Untersuchungsprogramm

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L abo r Ende r s
Prof. Dr. med. Gisela Enders & Kollegen MVZ
Medizinische Diagnostik
2012
2013
L abo r Ende r s
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Rosenbergstraße 85 · 70193 Stuttgart
Postfach 10 12 36 · 70011 Stuttgart
Tefefon 07 11/63 57-0
Telefax 07 11/63 57-202
[email protected]
www.labor-enders.de
Untersuchungsprogramm
2012 / 2013 / 2014
STUTTGART
Rosenbergstraße 85 · 70193 Stuttgart
Email: [email protected]
Internet: www.labor-enders.de
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Telefon (Zentrale)
Telefax (Zentrale)
07 11 / 63 57-0
07 11 / 63 57-202
Bakteriologie / Mykologie
Endokrinologie
Klinische Chemie / Hämatologie
Hygiene
Infektionsserologie
Forensische Toxikologie
Molekularbiologie
Molekular-/ Pharmakogenetik
Mutterschaftsvorsorge
Parasitologie / Tbc-Diagnostik
Pränataldiagnostik
Versandmaterial, Fahrdienst
07 11 / 63 57-152
07 11 / 63 57-210
07 11 / 63 57-211
07 11 / 63 57-153
07 11 / 63 57-0
07 11 / 63 57-110
07 11 / 63 57-140
07 11 / 63 57-268
07 11 / 63 57-0
07 11 / 63 57-154
07 11 / 63 57-120
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ESSLINGEN
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Telefax
Befundauskunft
07 11 / 31 03-32 51
07 11 / 31 03-33 44
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Enders
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Stuttgart
Böblingen
LeinfeldenEchterdingen
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Rosenbergplatz
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Schwabstraße, anschließend mit Bus Linie 42 Richtung Schlossplatz
bis zur Haltestelle Rosenbergplatz
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Labor
Enders
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Haltestelle
Rosenbergplatz
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S-Bahn
Haltestelle
Schwabstraße
Inhaltsverzeichnis
Dienstzeiten und Telefonnummern ................................................................................ III
Stichwortverzeichnis ....................................................................................................... V
Allgemeines ...................................................................................................................... 1
Abkürzungen ........................................................................................................... 1
Allgemeine Hinweise ............................................................................................... 3
Schnelldiagnostik ..................................................................................................... 7
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge ............................................................... 9
Infektionsserologie / Virologie .................................................................................. 9
Mutterschaftsvorsorge / Pränataldiagnostik .......................................................... 75
Infektionserreger nach Symptomen ....................................................................... 80
Infektionserreger bei neonatalen Symptomen ....................................................... 91
Nukleinsäure-Diagnostik ............................................................................................... 95
Infektiologie ........................................................................................................... 95
Molekulargenetik ................................................................................................. 100
Pharmakogenetik und weitere prognostische Therapie-Marker .......................... 106
Arzneimittelrelevante pharmakogenetische Diagnostik ....................................... 111
Immunologie / Autoimmunerkrankungen .................................................................. 121
Zelluläre Immunologie ......................................................................................... 121
Immunglobuline / Komplementsystem ................................................................. 125
Entzündungsaktivität ........................................................................................... 127
Autoantikörper ..................................................................................................... 129
Rheumaserologie ................................................................................................ 144
Autoimmunerkrankungen (Profile) ....................................................................... 145
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie .................................................... 153
Funktionstests ..................................................................................................... 153
Endokrinologie ..................................................................................................... 160
Andrologie ........................................................................................................... 172
Gerinnung ............................................................................................................ 174
Hämatologie ........................................................................................................ 179
Blutgruppen-Serologie ......................................................................................... 183
Kardiale Marker ................................................................................................... 186
Klinische Chemie ................................................................................................. 187
Proteine / Transportproteine im Serum ................................................................ 196
Liquordiagnostik .................................................................................................. 198
Diabetes-Diagnostik ............................................................................................ 200
Allergiediagnostik ................................................................................................ 201
Vitamine & Spurenelemente ................................................................................ 202
Knochenstoffwechsel ........................................................................................... 205
Tumormarker ....................................................................................................... 206
Medikamente ....................................................................................................... 210
Urindiagnostik (ohne Infektionserreger) .............................................................. 220
Stuhl-Diagnostik (ohne Infektionserreger) ........................................................... 226
Forensische Toxikologie .............................................................................................. 229
Betäubungsmittelanalytik ..................................................................................... 229
Mikrobiologie ................................................................................................................ 237
Allgemeine Bakteriologie ..................................................................................... 237
Mykobakterien-Diagnostik (Tbc) .......................................................................... 247
Mykologie ............................................................................................................ 249
Parasitologie ........................................................................................................ 250
Hygieneuntersuchungen ...................................................................................... 262
Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung ............................................................. 267
Biozidprüfungen ................................................................................................... 267
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
I
II
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Dienstzeiten und Telefonnummern
Stuttgart
Allgemeine Dienstzeiten:
- Montag - Freitag
8:00 - 19:00 Uhr
- Samstag
8:00 - 13:00 Uhr
Probenannahme:
- Montag - Freitag
8:00 - 19:30 Uhr
- Samstag
8:00 - 12:00 Uhr
Blutentnahme:
- Montag - Freitag
9:00 - 16:00 Uhr
Befundauskunft Zentrale
0711 6357-0
Infektionsserologie / Virologie
Prof. Dr. med. Gisela Enders
0711 6357-121
Sekretariat:
0711 6357-120
Dr. med. M. Enders
0711 6357-117
Dr. med. F. Tewald
0711 6357-119
Klinische Chemie / Endokrinologie
Dr. med. R. Alkier
0711 6357-211
Dr. med. K.-J. Lüthgens
0711 6357-210
Drogen und Medikamente
Dr. rer. nat. V. Dangel
0711 6357-110
Prof. Dr. rer. nat. M. Möller
0711 6357-110
Immunhämatologie
Dr. med. S. Rauch
0711 6357-228
Mikrobiologie
Dr. med. T. Regnath
0711 6357-150
Dr. rer. nat. U. Bührlen
0711 6357-245
Parasitologie
Prof. Dr. Dr. P. Kimmig
0711 6357-139
Dr. med. F. Tewald
0711 6357-119
Molekularbiologie
Dr. rer. nat. G. Schalasta
0711 6357-140
Dr. rer. nat. M. Schmid
0711 6357-142
Molekulargenetik / Pharmakogenetik
Dr. med. A. Vergopoulos
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
0711 6357-268
III
Dienstzeiten und Telefonnummern
Zelluläre Immunologie / Durchflusszytometrie
Dr. rer. biol. hum. T. Meier
0711 6357-131
Probeneingang
Dr. rer. nat. M. Bläse
0711 6357-267
Qualitätsmanagement
Frau Dr. rer. nat. G. Wagner (QMB)
0711 6357-214
Frau Dr. rer. nat. D. Dirmeier (Stellvertretung)
0711 6357-214
Probenabholung, Transportkoordination und
Versandmaterial, Herr Schmauß
0711 6357-104
Nachforderungen / Auftragsergänzungen
per Fax
0711 6357-202
oder per Telefon
0711 6357-0
Abrechnung
Rechnungsabteilung für Krankenhäuser,
Laborärzte und stationäre Privatpatienten
0711 6357-235
Rechnungsabteilung für ambulante
Privatpatienten und IGeL-Leistungen
0711 6357-236/244
Rechnungsabteilung für Kassenpatienten
0711 6357-237
Verwaltung
Verwaltung, Herr Schneider
0711 6357-234
Personalabteilung, Frau P. Wagner
0711 6357-230
Buchhaltung, Herr Heide
0711 6357-258
EDV-Abteilung
0711 6357-231
Esslingen
Probenannahme:
- Montag - Sonntag
0:00 - 24:00 Uhr
Sprechstunden:
- Montag - Freitag
9:00 - 12:00 / 14:00 - 16:00 Uhr
Befundauskunft
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Sekretariat Prof. Dr. med. R. Braun
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Durchwahl Prof. Dr. med. R. Braun
0711 3103-3250
Impressum
16. Auflage, Stand: 2014-07-10 (12:06)
Verantwortlich für Inhalt und Redaktion: Dr. med. F. Tewald.
Alle Rechte vorbehalten. Nachdruck, auch nur auszugsweise, nur mit Genehmigung der
Verfasser.
©
Copyright Labor Enders
IV
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
5-Fluorouracil (Pharmakogenetik) 117
6-Mercaptopurin (Pharmakogenetik) 117
6-Thioguanin (Pharmakogenetik) 117
A-DNAse B 144
Abacavir (Pharmakogenetik) 119
ABCB1 109
Abklatschplatten (Hygieneuntersuchung) 262
Aborte, habituelle 78
Abstriche (Hygieneuntersuchung) 262
Abszessabstrich (Mikrobiologie) 240
Abszesse im Zahn-/Kieferbereich 243
ACE 100
ACE (Angiotensin Converting Enzyme) 187
Acenocoumarol (Pharmakogenetik) 115
Acetaminophen (Pharmakogenetik) 111
Acetylcholinesterase im Fruchtwasser 160
Acetylcholinrezeptor-AK 129
Acetylsalicylsäure (Pharmakogenetik) 111
AChR-AK (Acetylcholinrezeptor-AK) 129
Acrodermatitis chronica atrophicans 14
ACTH (Adrenocorticotropes Hormon) 160
ACTH-Stimulationstest (Kurztest) 153
Addison-Krankheit 147
Adenosinmonophosphat-Desaminase 1 106
Adenovirus-Infektionen 9
ADH (Antidiuretisches Hormon) 160
Adrenalin im Plasma 166
Adrenalin im Urin 165
Adrenocorticotropes Hormon (ACTH) 160
AFP (alpha-Fetoprotein) 161
AFP (Tumormarker) 206
AFP im Fruchtwasser 161
AHA (Histone-AAK) 134
AHG-Test, direkt (DAT) 183
AICAR-Transformyl./IMP-Cyclohydrolase 106
AIDS (HIV) 43
AIH (Autoimmunhepatitis) 145
Ajmalin (Pharmakogenetik) 111
AKS (Antikörpersuchtest) 183
Aktinomyzeten (Mikrobiologie) 244
Albumin im Serum 196
Albumin im Stuhl 226
Albumin im Urin 220
Aldosteron 160
Aldosteron, frei im Urin 160
Aldosteron-18-Glucuronid im Urin 161
Aldosteron-Suppressionstest 154
Alkal. Phosphatase, Plazenta-Isoenzym 208
Alkalische Leukozyten-Phosph. (ALP) 182
Alkalische Phosphatase (AP) 188
Alkalische Phosphatase, Isoenzyme 188
Alkoholscreening im Urin 229
allergenspezifisches IgE (RAST) 201
Allopurinol (Pharmakogenetik) 119
ALP (alk. Leukozyten-Phosphatase) 182
alpha-1-Antitrypsin im Serum 187
alpha-1-Antitrypsin im Stuhl 226
alpha-1-Antitrypsin-Defizienz 100
alpha-1-Antitrypsin-Genotypisierung 100
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
alpha-1-Fetoprotein (AFP) 161
alpha-1-Fetoprotein im Fruchtwasser 161
alpha-1-Fetoprotein, Tumormarker 206
alpha-1-Mikroglobulin im Urin 220
alpha-1-Protease-Inhibitor 187
alpha-1-Protease-Inhibitor-Genotyp 100
alpha-2-Makroglobulin im Urin 220
alpha-Glucosidase im Seminalplasma 172
alpha-HBDH 191
alpha-Tocopherol (Vitamin E) 204
Alprenolol (Pharmakogenetik) 114
ALT (GOT) 191
Aluminium im Serum 187
Alveolen-Basalmembran-AAK 129
AMA (antimitochondriale AAK) 129
AMH (Anti-Müller-Hormon) 161
Amikacin 210
Aminoacyl-tRNA-Synthetase-AAK 135
Aminolävulinsäure, delta- 224
Aminosäuren im Serum 187
Aminosäuren im Urin 221
Amiodaron 210
Amiodaron (Pharmakogenetik) 111
Amitriptylin 210
Amitriptylin (Pharmakogenetik) 112
AMLA (Herzmuskel-AAK) 134
Ammoniak im Plasma 187
Amodiaquin (Pharmakogenetik) 119
Amöbiasis 250
Amoxicillin (Pharmakogenetik) 112
AMP-Desaminase 100
AMP-Desaminase-Mangel 100
AMPD 100
Amphetamin (Pharmakogenetik) 119
Amphetamine im Serum (Bestätigung) 234
Amphetamine im Serum (Screening) 233
Amphetamine im Urin (Bestätigung) 231
Amphetamine im Urin (Screening) 229
Amphiphysin-AAK 129
Amphotericin B 210
Amprenavir (Pharmakogenetik) 119
Amylase 187
Amylase, Isoenzyme 188
Amyloid, beta- im Liquor 199
Amyloid-A-Protein im Serum (SAA) 128
ANA (antinukleäre AAK) 129
Anämieabklärung 180
Anästhetika (Pharmakogenetik) 116
Analgetika (Pharmakogenetik) 111
Anaplasma phagocytophilum 25
ANCA, perinukleär (p-ANCA) 137
ANCA, zytoplasmatisch (c-ANCA) 130
Ancylostoma duodenale (Hakenwurm) 257
Androstandiol-Glucuronid 161
Androstendion 161
Anforderungsscheine 3
Angel Dust im Serum (Bestätigung) 235
Angel Dust im Serum (Screening) 234
Angel Dust im Urin (Bestätigung) 232
Angel Dust im Urin (Screening) 230
Angioneurotisches Ödem, hereditäres 126
V
Stichwortverzeichnis
Angiotensin Converting Enzyme (ACE) 187
Angiotensin-Converting-Enzym-Gen 100
ANNA-1 134
ANNA-2 139
Anthrazykline (Pharmakogenetik) 117
Anti-alveoläre Basalmembran-AAK 129
Anti-Faktor Xa-Aktivität 176
Anti-Jo-1-Syndrom 145
Anti-Müller-Hormon 161
Anti-Phospho-Lipid-Syndrom$APS
(Anti-Phospho-Lipid-Syndrom) 130 131 177
Anti-Phospholipid-Autoantikörper 131
Anti-Streptodornase B (A-DNAse B) 144
Anti-Synthetase-Syndrom 145
Antiarrhythmika (Pharmakogenetik) 111
Antiasthmatika (Pharmakogenetik) 112
Antibiotika (Pharmakogenetik) 112
Antidepressiva (Pharmakogenetik) 112
Antidiabetika (Pharmakogenetik) 113
Antidiuretisches Hormon (ADH) 160
Antiemetika (Pharmakogenetik) 113
Antiepileptika (Pharmakogenetik) 113
Antiglobulintest, direkt (DAT) 183
Antiglobulintest, indirekt (IAT) 183
Antihistaminika (Pharmakogenetik) 114
Antihumanglobulintest, direkt (DAT) 183
Antihypertonika (Pharmakogenetik) 114
Antikoagulantien (Pharmakogenetik) 115
Antikörpersuchtest 183
Antimitochondriale AAK (AMA) 129
Antimykotika (Pharmakogenetik) 115
Antinukleäre AAK (ANA) 129
Antiphospholipidsyndrom 145
Antistaphylolysin (ASTAL) 144
Antistreptolysin O (ASL) 144
Antithrombin-Aktivität 177
Antithrombin-III-Aktivität (AT III) 177
Antitrypsin 187
Anxiolytika (Pharmakogenetik) 118
AP (Alkalische Phosphatase) 188
AP, knochenspezifisch 205
AP, Plazenta-Isoenzym 208
AP-Isoenzyme 188
APC-Ratio 177
APC-Resistenz 177
APC-Resistenz, Genotyp 104
ApoB-Genotypisierung 100
ApoE-Genotypisierung 100
Apolipoprotein A1 (HDL-Protein) 188
Apolipoprotein B (LDL-Protein) 188
APS (Antiphospholipidsyndrom) 145
Arbovirosen 10
Aripiprazol (Pharmakogenetik) 116
Arthritiden, Arthralgien (DD) 89
Arthritis rheumatoide 150
Arthropode-borne Viruses (Arboviren) 10
ASCA (Saccharomyces-AK) 139
Ascaris lumbricoides (Spulwurm) 257
Asialoglycoprotein-Rezeptor-AAK 130
ASL (Antistreptolysin O) 144
ASLA (Herzmuskel-AAK) 134
VI
ASMA 133
Aspergillose (Mikrobiologie) 249
Aspergillus-Antigen 11
Aspergillus-Infektionen 10
AST (GOT) 190
ASTAL (Antistaphylolysin) 144
Astrovirus-Infektionen 11
AT-III-Aktivität 177
Atazanavir (Pharmakogenetik) 119
ATIC 106
Atomoxetin (Pharmakogenetik) 112
Atorvastatin (Pharmakogenetik) 118
Atypische Cholinesterase 190
Atypische Mykobakterien 247
Augeninfektionen (DD) 89
Augeninfektionen (Mikrobiologie) 244
Autoimmunhämolytische Anämie 146
Autoimmunhepatitis (Diagnostik) 145
Azathioprin (Pharmakogenetik) 115
Azelastin (Pharmakogenetik) 114
B-type natriuretic peptide (BNP) 186
Babesien 250
Bakterielle Ruhr (Shigellose) 64
Bakterien (Nukleinsäurediagnostik) 97
Bakterizidie-Prüfung 267
BAL (Mikrobiologie) 238
BAL (Zelldifferenzierung) 122
Banden, oligoklonale, im Liquor 198
Bang, Morbus (Brucellose) 15
BAP 205
Barbiturate im Serum (Bestätigung) 234
Barbiturate im Serum (Screening) 233
Barbiturate im Urin (Bestätigung) 231
Barbiturate im Urin (Screening) 229
Bartonellen 11
Basale Mastzell-Tryptase 201
Basalmembran-AAK (-Alveolen) 129
Basalmembran-AAK (-Glomerulum) 133
Basedow’sche Erkrankung 148
Basophilen-Degranulationstest 121
Bazilläre Angiomatose 11
BCR/ABL-Translokation 101
Becherzell-AAK 130
Befundinterpretationen 6
Befundmitteilung 6
Belegzellen-AAK (Parietalzellen-AAK) 137
Bence-Jones-Protein i. S. (Kappa) 196
Bence-Jones-Protein i. S. (Lambda) 197
Bence-Jones-Proteine im Urin 221
Benzatropin (Pharmakogenetik) 119
Benzodiazepine im Serum (Bestätigung) 234
Benzodiazepine im Serum (Screening) 233
Benzodiazepine im Urin (Bestätigung) 231
Benzodiazepine im Urin (Screening) 229
Benzoylecgonin im Serum (Bestätigung) 234
Benzoylecgonin im Serum (Screening) 233
Benzoylecgonin im Urin (Bestätigung) 231
Benzoylecgonin im Urin (Screening) 230
beta-2-Glykoprotein-1-AAK 130
beta-2-Mikroglobulin im Serum 206
beta-2-Mikroglobulin im Urin 220
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
beta-Amyloid im Liquor 199
beta-Crosslaps 205
beta-hCG 162
Bilharziose 258
Bilirubin (gesamt) 189
Bilirubin direkt 188
Biotin (Vitamin H) 204
Biozidie 267
Biphasische Hämolysine 184
Bisoprolol (Pharmakogenetik) 114
BK-Virus (Polyomaviren) 59
BKS (BSG) 127
Blasenbilharziose (Mikrobiologie) 258
Blut im Stuhl 226
Blut-Liquor-Schranke (nach Reiber) 198
Blutbild, groß 179
Blutbild, klein 179
Blutgruppe 183
Blutgruppenbestimmung, genetisch 104
Blutgruppeneigenschaften, weitere 183
Blutkörperchensenkungsgeschw. 127
Blutkultur 238
Blutprodukte (Hygieneuntersuchung) 264
Blutsenkung (BSG) 127
Blutzucker 200
BNP 186
Bocavirus 41
Bordetella parapertussis 12
Bordetella pertussis 13
Bornholm-Krankheit 26
Borreliose 14
Boutonneuse-Fieber (Rickettsien) 61
brain-natriuretic pept., N-term. (BNP) 186
Brill-Zinsser-Krankheit (Rickettsien) 61
Bromazepam 210
Bromazepam (Pharmakogenetik) 118
Bromid 210
Bronchialsekret (Mikrobiologie) 238
Bronchiolitis, neonatal (DD) 92
Brucellose 15
Brugia malayi 253
BSG 127
Bufuralol (Pharmakogenetik) 114
Bullöses Pemphigoid 146
Buprenorphin im Serum (Bestätigung) 235
Buprenorphin im Urin (Bestätigung) 231
Buprenorphin im Urin (Screening) 229
Bupropion (Pharmakogenetik) 112
c-ANCA 130
C-Peptid 162
C-reaktives Protein 127
C-reaktives Protein, hochsensitiv 127
C. difficile-Toxin 241
C1-Esterase-Inhibitor (Aktivität) 126
C1-Esterase-Inhibitor (Konzentration) 126
C2-Komplement 126
C3-Komplement 126
C4-Komplement 126
CA 12-5 206
CA 15-3 206
CA 19-9 206
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
CA 72-4 207
CA-50 207
Calcitonin 170
Calcium im Serum 189
Calcium im Urin 221
Calcium-Sensing-Rezeptor-AAK 137
Calciumkanal (P/Q-Typ)-AAK 131
Caliciviren 54
Calprotectin im Stuhl 226
Campylobacter-Antigen (Mikrobiologie) 242
Campylobacter-Infektionen 16
Candida-Infektionen (Serologie) 17
Candidose (Mikrobiologie) 249
Cannabinoide im Serum (Bestätigung) 234
Cannabinoide im Serum (Screening) 233
Cannabinoide im Urin (Bestätigung) 231
Cannabinoide im Urin (Screening) 229
CAP 6
Capecitabin (Pharmakogenetik) 117
Captopril (Pharmakogenetik) 114
Captopril-Test 154
Carbamazepin 211
Carbamazepin (Pharmakogenetik) 113
Carbamazepin, frei 211
Carcino-embryonales Antigen (CEA) 207
Cardiolipin-AAK 131
Carisoprodol (Pharmakogenetik) 116
Carnitin im Seminalplasma 172
Carnitin, frei im Serum 189
Carvedilol (Pharmakogenetik) 114
Cat scratch disease (Katzenkratzkrankh.) 11
CCP-AAK 131
CD38 auf CD8-T-Lymphozyten 123
CD4-Lymphozyten 122
CDT 236
CEA (Carcino-embryonales Antigen) 207
Celecoxib (Pharmakogenetik) 117
Celiprolol (Pharmakogenetik) 114
CEN/TC 216/WG1 267
Cephazolin (Pharmakogenetik) 112
Cervixabstrich (Mikrobiologie) 243
CF (Cystische Fibrose) 105
CFS (Chronic Fatigue Syndrome) 88
CGA (Chromogranin A) 207
CH-100-Aktivität 125
CH-50-Aktivität siehe CH100 125
CHE (Cholinesterase) 189
Chikungunya-Virus 17
Chinidin (Pharmakogenetik) 111
Chlamydia trachomatis 19
Chlamydophila psittaci 18
Chlorid im Serum 189
Chlorpheniramin (Pharmakogenetik) 114
Chlorpromazin (Pharmakogenetik) 116
Cholesterin 189
Cholesterin, HDL 191
Cholesterin, LDL 192
Cholinesterase (CHE) 189
Cholinesterase im Fruchtwasser 160
Cholinesterase, atypische 190
Chordiazepoxid (Pharmakogenetik) 118
VII
Stichwortverzeichnis
Chromogranin A (CGA) 207
Chromosomenanalyse 79
Chron.-entzündl. demyelin. PNP 146
Churg-Strauss-Syndrom (Vaskulitis) 152
Ciclosporin (Pharmakogenetik) 115
Ciclosporin A 211
CIDP 146
Citalopram (Pharmakogenetik) 112
Citrat im Seminalplasma 172
Citrat im Urin 221
Citrullin-AAK (Anti-CCP) 131
CK (Creatinkinase) gesamt 186
CK-Isoenzyme 186
CK-MB (herzspezifisch) 186
Clarithromycin (Pharmakogenetik) 112
Clavulansäure (Pharmakogenetik) 112
CLIA 6
Clobazam 211
Clobazam (Pharmakogenetik) 118
Clomipramin 211
Clomipramin (Pharmakogenetik) 112
Clonazepam 211
Clonazepam (Pharmakogenetik) 118
Clonidin-Test 154
Clopidogrel (Pharmakogenetik) 115
Clostridientoxine (Mikrobiologie) 241
Clostridium difficile 242
Clostridium tetani 20
Clozapin 212
Clozapin (Pharmakogenetik) 116
CMV (Cytomegalie-Virus) 22
CO-Hämoglobin 179
Cobalamin 203
Cocain im Serum 233
Cocain im Serum (Bestätigung) 234
Cocain im Urin (Bestätigung) 231
Cocain im Urin (Screening) 230
Codein (Pharmakogenetik) 111
Coeruloplasmin 196
Colitis ulcerosa (Autoantikörper) 146
College of American Pathologists (CAP) 6
Coombstest, direkt (DCT) 183
Coombstest, indirekt (AKS) 183
Coronavirus (NL63) 21
Cortisol (Pharmakogenetik) 115
Cortisol im Serum 162
Cortisol im Urin 162
Corynebacterium diphtheriae 21
Cotinin im Urin 232
Coxiella burnetii 21
Coxsackie-ECHO-Viren 26
Coxsackie-Viren 26
Creatinkinase (CK) gesamt 186
Crithidia luciliae-(ds-DNS-AAK) 131
CRMP5-AAK 131
Crohn, Morbus (AAK) 148
Crosslaps 205
Crosslinks (Pyridinoline) im Urin 205
CRP 127
CRP, hochsensitiv (hsCRP) 127
Cryptococcus neoformans (Antigen) 237
VIII
Cryptococcus neoformans (Kultur) 237
Cryptococcus-neoformans-DNA 237
CTU-Screening 229
CTx 205
Cumarin-Derivate 107
CV2-AAK 131
CXCL10 109
Cyclisches citrulliniertes Peptid-AAK 131
Cyclobenzaprin (Pharmakogenetik) 116
Cyclophosphamid (Pharmakogenetik) 117
Cyclosporin A 211
CYFRA 21-1 207
Cystatin C 190
Cysteinyldopa im Plasma 207
Cysteinyldopa im Urin 207
Cystische Fibrose 105
Cytochrom P450 1A1 106
Cytochrom P450 1A2 106
Cytochrom P450 2B6 106
Cytochrom P450 2C19 107
Cytochrom P450 2C8 107
Cytochrom P450 2C9 107
Cytochrom P450 2D6 107
Cytochrom P450 3A5 107
Cytochrom P450-AK (LKM-AAK) 135
Cytomegalie-Virus 22
D weak (Rhesus), genetisch 104
D-Dimere 178
D-Xylose-Belastungstest 155
Dapson (Pharmakogenetik) 112
Darmbilharziose 259
Darminfektionen (Mikrobiologie) 241
DAT (direkter Antiglobulintest) 183
Daunomycin (Pharmakogenetik) 117
DCT 183
Debrisoquin (Pharmakogenetik) 114
Dehydroepiandrosteron 162
Dehydroepiandrosteron-Sulfat 162
Delavirdin (Pharmakogenetik) 119
delta-Aminolävulinsäure 224
Delta-Virus (Hepatitis D) 38
Dengue-Fieber 24
Dermatophyten (Mikrobiologie) 249
Desinfektionsmittel (Hygieneunters.) 264
Desipramin (Pharmakogenetik) 112
Desmethylcitalopram (Pharmakogenetik) 112
Desmoglein-AAK 138
Desogestrel (Pharmakogenetik) 115
Desoxypyridinolin im Urin 205
Dexamethason-Hemmtest 156
Dextromethorphan (Pharmakogenetik) 119
DHEA 162
DHEA-S 162
DHF (Dengue-hämorrhagisches Fieber) 24
DHT (Dihydrotestosteron) 162
Diabetes mellitus (Autoantikörper) 146
Diazepam 212
Diazepam (Pharmakogenetik) 118
Dibucainzahl 190
Dicker Tropfen (Malaria) 256
Diclofenac (Pharmakogenetik) 117
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Didanosin (Pharmakogenetik) 119
Differenzial-Blutbild 179
Digitoxin 212
Digoxin 212
Digoxin (Pharmakogenetik) 119
Dihydralazin (Pharmakogenetik) 114
Dihydrocodein (Pharmakogenetik) 111
Dihydropyrimidin-Dehydrogenase 107
Dihydrotestosteron (DHT) 162
Diltiazem (Pharmakogenetik) 111
DIN EN ISO 15189 6
DIN EN ISO/IEC 17025 6
Diphenhydramin (Pharmakogenetik) 114
Diphtherie 21
Direktes Bilirubin 188
DNAse-B-Antikörper (Streptokokken) 144
DNS-AAK, ds- 132
Dobrava-Virus 32
Dolasetron (Pharmakogenetik) 113
Donath-Landsteiner-Antikörper 184
Donepezil (Pharmakogenetik) 119
Dopamin im Urin 165
Doppelstrang-DNS-AAK (ds-DNS-AAK) 132
Down-Risiko im 1. und 2. Trimester 168
Doxepin 212
Doxepin (Pharmakogenetik) 112
Doxorubicin (Pharmakogenetik) 117
DPD 107
Drei-Tage-Fieber 42
Drogenscreening im Serum 233
Drogenscreening im Urin 229
Dronabinol (Pharmakogenetik) 113
ds-DNS-AAK 131 132
DSS (Dengue-Schock-Syndrom) 24
Duloxetin (Pharmakogenetik) 112
Dystrophie, neonatal (DD) 91
E1 (Estron) 163
E2 (Estradiol) 163
E3 (freies Estriol) 163
EBV (Epstein-Barr-Virus) 28
Echinokokkose 251
ECHO-Viren 26
ECP (eosinophiles kationisches Protein) 201
Ecstasy im Serum (Bestätigung) 234
Ecstasy im Serum (Screening) 233
Ecstasy im Urin (Bestätigung) 231
Ecstasy im Urin (Screening) 229
Efavirenz (Pharmakogenetik) 119
EHEC 26
EHEC (Mikrobiologie) 241
Ehrlichiose 25
Eisen im Serum 202
Eisen im Urin 221
Eisenbindungskapazität 181
Eisenresorptionstest 156
Eiweiß, gesamt im Serum 196
Eiweiß, gesamt im Urin 221
Elastase 1 im Serum 194
Elastase, pankreatisch im Stuhl 227
Elektrophorese, Serum-Eiweiß- 197
Elephantiasis 253
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Elispot Tuberkulose 248
Elpho 197
EN 13704:2002-05 267
EN 14476: 2011-12 267
EN 14561: 2006-08 267
EN 1500: 2011-04 267
ENA-AAK (extrahierb. nukleäre Ag) 132
Encainid (Pharmakogenetik) 111
Endokarditis (DD) 85
Endokrinologie (Schnelldiagnostik) 8
Endomysium-AAK 132
Endoskope (Hygieneuntersuchung) 264
Endotoxin-/Pyrogennachweis (Hygiene) 265
Entamoeba histolytica 250
Enteritis (Schnelldiagnostik) 7
Enteritis, neonatal (DD) 93
Entero-Viren 26
Enterobius vermicularis (Oxyuren) 257
Enterohämorrhag. E. coli (EHEC) 26
Entzündungsneigung 103
Enzephalitis, postinfektiös (DD) 84
Enzephalomyelitis (DD) 83
eosinophiles kationisches Protein (ECP) 201
Epidermale Basalmembran-AAK 137
Epstein-Barr-Virus-Infektion (EBV) 28
Erb-Oppenheim-Glodflam-Syndrom 148
Ersttrimester-Screening 168
Erythema infectiosum (Parvovirus B19) 57
Erythema migrans 14
Erythromycin (Pharmakogenetik) 112
Erythropoietin 163
Erythroviren (Parvoviren) 57
Erythrozyten, fetale im mütterlichen Blut 123
Escitalopram (Pharmakogenetik) 112
Esomeprazol (Pharmakogenetik) 118
Esterasefärbung im Blut 182
Estradiol (Pharmakogenetik) 115
Estriol 163
Etanercept (Pharmakogenetik) 119
EtG (Ethylgluc.) im Urin (Bestätigung) 231
EtG (Ethylgluc.) im Urin (Screening) 230
Ethinylestradiol (Pharmakogenetik) 115
Ethosuximid 212
Ethylglucuronid im Urin (Bestätigung) 231
Ethylglucuronid im Urin (Screening) 230
Etoposide (Pharmakogenetik) 117
Everolimus (Pharmakogenetik) 115
Exanthema subitum (HHV6) 42
Exantheme (DD) 85
Exantheme, lokalisiert (DD) 86
extrahierb. nukleäre Ag (ENA), AAK gg. 132
Extremitätenfehlbildungen (DD) 91
F-Zellen 123
Fadenwürmer 253
Faktor IX 176
Faktor VIII 175
Faktor Xa-Aktivität, Anti- 176
Faktor-II-Mutationsanalyse 104
Faktor-V-Mutation Typ Leiden 104
Faktor-VIII-Ristocetin-Cofaktor 175
Faktoren, weitere (Gerinnung) 176
IX
Stichwortverzeichnis
Familiär defektes Apolipoprotein B-100 100
Familiäres Mittelmeerfieber 101
Fasciola hepatica 252
Fehlbildungen (DD) 91
Feigwarzen 54
Felbamat 213
Ferritin 180
Ferritinindex 180
fetale Erythrozyten im mütterlichen Blut 123
Fette im Stuhl 227
Fexofenadin (Pharmakogenetik) 114
FHA-AK 13
Fibrinogen 174
Fievre boutonneuse (Rickettsien) 61
Filarien 253
Filarien-AK 253
FK 506 (Tacrolimus) 217
Flecainid (Pharmakogenetik) 111
Fleckfieber (Rickettsien) 61
Flucloxacillin (Pharmakogenetik) 112
Flunarizin (Pharmakogenetik) 119
Flunitrazepam (Pharmakogenetik) 118
Fluoxetin (Pharmakogenetik) 112
Flupentixol (Pharmakogenetik) 116
Fluphenazin (Pharmakogenetik) 116
Flurbiprofen (Pharmakogenetik) 117
Flussblindheit 253
Flutamid (Pharmakogenetik) 117
Fluvastatin (Pharmakogenetik) 118
Fluvoxamin (Pharmakogenetik) 112
FMF (Familiäres Mittelmeerfieber) 101
Folat 204
Folsäure 204
Francisella tularensis 30
freie Granulozyten-Antikörper 132
freie Kappa-Leichtketten i. S. 196
freie Lambda-Leichtketten i. S. 197
freie Leichtketten (BJP) im Urin 221
freies Aldosteron im Urin 160
freies Carnitin im Serum 189
freies Hämoglobin im Serum 182
Fructose im Seminalplasma 172
Fructose-Intoleranz 101
Frühsommer-Meningoenzephalitis 30
FSH (Follikel-stimulierendes Hormon) 163
FSH-Rezeptor 108
FSME (Frühsommer-Meningoenzephal.) 30
fT3 169
fT4 169
FTA-ABS (Syphilis) 65
Fuchsbandwurm (E. multilocularis) 251
G6PDH (Glucose-6-Phopshat-Dehyd.) 180
Gabapentin 213
GAD-65-AAK (GADA) 133
GADA (Glutamat-Decarbox.-AAK) 133
Galaktomannan-Test 11
Galantamin (Pharmakogenetik) 119
Gallensäuren im Serum 190
gamma-GT 190
Gamma-Trace-Protein (Cystatin C) 190
Ganciclovir 213
X
Gangliosid-AAK 132
Gasser-Syndrom 26
Gastrin 163
Gastritis, atrophische (Autoantikörper) 146
Gastroenteritis (DD) 81
GB-Virus C 31
GBM-AAK (Glomerul. Basalmemb.-AAK) 133
Gehörgangsabstrich (Mikrobiologie) 242
Gelenkinfektionen (Mikrobiologie) 245
Gelenkpunktat (klinische Chemie) 194
Gelenkpunktat (Mikrobiologie) 245
Genitalherpes (HSV 2) 39
Genitalinfektionen (Mikrobiologie) 243
Gentamicin 213
Gerinnungsfaktor IX 176
Gerinnungsfaktor VIII 175
Gerinnungsfaktor-Xa-Aktivität, Anti- 176
Gerinnungsfaktoren, weitere 176
Gesamt-IgE im Serum 201
Gesamt-Triglyceride 194
Gesamtbilirubin 189
Gesamteiweiß im Serum 196
Gesamteiweiß im Urin 221
Gesamthämolyt. Kompl.-Akt. (CH100) 125
Gesamtproteine im Urin 221
Geschirrspülmaschinen (Hygiene) 263
Gestationsdiabetes 101
Gestose (HELLP) 77
Gewebstransglutaminase-AAK 142 142
GGT 190
Giardia lamblia 254
Giardiasis 254
Gilbert-Syndrom 103
Glaskörperpunktat (Mikrobiologie) 245
Glatte Muskulatur-AAK (SMA) 133
GLDH 190
Gliadin-AK im Serum 133
Glibenclamid (Pharmakogenetik) 113
Gliclazid (Pharmakogenetik) 113
Glimepirid (Pharmakogenetik) 113
Glipizid (Pharmakogenetik) 113
Glomerul.-Basalmemb.-AAK (GBM-AK) 133
Glucagon 163
Glucose 200
Glucose im Urin 222
Glucose-6-Phosphat-Dehyd. (G6PDH) 180
Glukagon 163
Glukose 200
Glutamat-Decarboxylase-AAK (GADA) 133
Glutensens. Enteropathie (Antikörper) 152
Glyburid (Pharmakogenetik) 113
Glykoprotein-1-AAK, beta-2- 130
GnRH-Test 157
Goldflam-Syndrom (Myasthenie) 148
Gonokokken 31
Gonorrhoe 244
GOT (AST) 190
GPT (ALT) 191
Granulozyten-AAK, perinukl. (p-ANCA) 137
Granulozyten-AAK, zytopl. (c-ANCA) 130
Granulozyten-AK, freie 132
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Granulozytenfunktionstest 121
Grippe (Influenza) 46
Großer Leberegel 252
Großes Blutbild 179
Gruber-Widal 64
Gürtelrose 70
Guillain-Barré-Syndrom 147
H+/K+-ATPase-AAK 137
habituelle Aborte 78
Hämochromatose 101
Hämodialyseflüssigkeiten (Hygiene) 264
Hämoglob.-Haptoglob.-Komplex im Stuhl 226
Hämoglobin 179
Hämoglobin im Stuhl 226
Hämoglobin, frei im Serum 182
Hämoglobin-Elektrophorese 181
Hämoglobinstrukturvarianten
(Molekulargenetik) 101
Hämolytisch-urämisches Syndrom 26
Haemophilus influenzae Typ b 32
Haloperidol (Pharmakogenetik) 116
Ham-Test (PNH-Diagnostik) 122
Hand-Fuß-Mund-Krankheit 26
Hantaan-Virus 32
Hantaviren 32
Haptoglobin 181
Harnsäure im Serum 191
Harnsäure im Urin 222
Harnsediment 225
Harnstein-Analyse 222
Harnstoff im Serum 191
Harnstoff im Urin 222
Harnwegsinfektionen (Mikrobiologie) 240
Hasenpest (Tularämie) 30
Hashimoto-Thyreoiditis 151
Hautabstrich (Mikrobiologie) 239
HAV (Hepatitis A) 35
Hb, frei im Serum 182
Hb-Elektrophorese 181
HbA1c-Fraktion 200
HBDH, alpha- 191
HbF-Zellen 123
HBsAg 35 36
HBV (Hepatitis B) 35
hCG (humanes Chorion-Gonadotropin) 162
hCG (Tumormarker) 206
HCV (Hepatitis C) 37
HDL-Cholesterin 191
HDV (Hepatitis D) 38
Helferzellen 122
Helicobacter pylori 34 246
HELLP-Syndrom 77
Heparin-ind. Thrombopenie Typ II (HIT II) 185
Hepatitiden, infektiös (DD) 82
Hepatitis A 35
Hepatitis B 35
Hepatitis C 37
Hepatitis D 38
Hepatitis E 38
Hepatitis G (GB-Virus C) 31
Hepatitis, neonatal (DD) 93
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
hereditäres angioneurotisches Ödem 126
hereditäres Quincke-Ödem (C1-Inhib.) 126
Herpangina Zahorsky (Coxsackie-Viren) 26
Herpes gestationis 147
Herpes zoster (VZV) 70
Herpes-gestationis-Faktor 133
Herpes-simplex-Virus 1/2 (HSV 1/2) 39
Herzmuskel-AAK 134
HEV (Hepatitis E) 38
Hexobarbital (Pharmakogenetik) 116
hGH (human Growth Hormon, STH) 171
HHV6 (Humanes Herpes-Virus Typ 6) 42
HHV7 (Humanes Herpes-Virus Typ 7) 42
HHV8 (Humanes Herpes-Virus Typ 8) 43
Hib (Haemophilus influenzae Typ b) 32
HIES (Hydroxy-Indol-Essigsäure) 166
HIPA-Test (HIT II) 185
Histidyl-tRNA-Synthetase-AAK 135
Histone-AAK 134
HITA-Test (HIT II) 185
HIV 43
HLA Klasse I-Antigene (A,B,C) 102
HLA Klasse II-Antigene (DR, DQ) 102
HLA-A*31:01 108
HLA-B*27 124
HLA-B*27 (PCR) 102
HLA-B*51 103
HLA-B*57:01 108
HLA-DQ2/DQ8 105
HLA-DQB1 108
HLA-DQB1*06:02 103
HMPV (Metapneumovirus) 45
HNO-Infektionen (Mikrobiologie) 242
hochsensitives CRP 127
Holo-TC 203
Holotranscobalamin 203
Homocystein 177
Homovanillinsäure im Urin (HVA) 166
Hormone (Pharmakogenetik) 115
hPLAP 208
HPV (humane Papilloma-Viren) 54
hsCRP (hochsensitives CRP) 127
HSV 1/2 (Herpes-simplex-Virus 1/2) 39
HSV Typ 1/2-IgG-AK 40 40
HSV-IgG-Immunoblot 39
HTC 203
hTG 170
HTLV 1/2 (Humane T-Zell-Leukämie-V.) 41
Hu-AAK 134
Human Placental Alkaline Phosphatase 208
Humane Papilloma Viren (HPV) 54
Humane T-Zell-Leukämie-V. 1/2 (HTLV) 41
Humanes Bocavirus 41
Humanes Chorion-Gonadotr. (beta-hCG) 162
Humanes Chorion-Gonadotr. (TM) 206
Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV6) 42
Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV7) 42
Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV8) 43
Humanes Immundefiz. Virus (HIV) 43
Humanes Metapneumovirus (HMPV) 45
Humanes Parechovirus 56
XI
Stichwortverzeichnis
Hundebandwurm (E. granulosus) 251
Hundespulwurm (Toxocara canis) 260
HUS (Hämolyt.-uräm. Syndrom) 26
HVA im Urin (Homovanillinsäure) 166
HVS im Urin (Homovanillinsäure) 166
Hydralazin (Pharmakogenetik) 114
Hydrocodon (Pharmakogenetik) 111
Hydrocortison (Pharmakogenetik) 115
Hydroxy-Indol-Essigsäure (5-HIES) 166
Hydroxyprogesteron 167
Hydroxyprogesteron, 17-alpha- 167
Hydroxyzin (Pharmakogenetik) 114
Hyperbilirubinämie 103
Hypercholesterinämie 100
Hyperhomocysteinämie 109
Hyperlipoproteinämie (Typ III) 100
IA2-Autoantikörper 142
IAA (Insulin-AAK) 134
IAT (indirekter Antiglobulintest) 183
Ibuprofen (Pharmakogenetik) 117
ICA (Inselzell-AAK) 134
Idiopatische membranöse GN 147
IFE (Immunfixationselpho im Serum) 196
IgA im Serum 125
IgA im Stuhl 227
IgA, sekretorisch 125
IgE im Serum, gesamt 201
IgE-RAST 201
IGeL (Abrechnung) 5
IGeL in Schwangerschaft 75
IGF-1 (Insulin-like Growth Factor 1) 164
IGF-BP3 164
IgG im Serum 125
IgG im Urin 222
IgG-Subklassen 125
IgM im Serum 125
IGRA 248
IL-2R (löslicher Interleukin-2-Rezeptor) 127
IL-6 (Interleukin 6) 127
IL28B 108
Imatinib (Pharmakogenetik) 117
Imipramin 213
Imipramin (Pharmakogenetik) 112
Immunfixationselektrophorese im Serum 196
Immunglobulin A im Serum 125
Immunglobulin A im Stuhl 227
Immunglobulin A, sekretorisch (scIgA) 125
Immunglobulin E im Serum 201
Immunglobulin G im Serum 125
Immunglobulin G im Urin 222
Immunglobulin M im Serum 125
Immunglobulin-G-Subklassen 125
Immunglobuline 125
Immunhyperthyreose 148
Immunstatus, zellulärer 122
Immunstatusbestimmung 45
Immunsuppressiva (Pharmakogenetik) 115
Impferfolgskontrolle 45
Indinavir (Pharmakogenetik) 119
Indometacin (Pharmakogenetik) 117
Indoramin (Pharmakogenetik) 114
XII
Infektionen, pränatale 76
Influenza-Viren 46
INH (Isoniazid) 213
Inhibin B 164
INR (International Normalized Ratio) 174
Inselzell-AAK (ICA) 134
Insulin 164
Insulin-Auto-AK (IAA) 134
Insulin-like Growth Factor 1 (IGF-1) 164
Insulin-Rezeptor-AAK 134
Insulinom-Abklärung 157
Insulinresistenz-Index (HOMA) 164
Intaktes Proinsulin 167
Integriertes Screening auf Trisomie 21 169
Interferon-gamma-release Assay (IGRA) 248
Interleukin 1A 103
Interleukin 1B 103
Interleukin 28B 108
Interleukin 6 127
Interleukin-1-Rezeptorantagonist 103
Interleukin-2-Rezeptor, löslicher 127
Interzellularsubstanz-AAK 138
Intraoperativer Abstrich (Mikrobiologie) 240
Intrinsic-Faktor-AAK 135
Iod 202
IP-10 109
Irbesartan (Pharmakogenetik) 114
Irinotecan (Pharmakogenetik) 117
Isoelektrische Fokussierung, Liquor 198
Isoenzyme der Amylase 188
Isoenzyme der AP 188
Isoenzyme der CK 186
Isoenzyme der LDH 192
Isoniazid 213
Isoniazid (Pharmakogenetik) 112
Itraconazol 214
Itraconazol (Pharmakogenetik) 115
JC-Virus (Polyomaviren) 59
JCA 147
JIA 147
Jo-1-AAK 135
Jod 202
Juvenile idiopathische Arthritis 147
Kälteagglutinine 184
Kala Azar (Leishmaniose) 255
Kalium im Serum 191
Kalium im Urin 222
Kaposi-Sarkom (HHV8) 43
Kappa-Leichtketten 196
Karyotypisierung 79
Katecholamine im Plasma 166
Katecholamine im Urin 165
Katzenkratzkrankheit 11
KCE (Keratokonjunktivitis epid.) 9
Keratokonjunktivitis epid. (Adenoviren) 9
Keuchhusten 13
Kinderlähmung (Poliomyelitis) 58
Kleihauer-Bethke-Test 123
kleines Blutbild 179
knochenspezifische AP 205
Kochsalzausscheidung im Urin 222
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Koffein (Pharmakogenetik) 112
Kokain im Serum (Bestätigung) 234
Kokain im Serum (Screening) 233
Kokain im Urin (Bestätigung) 231
Kokain im Urin (Screening) 230
Kokainmetabolit im Serum (Bestätigung) 234
Kokainmetabolit im Serum (Screening) 233
Kokainmetabolit im Urin (Bestätigung) 231
Kokainmetabolit im Urin (Screening) 230
Komplementaktivität, gesamth. (CH100) 125
Komplementsystem 125
Konjunktivalabstrich (Mikrobiologie) 244
Konjunktivitis, neonatal (DD) 92
Kreatinin im Serum 192
Kreatinin im Urin 225
Kreatinin-Clearance 223
Kreuzprobe 184
Krupp 21
Kryofibrinogen 196
Kryoglobuline 197
Kryptosporidien 254
KU-Antigen-AAK 135
Kupfer im Serum 202
Kupfer im Urin 202
LA (Lupus-Antikoagulans) 177
La/SSB-AAK 141
Labetalol (Pharmakogenetik) 114
Lactat im Plasma 192
Lactat-Dehydrogenase (LDH) 192
Lactoferrin im Stuhl 226
Lactose-Intoleranz Mutationsanalyse 102
Lactose-Toleranz-Test 157
Laktat im Plasma 192
Lambda-Leichtketten im Serum 197
Lambert-Eaton-Syndrom 147
Lambliasis 254
Lamivudin (Pharmakogenetik) 119
Lamotrigin 214
Lansoprazol (Pharmakogenetik) 118
Lapatinib (Pharmakogenetik) 117
LC1-AAK 135
LCM-Virus 49
LDH (Lactat-Dehydrogenase) 192
LDH-Isoenzyme 192
LDL-Cholesterin 192
Leber-Nieren-Mikrosomen-AAK 135
Lebercytosol-Antigen-1-AAK 135
Leberegel, großer 252
Legionärskrankheit 47
Legionellen 47
Legionellen im Wasser (Hygiene) 262
Legionellen-Antigen im Urin 238
Leichtketten, freie (BJP) im Urin 221
Leichtketten, Typ Kappa i. S. 196
Leichtketten, Typ Lambda i. S. 197
Leiden-Mutation (Faktor V) 104
Leishmaniose 255
Leitlinie der DVV/RKI 267
Leptospirose 48
Leukämie-/Lymphomtypisierung 122
Leukozyten-Phosphatase, alk. (ALP) 182
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Levetiracetam 214
Levomepromazin (Pharmakogenetik) 116
Levuzidie-Prüfung 267
Leydig-Zellen-AAK 141
LH (luteinisierendes Hormon) 167
LH-RH-Test 157
LH/FSH-Stimulationstest 157
Lidocain (Pharmakogenetik) 116
Lipase 192
Lipid-Elektrophorese 193
Lipoprotein (a) 193
Lipoprotein-Elektrophorese 193
Liquorkultur (Mikrobiologie) 237
Listerien 48
Lithium 214
LKM-AAK (Leber-Nieren-Mikros.-AAK) 135
Loa loa 253
löslicher Interleukin-2-Rezeptor (sIL2-R) 127
Löslicher Transferrin-Rezeptor 202
Loratadin (Pharmakogenetik) 114
Lorazepam 214
Lornoxicam (Pharmakogenetik) 117
Losartan (Pharmakogenetik) 114
Lovastatin (Pharmakogenetik) 118
Lp (a) (Lipoprotein a) 193
LSD im Serum (Bestätigung) 235
LSD im Urin (Bestätigung) 231
LSD im Urin (Screening) 230
LTT (Lactose-Toleranz-Test) 157
Lues 64
Lupus-Antikoagulans 177
Lupus-Inhibitoren (Lupus-Antikoagulans) 177
luteinisierendes Hormon 167
Lyme Disease 14
Lymphadenitis (DD) 86
Lymphadenopathie-Syndrom (DD) 87
Lymphogranuloma inguinale/venereum 19
Lymphozyt. Choriomeningitis-Virus 49
Lymphozytendifferenzierung 121
Lymphozytenfunktionen 123
Lymphozytenproliferation 123
Lyssa (Tollwut) 66
M. Addison 147
M. Bang (Brucellose) 15
M. Basedow 148
M. Bechterew 102 124
M. Behcet 103
M. Bornholm 26
M. Crohn (Autoantikörper) 148
M. Meulengracht 103
M. Pfeiffer (EBV) 28
M. Wegener (Vaskulitis) 152
M. Weil (Leptospirose) 48
M. Whipple 70
Ma2-AAK (Ta-AAK) 141
Magnesium im Serum 193
Magnesium im Urin 223
Magnesium, intraerythrozytär 193
MAK (TPO-AK) 142
Makro-CK 193
Malaria 256
XIII
Stichwortverzeichnis
Malaria-Diagnostik 256
Maltafieber (Brucellose) 15
Maprotilin (Pharmakogenetik) 112
Masern 50
Mastzell-Tryptase 201
Material für den Antikörpersuchtest 4
Material für die Blutgruppenbestimmung 4
Material für Immunzytologie 5
Material für Mikrobiologie 5
Material für NAT 5
Material für Serologie, MuVo 4
Material für Virusnachweis 4
MDR1 109
Medikamenten-ind. Immunhämolyse 185
MEFV (Familiäres Mittelmeerfieber) 101
Meloxicam (Pharmakogenetik) 117
Meningitis (DD) 83
Meningitis, neonatal (DD) 92
Meningokokken 51
Mephenytoin (Pharmakogenetik) 113
Mephobarbital (Pharmakogenetik) 113
Messunsicherheit 6
Mesuximid (N-Desmethylmesuximid) 214
Metamphetamin (Pharmakogenetik) 119
Metanephrine im Plasma 165
Metanephrine im Urin 167
Metapneumovirus 45
Methadon (Pharmakogenetik) 119
Methadon im Serum (Bestätigung) 235
Methadon im Serum (Screening) 233
Methadon im Urin (Bestätigung) 231
Methadon im Urin (Screening) 230
Methämoglobin 179
Methotrexat (Pharmakogenetik) 117
Methsuximid 214
Methylentetrahydrofolat-Dehydrogenase 109
Methylentetrahydrofolat-Reduktase 104 109
Methylphenidat 214
Methylphenidat (Pharmakogenetik) 119
Methylphenobarbital (Pharmakogenetik) 113
Metoclopramid (Pharmakogenetik) 113
Metoprolol (Pharmakogenetik) 114
Mexiletin (Pharmakogenetik) 111
MGT-30 (Titin)-AAK 136
Mi-2-Autoantikörper 136
Mianserin (Pharmakogenetik) 112
Midazolam 215
Midazolam (Pharmaogenetik) 118
Mikroangiopathie, thrombotische 26
Mikroglobulin, beta-2 206
Mikroglobulin, ß2 im Urin 220
Mikroskopische Polyangiitis (Vaskulitis) 152
Mikrosomale SD-AK (TPO-AK) 142
Mikrozephalie (DD) 91
Miller-Fischer-Syndrom 147
Minaprin (Pharmakogenetik) 112
Mirtazapin (Pharmakogenetik) 112
Mischkollagenose (Autoantikörper) 147
Missbildungen (DD) 91
Mitochondriale AAK (AMA) 129
Mittelmeerfleckfieber (Rickettsien) 61
XIV
Moclobemid (Pharmakogenetik) 112
Modafinil (Pharmakogenetik) 119
MODY2 101
Montelukast (Pharmakogenetik) 112
Morbus Addison 147
Morbus Bang (Brucellose) 15
Morbus Basedow 148
Morbus Bechterew 102 124
Morbus Behcet 103
Morbus Bornholm 26
Morbus Crohn (Autoantikörper) 148
Morbus Meulengracht 103
Morbus Pfeiffer (EBV) 28
Morbus Whipple 70
Morphin (Pharmakogenetik) 111
Morphin/Opiate (Bestätigung) 235
Morphin/Opiate im Serum (Screening) 234
Morphin/Opiate im Urin (Bestätigung) 232
Morphin/Opiate im Urin (Screening) 230
MPO-AAK (Myeloperoxidase-AAK) 136
MPU-Screening 229
MRSA-DNA 263
MTHFD-Mutationsanalyse 109
MTHFR-Mutationsanalyse 104 109
Müdigkeitssyndrom (DD) 88
Mukoviszidose 105
Multi-Drug-Resistance 1 109
Multifokale Motorneuropathie 148
Mumps 51
Murines Fleckfieber (Rickettsien) 61
MuSK-AAK 138
Muskelrelaxantien (Pharmakogenetik) 116
Muskelspezifische Tyrosinkinase-AAK 138
Mutterschaftsvorsorge 75
MuVo (Mutterschaftsvorsorge) 75
Myasthenia gravis (Autoantikörper) 148
Mycoplasma genitalium 52
Mycoplasma hominis 52
Mycoplasma pneumoniae 53
Myelin assoz. Glycoprotein-AAK 136
Myeloperoxidase in Granulozyten 182
Myeloperoxidase-AAK (MPO-AAK) 136
Mykobakterien-Diagnostik 247
Mykoplasmen (Mikrobiologie) 244
Myoglobin im Serum 193
Myoglobin im Urin 223
Myokarditis (DD) 85
Myokarditis, neonatal (DD) 92
Myositis (DD) 90
N-Acetyltransferase 2 109
Nachweis parodontopathogener Erreger 243
Naples-Virus (Sandfly Fever) 64
Naproxen (Pharmakogenetik) 117
Narkolepsie 103
Narkotika (Pharmakogenetik) 116
Nasennebenhöhlen (Mikrobiologie) 242
NAT2 (N-Acetyltransferase 2) 109
Nateglinid (Pharmakogenetik) 113
Natrium im Serum 193
Natrium im Urin 223
Nebennierenrinden-AAK 136
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Nebenschilddrüsen-AAK 137
Nebivolol (Pharmakogenetik) 114
Necator americanus (Hakenwurm) 257
Nefazodon (Pharmakogenetik) 112
Neisseria gonorrhoeae 31
Neisseria meningitidis 51
Nelfinavir (Pharmakogenetik) 119
Nematoden 253 257
Nematoden-AK IFT 253
Neopterin 127
Nephropathia epidemica 32
Neuroborreliose 14
Neuroleptika (Pharmakogenetik) 116
Neuronenkerne-AAK (Hu) 134
Neuronenkerne-AAK (Ri) 139
Neuronspezifische Enolase (NSE) 208
Neutralisationsteste 54
Neutrophilen-AAK, zytoplasm. (c-ANCA) 130
Nevirapin (Pharmakogenetik) 119
NH3 im Plasma 187
Nicardipin (Pharmakogenetik) 114
Nicht-steroidale Antirheumatika
(Pharmakogen.) 117
Nierenstein-Analyse 222
Nierenversagen (DD) 88
Nikotin-Metabolit im Urin 232
Nilotinib (Pharmakogenetik) 117
Nilutamid (Pharmakogenetik) 117
Nitrazepam (Pharmakogenetik) 118
NL63-Coronavirus 21
NMP 22 (Nukleäres Matrix-Protein 22) 208
NNR-AAK (Nebennierenrinden-AAK) 136
Noradrenalin im Plasma 166
Noradrenalin im Urin 165
Norbuprenorphin im Serum (Bestätigung) 235
Norbuprenorphin im Urin (Bestätigung) 231
Norclobazam (Pharmakogenetik) 118
Norclomipramin (Pharmakogenetik) 112
Norclozapin (Pharmakogenetik) 116
Nordiazepam (Pharmakogenetik) 118
Nordoxepin (Pharmakogenetik) 112
Norfluoxetin (Pharmakogenetik) 112
Normbereiche 6
Normetanephrin im Urin 165
Noroviren 54
Nortilidin im Serum (Bestätigung) 235
Nortilidin im Urin (Bestätigung) 232
Nortriptylin (Pharmakogenetik) 112
Norwalk-like-Virus 54
Norzolpidem im Serum (Bestätigung) 235
Norzolpidem im Urin (Bestätigung) 232
Norzopiclon im Serum (Bestätigung) 236
Norzopiclon im Urin (Bestätigung) 232
NSAR (Pharmakogenetik) 117
NSE (Neuronspezifische Enolase) 208
nt-pro-BNP 186
NT-Screening 168
Nukleäres Matrix-Protein 22 (NMP 22) 208
Nukleosomen-AAK 137
Östradiol 163
Östriol 163
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Östron 163
oGTT (oraler Glucose-Toleranz-Test) 158
OH-Progesteron, 17- 167
okkultes Blut im Stuhl 226
Olanzapin 215
Olanzapin (Pharmakogenetik) 116
Oligoklonale Banden im Liquor 198
Omeprazol (Pharmakogenetik) 118
Onchocerca volvolus 253
Ondansetron (Pharmakogenetik) 113
Onkologie (Pharmakogenetik) 117
Opiate im Serum (Bestätigung) 235
Opiate im Serum (Screening) 234
Opiate im Urin (Bestätigung) 232
Opiate im Urin (Screening) 230
Opipramol (Pharmakogenetik) 112
oraler Glucose-Toleranz-Test (oGTT) 158
Orchitis (DD) 90
Orient-Beule (Leishmaniose) 255
Ornithose (Cp. psittaci) 18
Osmolalität im Serum 194
Osmolalität im Urin 223
Osmotische Resistenz 180
Ostase 205
Oxalsäure im Urin 223
Oxazepam 215
Oxcarbazepin 215
Oxcarbazepin (Pharmakogenetik) 113
Oxycodon (Pharmakogenetik) 111
p-ANCA 137
P-Glykoprotein 109
p24-Antigen (HIV) 44
Paclitaxel (Pharmakogenetik) 117
PAI-1 110
PAI-1-Polymorphismus 104
Panarteriitis nodosa (Autoantikörper) 148
Pankreas-Acinusepithel-AAK 137
Pankreatische Elastase 1 im Serum 194
Pankreatische Elastase 1 im Stuhl 227
Pankreatitis, infektiös (DD) 90
Pantoprazol (Pharmakogenetik) 118
Papageienkrankheit (Cp. psittaci) 18
Papilloma-Viren, humane (HPV) 54
PAPP-A 168
Pappataci-Fieber 64
Paracetamol 215
Paracetamol (Pharmakogenetik) 111
Parainfluenza-Viren 55
Paraneoplastische Syndrome 148
Paraoxonase 1 109
Parapertussis 12
Parathormon, intakt (PTH) 167
Parathormon-related Protein (PTHrP) 209
Parechoviren 56
Paresen infektiöser Genese (DD) 84
Parietalzellen-AAK 137
Parodontitis 103 243
Parodontitis-Risiko 103
Parotitis epidemica (Mumps) 51
Parotitis, infektiös (DD) 90
Paroxetin (Pharmakogenetik) 112
XV
Stichwortverzeichnis
Paroxys. nächtl. Hämoglobinurie (PNH) 122
Paroxysmale Kältehämoglobinurie 184
partielle Thromboplastinzeit (PTT) 174
Parvovirus B19 57
PAS-Färbung im Blut 182
PBC (Autoantikörper) 149
PCA-1 (Yo-AAK) 143
PCT (Procalcitonin) 128
PE 1 (Pankr. Elastase 1) im Stuhl 227
pegINF-alpha (Pharmakogenetik) 119
Pemphigoid-AAK 137
Pemphigoid-gestationis-AAK 133
Pemphigus foliaceus 149
Pemphigus vulgaris (Autoantikörper) 149
Pemphigus-AAK 138
Penbutolol (Pharmakogenetik) 114
Penis-/Vulva-Läsionen (DD) 88
Perazin (Pharmakogenetik) 116
Periprothet. Infektion (Mikrobiologie) 245
Perphenazin (Pharmakogenetik) 116
Pertussis (Keuchhusten) 13
Pertussis-Toxin-AK 13
Pfeiffersches Drüsenfieber (EBV) 28
Pharmakogenetische Diagnostik 111
Pharyngitis (DD) 80
Phenacetin (Pharmakogenetik) 111
Phencyclidin im Serum (Bestätigung) 235
Phencyclidin im Serum (Screening) 234
Phencyclidin im Urin (Bestätigung) 232
Phencyclidin im Urin (Screening) 230
Phenformin (Pharmakogenetik) 113
Phenobarbital 215
Phenobarbital (Pharmakogenetik) 113
Phenprocoumon (Pharmakogenetik) 115
Phenytoin 215
Phenytoin (Pharmakogenetik) 113
Philadelphia-Chr. (molekulargen.) 101
Phosphat im Serum 194
Phosphat im Urin 224
Phosphatase, alkalische (AP) 188
Phosphatase, alkalische, Isoenzyme 188
Phospholipid-Autoantikörper 138
Phospolipase A2-Rezeptor-AAK 138
Phyllochinone 204
Pilze (Nukleinsäurediagnostik) 98
Pilze im Stuhl (Mikrobiologie) 241
Pilzinfektionen der Haut (Mikrobiologie) 249
Pimozid (Pharmakogenetik) 116
Pindolol (Pharmakogenetik) 114
Piroxicam (Pharmakogenetik) 117
Placental Growth Factor (PlGF) 167
PLAP 208
Plasmathrombinzeit (PTZ) 174
Plasminogen-Akt.-Inhib.Polymorph. 104
Plasmodien 256
Plazenta-Isoenzym der AP 208
Pleurodynie (DD) 90
PlGF 167
PM-Scl-AAK 138
PML (progr. multifok. Leukenzephalop.) 59
PMN-Elastase im Stuhl 226
XVI
Pneumocystis carinii (P. jiroveci) 58
Pneumocystis jiroveci 58
Pneumokokken 58
Pneumonie (DD) 81
Pneumonie, neonatal (DD) 92
PNH-Diagnostik 122
PNS 148
Poliomyelitis 58
Poly-/Dermatomyositis (Auto-AK) 149
Polyagglutinabilität 185
Polyneuropathie 146
Polyomaviren 59
Polyradikulitis (DD) 84
PON1 109
Porphobilinogen 224
Porphyrie-Diagnostik 224
Porphyrine im Urin, gesamt 224
Porphyrine, Differenzierung 224
Posaconazol (Pharmakogenetik) 115
Post-partum-Thyreoiditis 149
pp65-Antigen 23
Präeklampsie 77
Pränatale Diagnostik 76
pränatale Infektionen 76
Prajmalin (Pharmakogenetik) 111
Prazepam (Pharmakogenetik) 118
Pregabalin 216
Pregnancy-associated Plasma Protein A 168
Primär skleros. Cholangitis (Auto-AK) 149
Primäre biliäre Zirrhose (Autoantikörper) 149
Primidon 216
Primidon (Pharmakogenetik) 113
Probenkennzeichnung 4
Probentransport 5
Procainamid (Pharmakogenetik) 111
Procalcitonin 128
Progesteron 167
Progesteron (Pharmakogenetik) 115
Progesteron, 17-OH- 167
Progressive syst. Sklerose (Auto-AK) 150
Proguanil (Pharmakogenetik) 119
Proinsulin, intakt 167
Prolaktin 168
Promethazin (Pharmakogenetik) 114
Propafenon (Pharmakogenetik) 111
Propofol (Pharmakogenetik) 116
Propranolol (Pharmakogenetik) 114
Prostata-spezifisches Antigen (PSA) 208
Protein C-Aktivität 176
Protein C-Antigen 177
Protein S, Antigen gesamt 178
Protein S-100 209
Protein, Retinol-bindendes im Urin 225
Protein-Elektrophorese im Serum 197
Proteinase-3-(PR3)-AAK 138
Proteindifferenzierung im Urin 220
Proteine, gesamt im Urin 221
Prothrombin-Mutationsanalyse 104
Protonenpumpenhemmer (Pharmakog.) 118
Protozoen (Nukleinsäurediagnostik) 98
Protriptylin (Pharmakogenetik) 112
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
PSA (Prostata-spezifisches Antigen) 208
PSA im Seminalplasma 172
PSC (Auto-AK) 149
Pseudokrupp 32 55
Pseudomonas-aeruginosa-Antikörper 59
Psittakose (Chlamydophila psittaci) 18
PSS (Auto-AK) 150
PTH, intakt (Parathormon) 167
PTHrP (Parathormon-related Protein) 209
PTT (partielle Thromboplastinzeit) 174
PTZ (Plasmathrombinzeit) 174
PuCA-1-AAK 143
PuCA-2-AAK 142
Purkinjezellen (Tr)-AAK 142
Purkinjezellen-AAK 143
Pustelabstrich (Mikrobiologie) 240
Puumala-Virus 32
Pyridinoline im Urin 205
Pyridoxin 203
Pyrimethamin 216
Pyruvat 194
Q-Fieber 21
Quadruple-Test 168
Qualitätsmanagement 6
Quantiferontest 248
Quetiapin 216
Quetiapin (Pharmakogenetik) 116
Quick (TPZ) 174
Quincke-Ödem, hereditäres (C1-Inhib.) 126
Quinidin (Pharmakogenetik) 111
Rabeprazol (Pharmakogenetik) 118
Rabies (Tollwut) 66
Rachen-/Tonsillenabstrich (Mikrobiologie) 242
RAJI-Zelltest 144
Ranitidin (Pharmakogenetik) 114
Rapamycin (Sirolimus) 217
Rapid-progressive GN (Autoantikörper) 150
RAST (allergenspezifisches IgE) 201
RBP (Retinol-bindendes Protein) im Urin 225
Reiber-Schema (Blut-Liquor-Schranke) 198
Remoxiprid (Pharmakogenetik) 116
Renin 168
Resistenz d. Fakt.V g. akt. Prot.C (APCR) 177
Resistenz, osmotische 180
Respirationstraktinfekte (Mikrobiologie) 238
Respiratory Syncytial Virus (RSV) 60
Retikulozyten 180
Retinol 203
Retinol-bindendes Protein im Urin 225
Rezeptor-Tyrosinkinase-AAK 138
RF 144
Rh-Faktor (Rhesus-Faktor) 183
Rh-Formel (Rhesus-Formel) 183
Rh-Untergruppen 183
Rhesus D weak 104
Rhesus-Typisierung, genetisch 104
Rheumafaktor 144
rheumatische Erkrankungen 102
Rheumatoide Arthritis (Autoantikörper) 150
Rheumatoides Epitop 102
Rhinoviren 60
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Ri-AAK 139
Ribavirin (Pharmakogenetik) 119
Riboflavin 203
ribosomales P-Protein (Ribosomen-AAK) 139
Ribosomen-AAK 139
Rickettsien 61
Rifamp(ic)in (Pharmakogenetik) 112
Rifampicin 216
Riluzol (Pharmakogenetik) 119
Rinderbandwurm 259
Ringelröteln (Parvovirus B19) 57
Risperidon 216
Risperidon (Pharmakogenetik) 116
Ristocetin-Cofaktor 175
Ritonavir (Pharmakogenetik) 119
RNP-AAK 143
RNP70-AAK 139
Ro/SSA-AAK 141
Rocky-Mount.-Spotted Fever (Rickettsien) 61
Röteln 62
Ropivacain (Pharmakogenetik) 116
Rosuvastatin (Pharmakogenetik) 118
Rotaviren 61
RPR 65
RSV (Respiratory Syncytial Virus) 60
Rubella 62
S-100-Protein 209
SAA (Serum-Amyloid A) 128
Saccharomyces-cerevisiae-AK 139
Säure-Serum-Test (ersetzt d. PNH-Diag.) 122
Salmonellen 63
Salmonellen-AK 64
Sandfly Fever 64
Saquinavir (Pharmakogenetik) 119
SCC (Squamous Cell Carc.-assoc.-Ag) 209
Schilddrüsen-AAK 139
Schilddrüsen-Diagnostik 169
Schistosomen 258
Schnelldiagnostik 7
Schweinebandwurm 259
scIgA (Immunglob. A, sekr.) 125
Scl-70-AAK 140
SD-AK (Schilddrüsen-AAK) 139
Sediment, Urin 225
Selegilin (Pharmakogenetik) 119
Selen 202
Seoul-Virus 32
Sepsis (Mikrobiologie) 238
Sepsis, neonatal (DD) 91
Serotonin im Plasma 170
Sertindol (Pharmakogenetik) 116
Sertralin (Pharmakogenetik) 112
Serum-Amyloid A (SAA) 128
Serumeiweiß-Elektrophorese 197
Sexualhormon-bindendes Glob.(SHBG) 170
sFlt-1 170
sFlt-1/PlGF-Quotient 171
shared epitope 102
Sharp-Syndrom 147
SHBG (Sexualhormon-bindendes Glob.) 170
Shigellose 64
XVII
Stichwortverzeichnis
Sicca-Syndrom (Autoantikörper) 151
Sichelzellanämie (Hb-Elpho) 181
Sichelzelltest 181
Sicilian Virus (Sandfly Fever) 64
sIL2-R (löslicher Interleukin-2-Rezeptor) 127
Sildenafil (Pharmakogenetik) 119
Simvastatin (Pharmakogenetik) 118
Sin-nombre-Virus 32
Sirolimus (Pharmakogenetik) 115
Sirolimus (Rapamycin) 217
Sjögren-Syndrom (Autoantikörper) 151
Skelettmuskulatur-AAK 140
Sklerodermie (Auto-AK) 150
SLA (soluble-liver-Ag-AAK) 140
SLE (Autoantikörper) 151
Slow-Virus-Krankheiten 87
Sm-AAK 140
SMA (Glatte Muskulatur-AAK) 133
Soluble-liver-Ag (SLA-)-AK 140
Somatomedin C (IGF-1) 164
Somatotropes Hormon (STH) 171
Soordiagnostik (Mikrobiologie) 249
sp-100-AAK 140
Spartein (Pharmakogenetik) 111
Spermatozoen-AAK 140
Spermiogramm 172
Spondylitis ankylosans 102
Sporozidie-Prüfung 269
Sprue (Antikörper) 152
Sputum (Mikrobiologie) 239
Squamous Cell Carc.-assoc.-Ag (SCC) 209
ss-DNA-AAK 140
SSA-AAK 141
SSB-AAK 141
SSPE (Masern) 50
Stachelzell-Desmosomen-AAK 138
Statine (Pharmakogenetik) 118
Status, Urin 225
Stavudin (Pharmakogenetik) 119
Steinanalyse 222
Sterilisatoren (Hygieneuntersuchung) 263
Sterillösungen (Hygieneuntersuchung) 264
Steroidhormone (Pharmakogenetik) 115
sTfR (löslicher Transferrinrezeptor) 202
STH (Somatotropes Hormon) 171
STORCH 76
Streptokokken, beta-hämolysierende 243
Streptokokken-DNAse 144
Strongyloides stercoralis 257
Subakut skleros. Panenzephal. (Masern) 50
Subutex® im Serum (Bestätigung) 235
Subutex® im Urin (Bestätigung) 231
Subutex® im Urin (Screening) 229
Sulfadiazin 217
Sulfamethoxazol (Pharmakogenetik) 112
Sulfasalazin (Pharmakogenetik) 119
Sulfonamide (Pharmakogenetik) 112
Sultiam 217
Suprofen (Pharmakogenetik) 117
Synovialdiagnostik 194
Syphilis 64
XVIII
Syst. Lupus erythem. (Autoantikörper) 151
T-Helferzellen 122
T-SPOT.TB 248
T3, freies 169
T4, freies 169
Ta-AAK 141
Tacrin (Pharmakogenetik) 119
Tacrolimus 217
Tacrolimus (Pharmakogenetik) 115
Taenien 259
TAK (Thyreoglobulin-AAK) 141
Talinolol (Pharmakogenetik) 114
Tamoxifen (Pharmakogenetik) 117
Tamsulosin (Pharmakogenetik) 119
Tartrat-res. Saure Phosphat. 5b 205
Tau-Protein im Liquor 199
TB-Elispot 248
TBE (Tick-borne Encephalitis, FSME) 30
Teicoplanin 217
Temazepam 217
Temgesic® im Serum (Bestätigung) 235
Temgesic® im Urin (Bestätigung) 231
Temgesic® im Urin (Screening) 229
Teniposid (Pharmakogenetik) 117
Tenoxicam (Pharmakogenetik) 117
Terbinafin (Pharmakogenetik) 115
Testis, Leydig-Zellen-AAK 141
Testosteron 171
Testosteron (Pharmakogenetik) 115
Testosteron, freies 171
Tetanus 20
Tetrabenazin (Pharmakogenetik) 119
TG (Thyreoglobulin) 170
Thalassämie [beta] (Molekulargenetik) 101
Thalassämie-Abklärung (Hb-Elpho) 181
Theobromin (Pharmakogenetik) 112
Theophyllin 217
Theophyllin (Pharmakogenetik) 112
Thiamin 203
Thiopurin-Methyltransferase 110
Thioridazin (Pharmakogenetik) 116
Thrombinzeit 174
Thrombophiliediagnostik 176
Thromboplastinzeit (Quick, TPZ) 174
Thromboplastinzeit, partielle (PTT) 174
Thromboserisiko, Abklärung 176
Thrombozyten 175
Thrombozyten-AAK 141
Thrombozytenfunktionstest 175
Thrombozytenhemmer (Pharmakogen.) 115
Thrombozytopenie, autoimmune 151
Thyreoglobulin (TG) 170
Thyreoglobulin-AAK (TAK) 141
Thyreoiditis post partum 149
Thyreoiditis, chronisch lymphozytär 151
Thyreoperoxidase-AK 142
Thyroxin, freies 169
Tick-borne Encephalitis (FSME) 30
Ticlopidin (Pharmakogenetik) 115
Tilidin (Pharmakogenetik) 111
Tilidin im Serum (Bestätigung) 235
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Tilidin im Urin (Bestätigung) 232
Timolol (Pharmakogenetik) 114
Tiotropium (Pharmakogenetik) 119
Tissue Polypeptide Antigen (TPA) 209
Titin-AAK (MGT-30-AAK) 136
Tizanidin (Pharmakogenetik) 116
TNF alpha 104 110
TNFalpha-Genotyp 104
TNFalpha-Inhibitoren 110
Tobramycin 218
Tocopherol (Vitamin E) 204
Tolbutamid (Pharmakogenetik) 113
Tollwut 66
Tolterodin (Pharmakogenetik) 119
Topiramat 218
Topiramat (Pharmakogenetik) 113
Topoisomerase-I-AAK (Scl-70-AAK) 140
Torasemid (Pharmakogenetik) 114
TORCH 76
Toscana-Virus (Sandfly Fever) 64
Toxocara canis 260
Toxoplasmose 67
TPA (Tissue Polypeptide Antigen) 209
TPMT 110
TPO-AK 142
TPPA (Luessuchreaktion) 65
TPZ (Thromboplastinzeit, Quick) 174
Tr-AAK 142
Trachealsekret (Mikrobiologie) 239
Tracheobronchitis, Krupp (DD) 80
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) 142
Tramadol (Pharmakogenetik) 111
Tramadol im Serum (Bestätigung) 235
Tramadol im Urin (Bestätigung) 232
Tranquillantia (Pharmakogenetik) 118
Transferrin 180
Transferrin im Urin 225
Transferrin-Rezeptor, löslicher 202
Transferrinsättigung 181
Transglutaminase-AK 142 142
TRAP-5b 205
Trazodon (Pharmakogenetik) 112
Treponema pallidum 64
TRH-Test 158 169
Trichinella spiralis 260
Trichinose 260
Trichomonas vaginalis 261
Trichomonas vaginalis Abstrich/Kultur 261
Trichomoniasis 261
Trichuris trichura (Peitschenwurm) 258
Trifluperidol (Pharmakogenetik) 116
Triglyceride, gesamt 194
Trijodthyronin, freies 169
Trimipramin 218
Trimipramin (Pharmakogenetik) 112
Trinkwasser (Hygiene) 262
Triple-Test 168
Tripper (Gonorrhoe) 244
Trisomie-21-Risikoabschätzung 168
Tropheryma-whipplei-DNA 70
Tropisetron (Pharmakogenetik) 113
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Troponin T 186
TropT (Troponin T) 186
Tryptase 201
TSH nach Stimulation 169
TSH, basal 169
TSH-Rezeptor-AK (TRAK) 142
Tsutsugamushi-Fleckfieber (Rickettsien) 61
tTG 142 142
Tuberkulose (Diagnostik) 247
Tularämie (Hasenpest) 30
Tumornekrosefaktor alpha 104 110
Turner-Syndrom 79
TWAR (C. pneumoniae)$Chlamydia
pneumoniae 17
Typhus (Salmonellen) 63
Tyrosinphosphatase-AAK (IA2) 142
U1-RNP-AAK 143
U3-nRNP/Fibrillarin-AAK 143
UDP-Glucuronosyltransferase 1 103
uE3 (freies Estriol) 163
UGT1A1 103
Ullrich-Turner-Syndrom 79
Unteraufträge 6
Untersuchungsdauer (Bakteriologie) 237
uPA 110
Urapidil (Pharmakogenetik) 114
Ureaplasma urealyticum 70
Ureaplasmen (Mikrobiologie) 244
Uricult (Mikrobiologie) 240
Urin, nativ (Mikrobiologie) 240
Urinsediment 225
Urinstatus 225
Vaginalabstrich (Mikrobiologie) 244
Valproinsäure 218
Valproinsäure (Pharmakogenetik) 113
Vancomycin 218
Vanillinmandelsäure im Urin (VMA) 166
Varizella-Zoster-Virus (VZV) 70
Vaskulitis (Autoantikörper) 152
Vasopressin (ADH) 160
VDRL 65
Venlafaxin (Pharmakogenetik) 112
Verapamil (Pharmakogenetik) 111
Versand 5
Verträglichkeitsprobe 184
Vigabatrin 218
Vinblastin (Pharmakogenetik) 117
Vinca-Alkaloide (Pharmakogenetik) 117
Vincristin (Pharmakogenetik) 117
VIP (Vasoaktives Intestinales Polypeptid) 209
Viren (Nukleinsäurediagnostik) 95
Virostatika (Pharmakogenetik) 119
Viruslast, HBV 36
Viruslast, HCV 37
Viruslast, HIV 44
Viruzidie-Prüfung 268
Vitamin A 203
Vitamin B 1 203
Vitamin B 12 203
Vitamin B 2 203
Vitamin B 6 203
XIX
Vitamin C 204
Vitamin D, (25-OH) 204
Vitamin D, 1,25(OH)2 204
Vitamin E (alpha-Tocopherol) 204
Vitamin H (Biotin) 204
Vitamin K 204
Vitamin K-Epoxidreduktase 110
VKORC1 110
VMA im Urin (Vanillinmandelsäure) 166
VMS im Urin (Vanillinmandelsäure) 166
von-Willebrand-Faktor (VWF) 175
Voriconazol (Pharmakogenetik) 115
VWF (von-Willebrand-Faktor) 175
VZV (Varizella-Zoster-Virus) 70
Wachstumshormon (STH) 171
Wachstumshormon- (STH-) Stim.-Test 159
Warfarin (Pharmakogenetik) 115
Wasserproben (Hygieneuntersuchung) 262
Weak D 104
Weiterleitung 6
West-Nil-Virus 72
Whipple, Morbus 70
Willebrand-Faktor (VWF) 175
Windpocken (VZV) 70
WNV (West-Nile-Virus) 72
Wolhynisches Fieber 11
Wuchereria bancrofti 253
Würmer 253 257
Wundinfektionen (Mikrobiologie) 239
Wundstarrkrampf (Tetanus) 20
XTC/Ecstasy im Serum (Bestätigung) 234
XTC/Ecstasy im Serum (Screening) 233
XTC/Ecstasy im Urin (Bestätigung) 231
XTC/Ecstasy im Urin (Screening) 229
Xylose im Blut 195
Xylose im Urin 225
Xylose-Belastungstest 155
Yersiniosen 73
Yo-AAK 143
Zafirlukast (Pharmakogenetik) 112
Zahorsky-Krankheit (Coxsackie-Viren) 26
Zeckenfieber (Rickettsien) 61
Zeckenübertragene Erkrankungen 74
Zellkern-AAK (ANA) 129
Zentromere-AAK 143
Zervizitis, Vulvovaginitis (DD) 88
Ziegenpeter (Mumps) 51
Zink im Seminalplasma 173
Zink im Serum 202
Zirkulierende Immunkomplexe 144
ZNS-Infektionen (Mikrobiologie) 237
Zöliakie 105
Zöliakie (Antikörper) 152
Zolmitriptan (Pharmakogenetik) 119
Zolpidem (Pharmakogenetik) 118
Zolpidem im Serum (Bestätigung) 235
Zolpidem im Urin (Bestätigung) 232
Zonisamid 219
Zopiclon (Pharmakogenetik) 118
Zopiclon (therapeutisch) 219
Zopiclon im Serum (Bestätigung) 236
Zopiclon im Urin (Bestätigung) 232
Zoster (VZV) 70
Zotepin (Pharmakogenetik) 116
Zuclopentixol (Pharmakogenetik) 116
Zwergfadenwurm (S. stercoralis) 257
Zystische Fibrose 105
Zystitis, hämorrhagisch (DD) 88
Zystizerkose 259
Zytogenetik 79
Zytokinbildung der Lymphozyten 123
Allgemeines
Abkürzungen
Aggl
Ag
AAK
AAS
AK
BAL
CEDIA
CLIA
DNA/DNS
EA
ECL
ECLIA
EIA
ELA
Elispot
ELPHO
ENZ
(F)
FEIA
FTA-ABS
FPIA
GC
HAH (HHT)
HPLC
HYBR
IEF
IFT
IGeL
IHAT
ILMA
IRMA
ISAGA
ISE
LIA
LTT
MEIA
M-EIA
MS
NAT
NT
OMIM
PCR
RAST
RIA
RNA/RNS
RRA
SDA
SNP
Tm
Agglutination
Antigen
Autoantikörper
Atom-Absorptions-Spektrometrie
Antikörper
Bronchoalveoläre Lavage
Cloned Enzyme Donor Immuno Assay
Chemolumineszenz Immuno Assay
Desoxyribonukleinsäure
Early Antigen
Elektrochemolumineszenz
Elektrochemolumineszenz Immuno Assay
Enzyme Immuno Assay
Enzyme linked Antigen Assay
Enzyme Linked Immuno Spot Technique
Elektrophorese
enzymatische Bestimmung
Fremdleistung
Fluoreszenz-Enzym-Immuno-Assay
Fluoreszenz-Treponema-Absorptionstest
Fluoreszenz-Polarisation-Immuno-Assay
Gaschromatographie
Haemagglutinations-Hemmtest
Hochleistungs-Flüssigkeitschromatographie
Hybridisierung
Isoelektrische Fokussierung
Immunfluoreszenztest
Individuelle Gesundheits-Leistung
Indirekter Hämagglutinationstest
Immunoluminometrischer Assay
Immunoradiometrischer Assay
Immunosorbent Agglutinations Assay
Ionenselektive Elektrode
Lumineszenz Immuno Assay
Lactose-Toleranz-Test
Mikropartikel-verstärkter Immunoassay
Membran Enzym Immunoassay
Massenspektrographie
Nukleinsäure amplifizierende Technik
Neutralisationstest
Online Mendelian Inheritance in Man
Polymerase chain reaction
Radio-allergo sorbent Test
Radio Immuno Assay
Ribonukleinsäure
Radio Rezeptor Assay
Strand Displacement Amplification
Single Nucleotide Polymorphism
Schmelzpunktanalyse
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
1
Allgemeines
TMA
TPPA
TRACE
VDRL
WB
2
Transcription Mediated Amplification
Treponema pallidum Partikelagglutinationstest
Time Resolved Amplified Cryptate Emission
Veneral Disease Research Laboratory Test
Western Blot
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Allgemeines
Allgemeine Hinweise
Vorwort
Sehr geehrte Frau Kollegin, sehr geehrter Herr Kollege!
