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Herrmann, Bernhard G. | Regulatorische Netzwerke bei der Bildung des Rumpfes in Säugetieren
Tätigkeitsbericht 2007
Entwicklungs- und Evolutionsbiologie/Genetik
Regulatorische Netzwerke bei der Bildung des Rumpfes
in Säugetieren
Herrmann, Bernhard G.;
Max-Planck-Institut für molekulare Genetik, Berlin
Abteilung – Entwicklungsgenetik
Korrespondierender Autor
Herrmann, Bernhard G.
E-Mail: [email protected]
Zusammenfassung
Die Mesodermbildung ist ein Prozess der Embryonalentwicklung, der eine entscheidende Rolle bei der
Bildung von Rumpf und Organen in Säugetieren spielt. Er wird von mehreren interagierenden Signalkaskaden kontrolliert, die auch bei der Tumorprogression eine Rolle spielen. Mithilfe neuer Verfahren
sollen die aus Tausenden von Genprodukten bestehenden Regelnetzwerke aufdeckt werden, die diesen
Prozess im Embryo und in Tumoren kontrollieren.
Abstract
Mesoderm formation is an important process of embryonic development. It plays an essential role in
trunk formation and organ development in mammals. It is controlled by several interacting signalling
pathways, which also play an important role in tumour progression. Novel methods are utilized for
deciphering the complex regulatory networks comprising thousands of gene products, which control
mesoderm formation in the embryo and in tumours.
Einführung
Die Entwicklung eines Embryos beginnt mit der Verschmelzung von Eizelle und Spermium. Der
einzellige Embryo fängt an, sich zu teilen und bildet einen Zellhaufen. Damit jedoch ein überlebensfähiger Organismus heranwachsen kann, müssen sich die Zellen in unterschiedlicher Weise weiterentwickeln und innerhalb des entstehenden Körpers organisieren. Dies basiert auf einer Vielzahl
komplexer Prozesse, die einem räumlich und zeitlich streng kontrollierten Ablauf folgen.
Ein wichtiger Grundprozess der Gestaltbildung und Organogenese ist die epithelial-mesenchymale
Transition (EMT), die auch bei der Bildung des mittleren Keimblatts (Mesoderm) im Säugetierkeim
zum Tragen kommt. Dieser Begriff bezeichnet die Umgestaltung einer polaren, sich im festen Zellverband befindlichen Zelle in eine migrierende, nur lockere Zellkontakte ausbildende Zelle (Abb. 1).
EMT kommt nicht nur bei der Mesodermbildung, der Organogenese und vielen Prozessen der
Embryonalentwicklung vor, bei denen Zellwanderung eine Rolle spielt, sondern auch bei der Tumorprogression, die zur Metastasenbildung führen kann.
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Abb. 1: Mesodermbildung am Beispiel des Hühnchenembryos. Links: Aufnahme eines Hühnchenembryos; rechts: schematische Darstellung des frühen Embryos. Im hinteren (kaudalen) Bereich des
Embryos lösen sich Zellen aus dem Ektoderm (oben, grau) ab (epithelial-mesenchymale Transition)
und wandern zwischen Ektoderm und Endoderm (unten) ein. Sie bilden das Mesoderm (gelb), das sich
in paraxiales (orange), intermediäres und laterales Mesoderm aufspaltet, welche alle zur Bildung verschiedener Gewebe und Organe beitragen. Das präsomitisch-paraxiale Mesoderm wird einer Reifung
unterzogen, bevor es in Somitenpaare segmentiert wird, aus denen vor allem die Wirbelsäule und die
Skelettmuskulatur hervorgehen. Aus dem intermediären Mesoderm entstehen die Niere und Gonaden,
aus dem lateralen Mesoderm zum Beispiel das Bauchfell. Da der Embryo vom Kopf zum Schwanz hin
verlängert wird, sind vordere Bereiche weiter entwickelt und differenziert als hintere.
Urheber: Max-Planck-Institut für molekulare Genetik/Wittler
Das Interesse der Abteilung Entwicklungsgenetik am Max-Planck-Institut für molekulare Genetik gilt
der Regulation der frühen Ereignisse bei der Rumpfbildung und deren Ähnlichkeit bei der Tumorprogression. Der Schwerpunkt der Arbeit liegt derzeit auf der Entzifferung regulatorischer Netzwerke, die
die Bildung und Segmentierung des paraxialen Mesoderms im Embryo kontrollieren.
