Bedeutung von TMPRSS2 für die Ausbreitung von Influenza und

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Die Rolle der Wirtszellproteasen TACE
und TMPRSS2 in der SARS-CoV-Infektion
Stefan Pöhlmann
Institut für Virologie
Medizinische Hochschule Hannover
ACE2 ist der zelluläre Rezeptor des SARS-Virus
SARS-CoV
 Das Spike-Protein vermittelt den Zelleintritt von SARS-CoV
(Hofmann et al., J.Virol, 2004)
SARS-Spike
ACE2
 Angiotensin converting enzyme 2 (ACE2) ist der einzige
ACE2-Bindung
Endozytose
Endosom, H+
Rezeptor (Li et al., Nature 2003, Hofmann et al. BBRC, 2004)
 SARS-Spike-Spaltung durch Cathepsine ist essentiell für
den infektiösen Eintritt (Simmons et al., PNAS, 2005)
CatL
SARS-S-Spaltung,
Membranfusion
ACE2-Herabregulation durch
SARS-CoV-Spike induziert SARS
SARS-CoV
ANG-(1-7)
ANG1
ANG2
ACE
ACE2
AT1R
AT2R
Infektion
SARS
Kuba et al., Nat Med, 2005; Imai et al., Nature, 2005
ACE2-Herabregulation
Das humane Coronavirus NL63
2004 identifiziert in Holland
(van der Hoek et al, Nat. Med., 2004; Fouchier et al., PNAS, 2006)
Gruppe I Coronavirus, 65% Sequenzidentität mit Coronavirus 229E
(Pyrc et al, Virol. J., 2004)
Weltweit verbreitet, induziert Erkältungssymptome und Krupp
(Pyrc et al, J.Virol., 2007)
NL63 verwendet den SARS-Rezeptor ACE2 für den Eintritt in Zielzellen
(Hofmann et al, PNAS, 2005)
SARS versus NL63:
Zusammenhang zwischen ACE2Bindung/Herabregulation und viraler Pathogenität?
SARS-Spike bindet effizienter an ACE2
als NL63-Spike
Sandwich ELISA
FACS
155
Optische Dichte
Counts
Kontrolle
116
78
NL63-S
39
0
100
101
102
SARS-S
103
S-Protein-Bindung
104
2.0
1.8
1.6
1.4
1.2
1.0
0.8
0.6
0.4
0.2
0.0
0
Kontrolle
SARS-S
NL63-S
0.5
1.0
1.5
ACE2 (µg/ml)
2.0
SARS-Spike induziert ACE2-shedding
effizienter als NL63-Spike
Kontroll-VLPs
0
2
8
SARS-S VLPs NL63-S VLPs
24 h
ACE2
0
Pellet
8
24
0
2
8
24 h
ACE2
Pellet
β Actin
β Actin
ACE2
2
ACE2
Überstand
OVA
Glowacka et al, in Revision; Haga et al, PNAS, 2008
Überstand
OVA
Die Wirtszellprotease TACE vermittelt
ACE2-shedding
SARS-S + TAPI-0
unmarkiert
Counts
Kontroll-Fc
SARS-S, 37°C
SARS-S, 4°C
SARS-S, 37°C + TAPI-0
S-Protein Bindung
Glowacka et al, in Revision
Lösliches SARS-Spike induziert ACE2-shedding
Produktion von löslichem SARS-Spike in vivo?
antibody-decoy
ACE2-Herabregulierung
antibody-decoy
?
TACE
EbolaGlykoprotein
Dolnik et al, EMBO J, 2004
SARS-Spike
?
Typ II Transmembran Serin Proteasen spalten
Influenza-Hämagglutinin und HMPV-F-Protein
Matriptase subfamily
Corin subfamily
Hepsin/TMPRSS subfamily
HAT/DESC subfamily
Böttcher et al, J Virol, 2006, Chaipan et al, J Virol, 2009
Choi et al, Trends Mol Med, 2009
Spaltung durch TMPRSS2 generiert
lösliches SARS-Spike
SARS-S
kDa
170
3
e2
4
s
3
3
A
A
SS SS ipta
ol
r
N
N
R
D cD
P
PR atr
nt
c
o
M
M
p
p
M
T
C
T
+
- : Trypsin
130
95
*
Suncleaved
*
S2
72
55
*
43
*
TMPRSS2
Gag
S2-spezifisches Serum
Bertram et al, in Vorbereitung
SARS-Spike
Lösliches SARS-Spike vermindert
die Antikörper-vermittelte Neutralisation
Luziferase-Aktivität (c.p.s.)
Infektion mit SARS-S-Pseudopartikeln
1000000
100000
10000
1000
100
10
M
RI
LI
ed
i
um
1
pcDNA3
TMPRSS2
SARS-S
Bertram et al, in Vorbereitung
TMPRSS2 und ACE2 werden in
humanen Lungenzellen koexprimiert
TMPRSS2
P2
TMPRSS2
P2
M
M
P1
SARS-S
- Kontrolle
ACE2
M
P2
SARS-S
P2
M
Dr. Elizabeth Soilleux, Oxford, UK
Caco-2
Bertram et al, in Vorbereitung
Zusammenfassung I
SARS-Spike bindet an ACE2 effizienter als NL63-Spike.
Lösliches SARS-Spike induziert ACE2-shedding effizienter als
NL63-Spike.
Die Wirtszellprotease TACE ist für ACE2-shedding verantwortlich.
Fördert ACE2-Spaltung die SARS-Entwicklung?
Zusammenfassung II
TMPRSS2 spaltet SARS-S und führt zur Produktion von löslichem
SARS-S.
Lösliches SARS-S vermindert die Neutralisation durch Antikörper.
SARS-S wird in infizierten Zellen an die Zelloberfläche transportiert.
ACE2 und TMPRSS2 werden in Typ II Pneumozyten koexprimiert.
Moduliert TMPRSS2 die SARS-CoV-Kontrolle
durch die humorale Immunantwort?
Danksagung
Hannover Medical School, Germany
Ilona Glowacka, Stephanie Bertram, Imke Steffen
University of Bonn Medical Centre, Germany
Christian Drosten, SARS-Verbund
Berhard Nocht Institute for Tropical Medicine, Hamburg, Germany
Petra Herzog, SARS-Verbund
Susanne Pfefferle, SARS-Verbund
University of Freiburg, Germany
Friedemann Weber, SARS-Verbund
Thomas Kuri, SARS-Verbund
University of Erlangen-Nürnberg, Germany
Jutta Eichler
John Radcliffe Hospital, UK
Elizabeth Soilleux
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