Unser Leistungsverzeichnis für 2012/2013 ist neu überarbeitet und liegt Ihnen in gewohnter
Form vor. Es liefert Ihnen wichtige Zusatzinformationen zu den von uns angebotenen
Untersuchungen wie zum Beispiel die benötigte Menge an Untersuchungsmaterial, die
Ansatzhäufigkeit, präanalytische Besonderheiten und die Referenzbereiche für Erwachsene.
Alters- und geschlechtsabhängige Normwerte können Sie dem Befund entnehmen. Für
konstruktive Kritik sind wir Ihnen sehr dankbar. Sie können diese an Herrn Dr. Tewald
(0711/6357-119) weiterleiten.
Wir hoffen auf weitere gute Zusammenarbeit.
Ihr Labor Enders
Anforderungsscheine
Unsere Untersuchungsaufträge sind im Kopfbereich den Überweisungsscheinen angepasst,
wodurch der Eindruck mittels Patientenchipkarte möglich ist. Patientendaten bitte mit Adrema
oder in Blockschrift lesbar eintragen. Bei Kassenpatienten auf dem Überweisungsschein
sämtliche gewünschte Untersuchungen eintragen.
Unsere Anforderungsscheine stehen Ihnen auch unter
http://www.labor-enders.de/formulare.html zur Verfügung.
Da die Scheine eingescannt werden, bitten wir Sie zur Vermeidung von Einlesefehlern, auf
eine ausreichende Druckqualität (Schwärzung) zu achten.
Bitte Absenderangaben nicht vergessen (Stempel).
Bei Privatpatienten und IGeL-Untersuchungen bitte vollständige Postanschrift der Patienten
für die Rechnungszustellung angeben.
Anforderungsschein I (Infektiologie)
Bei Infektionsverdacht: Anamnese wie Erkrankungsbeginn, Symptome, Schwangerschaft
(vollendete Schwangerschaftswoche und Tage), Vorbefunde, bisherige Therapie,
Auslandsaufenthalte, passive oder aktive Impfungen zusätzlich auf unserem
Untersuchungsauftrag I (Infektiologie) angeben.
Anforderungsschein II (Klinische Chemie)
Der Untersuchungsauftrag II dient der Anforderung klinisch-chemischer,
endokrinologischer und weiterer Parameter. Hier sind auch die Abnahmebedingungen für
die einzelnen Parameter vermerkt.
Anforderungsschein für die Forensische Toxikologie
Dieses Formular enthält Anforderungen zur Bestimmung von Betäubungsmitteln im
Rahmen der forensischen Toxikologie aus Serum (Fahrtüchtigkeit) und Urin (Fahreignung).
Anforderungsschein für gynäkologische Endokrinologie
Dieser Anforderungungsschein ist speziell für die Fragestellung der gynäkologischen
Endokrinologie entwickelt worden. Bitte geben Sie hier die für die Interpretation des
Befundes notwendigen klinischen Angaben an.
Weitere Anforderungsscheine
Weitere Formulare für spezielle Fragestellungen wie z.B. Down-Screening,
HPV-Diagnostik, Untersuchung von Zecken, Molekulargenetik / Pharmakogenetik
usw. sind ebenfalls erhältlich bzw. auf unserer Internetseite herunterladbar. Für alle
humangenetischen Untersuchungen ist eine Einwilligungserklärung nötig, die bei uns
angefordert oder im Internet heruntergeladen werden kann.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
3
Allgemeines
Probenkennzeichnung
Jedes Röhrchen (nicht die Versandhülle!) bitte mit Namen, Vornamen und Geburtsdatum
des Patienten sowie dem Abnahmedatum und Zeitpunkt beschriften. Bei mehreren Proben,
z.B. Tagesprofil o.ä., auf den Röhrchen in jedem Fall zusätzlich den Abnahmezeitpunkt
angeben. Bei (mehreren) Abstrichproben, Punktaten etc. bitte den Entnahmeort
kennzeichnen. Bei Sondermaterialien wie z.B. Fetalblut, Fruchtwasser, Urin oder
Brochoalveoläre Lavage (BAL) zusätzlich die Materialart angeben, da wir diese
Materialarten im Labor durch Begutachtung nicht eindeutig identifizieren können.
Untersuchungsmaterial
für Infektionsserologie, Hämatologie, Klinische Chemie, Endokrinologie,
Mutterschaftsvorsorge, Pränataldiagnostik
Serum (Monovette, weiße Kappe)
20 - 60 min. gerinnen lassen, 10 min. bei ca. 3000 U/min zentrifugieren, Überstand
(Serum) in Probenröhrchen überführen und wie angegeben versenden bzw. lagern.
Serum in Gelmonovette (braune Kappe)
20 - 60 min. gerinnen lassen, 10 min. bei ca. 3000 U/min zentrifugieren und wie
angegeben versenden bzw. lagern. Kein Abkippen notwendig.
Vollblut (geronnen)
Blut abnehmen, sofort in Probenröhrchen mit Schraubverschluss geben bzw. Blut mit
(Gel)-Monovette, Vakutainer ohne gerinnungshemmende Zusätze abnehmen und darin
belassen.
Nicht einfrieren (Hämolyse). Ausnahme: zentrifugierte Gelmonovetten
EDTA-Blut
Blut mit EDTA-Monovette abnehmen, sofort gut durchmischen.
Plasma
EDTA-, Heparin-, Citrat- oder NaF-Vollblut durchmischen, sofort 15 min. bei ca. 3000 U/min
zentrifugieren, Überstand (Plasma) in Probenröhrchen überführen (mit Pipette, nicht
abkippen) und wie angegeben versenden bzw. lagern.
Blutausstrich
1-2 gleichmäßig dünne Blutausstriche anfertigen, 10 min. lufttrocknen und beschriften.
Nicht fixieren! In Versandhülle für Objektträger verschicken.
Präanalytik-Fibel
Genaue Angaben zur Präanalytik einzelner Parameter finden Sie auch in unserer
Präanalytik-Fibel, die Sie von unserer Internetseite herunterladen können.
Untersuchungsmaterial für Blutgruppenserologie
Für die Blutgruppenbestimmung inkl. Antikörpersuchtest und direktem
Antiglobulintest (direktem Coombstest)
Das Material für die Blutgruppenserologie muss mit Namen, Vornamen und Geburtsdatum
beschriftet sein.
EDTA-Blut
Blut mit EDTA-Monovette abnehmen, sofort gut durchmischen.
Monovetten immer mit Name, Vorname und Geburtsdatum beschriften!
Untersuchungsmaterial für Virusnachweis
Virusnachweis mittels Zellkultur, Schnellanzucht und Antigen-ELISA
Für virologische und bakteriologische oder parasitologische Untersuchungen bitte
getrennte Proben in separaten Entnahmegefäßen einsenden.
Bitte verwenden Sie:
- Für Liquor, Urin, Sekrete, Gelenkpunktat, Sputum, bronchoalveoläre Lavage,
Fruchtwasser und Aszites sterile Blutröhrchen ohne Zusätze (weiße Kappe)
- Für Biopsieproben sterile Röhrchen mit Zusatz von ca. 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung.
4
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Allgemeines
- Für Stuhlproben Stuhlröhrchen (braune Kappe)
- Für Genital-, Augen- und Rachenabstriche Röhrchen mit Virustransportmedium (grüne
Kappe). Für Augenabstriche die Tupfer mit steriler physiologischer Kochsalzlösung
anfeuchten. Abstrich abnehmen, Tupfer in Virustransportmedium eintauchen, Stiel
abbrechen und das Röhrchen fest verschließen.
- Für den HPV-Nachweis im Genitalabstrich bitte die speziellen
Entnahme/Transportsysteme verwenden.
Beachte :
Proben bis zum Versand kühlen und wenn möglich gekühlt (Kühlkissen, Styroporbehälter) nicht gefroren! - versenden.
Für pränatale Diagnostik: Versand per Eilsendung (Postexpress). Der gekühlte und
schnelle Transport dient zur Vermeidung falsch negativer Befunde.
Informationen zu Entnahme- und Transportbedingungen sowie entsprechendes
Versandmaterial können bei uns angefordert werden.
Untersuchungsmaterial für Bakteriologie, Mykologie, Parasitologie
Bitte Transportzeiten beachten, ggf. per Eilzustellung versenden. Versandinformationen und
geeignete Versandmaterialien können kostenfrei angefordert werden. Siehe auch
mikrobiologischer Teil des Untersuchungsprogramms.
Untersuchungsmaterial für Immunologie / Immunzytologie
EDTA-Blut bzw. Heparin-Blut per Eilboten versenden, da die Proben nicht älter als 24h sein
sollten. Probenentnahme und sofortiger Versand von Montag bis Donnerstag. Proben bitte
telefonisch ankündigen.
Untersuchungsmaterial für Molekularbiologie / Molekular- /
Pharmakogenetik (NAT)
NAT (z.B. PCR,TMA) sind sehr sensitive Techniken. Um Kontaminationen, d.h. falsch-positive
Ergebnisse zu vermeiden, sollten Proben (Blut, Liquor etc.) unter Verwendung frischer
Einmalhandschuhe entnommen und in separate Probengefäße (EDTA-Röhrchen oder
Monovetten) eingebracht werden. Das Wiederöffnen der Gefäße und Umfüllen ist strikt zu
vermeiden, ebenso der Gebrauch von Heparinröhrchen.
Heparin hemmt die PCR-Reaktion!
Eine Einverständniserklärung des Patienten bzw. dessen gesetzlichen Vertreters ist zu
allen genetischen Untersuchungen erforderlich!
IGeL
Die Kosten für Individuelle Gesundheits-Leistungen werden Ihren Patienten privat zum 1,0
fachen Satz der GOÄ in Rechnung gestellt. Ausführliche Informationen finden Sie in unserem
gesonderten IGeL-Programm.
Bitte aktuelle Adresse des Patienten angeben!
Versand und Probentransport
Fahrdienst
Nach Vereinbarung werden Proben beim Einsender durch unseren Fahrdienst abgeholt
und fachgerecht zum Labor transportiert.
Probenversand
Soweit keine speziellen Hinweise auf die Art und Weise des Versandes angegeben sind,
kann die Probe als Briefpost in unseren Versandtüten (sind bereits vorfrankiert) versandt
werden.
Kurierservice
Auf Wunsch veranlassen wir eine tägliche Probenabholung durch unseren Kurierservice
oder per Postexpress im gesamten Bundesgebiet.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
5
Allgemeines
Weiterleitung / Unteraufträge
Wir behalten uns vor, Untersuchungen im Sinne einer qualitativ hochwertigen Laboranalytik,
soweit sie nicht im eigenen Laboratorium verfügbar sind, in einem anderen Labor
durchführen zu lassen. Hierbei handelt es sich ausschließlich um Labore, welche die hohen
Qualitätsanforderungen nach DIN EN ISO/IEC 17025 bzw. DIN EN ISO 15189 erfüllen.
Diese weitergeleiteten Aufträge werden im Leistungsverzeichnis mit (F) gekennzeichnet.
Auf Anfrage kann Name und Anschrift des jeweiligen Fremdlabors mitgeteilt werden.
Qualitätsmanagement
Im Jahre 2001 wurde das Labor Prof. Dr. med. Gisela Enders & Kollegen als Prüflabor nach
DIN EN ISO/IEC 17025:2005 akkreditiert und drei Jahre später, im Januar 2004 nach der
neuen Norm DIN EN ISO 15189:2007.
Nicht nur die Erfüllung der europäischen, sondern auch die der amerikanischen
Qualitätsnormen haben wir uns zum Ziel gesetzt. Daher ist unser Labor seit Februar 2004
durch das "College of American Pathologists (CAP)" und seit März 2005 nach den
Richtlinen des "Clinical Laboratory Improvement Amendments" (CLIA) akkreditiert.
Seit dem Jahr 2009 ist unser Labor zusätzlich nach DIN EN ISO/IEC 17025:2005 für die
Betäubungsmittelanalytik für forensische Zwecke akkreditiert.
Normbereiche und Befundinterpretation
Normbereiche werden auf unserem Befundbericht in Abhängigkeit von Geschlecht, Alter,
Schwangerschaftswoche und Zyklustag angegeben. Die Interpretationen der
Untersuchungsergebnisse entsprechen dem neuesten Kenntnisstand. Sie beziehen sich auf
die jeweils angegebenen Normbereiche bzw. internationale Standards und werden mit den
jeweiligen Analysewerten angegeben. Im Bereich der Infektionsserologie ist die Angabe
allgemeingültiger Normbereiche nicht immer möglich bzw. sinnvoll. Unsere regelmäßig
aktualisierten Infos zur jeweiligen Fragestellung, z. B. Infektion in der Schwangerschaft, bei
Neugeborenen, Kindern, Erwachsenen, Impfungen, rationale Chemotherapie u. a. m. fügen
wir unseren entsprechenden Befunden bei.
Messunsicherheit
Die Messunsicherheit beschreibt die Streuung von Messergebnissen. In jedem Abschnitt der
Analyse bis zur abschließenden Messung treten Abweichungen vom wahren Wert auf. Wir
ergreifen kontinuierlich Maßnahmen und führen regelmäßig Kontrollen durch, um
Abweichungen und Schwankungen zu minimieren.
Unabdingbar hierfür ist auch Ihre Mithilfe:
Bitte geben Sie uns Informationen zu Probenabnahmebedingungen und Lagerung!
Wir möchten Sie darauf hinweisen, dass wir jederzeit Auskünfte zur Messunsicherheit auf
Anfrage erteilen, damit die medizinische Interpretation labordiagnostischer Ergebnisse
sinnvoll und patientenorientiert erfolgen kann.
Befundmitteilung
Schriftliche Befunde werden in der Regel durch unseren Fahrdienst oder per Post zugestellt.
Auf Wunsch erfolgt die Befundübermittlung (zusätzlich bzw. ausschließlich) per Fax bzw.
durch Datenfernübertragung (Mailbox) nach Absprache. Wichtige Untersuchungsergebnisse
wie z. B. Immunstatus bei Infektionskontakt, Medikamentenspiegel und beta-hCG bei
Schwangeren, positive Blutkulturen, positive Liquorbefunde, Nachweis von Enteritiserregern
und andere wichtige Ergebnisse sowie von Ihnen besonders gekennzeichnete Aufträge
werden schnellstmöglich telefonisch mitgeteilt bzw. gefaxt. Bitte Telefonnummer bzw.
Fax-Nummer, unter der Sie am entsprechenden Tag zu erreichen sind, nicht vergessen!
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Allgemeines
Schnelldiagnostik
Schnelldiagnostik (Untersuchungsdauer)
Die in diesem Kapitel aufgeführten Tests werden bei zeitgerechtem Probeneingang am
selben Tag analysiert. Unabhängig davon werden selbstverständlich der Großteil an
klinisch-chemischen und endokrinologischen Parametern am selben Tag bestimmt.
Bordetella pertussis PCR (s. S. 14 )
Mo-Fr bis 12.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: tiefer Nasen- oder Rachenabstrich, Trachealsekret)
Indikation: V.a. Pertussis
CMV (pp65-Ag) (s. S. 22 )
Mo-Fr bis 14.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: EDTA-Blut)
Indikation: Bei Immunsupprimierten und V. a. Reaktivierung
Enteritis (Schnelldiagnostik)
Mo-Fr bis 14.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
Stuhlprobe zur Abklärung bei akuter Enteritis (des Kleinkindes)
Rotavirus (s. S. 61 )
Noro-Viren (s. S. 54 )
Adenovirus (s. S. 9 )
Hepatitis B (HBsAg) (s. S. 35 )
Mo-Fr bis 16.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
Indikation: Nadelstichverletzungen und kurz vor Geburt bei unbekanntem Status für
Hepatitis B
HIV-Test (s. S. 43 )
Mo-Fr bis 14.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr (Bei dringender Indikation)
HSV 1/2 PCR (s. S. 40 )
Mo-Fr bis 12.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: Liquor, Abstrich)
Indikation: V. a. Herpes-Enzephalitis
Varizellen-AK (s. S. 70 )
Mo-Fr bis 16.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: Serum, Vollblut)
Indikation: Bei Kontakt in der Schwangerschaft, in Kliniken und bei Immunsuppression
Influenza-Virus A/B (Ag-Nachweis) (s. S. 46 )
Mo-Fr bis 14.00, Sa bis 10.00
(Material: Rachenabstrich, bei Kindern Nasenabstrich)
Indikation: V. a. Influenza-Infektion
Influenza-Virus RT-PCR (s. S. 46 )
Mo-Fr bis 12.00, Sa bis 10.00
(Material: Rachenabstrich, bei Kindern Nasenabstrich)
Indikation: V. a. Influenza-Infektion
Parvovirus B19-AK (s. S. 57 )
Mo-Fr bis 11.00 Uhr
Indikation: Immunstatus (bei Kontakt in der Schwangerschaft)
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Allgemeines
Pneumocystis jiroveci (s. S. 239 )
Mo-Fr bis 14.00 Uhr
(Material: BAL)
Indikation: Pneumonie bei Immunsupprimierten
RSV RT-PCR (s. S. 60 )
Mo-Fr bis 12.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: Trachealsekret)
Indikation: Pneumonie, Tracheitis, Bronchiolitis (insbesondere bei Säuglingen, Kleinkindern)
Malariadiagnostik (s. S. 256 )
Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
(Mikroskopisch und Schnelltest)
Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malaria-Endemiegebieten
Ammoniak (s. S. 187 )
Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
(Material: EDTA-Plasma)
Indikation: dekompensierte Leberinsuffizienz
PCT (Procalcitonin) (s. S. 128 )
Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
Verdacht auf Sepsis, Verlaufskontrolle unter antibiotischer Therapie
Endokrinologie
Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
Indikation: Schwangerschaftsüberwachung; V. a. Extrauteringravidität; nach Abrasio
beta-hCG (s. S. 162 )
Östradiol (E2) (s. S. 163 )
LH (s. S. 167 )
Progesteron (s. S. 167 )
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Infektionsserologie / Virologie
Acrodermatitis chronica atrophicans (s. S. 14 )
(Borreliose)
Adenovirus-Infektionen
Bis heute sind mehr als 50 humanpathogene Serotypen identifiziert. Adenoviren infizieren
Schleimhäute und sind verantwortlich für akute, hochfieberhafte respiratorische Infekte,
Pharyngotonsillitiden, infektiöse Keratokonjunktivitiden, Gastroenteritiden, hämorrhagische
Zystitiden u. a.
Inkubationszeit: 2 - 10 Tage
Die Diagnose wird vor allem durch den Erregernachweis gestellt.
Der Erregernachweis im Konjunktivalabstrich ist meldepflichtig (Keratokonjunktivitis
epidemica, hoch kontagiös)!
Adenovirus-IgG-AK EIA
Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pharyngitis, Atemwegserkrankung, Lymphadenitis, Keratokonjunktivitis,
hämorrhagische Zystitis, Polyhydramnion, Enteritis (bei Kleinkindern)
Referenzbereich: <10 U/ml
Adenovirus-IgA-AK EIA
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pharyngitis, Atemwegserkrankung, Lymphadenitis, Keratokonjunktivitis,
hämorrhagische Zystitis, Polyhydramnion, Enteritis (bei Kleinkindern)
Referenzbereich: <11 U/ml
Adenovirus-Antigennachweis im Stuhl
Material: Stuhl
Menge: erbsgroß
Methode: Ag-EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Gastroenteritis (vor allem bei Kleinkindern)
Referenzbereich: negativ
Adenovirus-Schnellanzucht
auf Hep2-Zellen
Probenmaterial in Virustransportmedium (grüne Kappe) einsenden.
Material: Rachenabstrich, Bronchiallavage, Bronchialsekret, Augenabstrich
Methode: Schnellkultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pharyngitis, Atemwegserkrankung und Keratokonjunktivitis
Adenovirus-Anzucht in Zellkultur
Anzucht auf Graham (293)-Zellen und diploiden Fibroblasten
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich
Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Rachenabstrich, Stuhl, Urin, Fruchtwasser
Methode: Kultur
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4-7 Tage)
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Adenovirus-DNA
Stuhl (erbsgroß), Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml, nativ), Augenabstriche
(trocken, in 1 ml NaCl, oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe).
Material: Stuhl, Liquor, Fruchtwasser, Augenabstrich
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Adenovirus-Infektion
Referenzbereich: negativ
Afipia felis (Katzenkratzkrankheit siehe Bartonellen) (s. S. 11 )
(Früher als Erreger der Katzenkratzkrankheit vermutet. Möglicherweise doch für einen
kleinen Teil der Erkrankungen verantwortlich, jedoch ist keine Serologie verfügbar.)
AIDS (s. S. 43 )
Amöbiasis (Entamoeba histolytica) (s. S. 250 )
Anaplasmose (s. S. 25 )
Die granulozytäre Form der Ehrlichiose wird jetzt als Anaplasmose bezeichnet.
Ancylostoma duodenale (s. S. 257 )
Hakenwurm.
Arbovirosen (arthropode-borne viruses)
Eine inhomogene Gruppe von mehr als 300 Viren.
Hierzu gehören Alphaviren, Flaviviren, Bunyaviren und das Genus Orbivirus der Reoviridae.
Im weiteren Sinne werden auch (nicht durch Arthropoden übertragene) Viren der
Arenaviridae, Filoviridae und Rhabdoviridae als Arboviren bezeichnet.
Die Übertragung erfolgt in der Regel über Mücken (Culicinae, Aedes, Anopheles, Culicoides,
Phlebotomus) oder Zecken (Ixodoidea, Dermacentor, Haemaphysalis).
Dengue-Virus (s. S. 24 )
Flavivirus
FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 )
Flavivirus
West-Nil-Virus (WNV) (s. S. 72 )
Flavivirus
Lyssa-Virus (Tollwut) (s. S. 66 )
Rhabdovirus
Pappatacifieber-Virus (Sandflyfever) (s. S. 64 )
Phlebovirus
Chikungunya-Virus (CHIKV) (s. S. 17 )
Togavirus
Ascaris lumbricoides (s. S. 257 )
Spulwurm.
Aspergillus-Infektionen
Aspergillen wachsen auf verwesendem organischen Material (z. B. Pflanzenabfälle). Die
Sporen werden in der Regel inhaliert (z. B. defekte Belüftungssysteme). Der Pilz kann eine
allergische bronchopulmonale Aspergillose, ein Aspergillom oder beim immunsupprimierten
Patienten eine invasive bzw. systemische Aspergillose verursachen. In >90% der Fälle wird
eine Erkrankung durch A. fumigatus verursacht.
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Aspergillus fumigatus-AK IHAT
Erfasst werden auch AK gegen A. niger, A. nidulans, A. terreus, A. flavus
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IHAT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Aspergillom i. d. Lunge, NNH-Mykose
Referenzbereich: <1:80 Titer
Aspergillus Galaktomannan-Antigen EIA
Material: Serum, Vollblut, Bronchoalveoläre Lavage
Menge: 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. invasive Aspergillose
Referenzbereich: < 0.5 Index
Mikrobiologischer Nachweis von Aspergillus sp. (s. S. 249 )
(kulturell und mikroskopisch)
Astrovirus-Infektionen
Das Virus verursacht, vor allem bei Kleinkindern, eine akute Gastroenteritis.
Inkubationszeit: 1 - 3 Tage
Astrovirus-Antigennachweis im Stuhl
Material: Stuhl
Menge: erbsgroß
Methode: Ag-EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Astrovirus-Infektion, akute Diarrhoe
Referenzbereich: negativ
Babesiose (s. S. 250 )
Bartonellen
Die Katzenkratzkrankheit (cat scratch disease) wird durch Bartonella henselae verursacht
(seltener eventuell auch durch Afipia felis).
Bartonella henselae wird überwiegend durch Biss- und Kratzwunden von Katzen übertragen.
Hauptsymptome sind eine überwiegend einseitige, regionäre Lymphadenitis. Im Verlauf der
Erkrankung können Kopfschmerzen, Gliederschmerzen, Appetitlosigkeit und/oder Übelkeit
auftreten. Weitere Symptome können Arthralgien, Exantheme, Thrombopenie und
Parotisschwellung sein.
Bartonella quintana ist der Erreger des Wolhynischen Fiebers (sehr selten).
Die Übertragung von B. quintana erfolgt über den Kot von Kleiderläusen.
Beide Erreger können beim Immunsupprimierten die bazilläre Angiomatose verursachen, bei
der es zu einer vasoproliferativen Störung der Haut, Schleimhäute, Lymphknoten und der
inneren Organe kommt.
Inkubationszeit (Katzenkratzkrankheit): variabel 2 - 4 Wochen
Bartonella-henselae-IgG-AK IFT
Katzenkratzkrankheit
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Bartonellose, Katzenkratzkrankheit, Lymphadenitis, bazilläre Angiomatose
Referenzbereich: <1:64 Titer
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Bartonella-henselae-IgM-AK IFT
Katzenkratzkrankheit
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Bartonellose, Katzenkratzkrankheit, Lymphadenitis, bazilläre Angiomatose
Referenzbereich: <1:20 Titer
Bartonella-quintana-IgG-AK IFT
Wolhynisches Fieber (hier selten)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Plötzlich einsetzende Fieberschübe von etwa 3-5 Tagen Dauer, Arthralgien,
Kopfschmerzen
Referenzbereich: <1:64 Titer
Bartonella-quintana-IgM-AK IFT
Wolhynisches Fieber (hier selten)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Plötzlich einsetzende Fieberschübe von etwa 3-5 Tagen Dauer, Arthralgien,
Kopfschmerzen
Referenzbereich: <1:20 Titer
Bartonella-henselae/quintana-DNA
Biopsie (nativ) z.B von Haut oder Lymphknoten, Abstrich (trocken, in 1 ml NaCl, oder in
unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe).
Material: Biopsie, Wundabstrich, Hautabstrich, Lymphknoten
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Bartonellose, Katzenkratzkrankheit, bazilläre Angiomatose
Referenzbereich: negativ
Bazilläre Angiomatose (s. S. 11 )
(Bartonellen-Infektion bei Immunsupprimierten)
Bilharziose (s. S. 258 )
BKV (s. S. 54 )
BK-(Polyoma-)Virus
Bordetella parapertussis
Gramnegative aerobe Stäbchen, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Der
Erreger verursacht ein Pertussis-ähnliches Krankheitsbild. Die Erkrankung verläuft in der
Regel leichter als Infektionen mit B. pertussis.
Inkubationszeit: 7 - 14 Tage
Serologie siehe Bordetella pertussis (s. S. 13 )
Die serologische Diagnostik erfolgt mittels Antiköpernachweis gegen Filamentöses
Hämagglutinin. Das Fehlen von Pertussis-Toxin-AK deutet auf eine Infektion mit B.
parapertussis hin.
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Bordetella-parapertussis-DNA
Nasopharyngialabstrich, Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl, oder in unserem
speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe), Trachealsekret (mind. 1 ml), Abstriche in Gel
sind ungeeignet!
Material: Nasopharyngealabstrich, Rachenabstrich, Trachealsekret
Methode: PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Tracheitis, Bronchitis, pertussiformer Husten. Früher Nachweis des Erregers,
auch bei Kontaktfällen (im Sinne einer Umgebungsuntersuchung) in der Inkubationszeit.
Erregernachweis nach antibiotischer Anbehandlung, bei geimpften Personen.
Referenzbereich: negativ
Bordetella pertussis (Keuchhusten)
Gramnegative aerobe Stäbchen, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Die
Erkrankung ist sehr ansteckend, vor allem ungeimpfte Säuglinge bis 6 Monate können
schwer erkranken. Die Erkrankung verläuft in drei Stadien, Stadium catarrhale, Stadium
convulsivum, Stadium decrementi. Antikörper sind meist erst 2-3 Wochen nach Beginn des
konvulsiven Stadiums nachweisbar. Die frühzeitige Diagnostik erfolgt mittels
Erregernachweis (PCR).
Inkubationszeit: 7 - 14 (- 20) Tage
B. pertussis-(Pertussis-Toxin)-IgG-AK EIA
Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei
akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver! Zur
Beurteilung der Serologie ist die Angabe der Impfanamnese erforderlich!
Material: Serum, EDTA-Blut, Citrat-Plasma, Heparinblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion mit B. pertussis, Impferfolgskontrolle (eingeschränkt)
Referenzbereich: altersabhängige Referenzbereiche, siehe Befund. Einheit: IE/ml
B. pertussis-(Pertussis-Toxin)-IgA-AK EIA
Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei
akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver!
Material: Serum, EDTA-Blut, Citrat-Plasma, Heparinblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Pertussis, stakkatoartiger Husten z. T. mit Erbrechen, Bronchitis, Tracheitis;
bei Neugeborenen: Pneumonie
Referenzbereich: altersabhängige Referenzbereiche, siehe Befund IE/ml
Bordetellen-(FHA)-IgG-AK EIA
Antikörper gegen Filamentöses Hämagglutinin
Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei
akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver!
Zur Beurteilung der Serologie ist die Angabe der Impfanamnese erforderlich!
Material: Serum, EDTA-Blut, Citrat-Plasma, Heparinblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion mit Bordetellen (B. pertussis oder B. parapertussis),
Impferfolgskontrolle (eingeschränkt)
Referenzbereich: altersabhängige Referenzbereiche, siehe Befund. Einheit: IE/ml
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Bordetellen-(FHA)-IgA-AK EIA
Antikörper gegen Filamentöses Hämagglutinin
Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei
akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver!
Material: Serum, EDTA-Blut, Citrat-Plasma, Heparinblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion mit Bordetellen (B. pertussis oder B. parapertussis)
Referenzbereich: altersabhängige Referenzbereiche, siehe Befund. Einheit: IE/ml
Bordetella-pertussis-DNA
Nasopharyngialabstrich, Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl, oder in unserem
speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe), Trachealsekret (mind. 1 ml), Abstriche in Gel
sind ungeeignet!
Material: Nasopharyngealabstrich, Rachenabstrich, Trachealsekret
Methode: PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Pertussis, pertussiformer Husten. Früher Nachweis des Erregers, auch bei
Kontaktfällen (im Sinne einer Umgebungsuntersuchung) in der Inkubationszeit.
Erregernachweis nach antibiotischer Anbehandlung bei geimpften Personen.
Referenzbereich: negativ
Borreliose (Lyme disease)
Häufigste von Zecken übertragene Krankheit der nördlichen Hemisphäre. Die Erkrankung
wird durch die Spirochäte Borrelia burgdorferi sensu lato verursacht. In Europa existieren
mehrere Subspezies die als humanpathogen gelten: B. afzelii, B. garinii, B. burgdorferi sensu
stricto, B. spielmannii und B. bavariaensis. Als möglicherweise humanpathogen gelten: B.
bissettii, B. lusitaniae und B. valaisiana.
Die Erkrankung verläuft in Stadien. 1. früh-lokalisiert (Tage bis Wochen nach Zeckenstich):
Erythema migrans; 2. früh-disseminiert (Wochen bis Monate nach Stich): z. B. Meningitis,
Karditis, Radikulitis; 3. spät-disseminiert (Monate bis Jahre nach Stich): Acrodermatitis
chronica atrophicans, Lyme-Arthritis, chronische ZNS-Infektionen.
Inkubationszeit: Erythema migrans: 1 - 3 (6) Wochen, Folgestadien: Monate bis Jahre
Borrelien-IgG-AK EIA
In der Frühphase der Erkrankung weniger sensitiv, jedoch im Vergleich zu früheren Tests
verbessert durch Zusatz von rekombinantem VlsE zum Vollantigen.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich, Erythema migrans, Facialisparese, Arthralgien, Meningitis,
Radikulitis, Akrodermatitis chronica atrophicans (ACA)
Referenzbereich: <5 U/ml
Borrelien-IgM-AK EIA
Ein negatives Ergebnis schließt eine Infektion in der Frühphase nicht aus!
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich, Erythema migrans, Facialisparese, Arthralgien, Meningitis,
Radikulitis
Referenzbereich: negativ
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Borrelien-IgG-AK Blot
Rekombinante Antigene mehrerer Spezies inklusive VlsE
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Borrelien-IgM-AK Blot
Rekombinante Antigene mehrerer Spezies inklusive VlsE
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Borrelien-IgG EIA, Liquor/Serum (Antikörperindex)
Es wird ein Liquor-/Serumpaar vom selben Abnahmetag benötigt.
Material: Liquor, Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute/chronische Neuroborreliose
Referenzbereich: <1.5 Antikörperindex (AI)
Borrelien-IgM EIA, Liquor/Serum (Antikörperindex)
Es wird ein Liquor-/Serumpaar vom selben Abnahmetag benötigt.
Material: Liquor, Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute/chronische Neuroborreliose
Referenzbereich: <1.5 Antikörperindex (AI)
Borrelien-DNA
Liquor (mind. 0,5 ml). Haut- und Synoviabiopsien müssen nativ sein, sie sollten in wenig
NaCl-Lösung in sterilen Transportgefäßen versandt werden. Zecken bitte ebenfalls nativ
mit wenig Flüssigkeit (z. B. NaCl oder auch Leitungswasser) in sterilem Röhrchen
einsenden. Spezieller Anforderungsschein im Internet unter
http://www.labor-enders.de/uploads/media/Zeckenanforderung_01.pdf.
Material: Biopsie, Liquor, Punktat, Zecke
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. akute (Liquor bei V. a. Meningitis) bzw. chronische (Hautbiopsie bei V. a.
ACA, Synoviabiopsie bei V. a. Lyme-Arthritis) Infektion mit Borrelien
Referenzbereich: negativ
Brucellose
Maltafieber, M. Bang
Brucellen sind sehr widerstandsfähige gramnegative Bakterien. Erregerreservoire sind
Schafe/Ziegen (B. melitensis ), Rinder (B. abortus ) und Schweine (B. suis ). Meist
eingeschleppte Infektion z. B. aus dem Mittelmeerraum (Genuss von rohem Käse oder
Milch), Mexiko, Südamerika; auch berufliche Exposition (Landwirte, Tierärzte, Hirten). Die
Brucellose kann subklinisch, akut oder chronisch verlaufen. Symptome einer akuten
Brucellose sind: trockener Husten, Nachtschweiß, Arthralgien, Gewichtsverlust,
Muskelschmerzen, später Fieberschübe. Unbehandelt kommt es zu einem undulierenden,
remittierenden Fieber oder septischer Kontinua. Weitere intestinale Symptome,
Lymphadenitis und Blutbildveränderungen können hinzukommen und im Rahmen eines
chronischen Verlaufes auch zu Neurobrucellose führen.
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Inkubationszeit: sehr variabel (eine Woche bis mehrere Monate), im Mittel 2 - 3 Wochen
Meldepflichtige Erkrankung!
Brucellen-AK Immunocapture-Agglutinationstest
Erfasst werden: Brucella abortus, B. melitensis und B. suis
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Agglutination
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Infektionsverdacht, Fieber, trockener Husten
Referenzbereich: <1:320 Titer
Brucellen IgG-AK EIA
Erfasst werden: Brucella abortus, B. melitensis und B. suis
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Infektionsverdacht, Fieber, trockener Husten
Referenzbereich: <20 U/ml
Brucellen IgM-AK EIA
Erfasst werden: Brucella abortus, B. melitensis und B. suis
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Infektionsverdacht, Fieber, trockener Husten
Referenzbereich: <15 U/ml
Mikrobiologischer Nachweis z. B. in der Blutkultur (s. S. 238 )
Campylobacter-Infektionen
Gemeinsam mit den Salmonellen häufigster bakterieller Erreger einer akuten infektiösen
Enteritis. In Ausnahmefällen kann es zu Meningitis, Sepsis, Abszessen, Pneumonie,
Guillain-Barré-Syndrom oder postinfektiöser Arthritis kommen. Die Übertragung erfolgt
fäkal-oral, durch kontaminierte Lebensmittel (z. B. rohe Milch, Eier, Fleisch) sowie durch
Kontakt mit infizierten Tieren (Abort beim Schaf und Rind; Enteritis bei Tieren). Saisonale
Häufung von Infektionen mit Campylobacter spp. in den Sommermonaten.
Inkubationszeit: 2 - 7 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Campylobacter-IgG-AK EIA
Erfasst werden: C. jejuni ,C. coli
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma, Heparinplasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: reaktive Arthritis, Guillain-Barré-Syndrom
Referenzbereich: <20 U/ml
Campylobacter-IgA-AK EIA
Erfasst werden: C. jejuni ,C. coli
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma, Heparinplasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: reaktive Arthritis, Guillain-Barré-Syndrom
Referenzbereich: <20 U/ml
Mikrobiologische Stuhluntersuchung auf Campylobacter (s. S. 241 )
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Candida-Infektionen
Candida spp. gehören zu den Hefepilzen; über 90% der Erkrankungen werden durch C.
albicans verursacht. Die Übertragung erfolgt vertikal durch Schmierinfektion (z. B. Hände,
Windeln, Stuhl), iatrogen (z. B. Katheter).
Infektionen besonders bei immunsupprimierten Patienten.
Candida-AK IHAT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: IHAT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Soor, Pneumonie, Oesophagitis (n. Beatmung) insbesondere bei
Immunsupprimierten; Vaginitis, Vulvitis
Referenzbereich: <1:160 Titer
Candida albicans Antigennachweis
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Soor, Pneumonie, Oesophagitis (nach Beatmung) insbesondere bei
Immunsupprimierten; Vaginitis, Vulvitis, V. a. Candidose, Fungämie
Referenzbereich: <62,5 pg/ml
Mikrobiologischer Nachweis von Candida sp. (s. S. 249 )
(kulturell und mikroskopisch)
Chikungunya-Virus
Das Chikungunya-Virus (CHIKV) ist ein behülltes RNA-Virus und gehört zur Gattung
Alphavirus aus der Familie der Togaviridae. Beim Menschen verursacht es das
Chikungunya-Fieber.
Vorkommen in Afrika, Indien und Südostasien, in den letzten Jahren starke Ausbreitung des
Erregers, u. a. auf die Inseln im Indischen Ozean. Übertragung durch Stechmücken der
Gattung Aedes. Der Erreger verursacht eine fieberhafte Erkrankung mit
Gelenkbeschwerden. Antikörper sind 5 Tage nach Symptombeginn nachweisbar, vorher
kann die Diagnose nur durch RT-PCR aus EDTA-Plasma gestellt werden.
Inkubationszeit: 3 - 7 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Chikungunyavirus-IgG-AK IFT (F)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 2 ml
Methode: IFT
Referenzbereich: <1:10 Titer
Chikungunyavirus-IgM-AK IFT (F)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 2 ml
Methode: IFT
Referenzbereich: negativ
Chlamydia pneumoniae
Chlamydophila pneumoniae (Zeitweise verwendete Nomenklatur)
Zunächst als C. psittaci (TWAR) Stamm bezeichnet.
Obligat intrazelluläre Bakterien, häufigste Ursache einer atypischen Pneumonie im
Jugendalter. Weitere Manifestationen sind: Sinusitis, Pharyngitis, Otitis media. Eine kardiale
Beteiligung ist möglich. Die Übertragung erfolgt aerogen (Tröpfcheninfektion) von Mensch zu
Mensch. Ca. 50% der Erkrankungen verlaufen subklinisch, Reinfektionen kommen vor. Eine
Beteiligung von C. pneumoniae an der Arteriosklerose wird diskutiert.
Inkubationszeit: ungefähr 30 Tage (gelegentlich kürzer)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
17
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Chlamydia-pneumoniae-IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pneumonie, trockener Husten, Bronchitis, Pharyngitis
Referenzbereich: <1:32 Titer
Chlamydia-pneumoniae-IgA-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pneumonie, trockener Husten, Bronchitis, Pharyngitis
Referenzbereich: <1:32 Titer
Chlamydia-pneumoniae-DNA
1-2 ml Sputum, Bronchial- oder Trachealsekret (mind. 1 ml), Abstrich (trocken, in 1 ml
NaCl, oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe).
Material: Sputum, Bronchialsekret, Trachealsekret, Abstrich
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Atypische Pneumonie, V. a. Chlamydien-Pneumonie
Referenzbereich: negativ
Chlamydia-pneumoniae-IgG-AK Immunoblot
Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF,
YwbM
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Chlamydia-pneumoniae-IgA-AK Immunoblot
Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF,
YwbM
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Chlamydophila psittaci (Psittakose, Ornithose)
Erreger der Papageienkrankheit (Psittakose) bzw. Ornithose (bei Nicht-Papageien).
Übertragung durch Vogelkot (Staub). Der Erreger verursacht eine atypische Pneumonie.
Selten letale Verläufe.
Inkubationszeit: 7 - 14 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Chlamydia-psittaci-IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Atypische Pneumonie besonders nach Ziervogelkontakt
Referenzbereich: <1:16 Titer
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Chlamydia-psittaci-AK IFT
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Atypische Pneumonie besonders nach Ziervogelkontakt
Referenzbereich: <1:16 Titer
Chlamydia-psittaci-DNA (F)
1-2 ml Sputum, Bronchial- oder Trachealsekret, Abstrich (trocken, in 1 ml NaCl, oder in
unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe).
Material: Trachealsekret, Sputum, Bronchialsekret
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: Atypische Pneumonie, besonders bei Kontakt mit Vögeln.
Referenzbereich: negativ
Chlamydia-psittaci-IgG-AK Immunoblot
Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Chlamydia-psittaci-IgA-AK Immunoblot
Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Chlamydia trachomatis
Es existieren verschiedene Serovare unterschiedlicher Pathogenität: A-C (Auge), D-K und
L1-L3 (Genitaltrakt). Die Übertragung erfolgt durch Schmierinfektion, sexuellen Kontakt oder
perinatal. Häufigste sexuell übertragbare Erkrankung weltweit. L1-L3 verursachen das
Lymphogranuloma inguinale/venerum. Die chronische Infektion mit C. trachomatis kann zu
Vernarbung der Adnexe und damit zu Sterilität führen. Durch Infektion des kleinen Beckens
kann es zu Verwachsungen des Peritoneums kommen. Folge sind chronische
Unterbauchbeschwerden. Bei Neugeborenen können Pneumonien vorkommen (10-20 %).
Periinfektiös kann eine reaktive Arthritis auftreten.
Chlamydia-trachomatis-IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Cervicitis, Urethritis, Adnexitis, Sterilität, chronische Unterbauchbeschwerden,
Arthritis, Pneumonie (beim Neugeborenen)
Referenzbereich: <1:16 Titer
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Chlamydia-trachomatis-IgA-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Cervicitis, Urethritis, Adnexitis, Sterilität, chronische Unterbauchbeschwerden,
Arthritis, Pneumonie (beim Neugeborenen)
Referenzbereich: <1:16 Titer
Chlamydia-trachomatis-RNA
ca. 2 ml frischer Erststrahlurin in APTIMA-Urinprobentransportgefäß (kein Mittelstrahlurin!).
Abstriche von Zervix, Urethra in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit blauem
Schaft). Augenabstriche bei Neugeborenen in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit
weißem Schaft), ca. 1 ml Ejakulat (nativ in sterilem Röhrchen).
Material: Cervixabstrich, Urin, Urethralabstrich, Augenabstrich, Ejakulat
Methode: TMA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. genitale Chlamydien-Infektion: Cervicitis, Urethritis, Adnexitis,
Konjunktivitis, Pneumonie (beim Neugeborenen), Mutterschaftsvorsorge, Screening im
Rahmen der Empfängnisregelung (bis zum vollendeten 25. Lebensjahr)
Referenzbereich: negativ
Chlamydia-trachomatis-IgG-AK Immunoblot
Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF,
HSP60
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Chlamydia-trachomatis-IgA-AK Immunoblot
Immunoblot erfaßt Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF,
HSP60
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Clostridium tetani (Tetanus)
Synonym: Wundstarrkrampf
Grampositives anaerobes Bakterium, resistent gegen Hitze und gebräuchliche Antiseptika.
Bei jeder Verletzung besteht das Risiko einer Schmierinfektion, besonders wenn Schmutz,
Erdreich oder Faeces in die Wunde gelangen. Der Tetanus wird üblicherweise in vier Formen
eingeteilt: generalisiert, lokalisiert, zephalisch (d. h. am Kopf lokalisiert) und neonatal. Ein
überstandener Tetanus hinterläßt keine dauerhafte Immunität.
Inkubationszeit: 3 Tage bis 3 Wochen (abhängig von der Eintrittspforte auch länger)
Erkrankung und Krankheitsverdacht sind meldepflichtig!
Mikrobiologischer Nachweis von C. tetani (s. S. 239 )
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Tetanus-Antitoxin
Nur geeignet zum AK-Nachweis nach Impfung; bei Infektionsverdacht: Toxinnachweis im
Spezial-Referenzlabor
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung
Referenzbereich: <0,01 IE/ml
CMV (s. S. 22 )
Cytomegalie-Virus
Coronavirus (NL63)
Dieses Coronavirus wurde im Jahre 2004 von niederländischen Wissenschaftlern im
Nasensekret eines Säuglings mit Bronchiolitis gefunden. Heute weiß man, dass das
Spektrum der klinischen Symptome bei Kleinkindern von Durchfallerkrankung, milder
Erkältung über Pseudokrupp bis zu schwerer Bronchitis und Pneumonie reicht. Coronavirus
NL63 wurde bei 5 % von mit Atemwegserkrankungen hospitalisierten Kindern nachgewiesen.
Coronavirus-(NL63)-RNA
Bronchiallavage oder Trachealsekret (mind. 1 ml), Rachenabstrich (trocken, 1 ml NaCl,
oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe), Stuhl (erbsgroß).
Material: Bronchiallavage, Rachenabstrich, Trachealsekret, Stuhl
Methode: RT-PCR
Indikation: V. a. Infektion bei akuter Atemwegssymptomatik
Referenzbereich: negativ
Corynebacterium diphtheriae (Diphtherie)
Grampositives Stäbchen; die Übertragung erfolgt aerogen, einziges Erregerreservoir ist der
Mensch. Man unterscheidet lokal begrenzte Formen, wie die Rachen-, Nasen- und
Kehlkopfdiphtherie (Krupp), die mit lokalen Lymphknotenschwellungen und Fieber
einhergehen, von den malignen systemischen Formen, die durch das Diphtherietoxin
verursacht werden. Diese systemischen Formen führen zur Schädigung von Herz, Nieren
und ZNS. Es kommt zu schlaffen Lähmungen, z. B. Augenmuskel- und Facialisparesen wie
auch Paresen der Schluck- und Zwerchfellmuskulatur.
Inkubationszeit: 2 - 5 (1 - 7) Tage
Erkrankung und Verdacht sind meldepflichtig!
Diphtherie-Toxin-AK NT
Nur geeignet zum AK-Nachweis nach Impfung; bei V. a. Infektion Erregernachweis (Kultur)
und Toxinnachweis! Meldepflichtige Erkrankung!
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 5-10 Tage)
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung
Referenzbereich: <0.010 IE/ml
Kultureller Nachweis von C. diphtheriae (s. S. 242 )
Coxiella burnetii (Q-Fieber)
Sehr widerstandsfähiges gramnegatives Bakterium aus der Familie der Rickettsien.
Übertragung durch infizierte Tiere (hauptsächlich Schaf, Rind, Ziege) über deren Kot (Staub),
Wolle, Häute etc. durch Inhalation von erregerhaltigem Staub. Chronische Infektionen (z.B.
Endokarditis) sind nicht selten, werden aber oft nicht erkannt. Hier sind Schwangere
besonders gefährdet, bei ihnen wird die Infektion häufig chronisch. Bei einer
Coxiella-burnetii-Infektion in der Schwangerschaft besteht ein erhöhtes Abortrisiko, es kann
zu Frühgeburt und intrauteriner Wachstumsretardierung kommen.
Inkubationszeit: 2 - 4 Wochen
Eine Infektion mit C. burnetii ist meldepflichtig!
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Q-Fieber IgG Phase II AK EIA
Phase II-Antikörper: Sind in jeder Krankheitsphase nachweisbar, auch bei einer
zurückliegende Infektion.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Suchtest
Referenzbereich: <20 U/ml
Q-Fieber IgM Phase II AK EIA
Phase II-Antikörper: Hinweis auf akute Infektion
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Suchtest
Referenzbereich: <0.9 Index
Q-Fieber IgG Phase I AK EIA
Phase I-Antikörper: Treten im Verlauf der (chronischen) Infektion auf
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: <0.9 Index
Q-Fieber IgA Phase I AK EIA
Phase I-Antikörper: Hinweis auf chronische Infektion
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: <0.9 Index
Coxsackie-Viren (Enteroviren) (s. S. 26 )
Cytomegalie-Virus (CMV)
CMV gehört zur Familie der Herpesviren (Humanes Herpes-Virus Typ 5). CMV ist die
häufigste Ursache prä- und perinataler Virusinfektionen. Mehr als 90 % der Infektionen mit
CMV verlaufen subklinisch. Übertragung horizontal über Speichel, Urin, Zervixsekret, Blut
oder Blutprodukte sowie transplantierte Organe und vertikal (konnatale Infektion).
Reaktivierungen (vor allem bei Immunsupprimierten) und Reinfektionen (mit neuem Stamm)
kommen vor.
Inkubationszeit: variabel, 3 - 12 Wochen
CMV-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: unspezifische Symptome, rezidivierendes Fieber, Lymphadenitis
In Schwangerschaft: Screening, auffälliger US, grippaler Infekt
Beim Neugeborenen: pränatale/frühpostnatale Auffälligkeiten
Bei Immunsuppression: Retinitis, Hepatitis, Pneumonie
Referenzbereich: <200 mPEIU/ml
22
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
CMV-IgM-AK ELA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: ELA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Verdacht auf akute Infektion; unspezifische Symptome, rezidivierendes Fieber,
Lymphadenitis
In Schwangerschaft: auffälliger Ultraschall, auffällige mütterliche Serologie, grippaler Infekt
Beim Neugeborenen: pränatale/frühpostnatale Auffälligkeiten
Referenzbereich: <1.5 Index
CMV-IgG-AK Avidität
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Aviditätstest
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V. a. CMV-Infektion)
Referenzbereich: siehe Befund
CMV-AK Neutralisationstest
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: Di, Do (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V. a. CMV-Infektion)
Referenzbereich: <1:4 Titer
CMV-IgG-AK rekombinanter Blot
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V. a. CMV-Infektion)
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
CMV-IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor
Menge: 200 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: <10 mPEIU/ml
CMV-pp65-Antigen-Nachweis
Nachweis von pp65-Antigen in Leukozyten mittels direkter Immunfluoreszenz
Material muss innerhalb 24 h verarbeitet werden!
Bei Kindern ist eine Menge von 4 ml EDTA-Blut ausreichend.
Material: EDTA-Blut
Menge: 10 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. CMV-Reaktivierung unter immunsuppressiver Therapie oder bei
Immundefekt
Referenzbereich: negativ
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
CMV-Schnelltest (EA-Nachweis)
Schnellanzucht (Dauer 24 h)
Material nativ (oder in sterilem Röhrchen), bei Abstrichen bitte Virustransportmedium
(grüne Kappe) verwenden.
Material: Urin, Fruchtwasser, Rachenabstrich, Trachealsekret
Methode: Schnellkultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. CMV-Infektion, prä-, frühpostnatale CMV-Infektion
Referenzbereich: negativ
CMV-Anzucht in Zellkultur
auf diploiden Fibroblasten
Material nativ oder in Virustransportmedium (grüne Kappe) versenden.