Regulatorproteine
Im Laufe der vergangenen eineinhalb Jahrzehnte wurden eine Reihe von Regulatorproteinen entdeckt,
die eine essenzielle Rolle bei der Bildung des Rumpfes spielen. In mehreren Fällen wurde gezeigt,
dass der Verlust des jeweiligen Regulators entweder zum Abbruch der Rumpfbildung führt, was den
Tod des Embryos zur Folge hat, oder zu Fehlbildungen zum Beispiel der Wirbelsäule, der Muskulatur
oder anderen pathologischen Veränderungen. Mithilfe solcher Zusammenhänge zwischen Genprodukt
und Genwirkung auf Teilprozesse der Rumpfbildung konnten einige Gene wichtigen Abläufen der
Rumpfbildung zugeordnet werden (Abb. 2).
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Abb. 2: 9,5 Tage alter Mausembryo nach Sichtbarmachung der Boten-RNA eines Gens, das vor allem
in der Schwanzknospe und in Zellen aktiv ist, aus denen die Wirbelsäule und die Skelettmuskulatur
entstehen (rot eingefärbt). Die Schwanzknospe am kaudalen (hinteren) Ende des Embryo stellt eine
Wachstumszone dar, durch die sequenziell der Rumpf und der Schwanz gebildet werden. Das Bild
wurde durch spezielle 3-D- Bildverfahren generiert (optical projection tomography [OPT] mit
Volume Rendering).
Urheber: Max-Planck-Institut für molekulare Genetik/Spörle
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Die Darstellung solcher Zusammenhänge ist aber nur beschreibender Natur, das heißt, ein Genverlust
wird mit einer morphologischen Veränderung in Zusammenhang gebracht, ohne dass man versteht,
was genau im Inneren der Zelle und zwischen Zellen im Verband auf molekularer Ebene geschieht.
Zelluläre Mechanismen innerhalb einer einzigen Zelle und zwischen vielen benachbarten Zellen
beruhen auf komplexen Netzwerken tausender interagierender Proteine, deren Herstellung und Funktion streng kontrolliert wird. Fehler in solchen komplexen Regelnetzwerken können zwar teilweise
aufgefangen werden, aber auch zu Fehlfunktionen führen. Während der Embryonalentwicklung kann
dies, wie schon erwähnt, beispielsweise eine Fehlbildung, im adulten Organismus eine bestimmte
Krankheit oder Krebs zur Folge haben.
Wie kann man zu einem tieferen Verständnis der zellulären Prozesse bei der Embryonalentwicklung
oder auch im adulten Organismus gelangen? Dazu ist es notwendig, von der Funktionsanalyse einzelner Gene zu einer höheren, viel komplexeren Ebene der Genomanalyse vorzudringen, bei der das
Verhalten des gesamten Genoms und der sich davon ableitenden Genprodukte gleichzeitig untersucht
werden müssen. Diese neue Analyseform komplexer Vorgänge im lebenden Organismus wird als
systembiologischer Ansatz bezeichnet. Um auf diese Ebene vorzudringen, bedarf es neuartiger Analyseverfahren, die teilweise noch in den Kinderschuhen stecken. Im Folgenden werden einige der Verfahren vorgestellt, die in der Abteilung Entwicklungsgenetik ausgearbeitet und angewendet werden.
