liquor Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird. Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der Serum-AK. Material: Liquor Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: ZNS-Beteiligung, MRZ-Reaktion bei V.a. MS Referenzbereich: negativ (qualitativ) Röteln-Virus-RNA Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml, nativ), fetales EDTA-Blut (0,5 ml), Abortmaterial (nativ), Abstrich (in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe), Urin (5-10 ml). Material: Abortmaterial, fetales EDTA-Blut, Fruchtwasser, Liquor, Rachenabstrich, Urin Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Rötelninfektion vor allem in Gravidität (Pränatale Diagnostik) und bei V. a. konnatale Infektion Referenzbereich: negativ Röteln-Virus Genotypisierung Besondere Fragestellung: Bestimmung des vorliegenden Röteln-Genotyps zur Abklärung, z.B. der geographischen Herkunft des Isolates. Diese Untersuchung führen wir nicht selbst durch, können diese jedoch veranlassen. Salmonellen Salmonellen werden durch kontaminierte Lebensmittel (meist Eier, Geflügel) übertragen, aber auch fäko-orale Infektionen sind beschrieben. In Abhängigkeit von der klinischen Symptomatik unterscheidet man: akute Enteritis oder Enterokolitis, Bakteriämie, Typhus und typhoide Form. Vor allem bei jüngeren Kindern wird eine verlängerte Aussscheidung beobachtet. Hauptreservoir der Erreger sind insbesondere Tiere, die zum Verzehr gehalten werden. Inkubationszeit: 5 - 72 Stunden, Typhus: 1 - 3 Wochen, Paratyphus: 1 - 10 Tage Salmonellosen sind meldepflichtig! Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 63 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Salmonellen-AK EIA Nachgewiesen werden IgG-, IgA- und IgM-Antikörper gegen S. enteritidis und typhimurium. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Reaktive Arthritis Referenzbereich: <0.9 Index Kultureller Nachweis von Salmonellen (s. S. 241 ) Sandfly Fever (Pappataci-Fieber) Es existieren verschiedene Serotypen: Sicilian, Naples, Toscana. Das Sandfliegen-Fieber-Virus, welches zu den Bunyaviren gehört, kommt im Mittelmeeraum bis Pakistan vor, der Serotyp Toscana bisher nur in einigen Regionen Italiens, Portugals, Spaniens und Zyperns. Erregerreservoir sind Nutztiere und Mäuse, die Übertragung erfolgt durch Stiche von Sandfliegen. Inkubationszeit: 3 - 5 Tage Sandfliegenfieber-IgG/IgM-AK Blot Nachweis von Antikörpern gegen Sandfliegenfieber-Virus vom Typ Toscana (miterfasst werden Sicilian- und Naplesvirus) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: hohes Fieber, Kopfschmerzen, Konjunktivitis, Arthralgien, aseptische Meningitis; nach Aufenthalt im Mittelmeerraum (Italien, Spanien, Portugal, Kroatien), Nord-Afrika, Asien Referenzbereich: negativ (qualitativ) Schistosomiasis (s. S. 258 ) Schweinebandwurm (s. S. 259 ) Shigellose (S. sonnei, S. flexneri) Synonym: bakterielle Ruhr Gramnegative Stäbchen, die meist fäkal-oral übertragen werden. Die Shigellose ist durch akute, schleimige oder blutige Durchfälle, Fieber und extraintestinale Symptome charakterisiert. Shigellen sind hochinfektiös und vermögen bis zu 30 Tagen außerhalb des Wirts zu überleben. Infektionen werden häufig im Rahmen eines Auslandsaufenthaltes durch kontaminiertes Trinkwasser oder Speisen verursacht. Inkubationszeit: 1 - 7 Tage Meldepflichtige Erkrankung! Kultureller Nachweis von Shigellen (s. S. 241 ) STORCH-Serologie (s. S. 76 ) Subakute sklerosierende Panenzephalitis (SSPE) (s. S. 50 ) (Masern-Infektion) Syphilis (Lues) Die Syphilis (Lues, harter Schanker) ist eine systemische Erkrankung, die durch die Spirochäte Treponema pallidum verursacht wird. Hauptübertragungswege sind Sexualkontakte und die transplazentare Infektion des Feten. Die Erkrankung verläuft in verschiedenen Stadien (Primärstadium, Sekundärstadium, Tertiärstadium). Unbehandelt entwickeln etwa 40% der Patienten klinisch manifeste Spätkomplikationen (Gummen, kardiovaskuläre Syphilis, progressive Paralyse, Tabes dorsalis). Serologisch kann die venerische Syphilis nicht von nicht-venerischen Treponematosen (z.B. Yaws, Pinta u.a.) unterschieden werden. 64 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Inkubationszeit: 14 (3 - 90) Tage Anonyme Meldepflicht des Labors! TPPA (Luessuchreaktion) Der Treponema-pallidum-Partikel-Assay (TPPA) entspricht in seiner Wertigkeit dem TPHA (Treponema-pallidum-Hämagglutinations-Assay). Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Agglutination Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Syphilisausschlussdiagnostik (Screeningtest, Luessuchreaktion); Mutterschaftsvorsorge bei Schwangerschaftsfeststellung Referenzbereich: <1:80 Titer VDRL (Venereal Disease Research Laboratory Test) Material: Serum, Vollblut, Liquor Menge: 500 µl Methode: Präzipitation Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Beurteilung der Erkrankungsaktivität bei Verdacht auf Syphilis bzw. Therapiebedürftigkeit Referenzbereich: <1:1 Titer RPR (Rapid Plasma Reagin Test) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Präzipitation Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Beurteilung der Erkrankungsaktivität bei Verdacht auf Syphilis Referenzbereich: <1:1 Titer FTA-ABS-IgG IFT (Syphilisbestätigungstest) Fluoreszenz-Treponema-Antikörper-Absorptions-Test Material: Serum, Vollblut, Liquor Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 3 x pro Woche Indikation: Syphilisbestätigungstest bei reaktivem Suchtest Referenzbereich: <1:10 Titer FTA-ABS-19S-IgM IFT Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 3 x pro Woche Indikation: Nachweis einer behandlungsbedürftigen Treponemen-Infektion. Referenzbereich: <1:10 Titer S-FTA-ABS-19S-IgM (Säulenchromatographie) Vor Testung erfolgt die Abtrennung der IgG-Fraktion durch Säulenchromatographie. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Nachweis einer behandlungsbedürftigen Treponemen-Infektion. Referenzbereich: <1:20 Titer Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 65 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Treponema-pallidum-IgG-AK Immunoblot Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Syphilisbestätigungstest bei reaktivem Suchtest und grenzwertigen Befunden in der Immunfluoreszenz Referenzbereich: negativ (qualitativ) Treponema-pallidum-IgM-AK Immunoblot Zum Ausschluss falsch positiver und falsch negativer Ergebnisse erfolgt ggf. vor Durchführung des Testes die Abtrennung der IgG-Fraktion. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Nachweis einer behandlungsbedürftigen Treponemen-Infektion Referenzbereich: negativ (qualitativ) Neurosyphilistest (modifizierter ITpA-Index) Immer Serum/Liquor-Paar einsenden. Zusätzlich wird die Bestimmung des Gesamt-IgG und Albumin in Serum und Liquor durchgeführt. Material: Liquor, Serum, Vollblut Menge: 1000 µl Methode: Agglutination Ansatz: bei Bedarf Indikation: Berechnung des intrathekalen T. pallidum Antikörper (ITpA)- Index zum Nachweis bzw. Ausschluss einer T.pallidum-spezifischen Antikörpersynthese im ZNS bei Verdacht auf Neurosyphilis Referenzbereich: ITpA-Index: <2,0 Index Treponema-pallidum-DNA Liquor (mind. 0,5 ml), Abstriche (nativ in 1 ml NaCl), Biopsie (nativ in wenig NaCl), EDTA-Blut (2-3 ml), fetales EDTA-Blut (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml, nativ). Material: Abortmaterial, Abstrich, Biopsie, EDTA-Blut, fetales EDTA-Blut, Fruchtwasser, Urin, Liquor, Genitalabstrich Menge: 2 ml Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Genitalulkus und V. a. Syphilis (Abstrich), V. a. Neurosyphilis (Liquor), V. a. konnatale Syphilis (EDTA-Blut, Liquor, Sekrete (Rhinitis), Urin). Bei Patienten mit Immunsuppression (HIV) ggf. auch EDTA-Blut, Abstriche und Biopsiematerial im Sekundärstadium bei unklaren serologischen Befunden Referenzbereich: negativ Tetanus (s. S. 20 ) Tollwut (Rabies, Lyssa) Weltweit verbreitete Erkrankung der Tiere (Baden-Württemberg seit 2005 tollwutfrei). Die Virusübertragung auf den Menschen findet meist durch Biss- und Kratzwunden statt. Die Krankheit endet tödlich. Kadaver tollwutkranker Tiere sind als infektiös zu betrachten. Inkubationszeit: 10 Tage bis Monate (je nach Bisslokalisation) Meldepflicht von Erkrankung, V. a. Erkrankung, Berührung mit Speichel eines verdächtigen Tieres oder Kadavers sowie jede Verletzung durch ein solches Tier! Dies gilt auch für den Kontakt mit ausgelegten Impfködern. Bei Infektionsverdacht Kontaktaufnahme mit folgenden Stellen: Konsiliarlaboratorium für Tollwut Universitätsklinikum Essen, Institut für Virologie Hufelandstraße 55, 45122 Essen Ansprechpartner: Herr Prof. Dr. R. S. Roß / Herr Prof. Dr. M. Roggendorf Tel.: 02 01.7 23-35 61 / -35 50 Fax: 02 01.7 23-59 29 66 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge oder: Friedrich-Loeffler-Institut, Bundesforschungsinstitut für Tiergesundheit, Institut für Epidemiologie, Nationales und O.I.E. Referenzlabor für Tollwut. WHO Collaborating Centre for Rabies Surveillance and Research Seestraße 55, 16868 Wusterhausen Tel.: 03 39 79.80-186/-158 Fax: 03 39 79.80-200 Ansprechpartner: Drs. Thomas Müller/Conrad Freuling Tollwut-AK (RFFIT) (F) Antikörpernachweis nur zur Feststellung des Impferfolges! Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Neutralisationstest Ansatz: bei Bedarf Indikation: vor/nach Impfung Referenzbereich: <1:50 Titer TORCH-Serologie (s. S. 76 ) Toxocarose (s. S. 260 ) Toxoplasmose Die Toxoplasmose ist eine häufige Infektionskrankheit, die in der Mehrzahl der Fälle asymptomatisch verläuft. Erreger ist der intrazelluläre Parasit Toxoplasma gondii. Infektionsquellen sind rohe bzw. zu wenig gebratene, geräucherte Fleisch- oder Wurstwaren, unpasteurisierte Milch, Rohmilchprodukte, erregerkontaminierte Erde (durch Katzenkot) bei Gartenarbeiten bzw. ungesäuberte Nahrungsmittel (Salat, Gemüse, Fallobst). Geringeres Risiko bedeutet der direkte Kontakt zu Katzen. In der Schwangerschaft kann eine Primärinfektion zu schweren Schädigungen (Hydrozephalus, intrazerebrale Verkalkungen, Retinochorioiditis) beim Feten oder selten zum Abort führen. Beim Immunsupprimierten kann die Toxoplasmose als opportunistische Infektion mit Myokarditis, Enzephalitis oder Pneumonie lebensbedrohend sein. Inkubationszeit: wahrscheinlich 2 - 4 Wochen Anonyme Meldepflicht bei konnataler Toxoplasmose. Toxoplasma gondii IgG-AK CLIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Toxoplasmose, Screening in der Schwangerschaft und vor Sterilitätsbehandlung, Katzenkontakt, grippeähnliche Symptome, Lymphadenitis, Verzehr von rohem Fleisch Referenzbereich: <7.0 IU/ml Toxoplasma gondii IgM-AK CLIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute Toxoplasmose Referenzbereich: <8.0 AU/ml Toxoplasma gondii IgG-AK Avidität Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Aviditätstest Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes Referenzbereich: s. Befund Index Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 67 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Toxoplasma gondii IgM-AK ISAGA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 200 µl Methode: ISAGA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: In der Schwangerschaft: Zusatztest zur Bestätigung positiver IgM-AK im CLIA. Beim Neugeborenen: V. a. pränatale Toxoplasmose. Referenzbereich: Erwachsene: <1:512; Kinder (<2J): <1:20 Titer Toxoplasma gondii IgG-AK Blot (recomLine) Verwendung rekombinanter Antigene Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Identifikation phasenspezifischer Antikörper Referenzbereich: s. Befund Toxoplasma gondii IgG-AK Avidität Blot (recomLine) Verwendung rekombinanter Antigene Durchführung nur in Kombination mit T. gondi IgG-AK Blot Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes Referenzbereich: s. Befund Toxoplasma gondii IgM-AK Blot (recomLine) Verwendung rekombinanter Antigene Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: Line Assay Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Identifikation phasenspezifischer Antikörper Referenzbereich: s. Befund (qualitativ) Toxoplasma gondii IgA-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Zusatztest bei V. a. akute, reaktivierte oder pränatale Toxoplasmose Referenzbereich: <10.0 AU/ml Toxoplasma gondii IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute Toxoplasmose, Zusatztest Referenzbereich: <1:32 Titer 68 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Toxoplasma gondii IgG-AK IFT im Liquor Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird. Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der Serum-AK. Material: Liquor Menge: 100 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. ZNS-Beteiligung bzw. Ausschluss pränatale Infektion beim Neugeborenen Referenzbereich: <1:2 Titer Toxoplasma gondii IgG-AK Profil (Mutter/Kind; Augentoxoplasm.) Immer mütterliches Blut und Nabelschnurblut einsenden; zusätzlich Folgeblut des Neugeborenen in der 6. und 12. Lebenswoche. Bei Untersuchung des Glaskörperpunktates bzw. Augenkammerwassers immer Serum mit einsenden. Bei Glaskörperpunktat bzw. Augenkammerwasser Mindestmenge 20 µl. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, Augenkammerwasser, Glaskörperpunktat Menge: 500 (min 100) µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest bei V. a. pränatale Toxoplasmose; Nachweis der spezifischen Synthese intraokulärer IgG-Antikörper bei aktiver Retinochorioiditis Referenzbereich: s. Befund (qualitativ) Toxoplasma gondii IgM-AK Profil (Mutter/Kind) Immer mütterliches Blut und Nabelschnurblut einsenden; Kontrolle des Neugeborenen bis zur 4. Lebenswoche. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut Menge: 500 (min 100) µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest bei V. a. pränatale Toxoplasmose Referenzbereich: s. Befund (qualitativ) Toxoplasma gondii DNA Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml, nativ), EDTA-Blut (2-3 ml), fetales EDTA-Blut (mindestens 0,5 ml). Material: EDTA-Blut, fetales EDTA-Blut, Fruchtwasser, Liquor Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Bei V. a. Primärinfektion/auffälligem US (Hydrozephalus, intrazerebrale Verkalkungen) Entnahme von Fruchtwasser und ggf. fetales Blut; Zusatztest bei V. a. konnatale Toxoplasmose, bei Immunsuppression mit ZNS-Befall Referenzbereich: negativ Toxoplasma gondii-spezifische T-Lymphozyten Nachweis erregerspezifischer T-Lymphozyten: Messung zytokinsezernierender Lymphozyten (z. B. Interferon-gamma) nach Antigenstimulation in vitro. Abnahme Mo bis Mi, die Probe sollte unser Labor innerhalb von 24 Stunden erreichen. Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Vorherige telefonische Anmeldung erbeten! Nur Heparinblut möglich! Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden. Menge: 9 (Kleinkind 2-3) ml Methode: Elispot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Nachweis einer zellulären Immunantwort gegen Toxoplasma gondii, z. B. bei unklarer Serologie. Referenzbereich: negativ Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 69 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Toxoplasmose Medikamentenspiegelbestimmung: Pyrimethamin (s. S. 216 ) Zeitpunkt der 1. Spiegelbestimmung am 10. Behandlungstag empfohlen. Indikation: Überprüfung von Compliance, Resorption und Kumulation. Toxoplasmose Medikamentenspiegelbestimmung: Sulfadiazin (s. S. 217 ) Zeitpunkt der 1. Spiegelbestimmung am 10. Behandlungstag empfohlen. Indikation: Überprüfung von Compliance und Resorption. Trichinose (s. S. 260 ) Tropheryma whipplei (Morbus Whipple) DNA (F) Dünndarmbiopsie nativ (in wenig NaCl) Material: Biopsie, Liquor Menge: 2 ml Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: Verdacht auf Morbus Whipple Referenzbereich: negativ Tularämie (s. S. 30 ) TWAR (Chlamydophila pneumoniae) (s. S. 17 ) Ureaplasma urealyticum Die Patient(inn)en sind meist symptomlos. Bei Neugeborenen von infizierten Müttern beträgt die Transmissionsrate intra partum bis zu 50%. Reife Neugeborene erkranken selten, unreife Neugeborene (<1000 g GG) sind jedoch disponiert für eine Infektion (meist tritt eine Pneumonie auf). Ureaplasma-urealyticum-AK NT U. urealyticum kommt in geringer Keimzahl als Standortflora im Genitaltrakt vor! Unter Antibiotikatherapie können falsch-positive Ergebnisse auftreten. Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Neutralisationstest Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tag) Indikation: Unspezifische Genitalinfektion, Urethritis, Vaginitis, postinfektiöse reaktive Arthritis, erhöhte Frühgeburtlichkeit; bei Ngb.: Pneumonie, postpartales Fieber Referenzbereich: <1:16 Titer Kultureller Nachweis von U. urealyticum (s. S. 243 ) Ureaplasma-urealyticum-DNA Ejakulat (1 ml), Urin (5-10 ml), Abstrich (in 1 ml NaCl oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe). Material: Ejakulat, Genitalabstrich, Urin Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: unspezifische Genitalinfektion, Urethritis, Vaginitis, postinfektiöse reaktive Arthritis, erhöhte Frühgeburtlichkeit; bei Ngb. (Trachealsekret): Pneumonie, postpartales Fieber Referenzbereich: negativ Varizella-Zoster-Virus (Windpocken, Zoster) Das Varizella-Zoster-Virus (VZV) verursacht als Primärinfektion die Windpocken und bei Reaktivierung eine Gürtelrose (Zoster). Bei Neugeborenen und Immunsupprimierten sind schwere Verläufe möglich. Bei Windpocken in der Frühschwangerschaft können Missbildungen (Kongenitales Varizellen Syndrom) auftreten. Bei VZV-Kontakt von seronegativen Schwangeren ist eine Postexpositionsprophylaxe möglich. Inkubationszeit: 14 (8 - 21) Tage, nach Immunglobulingabe auch länger 70 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Immunstatus; direkter Kontakt zu Windpocken, besonders in SS (zeitgerechte Immunglobulingabe möglich) und um Geburtstermin Referenzbereich: <50 mU/ml Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK EIA (ultrasensitiv) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Serologische Bestimmung niedriger Antikörpertiter, vor allem nach Impfung Referenzbereich: siehe Befund mU/ml Varizella-Zoster-Virus-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute Windpockenerkrankung Referenzbereich: <2.0 Index Varizella-Zoster-Virus-IgA-AK EIA Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. reaktivierte VZV-Infektion (Zoster), typisch segmental begrenzte Bläschen begleitet von schmerzhafter Neuritis; Paresen, Parästhesien auch ohne Hauterscheinungen, Zosterenzephalitis; bei Immunsuppression schwere Verläufe möglich Referenzbereich: bis 1:512 Titer Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK Avidität Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Aviditätstest Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes Referenzbereich: siehe Befund % Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK Avidität (ultrasensitiv) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Aviditätstest Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tage) Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes Referenzbereich: siehe Befund % Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK EIA im Liquor Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird. Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der Serum-AK. Material: Liquor Menge: 200 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: ZNS-Beteiligung, MRZ-Reaktion bei V.a. MS Referenzbereich: negativ mIU/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 71 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Varicella-Zoster-Virus-Anzucht in Zellkultur auf diploiden Fibroblasten Bläscheninhalt, Rachenabstrich, Rachensekret immer gekühlt (+4◦ C) per Eilsendung einsenden. Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden. Material: Bläscheninhalt, Rachenabstrich Methode: Kultur Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 7-14 Tage) Indikation: V.a. Windpocken Varizella-Zoster-Virus-DNA Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (mind. 2-5 ml, nativ) Material: Bläscheninhalt, Fruchtwasser, Liquor Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Windpocken, ZNS-Beteiligung, Abklärung eines unklaren vesikulären Exanthems Referenzbereich: negativ Genotypisierung VZV Besondere Fragestellung bei positivem Befund: Wildvirus oder Impfvirus? Unterscheidungsmöglichkeit durch PCR-basierte Genotypisierung. VZV-spezifische T-Lymphozyten Nachweis erregerspezifischer T-Lymphozyten: Messung zytokinsezernierender Lymphozyten (z. B. IFN-gamma) nach Antigenstimulation in vitro Abnahme Mo-Mi, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Vorherige telefonische Anmeldung erbeten! Nur Heparinblut möglich! Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden. Material: Heparinblut Menge: 9 ml Methode: Elispot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Nachweis einer zellulären Immunität gegen VZV z. B. bei unklarer Serologie nach Impfung VZV (s. S. 70 ) Varizella-Zoster-Virus West-Nil-Virus (WNV) Das West-Nil-Virus ist ein behülltes RNA-Virus der Flaviviridae-Familie, das sowohl in tropischen als auch in gemäßigten Gebieten vorkommt. Das Virus infiziert hauptsächlich Vögel, kann aber auch auf Menschen, Pferde und andere Säugetiere übergreifen. Das Virus wird durch Stechmücken übertragen. In Nordamerika ist es die gemeine kleine Hausmücke (Culex pipiens) und ein Hybrid aus Culex pipiens und Culex molestus. Beim Menschen ergeben sich in 80% der Fälle keine Symptome durch die Infektion. In anderen Fällen ergeben sich Grippe-ähnliche Symptome, bekannt als West-Nil-Fieber. Das Virus ist in der Lage, die Blut-Hirn-Schranke zu passieren, und kann dadurch eine Enzephalitis (Entzündung des Gehirns) oder eine Meningitis (Entzündung der Hirnhaut) auslösen (in 0,7% der Fälle). Beide Fälle können tödlich enden. Inkubationszeit: 2 - 14 Tage West-Nil-Virus-AK IgG IFT (F) Cave: Kreuzreaktionen mit anderen Viren der Flavivirus-Gruppe (z.B. FSME-Virus) sind möglich. Material: Serum, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Infektion mit West-Nil-Virus, Auslandsaufenthalt Referenzbereich: <1:40 Titer 72 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge West-Nil-Virus-AK IgM IFT (F) Cave: Kreuzreaktionen mit anderen Viren der Flavivirus-Gruppe (z.B. FSME-Virus) sind möglich. Material: Serum, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Infektion mit West-Nil-Virus Referenzbereich: <1:40 Titer West-Nil-Virus-RNA (F) Das West-Nil-Virus ist der Erreger des West-Nil-Fiebers. Es gehört zu der Gruppe der Flaviviren (Übertragung durch Culex-Mücken). Hauptverbreitungsgebiete sind Afrika, Indonesien, Israel und Indien. Liquor (mind. 0,5 ml), EDTA-Blut (2-3 ml) Material: EDTA-Blut, Serum, Liquor Methode: RT-PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage) Indikation: Myalgien, Kopfschmerzen, makulopapulöses Exanthem, Lymphadenopathie nach Aufenthalt in Risikogebieten. Referenzbereich: negativ Windpocken (s. S. 70 ) Varizella-Zoster-Virus Wundstarrkrampf (s. S. 21 ) Tetanus Yersiniosen (Y. enterocolitica, Y. pseudotuberculosis) Gramnegative Stäbchen, die durch kontaminierte Nahrung aufgenommen werden. Die Ausscheidung der Yersinien mit dem Stuhl kann viele Wochen nach Ende der Diarrhoe fortbestehen. Insbesondere bei HLA B27-positiven Patienten kann es post infectionem zu Arthritiden, Erythema nodosum und Arthralgien kommen. Inkubationszeit: 1 - 14 Tage Meldepflichtige Erkrankung (bei akuter Enteritis)! Yersinia-IgG-AK EIA Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute Yersiniose (Enteritis, pseudoappendizitische Symptomatik) bzw. yersinienbedingte Komplikationen (reaktive Arthritis, Erythema nodosum, akute Glomerulonephritis, Myokarditis) Referenzbereich: <20 U/ml Yersinia-IgM-AK EIA Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute Yersiniose (Enteritis, pseudoappendizitische Symptomatik) bzw. yersinienbedingte Komplikationen (reaktive Arthritis, Erythema nodosum, akute Glomerulonephritis, Myokarditis) Referenzbereich: <20 U/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 73 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Yersinia-IgA-AK EIA Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. akute Yersiniose (Enteritis, pseudoappendizitische Symptomatik) bzw. yersinienbedingte Komplikationen (reaktive Arthritis, Erythema nodosum, akute Glomerulonephritis, Myokarditis) Referenzbereich: <20 U/ml Yersinia-enterocolitica-IgG Blot Antigen: Lysat aus Yersinia-enterocolitica-Stämmen, durch Kreuzreaktionen werden aber in der Regel auch Antikörper gegen Yersinia pseudotuberculosis und Y. pestis detektiert Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest bei positivem Ergebnis im EIA Referenzbereich: negativ Yersinia-enterocolitica-IgA Blot Antigen: Lysat aus Yersinia-enterocolitica-Stämmen, durch Kreuzreaktionen werden aber in der Regel auch Antikörper gegen Yersinia pseudotuberculosis und Y. pestis detektiert Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zusatztest bei positivem Ergebnis im EIA Referenzbereich: negativ Zeckenübertragene Erkrankungen Borreliose (Lyme Disease) (s. S. 14 ) FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 ) Seltene Erkrankungen: Ehrlichiose / Anaplasmose (s. S. 25 ) Babesiose (s. S. 250 ) Rickettsiose (s. S. 61 ) Zoster (Herpes Zoster) (s. S. 70 ) Reaktivierte Infektion mit Varizella-Zoster-Virus 74 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Mutterschaftsvorsorge / Pränataldiagnostik Mutterschaftsvorsorge Für die serologischen Untersuchungen bitte eine Monovette Serum/Vollblut einsenden. Bitte zusätzlich eine EDTA-Monovette 7,5 ml für die Blutgruppenbestimmung und/oder den Antikörpersuchtest abnehmen. Obligat im 1. Trimenon Bestimmung der Blutgruppe und des Rh-Faktors (s. S. 183 ) Antikörpersuchtest für irreguläre Antikörper (s. S. 183 ) Röteln-Immunstatus (s. S. 62 ) sofern keine zwei Rötelnimpfungen im Impfpass dokumentiert sind! Luessuchreaktion (TPPA) (s. S. 64 ) HIV-Screening (s. S. 43 ) (bei Einverständnis der Schwangeren) Chlamydia trachomatis aus Urin (ggf. Cervixabstrich) (s. S. 19 ) Nicht obligat im 1. Trimenon (Bei Risikopatienten Bestimmung des Immunstatus vor der Schwangerschaft sinnvoll.) Toxoplasmose-Screening (s. S. 67 ) (ohne medizinische Indikation IGEL) Cytomegalie-Screening (s. S. 22 ) (bei Risikoberufen, z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin) Parvovirus B19 (Ringelröteln) (s. S. 57 ) (bei Risikoberufen, z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin) Varizella-zoster-Virus (Windpocken) (s. S. 70 ) (bei Risikoberufen, z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin) Obligat im 3. Trimenon Antikörpersuchtest für irreguläre Antikörper (24. -27. SSW) (s. S. 183 ) Hepatitis B (HBsAg) (s. S. 35 ) IGeL-Untersuchungen in der Schwangerschaft Die Kosten für Individuelle Gesundheits-Leistungen (IGEL) werden Ihren Patientinnen privat in Rechnung gestellt. Grundsätzlich können Sie jeden Parameter auch einzeln anfordern. Die Abrechnung erfolgt dann direkt mit Ihren Patientinnen zum 1,0-fachen Satz der GOÄ. Bitte aktuelle Adresse der Patientin angeben. Bei Risikoberufen z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin vor Schwangerschaft und bei Kontakt CMV IgG (ggf. IgM-AK) (s. S. 22 ) Parvovirus B19 IgG-AK (ggf. IgM) (s. S. 57 ) VZV IgG-AK (ggf. IgM) (s. S. 70 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 75 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Toxoplasmose-Sceening (IgG-AK, ggf. IgM-AK) (s. S. 67 ) Abklärung pränataler Infektionen (TORCH, STORCH) Syphilis (T. pallidum) (s. S. 64 ) T oxoplasmose (s. S. 67 ) Others (weitere Erreger, siehe unten) R öteln (s. S. 62 ) C MV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) H erpes simplex Virus Typ 1/2 (s. S. 39 ) Varizella-zoster-Virus (s. S. 70 ) Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCMV) (s. S. 49 ) Listerien (s. S. 48 ) Parvovirus B19 (s. S. 57 ) Enteroviren (z. B. Coxsackie-Virus) (s. S. 26 ) HIV (s. S. 43 ) Borreliose (s. S. 14 ) Pränatale Diagnostik Ansprechpartner für spezielle Fragen: Frau Prof. Enders: 0711/6357-120 Herr Dr. Martin Enders: 0711/6357-117 Fragen zu molekularbiologischen Untersuchungen: Herr Dr. Schalasta: 0711/6357-140 Fragen zum Down-Screening: Herr Dr. Lüthgens: 0711/6357-210 Herr Dr. Alkier: 0711/6357-211 Bei Entnahme nie Heparin benutzen, auch nicht zum Benetzen der Punktionsnadel! Fruchtwasser nie zentrifugieren! Chorionzottenbiopsie (11. - 18. SSW) Biopsie (10 - 20 mg) z.B in RPMI-Medium (ohne Heparin!) oder in steriler 0,9%iger NaCl-Lösung Versand: gekühlt, per Eildienst Fruchtwasser (ab 17. SSW; optimal in SSW 19) Fruchtwasser (10 ml) nativ, in sterilem Röhrchen, nicht zentrifugieren! Versand: gekühlt, per Eildienst Fetalblut (ab 22 - 23. SSW) Fetalblut in EDTA -Röhrchen einsenden Versand: gekühlt, per Eildienst 76 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Fetaler Aszites Punktat (4 - 8 ml) nativ in sterilem Röhrchen versenden Versand: gekühlt, per Eildienst Bei auffälligem Ultraschall (auch nach SSW 23) wie oben beschrieben Präeklampsie-Risiko (sFlt-1/PlGF-Quotient) (s. S. 171 ) ein erhöhter sFlt-1/PlGF-Quotient kann der klinischen Manifestation einer Präeklampsie bis zu 4 Wochen vorausgehen. HELLP-Syndrom Unter dem "HELLP-Syndrom" versteht man eine schwere Verlaufsform der Präeklampsie, die gekennzeichnet ist durch: Klinisch: Oberbauchschmerzen, Übelkeit bzw. Erbrechen, Kopfschmerzen, allgemeines Krankheitsgefühl, arterielle Hypertonie. Laborchemisch: Trias aus Hämolyse (H emolysis), erhöhten Leberwerten (E levated L iver Enzymes) und Thrombozytopenie (L ow P latelets). Auftreten meist bei über 25jährigen Schwangeren zwischen Mitte 2. Trimenon und einigen Tagen nach Geburt, im Median in der 34. SSW. Im Sinne einer effizienten Stufendiagnostik können primär Parameter angefordert werden, die für die Diagnosestellung als Suchtest unverzichtbar sind, da sie das Krankheitsbild definieren (Stufe 1). Zur weiteren Abklärung (zum Beispiel Einschätzung des Schweregrads, Abgrenzung von Differenzialdiagnosen) sind die Parameter der Stufe 2 geeignet. Für ein "HELLP-Labor" bitte in jedem Fall EDTA-Blut und Serum einsenden, für die weiterführende Diagnostik der Stufe 2 (z. B. Verlaufskontrolle bei bereits nachgewiesenem HELLP-Syndrom) auch Urin und gefrorenes Citratplasma. Sinnvolle Laboruntersuchungen: Stufe 1 Blutbild, groß, mit mikroskopischer Differenzierung (s. S. 179 ) Wegweisend sind eine Thrombozytopenie (immer <150.000/µl, meist sogar <100.000) und evtl. der Nachweis von Fragmentozyten im Blutausstrich (in ca. 70 % der Fälle). Die Thrombozytenzählung ist die wichtigste Untersuchung bei V. a. HELLP-Syndrom, sie ermöglicht z. B. die Abgrenzung zur akuten Virushepatitis und zur intrahepatischen Schwangerschafts-Cholestase. Hämatokritwerte über 38 % gelten im Rahmen einer Präeklampsie als prognostisch ungünstig (Hämokonzentration). Haptoglobin im Serum (s. S. 181 ) hoch sensitiver und spezifischer Hämolyse-Marker, bei Hämolyse und damit auch beim HELLP-Syndrom erniedrigt . GOT (AST) im Serum (s. S. 190 ) typischerweise moderat (jedoch meist mehr als 2- bis 3-fach) erhöht. Bitte kein Vollblut, sondern Serum einsenden. GPT (ALT) im Serum (s. S. 191 ) typischerweise moderat (jedoch meist mehr als 2- bis 3-fach) erhöht. LDH im Serum (s. S. 192 ) durch die Hämolyse erhöht auf >600 U/l, allerdings weniger spezifisch als Haptoglobin. Ermöglicht die Abgrenzung zur akuten Schwangerschaftsfettleber, bei der die LDH unter 600 U/l bleibt. Bitte zur Vermeidung falsch-hoher Werte durch in-vitro-Hämolyse unbedingt Serum und kein Vollblut einsenden. Stufe 2 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 77 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Gesamteiweiß-Kreatinin-Quotient im Urin (s. S. 221 ) dient dem Nachweis einer bei Präeklampsie sehr häufig auftretenden Proteinurie (Quotient >100 mg/g Kreatinin), daher auch differenzialdiagnostisch hilfreich. Kann in seltenen Fällen beim HELLP-Syndrom normal sein, bei über 90 % der Patientinnen findet man aber erhöhte Werte. Kreatinin im Serum (s. S. 192 ) zur Erkennung einer z. T. als Komplikation auftretenden Niereninsuffizienz. Aus Serum-Kreatinin, Alter und Geschlecht ist die Abschätzung der glomerulären Filtrationsrate (GFR) anhand der vereinfachten MDRD-Formel möglich. Dazu bitte Kreatinin und "GFR nach vereinfachter MDRD-Formel" anfordern, die Berechnung wird dann von uns automatisiert und kostenlos vorgenommen. gamma-GT im Serum (s. S. 190 ) leicht erhöht oder normal, stark erhöhte Werte sprechen eher für eine intrahepatische Schwangerschafts-Cholestase oder eine akute Schwangerschaftsfettleber. Bilirubin im Serum (s. S. 189 ) Im Vergleich zu Haptoglobin eingeschränkte Sensitivität (ca. 50 %), bildet das Ausmaß einer ausgeprägten Hämolyse aber besser ab. In der frühen Krankheitsphase oft noch normal. Sehr hohe Bilirubin-Konzentrationen sprechen eher gegen ein HELLP-Syndrom, ebenso wie ein hoher Anteil an direktem Bilirubin. Bei erhöhtem Gesamt-Bilirubin bitte ggf. direktes Bilirubin nachfordern. Harnsäure im Serum (s. S. 191 ) Im Gegensatz zur normalen Schwangerschaft (Harnsäure < 5 mg/dl) bei Präeklampsie erhöht, kann das erste Zeichen einer beginnenden Präeklampsie sein. D-Dimere (Citratplasma, gefroren) (s. S. 178 ) in der Regel erhöht. Quick-Wert (s. S. 174 ) zu Beginn der Erkrankung meist normal, in der späten Krankheitsphase oft erniedrigt. Abklärung habitueller Aborte Von diesem Problem (definiert als 3 oder mehr aufeinander folgende Aborte) sind etwa 1 % der Paare mit Kinderwunsch betroffen. Als häufigste Ursachen wurden anatomische Anomalien, Chromosomenaberrationen, Gerinnungsstörungen, Autoimmunerkrankungen und endokrine Dysfunktionen beschrieben. Infektionskrankheiten kommen i.d.R. nicht als Auslöser in Betracht, da sie normalerweise nicht mehrere Aborte verursachen. Empfohlene Laboruntersuchungen: Phospholipid-Antikörper und Lupus-Antikoagulans (s. S. 145 ) Bei etwa 15 % der Frauen mit habituellen Aborten findet sich als Ursache ein Antiphospholipidsyndrom. Da zudem eine evidenzbasierte Therapie zur Verfügung steht, sollte jede Frau mit habituellen Aborten unbedingt auf das Vorliegen eines Antiphospholipidsyndroms untersucht werden. Parameter: Antikörper gegen Phospholipide (Cardiolipin und beta-2-Glykoprotein I) und Lupus-Antikoagulans Material: Serum und gefrorenes Citrat-Plasma Menge: je 0,6 ml Antinukleäre Antikörper (ANA, IFT) (s. S. 129 ) Material: Serum Menge: 0,3 ml Antithrombin-III-Aktivität (s. S. 177 ) Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 0,6 ml 78 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge APC-Resistenz (s. S. 177 ) Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 0,6 ml Bei Ratio < 1,9 zusätzlich Faktor-V-Leiden-Mutationsanalyse zur Bestätigung durchführen (Material: EDTA-Vollblut). Homocystein (s. S. 177 ) Material: EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Serum Menge: 0,2 ml nüchtern abnehmen, nach Gewinnung so schnell wie möglich zentrifugieren und trennen Protein-C-Aktivität (s. S. 176 ) Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 0,6 ml Protein-S-Aktivität (s. S. 176 ) Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 0,6 ml Prothrombin-(Faktor II)-Mutationsanalyse PCR (s. S. 104 ) Material: EDTA-Vollblut Menge: 2 ml Progesteron (s. S. 167 ) Ausschluss einer Lutealinsuffizienz bei rezidivierenden Aborten im 1. Trimenon Material: Serum Menge: 0,5 ml TSH (s. S. 169 ) Ausschluss einer Hypothyreose Material: Serum Menge: 0,5 ml Chromosomenanalyse (F) Bei habituellen Aborten ist eine Chromosomenanalyse beider Partner angezeigt. Bei etwa 4 % der betroffenen Paare wird eine Chromosomenanomalie gefunden. Heparin-Vollblut bei Raumtemperatur lagern und verschicken, weder kühlen noch einfrieren! Material: Heparinblut Menge: 10 ml Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Wochen) Indikation: V. a. Chromosomenstörung, habituelle Aborte, unerfüllter Kinderwunsch u. a. Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 79 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Infektionserreger nach Symptomen Pharyngitis/Angina (Erreger) Eine Vielzahl von Erregern können eine Pharyngitis verusachen. Die wichtigsten Erreger, die wir im Labor nachweisen können, sind hier aufgeführt. RSV (s. S. 60 ) vor allem bei Kleinkindern Adenoviren (s. S. 9 ) Säuglinge, Kinder, seltener Erwachsene Bakterielle Erreger (s. S. 238 ) z. B. Moraxella catarrhalis, Streptokokken Gruppe A, Haemophilus influenzae Influenza-Viren (s. S. 46 ) bei Kindern und Erwachsenen Parainfluenza (s. S. 55 ) bei Kindern und Erwachsenen Chlamydia pneumoniae (s. S. 17 ) bei Jugendlichen und Erwachsenen Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) Herpes-simplex-Virus Typ 1 (s. S. 39 ) bei Kindern, seltener bei Erwachsenen Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 ) Candida albicans (s. S. 17 ) vor allem bei Immunsupprimierten CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) vor allem bei Immunsupprimierten T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 ) Tracheobronchitis, Krupp, Bronchiolitis Haemophilus influenzae (s. S. 32 ) RSV (s. S. 60 ) vor allem bei Kleinkindern Humanes Metapneumovirus (s. S. 45 ) Humanes Bocavirus (s. S. 41 ) Parainfluenza (s. S. 55 ) Bordetella pertussis (s. S. 13 ) Bordetella parapertussis (s. S. 12 ) seltener Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) Chlamydia pneumoniae (s. S. 17 ) bei Jugendlichen und Erwachsenen Adenoviren (s. S. 9 ) Influenza-Viren (s. S. 46 ) 80 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Masern-Virus (s. S. 50 ) C. diphtheriae (s. S. 21 ) Pneumonie (Erreger) Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) Bakterielle Erreger (s. S. 238 ) z. B. Moraxella catarrhalis, Streptokokken Gruppe A, Pneumokokken, Haemophilus influenzae Adenoviren (s. S. 9 ) RSV (s. S. 60 ) vor allem bei Kleinkindern Humanes Metapneumovirus (s. S. 45 ) Humanes Bocavirus (s. S. 41 ) Chlamydia pneumoniae (s. S. 17 ) Chlamydia trachomatis (s. S. 19 ) beim Neugeborenen Influenza-Viren (s. S. 46 ) bei Kindern und Erwachsenen Parainfluenza (s. S. 55 ) Pneumokokken (s. S. 238 ) seltenere Erreger: Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) Masern-Virus (s. S. 50 ) VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 ) Bordetella pertussis (s. S. 13 ) Legionellen (s. S. 47 ) Chlamydophila psitacci (Ornithose) (s. S. 18 ) Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 21 ) Bei Immunsupprimierten Pneumocystis jiroveci (s. S. 239 ) Aspergillus (s. S. 10 ) Candida (s. S. 17 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) Tuberkulose (s. S. 247 ) Gastroenteritis (Erreger) Eine Vielzahl an Krankheitserregern können im Verlauf der Erkrankung eine Gastroenteritis verursachen. Die wichtigsten Erreger, für die es Nachweismethoden gibt, sind hier aufgeführt. Rotaviren (s. S. 61 ) häufiger bei Kleinkindern und Säuglingen Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 81 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Adenoviren (s. S. 9 ) häufiger bei Kleinkindern und Säuglingen Astroviren (s. S. 11 ) häufiger bei Kleinkindern und Säuglingen Calici-Viren (s. S. 54 ) Enteroviren (Coxsackie-ECHO-Viren) (s. S. 26 ) Noro-Viren (s. S. 54 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) bei Immunsupprimierten Virale Hepatitis (s. S. 82 ) Dyspepsie-Coli (s. S. 241 ) bei Kindern unter 7 Jahren Bakterielle Enteritiserreger (s. S. 241 ) Campylobacter, Salmonellen, Yersinien, EHEC Clostridium difficile (s. S. 241 ) nach Antibiotikatherapie (pseudomembranöse Enterokolitis) Clostridium perfringens (s. S. 241 ) Staphylokokken (s. S. 241 ) besonders bei Schulkindern Amöben (s. S. 250 ) nach Auslandsaufenthalt Kryptosporidien (s. S. 254 ) bei Kleinkindern und Immunsupprimierten (gehäuft in den Sommermonaten) Lamblien (s. S. 254 ) Hepatitiden (Erreger) Eine Hepatitis kann als Begleitsymptomatik bei vielen Infektionen auftreten. Die wichtigsten Hepatitiserreger sind hier aufgeführt: Hepatitis A (s. S. 35 ) Hepatitis B (s. S. 35 ) Hepatitis C (s. S. 37 ) Hepatitis E (s. S. 38 ) EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) seltenere Erreger: Adenoviren (s. S. 9 ) Brucellen (s. S. 15 ) Hepatitis D (s. S. 38 ) bei gleichzeitiger Hepatitis B Coxsackie-A-, -B-Viren (s. S. 26 ) Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 21 ) Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 ) 82 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Listerien (s. S. 48 ) Leptospiren (s. S. 48 ) T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 ) Yersinien (s. S. 73 ) Meningitis (Erreger) Coxsackie-B-, ECHO-Viren (s. S. 26 ) Borrelia burgdorferi (s. S. 14 ) Haemophilus influenzae (s. S. 237 ) Meningokokken, Pneumokokken (s. S. 237 ) Mumps-Virus (s. S. 51 ) Listerien (s. S. 48 ) seltenere Erreger: Adenovirus (s. S. 9 ) Coxsackie-A-Viren (s. S. 26 ) EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 ) FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 ) HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 42 ) Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 ) LCM (Lympho-Chorio-Meningitis-Virus) (s. S. 49 ) Tuberkulose (s. S. 247 ) VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) Enzephalomyelitis akut, chronisch (Erreger) Herpes-simplex-Virus Typ 1/2 (s. S. 39 ) FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 ) Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) Masern-Virus (s. S. 50 ) Mumps-Virus (s. S. 51 ) Röteln-Virus (s. S. 62 ) VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) seltenere Erreger: Borrelia burgdorferi (s. S. 14 ) HIV (s. S. 43 ) Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) Leptospiren (s. S. 48 ) Listerien (s. S. 48 ) Treponema pallidum (s. S. 64 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 83 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Toxoplasma gondii (s. S. 67 ) bei Immunsupprimierten HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 42 ) bei Immunsupprimierten Enzephalitis, postinfektiös (Erreger) Masern-Virus (s. S. 50 ) VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) seltenere Erreger: Borrelia burgdorferi (s. S. 14 ) Röteln-Virus (s. S. 62 ) HIV-1 (s. S. 43 ) Toxoplasma gondii (s. S. 67 ) Polyradikulitis (Erreger) Borrelia burgdorferi (s. S. 14 ) Campylobacter (s. S. 16 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 ) FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 ) Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) seltenere Erreger: Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) Influenza-Viren (s. S. 46 ) Masern-Virus (s. S. 50 ) Röteln-Virus (s. S. 62 ) Mumps-Virus (s. S. 51 ) VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) Coxiella burnettii (Q-Fieber) (s. S. 21 ) Paresen (Erreger) Borrelia burgdorferi (s. S. 14 ) Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 ) VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) Brucellen (s. S. 15 ) HIV-1 (s. S. 43 ) Polio-Virus (s. S. 58 ) 84 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 ) Masern-Virus (SSPE) (s. S. 50 ) Coxiella burnettii (Q-Fieber) (s. S. 21 ) Endokarditis (Erreger) Bakterielle Erreger (s. S. 238 ) z. B. Streptokokken, Staphylokokken, Enterokokken Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 21 ) Legionellen (s. S. 47 ) Influenza-Viren (s. S. 46 ) Myokarditis (Erreger) Coxsackie-B-Viren (s. S. 26 ) Influenza-Viren (s. S. 46 ) Parvovirus B19 (s. S. 57 ) seltenere Erreger: Coxsackie-A- und ECHO-Viren (s. S. 26 ) Borrelia burgdorferi (s. S. 14 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) vor allem bei Immunsupprimierten Chlamydia pneumoniae (s. S. 17 ) Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 21 ) Tuberkulose (s. S. 247 ) C. diphtheriae (s. S. 21 ) Mumps-Virus (s. S. 51 ) Adeno-Virus (s. S. 9 ) Exantheme (Erreger) feinfleckig makulopapulös: Röteln-Virus (s. S. 62 ) Masern-Virus (s. S. 50 ) HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 42 ) Streptokokken (s. S. 239 ) Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) Parvovirus B19 (s. S. 57 ) Adenoviren (s. S. 9 ) CMV (Cytomegalie Virus) (s. S. 22 ) EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 ) Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 85 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 ) HHV 7 (Humanes Herpes Virus Typ 7) (s. S. 42 ) Rickettsien (s. S. 61 ) vesikulär: VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 ) Coxsackie-A-Viren (s. S. 26 ) hämorrhagisch: Neben verschiedenen importierten hämorrhagischen Fieberviren der Alpha- und Flaviviren (z.B. Gelbfieber, Dengue), der Bunyavirus-Gruppe und den Filoviren (Marburg-, Ebola-Virus) kommen weitere in Europa verbreitete Erreger in Frage. VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) schwere Verläufe bei Immunsupprimierten und bei Patienten mit ausgeprägter Neurodermitis Masern-Virus (s. S. 50 ) Enterovirus Typ 71 (s. S. 26 ) Rickettsien (s. S. 61 ) Lokalisierte Exantheme (Erreger) Neben den unten genannten Erregern verursachen weitere Viren lokalisierte Exantheme (z. B. Warzen): Papilloma-Viren, Molluscum contagiosum-Virus. Seltener: Melkerknoten-Virus (Rind), Orf-V. (Schaf, Katze), Vesikulo-Stomatitis-V. (Pferd, Rind, Schwein) Borrelia burgdorferi (s. S. 14 ) Erythema migrans, Acrodermatitis chronica atrophicans HSV (Herpes simplex-Virus) (s. S. 39 ) Stomatitis aphthosa, Lippenherpes, Genitalherpes VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) Herpes Zoster (Gürtelrose) Hepatitis B (s. S. 35 ) Gianotti-Crosti-Syndrom (an den Extremitäten) Coxsackie-A-Viren (s. S. 26 ) Hand-Fuß-Mund-Krankheit Lymphadenitis (Erreger) Die wichtigsten (vor allem viralen) Erreger EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) generalisiert, teilweise auch lokal, z.B. cervikal HIV (s. S. 43 ) generalisiert Toxoplasma gondii (s. S. 67 ) generalisiert, auch lokalisiert Röteln-Virus (s. S. 62 ) nuchal, postaurikulär (auch generalisiert) 86 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Brucellen (s. S. 15 ) generalisiert (selten) Mykobakterien (auch atypische Mykobakterien) (s. S. 247 ) generalisiert oder lokalisiert Bartonella henselae (s. S. 11 ) cervical, im Abflussbereich einer Extremität Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) cervical (eher selten) Adenoviren (s. S. 9 ) cervical, abdominal Yersinien (s. S. 73 ) abdominal (Lymphadenitis mesenterialis) Chlamydia trachomatis (s. S. 19 ) inguinal (Lymphogranuloma venereum) HSV Typ 2 (Herpes simplex 2) (s. S. 39 ) inguinal (im Rahmen einer akuten Infektion oder Reaktivierung) T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 ) im Primärstadium lokalisiert (inguinal); im Spätstadium generalisiert N. gonorrhoeae (s. S. 31 ) inguinal (im Rahmen einer Genitalinfektion) Mycoplasma hominis (s. S. 52 ) inguinal (im Rahmen einer Genitalinfektion; selten) Ureaplasma urealyticum (s. S. 70 ) inguinal (im Rahmen einer Genitalinfektion; selten) Lymphadenopathie-Syndrom (Erreger) HIV-1, HIV-2 (s. S. 43 ) HTLV-1, HTLV-2 (s. S. 41 ) EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 ) seltener CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) seltener HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 42 ) seltener (bei Kindern) HHV 7 (Humanes Herpes Virus Typ 7) (s. S. 42 ) Slow-Virus-Krankheiten (Slow Virus Diseases) Masern-Virus (s. S. 50 ) SSPE (Subakut-sklerosierende Panenzephalitis) Röteln-Virus (s. S. 62 ) PRP (Progressive Rötelnpanenzephalitis) HIV-1, HIV-2 (s. S. 43 ) AIDS (aquired immunodeficiency syndrome) Polyoma-(JC)-Virus (s. S. 59 ) PML (Progressive multifokale Leukenzephalopathie) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 87 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Spongiforme Enzephalopathien Prionenerkrankungen wie z.B. BSE, CJD, Kuru Nierenversagen (Erreger) (mit und ohne hämorrhag. Fieber), neben den genannten gibt es noch etliche importierte Infektionserkrankungen als Ursache. Hantaviren (s. S. 32 ) EHEC (s. S. 241 ) Leptospiren (s. S. 48 ) Malaria (s. S. 256 ) Hämorrhagische Zystitis (Erreger) Adenoviren (s. S. 9 ) Polyoma-(BK)-Virus (s. S. 59 ) seltenere Erreger: CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) vor allem bei Immunsupprimierten Schistosomen (s. S. 258 ) Tuberkulose (s. S. 247 ) Penis-/ Vulva-Läsionen (Erreger) Herpes-simplex-Virus Typ 1/2 (s. S. 39 ) Papilloma-Viren (s. S. 54 ) Treponema pallidum (s. S. 64 ) Vulvovaginitis; Zervizitis (Erreger) Bakterielle Erreger (s. S. 243 ) Gardnerella vaginalis (bakterielle Vaginose), Anaerobier, Streptokokken Gruppe B, N. gonorrhoeae, M. hominis, U. urealyticum Chlamydia trachomatis (s. S. 19 ) Candida albicans (s. S. 243 ) Papilloma-Viren (s. S. 54 ) Herpes-simplex-Virus Typ 2 (1) (s. S. 39 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) vor allem bei Imnnunsupprimierten Trichomonas vaginalis (s. S. 261 ) Müdigkeitssyndrom (CFS) Für das chronische Müdigkeitssyndrom werden verschiedene Ursachen diskutiert. Vor Diagnosestellung sollten verschiedene Infektionserkrankungen ausgeschlossen werden, die im Verlauf ein ähnliche Symptomatik auslösen können. CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) Hepatitis B (s. S. 35 ) EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 ) 88 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge HIV (s. S. 43 ) Borrelia burgdorferi (s. S. 14 ) Augenerkrankungen (Erreger) Adenoviren (s. S. 9 ) Keratokonjunktivitis epidemica (auch hämorrhagisch) Bakterielle Erreger (s. S. 244 ) Konjunktivitis (z. B. H. influenzae, Pneumokokken, Streptokokken, Staphylokokken, Gonokokken) Chlamydia trachomatis (s. S. 19 ) Konjunktivitis bei Neugeborenen, seltener auch danach CMV (Cytomegalie Virus) (s. S. 22 ) (Chorio-)Retinitis bei Immunsupprimierten Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) Verschiedene Viren dieser Gruppe verursachen eine hämorrhagische Konjunktivitis bzw. auch Keratitis. Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 ) Konjuktivitis bzw. Keratitis durch HSV Typ 1, seltener HSV Typ 2 Masern-Virus (s. S. 50 ) Konjunktivitis bzw. Keratitis Toxoplasma gondii (s. S. 67 ) (Chorio-)Retinitis bei Immunsupprimierten Toxocara canis (s. S. 260 ) Retinitis VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) Keratitis Arthritiden, Arthralgien (Erreger) Die septische Arthritis ist hier nicht berücksichtigt. Es handelt sich vorwiegend um parainfektiöse und reaktive Arthritiden. Borrelia burgdorferi (s. S. 14 ) Hepatitis B (s. S. 14 ) Parvovirus B19 (s. S. 57 ) Röteln-Virus (s. S. 62 ) Salmonellen (s. S. 63 ) Yersinien (s. S. 73 ) seltenere Erreger: Brucellen (s. S. 15 ) Campylobacter (s. S. 16 ) Chlamydia trachomatis (s. S. 19 ) Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) Shigellen (s. S. 64 ) Mycoplasma hominis (s. S. 52 ) Ureaplasma urealyticum (s. S. 70 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 89 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge N. gonorrhoeae (s. S. 31 ) Pleurodynie (Erreger) Coxsackie-B-Viren (s. S. 17 ) Leptospiren (s. S. 48 ) Myositis (Erreger) Neben der Myositis treten bei vielen Infektionserkrankungen im Verlauf Myalgien auf. Influenza-Viren (s. S. 46 ) Coxsackie-Viren (s. S. 26 ) Trichinen (s. S. 260 ) Leptospiren (s. S. 48 ) Parotitis (Erreger) Mumps-Virus (s. S. 51 ) Adeno-Viren (s. S. 9 ) Epstein-Barr-Virus (EBV) (s. S. 28 ) Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 ) CMV (Cytomegalie Virus) (s. S. 22 ) Parainfluenza-Viren (s. S. 55 ) Pankreatitis (Erreger) Mumps-Virus (s. S. 51 ) Coxsackie-Viren (s. S. 26 ) Orchitis (Erreger) Mumps-Virus (s. S. 51 ) Brucellen (s. S. 15 ) Entero-Viren (s. S. 26 ) 90 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Infektionserreger bei neonatalen Symptomen Kongenitale anatomische Defekte (Fehlbildungen) Röteln-Virus (s. S. 62 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) seltenere Erreger: Toxoplasma gondii (s. S. 67 ) VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) Treponema pallidum (s. S. 64 ) Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCMV) (s. S. 49 ) HSV (Herpes-simplex-Virus) (s. S. 39 ) Mikrozephalie, intrakranielle Verkalkungen CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) Toxoplasma gondii (s. S. 67 ) seltenere Erreger: Röteln-Virus (s. S. 62 ) LCM (Lympho-Chorio-Meningitis-Virus) (s. S. 49 ) HSV (Herpes-simplex-Virus) (s. S. 39 ) HIV (Humanes-Immundefizienz-Virus) (s. S. 43 ) Dystrophie, petechiale Blutungen, Hepatosplenomegalie, Exanthem Röteln-Virus (s. S. 62 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) seltenere Erreger: Toxoplasma gondii (s. S. 67 ) Treponema pallidum (s. S. 64 ) Extremitätenfehlbildungen Hautskarifikation, hypoplastische Gliedmaßen (mit Augen- und ZNS-Auffälligkeiten) VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 ) Sepsis, neonatal, disseminiert (und ähnliche Symptome) Coxsackie-B-Viren Typ 3,4 (s. S. 26 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) Herpes-simplex-Virus Typ 2 (s. S. 39 ) Streptokokken (s. S. 244 ) T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 ) seltenere Erreger: weitere Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 ) Herpes-simplex-Virus Typ 1 (s. S. 39 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 91 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Plasmodium spp. (s. S. 256 ) Listerien (s. S. 48 ) Meningitis / Enzephalitis, neonatal (Erreger) Streptokokken Gruppe B (s. S. 237 ) Listerien (s. S. 48 ) E. coli (s. S. 237 ) Herpes-simplex-Virus Typ 1/ 2 (s. S. 39 ) Toxoplasma gondii (s. S. 67 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) Entero-Viren (s. S. 26 ) seltenere Erreger: Röteln-Virus (s. S. 62 ) T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 ) LCM (Lympho-Chorio-Meningitis-Virus) (s. S. 49 ) Myokarditis, neonatal (Erreger) Coxsackie-B-Viren (s. S. 26 ) Parvovirus B19 (s. S. 57 ) seltenere Erreger: Coxsackie-A- und ECHO-Viren (s. S. 26 ) Röteln-Virus (s. S. 62 ) Konjunktivitis, neonatal (Erreger) Chlamydia trachomatis (s. S. 19 ) N. gonorrhoeae (s. S. 31 ) Streptokokken (s. S. 244 ) seltenere Erreger: Adenoviren (s. S. 9 ) Haemophilus influenzae (s. S. 244 ) (bei Kleinkindern) Pneumonie / Bronchiolitis, neonatal (Erreger) Chlamydia trachomatis (s. S. 19 ) CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) Mycoplasma hominis (s. S. 52 ) Parainfluenza-Virus Typ 3 (s. S. 55 ) RSV (s. S. 60 ) seltenere Erreger: Ureaplasma urealyticum (s. S. 70 ) 92 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge Parainfluenza-Viren Typ 1, 2 (s. S. 55 ) Adenoviren (s. S. 9 ) T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 ) Enteroviren (s. S. 26 ) Enteritis, neonatal, früh postnatal (Erreger) Neben den aufgeführten Erregern kommen eine Vielzahl von Viren und Bakterien in Frage. Rotavirus (s. S. 61 ) Adenoviren (s. S. 9 ) Noro-Viren (s. S. 54 ) seltenere Erreger: Clostridium difficile (s. S. 241 ) Hepatitis / Hepatosplenomegalie, neonatal (Erreger) Neben den genannten Viren, kann eine Begleithepatitis bei verschiedenen Infektionen auftreten. CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 ) Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 ) Toxoplasma gondii (s. S. 67 ) Bakterielle Erreger (s. S. 238 ) z. B. Streptokokken Gruppe B, E. coli, Listerien u. a. seltenere Erreger: Treponema pallidum (s. S. 64 ) Röteln-Virus (s. S. 62 ) Entero-Virus (s. S. 26 ) HIV (Humanes-Immundefizienz-Virus) (s. S. 43 ) Plasmodien spp. (s. S. 256 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 93 Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge 94 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Infektiologie Bei den in der Nukleinsäurediagnostik eingesetzten Techniken nehmen die empfindlichen Nukleinsäure-Amplifikationsverfahren, auch kurz NAT (Nukleinsäure amplifizierende Technik) genannt, eine herausragende Stellung ein. Sowohl die hohe Empfindlichkeit als auch die Komplexität dieser Verfahren (z. B. PCR) sind eine große Herausforderung für das Testlabor. Laborbedingte Probleme in Form falsch positiver oder falsch negativer Ergebnisse, verursacht durch Kontamination oder Inhibition, gehören heute, dank des zunehmenden Einsatzes automatisierter, geschlossener und standardisierter Verfahren sowie geeigneter Kontrollen, weitgehend der Vergangenheit an. Jedoch ist auch die fortschrittlichste Technik auf das richtige Untersuchungsmaterial sowie eine gute Präanalytik angewiesen. Wir bitten daher, nachstehend aufgeführte Punkte unbedingt zu beachten: Untersuchungsproben immer mit Einmalhandschuhen entnehmen und in separate, mit Geburtsdatum, Namen und Vornamen des Patienten beschriftete, sterile Probengefäße einbringen. Das Wiederöffnen dieser Gefäße und Umfüllen ist zu vermeiden. Die Proben sollten bald möglichst verschickt werden. Nicht jedes Untersuchungsmaterial ist geignet! Bitte beachten Sie die im Leistungsverzeichnis unter den jeweiligen Untersuchungsparametern aufgelisteten Untersuchungsmaterialien. Heparin-haltiges Untersuchungsmaterial (z. B. heparinisiertes Blut) ist für die PCR-Analyse ungeeignet. Heparin hemmt die PCR-Reaktion! Dies gilt auch für fetales EDTA-Blut, wenn zur Antikoagulation die Punktionsnadel vor Cordozentese mit Heparin benetzt wurde. * Nach DIN EN ISO 15189 nicht akkreditiert. Viren Adenovirus DNA (PCR) (s. S. 10 ) (Real-Time, qualitativ) BK-(Polyoma)-Virus DNA (PCR) (s. S. 59 ) (Real-Time, qualitativ/quantitativ) Coronaviren (NL63) RNA (RT-PCR) (s. S. 21 ) (Real-Time, qualitativ) Cytomegalieviren DNA (PCR) (s. S. 24 ) (Real-Time, qualitativ/quantitativ) Enteroviren RNA (RT-PCR) (s. S. 27 ) Coxsackie/Echo/Polioviren (Real-Time, qualitativ, Genotypisierung nach Rücksprache) Epstein-Barr-Virus DNA (PCR) (s. S. 29 ) (Real-Time, qualitativ/quantitativ) Erythroviren (siehe Parvoviren) (s. S. 57 ) FSME-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 31 ) (Real-Time, qualitativ) Hepatitis-A-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 35 ) (Real-Time, qualitativ) Hepatitis-B-Virus-DNA (PCR) (s. S. 36 ) (Real-Time, quantitativ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 95 Nukleinsäure-Diagnostik Hepatitis-B-Virus-DNA (PCR) (s. S. 36 ) (Genotypisierung, reverse Hybr.) Hepatitis-B-Virus-DNA (PCR/Sequenzierung) (s. S. 37 ) Surface-Gen / Polymerase-Gen (genotypische Resistenzbestimmung) Hepatitis-C-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 37 ) (Real-Time, qualitativ) Hepatitis-C-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 37 ) (Real-Time, quantitativ) Hepatitis-C-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 37 ) (Genotypisierung, reverse Hybr.) Hepatitis-D-Virus RNA (RT-PCR) (Real-Time, quantitativ) (F) (s. S. 38 ) Hepatitis-E-Virus-RNA (RT-PCR) (s. S. 39 ) (Real-Time, qualitativ) Hepatitis-G-Virus (GBV-C) RNA (RT-PCR) (s. S. 31 ) (Real-Time, qualitativ) Herpes-simplex-Virus Typ 1 DNA (PCR) (s. S. 40 ) (Real-Time, qualitativ) Herpes-simplex-Virus Typ 2 DNA (PCR) (s. S. 40 ) (Real-Time, qualitativ) HIV-1 RNA (RT-PCR) (s. S. 44 ) (Real-Time, quantitativ) HIV-1 Resistenz (RT-PCR / Sequenzierung) (s. S. 44 ) Protease-Gen / RT-Gen (genotypische Resistenzbestimmung) HIV-2 RNA (RT-PCR) (Real-Time, qualitativ) (F) HTLV-1/2 RNA (RT-PCR) (nested, qualitativ) (s. S. 44 ) (F) (s. S. 41 ) Humane Papilloma-Viren DNA (Hybridisierung) (s. S. 55 ) (High-Risk Genotypen, qualitativ) Humane Papilloma-Viren DNA (Hybridisierung) (s. S. 55 ) (Low-Risk Genotypen, qualitativ) Humane Papilloma-Viren DNA (Genotypisierung) PCR (s. S. 55 ) (37 HPV-Genotypen mittels rev. Hybridisierung) Humane Papilloma-Viren RNA (TMA) (s. S. 55 ) (Nachweis der RNA der Onkogene E6/E7 der 14 gängigsten High-Risk HPV-Typen) Humanes Bocavirus DNA (PCR) (s. S. 41 ) (Real-Time, qualitativ) Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV 6) DNA (PCR) (s. S. 42 ) (Real-Time, qualitativ/quantitativ) Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV 7) DNA (PCR) (s. S. 43 ) (Real-Time, qualitativ) Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV 8) DNA (PCR) (s. S. 43 ) (Real-Time, qualitativ) 96 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Humanes Metapneumovirus RNA (RT-PCR) (s. S. 45 ) (Real-Time, qualitativ) Influenzavirus RNA (RT-PCR) (s. S. 46 ) Typen A/B (Real-Time, qualitativ) JC-(Polyoma)-Virus DNA (PCR) (s. S. 59 ) (Real-Time, qualitativ/quantitativ) Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCM) RNA (RT-PCR)* (s. S. 49 ) (DIG-ELISA, qualitativ) Masern-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 51 ) (Real-Time, qualitativ) Mumps-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 52 ) (Real-Time, qualitativ) Noroviren RNA (RT-PCR) (s. S. 54 ) vormals Norwalk-like-Viren (Real-Time, qualitativ) Parainfluenza-Virus Typ 3 RNA (RT-PCR) (s. S. 56 ) (Real-Time, qualitativ) Parechovirus RNA (RT-PCR) (s. S. 56 ) (Real-Time, qualitativ) Parvovirus B19 DNA (PCR) (s. S. 187 ) Humane Erythroviren Genotypen 1-3 (Real-Time, qualitativ/quantitativ, Genotypisierung nach Rücksprache) Polyomaviren (siehe BK bzw. JC) (s. S. 59 ) Respiratory Syncytial-Virus (RSV) RNA (RT-PCR) (s. S. 60 ) (Real-Time, qualitativ) Rhinoviren RNA (RT-PCR) (s. S. 187 ) (Real-Time, qualitativ) Rubellavirus RNA (RT-PCR) (s. S. 63 ) (Real-Time, quantitativ) Rotavirus RNA (RT-PCR) (s. S. 62 ) Varizella-Zoster-Virus DNA (PCR) (s. S. 72 ) (Real-Time, qualitativ, Differenzierung Impf/Wildvirus) West-Nil-Virus RNA (RT-PCR) (Real-Time qualitativ) (F) (s. S. 73 ) Bakterien Atypische Mykobakterien DNA (PCR) (F) (s. S. 247 ) Bartonellen DNA (PCR) (s. S. 12 ) B. henselae/quintana (Real-Time, qualitativ) Bordetellen DNA (PCR) (s. S. 13 ) B. pertussis/parapertussis (Real-Time, qualitativ) Borrelien DNA (PCR) (s. S. 15 ) B. burgdorferi sensu stricto, B. garinii, B. afzelii (Real-Time, qualitativ) Chlamydia trachomatis RNA (TMA) (s. S. 20 ) (Real-Time, qualitativ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 97 Nukleinsäure-Diagnostik Clostridium difficile (Toxin A + B) DNA (PCR) (s. S. 242 ) (Real-Time, qualitativ) Chlamydia pneumoniae DNA (PCR) (s. S. 18 ) (Real-Time, qualitativ) Chlamydophila psittaci DNA (PCR) Real-Time, qualitativ) Ehrlichien DNA (PCR) (Real-Time, qualitativ) (F) (F) (s. S. 19 ) (s. S. 26 ) Helicobacter pylori DNA (PCR) (s. S. 246 ) (Real-Time, qualitativ, Bestimmung der Clarythromycin-Resistenz) Legionellen DNA (PCR) (s. S. 47 ) L. pneumophila (Real-Time, qualitativ) Leptospiren DNA (PCR) (Real-Time, qualitativ) (F) (s. S. 48 ) Listerien DNA (PCR) (s. S. 49 ) L. monocytogenes (Real-Time, qualitativ) MRSA DNA (PCR) (s. S. 263 ) Direktnachweis über mecA-Gen(reverse Hybr., qualitativ) Mycoplasma genitalium DNA (PCR)* (s. S. 53 ) (Real-Time, qualitativ) Mycoplasma hominis DNA (PCR) (s. S. 52 ) (Real-Time, qualitativ) Mycoplasma pneumoniae DNA (PCR) (s. S. 247 ) (Real-Time, qualitativ) Mykobakterien DNA (PCR) (s. S. 247 ) atyp. Mykobakterien und TB-Komplex zur Kulturbestätigung (reverse Hybr., qualitativ) Mykobakterien DNA (SDA) (s. S. 247 ) Tuberkulose-Komplex, Direktnachweis (Real-Time, qualitativ) Neisserien RNA (TMA) (s. S. 32 ) N. gonorrhoeae (Real-Time, qualitativ) Parodontopathogene Keime DNA (PCR) (s. S. 243 ) (reverse Hybr., qualitativ) Treponemen DNA (PCR) (s. S. 66 ) T. pallidum (Real-Time, qualitativ) Tropheryma whipplei DNA (PCR) (F) (s. S. 70 ) Morbus Whipple (Real-Time, qualitativ) Ureaplasmen DNA (PCR) (s. S. 70 ) U.urealyticum (Real-Time, qualitativ) Protozoen, Pilze Babesien DNA (PCR) (Real-Time, qualitativ) (F) (s. S. 251 ) Cryptococcus neoformans DNA (PCR) (nested, qualitativ), Fremdleistung Leishmanien DNA (PCR) (Real-Time, qualitativ) 98 (F) (F) (s. S. 237 ) (s. S. 255 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Pneumocystis jiroveci (vormals: P. carinii) DNA (PCR)* (s. S. 58 ) (Real-Time, qualitativ) Toxoplasmose DNA (PCR) (s. S. 69 ) T. gondii (Real-Time, qualitativ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 99 Nukleinsäure-Diagnostik Molekulargenetik Nach dem Gendiagnostikgesetz ist für alle molekulargenetischen Untersuchungen eine Einwilligungserklärung notwendig. Es soll auf die für die Durchführung genetischer Beratungen in Zusammenhang mit genetischen Untersuchungen ab 01.02.2012 erforderliche spezielle Qualifikation zur fachgebundenen genetischen Beratung gemäß GEKO-Richtlinie hingewiesen werden. Adenosinmonophosphat-Desaminase-Mangel OMIM: 102770 Gen: AMPD1 (C34T) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Belastungsmyopathie Adenosinmonophosphat-Desaminase 1 (Pharmakogen.) (s. S. 106 ) alpha-1-Antitrypsin-Defizienz OMIM: 107400 Gen: AAT1 (M/S/Z-Allel) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Abklärung eines alpha-1-Antitrypsin-Mangels Angiotensin-Converting-Enzym-Gen OMIM: 106180 Gen: ACE (Ins/Del-Polymorphismus) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + RFLP Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: diabetische Nephropathie, koronare Herzerkrankung, Therapie mit ACE-Hemmern Apolipoprotein B-Genotypisierung OMIM: 107730 Gen: ApoB (R3500Q, rs5742904; R3531C, rs12713559) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Abklärung einer Hypercholesterinämie, V. a. Familiär defektes Apolipoprotein B-100 (FDB) Apolipoprotein E-Genotypisierung OMIM: 107741 Gen: ApoE (E2/E3/E4) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Abklärung einer kombinierten Hyperlipidämie, V. a. Typ III-Hyperlipoproteinämie (Familiäre Dysbetalipoproteinämie) 100 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik BCR/ABL-Translokation (PCR) (F) OMIM: 151410 Gen: BCR/ABL-Fusionsgen Material: EDTA-Blut, innerhalb von 24 h im Labor Menge: 7 ml Methode: PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Nachweis der BCR/ABL-Translokation (in über 90% der Fälle von chronisch-myeloischer Leukämie positiv), der molekulargenetischen Entsprechung des Philadelphia-Chromosoms ß-Thalassämie / ß-Hämoglobinstrukturvarianten OMIM: 141900 Gen: HBB [ß-Globin] (Exon 1- 3) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Thalassämie / Hämoglobinopathie Chromosomenanalyse / Zytogenetik (F) (s. S. 79 ) Familiäres Mittelmeerfieber (FMF) OMIM: 249100 Gen: Pyrin [MEFV] (alle 10 Exons) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: rekurrierendes Fieber, Bauchschmerzen, V. a. Familiäres Mittelmeerfieber, familiäre Belastung Gestationsdiabetes, MODY2 OMIM: 125851 Gen: GCK (rs1799884) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + RFLP Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Gestationsdiabetes, persistierende, milde Hyperglykämie Hämochromatose OMIM: 235200 Gen: HFE (H63D, C282Y) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: bei Bedarf Indikation: deutlich erhöhte Ferritin-Werte, V. a. Hämochromatose, familiäre Belastung Hereditäre Fructose-Intoleranz OMIM: 229600, 612724 Gen: ALDOB [Aldolase] (Exon 2 - 9, Stufendiagnostik) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Fructose-Intoleranz bei z. B. Hypoglykämie nach Fructose-Einnahme, Gedeihstörungen Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 101 Nukleinsäure-Diagnostik HLA-Genotypisierung HLA Klasse I-Antigene (A, B, C) (F) Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: bei Bedarf Indikation: molekulare HLA-Typisierung, HLA-Assoziation mit bestimmten Krankheiten HLA-A*31:01 (Carbamazepin Überempfindlichkeit) (s. S. 108 ) HLA-B*27 (Morbus Bechterew / Spondylitis ankylosans) (s. S. 102 ) HLA-B*51 (Morbus Behcet) (s. S. 103 ) HLA-B*57:01 (Abacavir Überempfindlichkeit) (s. S. 108 ) HLA Klasse II-Antigene (DR, DQ) (F) Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: bei Bedarf Indikation: molekulare HLA-Typisierung, HLA-Assoziation mit bestimmten Krankheiten HLA-DQ2/DQ8 (Zöliakie) (s. S. 105 ) HLA-DQB1*06:02 (Narkolepsie) (s. S. 103 ) HLA-DQB1*06:02 (Pharmakogenetik) (s. S. 108 ) Rheumatoides Epitop (HLA-DR-Subtypisierung) (F) "shared epitope" OMIM: 142857 Gen: HLA-DRB1 Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: bei Bedarf Indikation: Nachweis des rheumatoiden Epitopes bei Patienten mit rheumatischer Arthritis als prognostischer Marker für den Verlauf und die Schwere der Erkrankung Lactose-Intoleranz OMIM: 223100 Gen: LCT [Lactase] (C-13910T, G22018A) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: 2 x pro Woche Indikation: V. a. Lactoseintoleranz bei z. B. abdominellen Schmerzen, Übelkeit und Meteorismus, oder bei auffälligem Lactose-Toleranztest. Morbus Bechterew / Spondylitis ankylosans OMIM: 142830 Gen: HLA-B Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Morbus Bechterew, Assoziation mit HLA-B*27 102 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Morbus Behcet OMIM: 109650 Gen: HLA-B Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Morbus Behcet, Assoziation mit HLA-B*51 Morbus Meulengracht (Gilbert-Syndrom) OMIM: 191740 Gen: UGT1A1 (*28 = TA6/7) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: unkonjugierte Hyperbilirubinämie UDP-Glucuronosyltransferase 1A1 (Pharmakogenetik) (s. S. 110 ) Narkolepsie OMIM: 604305 Gen: HLA-DQB1 Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Narkolepsie, Assoziation mit HLA-DQB1*06:02 HLA-DQB1*06:02 (Pharmakogenetik) (s. S. 108 ) Parodontitis-Risiko / Entzündungsneigung Interleukin 1A OMIM: 147760 Gen: IL1A (C-889T) Material: EDTA-Blut, Wangenschleimhaut-Abstrich Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Bestimmung der IL1-vermittelten Entzündungsneigung / Parodontitis-Risikotest Interleukin 1B OMIM: 147720 Gen: IL1B (C+3953T) Material: EDTA-Blut, Wangenschleimhaut-Abstrich Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Bestimmung der IL1-vermittelten Entzündungsneigung / Parodontitis-Risikotest Interleukin-1-Rezeptorantagonist OMIM: 147679 Gen: IL1RN (T+2018C) Material: EDTA-Blut, Wangenschleimhaut-Abstrich Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Bestimmung der IL1-vermittelten Entzündungsneigung / Parodontitis-Risikotest Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 103 Nukleinsäure-Diagnostik Rhesus weak D OMIM: 111680 Gen: Rhesus D Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: molekulargenetische Rhesus-Typisierung bei unklaren serologischen Befunden Thrombophiliediagnostik Faktor V-Leiden OMIM: 227400 Gen: Koagulationsfaktor V (A506G) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: 2 x pro Woche Indikation: Thrombophilie-Abklärung, familiäre Belastung, nachgewiesene APC-Resistenz Methylentetrahydrofolat-Reduktase OMIM: 236250 Gen: MTHFR (C677T) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: bei Bedarf Indikation: Abklärung einer Hyperhomocysteinämie, familiäre Belastung Methylentetrahydrofolat-Reduktase (Pharmakogenetik) (s. S. 109 ) Plasminogen-Aktivator-Inhibitor 1 (PAI-1) OMIM: 173360 Gen: PAI-1 (4G/5G) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: bei Bedarf Indikation: bei Auftreten vermehrter thrombo-embolischer Ereignisse und V. a. erhöhte PAI-1-Aktivität Prothrombin (Faktor II) OMIM: 176930 Gen: Koagulationsfaktor II [Prothrombin] (G20210A) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: 2 x pro Woche Indikation: Thrombophilie-Abklärung, familiäre Belastung Tumornekrosefaktor alpha-Genotyp OMIM: 191160 Gen: TNFalpha (Promotor) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Entzündungsbereitschaft Tumornekrosefaktor alpha (Pharmakogenetik) (s. S. 110 ) 104 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Zöliakie OMIM: 212750 Gen: HLA-DQA1, HLA-DQB1 Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. oder Ausschluss von Zöliakie, familiäre Belastung, bei fraglicher Serologie, Assoziation mit HLA-DQ2/DQ8 Zystische Fibrose (Mukoviszidose) OMIM: 602421 Gen: CFTR (Stufendiagnostik: Sequenzierung Exon 11, weitere 28 krankheitsverursachende Mutationen + CFTRdele2,3(21kb)) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Mukoviszidose, familiäre Belastung Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 105 Nukleinsäure-Diagnostik Pharmakogenetik und weitere prognostische Therapie-Marker Nach dem Gendiagnostikgesetz ist für alle pharmakogenetischen Untersuchungen eine Einwilligungserklärung notwendig. Es soll auf die für die Durchführung genetischer Beratungen in Zusammenhang mit genetischen Untersuchungen ab 01.02.2012 erforderliche spezielle Qualifikation zur fachgebundenen genetischen Beratung gemäß GEKO-Richtlinie hingewiesen werden. Adenosinmonophosphat-Desaminase 1 OMIM: 102770 Gen: AMPD1 (C34T) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Methotrexat-Therapie Adenosinmonophosphat-Desaminase-Mangel (s. S. 100 ) AICAR-Transformylase / IMP-Cyclohydrolase OMIM: 601731 Gen: ATIC (C347G) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Methotrexat-Therapie Cytochrom P450 1A1 OMIM: 108330 Gen: CYP1A1 (*2A, *2B, *2C) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + RFLP Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Exposition zu polyzyklischen aromatischen Kohlenwasserstoffen, Benzopyrenen Cytochrom P450 1A2 OMIM: 124060 Gen: CYP1A2 (*1C, *1F) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + RFLP Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Antidepressiva, Antipsychotika; Organophosphate-Exposition Cytochrom P450 2B6 OMIM: 123930 Gen: CYP2B6 (*6) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Efavirenz, Nevirapin; Organophosphate-Exposition 106 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Cytochrom P450 2C19 OMIM: 124020 Gen: CYP2C19 (*2, *3, *7, *10, *17) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Clopidogrel, Antidepressiva, Benzodiazepinen, Antiepileptika, Protonenpumpeninhibitoren Cytochrom P450 2C8 OMIM: 601129 Gen: CYP2C8 (*3) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Paclitaxel, Ibuprofen, Amodiaquin Cytochrom P450 2C9 OMIM: 601130 Gen: CYP2C9 (*2, *3) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Cumarin-Derivaten, Antidepressiva, Antiepileptika, nicht-steroidalen Antirheumatika Cytochrom P450 2D6 OMIM: 124030 Gen: CYP2D6 (Stufendiagnostik) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Tamoxifen, Antidepressiva, Neuroleptika, Betablockern, Antiarrhythmika Cytochrom P450 3A5 OMIM: 605325 Gen: CYP3A5 (*3) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Tacrolimus, Sirolimus, Efavirenz, Nevirapin, Saquinavir, Flunitrazepam, Midazolam, Nordiazepam Dihydropyrimidin-Dehydrogenase OMIM: 612779 Gen: DPD (Exon 14 Skipping-Mutation) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit 5-Fluorouracil, Capecitabin Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 107 Nukleinsäure-Diagnostik FSH-Rezeptor OMIM: 136435 Gen: FSHR (N680S) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + RFLP Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: FSH-Sensitivität, ovarielles Hyperstimulationssyndrom bei IVF HLA-A*31:01 OMIM: 608579 Gen: HLA-A Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Carbamazepin HLA-B*57:01 OMIM: 142830 Gen: HLA-B Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Abacavir, Flucloxacillin HIV-Diagnostik (s. S. 43 ) HLA-DQB1*06:02 OMIM: 604305 Gen: HLA-DQB1 Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Allel-spezifische PCR Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Amoxicillin + Clavulansäure HLA-Genotypisierung (s. S. 102 ) Inosin-Triphosphatase OMIM: 147520 Gen: ITPA (rs1127354, rs7270101) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Methotrexat, Ribavirin Hepatitis-C-Diagnostik (s. S. 37 ) Interleukin 28B OMIM: 607402 Gen: IL28B (rs12979860) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit pegIFN-alpha + Ribavirin 108 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Hepatitis-C-Diagnostik (s. S. 37 ) IP-10 Interferon-gamma inducible Protein 10 kDa (CXCL10) Material: Serum Menge: 2 ml Methode: ELISA Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit pegIFN-alpha + Ribavirin Hepatitis-C-Diagnostik (s. S. 37 ) Methylentetrahydrofolat-Dehydrogenase 1 OMIM: 172460 Gen: MTHFD1 (G1958A) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Methotrexat-Therapie Methylentetrahydrofolat-Reduktase OMIM: 607093 Gen: MTHFR (C677T) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Methotrexat-Therapie, Hyperhomocysteinämie Methylentetrahydrofolat-Reduktase (Thrombophiliediagn.) (s. S. 104 ) Multi-Drug-Resistance 1 (P-Glykoprotein) OMIM: 171050 Gen: MDR1 [ABCB1] (C3435T) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit HIV-Proteasehemmern, NNRTI, Anthracyclinen, Taxanen, Vincaalkaloiden, Clopidogrel N-Acetyltransferase 2 OMIM: 612182 Gen: NAT2 (G191A, C282T, T341C, C481T, G590A, A803G, G857A) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + reverse Hybridisierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Isoniazid, Sulfonamiden, Procainamid, Hydralazin, Clonazepam, Nitrazepam Paraoxonase 1 OMIM: 168820 Gen: PON1 (Q192R, L55M) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Clopidogrel, Organophosphate-Exposition Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 109 Nukleinsäure-Diagnostik Thiopurin-Methyltransferase OMIM: 187680 Gen: TPMT (*2, *3A, *3B, *3C) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Azathioprin, 6-Mercaptopurin, 6-Thioguanin Tumornekrosefaktor alpha OMIM: 191160 Gen: TNFalpha (Promotor) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Sequenzierung Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit TNFalpha-Inhibitoren Tumornekrosefaktor alpha-Genotyp (s. S. 104 ) UDP-Glucuronosyltransferase 1A1 OMIM: 191740 Gen: UGT1A1 (*28 = TA6/7) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Irinotecan-Therapie, Morbus Meulengracht Morbus Meulengracht (Gilbert-Syndrom) (s. S. 103 ) uPA / PAI-1 (Urokinase-Typ Plasminogen Aktivator, Plasminogen Aktivator Inhibitor-1) Material: Gewebe Menge: 0,2 g Methode: ELISA Ansatz: 2 x pro Woche Indikation: tumorbiologische Prognosemarker für die Therapie des nodal-negativen Mammakarzinoms Vitamin K-Epoxidreduktase OMIM: 608547 Gen: VKORC1 (G-1639A, G3730A) Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Therapie mit Cumarin-Derivaten 110 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Arzneimittelrelevante pharmakogenetische Diagnostik Die folgende Liste stellt einen Überblick über Proteine dar, die an der Absorption, der Biotransformation, der Wirksamkeit am Wirkort, dem Abbau sowie an der Ausscheidung von Medikamenten beteiligt sind (nur Proteine, für die eine pharmakogenetische Diagnostik vorhanden ist, sind aufgeführt. Diese sind alphabetisch und nicht nach ihrer Wichtigkeit angeordnet). Die Beteiligung der für jede Substanz aufgeführten Proteine an der Metabolisierung ist jedoch durch das Vorhandensein von Haupt- und sekundären Stoffwechselwegen sehr verschieden und die funktionelle Relevanz ihrer genetischen Polymorphismen für das Therapieansprechen kann erheblich variieren. Deshalb empfehlen wir unter Beachtung von klinischem Bild, Komorbiditäten, Komedikationen und Lebensstil eine Stufendiagnostik, die für jeden Patienten individualisiert erfolgen soll. Analgetika Acetaminophen (Paracetamol): CYP1A2, UGT1A1 Acetylsalicylsäure: CYP2C9 (Dihydro)Codein: CYP2D6 Hydrocodon: CYP2D6 Morphin: CYP2D6 Oxycodon: CYP2D6 Phenacetin: CYP1A2, CYP2D6 Tilidin: CYP2C19 Tramadol: CYP2D6 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 ) Antiarrhythmika Ajmalin: CYP2D6 Amiodaron: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6 Diltiazem: CYP2C9, CYP2D6, MDR1 Encainid: CYP2D6 Flecainid: CYP2D6 Mexiletin: CYP1A2, CYP2D6 Prajmalin: CYP2D6 Procainamid: NAT2 Propafenon: CYP1A2, CYP2D6 Quinidin (Chinidin): CYP2D6 Spartein: CYP2D6 Verapamil: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, MDR1 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 111 Nukleinsäure-Diagnostik Antiasthmatika Koffein: CYP1A2, NAT2 Montelukast: CYP2C9 Theobromin: CYP1A2 Theophyllin: CYP1A2 Zafirlukast: CYP2C9 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 ) Antibiotika Amoxicillin + Clavulansäure: HLA-DQB1*06:02 Cephazolin: MDR1 Clarithromycin: CYP2C19, CYP2C9 Dapson: CYP2C19, CYP2C9, NAT2 Erythromycin: CYP2C19, CYP2C9 Flucloxacillin: HLA-B*57:01 Isoniazid: NAT2 Rifamp(ic)in: NAT2 Sulfamethoxazol: CYP2C9, NAT2 Sulfonamide: NAT2 Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) HLA-B*57:01-Analyse (s. S. 108 ) HLA-DQB1*06:02-Analyse (s. S. 108 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 ) Antidepressiva Amitriptylin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1 Atomoxetin: CYP2D6 Bupropion: CYP2B6 Citalopram: CYP2C19, CYP2D6, MDR1 Clomipramin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6 Desipramin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6 Desmethylcitalopram: CYP2D6 Doxepin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Duloxetin: CYP1A2, CYP2D6 Escitalopram: CYP2C19, CYP2D6 Fluoxetin: CYP2B6, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Fluvoxamin: CYP1A2, CYP2D6 Imipramin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Maprotilin: CYP1A2, CYP2D6 Mianserin: CYP1A2, CYP2D6 Minaprin: CYP2D6 Mirtazapin: CYP1A2, CYP2C8, CYP2C9, CYP2D6 Moclobemid: CYPC19, CYP2C9, CYP2D6 Nefazodon: CYP2D6 Norclomipramin: CYP2D6 Nordoxepin: CYP2D6 Norfluoxetin: CYP2D6 Nortriptylin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6 Opipramol: CYP2D6 Paroxetin: CYP2D6, MDR1 Protriptylin: CYP2D6 112 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Sertralin: CYP2B6, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Trazodon: CYP2D6 Trimipramin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Venlafaxin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2B6-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) Antidiabetika Glibenclamid (Glyburid): CYP2C9 Gliclazid: CYP2C19, CYP2C9 Glimepirid: CYP2C9 Glipizid: CYP2C9 Nateglinid: CYP2C9 Phenformin: CYP2D6 Tolbutamid: CYP2C19, CYP2C9 Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Antiemetika Dolasetron: CYP2D6 Dronabinol: CYP2C19, CYP2C9 Metoclopramid: CYP2D6 Ondansetron : CYP1A2, CYP2D6 Tropisetron: CYP2D6 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Antiepileptika Carbamazepin: CYP1A2, CYP2B6, CYP2C19, CYP2C8, CYP2C9, HLA-B*15:02, HLA-A*31:01 (Me)Phenytoin: CYP2C19, CYP2C9, MDR1 Methylphenobarbital (Mephobarbital): CYP2C19 Oxcarbazepin: CYP2C19 Phenobarbital: CYP2B6, CYP2C9, CYP2C19 Primidon: CYP2C19, CYP2C9 Topiramat: CYP2C19 Valproinsäure: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2B6-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 113 Nukleinsäure-Diagnostik Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) HLA-Genotypisierung (s. S. 102 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) Antihistaminika Azelastin: CYP1A2, CYP2D6 Chlorpheniramin: CYP2D6 Diphenhydramin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Fexofenadin: MDR1 Hydroxyzin: CYP2D6 Loratadin: CYP2D6 Promethazin: CYP2D6 Ranitidin: MDR1 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) Antihypertonika Alprenolol: CYP2D6 Bisoprolol: CYP2D6 Bufuralol: CYP2D6 Captopril: CYP2D6 Carvedilol: CYP1A2, CYP2C9, CYP2D6, MDR1 Celiprolol: MDR1 Debrisoquin: CYP2D6 (Di)Hydralazin: NAT2 Indoramin: CYP2D6 Irbesartan: CYP2C9 Labetalol: CYP2D6 Losartan: CYP2C9, MDR1 Metoprolol: CYP2D6 Nebivolol: CYP2D6 Nicardipin: CYP1A2, CYP2D6, MDR1 Penbutolol: CYP2D6 Pindolol: CYP2D6 Propranolol: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6 Talinolol: MDR1 Timolol: CYP2D6 Torasemid: CYP2C9 Urapidil: CYP2D6 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 ) 114 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Antikoagulantien / Thrombozytenhemmer Acenocoumarol: CYP2C9, VKORC1 Clopidogrel: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, MDR1, PON1 Phenprocoumon: CYP2C9, VKORC1 Ticlopidin: CYP2C19, CYP2D6 Warfarin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, VKORC1 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) Paraoxonase 1-Analyse (s. S. 109 ) Vitamin K-Epoxidreduktase-Analyse (s. S. 110 ) Antimykotika Itraconazol: MDR1 Posaconazol: MDR1 Terbinafin: CYP1A2,CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Voriconazol: CYP2C19, CYP2C9 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) Hormone Desogestrel: CYP2C19, CYP2C9 Estradiol: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Ethinylestradiol: CYP1A2, CYP2C19, CYP3A5 Hydrocortison (Cortisol): CYP2D6 Progesteron: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Steroidhormone: MDR1 Testosteron: CYP2C19, CYP2C9 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) Immunsuppressiva Azathioprin: TPMT Ciclosporin: MDR1 Everolimus: MDR1 Sirolimus: CYP3A5, MDR1 Tacrolimus: CYP3A5, MDR1 Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 115 Nukleinsäure-Diagnostik Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) Thiopurin-Methyltransferase-Analyse (s. S. 110 ) Muskelrelaxantien / Anästhetika / Narkotika Carisoprodol: CYP2C19 Cyclobenzaprin: CYP1A2, CYP2D6 Hexobarbital: CYP2C19, CYP2C9 Lidocain: CYP1A2, CYP2C9, CYP2D6 Propofol: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, UGT1A1 Ropivacain: CYP1A2, CYP2D6 Tizanidin: CYP1A2 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 ) Neuroleptika Aripiprazol: CYP2D6, MDR1 Chlorpromazin: CYP1A2, CYP2D6, MDR1 Clozapin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1 Flupentixol: CYP2D6 Fluphenazin: CYP1A2, CYP2D6 Haloperidol: CYP1A2, CYP2D6 Levomepromazin: CYP2D6 Norclozapin: CYP1A2 Olanzapin: CYP1A2, CYP2D6, MDR1 Perazin: CYP2D6 Perphenazin: CYP1A2, CYP2C9, CYP2D6 Pimozid: CYP1A2, CYP2D6 Quetiapin: CYP2D6 Remoxiprid: CYP2D6 Risperidon: CYP2D6, MDR1 Sertindol: CYP2D6 Thioridazin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6 Trifluperidol: CYP2D6 Zotepin: CYP1A2 Zuclopentixol: CYP2D6 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) 116 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Nicht-steroidale Antirheumatika Celecoxib: CYP2C9 Diclofenac: CYP2C9 Flurbiprofen: CYP2C9 Ibuprofen: CYP2C19, CYP2C8, CYP2C9 Indometacin: CYP2C19, CYP2C9 Lornoxicam: CYP2C9 Meloxicam: CYP2C9 Naproxen: CYP1A2, CYP2C9 Piroxicam: CYP2C9 Suprofen: CYP2C9 Tenoxicam: CYP2C9 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Onkologie 5-Fluorouracil: DPD, MTHFR 6-Mercaptopurin: TPMT 6-Thioguanin: TPMT Anthrazykline: MDR1 Capecitabin: DPD Cyclophosphamid: CYP2C19, CYP2C9 Daunomycin: MDR1 Doxorubicin: MDR1 Etoposide: MDR1 Flutamid: CYP1A2 Imatinib: MDR1 Irinotecan: MDR1, UGT1A1 Lapatinib: HLA-DQA1*02:01 Methotrexat: AMPD1, ATIC, ITPA, MTHFD1, MTHFR Nilotinib: UGT1A1 Nilutamid: CYP2C19 Paclitaxel: CYP2C8, MDR1 Tamoxifen: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Teniposid: CYP2C19 Vinblastin: MDR1 Vinca-Alkaloide: MDR1 Vincristin: CYP3A5, MDR1 AICAR-Transformylase/IMP-Cyclohydrolase-Analyse (s. S. 106 ) AMP-Desaminase 1-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 ) Dihydropyrimidin-Dehydrogenase-Analyse (s. S. 107 ) HLA-Genotypisierung (s. S. 102 ) Inosin-Triphosphatase-Analyse (s. S. 108 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 117 Nukleinsäure-Diagnostik Methylentetrahydrofolat-Dehydrogenase-Analyse (s. S. 109 ) Methylentetrahydrofolat-Reduktase-Analyse (s. S. 109 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) Thiopurin-Methyltransferase-Analyse (s. S. 110 ) UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 ) Protonenpumpenhemmer Esomeprazol: CYP2C19 Lansoprazol: CYP2C19 Omeprazol: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Pantoprazol: CYP2C19 Rabeprazol: CYP2C19 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Statine Atorvastatin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1, UGT1A1 Fluvastatin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, UGT1A1 Lovastatin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1, UGT1A1 Rosuvastatin: CYP2C19, CYP2C9 Simvastatin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1, UGT1A1 Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 ) Tranquillantia / Anxiolytika Bromazepam: CYP1A2 Chordiazepoxid: CYP1A2 Clobazam: CYP2C19 Clonazepam: NAT2 Diazepam: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9 Flunitrazepam: CYP2C19, CYP3A5 Midazolam: CYP3A5 Nitrazepam: CYP2C19, NAT2 Norclobazam: CYP2C19 Nordiazepam: CYP1A2, CYP2C19, CYP3A5 Prazepam: CYP2C19 Zolpidem: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6 Zopiclon: CYP2C8, CYP2C9 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) 118 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Nukleinsäure-Diagnostik Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 ) N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 ) Virostatika Abacavir: HLA-B*57:01 Amprenavir: MDR1, UGT1A1 Atazanavir: MDR1, UGT1A1 Delavirdin: CYP2D6 Didanosin: UGT1A1 Efavirenz: CYP2B6, CYP3A5, HLA-DRB1*01:01, MDR1 Indinavir: CYP2D6, MDR1, UGT1A1 Lamivudin: UGT1A1 Nelfinavir: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1 Nevirapin: CYP2B6, CYP2C9, CYP2D6, CYP3A5, MDR1, UGT1A1 Ribavirin: ITPA Ribavirin + pegINF-alpha: IL28B Ritonavir: CYP1A2, CYP2D6, MDR1 Saquinavir: CYP3A5, MDR1 Stavudin: UGT1A1 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2B6-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 ) HLA-B*57:01-Analyse (s. S. 108 ) HLA-Genotypisierung (s. S. 102 ) Inosin-Triphosphatase-Analyse (s. S. 108 ) Interleukin 28B-Analyse (s. S. 108 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 ) Weitere Medikamente Allopurinol: HLA-B*58:01 Amodiaquin: CYP2C8 (Met)Amphetamin: CYP2D6 Benzatropin: CYP2D6 Dextromethorphan: CYP2D6 Digoxin: MDR1 Donepezil: CYP2D6 Etanercept: TNF-alpha Flunarizin: CYP2D6 Galantamin: CYP2D6 Methadon: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1 Methylphenidat: CYP2D6 Modafinil: CYP2C19 Proguanil: CYP2C19 Riluzol: CYP1A2 Selegilin: CYP1A2, CYP2C9, CYP2D6 Sildenafil: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, CYP3A5 Sulfasalazin: NAT2 Tacrin: CYP1A2 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 119 Nukleinsäure-Diagnostik Tamsulosin: CYP2D6 Tetrabenazin: CYP2D6 Tiotropium: CYP2D6 Tolterodin: CYP2D6 Zolmitriptan: CYP1A2 Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 ) Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 ) Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 ) HLA-Genotypisierung (s. S. 102 ) Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 ) N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 ) Tumornekrosefaktor alpha-Analyse (s. S. 110 ) 120 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Zelluläre Immunologie Granulozytenfunktionen Bestimmung der Phagozytoseaktivität sowie des oxidativen Bursts. Bei erhöhter Infektanfälligkeit, rezidivierenden Infekten (Bakterien, Pilze), rekurrierenden eitrigen Infektionen, rezidivierenden Hautinfektionen, Wundheilungsstörungen: Ausschluß/Abklärung angeborener Granulozyten-/Monozytendefekte (z. B. chronische Granulomatose), bei entzündlichen Prozessen (z. B. Sepsis, Transplantatabstoßung, Autoimmunerkrankungen, bei schweren bakteriellen Infektionen (z. B. bei Immunsuppression). Vorherige telefonische Anmeldung erbeten! Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden. Material: Heparinblut Menge: 5 ml Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Ausschluss eines Granulozytenfunktionsdefektes Referenzbereich: siehe Befund Basophilen-Degranulationstest Der Test ermöglicht den Nachweis einer IgE-vermittelten Allergie vom Typ 1. Dieser in-vitro-Test kann insbesondere bei fehlender diagnostischer Nachweismöglichkeit für Allergen-spezifische IgE-Antikörper eingesetzt werden. Der Basophilen Degranulationstest bietet als Ergänzung z. B. zur RAST-Diagnostik einige Vorteile: auch seltene Allergene, für die keine RAST-Teste verfügbar sind, können untersucht werden; die Schwelle der Degranulationsbereitschaft der basophilen Granulozyten wird bestimmt. Damit kann der Erfolg einer Hyposensibilisierung überprüft werden. Eventuell beteiligte Antikörper vom Typ IgG 4 werden miterfasst. Abnahme: Mo-Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden. Material: Heparinblut Menge: 5 ml Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zellulärer Funktionstest zum Nachweis einer Typ I-Allergie Lymphozytendifferenzierung Die Lymphozytendifferenzierung ist indiziert bei: HIV-Infektion, rezidivierenden oder chronischen Infektionen, erhöhter Infektanfälligkeit und Verdacht auf primäre oder sekundäre Immundefekte. Als Zusatzinformation bei Infektionskrankheiten (Erkrankungsverlauf z.B. bei CMV-, EBV-Infektionen, Toxoplasmose), Transplantationen (Abstoßungsreaktion bei z.B. Nierentransplantation oder KMT), Tumorerkrankungen, Immunsuppression (Monitoring bei Chemotherapie, Zytostase, T-Zell-Depletion), Immunstimulationstherapie (Monitoring bei z.B. IL-2-Therapie), allergischen und Autoimmunerkrankungen (z.B. rheumatischer Formenkreis, chron. aktive Hepatitis, Morbus Crohn, Multiple Sklerose), chronischem Müdigkeitssyndrom (CFS). Großer zellulärer Immunstatus Leukozytendifferenzierung, B-, T-, NK-, CD4-T-Helfer-, CD8-T-, aktivierte Zellen Weitere Oberflächenmarker/Subpopulationen auf Anforderung Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung eines zellulären Immundefekts Referenzbereich: siehe Befund Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 121 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Kleiner zellulärer Immunstatus Leukozytendifferenzierung, CD4-T-, CD8-T-Lymphozyten. Weitere Oberflächenmarker auf Anforderung. Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Verlaufskontrolle bei HIV-Infektion Referenzbereich: siehe Befund Zelldifferenzierung in der bronchoalveolären Lavage (BAL) Differenzierung der Zellen einer BAL anhand von gefärbten Zytospinpräparaten. Bei erhöhtem Anteil an Lymphozyten erfolgt zusätzlich eine durchflusszytometrische Differenzierung je nach Fragestellung (z.B. B-, T-, CD4-T-, CD8-T-, NK-Zellen). Weitere Oberflächenmarker sind auf Anforderung möglich. Die Validität der durchflusszytometrischen Messungen in der BAL ist durch Daten der Literatur belegt. Die Zellanalytik der BAL ist abhängig von der Qualität des erhaltenen Materials. Bei signifikanter Blutbeimengung oder überwiegend bronchialer Herkunft der BAL ist eine Beurteilung nur eingeschränkt möglich. Abnahme: Mo-Do, Versand gekühlt mit Fahrdienst oder Eilboten Material: Bronchoalveoläre Lavage Menge: 10 ml Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung von Lungenerkrankungen (z. B. Sarkoidose, exogen allergische Alveolitis). Referenzbereich: s. Befund Leukämie-/Lymphomtypisierung Immunophänotypisierung mittels monoklonaler Antikörper als wichtiger Bestandteil in der Diagnostik akuter Leukämien bzw. maligner Lymphome: Zuordnung der neoplastischen Zellklone zur jeweiligen Zellreihe (myeloisch, lymphatisch, B-, T-, NK-Zellen); Bestimmung des Reifegrades der Leukämie/ Lymphomzellen, Nachweis nicht eliminierter maligner Zellen ("minimal residual disease") nach Behandlung, Erkennung prognostisch relevanter Subtypen für therapeutisches Vorgehen. Vorherige telefonische Anmeldung erbeten! Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten Material: EDTA-Blut, Heparinblut Menge: 5 ml Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Zuordnung zur Zellreihe sowie Bestimmung des Reifungsgrades von Leukämieund Lymphomzellen PNH-Diagnostik Nachweis der GPI-verankerten Oberflächenmoleküle CD55/CD59 auf Erythrozyten sowie CD24/CD66b auf Leukozyten. Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Ausschluss einer paroxysmalen nächtlichen Hämoglobinurie. Referenzbereich: s. Befund 122 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Fetale Erythrozyten Nachweis und Quantifizierung fetaler Erythrozyten im mütterlichen Blut. Methode ist vergleichbar dem Test nach Kleihauer und Bethke, jedoch deutlich spezifischer, da auch mütterliche Zellen mit fetalem Hämoglobin (F-Zellen) unterschieden werden können. HbF-Zellen sind bei ca. 30% der Schwangeren im Verlauf der Schwangerschaft und bei ca. 50% nach Entbindung nachweisbar. EDTA-Vollblut bei Raumtemperatur verschicken, weder kühlen noch einfrieren! Material: EDTA-Blut Menge: 100 µl Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Nachweis oder Ausschluss einer fetomaternalen Transfusion. Kontrolle der Anti-D-Prophylaxe bei Rh(D)-negativen Müttern mit Rh(D)-positiven Neugeborenen. Referenzbereich: <0,5 Promille Lymphozytenfunktionen Weitergehende Untersuchung nach unauffälligem zellulärem Immunstatus bei erhöhter Infektanfälligkeit zur Abklärung von B- und T-Zell-Funktionsstörungen. Nachweis einer zellulären Immunität gegenüber verschiedenen Erregern (z. B. CMV, Mumps, VZV, Toxoplasmose). Lymphozytenproliferation Der Stellenwert des Tests für die medizinische Diagnostik ist nicht gesichert. Aus methodischen Gründen ist eine Testvalidierung nach GLP-Vorgaben nicht möglich. Der Test wird vor allem zur Beantwortung wissenschaftlicher Fragestellungen eingesetzt. Nachgewiesen wird die Lymphozytenproliferation nach Stimulation mit B- und T-Zellmitogenen. Vorherige telefonische Anmeldung erbeten Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden. Material: Heparinblut Menge: 10 ml Methode: Kultur Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4 Tage) Indikation: Abklärung eines Lymphozytenfunktionsdefektes Zytokinbildung der Lymphozyten Der Stellenwert des Tests für die medizinische Diagnostik ist nicht gesichert. Nachweis der Zytokinbildung (z.B. Interferon-gamma) von Lymphozyten nach Antigenstimulation (z.B. CMV, Mumps, VZV) in vitro. Telefonische Voranmeldung erforderlich. Material: Heparinblut Menge: 9 ml Methode: Elispot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Nachweis und Quantifizierung erregerspezifischer T-Lymphozyten. CD38 auf CD8-T-Lymphozyten Das CD38 ist ein Aktivierungsmarker der Lymphozyten, seine Expression auf der Oberfläche der Zellen bestimmt den Grad der HIV-spezifischen Aktivierung der CD8-T-Lymphozyten. Je stärker diese Expression des CD38 auf den CD8-T-Lymphozyten ausgeprägt ist, desto höher ist das AIDS-Risiko des Patienten. Material: EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Prognosemarker für AIDS-Erkrankung bei HIV-Patienten. Referenzbereich: s. Befund CMV-spezifische T-Lymphozyten (s. S. 24 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 123 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Toxoplasma gondii-spezifische T-Lymphozyten (s. S. 69 ) TB-Elispot (T-SPOT.TB) (s. S. 248 ) Indirekter Nachweis von M. tuberculosis durch Bestimmung der erregerspezifischen T-Lymphozyten mit der Elispot-Methode. HLA-B*27 Serologische Bestimmung mit zwei monoklonalen Antikörpern gegen HLA-B27, ggfs. molekularbiologische Bestätigung mittels PCR. Material: Heparinblut, EDTA-Blut Menge: 5 ml Methode: Durchflusszytometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Z.A. Morbus Bechterew 124 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Immunglobuline / Komplementsystem Immunglobuline IgG im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: 6,8-15,3 g/l IgG-Subklassen 1-4 Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: s. Befund g/l IgA im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: 0,75-3,74 g/l IgA, sekretorisch (scIgA) (F) Zur Vermeidung von Eintrocknung muss die Gefäßgröße so gewählt werden, dass das Gefäß nach dem Befüllen möglichst wenig Luft enthält. Material: Speichel Menge: 2 ml Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Referenzbereich: 20-200 mg/l IgM im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: 0,4-1,88 g/l IgE (Immunglobulin E) (s. S. 201 ) Immunfixationselektrophorese (IFE) (s. S. 196 ) Bence-Jones Proteine (freie Leichtketten) (s. S. 221 ) oligoklonale Banden im Liquor (s. S. 198 ) Komplementsystem CH-100-Aktivität (gesamthämolytische Komplementaktivität ) (F) Ersetzt die CH-50-Bestimmung Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Serum, gefroren Menge: 500 µl Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: 40-200 U/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 125 Immunologie / Autoimmunerkrankungen C1-Esterase-Inhibitor (Aktivität) (F) Basisdiagnostik Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 500 µl Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. hereditäres angioneurotisches Ödem (hereditäres Quincke-Ödem) Referenzbereich: 60-130 % C1-Esterase-Inhibitor (Konzentration) (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Verminderte C1-Esterase-Inhibitor-Aktivität Referenzbereich: 0,17-0,44 g/l C2-Komplement (F) Material: Serum Menge: 1 ml Methode: Nephelometrie Referenzbereich: 80-120 % C3-Komplement Material: Serum Menge: 1 ml Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: 0,75-1,35 g/l C4-Komplement Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: 0,1-0,4 g/l 126 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Entzündungsaktivität Blutbild, groß (s. S. 179 ) Blutsenkung Citratblut im Verhältnis 1:5 Material: Citratblut Menge: 2,7 ml Methode: BSG nach Westergren Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: 1. Stunde M: 15 F: 20 mm CRP (C-reaktives Protein) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Referenzbereich: <5,0 mg/l CRP, hochsensitiv Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos Referenzbereich: <2,1 mg/l Ferritin (s. S. 180 ) Interleukin-2-Rezeptor, sIL2-R Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren, das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen und tieffrieren. Material: Serum, gefroren Menge: 0,5 ml Methode: ILMA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Nachweis einer Aktivierung des zellulären Immunsystems Referenzbereich: 158-623 kU/l Interleukin 6 Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren, das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen und tieffrieren. Material: Serum, gefroren Menge: 0,5 ml Methode: ILMA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Nachweis einer Aktivierung des zellulären Immunsystems Referenzbereich: <5,9 ng/l Neopterin (F) Nur aus gefrorenem Serum sinnvoll, das sofort nach Durchgerinnung abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Serum bitte auch lichtgeschützt einsenden. Material: Serum Menge: 1 ml Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abstoßungsreaktion Referenzbereich: < 10 nmol/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 127 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Procalcitonin (PCT) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: TRACE (Kryptor) Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Diagnose und Monitoring einer Sepsis, Abschätzung der Notwendigkeit einer Antibiotika-Therapie, Differentialdiagnose zentrales Fieber versus Sepsis bei Schädel-Hirn-Trauma. Referenzbereich: <0,1 µg/l SAA (Serum-Amyloid A) (F) Abstoßungsreaktion Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: s. Befund µg/l 128 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Autoantikörper Acetylcholinrezeptor-AAK Material: Serum, Vollblut Menge: 300 µl Methode: RRA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Myasthenia gravis Referenzbereich: <0,4 nmol/l Alveoläre Basalmembran-AAK EIA (F) Basalmembran-Alveolen-AAK Es handelt sich um die gleiche Autoantikörper-Spezifität wie glomeruläre Basalmembran-AAK. Material: Serum, Vollblut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Goodpasture-Syndrom Referenzbereich: <0,87 AK-Ratio Aminoacyl-tRNA-Synthetase-AAK (s. S. 135 ) Sammelbegriff für alle Autoantikörper, welche gegen Aminoacyl-tRNA-Synthetasen gerichtet sind. Jo-1-AAK sind die am häufigsten nachweisbaren Aminoacyl-tRNA-Synthetase-AAK. Amphiphysin-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: Paraneoplastische Syndrome (SCLC, Mammakarzinom) Referenzbereich: <1:1000 Titer ANA-IFT (Screen) Antinukleäre AAK, Antinukleäre Faktoren. Zahlreiche verschiedene Muster können vorliegen (homogen, gesprenkelt, Zentromere und andere). Einem positiven ANA-Befund sollten weitere Tests zur Bestimmung der ANA-Spezifität folgen. Nicht alle ANA können differenziert werden, da zahlreiche Zielantigene bisher nicht bekannt sind. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. systemische Autoimmunerkrankungen oder Autoimmunerkrankungen der Leber, arzneimittel-induzierter Lupus, juvenile chronische Arthritis Referenzbereich: <1:80 Titer Antimitochondriale AAK (AMA) Bei positivem IFT-Befund wird eine Differenzierung der AK-Spezifität gegen Mitochondrien Typ 2 mittels EIA durchgeführt Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. primäre biliäre Zirrhose (PBC) Referenzbereich: <1:80 Titer Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 129 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Asialoglycoprotein-Rezeptor-AAK (F) ASGPR gehört zu der Lebermembran-Antikörper-Gruppe Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: AK der Lebermembran-AK-Gruppe treten oft bei Autoimmunhepatitiden auf (bis 40%), sind jedoch nicht spezifisch, da diese AK auch bei viralen und toxischen Lebererkrankungen vorkommen können. Referenzbereich: <10.0 AK-Ratio Basalmembran-AAK Alveolen-Basalmembran-AAK (F) (s. S. 129 ) Glomeruläre Basalmembran-AAK (s. S. 133 ) Epidermale Basalmembran-AAK (F) (s. S. 137 ) Becherzell-AAK (F) AAK gegen schleimbildende Zellen des Dickdarmes Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 400 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Colitis ulcerosa Referenzbereich: <1:10 Titer beta-2-Glykoprotein-1-IgG-AAK Phospholipid-AAK, Apolipoprotein H-AAK, ß2-GPI-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung Referenzbereich: <7 U/ml beta-2-Glykoprotein-1-IgM-AAK Phospholipid-AAK, Apolipoprotein H-AAK, ß2-GPI-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung Referenzbereich: <7 U/ml c-ANCA Antineutrophile zytoplasmatische Autoantikörper (zytoplasmatisches Muster) Material: Serum Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag) Indikation: Wegenersche Granulomatose, mikroskopische Polyarteriitis, Churg-Strauss-Syndrom Referenzbereich: <1:10 Titer Calcium-Sensing-Rezeptor-AAK (F) (s. S. 137 ) Nebenschilddrüsen-AAK 130 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Calciumkanal (P/Q-Typ)-Autoantikörper (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: RIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. Lambert-Eaton-Syndrom Referenzbereich: <25 nmol/l Cardiolipin-IgG-AAK Phospholipid-AAK, aCL Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung Referenzbereich: <10 GPL-U/ml Cardiolipin-IgM-AAK Phospholipid-AAK, aCL Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung Referenzbereich: <25 MPL-U/ml Crithidia luciliae-AK (ds-DNS-AAK) Material: Serum, Vollblut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag) Indikation: V.a. SLE, Abklärung bei positivem ds-DNS-EIA Referenzbereich: <1:10 Titer CV2-AAK (F) CRMP5-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: Paraneoplastische Syndrome (SCLC, Thymom und andere Tumore) Referenzbereich: <10 AK-Ratio Cyclisches citrulliniertes Peptid (CCP)-AAK Material: Serum Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: täglich Indikation: V. a. rheumatoide Arthritis, vor allem auch in der Frühphase der Erkrankung (höhere Sensitivität und Spezifität im Vergleich zu RF) Referenzbereich: <7 kU/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 131 Immunologie / Autoimmunerkrankungen ds-DNS-AAK Doppelstrang-DNA-AAK, nDNA-AAK, nDNS-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Verdacht auf eine systemische Autoimmunerkrankung. Zusatztest bei positivem ANA-(Hep2)-AAK IFT-Befund (homogene Kernfluoreszenz, positive Färbung der Chromosomen im Mitosesatadium) Referenzbereich: <10 IU/ml ENA-Screen AAK gegen extrahierbare nukleäre Antigene (ENA). Screeningtest auf U1-RNP, RNP70, Sm, SSA, SSB, Scl70, Jo1-AK. Einem positiven ENA-Profil-Befund sollte die Bestimmung der AK-Spezifität gegen einzelne ENA-Antigene folgen. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Verdacht auf eine systemische Autoimmunerkrankung. Zusatztest bei positivem ANA-(Hep2)-AAK IFT-Befund (gesprenkelte oder homogene Kernfluoreszenz) Referenzbereich: <0,7 Ratio Endomysium-IgA-AAK (Der IFT weist AAK gegen Gewebs-Transglutaminase nach.) Material: Serum Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Glutensensitive Enteropathie (Zöliakie, Sprue), Dermatitis herpetiformis Duhring Referenzbereich: <1:10 Titer Fibrillarin-AAK (F) (s. S. 143 ) U3-n RNP-AAK Freie Granulozyten-Antikörper (F) Material: Serum Menge: 2 ml Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Woche) Indikation: V. a. Autoimmunneutropenie GAD-AAK (F) (s. S. 133 ) Glutamat-Decarboxylase-AAK Gangliosid-AAK (IgG, IgM) (GM1-, GM3-,GD1a-,GD1b-, GT1b-, GQ1b-AAK) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Guillain-Barré-Syndrom, multifokale Neuropathie, sensorische Neuropathie, Miller-Fisher Syndrom Referenzbereich: negativ Gewebstransglutaminase-AAK (s. S. 142 ) tTG 132 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Glatte-Muskulatur-AAK (Actin) ASMA (Anti-smooth-muscle-antibodies) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Autoimmunhepatitis Referenzbereich: <1:80 Titer Gliadin-AK, IgA (desaminiert) Material: Serum Menge: 200 µl Methode: CAP Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Zöliakie Referenzbereich: <7 kU/l Gliadin-AK, IgG (desaminiert) Material: Serum Menge: 200 µl Methode: CAP Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Zöliakie Referenzbereich: <7 kU/l Glomeruläre-Basalmembran-(GBM)-AAK GBM-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag) Indikation: Rapid progressive Glomerulonephritis, Goodpasture-Syndrom Referenzbereich: <7 U/ml Glutamat-Decarboxylase-AAK (F) GADA Material: Serum, Vollblut Menge: 400 µl Methode: ELA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Diabetes mellitus Typ 1 Referenzbereich: <0,7 kU/l H+/K+-ATPase-AAK (F) (s. S. 137 ) Parietallzellen-AAK Herpes-gestationis-Faktor (F) AAK gegen epidermale und plazentare Basalmembran (Pemphigoid-Antigen-AAK, BP 180/230-AAK) werden mit und ohne Komplement an Gefrierschnitten von Haut und Plazenta untersucht. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. Herpes gestationis Referenzbereich: negativ Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 133 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Herzmuskel-AAK (F) myokardiale-AAK, antimyolemnale AAK (AMLA) und antisarkolemnale AAK (ASLA) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Myokardschädigungen, Streptokokkeninfektion, selten bei Myokarditis Referenzbereich: <1:80 Titer Histidyl-tRNA-Synthetase-AAK (s. S. 135 ) Jo-1-AAK Histone-AAK (F) Anti-Histon-AAK (AHA) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 100 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Verdacht auf eine systemische Autoimmunerkrankung, arzneimittelinduzierte Lupusformen. Referenzbereich: <1 Index Hu-AAK (F) Neuronenkerne-AAK (Hu), ANNA-1 Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Paraneoplastische Syndrome (SCLC oder Neuroblastom) Referenzbereich: <1:10 Titer IA2 (F) (s. S. 142 ) Tyrosin-Phosphatase-AAK Inselzellen (ICA)-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Diabetes mellitus Typ 1 Referenzbereich: <1:10 Titer Insulin-Autoantikörper (IAA) (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 400 µl Methode: RIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: Diabetes mellitus Typ 1 Referenzbereich: <10 % Bindung Insulin-Rezeptor-Autoantikörper (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: RIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: Insulinpflichtiger Diabetes mellitus Referenzbereich: negativ Interzellularsubstanz-AAK (F) (s. S. 138 ) Autoantikörper gegen die Interzellularsubstanz der Epidermis, Pemphigus-AAK 134 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Intrinsic-Faktor-AAK (F) Material: Serum, Vollblut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. chronisch atrophische Gastritis, perniziöse Anämie Referenzbereich: <20 RE/ml Jo-1-IgG-AAK Histidyl-tRNA-Synthetase-AAK, HRS-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 100 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Myositis, Abklärung idiopathischer fibrosierender Alveolitiden. Referenzbereich: <7 U/ml Kälteagglutinine (s. S. 184 ) KU-Antigen-Autoantikörper (F) p70/p80-AAK Material: Serum, Vollblut Menge: 300 µl Methode: RID Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. Polymyositis/Sklerodermie-Overlap-Syndrom. Referenzbereich: negativ AK-Ratio Leber-Nieren-Mikrosomen (Typ1)-AAK LKM 1-AAK, Cytochrom P450-AAK Bei positivem IFT weitere Abklärung mittels Leber-Immunoblot. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Autoimmunhepatitis Referenzbereich: <1:80 Titer Leber-Pankreas-AAK (s. S. 140 ) SLA/LP-AAK Lebercytosol-Antigen-1-AAK (F) LC1-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. Autoimmunhepatitis Referenzbereich: negativ Lupus-Antikoagulans (s. S. 177 ) Ma2-AAK siehe Ta-AAK (F) (s. S. 141 ) MAK siehe TPO-AAK (s. S. 142 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 135 Immunologie / Autoimmunerkrankungen MGT-30 (Titin)-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. Myasthenia gravis Referenzbereich: negativ Mi-2-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: Polymyositis, Zusatztest bei positivem ANA-Befund (granuläres Muster) Referenzbereich: negativ Mitochondrien-AAK (s. S. 129 ) AMA Mitochondrien-AAK Typ M2 siehe Antimitochondriale AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Primäre biliäre Zirrhose, Zusatztest bei positivem AMA-IFT-Befund Referenzbereich: <1.0 Index MuSK (F) (s. S. 138 ) Rezeptor-Tyrosinkinase-AAK Myelin assoziiertes Glycoprotein-AAK (F) Material: Serum, Liquor Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: Demyelinisierende Neuropathien mit monoklonalem IgM Referenzbereich: <100 U/ml Myeloperoxidase (MPO)-AAK MPO-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. eine Vaskulitis. Referenzbereich: <7 U/ml Nebennierenrinden-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. NNR-Insuffizienz Referenzbereich: <10.00 AK-Ratio 136 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Nebenschilddrüsen-AAK (F) (Calcium-Sensing-Rezeptor-Autoantikörper) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: Erworbener Hypoparathyreodismus, autoimmunes polyglanduläres Syndrom Referenzbereich: negativ Titer Nukleosomen-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Lupus erythematodes Referenzbereich: <1.0 Index p-ANCA Antineutophile zytoplasmatische Autoantikörper (perinukleäres Muster) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag) Indikation: V. a. Vaskulitis, Colitis ulcerosa Referenzbereich: <1:10 Titer Pankreas-Acinusepithel-AAK AAK gegen exokrines Pankreas Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: M. Crohn Referenzbereich: <1:10 Titer Parietalzellen-AAK (F) Belegzellen-AAK, H+/K+-ATPase-AAK (Parallel wird immer auch ein IFT durchgeführt) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. chronisch atrophische Gastritis, perniziöse Anämie Referenzbereich: <20 RE/ml Pemphigoid-AAK (F) Epidermale Basalmembran-AAK, BP180/BP230 Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 400 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Verdacht auf bullöses Pemphigoid Referenzbereich: <1:10 Titer Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 137 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Pemphigus-AAK (F) Stachelzell-Desmosomen-AAK, Interzellularsubstanz-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 400 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. Pemphigus vulgaris/foliaceus Referenzbereich: <1:10 Titer Phospholipid-Autoantikörper Cardiolipin-IgG-AK (s. S. 131 ) Cardiolipin-IgM-AK (s. S. 131 ) beta-2-Glycoprotein 1-IgG-AAK (s. S. 130 ) beta-2-Glycoprotein 1-IgM-AAK (s. S. 130 ) Lupus-Antikoagulans (s. S. 177 ) Phospolipase A2-Rezeptor-AAK (F) PLA2-Rezeptor-AAK Material: Serum Menge: 500 µl Methode: IFT Indikation: Idiopathische membranöse Glomerulonephritis PM-Scl-AAK (F) PM-Scl p75- und PM-Scl p100-AAK, PM-1-AAK, Gruppe der nukleolären AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. Polymyositis/Sklerodermie. Referenzbereich: negativ Proteinase-3-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 6 Stunden, Eilprobe:am selben Tag) Indikation: Wegener-Granulomatose. Referenzbereich: <7 U/ml Recoverin-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: Paraneoplastische Syndrome (Retinopathie) Referenzbereich: negativ Rezeptor-Tyrosinkinase (MuSK)-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: RIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. Myasthenia gravis Referenzbereich: <0,050 nmol/l 138 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Ri-AAK (F) Neuronenkerne-AAK(Ri), ANNA-2 Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Paraneoplastische Syndrome (SCLC, Mammakarzinom) Referenzbereich: <1:10 Titer Ribosomen-AAK (F) ribosomales P-Protein Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. SLE Referenzbereich: <1.0 Index RNP70-AAK Material: Serum, Vollblut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Mischkollagenose (MCTD) ,SLE Referenzbereich: <7 U/ml Saccharomyces cerevisiae-IgA-AK (F) werden auch ASCA genannt Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. M. Crohn Referenzbereich: <1:100 Titer Saccharomyces cerevisiae-IgG-AK (F) werden auch ASCA genannt Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. M. Crohn Referenzbereich: <1:1000 Titer Saccharomyces cerevisiae-IgM-AK (F) werden auch ASCA genannt Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. M. Crohn Referenzbereich: <1:100 Titer Schilddrüsen-Autoantikörper TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 142 ) TAK (s. S. 141 ) Thyreoglobulin-AAK TPO-AK (früher MAK) (s. S. 142 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 139 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Scl-70-AAK Topoisomerase-I-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag) Indikation: V. a. systemische Sklerodermie, Raynaud-Symptomatik Referenzbereich: <7 U/ml Skelettmuskulatur-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Myasthenia gravis (Goldflamkrankheit) Referenzbereich: <1:80 Titer Sm-AAK Einzelbestimmung bei positivem ENA-Screen Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: SLE Referenzbereich: <5 U/ml soluble-liver-Ag (SLA-)-AAK Leber-Pankreas-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Autoimmunhepatitis Referenzbereich: <20 U/ml sp-100-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. primäre biliäre Zirrhose. Zusatztest bei positivem ANA-(Hep2)-AAK IFT-Befund (Fluoreszenzmuster: nukleäre Dots ). Referenzbereich: negativ Spermatozoen-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: Infertilität Referenzbereich: <20.00 U/ml ss-DNA-AAK (F) Einzelstrang-DNA-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 200 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf Referenzbereich: <1 AK-Ratio 140 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen SSA-(Ro)-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: SLE, primäres Sjögren-Syndrom, V. a. auf neonatalen LE Referenzbereich: <7 U/ml SSB-(La)-AAK Einzelbestimmung bei positivem ENA-Screen Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: SLE, primäres Sjögren-Syndrom Referenzbereich: <7 U/ml Stachelzell-Desmosomen-AAK (F) (s. S. 138 ) Pemphigus-AAK Ta-AAK (F) Ma2-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: Paraneoplastische Syndrome (Hodentumore) Referenzbereich: <1:100 Titer TAK (Thyreoglobulin-AAK) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden) Referenzbereich: <280 kU/l Testis, Leydig-Zellen-AAK (F) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Autoimmune Endokrinopathien Referenzbereich: negativ Titer Thrombozyten-AAK (F) Direkter Nachweis von freien und Thrombozyten-gebundenen Antikörpern. Frisches EDTA-Blut nicht älter als 24 Stunden. Blutmenge abhängig von der Thrombozytenzahl: >150.000/µl: 10 ml; 51.-150.000/µl: 20 ml; 20.-50.000/µl: 30 ml; <20.000/µl: 40 ml EDTA-Blut. Material: EDTA-Blut Menge: s.o. Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung von Thrombozytopenien Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 141 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Thyreoperoxidase-AK (TPO-AK, früher MAK) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden) Indikation: V. a. Autoimmunthyreoiditis Referenzbereich: <60 kU/l Titin-AAK (F) (s. S. 136 ) MGT-30-AAK Topoisomerase 1-AAK (s. S. 140 ) Scl-70-AAK Tr-AAK (F) Purkinjezellen (Tr)-AAK (PuCA-2) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Paraneoplastische Syndrome (M. Hodgkin) Referenzbereich: <1:20 Titer TRAK (TSH-Rezeptor-AK) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Hyperthyreose, V. a. M. Basedow Referenzbereich: <1,0 IU/l tTG (Gewebstransglutaminase)-AAK (IgA+IgG) (Zielantigen der Endomysium-Ak) Material: Serum, Vollblut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Zoeliakie Referenzbereich: <7, Graubereich 5-7 kU/l tTG (Gewebstransglutaminase)-AK (IgA) im Stuhl (F) Material: Stuhl Menge: 1 g Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Indikation: V. a. Zoeliakie Referenzbereich: <100 mU/g Tyrosinphosphatase-AAK (IA2) (F) Inselzellantigen-2-AAK, IA2A, ICA512 Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 400 µl Methode: RIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: Diabetes mellitus Typ 1 Referenzbereich: <70 mU/ml 142 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen U1-RNP-AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: SLE Referenzbereich: <5 U/ml U3-n RNP/Fibrillarin-AAK (F) Gruppe der nukleolären AAK Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: Immunoblot Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. Sklerodermie, Raynaud-Symptomatik Referenzbereich: negativ Yo-AAK (F) Purkinjezellen-AAK (PuCA-1) Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Paraneoplastische Syndrome (Ovar-, Mamma- und Uterus-Karzinom) Referenzbereich: <1:10 Titer Zentromere-AAK gehört zu der Gruppe ANA AAK gegen Zentromere werden normalerweise im ANA-IFT mit einem typischen Muster erfasst. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 300 µl Methode: FEIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: V. a. systemische Sklerodermie, CREST-Syndrom, Abklärung unklarer IFT-Befund oder positive ENA-Screen. Referenzbereich: <7 U/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 143 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Rheumaserologie A-DNAse B (Anti-Streptodornase) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Nachweis einer abgelaufenen Streptokokken A-Infektion (keine schützenden AK) Referenzbereich: <200 kU/l anti-Streptokokken-Hyaluronidase (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche Indikation: Nachweis einer abgelaufenen Streptokokken A-Infektion (keine schützenden AK) Referenzbereich: <1:300 Titer Antistaphylolysin Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Agglutination Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <2 IE/ml Antistreptolysin O (ASL) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Nachweis einer akuten oder abgelaufenen Streptokokken A-Infektion Referenzbereich: <200 IU/ml CRP (s. S. 127 ) RAJI-Zelltest (Zirkulierende Immunkomplexe) (F) Material: Serum Menge: 400 µl Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Rheumafaktor RF werden oft nachgewiesen (70-80%), sind aber nicht spezifisch. Ein positiver Befund ist somit ohne entsprechende klinische Symptome für eine Rheumatoide Arthritis nicht aussagekräftig. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: <20 IU/ml Rheumatoides Epitop (HLA-DR-Subtypisierung) 144 (F) (s. S. 102 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Autoimmunerkrankungen (Profile) Anti-Synthetase-Syndrom Anti-Jo-1-Syndrom, Sonderform der Polymyositis ANA-IFT (s. S. 129 ) AAK mit zytoplasmatischer Fluoreszenz Jo-1-AAK (s. S. 135 ) pathognomonisch, hochspezifisch Antiphospholipidsyndrom (APS) Gruppe von Antikörpern, die gegen negativ geladene Phospholipide indirekt gerichtet sind. Assoziiere Erkrankungen: Venöse oder arterielle Trombosen, rezivierende Aborte, Autoimmuntrombozytopenie Zwei Formen: primäres APS ohne weitere Anzeichen für ein autoimmunes Geschehen; sekundäres APS assoziiert mit Autoimmunerkrankungen (vor allem SLE). Cardiolipin-IgG-AK (s. S. 131 ) Cardiolipin-IgM-AK (s. S. 131 ) beta-2-Glycoprotein 1-IgG-AAK (s. S. 130 ) beta-2-Glycoprotein 1-IgM-AAK (s. S. 130 ) Lupus-Antikoagulans (s. S. 177 ) (Es wird gefrorenes Citratplasma benötigt) Autoimmunhepatitis (Typ 1, 2 und 3) Autoantikörperbestimmung nach Ausschluss viraler Hepatitiden Die Typenklassifizierung gründet sich auf den Nachweis von Autoantikörpern und hat weder einen pathophysiologischen Hintergrund noch eine Auswirkung auf die Therapie. Typ 1: Die ANA-positive AIH mit oder ohne AAK gegen glatte Muskulatur (Anti-Actin). Typ 2: LKM-positive AIH, ca. 5 % aller AIHs Typ 3: SLA(LP)-positive AIH, ca. 10% aller AIHs ANA-IFT (s. S. 129 ) AAK mit homogener und gesprenkelter Fluoreszenz Prävalenz 50-70%, nicht spezifisch Gesamt-IgG (s. S. 125 ) IgG-Erhöhung 60-90% Glatte Muskulatur-AAK (s. S. 133 ) Prävalenz 50-60%, spezifisch bei hohem Titer LKM-AAK (s. S. 135 ) pathognomonisch für die AIH Typ 2, hochspezifisch SLA(LP)-AAK (s. S. 140 ) pathognomonisch für die AIH Typ 3, hochspezifisch p-ANCA (s. S. 137 ) MPO-negativ Prävalenz bis zu 50%, nicht spezifisch Asialoglycoprotein-Rezeptor (ASGPR) (F) (s. S. 130 ) Die ASGPR-AAK sind nicht spezifisch für eine Autoimmunhepatitis, da sie auch bei viralen und toxischen Lebererkrankungen vorkommen können. Allerdings scheint es, dass ASGPR-AAK-Titer mit der Aktivität des Entzündungsprozesses korreliert. Der Test wird zur Therapieüberwachung empfohlen. Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 145 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Autoimmunhämolytische Anämie Direkter Antiglobulintest (direkter Coombstest) (s. S. 183 ) Antikörpersuchtest (s. S. 183 ) Kälteagglutinine (s. S. 184 ) Bullöses Pemphigoid Pemphigoid-AAK (epidermale Basalmembran--AAK) (F) (s. S. 137 ) Zielantigen: BP 180 und BP230 Prävalenz >90%, hochspezifisch Chronisch-entzündliche demyelinisierte Polyneuropathie (CIDP) Gangliosid-AAK (s. S. 132 ) Prävalenz 35% Chronische atrophische Gastritis / perniziöse Anämie Parietalzellen-AAK (F) (s. S. 137 ) Prävalenz 80-90%, wenig spezifisch Intrinsic-Faktor-AAK (F) (s. S. 135 ) Prävalenz 40-75%, hochspezifisch Vitamin B12 (s. S. 203 ) Colitis ulcerosa p-ANCA (s. S. 137 ) MPO-negativ Prävalenz 60-80%, nicht spezifisch Calprotectin im Stuhl (s. S. 226 ) Lactoferrin im Stuhl (s. S. 226 ) Dermatititis herpetiformis (M. Duhring) siehe Zöliakie (s. S. 152 ) Assoziation mit der glutensensitiven Enteropathie Diabetes mellitus Typ 1 AAK-Bestimmung zur Risikoabschätzung bei klinisch Gesunden mit familiärer Belastung. AAK werden in der Vorphase und bei Erkrankungsbeginn vor allem bei Kindern mit hoher Prävalenz von 80-100% nachgewiesen. Mit zunehmendem Alter nimmt die Häufigkeit des Nachweises ab. Risiko bei Nachweis von einem AAK 0-15%, bei drei oder vier AAK 60-100%. Zur sicheren Differenzierung zwischen einem aktuell vorliegenden Typ I- oder Typ II-Diabetes ist eine Bestimmung des C-Peptid-Spiegels zu empfehlen. Insulin-Autoantikörper (IAAK) (F) (s. S. 142 ) IAAK sind am häufigsten nachweisbaren AAK bei Kindern unter 5 Jahren. Tyrosinphosphatase-AAK (IA2) (F) (s. S. 142 ) IA2-AAK weisen eine gute Korrelation zur Diabetesmanifestation in den nächsten Jahren auf. Inselzell-AAK (ICA) (F) (s. S. 134 ) ICA und GADA persisitieren etwas länger als IAAK und IA2-AAK und können deshalb auch noch Jahren nach dem Manifestationsbeginn nachgewiesen werden. Glutamatdecarboxylase-AAK (GADA) (F) (s. S. 133 ) C-Peptid (s. S. 162 ) 146 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Goodpasture Syndrom (siehe rapid-progressive Glomerulonephritis (RPGN) (s. S. 150 ) Sonderform der RPGN mit Lungenblutung Guillain-Barré-Syndrom Gangliosid-AAK (s. S. 132 ) Myelin-assoziiertes-Glykoprotein-AAK(MAG) (F) (s. S. 136 ) Prävalenz 20% Herpes gestationis Herpes-gestationis-Faktor (F) (s. S. 137 ) Idiopatische membranöse Glomerulonephritis Phospholipase A2-Rezeptor-AAK (F) (s. S. 138 ) Prävalenz 70%, hochspezifisch Juvenile idiopathische Arthritis (JIA) Juvenile rheumatoide Arthritis (JRA), Juvenile chronische Arthritis (JCA) ANA-IFT (s. S. 129 ) AAK mit homogener und gesprenkelter Kernfluoreszenz Prävalenz bei der Patienten mit Uveitis 70%, bei Pateinten ohne Uveitis 30%, nicht spezifisch. Cyclisches citrulliniertes Peptid (CCP)-AAK (s. S. 131 ) Im Gegensatz zur RA bei Erwachsenen werden CCP-AAK bei Kindern nur selten gefunden (2-5% aller JIA-Fälle). Nur die Gruppe von Kindern mit RF-positiver polyartikulärer juveniler Arthritis weist eine AK-Prävalenz von ca. 75% auf. IgM-Rheumafaktoren (s. S. 144 ) Prävalenz von IgM-RF 20-60%, sie sind aber wenig spezifisch. Ein positiver Befund ist somit ohne entsprechende klinische Symptome für eine JCA nicht aussagekräftig. Lambert-Eaton-Syndrom Calciumkanal(P/Q-Typ)-AAK (F) (s. S. 131 ) Prävalenz bis zu 100%, hochspezifisch Miller-Fischer-Syndrom Gangliosid-AAK (s. S. 132 ) GQ1b-AAK, Prävalenz 80% Mischkollagenose (MCTD, Sharp-Syndrom) Kombination von Symptomen des SLE, der Sklerodermie und der Dermatomyositis/Polymyositis. ANA-IFT (s. S. 129 ) gesprenkeltes Muster ENA-Screentest ( RNP-AAK) (s. S. 132 ) U1-RNP-AAK (RNP-AAK) Prävalenz 100%, hochspezifisch Morbus Addison Nebennierenrinden-AAK (F) (s. S. 136 ) Prävalenz 60-100%, hoch spezifisch Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 147 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Morbus Basedow Thyreoglobulin-AK (TAK) (s. S. 170 ) Prävalenz 10-30% Thyreoperoxidase-AK (TPO) (s. S. 142 ) Prävalenz ca. 40% TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 142 ) Prävalenz bis 98%, hochspezifisch Morbus Crohn p-ANCA (s. S. 137 ) MPO-negativ Prävalenz 5-25%, nicht spezifisch Pankreas-Acinusepithel-AAK (exokrine Pankreas-AAK) (s. S. 137 ) Prävalenz 40%, spezifisch Saccharomyces cerevisiae-AK (ASCA) (F) (s. S. 139 ) Prävalenz 60%, spezifisch Calprotectin im Stuhl (s. S. 226 ) Lactoferrin im Stuhl (s. S. 226 ) Multifokale Motorneuropathie Gangliosid-AAK (s. S. 132 ) GM1, Prävalenz 40% Myasthenia gravis Acetylcholinrezeptor-AAK (s. S. 129 ) Prävalenz: Bei der okulären Myasthenie und der juvenilen Form 60%, bei der generalisierten Myasthenie 75-95%; hochspezifisch. Skelettmuskulatur-AAK (s. S. 140 ) Prävalenz 30%, mittlere Spezifität. Hohe Titer weisen auf ein Thymom und eine schwere Verlaufsform hin. MGT-30-(Titin)-AAK (F) (s. S. 136 ) Bei mehr als 95% der Myastheniepatienten mit Thymom finden sich zusätzlich Titin-AK. Rezeptor-Tyrosin-Kinase (MuSK)-AAK (F) (s. S. 138 ) AAK kommen bei 70% der AchR-AAK negativen Patienten mit Myasthenia gravis vor, hochspezifisch Panarteriitis nodosa (renale Verlaufsform) p-ANCA (s. S. 148 ) MPO-positiv Prävalenz 5-15%, spezifisch Paraneoplastische Syndrome Neurologische PNS paraneoplastische zerebellare Degeneration (Hu-,Yo-,Tr- und Ta-AAK) limbische Enzephalopathie (Hu- und Ta-AAK) karzinomaassoziierte Retinopathie (Recoverin-AAK) Lambert-Eaton-Syndrom (Calciumkanal(P/Q-Typ)-AAK) Hu-AAK (F) (s. S. 134 ) Ri-AAK (F) (s. S. 139 ) 148 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Yo-AAK (F) (s. S. 143 ) Amphiphysin-AAK (F) (s. S. 129 ) CV2-AAK (F) (s. S. 131 ) Ta-AAK (F) (s. S. 141 ) Tr-AAK (F) (s. S. 142 ) Recoverin-AAK (F) (s. S. 138 ) Calciumkanal(P/Q-Typ)-AAK (F) (s. S. 131 ) Pemphigus vulgaris / Pemphigus foliaceus Pemphigus -AAK (F) (s. S. 138 ) Prävalenz 70-80%, spezifisch Polymyositis / Dermatomyositis ANA-IFT (s. S. 129 ) AAK mit: zytoplasmatischer Fluoreszenz (Jo-1), granulärer und nukleolärer Kernfluoreszenz (Mi-2, Ku und Pm-Scl) Jo-1-AAK (s. S. 135 ) Prävalenz 30-50%, hochspezifisch Diagnostischer Marker für die Polymyositis Mi-2-AAK (F) (s. S. 136 ) Prävalenz 10-15%, spezifisch Ku-AAK (F) (s. S. 135 ) Prävalenz 5-25%, spezifisch PM-Scl-AAK (F) (s. S. 138 ) Prävalenz 10-20%, spezifisch Post-partum-Thyreoiditis Schwangere Patientinnen mit positivem AAK-Nachweis im dritten Trimester haben ein erhöhtes Risiko für eine Post-partum-Thyreoiditis. TAK und/oder TPO Prävalenz 80% TAK (Thyreoglobulin-AAK) (s. S. 141 ) Thyreoperoxidase-AK (TPO) (s. S. 142 ) TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 169 ) selten Primär sklerosierende Cholangitis 80% Assoziation mit der Colitis ulcerosa p-ANCA (s. S. 137 ) MPO negativ Prävalenz 80%, nicht spezifisch ANA-IFT (s. S. 129 ) Prävalenz 50%, nicht spezifisch Primäre biliäre Zirrhose Gesamt-IgM (s. S. 125 ) IgM-Erhöhung 70% Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 149 Immunologie / Autoimmunerkrankungen Antimitochondriale AAK (s. S. 129 ) Prävalenz 90%, in hohen Titern hochspezifisch AMA vom Typ 2 gelten als charakteristische Marker der PBC. Sp100-AAK (F) (s. S. 140 ) ANA-IFT: Fluoreszenzmuster nukleäre Dots. Prävalenz 16%, spezifisch Andere AK ANA (gesprenkeltes, homogenes Muster, Zentromere und Kernmembran) 50%, ANCA <10%, SMA (niedriger Titer) 10% Progressive systemische Sklerose (Sklerodermie, PSS) diffuse Form, limitierte Form oder CREST-Syndrom, Polymyositis/Sklerodermie-Overlap-Syndrom, systemische Sklerose bei MSTD. ANA-IFT (s. S. 129 ) AAK mit antinukleolärer Fluoreszenz: Fibrillarin, PM-Scl, Scl-70, RNA-Polymerase und andere. Zentromer-AAK: Prävalenz bei der diffusen Form 3-10%, bei der limitierten Form 60-80%, nicht spezifisch ENA-Screentest (Scl-70- und RNP-AAK) (s. S. 132 ) Scl-70-AAK Prävalenz 50-70%, hochspezifisch vor allem bei diffuser Form, schwere systemische Verläufe U1-RNP-AAK (RNP-AAK) Prävalenz 10-30%, hochspezifisch sprechen für eine Mischkollagenose PM-Scl-AAK (F) (s. S. 138 ) Prävalenz 20%, spezifisch spricht für Overlap mit Polymyositis; Ku-AAK (F) (s. S. 135 ) Prävalenz 5-25%, spezifisch Spricht für Overlap mit Polymyositis Rapid-progressive Glomerulonephritis (RPGN) Typ I: Goodpasture Syndrom Glomeruläre Basmalmembran-AAK (Prävalenz 95%, hochspezifisch) Typ II: Immukomplex Verschiedene Krankheitsbilder: SLE, Purpura Schönlein-Henoch, Varianten der postinfektiösen und idiopathischen GN Typ III: Pauci immun M. Wegener, mikroskopische Polyangiitis, Churg-Strauss-Syndrom, Pauci Immun crescentic GN Glomeruläre Basalmembran-AAK (s. S. 133 ) Prävalenz 95%, hochspezifisch c-ANCA (s. S. 130 ) PR3-positiv, hochspezifisch p-ANCA (s. S. 137 ) MPO-positiv, hochspezifisch Rheumatoide Arthritis CCP-AK (s. S. 131 ) Prävalenz 70-80%, hochspezifisch für die RA 150 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Immunologie / Autoimmunerkrankungen Sjögren-Syndrom Es wird zwischen isolierten (primären) Formen und sekundären bei anderen Autoimmunerkrankungen (RA, SLE, Sklerodermie, PBC, Autoimmunhepatitis u.a.) unterschieden. ANA-IFT (s. S. 129 ) AAK mit gesprenkelter Kernfluoreszenz (SSA- und SSB-AAK) Prävalenz 95-100%, nicht spezifisch. ENA-Screentest (SSA -und SSB-AAK) (s. S. 132 ) SSA-AAK: Prävalenz 96%, spezifisch SSB-AAK: Prävalenz 70%, spezifisch Systemischer Lupus erythematodes (SLE) Sonderformen des SLE: neonatale Lupus-Syndrome (neonataler Lupus, kongenitaler Herzblock), subakuter kutaner LE, sekundäres Sjögren-Syndrom, sekundäres Anti-Phospholipid-Syndrom, Arzneimittel-induzierter Lupus. ANA-IFT (s. S. 129 ) AAK mit: homogener Kernfluoreszenz (DNS, Histone, Nukleosomen), gesprenkelter Fluoreszenz (ENA-Antigene SSA,SSB, Sm und RNP), pleomorpher nukleärer Fluoreszenz (PCNA Bzw. Cyclin-AAK), zytoplasmatischer Fluoreszenz (Ribosomen) ds-DNA-AAK (s. S. 132 ) Markerantikörper für den SLE (ACR-Kriterien) Prävalenz: SLE aktiv mit Nierenbeteiligung 90%, SLE aktiv ohne Nierenbeteiligung 50-70%, SLE inaktiv <40%. ENA-Screentest (SSA-, SSB-, RNP-und Sm-AAK ) (s. S. 132 ) Sm-AAK: Prävalenz 10-30%, diagnostischer Marker des SLE mit einer hohen Spezifität 99%. SSA-AAK: Prävalenz 40%, spezifisch SSB-AAK: Prävalenz 10%, spezifisch U1-RNP-AAK: Hinweis auf MCTD; Prävalenz 40%, hochspezifisch Histon-AAK (F) (s. S. 134 ) Prävalenz 30-50%, spezifisch Nukleosomen-AAK (F) (s. S. 137 ) Nukleosomen-AAK sind spezifische frühdiagnostische Marker für den SLE (65% bei inaktivem, 100% bei aktivem LE). Sie werden auch bei dsDNS-AAK-negativen Patienten gefunden. Ribosomen-AAK (F) (s. S. 139 ) Prävalenz 10-20%, hochspezifisch Phospholipid-AAK (siehe APS) (s. S. 145 ) Cardiolipin-AAK, beta-2-Glykoprotein 1-AAK und Lupus-Antikoagulans Prävalenz 40%, spezifisch für sekundäres APS Thrombozytopenie, autoimmune Thrombozyten-AAK (F) (s. S. 141 ) Phospholipid-AAK (s. S. 138 ) Thyreoiditis, chronisch lymphozytär Thyreoperoxidase-AK (TPO) (s. S. 142 ) Prävalenz >90%, spezifisch Thyreoglobulin-AK (TAK) (s. S. 170 ) Prävalenz 20-50% Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 151 Immunologie / Autoimmunerkrankungen TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 142 ) Prävalenz 10-20%, spezifisch Vaskulitis, relevante Autoantikörper c-ANCA (s. S. 130 ) PR3-positiv Prävalenz: M. Wegener 95%, Churg-Strauss-Syndrom 10%-20%; hochspezifisch p-ANCA (s. S. 137 ) MPO-positiv Prävalenz: Churg-Strauss-Syndrom 60-75%, klassische Panarteriitis nodosa 5-15%, mikroskopische Polyangiitis 60-90%, M. Wegener 10%; hoch spezifisch Wegener-Granulomatose s. Vaskulitis (s. S. 152 ) Wärmeautoantikörper Direkter Antiglobulintest (direkter Coombstest) (s. S. 183 ) Antikörpersuchtest (s. S. 183 ) Zöliakie (glutensensitive Enteropathie, Sprue) Gewebstransglutaminase-AK (tTG-AK) (s. S. 142 ) Zielantigen der Endomysium-Antikörper, Prävalenz 98%, hochspezifisch Endomysium-AAK (s. S. 132 ) Prävalenz 80-100%, hochspezifisch Gliadin-AK IgA und IgG (GAF-3x) (s. S. 133 ) 152 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Funktionstests Der folgende Teil stellt häufig eingesetzte Funktionstests vor. Funktionstests sind oft wesentlich aussagekräftiger als Basalwerte. Für eine labormedizinische Diskussion bzw. medizinische, individuelle Interpretation der Befunde ist es unverzichtbar, dass Sie: 1. die klinische Fragestellung angeben 2. Angaben zur Testdurchführung machen (Bezeichnung des Funktionstests) 3. die Proben genau kennzeichnen (Abnahmezeitpunkt). Bei Fragen bitte bereits in der Phase der Testplanung anrufen! Anleitungen für weitere Funktionstests finden Sie im Internet unter www.labor-enders.de oder gern auf telefonische Anfrage: Tel. 0711/63 57-210 oder -211. ACTH-Stimulationstest (Kurztest) Indikation 1. Diagnostik der NNR-Insuffizienz 2. Diagnostik eines late-onset AGS Prinzip Stimulation der NNR durch ACTH Durchführung Diagnostik der NNR-Insuffizienz Testbeginn 7-9 Uhr, der Patient sollte nüchtern sein und es während des Testablaufs bleiben 1. Basale Blutprobe (2-5 ml Vollblut ohne Zusätze) abnehmen, abzentrifugieren und kennzeichnen. 2. 25 IE (0,25 mg) synthetisches ACTH (Synacthen®) i. v. applizieren. 3. 60 Min. danach zweite Blutprobe (2-5 ml) abnehmen und kennzeichnen. 4. 120 Min. danach dritte Blutprobe (2-5 ml) abnehmen und kennzeichnen. 5. Alle Serumproben zur Cortisol-Bestimmung einsenden. Diagnostik eines late-onset-AGS Testdurchführung am 3. - 7. ZT morgens. Eine antiandrogene Therapie bzw. eine Corticoidgabe muss mindestens eine Woche zuvor beendet werden. 1. Basale Blutprobe (2-5 ml Vollblut ohne Zusätze) abnehmen, abzentrifugieren und kennzeichnen. 2. 25 IE (0,25 mg) synthetisches ACTH (Synacthen®) i. v. applizieren. 3. 60 Min. danach zweite Blutprobe (2-5 ml) abnehmen, abzentrifugieren und kennzeichnen. 4. Beide Serumproben zur 17-OH-Progesteron-Bestimmung einsenden. Cortisol (s. S. 162 ) 17-OH-Progesteron (s. S. 167 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 153 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Aldosteron-Suppressionstest Indikation DD des Hyperaldosteronismus Prinzip Prüfung der Supprimierbarkeit der Aldosteron-Sekretion durch NaCl-Infusion Durchführung Testbeginn 7-9 Uhr, der Patient sollte nüchtern sein und es während des Testablaufs bleiben. 1. Basale Blutprobe nach mind. 20-minütigem Liegen (5 ml Vollblut ohne Zusätze zentrifugieren und Serum tieffrieren) abnehmen 2. 2000 ml 0,9 % NaCl über 4 Std. infundieren. 3. Danach 2. Blutprobe abnehmen, zentrifugieren und Serum tieffrieren. 4. Beide Proben kennzeichnen und zur Aldosteronbestimmung einsenden. Aldosteron (s. S. 160 ) Captopril-Test Indikation 1. Diagnostik der Nierenarterienstenose, Abgrenzung zum essentiellen Hypertonus 2. Diagnostik des primären Hyperaldosteronismus (PHA) Prinzip Prüfung der Stimulierbarkeit der Renin-Sekretion; Prüfung der Supprimierbarkeit der Aldosteron-Sekretion bei primärem Hyperaldosteronismus Durchführung bei Abgrenzung Nierenarterienstenose gegen essentiellen Hypertonus 1. Blutentnahme für Renin und Aldosteron basal nach mind. 30-minütigem Liegen (EDTA-Plasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren) 2. Einnahme von 25 mg Captopril 3. Blutentnahme 30 Minuten nach Einnahme von Captopril für Renin und Aldosteron (EDTA-Plasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren) Durchführung z. A. des primären Hyperaldosteronismus (PHA) 1. Blutentnahme für Renin und Aldosteron basal nach mind. 30-minütigem Liegen (EDTA-Plasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren) 2. Einnahme von 25 mg Captopril 3. Blutentnahme nach 1 und 2 Stunden für Renin und Aldosteron (EDTA-Plasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren) Aldosteron (s. S. 160 ) Renin (s. S. 168 ) Clonidin-Test Clonidin ist ein alpha-adrenerger Agonist, der zentral angreift und die Freisetzung von Katecholaminen unterdrückt. Beim Phäochromozytom ist ein Anstieg der Plasmakatecholamine nicht durch die Erhöhung der Sympathikusaktivität, sondern autonom, d. h. durch Diffusion der vermehrt gebildeten Katecholamine in den Kreislauf unter Umgehung der normalen Speicherungs- und Freisetzungsmechanismen, bedingt. Indikation V.a. Phäochromocytom Prinzip Prüfung der Supprimierbarkeit der Katecholamine 154 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Durchführung (Schnelltest) Mindestens 24 Std. vor Beginn antihypertensive Therapie unterbrechen, ausgenommen sind Calciumantagonisten bei intolerablem Blutdruck (systolisch über 180 mmHg, diastolisch über 110 mmHg) 1. Nach 12stündiger Bettruhe und Fasten Legen einer Dauerkanüle mindestens 30 min. vor Testbeginn. 2. Anschließend einmalige orale Gabe von 0,3 mg Clonidin. 3. Blutentnahme (EDTA-Plasma, tiefgefroren) basal, nach 1, 2 und 3 Std. zur Bestimmung von Adrenalin und Noradrenalin. Durchführung über Nacht 1. Am Tag sammelt der Patient von 9-21 h Urin zur Katecholaminbestimmung (Sammelgefäß 1). Dafür geht der Patient um 9 Uhr morgens zur Toilette und verwirft den zu diesem Zeitpunkt gelassenen Urin. Alle weiteren Urinproben werden nun gesammelt. Zusatz von Salzsäure nach dem 1. Urin nicht vergessen. Um 21 Uhr gibt der Patient zum letzten Mal den Urin in das Sammelgefäß 1. 2. Um 21 h werden 0,3 mg Clonidin oral verabreicht. 3. Von 21-7 h am nächsten Morgen den Nacht-Urin sammeln (Sammelgefäß 2). Zusatz von Salzsäure nach dem 1. Urin nicht vergessen. Um 9 Uhr morgens am nächsten Tag leert der Patient zuletzt seine Blase und gibt den Urin in das Sammelgefäß 2. Gemessen wird in beiden Sammelurinen die auf Kreatinin-bezogene Katecholaminausscheidung. Katecholamine im Urin (s. S. 165 ) Katecholamine im Plasma (F) (s. S. 166 ) D-Xylose-Belastungstest Indikation Malabsorptionssyndrom, V. a. Störungen der funktionellen Integrität des oberen Dünndarmes Prinzip Zur Beurteilung der intestinalen Kohlenhydratresorption Durchführung Die Untersuchung erfolgt am nüchternen, ruhenden Patienten D-Xylosebestimmung im Urin 1. Vor Testbeginn muss die Blase entleert werden. 2. Orale Gabe von 25 g D-Xylose (Kinder: 15 g/m2 Körperoberfläche), die in der Hälfte der erforderlichen Menge Leitungswasser (bei Erwachsenen 500 ml) gelöst sind. 3. Innerhalb der ersten beiden Stunden die andere Hälfte Leitungswasser zu trinken geben. Gesamte Flüssigkeitsmenge: 1 Liter; 600 ml/m2 Körperoberfläche bei Kindern. 4. Nach der Xylosegabe 5 Stunden lang den Urin gewissenhaft sammeln, Volumen messen und im Kühlschrank aufbewahren. D-Xylosebestimmung im Blut 1. Mit Fluorid-Monovette Basale NaF-Blutprobe entnehmen und beschriften. 2. Orale Gabe von 25 g D-Xylose (Kinder: 15 g/m2 Körperoberfläche), die in der Hälfte der erforderlichen Menge Leitungswasser (bei Erwachsenen 500 ml) gelöst sind. 3. Innerhalb der ersten Stunde die andere Hälfte Leitungswasser zu trinken geben; Gesamte Flüssigkeitsmenge: 1 Liter; 600 ml/m2 Körperoberfläche bei Kindern. 4. Nach 1 Stunde bei Kindern bzw. nach 2 Stunden bei Erwachsenen zweite NaF-Blutprobe entnehmen und beschriften. Xylose i. Urin (F) (s. S. 225 ) Xylose (F) (s. S. 195 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 155 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Dexamethason-Hemmtest Da Dexamethason, wie andere synthetische Corticosteroide, die endogene Cortisolproduktion supprimiert, gleichzeitig aber in den kommerziellen immunologischen Testsystemen mit Cortisol kaum Kreuzreaktivität zeigt, werden unter Dexamethasongabe in der Regel erniedrigte Cortisolspiegel gemessen. Bei Vorliegen eines M. Cushing ist der Cortisolspiegel dagegen nur eingeschränkt supprimierbar. Indikation 1. Diagnostik des Cushing-Syndroms (1 mg Dexamethason-Kurztest) 2. DD des Cushing-Syndroms (8 mg Dexamethason-Langzeittest) Prinzip Prüfung der Supprimierbarkeit der Cortisolsekretion durch Dexamethason Durchführung (Kurztest) 1. Am ersten Tag dem nüchternen Patienten zwischen 7-8 Uhr 2-5 ml Blut (Serum) zur Bestimmung von Cortisol abnehmen. 2. Um 21-23 Uhr des selben Tages 1 mg Dexamethason per os geben (Kinder 300 µg/qm Körperoberfläche (Hindmarsh PC, Brook CG: Single dose dexamethasone suppression test in children: dose relationship to body size. Clin Endocrinol 1985;23:67-70)). 3. Am zweiten Tag wieder zwischen 7-8 Uhr die zweite Blutprobe abnehmen 4. Proben kennzeichnen und zur Cortisolbestimmung einsenden. Durchführung (Langzeit-Test) 1. Am ersten Tag dem nüchternen Patienten zwischen 7-9 Uhr 2-5 ml Blut (Serum) abnehmen. 2. Alle 6 Std. über 2 Tage je 2 mg Dexamethason per os geben. 3. Am 3. Tag (oder letzten) die 2. Blutprobe zwischen 7-9 Uhr abnehmen. 4. Proben kennzeichnen und zur Cortisolbestimmung einsenden. Cortisol (s. S. 162 ) Eisenresorptionstest Indikation Zur Feststellung eines latenten Eisenmangels oder einer Eisenresorptionsstörung. Prinzip Der nach oraler Gabe einer Eisen (II)-Verbindung festzustellende Anstieg des Eisenspiegels im Serum korreliert mit dem Ausmaß des Eisenmangels. Bei Gesunden erfolgt ein nur geringer Anstieg des Eisenspiegels im Serum (bis ca. 180 µg/dl). Bei Eisenmangelanämien und intakten Resorptionsverhältnissen steigt der Serumeisenspiegel von erniedrigten Ausgangswerten nach 2-4 Std. auf 200 µg/dl und darüber an. Bei Infekt- und Tumoranämien sowie Resorptionsstörungen erfolgt keine oder nur eine geringgradige Anhebung des Serumeisenspiegels. Durchführung Der Patient muss nüchtern sein und während der Versuchszeit Bettruhe einhalten. 1 Std. nach Einnahme des Eisenpräparates kann er frühstücken. 1. Nach Abnahme von 2 ml Blut für den Vergleichswert 200 mg zweiwertiges Eisen (Handelspräparat) per os verabreichen. 2. Je 2, 4 (und 6) Std. nach der Eisengabe erfolgt eine Blutentnahme zur Serumeisenbestimmung. Eisen (s. S. 202 ) 156 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie GnRH-Test (LH/FSH-Stimulationstest mit LH-RH) Indikation Nachweis/Ausschluss einer Hypophysenvorderlappen-Insuffizienz im Regelkreis HVL Gonaden Prinzip Stimulation der Ausschüttung von LH bzw. FSH mit Gonadotropin-releasing Hormon (LH-RH) Durchführung Morgens, bei Frauen in der Lutealphase des Zyklus 1. 5 ml Venenblut zur Bestimmung der Basalwerte von LH und FSH entnehmen. 2. 100 µg Gn-RH (Relefact LH-RH®) i. v. applizieren. 3. Nach 30 und 60 Min. erneut Blut zur Bestimmung des LH und FSH entnehmen. LH (luteinisierendes Hormon) (s. S. 167 ) FSH (Follikel-stimulierendes Hormon) (s. S. 163 ) Insulinom-Abklärung Indikation Z. A. eines Insulinoms bei unklaren Hypoglykämien Prinzip Nachweis einer durch inadäquate Proinsulin/Insulin-Sekretion unter Nahrungskarenz entstehenden Hypoglykämie In der unten beschriebenen Kombination ist selten ein längerer Hungerversuch erforderlich, um ein Insulinom zu diagnostizieren. Intaktes Proinsulin weist die höchste Sensitivität für die Insulinomdiagnostik auf. Durchführung 1. Morgens nüchtern Blutzucker (Glucose) bestimmen. 2. Liegen die Glucosewerte jetzt schon unter 50 mg/dl (= 2,8 mmol/l), Blut abnehmen (Serum sofort nach dem Durchgerinnen zentrifugieren und tieffrieren) und daraus Insulin, C-Peptid und intaktes Proinsulin bestimmen lassen und den Test abbrechen. 3. Liegt der Glucosespiegel über 50 mg/dl, den Patienten weiterhin nüchtern lassen und alle 60 min bzw. bei Auftreten von Zeichen einer Hypoglykämie erneut den Blutzucker (Glucose) bestimmen. 4. Wenn der Glucosespiegel 50 mg/dl unterschreitet, erneut Blut abnehmen (Serum sofort nach dem Durchgerinnen zentrifugieren und tieffrieren) und daraus Insulin, C-Peptid und intaktes Proinsulin bestimmen lassen. 5. Wird auch nach 24 h ein Glucosewert von 50 mg/dl nicht unterschritten, wird der Test beendet. Lactose-Toleranz-Test Indikation V. a. Lactoseintoleranz d. h. Lactasemangel der Dünndarmschleimhaut Prinzip Prüfung der Lactaseaktivität (spaltet das Disaccharid Lactose in die Monosaccharide Galactose und Glucose) der Dünndarmschleimhaut über den Anstieg der Blutglucose nach einer definierten Lactosegabe Durchführung 1. Dem nüchternen Patienten venös NaF-Blut zur Glucosebestimmung entnehmen. 2. 50 g Laktose (z.B. Edelweiß-Milchzucker®) in 400 ml Wasser per os geben. 3. 60, 90 und 120 Minuten danach nochmals Blut zur Glucosebestimmung entnehmen, Proben kennzeichnen. Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 157 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Glucose (s. S. 200 ) Oraler Glucose-Toleranz-Test (oGTT) Indikation 1. V. a. latenten Diabetes mellitus 2. V. a. Insulinresistenz (z.B. bei PCO) 3. V. a. Gestationsdiabetes Prinzip Messung des Anstiegs der Blutglucose und ggf. von Insulin nach einer definierten Glucosegabe Durchführung Bei allen aufgeführten Tests darf der Patient nach der Glucosegabe nicht umherlaufen sondern sollte sitzen oder liegen. Bei V. a. latenten Diabetes mellitus oder Insulinresistenz 1. Dem nüchternen Patienten venös NaF-Blut zur Glucosebestimmung entnehmen. 2. 75 g Glucose in 300 ml Wasser (z.B. Dextro-O.G.-T. Saft®) per os geben (Kindern 7 ml = 1,75 g Glucose) pro kg KG. 3. 120 Minuten danach nochmals Blut zur Glucosebestimmung entnehmen, Proben kennzeichnen. Z. A. eines Gestationsdiabetes A) Screening mit 50 g Glucose 1. Die Patientin muss hierfür nicht nüchtern sein. 2. 50 g Glucose in 300 ml Wasser (z. B. 200 ml des Dextro-O.G.T.-Safts® mit Wasser auf 300 ml auffüllen) per os geben. 3. 60 Minuten danach venös NaF-Blut zur Glucosebestimmung entnehmen. B) oGTT mit 75 g Glucose (empfohlenes Verfahren) 1. Abnahme von NaF-Blut zur Nüchtern-Glucose-Bestimmung. 2. Der nüchternen Patientin venös NaF-Blut zur Glucosebestimmung entnehmen. 3. 75 g Glucose (z. B. eine Flasche Dextro-O.G.T.-Saft®) per os geben. 4. 60 und 120 Minuten danach nochmals Blut zur Glucosebestimmung entnehmen. Proben kennzeichnen. Glucose (s. S. 200 ) TRH-Test (TSH-Stimulationstest mit TRH) Test zum Nachweis/Ausschluss von Funktionsstörungen der Schilddrüse bzw. zur Kontrolle der Therapie mit SD-Hormonen. Aufgrund der heute verfügbaren ultrasensitiven TSH-Bestimmungsmethoden i. d. R. überflüssig. Indikation Abklärung einer Hyper- bzw. Hypothyreose Prinzip Durch Gabe des hypothalamischen Hormons TRH (Thyreotropin-releasing Hormon) wird die Sensitivität der Hypophysen-Schilddrüsen-Achse überprüft. Durchführung des intravenösen TRH-Tests: TRH (Thyreotropin-Releasing Hormon) kann intravenös, oral oder pernasal verabreicht werden. Wegen der variablen Resorption der nasalen bzw. oralen Applikation empfehlen wir die intravenöse Applikation. 158 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie 1. Blut zur Bestimmung des basalen TSH und fT4 abnehmen. 2. 200 µg TRH (z. B. Antepan®, Relefact-TRH®, Thyreoliberin®) i. v. applizieren (bei Kindern 7 µg/kg KG). 3. Exakt 30 min. nach der TRH-Injektion nochmals Blut für die Bestimmung des TSH-Spiegels nach TRH abnehmen. Proben kennzeichnen. TSH (s. S. 169 ) Abnahme vor und 30 Minuten nach einer i. v. TRH-Gabe Wachstumshormon-(STH-) Stimulationstest Indikation Z. A. eines hypophysären Minderwuchses. Prinzip Stimulation durch Hypoglykämie, Arginin, Clonidin u. a. führen bei nicht-funktionsgestörter Hypophyse zu verstärkter Ausschüttung von STH. Durchführung Stimulation durch Insulin-bedingte Hypoglykämie Hypoglykämie führt bei normaler Funktion des HVL zu kräftiger (gegenregulatorischer) Ausschüttung von STH. Bitte genaue Testvorschrift anfordern! Hinweis: beim Insulin-Hypoglykämie-Test kann gleichzeitig die sekretorische Kapazität der Achse HVL-NNR geprüft werden (Bestimmung von ACTH und Cortisol). Der Test muss unter kontinuierlicher medizinischer Überwachung durchgeführt werden. Stimulation durch Argininhydrochlorid 1. Blutabnahme zur Bestimmung von STH, basal. 2. Gabe von 0,5 g/kg KG Argininhydrochlorid, verdünnt 1:10 mit physiologischer NaCl-Lösung morgens nüchtern. 3. Abnahme von STH nach 30, 60 und 90 Minuten. STH (s. S. 171 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 159 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Endokrinologie Acetylcholinesterase im Fruchtwasser (F) Material: Fruchtwasser Menge: 2 ml Methode: ELPHO Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage) Indikation: V. a. Neuralrohrdefekt Referenzbereich: negativ ACTH (Adrenocorticotropes Hormon) Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 300 µl Methode: ECLIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Abklärung der adreno-corticotropen Achse. DD des Hypercortisolismus, Abklärung einer NNR-Insuffizienz. Referenzbereich: 7-67 ng/l ADH (Antidiuretisches Hormon, Vasopressin) (F) Zur Beurteilung ist die parallele Bestimmung der Serumosmolalität notwendig. Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 500 µl Methode: RIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Indikation: V. a. Diabetes insipidus Referenzbereich: 2-8 ng/l Aldosteron gleichzeitige Bestimmung von Renin empfohlen. Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Der Patient sollte vor der Blutentnahme mind. 15 Minuten liegen. Verschiedene Antihypertensiva und Diuretika (insbesondere Spironolacton) sollten bereits Wochen vor der Bestimmung abgesetzt werden. Eine Liste mit den möglichen Antihypertensiva finden Sie im Internet unter www.labor-enders.de/hyperaldosteronismus.html Material: Serum, gefroren Menge: 1000 µl Methode: RIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 24 Stunden) Indikation: Abklärung der NNR-Funktion. V. a. prim./sek. Hyperaldosteronismus (Conn-Syndrom, Nierenarterienstenose), V. a. M. Addison. Abklärung eines arteriellen Hypertonus. Referenzbereich: nach 15-minütigem Liegen: 20-150 ng/l Aldosteron, frei im Urin (F) Bitte Sammelmenge angeben. Urin nicht ansäuern! Gekühlt sammeln. Ein Aliquot von ca. 5 ml Urin nach dem Sammeln abtrennen und tieffrieren. Material: 24 h-Sammelurin, gefroren Menge: 2000 µl Methode: RIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Hyperaldosteronismus Referenzbereich: 0,1-0,5 µg/24h 160 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Aldosteron-18-Glucuronid im Urin (F) Bitte Sammelmenge angeben. Urin nicht ansäuern! Gekühlt sammeln. Ein Aliquot von ca. 5 ml Urin nach dem Sammeln abtrennen und tieffrieren. Material: 24 h-Sammelurin, gefroren Menge: 1000 µl Methode: RIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Hyperaldosteronismus Referenzbereich: 3,5-20 µg/24h alpha-Fetoprotein (AFP) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Leberzell-Karzinom. Schwangerschaft: Abklärung Neuralrohrdefekt-Risiko, Marker für das Trisomie-21-Risiko Referenzbereich: Schwangerschaft siehe Befund; nicht-schwangere Erwachsene und Kinder ab 10 Monate: <7,5 kU/l alpha-Fetoprotein (AFP) im Fruchtwasser (F) bitte das Gestationsalter (SSW) exakt angeben Material: Fruchtwasser Menge: 5 ml Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Neuralrohrdefekt Referenzbereich: s. Befund (je nach SSW) kU/l Androstandiol-Glucuronid (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: RIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Referenzbereich: M: 3,4-22 F: 0,2-6,0 µg/l Androstendion Material: Serum Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: s. Befund µg/l Anti-Müller-Hormon (AMH) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Abklärung der Fertilität bzw. der ovariellen Restfunktion, V. a. PCO-Syndrom, Tumormarker des Granulosazelltumors des Ovars Referenzbereich: Normbereich alters- und geschlechtsabhängig. Ausführliche Normbereiche können im Internet unter http://www.labor-enders.de/amh.html eingesehen werden oder telefonisch unter Tel. 0711/6357-210 erfragt werden. Frauen im fertilen Alter: 1 - 8, postmenopausal: < 0,1, Erwachsene Männer: 1,5-4,3 µg/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 161 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie beta-hCG (humanes Chorion-Gonadotropin) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Referenzbereich: Schwangerschaft siehe Befund, nicht schwanger: <2 U/l C-Peptid Blutentnahme nach 12stündiger Nahrungskarenz. Das Serum direkt nach dem Durchgerinnen vom Blutkuchen trennen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: (nüchtern) 0,28-1,7 nmol/l Calcitonin (s. S. 170 ) Cortisol im Serum Z. A. einer NNR-Insuffizienz Abnahme um 8:00 h, Tagesprofil: 8:00 h, 12:00 h, 16:00 h, 20:00 h, (24:00 h). Bei V. a. Hypercortisolismus ist insbesondere die Entnahme um 24:00 Uhr zu empfehlen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: 50-250 (morgens 8:00 h), Tagesprofil und nach Dexamethason: siehe Befund. Einheit: µg/l Cortisol, freies im Urin (F) Bitte Sammelmenge angeben Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze Menge: 10 ml Methode: RIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: 15-100 µg/24h DHEA (F) da DHEA in vivo quantitativ in DHEA-S vorliegt, sollte der Bestimmung von DHEA-S der Vorzug gegeben werden. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: RIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: s. Befund µg/l DHEA-S Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: alters- und geschlechtsabhängig, s. Befund µg/l Dihydrotestosteron (F) Material: Serum Menge: 2 ml Methode: RIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: s. Befund µg/l 162 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Erythropoietin (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ILMA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: 5-25 U/l Estradiol (E2) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Referenzbereich: s. Befund ng/l Estriol, freies (freies E3) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden) Indikation: Marker für Screening auf Trisomie 21 im zweiten Trimester. Referenzbereich: Schwangerschaft: siehe Befund. Männer und nicht-schwangere Frauen: <0,07 µg/l Estron (E1) (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: RIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: s. Befund ng/l FSH (Follikel-stimulierendes Hormon) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: s. Befund U/l Gastrin (F) Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Serum, gefroren Menge: 1000 µl Methode: RIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: <115 ng/l Glucagon (F) Abnahme nach 12stündiger Nahrungskarenz. Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 1 ml Methode: RIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage) Referenzbereich: 60-177 ng/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 163 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie HOMA-Index Bestimmung von Insulin und Glucose aus nüchtern gewonnenem Serum. Der Patient muss mind. 12 Stunden vor Blutentnahme nüchtern gewesen sein. Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: berechnet Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: < 2,0 unauffällig; 2,0-2,5 grenzwertig; >2,5 Insulinresistenz IGF-1 (Insulin-like Growth Factor 1, Somatomedin C) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: alters- und geschlechtsabhängig, s. Befund µg/l IGF-BP3 (IGF-bindendes Protein 3) Material: Serum Menge: 200 µl Methode: CLIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: s. Befund µg/l Inhibin A Material: Serum Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Marker für das Trisomie-21-Risiko in der Schwangerschaft (2. Trimester, siehe Quadruple-Test und Integriertes Screening), Verlaufskontrolle eines Granulosazell-Tumors Referenzbereich: s. Befund ng/l Inhibin B Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen. Material: Serum Menge: 300 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Abklärung Fertilität, Verlaufskontrolle eines Granulosazell-Tumors Referenzbereich: alters- und geschlechtsabhängig, s. Befund ng/l Insulin Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Serum, gefroren Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: (nüchtern) 2,5-20 mU/l 164 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Katecholamine Katecholamine im Urin (Adrenalin, Noradrenalin, Dopamin) Bitte Sammelmenge angeben. Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt NACH der ersten Miktion! Material: Glucoexact Menge: 10 ml Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. Phäochromozytom Referenzbereich: siehe Einzelwerte Adrenalin im Urin Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt NACH der ersten Miktion! Material: Glucoexact Menge: 10 ml Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: Erwachsene: <20 µg/24h Noradrenalin im Urin Bitte Sammelmenge angeben Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt NACH der ersten Miktion! Material: Glucoexact Menge: 10 ml Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: Erwachsene: 15-80 µg/24h Dopamin im Urin Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt NACH der ersten Miktion! Material: Glucoexact Menge: 10 ml Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: 65-450 µg/24h Metanephrine im Plasma Untersucht werden Metanephrin und Normetanephrin Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, welches unmittelbar nach Blutentnahme durch Zentrifugation gewonnen und tiefgefroren wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 800 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 24 Stunden) Indikation: sensitivster Marker für ein Phäochromozytom Referenzbereich: Metanephrin <100, Normetanephrin <165 ng/l Normetanephrin im Urin (F) Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Material: Glucoexact Menge: 5 ml Methode: HPLC Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: 88-444 µg/24h Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 165 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Katecholamine im Plasma (F) (Adrenalin, Noradrenalin) Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Falls kein sofortiges Tieffrieren möglich ist, muss ein spezielles Stabilisator-Röhrchen eingesetzt werden, welches Sie unter Tel. 0711/6357-104 bestellen können. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 1500 µl Methode: HPLC Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Phäochromozytom Referenzbereich: siehe Einzelwerte Adrenalin im Plasma (F) Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 1500 µl Methode: HPLC Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: 30-90 ng/l Noradrenalin im Plasma (F) Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 1500 µl Methode: HPLC Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: 165-460 ng/l Hydroxyindolessigsäure (5-HIES) Obligates Ansäuern mit 10 ml reiner Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Cave: keine Salzsäure verwenden! Material: Glucoexact Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <9,0 mg/24h Homovanillinsäure im Urin Obligates Ansäuern mit 10 ml reiner Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Cave: keine Salzsäure verwenden! Material: Glucoexact Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <8,0 mg/24h Vanillinmandelsäure im Urin Obligates Ansäuern mit 10 ml reiner Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Cave: Keine HCl verwenden! Material: Glucoexact Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: <6,5 mg/24h 166 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Metanephrine im Urin (F) Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt NACH der ERSTEN Miktion! Material: Glucoexact Menge: 10 ml Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: 52-341 µg/24h LH (luteinisierendes Hormon) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Referenzbereich: s. Befund U/l Parathormon, PTH (intakt) Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde oder aus gefrorenem Serum, das sofort nach Durchgerinnen abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde bestimmbar. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden) Referenzbereich: 12-45 ng/l PlGF (Placental Growth Factor) Bitte immer die SSW angeben. Nur Serum einsenden, welches vom Blutkuchen getrennt wurde. Stabilität bei Raumtemperatur 3 Tage. Menge: 300 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: V. a. Präeklampsie Referenzbereich: s. Befund ng/l Progesteron Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: V. a. Corpus luteum-Insuffizienz Referenzbereich: s. Befund µg/l 17-OH-Progesteron Progesteron stört den Test, daher muss die Abnahme außerhalb der Lutealphase erfolgen! Material: Serum Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Adrenogenitales Syndrom (AGS), auch late-onset AGS Referenzbereich: s. Befund µg/l Proinsulin, intakt (F) Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 1 ml Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage) Indikation: V. a. Insulinom Referenzbereich: <11 pmol/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 167 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Prolaktin Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Prolaktinom, Galaktorrhoe, Hyperandrogenämie Referenzbereich: M: <21, F: <23 µg/l PTHrP (PTH-related Protein) (F) (s. S. 209 ) Renin Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 1200 µl Methode: CLIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: (in Ruhe) 2-16 ng/l Risikoabschätzung für Trisomie 21 im 1. Trimester mittels Bestimmung von PAPP-A und freier beta-Kette des hCG. Obligate Angaben für das zertifizierte Ersttrimester-Screening: Geburtsdatum der Mutter, SSL, NT, Gewicht der Patientin, Datum der Blutabnahme und des Ultraschalls. Die Berechnung des Risikos unter Einschluss der Nackentransparenz ist nur für Kollegen, die durch die FMF London oder FMF-Deutschland zertifiziert sind, möglich. Für genauere Informationen Tel. 0711/6357-210 oder -211 oder im Internet unter www.labor-enders.de/ersttrimester-screening.html Das Serum muss direkt nach dem Durchgerinnen vom Blutkuchen getrennt und vor Erwärmung über 25◦ C geschützt werden. Das Serum muss unser Labor binnen 48 Stunden (max. 72 Std.) erreichen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: TRACE (Kryptor) Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden) Indikation: Risikoabschätzung für das Vorliegen einer fetalen Trisomie 21, 18 und 13. Zeitfenster: SSL 45 bis 84 mm, entsprechend SSW 11+1 bis SSW 14+0 (nach Robinson). Risikoabschätzung für Trisomie 21 im 2. Trimester Die Risikoabschätzung im 2. Trimester kann mit dem Triple-Test (Trisomie-21-Erkennungsrate 69%) oder dem Quadruple-Test (Trisomie-21-Erkennungsrate 81%) erfolgen. Aufgrund der höheren Erkennungsrate und der früheren Verfügbarkeit des Ergebnisses ist das Ersttrimester-Screening den Verfahren im zweiten Trimester vorzuziehen. Triple-Test: AFP, hCG, freies Estriol. Quadruple-Test: AFP, hCG, freies Estriol und Inhibin A Obligate Angaben: Geburtsdatum der Mutter, Schwangerschaftsalter (Tag-genau) nach Ultraschall, Gewicht der Patientin, Tag der Blutabnahme. Ansatzhäufigkeit für den Triple-Test: täglich, Ansatzhäufigkeit für den Quadruple-Test: 1-2x/Woche Material: Serum Menge: 500 µl Methode: berechnet Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Risikoabschätzung für Trisomie 21 von SSW 14+0 bis SSW 19+6. 168 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Optimaler Zeitraum: SSW 14+3 bis 15+6. Integriertes Screening auf Trisomie 21 Beim Integrierten Screening auf eine fetale Trisomie 21 handelt es sich um eine Kombination von Ersttrimester-Screening (siehe oben) und dem Quadruple-Test im zweiten Trimester (SSW 14+0 bis 19+6, optimal 14+3 bis 15+6). Mit dieser Methode werden, bei 5% Falsch-Positiv-Rate, 95% der Trisomie-21-Fälle erkannt. Die Untersuchung kann als"Primär Integriertes Screening" erfolgen (PAPP-A und NT-Messung im 1. Trimester mit obligater Durchführung des Quadruple-Tests im 2. Trimester) oder als "Sequenziell Integriertes Screening" durchgeführt werden. Beim Sequenziell Integrierten Screening wird abhängig vom Ergebnis des Ersttrimester-Screenings entschieden, ob die Durchführung des Quadruple-Tests im 2. Trimester erforderlich ist oder nicht. Bitte verwenden Sie unser spezielles Anforderungsformular, downloadbar unter www.labor-enders.de/formulare.html Genauere Informationen erhalten Sie unter Tel. 0711/6357-210 oder -211 oder im Internet unter www.labor-enders.de/integriertes_screening.html Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: berechnet Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Risikoabschätzung für das Vorliegen einer fetalen Trisomie 21. Zeitfenster für den 1. Teil: SSW 10+3 bis 12+6 (möglich bis 13+6, jedoch geringere Erkennungsrate) Zeitfenster für den 2. Teil: SSW 14+0 bis 19+6 (empfohlen: 14+3 bis 15+6). Schilddrüsen-Diagnostik TSH, basal Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Referenzbereich: 0,3-4,0 mU/l fT3 (Trijodthyronin, frei) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: 1,8-4,6 ng/l fT4 (Thyroxin, frei) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: 9,4-18 ng/l TG (Thyreoglobulin) (s. S. 170 ) TRH-Test (TSH, basal und nach Stimulation) Material: Serum Menge: 2x 500 µl Referenzbereich: Anstieg um 2,5 - 25 mU/l MAK siehe TPO-AAK (s. S. 142 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 169 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie TAK (Thyreoglobulin-AAK) (s. S. 141 ) TPO-AK (s. S. 142 ) TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 142 ) Calcitonin C-Zell-Karzinom der Schilddrüse Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Serum, gefroren Menge: 1000 µl Methode: CLIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: M: <3,2 F: <1,8 pmol/l TG (Thyreoglobulin) Schilddrüse (papilläres Ca) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: TRACE (Kryptor) Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <60 µg/l Serotonin im Plasma (F) besser: HIES im 24 h-Urin, da hiermit ein Zeitraum von 24 Std. abgedeckt wird. Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde oder aus gefrorenem Serum, das sofort nach Durchgerinnen abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde, bestimmbar. Material: Serum, gefroren, EDTA-Plasma, gefroren Menge: 500 µl Methode: HPLC Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Karzinoid Referenzbereich: s. Befund µg/l Sexualhormon-bindendes Globulin (SHBG) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Hyperandrogenämie, Diagnostik des PCO-Syndroms, Abschätzung des freien Anteils des Testosterons Referenzbereich: M: 10-55, F: 30-90 nmol/l sFlt-1 Bitte immer die SSW angeben. Nur Serum einsenden, welches vom Blutkuchen getrennt wurde. Stabilität bei Raumtemperatur 3 Tage. Material: Serum Menge: 300 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: V. a. Präeklampsie Referenzbereich: s. Befund ng/l 170 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie sFlt-1/PlGF-Quotient Bitte immer die SSW angeben. Methode: berechnet Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: V. a. Präeklampsie. Referenzbereich: < 85, Graubereich 33 - 85 STH (Somatotropes Hormon / hGH) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <7 µg/l Testosteron Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: M: 3,0-9,0 F: 0,1-0,55 µg/l Testosteron, frei (F) Wegen der größeren Präzision, der höheren Aussagekraft und der schnelleren Verfügbarkeit empfehlen wir statt der Bestimmung des freien Testosterons die Bestimmung des Gesamt-Testosteron-Spiegels in Kombination mit SHBG aus denen der freie Androgenindex (FAI) berechnet werden kann. Diese Bestimmungen werden täglich durchgeführt. Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: RIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Referenzbereich: s. Befund ng/l VIP (Vasoaktives Intestinales Polypeptid) (F) (s. S. 209 ) VIPom Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 171 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Andrologie Spermiogramm Beurteilung des Ejakulates nach WHO-Kriterien (WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen - 5th edition, 2010). Mikroskopische Untersuchung des Ejakulates mit Bestimmung der Anzahl, Motilität und Morphologie der Spermatozoen. Bestimmung von Fructose, Citrat, Zink und alpha-Glucosidase im Seminalplasma. Diagnostik nur möglich, wenn das Sperma im Labor gewonnen wurde. Telefonische Terminvereinbarung erforderlich (0711 / 6357-0). Material: Sperma Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche) Indikation: Abklärung bei unerfülltem Kinderwunsch, vor IVF, nach Sterilisation. Referenzbereich: s. Befund alpha-Glucosidase im Seminalplasma Material: Seminalplasma, Sperma Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Beurteilung der Funktion der Epididymis bei Abklärung von Infertilität Referenzbereich: >19 mU/Ejakulat Carnitin im Seminalplasma (F) Material: Seminalplasma, Sperma Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Beurteilung der Nebenhodenfunktion im Rahmen einer Fertilitätsabklärung Referenzbereich: >4,0 mg/dl Citrat im Seminalplasma Material: Seminalplasma, Sperma Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Beurteilung der Funktion der Prostata bei Abklärung von Infertilität Referenzbereich: >52 µmol/Ejakulat Fructose im Seminalplasma Material: Seminalplasma, Sperma Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Beurteilung der Funktion der Samenbläschen bei Abklärung von Infertilität Referenzbereich: >13 µmol/Ejakulat PSA im Seminalplasma Material: Seminalplasma, Sperma Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zur Beurteilung der Prostatafunktion bei Abklärung der Fertilität Referenzbereich: 570-1420 mg/l 172 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Zink im Seminalplasma Material: Seminalplasma, Sperma Menge: 1000 µl Methode: AAS Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Beurteilung der Funktion der Prostata bei Abklärung einer Infertilität Referenzbereich: >79 mg/l DHEA-S (Dehydroepiandrosteron-Sulfat) (s. S. 162 ) FSH (Follikel-stimulierendes Hormon) (s. S. 163 ) LH (luteinisierendes Hormon) (s. S. 167 ) SHBG (Sexualhormon-bindendes Globulin) (s. S. 170 ) Testosteron (s. S. 171 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 173 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Gerinnung INR (International Normalized Ratio) Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut. Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut Menge: 250 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: Monitoring einer Cumarintherapie (z. B. Marcumar) Referenzbereich: Therapeutisch je nach Indikation 2,5-4,5 Quick, Thromboplastinzeit (TPZ) Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut. Zum Monitoring einer Cumarintherapie sollte die INR verwendet werden. Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut Menge: 250 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: präoperativ, Leberfunktionsprüfung, Blutungsneigung Referenzbereich: >70 % PTT Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut. Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut Menge: 250 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: präoperativ, bei Blutungsneigung, Monitoring einer Heparintherapie mit UFH Referenzbereich: 25-43 (Erw.) s Plasmathrombinzeit (PTZ) Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut. Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut Menge: 500 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: Dysfibrinogenämie, Fibrinogenmangel, Heparin-oder Hirudintherapie, Verbrauchskoagulopathie Referenzbereich: 16-20 s Fibrinogen Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut. Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut Menge: 250 µl Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Verbrauchskoagulopathie, Abklärung des kardiovaskulären Risikos Referenzbereich: 150-450 mg/dl 174 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Thrombozyten Bei V. a. EDTA-induzierte Pseudothrombopenie sollte parallel zum EDTA-Blut eine ThromboExact-Monovette eingesandt werden. Material: EDTA-Blut, Thrombozyten-Spezialmedium (ThromboExact) Menge: 300 µl Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: V. a. Thrombopenie, prä- und postoperativ, Petechien, unter Heparin-Therapie bei V. a. HIT Referenzbereich: 140-450 Tsd./µl Thrombozytenfunktionstest Die Bestimmung muss spätestens 4 Stunden nach Blutentnahme erfolgen. Dabei sollte das Blut möglichst wenig alteriert werden. Bitte, falls möglich, Blutabnahme im Labor anstreben. Material: Citratblut Menge: 5 ml Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden) Indikation: V. a. Thrombozytenfunktionsstörung, präoperativ bei vorheriger ASS-Therapie Referenzbereich: s. Befund Faktor VIII (F) Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 1000 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: verlängerte PTT, Monitoring einer Hämophilie A Referenzbereich: 70-150 % VWF (von-Willebrand-Faktor) (F) Wird immer in Kombination mit Faktor VIII und Ristocetin-Cofaktor bestimmt. Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: 2 - 3 x pro Woche Indikation: Bei Blutungsneigung, hochnormaler oder leicht erhöhter PTT, V. a. von Willebrand-Syndrom z. B. bei Menorrhagien ohne ASS-Einnahme Referenzbereich: 60-150 % Faktor VIII-Ristocetin-Cofaktor (F) Wird immer in Kombination mit Faktor VIII und dem von Willebrand-Faktor bestimmt. Nur Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 500 µl Methode: Thrombo-Aggl. Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Bei Blutungsneigung, hochnormaler oder leicht erhöhter PTT, V. a. von Willebrand-Syndrom z. B. bei Menorrhagien ohne ASS-Einnahme Referenzbereich: 60-150 % Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 175 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Faktor IX (F) Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 1000 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: verlängerte PTT, Monitoring einer Hämophilie B, Blutungsneigung Referenzbereich: 70-120 % Anti-Faktor Xa-Aktivität Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 500 µl Methode: Chromogen Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Monitoring einer Therapie mit kurzkettigen Heparinen (LMWH) Referenzbereich: 0,5-0,8 U/ml, in der Schwangerschaft (halbtherapeutisch): 0,4-0,6 U/ml Faktoren, weitere (F) Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Ggf. telefonische Rücksprache mit Dr. Alkier (0711 / 63 57-211) Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 1000 µl Kryofibrinogen (s. S. 196 ) Thrombophiliediagnostik Bei V. a. Thrombophilie empfehlen wir in der Regel zunächst nur die Basisdiagnostik bestehend aus den Aktivitäten von Protein C, Protein S und AT III, der APC-Resistenz, dem Lupus-Antikoagulans, dem Homocysteinspiegel und der Prothrombin-Mutation durchzuführen. Sind Parameter auffällig, wird die entsprechende Stufendiagnostik durchgeführt. Basisdiagnostik Folgende Parameter gehören in unserem Labor zur Basisdiagnostik der Thrombophilieabklärung: Protein C-Aktivität Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 600 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, familiäre Belastung Referenzbereich: >70 % Protein S-Aktivität Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 600 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, familiäre Belastung Referenzbereich: M: >69 %, F: >58 % 176 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie APC-Resistenz Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 600 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, bei familiärer Belastung sollte direkt die genetische Untersuchung erfolgen. Referenzbereich: >2,3 Ratio Antithrombin-Aktivität Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 600 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, familiäre Belastung, bei Verbrauchskoagulopathie Referenzbereich: >80 % Lupus-Antikoagulans Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 600 µl Methode: Koagulometrie Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie bzw eines Antophospholipidsyndroms und bei habituellen Aborten. Referenzbereich: negativ (qualitativ) Homocystein Nur aus EDTA-Plasma, Serum oder Citrat-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Serum ist prinzipiell schlecht geeignet, da der Zeitpunkt der Zentrifugation kritisch ist: Wird zu früh zentrifugiert, gerinnt das Serum nach; bei zu später Zentrifugation erhält man falsch-hohe Resultate. Der Patient muss vor der Blutentnahme nüchtern bleiben. Material: EDTA-Plasma, Serum, Citrat-Plasma Menge: 200 µl Methode: CLIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Abklärung einer Thrombophilie, Abklärung des kardiovaskulären Risikos, Verlaufskontrolle unter Folateinnahme. Referenzbereich: <10 µmol/l Prothrombin-Gen-Mutation (Faktor II) (PCR) (s. S. 104 ) Thrombophilie-Stufendiagnostik Ist ein Parameter der Basisdiagnostik positiv, sollte der entsprechende Parameter der Stufendiagnostik angeschlossen werden. Protein C-Antigen Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 200 µl Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung einer verminderten Protein-C-Aktivität Referenzbereich: >74 % Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 177 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Protein S-Antigen, gesamt Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 200 µl Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung einer verminderten Protein-S-Aktivität Referenzbereich: 60-120 % Protein S-Antigen, frei Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 600 µl Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung einer verminderten Protein-S-Aktivität Referenzbereich: 0,54-1,29 IU/ml Faktor-V-Leiden-Mutation (PCR) (s. S. 104 ) Antithrombin-Konzentration (F) Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, Serum Menge: 300 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Zur weiteren Abklärung bei verminderter Antithrombin-III-Aktivität Referenzbereich: 19-31 mg/dl Phospholipid-AAK (s. S. 138 ) Bei habituellen Aborten Teil der Basisdiagnostik, ansonsten bei positivem Lupusantikoagulans. MTHFR-Gen-Mutation (PCR) (s. S. 104 ) PAI-1-Gen-Mutation (PCR) (s. S. 104 ) D-Dimere Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: Citrat-Plasma, gefroren Menge: 600 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden) Indikation: Z. A. einer akuten Thrombose, Verlaufskontrolle Referenzbereich: <500 µg/l 178 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Hämatologie Blutbild, klein (umfasst: Erythrozyten, Leukozyten, Hb, Hk, MCV, MCHC, MCH und Thrombozyten) EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung nicht gekühlt. Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: Änämie, Verlaufskontrolle eine Fe-Substitution, Entzündung, nach Chemotherapie Blutbild, groß (umfasst: kleines Blutbild und maschinelles Differenzial-Blutbild, bei Auffälligkeiten zus. mikroskopisches Differenzial-Blutbild) EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung nicht gekühlt. Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: Änämie, Verlaufskontrolle eine Fe-Substitution, Entzündung, nach Chemotherapie Differenzial-Blutbild, manuell (Leukozytendifferenzierung, Beurteilung der Erythrozytenmorphologie) EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung nicht gekühlt. Material: EDTA-Blut, Kapillarblutausstrich, nativ Menge: 500 µl Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden) Indikation: Anämieabklärung, Abklärung einer Leukozytose, bei V. a. Leukämie, bei V. a. Sichelzellanämie oder Thalassämie Lymphozytendifferenzierung (s. S. 121 ) siehe großer zellulärer Immunstatus Hämoglobin Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: Ämämie, Verlaufskontrolle einer Fe-Substitution Referenzbereich: s. Befund Methämoglobin (F) EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte. Material: EDTA-Blut Menge: 600 µl Methode: Photometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: bei G-6-PDH-Mangel und unter evtl. Therapie mit folgenden Medikamenten (die Liste erhebt keinen Anspruch auf Vollständigkeit): Acetanilid, Anilin, Arsen, Benzol-Derivate, Chlorate, Chloroquin, Dapson, Dinitrophenol, Lidocain, Metoclopramid, Methylenblau, Nitrate und Nitrite (inkl. Nitroglycerin), Nitrofuran, Nitroprussid, Paraquat, Phenacetin, Phenol, Phenytoin, Prilocain, Primaquin, Rauchgas-Inhalation, Sulfonamide, Trinitrotoluol. CO-Hämoglobin (F) EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte. Material: EDTA-Blut Menge: 600 µl Methode: Photometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Bei V. a. Belastung mit CO (Kohlenmonoxid) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 179 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Anämieabklärung Blutbild, groß (s. S. 179 ) (umfasst: kleines Blutbild und Differenzial-Blutbild) EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung nicht gekühlt. Retikulozyten EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte. Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden) Indikation: V. a. verminderte oder gesteigerte Erythropoese Referenzbereich: 6-12 Promille Osmotische Resistenz (der Erythrozyten) Lithium-Heparinat-Blut Material: Heparinblut Menge: 9 ml Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Hämolyse, V. a. Sphärozytose Referenzbereich: s. Befund Glucose-6-PDH (im Erythrozyten) Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Favismus (G-6-PDH-Mangel-bedingte Hämolyse) Referenzbereich: 146-376 pU/Ery Ferritin Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Eisenmangel, V. a. chronische Entzündung. V. a. Hämochromatose Referenzbereich: M: 30-300 F: 25-150 µg/l Ferritin-Index (F) gleichzeitige Bestimmung des löslichen Transferrin-Rezeptors und CRP erforderlich Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: berechnet Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Zusatztest zur Diagnose eines Eisenmangels im Rahmen einer Anämie im Rahmen chronischer Erkrankungen oder bei chronischer Entzündung Referenzbereich: >1,5 (bei CRP-Werten <5 mg/l); >0,8 (bei CRP >5 mg/l) Transferrin Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Diagnostik und Therapiekontrolle von Eisenmangel und Eisenüberladung Referenzbereich: 1,74-3,48 g/l 180 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Transferrinsättigung Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: berechnet Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: weiterführende Diagnostik und Therapiekontrolle von Eisenmangel und Eisenüberladung Referenzbereich: 6-45 % Eisenbindungskapazität (total) Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: berechnet Ansatz: täglich Indikation: V.a. Eisenresorptionsstörung oder Eisenübeladung Referenzbereich: 259-388 µg/dl Vitamin B12 (s. S. 203 ) Folsäure (s. S. 204 ) Erythropoetin (F) (s. S. 163 ) Haptoglobin Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden) Indikation: V. a. intravasale Hämolyse Referenzbereich: siehe Befundbericht g/dl Hb-Elektrophorese (HbA2, HbF, HbS, HbC, HbE u.a.) EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte Material: EDTA-Blut Menge: 1000 µl Methode: IEF und HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Hämoglobinopathie oder Thalassämie Referenzbereich: s. Befund Sichelzelltest Zum Nachweis von HbS sollte zusätzlich eine Hb-Elektrophorese durchgeführt werden. EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte. Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. HbS-Anlage oder HbS-Krankheit Referenzbereich: s. Befund PNH-Diagnostik (CD55, CD59) (s. S. 122 ) Ham-Test (Säure-Serumtest) s. PNH-Diagnostik (s. S. 122 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 181 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Freies Hämoglobin Aus EDTA-Plasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde oder aus Serum, das sofort nach Durchgerinnen abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Material: Serum, EDTA-Plasma Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung einer intravasalen Hämolyse (s. auch Haptoglobin), auch i. R. der QK bei Eigenblutspenden Referenzbereich: <5 mg/dl Direkter Antiglobulintest (direkter Coombstest) (s. S. 183 ) Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut. Hämochromatose-Gen-Mutationen (PCR) (s. S. 101 ) ALP (alkalische Leukozyten-Phosphatase) Der Ausstrich muss aus frischem Kapillar- oder Heparinblut angefertigt und innerhalb von 3-4 Stunden fixiert werden. Blutentnahme im Labor zu empfehlen. Material: Kapillarblutausstrich, nativ, Heparinblut Menge: 4 Objekttr. Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Differentialdiagnose der CML (chronisch myeloische Leukämie) PAS-Färbung im Blut Der Ausstrich muss aus frischem Kapillarblut angefertigt werden. Material: Kapillarblutausstrich, nativ Menge: 4 Objekttr. Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Bei V. a. akute lymphatischer Leukämie Esterasefärbung im Blut Der Ausstrich muss aus frischem Kapillarblut angefertigt werden. Material: Kapillarblutausstrich, nativ Menge: 4 Objekttr. Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Bei V. a. akute monozytäre Leukämie Myeloperoxidase in Granulozyten Der Ausstrich muss aus frischem Kapillarblut angefertigt werden. Material: Kapillarblutausstrich, nativ Menge: 4 Objekttr. Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: Bei V. a. Einsenmangel oder -Überladung Referenzbereich: Bei V. a. akute myeloische Leukämie Lymphozytenproliferation (s. S. 123 ) Zellulärer Immunstatus (s. S. 121 ) 182 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Blutgruppen-Serologie Blutgruppe (AB0, Rh-Faktor, Antikörpersuchtest) Die Bestimmung der Blutgruppe beinhaltet gemäß den Richtlinien Hämotherapie auch den Antikörpersuchtest. Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut. Gemäß Richtlinien Hämotherapie ist für die blutgruppenserologischen Untersuchungen ein gesondertes Probenröhrchen abzunehmen. Das Probenröhrchen muss mit Vornamen, Namen und Geburtsdatum beschriftet sein, alternativ ist ein eindeutig zuordenbarer Barcode zulässig. Bei Einsendung eines kleineren Probenvolumens (z. B. Kinder, schlechte Venenverhältnisse) kann bei auffälligen Befunden die Nachforderung einer neuen Probe erforderlich werden. Im Einzelfall ist auch die Blutgruppenbestimmung aus Vollblut (Serumröhrchen) möglich. Material: EDTA-Blut Menge: 7,5 ml Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl. Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Mutterschaftsvorsorge. Prätransfusionelle Untersuchungen siehe Verträglichkeitsprobe. Antikörpersuchtest Bei auffälligem Befund erfolgt die Bestimmung der Antikörperspezifität und des Antikörpertiters sowie die Bestimmung der korrespondierenden erythrozytären Antigene. Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut. Gemäß Richtlinien Hämotherapie ist für die blutgruppenserologischen Untersuchungen ein gesondertes Probenröhrchen abzunehmen. Das Probenröhrchen muss mit Vornamen, Namen und Geburtsdatum beschriftet sein, alternativ ist ein eindeutig zuordenbarer Barcode zulässig. Bei Einsendung eines kleineren Probenvolumens (z. B. Kinder, schlechte Venenverhältnisse) kann bei auffälligen Befunden die Nachforderung einer neuen Probe erforderlich werden. Im Einzelfall ist auch die Einsendung von Vollblut (Serum-Röhrchen) möglich. Material: EDTA-Blut Menge: 7,5 ml Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl. Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Mutterschaftsvorsorge. Prätransfusionelle Untersuchungen siehe Verträglichkeitsprobe. Direkter Antiglobulintest (DAT, direkter Coombstest DCT) Bei positivem direktem Antiglobulintest weitere Abklärung mittels monospezifischem direktem Antiglobulintest sowie bedarfsweise Antikörperelution und Antikörperdifferenzierung. Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut. Bei Neugeborenen reichen <1 ml EDTA-Blut in aller Regel aus. Falls kein EDTA-Blut zur Verfügung steht, kann die Untersuchung auch aus Vollblut (Serum-Röhrchen) erfolgen; im Einzelfall kann dann die Nachforderung von EDTA-Blut erforderlich werden. Material: EDTA-Blut Menge: 7,5 ml Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl. Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Autoimmunhämolytische Anämie (AIHA), Morbus haemolyticus neonatorum, Abklärung einer Hämolyse weitere Blutgruppeneigenschaften A-Untergruppen: A1, A2 Rh-System: C, c, E, e (Rh-Formel), Cw, weak D Kell-System: K, k, Kp(a) Duffy-System: Fy(a), Fy(b) Kidd-System: Jk(a), Jk(b) Lewis-System: Le(a), Le(b) P1PK-System: P1 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 183 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie MNS-System: M, N, S, s Lutheran-System: Lu(a), Lu(b) Diego-System: Wr(a) Bitte bevorzugt EDTA-Blut einsenden. Die Probenröhrchen müssen gemäß Richtlinien Hämotherapie mit Vornamen, Namen und Geburtsdatum des Patienten beschriftet sein, alternativ ist ein eindeutig zuordenbarer Barcode zulässig. Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: Agglutination Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Bei neu gefundenen irregulären Antikörpern erfolgt automatisch die Bestimmung der korrespondierenden Antigene. Ferner kann bei Schwangeren mit irregulären Antikörpern im Einzelfall (wird ggf. im Befund empfohlen) die Bestimmung des korrespondierenden Antigens beim Kindsvater sinnvoll sein. weak D (PCR) (s. S. 104 ) Verträglichkeitsprobe (Kreuzprobe) Zum Labor Prof. Enders Esslingen gehört das Blutdepot des Klinikums Esslingen mit Bevorratung von Erythrozytenkonzentraten, gefrorenen Frischplasmen und Thrombozytenkonzentraten sowie der entsprechenden Labordiagnostik (Ansprechpartner Dr. A. König Tel. 0711/3103-3278, Blutdepot Tel. 0711/3103-3270). Bitte bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut einsenden. Das Probenröhrchen muss gemäß Richtlinien Hämotherapie mit Vornamen, Namen und Geburtsdatum beschriftet sein. Für die blutgruppenserologischen Untersuchungen muss ein gesondertes Probenröhrchen abgenommen werden. Material: EDTA-Blut Menge: 7,5 ml Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl. Ansatz: täglich Indikation: Vor geplanter Transfusion. Wärmeautoantikörper (s. S. 183 ) Bitte Antikörpersuchtest und direkten Antiglobulintest (direkten Coombstest) anfordern. Einsendung von EDTA-Blut erforderlich. Kälteagglutinine Kälteautoantikörper Cave: Kältewirksame irreguläre Antikörper gegen Blutgruppeneigenschaften werden mit dem indirekten Antiglobulintest bestimmt! Bei positivem Kälteautoantikörper-Screening wird eine Kälteautoantikörper-Differenzierung zur Bestimmung von Titer, Spezifität und Wärmeamplitude angeschlossen. EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte. EDTA-Blut muss nicht warm gehalten werden. Material: EDTA-Blut Menge: 7,5 ml Methode: Agglutination Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. autoimmunhämolytische Anämie (AIHA), Raynaud-Phänomen / Akrozyanose Referenzbereich: <32 Titer Donath-Landsteiner-Antikörper Biphasische Hämolysine / Paroxysmale Kältehämoglobinurie Telefonische Anmeldung unter 0711/3103-3270 unbedingt notwendig! Direkter Test: 2 x 2 ml Vollblut, von der Entnahme bis zum Eintreffen im Labor auf 37◦ C gehalten. Indirekter Test: 2ml Serum bei 37◦ C gewonnen. Material: Vollblut, Serum Menge: 2x2 ml Methode: Hämolyse Ansatz: bei Bedarf 184 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Indikation: V. a. autoimmunhämolytische Anämie (AIHA) bei Kindern (Krankheitsbild: Paroxysmale Kältehämoglobinurie) Medikamenten-induzierte Immunhämolyse Telefonische Anmeldung unter 0711/3103-3270 unbedingt notwendig! 1. Vollblut 10 ml 2. Urin 10 ml (Metabolite) 3. Medikament(e) (nach Möglichkeit in wasserlöslicher Form, 1 ml). Material: Serum, Urin Menge: 2 x 10 ml Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl. Ansatz: bei Bedarf Indikation: Hämolyse mit anderweitig ungeklärtem positiven direkten Coombstest und Medikamentenanamnese Polyagglutinabilität (z. B. T-Aktivierung) Identifizierung folgender Formen der Polyagglutinabilität: T, Tk, Tn EDTA-Blut oder Vollblut Material: EDTA-Blut, Vollblut Menge: 2 ml Methode: Agglutination Ansatz: bei Bedarf Indikation: Hämolyse bei Infektion mit Sialidase (Neuraminidase-) bildenden Erregern (z. B. Pneumokokken, Clostridien), Hämolytisch-urämisches Syndrom (HUS), Abklärung einer Polyagglutinabilität. Heparin-induzierte Thrombozytopenie Typ II (HIT II) (F) Nachweis von Antikörpern gegen Heparin / PF4- Komplex. Klinische Angaben zu Heparinbehandlung, Thrombozytenverlauf und thromboembolischen Komplikationen dringend erforderlich, dazu bitte Formular zur HIT II auf unserer Website unter "Anforderungsscheine" (alternativ über unsere Versandabteilung erhältlich) verwenden! Material: Serum Menge: 10 ml Methode: PaGIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: Thrombozytenabfall unter Heparintherapie ohne erkennbare andere Ursache Thrombozyten-AAK (F) (s. S. 141 ) Ham-Test (Säure-Serumtest) s. PNH-Diagnostik (s. S. 122 ) heute durch die Bestimmung von CD55 und CD59 ersetzt. Fetale Erythrozyten im mütterlichen Blut (s. S. 123 ) Bei V.a. feto-maternale Transfusion in der Schwangerschaft. Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 185 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Kardiale Marker CK (Creatinkinase) gesamt Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: V. a. Muskelerkrankung oder Herzmuskelschaden Referenzbereich: M: <174 F: <140 U/l CK-Isoenzyme (F) Material: Serum Menge: 2 ml Methode: ELPHO Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung einer CK-Erhöhung Referenzbereich: s. Befundbericht IU/l CK-MB (herzspezifisch) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: V. a. Myokardinfarkt, Abklärung einer CK-Erhöhung Referenzbereich: <6% des erhöhten CK-Wertes U/l CRP, high sensitive (s. S. 127 ) GOT Homocystein LDH (s. S. 192 ) Myoglobin (s. S. 193 ) nt-pro-BNP Material: Serum Menge: 300 µl Methode: ECLIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Ausschluss bzw. Verlaufskontrolle Herzinsuffizienz. DD pulmonale vs. kardiale Dyspneu Referenzbereich: s. Befund ng/l Troponin T hochsensitiver Test Material: Serum Menge: 300 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden) Indikation: V. a. akuten Myokardinfarkt Referenzbereich: <0,014 µg/l 186 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Klinische Chemie ACE (Angiotensin converting enzyme) Abnahme unter ACE-Hemmertherapie nicht sinnvoll Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Granulomatöse Erkrankungen der Lunge (z. B. Sarkoidose) Referenzbereich: 8-52 U/l alpha-1-Antitrypsin (alpha-1-Protease-Inhibitor) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. alpha-1-Antitrypsin-Mangel Referenzbereich: 1,0-3,2 g/l ALT (GPT) (s. S. 191 ) Aluminium im Serum Abnahme in Spezialröhrchen (Neutralmonovette) Material: Serum Menge: 2 ml Methode: AAS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Monitoring einer Therapie mit Phosphatbindern i. R. einer chronischen Hämodialyse, V. a. Intoxikation Referenzbereich: <10 µg/l Aminosäuren i. Urin (F) (s. S. 221 ) Aminosäuren im Serum (F) Serum sofort nach Gewinnung einfrieren Material: Serum, gefroren Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Diagnostik von Stoffwechselerkrankungen mit Störungen im Aminosäurestoffwechsel Referenzbereich: s. Befund Ammoniak im Plasma Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden) Indikation: V. a. Leberinsuffizienz Referenzbereich: M: 25-94 F: 19-82 µg/dl Amylase Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: V. a. Pankreatitis, auch erhöht bei Parotitis Referenzbereich: 28-100 U/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 187 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Amylase-Isoenzyme (F) Material: Serum Menge: 2 ml Methode: Photometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Indikation: Abklärung erhöhter Amylase-Werte, Ausschluss Makro-CK Referenzbereich: s. Befund Anti-Streptolysin O (s. S. 144 ) Antihyaluronidase (F) (s. S. 144 ) Antistaphylolysin (s. S. 144 ) AP (Alkalische Phosphatase) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Gallenwegserkrankung, Abklärung Knochenstoffwechsel, Ausschluss osteoblastär wachsende Knochenmetastasen Referenzbereich: Erwachsene M: 40-129; F: 35-104 U/l AP (alkalische Phosphatase)-Isoenzyme (F) Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: ELPHO Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung AP-Erhöhung Referenzbereich: s. Befund Apolipoprotein A1 (HDL-Protein) (F) Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung Arterioskleroserisiko Referenzbereich: M: 1,0-2,0 F: 1,1-2,3 g/l Apolipoprotein B (LDL-Protein) (F) Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung Arterioskleroserisiko Referenzbereich: M: 0,55-1,65 F: 0,6-1,45 g/l AST (GOT) (s. S. 190 ) Bilirubin direkt Probe bitte lichtgeschützt einsenden Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: Abklärung einer Bilirubinerhöhung (intra-/prä-/posthepatisch) Referenzbereich: <0,3 mg/dl 188 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Bilirubin gesamt Probe bitte lichtgeschützt einsenden Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: Abklärung Ikterus/Hyperbilirubinämie Hämolyse/Cholestase Referenzbereich: Neugeborene und Säuglinge bis zum 14. Lebenstag: altersabhängiger Normbereich (siehe Befund). Danach: <1,1 mg/dl BSG (n. Westergreen) (s. S. 127 ) Calcium im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Ausschluss Störung im Calciumstoffwechsel, Basisuntersuchung zusammen mit Phosphat im Serum. Referenzbereich: 2,2-2,6 mmol/l Carnitin, frei im Serum (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Indikation: V. a. Myopathie Referenzbereich: M: 3,97-8,23 F: 2,89-7,34 mg/l Chlorid im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ISE Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Störungen des Säure-Basen-Haushaltes oder der der Natrium- und Wasser-Bilanz z. B. bei chronischen Erbrechen Referenzbereich: 95-108 mmol/l Cholesterin Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. oder Verlaufskontrollen einer Fettstoffwechelstörung Referenzbereich: Erwachsene <220, wünschenswert <200 mg/dl Cholinesterase (CHE) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung hepatische Funktion. Ausschluss CHE-Variante. Siehe hierzu auch unter Dibucainzahl. Referenzbereich: M: 5000-14000 F: 4000-14000 U/l CK, gesamt (s. S. 186 ) CK-MB (s. S. 186 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 189 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie CRP (s. S. 127 ) Cystatin C von Muskelmasse unabhängiger Marker für die Nierenfunktion. Eine leichte Einschränkung der Nierenfunktion wird zuverlässiger angezeigt als mittels Serum-Kreatinin, welches hier häufig noch unauffällig ist. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4 Stunden) Indikation: V. a. Niereninsuffizienz Referenzbereich: Erwachsene <0,93 mg/l Dibucainzahl (atypische CHE) (F) Material: Serum Menge: 2000 µl Methode: Photometrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Vorliegen einer atypischen CHE Referenzbereich: >70 % Gallensäuren, gesamt (F) Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: enzymatisch Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Ausschluss Cholestase, Abklärung Pruritus Referenzbereich: <8 µmol/l gamma-GT Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung Leberschädigung jeglicher Art (toxisch, nutritiv, infektiös u. a.) Referenzbereich: M: <66 F: <39 U/l GLDH Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Weitergehende Abklärung Leberschädigung. Referenzbereich: <6,5 U/l Glucose (s. S. 200 ) GOT (AST) Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Hämolyse, Hepatopathie Referenzbereich: M: <38 F: <42 U/l 190 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie GPT (ALT) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung Leberschaden (infektiös, toxisch u. a.) Referenzbereich: M: <41 F: <31 U/l Harnsäure im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Hyperurikämie Referenzbereich: M: <7,0 F: <5,6 mg/dl Harnstoff im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung einer Niereninsuffizienz Referenzbereich: 10-50 mg/dl HbA1c (s. S. 200 ) HBDH (alpha-HBDH) Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung erhöhte LDH-Werte, V. a. hämolyt. Anämie Referenzbereich: 72-182 U/l HDL-Cholesterin (enzymatisch) Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos Referenzbereich: M: >40 F: >50 mg/dl Kalium im Serum Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ISE Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Hypertonie, Herzrhythmusstörungen, Einnahme von Diuretika und Laxantien, Niereninsuffizienz, Durchfälle, Erbrechen, Störungen im Säure-Basen-Haushalt, Hypo- und Hyperaldosteronismus Referenzbereich: 3,6-5,3 mmol/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 191 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Kreatinin im Serum (enzymatisch oder Jaffé) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung einer Niereninsuffizienz, Verlaufskontrolle Referenzbereich: M: <1,2, F: <1,0 mg/dl Kreatinin-Clearance (s. S. 223 ) 1 ml eines 24h-Sammelurins und 500 µl Serum des gleichen Tages. Zur Berechnung bitte auch Körperlänge, Gewicht und Sammelmenge angeben. Lactat im Plasma Material: Natriumfluorid-Blut Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Ausschluss Lactazidose Referenzbereich: 0,7-2,5 mg/l LDH (Lactat-Dehydrogenase) Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Hämolyse, Lymphome, allg. Maker des Zellzerfalls Referenzbereich: M: 100-225 F: 100-214 U/l LDH-Isoenzyme (F) Probe bei Raumtemperatur lagern und verschicken, weder kühlen noch einfrieren! Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: ELPHO Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung einer unklaren LDH-Erhöhung Referenzbereich: s. Befund LDL-Cholesterin Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos Referenzbereich: <150, optimal <100 mg/dl Lipase Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: V. a. Pankreatitis Referenzbereich: <60 U/l 192 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Lipoprotein (a) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos Referenzbereich: <30 mg/dl Lipoprotein-Elektrophorese Serum nicht einfrieren! Material: Serum Menge: 2 ml Methode: ELPHO Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 7 Tage) Indikation: Klassifikation von Fettstoffwechselstörungen nach Fredrickson Magnesium im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Ausschluss Magnesium-Mangel, Monitoring einer Mg-Therapie Referenzbereich: 0,7-1,0 mmol/l Magnesium, intraerythrozytär (F) Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: Flammenphotometrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Ausschluss Magnesium-Mangel, Monitoring einer Mg-Therapie Referenzbereich: 1,6-2,6 mmol/l Makro-CK (F) wird im Rahmen der CK-Isoenzymbestimmung untersucht (s. dort) Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: ELPHO Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung einer unklaren CK-Erhöhung Referenzbereich: s. Befund Myoglobin im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Ausschluss Rhabdomyolyse Referenzbereich: M: <76 F: <64 µg/l Natrium im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ISE Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Ausschluss Hypo-/Hypernatriämie Referenzbereich: 130-145 mmol/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 193 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Osmolalität im Serum (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Gefrierpunktosmometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Diabetes insipidus Referenzbereich: 275-295 mosm/kg Osmolalität im Urin (F) (s. S. 223 ) Pankreatische Elastase im Serum (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Pankreatitis Referenzbereich: <3,5 µg/l Pankreatische Elastase im Stuhl (s. S. 227 ) PCT (Procalcitonin) (s. S. 128 ) Phosphat im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung des Knochenstoffwechsels, Niereninsuffizienz Referenzbereich: 0,8-1,45 mmol/l Pyruvat (F) Material: Natriumfluorid-Plasma Menge: 2 ml Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Vitamin B1-Mangel, Leberinsuffizienz, Urämie Referenzbereich: 3,6-5,9 mg/l Synovialdiagnostik bestehend aus mikroskopischer Untersuchung sowie LDH, Gesamteiweiß, Glucose, Laktat, Harnsäure, AP, RF IgG Bitte natives und in EDTA antikoaguliertes Punktat einsenden. Material: Punktat Menge: 2+2 ml Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung eines Gelenkergusses Referenzbereich: s. Befund Triglyceride, gesamt Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung einer Fettstoffwechselstörung Referenzbereich: <200 mg/dl Troponin T (s. S. 186 ) 194 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Xylose im Blut (F) Optimal: Natriumfluoridblut Alternativ: Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen. Material: Natriumfluorid-Blut, Serum Menge: 2 ml Methode: Photometrie Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: i. R. des D-Xylose-Belastungstestes Referenzbereich: s. Befund mg/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 195 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Proteine / Transportproteine im Serum Proteine im Urin siehe Urindiagnostik Albumin im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Leberinsuffizienz, Nephropathie Referenzbereich: 35-55 g/l beta-2-Mikroglobulin (s. S. 206 ) Bence-Jones Proteine (freie Leichtketten) (s. S. 221 ) beta-Amyloid (1-42) im Liquor (F) (s. S. 199 ) Coeruloplasmin Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. M. Wilson Referenzbereich: 0,17-0,60 g/l Elektrophorese (Serum-Eiweiß-) (s. S. 197 ) Gesamteiweiß im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Nephropathie, Leberinsuffizienz Referenzbereich: 6,6-8,3 g/dl Immunfixationselektrophorese im Serum Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: IFE Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Gammopathie Immunglobuline (s. S. 125 ) Kappa-Leichtketten, frei, monoklonal im Serum (F) Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Verlaufskontrolle einer Gammopathie Referenzbereich: 3,3-19,4 mg/l Kryofibrinogen Das Blut muss bei 37 ◦ C abzentrifugiert und das Plasma noch bei 37 ◦ C von den Zellen getrennt werden! Material: Citrat-Plasma Menge: 1000 µl Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Indikation: V.a. Paraproteinämie Referenzbereich: negativ 196 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Kryoglobuline Das Blut muss bei 37 ◦ C durchgerinnen und muss bei 37 ◦ C abzentrifugiert und das Serum noch bei 37 ◦ C vom Blutkuchen getrennt werden! Material: Serum Menge: 1000 µl Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Indikation: V.a. Paraproteinämie Referenzbereich: negativ Lambda-Leichtketten, frei, monoklonal im Serum (F) Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Verlaufskontrolle einer Gammopathie Referenzbereich: s. Befund Serumeiweiß-Elektrophorese Material: Serum Menge: 200 µl Methode: ELPHO Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Auschluss und Verlaufskontrolle einer Gammopathie, Bei V.a. Hepatopathie, Dysproteinämien, Abklärung und Verlaufskontrolle entzündlicher Prozesse Referenzbereich: s. Befund SHBG (Sexualhormon-bindendes Globulin) (s. S. 170 ) Tau-Protein im Liquor (F) (s. S. 199 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 197 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Liquordiagnostik Blut-Liquor-Schranke (nach Reiber) Beurteilung der Blut-Liquor-Schranke und der intrathekalen Ig-Synthese nach Reiber (beinhalten Albumin, IgG, IgA und IgM jeweils im Serum und im Liquor). Der Befund wird im sog. Reiber-Schema dargestellt. Benötigt wird ein Serum-Liquor-Paar, das zur gleichen Zeit abgenommen wurde. Material: Liquor, Serum Menge: je 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Im Rahmen der Meningitis- und Enzephalitis-Diagnostik Referenzbereich: s. Befund Oligoklonale Banden im Liquor Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese mittels isoelektrischer Fokussierung Benötigt wird ein Serum-Liquor-Paar, das zur gleichen Zeit abgenommen wurde. Material: Liquor, Serum Menge: je 500 µl Methode: IEF Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V.a. E. disseminata, Enzephalitis, Meningitis Referenzbereich: negativ Zellzahl im Liquor Eine Differenzierung der Zellen im Liquor ist nur bis 2 Stunden nach Abnahme möglich. Danach fällt die Anzahl der Granulozyten relevant ab. Material: Liquor Menge: 500 µl Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 30 Minuten) Indikation: V.a. Infektion des ZNS, bei hämatologischen Erkrankungen mit Befall des ZNS Referenzbereich: <5 /µl Eiweiß im Liquor Material: Liquor Menge: 300 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: V. a. Infektion des ZNS Referenzbereich: 10-50 mg/dl Glucose im Liquor Material: Liquor Menge: 300 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: V.a. Infektion des ZNS Referenzbereich: 50-70 mg/dl Lactat im Liquor Material: Liquor Menge: 300 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: V.a. Infektion des ZNS Referenzbereich: <2,6 mmol/l 198 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie LDH im Liquor Material: Liquor Menge: 300 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunde, Eilprobe: 1 Stunde) Indikation: V.a. Infektion des ZNS, bei hämatologischen Erkrankungen mit Befall des ZNS beta-Amyloid (1-42) (F) Polypropylenröhrchen für Abnahme und Transport verwenden. Lagerung und Transport bei 2-8 ◦ C. Für Lagerung länger als 1 Woche die Proben bei -20 ◦ C einfrieren. Material: Liquor Menge: 1 ml Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche) Indikation: Abklärung eines neurodegenerativen Prozesses (z. B. M. Alzheimer) Referenzbereich: >500 ng/l Tau-Protein (F) Zur Abklärung Alzheimer-Demenz sollte die kombinierte Bestimmung mit dem ß 1-42 Amyloid im Liquor erfolgen. Polypropylenröhrchen für Abnahme und Transport verwenden. Lagerung und Versand gekühlt bei 2-8◦ C; Für Lagerung länger als 1 Woche die Proben bei -20◦ C einfrieren. Material: Liquor Menge: 1 ml Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche) Indikation: Abklärung eines neurodegenerativen Prozesses (z. B. M. Alzheimer) Referenzbereich: siehe Befund ng/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 199 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Diabetes-Diagnostik Glucose Optimal: Glucoexact oder ähnliches mit Citrat gepuffertes Abnahmesystem (z. B. Terumo Venosafe), alternativ Natriumfluoridblut (hier Abfall der Glucosekonzentration um 5-10% in den ersten 4 Stunden) Alternativ: Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen. Material: Glucoexact, Natriumfluorid-Blut Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle eines Diabetes mellitus, V. a. Insulinom Referenzbereich: nüchtern <100, Schwangere nüchtern <92 mg/dl HbA1c-Fraktion Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle eines D. mellitus Referenzbereich: IFCC-Standard: 20-42 mmol/mol prozentual: 4,0-6,0 % C-Peptid (s. S. 162 ) Insulin (s. S. 164 ) GAD-AAK (Glutamatdecarboxylase-AAK) (F) (s. S. 133 ) ICA (Inselzell-AAK) (F) (s. S. 134 ) IAA (Insulin-Autoantikörper) (F) (s. S. 134 ) 200 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Allergiediagnostik Basophilen-Degranulationstest (s. S. 121 ) Zusätzlicher zellulärer Allergietest für die Soforttypreaktion (Typ I). Z.B. bei negativem RASToder Pricktest trotz starkem klinischen Verdacht. ECP (eosinophiles kationisches Protein) (F) Vollblut nach exakt einer Stunde zentrifugieren und sofort danach vom Blutkuchen trennen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: RAST Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Atopische Dermatitis, Verlaufskontrolle des allergischen Asthma bronchiale Referenzbereich: <16 µg/l IgE im Serum, gesamt Material: Serum Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Allergie, Verlaufskontrolle einer allergischen Erkrankung Referenzbereich: altersabhängig, Erwachsene <100 kU/l IgE, allergenspezifisch im Serum (RAST) (Einzel-Allergene und Mischungen siehe RAST-Anforderungsbogen) 250 µl + je 50 µl pro weiterem Allergen Material: Serum Menge: mind. 250 µl Methode: CLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. allergische Diathese Referenzbereich: negativ kU/l & Rastklassen Mastzell-Tryptase Der Tryptase-Spiegel korreliert gut mit der Histamin-Ausschüttung der Mastzellen und ist aufgrund der längeren Halbwertszeit und der höheren Stabilität der Histamin-Bestimmung im Plasma vorzuziehen. Blutentnahme 15-180 Minuten nach anaphylaktischer Reaktion, Serum nach 1 Stunde vom Blutkuchen trennen und kühlen Material: Serum Menge: 1 ml Methode: EIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage) Indikation: V. a. Mastozytose, V. a. vermehrte Histaminausschüttung. Referenzbereich: <11,4 µg/l Zoeliakie-Diagnostik (s. S. 152 ) (Gliadin-, Endomysium-, tTG-AK) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 201 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Vitamine & Spurenelemente Eisen im Serum Bestimmung von Ferritin aussagekräftiger! Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Im Rahmen des Eisenresorptionstest, V.a. Eisnemangelanämie (besser: Ferritin) Referenzbereich: M: 60-160, F: 37-145 mg/dl Löslicher Transferrin-Rezeptor (F) zusammen mit Ferritin ist die Berechnung des sog. "Ferritinindex" möglich. Dieser erlaubt eine valide Aussage über die Eisenversorgung auch bei Vorliegen von Entzündungen oder Tumorerkrankungen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung der Eisenversorgung Referenzbereich: 0,8-1,8 mg/l Jod im Spontanurin (F) Material: Spontanurin Menge: 10 ml Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V.a. Jodintoxikation bzw. Jodmangel Referenzbereich: >150 µg/gKrea Kupfer im Serum Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: AAS Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Verdacht auf M. Wilson, Kupfermangel bei eisenrefraktärer Anämie Referenzbereich: Erwachsene M: 560-1100, F: 680-1800 µg/l Kupfer im Urin (F) Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze Menge: 1000 µl Methode: AAS Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Verdacht auf M. Wilson Referenzbereich: 10-60 µg/24h Selen im Serum Material: Serum Menge: 500 µl Methode: AAS Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Haarausfall, brüchige Nägel Referenzbereich: 46-143 µg/l Zink im Serum Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: AAS Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Haarausfall, brüchige Nägel Referenzbereich: 0,7-1,2 mg/l 202 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Vitamin A (Retinol) Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Lichtgeschützter Transport! Material: Serum, gefroren Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Verdacht auf Vitamin A-Mangel bei Störungen der Dunkeladaptation Referenzbereich: 0,2-1,0 mg/l Vitamin B 1 (Thiamin) Material: EDTA-Blut Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: bei unklaren neurologischen Symptomen wie Paresen, Neuritis, Areflexie Referenzbereich: 28-85 µg/l Vitamin B 2 (Riboflavin) Material: EDTA-Blut Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Abklärung bei Rhagaden, Pruritus Referenzbereich: 140-370 µg/l Vitamin B 6 (Pyridoxin) Material: Serum, gefroren Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Haut- und Schleimhautentzündungen, Neuritis Referenzbereich: 3,6-18,0 µg/l Vitamin B 12 (Cobalamin) Bei älteren Patienten korreliert Holo-Transcobalamin (HTC) besser mit den intrazellulären Vitamin B12-Spiegeln als der Serumspiegel von Vitamin B12. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECL Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Makrozytose, V. a. perniziöse Anämie Referenzbereich: 150-1000 ng/l Holo-Transcobalamin Bei Transcobalamin (TC) handelt es sich um das Vitamin B12-Bindeprotein. Der Komplex aus TC und Vitamin B12 wird als Holo-TC bezeichnet. In Falle eines latenten Vitamin B12-Mangels braucht der Körper die plasmatischen und intrazellulären Speicher auf. In dieser Phase ist Holo-TC der einzige auffällige Marker. Methylmalonsäure und Homocystein steigen erst bei manifestem Vitamin B12-Mangel an. Bei älteren Patienten korreliert HTC besser mit den intrazellulären Vitamin B12-Spiegeln als der Serumspiegel von Vitamin B12. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: M-EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Makrozytose, V.a. perniziöse Anämie, Hyperhomocysteinämie, Frühmarker bei der Diagnostik eines Vitamin B12-Mangels, vor allem bei älteren Patienten dem Vitamin B12-Serum-Spiegel überlegen. Referenzbereich: >50 pmol/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 203 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Folsäure Vitamin B 9 Material: Serum, gefroren Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Makrozytose, V. a. perniziöse Anämie Referenzbereich: 3-20 µg/l Vitamin C Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und in einem SPEZIALRÖHRCHEN tiefgefroren wurde. Der Versand muss tiefgefroren (ca. -20◦ C) und lichtgeschützt erfolgen. Haltbarkeit bei Raumtemperatur <3 Std.! Material: Serum, gefroren Menge: 1 ml Methode: LCMS Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: 5-20 mg/l 25-OH-Vitamin D Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Auschluss eines Vitamin D-Mangels Referenzbereich: 25-70 µg/l 1,25(OH)2-Vitamin D Material: Serum Menge: 1500 µl Methode: CLIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Beurteilung der Vitamin-D-Versorgung bei höhergradiger Niereninsuffizienz Referenzbereich: bis 20 Jahre: 35 - 90; 21 - 50 Jahre: 35 - 80, > 50 Jahre: 30 - 70 nmol/l Vitamin E (alpha-Tocopherol) Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Lichtgeschützter Transport! Material: Serum, gefroren Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: 5-20 mg/l Vitamin H (Biotin) (F) Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: EIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Haarausfall Referenzbereich: >100 ng/l Vitamin K im Serum (Phyllochinone) (F) Serum bitte lichtgeschützt und tiefgefroren einsenden, Blutentnahme nüchtern Material: Serum, gefroren Menge: 4 ml Methode: HPLC Ansatz: bei Bedarf Referenzbereich: 0,17-0,68 µg/l 204 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Knochenstoffwechsel TRAP-5b (F) Das Serum muss innerhalb von 2 Std. nach Blutentnahme vom Blutkuchen abgetrennt und tiefgefroren werden. Material: Serum, gefroren Menge: 1000 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Beurteilung des Knochenabbaus/-umbaus bei Dialysepatienten Referenzbereich: 2,5-4,5 U/l beta-Crosslaps (CTx) im Plasma (F) Wegen der ausgeprägten Tagesrhythmik sollte die Abnahme morgens nüchtern vor 08:15h erfolgen. Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt, und tiefgefroren wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 0,5 ml Methode: ECLIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Indikation: V. a. vermehrten Knochenabbau, Abklärung einer Osteoporose Referenzbereich: s. Befund µg/l Ostase (knochenspezifische AP, BAP) (F) Marker der Osteoblasten-Aktivität Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: IRMA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung einer Osteoporose Referenzbereich: M: 6-22 F: 3-14 µg/l PTH, intakt (Parathormon, intakt) (s. S. 167 ) Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma oder Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Pyridinoline im Urin Crosslinks, Knochenabbau-Marker optimal: Bestimmung aus dem 1. Morgenurin Material: Urin Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Früherkennung eines vermehrten Knochenabbaus, insbesondere bei Frauen 1-3 Jahre nach der Menopause. Referenzbereich: s. Befund µg/gKrea 1,25-OH2-Vitamin D (s. S. 204 ) 25-OH-Vitamin D (s. S. 204 ) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 205 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Tumormarker alpha-Fetoprotein (AFP) Keimzelltumoren, hepatozelluläres Karzinom Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: <7,5 kU/l BAP (bone specific AP) siehe Ostase (F) (s. S. 205 ) V. a. Knochenmetastasen beta-2-Mikroglobulin im Serum Plasmozytom und andere Lymphome Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Verlaufskontrolle von Plasmozytomen Referenzbereich: bis 39 Jahre: < 2, bis 59 Jahre: < 2,6, darüber < 3,1 mg/l beta-hCG (humanes Chorion-Gonadotropin) Keimzelltumoren, Chorionkarzinom Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Referenzbereich: <10 U/l CA 12-5 Ovar Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: <38 kU/l CA 15-3 Mamma Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: <25 kU/l CA 19-9 Pankreas, Tumoren des Gastro-Intestinaltraktes Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: <32 kU/l 206 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie CA-50 (F) Magen Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: IRMA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: <30 kU/l CA 72-4 mucinöses Ovarial-Karzinom, Magen-Karzinom Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: <6,9 kU/l CEA (Carcino-embryonales Antigen) Tumoren des Gastro-Intestinaltraktes, Lunge, allgemeiner Proliferationsmarker Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: <5 µg/l Chromogranin A (CGA) neuroendokrine Zellen, bei V. a. Phäochromocytom Material: Serum Menge: 500 µl Methode: CLIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <110 µg/l CYFRA 21-1 Plattenepithelien, Lunge Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: <3,3 µg/l 5-S-Cysteinyldopa im Plasma (F) malignes Melanom Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma möglich, welches sofort nach Entnahme zentrifugiert und tiefgefroren wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 2 ml Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: <10 nmol/l 5-S-Cysteinyldopa im Urin (F) malignes Melanom Material: Urin Menge: 10 ml Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: <1,5 µmol/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 207 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Human Placental Alkaline Phosphatase (hPLAP) (F) Keimzelltumoren, insb. Seminome Material: Serum Menge: 1 ml Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 10 Tage) Referenzbereich: <100 mU/l Inhibin A (s. S. 164 ) Granulosazell-Tumor (Ovar) Inhibin B (s. S. 164 ) Granulosazell-Tumor (Ovar) Knochenspez. alk. Phosphatase (siehe Ostase) (F) (s. S. 205 ) bei V. a. osteoblastär wachsende Knochenmetastasen NMP 22 (Nukleäres Matrix-Protein 22) (F) Harnblase 9 ml Spontanurin (8-12 h), der sofort nach dem Gewinnen in ein Gefäß mit speziellem Stabilisator gegeben wird (anzufordern unter 0711 / 6357-104). Material: Urin, stabilisiert Menge: 9 ml Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: <10 kU/l NSE (Neuronspezifische Enolase) kleinzelliges Bronchial-Ca Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: <13 µg/l Ostase (F) (s. S. 205 ) V. a. Knochenmetastasen Prostataphosphatase (PAP) Ersetzt durch PSA, freies PSA Die Bestimmung wurde eingestellt, da sie neben der Bestimmung von PSA und freiem PSA keine Bedeutung mehr hat! PSA (Prostata-spezifisches Antigen) Prostata Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECLIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: altersabhängige Normwerte, s. Befund µg/l PSA, frei Prostata Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECL Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: beurteilt wird lediglich der Quotient (fPSA/PSA) 208 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie PTHrP (Parathormon-related Protein) (F) Paraneoplastische Hypercalcämie Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 1 ml Methode: ILMA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Referenzbereich: <2,5 pmol/l S-100-Protein (F) malignes Melanom Material: Serum, gefroren, Liquor, gefroren Menge: 800 µl Methode: ILMA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: Serum: <0,11 Liquor: <1,0 µg/l SCC Plattenepithel (Lunge, Zervix, HNO) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: MEIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <2,5 µg/l TPA (Tissue Polypeptide Antigen) (F) allgemeiner Proliferationsmarker Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ILMA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: <90 U/l VIP (Vasoaktives Intestinales Polypeptid) (F) Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Material: EDTA-Plasma, gefroren Menge: 1000 µl Methode: RIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage) Referenzbereich: <100 ng/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 209 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Medikamente Amikacin (F) Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel unmittelbar vor erneuter Gabe, Spitzenspiegel 5-30 Minuten nach Infusionsende Eliminations-Halbwertszeit: 2-3 Stunden Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: FPIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 15-25 mg/l, Nephro- und Ototoxizität ab 35 mg/l Amiodaron Blutentnahme-Zeitpunkt: mind. 10 Stunden nach letzter Einnahme Eliminationshalbwertszeit: 25-100 Tage Material: Serum Menge: 500 µl Methode: HPLC Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 0,5-2,5 mg/l Amitriptylin (F) Summe aus Ami- und Nortryptilin wird bestimmt. Blutentnahme-Zeitpunkt: 4-9 Stunden vor nächster Dosis Eliminationshalbwertszeit: 16-60 Stunden Material: Serum Menge: 3 ml Methode: HPLC Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 100-250, toxisch >400 µg/l Amphotericin B (F) Material: Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 0,03-3,0 mg/l Bromazepam Eliminationshalbwertszeit ca. 12 Std. Blutentnahme vor erneuter Medikamenteneinnahme Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LCMS Ansatz: 1 x pro Woche Referenzbereich: therapeutisch 50-200 ng/ml Bromid im Serum (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 1000-1500 mg/l, bei schweren Epilepsien bis 2250 mg/l, physiologisch <10 mg/l, toxisch >2500 mg/l 210 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Carbamazepin Blutentnahme-Zeitpunkt: 6-18 Stunden vor nächster Dosis, Talspiegel vor nächster Gabe. Eliminationshalbwertszeit: 10-25 Stunden (Dauertherapie) Material: Serum Menge: 300 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 4,0-12,0 mg/l Carbamazepin, frei (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 1,0-3,0 mg/l Ciclosporin A (monokl. AK) Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe. Spitzenspiegel 2 Std. +/- 15 Min nach Einnahme. Eliminationshalbwertszeit: 6,3 Stunden; 10,7 (Nieren-Tx), 20,3 (Leber-Tx). Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CMIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden) Referenzbereich: s. Befund µg/l Clobazam (F) Metabolit Norclobazam wird mitbestimmt Eliminationshalbwertszeit: 10-50 Stunden, für die Metabolite bis 120 Stunden. Material: Serum Menge: 1 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 100 - 400 µg/l Clomipramin (F) Eliminationshalbwertszeit: 19-37 Std. Blutentnahme: vor nächster Medikamenteneinnahme Material: Serum Menge: 2 ml Methode: HPLC Referenzbereich: therapeutisch 90 - 250; toxisch ab 400 µg/l Clonazepam Eliminationshalbwertszeit: 20 - 40 Std. Blutentnahme: vor nächster Medikamenteneinnahme Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LCMS Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 10-60 µg/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 211 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Clozapin Metabolit Norclozapin wird mitbestimmt. Regelmäßige Blutbildkontrollen erforderlich. Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe. Eliminationshalbwertszeit: 6-26 Stunden Material: Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 50 - 700 µg/l Diazepam Eliminationshalbwertszeit: 48-60 Std. Metabolit Nordiazepam wird mitbestimmt Blutentnahme: vor nächster Medikamenteneinnahme Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LCMS Referenzbereich: therapeutisch 200 - 500 µg/l Digitoxin Blutentnahme-Zeitpunkt: 8-24 Stunden nach letzter Einnahme Eliminationshalbwertszeit: 6-8 Tage Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECL Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden) Referenzbereich: therapeutisch 13-25 µg/l Digoxin Blutentnahme-Zeitpunkt: 8-24 Stunden nach letzter Einnahme Eliminationshalbwertszeit: 1-2 Tage Material: Serum Menge: 500 µl Methode: ECL Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden) Referenzbereich: therapeutisch 0,5-2,0 µg/l Doxepin (F) Eliminationshalbwertszeit: 8 - 25 Std., Metabolit Nordoxepin: 34 - 68 Std. Der Metabolit Nordoxepin wird mitbestimmt. Material: Serum Menge: 1 ml Methode: HPLC Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 50-250 µg/l Ethosuximid Eliminationshalbwertszeit: 30-60 Stunden (Erwachsene), 20-55 Stunden (Kinder) Material: Serum Menge: 200 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 40 - 100 mg/l 212 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Felbamat Eliminationshalbwertszeit: 22 Stunden Material: Serum Menge: 300 µl Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 10-100 mg/l FK 506 siehe Tacrolimus (s. S. 217 ) Gabapentin Eliminationshalbwertszeit: 6 Stunden Material: Serum Menge: 500 µl Methode: GC/MS Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch >2,0 mg/l Ganciclovir Bestimmung von Tal- und Spitzenspiegeln empfohlen Blutentnahme-Zeitpunkt für Talspiegel (i.v., oral): vor nächster Gabe Blutentnahme-Zeitpunkt für Spitzenspiegel: 30-60 Min. nach Gabe von Ganciclovir (i.v.) 2-3 Stunden nach Gabe von Ganciclovir (oral) 3 Stunden nach Gabe von Valganciclovir (oral) Eliminationshalbwertszeit: 3 Stunden (i.v.) Material: EDTA-Plasma, Serum Menge: 200 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: s. Befund mg/l Gentamicin (F) Bestimmung von Tal- und Spitzenspiegeln empfohlen Blutentnahme-Zeitpunkt für Talspiegel: vor nächster Gabe Blutentnahme-Zeitpunkt für Spitzenspiegel: 30-60 min nach Infusionsende, 60 min nach Injektion (i.m.). Eliminationshalbwertszeit: 2,5 Stunden (Neugeborene ca. 4 Stunden) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: FPIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden) Referenzbereich: s. Befund mg/l Imipramin (F) Der Metabolit Desipramin wird mitbestimmt. Eliminationshalbwertszeit: 6 - 20 Std. Material: Serum Menge: 1 ml Methode: HPLC Referenzbereich: therapeutisch 150 - 250, toxisch ab 400 µg/l Isoniazid (F) Material: Serum Menge: 1 ml Methode: LCMS Ansatz: täglich Referenzbereich: therapeutisch 1-8 mg/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 213 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Itraconazol (F) Material: Serum Menge: 1 ml Methode: LCMS Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 0,4-2,0 mg/l Lamotrigin Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe Eliminationshalbwertszeit: 25 Stunden (15-35 Stunden) Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: s. Befund mg/l Levetiracetam Blutentnahme Zeitpunkt: vor nächster Gabe. Eliminationshalbwertzeit: 6 - 9 Stunden Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch: 3 - 34 mg/l Lithium Blutentnahme-Zeitpunkt: 12 Stunden nach der letzten Einnahme Eliminationshalbwertszeit: 14-33 Stunden Material: Serum Menge: 500 µl Methode: AAS Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 4 Stunden) Referenzbereich: therapeutisch 0,3-1,3 mmol/l Lorazepam Eliminationshalbwertszeit: 14 Stunden Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LCMS Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 20-250 µg/l Mesuximid (N-Desmethylmesuximid) Blutentnahme-Zeitpunkt: 3-5 Stunden nach der letzten Einnahme Bestimmung des Metaboliten Des-N-Methylmesuximid Material: Serum Menge: 200 µl Methode: HPLC Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 10-40 mg/l Methylphenidat (F) Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 8-30 µg/l 214 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Midazolam Eliminationshalbwertszeit: 1,5 - 2,5 Std. Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LCMS Ansatz: 1 x pro Woche Referenzbereich: therapeutisch 80 - 250 µg/l Olanzapin Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe. Menge: 200 µl Methode: LCMS Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: bei durchschnittlicher Gabe von 11 mg/Tag (2,5 - 40 mg)therapeutisch: 2,5 - 105 mg/l - im Mittel 25 mg/l Oxazepam Eliminationshalbwertszeit: 5 - 15 Std. Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LCMS Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 200 - 1500 µg/l Oxcarbazepin Der Metabolit 10-Hydroxy-Carbazepin wird mitbestimmt. Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel unmittelbar vor der nächsten Dosis. Eliminationshalbwertszeit: 8-10 Stunden für 10-Hydroxycarbazepin (Metabolit). Material: Serum Menge: 200 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 0,5-3,0 mg/l Paracetamol (F) Blutentnahme-Zeitpunkt: 1 Stunde nach letzter Einnahme Eliminationshalbwertszeit: 2 Stunden Material: Serum Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag) Referenzbereich: therapeutisch 5,0-25,0 mg/l Phenobarbital Eliminationshalbwertszeit: 50-120 Stunden (Erwachsene), 40-70 Stunden (Kinder) Material: Serum Menge: 200 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 15-40 mg/l Phenytoin Blutentnahme-Zeitpunkt: 2-4 Stunden (i.v.). oral unerheblich, da lange Elimination. Eliminationshalbwertszeit: 6-24 Stunden (Verlängerung bei höheren Plasmakonzentrationen!) Material: Serum Menge: 200 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 10-20 mg/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 215 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Pregabalin Eliminationshalbwertszeit: ca. 6 Std. Material: Serum Menge: 1 ml Methode: GC/MS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 2-5 mg/l Primidon Blutentnahme-Zeitpunkt: steady state, vor nächster Gabe Eliminationshalbwertszeit: 8 Stunden Material: Serum Menge: 200 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag) Referenzbereich: therapeutisch 4,0-10,0 mg/l Pyrimethamin Eliminationshalbwertszeit: 80-100 Std. Material: Serum, EDTA-Plasma Menge: 500 µl Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: zur Malariaprophylaxe 200-500, zur Toxoplasmosetherapie: 700-1300 µg/l Quetiapin Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe Eliminationshalbwertszeit: 3 - 9 Stunden Material: Serum Menge: 1 ml Methode: LCMS Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 40-170 µg/l Rifampicin (F) Nur aus Serum bestimmbar, das spätestens 2 Stunden nach Blutentnahme zentrifugiert, von den Blutzellen getrennt und tiefgefroren wurde. Die Probe muss zu jeder Zeit lichtgeschützt transportiert werden. Material: Serum, gefroren Menge: 1000 µl Methode: LCMS Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 0,1-10 mg/l Risperidon Der Metabolit 9-Hydroxy-Risperidon wird mitbestimmt Blutentnahmezeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe Eliminationshalbwertszeit: ca. 3 Stunden Material: Serum Menge: 1 ml Methode: LCMS Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 2-30 ng/ml 216 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Sirolimus (Rapamycin) (F) Das EDTA-Vollblut (!) sollte nach Entnahme so bald wie möglich gekühlt oder tiefgefroren werden. Lagerung und Versand lichtgeschützt. Material: EDTA-Blut Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: siehe Befundbericht µg/l Sulfadiazin Eliminationshalbwertszeit: 8-17 Std. Material: Serum, EDTA-Plasma Menge: 300 µl Methode: HPLC Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: Toxoplasmosetherapie: 50-150 mg/l Sultiam Eliminationshalbwertszeit: 3 - 30 Std. Anstieg des Phenytoinspiegels bei gleichzeitiger Gabe Material: Serum Menge: 200 µl Methode: HPLC Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 6,0-10,0, toxisch: >20 mg/l Tacrolimus, FK 506 Blutentnahme-Zeitpunkt : unmittelbar vor der nächsten Dosis. Eliminationshalbwertszeit: 16 Stunden (Nieren-Tx), 12 Stunden (Leber-Tx) Material: EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: CMIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden) Referenzbereich: s. Befund µg/l Teicoplanin (F) Material: Serum Menge: 500 µl Methode: FPIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage) Referenzbereich: therapeutisch 5-60 mg/l Temazepam Eliminationshalbwertszeit: 5 - 13 Std. Material: Serum Menge: 200 µl Methode: LCMS Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 200 - 800, toxisch ab 1000 ng/ml Theophyllin Blutentnahme-Zeitpunkt: 1 Stunde nach letzter Einnahme (Retardpräparate 4 Stunden) Eliminationshalbwertszeit: 3-12 Stunden (Erwachsene), 2-6 Stunden (Kinder) Material: Serum Menge: 200 µl Methode: CMIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden) Referenzbereich: therapeutisch 8,0-20,0 mg/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 217 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Tobramycin (F) Blutentnahme-Zeitpunkt: Spitzenspiegel 30 Min nach Infususionsende (i.v.); Talspiegel vor nächster Dosis. Eliminationshalbwertszeit: 2 Stunden Material: Serum Menge: 500 µl Methode: FPIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 1 Tag) Referenzbereich: s. Befund mg/l Topiramat Die Serumkonzentration sollte im Zusammenhang mit der klinischen Symptomatik beurteilt werden. Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe. Eliminationshalbwertszeit: 20-30 Stunden nach letzter Einnahme Material: Serum Menge: 200 µl Methode: GC/MS Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch: 2,4 - 8 mg/l Trimipramin (F) Eliminationshalbwertszeit: 10 - 40 Std. Material: Serum Menge: 2 ml Methode: HPLC Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 20 - 200, toxisch ab 500 µg/l Valproinsäure Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Dosis. Eliminationshalbwertszeit: 14 Stunden Material: Serum Menge: 300 µl Methode: GC/MS Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 4 Stunden) Referenzbereich: therapeutisch 50-100 mg/l Vancomycin Blutentnahme-Zeitpunkt: Spitzenspiegel 1 Stunde nach Infusionsende, Talspiegel vor nächster Dosis. Eliminationshalbwertszeit: 4-10 Stunden (Erwachsene), 2-3 Stunden (Kinder), 6-10 Stunden (Neugeborene). Material: Serum Menge: 300 µl Methode: CMIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden) Referenzbereich: s. Befund mg/l Vigabatrin Blutentnahme-Zeitpunkt : 2-4 Stunden nach Gabe. Eliminationshalbwertszeit: 4 Stunden, auf das Doppelte verlängert bei wiederholter Gabe. Material: Serum Menge: 1 ml Methode: GC/MS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch bei Abnahme 2-4 Stunden nach Einnahme 3,0-25,0 mg/l 218 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Zonisamid Eliminationshalbwertszeit: ca. 60 Std. Material: Serum Methode: HPLC Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 15-40 mg/l Zopiclon Material: Serum Menge: 0,5 ml Methode: LCMS Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: therapeutisch 10-60 mg/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 219 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Urindiagnostik (ohne Infektionserreger) Die Bestimmung der meisten folgenden Parameter sollte aus einem 24h-Sammelurin erfolgen. Bei der Bestimmung aus einem Spontanurin muss der Wert auf g/Kreatinin bezogen werden, Tagesschwankungen können so nicht adäquat berücksichtigt werden. beta-2-Mikroglobulin im Urin Material: Urin Menge: 500 µl Methode: Turbidimetrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Marker der tubulären Nierenschädigung, Alpha-1-Mikroglobulin ist für diese Diagnostik besser geeignet Referenzbereich: < 0,4 mg/l Proteindifferenzierung im Urin bestehend aus alpha-1-Mikroglobulin (ggf. zus. Retinol-bindendes Protein RBP) zur Beurteilung der tubulären Schädigung sowie Albumin, Transferrin und IgG zur Beurteilung der glomerulären Schädigung. Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: Urin Menge: 1500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung Proteinurie Referenzbereich: s. Befund Albumin im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Spontanurin Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Zur Beurteilung einer glomerulären Schädigung Referenzbereich: <30 mg/24h alpha-1-Mikroglobulin im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Spontanurin Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: z. A. einer tubulären Schädigung Referenzbereich: <15 mg/24h alpha-2-Makroglobulin im Urin (F) Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: postrenale Schädigung Referenzbereich: <10 mg/24h 220 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Aminosäuren im Urin (F) Urin möglichst bald nach Gewinnung einfrieren Material: Urin Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Diagnostik von Stoffwechselerkrankungen mit Störungen im Aminosäurestoffwechsel Referenzbereich: s. Befund Bence-Jones-Proteine (freie Leichtketten) im Urin Material: Urin Menge: 1000 µl Methode: IFE Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: weitere Abklärung einer Gammopathie Referenzbereich: s. Befund Calcium im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung Hypo- oder Hypercalcämie, Marker des allg. Knochenstoffwechsels, V. a. Hypo- oder Hyperparathyreoidismus, Abklärung Nephrocalcinose, V. a. Hypercalciurie bei Vitamin-D-Intoxikation oder granulomatösen Erkrankungen, Nieren-/Harnleiterstein-Abklärung Referenzbereich: M: 2,0-8,0 F: 2,0-7,0 mmol/24h Citrat im Urin Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Beurteilung der Lithogenität des Urins Referenzbereich: >500 mg/24h Eisen im Urin (F) Material: Urin Menge: 10 ml Methode: Photometrie Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: <100 µg/l Gesamteiweiß im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Proteinurie, Verlaufskontrolle Referenzbereich: <120 mg/24h Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 221 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Glucose im Urin quantitativ Material: Urin Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Glucosurie Referenzbereich: <0,15 g/l Harn-, Nierenstein-Analyse (F) Material: Harnstein, Nierenstein Methode: Infrarot-Spektroskopie Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung einer Urolithiasis Referenzbereich: s. Befund Harnstoff im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 500 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer Niereninsuffizienz Referenzbereich: 17-34 g/24h Harnsäure im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: V. a. Hyperuricusurie, Abklärung Nephro-/Urolithiasis Referenzbereich: 0,5-0,8 g/24h IgG im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Zur Beurteilung einer glomerulären Schädigung Referenzbereich: <9,0 mg/24h Kalium im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 500 µl Methode: ISE Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung Hypokalämie Referenzbereich: 50-125 mmol/24h Kochsalzausscheidung im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 1000 µl Methode: ISE Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Referenzbereich: 5,0-10,0 g/24h 222 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Kreatinin-Clearance 1 ml eines 24h-Sammelurins und 500 µl Serum des gleichen Tages. Zur Berechnung bitte auch Körperlänge, Gewicht und Sammelmenge angeben. Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Serum Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Beurteilung der glomerulären Filtrationsrate Referenzbereich: altersabhängige Normbereiche ml/min Magnesium im Urin (F) Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 1000 µl Methode: Flammenphotometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung Hypomagnesiämie, V. a. vermehrter renaler Magnesiumverlust Referenzbereich: 0,5-10,0 mmol/24h Myoglobin im Urin Material: Urin Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden) Indikation: Abschätzen einer Rhabdomyolyse Referenzbereich: <50 µg/l Natrium im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 500 µl Methode: ISE Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abschätzung der renalen Natrium-/Kochsalzausscheidung Referenzbereich: 80-160 mmol/24h Osmolalität im Urin (F) Material: Urin Menge: 500 µl Methode: Gefrierpunktosmometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Diabetes insipidus Referenzbereich: 50-1200 mosm/kg Oxalsäure im Urin (F) Bitte Sammelmenge angeben. Material: Glucoexact Menge: 1000 µl Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Abklärung einer Urolithiasis Referenzbereich: s. Befund mg/24h Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 223 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Phosphat im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Abklärung Knochenstoffwechsel, V. a. renalen Phosphatverlust (Phosphatdiabetes) Referenzbereich: 15-30 mmol/24h Porphyrie-Diagnostik Porphobilinogen (F) Bitte Sammelmenge angeben. Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden. Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Verdacht auf Schwermetallvergiftung (z. B. Blei), akute und chronische hepatische Porphyrien Referenzbereich: <2,0 mg/l delta-Aminolävulinsäure (F) Bitte Sammelmenge angeben. Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden. Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Verdacht auf Schwermetallvergiftung (z. B. Blei), akute hepatische Porphyrien Referenzbereich: 0,1-4,5 mg/l Porphyrine, gesamt (F) Bitte Sammelmenge angeben. Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden. Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Verdacht auf Schwermetallvergiftung (z. B. Blei), akute und chronische hepatische Porphyrien, Arzneimittelschädigung der Leber Referenzbereich: <100 mg/24h Porphyrine, Differenzierung (F) Bitte Sammelmenge angeben. Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden. Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze Menge: 1000 µl Methode: HPLC Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Diffenzialdiagnostik bei erhöhter Gesamt-Porphyrin-Aussscheidung Referenzbereich: s. Befund mg/24h Pyridinoline im Urin (s. S. 205 ) 224 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Retinol-bindendes Protein im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 500 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Z. A. einer tubulären Schädigung Referenzbereich: <1,0 mg/24h Transferrin im Urin Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich). Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin Menge: 1000 µl Methode: Nephelometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Zur Beurteilung einer glomerulären Schädigung Referenzbereich: <1,0 mg/24h Urinsediment der Urin sollte nicht älter als 12 Stunden sein Material: frischer Urin Menge: 2 ml Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Suchtest bei V. a. Erkrankungen der ableitenden Harnwege sowie bei V. a. Nierenerkrankung Referenzbereich: s. Befund Urinstatus bestehend aus Trockenchemie und Urin-Sediment Material: Urin Menge: 2 ml Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Suchtest auf Erkrankungen der Nieren und der ableitenden Harnwege Referenzbereich: s. Befund Xylose im Urin (F) Material: 5 h-Sammelurin, ohne Zusätze Menge: 2 ml Methode: Photometrie Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: I. R. des D-Xylose-Belastungstests Referenzbereich: s. Befund g/5h Kreatinin im Urin Material: Urin Menge: 1000 µl Methode: Photometrie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag) Indikation: Marker für Konzentration eines Spontanurins, Berechnung der Kreatinin-Clearance Referenzbereich: 0,40 - 2,00 g/l Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 225 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie Stuhl-Diagnostik (ohne Infektionserreger) Blut im Stuhl, immunologisch quantitative Messung von Hämoglobin und Hämoglobin-Haptoglobin-Komplex im Stuhl mit einem immunologischen Verfahren. Material: Stuhl Menge: 1 g Methode: ILMA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Z. A. einer Blutungsquelle im Colon, als Screeningmethode zur Krebsvorsorge. Referenzbereich: Hämoglobin: <2,0, Hämoglobin-Haptoglobin-Komplex: < 1,0 µg/g Stuhl Lactoferrin im Stuhl Spezifisches Protein der Leukozyten. Bei entzündlichen Darmerkrankungen (M. Crohn, Colitis ulcerosa) werden in der Regel erhöhte Werte im Stuhl gemessen. Die Konzentration im Stuhl korreliert mit dem Grad der Entzündung. Material: Stuhl Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle von entzündlichen Darmerkrankungen Referenzbereich: < 7 µg/g Stuhl Calprotectin im Stuhl Calprotectin ist wie Lactoferrin ein Protein der Leukozyten. Bei entzündlichen Darmerkrankungen (M. Crohn, Colitis ulcerosa) werden in der Regel erhöhte Werte im Stuhl gemessen. Die Konzentration im Stuhl korreliert mit dem Grad der Entzündung. Material: Stuhl Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle von entzündlichen Darmerkrankungen Referenzbereich: < 50 µg/g Stuhl PMN-Elastase im Stuhl (F) Material: Stuhl Menge: 1 g Methode: EIA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung entzündlicher Darmerkrankungen Referenzbereich: <60 ng/g Stuhl Albumin im Stuhl (F) Material: Stuhl Menge: 1 g Methode: ILMA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung entzündlicher Darmerkrankungen, besser geeignet sind Calprotectin und Lactoferrin Referenzbereich: <50 µg/g Stuhl alpha-1-Antitrypsin im Stuhl (F) Material: Stuhl Menge: 1 g Methode: ILMA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung entzündlicher Darmerkrankungen, besser geeignet sind Calprotectin und Lactoferrin Referenzbereich: <200 µg/g Stuhl 226 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie IgA im Stuhl (F) Material: Stuhl Menge: 1 g Methode: ILMA Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung entzündlicher Darmerkrankungen, besser geeignet sind Calprotectin und Lactoferrin Referenzbereich: <500 µg/g Stuhl Pankreatische Elastase im Stuhl Material: Stuhl Menge: 1 g Methode: EIA Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. exokrine Pankreasinsuffizienz Referenzbereich: >200 µg/g Stuhl Fette im Stuhl (quantitativ) (F) Um Inhomogenitäten des Materials auszugleichen, wird empfohlen, drei an verschiedenen Tagen gewonnene Stuhlproben einzusenden. (Proben zwischenzeitlich kühl lagern) Material: Stuhl Menge: 1 g Methode: Photometrie Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: V. a. Malabsorption und Maldigestion Referenzbereich: <2,0 % Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 227 Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie 228 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Forensische Toxikologie Betäubungsmittelanalytik Unser Labor ist nach DIN EN ISO/IEC 17025:2005 für die Untersuchung von Blut und Urin für forensische Zwecke mit Gutachten akkreditiert. Die Untersuchung der Urinproben erfolgen nach den Vorgaben der CTU-Kriterien (Urteilsbildung in der medizinischpsychologischen Fahreignungsdiagnostik: Beurteilungskriteren (2. Auflage 2009); W. Schubert, R. Mattern Kirschbaum Verlag. Alkohol- und Drogenscreening im Urin Drogenscreening auf Substanzgruppen im Urin Nachweis folgender Substanzgruppen: Amphetamine, Barbiturate, Benzodiazepine, Cannabinoide (Haschisch, Marihuana), Kokain, LSD, Methadon, Opiate, Phencyclidin). Für die forensische Analytik muss eine eindeutige und vollständige Kennzeichnung von Probe und Untersuchungsauftrag mit Namen, Vornamen, Geburtsdatum sowie Datum und Uhrzeit der Probenentnahme erfolgen. Amphetamine im Urin Zur Gruppe dieser Stimulantien gehören z.B. Amphetamin (Speed), Methamphetamin und Ecstasy /XTC (3,4-Methylendioxy-N-methylamphetamin; MDMA) und andere Derivate, die sich vom Phenylethylamin ableiten. Material: Urin Menge: 2 ml Methode: GC/MS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <50 ng/ml Barbiturate im Urin Material: Urin Menge: 2 ml Methode: CEDIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: < 200 Benzodiazepine im Urin Material: Urin Menge: 2 ml Methode: CEDIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <20 ng/ml Buprenorphin im Urin Subutex®, Temgesic® Material: Urin Menge: 2 ml Methode: CEDIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <2,5 ng/ml Cannabinoide im Urin Haschisch, Marihuana Material: Urin Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 229 Forensische Toxikologie Ethylglucuronid (EtG) im Urin Ethylglucuronid (EtG) ist ein direkter Phase II-Metabolit der Alkoholabbaus aus der hepatischen Glucuronidierung mit anschließender renaler Elimination. Es schließt die diagnostische Lücke zwischen Blutalkohol (aktueller Konsum) und CDT (ca. 3 Wochen). Die Nachweisbarkeit beträgt - abhängig von der konsumierten Menge Alkohol - ca. 1,5 - 3 Tage und tritt frühestens 2 - 3,5 Stunden nach Erreichen der maximalen Blutalkoholkonzentration auf. Material: Urin Menge: 2 ml Methode: Photometrie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Alkoholkonsum in den letzten 24 - 72 Std. Referenzbereich: bei Alkoholabstinenz <0,1 mg/l Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Urin Material: Urin Menge: 2 ml Methode: CEDIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <30 ng/ml LSD im Urin Material: Urin Menge: 2 ml Methode: CEDIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <0,25 ng/ml Methadon im Urin Methadonmetabolit EDDP Material: Urin Menge: 2 ml Methode: CEDIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <50 ng/ml Opiate im Urin Methadon wird mit diesem Test nicht erfasst! Material: Urin Menge: 2 ml Methode: CEDIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <25 ng/ml Phencyclidin im Urin Syn. "Angels Dust" Material: Urin Menge: 2 ml Methode: CEDIA Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <7 ng/ml Bestätigungsanalyse für ein positives Drogenscreening im Urin Für die Drogenanalytik fordert die Gesellschaft für Toxikologische und Forensische Chemie (GTFCh) die Bestätigung eines immunologisch positiven Ergebnisses (Suchtest) durch ein alternatives Untersuchungsverfahren nach physikalisch-chemischem Reaktionsprinzip (Bestätigungsanalyse). Diese Untersuchung wird aus derselben Probe durchgeführt. Positive Befunde, die nicht durch eine andere unabhängige Untersuchung manifestiert wurden, sind forensisch nicht verwertbar. Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit der Probenentnahme gekennzeichnet sein. 230 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Forensische Toxikologie Amphetamine im Urin Amphetamin, Metamphetamin, MDA, MDMA, MDEA, MBDB, PMA, PMMA, BDB, Ephedrin Menge: 2 ml Methode: GC/MS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <50 ng/ml Barbiturate im Urin (F) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: s. Befund Benzodiazepine im Urin Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <50 ng/ml Buprenorphin im Urin Buprenorphin (Subutex®, Temgesic®) und Norbuprenorphin (aktiver Metabolit) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <1 ng/ml Cannabinoide im Urin Haschisch, Marihuana Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Ethylglucuronid (EtG) im Urin Bestätigungsanaylse bei positivem EtG-Screening oder als Methode der ersten Wahl, bei Personen, die beruflich Lösungsmitteln exponiert sind (z. B. Isopropanol) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Alkoholkonsum in den letzten 24 - 72 Std. Referenzbereich: bei Alkoholabstinenz <0,1 mg/l Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Urin Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml LSD im Urin (F) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: s. Befund Methadon im Urin Methadon und Methadon-Metabolit (EDDP) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <50 ng/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 231 Forensische Toxikologie Opiate im Urin Methadon wird mit diesem Test nicht erfasst! Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <25 ng/ml Phencyclidin im Urin Syn. "Angels Dust" Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <1 ng/ml Substanzen, die im Urin nur mittels Massenspektrometrie nachweisbar sind Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit der Probenentnahme gekennzeichnet sein. Cotinin (Nikotinmetabolit) im Urin (F) Material: Urin Menge: 5 ml Methode: HPLC Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Referenzbereich: Nichtraucher <50 µg/l Tilidin im Urin Tilidin und Nortilidin (Metabolit) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Tramadol im Urin Tramadol und N- bzw. O-Desmethyl-Tramadol (Metabolite) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Zolpidem im Urin Zolpidem und Norzolpidem Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <5 ng/ml Zopiclon im Urin Zopiclon und Norzopiclon Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <5 ng/ml 232 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Forensische Toxikologie Drogenscreening im Serum Drogenscreening auf Substanzgruppen im Serum Nachweis folgender Substanzgruppen: Amphetamine, Barbiturate, Benzodiazepine, Cannabinoide (Haschisch, Marihuana), Kokain, LSD, Methadon, Opiate, Phencyclidin). Für die forensische Analytik muss eine eindeutige und vollständige Kennzeichnung von Probe und Untersuchungsauftrag mit Namen, Vornamen, Geburtsdatum sowie Datum und Uhrzeit der Probenentnahme erfolgen. Amphetamine im Serum Zur Gruppe dieser Stimulantien gehören z.B. Amphetamin (Speed), Methamphetamin, Ecstasy /XTC (3,4-Methylendioxy-N-methylamphetamin; MDMA) und andere Derivate, die sich vom Phenylethylamin ableiten. Material: Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Barbiturate im Serum Material: Serum Menge: 2 ml Methode: CEDIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Benzodiazepine im Serum Material: Serum Menge: 1000 µl Methode: CEDIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Buprenorphin im Serum (s. S. 235 ) nur massensprektrometrisch nachweisbar Cannabinoide im Serum Haschisch, Marihuana Material: Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <1 ng/ml Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Serum Falls sich bei positivem Suchtest eine Bestätigungsanalyse aus forensischer Fragestellung ergibt, muss initial bei der Blutentnahme auf die Verwendung von Natriumfluorid-Röhrchen geachtet werden, da Kokain ohne Fixierung in vitro weiter zu Benzoylecgonin verstoffwechselt wird. Material: Natriumfluorid-Blut, Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Methadon im Serum Material: Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 233 Forensische Toxikologie Opiate im Serum Methadon wird mit diesem Test nicht erfasst! Material: Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Phencyclidin im Serum Syn. "Angels Dust" Material: Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <1,0 ng/ml Bestätigungsanalyse für ein positives Drogenscreening im Serum Für die Drogenanalytik fordert die Gesellschaft für Toxikologische und Forensische Chemie (GTFCh) die Bestätigung eines immunologisch positiven Ergebnisses (Suchtest) durch ein alternatives Untersuchungsverfahren nach physikalisch-chemischem Reaktionsprinzip (Bestätigungsanalyse). Diese Untersuchung wird aus derselben Probe durchgeführt. Positive Befunde, die nicht durch eine andere unabhängige Untersuchung manifestiert wurden, sind forensisch nicht verwertbar. Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit der Probenentnahme gekennzeichnet sein. Amphetamine im Serum Amphetamin, Metamphetamin, MDA, MDMA, MDEA, MBDB, PMA, PMMA, BDB, Ephedrin Menge: 2 ml Methode: GC/MS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Barbiturate im Serum (F) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf Referenzbereich: s. Befund Benzodiazepine im Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Cannabinoide im Serum Haschisch, Marihuana Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <1 ng/ml Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Serum Kokain wird in vitro abgebaut. Bei der Blutentnahme ist auf die Verwendung von Fluorid-enthaltenden Spezialröhrchen zu achten. Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <2 ng/ml 234 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Forensische Toxikologie LSD im Serum (F) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf Referenzbereich: s. Befund Methadon im Serum Methadon und Methadon-Metabolit (EDDP) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Opiate im Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Phencyclidin im Serum Syn. "Angels Dust" Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <1,0 ng/ml Substanzen, die im Serum nur mittels Massenspektrometrie nachweisbar sind Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit der Probenentnahme gekennzeichnet sein. Buprenorphin im Serum Buprenorphin (Subutex®, Temgesic®) und Norbuprenorphin (aktiver Metabolit) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <1 ng/ml Tilidin im Serum Tilidin und Nortilidin (Metabolit) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Tramadol im Serum Tramadol und N- bzw. O-Desmethyl-Tramadol (Metabolite) Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <10 ng/ml Zolpidem im Serum Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <5 ng/ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 235 Forensische Toxikologie Zopiclon im Serum Zopiclon und Norzopiclon Menge: 2 ml Methode: LCMS Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Referenzbereich: <5 ng/ml CDT (Carbohydrate Deficient Transferrin) CDT steigt an, wenn mehr als 60 g Ethanol täglich konsumiert werden. Material: Serum Menge: 500 µl Methode: HPLC Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: V. a. Alkoholabusus Referenzbereich: <1,7%, Graubereich bis 2,5 % 236 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Allgemeine Bakteriologie Untersuchungsdauer in der Bakteriologie In der Regel ist nach Übernachtbebrütung ein Vorbefund (Erregernachweis) verfügbar. Ein Endbefund mit Erregeridentifizierung und Antibiogramm ist i.d.R. nach spätestens 4 Tagen ab Probeneingang verfügbar. Bei Mischkulturen mit mehreren Erregern kann dieser Zeitraum um 1-2 Tage überschritten werden. Bei einer Reihe von langsam wachsenden Erregern, bzw. bei Materialien, in denen mit solchen Erregern gerechnet werden muss, sind längere Kultivierungszeiten erforderlich (Aktinomyzeten: 5-10 d; Dermatophyten: 21 d; Hefepilze: 2-6 d; Helicobacter pylori: 5-10 d; Legionellen: 5-10 d; Mycoplasma hominis/Ureaplasma urealyticum: 4-6 d; Mycoplasma pneumoniae: 10 d) Mikrobiologische Diagnostik von ZNS-Infektionen Liquorkultur Die Untersuchung beinhaltet mikroskop. Präparate (Gram, Methylenblau). Liquorprobe teilen (2/3 in BK-Flasche, bevorzugt BK-Flasche P-Pädiatrie oder aerobe BK-Flasche) für Kultur; 1/3 in steriles Röhrchen mit Schraubverschluß für Mikroskopie). Unverzüglicher Transport ins Labor; Abkühlung vermeiden. Material: Liquor Menge: 2 ml Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5 Tage) Indikation: V. a. bakterielle Meningitis Cryptococcus neoformans-Kultur Die Untersuchung umfasst den mikroskopischen Direktnachweis (Tuschepräparat) und eine Kultur auf Spezialmedium (Dauer: max 10 Tage). Liquorprobe in sterilem Schraubgefäß unverzüglich ins Labor transportieren; parallel immer Antigennachweis in Liquor und Serum durchführen! Material: Liquor Menge: 2 ml Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-10 Tage) Indikation: V. a. Meningitis beim Immunsupprimierten Cryptococcus neoformans-Antigen (F) Zusätzlich immer Kultur und Mikroskopie anfordern. Liquorprobe in sterilem Schraubgefäß unverzüglich ins Labor transportieren. Material: Liquor/Serum Menge: 1 ml Methode: Ag-Nachweis Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage) Indikation: V. a. Meningitis beim Immunsupprimierten Cryptococcus-neoformans-DNA (F) EDTA-Blut (2-3 ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Biopsie, Bronchialsekret (1 ml) Material: EDTA-Blut, Liquor, Biopsie, Bronchialsekret Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: V. a. Meningitis beim Immunsupprimierten Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 237 Mikrobiologie Mikrobiologische Diagnostik bei Sepsis / Bakteriämie Blutkultur Die Untersuchung beinhaltet die Kultur in einem automatisierten System sowie im positiven Fall ein mikroskop. Präparat, die Erregeridentifizierung und die Empfindlichkeitsprüfung. Die Flaschen werden 5 Tage bebrütet (Ausnahme: bei Endokarditis 14 Tage). Positive Befunde werden vorab generell telefonisch mitgeteilt. Punktionsstelle sorgfältig desinfizieren, Desinfektionslösung antrocknen lassen. Blutkulturflaschen nach Herstellerangabe beimpfen (i.d.R. 5-10 ml Blut in je eine aerobe und eine anaerobe Flasche; eine Belüftung ist bei unserem System nicht erforderlich). BK-Flaschen bei Raumtemperatur lagern und transportieren (müssen innerhalb von 48 h im Labor eintreffen). Material: Blut/Blutprodukte Menge: 10 ml Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5/14 Tage) Indikation: V. a. Bakteriämie/Sepsis Mikrobiologische Diagnostik von Respirationstraktinfektionen Legionellen-Antigen im Urin Die Untersuchung auf Legionellen-Ag im Urin ist neben dem molekularbiol. Nachweis im Respirationstraktsekret die einzige Möglichkeit für eine schnelle Legionellendiagnostik (Dauer der Kultur: bis 10d). Die Sensitivität des Ag-Nachweises beträgt ca 80-85%. Legionellen-Ag ist auch noch nach Therapiebeginn nachweisbar. Lagerung gekühlt Material: Urin Menge: 5 ml Methode: Ag-EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: V. a. Legionellose Bronchialsekret Erfasst werden alle relevanten bakteriellen Atemwegsinfektionserreger einschl. obligate Anaerobier, Mycoplasmen und Hefepilze. Nicht erfasst werden Legionellen, Chlamydien, Tuberkuloseerreger, P. jiroveci, Viren (s. jeweils spezielle Untersuchungen) Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluß; Lagerung gekühlt Material: Bronchialsekret Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: V.a. Infektion des unteren Respirationstraktes BAL-Flüssigkeit Erfasst werden alle relevanten Atemwegsinfektionserreger einschl. obligaten Anaerobiern, Pilzen, Legionellen und Mycoplasmen. Die Erregerzahl wird in KBE/ml angegeben. Untersuchung auf Mykobakterien, P. jirovecii (bei Immunsuppression), Viren und Chlamydophila pneumoniae bitte ausdrücklich vermerken. Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluß; Lagerung gekühlt Bei Untersuchung auf Legionellen und M. pneumoniae: Untersuchungsdauer bis 10 Tage Material: Bronchiallavage Menge: 10 ml Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: V. a. Infektion des unteren Respirationstraktes 238 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Trachealsekret Erfasst werden alle relevanten Atemwegsinfektionserreger einschl. obligaten Anaerobiern, Mycoplasmen und Pilzen mit Ausnahme von Legionellen, Chlamydien, Tuberkuloseerregern, P. jiroveci und Viren(s. jeweils spezielle Untersuchungen) Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluß; Lagerung gekühlt Bei Untersuchung auf Legionellen und M.pneumoniae: Untersuchungsdauer 10 Tage Material: Trachealsekret Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: V. a. Infektion des unteren Respirationstraktes bei mechanischer Ventilation Sputum Erfasst werden alle relevanten bakteriellen Atemwegsinfektionserreger mit Ausnahme von obligaten Anaerobiern, Legionellen, Chlamydien, Tuberkuloseerregern. Sproßpilze und P. jiroveci bitte gezielt anfordern. Mundspülung mit Leitungswasser vor Expektoration; Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluß; Lagerung gekühlt Material: Sputum Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: V. a. Infektion des unteren Respirationstraktes Sputum bei Cystischer Fibrose Erfasst werden alle relevanten bakteriellen Atemwegsinfektionserreger (einschl. Pseudomonas spp., Burkholderia spp. und verschiedene Nonfermenter). Bei bakteriellen Erregern, die mit phänotypischen Verfahren nicht sicher identifiziert werden können kann bei Kostenübernahme eine genotypische Identifizierung durchgeführt werden. Die Untersuchung beinhaltet eine Pilzkultur, insbes. zum Nachweis von Aspergillus spp.. Im Standardansatz NICHT erfasst werden obligate Anaerobiern, Legionellen, Chlamydien, Mykobakterien und P. jiroveci. Bitte ggf. gezielt anfordern. Material: Sputum Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-8 Tage) Indikation: V.a. Infektion bzw. Kolonisation des Respirationstraktes bei Patienten mit Cystischer Fibrose Pneumocystis jirovecii-IFT Untersuchungsmaterial der Wahl ist BAL-Flüssigkeit. Bei ambulanten Patienten kann auch provoziertes (!) Sputum untersucht werden. Bronchial-/Trachealsekret und spontanes Sputum sind wg. geringer Sensitivität i.d.R. nicht geeignet. Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluß; Lagerung gekühlt Material: Respirationstraktsekret Menge: 5 ml Methode: IFT Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: V. a. Pneumocystis jiroveci-Pneumonie, trockener Husten, Dyspnoe insbesondere bei Immunsuppression (HIV) Pneumocystis jiroveci DNA (PCR) (s. S. 58 ) Mikrobiologische Diagnostik von Haut-, Weichteil- und Wundinfektionen Hautabstrich Die Untersuchung umfasst nur die Kultur von aeroben Bakterien. Bei V. a. Hautsoor bitte entprechenden Vermerk auf dem Untersuchungsschein. Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei V.a. Dermatomykose Hautschuppen einsenden (in sterilem Röhrchen), bei Abstrichen ist die Sensitivität ungenügend. Material: Abstrich Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 239 Mikrobiologie Indikation: V. a. Hautinfektion (z.B. Impetigo, infiz. Ekzem) Wundabstrich/Intraoperativer Abstrich Erfasst werden Bakterien einschließlich obligaten Anaerobiern. Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); bei gasbildender Weichteilinfektion (V. a. Gasbrand) bitte telefonische Ankündigung und Vermerk auf Untersuchungsschein. Material: Wundabstrich Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: V. a. Wundinfektion Pustelabstrich Erfasst werden grundsätzlich nur aerobe Bakterien. Um Kontamination mit Hautflora zu vermeiden, empfiehlt sich bei geschlossenen Pusteln folgendes Vorgehen: 1. Pusteloberfläche und umgebende Haut desinfizieren (Alkohol) 2. Nach Verdunsten des Alkohols Pustel punktieren 3. Punktat auf Abstrichtupfer geben 4. Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel) Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: Pustulöse Hautinfektion Abszessabstrich/-punktat Erfasst werden Bakterien einschließlich obligaten Anaerobiern. Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); bei Abszedierungen im Halsbereich auch an einschmelzende Lymphadenitis durch Tuberkuloseerreger oder atypische Mykobakterien denken und möglichst Gewebeproben auf Mykobakterien im sterilen Röhrchen einsenden (DD bei Kindern: Katzenkratzkrankheit). Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: Abszess, Furunkel etc. Mikrobiologische Diagnostik von Harnwegsinfektionen Urin (nativ) Die Untersuchung erfasst auch Erreger, die mittels Urikult nicht oder nicht sicher nachweisbar sind (Candida spp., Mycoplasmen/Ureaplasmen, uropathogene Corynebakterien, Anaerococcus). Bei negativem Ergebnis trotz Vorliegen einer Harnwegsinfekion (sterile Leukozyturie) nativen Urin auf Mykobakterien einsenden. Probe gekühlt und ohne Verzögerung ins Labor transportieren. Ggf. Transportröhrchen mit Stabilisator verwenden. Material: Urin Menge: 5 ml Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: V. a. Harnwegsinfektion Uricult Die Untersuchung erfasst nur die schnell wachsenden häufig vorkommenden uropathogenen Erreger. Bei negativem Ergebnis trotz Vorliegen einer Harnwegsinfekion nativen Urin einsenden. Urikult ggf. über Nacht bei 35-37◦ C bebrüten und danach unverzüglich ins Labor senden. Verfallsdatum des Urikult beachten und nach Anleitung beimpfen! Material: Urikult Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: V. a. Harnwegsinfektion 240 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Mikrobiologische Diagnostik von Darminfektionen Stuhluntersuchung Stufe 1 Untersuchung auf Salmonellen/Shigellen Material: Stuhl Menge: kirschgroß Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: V. a. Salmonellenenteritis/Shigellenruhr Stuhluntersuchung Stufe 2 Untersuchung auf Salmonellen/Shigellen/Campylobacter/Yersinien/S. aureus/Aeromonas; enteropath. E.coli (EPEC) (nur bei Kindern < 7J) Material: Stuhl Menge: kirschgroß Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: V. a. infektiöse Enteritis Stuhluntersuchung Stufe 3 Untersuchung auf Salmonellen/Shigellen/Campylobacter/Yersinien/S. aureus/Vibrio spp./Aeromonas spp./Plesiomonas spp.; enteropath. E.coli (EPEC) (nur bei Kindern < 7J) Material: Stuhl Menge: kirschgroß Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: V. a. infektiöse Enteritis nach Auslandsaufenthalt Stuhluntersuchung auf Clostridientoxine Als Verursacher einer antibiotikaassoziirten Diarrhoe kommt in erster Linie Clostridium-difficile-Toxin (A/B) in Frage. Stuhlproben sollten innerhalb von 24 h im Labor eingehen, da Clostridientoxine instabil sind; Lagerung gekühlt. Material: Stuhl Menge: kirschgroß Methode: Ag-Nachweis Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: V. a. antibiotikaassoziierte Diarrhoe (AAD); Diarrhoe während oder bis zu 4 Wochen nach antibiotischer Therapie Referenzbereich: negativ Stuhluntersuchung auf EHEC Die Untersuchung auf Toxine von enterohämorrhagischen E. coli (EHEC) wird routinemäßig bei mikrobiol. Stuhluntersuchungen von Kinder < 7 J. durchgeführt. Lagerung gekühlt Material: Stuhl Menge: erbsgroß Methode: Ag-Nachweis Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: V. a. HUS; V. a. infektiöse Enteritis beim Kind Referenzbereich: negativ Serologie bei V. a. EHEC, HUS (s. S. 26 ) Stuhluntersuchung auf Pilze Die Untersuchung wird generell quantitativ durchgeführt (Befundmitteilung in KBE/g Stuhl und entsprechender Bewertung) Material: Stuhl Menge: erbsgroß Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: V. a. intestinale Mykose; chron. rezidiv. Candidavaginose Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 241 Mikrobiologie Stuhluntersuchung auf Campylobacter-Antigen Die Untersuchung auf Campylobacter-Antigen wird bei makroskopisch auffälligen Stuhlproben (insbes. bei Blut-/Schleimbeimengungen) oder auf gezielte Anforderung durchgeführt. Vorteil gegenüber der Kultur: schnelleres Ergebnis, keine Beeinflussung durch Transport; Nachteil: Nachweis nicht speziesspezifisch, sondern genusspezifisch (Campylobacter species); keine Empfindlichkeitsprüfung möglich. Deswegen parallel Kultur empfehlenswert. Lagerung gekühlt Material: Stuhl Menge: erbsgroß Methode: Ag-Nachweis Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: V. a. infektiöse Enteritis; V. a. Campylobacterenteritis Referenzbereich: negativ Clostridium difficile DNA Material: Stuhl Menge: erbsgroß Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Verdacht auf antibiotikaassoziierte Diarrhoe (AAD): Diarrhoe während oder bis zu 4 Wochen nach antibiotischer Terapie. Referenzbereich: negativ Mikrobiologische Diagnostik von HNO-Infektionen Rachen-/Tonsillenabstrich Erfasst werden alle relevanten Erreger von Infektionen der oberen Atemwege. Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei V.a. Diphtherie bitte telef. Vorabinformation (0711 6357152) und entsprechender Vermerk auf dem Begleitschein. Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: Tonsillitis, Pharyngitis Rachenabstrich auf ß-hämolysierende Streptokokken Erfasst werden die Serotypen A,B,C,F,G Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel) Material: Abstrich Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: V. a. Streptokokkentonsillitis/-pharyngitis V. a. Scharlach Nasennebenhöhlenabstrich/-punktat Erfasst werden Bakterien einschl. obligaten Anaerobiern und Pilze (Sproßpilze, Fadenpilze) Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel) Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: Nasennebenhöhlenentzündung Gehörgangsabstrich Erfasst werden otopathogene Bakterien einschl. Turicella otitidis. Bei Pat. > 10 Jahre und Otitis externa zusätzlich Pilze (Sproßpilze, Fadenpilze). Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel) Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: Otitis media perforata; Otitis externa 242 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Mikrobiologische Diagnostik von Infektionen im Zahn-/Kieferbereich Abszessabstrich/-punktat im Zahn-/Kieferbereich Erfasst werden Bakterien einschließlich obligaten Anaerobiern und Aktinomyzeten Versand in Transportmedium mit Gel Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-10 Tage) Indikation: Abszesse im Zahn-/Kieferbereich Parodontopathogene Keime DNA Der kulturelle Nachweis parodontopathogener Erreger ist langwierig und hat eine unzureichende Sensitivität. Deswegen wird vorzugsweise ein molekularbiologisches Verfahren zum Nachweis der sogenannten Markerkeime eingesetzt. Zur Probenentnahme sterile Papierspitzen in die Zahntaschen eingeführen. Versand in sterilen Schraubgefäßen ohne Transportmedium (komplettes Set für Entnahme und Transport im Labor erhältlich). Bitte die Zahntaschentiefe angeben! Material: Sterile Papierspitzen Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Parodontitis Referenzbereich: negativ Mikrobiologische Diagnostik von Genitalinfektionen Chlamydiennachweis (s. S. 19 ) Genitalabstrich auf ß-häm. Streptokokken Erfasst werden die Serotypen A,B,C,F,G. Bei Untersuchung im Rahmen des B-Streptokokkenscreenings am Ende der Schwangerschaft wird ein Aufkleber für den Mutterpass mitgeliefert. Versand in Transportmedium Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: V. a. genitale Streptokokkeninfektion; B-Streptokokken-Screening in der Schwangerschaft (35.-37.SSW; Abstrich vaginal plus rektal oder vaginal plus perianal: bitte Vorgaben unbedingt einhalten und auf Auftrag vermerken, da ansonsten die Aussagekraft der Untersuchung bei negativem Ergebnis eingeschränkt ist). Cervixabstrich auf Bakterien und Pilze Die Untersuchung umfasst neben dem Grampräparat die Kultur auf aerobe und anaerobe Bakterien einschl. Mycoplasmen/Ureaplasmen und Hefepilze. (Bei Schwangeren zusätzlich Gonokokken und bei Komplikationen, z.B. vorzeitige Wehentätigkeit, Frühgeburtsbestrebungen, die gezielte Untersuchung auf Listerien). Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf Anforderungsschein. Bei V. a. Chlamydieninfektion bitte getrennten Tupfer in Spezialmedium zur Chlamydiendiagnostik einsenden). Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: V. a. Cervicitis; Komplikationen in der Schwangerschaft (vorz. Wehentätigkeit; Cervixinsuffizienz u. a.) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 243 Mikrobiologie Genitalabstrich auf Mykoplasmen/Ureaplasmen Die Untersuchung erstreckt sich gezielt auf den Nachweis von Mykoplasmen und Ureaplasmen. Kulturdauer: 4 Tage Versand im bakteriologischen Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-5 Tage) Indikation: V. a. bzw. Kontrolle nach Infektion/Kolonisation durch Mykoplasmen oder Ureaplasmen. Vaginalabstrich auf Bakterien und Pilze Die Untersuchung umfasst neben dem Grampräparat die Kultur auf aerobe und anaerobe Bakterien und Hefepilze. (Bei Schwangeren zusätzlich Gonokokken und bei Komplikationen, z.B. vorzeitige Wehentätigkeit, Frühgeburtsbestrebungen, zusätzlich die gezielte Untersuchung auf Listerien). Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf Anforderungsschein. Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: Kolpitis; Komplikationen in der Schwangerschaft (vorz. Wehentätigkeit; Cervixinsuffizienz u.a.) Abstrich auf N. gonorrhoeae (Gonokokken) Bei V. a. Gonorrhoe differentialdiagnostisch auch Chlamydia trachomatis ausschließen (spezielles Transportmedium), da klinisch nicht sicher zu unterscheiden und häufig Koinfektion! Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf Anforderungsschein. Gonokokken sind empfindlich gegenüber Abkühlung (Lagerung und Transport bei Raumtemperatur; Transportzeit max. 24 h). Bei längeren Transportzeiten ggf. molekularbiologischen Nachweis veranlassen (kann aus dem Chlamydienabstrichset durchgeführt werden) Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: V. a. Gonorrhoe, V. a. STD Genitalabstrich auf Aktinomyzeten Gezielte Untersuchung auf Aktinomyzeten (insbesondere aus intraoperativen Abstrichen oder Gewebeproben bei Adnexitis). Kulturdauer: 10 Tage Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf Anforderungsschein. Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 10 Tage) Indikation: V. a. Aktinomykose; Screening vor IUD-Einlage Mikrobiologische Diagnostik von Augeninfektionen Konjunktivalabstrich Erfasst werden alle bakteriellen Konjunktivitiserreger (bei Neugeborenen einschl. Gonokokken) mit Ausnahme von Chlamydia trachomatis (molekularbiol. Nachweis) Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); Lagerung bei Raumtemperatur Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: Eitrige Konjunktivitis 244 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Glaskörperpunktat Die Untersuchung umfasst den kulturellen Nachweis von Bakterien (einschl. obligater Anaerobier) und Pilzen und die Mikroskopie. Eiltransport in sterilem Röhrchen mit Schraubverschluß oder in sicher und steril verschlossener Spritze; Lagerung bei Raumtemperatur Material: Glaskörperpunktat Menge: max. mögliches Volumen Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: V. a. Infektion des Glaskörpers (z.B. postoperativ) Mikrobiologische Diagnostik von Gelenkinfektionen Gelenkabstrich/-punktat Erfasst werden Bakterien einschließlich obligaten Anaerobiern. Zusätzlich bei Erwachsenen mit spontaner Arthritis: Gonokokken Abstrich: Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); Punktat: Eilversand in sterilem Röhrchen mit Schraubverschluß, zusätzlich möglichst Blutkulturflasche beimpfen ; Lagerung bei Raumtemperatur Material: Abstrichtupfer/Punktat Menge: 5 ml Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: V. a. infektiöse Arthritis Gewebeproben bei periprothetischer Infektion Erfasst werden Bakterien einschließlich obligater Anaerobier und langsam wachsender Verursacher (incl. SCV) von low-grade Infektionen, sowie Candida spp. Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); größere Gewebeproben in sterilem Röhrchen mit 0,9% NaCl-Lsg. versenden. Maximale Probengröße: 1 ccm; Zerkleinerung von größeren Proben im Labor erhöht das Kontaminationsrisiko! Proben am Entnahmetag ins Labor bringen. Lagerung bei Raumtemperatur Material: Gewebe Menge: 3-5 Stück Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage) Indikation: V. a. periprothetische Infektion Gelenkpunktat bei periprothetischer Infektion Erfasst werden Bakterien einschließlich obligater Anaerobier und langsam wachsender Verursacher (incl. SCV) von low-grade Infektionen, sowie Candida spp. Punkat in steriles Röhrchen mit Schraubverschluss geben (mind. 1 ml); bei größeren Volumina zusätzlich Blutkulturflasche beimpfen. Probe am Entnahmetag ins Labor bringen. Lagerung bei Raumtemperatur. Material: Punktat Menge: 5 ml Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage) Indikation: V. a. periprothetische Infektion Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 245 Mikrobiologie Mikrobiologische Diagnostik von Helicobacter-Infektionen Helicobacter pylori-Antigennachweis Der Helicobacter pylori-Antigennachweis im Stuhl ist eine Alternative zum Atemtest mit annähernd gleicher Sensitivität und Spezifität. Der Test eignet sich zur Diagnose und zur Therapiekontrolle. Therapiekontrolle ist frühestens 4 Wochen nach Ende der Therapie möglich; Lagerung gekühlt. Material: Stuhl Menge: erbsgroß Methode: Ag-Nachweis Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-3 Tage) Indikation: V. a. Helicobacter pylori-Infektion; Therapiekontrolle nach H. pylori-Infektion Helicobacter-pylori-Kultur Nur durch die Kultur kann eine parallele Empfindlichkeitsprüfung von Amoxicillin, Metronidazol, Clarithromycin, Doxycyclin, Levofloxacin, Rifampicin u.a. Antibiotika durchgeführt werden. Molekularbiologisch kann mittels PCR direkt aus der Biopsie sowohl der Erregernachweis, als auch der Nachweis von Clarithromycin- bzw. Fluorchinolonresistenzmutationen durchgeführt werden (siehe Helicobacter pylori-PCR) Versand ausschließlich in speziellem Transportmedium "Port-a-Germ Pylori, Fa. bioMérieux" (bei Bedarf erhältlich unter 0711/6357-154/-152) Probe muss entsprechend den präanalytischen Vorgaben entnommen werden (bitte VOR Entnahme im Labor anfordern) und innerhalb von 24h im Labor eingehen (sehr empfindlicher Erreger). Material: Biopsie Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 10 Tage) Indikation: Therapieresistente Helicobacter pylori-Infektion; Empfindlichkeitsprüfung Helicobacter pylori DNA (einschl. Resistenz) Wegen zunehmender Resistenz von H. pylori gegenüber den Standardantibiotika Clarithromycin und Levofloxacin ist es empfehlenswert, die Empfindlichkeit des Erregers gegenüber diesen Substanzen bereits vor der Primärbehandlung zu prüfen. Da die kulturelle Empfindlichkeitsprüfung aufgrund des dafür benötigten Zeitraums (5-10 Tage) und der Transportempfindlichkeit von H. pylori für eine schnelle Diagnostik weniger geeignet ist, bietet sich hier der molekularbiol. Nachweis von Erreger und Clarithromycinbzw. Fluorchinolonresistenz bzw. -empfindlichkeit direkt aus der Biopsie an. Magenbiopsie (möglichst mehrere aus Antrum und Corpus) in steriles Gefäß (Schraubverschluß) mit ca. 1 ml NaCl geben. Da molekularbiol. Nachweis Postversand möglich. Material: Biopsie, Kulturabstrich Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden) Indikation: Helicobacter pylori-Schnelldiagnostik Referenzbereich: Helicobacter pylori-DNS negativ; Resistenzmutation nicht nachgewiesen 246 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Mykobakterien-Diagnostik (Tbc) Mikrobiologische Diagnostik der Tuberkulose Die Verdachtsdiagnose einer durch Mykobakterien verursachten Infektionskrankheit kann nur durch den Nachweis der Erreger mittels mikroskopischen, kulturellen und molekularbiologischen Verfahren bestätigt werden. Wegen der von Probe zu Probe variablen und oft nur sehr geringen Bakteriendichte sind mindestens drei, möglichst an verschiedenen Tagen gewonnene Proben zu untersuchen. Die Transportdauer der Proben nach Entnahme beim Patienten sollte 24h nicht überschreiten. Können Proben nicht sofort verarbeitet oder weitergeleitet werden, sind sie bei 4◦ C aufzubewahren. Mykobakterien-Mikroskopie Eine mikroskopische Untersuchung erfolgt aus allen klinischen Proben mit Ausnahme von Stuhl (geringe Sensitivität mit hoher Rate an falsch positiven Befunden). Die Empfindlichkeit der Mikroskopie ist geringer als die der Kultur, sie ist jedoch das schnellste und billigste Nachweisverfahren. Material: Bronchiallavage, Magensaft, Sputum, Trachealsekret, Urin Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V. a. pulmonale oder extrapulmonale Tuberkulose Mykobakterien-Kultur Jede Untersuchung zum Nachweis von Mykobakterien muss eine Kultur beinhalten (Goldstandard)! Durch die Kultur werden sowohl Tuberkulosebakterien als auch atypische Mykobakterien (MOTT) erfasst. Kulturdauer: im negativen Fall 8 Wochen, bei Erregerwachstum i.d.R. deutlich schneller. Bitte unbedingt folgende präanalytische Vorgaben beachten! Sputum: 2 - 10ml (3x); Gewinnung vor dem Frühstück Magennüchternsekret: 20 - 30ml,Patient nüchtern, spezielle Transportröhrchen verwenden (werden vom Labor gestellt). Morgenurin: 30 - 50ml (3x) Bronchialsekret: 2 - 5ml BAL, Pleurapunktat: 10 - 30ml Liquor: 5ml Gewebe: in 1ml steriler 0,9% NaCl-Lösung. Kein Formalin! Weitere Materialien auf Anfrage Hinweis: Ausführliches Infoblatt über Untersuchungsmaterialien, Gewinnung und Besonderheiten telefonisch unter 0711/6357-154 Material: Bronchiallavage, Magensaft, Sputum, Trachealsekret, Urin Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: bis 8 Wochen) Indikation: V. a. Tuberkulose; V. a. Infektion durch atypische Mykobakterien (MOTT) Mykobakterien Tuberkulose-Komplex DNA Besonderheiten einzelner Materialien für eine Mykobakterien-PCR: siehe Angaben zur Mykobakterien-Kultur. Material: Respirationstraktsekret, Liquor, Magensaft, Punktat, Biopsie, Urin Methode: SDA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: Verdacht auf Tbc, Fieber, Lymphadenitis Referenzbereich: negativ Atypische Mykobakterien DNA (F) Besonderheiten einzelner Materialien für eine Mykobakterien-PCR: siehe Angaben zur Mykobakterien-Kultur. Material: Respirationstraktsekret, Liquor, Magensaft, Punktat, Biopsie, Urin Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: V. a. Infektion durch atypische Mykobakterien, unklares Fieber bei Immunsuppression, Lymphadenitis Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 247 Mikrobiologie Interferon-gamma-release Assays (IGRA) In-vitro-Teste zum Nachweis oder Ausschluss einer Infektion mit M. tuberculosis. Die beiden Teste T-SPOT.TB (Oxford Immunotec) und QuantiFERON-TB Gold In-Tube (Cellestis) sind für die TB-Diagnostik in Europa (CE-Zertifizierung) und den USA (FDA-approved) zugelassen. Beide Teste beruhen auf der Freisetzung des Zytokins Interferon-gamma durch T-Lymphozyten, die Antigene von M. tuberculosis erkennen. Die verwendeten Antigene ESAT-6 und CFP-10 (beim QuantiFERON-TB Gold In-Tube zusätzlich TB7.7) der IGRA-Teste sind spezifisch für M. tuberculosis (Ausnahmen nur M. kansasii, M. szulgai, M. marinum, M. gastrii, M. flavescens). Eine frühere BCG-Impfung sowie Exposition gegenüber den meisten Umweltmykobakterien werden von den IGRA-Testen nicht erkannt, daraus resultiert eine deutlich höhere Spezifität im Vergleich zum Tuberkulin-Hauttest. Ein positives Ergebnis der IGRA-Teste zeigt eine Infektion mit M. tuberculosis an. Die Unterscheidung einer aktiven von einer latenten Tuberkulose ist mit den IGRA-Testen aus dem peripheren Blut nicht möglich. Die IGRA-Teste sollten immer gemeinsam mit allen anderen diagnostischen TB-Verfahren bewertet werden. T-SPOT.TB Die Sensitivität zum Nachweis einer Infektion mit M. tuberculosis beträgt bei Patienten mit mikrobiologisch gesicherter Tuberkulose >90%, die Spezifität ca. >97%. Der Test ist auch bei Kindern sowie bei Patienten mit Immunschwäche (z.B. HIV, unter immunsuppressiver Therapie) einsetzbar. Der T-SPOT.TB kann auch aus Pleurapunktat, bronchoalveolärer Lavage und Liquor durchgeführt werden, hierfür wird eine vorherige telefonische Anmeldung erbeten. Abnahme: Mo bis Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten, damit die Probe spätestens einen Tag nach Abnahme im Labor eintrifft. Der Test ist nur aus Heparinblut möglich! Bei Kleinkinder benötigen wir 2-3 ml, bei Kindern 5 ml und bei Erwachsenen 9 ml Heparinblut. Bitte nur kommerzielle Heparinröhrchen verwenden, diese werden bei Bedarf von unserem Labor zur Verfügung gestellt. Material: Heparinblut Menge: 9 ml Methode: Elispot Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage) Indikation: Abklärung einer Infektion mit M. tuberculosis. Ersetzt/bestätigt den Tuberkulin-Hauttest. QuantiFERON-TB Gold In-Tube (F) Die Sensitivität zum Nachweis einer Infektion mit M. tuberculosis beträgt ca. 63-78%, die Spezifität beträgt ca. 96% (Review von Pai et al, Annals of Internal Medicine 2008). Für den QuantiFERON-TB Gold In-Tube werden Spezialröhrchen des Herstellers benötigt. Nach Blutabnahme muss das Material innerhalb von 16 Stunden in unserem Labor eintreffen. Material: Blut in Spezialröhrchen Menge: 3 ml Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche) Indikation: Abklärung einer Infektion mit M. tuberculosis. Ersetzt/bestätigt den Tuberkulin-Hauttest. 248 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Mykologie Mikrobiologische Diagnostik von Pilzinfektionen der Haut / Schleimhäute Dermatophytendiagnostik Die Untersuchung beinhaltet die Pilzkultur und, wenn ausreichend Material vorhanden ist, ein KOH-Präparat V. a. Dermatomykose: möglichst viele Hautschuppen vom Rand der Läsion entnehmen (scharfer Löffel); V. a. Onychomykose: möglichst viele Nagelteile/-späne vom Übergang zwischen befallenem und gesundem Nagel entnehmen (Skalpell, Schere, Kürette); V.a. Tinea capitis: mykoseverdächtige Haarstümpfe mit Epilierpinzette herausziehen; Partikel in fest verschlossenem Kunststoffgefäß (z.B. Sputumbecherchen) verschicken Material: Hautteile Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14-21 Tage) Indikation: V. a. Tinea unguis (Onychomykose)/ Tinea corporis /Tinea capitis Soordiagnostik Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel) Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur/Mikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage) Indikation: V.a. Soor (Genitalbereich, Mundhöhle, nässende Hautstellen) Mikrobiologische Diagnostik der systemischen Aspergillose Bei der systemischen Aspergillose handelt es sich um eine exogene Infektion. Aufgrund der unzureichenden Sensitivität der einzelnen Nachweisverfahren sollte stets mehrgleisig verfahren werden: kulturelle und mikroskopische (!) Untersuchung von Respirationstraktsekreten; Antigen- und Antikörpernachweis im Serum Bei V. a. Aspergillose unbedingt entsprechenden Hinweis auf dem Probenbegleitschein, da spezielle Kulturbedingungen und Mikroskopietechniken eingesetzt werden müssen. Mikrobiologische Diagnostik der systemischen Candidose Bei der systemischen Candidose handelt es sich um eine endogene Infektion. Da Candida spp. saprophytäre Haut- und Schleimhautkommensalen sind, ist der kulturelle Nachweis in einem oder mehreren schleimhautassoziierten Material (z.B. Respirationstraktsekrete) niemals beweisend für eine system. Candidose. Zur Diagnostik sind deshalb mehrere Bausteine erforderlich, die in der zusammenfassenden Beurteilung eine systemische Candidose mehr oder weniger wahrscheinlich machen (kulturelle Untersuchung von Respirationstraktsekreten, Urin, Blutkulturen; serolog. Nachweis von Candida-Antigen und Antikörper im Serum) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 249 Mikrobiologie Parasitologie Amöbiasis (Entamoeba histolytica) Geographische Verbreitung: Warme Länder. Infektion: Die Infektion erfolgt fast ausschließlich durch Ingestion von Zysten über fäkal kontaminiertes Material. Dies führt zu asymptomatischen Verläufen mit Zystenausscheidung, invasiven Verläufen in Form einer Amöbenkolitis und zu hämatogenen Streuungen am häufigsten in die Leber. Die Zeit zwischen Infektion und Auftreten von Symptomen beträgt Tage bis mehrere Jahre. Symptome: Bei intestinaler Amöbiasis meist nur leichte gastrointestinale Beschwerden wie Druckgefühl, ziehender Schmerz und Übelkeit, meist jedoch kein Fieber. Auftreten von schwerem Krankheitsgefühl mit Fieber sind Anzeichen einer Ausbreitung über den Darm hinaus (Peritonitis, Leberabszess) Diagnose: In erster Linie mikroskopischer Nachweis von Zysten, ggf. auch Trophozoiten im Stuhl, sowie Nachweis von Amöbenantigen in Stuhlproben mittels ELISA. Das empfindlichste allerdings auch aufwendigste Verfahren stellt die PCR dar. Für invasive Infektionen, vor allem bei extraintestinalem Befall ist die Serodiagnostik die Methode der Wahl. Amöbiasis IFT Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Amöbenruhr, chron. rezidiv. Enteritis, Dysenterie, Leberabszess. Einschleppinfektion aus (Sub-)Tropen Referenzbereich: <1:10 Titer Entamoeba histolytica (Stuhldiagnostik-Mikroskopie) Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollte bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Eine Differenzierung zwischen der pathogenen E. histolytica und der apathogenen E. dispar ist auf mikroskopischem Wege nicht möglich. Bei V. a. intestinale Amöbiasis wird zum Nachweis der Trophozoiten nativer Stuhl benötigt, der nicht älter als ca. 1h ist. Die Entamoeba histolytica-Zysten hingegen sind auch nach 1-2 Tagen noch nachweisbar. Material: Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich Indikation: blutig-eitrige Dysenterie Entamoeba histolytica (Stuhldiagnostik-ELISA) Höhere Sensitivität im Vergleich zur Mikroskopie. Eine Abgrenzung zur avirulenten Form Entamoeba dispar ist mit dem von uns eingesetzten ELISA nicht möglich. Bei entsprechender Indikation (z.B. Nachweis von Entamoeba histolytica/dispar -Cysten kann die Probe an ein Speziallabor weitergeleitet werden. Material: Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Babesiose Babesien gehören wie die Malariaerreger zu den Protozoen, die Übertragung erfolgt durch Zecken. Die Erkrankungen in Europa sind meist durch B. divergens, in Amerika durch B. microti bedingt. Sekundärinfektionen durch Bluttransfusionen kommen vor (teils fulminante Verläufe!). Auch nach der klinischen Ausheilung kann über Monate bis Jahre eine Parasitämie bestehen. Inkubationszeit: 1 - 4 Wochen 250 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Babesia-microti-IgG-AK IFT Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zeckenstich, Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichtsabnahme, Anämie, Splenomegalie Referenzbereich: <1:16 Titer Babesia-divergens-IgG-AK IFT Material: Serum, EDTA-Blut, Urin, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: Zeckenstich, Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichtsabnahme, Anämie, Splenomegalie Referenzbereich: <1:16 Titer Babesia-microti-DNA (F) Material: EDTA-Blut, Zecke Menge: 2-3 ml Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage) Indikation: Zeckenstich, Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichtsabnahme, Anämie, Splenomegalie Referenzbereich: negativ Echinokokkose (Hunde -/ Fuchsbandwurm) Geographische Verbreitung: Der Hundebandwurm (Echinococcus granulosus ) ist weltweit verbreitet, der Fuchsbandwurm (E. multilocularis ) kommt nur auf der nördlichen Hemisphäre vor. Infektion: Die Übertragung erfolgt fäkal-oral durch Aufnahme der mit dem Kot von Hund bzw. Fuchs ausgeschiedenen Bandwurmeier (direkter Kontakt mit durch Fäkalreste verunreinigten Tieren, Verzeher von kontaminierten Waldfrüchten oder Fallobst, Aufnahme eierhaltigen Staubs). Symptome: Der Hundebandwurm ist der Erreger der zystischen Echinokokkose, die durch abgegrenztwachsendes zystenbildendes Larvengewebe charakterisiert ist. Das Larvengewebe von Echinococcus multilocularis wächst dagegen schwammartig, maligne infiltrierend. Der Parasit entwickelt sich primär ganz überwiegend in der Leber. Diagnose: Bei Menschen ist der Nachweis von Bandwurmeiern nicht indiziert, da Adultwürmer nur in den Endwirten Hund und Fuchs vorkommen. Die Labordiagnose wird daher in erster Linie serologisch durch den Nachweis spezifischer Antikörper oder direkt durch den molekularbiologischen Nachweis Echinococcus-spezifischer DNS im Zystenaspirat gestellt. Anonyme Meldepflicht! Echinokokken-AK IFT Nachweis von AK gegen E. granulosus und E. multilocularis (Eine Differenzierung ist mittels IFT nicht möglich) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Echinokokkose, Zysten in Leber und Lunge, selten Gehirn; unklare Leberherde Referenzbereich: <1:10 Titer Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 251 Mikrobiologie E.