Material: Urin, Fruchtwasser, Trachealsekret, Rachenabstrich
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: bis 4 Wochen)
Indikation: V. a. CMV-Infektion, prä-, frühpostnatale CMV-Infektion
Referenzbereich: negativ
CMV-DNA
EDTA-Blut (2-3ml), Nabelschnurblut, Vollblut, Fruchtwasser (2-5 ml), Urin (5-10 ml), Liquor
(mind. 0,5 ml), Abstriche (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner
Kappe).
Material: Urin, Fruchtwasser, EDTA-Blut, Vollblut, Nabelschnurblut, Liquor, Abstrich
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. CMV-Infektion (besonders in Schwangerschaft und bei Neugeborenen); bei
Immunsuppression: Retinitis, Hepatitis, Pneumonie
Referenzbereich: negativ
Dengue-Fieber
Denguevirus gehört zur Familie der Flaviviren, es existieren 4 Serotypen. Vorkommen
weltweit in tropischen und warmen Gebieten, die Übertragung erfolgt durch Aedes Mücken.
Es treten zwei Verlaufsformen auf:
1. Klassisches Dengue-Fieber (DF), fieberhafte Erkrankung meist selbstlimitierend.
2. Dengue-hämorrhagisches Fieber (DHF) bzw. bei schwerem Verlauf mit
Dengue-Schock-Syndrom (DSS).
Inkubationszeit: 3 - 6 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Dengue-Virus-IgG-AK EIA
Der Test erfasst alle 4 Serotypen, kann zwischen diesen aber nicht differenzieren.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Gelenk-, Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre
Schmerzen, nach Aufenthalt in Südostasien, der Karibik, Südamerika, Australien
Referenzbereich: <1.0 Index
24
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Dengue-Virus-IgM-AK EIA
Der Test erfasst alle 4 Serotypen, kann zwischen diesen aber nicht differenzieren.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Gelenk-, Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre
Schmerzen, nach Aufenthalt in Südostasien, der Karibik, Südamerika, Australien
Referenzbereich: <1.0 Index
Dengue-Virus-Antigennachweis EIA
NS1-Antigennachweis positiv in den ersten 14 Tagen der Erkrankung (Sensitivität
vergleichbar mit der Erreger PCR).
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Gelenk-, Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre
Schmerzen, nach Aufenthalt in Südostasien, der Karibik, Südamerika, Australien
Referenzbereich: negativ
Diphtherie (s. S. 21 )
EBV (s. S. 28 )
Epstein-Barr-Virus
Echinokokken (s. S. 251 )
ECHO-Viren (Enteroviren) (s. S. 26 )
(ECHO: entero-cytopathogenic-human-orphan)
Ehrlichiose und Anaplasmose
Die Erreger der HGA (Humane granulozytäre Anaplasmose) und HME (Humane monozytäre
Ehrlichiose) werden durch Zecken übertragen. In Europa handelt es sich meist um HGA
(Anaplasma phagocytophilum), in Amerika kommen beide Arten vor. Der Erreger verursacht
ein Influenza-ähnliches Krankheitsbild. Häufig subklinischer Verlauf. Kreuzreaktionen
zwischen den einzelnen Ehrlichienarten kommen vor.
Inkubationszeit: ungefähr 7 (1 - 21) Tage
Anaplasma phagocytophilum-IgG-AK IFT
Erreger der humanen granulozytären Anaplasmose (HGA, früher humane granulozytäre
Ehrlichiose)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich (ohne Erythema migrans), Kopfschmerzen, Muskelschmerzen,
Übelkeit, Leukopenie, Thrombozytopenie, erhöhter Serum-Aminotransferasespiegel
Referenzbereich: <1:64 Titer
Anaplasma phagocytophilum-IgM-AK
Erreger der humanen granulozytären Anaplasmose (HGA, früher humane granulozytäre
Ehrlichiose)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich (ohne Erythema migrans), Kopfschmerzen, Muskelschmerzen,
Übelkeit, Leukopenie, Thrombozytopenie, erhöhter Serum-Aminotransferasespiegel
Referenzbereich: <1:20 Titer
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Ehrlichia chaffeensis-IgG-AK IFT
Erreger der humanen monozytäre Ehrlichiose (HME)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Zeckenstich (ohne Erythema migrans), Kopfschmerzen, Muskelschmerzen,
Übelkeit, Leukopenie, Thrombozytopenie, erhöhter Serum-Aminotransferasespiegel
Referenzbereich: <1:128 Titer
Anaplasmen/Ehrlichien-DNA (F)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: Zur Akutdiagnostik bei klin. apparentem Verlauf nach Zeckenstich
Referenzbereich: negativ
Enterohämorrhagische E. coli (EHEC, HUS)
Hämolytisch-urämisches Syndrom
Enterohämorrhagische E.-c.-Stämme (u. a. O157) bilden ein Zytotoxin (Verotoxin) und
können besonders bei Kleinkindern eine thrombotische Mikroangiopathie u. a. mit akutem
Nierenversagen auslösen.
Meldepflichtige Erkrankung!
Escherichia coli O157 IgG Immunoblot (F)
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. HUS (hämolytisch-urämisches Syndrom, Gasser-Syndrom)
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Escherichia coli O157 IgM Immunoblot (F)
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. HUS (hämolytisch-urämisches Syndrom, Gasser-Syndrom)
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Stuhluntersuchung auf EHEC (s. S. 241 )
Enteroviren (Coxsackie-, ECHO- , Enteroviren)
Das Genus Enterovirus beinhaltet mehr als 80 humane Serotypen, die entsprechend der
neuen Klassifikation in 4 Spezies geteilt sind: Humanes Enterovirus A, B, C und D.
Eine präzise Zuordnung von Erreger-Serotyp und Krankheit ist nicht möglich, obwohl
bekannt ist, dass z. B. die Hand-Fuß-Mund-Krankheit durch Coxsackie A-Viren und die
Bornholm-Krankheit durch Coxsackie-B-Viren häufig verursacht werden.
Nicht-Polio-Enteroviren sind für eine Fülle verschiedenster Krankheitsbilder verantwortlich.
Am häufigsten sind unspezifische, fieberhafte Erkrankungen der oberen Luftwege mit Kopfund Muskelschmerzen, Pharyngitis, Tonsillitis, Laryngitis, Lymphadenopathie und Bronchitis.
Gastrointestinale Beschwerden wie Brechdurchfall stehen nicht im Vordergrund. Saisonale
Häufung in den Sommer- und Herbstmonaten.
Inkubationszeit: 3 - 6 (2 - 35) Tage.
Der Erregernachweis z. B. aus Stuhl oder Liquor ist die Methode der Wahl.
26
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Enterovirus-IgG-AK EIA
Das ELISA-Testsystem enthält eine Antigenpräparation aus ECHO-Virus Typ 6 und
Coxsackievirus Typ B5. Diese sind als ausreichend kreuzreagierend beschrieben um auch
Infektionen durch andere Enterovirus-Serotypen zu erfassen.
Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthem, Hand-Fuß-Mund-Krankheit, Meningitis, Myokarditis, Facialisparese,
Gastroenteritis, Myalgien, Myokarditis, Pleurodynie (Bornholm-Krankheit)
Referenzbereich: <80 U/ml
Enterovirus-IgM-AK EIA
Das ELISA-Testsystem enthält eine Antigenpräparation aus ECHO-Virus Typ 6 und
Coxsackievirus Typ B5. Diese sind als ausreichend kreuzreagierend beschrieben um auch
Infektionen durch andere Enterovirus-Serotypen zu erfassen.
Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthem, Hand-Fuß-Mund-Krankheit, Meningitis, Myokarditis, Facialisparese,
Gastroenteritis, Myalgien, Myokarditis, Pleurodynie (Bornholm-Krankheit)
Referenzbereich: <30 U/ml
Enterovirus-Schnellanzucht
auf Colonkarzinom- und RD-Zellen
Liquor: min. 0,5 ml, Stuhl: erbsgroß. Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial
bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Liquor, Stuhl, Rachenabstrich, Bronchoalveoläre Lavage, Fruchtwasser
Methode: Schnellkultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: seröse Meningitis, Myokarditis, Exanthem, Pleuritis, Hand-Fuß-Mund-Krankheit,
Facialisparese, Gastroenteritis, Myalgien, Enteritis
Enterovirus-Anzucht in Zellkultur
auf diploiden Fibroblasten und Colonkarzinomzellen
Liquor: min. 0,5 ml, Stuhl: erbsgroß. Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial
bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Stuhl, Liquor, Rachenabstrich, Bronchiallavage, Fruchtwasser
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-8 Tage)
Indikation: seröse Meningitis, Myokarditis, Exanthem, Pleuritis, Hand-Fuß-Mund-Krankheit,
Facialisparese, Gastroenteritis, Myalgien, Enteritis
Enterovirus-RNA
Der Test erfasst folgende Viren: Coxsackie-, ECHO- und Polio-Viren. Nicht erfasst werden
Parechoviren.
EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut, Liquor (mind. 0,5 ml), Stuhl (erbsgroß), native Biopsie (in 1 ml
NaCl), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner
Kappe).
Material: EDTA-Blut, Vollblut, Liquor, Stuhl, Biopsie, Rachenabstrich
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: seröse Meningitis; unklare Peri-, Myokarditis, akute/chronische
Kardiomyopathie; Enteritis
Referenzbereich: negativ
Humane Parechovirus-RNA (s. S. 56 )
Früher bezeichnet als ECHO-Virus 22/23
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27
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Epstein-Barr-Virus-Infektion (M. Pfeiffer)
Das Epstein-Barr-Virus gehört zur Familie der Herpesviren (Humanes Herpes-Virus Typ 4).
Es verursacht die infektiöse Mononukleose. Charakteristisch sind die mononukleären Zellen
im Blutbild. Nach einer durchgemachten Infektion persistiert das Virus lebenslang in
ruhenden B-Zellen (v. a. im Knochenmark). Hier kann EBV jederzeit reaktiviert werden.
Solche Reaktivierungen verlaufen bei immunkompetenten Patienten in der Regel klinisch
inapparent, sie gehen mit einer Virusausscheidung im Speichel und häufig auch
nachweisbarer EBV-DNA im Blut einher. Selten kommen lymphoproliferative Erkrankungen
(bei Immunsupprimierten) und Tumoren (Burkitt-Lymphom, Nasopharynx-Ca) vor.
Inkubationszeit: 10 - 30 Tage
EBV (VCA)-IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Pfeiffer´sches Drüsenfieber, infektiöse Mononukleose, multiple
Lymphknotenschwellung, Angina, Hepatitis, polyklonale B-Zell-Lymphome?; bei
Immunsuppression: Reaktivierung möglich
Referenzbereich: <1:32 Titer
EBV (VCA)-IgM-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Pfeiffer´sches Drüsenfieber, infektiöse Mononukleose, multiple
Lymphknotenschwellung, Angina, Hepatitis, polyklonale B-Zell-Lymphome?; bei
Immunsuppression: Reaktivierung möglich
Referenzbereich: <1:32 Titer
EBV-Nuclear-Antigen (EBNA1)-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss akute, kürzliche Infektion innerhalb der letzten 6-8 Wochen
Referenzbereich: <9 AU/ml
EBV-IgG-AK Blot
(rekombinanter Immunoblot)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Abklärung unklarer serologischer Befunde
Referenzbereich: siehe Befund
EBV-IgG-Avidität Blot
(rekombinanter Immunoblot)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes bei unklaren
serologischen Befunden
Referenzbereich: siehe Befund
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
EBV-IgM-AK Blot
(rekombinanter Immunoblot)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Abklärung unklarer serologischer Befunde
Referenzbereich: siehe Befund
EBV-Early-Antigen-IgG-AK IFT
(EA-d und EA-r)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. reaktivierte EBV-Infektion; V. a. EBV-assoziiertes lymphoproliferatives
Syndrom, Nasopharynx-Ca, Burkitt-Lymphom
Zusatztest
Referenzbereich: <1:16 Titer
EBV Early-Antigen-IgA-AK IFT
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Nasopharynx-Carcinom
Referenzbereich: <1:16 alpha-Titer
EBV (VCA)-IgA-AK IFT
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: EBV-assoziierter Tumor (z.B. Nasopharynx-CA), auch als "Tumormarker"
Referenzbereich: <1:16 Titer
EBV (VCA)-IgG-AK IFT im Liquor
Bitte immer eine zeitgleich entnommene Serumprobe zur Bestimmung des spezifischen
Antikörperindex (AI) mit einsenden.
Material: Liquor
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: <1:4 Titer
EBV-DNA
EDTA-Blut (2 ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in
Virustransportmedium mit grüner Kappe).
Material: EDTA-Blut, Liquor, Rachenabstrich
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Reaktivierung, z. B. bei Immunsuppression
Referenzbereich: negativ
Erythema (chronicum) migrans (s. S. 14 )
Borreliose
Fasciola hepatica (Großer Leberegel) (s. S. 252 )
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Fleckfieber (s. S. 61 )
Rickettsien
Francisella tularensis (Tularaemie)
Gramnegatives Bakterium; vor allem in Osteuropa und Nordamerika bei Nagern verbreitete
Zoonose ("Hasenpest"), selten in Deutschland. Die Infektion erfolgt bei Tieren durch
Arthropoden, beim Menschen durch Kontakt mit lebenden oder toten infizierten Tieren
(Wildzubereitung) sowie seltener durch Inhalation von infektiösem Material. Kleine
Hautdefekte können auch als Eintrittspforte fungieren.
Inkubationszeit: 3 - 5 (1 - 14) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Francisella tularensis IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektion über Wildbretzubereitung, sehr selten,
ulzeroglanduläres/okuloglanduläres Bild, selten Pneumonie
Referenzbereich: <10 U/ml
Francisella tularensis IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektion über Wildbretzubereitung, sehr selten,
ulzeroglanduläres/okuloglanduläres Bild, selten Pneumonie
Referenzbereich: <10 U/ml
Frühsommer-Meningoenzephalitis (FSME-Virus)
Das FSME-Virus gehört zu den Flaviviren, die Übertragung erfolgt durch Zecken.
Hochendemiegebiete in Deutschland sind Baden-Würrtemberg, Bayern sowie die südlichen
Teile von Hessen und Thüringen. In Europa vor allem Österreich, Polen, Schweden und
Russland.
Zweiphasiger Verlauf.
1. Phase: nach Zeckenstich Fieber, Kopfschmerzen, Besserung nach ca. 1 Woche.
2. Phase: hohes Fieber, Meningitis, Meningoenzephalitis, Enzephalomyelitis.
Inkubationszeit: 7 (- 20) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
FSME-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung, Zeckenstich, Meningitis, Enzephalitis,
Sommergrippe, nach Aufenthalt in Endemiegebieten
Referenzbereich: <63 vieu/ml
FSME-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: V. a. akute Infektion mit FSME-Virus
Referenzbereich: negativ (<63) vieu/ml
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
FSME-Virus IgG-AK Avidität
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: siehe Befund %
FSME-Virus-IgG-AK EIA im Liquor
Material: Liquor
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: negativ
FSME-Virus-RNA
EDTA-Blut (2 ml), Liquor (mind. 0,5 ml). Zecke bitte nativ in wenig Flüssigkeit einsenden (z.
B. einige Tropfen NaCl in neutralem Röhrchen).
Material: EDTA-Blut, Liquor, Zecke
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. FSME
Referenzbereich: negativ
FSME (s. S. 30 )
Frühsommer-Meningoenzephalitis
Fuchsbandwurm (s. S. 251 )
Echinokokkus multilocularis, alveoläre Echinokokkose.
GB-Virus C (Hepatitis G)
GB-Virus C (GBV-C) wurde früher als Hepatitis-G-Virus bezeichnet, verursacht jedoch keine
Hepatitis. Es handelt sich um ein Flavivirus, das mit dem Hepatitis-C-Virus verwandt ist. Die
Übertragung ist vermutlich durch Blutkontakt, sexuell und von der Mutter auf das Kind
möglich. Bislang konnte jedoch keine Krankheit mit diesem Virus in Verbindung gebracht
werden, die pathogene Bedeutung ist daher unklar. Eine Koinfektion mit GBV-C verbessert
bei HIV-infizierten Patienten die Prognose.
GBV-C (Hepatitis-G-Virus) RNA
Material: EDTA-Blut, EDTA-Plasma, Serum, Vollblut
Menge: 2 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung im Rahmen einer HIV-Infektion
Referenzbereich: negativ
Gonokokken (Neisseria gonorrhoeae)
Gramnegative Diplokokken, ausschließlich humanpathogen. Übertragung durch sexuellen
Kontakt sowie perinatal.
Inkubationszeit: 2 - 5 (7) Tage
Mikrobiologischer Nachweis von N. gonorrhoeae (s. S. 243 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Neisseria-gonorrhoeae-RNA
ca. 2 ml frischer Erststrahlurin in APTIMA-Urinprobentransportgefäß (kein Mittelstrahlurin!).
Abstriche von Zervix, Urethra in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit blauem
Schaft). Augenabstriche bei Neugeborenen in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit
weißem Schaft), ca. 1 ml Ejakulat (nativ in sterilem Röhrchen).
Material: Genitalabstrich, Urin, Augenabstrich
Methode: TMA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: männliche Urethritis, Zervizitis, Adnexitis, inguinale Lymphadenitis
Referenzbereich: negativ
Granulozytäre Anaplasmose (s. S. 25 )
(vormals Ehrlichiose)
Gürtelrose (Zoster) (s. S. 70 )
Reaktivierte Infektion mit Varizella-Zoster-Virus.
Haemophilus influenzae Typ b
Gramnegative Stäbchen, die aerogen oder durch direkten Kontakt übertragen werden.
Invasive Erkrankungen werden in den meisten Fällen durch H. influenzae Kapseltyp b
verursacht. In den ersten beiden Lebensjahren liegt der Häufigkeitsgipfel der Hib-Meningitis,
im 3. bis 4. Jahr derjenige der Hib-Epiglottitis (bakt. Pseudokrupp).
Inkubationszeit: wenige Tage
Bei V. a. Infektion ist der Erregernachweis die Methode der Wahl.
Meldepflichtige Erkrankung!
Haemophilus influenzae Typ b IgG-AK EIA
nur geeignet vor und nach Impfung! Nicht zur Diagnose einer Infektion geeignet.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus; bei Symptomen: Erregernachweis
Referenzbereich: <0.15 µg/ml
Mikrobiologischer Nachweis von H. influenzae (s. S. 238 )
Hand-Fuß-Mund-Krankheit (s. S. 26 )
Enteroviren (Coxsackie A10, A16, Entero 71)
Hantaviren (Hantaan, Puumala, Dobrava, Seoul u. a.)
In Deutschland überwiegend Infektionen mit Puumalaviren (Nephropathia epidemica).
Erregerreservoir sind hauptsächlich Wühlmäuse und Ratten; Endemiegebiet: z. B.
Schwäbische Alb.
Weitere Hantaviren sind u. a. die Typen Hantaan (Südostasien, Südeuropa), Dobrava
(Balkanstaaten, Ostdeutschland) und Seoul (Ostasien, selten weltweit).
Eine weitere Gruppe von Hantaviren (Sin Nombre, Black Creek Canel, New York, Andes,
Laguna Negra und weitere) verursacht das Hantavirus pulmonary syndrome (HPS), welches
in Nord- und Südamerika vorkommt. Es besteht eine hohe Kreuzreaktivität zwischen den
einzelnen Typen.
Inkubationszeit: 10 - 30 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Hantaan-Virus-IgG-AK EIA
Material: Vollblut, Serum, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie,
Hämoptysis
Referenzbereich: <1.0 Index
32
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Hantaan-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie,
Hämoptysis
Referenzbereich: <1.0 Index
Puumala-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Nephropathia epidemica, hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom,
Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis
Referenzbereich: <1.0 Index
Puumala-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Nephropathia epidemica, hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom,
Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis
Referenzbereich: <1.0 Index
Hanta-Virus-IgG-AK Blot
Es werden Antikörper gegen folgende Subtypen nachgewiesen: Hantaan, Seoul, Dobrava,
Puumala.
Wegen ausgeprägter Kreuzreaktionen ist eine Differenzierung in der Akutphase oft nicht
möglich.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei positivem EIA und bei V. a. Infektion mit Dobrava-Virus
Referenzbereich: negativ
Hanta-Virus-IgM-AK Blot
Es werden Antikörper gegen folgende Subtypen nachgewiesen: Hantaan, Seoul, Dobrava,
Puumala.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei positivem EIA und bei V. a. Infektion mit Dobrava-Virus
Referenzbereich: negativ
Hantavirus-RNA (F)
Abrechnung erfolgt nur nach GOÄ!
EDTA-Blut (2-3ml), Vollblut, Urin (5-10 ml)
Material: EDTA-Blut, Vollblut, Urin
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie,
Hämoptysis
Referenzbereich: negativ
HAV (s. S. 35 )
Hepatitis A
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
HBV (s. S. 35 )
Hepatitis B
HCV (s. S. 37 )
Hepatitis C
HDV (s. S. 38 )
Hepatitis D
Helicobacter pylori
Gramnegatives Bakterium, dessen wichtigstes Erregerreservoir die menschliche
Magenschleimhaut ist. Ca. 90% aller Ulcera oder Schleimhautentzündungen bei
Erwachsenen werden durch H. pylori verursacht. Die Übertragung erfolgt vermutlich oro-oral
oder fäko-oral. Rezidive (ca. 2%) kommen nach Eradikation des Erregers vor. In Folge der
chronischen Infektion kann sich ein MALT-Lymphom entwickeln.
H. pylori-Antigennachweis im Stuhl (s. S. 246 )
Der Helicobacter pylori-Antigennachweis im Stuhl ist eine Alternative zum Atemtest mit
annähernd gleicher Sensitivität und Spezifität. Die Probengewinnung ist jedoch wesentlich
unkomplizierter.
Helicobacter pylori-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: chronische Gastritis, Duodenalulcus
Referenzbereich: <10 U/ml
Helicobacter pylori-IgA-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: chronische Gastritis, Duodenalulcus
Referenzbereich: <10 U/ml
Helicobacter pylori-IgG-AK Blot
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ
Helicobacter pylori-IgA-AK Blot
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ
H. pylori-PCR (einschl. Clarithromycinresistenz) (s. S. 246 )
Mikrobiologische Untersuchung auf Helicobacter (s. S. 246 )
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Hepatitis A
Hüllenloses RNA-Virus aus der Familie der Picornaviren. Die Übertragung erfolgt fäkal-oral.
Besonders in der Inkubationszeit ist der Stuhl hochinfektiös. In Deutschland auftretende Fälle
sind meist Einschleppinfektionen aus Ländern mit unzureichender Hygiene.
Inkubationszeit: 28 (14 - 48) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Immunisierung möglich, Indikation siehe STIKO-Empfehlungen.
Hepatitis-A-Gesamt-AK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ikterus, Hepatitis, Auslandsaufenthalt, Immunstatus, Impferfolgskontrolle
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-A-IgM-AK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute/kürzliche Infektion mit Hepatitis A-Virus
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-A-Virus-RNA
EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut, Stuhl (erbsgroß).
Material: Stuhl, EDTA-Blut, Vollblut
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. akute Infektion, Virämie, Kontakt (Inkubation), Nachweis der Infektiosität
Referenzbereich: negativ
Hepatitis B
Umhülltes DNA-Virus aus der Familie der Hepadnaviren. Die Übertragung erfolgt vorwiegend
parenteral durch Blutkontakt (z. B. Nadelstichverletzungen), sexuellen Kontakt, perinatal,
selten intrauterin. Chronische Verläufe kommen vor, dann besteht ein deutliches Risiko für
die Entwicklung einer Leberzirrhose oder eines hepatozellulären Karzinoms (HCC).
Therapieoptionen mit alpha-Interferonen und/oder mit Nukleosid-/Nukleotidanaloga
bestehen.
Inkubationszeit: 90 (40 - 180) Tage
Meldepflichtige Erkrankung! (akute Infektion)
HBsAg (Hepatitis B Surface Antigen)
Schnelltest nach telefonischer Rücksprache (siehe Schnelldiagnostik)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Infektion, Infektionsstatus besonders in Gravidität
Referenzbereich: negativ
Anti-HBc-Gesamt-AK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektionsverdacht, Abgrenzung: Z.n. Impfung bzw. Wildviruskontakt
Referenzbereich: negativ
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Anti-HBc-IgM-AK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektionsverdacht, Abklärung einer akuten bzw. chronischen Infektion
Referenzbereich: negativ
Anti-HBs-AK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: vor bzw. nach Impfung gegen Hepatitis B Virus, Impfschutz, Nachweis mit
anti-HBc bei ausgeheilter Hepatitis B
Referenzbereich: <10 U/l
Anti-HBe-AK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Infektiosität, abgelaufene Hepatitis B
Referenzbereich: negativ
HBe-Antigen
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: CLIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Bestimmung der Infektiosität bei positivem HBs-Antigen, Progressionsmarker
bei chronischer Infektion, Entscheidungshilfe bzgl. Therapie
Referenzbereich: negativ
HBsAg (Hepatitis B Surface Antigen) quantitativ
Material: Serum, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verlaufskontrolle unter Therapie
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-B-Viruslast
Material: EDTA-Blut, Vollblut
Menge: 2-3 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Grad der Infektiosität, Entscheidungshilfe bzgl. Therapie, Therapiemonitoring
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-B-Virus Genotypisierung
Material: EDTA-Blut, Vollblut
Menge: 2-3 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Entscheidungshilfe bzgl. Therapie, Epidemiologie
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Hepatitis-B-Resistenzbestimmung (genotypisch)
Material: EDTA-Blut, Vollblut
Menge: 5 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage)
Indikation: Versagen der antiviralen Therapie, Resistenzbestimmung vor antiviraler
Therapie. Bei Infektion trotz Impfung zur Beantwortung der Frage, ob eine
Vaccine-Escape-Mutante vorliegt.
Hepatitis C
Umhülltes RNA-Virus aus der Familie der Flaviviren.
Die Übertragung erfolgt überwiegend parenteral (z.B. durch Blutkontakt, i.v. Drogenabusus,
Nadelstichverletzung), eine perinatale Transmission ist möglich, jedoch selten. Akute
Infektionen verlaufen häufig subklinisch. Chronische Verläufe sind häufig und haben ein
deutliches Risiko für die Entstehung einer Leberzirrhose oder eines hepatozellulären
Karzinoms. Therapieoptionen mit alpha-Interferon, Ribavirin und Proteaseinhibitoren
bestehen.
Inkubationszeit: 8 (2 - 26) Wochen
Meldepflichtige Erkrankung! (Neuinfektionen oder bislang nicht gemeldete Infektionen).
Hepatitis-C-Antikörper
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektionsverdacht, insbesondere bei Risikopatienten (Drogen),
Nadelstichverletzung bzw. nach früherer Transfusion
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-C-IgG Immunoblot
Material: EDTA-Blut, Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: erforderlicher Bestätigungstest bei nachgewiesenen Antikörpern im EIA
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-C-Virus-RNA qualitativ
Material: EDTA-Blut, Vollblut
Menge: 2-3 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V.a. replizierende Hepatitis C, Ausschluss akute Hepatitis C
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-C-Viruslast
Material: EDTA-Blut, Vollblut
Menge: 2-3 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Therapiemonitoring/Dynamik unter Therapie, Quantifizierung der Infektiosität
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-C-Virus Genotypisierung
Material: EDTA-Blut, Vollblut
Menge: 2-3 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Entscheidungshilfe bzgl. Therapie, epidemiologische Klärung
Inosin-Triphosphatase (Pharmakogenetik) (s. S. 108 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Interleukin 28B (Pharmakogenetik) (s. S. 108 )
IP-10 (prognostischer Therapie-Marker) (s. S. 109 )
Hepatitis D
RNA-Virus, das vom HBsAg umhüllt wird und zur Replikation auf das Hepatitis-B-Virus
angewiesen ist. Die Superinfektion verschlechtert die Prognose der Hepatitis B deutlich. Die
Übertragungswege sind ähnlich wie bei Hepatitis B, jedoch meist parenteral (i. v.
Drogenabusus). Meist chronische Verläufe, Therapieoptionen wie bei der chronischen
Hepatitis B mit jedoch deutlich geringerem Erfolg.
Meldepflichtige Erkrankung! (akute Infektion)
Hepatitis-D-Gesamt-AK
Untersuchung nur sinnvoll bei HBsAg-positiven Patienten
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung bei Erstdiagnose einer Hepatitis B, foudroyant verlaufende Hepatitis,
V. a. Superinfektion bei chronischer Hepatitis B-Infektion (HBsAg-Träger)
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-D-Virus-RNA (F)
Material: EDTA-Blut, Vollblut
Menge: 2-3 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. replizierende Hepatitis D, Superinfektion bei chronischer Hepatitis B
(HBsAg-Träger)
Referenzbereich: negativ
Hepatitis E
Nicht umhülltes RNA-Virus aus der Familie der Caliciviren. Die Übertragung erfolgt fäkal-oral.
In Deutschland sowohl Einschleppinfektionen aus Ländern mit unzureichender Hygiene als
auch autochthone Infektionen (Zoonose: Schweine, Wildschweine u.a.). Prolongierte Verläufe
(eventuell auch chronische Verläufe) sind bei ausgeprägter Immunsuppression möglich.
Inkubationszeit: 3 - 8 Wochen
Meldepflichtige Erkrankung!
Hepatitis-E-IgG-AK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Hepatitis/Ikterus
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-E-IgM-AK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Hepatitis/Ikterus, Hinweis auf frische Infektion.
Referenzbereich: negativ
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Hepatitis-E-Virus-RNA
EDTA-Blut (2-3 ml),Vollblut, Stuhl (erbsgroß)
Material: EDTA-Blut, Vollblut, Stuhl
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Hepatitis/Ikterus, Nachweis der Infektiosität
Referenzbereich: negativ
Hepatitis G (GB-Virus C) (s. S. 31 )
Herpes-simplex-Virus Typ 1, 2
Infektionen mit HSV Typ 1 betreffen meist Haut und Schleimhaut (z.B. Stomatitis aphthosa)
oberhalb des Nabels, während HSV Typ 2 meist im Genitalbereich nachweisbar ist. In den
letzten Jahren nimmt der Anteil von HSV-1-Infektionen im Genitalbereich stetig zu.
Rekurrierende Infektionen äußern sich meist als Herpes labialis oder Herpes genitalis. Bei
perinataler Übertragung: Herpes neonatorum.
Weitere Manifestationen: Konjunktivitis, Enzephalitis, Ekzema herpeticatum, Hepatitis
Unter Immunsuppression schwere Verläufe (auch Reaktivierungen) möglich.
Inkubationszeit: wenige Tage bis Wochen
HSV Typ 1/2 IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis; bei Kleinkindern und Säuglingen: Enzephalitis,
Krampfanfälle, Hepatitis, Herpes neonatorum
Referenzbereich: <1:230 alpha-Titer
HSV Typ 1/2 IgM-AK EIA
Vor Entbindung bei V. a. Herpes genitalis Erregernachweis (Zellkultur, PCR) vorrangig.
Kleinkindern: Rachenabstrich, Augenabstrich zum Erregernachweis
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: V. a. akute Infektion mit HSV, Stomatitis, Herpes labialis, Herpes genitalis,
Enzephalomyelitis, Hepatitis, Herpes neonatorum
Referenzbereich: <2.0 Index
HSV-IgG-AK Immunoblot
Der Test ermöglicht die Unterscheidung zwischen HSV-1- und/oder HSV-2-Antikörpern.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Differenzierung zwischen Infektion mit HSV Typ 1 und Typ 2 (z.B. "first episode"
Typ 2 bei vorbestehender Typ-1-Infektion)
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
HSV Typ 1/2 IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: negativ alpha-Titer
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
HSV Typ 1/2 Schnellanzucht
auf diploiden Fibroblasten
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich
Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Abstrich
Methode: Schnellkultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis, Herpes-Konjunktivitis, Stomatitis
HSV Typ 1/2 Anzucht in Zellkultur
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich
Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Abstrich
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-5 Tag)
Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis, Herpes-Konjunktivitis, Stomatitis
HSV Typ 1,2 DNA
EDTA-Blut (2-3 ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml), Abstrich
(Bläschen-/Genitalabstrich) in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner Kappe.
Material: Liquor, Abstrich, EDTA-Blut, Fruchtwasser
Methode: PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis (präpartal), Herpes neonatorum, V. a.
Herpesenzephalitis bzw. Meningitis
Referenzbereich: negativ
HEV (s. S. 38 )
Hepatitis E
HGV (s. S. 31 )
Hepatitis G, GB-Virus C
HHV 6 (s. S. 42 )
Humanes Herpes Virus Typ 6
HHV 7 (s. S. 42 )
Humanes Herpes Virus Typ 7
HHV 8 (s. S. 43 )
Humanes Herpes Virus Typ 8
HIV-1, HIV-2 (s. S. 43 )
Humanes Immundefizienz Virus
HPV (s. S. 54 )
Humanes Papilloma-Virus
HSV 1/2 (s. S. 39 )
Herpes simplex-Virus
HTLV-1/-2 (s. S. 41 )
Humane T-Zellleukämieviren 1-2
40
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Humane T-Zell-Leukämie-Viren (HTLV)
Viren aus der Familie der Retroviridae. HTLV-1 ist Verursacher einer T-Zell-Leukämie bei
Erwachsenen und wird mit eine progressiven demyelinisierende Myelopathie (mit
spastischen Paresen) assoziiert.
HTLV-1 ist endemisch in Japan, Zentralafrika, Neuguinea und der Karibik. Übertragung durch
Blutprodukte, i. v.-Drogenmissbrauch, Stillen. HTLV-2 ist endemisch bei nord- und
südamerikanischen Indianern. In Europa Vorkommen bei i.v.-Drogenabhängigen.
HTLV-2-Infektionen zeigen in der großen Mehrheit keine Pathogenität. Klinisch manifeste
Infektionen können verschiedene Krankheitsbilder verursachen (wie bei HTLV-1): U.a.
tropische spastische Paraparese-ähnliche Erkrankungen sowie Leukämien und pulmonale
Erkrankungen.
HTLV-3 und HTLV-4 wurden erstmals 2005 bei Afrikanern aus Kamerun nachgewiesen.
Epidemiologische Daten aus den USA von 2010 liefern bisher keinen Hinweis auf eine
weltweite Verbreitung von HTLV-3/4. Spezifische Tests für HTLV-3/4 sind im Routinelabor
noch nicht verfügbar. Das 2005 neu beschriebene HTLV-3 sollte nicht mit HIV verwechselt
werden, welches kurz nach seiner Entdeckung in den 1980er Jahren ebenfalls als HTLV-3
bezeichnet wurde.
HTLV-1/2-AK EIA (Suchtest)
Bei reaktivem Testergebnis ist eine Bestätigung mittels Immunoblot erforderlich.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Suchtest zum Ausschluss einer HTLV-1/2-Infektion
Referenzbereich: negativ
HTLV-1/2-AK Blot (Bestätigungstest) (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4-5 Tage)
Indikation: Bestätigungstest bei reaktivem HTLV-Suchtest
HTLV-1/2-RNA (F)
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: bis zu 1 Woche)
Indikation: Unklare HTLV-Serologie, Neugeborene HTLV-positiver Mütter
Referenzbereich: negativ
Humanes Bocavirus
Dieses neue Parvovirus wurde im Jahr 2005 am Karolinska-Institut in Stockholm entdeckt.
Heute weiß man, dass es Infektionen der tiefen Atemwege bei Kleinkindern verursacht,
deren frühe Symptome denen einer Infektion mit Influenzaviren, RSV, Coronaviren oder den
ebenfalls erst vor wenigen Jahren entdeckten humanen Metapneumoviren ähneln.
Koinfektionen mit diesen wurden beschrieben. In ersten Studien konnte bei bis zu 10 % der
wegen akuter Respirationstrakt-Erkrankung hospitalisierten Kleinkinder DNA des humanen
Bocavirus nachgewiesen werden.
Humanes Bocavirus DNA
Bronchiallavage, Trachealsekret (mind. 1 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in
Virustransportmedium mit grüner Kappe).
Material: Bronchiallavage, Rachenabstrich, Trachealsekret
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Infektion bei akuter Atemwegssymptomatik
Referenzbereich: negativ
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV 6)
Exanthema subitum, 3-Tage-Fieber
Die Erkrankung ist durch hohes Fieber von drei Tage Dauer und einem anschließend
auftretenden, feinfleckigen Exanthem gekennzeichnet. Die Infektion erfolgt im frühen
Kindesalter, schon bei Dreijährigen beträgt die Durchseuchungsrate ca. 90%. Die
Übertragung erfolgt meist durch infektiösen Speichel. Wie alle Herpesviren persistiert HHV
Typ 6 lebenslang. Bei Immunsupprimierten kann es zu Komplikationen kommen.
Inkubationszeit: 5 - 15 Tage
Humanes Herpes-Virus Typ 6 IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthema subitum bei Kindern <4 Jahre, Hepatitis, Roseola sine eruptione,
Otitis, mononukleoseähnliches Syndrom, Meningoenzephalitis?
Referenzbereich: <1:16 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 6 IgM-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Infektion, Exanthema subitum bei Kindern <4 Jahre, Hepatitis,
Roseola sine eruptione, Otitis, mononukleoseähnliches Syndrom, Meningoenzephaltitis?
Referenzbereich: <1:16 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 6 IgG IFT im Liquor
Material: Liquor
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: <1:4 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV 6) DNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Biopsie (nativ in NaCl), EDTA-Blut (2-3 ml)
Material: Biopsie, EDTA-Blut, Liquor
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei V. a. HHV 6-Infektion, z. B. bei Immunsupprimierten
Referenzbereich: negativ
Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV 7)
Die Übertragung des Virus sowie das Krankheitsbild ähneln stark den Infektionen mit HHV
Typ 6. Die Möglichkeit von HHV 7 als Erreger der Pityriasis rosea wird diskutiert.
Humanes Herpes-Virus Typ 7 IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthema-subitum-ähnliches Bild im frühen Jugendalter
Referenzbereich: <1:16 Titer
42
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Humanes Herpes-Virus Typ 7 IgM-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthema-subitum-ähnliches Bild im frühen Jugendalter
Referenzbereich: <1:16 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV 7) DNA
Material: EDTA-Blut
Menge: 2-3 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei V. a. HHV 7-Infektion, z. B. bei Immunsupprimierten
Referenzbereich: negativ
Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV 8)
HHV 8 verursacht das Kaposi-Sarkom. Darüber hinaus ist das Virus mit bestimmten
B-Zell-Lymphomen (body-cavity-based-lymphoma) und der Castleman-Erkrankung
assoziiert. Alle drei Krankheiten treten bevorzugt bei Immunsupprimierten, insbesondere bei
HIV-Infizierten auf.
Humanes Herpes-Virus Typ 8 IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Kaposi-Sarkom, Castleman-Erkrankung, Angiosarkom, body cavity based
lymphoma (BCBL), multiples Myelom, Posttransplantationstumor
Referenzbereich: <1:100 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV 8) DNA
Biopsie (nativ in NaCl), EDTA-Blut (2-3 ml)
Material: Biopsie, EDTA-Blut
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Kaposi-Sarkom, Castleman-Erkrankung, Angiosarkom,
Posttransplantationstumor
Referenzbereich: negativ
Humanes Immundefizienz Virus (HIV)
Retroviren, meist Infektionen mit HIV-1, sehr selten HIV-2. Infektionen verlaufen immer
chronisch (d.h. lebenslang). Effektive Therapieoptionen bestehen (immer
Kombinationstherapie), eine Heilung ist weiterhin nicht erreichbar. Ungenügend behandelt ist
der Verlauf gekennzeichnet durch einen zunehmenden Immundefekt mit dem Auftreten von
opportunistischen Infektionen und Malignomen (AIDS).
Übertragung durch Sexualkontakt, Blutkontakt (Nadelstichverletzungen und
i.v.-Drogengebrauch), perinatal.
Anonyme Meldepflicht des Labors.
HIV-Test (HIV-1/2 AK + p24-Ag)
Proben werden nur für die Fragestellung einer evtl. Postexpositionsprophylaxe eilig
bearbeitet.
Sensitiver Suchtest, ein reaktives Ergebnis muss durch einen Bestätigungstest verifiziert
werden.
Beachte "diagnostisches Fenster": Test frühestens nach 2 Wochen möglich, sichere
Aussage des Tests erst 3 Monate nach dem Risikokontakt.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode:CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 3 Stunden)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Indikation: Ausschluss einer HIV-Infektion.
Referenzbereich: negativ
HIV-1-Antikörperbestätigungstest
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung eines reaktiven HIV-Suchtests, serologische Bestätigung der
HIV-1-Infektion
Referenzbereich: negativ
HIV-2-Antikörperbestätigungstest
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung eines reaktiven HIV-Suchtests, serologische Bestätigung der
HIV-2-Infektion
Referenzbereich: negativ
HIV-p24-Antigennachweis
Bei positivem Ergebnis wird die Spezifität mittels Neutralisation bestätigt.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung eines reaktiven HIV-Suchtests
Referenzbereich: negativ
HIV-1 Viruslast
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verlaufs- und Therapiekontrolle bei HIV-Infektion, Nachweis/Ausschluss einer
HIV-1-Infektion bei kürzlichem Kontakt sowie bei Neugeborenen von HIV-1-positiven
Müttern, nach Risikokontakt ab 10. Tag p.i.
Referenzbereich: negativ
HIV-2-RNA (F)
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Wochen)
Indikation: unklare HIV-Serologie, Therapiekontrolle, Neugeborene von HIV-2 positiven
Müttern.
Referenzbereich: negativ
HIV-1 Genotypische Resistenzbestimmung
Getestete Genbereiche: Reverse Transkriptase und Protease
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage)
Indikation: Resistenzbestimmung vor antiretroviraler Therapie, Versagen der
antiretroviralen HIV-1-Therapie
Abacavir Überempfindlichkeit bei HIV-Therapie (HLA-B*57:01) (s. S. 108 )
CD4/CD8-Bestimmung (kl. zellulärer Immunstatus) (s. S. 122 )
CD38 auf CD8-T-Lymphozyten (AIDS-Prognosemarker) (s. S. 123 )
44
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Humanes Metapneumovirus (HMPV)
Das humane Metapneumovirus (HMPV) wurde im Jahre 2001 von der niederländischen
Arbeitsgruppe van den Hoogen et al. entdeckt. 2003 konnte das Virus erstmals auch in
Deutschland als Erreger respiratorischer Erkrankungen (Bronchiolitis) vor allem bei kleinen
Kindern nachgewiesen werden. Es gehört in dieselbe Virusfamilie wie das Respiratory
Syncytial Virus (RSV, Paramyxoviridae) und verursacht auch ein ähnliches Krankheitsbild.
Genetisch können zwei Subtypen (A und B) unterschieden werden.
Die Diagnose wird vor allem durch den Erregernachweis gestellt.
Humanes Metapneumovirus (HMPV) RNA
Bronchiallavage, Trachealsekret (mind. 1 ml, Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in
Virustransportmedium mit grüner Kappe).
Material: Bronchiallavage, Rachenabstrich, Trachealsekret
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Infektion
Referenzbereich: negativ
Hundebandwurm (s. S. 251 )
Echinokokkus granulosus, zystische Echinokokkose
Hundespulwurm (s. S. 260 )
Toxocara canis
Immunstatusbestimmung
Vor bzw. nach Impfung und nach Kontakt, besonders in der Schwangerschaft und bei
medizinischem Pflegepersonal sowie vor Immunsuppression
CMV (Cytomegalie-Virus) IgG EIA (s. S. 22 )
bei Kontakt in der Schwangerschaft, bei medizinischem Personal, bei Müttern von
Frühgeborenen (wg. der Frage des Stillen)
Diphtherie-Toxin-AK NT (s. S. 21 )
Epstein Barr-Virus IgG EIA (s. S. 28 )
besonders bei Kontakt in der Schwangerschaft
FSME IgG EIA (s. S. 30 )
Haemophilus influenzae b IgG EIA (s. S. 32 )
Hepatitis A-AK EIA (s. S. 35 )
nach Kontakt (z. B. in der Schwangerschaft und bei medizinischem Personal), bei
geimpften Kindern/Erwachsenen und nach Auslandsaufenthalt
(Immunglobulingabe oder Inkubationsimpfung möglich)
Hepatitis B (anti-HBs) (s. S. 35 )
bei Kontakt in der Schwangerschaft, bei medizinischem Personal, Kindern und
Erwachsenen
(Immunglobulingabe möglich)
Herpes-simplex-Virus IgG EIA (s. S. 39 )
bei Kontakt in der Schwangerschaft
Influenza-Virus-AK NT (s. S. 47 )
Masern-Virus IgG EIA (s. S. 50 )
bei Kontakt in der Schwangerschaft (Immunglobulingabe möglich)
medizinisches Personal mit Kontakt
Masernvirus-AK NT (s. S. 50 )
Mumps-Virus IgG EIA (s. S. 51 )
bei Kontakt in der Schwangerschaft
Medizinisches Personal mit Kontakt
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
45
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Parvovirus B19 IgG EIA (s. S. 57 )
bei Kontakt in der Schwangerschaft, Pflegepersonal mit Kontakt
Pertussis IgG EIA (s. S. 13 )
Pneumokokken IgG EIA (s. S. 58 )
(nur bei Bestimmung vor und nach Impfung sinnvoll!)
Polio NT (s. S. 58 )
Röteln HAH (s. S. 62 )
Vor der Schwangerschaft und bei Kontakt sollten die Antikörper bestimmt werden (ggf. mit
den entsprechenden Verlaufskontrollen), bei medizinischem Personal mit Kontakt
(Immunglobulingabe möglich)
Rötelnvirus-IgG EIA (s. S. 63 )
Tetanus IgG EIA (s. S. 20 )
Toxoplasma IgG CLIA (s. S. 67 )
bei Kontakt zu Infektionsquelle in der Schwangerschaft und vor Sterilitätsbehandlung
VZV (Varizella-Zoster-Virus) IgG EIA (s. S. 70 )
bei Kontakt in der Schwangerschaft, immunsupprimierten Patienten (Immunglobulingabe
möglich)
medizinisches Personal mit Kontakt
Influenza A-, -B-Virus
Im Winter treten gehäuft Infektionen mit Influenza A- und -B-Viren auf. Alle etwa 10-30 Jahre
können durch Antigenshift Pandemien auftreten. Jährliche Impfung (im Herbst) mit dem
jeweils aktuellen Impfstoff besonders bei älteren Menschen, Immunsupprimierten und
Personen mit viel Publikumsverkehr (z. B. Personal von Arztpraxen, Pflegepersonal auf
Intensivstationen) ist empfehlenswert. Im akuten Stadium ist der Erregernachweis aus
Rachen- oder Nasenabstrich die Methode der Wahl.
Inkubationszeit: 2 - 3 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Influenza-Virus Schnelltest
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich
Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Rachenabstrich, Nasenabstrich
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 6 Stunden, Eilprobe:am selben Tag)
Indikation: V. a. Influenza-Infektion
Referenzbereich: negativ
Influenza-Virus-Anzucht in Zellkultur
auf MDCK- und HepG-2-Zellen
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich
Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Nasopharyngealabstrich, Rachenabstrich
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 7 Tage)
Indikation: V. a. Influenza-Infektion
Referenzbereich: negativ
Influenza A-, B-Virus RNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Trachealsekret (2 ml), Abstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in
Virustransportmedium mit grüner Kappe).
Material: Liquor, Rachenabstrich, Trachealsekret
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Influenza-Infektion
Referenzbereich: negativ
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Influenza-Virus-AK NT
Der Test wird mit den im Impfstoff enthaltenen Influenzaviren (A/H1N1, A/H3N2 und B)
durchgeführt.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Immunstatus vor bzw. nach Impfung
Referenzbereich: siehe Befund Titer
JCV (s. S. 54 )
JC-(Polyoma-)Virus
Kala Azar (s. S. 255 )
Viscerale Form der Leishmaniose
Kaposi-Sarkom (s. S. 43 )
Humanes Herpes Virus Typ 8
Katzenkratzkrankheit (s. S. 11 )
Bartonella henselae
Keuchhusten (s. S. 13 )
Bordetella pertussis
Kinderlähmung (s. S. 58 )
Poliomyelitis
Legionellen
Legionellen werden durch Inhalation erregerhaltiger Aerosole übertragen (infiziertes Wasser,
z. B. Duschen oder Klimaanlagen). Sie verursachen eine Erkrankung, die durch
grippeähnliche Symptome und Pneumonie gekennzeichnet ist. Nosokomiale Infektionen
kommen vor, eine Isolierung der Infizierten ist nicht notwendig, da Übertragungen von
Mensch zu Mensch bisher nicht beschrieben sind. Die Methode der Wahl ist der
Erregernachweis (z. B. Antigen im Urin), da Antikörper erst mehrere Wochen nach
Erkrankungsbeginn zuverlässig nachweisbar sind.
Inkubationszeit: 2 - 10 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Legionellen-IgG-AK IFT
Pool I: L. pneumophila Serogruppe 1-6, Pool II: L. pneumophila Serogruppe 7-14, Pool III:
L. bozemanii, dumoffii, germanii, longbeachae, micdadei, jordanis.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage)
Indikation: Pneumonie, grippeähnliche Symptome, Thoraxschmerzen, häufiger bei
Immunsuppression und länger hospitalisierten Patienten; Leber-/Nierenbeteiligung;
Krankenhaushygiene
Referenzbereich: <1:64 Titer
Legionellen-Antigennachweis im Urin (s. S. 238 )
Legionella-pneumophila-DNA
Sputum, Bronchiallavage, Trachealsekret (je mind. 1 ml), Urin (5-10 ml)
Material: Sputum, Urin, Bronchiallavage, Trachealsekret
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Pneumonie; Krankenhaushygiene
Referenzbereich: negativ
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
47
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Legionellenkultur aus der BAL (s. S. 238 )
Leishmanien (s. S. 255 )
Leptospirose
Leptospiren sind Spirochäten, die durch Mikroverletzungen über die Schleimhäute, aber
auch durch die intakte Haut in den Körper gelangen können. Urin von infizierten Tieren ist
die hauptsächliche Infektionsquelle für den Menschen (insbesondere durch Kontakt mit
kontaminierten Gewässern). Symptome sind: Fieber, Kopfschmerz, Schüttelfrost und
Muskelschmerzen. Epidemiologisch stellen Ratten weltweit das wichtigste Erregerreservoir
dar. Risikogruppen sind Veterinäre, Kanalarbeiter, Fischer, Wassersportler, Landwirte und
Camper.
Inkubationszeit: 7 -13 (2 - 26) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Leptospiren-AK Mikroagglutination
L. canicola, L. copenhageni, L. sejroe, L. grippothyphosa, L. pomona, L. bratislava, L.
ballum, L. bataviae
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 1 ml
Methode: Agglutination
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Myalgien, Wadenschmerzen, Hepatitis, Nephritis, Meningitis, hohes
Bilirubin, mäßig erhöhte Transaminasen
Referenzbereich: <1:100 Titer
Leptospiren-DNA (F)
Liquor (mind. 1 ml), EDTA-Blut (2-3 ml), Urin (5 ml)
Material: EDTA-Blut, Urin, Liquor
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: bis zu 1 Woche)
Indikation: V. a. Leptospirose
Referenzbereich: negativ
Listerien
Gramnegative Stäbchen, die mit dem Kot ausgeschieden werden. Erregerreservoir sind
meistens Tiere. Die Infektion mit Listerien erfolgt in der Regel über kontaminierte
Lebensmittel (z. B. Milch und Milchprodukte). Eine Listerien-Infektion in Schwangerschaft
kann zu Abort, Totgeburt oder einem geschädigten Kind führen; ZNS-Syndrome besonders
bei älteren und geschwächten Personen.
Bei V. a. Infektion ist der direkte Erregernachweis die Methode der Wahl.
Inkubationszeit: Tage bis Wochen
Meldepflichtige Erkrankung!
Listeria-monocytogenes-(Typ 1O,1H,4bO,4bH)-AK Agglutination
(Methode nicht nach DIN EN ISO 15189 akkreditiert)
Erregernachweis vorrangig!
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Agglutination
Ansatz: Mo bis Do täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Infektion; Infektion eher bei Immungeschwächten, gelegentlich in
Gravidität: grippeähnliche Symptome, Schüttelfrost, vorzeitige Wehen, hohes CRP
Referenzbereich: <1:320 Titer
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Listeria-monocytogenes-DNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Genitalabstrich (in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit
grüner Kappe), EDTA-Blut (2-3 ml).
Material: EDTA-Blut, Liquor, Abstrich
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion; Infektion eher bei Immungeschwächten, gelegentlich in
Gravidität: grippeähnliche Symptome, kurz Schüttelfrost, vorzeitige Wehen, hohes CRP,
ZNS-Syndrome, besonders bei älteren und geschwächten Patienten
Referenzbereich: negativ
Listerienanzucht aus der Blutkultur (s. S. 238 )
(Anzucht auch aus Liquor, Stuhl und Cervixabstrich möglich)
Lues (s. S. 64 )
Syphilis
Lyme Disease (s. S. 14 )
Borreliose
Lymphozytäres Choriomeningitis-Virus (LCMV)
Das LCM-Virus gehört zur Familie der Arenaviren. In Nagetieren ist das Virus weitverbreitet.
Die Übertragung auf den Menschen erfolgt meist über die Hausmaus und den Goldhamster.
In Schwangerschaft kann eine Infektion mit LCMV zu schweren kindlichen Schädigungen
führen (z. B. Hydrozephalus, Mikrozephalus).
Inkubationszeit: 6 - 13 Tage
LCM-Virus-IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Hamsterkontakt (Neukauf eines Spieltieres), Nagerkontakt, Meningitis,
Enzephalitis, in Grav: Gefahr der Fruchtschädigung
Referenzbereich: <1:16 Titer
LCM-Virus-IgM-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Hamsterkontakt (Neukauf eines Spieltieres), Nagerkontakt, Meningitis,
Enzephalitis, in Grav: Gefahr der Fruchtschädigung
Referenzbereich: <1:16 Titer
Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCM) RNA
(Methode nicht nach DIN EN ISO 15189 akkreditiert)
EDTA-Blut (2-3ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2 - 5 ml, nativ)
Material: EDTA-Blut, Fruchtwasser, Liquor
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. LCMV-Infektion
Referenzbereich: negativ
Malaria (s. S. 256 )
Maltafieber (s. S. 15 )
Brucella melitensis
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
49
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Masern
Das Masern-Virus gehört zu den Paramyxoviren, wird durch Tröpfcheninfektion übertragen
und ist hochkontagiös. Komplikation: Pneumonie, Enzephalitis (Häufigkeit 1:500 - 1:2000).
Bei Personen mit T-Zell-Defekt letaler Ausgang der Pneumonie häufig. Eine weitere, sehr
seltene ZNS-Komplikation ist die subakut-sklerosierende Panenzephalitis (SSPE).
Charakteristisch für eine SSPE sind sehr hohe IgG-AK-Titer in Serum und Liquor ohne
nachweisbare IgM-AK und ohne Nachweis von Masern-RNA im Liquor.
Inkubationszeit: 8 - 12 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Masern-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung, Fieber, trockener Husten, Konjunktivitis,
Kopliksche Flecken, makulopapulöses Exanthem, Enzephalitis; V. a. SSPE
Referenzbereich: <150 mIU/ml
Masern-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Masern-Infektion
Referenzbereich: <2.0 Index
Masern-Virus IgG-AK Avidität
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: Aviditätstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tag)
Indikation: Zusatztest bei Immunstatus, bei unplausiblem IgM und zur Bestätigung einer
frischen bzw. abgelaufenen Infektion.
Referenzbereich: siehe Befund %
Masern-Virus-IgG-AK im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung; V. a. SSPE, MRZ-Reaktion bei V.a. MS
Referenzbereich: negativ mIU/ml
Masern-Virus-AK NT
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung
Referenzbereich: <10 Titer
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Masern-Virus-RNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Abstrich (in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner
Kappe), EDTA-Blut (2-3 ml).
Material: Abstrich, EDTA-Blut, Liquor
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Maserninfektion
Referenzbereich: negativ
Masern-Virus Genotypisierung
Besondere Fragestellung: Bestimmung des vorliegenden Masern-Genotyps zur Abklärung,
z.B. der geographischen Herkunft des Isolates.
Diese Untersuchung führen wir nicht selbst durch, können diese jedoch veranlassen.
Meningokokken (Neisseria meningitidis)
Gramnegative Diplokokken, die Übertragung erfolgt durch Tröpfcheninfektion. Der
Erkrankungsgipfel liegt bei Kindern zwischen dem 6. und 12. Lebensmonat. Bei V. a.
Infektion ist der Erregernachweis die Methode der Wahl.
Inkubationszeit: 1 - 10 (meist unter 4) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Kultureller Nachweis in der Blutkultur (s. S. 238 )
(Anzucht auch aus Liquor und (Nasen-) Abstrich möglich)
Mittelmeerfieber (s. S. 15 )
Brucella melitensis
Morbus Bang (s. S. 15 )
Brucella abortus
Morbus Bornholm (s. S. 26 )
Synonym: Myalgia epidemica
Coxsackie B-Viren
Morbus Pfeiffer (Mononukleose) (s. S. 28 )
Mumps
Synonym: Parotitis epidemica, Ziegenpeter.
Das Mumps-Virus gehört zu den Paramyxoviren und wird durch Tröpfcheninfektion
übertragen. Komplikationen: Orchitis, Pankreatitis, Meningitis (bis 10% mit Parotitis, 40-50%
ohne Parotitis!). Reinfektionen kommen vor, jedoch sind dann IgM-AK meist nicht
nachweisbar.
Inkubationszeit: 16 - 18 (12 - 25) Tage
Mumps-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung, Fieber, Parotitis, selten Meningitis, Pankreatitis,
Orchitis (in/nach Pubertät); bei Frauen: Oophoritis
Referenzbereich: <16 U/ml
Mumps-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Infektion mit Mumps
Referenzbereich: <2.0 Index
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Mumps-Virus IgG-AK Avidität
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: Aviditätstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tag)
Indikation: Zusatztest bei Immunstatus, bei unplausiblem IgM und zur Bestätigung einer
frischen bzw. abgelaufenen Infektion.
Referenzbereich: siehe Befund %
Mumps-Virus-IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmmung
der Serum-AK.
Material: Liquor
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: negativ U/l
Mumps-Virus-RNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Abstrich (in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner
Kappe), EDTA-Blut (2-3 ml).
Material: Abstrich, EDTA-Blut, Liquor
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Mumps-Infektion
Referenzbereich: negativ
Mumps-spezifische T-Lymphozyten
Nachweis erregerspezifischer T-Lymphozyten: Messung zytokinsezernierender
Lymphozyten (z. B. IFN-gamma) nach Antigenstimulation in vitro
Abnahme Mo-Mi, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Vorherige telefonische
Anmeldung erbeten! Nur Heparinblut möglich! Kommerzielle oder von uns erhältliche
Heparinröhrchen verwenden.
Material: Heparinblut
Menge: 9 ml
Methode: Elispot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Nachweis einer zellulären Immunität gegen Mumps z. B. bei unklarer Serologie
nach Impfung
Mycoplasma hominis / genitalium
M. hominis und M. genitalium sind Erreger des Urogenitaltrakts bei Erwachsenen (meist
asymptomatische Besiedlung). Die Übertragung erfolgt durch sexuellen Kontakt und
perinatal auf das Neugeborene. Nur ein geringer Teil dieser Neugeborenen erkrankt jedoch
symptomatisch (postpartales Fieber, selten Meninigitis).
Erregernachweis vorrangig!
Kultureller Nachweis von M. hominis (s. S. 243 )
Mycoplasma-hominis-DNA
Abstrich (in 1 ml NaCl oder in unserem speziellen Transportgefäß mit weißer Kappe), Urin
(5-10 ml), Ejakulat (1 ml).
Material: Genitalabstrich, Urin, Ejakulat
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Genitalinfektion, postpartales Fieber beim Neugeborenen
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Mycoplasma-hominis-AK NT
M. hominis kommt in geringer Keimzahl als Standortflora im Genitaltrakt vor!
Unter Antibiotikatherapie können bei diesem Test falsch-positive Ergebnisse auftreten.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: unspezifischer Genitalinfekt, nicht gonorrhoische Urethritis beim Mann,
Vaginitis, Cervicitis, Bartholinitis, Infektion der Nieren, postinfektiös reaktive Arthritiden; bei
Ngb: postpartales Fieber
Referenzbereich: <1:16 Titer
Mycoplasma-genitalium-DNA
(Methode nicht nach DIN EN ISO 15189 akkreditiert)
Genitalabstrich, Urin, respiratorische Sekrete und Abstriche (bei Neugeborenen)
Material: Genitalabstrich, Urin
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: negativ
Mycoplasma pneumoniae
Zellwandlose Bakterien, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Erreger verursacht
eine Respirationstrakterkrankung, teilweise mit atypischer Pneumonie. Weitere
Organmanifestationen (z. B. ZNS) sind möglich. Eine durchgemachte Infektion hinterlässt
keine bleibende Immunität.
Inkubationszeit: 1 - 4 Wochen
Mycoplasma-pneumoniae-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluß einer akuten Infektion
Referenzbereich: <9 AU/ml
Mycoplasma-pneumoniae-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluß einer akuten Infektion
Referenzbereich: <0.80 Index
Mycoplasma-pneumoniae-IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest, V. a. Mykoplasmen-Infektion
Referenzbereich: <1:64 Titer
Mycoplasma-pneumoniae-IgG-AK IFT im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. ZNS-Beteiligung, Enzephalitis
Referenzbereich: <1:1 Titer
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Kultureller Nachweis von M. pneumoniae (s. S. 238 )
Mycoplasma-pneumoniae-DNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Sputum, BAL, Tracheal-/ Bronchialsekret in sterilen Transportgefäßen
(je 2 ml), sowie Abstrichtupfer aus Nasopharyngeal- und Rachenbereich in 1 ml NaCl
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Atypische Pneumonie, Bronchitis, Meningoenzephalitis, Otitis media
Referenzbereich: negativ
Neisseria gonorrhoeae (s. S. 31 )
Gonokokken
Neisseria meningitidis (s. S. 51 )
Meningokokken
Neutralisationsteste
Mittels Neutralisationstest (NT) werden protektive (neutralisierende) Antikörper gegen
Infektionserreger bestimmt. Für die Prüfung der vorhandenen Immunität ist nicht immer eine
einfache Methode wie z. B. ein Enzym-Immuno-Assay (EIA) geeignet, da der Schutz bei
manchen Infektionen nur mit den neutralisierenden Antikörpern korreliert. Das betrifft
insbesondere die Immunität gegen Poliovirus und Diphtherie. Auch für die Beurteilung des
Immunstatus bei anderen Infektionen ist der NT trotz des Aufwands die Methode der Wahl.
CMV-AK NT (s. S. 23 )
Diphtherie-Toxin-AK NT (s. S. 21 )
Influenza-Virus-AK NT (s. S. 47 )
Masern-Virus-AK NT (s. S. 50 )
Polio-Virus-AK NT (s. S. 58 )
Noroviren
RNA-Viren aus der Familie der Caliciviridae, die häufig fieberhafte, hartnäckige
Durchfallerkrankungen hervorrufen. Sie treten vor allem in den Herbst- und Wintermonaten
auf. Erkrankungsgipfel Oktober bis Februar.
Inkubationszeit: 1 - 3 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Norovirus-RNA
Material: Stuhl
Menge: erbsgroße Stuhlmenge
Methode: RT-PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Gastroenteritis
Referenzbereich: negativ
Orientbeule (s. S. 255 )
Kutane Leishmaniose
Ornithose (s. S. 18 )
Papageienkrankheit
Papilloma-Viren (HPV)
Papilloma-Viren verursachen eine Vielzahl von verrucösen Erkrankungen. Besondere
Bedeutung haben die "onkogenen" (high risk) Papilloma-Viren (z. B. Typen: 16, 18, 31, 33),
die an der Entstehung von Zervix-, Vulva-, Penis- und Analkarzinomen beteiligt sind.
Inkubationszeit: 4 Wochen bis mehrere Monate
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Papilloma-Viren (High-Risk), Nachweis der viralen Onkogene E6/E7
Abstriche. Benutzen Sie bitte ausschließlich das spezielle
APTIMA-Entnahme-/Transportsystem zum HPV-RNA-Nachweis (Bestellung unter
0711-6357104)
Material: Genitalabstrich
Methode: TMA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verbesserte Risikoabschätzung bei zytologisch auffälligen und/oder
HPV-DNA-positiven Vorbefunden
Referenzbereich: negativ
Papilloma-Viren (High-Risk HPV) DNA
Native Biopsie in NaCl, Abstrich in 1 ml NaCl. Benutzen Sie bitte die speziellen
HPV-Abstriche (Bestellung unter 0711-6357104)
Material: Biopsie, Genitalabstrich
Methode: Hybridisierung
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Absicherung der Zytologie bei PAP IIw/k, PAP III; Spezifizierung bei PAP IIID;
Persistenz der HPV-Infektion; Larynx-Papillome (selten); Peniskarzinom
Referenzbereich: negativ
Papilloma-Viren (Low-Risk HPV) DNA
Native Biopsie in NaCl, Abstrich in 1 ml NaCl. Benutzen Sie bitte die speziellen
HPV-Abstriche (Bestellung unter 0711-6357104)
Material: Biopsie, Genitalabstrich
Methode: Hybridisierung
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: s. HPV-High-Risk
Referenzbereich: negativ
Papilloma-Viren (genotypspezifisch) DNA
Native Biopsie in NaCl, für Abstriche benutzen Sie bitte unser spezielles
Viren-Transportmedium mit grünem Schraubverschluss (Bestellung unter 0711-6357104)
Material: Biopsie, Genitalabstrich
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Absicherung der Zytologie bei PAP IIw/k, PAP III, Spezifizierung bei PAP III D.
Vor HPV-Impfung zur Abklärung des vorliegenden Genotyps. Partnerdiagnostik.
Papovaviren (Polyoma-, Papillomaviren) (s. S. 59 )
Pappataci-Fieber (s. S. 64 )
Sandfly Fever
Parainfluenza-Viren Typ 1,2,3
Parainfluenza-Viren gehören zur Familie der Paramyxoviridae, die durch Tröpfcheninfektion
übertragen werden. Typ 1 und Typ 2 treten meist in jährlichen Zyklen auf (Gipfel im Herbst),
während Typ 3 ganzjährig endemisch ist. Parainfluenza-Viren sind meist die Erreger des
viralen Pseudokrupp.
Der Erregernachweis aus Rachen-oder Nasenabstrich ist die Methode der Wahl.
Inkubationszeit: 2 - 4 Tage
Parainfluenza-1,2,3-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektion des oberen und unteren Respirationstrakts, bei Kindern Hauptursache
des Pseudokrupp, bei Erwachsenen milde katarrhalische Infekte der oberen Luftwege,
Bronchitis
Referenzbereich: <8,5 U/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
55
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Parainfluenza-1,2,3-IgA-AK EIA
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Indikation: s. Parainfluenza-1,2,3-IgG-AK
Referenzbereich: <8,5 U/ml
Parainfluenza-Virus-Schnellanzucht
auf LLCMK2-Zellen
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich
Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Nasenabstrich, Rachenabstrich, Broncho-pulmonale Proben
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Parainfluenza-Infektion
Referenzbereich: negativ
Parainfluenza-Virus-Anzucht in Zellkultur
auf LLCMK2-Zellen
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich
Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Rachenabstrich, Nasenabstrich, Trachealsekret, Bronchiallavage
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5-7 Tage)
Indikation: V. a. Parainfluenza-Infektion
Referenzbereich: negativ
Parainfluenza-Virus Typ 3 RNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Bronchiallavage (1 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in
Virustransportmedium mit grüner Kappe).
Material: Liquor, Bronchiallavage, Rachenabstrich
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V.a. Infektion mit Parainfluenza-Virus Typ 3
Referenzbereich: negativ
Parechoviren
Parechoviren gehören zur Familie der Picornaviridae. Bisher wurden sechs humane
Parechoviren identifiziert: Das humane Parechovirus 1 (vormals ECHO-Virus 22), das
humane Parechovirus 2 (vormals ECHO-Virus 23) und die humanen Parechoviren 3-6.
Humane Parechoviren verursachen in der Regel eine leichte Gastroenteritis bzw.
Respirationstrakt-Erkrankung, werden jedoch auch mit Fällen von Meningoenzephalitis in
Verbindung gebracht. Die Infektion ist klinisch häufig nicht von einer Enterovirus-Infektion zu
unterscheiden.
Es besteht bereits in den ersten Lebensjahren eine hohe Durchseuchung, da diese Viren
weit verbreitet sind.
Humane Parechovirus-RNA
EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut (2-3 ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Stuhl (erbsgroß), native Biopsie
(in 1 ml NaCl), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit
grüner Kappe).