Methoden zur Erforschung regulatorischer Netzwerke bei der Embryonalentwicklung
i.) Die Sichtbarmachung der Genaktivität im Embryo
Gene, die maßgeblich an regulatorischen Netzwerken beteiligt sind und wichtige Vorgänge bei der
Embryonalentwicklung steuern, können durch verschiedene Ansätze identifiziert werden. Als Hauptansatz der Abteilung Entwicklungsgenetik wurde die Genexpressionsanalyse gewählt. Regulatorische
Gene sind sehr oft gewebespezifisch exprimiert, werden also nur in bestimmten Zellgruppen oder
Organanlagen aktiv. Diese restriktive Expression ergibt ein spezifisches Muster, das im Experiment
durch so genannte Hybridisierung sichtbar gemacht werden kann. Dazu wird die Boten-RNA, die von
einem aktivierten Gen abgeschrieben wird, im Embryo markiert (Abb. 3). Durch Expressionsanalyse
tausender, idealerweise aller Gene im Genom lässt sich die Anatomie des Embryos auf molekularer
Ebene widerspiegeln. So kann die Beteiligung der meisten Gene, die maßgeblich an der Kontrolle der
Embryonalentwicklung beteiligt sind, aufgedeckt werden. Aus den Daten können Gengruppen erstellt
werden, die an Teilprozessen wie der Organbildung oder der Bildung der Wirbelsäule beteiligt sind
und in regulatorische Netzwerke eingeflochten werden. Durch Hochdurchsatzverfahren, die im Labor
der Abteilung entwickelt wurden, konnten etwa 8000 Mausgene auf Aktivität im Embryo geprüft
werden. Sie stehen jetzt unmittelbar für eine Vielzahl funktioneller Untersuchungen zur Verfügung
(siehe unten).
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Abb. 3: Unterschiedliche Genaktivitäten im kaudalen Teil von 9,5 Tage alten Mausembryonen,
erkennbar an den gefärbten Bereichen.
Urheber: Max-Planck-Institut für molekulare Genetik/Spörle, Neidhardt, Herrmann
ii.) Ausschalten einzelner Gene durch homologe Rekombination oder RNA-Interferenz
Die Funktion einzelner Gene in biologischen Prozessen kann durch Mutagenese-Verfahren ergründet
werden. Dabei wird untersucht, wie sich der Verlust oder die Unterdrückung einer Genfunktion auf
den gesamten Organismus auswirken. Das klassische Verfahren, das in 2007 mit dem Nobelpreis ausgezeichnet wurde, verwendet die homologe Rekombination in embryonalen Stammzellen. Dabei wird
das gesunde Gen in der Zelle durch ein defektes Gen ausgetauscht, das im Labor angefertigt wurde
(so genanntes knock-out Verfahren). Aus den Zellen werden Mäuse hergestellt, die den Gendefekt vererben können. Schließlich untersucht man, welche Wirkung der Verlust des Gens auf den Organismus
hat, und leitet daraus die Funktion des Gens ab. Dieses Verfahren ist sehr aufwändig und langwierig.
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Ein weiteres Verfahren wurde in Grundzügen beschrieben und wird derzeit für die Verwendung in
Mausembryonen optimiert. Es handelt sich dabei um die RNA-Interferenz, deren Entdeckung in 2006
mit dem Nobelpreis ausgezeichnet wurde. Dabei wird die aus einem Gen resultierende Boten-RNA,
welche als Matrize zur Herstellung von Proteinen dient, mittels kurzer Gegenstrangsequenzen, die
Teilabschnitte auf der Boten-RNA erkennen können, zur Spaltung gebracht und abgebaut oder zumindest an der Verwendung als Matrize gehindert. Dadurch kann gezielt eine ausgewählte Genaktivität
stark unterdrückt werden. Dieses Verfahren wird im Zusammenspiel mit einer diffizilen, spezialisierten
Technik der Herstellung von Mausembryonen in einer Weise verwendet, die die Untersuchung von
Genfunktionen in einem wesentlich kürzeren Zeitraum erlaubt. Damit lassen sich viel mehr Gene in
der gleichen Zeit untersuchen, als dies mit der knock-out Methode möglich wäre.
Embryonen, die aufgrund solcher Genmanipulationen Entwicklungsdefekte aufweisen, werden
morphologisch und mithilfe von Verfahren, die die Expression von einzelnen Markergenen erkennen
lassen (s.o.), auf die Auswirkung des jeweiligen Gendefekts hin untersucht. Darüber hinaus wird ein
Verfahren eingesetzt, mit dem die Expression aller Gene im Embryo quantifiziert werden kann, ohne
jedoch räumliche Auflösung zu bieten (so genannte Expressionsprofilierung auf Microarrays). Damit
lassen sich mit relativ geringem Aufwand diejenigen Gene identifizieren, deren Expression durch
den Gendefekt hoch- oder herunterreguliert werden. Durch solche Untersuchungen werden Gene
aufgedeckt, die vom untersuchten Regulator direkt oder indirekt abhängig sind.
iii.) Promotoranalysen – in silico, in vitro und in vivo
Jedes Gen besitzt Andockstellen für Regulatorproteine, die kontrollieren, wann und in welchen Zellen
das Gen exprimiert wird. Diese Kontrollelemente befinden sich im so genannten Promotor des Gens.