-multilocularis-AK EIA Em2plus artspezifisch Alveoläre Echinokokkose Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Fuchsbandwurm, Zysten in der Leber, selten im Gehirn; unklare Leberherde Referenzbereich: negativ E.-granulosus-DNA (F) Probengewinnung mittels Feinnadelbiopsie Material: Biopsie Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf Indikation: Zysten in Leber, Lunge selten Gehirn; unklare Leberherde Referenzbereich: negativ (qualitativ) E.-multilocularis-DNA (F) Probengewinnung mittels Feinnadelbiopsie Material: Biopsie Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf Indikation: Zysten in Leber, Lunge, selten Gehirn; unklare Leberherde Referenzbereich: negativ (qualitativ) Fasciolose Fasciola hepatica (Großer Leberegel) Geographische Verbreitung: weltweit bei Pflanzenfressern (Rinder, Schafe) In Deutschland selten, verbreiterter in Frankreich Infektion: Die Infektion erfolgt über die Aufnahme der Saugwurm-Larven (Metazerkarien) mit Salat, Kresse u.a. Symptome: Nach einer Inkubationszeit von 2-6 Wochen, Perihepatitis, Cholangitis, Cholezystitis Diagnose: Die Diagnose beruht in erster Linie auf den Nachweis von Wurmeiern im Stuhl. Die Serologie hat ihren Stellenwert vor allem während der Präpatenzzeit, in der noch keine Eier ausgeschieden werden, bei schwachen und älteren Infektionen bei denen der Einachweis schwierig bzw. nicht mehr möglich ist. Fascioliasis-AK EIA (F) Fasciola hepatica (Großer Leberegel) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: bei Bedarf Indikation: unklare chronische Cholangitis, Cholestase, Ikterus, nach Aufenthalt in (sub-)tropischen Ländern Referenzbereich: <1:200 Titer Fasciolasis-AK IFT (F) Fasciola hepatica (Großer Leberegel) Material: Serum, Vollblut Menge: 200 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: unklare chronische Cholangitis, Cholestase, Ikterus, nach Aufenthalt in (sub-)tropischen Ländern Referenzbereich: <1:10 Titer 252 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Fasciola hepatica (Stuhldiagnostik-Mikroskopie) Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Material: Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich Filarien Spezies: Filarien sind fadendünne Würmer, die im Gewebe von Tier und Mensch leben. Sie bilden Larven, die sog. Mikrofilarien, die entweder im Blut zirkulieren oder in der Haut wandern. Sie werden von blutsaugenden Arthropoden aufgenommen, in denen sie sich zu infektiösen Larven entwickeln. Bei den beim Menschen verursachten Filariosen unterscheidet man 3 Gruppen: Lymphatische Filariosen: Wuchereria bancrofti, Brugia malayi, B. timori Hautfilariosen: Onchocerca volvulus, Mansonella streptocerca Loiasis: Loa loa Geographische Verbreitung: Lymphatische Filariosen kommen mit verschiedenen Arten weltweit in tropischen Regionen vor, die Onchozerkose ist auf Afrika und Südamerika beschränkt, die Loaiasis kommt nur in Zentralafrika vor. Infektion: Die Übertragung der infektiösen Larven erfolgt durch verschiedene Arten blutsaugender Arthropoden: Stechmücken (Culicidae), Bremsen (Tabanidae), Kriebelmücken (Simuliidae), Gnitzen (Culicoides spec.) Symptome: Bei den lymphatischen Filariosen leben die Adultwürmer in den Lymphgefäßen und verursachen rezidivierenden Lymphangitide, die zu Lymphödemen und im Extremfall zu Elephantiasis führen können. Bei den Hautfilariosen wandern die Mikrofilarien in der Haut und führen hier zu Dermatitiden mit starkem Juckreiz. Später kommt es zu Hautatrophien und Depigmentierungen. Bei der Onchozerkose besteht die folgenschwerste Komplikation in einer Erblindung (Flussblindheit), verursacht durch die durch das Auge wandernden Mikrofilarien. Die Loiasis ist durch im Unterhautbindegewebe wandernde Adultwürmer charakterisiert. Am Sitz der Würmer bilden sich flüchtige juckende Schwellungen (Kalabarschwellungen), bei Wanderung durch die Augenbindehaut werden die Würmer direkt sichtbar. Diagnose: Die Verdachtsdiagnose erfolgt i.d.R. auf serologischem Wege. Die Antikörper treten u.U. jedoch u.U. stark verzögert erst nach Monaten auf (Reaktion auf Häutungsflüssigkeiten) Eine Artdiagnostik ist nicht möglich, hohe Titer weisen jedoch auf einen Gewebs-Nematoden-Befall hin. Mikrofilarien treten erst nach Monaten bis über 1 Jahr auf, bei Bewohnern nicht endemischer Gebiete (Touristen!) unterbleibt die Mikrofilarämie meist ganz. Gewebsnematoden-AK IFT Antigen: Onchocerca Filarien: Onchocerca volvulus (Flussblindheit), Wuchereria bancrofti und Brugia spec. (lymphatische Filariose), Loa loa (Loiasis, Kalabar-Schwellungen) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Eosinophilie, Lymphangitis, passagere Weicheilschwellungen, Juckreiz Referenzbereich: <1:10 Titer Mikrofilarien Mikroskopie Mikrofilarien im Blut: Wuchereria bancrofti, Brugia spec. (lymphatische Filariosen), Mansonella spec., Loa Loa (Loiasis, Kalabar-Schwellungen) Mikrofilarien in der Haut: Onchocerca volvulus, Mansonella streptocerca Achtung: Die Zirkulation von Mikrofilarien im Blut weist einen Tag-Nacht-Rhythmus auf, Blutentnahme nur nachts zwischen 21-2 Uhr, bei ozeanischen Arten zwischen 15-17 Uhr. Bei Hautmanifestationen: skin snip, sofortiger Transport ins Labor Material: EDTA-Blut, Biopsie Menge: 5-10 ml Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 253 Mikrobiologie Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: bei Bedarf Indikation: Eosinophilie, Lymphangitis, passagere Weichteilschwellungen Referenzbereich: negativ Giardiasis Synonym: Lambliasis Geographische Verbreitung: Die Lambliasis ist weltweit verbreitet und wird durch den Flagellaten Giardia lamblia hervorgerufen. Infektion: Die Infektion erfolgt durch orale Aufnahme von mit Zysten kontaminierten Nahrungsmitteln oder Trinkwasser. Auch Fliegen können als Vektoren Lamblien-Zysten übertragen. Symptome: Nach einer Inkubationszeit von 3 - 21 Tagen kann es zu Übelkeit, krampfartigen Bauchschmerzen, Flatulenz und wässrigen nicht-blutigen Durchfällen kommen. Diagnose: Die Diagnose erfolgt in erster Linie über den mikroskopischen Nachweis von Zysten bzw. Trophozoiten aus Stuhl oder Duodenalsaft. Neben dem direkten Erregernachweis wird zur Steigerung der Sensitivität noch ein Lamblien-Antigennachweis (ELISA) durchgeführt. Giardia lamblia (Stuhl-/Duodenalsaft-Mikroskopie) Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Neben der sehr schnellen mikroskopischen Untersuchung wird ein sehr sensitiver Lamblien-Antigennachweis mittels ELISA-Verfahren durchgeführt. Material: Duodenalsaft, Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Referenzbereich: nicht nachweisbar (qualitativ) Giardia lamblia (Stuhldiagnostik-ELISA) Giardia lamblia spezifisches Antigen ist auch dann in Stuhlproben mittels ELISA nachzuweisen, wenn keine Zysten oder Trophozoiten mikroskopisch zu sehen sind. Material: Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Referenzbereich: negativ Extinktion Kryptosporidose Geographische Verbreitung: Die Kryptosporidiose wird vor allem durch Cryptosporidium parvum hervorgerufen und kommt weltweit vor. Infektion: Die Übertragung der infektiösen Oozysten erfolgt oral i.d.R. über fäkal kontaminiertes Trink- oder Badewasser. Häufig betroffen sind vor allem Kleinkinder bis 7 Jahre und immunsupprimierte Personen. Kryptosporidiosen treten gehäuft in den Sommermonaten auf. Symptomatik: Nach einer Inkubationszeit von 1-30 Tagen kommt es zu nicht-blutigen Durchfällen verbunden mit Übelkeit, Erbrechen und krampfartigen Bauchschmerzen. Diagnose: die Diagnose erfolgt in erster Linie über den mikroskopischen Nachweis von Oozysten aus Stuhl. Neben dem direkten Erregernachweis wird zur Steigerung der Sensitivität zusätzlich noch eine Kryprosporidien-Antigennachweis (ELISA) durchgeführt. Kryptosporidien (Mikroskopie) Neben der sehr schnellen mikroskopischen Untersuchung wird ein sehr sensitiver Kryptosporidien-Antigennachweis mittels ELISA-Verfahren durchgeführt. Material: Stuhl Menge: kirschkerngroß Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) 254 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Kryptosporidien (Stuhldiagnostik ELISA) Material: Stuhl Menge: kirschkerngroß Methode: EIA Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Leishmaniose Geographische Verbreitung: Leishmanien (Flagellata) kommen in erster Linie in trocken-heißen Klimazonen der alten und neuen Welt vor. Infektion: Die Erreger werden durch Stich von infizierten Schmetterlingsmücken (Phlebotomen) übertragen. Als Erregerreservoir dienen v.a. verschiedene Nager, im Mittelmeerraum Hunde (Zoonose). In Abhängigkeit von Leishmanien-Art und Immunstatus des Wirtes kommt es zu unterschiedlichen Verlaufsformen: A) viszerale Leishmaniose (Kala Azar) B) Kutane Leishmaniose (Orientbeule) C) Mukokutane Leishmaniose (Espundia) Symptome: Viszerale Leishmaniose: Hepatosplenomegalie, Lymphadenopathie, Anämie, Leukopenie, Thrombozytopenie, interkurrente Infekte Kutane Leishmaniose: Trockene oder feuchte nur sehr langsam abheilende Ulzera. Mukokutane Leishmaniose: Ulcera im Haut-Schleimhautbereich mit entstellenden Gewebszerstörungen Diagnose: Bei der viszeralen Leishmaniose sind Antikörper in hohen Titern nachweisbar, bei kutaner und mukokutaner Leishmaniose sind Antikörper i.d.R. nur bei größeren Läsionen meßbar. Der mikroskopische Nachweis erfolgt bei viszeraler Leishmaniose aus dem Knochenmark, bei kutaner und mukokutaner Leishmaniose aus den Gewebsläsionen, u.U. nach Kultur in Insektenmedien. Für den PCR Nachweis eignen sich Blut sowie Bioptate aus Gewebsläsionen. Leishmanien-AK IFT Material: EDTA-Blut, EDTA-Plasma, Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3-4 Tage) Indikation: Reisende aus Tropen, Subtropen: Durchfall, Splenomegalie, Orientbeule, Hautund Schleimhautbefall, Ulzeration Referenzbereich: <1:20 Titer Leishmanien Mikroskopie Material: Knochenmarkausstrich, Ulkusabstrich Menge: 500 µl Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3-4 Tage) Indikation: Reisende aus Tropen, Subtropen: Durchfall, Splenomegalie, Orientbeule, Hautund Schleimhautbefall, Ulzeration Referenzbereich: <1:64 Leishmanien-DNA (F) Abstriche, kutan und mukokutan in 1 ml NaCl oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe, Biopsie (nativ), Urin (5-10 ml), EDTA-Blut (2-3 ml), Knochenmark (2-3 ml) Material: EDTA-Blut, Hautabstrich, Urin, Biopsie Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: bis zu 1 Woche) Indikation: Reisende aus Tropen, Subtropen, Panzytopenie, Hepatosplenomegalie, Haut/Schleimhaut-Ulzera Referenzbereich: negativ Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 255 Mikrobiologie Malaria (Plasmodium spp.) 4 humanpathogene Arten: P. falciparum (Malaria tropica), P. vivax und P. ovale (Malaria tertiana) sowie P. malariae (Malaria quartana). Vorkommen weltweit in den Tropen und Subtropen (Ausnahme: Australien), die Übertragung erfolgt durch Stechmücken (Anopheles). Bedeutendste importierte Tropenkrankheit in Europa. Inkubationszeit: in der Regel 8 - 12 Tage Anonyme Meldepflicht! Malaria-Schnelltest Suchtest bei Verdacht auf Malaria. Ein negatives Ergebnis schließt das Vorliegen einer Malaria nicht sicher aus. Bei klinischem Verdacht sollte der Test alle 24 Stunden unabhängig vom Fieberanstieg wiederholt werden. siehe "Dicker Tropfen" Material: EDTA-Blut, Kapillarblutausstrich, nativ Menge: 500 µl Methode: Ag-Nachweis Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Stunden) Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malariagebieten 3 Tage bis 1 Jahr vor Erkrankungsbeginn Referenzbereich: negativ Malaria-Diagnostik (Dicker Tropfen) Suchtest bei Verdacht auf Malaria. Ein negatives Ergebnis schließt das Vorliegen einer Malaria nicht sicher aus. Bei klinischem Verdacht sollte der Test alle 24 Stunden unabhängig vom Fieberanstieg wiederholt werden. Bei V. a. Malaria wird der dicke Tropfen zusammen mit Ausstrich und Schnelltest durchgeführt! EDTA-Blut kann bei kurzen Transportzeiten ebenso verwendet werden wie Kapillarblut. Material: EDTA-Blut, Kapillarblutausstrich, nativ Menge: 500 µl Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Stunden) Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malariagebieten 3 Tage bis 1 Jahr vor Erkrankungsbeginn Referenzbereich: negativ Malaria-Ausstrich (mikroskopisch) siehe "Dicker Tropfen" Material: EDTA-Blut, Kapillarblutausstrich, nativ Menge: 500 µl Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Stunden) Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malariagebieten 3 Tage bis 1 Jahr vor Erkrankungsbeginn; Bestimmung der Parasitämie; zur Speziesdiagnose besser geeignet als der dicke Tropfen Referenzbereich: negativ Plasmodien-AK IFT Die Antikörperbestimmung ist nicht zur Diagnostik bei V. a. akute Malaria geeignet. Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: Einsatz im Rahmen epidemiologischer Untersuchungen oder zur Aufdeckung latenter Infektionen z. B. bei Blut- und Organspendern Referenzbereich: <1:20 Titer Necator americanus (s. S. 257 ) 256 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Nematoden (Darmnematoden) Spezies: Die Nematoden Ascaris (Spulwurm) Trichuris (Peitschenwurm), Enterobius (Madenwurm) Ancylostoma und Necator (Hakenwürmer), Strongyloides (Zwergfadenwurm) sowie Trichostrongylus leben im Darmlumen. Geographische Verbreitung: Madenwürmer, Spulwürmer und Peitschenwürmer sind weltweit verbreitet, Hakenwürmer, Zwergfadenwürmer und Trichostrogylus kommen in subtropischen und tropischen Gebieten vor. Infektion: Die Infektionen kommen durch orale Aufname von embryonierten Eiern (Ascaris, Trichuris, Enterobius) oder Larven (Trichostrongylus) zustande, bei Hakenwürmern und Strogyloides dringen infektiöse Larvenstadien durch die Haut in den Menschen ein. Symptome: Klinische Erscheinungen in Form von allgemeinen gastrointestinalen Symptomen treten i.d.R. nur bei großer Parasitenzahl auf. Diagnose: Die Methode der Wahl ist die Untersuchung von Stuhlproben auf Wurmeier bzw. Larven. Serologische Verfahren sind nur bei Darmnematoden mit einer Herz-Lungen-Wanderung (AScaris, Hakenwürmern, Strongyloides) ausreichend sensitiv. Wegen starker Kreuzreaktionen ist eine Art -Diagnostik auf serologischem Weg nicht möglich, es ist nur ein Befall mit Nematoden nachweisbar. Ascaris lumbricoides (Spulwurm) Mikroskopie Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Hinweis: Ascaris lumbricoides ist der am meisten verbreitete Darm-Parasit des Menschen. Material: Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: Lungenpassage: eosinophiles Lungeninfiltrat, Fieber, Pneumonie Darmphase: Abdominalschmerzen, Erbrechen, Enteritis, Ileus, Eosinophilie Enterobius vermicularis (Oxyuren, Madenwürmer) Mikroskopie Mikroskopischer Nachweis der Eier durch Entnahme mit einem durchsichtigen Klebestreifen (z.B. Tesa) aus der Analspalte. Perianalbereich zuvor nicht reinigen. Bei Verdacht sollten mindestens drei diagnostische Versuche mit Hilfe der Klebestreifen-Methode unternommen werden. Hinweis: Enterobius ist der weltweit häufigste Wurmparasit, durchnittliche Prävalenz 10% Material: Analklebestreifen Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: analer Juckreiz (keine Herz-Lungenwanderung!) Ancylostoma duodenale u. N. americanus (Hakenwürmer) Mikroskopie Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V.a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Material: Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: Die eindringenden Larven verursachen juckende Hautveränderungen. Lungenpassage: Husten, Dyspnoe. Darmphase: Anämie, gastrointestinale Symptomatik Strongyloides stercoralis (Zwergfadenwurm) Mikroskopie Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Bei einem Hyperinfektionssyndrom sind Larven auch im Sputum, selten auch im Liquor zu finden. Aufgrund der eingeschränkten Sensitivität des direkten Erregernachweises im Stuhl sollte zusätzlich der indirekte Nachweis im Serum durchgeführt werden.(Kreuzreaktionen vor allem mit Filariosen). Material: Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 257 Mikrobiologie Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: Husten, Dyspnoe. Darmphase: gastrointestinale Symptomatik , Gastroenteritis, Bluteosinophilie. Darm-Nematoden-AK IFT Antigen: Strongyloides Ascaris, Hakenwürmer, Strongyloides Material: Serum Menge: 1 ml Methode: IFT Ansatz: bei Bedarf Indikation: unklare Abdominalschmerzen, Übelkeit, Nüchternerbrechen, Eosinophilie Referenzbereich: negativ Trichuris trichura (Peitschenwurm) Mikroskopie Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Hinweis: Trichuris trichura ist in warmen Ländern neben Ascaris der am weitesten verbreitete Darmparasit des Menschen. Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: Abdominalschmerzen, Übelkeit, Erbrechen, Durchfall (keine Herz-Lungen-Passage!) Schistosomiasis Synonym: Bilharziose Geographische Verbreitung: Der Erreger der Bilharziose (Saugwürmer, Trematoda) sind mit verschiedenen Arten in tropischen Ländern verbreitet. Die Zahl der Infizierten beträgt weltweit ca. 200 Millionen. InFektion: Die Infektion erfolgt beim Waten/Baden in Süßgewässer durch Penetration der Parasitenlarven (Zerkarien) durch die intakte Haut. Die Adultwürmer sitzen in den Venen von Darm bzw. Blase, die Eiablage beginnt nach 5-10 Wochen (Präpatenz). Symptome: Darmbilharziose: Blutbeimengungen im Stuhl, Darmulzerationen, Colonpolypen. Blasenbilharziose: Hämaturie, Proteinurie. Diagnose: Die Diagnose beruht in erster Linie auf den Nachweis der Eier im Stuhl bzw. Urin. Die Serologie hat ihren Stellenwert insbesondere während der Präpatenzzeit, in der noch keine Eier ausgeschieden werden, bei schwachen, älteren Infektionen, bei denen ein Einachweis schwierig, bzw. nicht mehr möglich ist. Blasenbilharziose (Urin-Mikroskopie) Bei V.a. Blasenbilharziose sind mehrfache Untersuchungen empfehlenswert, wobei die Eiausscheidung um die Mittagszeit und nach körperlicher Anstrengung am höchsten ist. Falls Urin nicht innerhalb von 1-2 h untersucht werden kann, 1ml 37% Formalin pro 100 ml Urin zugeben; Lagerung gekühlt. Falls Urin nicht innerhalb von 1-2 h untersucht werden kann, 1ml 37% Formalin pro 100 ml Urin zugeben; Lagerung gekühlt. Die Serologie hat wie bei der Darmbilharziose ihren Stellenwert insbesondere während der Präpatenzzeit, in der noch keine Eier ausgeschieden werden, bei schwachen und älteren Infektionen bei denen ein Einachweis schwierig bzw nicht mehr möglich ist. Material: Urin Menge: mind. 10ml Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Indikation: V. a. Blasenbilharziose 258 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Darmbilharziose (Stuhl-Mikroskopie) Da Parasiten nicht dauernd in für die Diagnose ausreichender Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Die serolog. Diagnostik kann bei Neuinfektionen den einzigen diagnostischen Hinweis während der 1-3 monatigen Präpatenzzeit geben. Material: Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Schistosomen-AK IFT (Adultwurm-Antigen) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V.a. kürzliche Schistosomen-Infektion, blutiger Stuhl, Hämaturie nach Aufenthalt in Bilharziose-Gebieten (gesamter Tropengürtel) Referenzbereich: <1:10 Titer Schistosomen-AK IFT (Zerkarien-Antigen) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V.a. kürzliche Schistosomen-Infektion, blutiger Stuhl, Hämaturie nach Aufenthalt in Bilharziose-Gebieten (gesamter Tropengürtel) Referenzbereich: <1:10 Titer Taenia sp. (Rinder/Schweinebandwurm) Geographisches Vorkommen: weltweit, abhängig von der Form der Rinder-bzw. Schweinehaltung. Infektion: Die Infektion erfolgt durch orale Aufnahme von Finnen (Zystizerken) in rohem oder ungenügend gegartem Fleisch, was zum Auftreten adulter Bandwürmer im Darm des Menschen führt. Symptome: Meist keine klinische Symptomatik oder unspezifische Beschwerden: Gewichtsverlust, Diarrhoe und/oder Obstipation, Pruritus ani, ’Hungerschmerz’. Diagnose: Mikroskopischer Nachweis der im Stuhl befindlichen Proglottiden bzw. Eier, eine Artdiagnostik ist anhand der Ei-Morphologie nicht möglich Rinder-/Schweinebandwurm (Stuhldiagnostik-Mikroskopie) Da Parasiten nicht dauerend in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Material: Stuhl Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt Methode: Lichtmikroskopie Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage) Taenien-AK Blot (Zystizerkose) (F) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V.a. Zystizerkose Referenzbereich: negativ s Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 259 Mikrobiologie Taenien-AK Blot (Zytizerkose) im Liquor (F) Material: Liquor Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: V. a. Zystizerkose des ZNS Referenzbereich: negativ s Toxokarose Toxocara canis (Hundespulwurm Geographische Verbreitung: weltweit Infektion: Die Übertragung erfolgt durch orale Aufnahme der Wurmeier, direkt vom Tier oder indirekt z.B. durch Erde (Sandkasten), betroffen sind v.a. Kinder. Beim Menschen entwickeln sich keine adulten Würmer, es entstehen lediglich Larven, die bis zu einem Jahr durch das Gewebe wandern können (Larva migrans visceralis) Symptome: Häufiger als angenommen kommt es zu länger anhaltenden Störungen des Allgemeinbefindens mit unklaren Schmerzen, Anorexie, Hepatomegalie und Fieber. Typisch ist auch eine Lungenbeteiligung mit Husten und asthmatischen Beschwerden. Bei Befall des ZNS kommt es zu einer disseminierten Enzephalitis, als Komplikation kann eine diffuse subakute Neuroretinitis hinzukommen, die typischerweise nur an einem Auge auftritt. Diagnose: Der Nachweis einer Toxokarose ist nur auf serologischem Weg möglich. Toxocara IgG-AK EIA (F) EIA mit ES-Antigen Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: EIA Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag) Indikation: V.a. Toxokarose: Eosinophilie, Abdominalschmerzen, Husten, Asthma, einseitige Augeninfektionen , Chorioretinitis Referenzbereich: negativ Toxoplasmose (s. S. 67 ) Trichinose Geographische Verbreitung: weltweit Infektion: Die Infektion erfolgt über die Aufnahme eingekapselter Larven über ungenügend erhitzes Fleisch (meistens Schweinefleisch). Seit Einführung der Fleischbeschau sind Erkrankungen durch Trichinella spiralis in Deutschland sehr selten geworden. Meldepflichtige Erkrankung! Symptome: Darmphase: Gastroenteritis (Erbrechen, Durchfall) Muskelbefall: Muskelschmerzen, Ödeme, Eosinophilie, Intoxikationsphase: Myokarditis, Enzephalitis Diagnose: Der mikroskopische Larvennachweis ist heute obsolet, die Labor -Diagnose erfolgt nur noch auf serologischem Weg. Trichinella spiralis-AK IFT Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: IFT Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Erbrechen, Diarrhoe, Muskelschmerzen, Augenödeme, Eosinophilie Referenzbereich: <1:10 Trichinella spiralis-AK Blot (F) Material: Serum, Vollblut Menge: 500 µl Methode: Immunoblot Ansatz: 1 x pro Woche Indikation: Erbrechen, blutige Diarrhoe, Muskelschmerzen, Augenödeme Referenzbereich: negativ 260 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Trichomoniasis Trichomonas vaginalis Geographische Verbreitung: weltweit Infektion: Sexuelle Übertragung, Schleimhautparasit im Urogenitalbereich Symptome: weißlich schaumiger vaginaler Fluor, Brennen beim Wasserlassen und Harndrang, beim Mann häufig asymptomatische Infektion Diagnose: Mikroskopischer Nachweis in Genitalabstrich, Kultur Trichomonas vaginalis Abstrich/Kultur Genitalabstriche werden nach Abnahme direkt in spezielles Kulturmedium überführt (im Versand anfordern: 0711/6357-104). Die Kulturen werden für 48-72 h bebrütet und anschließend mikroskopiert Material: Genitalabstrich Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage) Indikation: vaginaler Fluor, Brennen beim Wasserlassen Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 261 Mikrobiologie Hygieneuntersuchungen Beinhaltet alle wesentlichen Untersuchungen in den Bereichen Krankenhaushygiene, Wasseruntersuchung und Sterilkontrollen. Versandmaterialien (Abklatsche, Tupfer, Bioindikatoren, Probenahmegefäße) und Anforderungsscheine sowie Informationen zu Transport und Lagerung der Proben sind in der Hygiene-Abteilung (Tel. 0711 / 6357-153) zu beziehen. Mikrobiologische Untersuchung von Abklatschplatten (Rodacpl.) Die Untersuchung beinhaltet die quantitative Auswertung (KBE/Platte) und auf Anforderung eine Differenzierung in Keimgruppen (z. B. Staphylokokken, Enterobacteriaceae, Pseudomonaden) oder in Spezies (z. B. S. aureus, E. coli, P. aeruginosa). Material: Abklatschplatte Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-6 Tage) Indikation: Überprüfung von Desinfektionsmaßnahmen auf glatten Oberflächen, flächigen Materialien (z. B. Wäsche) Mikrobiologische Untersuchung von Abstrichen Die Untersuchung beinhaltet die qualitative Auswertung einschl. Anreicherung mit Differenzierung in Keimgruppen (z.B. Staphylokokken, Enterobacteriaceae, Pseudomonaden) oder in Spezies (z.B. S.aureus, E.coli, P.aeruginosa). Material: Abstrichtupfer Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-6 Tage) Indikation: Überprüfung von Desinfektionsmaßnahmen an schwer zugänglichen Stellen, von denen keine Abklatsche gemacht werden können. Mikrobiologische Untersuchung von Trinkwasser nach TVO Wasser bzw. Trinkwasser durch geschulte Probenehmer entnehmen, hierbei ist die aktuelle Probenahmeanleitung zu beachten. Pro zu untersuchender Parameter 100 ml Probe einsenden. Material: Wasser, Trinkwasser Menge: 100 ml Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-5 Tage) Indikation: Mikrobiologische Qualitätskontrolle von Trinkwasser Mikrobiologische Untersuchung von Wasserproben Die Untersuchung von Trinkwasser, Schwimm- und Badebeckenwasser erfolgt entsprechend den jeweiligen Richtlinien. Auf Anforderung werden auch Einzeluntersuchungen (z. B. Keimzahlbestimmung, Untersuchung auf P. aeruginosa u. a.) durchgeführt. Die Probenahme muss von geschulten Personen unter Beachtung der aktuell gültigen Probenahmeanleitung durchgeführt werden. Material: Wasser ohne genauere Bezeichnung Menge: 100 ml Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-5 Tage) Indikation: Mikrobiologische Qualitätskontrolle von Wasserproben. Mikrobiologische Untersuchung von Wasserproben auf Legionellen Die Untersuchung wird nach TVO 2011 und ggf. Empfehlungen des UBA durchgeführt und beurteilt; sie beinhaltet eine Anreicherung durch Membranfiltration Wasserproben zur Untersuchung auf Legionellen durch geschulte Probenehmer entnehmen, hierbei ist die aktuelle Probenahmeanleitung zu beachten. Material: Wasser ohne genauere Bezeichnung Menge: 150 ml Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 7-14 Tage) Indikation: Mögliche Kontamination eines Wasserleitungssystems mit Legionellen. 262 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie MRSA-DNA (Schnelltest) Das von uns eingesetzte molekularbiologische Verfahren bietet die Möglichkeit des simultanen Nachweises sowohl des Resistenzgens (mecA), als auch einer Speziesspezifischen chromosomalen DNA-Region. Dies ermöglicht die Abgrenzung von mecA-Gen exprimierenden "Nicht-S-aureus-Staphylokokken-Stämmen". Während der Nachweis der Oxacillinresistenz mittels konventioneller Methoden in der Regel 2-3 Tage benötigt, ermöglicht der DNA-Schnelltest dies innerhalb eines Tages. Abstriche (trocken oder in 1ml physiol. NaCl) Material: Hautabstrich, Wundabstrich, Rachenabstrich, Nasenabstrich Methode: PCR Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 6 Stunden) Referenzbereich: negativ Mikrobiologische Überprüfung von Desinfektionsgeräten Je nach Desinfektionsgerät und -verfahren werden unterschiedliche Bioindikatoren eingesetzt (Desinfizierende Reinigung bei >90◦ /Chemothermische Reinigung bei >60◦ C: Enterococcus faecium entspr. RKI-Anforderungen; Endoskopwaschautomaten: Enterococcus faecium; Dampfdesinfektion (z.B. Matratzen/Bettgestelle): Bacillus subtilis bei 105◦ C EWZ >5min bzw. E. faecium bei 75◦ C EWZ >20min (nach DIN 58949), Bettenwaschanlagen: E. faecium (nach DIN 58955 bzw. AKBWA). Hinweis: Transportkontrolle (TK) nicht mitsterilisieren; ansonsten ist die Untersuchung nicht beurteilbar und muss wiederholt werden. Anzahl in Abhängigkeit von der Gerätegröße Material: Bioindikator Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage) Indikation: Periodische Prüfung von Desinfektionsgeräten/-anlagen nach RKI-Empfehlung; außerordentliche Prüfung nach Inbetriebnahme des Geräts oder nach Reparaturen bzw. Umbauten. Mikrobiologische Überprüfung von Sterilisatoren Je nach Sterilisationsverfahren werden unterschiedliche Bioindikatoren eingesetzt (Bioindikator für Dampfsterilisation nach DIN 58946 Teil 3; Bioindikator für Heißluftsterilisation nach DIN 58947 Teil 3. Hinweis: Transportkontrolle (TK) nicht mitsterilisieren; ansonsten ist die Untersuchung nicht beurteilbar und muss wiederholt werden. Indikatoren gekühlt lagern. Die Mindestanzahl der Bioindikatoren pro Prüfung richtet sich nach dem Fassungsvermögen der Geräte. Material: Bioindikator Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage) Indikation: Periodische Prüfung von Sterilisationsgeräten/-anlagen nach RKI-Empfehlung; außerordentliche Prüfung nach Inbetriebnahme des Geräts oder nach Reparaturen bzw. Umbauten. Mikrobiologische Überprüfung von Maschinen für Krankenhauswäsche Überprüfung von Desinfektionswaschmaschinen für Wäsche (RAL-RG 992/2; RKI-Richtlinien); Prüfset: Testkeim E. faecium, 10 Abklatschplatten für Trockenwäsche. Anzahl in Abhängigkeit von der Gerätegröße Material: Bioindikator, Abklatschplatte Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage) Indikation: Funktionskontrolle von Waschmaschinen für Krankenhauswäsche Mikrobiologische Überprüfung von Geschirrspülmaschinen Überprüfung von Mehrtanktransportgeschirrspülmaschinen nach DIN 10510; Prüfset enthält 8 Bioindikatoren + 2 Transportkontrollen, 10 Abklatschplatten für Spülgut, 1 Transportgefäß für Wasser der letzten Reinigungsflotte. Material: Bioindikatoren/Abklatschplatten/Wasser Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 263 Mikrobiologie Indikation: Überprüfung von Geschirrspülmaschinen hinsichtlich ihrer antibakteriellen Leistung Mikrobiologische Untersuchung von Endoskopen Die Untersuchung sollte in vierteljährlichen Abständen durchgeführt werden. Im Vordergrund steht die Untersuchung von Flüssigkeiten, mit denen die Endoskopkanäle nach Endoskopaufbereitung gespült werden. Von Stellen, die der Reinigung und Desinfektion schwer zugänglich sind, werden darüber hinaus Abstriche entnommen. Der Schwämmchentest (Durchzug eines Schaumstoffschwämmchens durch den Instrumentierkanal) dient in der Regel lediglich der visuellen Kontrolle auf makroskopisch sichtbare Verunreinigungen. Die Prüfung sollte entsprechend den RKI-Empfehlungen (2002) durchgeführt werden (im Hygienelabor erhältlich). Material: Schwämmchen/Spülflüssigkeit/Tupfer Menge: 20 ml Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5 Tage) Indikation: Kontrolle der Aufbereitung von Endoskopen Mikrobiologische Untersuchung von Desinfektionsmittellösungen Desinfektionsmittel werden i. d. R. in Anwendungskonzentration untersucht. Die Untersuchung beinhaltet eine Filtration und die Keimzahlbestimmung in 1 ml bei 20◦ C und 36◦ C. Material: Desinfektionsmittellösung Menge: 100 ml Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-7 Tage) Indikation: V. a. bzw. z. A. einer bakteriellen Kontamination von Desinfektionsmittellösungen Mikrobiologische Untersuchung von Blut/Blutprodukten Untersuchung von Eigenblut/Eigenplasma/Leukapherisaten auf mikrobielle Kontamination entsprechend den Empfehlungen des Arbeitskreises Blut am RKI. Material: Blut/Blutprodukte Menge: 50 ml Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage) Indikation: Verdacht auf mikrobiell bedingten Transfusionszwischenfall Mikrobiologische Untersuchung von Hämodialyseflüssigkeiten Bitte folgende Terminologie verwenden: Permeat (entmin. Wasser zum Verdünnen von Hämodialysekonzentraten), Dialysierflüssigkeit (Permeat+Hämodialysekonzentrat), Dialysat (Dialyseprodukt), Konzentrat (Hämodialysekonzentrat). Die Untersuchung wird entsprechend den Empfehlungen des Arbeitskreises für angewandte Hygiene in der Dialyse (2005) durchgeführt. Material: Dialyseflüssigkeiten Menge: 100 ml Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage) Indikation: Mikrobiologische Kontrolle von Dialysegeräten bzw. Dialyseflüssigkeiten Mikrobiologische Untersuchung von Sterillösungen (F) Untersuchung von steril hergestellten Lösungen auf Keimfreiheit mittels Direktbeschickung und Membranfiltration nach Ph.Eur.4.Ausgabe Grundwerk 2002. Material: Sterillösungen Menge: 100 ml Methode: Kultur Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage) Indikation: Mikrobiologische Qualitätskontrolle von steril hergestellten Flüssigkeiten. 264 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologie Endotoxin-/Pyrogennachweis (F) Nachweis von Endotoxinen/Pyrogenen durch den Limulus-Amöbozyten-Lysat-Test Pyrogenfreies Abnahmesystem verwenden; Proben nach Entnahme sofort tieffrieren. Material: Dialyseflüssigkeiten Menge: 100 ml Methode: Limulus-Assay Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3-6 Tage) Indikation: Prüfung von Flüssigkeiten zur Hämodialyse bei Neuinbetriebnahme von Dialysegeräten oder zur Abklärung pyrogener Reaktionen bei unauffälliger Keimzahl Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 265 Mikrobiologie 266 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung Biozidprüfungen Die Biozidprüfungen sollen Auskunft über die mikrobiziden Eigenschaften des zu prüfenden Produkts bei unterschiedlichen Konzentrationen, Einwirkzeiten sowie - falls erforderlich Prüftemperaturen geben. Zusätzlich wird die Kinetik der Desinfektionsmittelwirkung unter unterschiedlichen Belastungen (z. B. Eiweiß bzw. Blut) erfasst, die für das Anwendungsverfahren sinnvoll sind. Die Wirksamkeit der Prüfprodukte wird in einem zwei-stufigen Verfahren getestet: Zunächst erfolgt ein Suspensionsversuch (Phase-2/Stufe-1-Test). Der Suspensionsversuch gibt Aufschluss darüber, bei welchen Konzentrationen, Kontaktzeiten und Prüftemperaturen das Prüfprodukt unter praxisnahen Bedingungen untersucht werden soll. Diese abschließende Untersuchung (Phase-2/Stufe-2-Test) soll zeigen, ob das Desinfektionsmittel unter praxisnahen Bedingungen wirksam ist. Je nach Wirksamkeitsspektrum des Desinfektionsmittels können die Testorganismen gewählt werden wie z. B. bakterizid, begrenzt viruzid (behüllte Viren), viruzid (unbehüllte Viren) oder sporozid. Bakterizidie und Levurozidie Suspensionsversuch (Phase 2 / Stufe 1) VAH-Standardmethode 8 Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel mittels qualitativem Suspensionsversuch Prüfkeime obligat: Escherichia coli (NCTC 10538, DSM 11250), Proteus mirabilis (ATCC 14153, DSM 788), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939) Prüfkeime optional: Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus faecium (ATCC 6057, DSM 2146), Enterococcus hirae (ATCC 10541, DSM 3320), Candida albicans (ATCC 10231, DSM 1386) Material: Biozide VAH-Standardmethode 9 / prEN 13727: 2009-11 Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel mittels quantitativem Suspensionsversuch (Phase 2 Stufe 1) Prüfkeim: Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus faecium (ATCC 6057, DSM 2146), Enterococcus hirae (ATCC 10541, DSM 3320), Escherichia coli (NCTC 10538, DSM 11250), Proteus mirabilis (ATCC 14153, DSM 788), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939), Candida albicans (ATCC 10231, DSM 1386) Material: Biozide Praxisnaher Versuch (Phase 2 / Stufe 2) Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung nach VAH-Standardmethode 14 Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel auf nicht porösen Oberflächen - praxisnaher Versuch zur Flächendesinfektion (Phase 2/ Stufe 2) Prüfkeim: Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus hirae (ATCC 10541, DSM 3320), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939), Candida albicans (ATCC 10231, DSM 1386) Material: Biozide Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung nach VAH-Standardmethode 15 / EN 14561: 2006-08 Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel mittels quantitativem Keimträgerversuch (Phase 2/ Stufe 2) Prüfkeim: Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus hirae (ATCC 10541, DSM 3320), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939), Candida albicans (ATCC 10231, DSM 1386) Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 267 Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung Material: Biozide Hygienische Händedesinfektion nach VAH-Standardmethode 11 / prEN 1500: 2011-04 Prüfung der bakteriziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel - praxisnaher Versuch mit Probanden zur hygienischen Händedesinfektion (Phase 2/ Stufe 2) Prüfkeim: Escherichia coli (NCTC 10538, DSM 11250) Oberflächenversuch mit mechanischer Behandlung nach CEN/TC 216/WG1 (Working draft WI00216049_April 2011) Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Praxisversuch zur Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung auf Oberflächen mit vorgetränkten Mops im humanmedizinischen Bereich - Prüfverfahren und Anforderungen (Phase 2/ Stufe 2) Prüfkeim: Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus hirae (ATCC 10541, DSM 3320), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939), Candida albicans (ATCC 10231, DSM 1386) Material: Biozide, Tücher In-house Methode Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung von Wirksubstanzen im quantitativen Keimträgerversuch mit unterschiedlichen Prüfmaterialien bzw. Oberflächen Prüfkeim: keine Vorgaben Material: Biozide Viruzidie Suspensionsversuch (Phase 2 / Stufe 1) Leitlinie der DVV/RKI: Bundesgesundheitsbl. (2008, 51, 937-945) Leitlinie der Deutschen Vereinigung zur Bekämpfung:der Viruskrankheiten (DVV) e.V. und des Robert Koch-Instituts (RKI) zur Prüfung von chemischen Desinfektionsmitteln auf Wirksamkeit gegen Viren in der Humanmedizin Fassung vom 1. August 2008 Testviren: Poliovirus Typ 1 Stamm Lsc-2ab, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid 75, Simianvirus (SV) 40 Stamm 777, Vacciniavirus Stamm Elstree (bzw. MVA), BVDV Stamm NADL Material: Biozide prEN 14476: 2011-12 Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Suspensionsversuch Viruzidie für in der Humanmedizin verwendete chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Prüfverfahren und Anforderungen (Phase 2, Stufe 1) Testviren: Poliovirus Typ 1 Stamm Lsc-2ab, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid 75 Material: Biozide Praxisnaher Versuch (Phase 2 / Stufe 2) Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung nach DVV/RKI Leitlinie der Deutschen Vereinigung zur Bekämpfung der Viruskrankheiten (DVV) e.V. zur quantitativen Prüfung der viruziden Wirksamkeit chemischer Desinfektionsmittel auf nicht-porösen Oberflächen (Anwendung im Bereich Humanmedizin) Testviren: Murines Parvovirus (MVM) Stamm Crawford, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid 75, murines Norovirus Berlin 06/06/DE Isolat S99, Vacciniavirus Stamm Elstree (bzw. MVA) Material: Biozide Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung nach CEN/TC 216/WG1 (Working draft WI00216037_June2008) Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Oberflächen-Versuch zur Bestimmung der viruziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel in Humanmedizin Prüfverfahren ohne mechanische Behandlung und Anforderungen (Phase 2/Stufe 2) Testviren: Murines Parvovirus (MVM) Stamm Crawford, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid 75, murines Norovirus Berlin 06/06/DE Isolat S99 Material: Biozide 268 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung nach OECD Prüfung der viruziden Wirksamkeit chemischer Desinfektionsverfahren mit praxisnahen Prüfmodellen; Flächentest ohne Mechanik (Validation of Efficacy Methods for Antimicrobials used on Hard Surfaces. Draft Report 2009-11-20) Testvirus: Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid 75 Material: Biozide DVG-Richtlinie 2007 Prüfung der viruziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel für den Bereich Tierhaltung und Lebensmittel, DVG-Richtlinie für die Prüfung von Desinfektionsverfahren und chemischen Desinfektionsmitteln (2007) Testviren: bovines Enterovirus (ECBO) Typ 1, Reo-Virus Typ I, Newcastle disease-Virus, Vacciniavirus Stamm Elstree Material: Biozide Oberflächenversuch mit mechanischer Behandlung nach CEN/TC 216/WG1 Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Praxisversuch zur Prüfung der viruziden Wirkung auf Oberflächen mit vorgetränkten Mops im humanmedizinischen Bereich - Prüfverfahren und Anforderungen (Phase 2/ Stufe 2) Testviren: Murines Parvovirus (MVM) Stamm Crawford, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid 75, murines Norovirus Berlin 06/06/DE Isolat S99, Vacciniavirus Stamm Elstree (bzw. MVA) Material: Biozide, Tücher In-house Methoden Screening-Untersuchungen mit unterschiedlichen Prüfviren Testvirus: keine Angaben Material: Biozide Untersuchungen der antiviralen Aktivität über CPE-Inhibitions-Assay mit unterschiedlichen Prüfviren Testvirus: keine Angaben Material: Antivirale Produkte Prüfung der viruziden Wirkung von Wirksubstanzen im quantitativen Keimträgerversuch mit unterschiedlichen Prüfmaterialien bzw. Oberflächen Testvirus: keine Angaben Material: Biozide Prüfung der viruziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel - praxisnaher Versuch mit Probanden zur hygienischen Händedesinfektion (Phase 2/ Stufe 2) Testvirus: murines Norovirus Berlin 06/06/DE Isolat S99 Material: Biozide Sporozidie Suspensionsversuch gemäß EN 13704:2002-05 Chemische Desinfektionsmittel - Quantitativer Suspensionversuch zur Bestimmung der sporiziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel in den Bereichen Lebensmittel, Industrie, Haushalt und öffentliche Einrichtungen - Prüfverfahren und Anforderungen (Phase 2 / Stufe 1) Prüfkeim: Clostridium difficile Ribotyp 027, NCTC 13366 Material: Biozide Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR 269 Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung Oberflächenversuch mit mechanischer Behandlung nach CEN/TC 216/WG1 Working draft Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Praxisversuch zur Prüfung der sporoziden Wirkung auf Oberflächen mit vorgetränkten Mops im humanmedizinischen Bereich - Prüfverfahren und Anforderungen (Phase 2/ Stufe 2) Prüfkeim: Clostridium difficile Ribotyp 027, NCTC 13366 Material: Biozide, Tücher In-house Methode Prüfung der sporoziden Wirkung von Wirksubstanzen im quantitativen Keimträgerversuch mit unterschiedlichen Prüfmaterialien bzw. Oberflächen Prüfkeim: Clostridium difficile Ribotyp 027, NCTC 13366 Material: Biozide 270 Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