Material: EDTA-Blut, Vollblut, Liquor, Stuhl, Biopsie, Rachenabstrich
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: seröse Meningitis; unklare Peri-, Myokarditis, akute/chronische
Kardiomyopathie; Enteritis
Referenzbereich: negativ
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Parvovirus B19 (Ringelröteln, Erythema infectiosum)
Ringelröteln (5th disease, Erythema infectiosum) zählen zu den meist mild verlaufenden
Exanthemerkrankungen im Kindesalter. Übertragung durch Tröpfcheninfektion. Höchste
Kontagiosität ca. 7 Tage vor Exanthembeginn. Im Erwachsenenalter verlaufen etwa 30% der
Fälle ohne Symptome. Patienten mit hämolytischen Anämien können im Rahmen der
Erstinfektion eine transiente aplastische Krise entwickeln. Akute und chronisch verlaufende
Arthritiden (v. a. im Erwachsenenalter bei Frauen) sind beschrieben. Bei Schwangeren kann
die Infektion zum intrauterinen Fruchttod und/oder Hydrops fetalis führen. Selten kann eine
Myokarditis oder Enzephalitis/Enzephalopathie auftreten.
Inkubationszeit: 8 - 14 Tage
Parvovirus-B19-IgG-AK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus; girlandenförmiges Exanthem häufig am Stamm beginnend und an
den Wangen, juckend; aplastische Krise bei V. a. Infektion; Hydrops fetalis.
Referenzbereich: <3 IU/ml
Parvovirus-B19-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Girlandenförmiges Exanthem häufig am Stamm beginnend und an den
Wangen, juckend; aplastische Krise bei V. a. Infektion; Hydrops fetalis.
Referenzbereich: <0.9 Index
Parvovirus-B19-IgG-AK Blot (recomLine)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Parvovirus-B19-IgM-AK Blot (recomLine)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Parvovirus-B19-DNA
Der Test erkennt die humanen Erythrovirus-Genotypen 1, 2 und 3.
Fruchtwasser (2 - 5 ml, nativ), Biopsie (nativ mit wenig NaCl), fetales EDTA-Blut
(mindestens 0,5 ml), EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut
Material: EDTA-Blut, Vollblut, fetales EDTA-Blut, Fruchtwasser, Biopsie
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung einer akuten Infektion; Infektion in der Schwangerschaft; Hydrops
fetalis. Differentialdiagnose bei Myokarditis (besonders bei Kindern und Jugendlichen)
Referenzbereich: negativ
Pfeiffersches Drüsenfieber (s. S. 28 )
(EBV-Infektion)
Picorna-Viren (s. S. 26 )
Enteroviren
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Plasmodium falciparum, malariae, ovale, vivax (s. S. 256 )
PML (Progressive multifokale Leukenzephalopathie) (s. S. 59 )
JC-Polyoma-Virus
Pneumocystis jiroveci
P. jiroveci (vormals P. carinii) wird den Pilzen zugeordnet. Bei abwehrgeschwächten
Patienten verursacht der Erreger eine schwere Pneumonie. Typische Symptome sind
trockener Husten, Dyspnoe und Fieber. Die Durchseuchungsrate ist schon im frühen
Kindesalter sehr hoch. Heute kommen Erkrankungen praktisch nur bei immunsupprimierten
Patienten vor.
Pneumocystis-jiroveci-Direktnachweis (s. S. 239 )
Direkte Immunfluoreszenz in der BAL
Pneumocystis jirovecii (carinii) DNA
Bronchiallavage, Sputum, Trachealsekret (je 2 ml), Lungenbiopsie
Material: Bronchiallavage, Sputum, Trachealsekret, Biopsie
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Interstitielle plasmazelluläre Pneumonie, trockener Husten, Dyspnoe
insbesondere bei Immunsuppression (HIV)
Referenzbereich: negativ
Pneumokokken
Der Erreger Streptococcus pneumoniae wird durch Tröpfcheninfektion übertragen. Weltweit
häufigster Erreger von Bakteriämien, besonders bei alten Menschen, Immunsupprimierten:
Pneumonien, Meningitiden, Otitiden und Sinusitiden. Seltenere Infektionen sind Endokarditis,
Arthritis und Peritonitis. Bei V. a. eine Pneumokokken-Infektion ist der Erregernachweis die
Methode der Wahl.
Pneumokokken-IgG-AK
Bestimmung nur im Rahmen der Impfung sinnvoll!
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: vor/nach Impfung, bei Symptomen: Erregernachweis vorrangig!
Referenzbereich: <3.3 mg/l
Kultureller Nachweis von S. pneumoniae im Rachenabstrich (s. S. 242 )
(Weitere Materialien: Liquor, Blutkultur)
Poliomyelitis (Kinderlähmung)
Poliomyelitisviren gehören zu den Enteroviren. Infektionen verlaufen überwiegend
asymptomatisch. Im Rahmen der klassischen Poliomyelitis tritt eine schlaffe, meist
asymmetrische Lähmung auf. In Europa ist die Poliomyelitis praktisch ausgerottet.
Inkubationszeit: 7 - 14 (3 - 35) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Polio-Neutralisationstest (WHO)
Antikörperbestimmung gegen Typ I, II und III
Untersuchungsdauer: 5 Tage
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 5-10 Tage)
Indikation: Immunitätsbestimmung nach Poliomyelitis-Impfung, wichtig vor
Auslandsaufenthalt.
Referenzbereich: <1:8 Titer
58
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Poliovirus-Anzucht in Zellkultur
auf T=A, 20B-Zellen
Liquor: min. 0,5 ml, Stuhl: erbsgroß
Material: Liquor, Stuhl
Methode: Kultur
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 5-7 Tage)
Indikation: V. a. Poliovirusinfektion
Polyomaviren (BKV, JCV)
Polyomaviren gehören wie die Papillomaviren zur Familie der Papovaviridae. Die
Übertragung erfolgt vermutlich durch Tröpfcheninfektion und die Durchseuchung ist bereits
im Kindesalter sehr hoch. Bei immunsupprimierten Patienten kann BK-Virus zu einer
hämorrhagischen Zystitis und bei Transplantierten zur Abstoßung des Transplantates führen,
JC-Virus ist der Erreger der progressiven multifokalen Leukenzephalopathie (PML).
BK-(Polyoma)-Virus DNA
EDTA-Blut (2-3 ml), Vollblut, Urin (5-10 ml).
Material: EDTA-Blut, Vollblut, Urin
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: (haemorrhagische) Zystitis, Verlaufskontrolle nach Nierentransplantation
Referenzbereich: negativ
JC-(Polyoma)-Virus DNA
EDTA-Blut (2-3ml),Vollblut, Liquor (mind. 0,5 ml), Feinnadelbiopsie (nativ, in wenig NaCl).
Material: Liquor, Biopsie, EDTA-Blut, Vollblut
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: PML (Progressive multifokale Leukenzephalopathie), Slow-Virus-Disease
Referenzbereich: negativ
Pseudomonas-aeruginosa-Antikörper
Diese Untersuchungen sind nur bei Patienten mit Cystischer Fibrose (Mukoviszidose)
indiziert. Sie sind nicht zur Diagnostik akut verlaufender Erkrankungen durch Pseudomonas
aeruginosa geeignet (direkter Erregernachweis!).
IgG gegen alkalische Protease (P. aeruginosa) (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Referenzbereich: <1:500 Titer
IgG gegen Elastase (P. aeruginosa) (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Referenzbereich: <1:500 Titer
IgG gegen Exotoxin A (P. aeruginosa) (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Referenzbereich: <1:500 Titer
Bakteriologische Untersuchung aus respiratorischen Sekreten (s. S. 238 )
Psittakose (s. S. 18 )
Papageienkrankheit
Puumalaviren (s. S. 33 )
Q-Fieber (s. S. 21 )
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59
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Rabies, Lyssa, Tollwut (s. S. 66 )
Respiratory Syncytial Virus (RSV)
RSV gehört zu den Paramyxoviren, die Übertragung erfolgt durch Tröpfcheninfektion.
Hauptursache der Hospitalisation bei Säuglingen. Das Virus ist einer der wichtigsten und
häufigsten Erreger von kindlichen Atemwegserkrankungen, vor allem bei Säuglingen
(schwere Pneumonien). Eine Otitis media ist meist die Folge einer RSV-Infektion. Es gibt 2
Subtypen (A und B), der Häufigkeitsgipfel von Erkrankungen durch RSV liegt in den
Wintermonaten. Reinfektionen kommen häufig vor und verlaufen überwiegend als Infektion
der oberen Luftwege ("common cold").
Die Diagnose wird vor allem durch den Erregernachweis gestellt.
Inkubationszeit: 3 - 6 Tage
Respiratory Syncytial Virus (RSV) IgG-AK EIA
Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: bei Säuglingen: Bronchiolitis; Krupp, Pneumonie
Referenzbereich: <10 U/ml
Respiratory Syncytial Virus (RSV)IgA-AK EIA
Material: Serum, EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Heparinplasma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: bei Säuglingen: Bronchiolitis; Krupp, Pneumonie
Referenzbereich: <10 U/ml
Respiratory Syncytial Virus (RSV) RNA
Bronchiallavage, Trachealsekret (mind. 1 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in
Virustransportmedium mit grüner Kappe).
Material: Bronchiallavage, Rachenabstrich, Trachealsekret
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Infektion
Referenzbereich: negativ
Rhinoviren
Rhinoviren gehören zu den Picornaviridae. Die Übertragung erfolgt z. B. über kontaminierte
Hände oder durch Tröpfcheninfektion. Mit über 100 Serotypen sind sie weltweit verbreitet und
treten gehäuft in den Wintermonaten auf. Im Unterschied zu den Enteroviren sind sie
säureempfindlich. Neben dem banalen Schnupfen ("common cold") kann das Virus auch
(besonders bei Kindern) zu Atemwegserkrankungen (Bronchitis, Bronchopneumonie) führen.
Die nur kurz dauernde, typenspezifische Immunität erklärt die häufig wiederkehrenden
Schnupfenepisoden im Leben jedes Menschen.
Rhinovirus-RNA
Bronchiallavage, Trachealsekret (mind. 1 ml), Rachenabstrich (trocken, in 1 ml NaCl oder in
Virustransportmedium mit grüner Kappe).
Material: Bronchiallavage, Trachealsekret, Rachenabstrich
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Rickettsien (R. prowazekii, mooseri, rickettsii, conorii u.a.)
Klassisches (epidemisches) Fleckfieber, Murines Fleckfieber, Felsengebirgsfleckfieber
(Rocky-Mountain-Spotted Fever), Tsutsugamushi-Fleckfieber (Japanisches Fleckfieber),
Mittelmeerfleckfieber (Zeckenbissfieber, Boutonneuse-Fieber), Brill-Zinsser-Krankheit.
Läuse und Zecken dienen als Vektoren, aber auch Milben (beim Tsutsugamushi-Fieber)
können als Überträger fungieren. Die Mikroorganismen sind weltweit verbreitet, in Europa
kommen sie meist in den Mittelmeerländern vor.
In den letzten Jahren konnten weitere durch Zecken übertragene Rickettsien (R. slovaca, R.
helvetica) identifiziert werden. Diese kommen auch in Mitteleuropa vor.
Schwere Organmanifestationen wie Pneumonie, Meningitis, Sepsis und Myokarditis sind
selten.
Inkubationszeit: 7 - 21 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Rickettsien-AK-IgG IFT
Die Antikörperuntersuchung beinhaltet zwei Testansätze.
Im ersten Ansatz werden Antikörper der Zeckenbissfieber-Gruppe (spotted fever
group)nachgewiesen. Erfasst werden: R. rickettsii, R. conorii, R. akari, R. sibirica, R.
australis, R.helvetica, R.slovaca.
Im zweiten Ansatz werden Antikörper der Typhus-Gruppe (klassischer Typhus, Typhus
murinus) nachgewiesen. Erfasst werden: R. mooseri/typhi, R. prowazekii.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, makulopapulöses Exanthem (Fleckfieber), Kopfschmerz, Konjunktivitis,
Hepatitis nach Vektorexposition (Reiseanamnese!)
Referenzbereich: <1:64 Titer
Rickettsien-AK-IgM IFT
Die Antikörperuntersuchung beinhaltet zwei Testansätze.
Im ersten Ansatz werden Antikörper der Zeckenbissfieber-Gruppe (spotted fever
group)nachgewiesen. Erfasst werden: R. rickettsii, R. conorii, R. akari, R. sibirica, R.
australis, R. helvetica, R. slovaca.
Im zweiten Ansatz werden Antikörper der Typhus Gruppe (Klassischer Typhus, Typhus
murinus) nachgewiesen. Erfasst werden: R. mooseri/typhi, R. prowazekii.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, makulopapulöses Exanthem (Fleckfieber), Kopfschmerz, Konjunktivitis,
Hepatitis nach Vektorexposition (Reiseanamnese!)
Referenzbereich: <1:64 Titer
Rinderbandwurm (s. S. 259 )
Ringelröteln (s. S. 57 )
Rotaviren
Rotaviren sind weltweit die häufigste Ursache von Durchfallerkrankungen bei Kindern
(besonders Säuglingen) und treten vor allem in den Winter- und Frühlingsmonaten auf, Gipfel
im März/April. In mehr als der Hälfte der Fälle sind unspezifische respiratorische Symptome
zu beobachten. Die Übertragung erfolgt fäko-oral, Reinfektionen kommen vor, da eine
durchgemachte Infektion nur eine serotypspezifische Immunität hinterläßt.
Inkubationszeit: 1 - 3 Tage
Die Erkrankung ist meldepflichtig!
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Rotavirus-Antigennachweis im Stuhl
Material: Stuhl
Menge: erbsgroß
Methode: Ag-EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag)
Indikation: V. a. Rotavirus-Infektion, akute Diarrhoe
Referenzbereich: negativ
Rotavirus-RNA-Nachweis im Stuhl
Material: Stuhl
Menge: erbsgroß
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Rotavirus-Infektion, akute Diarrhoe
Referenzbereich: negativ
Röteln
Das Rötelnvirus gehört zur Familie der Togaviren. Die Übertragung des Rötelnvirus erfolgt
durch Tröpfcheninfektion und pränatal. Postnatal erworbene Röteln verlaufen im allgemeinen
leicht, bis zu 50% der Infektionen bei Kindern sind sogar asymptomatisch. Das Virus ist hoch
teratogen, je früher in der Schwangerschaft eine Primärinfektion stattfindet, desto schwerer
sind die kindlichen Schädigungen. Reinfektionen kommen vor. Als Spätfolge kann eine
progressive Rötelnpanenzephalitis (ähnlich der SSPE) auftreten.
Inkubationszeit: 14 - 21 Tage
Anonyme Meldepflicht einer Rötelnembryopathie!
Röteln-Virus-AK HAH
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: HAH (HHT)
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus (besonders in Gravidität), vor/nach Impfung, nach Kontakt
Referenzbereich: <1:8 Titer
Röteln-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Zusatztest zur Bestimmung der Immunitätslage bei niedrigem HAH-Titer
Referenzbereich: <4.1 IE/ml
Röteln-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: V. a. akute Infektion mit Rötelnvirus, kleinfleckiges Exanthem,
Nackenlymphknotenschwellung, Embryopathieverdacht
Referenzbereich: <0.900 Index
Röteln-Virus-IgM-AK CLIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Abklärung einer akuten Infektion
Referenzbereich: <15 AU/ml
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Röteln-Virus-IgM-AK (nach RF-Absorption) EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Zusatztest zur Abklärung einer akuten Infektion
Referenzbereich: <1.0 Index
Röteln-Virus-IgG-AK EIA Avidität
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Aviditätstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: siehe Befund %
Röteln-Virus-IgG-AK Immunoblot
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: siehe Befund
Röteln-Virus-IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung, MRZ-Reaktion bei V.a. MS
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Röteln-Virus-RNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml, nativ), fetales EDTA-Blut (0,5 ml),
Abortmaterial (nativ), Abstrich (in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium mit grüner
Kappe), Urin (5-10 ml).
Material: Abortmaterial, fetales EDTA-Blut, Fruchtwasser, Liquor, Rachenabstrich, Urin
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Rötelninfektion vor allem in Gravidität (Pränatale Diagnostik) und bei V. a.
konnatale Infektion
Referenzbereich: negativ
Röteln-Virus Genotypisierung
Besondere Fragestellung: Bestimmung des vorliegenden Röteln-Genotyps zur Abklärung,
z.B. der geographischen Herkunft des Isolates.
Diese Untersuchung führen wir nicht selbst durch, können diese jedoch veranlassen.
Salmonellen
Salmonellen werden durch kontaminierte Lebensmittel (meist Eier, Geflügel) übertragen,
aber auch fäko-orale Infektionen sind beschrieben. In Abhängigkeit von der klinischen
Symptomatik unterscheidet man: akute Enteritis oder Enterokolitis, Bakteriämie, Typhus und
typhoide Form. Vor allem bei jüngeren Kindern wird eine verlängerte Aussscheidung
beobachtet. Hauptreservoir der Erreger sind insbesondere Tiere, die zum Verzehr gehalten
werden.
Inkubationszeit: 5 - 72 Stunden, Typhus: 1 - 3 Wochen, Paratyphus: 1 - 10 Tage
Salmonellosen sind meldepflichtig!
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Salmonellen-AK EIA
Nachgewiesen werden IgG-, IgA- und IgM-Antikörper gegen S. enteritidis und typhimurium.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Reaktive Arthritis
Referenzbereich: <0.9 Index
Kultureller Nachweis von Salmonellen (s. S. 241 )
Sandfly Fever (Pappataci-Fieber)
Es existieren verschiedene Serotypen: Sicilian, Naples, Toscana. Das
Sandfliegen-Fieber-Virus, welches zu den Bunyaviren gehört, kommt im Mittelmeeraum bis
Pakistan vor, der Serotyp Toscana bisher nur in einigen Regionen Italiens, Portugals,
Spaniens und Zyperns. Erregerreservoir sind Nutztiere und Mäuse, die Übertragung erfolgt
durch Stiche von Sandfliegen.
Inkubationszeit: 3 - 5 Tage
Sandfliegenfieber-IgG/IgM-AK Blot
Nachweis von Antikörpern gegen Sandfliegenfieber-Virus vom Typ Toscana (miterfasst
werden Sicilian- und Naplesvirus)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: hohes Fieber, Kopfschmerzen, Konjunktivitis, Arthralgien, aseptische Meningitis;
nach Aufenthalt im Mittelmeerraum (Italien, Spanien, Portugal, Kroatien), Nord-Afrika,
Asien
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Schistosomiasis (s. S. 258 )
Schweinebandwurm (s. S. 259 )
Shigellose (S. sonnei, S. flexneri)
Synonym: bakterielle Ruhr
Gramnegative Stäbchen, die meist fäkal-oral übertragen werden. Die Shigellose ist durch
akute, schleimige oder blutige Durchfälle, Fieber und extraintestinale Symptome
charakterisiert. Shigellen sind hochinfektiös und vermögen bis zu 30 Tagen außerhalb des
Wirts zu überleben. Infektionen werden häufig im Rahmen eines Auslandsaufenthaltes durch
kontaminiertes Trinkwasser oder Speisen verursacht.
Inkubationszeit: 1 - 7 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Kultureller Nachweis von Shigellen (s. S. 241 )
STORCH-Serologie (s. S. 76 )
Subakute sklerosierende Panenzephalitis (SSPE) (s. S. 50 )
(Masern-Infektion)
Syphilis (Lues)
Die Syphilis (Lues, harter Schanker) ist eine systemische Erkrankung, die durch die
Spirochäte Treponema pallidum verursacht wird. Hauptübertragungswege sind
Sexualkontakte und die transplazentare Infektion des Feten. Die Erkrankung verläuft in
verschiedenen Stadien (Primärstadium, Sekundärstadium, Tertiärstadium). Unbehandelt
entwickeln etwa 40% der Patienten klinisch manifeste Spätkomplikationen (Gummen,
kardiovaskuläre Syphilis, progressive Paralyse, Tabes dorsalis). Serologisch kann die
venerische Syphilis nicht von nicht-venerischen Treponematosen (z.B. Yaws, Pinta u.a.)
unterschieden werden.
64
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Inkubationszeit: 14 (3 - 90) Tage
Anonyme Meldepflicht des Labors!
TPPA (Luessuchreaktion)
Der Treponema-pallidum-Partikel-Assay (TPPA) entspricht in seiner Wertigkeit dem TPHA
(Treponema-pallidum-Hämagglutinations-Assay).
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Agglutination
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Syphilisausschlussdiagnostik (Screeningtest, Luessuchreaktion);
Mutterschaftsvorsorge bei Schwangerschaftsfeststellung
Referenzbereich: <1:80 Titer
VDRL (Venereal Disease Research Laboratory Test)
Material: Serum, Vollblut, Liquor
Menge: 500 µl
Methode: Präzipitation
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Erkrankungsaktivität bei Verdacht auf Syphilis bzw.
Therapiebedürftigkeit
Referenzbereich: <1:1 Titer
RPR (Rapid Plasma Reagin Test)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Präzipitation
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Erkrankungsaktivität bei Verdacht auf Syphilis
Referenzbereich: <1:1 Titer
FTA-ABS-IgG IFT (Syphilisbestätigungstest)
Fluoreszenz-Treponema-Antikörper-Absorptions-Test
Material: Serum, Vollblut, Liquor
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 3 x pro Woche
Indikation: Syphilisbestätigungstest bei reaktivem Suchtest
Referenzbereich: <1:10 Titer
FTA-ABS-19S-IgM IFT
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 3 x pro Woche
Indikation: Nachweis einer behandlungsbedürftigen Treponemen-Infektion.
Referenzbereich: <1:10 Titer
S-FTA-ABS-19S-IgM (Säulenchromatographie)
Vor Testung erfolgt die Abtrennung der IgG-Fraktion durch Säulenchromatographie.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Nachweis einer behandlungsbedürftigen Treponemen-Infektion.
Referenzbereich: <1:20 Titer
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Treponema-pallidum-IgG-AK Immunoblot
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Syphilisbestätigungstest bei reaktivem Suchtest und grenzwertigen Befunden in
der Immunfluoreszenz
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Treponema-pallidum-IgM-AK Immunoblot
Zum Ausschluss falsch positiver und falsch negativer Ergebnisse erfolgt ggf. vor
Durchführung des Testes die Abtrennung der IgG-Fraktion.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Nachweis einer behandlungsbedürftigen Treponemen-Infektion
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Neurosyphilistest (modifizierter ITpA-Index)
Immer Serum/Liquor-Paar einsenden. Zusätzlich wird die Bestimmung des Gesamt-IgG
und Albumin in Serum und Liquor durchgeführt.
Material: Liquor, Serum, Vollblut
Menge: 1000 µl
Methode: Agglutination
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Berechnung des intrathekalen T. pallidum Antikörper (ITpA)- Index zum
Nachweis bzw. Ausschluss einer T.pallidum-spezifischen Antikörpersynthese im ZNS bei
Verdacht auf Neurosyphilis
Referenzbereich: ITpA-Index: <2,0 Index
Treponema-pallidum-DNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Abstriche (nativ in 1 ml NaCl), Biopsie (nativ in wenig NaCl),
EDTA-Blut (2-3 ml), fetales EDTA-Blut (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml, nativ).
Material: Abortmaterial, Abstrich, Biopsie, EDTA-Blut, fetales EDTA-Blut, Fruchtwasser,
Urin, Liquor, Genitalabstrich
Menge: 2 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Genitalulkus und V. a. Syphilis (Abstrich), V. a. Neurosyphilis (Liquor), V. a.
konnatale Syphilis (EDTA-Blut, Liquor, Sekrete (Rhinitis), Urin). Bei Patienten mit
Immunsuppression (HIV) ggf. auch EDTA-Blut, Abstriche und Biopsiematerial im
Sekundärstadium bei unklaren serologischen Befunden
Referenzbereich: negativ
Tetanus (s. S. 20 )
Tollwut (Rabies, Lyssa)
Weltweit verbreitete Erkrankung der Tiere (Baden-Württemberg seit 2005 tollwutfrei). Die
Virusübertragung auf den Menschen findet meist durch Biss- und Kratzwunden statt. Die
Krankheit endet tödlich. Kadaver tollwutkranker Tiere sind als infektiös zu betrachten.
Inkubationszeit: 10 Tage bis Monate (je nach Bisslokalisation)
Meldepflicht von Erkrankung, V. a. Erkrankung, Berührung mit Speichel eines verdächtigen
Tieres oder Kadavers sowie jede Verletzung durch ein solches Tier! Dies gilt auch für den
Kontakt mit ausgelegten Impfködern.
Bei Infektionsverdacht Kontaktaufnahme mit folgenden Stellen:
Konsiliarlaboratorium für Tollwut
Universitätsklinikum Essen, Institut für Virologie
Hufelandstraße 55, 45122 Essen
Ansprechpartner: Herr Prof. Dr. R. S. Roß / Herr Prof. Dr. M. Roggendorf
Tel.: 02 01.7 23-35 61 / -35 50 Fax: 02 01.7 23-59 29
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
oder:
Friedrich-Loeffler-Institut, Bundesforschungsinstitut für Tiergesundheit, Institut für
Epidemiologie, Nationales und O.I.E. Referenzlabor für Tollwut. WHO Collaborating
Centre for Rabies Surveillance and Research
Seestraße 55, 16868 Wusterhausen
Tel.: 03 39 79.80-186/-158
Fax: 03 39 79.80-200
Ansprechpartner: Drs. Thomas Müller/Conrad Freuling
Tollwut-AK (RFFIT) (F)
Antikörpernachweis nur zur Feststellung des Impferfolges!
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: vor/nach Impfung
Referenzbereich: <1:50 Titer
TORCH-Serologie (s. S. 76 )
Toxocarose (s. S. 260 )
Toxoplasmose
Die Toxoplasmose ist eine häufige Infektionskrankheit, die in der Mehrzahl der Fälle
asymptomatisch verläuft. Erreger ist der intrazelluläre Parasit Toxoplasma gondii.
Infektionsquellen sind rohe bzw. zu wenig gebratene, geräucherte Fleisch- oder Wurstwaren,
unpasteurisierte Milch, Rohmilchprodukte, erregerkontaminierte Erde (durch Katzenkot) bei
Gartenarbeiten bzw. ungesäuberte Nahrungsmittel (Salat, Gemüse, Fallobst). Geringeres
Risiko bedeutet der direkte Kontakt zu Katzen. In der Schwangerschaft kann eine
Primärinfektion zu schweren Schädigungen (Hydrozephalus, intrazerebrale Verkalkungen,
Retinochorioiditis) beim Feten oder selten zum Abort führen. Beim Immunsupprimierten kann
die Toxoplasmose als opportunistische Infektion mit Myokarditis, Enzephalitis oder
Pneumonie lebensbedrohend sein.
Inkubationszeit: wahrscheinlich 2 - 4 Wochen
Anonyme Meldepflicht bei konnataler Toxoplasmose.
Toxoplasma gondii IgG-AK CLIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Toxoplasmose, Screening in der Schwangerschaft und vor
Sterilitätsbehandlung, Katzenkontakt, grippeähnliche Symptome, Lymphadenitis, Verzehr
von rohem Fleisch
Referenzbereich: <7.0 IU/ml
Toxoplasma gondii IgM-AK CLIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Toxoplasmose
Referenzbereich: <8.0 AU/ml
Toxoplasma gondii IgG-AK Avidität
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Aviditätstest
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: s. Befund Index
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasma gondii IgM-AK ISAGA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 200 µl
Methode: ISAGA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: In der Schwangerschaft: Zusatztest zur Bestätigung positiver IgM-AK im CLIA.
Beim Neugeborenen: V. a. pränatale Toxoplasmose.
Referenzbereich: Erwachsene: <1:512; Kinder (<2J): <1:20 Titer
Toxoplasma gondii IgG-AK Blot (recomLine)
Verwendung rekombinanter Antigene
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Identifikation phasenspezifischer Antikörper
Referenzbereich: s. Befund
Toxoplasma gondii IgG-AK Avidität Blot (recomLine)
Verwendung rekombinanter Antigene
Durchführung nur in Kombination mit T. gondi IgG-AK Blot
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: s. Befund
Toxoplasma gondii IgM-AK Blot (recomLine)
Verwendung rekombinanter Antigene
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Identifikation phasenspezifischer Antikörper
Referenzbereich: s. Befund (qualitativ)
Toxoplasma gondii IgA-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest bei V. a. akute, reaktivierte oder pränatale Toxoplasmose
Referenzbereich: <10.0 AU/ml
Toxoplasma gondii IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Toxoplasmose, Zusatztest
Referenzbereich: <1:32 Titer
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasma gondii IgG-AK IFT im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor
Menge: 100 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. ZNS-Beteiligung bzw. Ausschluss pränatale Infektion beim Neugeborenen
Referenzbereich: <1:2 Titer
Toxoplasma gondii IgG-AK Profil (Mutter/Kind; Augentoxoplasm.)
Immer mütterliches Blut und Nabelschnurblut einsenden; zusätzlich Folgeblut des
Neugeborenen in der 6. und 12. Lebenswoche. Bei Untersuchung des
Glaskörperpunktates bzw. Augenkammerwassers immer Serum mit einsenden.
Bei Glaskörperpunktat bzw. Augenkammerwasser Mindestmenge 20 µl.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, Augenkammerwasser,
Glaskörperpunktat
Menge: 500 (min 100) µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei V. a. pränatale Toxoplasmose; Nachweis der spezifischen
Synthese intraokulärer IgG-Antikörper bei aktiver Retinochorioiditis
Referenzbereich: s. Befund (qualitativ)
Toxoplasma gondii IgM-AK Profil (Mutter/Kind)
Immer mütterliches Blut und Nabelschnurblut einsenden; Kontrolle des Neugeborenen bis
zur 4. Lebenswoche.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut
Menge: 500 (min 100) µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei V. a. pränatale Toxoplasmose
Referenzbereich: s. Befund (qualitativ)
Toxoplasma gondii DNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (2-5 ml, nativ), EDTA-Blut (2-3 ml), fetales EDTA-Blut
(mindestens 0,5 ml).
Material: EDTA-Blut, fetales EDTA-Blut, Fruchtwasser, Liquor
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Bei V. a. Primärinfektion/auffälligem US (Hydrozephalus, intrazerebrale
Verkalkungen) Entnahme von Fruchtwasser und ggf. fetales Blut; Zusatztest bei V. a.
konnatale Toxoplasmose, bei Immunsuppression mit ZNS-Befall
Referenzbereich: negativ
Toxoplasma gondii-spezifische T-Lymphozyten
Nachweis erregerspezifischer T-Lymphozyten: Messung zytokinsezernierender
Lymphozyten (z. B. Interferon-gamma) nach Antigenstimulation in vitro.
Abnahme Mo bis Mi, die Probe sollte unser Labor innerhalb von 24 Stunden erreichen.
Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Vorherige telefonische Anmeldung
erbeten! Nur Heparinblut möglich! Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen
verwenden.
Menge: 9 (Kleinkind 2-3) ml
Methode: Elispot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Nachweis einer zellulären Immunantwort gegen Toxoplasma gondii, z. B. bei
unklarer Serologie.
Referenzbereich: negativ
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69
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasmose Medikamentenspiegelbestimmung: Pyrimethamin (s. S. 216 )
Zeitpunkt der 1. Spiegelbestimmung am 10. Behandlungstag empfohlen.
Indikation: Überprüfung von Compliance, Resorption und Kumulation.
Toxoplasmose Medikamentenspiegelbestimmung: Sulfadiazin (s. S. 217 )
Zeitpunkt der 1. Spiegelbestimmung am 10. Behandlungstag empfohlen.
Indikation: Überprüfung von Compliance und Resorption.
Trichinose (s. S. 260 )
Tropheryma whipplei (Morbus Whipple) DNA (F)
Dünndarmbiopsie nativ (in wenig NaCl)
Material: Biopsie, Liquor
Menge: 2 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: Verdacht auf Morbus Whipple
Referenzbereich: negativ
Tularämie (s. S. 30 )
TWAR (Chlamydophila pneumoniae) (s. S. 17 )
Ureaplasma urealyticum
Die Patient(inn)en sind meist symptomlos. Bei Neugeborenen von infizierten Müttern beträgt
die Transmissionsrate intra partum bis zu 50%. Reife Neugeborene erkranken selten, unreife
Neugeborene (<1000 g GG) sind jedoch disponiert für eine Infektion (meist tritt eine
Pneumonie auf).
Ureaplasma-urealyticum-AK NT
U. urealyticum kommt in geringer Keimzahl als Standortflora im Genitaltrakt vor!
Unter Antibiotikatherapie können falsch-positive Ergebnisse auftreten.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tag)
Indikation: Unspezifische Genitalinfektion, Urethritis, Vaginitis, postinfektiöse reaktive
Arthritis, erhöhte Frühgeburtlichkeit; bei Ngb.: Pneumonie, postpartales Fieber
Referenzbereich: <1:16 Titer
Kultureller Nachweis von U. urealyticum (s. S. 243 )
Ureaplasma-urealyticum-DNA
Ejakulat (1 ml), Urin (5-10 ml), Abstrich (in 1 ml NaCl oder in unserem speziellen
Transportgefäß mit weißer Kappe).
Material: Ejakulat, Genitalabstrich, Urin
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: unspezifische Genitalinfektion, Urethritis, Vaginitis, postinfektiöse reaktive
Arthritis, erhöhte Frühgeburtlichkeit; bei Ngb. (Trachealsekret): Pneumonie, postpartales
Fieber
Referenzbereich: negativ
Varizella-Zoster-Virus (Windpocken, Zoster)
Das Varizella-Zoster-Virus (VZV) verursacht als Primärinfektion die Windpocken und bei
Reaktivierung eine Gürtelrose (Zoster). Bei Neugeborenen und Immunsupprimierten sind
schwere Verläufe möglich. Bei Windpocken in der Frühschwangerschaft können
Missbildungen (Kongenitales Varizellen Syndrom) auftreten. Bei VZV-Kontakt von
seronegativen Schwangeren ist eine Postexpositionsprophylaxe möglich.
Inkubationszeit: 14 (8 - 21) Tage, nach Immunglobulingabe auch länger
70
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus; direkter Kontakt zu Windpocken, besonders in SS (zeitgerechte
Immunglobulingabe möglich) und um Geburtstermin
Referenzbereich: <50 mU/ml
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK EIA (ultrasensitiv)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Serologische Bestimmung niedriger Antikörpertiter, vor allem nach Impfung
Referenzbereich: siehe Befund mU/ml
Varizella-Zoster-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Windpockenerkrankung
Referenzbereich: <2.0 Index
Varizella-Zoster-Virus-IgA-AK EIA
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. reaktivierte VZV-Infektion (Zoster), typisch segmental begrenzte Bläschen
begleitet von schmerzhafter Neuritis; Paresen, Parästhesien auch ohne
Hauterscheinungen, Zosterenzephalitis; bei Immunsuppression schwere Verläufe möglich
Referenzbereich: bis 1:512 Titer
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK Avidität
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Aviditätstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: siehe Befund %
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK Avidität (ultrasensitiv)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Plasma, Nabelschnurblut, fetales EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Aviditätstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: siehe Befund %
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor
Menge: 200 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung, MRZ-Reaktion bei V.a. MS
Referenzbereich: negativ mIU/ml
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Varicella-Zoster-Virus-Anzucht in Zellkultur
auf diploiden Fibroblasten
Bläscheninhalt, Rachenabstrich, Rachensekret immer gekühlt (+4◦ C) per Eilsendung
einsenden. Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich
Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Bläscheninhalt, Rachenabstrich
Methode: Kultur
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 7-14 Tage)
Indikation: V.a. Windpocken
Varizella-Zoster-Virus-DNA
Liquor (mind. 0,5 ml), Fruchtwasser (mind. 2-5 ml, nativ)
Material: Bläscheninhalt, Fruchtwasser, Liquor
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Windpocken, ZNS-Beteiligung, Abklärung eines unklaren vesikulären
Exanthems
Referenzbereich: negativ
Genotypisierung VZV
Besondere Fragestellung bei positivem Befund: Wildvirus oder Impfvirus?
Unterscheidungsmöglichkeit durch PCR-basierte Genotypisierung.
VZV-spezifische T-Lymphozyten
Nachweis erregerspezifischer T-Lymphozyten: Messung zytokinsezernierender
Lymphozyten (z. B. IFN-gamma) nach Antigenstimulation in vitro
Abnahme Mo-Mi, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Vorherige telefonische
Anmeldung erbeten! Nur Heparinblut möglich! Kommerzielle oder von uns erhältliche
Heparinröhrchen verwenden.
Material: Heparinblut
Menge: 9 ml
Methode: Elispot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Nachweis einer zellulären Immunität gegen VZV z. B. bei unklarer Serologie
nach Impfung
VZV (s. S. 70 )
Varizella-Zoster-Virus
West-Nil-Virus (WNV)
Das West-Nil-Virus ist ein behülltes RNA-Virus der Flaviviridae-Familie, das sowohl in
tropischen als auch in gemäßigten Gebieten vorkommt. Das Virus infiziert hauptsächlich
Vögel, kann aber auch auf Menschen, Pferde und andere Säugetiere übergreifen.
Das Virus wird durch Stechmücken übertragen. In Nordamerika ist es die gemeine kleine
Hausmücke (Culex pipiens) und ein Hybrid aus Culex pipiens und Culex molestus.
Beim Menschen ergeben sich in 80% der Fälle keine Symptome durch die Infektion. In
anderen Fällen ergeben sich Grippe-ähnliche Symptome, bekannt als West-Nil-Fieber. Das
Virus ist in der Lage, die Blut-Hirn-Schranke zu passieren, und kann dadurch eine
Enzephalitis (Entzündung des Gehirns) oder eine Meningitis (Entzündung der Hirnhaut)
auslösen (in 0,7% der Fälle). Beide Fälle können tödlich enden. Inkubationszeit: 2 - 14 Tage
West-Nil-Virus-AK IgG IFT (F)
Cave: Kreuzreaktionen mit anderen Viren der Flavivirus-Gruppe (z.B. FSME-Virus) sind
möglich.
Material: Serum, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion mit West-Nil-Virus, Auslandsaufenthalt
Referenzbereich: <1:40 Titer
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
West-Nil-Virus-AK IgM IFT
(F)
Cave: Kreuzreaktionen mit anderen Viren der Flavivirus-Gruppe (z.B. FSME-Virus) sind
möglich.
Material: Serum, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion mit West-Nil-Virus
Referenzbereich: <1:40 Titer
West-Nil-Virus-RNA (F)
Das West-Nil-Virus ist der Erreger des West-Nil-Fiebers. Es gehört zu der Gruppe der
Flaviviren (Übertragung durch Culex-Mücken). Hauptverbreitungsgebiete sind Afrika,
Indonesien, Israel und Indien.
Liquor (mind. 0,5 ml), EDTA-Blut (2-3 ml)
Material: EDTA-Blut, Serum, Liquor
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage)
Indikation: Myalgien, Kopfschmerzen, makulopapulöses Exanthem, Lymphadenopathie
nach Aufenthalt in Risikogebieten.
Referenzbereich: negativ
Windpocken (s. S. 70 )
Varizella-Zoster-Virus
Wundstarrkrampf (s. S. 21 )
Tetanus
Yersiniosen (Y. enterocolitica, Y. pseudotuberculosis)
Gramnegative Stäbchen, die durch kontaminierte Nahrung aufgenommen werden. Die
Ausscheidung der Yersinien mit dem Stuhl kann viele Wochen nach Ende der Diarrhoe
fortbestehen. Insbesondere bei HLA B27-positiven Patienten kann es post infectionem zu
Arthritiden, Erythema nodosum und Arthralgien kommen.
Inkubationszeit: 1 - 14 Tage
Meldepflichtige Erkrankung (bei akuter Enteritis)!
Yersinia-IgG-AK EIA
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Yersiniose (Enteritis, pseudoappendizitische Symptomatik) bzw.
yersinienbedingte Komplikationen (reaktive Arthritis, Erythema nodosum, akute
Glomerulonephritis, Myokarditis)
Referenzbereich: <20 U/ml
Yersinia-IgM-AK EIA
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Yersiniose (Enteritis, pseudoappendizitische Symptomatik) bzw.
yersinienbedingte Komplikationen (reaktive Arthritis, Erythema nodosum, akute
Glomerulonephritis, Myokarditis)
Referenzbereich: <20 U/ml
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Yersinia-IgA-AK EIA
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Yersiniose (Enteritis, pseudoappendizitische Symptomatik) bzw.
yersinienbedingte Komplikationen (reaktive Arthritis, Erythema nodosum, akute
Glomerulonephritis, Myokarditis)
Referenzbereich: <20 U/ml
Yersinia-enterocolitica-IgG Blot
Antigen: Lysat aus Yersinia-enterocolitica-Stämmen, durch Kreuzreaktionen werden aber in
der Regel auch Antikörper gegen Yersinia pseudotuberculosis und Y. pestis detektiert
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei positivem Ergebnis im EIA
Referenzbereich: negativ
Yersinia-enterocolitica-IgA Blot
Antigen: Lysat aus Yersinia-enterocolitica-Stämmen, durch Kreuzreaktionen werden aber in
der Regel auch Antikörper gegen Yersinia pseudotuberculosis und Y. pestis detektiert
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei positivem Ergebnis im EIA
Referenzbereich: negativ
Zeckenübertragene Erkrankungen
Borreliose (Lyme Disease) (s. S. 14 )
FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 )
Seltene Erkrankungen:
Ehrlichiose / Anaplasmose (s. S. 25 )
Babesiose (s. S. 250 )
Rickettsiose (s. S. 61 )
Zoster (Herpes Zoster) (s. S. 70 )
Reaktivierte Infektion mit Varizella-Zoster-Virus
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Mutterschaftsvorsorge / Pränataldiagnostik
Mutterschaftsvorsorge
Für die serologischen Untersuchungen bitte eine Monovette Serum/Vollblut einsenden. Bitte
zusätzlich eine EDTA-Monovette 7,5 ml für die Blutgruppenbestimmung und/oder den
Antikörpersuchtest abnehmen.
Obligat im 1. Trimenon
Bestimmung der Blutgruppe und des Rh-Faktors (s. S. 183 )
Antikörpersuchtest für irreguläre Antikörper (s. S. 183 )
Röteln-Immunstatus (s. S. 62 )
sofern keine zwei Rötelnimpfungen im Impfpass dokumentiert sind!
Luessuchreaktion (TPPA) (s. S. 64 )
HIV-Screening (s. S. 43 )
(bei Einverständnis der Schwangeren)
Chlamydia trachomatis aus Urin (ggf. Cervixabstrich) (s. S. 19 )
Nicht obligat im 1. Trimenon
(Bei Risikopatienten Bestimmung des Immunstatus vor der Schwangerschaft sinnvoll.)
Toxoplasmose-Screening (s. S. 67 )
(ohne medizinische Indikation IGEL)
Cytomegalie-Screening (s. S. 22 )
(bei Risikoberufen, z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin)
Parvovirus B19 (Ringelröteln) (s. S. 57 )
(bei Risikoberufen, z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin)
Varizella-zoster-Virus (Windpocken) (s. S. 70 )
(bei Risikoberufen, z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin)
Obligat im 3. Trimenon
Antikörpersuchtest für irreguläre Antikörper (24. -27. SSW) (s. S. 183 )
Hepatitis B (HBsAg) (s. S. 35 )
IGeL-Untersuchungen in der Schwangerschaft
Die Kosten für Individuelle Gesundheits-Leistungen (IGEL) werden Ihren Patientinnen privat
in Rechnung gestellt. Grundsätzlich können Sie jeden Parameter auch einzeln anfordern. Die
Abrechnung erfolgt dann direkt mit Ihren Patientinnen zum 1,0-fachen Satz der GOÄ. Bitte
aktuelle Adresse der Patientin angeben.
Bei Risikoberufen z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin vor Schwangerschaft und bei
Kontakt
CMV IgG (ggf. IgM-AK) (s. S. 22 )
Parvovirus B19 IgG-AK (ggf. IgM) (s. S. 57 )
VZV IgG-AK (ggf. IgM) (s. S. 70 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasmose-Sceening (IgG-AK, ggf. IgM-AK) (s. S. 67 )
Abklärung pränataler Infektionen (TORCH, STORCH)
Syphilis (T. pallidum) (s. S. 64 )
T oxoplasmose (s. S. 67 )
Others (weitere Erreger, siehe unten)
R öteln (s. S. 62 )
C MV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
H erpes simplex Virus Typ 1/2 (s. S. 39 )
Varizella-zoster-Virus (s. S. 70 )
Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCMV) (s. S. 49 )
Listerien (s. S. 48 )
Parvovirus B19 (s. S. 57 )
Enteroviren (z. B. Coxsackie-Virus) (s. S. 26 )
HIV (s. S. 43 )
Borreliose (s. S. 14 )
Pränatale Diagnostik
Ansprechpartner für spezielle Fragen:
Frau Prof. Enders: 0711/6357-120
Herr Dr. Martin Enders: 0711/6357-117
Fragen zu molekularbiologischen Untersuchungen:
Herr Dr. Schalasta: 0711/6357-140
Fragen zum Down-Screening:
Herr Dr. Lüthgens: 0711/6357-210
Herr Dr. Alkier: 0711/6357-211
Bei Entnahme nie Heparin benutzen, auch nicht zum Benetzen der Punktionsnadel!
Fruchtwasser nie zentrifugieren!
Chorionzottenbiopsie (11. - 18. SSW)
Biopsie (10 - 20 mg) z.B in RPMI-Medium (ohne Heparin!) oder in steriler 0,9%iger
NaCl-Lösung
Versand: gekühlt, per Eildienst
Fruchtwasser (ab 17. SSW; optimal in SSW 19)
Fruchtwasser (10 ml) nativ, in sterilem Röhrchen, nicht zentrifugieren!
Versand: gekühlt, per Eildienst
Fetalblut (ab 22 - 23. SSW)
Fetalblut in EDTA -Röhrchen einsenden
Versand: gekühlt, per Eildienst
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Fetaler Aszites
Punktat (4 - 8 ml) nativ in sterilem Röhrchen versenden
Versand: gekühlt, per Eildienst
Bei auffälligem Ultraschall (auch nach SSW 23)
wie oben beschrieben
Präeklampsie-Risiko (sFlt-1/PlGF-Quotient) (s. S. 171 )
ein erhöhter sFlt-1/PlGF-Quotient kann der klinischen Manifestation einer Präeklampsie bis
zu 4 Wochen vorausgehen.
HELLP-Syndrom
Unter dem "HELLP-Syndrom" versteht man eine schwere Verlaufsform der Präeklampsie, die
gekennzeichnet ist durch:
Klinisch: Oberbauchschmerzen, Übelkeit bzw. Erbrechen, Kopfschmerzen, allgemeines
Krankheitsgefühl, arterielle Hypertonie.
Laborchemisch: Trias aus Hämolyse (H emolysis), erhöhten Leberwerten (E levated L iver
Enzymes) und Thrombozytopenie (L ow P latelets).
Auftreten meist bei über 25jährigen Schwangeren zwischen Mitte 2. Trimenon und einigen
Tagen nach Geburt, im Median in der 34. SSW.
Im Sinne einer effizienten Stufendiagnostik können primär Parameter angefordert werden,
die für die Diagnosestellung als Suchtest unverzichtbar sind, da sie das Krankheitsbild
definieren (Stufe 1). Zur weiteren Abklärung (zum Beispiel Einschätzung des Schweregrads,
Abgrenzung von Differenzialdiagnosen) sind die Parameter der Stufe 2 geeignet.
Für ein "HELLP-Labor" bitte in jedem Fall EDTA-Blut und Serum einsenden, für die
weiterführende Diagnostik der Stufe 2 (z. B. Verlaufskontrolle bei bereits nachgewiesenem
HELLP-Syndrom) auch Urin und gefrorenes Citratplasma. Sinnvolle Laboruntersuchungen:
Stufe 1
Blutbild, groß, mit mikroskopischer Differenzierung (s. S. 179 )
Wegweisend sind eine Thrombozytopenie (immer <150.000/µl, meist sogar <100.000) und
evtl. der Nachweis von Fragmentozyten im Blutausstrich (in ca. 70 % der Fälle). Die
Thrombozytenzählung ist die wichtigste Untersuchung bei V. a. HELLP-Syndrom, sie
ermöglicht z. B. die Abgrenzung zur akuten Virushepatitis und zur intrahepatischen
Schwangerschafts-Cholestase. Hämatokritwerte über 38 % gelten im Rahmen einer
Präeklampsie als prognostisch ungünstig (Hämokonzentration).
Haptoglobin im Serum (s. S. 181 )
hoch sensitiver und spezifischer Hämolyse-Marker, bei Hämolyse und damit auch beim
HELLP-Syndrom erniedrigt .
GOT (AST) im Serum (s. S. 190 )
typischerweise moderat (jedoch meist mehr als 2- bis 3-fach) erhöht.
Bitte kein Vollblut, sondern Serum einsenden.
GPT (ALT) im Serum (s. S. 191 )
typischerweise moderat (jedoch meist mehr als 2- bis 3-fach) erhöht.
LDH im Serum (s. S. 192 )
durch die Hämolyse erhöht auf >600 U/l, allerdings weniger spezifisch als Haptoglobin.
Ermöglicht die Abgrenzung zur akuten Schwangerschaftsfettleber, bei der die LDH unter
600 U/l bleibt.
Bitte zur Vermeidung falsch-hoher Werte durch in-vitro-Hämolyse unbedingt Serum und
kein Vollblut einsenden.
Stufe 2
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Gesamteiweiß-Kreatinin-Quotient im Urin (s. S. 221 )
dient dem Nachweis einer bei Präeklampsie sehr häufig auftretenden Proteinurie (Quotient
>100 mg/g Kreatinin), daher auch differenzialdiagnostisch hilfreich. Kann in seltenen Fällen
beim HELLP-Syndrom normal sein, bei über 90 % der Patientinnen findet man aber
erhöhte Werte.
Kreatinin im Serum (s. S. 192 )
zur Erkennung einer z. T. als Komplikation auftretenden Niereninsuffizienz. Aus
Serum-Kreatinin, Alter und Geschlecht ist die Abschätzung der glomerulären Filtrationsrate
(GFR) anhand der vereinfachten MDRD-Formel möglich. Dazu bitte Kreatinin und "GFR
nach vereinfachter MDRD-Formel" anfordern, die Berechnung wird dann von uns
automatisiert und kostenlos vorgenommen.
gamma-GT im Serum (s. S. 190 )
leicht erhöht oder normal, stark erhöhte Werte sprechen eher für eine intrahepatische
Schwangerschafts-Cholestase oder eine akute Schwangerschaftsfettleber.
Bilirubin im Serum (s. S. 189 )
Im Vergleich zu Haptoglobin eingeschränkte Sensitivität (ca. 50 %), bildet das Ausmaß
einer ausgeprägten Hämolyse aber besser ab. In der frühen Krankheitsphase oft noch
normal. Sehr hohe Bilirubin-Konzentrationen sprechen eher gegen ein HELLP-Syndrom,
ebenso wie ein hoher Anteil an direktem Bilirubin.
Bei erhöhtem Gesamt-Bilirubin bitte ggf. direktes Bilirubin nachfordern.
Harnsäure im Serum (s. S. 191 )
Im Gegensatz zur normalen Schwangerschaft (Harnsäure < 5 mg/dl) bei Präeklampsie
erhöht, kann das erste Zeichen einer beginnenden Präeklampsie sein.
D-Dimere (Citratplasma, gefroren) (s. S. 178 )
in der Regel erhöht.
Quick-Wert (s. S. 174 )
zu Beginn der Erkrankung meist normal, in der späten Krankheitsphase oft erniedrigt.
Abklärung habitueller Aborte
Von diesem Problem (definiert als 3 oder mehr aufeinander folgende Aborte) sind etwa 1 %
der Paare mit Kinderwunsch betroffen. Als häufigste Ursachen wurden anatomische
Anomalien, Chromosomenaberrationen, Gerinnungsstörungen, Autoimmunerkrankungen
und endokrine Dysfunktionen beschrieben. Infektionskrankheiten kommen i.d.R. nicht als
Auslöser in Betracht, da sie normalerweise nicht mehrere Aborte verursachen. Empfohlene
Laboruntersuchungen:
Phospholipid-Antikörper und Lupus-Antikoagulans (s. S. 145 )
Bei etwa 15 % der Frauen mit habituellen Aborten findet sich als Ursache ein
Antiphospholipidsyndrom. Da zudem eine evidenzbasierte Therapie zur Verfügung steht,
sollte jede Frau mit habituellen Aborten unbedingt auf das Vorliegen eines
Antiphospholipidsyndroms untersucht werden.
Parameter: Antikörper gegen Phospholipide (Cardiolipin und beta-2-Glykoprotein I) und
Lupus-Antikoagulans
Material: Serum und gefrorenes Citrat-Plasma
Menge: je 0,6 ml
Antinukleäre Antikörper (ANA, IFT) (s. S. 129 )
Material: Serum
Menge: 0,3 ml
Antithrombin-III-Aktivität (s. S. 177 )
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 0,6 ml
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
APC-Resistenz (s. S. 177 )
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 0,6 ml
Bei Ratio < 1,9 zusätzlich Faktor-V-Leiden-Mutationsanalyse zur Bestätigung durchführen
(Material: EDTA-Vollblut).
Homocystein (s. S. 177 )
Material: EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Serum
Menge: 0,2 ml
nüchtern abnehmen, nach Gewinnung so schnell wie möglich zentrifugieren und trennen
Protein-C-Aktivität (s. S. 176 )
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 0,6 ml
Protein-S-Aktivität (s. S. 176 )
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 0,6 ml
Prothrombin-(Faktor II)-Mutationsanalyse PCR (s. S. 104 )
Material: EDTA-Vollblut
Menge: 2 ml
Progesteron (s. S. 167 )
Ausschluss einer Lutealinsuffizienz bei rezidivierenden Aborten im 1. Trimenon
Material: Serum
Menge: 0,5 ml
TSH (s. S. 169 )
Ausschluss einer Hypothyreose
Material: Serum
Menge: 0,5 ml
Chromosomenanalyse (F)
Bei habituellen Aborten ist eine Chromosomenanalyse beider Partner angezeigt. Bei etwa
4 % der betroffenen Paare wird eine Chromosomenanomalie gefunden.
Heparin-Vollblut bei Raumtemperatur lagern und verschicken, weder kühlen noch
einfrieren!
Material: Heparinblut
Menge: 10 ml
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Wochen)
Indikation: V. a. Chromosomenstörung, habituelle Aborte, unerfüllter Kinderwunsch u. a.
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Infektionserreger nach Symptomen
Pharyngitis/Angina (Erreger)
Eine Vielzahl von Erregern können eine Pharyngitis verusachen. Die wichtigsten Erreger, die
wir im Labor nachweisen können, sind hier aufgeführt.
RSV (s. S. 60 )
vor allem bei Kleinkindern
Adenoviren (s. S. 9 )
Säuglinge, Kinder, seltener Erwachsene
Bakterielle Erreger (s. S. 238 )
z. B. Moraxella catarrhalis, Streptokokken Gruppe A,
Haemophilus influenzae
Influenza-Viren (s. S. 46 )
bei Kindern und Erwachsenen
Parainfluenza (s. S. 55 )
bei Kindern und Erwachsenen
Chlamydia pneumoniae (s. S. 17 )
bei Jugendlichen und Erwachsenen
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
Herpes-simplex-Virus Typ 1 (s. S. 39 )
bei Kindern, seltener bei Erwachsenen
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 )
Candida albicans (s. S. 17 )
vor allem bei Immunsupprimierten
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
vor allem bei Immunsupprimierten
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 )
Tracheobronchitis, Krupp, Bronchiolitis
Haemophilus influenzae (s. S. 32 )
RSV (s. S. 60 )
vor allem bei Kleinkindern
Humanes Metapneumovirus (s. S. 45 )
Humanes Bocavirus (s. S. 41 )
Parainfluenza (s. S. 55 )
Bordetella pertussis (s. S. 13 )
Bordetella parapertussis (s. S. 12 )
seltener
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
Chlamydia pneumoniae (s. S. 17 )
bei Jugendlichen und Erwachsenen
Adenoviren (s. S. 9 )
Influenza-Viren (s. S. 46 )
80
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Masern-Virus (s. S. 50 )
C. diphtheriae (s. S. 21 )
Pneumonie (Erreger)
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
Bakterielle Erreger (s. S. 238 )
z. B. Moraxella catarrhalis, Streptokokken Gruppe A, Pneumokokken, Haemophilus
influenzae
Adenoviren (s. S. 9 )
RSV (s. S. 60 )
vor allem bei Kleinkindern
Humanes Metapneumovirus (s. S. 45 )
Humanes Bocavirus (s. S. 41 )
Chlamydia pneumoniae (s. S. 17 )
Chlamydia trachomatis (s. S. 19 )
beim Neugeborenen
Influenza-Viren (s. S. 46 )
bei Kindern und Erwachsenen
Parainfluenza (s. S. 55 )
Pneumokokken (s. S. 238 )
seltenere Erreger:
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
Masern-Virus (s. S. 50 )
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 )
Bordetella pertussis (s. S. 13 )
Legionellen (s. S. 47 )
Chlamydophila psitacci (Ornithose) (s. S. 18 )
Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 21 )
Bei Immunsupprimierten
Pneumocystis jiroveci (s. S. 239 )
Aspergillus (s. S. 10 )
Candida (s. S. 17 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
Tuberkulose (s. S. 247 )
Gastroenteritis (Erreger)
Eine Vielzahl an Krankheitserregern können im Verlauf der Erkrankung eine Gastroenteritis
verursachen. Die wichtigsten Erreger, für die es Nachweismethoden gibt, sind hier
aufgeführt.
Rotaviren (s. S. 61 )
häufiger bei Kleinkindern und Säuglingen
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81
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Adenoviren (s. S. 9 )
häufiger bei Kleinkindern und Säuglingen
Astroviren (s. S. 11 )
häufiger bei Kleinkindern und Säuglingen
Calici-Viren (s. S. 54 )
Enteroviren (Coxsackie-ECHO-Viren) (s. S. 26 )
Noro-Viren (s. S. 54 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
bei Immunsupprimierten
Virale Hepatitis (s. S. 82 )
Dyspepsie-Coli (s. S. 241 )
bei Kindern unter 7 Jahren
Bakterielle Enteritiserreger (s. S. 241 )
Campylobacter, Salmonellen, Yersinien, EHEC
Clostridium difficile (s. S. 241 )
nach Antibiotikatherapie (pseudomembranöse Enterokolitis)
Clostridium perfringens (s. S. 241 )
Staphylokokken (s. S. 241 )
besonders bei Schulkindern
Amöben (s. S. 250 )
nach Auslandsaufenthalt
Kryptosporidien (s. S. 254 )
bei Kleinkindern und Immunsupprimierten (gehäuft in den Sommermonaten)
Lamblien (s. S. 254 )
Hepatitiden (Erreger)
Eine Hepatitis kann als Begleitsymptomatik bei vielen Infektionen auftreten. Die wichtigsten
Hepatitiserreger sind hier aufgeführt:
Hepatitis A (s. S. 35 )
Hepatitis B (s. S. 35 )
Hepatitis C (s. S. 37 )
Hepatitis E (s. S. 38 )
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
seltenere Erreger:
Adenoviren (s. S. 9 )
Brucellen (s. S. 15 )
Hepatitis D (s. S. 38 )
bei gleichzeitiger Hepatitis B
Coxsackie-A-, -B-Viren (s. S. 26 )
Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 21 )
Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 )
82
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Listerien (s. S. 48 )
Leptospiren (s. S. 48 )
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 )
Yersinien (s. S. 73 )
Meningitis (Erreger)
Coxsackie-B-, ECHO-Viren (s. S. 26 )
Borrelia burgdorferi (s. S. 14 )
Haemophilus influenzae (s. S. 237 )
Meningokokken, Pneumokokken (s. S. 237 )
Mumps-Virus (s. S. 51 )
Listerien (s. S. 48 )
seltenere Erreger:
Adenovirus (s. S. 9 )
Coxsackie-A-Viren (s. S. 26 )
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 )
FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 )
HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 42 )
Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 )
LCM (Lympho-Chorio-Meningitis-Virus) (s. S. 49 )
Tuberkulose (s. S. 247 )
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
Enzephalomyelitis akut, chronisch (Erreger)
Herpes-simplex-Virus Typ 1/2 (s. S. 39 )
FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 )
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
Masern-Virus (s. S. 50 )
Mumps-Virus (s. S. 51 )
Röteln-Virus (s. S. 62 )
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
seltenere Erreger:
Borrelia burgdorferi (s. S. 14 )
HIV (s. S. 43 )
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
Leptospiren (s. S. 48 )
Listerien (s. S. 48 )
Treponema pallidum (s. S. 64 )
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83
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasma gondii (s. S. 67 )
bei Immunsupprimierten
HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 42 )
bei Immunsupprimierten
Enzephalitis, postinfektiös (Erreger)
Masern-Virus (s. S. 50 )
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
seltenere Erreger:
Borrelia burgdorferi (s. S. 14 )
Röteln-Virus (s. S. 62 )
HIV-1 (s. S. 43 )
Toxoplasma gondii (s. S. 67 )
Polyradikulitis (Erreger)
Borrelia burgdorferi (s. S. 14 )
Campylobacter (s. S. 16 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 )
FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 30 )
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
seltenere Erreger:
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
Influenza-Viren (s. S. 46 )
Masern-Virus (s. S. 50 )
Röteln-Virus (s. S. 62 )
Mumps-Virus (s. S. 51 )
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
Coxiella burnettii (Q-Fieber) (s. S. 21 )
Paresen (Erreger)
Borrelia burgdorferi (s. S. 14 )
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 )
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
Brucellen (s. S. 15 )
HIV-1 (s. S. 43 )
Polio-Virus (s. S. 58 )
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 )
Masern-Virus (SSPE) (s. S. 50 )
Coxiella burnettii (Q-Fieber) (s. S. 21 )
Endokarditis (Erreger)
Bakterielle Erreger (s. S. 238 )
z. B. Streptokokken, Staphylokokken, Enterokokken
Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 21 )
Legionellen (s. S. 47 )
Influenza-Viren (s. S. 46 )
Myokarditis (Erreger)
Coxsackie-B-Viren (s. S. 26 )
Influenza-Viren (s. S. 46 )
Parvovirus B19 (s. S. 57 )
seltenere Erreger:
Coxsackie-A- und ECHO-Viren (s. S. 26 )
Borrelia burgdorferi (s. S. 14 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
vor allem bei Immunsupprimierten
Chlamydia pneumoniae (s. S. 17 )
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 21 )
Tuberkulose (s. S. 247 )
C. diphtheriae (s. S. 21 )
Mumps-Virus (s. S. 51 )
Adeno-Virus (s. S. 9 )
Exantheme (Erreger)
feinfleckig makulopapulös:
Röteln-Virus (s. S. 62 )
Masern-Virus (s. S. 50 )
HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 42 )
Streptokokken (s. S. 239 )
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
Parvovirus B19 (s. S. 57 )
Adenoviren (s. S. 9 )
CMV (Cytomegalie Virus) (s. S. 22 )
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 )
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
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85
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 )
HHV 7 (Humanes Herpes Virus Typ 7) (s. S. 42 )
Rickettsien (s. S. 61 )
vesikulär:
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 )
Coxsackie-A-Viren (s. S. 26 )
hämorrhagisch:
Neben verschiedenen importierten hämorrhagischen Fieberviren der Alpha- und Flaviviren
(z.B. Gelbfieber, Dengue), der Bunyavirus-Gruppe und den Filoviren (Marburg-,
Ebola-Virus) kommen weitere in Europa verbreitete Erreger in Frage.
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
schwere Verläufe bei Immunsupprimierten und bei Patienten mit ausgeprägter
Neurodermitis
Masern-Virus (s. S. 50 )
Enterovirus Typ 71 (s. S. 26 )
Rickettsien (s. S. 61 )
Lokalisierte Exantheme (Erreger)
Neben den unten genannten Erregern verursachen weitere Viren lokalisierte Exantheme (z.
B. Warzen): Papilloma-Viren, Molluscum contagiosum-Virus.
Seltener: Melkerknoten-Virus (Rind), Orf-V. (Schaf, Katze), Vesikulo-Stomatitis-V. (Pferd,
Rind, Schwein)
Borrelia burgdorferi (s. S. 14 )
Erythema migrans, Acrodermatitis chronica atrophicans
HSV (Herpes simplex-Virus) (s. S. 39 )
Stomatitis aphthosa, Lippenherpes, Genitalherpes
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
Herpes Zoster (Gürtelrose)
Hepatitis B (s. S. 35 )
Gianotti-Crosti-Syndrom (an den Extremitäten)
Coxsackie-A-Viren (s. S. 26 )
Hand-Fuß-Mund-Krankheit
Lymphadenitis (Erreger)
Die wichtigsten (vor allem viralen) Erreger
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
generalisiert, teilweise auch lokal, z.B. cervikal
HIV (s. S. 43 )
generalisiert
Toxoplasma gondii (s. S. 67 )
generalisiert, auch lokalisiert
Röteln-Virus (s. S. 62 )
nuchal, postaurikulär (auch generalisiert)
86
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Brucellen (s. S. 15 )
generalisiert (selten)
Mykobakterien (auch atypische Mykobakterien) (s. S. 247 )
generalisiert oder lokalisiert
Bartonella henselae (s. S. 11 )
cervical, im Abflussbereich einer Extremität
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
cervical (eher selten)
Adenoviren (s. S. 9 )
cervical, abdominal
Yersinien (s. S. 73 )
abdominal (Lymphadenitis mesenterialis)
Chlamydia trachomatis (s. S. 19 )
inguinal (Lymphogranuloma venereum)
HSV Typ 2 (Herpes simplex 2) (s. S. 39 )
inguinal (im Rahmen einer akuten Infektion oder Reaktivierung)
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 )
im Primärstadium lokalisiert (inguinal); im Spätstadium generalisiert
N. gonorrhoeae (s. S. 31 )
inguinal (im Rahmen einer Genitalinfektion)
Mycoplasma hominis (s. S. 52 )
inguinal (im Rahmen einer Genitalinfektion; selten)
Ureaplasma urealyticum (s. S. 70 )
inguinal (im Rahmen einer Genitalinfektion; selten)
Lymphadenopathie-Syndrom (Erreger)
HIV-1, HIV-2 (s. S. 43 )
HTLV-1, HTLV-2 (s. S. 41 )
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 )
seltener
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
seltener
HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 42 )
seltener (bei Kindern)
HHV 7 (Humanes Herpes Virus Typ 7) (s. S. 42 )
Slow-Virus-Krankheiten (Slow Virus Diseases)
Masern-Virus (s. S. 50 )
SSPE (Subakut-sklerosierende Panenzephalitis)
Röteln-Virus (s. S. 62 )
PRP (Progressive Rötelnpanenzephalitis)
HIV-1, HIV-2 (s. S. 43 )
AIDS (aquired immunodeficiency syndrome)
Polyoma-(JC)-Virus (s. S. 59 )
PML (Progressive multifokale Leukenzephalopathie)
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87
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Spongiforme Enzephalopathien
Prionenerkrankungen
wie z.B. BSE, CJD, Kuru
Nierenversagen (Erreger)
(mit und ohne hämorrhag. Fieber), neben den genannten gibt es noch etliche importierte
Infektionserkrankungen als Ursache.
Hantaviren (s. S. 32 )
EHEC (s. S. 241 )
Leptospiren (s. S. 48 )
Malaria (s. S. 256 )
Hämorrhagische Zystitis (Erreger)
Adenoviren (s. S. 9 )
Polyoma-(BK)-Virus (s. S. 59 )
seltenere Erreger:
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
vor allem bei Immunsupprimierten
Schistosomen (s. S. 258 )
Tuberkulose (s. S. 247 )
Penis-/ Vulva-Läsionen (Erreger)
Herpes-simplex-Virus Typ 1/2 (s. S. 39 )
Papilloma-Viren (s. S. 54 )
Treponema pallidum (s. S. 64 )
Vulvovaginitis; Zervizitis (Erreger)
Bakterielle Erreger (s. S. 243 )
Gardnerella vaginalis (bakterielle Vaginose), Anaerobier, Streptokokken Gruppe B, N.
gonorrhoeae, M. hominis, U. urealyticum
Chlamydia trachomatis (s. S. 19 )
Candida albicans (s. S. 243 )
Papilloma-Viren (s. S. 54 )
Herpes-simplex-Virus Typ 2 (1) (s. S. 39 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
vor allem bei Imnnunsupprimierten
Trichomonas vaginalis (s. S. 261 )
Müdigkeitssyndrom (CFS)
Für das chronische Müdigkeitssyndrom werden verschiedene Ursachen diskutiert. Vor
Diagnosestellung sollten verschiedene Infektionserkrankungen ausgeschlossen werden, die
im Verlauf ein ähnliche Symptomatik auslösen können.