Promotoranalysen dienen zur Klärung der Frage, durch welche Regulatorproteine ein bestimmtes
Gen in einem bestimmten Zellverband zur Expression gebracht wird. Diese Methodik ist sehr wichtig
für die Klärung hierarchischer Beziehungen in Regelnetzwerken (Abb. 4). Regulator/Zielgen-Beziehungen können zwar mit bioinformatischen Werkzeugen untersucht, müssen aber durch aufwändige
experimentelle Verfahren validiert werden, da in silico-Vorhersagen noch nicht zuverlässig genug sind,
um mit hoher Sicherheit funktionelle Zielsequenzen für Regulatorproteine von zufälligen oder im untersuchten Kontext irrelevanten potenziellen Bindestellen im Promotor eines Gens zu unterscheiden.
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Abb. 4: Regulatorisches Netzwerk bei der Mesodermbildung. Potenzielle Zielgene der Transkriptionsregulatoren Lef1 (blau), Vermittler des WNT Signals (gelb), Brachyury (grün) und Tbx6 (rot) sind
dargestellt. Ein Teil der Zielgene wird von mehreren Regulatoren gemeinsam, andere von einzelnen
kontrolliert. Die Daten basieren auf der Quantifizierung der Genexpression in Embryonen, in denen
das jeweilige Gen ausgeschaltet wurde, und deren bioinformatischen Analysen.
Urheber: Max-Planck-Institut für molekulare Genetik/Werber, Morkel, Wittler, Herrmann
iv.) Genomweite Bindungsstudien von Regulatorproteinen an Zielgene
Einen wichtigen Fortschritt bei der Entdeckung der Zielgene von Transkriptionsregulatoren stellt die
Entwicklung der ChIP-Technik (Chromatin Immunpräzipitation) dar, mit deren Hilfe die Bindestellen eines DNA-bindenden Proteins auf den Chromosomen festgestellt werden können. Diese Technik
erlaubt es inzwischen, in Verbindung mit neuartigen Hochdurchsatz-Sequenzierverfahren der zweiten
Generation genomweite Analysen durchzuführen. Das heißt, dass in einem einzelnen Experiment
praktisch jedes Zielgen eines gegebenen Transkriptionsregulators identifiziert werden kann, an das der
Regulator zum Zeitpunkt der Entnahme des Gewebes gebunden war (Abb. 5). Allerdings kann aus
dem Befund der Bindung eines Regulators an eine Zielsequenz allein noch nicht geschlossen werden,
welche Wirkung diese molekulare Interaktion in der Zelle hervorruft. Dazu sind weitere Datensätze
notwendig. Diese Neuentwicklung markiert einen Meilenstein in der Bestimmung regulatorischer
Netzwerke auf der Ebene der Genkontrolle. Zudem kann diese Methode auch für die genomweite Analyse der epigenetischen Genkontrolle eingesetzt werden.
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Abb. 5: Regulatorisches Netzwerk bei der Mesodermbildung, Teil 2. Die Bindung der Regulatorproteine Tcf7 (rot), Lef1 (violett), Brachyury (grasgrün), Tbx6 (dunkelgrün), Snail1 (türkisblau), Srf
(marineblau) an die Promotoren ihrer Zielgene im kaudalen Bereich von Mausembryonen wurde
mithilfe der ChIP-Methode sichtbar gemacht und nach bioinformatischen Analysen in Form eines
Netzwerks dargestellt. Ein Teil der Zielgene wird von mehreren Regulatoren gemeinsam, andere von
einzelnen kontrolliert.