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
Hepatitis B (s. S. 35 )
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 28 )
88
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
HIV (s. S. 43 )
Borrelia burgdorferi (s. S. 14 )
Augenerkrankungen (Erreger)
Adenoviren (s. S. 9 )
Keratokonjunktivitis epidemica (auch hämorrhagisch)
Bakterielle Erreger (s. S. 244 )
Konjunktivitis (z. B. H. influenzae, Pneumokokken, Streptokokken, Staphylokokken,
Gonokokken)
Chlamydia trachomatis (s. S. 19 )
Konjunktivitis bei Neugeborenen, seltener auch danach
CMV (Cytomegalie Virus) (s. S. 22 )
(Chorio-)Retinitis bei Immunsupprimierten
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
Verschiedene Viren dieser Gruppe verursachen eine hämorrhagische Konjunktivitis bzw.
auch Keratitis.
Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 )
Konjuktivitis bzw. Keratitis durch HSV Typ 1, seltener HSV Typ 2
Masern-Virus (s. S. 50 )
Konjunktivitis bzw. Keratitis
Toxoplasma gondii (s. S. 67 )
(Chorio-)Retinitis bei Immunsupprimierten
Toxocara canis (s. S. 260 )
Retinitis
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
Keratitis
Arthritiden, Arthralgien (Erreger)
Die septische Arthritis ist hier nicht berücksichtigt. Es handelt sich vorwiegend um
parainfektiöse und reaktive Arthritiden.
Borrelia burgdorferi (s. S. 14 )
Hepatitis B (s. S. 14 )
Parvovirus B19 (s. S. 57 )
Röteln-Virus (s. S. 62 )
Salmonellen (s. S. 63 )
Yersinien (s. S. 73 )
seltenere Erreger:
Brucellen (s. S. 15 )
Campylobacter (s. S. 16 )
Chlamydia trachomatis (s. S. 19 )
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
Shigellen (s. S. 64 )
Mycoplasma hominis (s. S. 52 )
Ureaplasma urealyticum (s. S. 70 )
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89
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
N. gonorrhoeae (s. S. 31 )
Pleurodynie (Erreger)
Coxsackie-B-Viren (s. S. 17 )
Leptospiren (s. S. 48 )
Myositis (Erreger)
Neben der Myositis treten bei vielen Infektionserkrankungen im Verlauf Myalgien auf.
Influenza-Viren (s. S. 46 )
Coxsackie-Viren (s. S. 26 )
Trichinen (s. S. 260 )
Leptospiren (s. S. 48 )
Parotitis (Erreger)
Mumps-Virus (s. S. 51 )
Adeno-Viren (s. S. 9 )
Epstein-Barr-Virus (EBV) (s. S. 28 )
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 53 )
CMV (Cytomegalie Virus) (s. S. 22 )
Parainfluenza-Viren (s. S. 55 )
Pankreatitis (Erreger)
Mumps-Virus (s. S. 51 )
Coxsackie-Viren (s. S. 26 )
Orchitis (Erreger)
Mumps-Virus (s. S. 51 )
Brucellen (s. S. 15 )
Entero-Viren (s. S. 26 )
90
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Infektionserreger bei neonatalen Symptomen
Kongenitale anatomische Defekte (Fehlbildungen)
Röteln-Virus (s. S. 62 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
seltenere Erreger:
Toxoplasma gondii (s. S. 67 )
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
Treponema pallidum (s. S. 64 )
Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCMV) (s. S. 49 )
HSV (Herpes-simplex-Virus) (s. S. 39 )
Mikrozephalie, intrakranielle Verkalkungen
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
Toxoplasma gondii (s. S. 67 )
seltenere Erreger:
Röteln-Virus (s. S. 62 )
LCM (Lympho-Chorio-Meningitis-Virus) (s. S. 49 )
HSV (Herpes-simplex-Virus) (s. S. 39 )
HIV (Humanes-Immundefizienz-Virus) (s. S. 43 )
Dystrophie, petechiale Blutungen, Hepatosplenomegalie, Exanthem
Röteln-Virus (s. S. 62 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
seltenere Erreger:
Toxoplasma gondii (s. S. 67 )
Treponema pallidum (s. S. 64 )
Extremitätenfehlbildungen
Hautskarifikation, hypoplastische Gliedmaßen (mit Augen- und ZNS-Auffälligkeiten)
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 70 )
Sepsis, neonatal, disseminiert (und ähnliche Symptome)
Coxsackie-B-Viren Typ 3,4 (s. S. 26 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
Herpes-simplex-Virus Typ 2 (s. S. 39 )
Streptokokken (s. S. 244 )
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 )
seltenere Erreger:
weitere Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 26 )
Herpes-simplex-Virus Typ 1 (s. S. 39 )
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91
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Plasmodium spp. (s. S. 256 )
Listerien (s. S. 48 )
Meningitis / Enzephalitis, neonatal (Erreger)
Streptokokken Gruppe B (s. S. 237 )
Listerien (s. S. 48 )
E. coli (s. S. 237 )
Herpes-simplex-Virus Typ 1/ 2 (s. S. 39 )
Toxoplasma gondii (s. S. 67 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
Entero-Viren (s. S. 26 )
seltenere Erreger:
Röteln-Virus (s. S. 62 )
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 )
LCM (Lympho-Chorio-Meningitis-Virus) (s. S. 49 )
Myokarditis, neonatal (Erreger)
Coxsackie-B-Viren (s. S. 26 )
Parvovirus B19 (s. S. 57 )
seltenere Erreger:
Coxsackie-A- und ECHO-Viren (s. S. 26 )
Röteln-Virus (s. S. 62 )
Konjunktivitis, neonatal (Erreger)
Chlamydia trachomatis (s. S. 19 )
N. gonorrhoeae (s. S. 31 )
Streptokokken (s. S. 244 )
seltenere Erreger:
Adenoviren (s. S. 9 )
Haemophilus influenzae (s. S. 244 )
(bei Kleinkindern)
Pneumonie / Bronchiolitis, neonatal (Erreger)
Chlamydia trachomatis (s. S. 19 )
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
Mycoplasma hominis (s. S. 52 )
Parainfluenza-Virus Typ 3 (s. S. 55 )
RSV (s. S. 60 )
seltenere Erreger:
Ureaplasma urealyticum (s. S. 70 )
92
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Parainfluenza-Viren Typ 1, 2 (s. S. 55 )
Adenoviren (s. S. 9 )
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 64 )
Enteroviren (s. S. 26 )
Enteritis, neonatal, früh postnatal (Erreger)
Neben den aufgeführten Erregern kommen eine Vielzahl von Viren und Bakterien in Frage.
Rotavirus (s. S. 61 )
Adenoviren (s. S. 9 )
Noro-Viren (s. S. 54 )
seltenere Erreger:
Clostridium difficile (s. S. 241 )
Hepatitis / Hepatosplenomegalie, neonatal (Erreger)
Neben den genannten Viren, kann eine Begleithepatitis bei verschiedenen Infektionen
auftreten.
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 22 )
Herpes-simplex-Virus (s. S. 39 )
Toxoplasma gondii (s. S. 67 )
Bakterielle Erreger (s. S. 238 )
z. B. Streptokokken Gruppe B, E. coli, Listerien u. a.
seltenere Erreger:
Treponema pallidum (s. S. 64 )
Röteln-Virus (s. S. 62 )
Entero-Virus (s. S. 26 )
HIV (Humanes-Immundefizienz-Virus) (s. S. 43 )
Plasmodien spp. (s. S. 256 )
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93
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
94
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Nukleinsäure-Diagnostik
Infektiologie
Bei den in der Nukleinsäurediagnostik eingesetzten Techniken nehmen die empfindlichen
Nukleinsäure-Amplifikationsverfahren, auch kurz NAT (Nukleinsäure amplifizierende Technik)
genannt, eine herausragende Stellung ein. Sowohl die hohe Empfindlichkeit als auch die
Komplexität dieser Verfahren (z. B. PCR) sind eine große Herausforderung für das Testlabor.
Laborbedingte Probleme in Form falsch positiver oder falsch negativer Ergebnisse,
verursacht durch Kontamination oder Inhibition, gehören heute, dank des zunehmenden
Einsatzes automatisierter, geschlossener und standardisierter Verfahren sowie geeigneter
Kontrollen, weitgehend der Vergangenheit an. Jedoch ist auch die fortschrittlichste Technik
auf das richtige Untersuchungsmaterial sowie eine gute Präanalytik angewiesen. Wir bitten
daher, nachstehend aufgeführte Punkte unbedingt zu beachten:
Untersuchungsproben immer mit Einmalhandschuhen entnehmen und in separate, mit
Geburtsdatum, Namen und Vornamen des Patienten beschriftete, sterile Probengefäße
einbringen. Das Wiederöffnen dieser Gefäße und Umfüllen ist zu vermeiden. Die Proben
sollten bald möglichst verschickt werden.
Nicht jedes Untersuchungsmaterial ist geignet! Bitte beachten Sie die im
Leistungsverzeichnis unter den jeweiligen Untersuchungsparametern aufgelisteten
Untersuchungsmaterialien.
Heparin-haltiges Untersuchungsmaterial (z. B. heparinisiertes Blut) ist für die PCR-Analyse
ungeeignet. Heparin hemmt die PCR-Reaktion! Dies gilt auch für fetales EDTA-Blut, wenn
zur Antikoagulation die Punktionsnadel vor Cordozentese mit Heparin benetzt wurde.
* Nach DIN EN ISO 15189 nicht akkreditiert.
Viren
Adenovirus DNA (PCR) (s. S. 10 )
(Real-Time, qualitativ)
BK-(Polyoma)-Virus DNA (PCR) (s. S. 59 )
(Real-Time, qualitativ/quantitativ)
Coronaviren (NL63) RNA (RT-PCR) (s. S. 21 )
(Real-Time, qualitativ)
Cytomegalieviren DNA (PCR) (s. S. 24 )
(Real-Time, qualitativ/quantitativ)
Enteroviren RNA (RT-PCR) (s. S. 27 )
Coxsackie/Echo/Polioviren (Real-Time, qualitativ,
Genotypisierung nach Rücksprache)
Epstein-Barr-Virus DNA (PCR) (s. S. 29 )
(Real-Time, qualitativ/quantitativ)
Erythroviren (siehe Parvoviren) (s. S. 57 )
FSME-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 31 )
(Real-Time, qualitativ)
Hepatitis-A-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 35 )
(Real-Time, qualitativ)
Hepatitis-B-Virus-DNA (PCR) (s. S. 36 )
(Real-Time, quantitativ)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
95
Nukleinsäure-Diagnostik
Hepatitis-B-Virus-DNA (PCR) (s. S. 36 )
(Genotypisierung, reverse Hybr.)
Hepatitis-B-Virus-DNA (PCR/Sequenzierung) (s. S. 37 )
Surface-Gen / Polymerase-Gen
(genotypische Resistenzbestimmung)
Hepatitis-C-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 37 )
(Real-Time, qualitativ)
Hepatitis-C-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 37 )
(Real-Time, quantitativ)
Hepatitis-C-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 37 )
(Genotypisierung, reverse Hybr.)
Hepatitis-D-Virus RNA (RT-PCR)
(Real-Time, quantitativ)
(F)
(s. S. 38 )
Hepatitis-E-Virus-RNA (RT-PCR) (s. S. 39 )
(Real-Time, qualitativ)
Hepatitis-G-Virus (GBV-C) RNA (RT-PCR) (s. S. 31 )
(Real-Time, qualitativ)
Herpes-simplex-Virus Typ 1 DNA (PCR) (s. S. 40 )
(Real-Time, qualitativ)
Herpes-simplex-Virus Typ 2 DNA (PCR) (s. S. 40 )
(Real-Time, qualitativ)
HIV-1 RNA (RT-PCR) (s. S. 44 )
(Real-Time, quantitativ)
HIV-1 Resistenz (RT-PCR / Sequenzierung) (s. S. 44 )
Protease-Gen / RT-Gen (genotypische Resistenzbestimmung)
HIV-2 RNA (RT-PCR)
(Real-Time, qualitativ)
(F)
HTLV-1/2 RNA (RT-PCR)
(nested, qualitativ)
(s. S. 44 )
(F)
(s. S. 41 )
Humane Papilloma-Viren DNA (Hybridisierung) (s. S. 55 )
(High-Risk Genotypen, qualitativ)
Humane Papilloma-Viren DNA (Hybridisierung) (s. S. 55 )
(Low-Risk Genotypen, qualitativ)
Humane Papilloma-Viren DNA (Genotypisierung) PCR (s. S. 55 )
(37 HPV-Genotypen mittels rev. Hybridisierung)
Humane Papilloma-Viren RNA (TMA) (s. S. 55 )
(Nachweis der RNA der Onkogene E6/E7 der 14 gängigsten High-Risk HPV-Typen)
Humanes Bocavirus DNA (PCR) (s. S. 41 )
(Real-Time, qualitativ)
Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV 6) DNA (PCR) (s. S. 42 )
(Real-Time, qualitativ/quantitativ)
Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV 7) DNA (PCR) (s. S. 43 )
(Real-Time, qualitativ)
Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV 8) DNA (PCR) (s. S. 43 )
(Real-Time, qualitativ)
96
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Humanes Metapneumovirus RNA (RT-PCR) (s. S. 45 )
(Real-Time, qualitativ)
Influenzavirus RNA (RT-PCR) (s. S. 46 )
Typen A/B (Real-Time, qualitativ)
JC-(Polyoma)-Virus DNA (PCR) (s. S. 59 )
(Real-Time, qualitativ/quantitativ)
Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCM) RNA (RT-PCR)* (s. S. 49 )
(DIG-ELISA, qualitativ)
Masern-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 51 )
(Real-Time, qualitativ)
Mumps-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 52 )
(Real-Time, qualitativ)
Noroviren RNA (RT-PCR) (s. S. 54 )
vormals Norwalk-like-Viren
(Real-Time, qualitativ)
Parainfluenza-Virus Typ 3 RNA (RT-PCR) (s. S. 56 )
(Real-Time, qualitativ)
Parechovirus RNA (RT-PCR) (s. S. 56 )
(Real-Time, qualitativ)
Parvovirus B19 DNA (PCR) (s. S. 187 )
Humane Erythroviren Genotypen 1-3
(Real-Time, qualitativ/quantitativ,
Genotypisierung nach Rücksprache)
Polyomaviren (siehe BK bzw. JC) (s. S. 59 )
Respiratory Syncytial-Virus (RSV) RNA (RT-PCR) (s. S. 60 )
(Real-Time, qualitativ)
Rhinoviren RNA (RT-PCR) (s. S. 187 )
(Real-Time, qualitativ)
Rubellavirus RNA (RT-PCR) (s. S. 63 )
(Real-Time, quantitativ)
Rotavirus RNA (RT-PCR) (s. S. 62 )
Varizella-Zoster-Virus DNA (PCR) (s. S. 72 )
(Real-Time, qualitativ, Differenzierung Impf/Wildvirus)
West-Nil-Virus RNA (RT-PCR)
(Real-Time qualitativ)
(F)
(s. S. 73 )
Bakterien
Atypische Mykobakterien DNA (PCR)
(F)
(s. S. 247 )
Bartonellen DNA (PCR) (s. S. 12 )
B. henselae/quintana (Real-Time, qualitativ)
Bordetellen DNA (PCR) (s. S. 13 )
B. pertussis/parapertussis (Real-Time, qualitativ)
Borrelien DNA (PCR) (s. S. 15 )
B. burgdorferi sensu stricto, B. garinii, B. afzelii (Real-Time, qualitativ)
Chlamydia trachomatis RNA (TMA) (s. S. 20 )
(Real-Time, qualitativ)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
97
Nukleinsäure-Diagnostik
Clostridium difficile (Toxin A + B) DNA (PCR) (s. S. 242 )
(Real-Time, qualitativ)
Chlamydia pneumoniae DNA (PCR) (s. S. 18 )
(Real-Time, qualitativ)
Chlamydophila psittaci DNA (PCR)
Real-Time, qualitativ)
Ehrlichien DNA (PCR)
(Real-Time, qualitativ)
(F)
(F)
(s. S. 19 )
(s. S. 26 )
Helicobacter pylori DNA (PCR) (s. S. 246 )
(Real-Time, qualitativ, Bestimmung der Clarythromycin-Resistenz)
Legionellen DNA (PCR) (s. S. 47 )
L. pneumophila (Real-Time, qualitativ)
Leptospiren DNA (PCR)
(Real-Time, qualitativ)
(F)
(s. S. 48 )
Listerien DNA (PCR) (s. S. 49 )
L. monocytogenes (Real-Time, qualitativ)
MRSA DNA (PCR) (s. S. 263 )
Direktnachweis über mecA-Gen(reverse Hybr., qualitativ)
Mycoplasma genitalium DNA (PCR)* (s. S. 53 )
(Real-Time, qualitativ)
Mycoplasma hominis DNA (PCR) (s. S. 52 )
(Real-Time, qualitativ)
Mycoplasma pneumoniae DNA (PCR) (s. S. 247 )
(Real-Time, qualitativ)
Mykobakterien DNA (PCR) (s. S. 247 )
atyp. Mykobakterien und TB-Komplex
zur Kulturbestätigung (reverse Hybr., qualitativ)
Mykobakterien DNA (SDA) (s. S. 247 )
Tuberkulose-Komplex, Direktnachweis (Real-Time, qualitativ)
Neisserien RNA (TMA) (s. S. 32 )
N. gonorrhoeae (Real-Time, qualitativ)
Parodontopathogene Keime DNA (PCR) (s. S. 243 )
(reverse Hybr., qualitativ)
Treponemen DNA (PCR) (s. S. 66 )
T. pallidum (Real-Time, qualitativ)
Tropheryma whipplei DNA (PCR) (F) (s. S. 70 )
Morbus Whipple (Real-Time, qualitativ)
Ureaplasmen DNA (PCR) (s. S. 70 )
U.urealyticum (Real-Time, qualitativ)
Protozoen, Pilze
Babesien DNA (PCR)
(Real-Time, qualitativ)
(F)
(s. S. 251 )
Cryptococcus neoformans DNA (PCR)
(nested, qualitativ), Fremdleistung
Leishmanien DNA (PCR)
(Real-Time, qualitativ)
98
(F)
(F)
(s. S. 237 )
(s. S. 255 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Pneumocystis jiroveci (vormals: P. carinii) DNA (PCR)* (s. S. 58 )
(Real-Time, qualitativ)
Toxoplasmose DNA (PCR) (s. S. 69 )
T. gondii (Real-Time, qualitativ)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
99
Nukleinsäure-Diagnostik
Molekulargenetik
Nach dem Gendiagnostikgesetz ist für alle molekulargenetischen Untersuchungen eine
Einwilligungserklärung notwendig.
Es soll auf die für die Durchführung genetischer Beratungen in Zusammenhang mit
genetischen Untersuchungen ab 01.02.2012 erforderliche spezielle Qualifikation zur
fachgebundenen genetischen Beratung gemäß GEKO-Richtlinie hingewiesen werden.
Adenosinmonophosphat-Desaminase-Mangel
OMIM: 102770
Gen: AMPD1 (C34T)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Belastungsmyopathie
Adenosinmonophosphat-Desaminase 1 (Pharmakogen.) (s. S. 106 )
alpha-1-Antitrypsin-Defizienz
OMIM: 107400
Gen: AAT1 (M/S/Z-Allel)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Abklärung eines alpha-1-Antitrypsin-Mangels
Angiotensin-Converting-Enzym-Gen
OMIM: 106180
Gen: ACE (Ins/Del-Polymorphismus)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + RFLP
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: diabetische Nephropathie, koronare Herzerkrankung, Therapie mit ACE-Hemmern
Apolipoprotein B-Genotypisierung
OMIM: 107730
Gen: ApoB (R3500Q, rs5742904; R3531C, rs12713559)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Abklärung einer Hypercholesterinämie, V. a. Familiär defektes Apolipoprotein
B-100 (FDB)
Apolipoprotein E-Genotypisierung
OMIM: 107741
Gen: ApoE (E2/E3/E4)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Abklärung einer kombinierten Hyperlipidämie, V. a. Typ III-Hyperlipoproteinämie
(Familiäre Dysbetalipoproteinämie)
100
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
BCR/ABL-Translokation (PCR)
(F)
OMIM: 151410
Gen: BCR/ABL-Fusionsgen
Material: EDTA-Blut, innerhalb von 24 h im Labor
Menge: 7 ml
Methode: PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Nachweis der BCR/ABL-Translokation (in über 90% der Fälle von
chronisch-myeloischer Leukämie positiv), der molekulargenetischen Entsprechung des
Philadelphia-Chromosoms
ß-Thalassämie / ß-Hämoglobinstrukturvarianten
OMIM: 141900
Gen: HBB [ß-Globin] (Exon 1- 3)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Thalassämie / Hämoglobinopathie
Chromosomenanalyse / Zytogenetik (F) (s. S. 79 )
Familiäres Mittelmeerfieber (FMF)
OMIM: 249100
Gen: Pyrin [MEFV] (alle 10 Exons)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: rekurrierendes Fieber, Bauchschmerzen, V. a. Familiäres Mittelmeerfieber,
familiäre Belastung
Gestationsdiabetes, MODY2
OMIM: 125851
Gen: GCK (rs1799884)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + RFLP
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Gestationsdiabetes, persistierende, milde Hyperglykämie
Hämochromatose
OMIM: 235200
Gen: HFE (H63D, C282Y)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: deutlich erhöhte Ferritin-Werte, V. a. Hämochromatose, familiäre Belastung
Hereditäre Fructose-Intoleranz
OMIM: 229600, 612724
Gen: ALDOB [Aldolase] (Exon 2 - 9, Stufendiagnostik)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Fructose-Intoleranz bei z. B. Hypoglykämie nach Fructose-Einnahme,
Gedeihstörungen
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
101
Nukleinsäure-Diagnostik
HLA-Genotypisierung
HLA Klasse I-Antigene (A, B, C) (F)
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: molekulare HLA-Typisierung, HLA-Assoziation mit bestimmten Krankheiten
HLA-A*31:01 (Carbamazepin Überempfindlichkeit) (s. S. 108 )
HLA-B*27 (Morbus Bechterew / Spondylitis ankylosans) (s. S. 102 )
HLA-B*51 (Morbus Behcet) (s. S. 103 )
HLA-B*57:01 (Abacavir Überempfindlichkeit) (s. S. 108 )
HLA Klasse II-Antigene (DR, DQ) (F)
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: molekulare HLA-Typisierung, HLA-Assoziation mit bestimmten Krankheiten
HLA-DQ2/DQ8 (Zöliakie) (s. S. 105 )
HLA-DQB1*06:02 (Narkolepsie) (s. S. 103 )
HLA-DQB1*06:02 (Pharmakogenetik) (s. S. 108 )
Rheumatoides Epitop (HLA-DR-Subtypisierung) (F)
"shared epitope"
OMIM: 142857
Gen: HLA-DRB1
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Nachweis des rheumatoiden Epitopes bei Patienten mit rheumatischer Arthritis
als prognostischer Marker für den Verlauf und die Schwere der Erkrankung
Lactose-Intoleranz
OMIM: 223100
Gen: LCT [Lactase] (C-13910T, G22018A)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: V. a. Lactoseintoleranz bei z. B. abdominellen Schmerzen, Übelkeit und
Meteorismus, oder bei auffälligem Lactose-Toleranztest.
Morbus Bechterew / Spondylitis ankylosans
OMIM: 142830
Gen: HLA-B
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Morbus Bechterew, Assoziation mit HLA-B*27
102
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Morbus Behcet
OMIM: 109650
Gen: HLA-B
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Morbus Behcet, Assoziation mit HLA-B*51
Morbus Meulengracht (Gilbert-Syndrom)
OMIM: 191740
Gen: UGT1A1 (*28 = TA6/7)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: unkonjugierte Hyperbilirubinämie
UDP-Glucuronosyltransferase 1A1 (Pharmakogenetik) (s. S. 110 )
Narkolepsie
OMIM: 604305
Gen: HLA-DQB1
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Narkolepsie, Assoziation mit HLA-DQB1*06:02
HLA-DQB1*06:02 (Pharmakogenetik) (s. S. 108 )
Parodontitis-Risiko / Entzündungsneigung
Interleukin 1A
OMIM: 147760
Gen: IL1A (C-889T)
Material: EDTA-Blut, Wangenschleimhaut-Abstrich
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Bestimmung der IL1-vermittelten Entzündungsneigung / Parodontitis-Risikotest
Interleukin 1B
OMIM: 147720
Gen: IL1B (C+3953T)
Material: EDTA-Blut, Wangenschleimhaut-Abstrich
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Bestimmung der IL1-vermittelten Entzündungsneigung / Parodontitis-Risikotest
Interleukin-1-Rezeptorantagonist
OMIM: 147679
Gen: IL1RN (T+2018C)
Material: EDTA-Blut, Wangenschleimhaut-Abstrich
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Bestimmung der IL1-vermittelten Entzündungsneigung / Parodontitis-Risikotest
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
103
Nukleinsäure-Diagnostik
Rhesus weak D
OMIM: 111680
Gen: Rhesus D
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: molekulargenetische Rhesus-Typisierung bei unklaren serologischen Befunden
Thrombophiliediagnostik
Faktor V-Leiden
OMIM: 227400
Gen: Koagulationsfaktor V (A506G)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: Thrombophilie-Abklärung, familiäre Belastung, nachgewiesene APC-Resistenz
Methylentetrahydrofolat-Reduktase
OMIM: 236250
Gen: MTHFR (C677T)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Abklärung einer Hyperhomocysteinämie, familiäre Belastung
Methylentetrahydrofolat-Reduktase (Pharmakogenetik) (s. S. 109 )
Plasminogen-Aktivator-Inhibitor 1 (PAI-1)
OMIM: 173360
Gen: PAI-1 (4G/5G)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: bei Auftreten vermehrter thrombo-embolischer Ereignisse und V. a. erhöhte
PAI-1-Aktivität
Prothrombin (Faktor II)
OMIM: 176930
Gen: Koagulationsfaktor II [Prothrombin] (G20210A)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: Thrombophilie-Abklärung, familiäre Belastung
Tumornekrosefaktor alpha-Genotyp
OMIM: 191160
Gen: TNFalpha (Promotor)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Entzündungsbereitschaft
Tumornekrosefaktor alpha (Pharmakogenetik) (s. S. 110 )
104
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Zöliakie
OMIM: 212750
Gen: HLA-DQA1, HLA-DQB1
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. oder Ausschluss von Zöliakie, familiäre Belastung, bei fraglicher Serologie,
Assoziation mit HLA-DQ2/DQ8
Zystische Fibrose (Mukoviszidose)
OMIM: 602421
Gen: CFTR (Stufendiagnostik: Sequenzierung Exon 11, weitere 28 krankheitsverursachende
Mutationen + CFTRdele2,3(21kb))
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Mukoviszidose, familiäre Belastung
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
105
Nukleinsäure-Diagnostik
Pharmakogenetik und weitere prognostische Therapie-Marker
Nach dem Gendiagnostikgesetz ist für alle pharmakogenetischen Untersuchungen eine
Einwilligungserklärung notwendig.
Es soll auf die für die Durchführung genetischer Beratungen in Zusammenhang mit
genetischen Untersuchungen ab 01.02.2012 erforderliche spezielle Qualifikation zur
fachgebundenen genetischen Beratung gemäß GEKO-Richtlinie hingewiesen werden.
Adenosinmonophosphat-Desaminase 1
OMIM: 102770
Gen: AMPD1 (C34T)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Methotrexat-Therapie
Adenosinmonophosphat-Desaminase-Mangel (s. S. 100 )
AICAR-Transformylase / IMP-Cyclohydrolase
OMIM: 601731
Gen: ATIC (C347G)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Methotrexat-Therapie
Cytochrom P450 1A1
OMIM: 108330
Gen: CYP1A1 (*2A, *2B, *2C)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + RFLP
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Exposition zu polyzyklischen aromatischen Kohlenwasserstoffen, Benzopyrenen
Cytochrom P450 1A2
OMIM: 124060
Gen: CYP1A2 (*1C, *1F)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + RFLP
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Antidepressiva, Antipsychotika; Organophosphate-Exposition
Cytochrom P450 2B6
OMIM: 123930
Gen: CYP2B6 (*6)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Efavirenz, Nevirapin; Organophosphate-Exposition
106
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Cytochrom P450 2C19
OMIM: 124020
Gen: CYP2C19 (*2, *3, *7, *10, *17)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Clopidogrel, Antidepressiva, Benzodiazepinen, Antiepileptika,
Protonenpumpeninhibitoren
Cytochrom P450 2C8
OMIM: 601129
Gen: CYP2C8 (*3)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Paclitaxel, Ibuprofen, Amodiaquin
Cytochrom P450 2C9
OMIM: 601130
Gen: CYP2C9 (*2, *3)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Cumarin-Derivaten, Antidepressiva, Antiepileptika, nicht-steroidalen
Antirheumatika
Cytochrom P450 2D6
OMIM: 124030
Gen: CYP2D6 (Stufendiagnostik)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Tamoxifen, Antidepressiva, Neuroleptika, Betablockern,
Antiarrhythmika
Cytochrom P450 3A5
OMIM: 605325
Gen: CYP3A5 (*3)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Tacrolimus, Sirolimus, Efavirenz, Nevirapin, Saquinavir,
Flunitrazepam, Midazolam, Nordiazepam
Dihydropyrimidin-Dehydrogenase
OMIM: 612779
Gen: DPD (Exon 14 Skipping-Mutation)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit 5-Fluorouracil, Capecitabin
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
107
Nukleinsäure-Diagnostik
FSH-Rezeptor
OMIM: 136435
Gen: FSHR (N680S)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + RFLP
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: FSH-Sensitivität, ovarielles Hyperstimulationssyndrom bei IVF
HLA-A*31:01
OMIM: 608579
Gen: HLA-A
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Carbamazepin
HLA-B*57:01
OMIM: 142830
Gen: HLA-B
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Abacavir, Flucloxacillin
HIV-Diagnostik (s. S. 43 )
HLA-DQB1*06:02
OMIM: 604305
Gen: HLA-DQB1
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Amoxicillin + Clavulansäure
HLA-Genotypisierung (s. S. 102 )
Inosin-Triphosphatase
OMIM: 147520
Gen: ITPA (rs1127354, rs7270101)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Methotrexat, Ribavirin
Hepatitis-C-Diagnostik (s. S. 37 )
Interleukin 28B
OMIM: 607402
Gen: IL28B (rs12979860)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit pegIFN-alpha + Ribavirin
108
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Hepatitis-C-Diagnostik (s. S. 37 )
IP-10
Interferon-gamma inducible Protein 10 kDa (CXCL10)
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: ELISA
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit pegIFN-alpha + Ribavirin
Hepatitis-C-Diagnostik (s. S. 37 )
Methylentetrahydrofolat-Dehydrogenase 1
OMIM: 172460
Gen: MTHFD1 (G1958A)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Methotrexat-Therapie
Methylentetrahydrofolat-Reduktase
OMIM: 607093
Gen: MTHFR (C677T)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Methotrexat-Therapie, Hyperhomocysteinämie
Methylentetrahydrofolat-Reduktase (Thrombophiliediagn.) (s. S. 104 )
Multi-Drug-Resistance 1 (P-Glykoprotein)
OMIM: 171050
Gen: MDR1 [ABCB1] (C3435T)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit HIV-Proteasehemmern, NNRTI, Anthracyclinen, Taxanen,
Vincaalkaloiden, Clopidogrel
N-Acetyltransferase 2
OMIM: 612182
Gen: NAT2 (G191A, C282T, T341C, C481T, G590A, A803G, G857A)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + reverse Hybridisierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Isoniazid, Sulfonamiden, Procainamid, Hydralazin, Clonazepam,
Nitrazepam
Paraoxonase 1
OMIM: 168820
Gen: PON1 (Q192R, L55M)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Clopidogrel, Organophosphate-Exposition
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
109
Nukleinsäure-Diagnostik
Thiopurin-Methyltransferase
OMIM: 187680
Gen: TPMT (*2, *3A, *3B, *3C)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Azathioprin, 6-Mercaptopurin, 6-Thioguanin
Tumornekrosefaktor alpha
OMIM: 191160
Gen: TNFalpha (Promotor)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit TNFalpha-Inhibitoren
Tumornekrosefaktor alpha-Genotyp (s. S. 104 )
UDP-Glucuronosyltransferase 1A1
OMIM: 191740
Gen: UGT1A1 (*28 = TA6/7)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Irinotecan-Therapie, Morbus Meulengracht
Morbus Meulengracht (Gilbert-Syndrom) (s. S. 103 )
uPA / PAI-1
(Urokinase-Typ Plasminogen Aktivator, Plasminogen Aktivator Inhibitor-1)
Material: Gewebe
Menge: 0,2 g
Methode: ELISA
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: tumorbiologische Prognosemarker für die Therapie des nodal-negativen
Mammakarzinoms
Vitamin K-Epoxidreduktase
OMIM: 608547
Gen: VKORC1 (G-1639A, G3730A)
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: PCR + Schmelzkurvenanalyse
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit Cumarin-Derivaten
110
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Arzneimittelrelevante pharmakogenetische Diagnostik
Die folgende Liste stellt einen Überblick über Proteine dar, die an der Absorption, der
Biotransformation, der Wirksamkeit am Wirkort, dem Abbau sowie an der Ausscheidung von
Medikamenten beteiligt sind (nur Proteine, für die eine pharmakogenetische Diagnostik
vorhanden ist, sind aufgeführt. Diese sind alphabetisch und nicht nach ihrer Wichtigkeit
angeordnet). Die Beteiligung der für jede Substanz aufgeführten Proteine an der
Metabolisierung ist jedoch durch das Vorhandensein von Haupt- und sekundären
Stoffwechselwegen sehr verschieden und die funktionelle Relevanz ihrer genetischen
Polymorphismen für das Therapieansprechen kann erheblich variieren. Deshalb empfehlen
wir unter Beachtung von klinischem Bild, Komorbiditäten, Komedikationen und Lebensstil
eine Stufendiagnostik, die für jeden Patienten individualisiert erfolgen soll.
Analgetika
Acetaminophen (Paracetamol): CYP1A2, UGT1A1
Acetylsalicylsäure: CYP2C9
(Dihydro)Codein: CYP2D6
Hydrocodon: CYP2D6
Morphin: CYP2D6
Oxycodon: CYP2D6
Phenacetin: CYP1A2, CYP2D6
Tilidin: CYP2C19
Tramadol: CYP2D6
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 )
Antiarrhythmika
Ajmalin: CYP2D6
Amiodaron: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6
Diltiazem: CYP2C9, CYP2D6, MDR1
Encainid: CYP2D6
Flecainid: CYP2D6
Mexiletin: CYP1A2, CYP2D6
Prajmalin: CYP2D6
Procainamid: NAT2
Propafenon: CYP1A2, CYP2D6
Quinidin (Chinidin): CYP2D6
Spartein: CYP2D6
Verapamil: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, MDR1
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
111
Nukleinsäure-Diagnostik
Antiasthmatika
Koffein: CYP1A2, NAT2
Montelukast: CYP2C9
Theobromin: CYP1A2
Theophyllin: CYP1A2
Zafirlukast: CYP2C9
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 )
Antibiotika
Amoxicillin + Clavulansäure: HLA-DQB1*06:02
Cephazolin: MDR1
Clarithromycin: CYP2C19, CYP2C9
Dapson: CYP2C19, CYP2C9, NAT2
Erythromycin: CYP2C19, CYP2C9
Flucloxacillin: HLA-B*57:01
Isoniazid: NAT2
Rifamp(ic)in: NAT2
Sulfamethoxazol: CYP2C9, NAT2
Sulfonamide: NAT2
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
HLA-B*57:01-Analyse (s. S. 108 )
HLA-DQB1*06:02-Analyse (s. S. 108 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 )
Antidepressiva
Amitriptylin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1
Atomoxetin: CYP2D6
Bupropion: CYP2B6
Citalopram: CYP2C19, CYP2D6, MDR1
Clomipramin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6
Desipramin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6
Desmethylcitalopram: CYP2D6
Doxepin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Duloxetin: CYP1A2, CYP2D6
Escitalopram: CYP2C19, CYP2D6
Fluoxetin: CYP2B6, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Fluvoxamin: CYP1A2, CYP2D6
Imipramin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Maprotilin: CYP1A2, CYP2D6
Mianserin: CYP1A2, CYP2D6
Minaprin: CYP2D6
Mirtazapin: CYP1A2, CYP2C8, CYP2C9, CYP2D6
Moclobemid: CYPC19, CYP2C9, CYP2D6
Nefazodon: CYP2D6
Norclomipramin: CYP2D6
Nordoxepin: CYP2D6
Norfluoxetin: CYP2D6
Nortriptylin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6
Opipramol: CYP2D6
Paroxetin: CYP2D6, MDR1
Protriptylin: CYP2D6
112
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Sertralin: CYP2B6, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Trazodon: CYP2D6
Trimipramin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Venlafaxin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2B6-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
Antidiabetika
Glibenclamid (Glyburid): CYP2C9
Gliclazid: CYP2C19, CYP2C9
Glimepirid: CYP2C9
Glipizid: CYP2C9
Nateglinid: CYP2C9
Phenformin: CYP2D6
Tolbutamid: CYP2C19, CYP2C9
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Antiemetika
Dolasetron: CYP2D6
Dronabinol: CYP2C19, CYP2C9
Metoclopramid: CYP2D6
Ondansetron : CYP1A2, CYP2D6
Tropisetron: CYP2D6
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Antiepileptika
Carbamazepin: CYP1A2, CYP2B6, CYP2C19, CYP2C8, CYP2C9, HLA-B*15:02,
HLA-A*31:01
(Me)Phenytoin: CYP2C19, CYP2C9, MDR1
Methylphenobarbital (Mephobarbital): CYP2C19
Oxcarbazepin: CYP2C19
Phenobarbital: CYP2B6, CYP2C9, CYP2C19
Primidon: CYP2C19, CYP2C9
Topiramat: CYP2C19
Valproinsäure: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2B6-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
113
Nukleinsäure-Diagnostik
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
HLA-Genotypisierung (s. S. 102 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
Antihistaminika
Azelastin: CYP1A2, CYP2D6
Chlorpheniramin: CYP2D6
Diphenhydramin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Fexofenadin: MDR1
Hydroxyzin: CYP2D6
Loratadin: CYP2D6
Promethazin: CYP2D6
Ranitidin: MDR1
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
Antihypertonika
Alprenolol: CYP2D6
Bisoprolol: CYP2D6
Bufuralol: CYP2D6
Captopril: CYP2D6
Carvedilol: CYP1A2, CYP2C9, CYP2D6, MDR1
Celiprolol: MDR1
Debrisoquin: CYP2D6
(Di)Hydralazin: NAT2
Indoramin: CYP2D6
Irbesartan: CYP2C9
Labetalol: CYP2D6
Losartan: CYP2C9, MDR1
Metoprolol: CYP2D6
Nebivolol: CYP2D6
Nicardipin: CYP1A2, CYP2D6, MDR1
Penbutolol: CYP2D6
Pindolol: CYP2D6
Propranolol: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6
Talinolol: MDR1
Timolol: CYP2D6
Torasemid: CYP2C9
Urapidil: CYP2D6
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 )
114
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Antikoagulantien / Thrombozytenhemmer
Acenocoumarol: CYP2C9, VKORC1
Clopidogrel: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, MDR1, PON1
Phenprocoumon: CYP2C9, VKORC1
Ticlopidin: CYP2C19, CYP2D6
Warfarin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, VKORC1
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
Paraoxonase 1-Analyse (s. S. 109 )
Vitamin K-Epoxidreduktase-Analyse (s. S. 110 )
Antimykotika
Itraconazol: MDR1
Posaconazol: MDR1
Terbinafin: CYP1A2,CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Voriconazol: CYP2C19, CYP2C9
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
Hormone
Desogestrel: CYP2C19, CYP2C9
Estradiol: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Ethinylestradiol: CYP1A2, CYP2C19, CYP3A5
Hydrocortison (Cortisol): CYP2D6
Progesteron: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Steroidhormone: MDR1
Testosteron: CYP2C19, CYP2C9
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
Immunsuppressiva
Azathioprin: TPMT
Ciclosporin: MDR1
Everolimus: MDR1
Sirolimus: CYP3A5, MDR1
Tacrolimus: CYP3A5, MDR1
Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
115
Nukleinsäure-Diagnostik
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
Thiopurin-Methyltransferase-Analyse (s. S. 110 )
Muskelrelaxantien / Anästhetika / Narkotika
Carisoprodol: CYP2C19
Cyclobenzaprin: CYP1A2, CYP2D6
Hexobarbital: CYP2C19, CYP2C9
Lidocain: CYP1A2, CYP2C9, CYP2D6
Propofol: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, UGT1A1
Ropivacain: CYP1A2, CYP2D6
Tizanidin: CYP1A2
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 )
Neuroleptika
Aripiprazol: CYP2D6, MDR1
Chlorpromazin: CYP1A2, CYP2D6, MDR1
Clozapin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1
Flupentixol: CYP2D6
Fluphenazin: CYP1A2, CYP2D6
Haloperidol: CYP1A2, CYP2D6
Levomepromazin: CYP2D6
Norclozapin: CYP1A2
Olanzapin: CYP1A2, CYP2D6, MDR1
Perazin: CYP2D6
Perphenazin: CYP1A2, CYP2C9, CYP2D6
Pimozid: CYP1A2, CYP2D6
Quetiapin: CYP2D6
Remoxiprid: CYP2D6
Risperidon: CYP2D6, MDR1
Sertindol: CYP2D6
Thioridazin: CYP1A2, CYP2C19, CYP2D6
Trifluperidol: CYP2D6
Zotepin: CYP1A2
Zuclopentixol: CYP2D6
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
116
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Nicht-steroidale Antirheumatika
Celecoxib: CYP2C9
Diclofenac: CYP2C9
Flurbiprofen: CYP2C9
Ibuprofen: CYP2C19, CYP2C8, CYP2C9
Indometacin: CYP2C19, CYP2C9
Lornoxicam: CYP2C9
Meloxicam: CYP2C9
Naproxen: CYP1A2, CYP2C9
Piroxicam: CYP2C9
Suprofen: CYP2C9
Tenoxicam: CYP2C9
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Onkologie
5-Fluorouracil: DPD, MTHFR
6-Mercaptopurin: TPMT
6-Thioguanin: TPMT
Anthrazykline: MDR1
Capecitabin: DPD
Cyclophosphamid: CYP2C19, CYP2C9
Daunomycin: MDR1
Doxorubicin: MDR1
Etoposide: MDR1
Flutamid: CYP1A2
Imatinib: MDR1
Irinotecan: MDR1, UGT1A1
Lapatinib: HLA-DQA1*02:01
Methotrexat: AMPD1, ATIC, ITPA, MTHFD1, MTHFR
Nilotinib: UGT1A1
Nilutamid: CYP2C19
Paclitaxel: CYP2C8, MDR1
Tamoxifen: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Teniposid: CYP2C19
Vinblastin: MDR1
Vinca-Alkaloide: MDR1
Vincristin: CYP3A5, MDR1
AICAR-Transformylase/IMP-Cyclohydrolase-Analyse (s. S. 106 )
AMP-Desaminase 1-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 )
Dihydropyrimidin-Dehydrogenase-Analyse (s. S. 107 )
HLA-Genotypisierung (s. S. 102 )
Inosin-Triphosphatase-Analyse (s. S. 108 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
117
Nukleinsäure-Diagnostik
Methylentetrahydrofolat-Dehydrogenase-Analyse (s. S. 109 )
Methylentetrahydrofolat-Reduktase-Analyse (s. S. 109 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
Thiopurin-Methyltransferase-Analyse (s. S. 110 )
UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 )
Protonenpumpenhemmer
Esomeprazol: CYP2C19
Lansoprazol: CYP2C19
Omeprazol: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Pantoprazol: CYP2C19
Rabeprazol: CYP2C19
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Statine
Atorvastatin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1, UGT1A1
Fluvastatin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, UGT1A1
Lovastatin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1, UGT1A1
Rosuvastatin: CYP2C19, CYP2C9
Simvastatin: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1, UGT1A1
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 )
Tranquillantia / Anxiolytika
Bromazepam: CYP1A2
Chordiazepoxid: CYP1A2
Clobazam: CYP2C19
Clonazepam: NAT2
Diazepam: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9
Flunitrazepam: CYP2C19, CYP3A5
Midazolam: CYP3A5
Nitrazepam: CYP2C19, NAT2
Norclobazam: CYP2C19
Nordiazepam: CYP1A2, CYP2C19, CYP3A5
Prazepam: CYP2C19
Zolpidem: CYP1A2, CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6
Zopiclon: CYP2C8, CYP2C9
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
118
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 )
N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 )
Virostatika
Abacavir: HLA-B*57:01
Amprenavir: MDR1, UGT1A1
Atazanavir: MDR1, UGT1A1
Delavirdin: CYP2D6
Didanosin: UGT1A1
Efavirenz: CYP2B6, CYP3A5, HLA-DRB1*01:01, MDR1
Indinavir: CYP2D6, MDR1, UGT1A1
Lamivudin: UGT1A1
Nelfinavir: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1
Nevirapin: CYP2B6, CYP2C9, CYP2D6, CYP3A5, MDR1, UGT1A1
Ribavirin: ITPA
Ribavirin + pegINF-alpha: IL28B
Ritonavir: CYP1A2, CYP2D6, MDR1
Saquinavir: CYP3A5, MDR1
Stavudin: UGT1A1
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2B6-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 )
HLA-B*57:01-Analyse (s. S. 108 )
HLA-Genotypisierung (s. S. 102 )
Inosin-Triphosphatase-Analyse (s. S. 108 )
Interleukin 28B-Analyse (s. S. 108 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
UDP-Glucuronosyltransferase-Analyse (s. S. 110 )
Weitere Medikamente
Allopurinol: HLA-B*58:01
Amodiaquin: CYP2C8
(Met)Amphetamin: CYP2D6
Benzatropin: CYP2D6
Dextromethorphan: CYP2D6
Digoxin: MDR1
Donepezil: CYP2D6
Etanercept: TNF-alpha
Flunarizin: CYP2D6
Galantamin: CYP2D6
Methadon: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, MDR1
Methylphenidat: CYP2D6
Modafinil: CYP2C19
Proguanil: CYP2C19
Riluzol: CYP1A2
Selegilin: CYP1A2, CYP2C9, CYP2D6
Sildenafil: CYP2C19, CYP2C9, CYP2D6, CYP3A5
Sulfasalazin: NAT2
Tacrin: CYP1A2
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119
Nukleinsäure-Diagnostik
Tamsulosin: CYP2D6
Tetrabenazin: CYP2D6
Tiotropium: CYP2D6
Tolterodin: CYP2D6
Zolmitriptan: CYP1A2
Cytochrom P450 1A2-Analyse (s. S. 106 )
Cytochrom P450 2C19-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C8-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2C9-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 2D6-Analyse (s. S. 107 )
Cytochrom P450 3A5-Analyse (s. S. 107 )
HLA-Genotypisierung (s. S. 102 )
Multi-Drug-Resistance-Analyse (s. S. 109 )
N-Acetyltransferase 2-Analyse (s. S. 109 )
Tumornekrosefaktor alpha-Analyse (s. S. 110 )
120
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Zelluläre Immunologie
Granulozytenfunktionen
Bestimmung der Phagozytoseaktivität sowie des oxidativen Bursts. Bei erhöhter
Infektanfälligkeit, rezidivierenden Infekten (Bakterien, Pilze), rekurrierenden eitrigen
Infektionen, rezidivierenden Hautinfektionen, Wundheilungsstörungen: Ausschluß/Abklärung
angeborener Granulozyten-/Monozytendefekte (z. B. chronische Granulomatose), bei
entzündlichen Prozessen (z. B. Sepsis, Transplantatabstoßung, Autoimmunerkrankungen,
bei schweren bakteriellen Infektionen (z. B. bei Immunsuppression).
Vorherige telefonische Anmeldung erbeten! Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per
Fahrdienst oder Eilboten. Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen
verwenden.
Material: Heparinblut
Menge: 5 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss eines Granulozytenfunktionsdefektes
Referenzbereich: siehe Befund
Basophilen-Degranulationstest
Der Test ermöglicht den Nachweis einer IgE-vermittelten Allergie vom Typ 1. Dieser
in-vitro-Test kann insbesondere bei fehlender diagnostischer Nachweismöglichkeit für
Allergen-spezifische IgE-Antikörper eingesetzt werden.
Der Basophilen Degranulationstest bietet als Ergänzung z. B. zur RAST-Diagnostik einige
Vorteile: auch seltene Allergene, für die keine RAST-Teste verfügbar sind, können untersucht
werden; die Schwelle der Degranulationsbereitschaft der basophilen Granulozyten wird
bestimmt. Damit kann der Erfolg einer Hyposensibilisierung überprüft werden. Eventuell
beteiligte Antikörper vom Typ IgG 4 werden miterfasst.
Abnahme: Mo-Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Kommerzielle oder von
uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden.
Material: Heparinblut
Menge: 5 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zellulärer Funktionstest zum Nachweis einer Typ I-Allergie
Lymphozytendifferenzierung
Die Lymphozytendifferenzierung ist indiziert bei: HIV-Infektion, rezidivierenden oder
chronischen Infektionen, erhöhter Infektanfälligkeit und Verdacht auf primäre oder sekundäre
Immundefekte. Als Zusatzinformation bei Infektionskrankheiten (Erkrankungsverlauf z.B. bei
CMV-, EBV-Infektionen, Toxoplasmose), Transplantationen (Abstoßungsreaktion bei z.B.
Nierentransplantation oder KMT), Tumorerkrankungen, Immunsuppression (Monitoring bei
Chemotherapie, Zytostase, T-Zell-Depletion), Immunstimulationstherapie (Monitoring bei z.B.
IL-2-Therapie), allergischen und Autoimmunerkrankungen (z.B. rheumatischer Formenkreis,
chron. aktive Hepatitis, Morbus Crohn, Multiple Sklerose), chronischem Müdigkeitssyndrom
(CFS).
Großer zellulärer Immunstatus
Leukozytendifferenzierung, B-, T-, NK-, CD4-T-Helfer-, CD8-T-, aktivierte Zellen
Weitere Oberflächenmarker/Subpopulationen auf Anforderung
Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung eines zellulären Immundefekts
Referenzbereich: siehe Befund
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
121
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Kleiner zellulärer Immunstatus
Leukozytendifferenzierung, CD4-T-, CD8-T-Lymphozyten.
Weitere Oberflächenmarker auf Anforderung.
Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verlaufskontrolle bei HIV-Infektion
Referenzbereich: siehe Befund
Zelldifferenzierung in der bronchoalveolären Lavage (BAL)
Differenzierung der Zellen einer BAL anhand von gefärbten Zytospinpräparaten. Bei
erhöhtem Anteil an Lymphozyten erfolgt zusätzlich eine durchflusszytometrische
Differenzierung je nach Fragestellung (z.B. B-, T-, CD4-T-, CD8-T-, NK-Zellen). Weitere
Oberflächenmarker sind auf Anforderung möglich. Die Validität der durchflusszytometrischen
Messungen in der BAL ist durch Daten der Literatur belegt. Die Zellanalytik der BAL ist
abhängig von der Qualität des erhaltenen Materials. Bei signifikanter Blutbeimengung oder
überwiegend bronchialer Herkunft der BAL ist eine Beurteilung nur eingeschränkt möglich.
Abnahme: Mo-Do, Versand gekühlt mit Fahrdienst oder Eilboten
Material: Bronchoalveoläre Lavage
Menge: 10 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung von Lungenerkrankungen (z. B. Sarkoidose, exogen allergische
Alveolitis).
Referenzbereich: s. Befund
Leukämie-/Lymphomtypisierung
Immunophänotypisierung mittels monoklonaler Antikörper als wichtiger Bestandteil in der
Diagnostik akuter Leukämien bzw. maligner Lymphome: Zuordnung der neoplastischen
Zellklone zur jeweiligen Zellreihe (myeloisch, lymphatisch, B-, T-, NK-Zellen); Bestimmung
des Reifegrades der Leukämie/ Lymphomzellen, Nachweis nicht eliminierter maligner Zellen
("minimal residual disease") nach Behandlung, Erkennung prognostisch relevanter Subtypen
für therapeutisches Vorgehen.
Vorherige telefonische Anmeldung erbeten!
Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten
Material: EDTA-Blut, Heparinblut
Menge: 5 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zuordnung zur Zellreihe sowie Bestimmung des Reifungsgrades von Leukämieund Lymphomzellen
PNH-Diagnostik
Nachweis der GPI-verankerten Oberflächenmoleküle CD55/CD59 auf Erythrozyten sowie
CD24/CD66b auf Leukozyten.
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss einer paroxysmalen nächtlichen Hämoglobinurie.
Referenzbereich: s. Befund
122
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Fetale Erythrozyten
Nachweis und Quantifizierung fetaler Erythrozyten im mütterlichen Blut. Methode ist
vergleichbar dem Test nach Kleihauer und Bethke, jedoch deutlich spezifischer, da auch
mütterliche Zellen mit fetalem Hämoglobin (F-Zellen) unterschieden werden können.
HbF-Zellen sind bei ca. 30% der Schwangeren im Verlauf der Schwangerschaft und bei ca.
50% nach Entbindung nachweisbar.
EDTA-Vollblut bei Raumtemperatur verschicken, weder kühlen noch einfrieren!
Material: EDTA-Blut
Menge: 100 µl
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Nachweis oder Ausschluss einer fetomaternalen Transfusion. Kontrolle der
Anti-D-Prophylaxe bei Rh(D)-negativen Müttern mit Rh(D)-positiven Neugeborenen.
Referenzbereich: <0,5 Promille
Lymphozytenfunktionen
Weitergehende Untersuchung nach unauffälligem zellulärem Immunstatus bei erhöhter
Infektanfälligkeit zur Abklärung von B- und T-Zell-Funktionsstörungen. Nachweis einer
zellulären Immunität gegenüber verschiedenen Erregern (z. B. CMV, Mumps, VZV,
Toxoplasmose).
Lymphozytenproliferation
Der Stellenwert des Tests für die medizinische Diagnostik ist nicht gesichert. Aus
methodischen Gründen ist eine Testvalidierung nach GLP-Vorgaben nicht möglich. Der
Test wird vor allem zur Beantwortung wissenschaftlicher Fragestellungen eingesetzt.
Nachgewiesen wird die Lymphozytenproliferation nach Stimulation mit B- und
T-Zellmitogenen.
Vorherige telefonische Anmeldung erbeten
Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Kommerzielle oder
von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden.
Material: Heparinblut
Menge: 10 ml
Methode: Kultur
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Indikation: Abklärung eines Lymphozytenfunktionsdefektes
Zytokinbildung der Lymphozyten
Der Stellenwert des Tests für die medizinische Diagnostik ist nicht gesichert. Nachweis der
Zytokinbildung (z.B. Interferon-gamma) von Lymphozyten nach Antigenstimulation (z.B.
CMV, Mumps, VZV) in vitro.
Telefonische Voranmeldung erforderlich.
Material: Heparinblut
Menge: 9 ml
Methode: Elispot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Nachweis und Quantifizierung erregerspezifischer T-Lymphozyten.
CD38 auf CD8-T-Lymphozyten
Das CD38 ist ein Aktivierungsmarker der Lymphozyten, seine Expression auf der
Oberfläche der Zellen bestimmt den Grad der HIV-spezifischen Aktivierung der
CD8-T-Lymphozyten. Je stärker diese Expression des CD38 auf den CD8-T-Lymphozyten
ausgeprägt ist, desto höher ist das AIDS-Risiko des Patienten.
Material: EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Prognosemarker für AIDS-Erkrankung bei HIV-Patienten.
Referenzbereich: s. Befund
CMV-spezifische T-Lymphozyten (s. S. 24 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
123
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Toxoplasma gondii-spezifische T-Lymphozyten (s. S. 69 )
TB-Elispot (T-SPOT.TB) (s. S. 248 )
Indirekter Nachweis von M. tuberculosis durch Bestimmung der erregerspezifischen
T-Lymphozyten mit der Elispot-Methode.
HLA-B*27
Serologische Bestimmung mit zwei monoklonalen Antikörpern gegen HLA-B27, ggfs.
molekularbiologische Bestätigung mittels PCR.
Material: Heparinblut, EDTA-Blut
Menge: 5 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Z.A. Morbus Bechterew
124
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Immunglobuline / Komplementsystem
Immunglobuline
IgG im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: 6,8-15,3 g/l
IgG-Subklassen 1-4
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund g/l
IgA im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: 0,75-3,74 g/l
IgA, sekretorisch (scIgA) (F)
Zur Vermeidung von Eintrocknung muss die Gefäßgröße so gewählt werden, dass das
Gefäß nach dem Befüllen möglichst wenig Luft enthält.
Material: Speichel
Menge: 2 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: 20-200 mg/l
IgM im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: 0,4-1,88 g/l
IgE (Immunglobulin E) (s. S. 201 )
Immunfixationselektrophorese (IFE) (s. S. 196 )
Bence-Jones Proteine (freie Leichtketten) (s. S. 221 )
oligoklonale Banden im Liquor (s. S. 198 )
Komplementsystem
CH-100-Aktivität (gesamthämolytische Komplementaktivität ) (F)
Ersetzt die CH-50-Bestimmung
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: Serum, gefroren
Menge: 500 µl
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 40-200 U/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
125
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
C1-Esterase-Inhibitor (Aktivität) (F)
Basisdiagnostik
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. hereditäres angioneurotisches Ödem (hereditäres Quincke-Ödem)
Referenzbereich: 60-130 %
C1-Esterase-Inhibitor (Konzentration) (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verminderte C1-Esterase-Inhibitor-Aktivität
Referenzbereich: 0,17-0,44 g/l
C2-Komplement (F)
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: Nephelometrie
Referenzbereich: 80-120 %
C3-Komplement
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: 0,75-1,35 g/l
C4-Komplement
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: 0,1-0,4 g/l
126
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Entzündungsaktivität
Blutbild, groß (s. S. 179 )
Blutsenkung
Citratblut im Verhältnis 1:5
Material: Citratblut
Menge: 2,7 ml
Methode: BSG nach Westergren
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: 1. Stunde M: 15 F: 20 mm
CRP (C-reaktives Protein)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: <5,0 mg/l
CRP, hochsensitiv
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos
Referenzbereich: <2,1 mg/l
Ferritin (s. S. 180 )
Interleukin-2-Rezeptor, sIL2-R
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren, das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen und tieffrieren.
Material: Serum, gefroren
Menge: 0,5 ml
Methode: ILMA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Nachweis einer Aktivierung des zellulären Immunsystems
Referenzbereich: 158-623 kU/l
Interleukin 6
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren, das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen und tieffrieren.
Material: Serum, gefroren
Menge: 0,5 ml
Methode: ILMA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Nachweis einer Aktivierung des zellulären Immunsystems
Referenzbereich: <5,9 ng/l
Neopterin (F)
Nur aus gefrorenem Serum sinnvoll, das sofort nach Durchgerinnung abzentrifugiert und von
den Zellen getrennt wurde. Serum bitte auch lichtgeschützt einsenden.
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abstoßungsreaktion
Referenzbereich: < 10 nmol/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
127
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Procalcitonin (PCT)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: TRACE (Kryptor)
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Diagnose und Monitoring einer Sepsis, Abschätzung der Notwendigkeit einer
Antibiotika-Therapie, Differentialdiagnose zentrales Fieber versus Sepsis bei
Schädel-Hirn-Trauma.
Referenzbereich: <0,1 µg/l
SAA (Serum-Amyloid A) (F)
Abstoßungsreaktion
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
128
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Autoantikörper
Acetylcholinrezeptor-AAK
Material: Serum, Vollblut
Menge: 300 µl
Methode: RRA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Myasthenia gravis
Referenzbereich: <0,4 nmol/l
Alveoläre Basalmembran-AAK EIA (F)
Basalmembran-Alveolen-AAK
Es handelt sich um die gleiche Autoantikörper-Spezifität wie glomeruläre
Basalmembran-AAK.
Material: Serum, Vollblut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Goodpasture-Syndrom
Referenzbereich: <0,87 AK-Ratio
Aminoacyl-tRNA-Synthetase-AAK (s. S. 135 )
Sammelbegriff für alle Autoantikörper, welche gegen Aminoacyl-tRNA-Synthetasen gerichtet
sind. Jo-1-AAK sind die am häufigsten nachweisbaren Aminoacyl-tRNA-Synthetase-AAK.
Amphiphysin-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (SCLC, Mammakarzinom)
Referenzbereich: <1:1000 Titer
ANA-IFT (Screen)
Antinukleäre AAK, Antinukleäre Faktoren. Zahlreiche verschiedene Muster können vorliegen
(homogen, gesprenkelt, Zentromere und andere). Einem positiven ANA-Befund sollten
weitere Tests zur Bestimmung der ANA-Spezifität folgen. Nicht alle ANA können differenziert
werden, da zahlreiche Zielantigene bisher nicht bekannt sind.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. systemische Autoimmunerkrankungen oder Autoimmunerkrankungen der
Leber, arzneimittel-induzierter Lupus, juvenile chronische Arthritis
Referenzbereich: <1:80 Titer
Antimitochondriale AAK (AMA)
Bei positivem IFT-Befund wird eine Differenzierung der AK-Spezifität gegen Mitochondrien
Typ 2 mittels EIA durchgeführt
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. primäre biliäre Zirrhose (PBC)
Referenzbereich: <1:80 Titer
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
129
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Asialoglycoprotein-Rezeptor-AAK (F)
ASGPR gehört zu der Lebermembran-Antikörper-Gruppe
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: AK der Lebermembran-AK-Gruppe treten oft bei Autoimmunhepatitiden auf (bis
40%), sind jedoch nicht spezifisch, da diese AK auch bei viralen und toxischen
Lebererkrankungen vorkommen können.
Referenzbereich: <10.0 AK-Ratio
Basalmembran-AAK
Alveolen-Basalmembran-AAK (F) (s. S. 129 )
Glomeruläre Basalmembran-AAK (s. S. 133 )
Epidermale Basalmembran-AAK (F) (s. S. 137 )
Becherzell-AAK (F)
AAK gegen schleimbildende Zellen des Dickdarmes
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 400 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Colitis ulcerosa
Referenzbereich: <1:10 Titer
beta-2-Glykoprotein-1-IgG-AAK
Phospholipid-AAK, Apolipoprotein H-AAK, ß2-GPI-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung
Referenzbereich: <7 U/ml
beta-2-Glykoprotein-1-IgM-AAK
Phospholipid-AAK, Apolipoprotein H-AAK, ß2-GPI-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung
Referenzbereich: <7 U/ml
c-ANCA
Antineutrophile zytoplasmatische Autoantikörper (zytoplasmatisches Muster)
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag)
Indikation: Wegenersche Granulomatose, mikroskopische Polyarteriitis,
Churg-Strauss-Syndrom
Referenzbereich: <1:10 Titer
Calcium-Sensing-Rezeptor-AAK (F) (s. S. 137 )
Nebenschilddrüsen-AAK
130
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Calciumkanal (P/Q-Typ)-Autoantikörper (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: RIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Lambert-Eaton-Syndrom
Referenzbereich: <25 nmol/l
Cardiolipin-IgG-AAK
Phospholipid-AAK, aCL
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung
Referenzbereich: <10 GPL-U/ml
Cardiolipin-IgM-AAK
Phospholipid-AAK, aCL
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung
Referenzbereich: <25 MPL-U/ml
Crithidia luciliae-AK (ds-DNS-AAK)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag)
Indikation: V.a. SLE, Abklärung bei positivem ds-DNS-EIA
Referenzbereich: <1:10 Titer
CV2-AAK (F)
CRMP5-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (SCLC, Thymom und andere Tumore)
Referenzbereich: <10 AK-Ratio
Cyclisches citrulliniertes Peptid (CCP)-AAK
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich
Indikation: V. a. rheumatoide Arthritis, vor allem auch in der Frühphase der Erkrankung
(höhere Sensitivität und Spezifität im Vergleich zu RF)
Referenzbereich: <7 kU/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
131
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
ds-DNS-AAK
Doppelstrang-DNA-AAK, nDNA-AAK, nDNS-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf eine systemische Autoimmunerkrankung. Zusatztest bei positivem
ANA-(Hep2)-AAK IFT-Befund (homogene Kernfluoreszenz, positive Färbung der
Chromosomen im Mitosesatadium)
Referenzbereich: <10 IU/ml
ENA-Screen
AAK gegen extrahierbare nukleäre Antigene (ENA).
Screeningtest auf U1-RNP, RNP70, Sm, SSA, SSB, Scl70, Jo1-AK. Einem positiven
ENA-Profil-Befund sollte die Bestimmung der AK-Spezifität gegen einzelne ENA-Antigene
folgen.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf eine systemische Autoimmunerkrankung. Zusatztest bei positivem
ANA-(Hep2)-AAK IFT-Befund (gesprenkelte oder homogene Kernfluoreszenz)
Referenzbereich: <0,7 Ratio
Endomysium-IgA-AAK
(Der IFT weist AAK gegen Gewebs-Transglutaminase nach.)
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Glutensensitive Enteropathie (Zöliakie, Sprue), Dermatitis herpetiformis Duhring
Referenzbereich: <1:10 Titer
Fibrillarin-AAK (F) (s. S. 143 )
U3-n RNP-AAK
Freie Granulozyten-Antikörper (F)
Material: Serum
Menge: 2 ml
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: V. a. Autoimmunneutropenie
GAD-AAK (F) (s. S. 133 )
Glutamat-Decarboxylase-AAK
Gangliosid-AAK (IgG, IgM)
(GM1-, GM3-,GD1a-,GD1b-, GT1b-, GQ1b-AAK)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Guillain-Barré-Syndrom, multifokale Neuropathie, sensorische Neuropathie,
Miller-Fisher Syndrom
Referenzbereich: negativ
Gewebstransglutaminase-AAK (s. S. 142 )
tTG
132
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Glatte-Muskulatur-AAK (Actin)
ASMA (Anti-smooth-muscle-antibodies)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Autoimmunhepatitis
Referenzbereich: <1:80 Titer
Gliadin-AK, IgA (desaminiert)
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: CAP
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Zöliakie
Referenzbereich: <7 kU/l
Gliadin-AK, IgG (desaminiert)
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: CAP
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Zöliakie
Referenzbereich: <7 kU/l
Glomeruläre-Basalmembran-(GBM)-AAK
GBM-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag)
Indikation: Rapid progressive Glomerulonephritis, Goodpasture-Syndrom
Referenzbereich: <7 U/ml
Glutamat-Decarboxylase-AAK (F)
GADA
Material: Serum, Vollblut
Menge: 400 µl
Methode: ELA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diabetes mellitus Typ 1
Referenzbereich: <0,7 kU/l
H+/K+-ATPase-AAK (F) (s. S. 137 )
Parietallzellen-AAK
Herpes-gestationis-Faktor (F)
AAK gegen epidermale und plazentare Basalmembran (Pemphigoid-Antigen-AAK, BP
180/230-AAK) werden mit und ohne Komplement an Gefrierschnitten von Haut und Plazenta
untersucht.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Herpes gestationis
Referenzbereich: negativ
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
133
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Herzmuskel-AAK (F)
myokardiale-AAK, antimyolemnale AAK (AMLA) und antisarkolemnale AAK (ASLA)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Myokardschädigungen, Streptokokkeninfektion, selten bei Myokarditis
Referenzbereich: <1:80 Titer
Histidyl-tRNA-Synthetase-AAK (s. S. 135 )
Jo-1-AAK
Histone-AAK (F)
Anti-Histon-AAK (AHA)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 100 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf eine systemische Autoimmunerkrankung, arzneimittelinduzierte
Lupusformen.
Referenzbereich: <1 Index
Hu-AAK (F)
Neuronenkerne-AAK (Hu), ANNA-1
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (SCLC oder Neuroblastom)
Referenzbereich: <1:10 Titer
IA2 (F) (s. S. 142 )
Tyrosin-Phosphatase-AAK
Inselzellen (ICA)-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diabetes mellitus Typ 1
Referenzbereich: <1:10 Titer
Insulin-Autoantikörper (IAA) (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 400 µl
Methode: RIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Diabetes mellitus Typ 1
Referenzbereich: <10 % Bindung
Insulin-Rezeptor-Autoantikörper (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: RIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Insulinpflichtiger Diabetes mellitus
Referenzbereich: negativ
Interzellularsubstanz-AAK (F) (s. S. 138 )
Autoantikörper gegen die Interzellularsubstanz der Epidermis, Pemphigus-AAK
134
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Intrinsic-Faktor-AAK
(F)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. chronisch atrophische Gastritis, perniziöse Anämie
Referenzbereich: <20 RE/ml
Jo-1-IgG-AAK
Histidyl-tRNA-Synthetase-AAK, HRS-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 100 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Myositis, Abklärung idiopathischer fibrosierender Alveolitiden.
Referenzbereich: <7 U/ml
Kälteagglutinine (s. S. 184 )
KU-Antigen-Autoantikörper (F)
p70/p80-AAK
Material: Serum, Vollblut
Menge: 300 µl
Methode: RID
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Polymyositis/Sklerodermie-Overlap-Syndrom.
Referenzbereich: negativ AK-Ratio
Leber-Nieren-Mikrosomen (Typ1)-AAK
LKM 1-AAK, Cytochrom P450-AAK
Bei positivem IFT weitere Abklärung mittels Leber-Immunoblot.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Autoimmunhepatitis
Referenzbereich: <1:80 Titer
Leber-Pankreas-AAK (s. S. 140 )
SLA/LP-AAK
Lebercytosol-Antigen-1-AAK (F)
LC1-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Autoimmunhepatitis
Referenzbereich: negativ
Lupus-Antikoagulans (s. S. 177 )
Ma2-AAK siehe Ta-AAK (F) (s. S. 141 )
MAK siehe TPO-AAK (s. S. 142 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
135
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
MGT-30 (Titin)-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Myasthenia gravis
Referenzbereich: negativ
Mi-2-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Polymyositis, Zusatztest bei positivem ANA-Befund (granuläres Muster)
Referenzbereich: negativ
Mitochondrien-AAK (s. S. 129 )
AMA
Mitochondrien-AAK Typ M2
siehe Antimitochondriale AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Primäre biliäre Zirrhose, Zusatztest bei positivem AMA-IFT-Befund
Referenzbereich: <1.0 Index
MuSK (F) (s. S. 138 )
Rezeptor-Tyrosinkinase-AAK
Myelin assoziiertes Glycoprotein-AAK (F)
Material: Serum, Liquor
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Demyelinisierende Neuropathien mit monoklonalem IgM
Referenzbereich: <100 U/ml
Myeloperoxidase (MPO)-AAK
MPO-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. eine Vaskulitis.
Referenzbereich: <7 U/ml
Nebennierenrinden-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. NNR-Insuffizienz
Referenzbereich: <10.00 AK-Ratio
136
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Nebenschilddrüsen-AAK
(F)
(Calcium-Sensing-Rezeptor-Autoantikörper)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Erworbener Hypoparathyreodismus, autoimmunes polyglanduläres Syndrom
Referenzbereich: negativ Titer
Nukleosomen-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Lupus erythematodes
Referenzbereich: <1.0 Index
p-ANCA
Antineutophile zytoplasmatische Autoantikörper (perinukleäres Muster)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag)
Indikation: V. a. Vaskulitis, Colitis ulcerosa
Referenzbereich: <1:10 Titer
Pankreas-Acinusepithel-AAK
AAK gegen exokrines Pankreas
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: M. Crohn
Referenzbereich: <1:10 Titer
Parietalzellen-AAK (F)
Belegzellen-AAK, H+/K+-ATPase-AAK
(Parallel wird immer auch ein IFT durchgeführt)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. chronisch atrophische Gastritis, perniziöse Anämie
Referenzbereich: <20 RE/ml
Pemphigoid-AAK (F)
Epidermale Basalmembran-AAK, BP180/BP230
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 400 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Verdacht auf bullöses Pemphigoid
Referenzbereich: <1:10 Titer
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
137
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Pemphigus-AAK (F)
Stachelzell-Desmosomen-AAK, Interzellularsubstanz-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 400 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Pemphigus vulgaris/foliaceus
Referenzbereich: <1:10 Titer
Phospholipid-Autoantikörper
Cardiolipin-IgG-AK (s. S. 131 )
Cardiolipin-IgM-AK (s. S. 131 )
beta-2-Glycoprotein 1-IgG-AAK (s. S. 130 )
beta-2-Glycoprotein 1-IgM-AAK (s. S. 130 )
Lupus-Antikoagulans (s. S. 177 )
Phospolipase A2-Rezeptor-AAK (F)
PLA2-Rezeptor-AAK
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Indikation: Idiopathische membranöse Glomerulonephritis
PM-Scl-AAK (F)
PM-Scl p75- und PM-Scl p100-AAK, PM-1-AAK, Gruppe der nukleolären AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Polymyositis/Sklerodermie.
Referenzbereich: negativ
Proteinase-3-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 6 Stunden, Eilprobe:am selben Tag)
Indikation: Wegener-Granulomatose.
Referenzbereich: <7 U/ml
Recoverin-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (Retinopathie)
Referenzbereich: negativ
Rezeptor-Tyrosinkinase (MuSK)-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: RIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Myasthenia gravis
Referenzbereich: <0,050 nmol/l
138
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Ri-AAK
(F)
Neuronenkerne-AAK(Ri), ANNA-2
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (SCLC, Mammakarzinom)
Referenzbereich: <1:10 Titer
Ribosomen-AAK (F)
ribosomales P-Protein
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. SLE
Referenzbereich: <1.0 Index
RNP70-AAK
Material: Serum, Vollblut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Mischkollagenose (MCTD) ,SLE
Referenzbereich: <7 U/ml
Saccharomyces cerevisiae-IgA-AK (F)
werden auch ASCA genannt
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. M. Crohn
Referenzbereich: <1:100 Titer
Saccharomyces cerevisiae-IgG-AK (F)
werden auch ASCA genannt
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. M. Crohn
Referenzbereich: <1:1000 Titer
Saccharomyces cerevisiae-IgM-AK (F)
werden auch ASCA genannt
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. M. Crohn
Referenzbereich: <1:100 Titer
Schilddrüsen-Autoantikörper
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 142 )
TAK (s. S. 141 )
Thyreoglobulin-AAK
TPO-AK (früher MAK) (s. S. 142 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
139
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Scl-70-AAK
Topoisomerase-I-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag)
Indikation: V. a. systemische Sklerodermie, Raynaud-Symptomatik
Referenzbereich: <7 U/ml
Skelettmuskulatur-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Myasthenia gravis (Goldflamkrankheit)
Referenzbereich: <1:80 Titer
Sm-AAK
Einzelbestimmung bei positivem ENA-Screen
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: SLE
Referenzbereich: <5 U/ml
soluble-liver-Ag (SLA-)-AAK
Leber-Pankreas-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Autoimmunhepatitis
Referenzbereich: <20 U/ml
sp-100-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. primäre biliäre Zirrhose. Zusatztest bei positivem ANA-(Hep2)-AAK
IFT-Befund (Fluoreszenzmuster: nukleäre Dots ).
Referenzbereich: negativ
Spermatozoen-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Infertilität
Referenzbereich: <20.00 U/ml
ss-DNA-AAK (F)
Einzelstrang-DNA-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 200 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: <1 AK-Ratio
140
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
SSA-(Ro)-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: SLE, primäres Sjögren-Syndrom, V. a. auf neonatalen LE
Referenzbereich: <7 U/ml
SSB-(La)-AAK
Einzelbestimmung bei positivem ENA-Screen
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: SLE, primäres Sjögren-Syndrom
Referenzbereich: <7 U/ml
Stachelzell-Desmosomen-AAK (F) (s. S. 138 )
Pemphigus-AAK
Ta-AAK (F)
Ma2-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (Hodentumore)
Referenzbereich: <1:100 Titer
TAK (Thyreoglobulin-AAK)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: <280 kU/l
Testis, Leydig-Zellen-AAK (F)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Autoimmune Endokrinopathien
Referenzbereich: negativ Titer
Thrombozyten-AAK (F)
Direkter Nachweis von freien und Thrombozyten-gebundenen Antikörpern.
Frisches EDTA-Blut nicht älter als 24 Stunden. Blutmenge abhängig von der
Thrombozytenzahl: >150.000/µl: 10 ml; 51.-150.000/µl: 20 ml; 20.-50.000/µl: 30 ml;
<20.000/µl: 40 ml EDTA-Blut.
Material: EDTA-Blut
Menge: s.o.
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung von Thrombozytopenien
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
141
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Thyreoperoxidase-AK (TPO-AK, früher MAK)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Autoimmunthyreoiditis
Referenzbereich: <60 kU/l
Titin-AAK (F) (s. S. 136 )
MGT-30-AAK
Topoisomerase 1-AAK (s. S. 140 )
Scl-70-AAK
Tr-AAK (F)
Purkinjezellen (Tr)-AAK (PuCA-2)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (M. Hodgkin)
Referenzbereich: <1:20 Titer
TRAK (TSH-Rezeptor-AK)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Hyperthyreose, V. a. M. Basedow
Referenzbereich: <1,0 IU/l
tTG (Gewebstransglutaminase)-AAK (IgA+IgG)
(Zielantigen der Endomysium-Ak)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Zoeliakie
Referenzbereich: <7, Graubereich 5-7 kU/l
tTG (Gewebstransglutaminase)-AK (IgA) im Stuhl (F)
Material: Stuhl
Menge: 1 g
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: V. a. Zoeliakie
Referenzbereich: <100 mU/g
Tyrosinphosphatase-AAK (IA2) (F)
Inselzellantigen-2-AAK, IA2A, ICA512
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 400 µl
Methode: RIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Diabetes mellitus Typ 1
Referenzbereich: <70 mU/ml
142
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
U1-RNP-AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: SLE
Referenzbereich: <5 U/ml
U3-n RNP/Fibrillarin-AAK (F)
Gruppe der nukleolären AAK
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Sklerodermie, Raynaud-Symptomatik
Referenzbereich: negativ
Yo-AAK (F)
Purkinjezellen-AAK (PuCA-1)
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (Ovar-, Mamma- und Uterus-Karzinom)
Referenzbereich: <1:10 Titer
Zentromere-AAK
gehört zu der Gruppe ANA
AAK gegen Zentromere werden normalerweise im ANA-IFT mit einem typischen Muster
erfasst.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. systemische Sklerodermie, CREST-Syndrom, Abklärung unklarer IFT-Befund
oder positive ENA-Screen.
Referenzbereich: <7 U/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
143
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Rheumaserologie
A-DNAse B (Anti-Streptodornase)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Nachweis einer abgelaufenen Streptokokken A-Infektion (keine schützenden AK)
Referenzbereich: <200 kU/l
anti-Streptokokken-Hyaluronidase (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche
Indikation: Nachweis einer abgelaufenen Streptokokken A-Infektion (keine schützenden AK)
Referenzbereich: <1:300 Titer
Antistaphylolysin
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Agglutination
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2 IE/ml
Antistreptolysin O (ASL)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Nachweis einer akuten oder abgelaufenen Streptokokken A-Infektion
Referenzbereich: <200 IU/ml
CRP (s. S. 127 )
RAJI-Zelltest (Zirkulierende Immunkomplexe) (F)
Material: Serum
Menge: 400 µl
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Rheumafaktor
RF werden oft nachgewiesen (70-80%), sind aber nicht spezifisch. Ein positiver Befund ist
somit ohne entsprechende klinische Symptome für eine Rheumatoide Arthritis nicht
aussagekräftig.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: <20 IU/ml
Rheumatoides Epitop (HLA-DR-Subtypisierung)
144
(F)
(s. S. 102 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Autoimmunerkrankungen (Profile)
Anti-Synthetase-Syndrom
Anti-Jo-1-Syndrom, Sonderform der Polymyositis
ANA-IFT (s. S. 129 )
AAK mit zytoplasmatischer Fluoreszenz
Jo-1-AAK (s. S. 135 )
pathognomonisch, hochspezifisch
Antiphospholipidsyndrom (APS)
Gruppe von Antikörpern, die gegen negativ geladene Phospholipide indirekt gerichtet sind.
Assoziiere Erkrankungen: Venöse oder arterielle Trombosen, rezivierende Aborte,
Autoimmuntrombozytopenie
Zwei Formen: primäres APS ohne weitere Anzeichen für ein autoimmunes Geschehen;
sekundäres APS assoziiert mit Autoimmunerkrankungen (vor allem SLE).
Cardiolipin-IgG-AK (s. S. 131 )
Cardiolipin-IgM-AK (s. S. 131 )
beta-2-Glycoprotein 1-IgG-AAK (s. S. 130 )
beta-2-Glycoprotein 1-IgM-AAK (s. S. 130 )
Lupus-Antikoagulans (s. S. 177 )
(Es wird gefrorenes Citratplasma benötigt)
Autoimmunhepatitis (Typ 1, 2 und 3)
Autoantikörperbestimmung nach Ausschluss viraler Hepatitiden
Die Typenklassifizierung gründet sich auf den Nachweis von Autoantikörpern und hat weder
einen pathophysiologischen Hintergrund noch eine Auswirkung auf die Therapie.
Typ 1: Die ANA-positive AIH mit oder ohne AAK gegen glatte Muskulatur (Anti-Actin).
Typ 2: LKM-positive AIH, ca. 5 % aller AIHs
Typ 3: SLA(LP)-positive AIH, ca. 10% aller AIHs
ANA-IFT (s. S. 129 )
AAK mit homogener und gesprenkelter Fluoreszenz
Prävalenz 50-70%, nicht spezifisch
Gesamt-IgG (s. S. 125 )
IgG-Erhöhung 60-90%
Glatte Muskulatur-AAK (s. S. 133 )
Prävalenz 50-60%,
spezifisch bei hohem Titer
LKM-AAK (s. S. 135 )
pathognomonisch für die AIH Typ 2, hochspezifisch
SLA(LP)-AAK (s. S. 140 )
pathognomonisch für die AIH Typ 3, hochspezifisch
p-ANCA (s. S. 137 )
MPO-negativ
Prävalenz bis zu 50%,
nicht spezifisch
Asialoglycoprotein-Rezeptor (ASGPR) (F) (s. S. 130 )
Die ASGPR-AAK sind nicht spezifisch für eine Autoimmunhepatitis, da sie auch bei viralen
und toxischen Lebererkrankungen vorkommen können. Allerdings scheint es, dass
ASGPR-AAK-Titer mit der Aktivität des Entzündungsprozesses korreliert. Der Test wird zur
Therapieüberwachung empfohlen.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
145
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Autoimmunhämolytische Anämie
Direkter Antiglobulintest (direkter Coombstest) (s. S. 183 )
Antikörpersuchtest (s. S. 183 )
Kälteagglutinine (s. S. 184 )
Bullöses Pemphigoid
Pemphigoid-AAK (epidermale Basalmembran--AAK) (F) (s. S. 137 )
Zielantigen: BP 180 und BP230
Prävalenz >90%, hochspezifisch
Chronisch-entzündliche demyelinisierte Polyneuropathie (CIDP)
Gangliosid-AAK (s. S. 132 )
Prävalenz 35%
Chronische atrophische Gastritis / perniziöse Anämie
Parietalzellen-AAK (F) (s. S. 137 )
Prävalenz 80-90%, wenig spezifisch
Intrinsic-Faktor-AAK (F) (s. S. 135 )
Prävalenz 40-75%, hochspezifisch
Vitamin B12 (s. S. 203 )
Colitis ulcerosa
p-ANCA (s. S. 137 )
MPO-negativ
Prävalenz 60-80%, nicht spezifisch
Calprotectin im Stuhl (s. S. 226 )
Lactoferrin im Stuhl (s. S. 226 )
Dermatititis herpetiformis (M. Duhring) siehe Zöliakie (s. S. 152 )
Assoziation mit der glutensensitiven Enteropathie
Diabetes mellitus Typ 1
AAK-Bestimmung zur Risikoabschätzung bei klinisch Gesunden mit familiärer Belastung.
AAK werden in der Vorphase und bei Erkrankungsbeginn vor allem bei Kindern mit hoher
Prävalenz von 80-100% nachgewiesen. Mit zunehmendem Alter nimmt die Häufigkeit des
Nachweises ab. Risiko bei Nachweis von einem AAK 0-15%, bei drei oder vier AAK 60-100%.
Zur sicheren Differenzierung zwischen einem aktuell vorliegenden Typ I- oder Typ II-Diabetes
ist eine Bestimmung des C-Peptid-Spiegels zu empfehlen.
Insulin-Autoantikörper (IAAK) (F) (s. S. 142 )
IAAK sind am häufigsten nachweisbaren AAK bei Kindern unter 5 Jahren.
Tyrosinphosphatase-AAK (IA2) (F) (s. S. 142 )
IA2-AAK weisen eine gute Korrelation zur Diabetesmanifestation in den nächsten Jahren
auf.
Inselzell-AAK (ICA) (F) (s. S. 134 )
ICA und GADA persisitieren etwas länger als IAAK und IA2-AAK und können deshalb auch
noch Jahren nach dem Manifestationsbeginn nachgewiesen werden.
Glutamatdecarboxylase-AAK (GADA) (F) (s. S. 133 )
C-Peptid (s. S. 162 )
146
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Goodpasture Syndrom (siehe rapid-progressive Glomerulonephritis
(RPGN) (s. S. 150 )
Sonderform der RPGN mit Lungenblutung
Guillain-Barré-Syndrom
Gangliosid-AAK (s. S. 132 )
Myelin-assoziiertes-Glykoprotein-AAK(MAG) (F) (s. S. 136 )
Prävalenz 20%
Herpes gestationis
Herpes-gestationis-Faktor (F) (s. S. 137 )
Idiopatische membranöse Glomerulonephritis
Phospholipase A2-Rezeptor-AAK (F) (s. S. 138 )
Prävalenz 70%, hochspezifisch
Juvenile idiopathische Arthritis (JIA)
Juvenile rheumatoide Arthritis (JRA), Juvenile chronische Arthritis (JCA)
ANA-IFT (s. S. 129 )
AAK mit homogener und gesprenkelter Kernfluoreszenz
Prävalenz bei der Patienten mit Uveitis 70%, bei Pateinten ohne Uveitis 30%, nicht
spezifisch.
Cyclisches citrulliniertes Peptid (CCP)-AAK (s. S. 131 )
Im Gegensatz zur RA bei Erwachsenen werden CCP-AAK bei Kindern nur selten gefunden
(2-5% aller JIA-Fälle). Nur die Gruppe von Kindern mit RF-positiver polyartikulärer juveniler
Arthritis weist eine AK-Prävalenz von ca. 75% auf.
IgM-Rheumafaktoren (s. S. 144 )
Prävalenz von IgM-RF 20-60%, sie sind aber wenig spezifisch. Ein positiver Befund ist
somit ohne entsprechende klinische Symptome für eine JCA nicht aussagekräftig.
Lambert-Eaton-Syndrom
Calciumkanal(P/Q-Typ)-AAK (F) (s. S. 131 )
Prävalenz bis zu 100%, hochspezifisch
Miller-Fischer-Syndrom
Gangliosid-AAK (s. S. 132 )
GQ1b-AAK, Prävalenz 80%
Mischkollagenose (MCTD, Sharp-Syndrom)
Kombination von Symptomen des SLE, der Sklerodermie und der
Dermatomyositis/Polymyositis.
ANA-IFT (s. S. 129 )
gesprenkeltes Muster
ENA-Screentest ( RNP-AAK) (s. S. 132 )
U1-RNP-AAK (RNP-AAK)
Prävalenz 100%, hochspezifisch
Morbus Addison
Nebennierenrinden-AAK (F) (s. S. 136 )
Prävalenz 60-100%, hoch spezifisch
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
147
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Morbus Basedow
Thyreoglobulin-AK (TAK) (s. S. 170 )
Prävalenz 10-30%
Thyreoperoxidase-AK (TPO) (s. S. 142 )
Prävalenz ca. 40%
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 142 )
Prävalenz bis 98%, hochspezifisch
Morbus Crohn
p-ANCA (s. S. 137 )
MPO-negativ
Prävalenz 5-25%, nicht spezifisch
Pankreas-Acinusepithel-AAK (exokrine Pankreas-AAK) (s. S. 137 )
Prävalenz 40%, spezifisch
Saccharomyces cerevisiae-AK (ASCA) (F) (s. S. 139 )
Prävalenz 60%, spezifisch
Calprotectin im Stuhl (s. S. 226 )
Lactoferrin im Stuhl (s. S. 226 )
Multifokale Motorneuropathie
Gangliosid-AAK (s. S. 132 )
GM1, Prävalenz 40%
Myasthenia gravis
Acetylcholinrezeptor-AAK (s. S. 129 )
Prävalenz: Bei der okulären Myasthenie und der juvenilen Form 60%, bei der
generalisierten Myasthenie 75-95%; hochspezifisch.
Skelettmuskulatur-AAK (s. S. 140 )
Prävalenz 30%, mittlere Spezifität. Hohe Titer weisen auf ein Thymom und eine schwere
Verlaufsform hin.
MGT-30-(Titin)-AAK (F) (s. S. 136 )
Bei mehr als 95% der Myastheniepatienten mit Thymom finden sich zusätzlich Titin-AK.
Rezeptor-Tyrosin-Kinase (MuSK)-AAK (F) (s. S. 138 )
AAK kommen bei 70% der AchR-AAK negativen Patienten mit Myasthenia gravis vor,
hochspezifisch
Panarteriitis nodosa (renale Verlaufsform)
p-ANCA (s. S. 148 )
MPO-positiv
Prävalenz 5-15%, spezifisch
Paraneoplastische Syndrome
Neurologische PNS
paraneoplastische zerebellare Degeneration (Hu-,Yo-,Tr- und Ta-AAK)
limbische Enzephalopathie (Hu- und Ta-AAK)
karzinomaassoziierte Retinopathie (Recoverin-AAK)
Lambert-Eaton-Syndrom (Calciumkanal(P/Q-Typ)-AAK)
Hu-AAK (F) (s. S. 134 )
Ri-AAK (F) (s. S. 139 )
148
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Yo-AAK
(F)
(s. S. 143 )
Amphiphysin-AAK (F) (s. S. 129 )
CV2-AAK (F) (s. S. 131 )
Ta-AAK (F) (s. S. 141 )
Tr-AAK (F) (s. S. 142 )
Recoverin-AAK (F) (s. S. 138 )
Calciumkanal(P/Q-Typ)-AAK (F) (s. S. 131 )
Pemphigus vulgaris / Pemphigus foliaceus
Pemphigus -AAK (F) (s. S. 138 )
Prävalenz 70-80%, spezifisch
Polymyositis / Dermatomyositis
ANA-IFT (s. S. 129 )
AAK mit: zytoplasmatischer Fluoreszenz (Jo-1), granulärer und nukleolärer
Kernfluoreszenz (Mi-2, Ku und Pm-Scl)
Jo-1-AAK (s. S. 135 )
Prävalenz 30-50%, hochspezifisch
Diagnostischer Marker für die Polymyositis
Mi-2-AAK (F) (s. S. 136 )
Prävalenz 10-15%, spezifisch
Ku-AAK (F) (s. S. 135 )
Prävalenz 5-25%, spezifisch
PM-Scl-AAK (F) (s. S. 138 )
Prävalenz 10-20%, spezifisch
Post-partum-Thyreoiditis
Schwangere Patientinnen mit positivem AAK-Nachweis im dritten Trimester haben ein
erhöhtes Risiko für eine Post-partum-Thyreoiditis.
TAK und/oder TPO
Prävalenz 80%
TAK (Thyreoglobulin-AAK) (s. S. 141 )
Thyreoperoxidase-AK (TPO) (s. S. 142 )
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 169 )
selten
Primär sklerosierende Cholangitis
80% Assoziation mit der Colitis ulcerosa
p-ANCA (s. S. 137 )
MPO negativ
Prävalenz 80%, nicht spezifisch
ANA-IFT (s. S. 129 )
Prävalenz 50%, nicht spezifisch
Primäre biliäre Zirrhose
Gesamt-IgM (s. S. 125 )
IgM-Erhöhung 70%
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149
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Antimitochondriale AAK (s. S. 129 )
Prävalenz 90%, in hohen Titern hochspezifisch
AMA vom Typ 2 gelten als charakteristische Marker der PBC.
Sp100-AAK (F) (s. S. 140 )
ANA-IFT: Fluoreszenzmuster nukleäre Dots.
Prävalenz 16%, spezifisch
Andere AK
ANA (gesprenkeltes, homogenes Muster, Zentromere und Kernmembran) 50%, ANCA
<10%, SMA (niedriger Titer) 10%
Progressive systemische Sklerose (Sklerodermie, PSS)
diffuse Form, limitierte Form oder CREST-Syndrom,
Polymyositis/Sklerodermie-Overlap-Syndrom, systemische Sklerose bei MSTD.
ANA-IFT (s. S. 129 )
AAK mit antinukleolärer Fluoreszenz: Fibrillarin, PM-Scl, Scl-70, RNA-Polymerase und
andere.
Zentromer-AAK: Prävalenz bei der diffusen Form 3-10%, bei der limitierten Form 60-80%,
nicht spezifisch
ENA-Screentest (Scl-70- und RNP-AAK) (s. S. 132 )
Scl-70-AAK
Prävalenz 50-70%, hochspezifisch
vor allem bei diffuser Form, schwere systemische Verläufe
U1-RNP-AAK (RNP-AAK)
Prävalenz 10-30%, hochspezifisch
sprechen für eine Mischkollagenose
PM-Scl-AAK (F) (s. S. 138 )
Prävalenz 20%, spezifisch
spricht für Overlap mit Polymyositis;
Ku-AAK (F) (s. S. 135 )
Prävalenz 5-25%, spezifisch
Spricht für Overlap mit Polymyositis
Rapid-progressive Glomerulonephritis (RPGN)
Typ I: Goodpasture Syndrom
Glomeruläre Basmalmembran-AAK (Prävalenz 95%, hochspezifisch)
Typ II: Immukomplex
Verschiedene Krankheitsbilder: SLE, Purpura Schönlein-Henoch, Varianten der
postinfektiösen und idiopathischen GN
Typ III: Pauci immun
M. Wegener, mikroskopische Polyangiitis, Churg-Strauss-Syndrom, Pauci Immun crescentic
GN
Glomeruläre Basalmembran-AAK (s. S. 133 )
Prävalenz 95%, hochspezifisch
c-ANCA (s. S. 130 )
PR3-positiv, hochspezifisch
p-ANCA (s. S. 137 )
MPO-positiv, hochspezifisch
Rheumatoide Arthritis
CCP-AK (s. S. 131 )
Prävalenz 70-80%, hochspezifisch für die RA
150
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Sjögren-Syndrom
Es wird zwischen isolierten (primären) Formen und sekundären bei anderen
Autoimmunerkrankungen (RA, SLE, Sklerodermie, PBC, Autoimmunhepatitis u.a.)
unterschieden.
ANA-IFT (s. S. 129 )
AAK mit gesprenkelter Kernfluoreszenz (SSA- und SSB-AAK)
Prävalenz 95-100%, nicht spezifisch.
ENA-Screentest (SSA -und SSB-AAK) (s. S. 132 )
SSA-AAK: Prävalenz 96%, spezifisch
SSB-AAK: Prävalenz 70%, spezifisch
Systemischer Lupus erythematodes (SLE)
Sonderformen des SLE: neonatale Lupus-Syndrome (neonataler Lupus, kongenitaler
Herzblock), subakuter kutaner LE, sekundäres Sjögren-Syndrom, sekundäres
Anti-Phospholipid-Syndrom, Arzneimittel-induzierter Lupus.
ANA-IFT (s. S. 129 )
AAK mit: homogener Kernfluoreszenz (DNS, Histone, Nukleosomen), gesprenkelter
Fluoreszenz (ENA-Antigene SSA,SSB, Sm und RNP), pleomorpher nukleärer Fluoreszenz
(PCNA Bzw. Cyclin-AAK), zytoplasmatischer Fluoreszenz (Ribosomen)
ds-DNA-AAK (s. S. 132 )
Markerantikörper für den SLE (ACR-Kriterien)
Prävalenz: SLE aktiv mit Nierenbeteiligung 90%, SLE aktiv ohne Nierenbeteiligung
50-70%, SLE inaktiv <40%.
ENA-Screentest (SSA-, SSB-, RNP-und Sm-AAK ) (s. S. 132 )
Sm-AAK: Prävalenz 10-30%, diagnostischer Marker des SLE mit einer hohen Spezifität
99%.
SSA-AAK: Prävalenz 40%, spezifisch
SSB-AAK: Prävalenz 10%, spezifisch
U1-RNP-AAK: Hinweis auf MCTD; Prävalenz 40%, hochspezifisch
Histon-AAK (F) (s. S. 134 )
Prävalenz 30-50%, spezifisch
Nukleosomen-AAK (F) (s. S. 137 )
Nukleosomen-AAK sind spezifische frühdiagnostische Marker für den SLE (65% bei
inaktivem, 100% bei aktivem LE). Sie werden auch bei dsDNS-AAK-negativen Patienten
gefunden.
Ribosomen-AAK (F) (s. S. 139 )
Prävalenz 10-20%, hochspezifisch
Phospholipid-AAK (siehe APS) (s. S. 145 )
Cardiolipin-AAK, beta-2-Glykoprotein 1-AAK und Lupus-Antikoagulans
Prävalenz 40%, spezifisch für sekundäres APS
Thrombozytopenie, autoimmune
Thrombozyten-AAK (F) (s. S. 141 )
Phospholipid-AAK (s. S. 138 )
Thyreoiditis, chronisch lymphozytär
Thyreoperoxidase-AK (TPO) (s. S. 142 )
Prävalenz >90%, spezifisch
Thyreoglobulin-AK (TAK) (s. S. 170 )
Prävalenz 20-50%
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
151
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 142 )
Prävalenz 10-20%, spezifisch
Vaskulitis, relevante Autoantikörper
c-ANCA (s. S. 130 )
PR3-positiv
Prävalenz: M. Wegener 95%, Churg-Strauss-Syndrom 10%-20%; hochspezifisch
p-ANCA (s. S. 137 )
MPO-positiv
Prävalenz: Churg-Strauss-Syndrom 60-75%, klassische Panarteriitis nodosa 5-15%,
mikroskopische Polyangiitis 60-90%, M. Wegener 10%; hoch spezifisch
Wegener-Granulomatose s. Vaskulitis (s. S. 152 )
Wärmeautoantikörper
Direkter Antiglobulintest (direkter Coombstest) (s. S. 183 )
Antikörpersuchtest (s. S. 183 )
Zöliakie (glutensensitive Enteropathie, Sprue)
Gewebstransglutaminase-AK (tTG-AK) (s. S. 142 )
Zielantigen der Endomysium-Antikörper, Prävalenz 98%, hochspezifisch
Endomysium-AAK (s. S. 132 )
Prävalenz 80-100%, hochspezifisch
Gliadin-AK IgA und IgG (GAF-3x) (s. S. 133 )
152
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Funktionstests
Der folgende Teil stellt häufig eingesetzte Funktionstests vor. Funktionstests sind oft
wesentlich aussagekräftiger als Basalwerte.
Für eine labormedizinische Diskussion bzw. medizinische, individuelle Interpretation der
Befunde ist es unverzichtbar, dass Sie:
1. die klinische Fragestellung angeben
2. Angaben zur Testdurchführung machen (Bezeichnung des Funktionstests)
3. die Proben genau kennzeichnen (Abnahmezeitpunkt).
Bei Fragen bitte bereits in der Phase der Testplanung anrufen! Anleitungen für weitere
Funktionstests finden Sie im Internet unter www.labor-enders.de oder gern auf telefonische
Anfrage:
Tel. 0711/63 57-210 oder -211.
ACTH-Stimulationstest (Kurztest)
Indikation
1. Diagnostik der NNR-Insuffizienz
2. Diagnostik eines late-onset AGS
Prinzip
Stimulation der NNR durch ACTH
Durchführung
Diagnostik der NNR-Insuffizienz
Testbeginn 7-9 Uhr, der Patient sollte nüchtern sein und es während des Testablaufs bleiben
1. Basale Blutprobe (2-5 ml Vollblut ohne Zusätze) abnehmen, abzentrifugieren und
kennzeichnen.
2. 25 IE (0,25 mg) synthetisches ACTH (Synacthen®) i. v. applizieren.
3. 60 Min. danach zweite Blutprobe (2-5 ml) abnehmen und kennzeichnen.
4. 120 Min. danach dritte Blutprobe (2-5 ml) abnehmen und kennzeichnen.
5. Alle Serumproben zur Cortisol-Bestimmung einsenden.
Diagnostik eines late-onset-AGS
Testdurchführung am 3. - 7. ZT morgens. Eine antiandrogene Therapie bzw. eine
Corticoidgabe muss mindestens eine Woche zuvor beendet werden.
1. Basale Blutprobe (2-5 ml Vollblut ohne Zusätze) abnehmen, abzentrifugieren und
kennzeichnen.
2. 25 IE (0,25 mg) synthetisches ACTH (Synacthen®) i. v. applizieren.
3. 60 Min. danach zweite Blutprobe (2-5 ml) abnehmen, abzentrifugieren und kennzeichnen.
4. Beide Serumproben zur 17-OH-Progesteron-Bestimmung einsenden.
Cortisol (s. S. 162 )
17-OH-Progesteron (s. S. 167 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
153
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Aldosteron-Suppressionstest
Indikation
DD des Hyperaldosteronismus
Prinzip
Prüfung der Supprimierbarkeit der Aldosteron-Sekretion durch NaCl-Infusion
Durchführung
Testbeginn 7-9 Uhr, der Patient sollte nüchtern sein und es während des Testablaufs bleiben.
1. Basale Blutprobe nach mind. 20-minütigem Liegen (5 ml Vollblut ohne Zusätze
zentrifugieren und Serum tieffrieren) abnehmen
2. 2000 ml 0,9 % NaCl über 4 Std. infundieren.
3. Danach 2. Blutprobe abnehmen, zentrifugieren und Serum tieffrieren.
4. Beide Proben kennzeichnen und zur Aldosteronbestimmung einsenden.
Aldosteron (s. S. 160 )
Captopril-Test
Indikation
1. Diagnostik der Nierenarterienstenose, Abgrenzung zum essentiellen Hypertonus
2. Diagnostik des primären Hyperaldosteronismus (PHA)
Prinzip
Prüfung der Stimulierbarkeit der Renin-Sekretion; Prüfung der Supprimierbarkeit der
Aldosteron-Sekretion bei primärem Hyperaldosteronismus
Durchführung bei Abgrenzung Nierenarterienstenose gegen essentiellen Hypertonus
1. Blutentnahme für Renin und Aldosteron basal nach mind. 30-minütigem Liegen
(EDTA-Plasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren)
2. Einnahme von 25 mg Captopril
3. Blutentnahme 30 Minuten nach Einnahme von Captopril für Renin und Aldosteron
(EDTA-Plasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren)
Durchführung z. A. des primären Hyperaldosteronismus (PHA)
1. Blutentnahme für Renin und Aldosteron basal nach mind. 30-minütigem Liegen
(EDTA-Plasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren)
2. Einnahme von 25 mg Captopril
3. Blutentnahme nach 1 und 2 Stunden für Renin und Aldosteron (EDTA-Plasma,
tiefgefroren und Serum, tiefgefroren)
Aldosteron (s. S. 160 )
Renin (s. S. 168 )
Clonidin-Test
Clonidin ist ein alpha-adrenerger Agonist, der zentral angreift und die Freisetzung von
Katecholaminen unterdrückt. Beim Phäochromozytom ist ein Anstieg der
Plasmakatecholamine nicht durch die Erhöhung der Sympathikusaktivität, sondern autonom,
d. h. durch Diffusion der vermehrt gebildeten Katecholamine in den Kreislauf unter
Umgehung der normalen Speicherungs- und Freisetzungsmechanismen, bedingt.
Indikation
V.a. Phäochromocytom
Prinzip
Prüfung der Supprimierbarkeit der Katecholamine
154
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Durchführung (Schnelltest)
Mindestens 24 Std. vor Beginn antihypertensive Therapie unterbrechen, ausgenommen sind
Calciumantagonisten bei intolerablem Blutdruck (systolisch über 180 mmHg, diastolisch über
110 mmHg)
1. Nach 12stündiger Bettruhe und Fasten Legen einer Dauerkanüle mindestens 30 min. vor
Testbeginn.
2. Anschließend einmalige orale Gabe von 0,3 mg Clonidin.
3. Blutentnahme (EDTA-Plasma, tiefgefroren) basal, nach 1, 2 und 3 Std. zur Bestimmung
von Adrenalin und Noradrenalin.
Durchführung über Nacht
1. Am Tag sammelt der Patient von 9-21 h Urin zur Katecholaminbestimmung
(Sammelgefäß 1). Dafür geht der Patient um 9 Uhr morgens zur Toilette und verwirft den zu
diesem Zeitpunkt gelassenen Urin. Alle weiteren Urinproben werden nun gesammelt. Zusatz
von Salzsäure nach dem 1. Urin nicht vergessen. Um 21 Uhr gibt der Patient zum letzten Mal
den Urin in das Sammelgefäß 1.
2. Um 21 h werden 0,3 mg Clonidin oral verabreicht.
3. Von 21-7 h am nächsten Morgen den Nacht-Urin sammeln (Sammelgefäß 2). Zusatz von
Salzsäure nach dem 1. Urin nicht vergessen. Um 9 Uhr morgens am nächsten Tag leert der
Patient zuletzt seine Blase und gibt den Urin in das Sammelgefäß 2.
Gemessen wird in beiden Sammelurinen die auf Kreatinin-bezogene
Katecholaminausscheidung.
Katecholamine im Urin (s. S. 165 )
Katecholamine im Plasma (F) (s. S. 166 )
D-Xylose-Belastungstest
Indikation
Malabsorptionssyndrom, V. a. Störungen der funktionellen Integrität des oberen Dünndarmes
Prinzip
Zur Beurteilung der intestinalen Kohlenhydratresorption
Durchführung
Die Untersuchung erfolgt am nüchternen, ruhenden Patienten
D-Xylosebestimmung im Urin
1. Vor Testbeginn muss die Blase entleert werden.
2. Orale Gabe von 25 g D-Xylose (Kinder: 15 g/m2 Körperoberfläche), die in der Hälfte der
erforderlichen Menge Leitungswasser (bei Erwachsenen 500 ml) gelöst sind.
3. Innerhalb der ersten beiden Stunden die andere Hälfte Leitungswasser zu trinken geben.
Gesamte Flüssigkeitsmenge: 1 Liter; 600 ml/m2 Körperoberfläche bei Kindern.
4. Nach der Xylosegabe 5 Stunden lang den Urin gewissenhaft sammeln, Volumen messen
und im Kühlschrank aufbewahren.
D-Xylosebestimmung im Blut
1. Mit Fluorid-Monovette Basale NaF-Blutprobe entnehmen und beschriften.
2. Orale Gabe von 25 g D-Xylose (Kinder: 15 g/m2 Körperoberfläche), die in der Hälfte der
erforderlichen Menge Leitungswasser (bei Erwachsenen 500 ml) gelöst sind.
3. Innerhalb der ersten Stunde die andere Hälfte Leitungswasser zu trinken geben; Gesamte
Flüssigkeitsmenge: 1 Liter; 600 ml/m2 Körperoberfläche bei Kindern.
4. Nach 1 Stunde bei Kindern bzw. nach 2 Stunden bei Erwachsenen zweite NaF-Blutprobe
entnehmen und beschriften.
Xylose i. Urin (F) (s. S. 225 )
Xylose (F) (s. S. 195 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
155
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Dexamethason-Hemmtest
Da Dexamethason, wie andere synthetische Corticosteroide, die endogene
Cortisolproduktion supprimiert, gleichzeitig aber in den kommerziellen immunologischen
Testsystemen mit Cortisol kaum Kreuzreaktivität zeigt, werden unter Dexamethasongabe in
der Regel erniedrigte Cortisolspiegel gemessen. Bei Vorliegen eines M. Cushing ist der
Cortisolspiegel dagegen nur eingeschränkt supprimierbar.
Indikation
1. Diagnostik des Cushing-Syndroms (1 mg Dexamethason-Kurztest)
2. DD des Cushing-Syndroms (8 mg Dexamethason-Langzeittest)
Prinzip
Prüfung der Supprimierbarkeit der Cortisolsekretion durch Dexamethason
Durchführung (Kurztest)
1. Am ersten Tag dem nüchternen Patienten zwischen 7-8 Uhr 2-5 ml Blut (Serum) zur
Bestimmung von Cortisol abnehmen.
2. Um 21-23 Uhr des selben Tages 1 mg Dexamethason per os geben (Kinder 300 µg/qm
Körperoberfläche (Hindmarsh PC, Brook CG: Single dose dexamethasone suppression test
in children: dose relationship to body size. Clin Endocrinol 1985;23:67-70)).
3. Am zweiten Tag wieder zwischen 7-8 Uhr die zweite Blutprobe abnehmen
4. Proben kennzeichnen und zur Cortisolbestimmung einsenden.
Durchführung (Langzeit-Test)
1. Am ersten Tag dem nüchternen Patienten zwischen 7-9 Uhr 2-5 ml Blut (Serum)
abnehmen.
2. Alle 6 Std. über 2 Tage je 2 mg Dexamethason per os geben.
3. Am 3. Tag (oder letzten) die 2. Blutprobe zwischen 7-9 Uhr abnehmen.
4. Proben kennzeichnen und zur Cortisolbestimmung einsenden.
Cortisol (s. S. 162 )
Eisenresorptionstest
Indikation
Zur Feststellung eines latenten Eisenmangels oder einer Eisenresorptionsstörung.
Prinzip
Der nach oraler Gabe einer Eisen (II)-Verbindung festzustellende Anstieg des Eisenspiegels
im Serum korreliert mit dem Ausmaß des Eisenmangels. Bei Gesunden erfolgt ein nur
geringer Anstieg des Eisenspiegels im Serum (bis ca. 180 µg/dl). Bei Eisenmangelanämien
und intakten Resorptionsverhältnissen steigt der Serumeisenspiegel von erniedrigten
Ausgangswerten nach 2-4 Std. auf 200 µg/dl und darüber an. Bei Infekt- und Tumoranämien
sowie Resorptionsstörungen erfolgt keine oder nur eine geringgradige Anhebung des
Serumeisenspiegels.
Durchführung
Der Patient muss nüchtern sein und während der Versuchszeit Bettruhe einhalten. 1 Std.
nach Einnahme des Eisenpräparates kann er frühstücken.
1. Nach Abnahme von 2 ml Blut für den Vergleichswert 200 mg zweiwertiges Eisen
(Handelspräparat) per os verabreichen.
2. Je 2, 4 (und 6) Std. nach der Eisengabe erfolgt eine Blutentnahme zur
Serumeisenbestimmung.
Eisen (s. S. 202 )
156
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
GnRH-Test (LH/FSH-Stimulationstest mit LH-RH)
Indikation
Nachweis/Ausschluss einer Hypophysenvorderlappen-Insuffizienz im Regelkreis HVL Gonaden
Prinzip
Stimulation der Ausschüttung von LH bzw. FSH mit Gonadotropin-releasing Hormon (LH-RH)
Durchführung
Morgens, bei Frauen in der Lutealphase des Zyklus
1. 5 ml Venenblut zur Bestimmung der Basalwerte von LH und FSH entnehmen.
2. 100 µg Gn-RH (Relefact LH-RH®) i. v. applizieren.
3. Nach 30 und 60 Min. erneut Blut zur Bestimmung des LH und FSH entnehmen.
LH (luteinisierendes Hormon) (s. S. 167 )
FSH (Follikel-stimulierendes Hormon) (s. S. 163 )
Insulinom-Abklärung
Indikation
Z. A. eines Insulinoms bei unklaren Hypoglykämien
Prinzip
Nachweis einer durch inadäquate Proinsulin/Insulin-Sekretion unter Nahrungskarenz
entstehenden Hypoglykämie
In der unten beschriebenen Kombination ist selten ein längerer Hungerversuch erforderlich,
um ein Insulinom zu diagnostizieren. Intaktes Proinsulin weist die höchste Sensitivität für die
Insulinomdiagnostik auf.
Durchführung
1. Morgens nüchtern Blutzucker (Glucose) bestimmen.
2. Liegen die Glucosewerte jetzt schon unter 50 mg/dl (= 2,8 mmol/l), Blut abnehmen
(Serum sofort nach dem Durchgerinnen zentrifugieren und tieffrieren) und daraus Insulin,
C-Peptid und intaktes Proinsulin bestimmen lassen und den Test abbrechen.
3. Liegt der Glucosespiegel über 50 mg/dl, den Patienten weiterhin nüchtern lassen und alle
60 min bzw. bei Auftreten von Zeichen einer Hypoglykämie erneut den Blutzucker (Glucose)
bestimmen.
4. Wenn der Glucosespiegel 50 mg/dl unterschreitet, erneut Blut abnehmen (Serum sofort
nach dem Durchgerinnen zentrifugieren und tieffrieren) und daraus Insulin, C-Peptid und
intaktes Proinsulin bestimmen lassen.
5. Wird auch nach 24 h ein Glucosewert von 50 mg/dl nicht unterschritten, wird der Test
beendet.
Lactose-Toleranz-Test
Indikation
V. a. Lactoseintoleranz d. h. Lactasemangel der Dünndarmschleimhaut
Prinzip
Prüfung der Lactaseaktivität (spaltet das Disaccharid Lactose in die Monosaccharide
Galactose und Glucose) der Dünndarmschleimhaut über den Anstieg der Blutglucose nach
einer definierten Lactosegabe
Durchführung
1. Dem nüchternen Patienten venös NaF-Blut zur Glucosebestimmung entnehmen.
2. 50 g Laktose (z.B. Edelweiß-Milchzucker®) in 400 ml Wasser per os geben.
3. 60, 90 und 120 Minuten danach nochmals Blut zur Glucosebestimmung entnehmen,
Proben kennzeichnen.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
157
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Glucose (s. S. 200 )
Oraler Glucose-Toleranz-Test (oGTT)
Indikation
1. V. a. latenten Diabetes mellitus
2. V. a. Insulinresistenz (z.B. bei PCO)
3. V. a. Gestationsdiabetes
Prinzip
Messung des Anstiegs der Blutglucose und ggf. von Insulin nach einer definierten
Glucosegabe
Durchführung
Bei allen aufgeführten Tests darf der Patient nach der Glucosegabe nicht umherlaufen
sondern sollte sitzen oder liegen.
Bei V. a. latenten Diabetes mellitus oder Insulinresistenz
1. Dem nüchternen Patienten venös NaF-Blut zur Glucosebestimmung entnehmen.
2. 75 g Glucose in 300 ml Wasser (z.B. Dextro-O.G.-T. Saft®) per os geben
(Kindern 7 ml = 1,75 g Glucose) pro kg KG.
3. 120 Minuten danach nochmals Blut zur Glucosebestimmung entnehmen, Proben
kennzeichnen.
Z. A. eines Gestationsdiabetes
A) Screening mit 50 g Glucose
1. Die Patientin muss hierfür nicht nüchtern sein.
2. 50 g Glucose in 300 ml Wasser (z. B. 200 ml des Dextro-O.G.T.-Safts® mit Wasser auf
300 ml auffüllen) per os geben.
3. 60 Minuten danach venös NaF-Blut zur Glucosebestimmung entnehmen.
B) oGTT mit 75 g Glucose (empfohlenes Verfahren)
1. Abnahme von NaF-Blut zur Nüchtern-Glucose-Bestimmung.
2. Der nüchternen Patientin venös NaF-Blut zur Glucosebestimmung entnehmen.
3. 75 g Glucose (z. B. eine Flasche Dextro-O.G.T.-Saft®) per os geben.
4. 60 und 120 Minuten danach nochmals Blut zur Glucosebestimmung entnehmen. Proben
kennzeichnen.
Glucose (s. S. 200 )
TRH-Test (TSH-Stimulationstest mit TRH)
Test zum Nachweis/Ausschluss von Funktionsstörungen der Schilddrüse bzw. zur Kontrolle
der Therapie mit SD-Hormonen. Aufgrund der heute verfügbaren ultrasensitiven
TSH-Bestimmungsmethoden i. d. R. überflüssig.
Indikation
Abklärung einer Hyper- bzw. Hypothyreose
Prinzip
Durch Gabe des hypothalamischen Hormons TRH (Thyreotropin-releasing Hormon) wird die
Sensitivität der Hypophysen-Schilddrüsen-Achse überprüft.
Durchführung des intravenösen TRH-Tests:
TRH (Thyreotropin-Releasing Hormon) kann intravenös, oral oder pernasal verabreicht
werden. Wegen der variablen Resorption der nasalen bzw. oralen Applikation empfehlen wir
die intravenöse Applikation.
158
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
1. Blut zur Bestimmung des basalen TSH und fT4 abnehmen.
2. 200 µg TRH (z. B. Antepan®, Relefact-TRH®, Thyreoliberin®) i. v. applizieren (bei
Kindern 7 µg/kg KG).
3. Exakt 30 min. nach der TRH-Injektion nochmals Blut für die Bestimmung des
TSH-Spiegels nach TRH abnehmen. Proben kennzeichnen.
TSH (s. S. 169 )
Abnahme vor und 30 Minuten nach einer i. v. TRH-Gabe
Wachstumshormon-(STH-) Stimulationstest
Indikation
Z. A. eines hypophysären Minderwuchses.
Prinzip
Stimulation durch Hypoglykämie, Arginin, Clonidin u. a. führen bei nicht-funktionsgestörter
Hypophyse zu verstärkter Ausschüttung von STH.
Durchführung
Stimulation durch Insulin-bedingte Hypoglykämie
Hypoglykämie führt bei normaler Funktion des HVL zu kräftiger (gegenregulatorischer)
Ausschüttung von STH. Bitte genaue Testvorschrift anfordern! Hinweis: beim
Insulin-Hypoglykämie-Test kann gleichzeitig die sekretorische Kapazität der Achse HVL-NNR
geprüft werden (Bestimmung von ACTH und Cortisol). Der Test muss unter kontinuierlicher
medizinischer Überwachung durchgeführt werden.
Stimulation durch Argininhydrochlorid
1. Blutabnahme zur Bestimmung von STH, basal.
2. Gabe von 0,5 g/kg KG Argininhydrochlorid, verdünnt 1:10 mit physiologischer
NaCl-Lösung morgens nüchtern.
3. Abnahme von STH nach 30, 60 und 90 Minuten.
STH (s. S. 171 )
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159
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Endokrinologie
Acetylcholinesterase im Fruchtwasser (F)
Material: Fruchtwasser
Menge: 2 ml
Methode: ELPHO
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Indikation: V. a. Neuralrohrdefekt
Referenzbereich: negativ
ACTH (Adrenocorticotropes Hormon)
Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 300 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung der adreno-corticotropen Achse. DD des Hypercortisolismus,
Abklärung einer NNR-Insuffizienz.
Referenzbereich: 7-67 ng/l
ADH (Antidiuretisches Hormon, Vasopressin) (F)
Zur Beurteilung ist die parallele Bestimmung der Serumosmolalität notwendig.
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert
und von den Zellen getrennt wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: V. a. Diabetes insipidus
Referenzbereich: 2-8 ng/l
Aldosteron
gleichzeitige Bestimmung von Renin empfohlen.
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde. Der Patient sollte vor der Blutentnahme mind. 15 Minuten
liegen. Verschiedene Antihypertensiva und Diuretika (insbesondere Spironolacton) sollten
bereits Wochen vor der Bestimmung abgesetzt werden. Eine Liste mit den möglichen
Antihypertensiva finden Sie im Internet unter
www.labor-enders.de/hyperaldosteronismus.html
Material: Serum, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 24 Stunden)
Indikation: Abklärung der NNR-Funktion. V. a. prim./sek. Hyperaldosteronismus
(Conn-Syndrom, Nierenarterienstenose), V. a. M. Addison. Abklärung eines arteriellen
Hypertonus.
Referenzbereich: nach 15-minütigem Liegen: 20-150 ng/l
Aldosteron, frei im Urin (F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Urin nicht ansäuern! Gekühlt sammeln. Ein Aliquot von ca. 5 ml Urin nach dem Sammeln
abtrennen und tieffrieren.
Material: 24 h-Sammelurin, gefroren
Menge: 2000 µl
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Hyperaldosteronismus
Referenzbereich: 0,1-0,5 µg/24h
160
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Aldosteron-18-Glucuronid im Urin (F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Urin nicht ansäuern! Gekühlt sammeln. Ein Aliquot von ca. 5 ml Urin nach dem Sammeln
abtrennen und tieffrieren.
Material: 24 h-Sammelurin, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Hyperaldosteronismus
Referenzbereich: 3,5-20 µg/24h
alpha-Fetoprotein (AFP)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Leberzell-Karzinom. Schwangerschaft: Abklärung Neuralrohrdefekt-Risiko,
Marker für das Trisomie-21-Risiko
Referenzbereich: Schwangerschaft siehe Befund; nicht-schwangere Erwachsene und Kinder
ab 10 Monate: <7,5 kU/l
alpha-Fetoprotein (AFP) im Fruchtwasser (F)
bitte das Gestationsalter (SSW) exakt angeben
Material: Fruchtwasser
Menge: 5 ml
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Neuralrohrdefekt
Referenzbereich: s. Befund (je nach SSW) kU/l
Androstandiol-Glucuronid (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: M: 3,4-22 F: 0,2-6,0 µg/l
Androstendion
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Anti-Müller-Hormon (AMH)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung der Fertilität bzw. der ovariellen Restfunktion, V. a. PCO-Syndrom,
Tumormarker des Granulosazelltumors des Ovars
Referenzbereich: Normbereich alters- und geschlechtsabhängig. Ausführliche Normbereiche
können im Internet unter http://www.labor-enders.de/amh.html eingesehen werden oder
telefonisch unter Tel. 0711/6357-210 erfragt werden.
Frauen im fertilen Alter: 1 - 8, postmenopausal: < 0,1, Erwachsene Männer: 1,5-4,3 µg/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
161
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
beta-hCG (humanes Chorion-Gonadotropin)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: Schwangerschaft siehe Befund, nicht schwanger: <2 U/l
C-Peptid
Blutentnahme nach 12stündiger Nahrungskarenz. Das Serum direkt nach dem
Durchgerinnen vom Blutkuchen trennen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: (nüchtern) 0,28-1,7 nmol/l
Calcitonin (s. S. 170 )
Cortisol im Serum
Z. A. einer NNR-Insuffizienz Abnahme um 8:00 h, Tagesprofil: 8:00 h, 12:00 h, 16:00 h, 20:00
h, (24:00 h). Bei V. a. Hypercortisolismus ist insbesondere die Entnahme um 24:00 Uhr zu
empfehlen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: 50-250 (morgens 8:00 h), Tagesprofil und nach Dexamethason: siehe
Befund. Einheit: µg/l
Cortisol, freies im Urin (F)
Bitte Sammelmenge angeben
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze
Menge: 10 ml
Methode: RIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 15-100 µg/24h
DHEA (F)
da DHEA in vivo quantitativ in DHEA-S vorliegt, sollte der Bestimmung von DHEA-S der
Vorzug gegeben werden.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: RIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
DHEA-S
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: alters- und geschlechtsabhängig, s. Befund µg/l
Dihydrotestosteron (F)
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: RIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
162
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Erythropoietin
(F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ILMA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 5-25 U/l
Estradiol (E2)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund ng/l
Estriol, freies (freies E3)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: Marker für Screening auf Trisomie 21 im zweiten Trimester.
Referenzbereich: Schwangerschaft: siehe Befund.
Männer und nicht-schwangere Frauen: <0,07 µg/l
Estron (E1) (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: s. Befund ng/l
FSH (Follikel-stimulierendes Hormon)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: s. Befund U/l
Gastrin (F)
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den
Zellen getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: Serum, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <115 ng/l
Glucagon (F)
Abnahme nach 12stündiger Nahrungskarenz. Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma
bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 1 ml
Methode: RIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Referenzbereich: 60-177 ng/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
163
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
HOMA-Index
Bestimmung von Insulin und Glucose aus nüchtern gewonnenem Serum. Der Patient muss
mind. 12 Stunden vor Blutentnahme nüchtern gewesen sein.
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den
Zellen getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: berechnet
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: < 2,0 unauffällig; 2,0-2,5 grenzwertig; >2,5 Insulinresistenz
IGF-1 (Insulin-like Growth Factor 1, Somatomedin C)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: alters- und geschlechtsabhängig, s. Befund µg/l
IGF-BP3 (IGF-bindendes Protein 3)
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Inhibin A
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Marker für das Trisomie-21-Risiko in der Schwangerschaft (2. Trimester, siehe
Quadruple-Test und Integriertes Screening), Verlaufskontrolle eines Granulosazell-Tumors
Referenzbereich: s. Befund ng/l
Inhibin B
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung Fertilität, Verlaufskontrolle eines Granulosazell-Tumors
Referenzbereich: alters- und geschlechtsabhängig, s. Befund ng/l
Insulin
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den
Zellen getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: Serum, gefroren
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: (nüchtern) 2,5-20 mU/l
164
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Katecholamine
Katecholamine im Urin
(Adrenalin, Noradrenalin, Dopamin)
Bitte Sammelmenge angeben.
Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe
direkt NACH der ersten Miktion!
Material: Glucoexact
Menge: 10 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Phäochromozytom
Referenzbereich: siehe Einzelwerte
Adrenalin im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe
direkt NACH der ersten Miktion!
Material: Glucoexact
Menge: 10 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: Erwachsene: <20 µg/24h
Noradrenalin im Urin
Bitte Sammelmenge angeben
Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe
direkt NACH der ersten Miktion!
Material: Glucoexact
Menge: 10 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: Erwachsene: 15-80 µg/24h
Dopamin im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe
direkt NACH der ersten Miktion!
Material: Glucoexact
Menge: 10 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: 65-450 µg/24h
Metanephrine im Plasma
Untersucht werden Metanephrin und Normetanephrin
Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, welches unmittelbar nach Blutentnahme durch
Zentrifugation gewonnen und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 800 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 24 Stunden)
Indikation: sensitivster Marker für ein Phäochromozytom
Referenzbereich: Metanephrin <100, Normetanephrin <165 ng/l
Normetanephrin im Urin (F)
Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe
direkt nach der ersten Miktion!
Material: Glucoexact
Menge: 5 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 88-444 µg/24h
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
165
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Katecholamine im Plasma (F)
(Adrenalin, Noradrenalin)
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert
und von den Zellen getrennt wurde. Falls kein sofortiges Tieffrieren möglich ist, muss ein
spezielles Stabilisator-Röhrchen eingesetzt werden, welches Sie unter Tel. 0711/6357-104
bestellen können.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 1500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Phäochromozytom
Referenzbereich: siehe Einzelwerte
Adrenalin im Plasma (F)
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert
und von den Zellen getrennt wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 1500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 30-90 ng/l
Noradrenalin im Plasma (F)
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert
und von den Zellen getrennt wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 1500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 165-460 ng/l
Hydroxyindolessigsäure (5-HIES)
Obligates Ansäuern mit 10 ml reiner Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an.
Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Cave: keine Salzsäure verwenden!
Material: Glucoexact
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <9,0 mg/24h
Homovanillinsäure im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml reiner Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an.
Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Cave: keine Salzsäure verwenden!
Material: Glucoexact
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <8,0 mg/24h
Vanillinmandelsäure im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml reiner Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an.
Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Cave: Keine HCl verwenden!
Material: Glucoexact
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: <6,5 mg/24h
166
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Metanephrine im Urin
(F)
Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe
direkt NACH der ERSTEN Miktion!
Material: Glucoexact
Menge: 10 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 52-341 µg/24h
LH (luteinisierendes Hormon)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund U/l
Parathormon, PTH (intakt)
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den
Zellen getrennt wurde oder aus gefrorenem Serum, das sofort nach Durchgerinnen
abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde bestimmbar.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: 12-45 ng/l
PlGF (Placental Growth Factor)
Bitte immer die SSW angeben.
Nur Serum einsenden, welches vom Blutkuchen getrennt wurde. Stabilität bei
Raumtemperatur 3 Tage.
Menge: 300 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Präeklampsie
Referenzbereich: s. Befund ng/l
Progesteron
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Corpus luteum-Insuffizienz
Referenzbereich: s. Befund µg/l
17-OH-Progesteron
Progesteron stört den Test, daher muss die Abnahme außerhalb der Lutealphase erfolgen!
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Adrenogenitales Syndrom (AGS), auch late-onset AGS
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Proinsulin, intakt (F)
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Indikation: V. a. Insulinom
Referenzbereich: <11 pmol/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
167
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Prolaktin
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Prolaktinom, Galaktorrhoe, Hyperandrogenämie
Referenzbereich: M: <21, F: <23 µg/l
PTHrP (PTH-related Protein) (F) (s. S. 209 )
Renin
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert
und von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 1200 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: (in Ruhe) 2-16 ng/l
Risikoabschätzung für Trisomie 21 im 1. Trimester
mittels Bestimmung von PAPP-A und freier beta-Kette des hCG.
Obligate Angaben für das zertifizierte Ersttrimester-Screening: Geburtsdatum der Mutter,
SSL, NT, Gewicht der Patientin, Datum der Blutabnahme und des Ultraschalls.
Die Berechnung des Risikos unter Einschluss der Nackentransparenz ist nur für Kollegen, die
durch die FMF London oder FMF-Deutschland zertifiziert sind, möglich. Für genauere
Informationen Tel. 0711/6357-210 oder -211 oder im Internet unter
www.labor-enders.de/ersttrimester-screening.html
Das Serum muss direkt nach dem Durchgerinnen vom Blutkuchen getrennt und vor
Erwärmung über 25◦ C geschützt werden. Das Serum muss unser Labor binnen 48 Stunden
(max. 72 Std.) erreichen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: TRACE (Kryptor)
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: Risikoabschätzung für das Vorliegen einer fetalen Trisomie 21, 18 und 13.
Zeitfenster: SSL 45 bis 84 mm, entsprechend SSW 11+1 bis SSW 14+0 (nach Robinson).
Risikoabschätzung für Trisomie 21 im 2. Trimester
Die Risikoabschätzung im 2. Trimester kann mit dem Triple-Test (Trisomie-21-Erkennungsrate
69%) oder dem Quadruple-Test (Trisomie-21-Erkennungsrate 81%) erfolgen.
Aufgrund der höheren Erkennungsrate und der früheren Verfügbarkeit des Ergebnisses ist
das Ersttrimester-Screening den Verfahren im zweiten Trimester vorzuziehen. Triple-Test:
AFP, hCG, freies Estriol.
Quadruple-Test: AFP, hCG, freies Estriol und Inhibin A
Obligate Angaben: Geburtsdatum der Mutter, Schwangerschaftsalter (Tag-genau) nach
Ultraschall, Gewicht der Patientin, Tag der Blutabnahme.
Ansatzhäufigkeit für den Triple-Test: täglich, Ansatzhäufigkeit für den Quadruple-Test:
1-2x/Woche
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: berechnet
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Risikoabschätzung für Trisomie 21 von SSW 14+0 bis SSW 19+6.
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Optimaler Zeitraum: SSW 14+3 bis 15+6.
Integriertes Screening auf Trisomie 21
Beim Integrierten Screening auf eine fetale Trisomie 21 handelt es sich um eine Kombination
von Ersttrimester-Screening (siehe oben) und dem Quadruple-Test im zweiten Trimester
(SSW 14+0 bis 19+6, optimal 14+3 bis 15+6). Mit dieser Methode werden, bei 5%
Falsch-Positiv-Rate, 95% der Trisomie-21-Fälle erkannt.
Die Untersuchung kann als"Primär Integriertes Screening" erfolgen (PAPP-A und
NT-Messung im 1. Trimester mit obligater Durchführung des Quadruple-Tests im 2. Trimester)
oder als "Sequenziell Integriertes Screening" durchgeführt werden.
Beim Sequenziell Integrierten Screening wird abhängig vom Ergebnis des
Ersttrimester-Screenings entschieden, ob die Durchführung des Quadruple-Tests im 2.
Trimester erforderlich ist oder nicht.
Bitte verwenden Sie unser spezielles Anforderungsformular, downloadbar unter
www.labor-enders.de/formulare.html
Genauere Informationen erhalten Sie unter Tel. 0711/6357-210 oder -211 oder im Internet
unter www.labor-enders.de/integriertes_screening.html
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: berechnet
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Risikoabschätzung für das Vorliegen einer fetalen Trisomie 21.
Zeitfenster für den 1. Teil: SSW 10+3 bis 12+6 (möglich bis 13+6, jedoch geringere
Erkennungsrate)
Zeitfenster für den 2. Teil: SSW 14+0 bis 19+6 (empfohlen: 14+3 bis 15+6).
Schilddrüsen-Diagnostik
TSH, basal
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: 0,3-4,0 mU/l
fT3 (Trijodthyronin, frei)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: 1,8-4,6 ng/l
fT4 (Thyroxin, frei)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: 9,4-18 ng/l
TG (Thyreoglobulin) (s. S. 170 )
TRH-Test (TSH, basal und nach Stimulation)
Material: Serum
Menge: 2x 500 µl
Referenzbereich: Anstieg um 2,5 - 25 mU/l
MAK siehe TPO-AAK (s. S. 142 )
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
TAK (Thyreoglobulin-AAK) (s. S. 141 )
TPO-AK (s. S. 142 )
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 142 )
Calcitonin
C-Zell-Karzinom der Schilddrüse
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: Serum, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: M: <3,2 F: <1,8 pmol/l
TG (Thyreoglobulin)
Schilddrüse (papilläres Ca)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: TRACE (Kryptor)
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <60 µg/l
Serotonin im Plasma (F)
besser: HIES im 24 h-Urin, da hiermit ein Zeitraum von 24 Std. abgedeckt wird.
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den
Zellen getrennt wurde oder aus gefrorenem Serum, das sofort nach Durchgerinnen
abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde, bestimmbar.
Material: Serum, gefroren, EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Karzinoid
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Sexualhormon-bindendes Globulin (SHBG)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Hyperandrogenämie, Diagnostik des PCO-Syndroms, Abschätzung des
freien Anteils des Testosterons
Referenzbereich: M: 10-55, F: 30-90 nmol/l
sFlt-1
Bitte immer die SSW angeben.
Nur Serum einsenden, welches vom Blutkuchen getrennt wurde. Stabilität bei
Raumtemperatur 3 Tage.
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Präeklampsie
Referenzbereich: s. Befund ng/l
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
sFlt-1/PlGF-Quotient
Bitte immer die SSW angeben.
Methode: berechnet
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Präeklampsie.
Referenzbereich: < 85, Graubereich 33 - 85
STH (Somatotropes Hormon / hGH)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <7 µg/l
Testosteron
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: M: 3,0-9,0 F: 0,1-0,55 µg/l
Testosteron, frei (F)
Wegen der größeren Präzision, der höheren Aussagekraft und der schnelleren Verfügbarkeit
empfehlen wir statt der Bestimmung des freien Testosterons die Bestimmung des
Gesamt-Testosteron-Spiegels in Kombination mit SHBG aus denen der freie Androgenindex
(FAI) berechnet werden kann. Diese Bestimmungen werden täglich durchgeführt.
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: RIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: s. Befund ng/l
VIP (Vasoaktives Intestinales Polypeptid) (F) (s. S. 209 )
VIPom
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Andrologie
Spermiogramm
Beurteilung des Ejakulates nach WHO-Kriterien (WHO laboratory manual for the examination
and processing of human semen - 5th edition, 2010). Mikroskopische Untersuchung des
Ejakulates mit Bestimmung der Anzahl, Motilität und Morphologie der Spermatozoen.
Bestimmung von Fructose, Citrat, Zink und alpha-Glucosidase im Seminalplasma.
Diagnostik nur möglich, wenn das Sperma im Labor gewonnen wurde.
Telefonische Terminvereinbarung erforderlich (0711 / 6357-0).
Material: Sperma
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: Abklärung bei unerfülltem Kinderwunsch, vor IVF, nach Sterilisation.
Referenzbereich: s. Befund
alpha-Glucosidase im Seminalplasma
Material: Seminalplasma, Sperma
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Funktion der Epididymis bei Abklärung von Infertilität
Referenzbereich: >19 mU/Ejakulat
Carnitin im Seminalplasma (F)
Material: Seminalplasma, Sperma
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Nebenhodenfunktion im Rahmen einer Fertilitätsabklärung
Referenzbereich: >4,0 mg/dl
Citrat im Seminalplasma
Material: Seminalplasma, Sperma
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Funktion der Prostata bei Abklärung von Infertilität
Referenzbereich: >52 µmol/Ejakulat
Fructose im Seminalplasma
Material: Seminalplasma, Sperma
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Funktion der Samenbläschen bei Abklärung von Infertilität
Referenzbereich: >13 µmol/Ejakulat
PSA im Seminalplasma
Material: Seminalplasma, Sperma
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zur Beurteilung der Prostatafunktion bei Abklärung der Fertilität
Referenzbereich: 570-1420 mg/l
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Zink im Seminalplasma
Material: Seminalplasma, Sperma
Menge: 1000 µl
Methode: AAS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Beurteilung der Funktion der Prostata bei Abklärung einer Infertilität
Referenzbereich: >79 mg/l
DHEA-S (Dehydroepiandrosteron-Sulfat) (s. S. 162 )
FSH (Follikel-stimulierendes Hormon) (s. S. 163 )
LH (luteinisierendes Hormon) (s. S. 167 )
SHBG (Sexualhormon-bindendes Globulin) (s. S. 170 )
Testosteron (s. S. 171 )
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Gerinnung
INR (International Normalized Ratio)
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut.
Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut
Menge: 250 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Monitoring einer Cumarintherapie (z. B. Marcumar)
Referenzbereich: Therapeutisch je nach Indikation 2,5-4,5
Quick, Thromboplastinzeit (TPZ)
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut. Zum Monitoring einer
Cumarintherapie sollte die INR verwendet werden.
Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut
Menge: 250 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: präoperativ, Leberfunktionsprüfung, Blutungsneigung
Referenzbereich: >70 %
PTT
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut.
Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut
Menge: 250 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: präoperativ, bei Blutungsneigung, Monitoring einer Heparintherapie mit UFH
Referenzbereich: 25-43 (Erw.) s
Plasmathrombinzeit (PTZ)
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut.
Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut
Menge: 500 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Dysfibrinogenämie, Fibrinogenmangel, Heparin-oder Hirudintherapie,
Verbrauchskoagulopathie
Referenzbereich: 16-20 s
Fibrinogen
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut.
Material: Citrat-Plasma, gefroren, Citratblut
Menge: 250 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verbrauchskoagulopathie, Abklärung des kardiovaskulären Risikos
Referenzbereich: 150-450 mg/dl
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Thrombozyten
Bei V. a. EDTA-induzierte Pseudothrombopenie sollte parallel zum EDTA-Blut eine
ThromboExact-Monovette eingesandt werden.
Material: EDTA-Blut, Thrombozyten-Spezialmedium (ThromboExact)
Menge: 300 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: V. a. Thrombopenie, prä- und postoperativ, Petechien, unter Heparin-Therapie bei
V. a. HIT
Referenzbereich: 140-450 Tsd./µl
Thrombozytenfunktionstest
Die Bestimmung muss spätestens 4 Stunden nach Blutentnahme erfolgen. Dabei sollte das
Blut möglichst wenig alteriert werden. Bitte, falls möglich, Blutabnahme im Labor anstreben.
Material: Citratblut
Menge: 5 ml
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Thrombozytenfunktionsstörung, präoperativ bei vorheriger ASS-Therapie
Referenzbereich: s. Befund
Faktor VIII (F)
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: verlängerte PTT, Monitoring einer Hämophilie A
Referenzbereich: 70-150 %
VWF (von-Willebrand-Faktor) (F)
Wird immer in Kombination mit Faktor VIII und Ristocetin-Cofaktor bestimmt.
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche
Indikation: Bei Blutungsneigung, hochnormaler oder leicht erhöhter PTT, V. a. von
Willebrand-Syndrom z. B. bei Menorrhagien ohne ASS-Einnahme
Referenzbereich: 60-150 %
Faktor VIII-Ristocetin-Cofaktor (F)
Wird immer in Kombination mit Faktor VIII und dem von Willebrand-Faktor bestimmt.
Nur Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Methode: Thrombo-Aggl.
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Bei Blutungsneigung, hochnormaler oder leicht erhöhter PTT, V. a. von
Willebrand-Syndrom z. B. bei Menorrhagien ohne ASS-Einnahme
Referenzbereich: 60-150 %
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Faktor IX (F)
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: verlängerte PTT, Monitoring einer Hämophilie B, Blutungsneigung
Referenzbereich: 70-120 %
Anti-Faktor Xa-Aktivität
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Methode: Chromogen
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Monitoring einer Therapie mit kurzkettigen Heparinen (LMWH)
Referenzbereich: 0,5-0,8 U/ml, in der Schwangerschaft (halbtherapeutisch): 0,4-0,6 U/ml
Faktoren, weitere (F)
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Ggf. telefonische Rücksprache mit Dr. Alkier (0711 / 63 57-211)
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 1000 µl
Kryofibrinogen (s. S. 196 )
Thrombophiliediagnostik
Bei V. a. Thrombophilie empfehlen wir in der Regel zunächst nur die Basisdiagnostik
bestehend aus den Aktivitäten von Protein C, Protein S und AT III, der APC-Resistenz, dem
Lupus-Antikoagulans, dem Homocysteinspiegel und der Prothrombin-Mutation
durchzuführen. Sind Parameter auffällig, wird die entsprechende Stufendiagnostik
durchgeführt.
Basisdiagnostik
Folgende Parameter gehören in unserem Labor zur Basisdiagnostik der
Thrombophilieabklärung:
Protein C-Aktivität
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 600 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, familiäre Belastung
Referenzbereich: >70 %
Protein S-Aktivität
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 600 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, familiäre Belastung
Referenzbereich: M: >69 %, F: >58 %
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
APC-Resistenz
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 600 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, bei familiärer Belastung
sollte direkt die genetische Untersuchung erfolgen.
Referenzbereich: >2,3 Ratio
Antithrombin-Aktivität
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 600 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, familiäre Belastung, bei
Verbrauchskoagulopathie
Referenzbereich: >80 %
Lupus-Antikoagulans
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 600 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie bzw eines
Antophospholipidsyndroms und bei habituellen Aborten.
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Homocystein
Nur aus EDTA-Plasma, Serum oder Citrat-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme
abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Serum ist prinzipiell schlecht geeignet,
da der Zeitpunkt der Zentrifugation kritisch ist: Wird zu früh zentrifugiert, gerinnt das Serum
nach; bei zu später Zentrifugation erhält man falsch-hohe Resultate. Der Patient muss
vor der Blutentnahme nüchtern bleiben.
Material: EDTA-Plasma, Serum, Citrat-Plasma
Menge: 200 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung einer Thrombophilie, Abklärung des kardiovaskulären Risikos,
Verlaufskontrolle unter Folateinnahme.
Referenzbereich: <10 µmol/l
Prothrombin-Gen-Mutation (Faktor II) (PCR) (s. S. 104 )
Thrombophilie-Stufendiagnostik
Ist ein Parameter der Basisdiagnostik positiv, sollte der entsprechende Parameter
der Stufendiagnostik angeschlossen werden.
Protein C-Antigen
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 200 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung einer verminderten Protein-C-Aktivität
Referenzbereich: >74 %
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177
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Protein S-Antigen, gesamt
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 200 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung einer verminderten Protein-S-Aktivität
Referenzbereich: 60-120 %
Protein S-Antigen, frei
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 600 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung einer verminderten Protein-S-Aktivität
Referenzbereich: 0,54-1,29 IU/ml
Faktor-V-Leiden-Mutation (PCR) (s. S. 104 )
Antithrombin-Konzentration (F)
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, Serum
Menge: 300 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Zur weiteren Abklärung bei verminderter Antithrombin-III-Aktivität
Referenzbereich: 19-31 mg/dl
Phospholipid-AAK (s. S. 138 )
Bei habituellen Aborten Teil der Basisdiagnostik, ansonsten bei positivem
Lupusantikoagulans.
MTHFR-Gen-Mutation (PCR) (s. S. 104 )
PAI-1-Gen-Mutation (PCR) (s. S. 104 )
D-Dimere
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 600 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: Z. A. einer akuten Thrombose, Verlaufskontrolle
Referenzbereich: <500 µg/l
178
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Hämatologie
Blutbild, klein
(umfasst: Erythrozyten, Leukozyten, Hb, Hk, MCV, MCHC, MCH und Thrombozyten)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung nicht gekühlt.
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Änämie, Verlaufskontrolle eine Fe-Substitution, Entzündung, nach Chemotherapie
Blutbild, groß
(umfasst: kleines Blutbild und maschinelles Differenzial-Blutbild, bei Auffälligkeiten zus.
mikroskopisches Differenzial-Blutbild)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung nicht gekühlt.
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Änämie, Verlaufskontrolle eine Fe-Substitution, Entzündung, nach Chemotherapie
Differenzial-Blutbild, manuell
(Leukozytendifferenzierung, Beurteilung der Erythrozytenmorphologie)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung nicht gekühlt.
Material: EDTA-Blut, Kapillarblutausstrich, nativ
Menge: 500 µl
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Anämieabklärung, Abklärung einer Leukozytose, bei V. a. Leukämie, bei V. a.
Sichelzellanämie oder Thalassämie
Lymphozytendifferenzierung (s. S. 121 )
siehe großer zellulärer Immunstatus
Hämoglobin
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Ämämie, Verlaufskontrolle einer Fe-Substitution
Referenzbereich: s. Befund
Methämoglobin (F)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte.
Material: EDTA-Blut
Menge: 600 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: bei G-6-PDH-Mangel und unter evtl. Therapie mit folgenden Medikamenten (die
Liste erhebt keinen Anspruch auf Vollständigkeit): Acetanilid, Anilin, Arsen, Benzol-Derivate,
Chlorate, Chloroquin, Dapson, Dinitrophenol, Lidocain, Metoclopramid, Methylenblau, Nitrate
und Nitrite (inkl. Nitroglycerin), Nitrofuran, Nitroprussid, Paraquat, Phenacetin, Phenol,
Phenytoin, Prilocain, Primaquin, Rauchgas-Inhalation, Sulfonamide, Trinitrotoluol.
CO-Hämoglobin (F)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte.
Material: EDTA-Blut
Menge: 600 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Bei V. a. Belastung mit CO (Kohlenmonoxid)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
179
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Anämieabklärung
Blutbild, groß (s. S. 179 )
(umfasst: kleines Blutbild und Differenzial-Blutbild)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung nicht gekühlt.
Retikulozyten
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte.
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. verminderte oder gesteigerte Erythropoese
Referenzbereich: 6-12 Promille
Osmotische Resistenz (der Erythrozyten)
Lithium-Heparinat-Blut
Material: Heparinblut
Menge: 9 ml
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Hämolyse, V. a. Sphärozytose
Referenzbereich: s. Befund
Glucose-6-PDH (im Erythrozyten)
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Favismus (G-6-PDH-Mangel-bedingte Hämolyse)
Referenzbereich: 146-376 pU/Ery
Ferritin
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Eisenmangel, V. a. chronische Entzündung. V. a. Hämochromatose
Referenzbereich: M: 30-300 F: 25-150 µg/l
Ferritin-Index (F)
gleichzeitige Bestimmung des löslichen Transferrin-Rezeptors und CRP erforderlich
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: berechnet
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest zur Diagnose eines Eisenmangels im Rahmen einer Anämie im
Rahmen chronischer Erkrankungen oder bei chronischer Entzündung
Referenzbereich: >1,5 (bei CRP-Werten <5 mg/l); >0,8 (bei CRP >5 mg/l)
Transferrin
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Diagnostik und Therapiekontrolle von Eisenmangel und Eisenüberladung
Referenzbereich: 1,74-3,48 g/l
180
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Transferrinsättigung
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: berechnet
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: weiterführende Diagnostik und Therapiekontrolle von Eisenmangel und
Eisenüberladung
Referenzbereich: 6-45 %
Eisenbindungskapazität (total)
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: berechnet
Ansatz: täglich
Indikation: V.a. Eisenresorptionsstörung oder Eisenübeladung
Referenzbereich: 259-388 µg/dl
Vitamin B12 (s. S. 203 )
Folsäure (s. S. 204 )
Erythropoetin (F) (s. S. 163 )
Haptoglobin
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: V. a. intravasale Hämolyse
Referenzbereich: siehe Befundbericht g/dl
Hb-Elektrophorese
(HbA2, HbF, HbS, HbC, HbE u.a.)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte
Material: EDTA-Blut
Menge: 1000 µl
Methode: IEF und HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Hämoglobinopathie oder Thalassämie
Referenzbereich: s. Befund
Sichelzelltest
Zum Nachweis von HbS sollte zusätzlich eine Hb-Elektrophorese durchgeführt werden.
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte.
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. HbS-Anlage oder HbS-Krankheit
Referenzbereich: s. Befund
PNH-Diagnostik (CD55, CD59) (s. S. 122 )
Ham-Test (Säure-Serumtest) s. PNH-Diagnostik (s. S. 122 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
181
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Freies Hämoglobin
Aus EDTA-Plasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt
wurde oder aus Serum, das sofort nach Durchgerinnen abzentrifugiert und von den Zellen
getrennt wurde.
Material: Serum, Heparin-Plasma
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer intravasalen Hämolyse (s. auch Haptoglobin), auch i. R. der QK
bei Eigenblutspenden
Referenzbereich: <5 mg/dl
Direkter Antiglobulintest (direkter Coombstest) (s. S. 183 )
Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut.
Hämochromatose-Gen-Mutationen (PCR) (s. S. 101 )
ALP (alkalische Leukozyten-Phosphatase)
Der Ausstrich muss aus frischem Kapillar- oder Heparinblut angefertigt und innerhalb von 3-4
Stunden fixiert werden. Blutentnahme im Labor zu empfehlen.
Material: Kapillarblutausstrich, nativ, Heparinblut
Menge: 4 Objekttr.
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Differentialdiagnose der CML (chronisch myeloische Leukämie)
PAS-Färbung im Blut
Der Ausstrich muss aus frischem Kapillarblut angefertigt werden.
Material: Kapillarblutausstrich, nativ
Menge: 4 Objekttr.
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Bei V. a. akute lymphatischer Leukämie
Esterasefärbung im Blut
Der Ausstrich muss aus frischem Kapillarblut angefertigt werden.
Material: Kapillarblutausstrich, nativ
Menge: 4 Objekttr.
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Bei V. a. akute monozytäre Leukämie
Myeloperoxidase in Granulozyten
Der Ausstrich muss aus frischem Kapillarblut angefertigt werden.
Material: Kapillarblutausstrich, nativ
Menge: 4 Objekttr.
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: Bei V. a. Einsenmangel oder -Überladung
Referenzbereich: Bei V. a. akute myeloische Leukämie
Lymphozytenproliferation (s. S. 123 )
Zellulärer Immunstatus (s. S. 121 )
182
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Blutgruppen-Serologie
Blutgruppe (AB0, Rh-Faktor, Antikörpersuchtest)
Die Bestimmung der Blutgruppe beinhaltet gemäß den Richtlinien Hämotherapie auch den
Antikörpersuchtest.
Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut.
Gemäß Richtlinien Hämotherapie ist für die blutgruppenserologischen Untersuchungen ein
gesondertes Probenröhrchen abzunehmen. Das Probenröhrchen muss mit Vornamen,
Namen und Geburtsdatum beschriftet sein, alternativ ist ein eindeutig zuordenbarer
Barcode zulässig.
Bei Einsendung eines kleineren Probenvolumens (z. B. Kinder, schlechte Venenverhältnisse)
kann bei auffälligen Befunden die Nachforderung einer neuen Probe erforderlich werden. Im
Einzelfall ist auch die Blutgruppenbestimmung aus Vollblut (Serumröhrchen) möglich.
Material: EDTA-Blut
Menge: 7,5 ml
Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl.
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Mutterschaftsvorsorge. Prätransfusionelle Untersuchungen siehe
Verträglichkeitsprobe.
Antikörpersuchtest
Bei auffälligem Befund erfolgt die Bestimmung der Antikörperspezifität und des
Antikörpertiters sowie die Bestimmung der korrespondierenden erythrozytären Antigene.
Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut.
Gemäß Richtlinien Hämotherapie ist für die blutgruppenserologischen Untersuchungen ein
gesondertes Probenröhrchen abzunehmen. Das Probenröhrchen muss mit Vornamen,
Namen und Geburtsdatum beschriftet sein, alternativ ist ein eindeutig zuordenbarer
Barcode zulässig.
Bei Einsendung eines kleineren Probenvolumens (z. B. Kinder, schlechte Venenverhältnisse)
kann bei auffälligen Befunden die Nachforderung einer neuen Probe erforderlich werden. Im
Einzelfall ist auch die Einsendung von Vollblut (Serum-Röhrchen) möglich.
Material: EDTA-Blut
Menge: 7,5 ml
Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl.
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Mutterschaftsvorsorge. Prätransfusionelle Untersuchungen siehe
Verträglichkeitsprobe.
Direkter Antiglobulintest (DAT, direkter Coombstest DCT)
Bei positivem direktem Antiglobulintest weitere Abklärung mittels monospezifischem direktem
Antiglobulintest sowie bedarfsweise Antikörperelution und Antikörperdifferenzierung.
Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut. Bei Neugeborenen reichen <1 ml EDTA-Blut in aller Regel aus.
Falls kein EDTA-Blut zur Verfügung steht, kann die Untersuchung auch aus Vollblut
(Serum-Röhrchen) erfolgen; im Einzelfall kann dann die Nachforderung von EDTA-Blut
erforderlich werden.
Material: EDTA-Blut
Menge: 7,5 ml
Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl.
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Autoimmunhämolytische Anämie (AIHA), Morbus haemolyticus neonatorum,
Abklärung einer Hämolyse
weitere Blutgruppeneigenschaften
A-Untergruppen: A1, A2
Rh-System: C, c, E, e (Rh-Formel), Cw, weak D
Kell-System: K, k, Kp(a)
Duffy-System: Fy(a), Fy(b)
Kidd-System: Jk(a), Jk(b)
Lewis-System: Le(a), Le(b)
P1PK-System: P1
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
183
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
MNS-System: M, N, S, s
Lutheran-System: Lu(a), Lu(b)
Diego-System: Wr(a)
Bitte bevorzugt EDTA-Blut einsenden.
Die Probenröhrchen müssen gemäß Richtlinien Hämotherapie mit Vornamen, Namen und
Geburtsdatum des Patienten beschriftet sein, alternativ ist ein eindeutig zuordenbarer
Barcode zulässig.
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: Agglutination
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Bei neu gefundenen irregulären Antikörpern erfolgt automatisch die Bestimmung
der korrespondierenden Antigene. Ferner kann bei Schwangeren mit irregulären Antikörpern
im Einzelfall (wird ggf. im Befund empfohlen) die Bestimmung des korrespondierenden
Antigens beim Kindsvater sinnvoll sein.
weak D (PCR) (s. S. 104 )
Verträglichkeitsprobe (Kreuzprobe)
Zum Labor Prof. Enders Esslingen gehört das Blutdepot des Klinikums Esslingen mit
Bevorratung von Erythrozytenkonzentraten, gefrorenen Frischplasmen und
Thrombozytenkonzentraten sowie der entsprechenden Labordiagnostik (Ansprechpartner Dr.
A. König Tel. 0711/3103-3278, Blutdepot Tel. 0711/3103-3270).
Bitte bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut einsenden.
Das Probenröhrchen muss gemäß Richtlinien Hämotherapie mit Vornamen, Namen und
Geburtsdatum beschriftet sein. Für die blutgruppenserologischen Untersuchungen muss
ein gesondertes Probenröhrchen abgenommen werden.
Material: EDTA-Blut
Menge: 7,5 ml
Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl.
Ansatz: täglich
Indikation: Vor geplanter Transfusion.
Wärmeautoantikörper (s. S. 183 )
Bitte Antikörpersuchtest und direkten Antiglobulintest (direkten Coombstest) anfordern.
Einsendung von EDTA-Blut erforderlich.
Kälteagglutinine
Kälteautoantikörper
Cave: Kältewirksame irreguläre Antikörper gegen Blutgruppeneigenschaften werden mit
dem indirekten Antiglobulintest bestimmt!
Bei positivem Kälteautoantikörper-Screening wird eine Kälteautoantikörper-Differenzierung
zur Bestimmung von Titer, Spezifität und Wärmeamplitude angeschlossen.
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte. EDTA-Blut muss nicht warm gehalten
werden.
Material: EDTA-Blut
Menge: 7,5 ml
Methode: Agglutination
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. autoimmunhämolytische Anämie (AIHA), Raynaud-Phänomen / Akrozyanose
Referenzbereich: <32 Titer
Donath-Landsteiner-Antikörper
Biphasische Hämolysine / Paroxysmale Kältehämoglobinurie
Telefonische Anmeldung unter 0711/3103-3270 unbedingt notwendig!
Direkter Test: 2 x 2 ml Vollblut, von der Entnahme bis zum Eintreffen im Labor auf 37◦ C
gehalten. Indirekter Test: 2ml Serum bei 37◦ C gewonnen.
Material: Vollblut, Serum
Menge: 2x2 ml
Methode: Hämolyse
Ansatz: bei Bedarf
184
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Indikation: V. a. autoimmunhämolytische Anämie (AIHA) bei Kindern (Krankheitsbild:
Paroxysmale Kältehämoglobinurie)
Medikamenten-induzierte Immunhämolyse
Telefonische Anmeldung unter 0711/3103-3270 unbedingt notwendig!
1. Vollblut 10 ml
2. Urin 10 ml (Metabolite)
3. Medikament(e) (nach Möglichkeit in wasserlöslicher Form, 1 ml).
Material: Serum, Urin
Menge: 2 x 10 ml
Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl.
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Hämolyse mit anderweitig ungeklärtem positiven direkten Coombstest und
Medikamentenanamnese
Polyagglutinabilität (z. B. T-Aktivierung)
Identifizierung folgender Formen der Polyagglutinabilität: T, Tk, Tn
EDTA-Blut oder Vollblut
Material: EDTA-Blut, Vollblut
Menge: 2 ml
Methode: Agglutination
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Hämolyse bei Infektion mit Sialidase (Neuraminidase-) bildenden Erregern (z. B.
Pneumokokken, Clostridien), Hämolytisch-urämisches Syndrom (HUS), Abklärung einer
Polyagglutinabilität.
Heparin-induzierte Thrombozytopenie Typ II (HIT II) (F)
Nachweis von Antikörpern gegen Heparin / PF4- Komplex.
Klinische Angaben zu Heparinbehandlung, Thrombozytenverlauf und
thromboembolischen Komplikationen dringend erforderlich, dazu bitte Formular zur
HIT II auf unserer Website unter "Anforderungsscheine" (alternativ über unsere
Versandabteilung erhältlich) verwenden!
Material: Serum
Menge: 10 ml
Methode: PaGIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Thrombozytenabfall unter Heparintherapie ohne erkennbare andere Ursache
Thrombozyten-AAK (F) (s. S. 141 )
Ham-Test (Säure-Serumtest) s. PNH-Diagnostik (s. S. 122 )
heute durch die Bestimmung von CD55 und CD59 ersetzt.
Fetale Erythrozyten im mütterlichen Blut (s. S. 123 )
Bei V.a. feto-maternale Transfusion in der Schwangerschaft.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
185
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Kardiale Marker
CK (Creatinkinase) gesamt
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Muskelerkrankung oder Herzmuskelschaden
Referenzbereich: M: <174 F: <140 U/l
CK-Isoenzyme (F)
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: ELPHO
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer CK-Erhöhung
Referenzbereich: s. Befundbericht IU/l
CK-MB (herzspezifisch)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Myokardinfarkt, Abklärung einer CK-Erhöhung
Referenzbereich: <6% des erhöhten CK-Wertes U/l
CRP, high sensitive (s. S. 127 )
GOT
Homocystein
LDH (s. S. 192 )
Myoglobin (s. S. 193 )
nt-pro-BNP
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Ausschluss bzw. Verlaufskontrolle Herzinsuffizienz. DD pulmonale vs. kardiale
Dyspneu
Referenzbereich: s. Befund ng/l
Troponin T
hochsensitiver Test
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden)
Indikation: V. a. akuten Myokardinfarkt
Referenzbereich: <0,014 µg/l
186
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Klinische Chemie
ACE (Angiotensin converting enzyme)
Abnahme unter ACE-Hemmertherapie nicht sinnvoll
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Granulomatöse Erkrankungen der Lunge (z. B. Sarkoidose)
Referenzbereich: 8-52 U/l
alpha-1-Antitrypsin (alpha-1-Protease-Inhibitor)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. alpha-1-Antitrypsin-Mangel
Referenzbereich: 1,0-3,2 g/l
ALT (GPT) (s. S. 191 )
Aluminium im Serum
Abnahme in Spezialröhrchen (Neutralmonovette)
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: AAS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Monitoring einer Therapie mit Phosphatbindern i. R. einer chronischen
Hämodialyse, V. a. Intoxikation
Referenzbereich: <10 µg/l
Aminosäuren i. Urin (F) (s. S. 221 )
Aminosäuren im Serum (F)
Serum sofort nach Gewinnung einfrieren
Material: Serum, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diagnostik von Stoffwechselerkrankungen mit Störungen im
Aminosäurestoffwechsel
Referenzbereich: s. Befund
Ammoniak im Plasma
Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: V. a. Leberinsuffizienz
Referenzbereich: M: 25-94 F: 19-82 µg/dl
Amylase
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Pankreatitis, auch erhöht bei Parotitis
Referenzbereich: 28-100 U/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
187
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Amylase-Isoenzyme (F)
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: Abklärung erhöhter Amylase-Werte, Ausschluss Makro-CK
Referenzbereich: s. Befund
Anti-Streptolysin O (s. S. 144 )
Antihyaluronidase (F) (s. S. 144 )
Antistaphylolysin (s. S. 144 )
AP (Alkalische Phosphatase)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Gallenwegserkrankung, Abklärung Knochenstoffwechsel, Ausschluss
osteoblastär wachsende Knochenmetastasen
Referenzbereich: Erwachsene M: 40-129; F: 35-104 U/l
AP (alkalische Phosphatase)-Isoenzyme (F)
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: ELPHO
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung AP-Erhöhung
Referenzbereich: s. Befund
Apolipoprotein A1 (HDL-Protein) (F)
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung Arterioskleroserisiko
Referenzbereich: M: 1,0-2,0 F: 1,1-2,3 g/l
Apolipoprotein B (LDL-Protein) (F)
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung Arterioskleroserisiko
Referenzbereich: M: 0,55-1,65 F: 0,6-1,45 g/l
AST (GOT) (s. S. 190 )
Bilirubin direkt
Probe bitte lichtgeschützt einsenden
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Abklärung einer Bilirubinerhöhung (intra-/prä-/posthepatisch)
Referenzbereich: <0,3 mg/dl
188
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Bilirubin gesamt
Probe bitte lichtgeschützt einsenden
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Abklärung Ikterus/Hyperbilirubinämie Hämolyse/Cholestase
Referenzbereich: Neugeborene und Säuglinge bis zum 14. Lebenstag: altersabhängiger
Normbereich (siehe Befund). Danach: <1,1 mg/dl
BSG (n. Westergreen) (s. S. 127 )
Calcium im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Ausschluss Störung im Calciumstoffwechsel, Basisuntersuchung zusammen mit
Phosphat im Serum.
Referenzbereich: 2,2-2,6 mmol/l
Carnitin, frei im Serum (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: V. a. Myopathie
Referenzbereich: M: 3,97-8,23 F: 2,89-7,34 mg/l
Chlorid im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Störungen des Säure-Basen-Haushaltes oder der der Natrium- und
Wasser-Bilanz z. B. bei chronischen Erbrechen
Referenzbereich: 95-108 mmol/l
Cholesterin
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. oder Verlaufskontrollen einer Fettstoffwechelstörung
Referenzbereich: Erwachsene <220, wünschenswert <200 mg/dl
Cholinesterase (CHE)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung hepatische Funktion. Ausschluss CHE-Variante. Siehe hierzu auch
unter Dibucainzahl.
Referenzbereich: M: 5000-14000 F: 4000-14000 U/l
CK, gesamt (s. S. 186 )
CK-MB (s. S. 186 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
189
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
CRP (s. S. 127 )
Cystatin C
von Muskelmasse unabhängiger Marker für die Nierenfunktion. Eine leichte Einschränkung
der Nierenfunktion wird zuverlässiger angezeigt als mittels Serum-Kreatinin, welches hier
häufig noch unauffällig ist.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Niereninsuffizienz
Referenzbereich: Erwachsene <0,93 mg/l
Dibucainzahl (atypische CHE) (F)
Material: Serum
Menge: 2000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Vorliegen einer atypischen CHE
Referenzbereich: >70 %
Gallensäuren, gesamt (F)
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: enzymatisch
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Ausschluss Cholestase, Abklärung Pruritus
Referenzbereich: <8 µmol/l
gamma-GT
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung Leberschädigung jeglicher Art (toxisch, nutritiv, infektiös u. a.)
Referenzbereich: M: <66 F: <39 U/l
GLDH
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Weitergehende Abklärung Leberschädigung.
Referenzbereich: <6,5 U/l
Glucose (s. S. 200 )
GOT (AST)
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Hämolyse, Hepatopathie
Referenzbereich: M: <38 F: <42 U/l
190
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
GPT (ALT)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung Leberschaden (infektiös, toxisch u. a.)
Referenzbereich: M: <41 F: <31 U/l
Harnsäure im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Hyperurikämie
Referenzbereich: M: <7,0 F: <5,6 mg/dl
Harnstoff im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung einer Niereninsuffizienz
Referenzbereich: 10-50 mg/dl
HbA1c (s. S. 200 )
HBDH (alpha-HBDH)
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung erhöhte LDH-Werte, V. a. hämolyt. Anämie
Referenzbereich: 72-182 U/l
HDL-Cholesterin (enzymatisch)
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos
Referenzbereich: M: >40 F: >50 mg/dl
Kalium im Serum
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Hypertonie, Herzrhythmusstörungen, Einnahme von Diuretika und Laxantien,
Niereninsuffizienz, Durchfälle, Erbrechen, Störungen im Säure-Basen-Haushalt, Hypo- und
Hyperaldosteronismus
Referenzbereich: 3,6-5,3 mmol/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
191
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Kreatinin im Serum (enzymatisch oder Jaffé)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung einer Niereninsuffizienz, Verlaufskontrolle
Referenzbereich: M: <1,2, F: <1,0 mg/dl
Kreatinin-Clearance (s. S. 223 )
1 ml eines 24h-Sammelurins und 500 µl Serum des gleichen Tages. Zur Berechnung bitte
auch Körperlänge, Gewicht und Sammelmenge angeben.
Lactat im Plasma
Material: Natriumfluorid-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Ausschluss Lactazidose
Referenzbereich: 0,7-2,5 mg/l
LDH (Lactat-Dehydrogenase)
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Hämolyse, Lymphome, allg. Maker des Zellzerfalls
Referenzbereich: M: 100-225 F: 100-214 U/l
LDH-Isoenzyme (F)
Probe bei Raumtemperatur lagern und verschicken, weder kühlen noch einfrieren!
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: ELPHO
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer unklaren LDH-Erhöhung
Referenzbereich: s. Befund
LDL-Cholesterin
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos
Referenzbereich: <150, optimal <100 mg/dl
Lipase
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Pankreatitis
Referenzbereich: <60 U/l
192
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Lipoprotein (a)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos
Referenzbereich: <30 mg/dl
Lipoprotein-Elektrophorese
Serum nicht einfrieren!
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: ELPHO
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 7 Tage)
Indikation: Klassifikation von Fettstoffwechselstörungen nach Fredrickson
Magnesium im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Ausschluss Magnesium-Mangel, Monitoring einer Mg-Therapie
Referenzbereich: 0,7-1,0 mmol/l
Magnesium, intraerythrozytär (F)
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Flammenphotometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Ausschluss Magnesium-Mangel, Monitoring einer Mg-Therapie
Referenzbereich: 1,6-2,6 mmol/l
Makro-CK (F)
wird im Rahmen der CK-Isoenzymbestimmung untersucht (s. dort)
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: ELPHO
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer unklaren CK-Erhöhung
Referenzbereich: s. Befund
Myoglobin im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Ausschluss Rhabdomyolyse
Referenzbereich: M: <76 F: <64 µg/l
Natrium im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Ausschluss Hypo-/Hypernatriämie
Referenzbereich: 130-145 mmol/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
193
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Osmolalität im Serum (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Gefrierpunktosmometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Diabetes insipidus
Referenzbereich: 275-295 mosm/kg
Osmolalität im Urin (F) (s. S. 223 )
Pankreatische Elastase im Serum (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Pankreatitis
Referenzbereich: <3,5 µg/l
Pankreatische Elastase im Stuhl (s. S. 227 )
PCT (Procalcitonin) (s. S. 128 )
Phosphat im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung des Knochenstoffwechsels, Niereninsuffizienz
Referenzbereich: 0,8-1,45 mmol/l
Pyruvat (F)
Material: Natriumfluorid-Plasma
Menge: 2 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Vitamin B1-Mangel, Leberinsuffizienz, Urämie
Referenzbereich: 3,6-5,9 mg/l
Synovialdiagnostik
bestehend aus mikroskopischer Untersuchung sowie LDH, Gesamteiweiß, Glucose, Laktat,
Harnsäure, AP, RF IgG
Bitte natives und in EDTA antikoaguliertes Punktat einsenden.
Material: Punktat
Menge: 2+2 ml
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung eines Gelenkergusses
Referenzbereich: s. Befund
Triglyceride, gesamt
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung einer Fettstoffwechselstörung
Referenzbereich: <200 mg/dl
Troponin T (s. S. 186 )
194
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Xylose im Blut
(F)
Optimal: Natriumfluoridblut
Alternativ: Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt
danach vom Blutkuchen trennen.
Material: Natriumfluorid-Blut, Serum
Menge: 2 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: i. R. des D-Xylose-Belastungstestes
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
195
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Proteine / Transportproteine im Serum
Proteine im Urin siehe Urindiagnostik
Albumin im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Leberinsuffizienz, Nephropathie
Referenzbereich: 35-55 g/l
beta-2-Mikroglobulin (s. S. 206 )
Bence-Jones Proteine (freie Leichtketten) (s. S. 221 )
beta-Amyloid (1-42) im Liquor (F) (s. S. 199 )
Coeruloplasmin
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. M. Wilson
Referenzbereich: 0,17-0,60 g/l
Elektrophorese (Serum-Eiweiß-) (s. S. 197 )
Gesamteiweiß im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Nephropathie, Leberinsuffizienz
Referenzbereich: 6,6-8,3 g/dl
Immunfixationselektrophorese im Serum
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: IFE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Gammopathie
Immunglobuline (s. S. 125 )
Kappa-Leichtketten, frei, monoklonal im Serum (F)
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verlaufskontrolle einer Gammopathie
Referenzbereich: 3,3-19,4 mg/l
Kryofibrinogen
Das Blut muss bei 37 ◦ C abzentrifugiert und das Plasma noch bei 37 ◦ C von den Zellen
getrennt werden!
Material: Citrat-Plasma
Menge: 1000 µl
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: V.a. Paraproteinämie
Referenzbereich: negativ
196
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Kryoglobuline
Das Blut muss bei 37 ◦ C durchgerinnen und muss bei 37 ◦ C abzentrifugiert und das
Serum noch bei 37 ◦ C vom Blutkuchen getrennt werden!
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: V.a. Paraproteinämie
Referenzbereich: negativ
Lambda-Leichtketten, frei, monoklonal im Serum (F)
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verlaufskontrolle einer Gammopathie
Referenzbereich: s. Befund
Serumeiweiß-Elektrophorese
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: ELPHO
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Auschluss und Verlaufskontrolle einer Gammopathie, Bei V.a. Hepatopathie,
Dysproteinämien, Abklärung und Verlaufskontrolle entzündlicher Prozesse
Referenzbereich: s. Befund
SHBG (Sexualhormon-bindendes Globulin) (s. S. 170 )
Tau-Protein im Liquor (F) (s. S. 199 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
197
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Liquordiagnostik
Blut-Liquor-Schranke (nach Reiber)
Beurteilung der Blut-Liquor-Schranke und der intrathekalen Ig-Synthese nach Reiber
(beinhalten Albumin, IgG, IgA und IgM jeweils im Serum und im Liquor). Der Befund wird im
sog. Reiber-Schema dargestellt.
Benötigt wird ein Serum-Liquor-Paar, das zur gleichen Zeit abgenommen wurde.
Material: Liquor, Serum
Menge: je 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Im Rahmen der Meningitis- und Enzephalitis-Diagnostik
Referenzbereich: s. Befund
Oligoklonale Banden im Liquor
Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese mittels isoelektrischer Fokussierung
Benötigt wird ein Serum-Liquor-Paar, das zur gleichen Zeit abgenommen wurde.
Material: Liquor, Serum
Menge: je 500 µl
Methode: IEF
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V.a. E. disseminata, Enzephalitis, Meningitis
Referenzbereich: negativ
Zellzahl im Liquor
Eine Differenzierung der Zellen im Liquor ist nur bis 2 Stunden nach Abnahme möglich.
Danach fällt die Anzahl der Granulozyten relevant ab.
Material: Liquor
Menge: 500 µl
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 30 Minuten)
Indikation: V.a. Infektion des ZNS, bei hämatologischen Erkrankungen mit Befall des ZNS
Referenzbereich: <5 /µl
Eiweiß im Liquor
Material: Liquor
Menge: 300 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: V. a. Infektion des ZNS
Referenzbereich: 10-50 mg/dl
Glucose im Liquor
Material: Liquor
Menge: 300 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: V.a. Infektion des ZNS
Referenzbereich: 50-70 mg/dl
Lactat im Liquor
Material: Liquor
Menge: 300 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: V.a. Infektion des ZNS
Referenzbereich: <2,6 mmol/l
198
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
LDH im Liquor
Material: Liquor
Menge: 300 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunde, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: V.a. Infektion des ZNS, bei hämatologischen Erkrankungen mit Befall des ZNS
beta-Amyloid (1-42) (F)
Polypropylenröhrchen für Abnahme und Transport verwenden. Lagerung und Transport bei
2-8 ◦ C. Für Lagerung länger als 1 Woche die Proben bei -20 ◦ C einfrieren.
Material: Liquor
Menge: 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: Abklärung eines neurodegenerativen Prozesses (z. B. M. Alzheimer)
Referenzbereich: >500 ng/l
Tau-Protein (F)
Zur Abklärung Alzheimer-Demenz sollte die kombinierte Bestimmung mit dem ß 1-42
Amyloid im Liquor erfolgen.
Polypropylenröhrchen für Abnahme und Transport verwenden. Lagerung und Versand
gekühlt bei 2-8◦ C; Für Lagerung länger als 1 Woche die Proben bei -20◦ C einfrieren.
Material: Liquor
Menge: 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: Abklärung eines neurodegenerativen Prozesses (z. B. M. Alzheimer)
Referenzbereich: siehe Befund ng/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
199
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Diabetes-Diagnostik
Glucose
Optimal: Glucoexact oder ähnliches mit Citrat gepuffertes Abnahmesystem (z. B. Terumo
Venosafe), alternativ Natriumfluoridblut (hier Abfall der Glucosekonzentration um 5-10% in
den ersten 4 Stunden)
Alternativ: Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt
danach vom Blutkuchen trennen.
Material: Glucoexact, Natriumfluorid-Blut
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle eines Diabetes mellitus, V. a. Insulinom
Referenzbereich: nüchtern <100, Schwangere nüchtern <92 mg/dl
HbA1c-Fraktion
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle eines D. mellitus
Referenzbereich: IFCC-Standard: 20-42 mmol/mol prozentual: 4,0-6,0 %
C-Peptid (s. S. 162 )
Insulin (s. S. 164 )
GAD-AAK (Glutamatdecarboxylase-AAK) (F) (s. S. 133 )
ICA (Inselzell-AAK) (F) (s. S. 134 )
IAA (Insulin-Autoantikörper) (F) (s. S. 134 )
200
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Allergiediagnostik
Basophilen-Degranulationstest (s. S. 121 )
Zusätzlicher zellulärer Allergietest für die Soforttypreaktion (Typ I). Z.B. bei negativem RASToder Pricktest trotz starkem klinischen Verdacht.
ECP (eosinophiles kationisches Protein) (F)
Vollblut nach exakt einer Stunde zentrifugieren und sofort danach vom Blutkuchen
trennen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: RAST
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Atopische Dermatitis, Verlaufskontrolle des allergischen Asthma bronchiale
Referenzbereich: <16 µg/l
IgE im Serum, gesamt
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Allergie, Verlaufskontrolle einer allergischen Erkrankung
Referenzbereich: altersabhängig, Erwachsene <100 kU/l
IgE, allergenspezifisch im Serum (RAST)
(Einzel-Allergene und Mischungen siehe RAST-Anforderungsbogen)
250 µl + je 50 µl pro weiterem Allergen
Material: Serum
Menge: mind. 250 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. allergische Diathese
Referenzbereich: negativ kU/l & Rastklassen
Mastzell-Tryptase
Der Tryptase-Spiegel korreliert gut mit der Histamin-Ausschüttung der Mastzellen und ist
aufgrund der längeren Halbwertszeit und der höheren Stabilität der Histamin-Bestimmung im
Plasma vorzuziehen.
Blutentnahme 15-180 Minuten nach anaphylaktischer Reaktion, Serum nach 1 Stunde vom
Blutkuchen trennen und kühlen
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Indikation: V. a. Mastozytose, V. a. vermehrte Histaminausschüttung.
Referenzbereich: <11,4 µg/l
Zoeliakie-Diagnostik (s. S. 152 )
(Gliadin-, Endomysium-, tTG-AK)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
201
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Vitamine & Spurenelemente
Eisen im Serum
Bestimmung von Ferritin aussagekräftiger!
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Im Rahmen des Eisenresorptionstest, V.a. Eisnemangelanämie (besser: Ferritin)
Referenzbereich: M: 60-160, F: 37-145 mg/dl
Löslicher Transferrin-Rezeptor (F)
zusammen mit Ferritin ist die Berechnung des sog. "Ferritinindex" möglich. Dieser erlaubt
eine valide Aussage über die Eisenversorgung auch bei Vorliegen von Entzündungen oder
Tumorerkrankungen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung der Eisenversorgung
Referenzbereich: 0,8-1,8 mg/l
Jod im Spontanurin (F)
Material: Spontanurin
Menge: 10 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V.a. Jodintoxikation bzw. Jodmangel
Referenzbereich: >150 µg/gKrea
Kupfer im Serum
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: AAS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf M. Wilson, Kupfermangel bei eisenrefraktärer Anämie
Referenzbereich: Erwachsene M: 560-1100, F: 680-1800 µg/l
Kupfer im Urin (F)
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze
Menge: 1000 µl
Methode: AAS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verdacht auf M. Wilson
Referenzbereich: 10-60 µg/24h
Selen im Serum
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: AAS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Haarausfall, brüchige Nägel
Referenzbereich: 46-143 µg/l
Zink im Serum
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: AAS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Haarausfall, brüchige Nägel
Referenzbereich: 0,7-1,2 mg/l
202
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Vitamin A (Retinol)
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Lichtgeschützter Transport!
Material: Serum, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf Vitamin A-Mangel bei Störungen der Dunkeladaptation
Referenzbereich: 0,2-1,0 mg/l
Vitamin B 1 (Thiamin)
Material: EDTA-Blut
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: bei unklaren neurologischen Symptomen wie Paresen, Neuritis, Areflexie
Referenzbereich: 28-85 µg/l
Vitamin B 2 (Riboflavin)
Material: EDTA-Blut
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung bei Rhagaden, Pruritus
Referenzbereich: 140-370 µg/l
Vitamin B 6 (Pyridoxin)
Material: Serum, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Haut- und Schleimhautentzündungen, Neuritis
Referenzbereich: 3,6-18,0 µg/l
Vitamin B 12 (Cobalamin)
Bei älteren Patienten korreliert Holo-Transcobalamin (HTC) besser mit den intrazellulären
Vitamin B12-Spiegeln als der Serumspiegel von Vitamin B12.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECL
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Makrozytose, V. a. perniziöse Anämie
Referenzbereich: 150-1000 ng/l
Holo-Transcobalamin
Bei Transcobalamin (TC) handelt es sich um das Vitamin B12-Bindeprotein. Der Komplex
aus TC und Vitamin B12 wird als Holo-TC bezeichnet.
In Falle eines latenten Vitamin B12-Mangels braucht der Körper die plasmatischen und
intrazellulären Speicher auf. In dieser Phase ist Holo-TC der einzige auffällige Marker.
Methylmalonsäure und Homocystein steigen erst bei manifestem Vitamin B12-Mangel an.
Bei älteren Patienten korreliert HTC besser mit den intrazellulären Vitamin B12-Spiegeln als
der Serumspiegel von Vitamin B12.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: M-EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Makrozytose, V.a. perniziöse Anämie, Hyperhomocysteinämie, Frühmarker bei
der Diagnostik eines Vitamin B12-Mangels, vor allem bei älteren Patienten dem Vitamin
B12-Serum-Spiegel überlegen.
Referenzbereich: >50 pmol/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
203
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Folsäure
Vitamin B 9
Material: Serum, gefroren
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Makrozytose, V. a. perniziöse Anämie
Referenzbereich: 3-20 µg/l
Vitamin C
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den
Zellen getrennt und in einem SPEZIALRÖHRCHEN tiefgefroren wurde. Der Versand muss
tiefgefroren (ca. -20◦ C) und lichtgeschützt erfolgen. Haltbarkeit bei Raumtemperatur <3 Std.!
Material: Spezialröhrchen, gefroren
Menge: 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 5-20 mg/l
25-OH-Vitamin D
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Auschluss eines Vitamin D-Mangels
Referenzbereich: 25-70 µg/l
1,25(OH)2-Vitamin D
Material: Serum
Menge: 1500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Beurteilung der Vitamin-D-Versorgung bei höhergradiger Niereninsuffizienz
Referenzbereich: bis 20 Jahre: 35 - 90; 21 - 50 Jahre: 35 - 80, > 50 Jahre: 30 - 70 nmol/l
Vitamin E (alpha-Tocopherol)
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen
getrennt wurde.
Lichtgeschützter Transport!
Material: Serum, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: 5-20 mg/l
Vitamin H (Biotin) (F)
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Haarausfall
Referenzbereich: >100 ng/l
Vitamin K im Serum (Phyllochinone) (F)
Serum bitte lichtgeschützt und tiefgefroren einsenden, Blutentnahme nüchtern
Material: Serum, gefroren
Menge: 4 ml
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: 0,17-0,68 µg/l
204
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Knochenstoffwechsel
TRAP-5b (F)
Das Serum muss innerhalb von 2 Std. nach Blutentnahme vom Blutkuchen abgetrennt und
tiefgefroren werden.
Material: Serum, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Beurteilung des Knochenabbaus/-umbaus bei Dialysepatienten
Referenzbereich: 2,5-4,5 U/l
beta-Crosslaps (CTx) im Plasma (F)
Wegen der ausgeprägten Tagesrhythmik sollte die Abnahme morgens nüchtern vor 08:15h
erfolgen. Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von
den Zellen getrennt, und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 0,5 ml
Methode: ECLIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Indikation: V. a. vermehrten Knochenabbau, Abklärung einer Osteoporose
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Ostase (knochenspezifische AP, BAP) (F)
Marker der Osteoblasten-Aktivität
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: IRMA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer Osteoporose
Referenzbereich: M: 6-22 F: 3-14 µg/l
PTH, intakt (Parathormon, intakt) (s. S. 167 )
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma oder Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme
abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde.
Pyridinoline im Urin
Crosslinks, Knochenabbau-Marker
optimal: Bestimmung aus dem 1. Morgenurin
Material: Urin
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Früherkennung eines vermehrten Knochenabbaus, insbesondere bei Frauen 1-3
Jahre nach der Menopause.
Referenzbereich: s. Befund µg/gKrea
1,25-OH2-Vitamin D (s. S. 204 )
25-OH-Vitamin D (s. S. 204 )
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
205
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Tumormarker
alpha-Fetoprotein (AFP)
Keimzelltumoren, hepatozelluläres Karzinom
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: <7,5 kU/l
BAP (bone specific AP) siehe Ostase (F) (s. S. 205 )
V. a. Knochenmetastasen
beta-2-Mikroglobulin im Serum
Plasmozytom und andere Lymphome
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verlaufskontrolle von Plasmozytomen
Referenzbereich: bis 39 Jahre: < 2, bis 59 Jahre: < 2,6, darüber < 3,1 mg/l
beta-hCG (humanes Chorion-Gonadotropin)
Keimzelltumoren, Chorionkarzinom
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: <10 U/l
CA 12-5
Ovar
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: <38 kU/l
CA 15-3
Mamma
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: <25 kU/l
CA 19-9
Pankreas, Tumoren des Gastro-Intestinaltraktes
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: <32 kU/l
206
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
CA-50
(F)
Magen
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: IRMA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <30 kU/l
CA 72-4
mucinöses Ovarial-Karzinom, Magen-Karzinom
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: <6,9 kU/l
CEA (Carcino-embryonales Antigen)
Tumoren des Gastro-Intestinaltraktes, Lunge, allgemeiner Proliferationsmarker
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: <5 µg/l
Chromogranin A (CGA)
neuroendokrine Zellen, bei V. a. Phäochromocytom
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <110 µg/l
CYFRA 21-1
Plattenepithelien, Lunge
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: <3,3 µg/l
5-S-Cysteinyldopa im Plasma (F)
malignes Melanom
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma möglich, welches sofort nach Entnahme zentrifugiert und
tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 2 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <10 nmol/l
5-S-Cysteinyldopa im Urin (F)
malignes Melanom
Material: Urin
Menge: 10 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <1,5 µmol/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
207
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Human Placental Alkaline Phosphatase (hPLAP) (F)
Keimzelltumoren, insb. Seminome
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 10 Tage)
Referenzbereich: <100 mU/l
Inhibin A (s. S. 164 )
Granulosazell-Tumor (Ovar)
Inhibin B (s. S. 164 )
Granulosazell-Tumor (Ovar)
Knochenspez. alk. Phosphatase (siehe Ostase) (F) (s. S. 205 )
bei V. a. osteoblastär wachsende Knochenmetastasen
NMP 22 (Nukleäres Matrix-Protein 22) (F)
Harnblase
9 ml Spontanurin (8-12 h), der sofort nach dem Gewinnen in ein Gefäß mit speziellem
Stabilisator gegeben wird (anzufordern unter 0711 / 6357-104).
Material: Urin, stabilisiert
Menge: 9 ml
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <10 kU/l
NSE (Neuronspezifische Enolase)
kleinzelliges Bronchial-Ca
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: <13 µg/l
Ostase (F) (s. S. 205 )
V. a. Knochenmetastasen
Prostataphosphatase (PAP)
Ersetzt durch PSA, freies PSA
Die Bestimmung wurde eingestellt, da sie neben der Bestimmung von PSA und freiem PSA
keine Bedeutung mehr hat!
PSA (Prostata-spezifisches Antigen)
Prostata
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: altersabhängige Normwerte, s. Befund µg/l
PSA, frei
Prostata
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECL
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: beurteilt wird lediglich der Quotient (fPSA/PSA)
208
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
PTHrP (Parathormon-related Protein) (F)
Paraneoplastische Hypercalcämie
Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 1 ml
Methode: ILMA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: <2,5 pmol/l
S-100-Protein (F)
malignes Melanom
Material: Serum, gefroren, Liquor, gefroren
Menge: 800 µl
Methode: ILMA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: Serum: <0,11 Liquor: <1,0 µg/l
SCC
Plattenepithel (Lunge, Zervix, HNO)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: MEIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2,5 µg/l
TPA (Tissue Polypeptide Antigen) (F)
allgemeiner Proliferationsmarker
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ILMA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <90 U/l
VIP (Vasoaktives Intestinales Polypeptid) (F)
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert
und von den Zellen getrennt wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: RIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Referenzbereich: <100 ng/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
209
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Medikamente
Amikacin (F)
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel unmittelbar vor erneuter Gabe, Spitzenspiegel 5-30
Minuten nach Infusionsende
Eliminations-Halbwertszeit: 2-3 Stunden
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: FPIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 15-25 mg/l, Nephro- und Ototoxizität ab 35 mg/l
Amiodaron
Blutentnahme-Zeitpunkt: mind. 10 Stunden nach letzter Einnahme
Eliminationshalbwertszeit: 25-100 Tage
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 0,5-2,5 mg/l
Amitriptylin (F)
Summe aus Ami- und Nortryptilin wird bestimmt.
Blutentnahme-Zeitpunkt: 4-9 Stunden vor nächster Dosis
Eliminationshalbwertszeit: 16-60 Stunden
Material: Serum
Menge: 3 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 100-250, toxisch >400 µg/l
Amphotericin B (F)
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 0,03-3,0 mg/l
Bromazepam
Eliminationshalbwertszeit ca. 12 Std.
Blutentnahme vor erneuter Medikamenteneinnahme
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: therapeutisch 50-200 ng/ml
Bromid im Serum (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 1000-1500 mg/l, bei schweren Epilepsien bis 2250 mg/l,
physiologisch <10 mg/l, toxisch >2500 mg/l
210
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Carbamazepin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 6-18 Stunden vor nächster Dosis, Talspiegel vor nächster Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 10-25 Stunden (Dauertherapie)
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 4,0-12,0 mg/l
Carbamazepin, frei (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 1,0-3,0 mg/l
Ciclosporin A (monokl. AK)
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe. Spitzenspiegel 2 Std. +/- 15 Min nach
Einnahme. Eliminationshalbwertszeit: 6,3 Stunden; 10,7 (Nieren-Tx), 20,3 (Leber-Tx).
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Clobazam (F)
Metabolit Norclobazam wird mitbestimmt
Eliminationshalbwertszeit: 10-50 Stunden, für die Metabolite bis 120 Stunden.
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 100 - 400 µg/l
Clomipramin (F)
Eliminationshalbwertszeit: 19-37 Std.
Blutentnahme: vor nächster Medikamenteneinnahme
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: HPLC
Referenzbereich: therapeutisch 90 - 250; toxisch ab 400 µg/l
Clonazepam
Eliminationshalbwertszeit: 20 - 40 Std.
Blutentnahme: vor nächster Medikamenteneinnahme
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10-60 µg/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
211
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Clozapin
Metabolit Norclozapin wird mitbestimmt.
Regelmäßige Blutbildkontrollen erforderlich.
Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 6-26 Stunden
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 50 - 700 µg/l
Diazepam
Eliminationshalbwertszeit: 48-60 Std.
Metabolit Nordiazepam wird mitbestimmt
Blutentnahme: vor nächster Medikamenteneinnahme
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Referenzbereich: therapeutisch 200 - 500 µg/l
Digitoxin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 8-24 Stunden nach letzter Einnahme
Eliminationshalbwertszeit: 6-8 Tage
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECL
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 13-25 µg/l
Digoxin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 8-24 Stunden nach letzter Einnahme
Eliminationshalbwertszeit: 1-2 Tage
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: ECL
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 0,5-2,0 µg/l
Doxepin (F)
Eliminationshalbwertszeit: 8 - 25 Std., Metabolit Nordoxepin: 34 - 68 Std.
Der Metabolit Nordoxepin wird mitbestimmt.
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 50-250 µg/l
Ethosuximid
Eliminationshalbwertszeit: 30-60 Stunden (Erwachsene), 20-55 Stunden (Kinder)
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 40 - 100 mg/l
212
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Felbamat
Eliminationshalbwertszeit: 22 Stunden
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10-100 mg/l
FK 506 siehe Tacrolimus (s. S. 217 )
Gabapentin
Eliminationshalbwertszeit: 6 Stunden
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: GC/MS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch >2,0 mg/l
Ganciclovir
Bestimmung von Tal- und Spitzenspiegeln empfohlen
Blutentnahme-Zeitpunkt für Talspiegel (i.v., oral): vor nächster Gabe
Blutentnahme-Zeitpunkt für Spitzenspiegel:
30-60 Min. nach Gabe von Ganciclovir (i.v.)
2-3 Stunden nach Gabe von Ganciclovir (oral)
3 Stunden nach Gabe von Valganciclovir (oral)
Eliminationshalbwertszeit: 3 Stunden (i.v.)
Material: EDTA-Plasma, Serum
Menge: 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Gentamicin (F)
Bestimmung von Tal- und Spitzenspiegeln empfohlen
Blutentnahme-Zeitpunkt für Talspiegel: vor nächster Gabe
Blutentnahme-Zeitpunkt für Spitzenspiegel:
30-60 min nach Infusionsende, 60 min nach Injektion (i.m.).
Eliminationshalbwertszeit: 2,5 Stunden (Neugeborene ca. 4 Stunden)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: FPIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Imipramin (F)
Der Metabolit Desipramin wird mitbestimmt.
Eliminationshalbwertszeit: 6 - 20 Std.
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: HPLC
Referenzbereich: therapeutisch 150 - 250, toxisch ab 400 µg/l
Isoniazid (F)
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: täglich
Referenzbereich: therapeutisch 1-8 mg/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
213
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Itraconazol (F)
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 0,4-2,0 mg/l
Lamotrigin
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe
Eliminationshalbwertszeit: 25 Stunden (15-35 Stunden)
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Levetiracetam
Blutentnahme Zeitpunkt: vor nächster Gabe.
Eliminationshalbwertzeit: 6 - 9 Stunden
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch: 3 - 34 mg/l
Lithium
Blutentnahme-Zeitpunkt: 12 Stunden nach der letzten Einnahme
Eliminationshalbwertszeit: 14-33 Stunden
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: AAS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 4 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 0,3-1,3 mmol/l
Lorazepam
Eliminationshalbwertszeit: 14 Stunden
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 20-250 µg/l
Mesuximid (N-Desmethylmesuximid)
Blutentnahme-Zeitpunkt: 3-5 Stunden nach der letzten Einnahme
Bestimmung des Metaboliten Des-N-Methylmesuximid
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10-40 mg/l
Methylphenidat (F)
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 8-30 µg/l
214
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Midazolam
Eliminationshalbwertszeit: 1,5 - 2,5 Std.
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: therapeutisch 80 - 250 µg/l
Olanzapin
Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe.
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: bei durchschnittlicher Gabe von 11 mg/Tag (2,5 - 40 mg)therapeutisch: 2,5
- 105 mg/l - im Mittel 25 mg/l
Oxazepam
Eliminationshalbwertszeit: 5 - 15 Std.
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 200 - 1500 µg/l
Oxcarbazepin
Der Metabolit 10-Hydroxy-Carbazepin wird mitbestimmt.
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel unmittelbar vor der nächsten Dosis.
Eliminationshalbwertszeit: 8-10 Stunden für 10-Hydroxycarbazepin (Metabolit).
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 0,5-3,0 mg/l
Paracetamol (F)
Blutentnahme-Zeitpunkt: 1 Stunde nach letzter Einnahme
Eliminationshalbwertszeit: 2 Stunden
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe:am selben Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 5,0-25,0 mg/l
Phenobarbital
Eliminationshalbwertszeit: 50-120 Stunden (Erwachsene), 40-70 Stunden (Kinder)
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 15-40 mg/l
Phenytoin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 2-4 Stunden (i.v.). oral unerheblich, da lange Elimination.
Eliminationshalbwertszeit: 6-24 Stunden (Verlängerung bei höheren Plasmakonzentrationen!)
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10-20 mg/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
215
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Pregabalin
Eliminationshalbwertszeit: ca. 6 Std.
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: GC/MS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 2-5 mg/l
Primidon
Blutentnahme-Zeitpunkt: steady state, vor nächster Gabe
Eliminationshalbwertszeit: 8 Stunden
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am nächsten Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 4,0-10,0 mg/l
Pyrimethamin
Eliminationshalbwertszeit: 80-100 Std.
Material: Serum, EDTA-Plasma
Menge: 500 µl
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: zur Malariaprophylaxe 200-500, zur Toxoplasmosetherapie: 700-1300 µg/l
Quetiapin
Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe
Eliminationshalbwertszeit: 3 - 9 Stunden
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 40-170 µg/l
Rifampicin (F)
Nur aus Serum bestimmbar, das spätestens 2 Stunden nach Blutentnahme zentrifugiert, von
den Blutzellen getrennt und tiefgefroren wurde. Die Probe muss zu jeder Zeit lichtgeschützt
transportiert werden.
Material: Serum, gefroren
Menge: 1000 µl
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 0,1-10 mg/l
Risperidon
Der Metabolit 9-Hydroxy-Risperidon wird mitbestimmt
Blutentnahmezeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe
Eliminationshalbwertszeit: ca. 3 Stunden
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 2-30 ng/ml
216
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Sirolimus (Rapamycin)
(F)
Das EDTA-Vollblut (!) sollte nach Entnahme so bald wie möglich gekühlt oder tiefgefroren
werden. Lagerung und Versand lichtgeschützt.
Material: EDTA-Blut
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: siehe Befundbericht µg/l
Sulfadiazin
Eliminationshalbwertszeit: 8-17 Std.
Material: Serum, EDTA-Plasma
Menge: 300 µl
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: Toxoplasmosetherapie: 50-150 mg/l
Sultiam
Eliminationshalbwertszeit: 3 - 30 Std.
Anstieg des Phenytoinspiegels bei gleichzeitiger Gabe
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 6,0-10,0, toxisch: >20 mg/l
Tacrolimus, FK 506
Blutentnahme-Zeitpunkt : unmittelbar vor der nächsten Dosis.
Eliminationshalbwertszeit: 16 Stunden (Nieren-Tx), 12 Stunden (Leber-Tx)
Material: EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Teicoplanin (F)
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: FPIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 5-60 mg/l
Temazepam
Eliminationshalbwertszeit: 5 - 13 Std.
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 200 - 800, toxisch ab 1000 ng/ml
Theophyllin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 1 Stunde nach letzter Einnahme (Retardpräparate 4 Stunden)
Eliminationshalbwertszeit: 3-12 Stunden (Erwachsene), 2-6 Stunden (Kinder)
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 8,0-20,0 mg/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
217
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Tobramycin (F)
Blutentnahme-Zeitpunkt: Spitzenspiegel 30 Min nach Infususionsende (i.v.); Talspiegel vor
nächster Dosis.
Eliminationshalbwertszeit: 2 Stunden
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: FPIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 1 Tag)
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Topiramat
Die Serumkonzentration sollte im Zusammenhang mit der klinischen Symptomatik beurteilt
werden.
Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 20-30 Stunden nach letzter Einnahme
Material: Serum
Menge: 200 µl
Methode: GC/MS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch: 2,4 - 8 mg/l
Trimipramin (F)
Eliminationshalbwertszeit: 10 - 40 Std.
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 20 - 200, toxisch ab 500 µg/l
Valproinsäure
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Dosis.
Eliminationshalbwertszeit: 14 Stunden
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: GC/MS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 4 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 50-100 mg/l
Vancomycin
Blutentnahme-Zeitpunkt: Spitzenspiegel 1 Stunde nach Infusionsende, Talspiegel vor
nächster Dosis.
Eliminationshalbwertszeit: 4-10 Stunden (Erwachsene), 2-3 Stunden (Kinder), 6-10 Stunden
(Neugeborene).
Material: Serum
Menge: 300 µl
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Vigabatrin
Blutentnahme-Zeitpunkt : 2-4 Stunden nach Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 4 Stunden, auf das Doppelte verlängert bei wiederholter Gabe.
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: GC/MS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch bei Abnahme 2-4 Stunden nach Einnahme 3,0-25,0 mg/l
218
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Zonisamid
Eliminationshalbwertszeit: ca. 60 Std.
Material: Serum
Methode: HPLC
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 15-40 mg/l
Zopiclon
Material: Serum
Menge: 0,5 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10-60 mg/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
219
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Urindiagnostik (ohne Infektionserreger)
Die Bestimmung der meisten folgenden Parameter sollte aus einem 24h-Sammelurin
erfolgen. Bei der Bestimmung aus einem Spontanurin muss der Wert auf g/Kreatinin
bezogen werden, Tagesschwankungen können so nicht adäquat berücksichtigt werden.
beta-2-Mikroglobulin im Urin
Material: Urin
Menge: 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Marker der tubulären Nierenschädigung, Alpha-1-Mikroglobulin ist für diese
Diagnostik besser geeignet
Referenzbereich: < 0,4 mg/l
Proteindifferenzierung im Urin
bestehend aus alpha-1-Mikroglobulin (ggf. zus. Retinol-bindendes Protein RBP) zur
Beurteilung der tubulären Schädigung sowie Albumin, Transferrin und IgG zur Beurteilung
der glomerulären Schädigung.
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: Urin
Menge: 1500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung Proteinurie
Referenzbereich: s. Befund
Albumin im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Spontanurin
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Zur Beurteilung einer glomerulären Schädigung
Referenzbereich: <30 mg/24h
alpha-1-Mikroglobulin im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Spontanurin
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: z. A. einer tubulären Schädigung
Referenzbereich: <15 mg/24h
alpha-2-Makroglobulin im Urin (F)
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: postrenale Schädigung
Referenzbereich: <10 mg/24h
220
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Aminosäuren im Urin
(F)
Urin möglichst bald nach Gewinnung einfrieren
Material: Urin
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diagnostik von Stoffwechselerkrankungen mit Störungen im
Aminosäurestoffwechsel
Referenzbereich: s. Befund
Bence-Jones-Proteine (freie Leichtketten) im Urin
Material: Urin
Menge: 1000 µl
Methode: IFE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: weitere Abklärung einer Gammopathie
Referenzbereich: s. Befund
Calcium im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung Hypo- oder Hypercalcämie, Marker des allg. Knochenstoffwechsels, V.
a. Hypo- oder Hyperparathyreoidismus, Abklärung Nephrocalcinose, V. a. Hypercalciurie bei
Vitamin-D-Intoxikation oder granulomatösen Erkrankungen,
Nieren-/Harnleiterstein-Abklärung
Referenzbereich: M: 2,0-8,0 F: 2,0-7,0 mmol/24h
Citrat im Urin
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Beurteilung der Lithogenität des Urins
Referenzbereich: >500 mg/24h
Eisen im Urin (F)
Material: Urin
Menge: 10 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: <100 µg/l
Gesamteiweiß im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Proteinurie, Verlaufskontrolle
Referenzbereich: <120 mg/24h
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
221
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Glucose im Urin quantitativ
Material: Urin
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Glucosurie
Referenzbereich: <0,15 g/l
Harn-, Nierenstein-Analyse (F)
Material: Harnstein, Nierenstein
Methode: Infrarot-Spektroskopie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer Urolithiasis
Referenzbereich: s. Befund
Harnstoff im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer Niereninsuffizienz
Referenzbereich: 17-34 g/24h
Harnsäure im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: V. a. Hyperuricusurie, Abklärung Nephro-/Urolithiasis
Referenzbereich: 0,5-0,8 g/24h
IgG im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Zur Beurteilung einer glomerulären Schädigung
Referenzbereich: <9,0 mg/24h
Kalium im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 500 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung Hypokalämie
Referenzbereich: 50-125 mmol/24h
Kochsalzausscheidung im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 1000 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Referenzbereich: 5,0-10,0 g/24h
222
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Kreatinin-Clearance
1 ml eines 24h-Sammelurins und 500 µl Serum des gleichen Tages. Zur Berechnung bitte
auch Körperlänge, Gewicht und Sammelmenge angeben.
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Serum
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Beurteilung der glomerulären Filtrationsrate
Referenzbereich: altersabhängige Normbereiche ml/min
Magnesium im Urin (F)
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 1000 µl
Methode: Flammenphotometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung Hypomagnesiämie, V. a. vermehrter renaler Magnesiumverlust
Referenzbereich: 0,5-10,0 mmol/24h
Myoglobin im Urin
Material: Urin
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Abschätzen einer Rhabdomyolyse
Referenzbereich: <50 µg/l
Natrium im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 500 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abschätzung der renalen Natrium-/Kochsalzausscheidung
Referenzbereich: 80-160 mmol/24h
Osmolalität im Urin (F)
Material: Urin
Menge: 500 µl
Methode: Gefrierpunktosmometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Diabetes insipidus
Referenzbereich: 50-1200 mosm/kg
Oxalsäure im Urin (F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Material: Glucoexact
Menge: 1000 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung einer Urolithiasis
Referenzbereich: s. Befund mg/24h
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
223
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Phosphat im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Abklärung Knochenstoffwechsel, V. a. renalen Phosphatverlust
(Phosphatdiabetes)
Referenzbereich: 15-30 mmol/24h
Porphyrie-Diagnostik
Porphobilinogen (F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden.
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf Schwermetallvergiftung (z. B. Blei), akute und chronische
hepatische Porphyrien
Referenzbereich: <2,0 mg/l
delta-Aminolävulinsäure (F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden.
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf Schwermetallvergiftung (z. B. Blei), akute hepatische Porphyrien
Referenzbereich: 0,1-4,5 mg/l
Porphyrine, gesamt (F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden.
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf Schwermetallvergiftung (z. B. Blei), akute und chronische
hepatische Porphyrien, Arzneimittelschädigung der Leber
Referenzbereich: <100 mg/24h
Porphyrine, Differenzierung (F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden.
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze
Menge: 1000 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diffenzialdiagnostik bei erhöhter Gesamt-Porphyrin-Aussscheidung
Referenzbereich: s. Befund mg/24h
Pyridinoline im Urin (s. S. 205 )
224
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Retinol-bindendes Protein im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Z. A. einer tubulären Schädigung
Referenzbereich: <1,0 mg/24h
Transferrin im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin, ohne Zusätze, Urin
Menge: 1000 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Zur Beurteilung einer glomerulären Schädigung
Referenzbereich: <1,0 mg/24h
Urinsediment
der Urin sollte nicht älter als 12 Stunden sein
Material: frischer Urin
Menge: 2 ml
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Suchtest bei V. a. Erkrankungen der ableitenden Harnwege sowie bei V. a.
Nierenerkrankung
Referenzbereich: s. Befund
Urinstatus
bestehend aus Trockenchemie und Urin-Sediment
Material: Urin
Menge: 2 ml
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Suchtest auf Erkrankungen der Nieren und der ableitenden Harnwege
Referenzbereich: s. Befund
Xylose im Urin (F)
Material: 5 h-Sammelurin, ohne Zusätze
Menge: 2 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: I. R. des D-Xylose-Belastungstests
Referenzbereich: s. Befund g/5h
Kreatinin im Urin
Material: Urin
Menge: 1000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: am selben Tag)
Indikation: Marker für Konzentration eines Spontanurins, Berechnung der
Kreatinin-Clearance
Referenzbereich: 0,40 - 2,00 g/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
225
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Stuhl-Diagnostik (ohne Infektionserreger)
Blut im Stuhl, immunologisch
quantitative Messung von Hämoglobin und Hämoglobin-Haptoglobin-Komplex im Stuhl mit
einem immunologischen Verfahren.