Urheber: Max-Planck-Institut für molekulare Genetik/Grote, Werber, Herrmann
Molekulare Mechanismen der Bildung und Segmentierung des paraxialen Mesoderms
Eine Vielzahl von Analysen hat bisher ergeben, dass die Bildung und Segmentierung des präsomitischen (paraxialen) Mesoderms durch eine Hierarchie von Regulatoren kontrolliert wird, die direkt
oder indirekt vom Signalmolekül Wnt3a abhängen [1–7]. Wnt3a induziert den Transkriptionsregulator
Brachyury (T) sowie den Transkriptionsrepressor Snail1, welche wiederum durch An- beziehungsweise Abschalten ihrer Zielgene die Mesodermbildung einleiten und kontrollieren. Mithilfe von
Brachyury wird ein weiterer Regulator, Tbx6, zur Expression gebracht und durch Interaktionen,
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die noch nicht verstanden sind, in seiner Expression auf präsomitisch-paraxiale Mesodermzellen
beschränkt. Wnt3a kontrolliert dann zusammen mit Tbx6 (synergistisch) die Expression von Genen,
die die Reifung und Segmentierung des paraxialen Mesoderms zu Somiten, den Vorläufern der Wirbelsäule und Skelettmuskulatur, bewirken. Unter diesen Zielgenen befinden sich unter anderem der
Transkriptionsregulator Mesogenin (Msgn1) [7], der die Reifung dieses Zelltyps bewirkt, sowie ein
Ligand des Notch-Rezeptors, Delta-like1 (Dll1) [3], der bei der Segmentierung eine wichtige Rolle
spielt (Abb. 6).
Diese Hierarchie von Regulatoren bildet das Grundgerüst der Regelnetzwerke bei der paraxialen Mesodermbildung und Segmentierung. Die oben beschriebenen Ansätze dienen dazu, die Zielgene dieser
Regulatoren und deren Verknüpfung im Netzwerk zu klären.
Die Segmentierung selbst wird durch einen Oszillator kontrolliert, der ebenfalls wesentlich von Wnt3a
gesteuert wird und in rhythmischen Abständen die Abtrennung eines Segmentpaares vom präsomitischen Mesoderm bewirkt. Hierbei interagieren drei Signalkaskaden, die WNT-, FGF- und Notch/
Delta-Signalwege, miteinander (Abb. 6) [1, 2]. WNT- und FGF-Signalwege arbeiten parallel (synergistisch), während sich WNT/FGF und Notch antagonistisch verhalten. Jede Signalkaskade generiert
mittels negativer Rückkopplung auf Membran-, zytoplasmatischer und Kernebene einen eigenen
Oszillator. Allerdings sind diese nicht gleichrangig, da zum Beispiel der Notch-Oszillator nach Abschalten des WNT-Signalwegs ausfällt, während umgekehrt der WNT-Oszillator durch Abschalten des
Notch-Signalwegs nicht beeinträchtigt wird. Insgesamt kann man feststellen, dass die Segmentierung
und damit die Bildung der Wirbelsäule maßgeblich von der WNT-Signalkaskade gesteuert wird. Weitere Arbeiten zur Aufklärung und Modellierung dieses komplexen Prozesses sind unterwegs.
Abb. 6: Hierarchie der wichtigsten Regulatoren bei der Bildung, Reifung und Segmentierung des
paraxialen Mesoderms. Das Signalmolekül Wnt3a kontrolliert den gesamten Prozess, indem es direkt
und indirekt die Expression von Transkriptionsregulatoren und anderen Signalmolekülen veranlasst,
die ihrerseits wesentlich bei der Kontrolle von Teilprozessen mitwirken (Näheres siehe Text).
Urheber: Max-Planck-Institut für molekulare Genetik/Wittler, Herrmann
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Literaturhinweise
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Wnt3a plays a major role in the segmentation clock controlling somitogenesis.
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B. G. Herrmann*, A. Gossler* (* corresponding authors):
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[4] H. Bauer, J. Willert, B. Koschorz, B. G. Herrmann:
The t complex-encoded GTPase-activating protein Tagap1 acts as a transmission ratio distorter
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[5] J. K. Dale, P. Malapert, J. Chal, G. Vilhais-Neto, M. Maroto, T. Johnson, S. Jayasinghe, P. Trainor,
B. Herrmann, O. Pourquie:
Oscillations of the snail genes in the presomitic mesoderm coordinate segmental patterning and
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The t complex-encoded guanine nucleotide exchange factor Fgd2 reveals that two opposing
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Genes & Development 21, 143–147 (2007).
[7] L. Wittler, E. Shin, P. Grote, A. Kispert, A. Beckers, A. Gossler, M. Werber, B. G. Herrmann:
Msgn1 expression and presomitic mesoderm maturation are controlled by synergistic activity
of Wnt3a and Tbx6.
EMBO Reports 8, 784-789 (2007).
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