Material: Stuhl
Menge: 1 g
Methode: ILMA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Z. A. einer Blutungsquelle im Colon, als Screeningmethode zur Krebsvorsorge.
Referenzbereich: Hämoglobin: <2,0, Hämoglobin-Haptoglobin-Komplex: < 1,0 µg/g Stuhl
Lactoferrin im Stuhl
Spezifisches Protein der Leukozyten. Bei entzündlichen Darmerkrankungen (M. Crohn,
Colitis ulcerosa) werden in der Regel erhöhte Werte im Stuhl gemessen. Die Konzentration
im Stuhl korreliert mit dem Grad der Entzündung.
Material: Stuhl
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle von entzündlichen Darmerkrankungen
Referenzbereich: < 7 µg/g Stuhl
Calprotectin im Stuhl
Calprotectin ist wie Lactoferrin ein Protein der Leukozyten. Bei entzündlichen
Darmerkrankungen (M. Crohn, Colitis ulcerosa) werden in der Regel erhöhte Werte im Stuhl
gemessen. Die Konzentration im Stuhl korreliert mit dem Grad der Entzündung.
Material: Stuhl
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle von entzündlichen Darmerkrankungen
Referenzbereich: < 50 µg/g Stuhl
PMN-Elastase im Stuhl (F)
Material: Stuhl
Menge: 1 g
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung entzündlicher Darmerkrankungen
Referenzbereich: <60 ng/g Stuhl
Albumin im Stuhl (F)
Material: Stuhl
Menge: 1 g
Methode: ILMA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung entzündlicher Darmerkrankungen, besser geeignet sind Calprotectin
und Lactoferrin
Referenzbereich: <50 µg/g Stuhl
alpha-1-Antitrypsin im Stuhl (F)
Material: Stuhl
Menge: 1 g
Methode: ILMA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung entzündlicher Darmerkrankungen, besser geeignet sind Calprotectin
und Lactoferrin
Referenzbereich: <200 µg/g Stuhl
226
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
IgA im Stuhl
(F)
Material: Stuhl
Menge: 1 g
Methode: ILMA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung entzündlicher Darmerkrankungen, besser geeignet sind Calprotectin
und Lactoferrin
Referenzbereich: <500 µg/g Stuhl
Pankreatische Elastase im Stuhl
Material: Stuhl
Menge: 1 g
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. exokrine Pankreasinsuffizienz
Referenzbereich: >200 µg/g Stuhl
Fette im Stuhl (quantitativ) (F)
Um Inhomogenitäten des Materials auszugleichen, wird empfohlen, drei an verschiedenen
Tagen gewonnene Stuhlproben einzusenden. (Proben zwischenzeitlich kühl lagern)
Material: Stuhl
Menge: 1 g
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Malabsorption und Maldigestion
Referenzbereich: <2,0 %
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
227
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
228
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
Betäubungsmittelanalytik
Unser Labor ist nach DIN EN ISO/IEC 17025:2005 für die Untersuchung von Blut und Urin
für forensische Zwecke mit Gutachten akkreditiert. Die Untersuchung der Urinproben
erfolgen nach den Vorgaben der CTU-Kriterien (Urteilsbildung in der medizinischpsychologischen Fahreignungsdiagnostik: Beurteilungskriteren (2. Auflage 2009); W.
Schubert, R. Mattern Kirschbaum Verlag.
Alkohol- und Drogenscreening im Urin
Drogenscreening auf Substanzgruppen im Urin
Nachweis folgender Substanzgruppen: Amphetamine, Barbiturate, Benzodiazepine,
Cannabinoide (Haschisch, Marihuana), Kokain, LSD, Methadon, Opiate, Phencyclidin). Für
die forensische Analytik muss eine eindeutige und vollständige Kennzeichnung von Probe
und Untersuchungsauftrag mit Namen, Vornamen, Geburtsdatum sowie Datum und
Uhrzeit der Probenentnahme erfolgen.
Amphetamine im Urin
Zur Gruppe dieser Stimulantien gehören z.B. Amphetamin (Speed), Methamphetamin und
Ecstasy /XTC (3,4-Methylendioxy-N-methylamphetamin; MDMA) und andere Derivate, die
sich vom Phenylethylamin ableiten.
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: GC/MS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <50 ng/ml
Barbiturate im Urin
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: CEDIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: < 200
Benzodiazepine im Urin
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: CEDIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <20 ng/ml
Buprenorphin im Urin
Subutex®, Temgesic®
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: CEDIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2,5 ng/ml
Cannabinoide im Urin
Haschisch, Marihuana
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
229
Forensische Toxikologie
Ethylglucuronid (EtG) im Urin
Ethylglucuronid (EtG) ist ein direkter Phase II-Metabolit der Alkoholabbaus aus der
hepatischen Glucuronidierung mit anschließender renaler Elimination. Es schließt die
diagnostische Lücke zwischen Blutalkohol (aktueller Konsum) und CDT (ca. 3 Wochen).
Die Nachweisbarkeit beträgt - abhängig von der konsumierten Menge Alkohol - ca. 1,5 - 3
Tage und tritt frühestens 2 - 3,5 Stunden nach Erreichen der maximalen
Blutalkoholkonzentration auf.
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Alkoholkonsum in den letzten 24 - 72 Std.
Referenzbereich: bei Alkoholabstinenz <0,1 mg/l
Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Urin
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: CEDIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <30 ng/ml
LSD im Urin
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: CEDIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <0,25 ng/ml
Methadon im Urin
Methadonmetabolit EDDP
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: CEDIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <50 ng/ml
Opiate im Urin
Methadon wird mit diesem Test nicht erfasst!
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: CEDIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <25 ng/ml
Phencyclidin im Urin
Syn. "Angels Dust"
Material: Urin
Menge: 2 ml
Methode: CEDIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <7 ng/ml
Bestätigungsanalyse für ein positives Drogenscreening im Urin
Für die Drogenanalytik fordert die Gesellschaft für Toxikologische und Forensische Chemie
(GTFCh) die Bestätigung eines immunologisch positiven Ergebnisses (Suchtest) durch ein
alternatives Untersuchungsverfahren nach physikalisch-chemischem Reaktionsprinzip
(Bestätigungsanalyse). Diese Untersuchung wird aus derselben Probe durchgeführt. Positive
Befunde, die nicht durch eine andere unabhängige Untersuchung manifestiert wurden, sind
forensisch nicht verwertbar.
Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme gekennzeichnet sein.
230
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
Amphetamine im Urin
Amphetamin, Metamphetamin, MDA, MDMA, MDEA, MBDB, PMA, PMMA, BDB, Ephedrin
Menge: 2 ml
Methode: GC/MS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <50 ng/ml
Barbiturate im Urin (F)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund
Benzodiazepine im Urin
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <50 ng/ml
Buprenorphin im Urin
Buprenorphin (Subutex®, Temgesic®) und Norbuprenorphin (aktiver Metabolit)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Cannabinoide im Urin
Haschisch, Marihuana
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Ethylglucuronid (EtG) im Urin
Bestätigungsanaylse bei positivem EtG-Screening oder als Methode der ersten Wahl, bei
Personen, die beruflich Lösungsmitteln exponiert sind (z. B. Isopropanol)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Alkoholkonsum in den letzten 24 - 72 Std.
Referenzbereich: bei Alkoholabstinenz <0,1 mg/l
Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Urin
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
LSD im Urin (F)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund
Methadon im Urin
Methadon und Methadon-Metabolit (EDDP)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <50 ng/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
231
Forensische Toxikologie
Opiate im Urin
Methadon wird mit diesem Test nicht erfasst!
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <25 ng/ml
Phencyclidin im Urin
Syn. "Angels Dust"
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Substanzen, die im Urin nur mittels Massenspektrometrie nachweisbar
sind
Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme gekennzeichnet sein.
Cotinin (Nikotinmetabolit) im Urin (F)
Material: Urin
Menge: 5 ml
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: Nichtraucher <50 µg/l
Tilidin im Urin
Tilidin und Nortilidin (Metabolit)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Tramadol im Urin
Tramadol und N- bzw. O-Desmethyl-Tramadol (Metabolite)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Zolpidem im Urin
Zolpidem und Norzolpidem
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <5 ng/ml
Zopiclon im Urin
Zopiclon und Norzopiclon
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <5 ng/ml
232
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
Drogenscreening im Serum
Drogenscreening auf Substanzgruppen im Serum
Nachweis folgender Substanzgruppen: Amphetamine, Barbiturate, Benzodiazepine,
Cannabinoide (Haschisch, Marihuana), Kokain, LSD, Methadon, Opiate, Phencyclidin). Für
die forensische Analytik muss eine eindeutige und vollständige Kennzeichnung von Probe
und Untersuchungsauftrag mit Namen, Vornamen, Geburtsdatum sowie Datum und
Uhrzeit der Probenentnahme erfolgen.
Amphetamine im Serum
Zur Gruppe dieser Stimulantien gehören z.B. Amphetamin (Speed), Methamphetamin,
Ecstasy /XTC (3,4-Methylendioxy-N-methylamphetamin; MDMA) und andere Derivate, die
sich vom Phenylethylamin ableiten.
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Barbiturate im Serum
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: CEDIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Benzodiazepine im Serum
Material: Serum
Menge: 1000 µl
Methode: CEDIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Buprenorphin im Serum (s. S. 235 )
nur massensprektrometrisch nachweisbar
Cannabinoide im Serum
Haschisch, Marihuana
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Serum
Falls sich bei positivem Suchtest eine Bestätigungsanalyse aus forensischer Fragestellung
ergibt, muss initial bei der Blutentnahme auf die Verwendung von Natriumfluorid-Röhrchen
geachtet werden, da Kokain ohne Fixierung in vitro weiter zu Benzoylecgonin
verstoffwechselt wird.
Material: Natriumfluorid-Blut, Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Methadon im Serum
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
233
Forensische Toxikologie
Opiate im Serum
Methadon wird mit diesem Test nicht erfasst!
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Phencyclidin im Serum
Syn. "Angels Dust"
Material: Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1,0 ng/ml
Bestätigungsanalyse für ein positives Drogenscreening im Serum
Für die Drogenanalytik fordert die Gesellschaft für Toxikologische und Forensische Chemie
(GTFCh) die Bestätigung eines immunologisch positiven Ergebnisses (Suchtest) durch ein
alternatives Untersuchungsverfahren nach physikalisch-chemischem Reaktionsprinzip
(Bestätigungsanalyse). Diese Untersuchung wird aus derselben Probe durchgeführt. Positive
Befunde, die nicht durch eine andere unabhängige Untersuchung manifestiert wurden, sind
forensisch nicht verwertbar.
Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme gekennzeichnet sein.
Amphetamine im Serum
Amphetamin, Metamphetamin, MDA, MDMA, MDEA, MBDB, PMA, PMMA, BDB, Ephedrin
Menge: 2 ml
Methode: GC/MS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Barbiturate im Serum (F)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: s. Befund
Benzodiazepine im Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Cannabinoide im Serum
Haschisch, Marihuana
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Serum
Kokain wird in vitro abgebaut. Bei der Blutentnahme ist auf die Verwendung von
Fluorid-enthaltenden Spezialröhrchen zu achten.
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2 ng/ml
234
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
LSD im Serum
(F)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: s. Befund
Methadon im Serum
Methadon und Methadon-Metabolit (EDDP)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Opiate im Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Phencyclidin im Serum
Syn. "Angels Dust"
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1,0 ng/ml
Substanzen, die im Serum nur mittels Massenspektrometrie
nachweisbar sind
Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme gekennzeichnet sein.
Buprenorphin im Serum
Buprenorphin (Subutex®, Temgesic®) und Norbuprenorphin (aktiver Metabolit)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Tilidin im Serum
Tilidin und Nortilidin (Metabolit)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Tramadol im Serum
Tramadol und N- bzw. O-Desmethyl-Tramadol (Metabolite)
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Zolpidem im Serum
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <5 ng/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
235
Forensische Toxikologie
Zopiclon im Serum
Zopiclon und Norzopiclon
Menge: 2 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <5 ng/ml
CDT (Carbohydrate Deficient Transferrin)
CDT steigt an, wenn mehr als 60 g Ethanol täglich konsumiert werden.
Material: Serum
Menge: 500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Alkoholabusus
Referenzbereich: <1,7%, Graubereich bis 2,5 %
236
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Allgemeine Bakteriologie
Untersuchungsdauer in der Bakteriologie
In der Regel ist nach Übernachtbebrütung ein Vorbefund (Erregernachweis) verfügbar. Ein
Endbefund mit Erregeridentifizierung und Antibiogramm ist i.d.R. nach spätestens 4 Tagen
ab Probeneingang verfügbar. Bei Mischkulturen mit mehreren Erregern kann dieser Zeitraum
um 1-2 Tage überschritten werden.
Bei einer Reihe von langsam wachsenden Erregern, bzw. bei Materialien, in denen mit
solchen Erregern gerechnet werden muss, sind längere Kultivierungszeiten erforderlich
(Aktinomyzeten: 5-10 d; Dermatophyten: 21 d; Hefepilze: 2-6 d; Helicobacter pylori: 5-10 d;
Legionellen: 5-10 d; Mycoplasma hominis/Ureaplasma urealyticum: 4-6 d; Mycoplasma
pneumoniae: 10 d)
Mikrobiologische Diagnostik von ZNS-Infektionen
Liquorkultur
Die Untersuchung beinhaltet mikroskop. Präparate (Gram, Methylenblau).
Liquorprobe teilen (2/3 in BK-Flasche, bevorzugt BK-Flasche P-Pädiatrie oder aerobe
BK-Flasche) für Kultur;
1/3 in steriles Röhrchen mit Schraubverschluß für Mikroskopie).
Unverzüglicher Transport ins Labor; Abkühlung vermeiden.
Material: Liquor
Menge: 2 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5 Tage)
Indikation: V. a. bakterielle Meningitis
Cryptococcus neoformans-Kultur
Die Untersuchung umfasst den mikroskopischen Direktnachweis (Tuschepräparat) und
eine Kultur auf Spezialmedium (Dauer: max 10 Tage).
Liquorprobe in sterilem Schraubgefäß unverzüglich ins Labor transportieren; parallel immer
Antigennachweis in Liquor und Serum durchführen!
Material: Liquor
Menge: 2 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-10 Tage)
Indikation: V. a. Meningitis beim Immunsupprimierten
Cryptococcus neoformans-Antigen (F)
Zusätzlich immer Kultur und Mikroskopie anfordern.
Liquorprobe in sterilem Schraubgefäß unverzüglich ins Labor transportieren.
Material: Liquor/Serum
Menge: 1 ml
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage)
Indikation: V. a. Meningitis beim Immunsupprimierten
Cryptococcus-neoformans-DNA (F)
EDTA-Blut (2-3 ml), Liquor (mind. 0,5 ml), Biopsie, Bronchialsekret (1 ml)
Material: EDTA-Blut, Liquor, Biopsie, Bronchialsekret
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: V. a. Meningitis beim Immunsupprimierten
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
237
Mikrobiologie
Mikrobiologische Diagnostik bei Sepsis / Bakteriämie
Blutkultur
Die Untersuchung beinhaltet die Kultur in einem automatisierten System sowie im positiven
Fall ein mikroskop. Präparat, die Erregeridentifizierung und die Empfindlichkeitsprüfung.
Die Flaschen werden 5 Tage bebrütet (Ausnahme: bei Endokarditis 14 Tage). Positive
Befunde werden vorab generell telefonisch mitgeteilt.
Punktionsstelle sorgfältig desinfizieren, Desinfektionslösung antrocknen lassen.
Blutkulturflaschen nach Herstellerangabe beimpfen (i.d.R. 5-10 ml Blut in je eine aerobe
und eine anaerobe Flasche; eine Belüftung ist bei unserem System nicht erforderlich).
BK-Flaschen bei Raumtemperatur lagern und transportieren (müssen innerhalb von 48 h
im Labor eintreffen).
Material: Blut/Blutprodukte
Menge: 10 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5/14 Tage)
Indikation: V. a. Bakteriämie/Sepsis
Mikrobiologische Diagnostik von Respirationstraktinfektionen
Legionellen-Antigen im Urin
Die Untersuchung auf Legionellen-Ag im Urin ist neben dem molekularbiol. Nachweis im
Respirationstraktsekret die einzige Möglichkeit für eine schnelle Legionellendiagnostik
(Dauer der Kultur: bis 10d). Die Sensitivität des Ag-Nachweises beträgt ca 80-85%.
Legionellen-Ag ist auch noch nach Therapiebeginn nachweisbar.
Lagerung gekühlt
Material: Urin
Menge: 5 ml
Methode: Ag-EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: V. a. Legionellose
Bronchialsekret
Erfasst werden alle relevanten bakteriellen Atemwegsinfektionserreger einschl. obligate
Anaerobier, Mycoplasmen und Hefepilze. Nicht erfasst werden Legionellen, Chlamydien,
Tuberkuloseerreger, P. jiroveci, Viren (s. jeweils spezielle Untersuchungen)
Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluß; Lagerung gekühlt
Material: Bronchialsekret
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: V.a. Infektion des unteren Respirationstraktes
BAL-Flüssigkeit
Erfasst werden alle relevanten Atemwegsinfektionserreger einschl. obligaten Anaerobiern,
Pilzen, Legionellen und Mycoplasmen. Die Erregerzahl wird in KBE/ml angegeben.
Untersuchung auf Mykobakterien, P. jirovecii (bei Immunsuppression), Viren und
Chlamydophila pneumoniae bitte ausdrücklich vermerken.
Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluß; Lagerung gekühlt
Bei Untersuchung auf Legionellen und M. pneumoniae: Untersuchungsdauer bis 10 Tage
Material: Bronchiallavage
Menge: 10 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: V. a. Infektion des unteren Respirationstraktes
238
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Trachealsekret
Erfasst werden alle relevanten Atemwegsinfektionserreger einschl. obligaten Anaerobiern,
Mycoplasmen und Pilzen mit Ausnahme von Legionellen, Chlamydien,
Tuberkuloseerregern, P. jiroveci und Viren(s. jeweils spezielle Untersuchungen)
Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluß; Lagerung gekühlt
Bei Untersuchung auf Legionellen und M.pneumoniae: Untersuchungsdauer 10 Tage
Material: Trachealsekret
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: V. a. Infektion des unteren Respirationstraktes bei mechanischer Ventilation
Sputum
Erfasst werden alle relevanten bakteriellen Atemwegsinfektionserreger mit Ausnahme von
obligaten Anaerobiern, Legionellen, Chlamydien, Tuberkuloseerregern. Sproßpilze und P.
jiroveci bitte gezielt anfordern.
Mundspülung mit Leitungswasser vor Expektoration; Versand in sterilem Gefäß mit
Schraubverschluß; Lagerung gekühlt
Material: Sputum
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: V. a. Infektion des unteren Respirationstraktes
Sputum bei Cystischer Fibrose
Erfasst werden alle relevanten bakteriellen Atemwegsinfektionserreger (einschl.
Pseudomonas spp., Burkholderia spp. und verschiedene Nonfermenter). Bei bakteriellen
Erregern, die mit phänotypischen Verfahren nicht sicher identifiziert werden können kann
bei Kostenübernahme eine genotypische Identifizierung durchgeführt werden. Die
Untersuchung beinhaltet eine Pilzkultur, insbes. zum Nachweis von Aspergillus spp.. Im
Standardansatz NICHT erfasst werden obligate Anaerobiern, Legionellen, Chlamydien,
Mykobakterien und P. jiroveci. Bitte ggf. gezielt anfordern.
Material: Sputum
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-8 Tage)
Indikation: V.a. Infektion bzw. Kolonisation des Respirationstraktes bei Patienten mit
Cystischer Fibrose
Pneumocystis jirovecii-IFT
Untersuchungsmaterial der Wahl ist BAL-Flüssigkeit. Bei ambulanten Patienten kann auch
provoziertes (!) Sputum untersucht werden. Bronchial-/Trachealsekret und spontanes
Sputum sind wg. geringer Sensitivität i.d.R. nicht geeignet.
Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluß; Lagerung gekühlt
Material: Respirationstraktsekret
Menge: 5 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: V. a. Pneumocystis jiroveci-Pneumonie, trockener Husten, Dyspnoe
insbesondere bei Immunsuppression (HIV)
Pneumocystis jiroveci DNA (PCR) (s. S. 58 )
Mikrobiologische Diagnostik von Haut-, Weichteil- und
Wundinfektionen
Hautabstrich
Die Untersuchung umfasst nur die Kultur von aeroben Bakterien. Bei V. a. Hautsoor bitte
entprechenden Vermerk auf dem Untersuchungsschein.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei V.a. Dermatomykose Hautschuppen
einsenden (in sterilem Röhrchen), bei Abstrichen ist die Sensitivität ungenügend.
Material: Abstrich
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
239
Mikrobiologie
Indikation: V. a. Hautinfektion (z.B. Impetigo, infiz. Ekzem)
Wundabstrich/Intraoperativer Abstrich
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligaten Anaerobiern.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); bei gasbildender Weichteilinfektion (V. a.
Gasbrand) bitte telefonische Ankündigung und Vermerk auf Untersuchungsschein.
Material: Wundabstrich
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: V. a. Wundinfektion
Pustelabstrich
Erfasst werden grundsätzlich nur aerobe Bakterien.
Um Kontamination mit Hautflora zu vermeiden, empfiehlt sich bei geschlossenen Pusteln
folgendes Vorgehen:
1. Pusteloberfläche und umgebende Haut desinfizieren (Alkohol)
2. Nach Verdunsten des Alkohols Pustel punktieren
3. Punktat auf Abstrichtupfer geben
4. Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: Pustulöse Hautinfektion
Abszessabstrich/-punktat
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligaten Anaerobiern.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); bei Abszedierungen im Halsbereich auch
an einschmelzende Lymphadenitis durch Tuberkuloseerreger oder atypische
Mykobakterien denken und möglichst Gewebeproben auf Mykobakterien im sterilen
Röhrchen einsenden (DD bei Kindern: Katzenkratzkrankheit).
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: Abszess, Furunkel etc.
Mikrobiologische Diagnostik von Harnwegsinfektionen
Urin (nativ)
Die Untersuchung erfasst auch Erreger, die mittels Urikult nicht oder nicht sicher
nachweisbar sind (Candida spp., Mycoplasmen/Ureaplasmen, uropathogene
Corynebakterien, Anaerococcus). Bei negativem Ergebnis trotz Vorliegen einer
Harnwegsinfekion (sterile Leukozyturie) nativen Urin auf Mykobakterien einsenden.
Probe gekühlt und ohne Verzögerung ins Labor transportieren. Ggf. Transportröhrchen mit
Stabilisator verwenden.
Material: Urin
Menge: 5 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: V. a. Harnwegsinfektion
Uricult
Die Untersuchung erfasst nur die schnell wachsenden häufig vorkommenden
uropathogenen Erreger. Bei negativem Ergebnis trotz Vorliegen einer Harnwegsinfekion
nativen Urin einsenden.
Urikult ggf. über Nacht bei 35-37◦ C bebrüten und danach unverzüglich ins Labor senden.
Verfallsdatum des Urikult beachten und nach Anleitung beimpfen!
Material: Urikult
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: V. a. Harnwegsinfektion
240
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Mikrobiologische Diagnostik von Darminfektionen
Stuhluntersuchung Stufe 1
Untersuchung auf Salmonellen/Shigellen
Material: Stuhl
Menge: kirschgroß
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: V. a. Salmonellenenteritis/Shigellenruhr
Stuhluntersuchung Stufe 2
Untersuchung auf Salmonellen/Shigellen/Campylobacter/Yersinien/S. aureus/Aeromonas;
enteropath. E.coli (EPEC) (nur bei Kindern < 7J)
Material: Stuhl
Menge: kirschgroß
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: V. a. infektiöse Enteritis
Stuhluntersuchung Stufe 3
Untersuchung auf Salmonellen/Shigellen/Campylobacter/Yersinien/S. aureus/Vibrio
spp./Aeromonas spp./Plesiomonas spp.; enteropath. E.coli (EPEC) (nur bei Kindern < 7J)
Material: Stuhl
Menge: kirschgroß
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: V. a. infektiöse Enteritis nach Auslandsaufenthalt
Stuhluntersuchung auf Clostridientoxine
Als Verursacher einer antibiotikaassoziirten Diarrhoe kommt in erster Linie
Clostridium-difficile-Toxin (A/B) in Frage.
Stuhlproben sollten innerhalb von 24 h im Labor eingehen, da Clostridientoxine instabil
sind; Lagerung gekühlt.
Material: Stuhl
Menge: kirschgroß
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: V. a. antibiotikaassoziierte Diarrhoe (AAD); Diarrhoe während oder bis zu 4
Wochen nach antibiotischer Therapie
Referenzbereich: negativ
Stuhluntersuchung auf EHEC
Die Untersuchung auf Toxine von enterohämorrhagischen E. coli (EHEC) wird
routinemäßig bei mikrobiol. Stuhluntersuchungen von Kinder < 7 J. durchgeführt.
Lagerung gekühlt
Material: Stuhl
Menge: erbsgroß
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: V. a. HUS; V. a. infektiöse Enteritis beim Kind
Referenzbereich: negativ
Serologie bei V. a. EHEC, HUS (s. S. 26 )
Stuhluntersuchung auf Pilze
Die Untersuchung wird generell quantitativ durchgeführt (Befundmitteilung in KBE/g Stuhl
und entsprechender Bewertung)
Material: Stuhl
Menge: erbsgroß
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: V. a. intestinale Mykose; chron. rezidiv. Candidavaginose
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
241
Mikrobiologie
Stuhluntersuchung auf Campylobacter-Antigen
Die Untersuchung auf Campylobacter-Antigen wird bei makroskopisch auffälligen
Stuhlproben (insbes. bei Blut-/Schleimbeimengungen) oder auf gezielte Anforderung
durchgeführt. Vorteil gegenüber der Kultur: schnelleres Ergebnis, keine Beeinflussung
durch Transport; Nachteil: Nachweis nicht speziesspezifisch, sondern genusspezifisch
(Campylobacter species); keine Empfindlichkeitsprüfung möglich. Deswegen parallel Kultur
empfehlenswert.
Lagerung gekühlt
Material: Stuhl
Menge: erbsgroß
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: V. a. infektiöse Enteritis; V. a. Campylobacterenteritis
Referenzbereich: negativ
Clostridium difficile DNA
Material: Stuhl
Menge: erbsgroß
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf antibiotikaassoziierte Diarrhoe (AAD): Diarrhoe während oder bis
zu 4 Wochen nach antibiotischer Terapie.
Referenzbereich: negativ
Mikrobiologische Diagnostik von HNO-Infektionen
Rachen-/Tonsillenabstrich
Erfasst werden alle relevanten Erreger von Infektionen der oberen Atemwege.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei V.a. Diphtherie bitte telef.
Vorabinformation (0711 6357152) und entsprechender Vermerk auf dem Begleitschein.
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: Tonsillitis, Pharyngitis
Rachenabstrich auf ß-hämolysierende Streptokokken
Erfasst werden die Serotypen A,B,C,F,G
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrich
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: V. a. Streptokokkentonsillitis/-pharyngitis
V. a. Scharlach
Nasennebenhöhlenabstrich/-punktat
Erfasst werden Bakterien einschl. obligaten Anaerobiern und Pilze (Sproßpilze, Fadenpilze)
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: Nasennebenhöhlenentzündung
Gehörgangsabstrich
Erfasst werden otopathogene Bakterien einschl. Turicella otitidis. Bei Pat. > 10 Jahre und
Otitis externa zusätzlich Pilze (Sproßpilze, Fadenpilze).
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: Otitis media perforata; Otitis externa
242
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Mikrobiologische Diagnostik von Infektionen im Zahn-/Kieferbereich
Abszessabstrich/-punktat im Zahn-/Kieferbereich
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligaten Anaerobiern und Aktinomyzeten
Versand in Transportmedium mit Gel
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-10 Tage)
Indikation: Abszesse im Zahn-/Kieferbereich
Parodontopathogene Keime DNA
Der kulturelle Nachweis parodontopathogener Erreger ist langwierig und hat eine
unzureichende Sensitivität. Deswegen wird vorzugsweise ein molekularbiologisches
Verfahren zum Nachweis der sogenannten Markerkeime eingesetzt.
Zur Probenentnahme sterile Papierspitzen in die Zahntaschen eingeführen. Versand in
sterilen Schraubgefäßen ohne Transportmedium (komplettes Set für Entnahme und
Transport im Labor erhältlich).
Bitte die Zahntaschentiefe angeben!
Material: Sterile Papierspitzen
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Parodontitis
Referenzbereich: negativ
Mikrobiologische Diagnostik von Genitalinfektionen
Chlamydiennachweis (s. S. 19 )
Genitalabstrich auf ß-häm. Streptokokken
Erfasst werden die Serotypen A,B,C,F,G. Bei Untersuchung im Rahmen des
B-Streptokokkenscreenings am Ende der Schwangerschaft wird ein Aufkleber für den
Mutterpass mitgeliefert.
Versand in Transportmedium
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: V. a. genitale Streptokokkeninfektion; B-Streptokokken-Screening in der
Schwangerschaft (35.-37.SSW; Abstrich vaginal plus rektal oder vaginal plus perianal: bitte
Vorgaben unbedingt einhalten und auf Auftrag vermerken, da ansonsten die Aussagekraft
der Untersuchung bei negativem Ergebnis eingeschränkt ist).
Cervixabstrich auf Bakterien und Pilze
Die Untersuchung umfasst neben dem Grampräparat die Kultur auf aerobe und anaerobe
Bakterien einschl. Mycoplasmen/Ureaplasmen und Hefepilze. (Bei Schwangeren zusätzlich
Gonokokken und bei Komplikationen, z.B. vorzeitige Wehentätigkeit,
Frühgeburtsbestrebungen, die gezielte Untersuchung auf Listerien).
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf
Anforderungsschein. Bei V. a. Chlamydieninfektion bitte getrennten Tupfer in
Spezialmedium zur Chlamydiendiagnostik einsenden).
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: V. a. Cervicitis; Komplikationen in der Schwangerschaft (vorz. Wehentätigkeit;
Cervixinsuffizienz u. a.)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
243
Mikrobiologie
Genitalabstrich auf Mykoplasmen/Ureaplasmen
Die Untersuchung erstreckt sich gezielt auf den Nachweis von Mykoplasmen und
Ureaplasmen. Kulturdauer: 4 Tage
Versand im bakteriologischen Transportmedium (Röhrchen mit Gel).
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-5 Tage)
Indikation: V. a. bzw. Kontrolle nach Infektion/Kolonisation durch Mykoplasmen oder
Ureaplasmen.
Vaginalabstrich auf Bakterien und Pilze
Die Untersuchung umfasst neben dem Grampräparat die Kultur auf aerobe und anaerobe
Bakterien und Hefepilze. (Bei Schwangeren zusätzlich Gonokokken und bei
Komplikationen, z.B. vorzeitige Wehentätigkeit, Frühgeburtsbestrebungen, zusätzlich die
gezielte Untersuchung auf Listerien).
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf
Anforderungsschein.
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: Kolpitis; Komplikationen in der Schwangerschaft (vorz. Wehentätigkeit;
Cervixinsuffizienz u.a.)
Abstrich auf N. gonorrhoeae (Gonokokken)
Bei V. a. Gonorrhoe differentialdiagnostisch auch Chlamydia trachomatis ausschließen
(spezielles Transportmedium), da klinisch nicht sicher zu unterscheiden und häufig
Koinfektion!
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf
Anforderungsschein. Gonokokken sind empfindlich gegenüber Abkühlung (Lagerung und
Transport bei Raumtemperatur; Transportzeit max. 24 h). Bei längeren Transportzeiten ggf.
molekularbiologischen Nachweis veranlassen (kann aus dem Chlamydienabstrichset
durchgeführt werden)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: V. a. Gonorrhoe, V. a. STD
Genitalabstrich auf Aktinomyzeten
Gezielte Untersuchung auf Aktinomyzeten (insbesondere aus intraoperativen Abstrichen
oder Gewebeproben bei Adnexitis). Kulturdauer: 10 Tage
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf
Anforderungsschein.
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 10 Tage)
Indikation: V. a. Aktinomykose; Screening vor IUD-Einlage
Mikrobiologische Diagnostik von Augeninfektionen
Konjunktivalabstrich
Erfasst werden alle bakteriellen Konjunktivitiserreger (bei Neugeborenen einschl.
Gonokokken) mit Ausnahme von Chlamydia trachomatis (molekularbiol. Nachweis)
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); Lagerung bei Raumtemperatur
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: Eitrige Konjunktivitis
244
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Glaskörperpunktat
Die Untersuchung umfasst den kulturellen Nachweis von Bakterien (einschl. obligater
Anaerobier) und Pilzen und die Mikroskopie.
Eiltransport in sterilem Röhrchen mit Schraubverschluß oder in sicher und steril
verschlossener Spritze; Lagerung bei Raumtemperatur
Material: Glaskörperpunktat
Menge: max. mögliches Volumen
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: V. a. Infektion des Glaskörpers (z.B. postoperativ)
Mikrobiologische Diagnostik von Gelenkinfektionen
Gelenkabstrich/-punktat
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligaten Anaerobiern. Zusätzlich bei
Erwachsenen mit spontaner Arthritis: Gonokokken
Abstrich: Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); Punktat: Eilversand in sterilem
Röhrchen mit Schraubverschluß, zusätzlich möglichst Blutkulturflasche beimpfen ;
Lagerung bei Raumtemperatur
Material: Abstrichtupfer/Punktat
Menge: 5 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: V. a. infektiöse Arthritis
Gewebeproben bei periprothetischer Infektion
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligater Anaerobier und langsam wachsender
Verursacher (incl. SCV) von low-grade Infektionen, sowie Candida spp.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); größere Gewebeproben in sterilem
Röhrchen mit 0,9% NaCl-Lsg. versenden. Maximale Probengröße: 1 ccm; Zerkleinerung
von größeren Proben im Labor erhöht das Kontaminationsrisiko! Proben am Entnahmetag
ins Labor bringen. Lagerung bei Raumtemperatur
Material: Gewebe
Menge: 3-5 Stück
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage)
Indikation: V. a. periprothetische Infektion
Gelenkpunktat bei periprothetischer Infektion
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligater Anaerobier und langsam wachsender
Verursacher (incl. SCV) von low-grade Infektionen, sowie Candida spp.
Punkat in steriles Röhrchen mit Schraubverschluss geben (mind. 1 ml); bei größeren
Volumina zusätzlich Blutkulturflasche beimpfen. Probe am Entnahmetag ins Labor bringen.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Material: Punktat
Menge: 5 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage)
Indikation: V. a. periprothetische Infektion
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
245
Mikrobiologie
Mikrobiologische Diagnostik von Helicobacter-Infektionen
Helicobacter pylori-Antigennachweis
Der Helicobacter pylori-Antigennachweis im Stuhl ist eine Alternative zum Atemtest mit
annähernd gleicher Sensitivität und Spezifität. Der Test eignet sich zur Diagnose und zur
Therapiekontrolle.
Therapiekontrolle ist frühestens 4 Wochen nach Ende der Therapie möglich; Lagerung
gekühlt.
Material: Stuhl
Menge: erbsgroß
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-3 Tage)
Indikation: V. a. Helicobacter pylori-Infektion; Therapiekontrolle nach H. pylori-Infektion
Helicobacter-pylori-Kultur
Nur durch die Kultur kann eine parallele Empfindlichkeitsprüfung von Amoxicillin,
Metronidazol, Clarithromycin, Doxycyclin, Levofloxacin, Rifampicin u.a. Antibiotika
durchgeführt werden. Molekularbiologisch kann mittels PCR direkt aus der Biopsie sowohl
der Erregernachweis, als auch der Nachweis von Clarithromycin- bzw.
Fluorchinolonresistenzmutationen durchgeführt werden (siehe Helicobacter pylori-PCR)
Versand ausschließlich in speziellem Transportmedium "Port-a-Germ Pylori, Fa.
bioMérieux"
(bei Bedarf erhältlich unter 0711/6357-154/-152)
Probe muss entsprechend den präanalytischen Vorgaben entnommen werden (bitte VOR
Entnahme im Labor anfordern) und innerhalb von 24h im Labor eingehen (sehr
empfindlicher Erreger).
Material: Biopsie
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 10 Tage)
Indikation: Therapieresistente Helicobacter pylori-Infektion; Empfindlichkeitsprüfung
Helicobacter pylori DNA (einschl. Resistenz)
Wegen zunehmender Resistenz von H. pylori gegenüber den Standardantibiotika
Clarithromycin und Levofloxacin ist es empfehlenswert, die Empfindlichkeit des Erregers
gegenüber diesen Substanzen bereits vor der Primärbehandlung zu prüfen. Da die
kulturelle Empfindlichkeitsprüfung aufgrund des dafür benötigten Zeitraums (5-10 Tage)
und der Transportempfindlichkeit von H. pylori für eine schnelle Diagnostik weniger
geeignet ist, bietet sich hier der molekularbiol. Nachweis von Erreger und Clarithromycinbzw. Fluorchinolonresistenz bzw. -empfindlichkeit direkt aus der Biopsie an.
Magenbiopsie (möglichst mehrere aus Antrum und Corpus) in steriles Gefäß
(Schraubverschluß) mit ca. 1 ml NaCl geben. Da molekularbiol. Nachweis Postversand
möglich.
Material: Biopsie, Kulturabstrich
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Helicobacter pylori-Schnelldiagnostik
Referenzbereich: Helicobacter pylori-DNS negativ; Resistenzmutation nicht nachgewiesen
246
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Mykobakterien-Diagnostik (Tbc)
Mikrobiologische Diagnostik der Tuberkulose
Die Verdachtsdiagnose einer durch Mykobakterien verursachten Infektionskrankheit kann nur
durch den Nachweis der Erreger mittels mikroskopischen, kulturellen und
molekularbiologischen Verfahren bestätigt werden. Wegen der von Probe zu Probe variablen
und oft nur sehr geringen Bakteriendichte sind mindestens drei, möglichst an verschiedenen
Tagen gewonnene Proben zu untersuchen. Die Transportdauer der Proben nach Entnahme
beim Patienten sollte 24h nicht überschreiten. Können Proben nicht sofort verarbeitet oder
weitergeleitet werden, sind sie bei 4◦ C aufzubewahren.
Mykobakterien-Mikroskopie
Eine mikroskopische Untersuchung erfolgt aus allen klinischen Proben mit Ausnahme von
Stuhl (geringe Sensitivität mit hoher Rate an falsch positiven Befunden). Die
Empfindlichkeit der Mikroskopie ist geringer als die der Kultur, sie ist jedoch das schnellste
und billigste Nachweisverfahren.
Material: Bronchiallavage, Magensaft, Sputum, Trachealsekret, Urin
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. pulmonale oder extrapulmonale Tuberkulose
Mykobakterien-Kultur
Jede Untersuchung zum Nachweis von Mykobakterien muss eine Kultur beinhalten
(Goldstandard)! Durch die Kultur werden sowohl Tuberkulosebakterien als auch atypische
Mykobakterien (MOTT) erfasst. Kulturdauer: im negativen Fall 8 Wochen, bei
Erregerwachstum i.d.R. deutlich schneller.
Bitte unbedingt folgende präanalytische Vorgaben beachten!
Sputum: 2 - 10ml (3x); Gewinnung vor dem Frühstück
Magennüchternsekret: 20 - 30ml,Patient nüchtern, spezielle Transportröhrchen verwenden
(werden vom Labor gestellt).
Morgenurin: 30 - 50ml (3x)
Bronchialsekret: 2 - 5ml
BAL, Pleurapunktat: 10 - 30ml
Liquor: 5ml
Gewebe: in 1ml steriler 0,9% NaCl-Lösung. Kein Formalin!
Weitere Materialien auf Anfrage
Hinweis: Ausführliches Infoblatt über Untersuchungsmaterialien, Gewinnung und
Besonderheiten telefonisch unter 0711/6357-154
Material: Bronchiallavage, Magensaft, Sputum, Trachealsekret, Urin
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: bis 8 Wochen)
Indikation: V. a. Tuberkulose; V. a. Infektion durch atypische Mykobakterien (MOTT)
Mykobakterien Tuberkulose-Komplex DNA
Besonderheiten einzelner Materialien für eine Mykobakterien-PCR: siehe Angaben zur
Mykobakterien-Kultur.
Material: Respirationstraktsekret, Liquor, Magensaft, Punktat, Biopsie, Urin
Methode: SDA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: Verdacht auf Tbc, Fieber, Lymphadenitis
Referenzbereich: negativ
Atypische Mykobakterien DNA (F)
Besonderheiten einzelner Materialien für eine Mykobakterien-PCR: siehe Angaben zur
Mykobakterien-Kultur.
Material: Respirationstraktsekret, Liquor, Magensaft, Punktat, Biopsie, Urin
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: V. a. Infektion durch atypische Mykobakterien, unklares Fieber bei
Immunsuppression, Lymphadenitis
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
247
Mikrobiologie
Interferon-gamma-release Assays (IGRA)
In-vitro-Teste zum Nachweis oder Ausschluss einer Infektion mit M. tuberculosis. Die beiden
Teste T-SPOT.TB (Oxford Immunotec) und QuantiFERON-TB Gold In-Tube (Cellestis) sind
für die TB-Diagnostik in Europa (CE-Zertifizierung) und den USA (FDA-approved)
zugelassen. Beide Teste beruhen auf der Freisetzung des Zytokins Interferon-gamma durch
T-Lymphozyten, die Antigene von M. tuberculosis erkennen. Die verwendeten Antigene
ESAT-6 und CFP-10 (beim QuantiFERON-TB Gold In-Tube zusätzlich TB7.7) der IGRA-Teste
sind spezifisch für M. tuberculosis (Ausnahmen nur M. kansasii, M. szulgai, M. marinum, M.
gastrii, M. flavescens). Eine frühere BCG-Impfung sowie Exposition gegenüber den meisten
Umweltmykobakterien werden von den IGRA-Testen nicht erkannt, daraus resultiert eine
deutlich höhere Spezifität im Vergleich zum Tuberkulin-Hauttest. Ein positives Ergebnis der
IGRA-Teste zeigt eine Infektion mit M. tuberculosis an. Die Unterscheidung einer aktiven von
einer latenten Tuberkulose ist mit den IGRA-Testen aus dem peripheren Blut nicht möglich.
Die IGRA-Teste sollten immer gemeinsam mit allen anderen diagnostischen TB-Verfahren
bewertet werden.
T-SPOT.TB
Die Sensitivität zum Nachweis einer Infektion mit M. tuberculosis beträgt bei Patienten mit
mikrobiologisch gesicherter Tuberkulose >90%, die Spezifität ca. >97%. Der Test ist auch
bei Kindern sowie bei Patienten mit Immunschwäche (z.B. HIV, unter immunsuppressiver
Therapie) einsetzbar. Der T-SPOT.TB kann auch aus Pleurapunktat, bronchoalveolärer
Lavage und Liquor durchgeführt werden, hierfür wird eine vorherige telefonische
Anmeldung erbeten.
Abnahme: Mo bis Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten, damit die Probe
spätestens einen Tag nach Abnahme im Labor eintrifft. Der Test ist nur aus Heparinblut
möglich! Bei Kleinkinder benötigen wir 2-3 ml, bei Kindern 5 ml und bei Erwachsenen 9 ml
Heparinblut. Bitte nur kommerzielle Heparinröhrchen verwenden, diese werden bei Bedarf
von unserem Labor zur Verfügung gestellt.
Material: Heparinblut
Menge: 9 ml
Methode: Elispot
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer Infektion mit M. tuberculosis. Ersetzt/bestätigt den
Tuberkulin-Hauttest.
QuantiFERON-TB Gold In-Tube (F)
Die Sensitivität zum Nachweis einer Infektion mit M. tuberculosis beträgt ca. 63-78%, die
Spezifität beträgt ca. 96% (Review von Pai et al, Annals of Internal Medicine 2008).
Für den QuantiFERON-TB Gold In-Tube werden Spezialröhrchen des Herstellers benötigt.
Nach Blutabnahme muss das Material innerhalb von 16 Stunden in unserem Labor
eintreffen.
Material: Blut in Spezialröhrchen
Menge: 3 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: Abklärung einer Infektion mit M. tuberculosis. Ersetzt/bestätigt den
Tuberkulin-Hauttest.
248
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Mykologie
Mikrobiologische Diagnostik von Pilzinfektionen der Haut /
Schleimhäute
Dermatophytendiagnostik
Die Untersuchung beinhaltet die Pilzkultur und, wenn ausreichend Material vorhanden ist,
ein KOH-Präparat
V. a. Dermatomykose: möglichst viele Hautschuppen vom Rand der Läsion entnehmen
(scharfer Löffel); V. a. Onychomykose: möglichst viele Nagelteile/-späne vom Übergang
zwischen befallenem und gesundem Nagel entnehmen (Skalpell, Schere, Kürette); V.a.
Tinea capitis: mykoseverdächtige Haarstümpfe mit Epilierpinzette herausziehen; Partikel in
fest verschlossenem Kunststoffgefäß (z.B. Sputumbecherchen) verschicken
Material: Hautteile
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14-21 Tage)
Indikation: V. a. Tinea unguis (Onychomykose)/ Tinea corporis /Tinea capitis
Soordiagnostik
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-5 Tage)
Indikation: V.a. Soor (Genitalbereich, Mundhöhle, nässende Hautstellen)
Mikrobiologische Diagnostik der systemischen Aspergillose
Bei der systemischen Aspergillose handelt es sich um eine exogene Infektion. Aufgrund der
unzureichenden Sensitivität der einzelnen Nachweisverfahren sollte stets mehrgleisig
verfahren werden: kulturelle und mikroskopische (!) Untersuchung von
Respirationstraktsekreten; Antigen- und Antikörpernachweis im Serum
Bei V. a. Aspergillose unbedingt entsprechenden Hinweis auf dem Probenbegleitschein, da
spezielle Kulturbedingungen und Mikroskopietechniken eingesetzt werden müssen.
Mikrobiologische Diagnostik der systemischen Candidose
Bei der systemischen Candidose handelt es sich um eine endogene Infektion. Da Candida
spp. saprophytäre Haut- und Schleimhautkommensalen sind, ist der kulturelle Nachweis in
einem oder mehreren schleimhautassoziierten Material (z.B. Respirationstraktsekrete)
niemals beweisend für eine system. Candidose. Zur Diagnostik sind deshalb mehrere
Bausteine erforderlich, die in der zusammenfassenden Beurteilung eine systemische
Candidose mehr oder weniger wahrscheinlich machen (kulturelle Untersuchung von
Respirationstraktsekreten, Urin, Blutkulturen; serolog. Nachweis von Candida-Antigen und
Antikörper im Serum)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
249
Mikrobiologie
Parasitologie
Amöbiasis (Entamoeba histolytica)
Geographische Verbreitung: Warme Länder.
Infektion: Die Infektion erfolgt fast ausschließlich durch Ingestion von Zysten über fäkal
kontaminiertes Material. Dies führt zu asymptomatischen Verläufen mit Zystenausscheidung,
invasiven Verläufen in Form einer Amöbenkolitis und zu hämatogenen Streuungen am
häufigsten in die Leber. Die Zeit zwischen Infektion und Auftreten von Symptomen beträgt
Tage bis mehrere Jahre.
Symptome: Bei intestinaler Amöbiasis meist nur leichte gastrointestinale Beschwerden wie
Druckgefühl, ziehender Schmerz und Übelkeit, meist jedoch kein Fieber. Auftreten von
schwerem Krankheitsgefühl mit Fieber sind Anzeichen einer Ausbreitung über den Darm
hinaus (Peritonitis, Leberabszess)
Diagnose: In erster Linie mikroskopischer Nachweis von Zysten, ggf. auch Trophozoiten im
Stuhl, sowie Nachweis von Amöbenantigen in Stuhlproben mittels ELISA. Das empfindlichste
allerdings auch aufwendigste Verfahren stellt die PCR dar. Für invasive Infektionen, vor allem
bei extraintestinalem Befall ist die Serodiagnostik die Methode der Wahl.
Amöbiasis IFT
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Amöbenruhr, chron. rezidiv. Enteritis, Dysenterie, Leberabszess.
Einschleppinfektion aus (Sub-)Tropen
Referenzbereich: <1:10 Titer
Entamoeba histolytica (Stuhldiagnostik-Mikroskopie)
Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollte bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Eine Differenzierung zwischen der pathogenen E. histolytica und der apathogenen E.
dispar ist auf mikroskopischem Wege nicht möglich.
Bei V. a. intestinale Amöbiasis wird zum Nachweis der Trophozoiten nativer Stuhl benötigt,
der nicht älter als ca. 1h ist. Die Entamoeba histolytica-Zysten hingegen sind auch nach
1-2 Tagen noch nachweisbar.
Material: Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich
Indikation: blutig-eitrige Dysenterie
Entamoeba histolytica (Stuhldiagnostik-ELISA)
Höhere Sensitivität im Vergleich zur Mikroskopie. Eine Abgrenzung zur avirulenten Form
Entamoeba dispar ist mit dem von uns eingesetzten ELISA nicht möglich. Bei
entsprechender Indikation (z.B. Nachweis von Entamoeba histolytica/dispar -Cysten kann
die Probe an ein Speziallabor weitergeleitet werden.
Material: Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Babesiose
Babesien gehören wie die Malariaerreger zu den Protozoen, die Übertragung erfolgt durch
Zecken. Die Erkrankungen in Europa sind meist durch B. divergens, in Amerika durch B.
microti bedingt. Sekundärinfektionen durch Bluttransfusionen kommen vor (teils fulminante
Verläufe!). Auch nach der klinischen Ausheilung kann über Monate bis Jahre eine
Parasitämie bestehen.
Inkubationszeit: 1 - 4 Wochen
250
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Babesia-microti-IgG-AK IFT
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich, Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichtsabnahme, Anämie,
Splenomegalie
Referenzbereich: <1:16 Titer
Babesia-divergens-IgG-AK IFT
Material: Serum, EDTA-Blut, Urin, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich, Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichtsabnahme, Anämie,
Splenomegalie
Referenzbereich: <1:16 Titer
Babesia-microti-DNA (F)
Material: EDTA-Blut, Zecke
Menge: 2-3 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2-4 Tage)
Indikation: Zeckenstich, Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichtsabnahme, Anämie,
Splenomegalie
Referenzbereich: negativ
Echinokokkose (Hunde -/ Fuchsbandwurm)
Geographische Verbreitung: Der Hundebandwurm (Echinococcus granulosus ) ist weltweit
verbreitet, der Fuchsbandwurm (E. multilocularis ) kommt nur auf der nördlichen Hemisphäre
vor.
Infektion: Die Übertragung erfolgt fäkal-oral durch Aufnahme der mit dem Kot von Hund bzw.
Fuchs ausgeschiedenen Bandwurmeier (direkter Kontakt mit durch Fäkalreste verunreinigten
Tieren, Verzeher von kontaminierten Waldfrüchten oder Fallobst, Aufnahme eierhaltigen
Staubs).
Symptome: Der Hundebandwurm ist der Erreger der zystischen Echinokokkose, die durch
abgegrenztwachsendes zystenbildendes Larvengewebe charakterisiert ist. Das
Larvengewebe von Echinococcus multilocularis wächst dagegen schwammartig, maligne
infiltrierend. Der Parasit entwickelt sich primär ganz überwiegend in der Leber.
Diagnose: Bei Menschen ist der Nachweis von Bandwurmeiern nicht indiziert, da
Adultwürmer nur in den Endwirten Hund und Fuchs vorkommen. Die Labordiagnose wird
daher in erster Linie serologisch durch den Nachweis spezifischer Antikörper oder direkt
durch den molekularbiologischen Nachweis Echinococcus-spezifischer DNS im
Zystenaspirat gestellt.
Anonyme Meldepflicht!
Echinokokken-AK IFT
Nachweis von AK gegen E. granulosus und E. multilocularis (Eine Differenzierung ist
mittels IFT nicht möglich)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Echinokokkose, Zysten in Leber und Lunge, selten Gehirn; unklare
Leberherde
Referenzbereich: <1:10 Titer
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
251
Mikrobiologie
E.-multilocularis-AK EIA Em2plus artspezifisch
Alveoläre Echinokokkose
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Fuchsbandwurm, Zysten in der Leber, selten im Gehirn; unklare
Leberherde
Referenzbereich: negativ
E.-granulosus-DNA (F)
Probengewinnung mittels Feinnadelbiopsie
Material: Biopsie
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Zysten in Leber, Lunge selten Gehirn; unklare Leberherde
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
E.-multilocularis-DNA (F)
Probengewinnung mittels Feinnadelbiopsie
Material: Biopsie
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Zysten in Leber, Lunge, selten Gehirn; unklare Leberherde
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Fasciolose
Fasciola hepatica (Großer Leberegel)
Geographische Verbreitung: weltweit bei Pflanzenfressern (Rinder, Schafe) In Deutschland
selten, verbreiterter in Frankreich
Infektion: Die Infektion erfolgt über die Aufnahme der Saugwurm-Larven (Metazerkarien) mit
Salat, Kresse u.a.
Symptome: Nach einer Inkubationszeit von 2-6 Wochen, Perihepatitis, Cholangitis,
Cholezystitis
Diagnose: Die Diagnose beruht in erster Linie auf den Nachweis von Wurmeiern im Stuhl.
Die Serologie hat ihren Stellenwert vor allem während der Präpatenzzeit, in der noch keine
Eier ausgeschieden werden, bei schwachen und älteren Infektionen bei denen der
Einachweis schwierig bzw. nicht mehr möglich ist.
Fascioliasis-AK EIA (F)
Fasciola hepatica (Großer Leberegel)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: unklare chronische Cholangitis, Cholestase, Ikterus, nach Aufenthalt in
(sub-)tropischen Ländern
Referenzbereich: <1:200 Titer
Fasciolasis-AK IFT (F)
Fasciola hepatica (Großer Leberegel)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 200 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: unklare chronische Cholangitis, Cholestase, Ikterus, nach Aufenthalt in
(sub-)tropischen Ländern
Referenzbereich: <1:10 Titer
252
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Fasciola hepatica (Stuhldiagnostik-Mikroskopie)
Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Material: Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich
Filarien
Spezies: Filarien sind fadendünne Würmer, die im Gewebe von Tier und Mensch leben. Sie
bilden Larven, die sog. Mikrofilarien, die entweder im Blut zirkulieren oder in der Haut
wandern. Sie werden von blutsaugenden Arthropoden aufgenommen, in denen sie sich zu
infektiösen Larven entwickeln. Bei den beim Menschen verursachten Filariosen
unterscheidet man 3 Gruppen:
Lymphatische Filariosen: Wuchereria bancrofti, Brugia malayi, B. timori
Hautfilariosen: Onchocerca volvulus, Mansonella streptocerca
Loiasis: Loa loa
Geographische Verbreitung: Lymphatische Filariosen kommen mit verschiedenen Arten
weltweit in tropischen Regionen vor, die Onchozerkose ist auf Afrika und Südamerika
beschränkt, die Loaiasis kommt nur in Zentralafrika vor.
Infektion: Die Übertragung der infektiösen Larven erfolgt durch verschiedene Arten
blutsaugender Arthropoden: Stechmücken (Culicidae), Bremsen (Tabanidae),
Kriebelmücken (Simuliidae), Gnitzen (Culicoides spec.)
Symptome: Bei den lymphatischen Filariosen leben die Adultwürmer in den Lymphgefäßen
und verursachen rezidivierenden Lymphangitide, die zu Lymphödemen und im Extremfall zu
Elephantiasis führen können.
Bei den Hautfilariosen wandern die Mikrofilarien in der Haut und führen hier zu Dermatitiden
mit starkem Juckreiz. Später kommt es zu Hautatrophien und Depigmentierungen. Bei der
Onchozerkose besteht die folgenschwerste Komplikation in einer Erblindung (Flussblindheit),
verursacht durch die durch das Auge wandernden Mikrofilarien.
Die Loiasis ist durch im Unterhautbindegewebe wandernde Adultwürmer charakterisiert. Am
Sitz der Würmer bilden sich flüchtige juckende Schwellungen (Kalabarschwellungen), bei
Wanderung durch die Augenbindehaut werden die Würmer direkt sichtbar.
Diagnose: Die Verdachtsdiagnose erfolgt i.d.R. auf serologischem Wege. Die Antikörper
treten u.U. jedoch u.U. stark verzögert erst nach Monaten auf (Reaktion auf
Häutungsflüssigkeiten) Eine Artdiagnostik ist nicht möglich, hohe Titer weisen jedoch auf
einen Gewebs-Nematoden-Befall hin. Mikrofilarien treten erst nach Monaten bis über 1 Jahr
auf, bei Bewohnern nicht endemischer Gebiete (Touristen!) unterbleibt die Mikrofilarämie
meist ganz.
Gewebsnematoden-AK IFT
Antigen: Onchocerca
Filarien: Onchocerca volvulus (Flussblindheit), Wuchereria bancrofti und Brugia spec.
(lymphatische Filariose), Loa loa (Loiasis, Kalabar-Schwellungen)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Eosinophilie, Lymphangitis, passagere Weicheilschwellungen, Juckreiz
Referenzbereich: <1:10 Titer
Mikrofilarien Mikroskopie
Mikrofilarien im Blut: Wuchereria bancrofti, Brugia spec. (lymphatische Filariosen),
Mansonella spec., Loa Loa (Loiasis, Kalabar-Schwellungen)
Mikrofilarien in der Haut: Onchocerca volvulus, Mansonella streptocerca
Achtung: Die Zirkulation von Mikrofilarien im Blut weist einen Tag-Nacht-Rhythmus auf,
Blutentnahme nur nachts zwischen 21-2 Uhr, bei ozeanischen Arten zwischen 15-17 Uhr.
Bei Hautmanifestationen: skin snip, sofortiger Transport ins Labor
Material: EDTA-Blut, Biopsie
Menge: 5-10 ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
253
Mikrobiologie
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Eosinophilie, Lymphangitis, passagere Weichteilschwellungen
Referenzbereich: negativ
Giardiasis
Synonym: Lambliasis
Geographische Verbreitung: Die Lambliasis ist weltweit verbreitet und wird durch den
Flagellaten Giardia lamblia hervorgerufen.
Infektion: Die Infektion erfolgt durch orale Aufnahme von mit Zysten kontaminierten
Nahrungsmitteln oder Trinkwasser. Auch Fliegen können als Vektoren Lamblien-Zysten
übertragen.
Symptome: Nach einer Inkubationszeit von 3 - 21 Tagen kann es zu Übelkeit, krampfartigen
Bauchschmerzen, Flatulenz und wässrigen nicht-blutigen Durchfällen kommen. Diagnose:
Die Diagnose erfolgt in erster Linie über den mikroskopischen Nachweis von Zysten bzw.
Trophozoiten aus Stuhl oder Duodenalsaft. Neben dem direkten Erregernachweis wird zur
Steigerung der Sensitivität noch ein Lamblien-Antigennachweis (ELISA) durchgeführt.
Giardia lamblia (Stuhl-/Duodenalsaft-Mikroskopie)
Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Neben der sehr schnellen mikroskopischen Untersuchung wird ein sehr sensitiver
Lamblien-Antigennachweis mittels ELISA-Verfahren durchgeführt.
Material: Duodenalsaft, Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Referenzbereich: nicht nachweisbar (qualitativ)
Giardia lamblia (Stuhldiagnostik-ELISA)
Giardia lamblia spezifisches Antigen ist auch dann in Stuhlproben mittels ELISA
nachzuweisen, wenn keine Zysten oder Trophozoiten mikroskopisch zu sehen sind.
Material: Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: negativ Extinktion
Kryptosporidose
Geographische Verbreitung: Die Kryptosporidiose wird vor allem durch Cryptosporidium
parvum hervorgerufen und kommt weltweit vor.
Infektion: Die Übertragung der infektiösen Oozysten erfolgt oral i.d.R. über fäkal
kontaminiertes Trink- oder Badewasser. Häufig betroffen sind vor allem Kleinkinder bis 7
Jahre und immunsupprimierte Personen. Kryptosporidiosen treten gehäuft in den
Sommermonaten auf.
Symptomatik: Nach einer Inkubationszeit von 1-30 Tagen kommt es zu nicht-blutigen
Durchfällen verbunden mit Übelkeit, Erbrechen und krampfartigen Bauchschmerzen.
Diagnose: die Diagnose erfolgt in erster Linie über den mikroskopischen Nachweis von
Oozysten aus Stuhl. Neben dem direkten Erregernachweis wird zur Steigerung der
Sensitivität zusätzlich noch eine Kryprosporidien-Antigennachweis (ELISA) durchgeführt.
Kryptosporidien (Mikroskopie)
Neben der sehr schnellen mikroskopischen Untersuchung wird ein sehr sensitiver
Kryptosporidien-Antigennachweis mittels ELISA-Verfahren durchgeführt.
Material: Stuhl
Menge: kirschkerngroß
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
254
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Kryptosporidien (Stuhldiagnostik ELISA)
Material: Stuhl
Menge: kirschkerngroß
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Leishmaniose
Geographische Verbreitung: Leishmanien (Flagellata) kommen in erster Linie in
trocken-heißen Klimazonen der alten und neuen Welt vor.
Infektion: Die Erreger werden durch Stich von infizierten Schmetterlingsmücken
(Phlebotomen) übertragen. Als Erregerreservoir dienen v.a. verschiedene Nager, im
Mittelmeerraum Hunde (Zoonose). In Abhängigkeit von Leishmanien-Art und Immunstatus
des Wirtes kommt es zu unterschiedlichen Verlaufsformen:
A) viszerale Leishmaniose (Kala Azar)
B) Kutane Leishmaniose (Orientbeule)
C) Mukokutane Leishmaniose (Espundia)
Symptome:
Viszerale Leishmaniose: Hepatosplenomegalie, Lymphadenopathie, Anämie, Leukopenie,
Thrombozytopenie, interkurrente Infekte
Kutane Leishmaniose: Trockene oder feuchte nur sehr langsam abheilende Ulzera.
Mukokutane Leishmaniose: Ulcera im Haut-Schleimhautbereich mit entstellenden
Gewebszerstörungen
Diagnose: Bei der viszeralen Leishmaniose sind Antikörper in hohen Titern nachweisbar, bei
kutaner und mukokutaner Leishmaniose sind Antikörper i.d.R. nur bei größeren Läsionen
meßbar. Der mikroskopische Nachweis erfolgt bei viszeraler Leishmaniose aus dem
Knochenmark, bei kutaner und mukokutaner Leishmaniose aus den Gewebsläsionen, u.U.
nach Kultur in Insektenmedien. Für den PCR Nachweis eignen sich Blut sowie Bioptate aus
Gewebsläsionen.
Leishmanien-AK IFT
Material: EDTA-Blut, EDTA-Plasma, Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3-4 Tage)
Indikation: Reisende aus Tropen, Subtropen: Durchfall, Splenomegalie, Orientbeule, Hautund Schleimhautbefall, Ulzeration
Referenzbereich: <1:20 Titer
Leishmanien Mikroskopie
Material: Knochenmarkausstrich, Ulkusabstrich
Menge: 500 µl
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3-4 Tage)
Indikation: Reisende aus Tropen, Subtropen: Durchfall, Splenomegalie, Orientbeule, Hautund Schleimhautbefall, Ulzeration
Referenzbereich: <1:64
Leishmanien-DNA (F)
Abstriche, kutan und mukokutan in 1 ml NaCl oder in unserem speziellen Transportgefäß
mit weißer Kappe, Biopsie (nativ), Urin (5-10 ml), EDTA-Blut (2-3 ml), Knochenmark (2-3
ml)
Material: EDTA-Blut, Hautabstrich, Urin, Biopsie
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: bis zu 1 Woche)
Indikation: Reisende aus Tropen, Subtropen, Panzytopenie, Hepatosplenomegalie,
Haut/Schleimhaut-Ulzera
Referenzbereich: negativ
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
255
Mikrobiologie
Malaria (Plasmodium spp.)
4 humanpathogene Arten: P. falciparum (Malaria tropica), P. vivax und P. ovale (Malaria
tertiana) sowie P. malariae (Malaria quartana). Vorkommen weltweit in den Tropen und
Subtropen (Ausnahme: Australien), die Übertragung erfolgt durch Stechmücken (Anopheles).
Bedeutendste importierte Tropenkrankheit in Europa.
Inkubationszeit: in der Regel 8 - 12 Tage
Anonyme Meldepflicht!
Malaria-Schnelltest
Suchtest bei Verdacht auf Malaria. Ein negatives Ergebnis schließt das Vorliegen einer
Malaria nicht sicher aus. Bei klinischem Verdacht sollte der Test alle 24 Stunden
unabhängig vom Fieberanstieg wiederholt werden.
siehe "Dicker Tropfen"
Material: EDTA-Blut, Kapillarblutausstrich, nativ
Menge: 500 µl
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Stunden)
Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malariagebieten 3 Tage bis 1 Jahr vor
Erkrankungsbeginn
Referenzbereich: negativ
Malaria-Diagnostik (Dicker Tropfen)
Suchtest bei Verdacht auf Malaria. Ein negatives Ergebnis schließt das Vorliegen einer
Malaria nicht sicher aus. Bei klinischem Verdacht sollte der Test alle 24 Stunden
unabhängig vom Fieberanstieg wiederholt werden.
Bei V. a. Malaria wird der dicke Tropfen zusammen mit Ausstrich und Schnelltest
durchgeführt!
EDTA-Blut kann bei kurzen Transportzeiten ebenso verwendet werden wie Kapillarblut.
Material: EDTA-Blut, Kapillarblutausstrich, nativ
Menge: 500 µl
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Stunden)
Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malariagebieten 3 Tage bis 1 Jahr vor
Erkrankungsbeginn
Referenzbereich: negativ
Malaria-Ausstrich (mikroskopisch)
siehe "Dicker Tropfen"
Material: EDTA-Blut, Kapillarblutausstrich, nativ
Menge: 500 µl
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1-2 Stunden)
Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malariagebieten 3 Tage bis 1 Jahr vor
Erkrankungsbeginn; Bestimmung der Parasitämie; zur Speziesdiagnose besser geeignet
als der dicke Tropfen
Referenzbereich: negativ
Plasmodien-AK IFT
Die Antikörperbestimmung ist nicht zur Diagnostik bei V. a. akute Malaria geeignet.
Material: Serum, Vollblut, EDTA-Blut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Einsatz im Rahmen epidemiologischer Untersuchungen oder zur Aufdeckung
latenter Infektionen z. B. bei Blut- und Organspendern
Referenzbereich: <1:20 Titer
Necator americanus (s. S. 257 )
256
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Nematoden (Darmnematoden)
Spezies: Die Nematoden Ascaris (Spulwurm) Trichuris (Peitschenwurm), Enterobius
(Madenwurm) Ancylostoma und Necator (Hakenwürmer), Strongyloides (Zwergfadenwurm)
sowie Trichostrongylus leben im Darmlumen.
Geographische Verbreitung: Madenwürmer, Spulwürmer und Peitschenwürmer sind weltweit
verbreitet, Hakenwürmer, Zwergfadenwürmer und Trichostrogylus kommen in subtropischen
und tropischen Gebieten vor.
Infektion: Die Infektionen kommen durch orale Aufname von embryonierten Eiern (Ascaris,
Trichuris, Enterobius) oder Larven (Trichostrongylus) zustande, bei Hakenwürmern und
Strogyloides dringen infektiöse Larvenstadien durch die Haut in den Menschen ein.
Symptome: Klinische Erscheinungen in Form von allgemeinen gastrointestinalen
Symptomen treten i.d.R. nur bei großer Parasitenzahl auf.
Diagnose: Die Methode der Wahl ist die Untersuchung von Stuhlproben auf Wurmeier bzw.
Larven. Serologische Verfahren sind nur bei Darmnematoden mit einer
Herz-Lungen-Wanderung (AScaris, Hakenwürmern, Strongyloides) ausreichend sensitiv.
Wegen starker Kreuzreaktionen ist eine Art -Diagnostik auf serologischem Weg nicht
möglich, es ist nur ein Befall mit Nematoden nachweisbar.
Ascaris lumbricoides (Spulwurm) Mikroskopie
Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Hinweis: Ascaris lumbricoides ist der am meisten verbreitete Darm-Parasit des Menschen.
Material: Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: Lungenpassage: eosinophiles Lungeninfiltrat, Fieber, Pneumonie Darmphase:
Abdominalschmerzen, Erbrechen, Enteritis, Ileus, Eosinophilie
Enterobius vermicularis (Oxyuren, Madenwürmer) Mikroskopie
Mikroskopischer Nachweis der Eier durch Entnahme mit einem durchsichtigen
Klebestreifen (z.B. Tesa) aus der Analspalte. Perianalbereich zuvor nicht reinigen. Bei
Verdacht sollten mindestens drei diagnostische Versuche mit Hilfe der
Klebestreifen-Methode unternommen werden.
Hinweis: Enterobius ist der weltweit häufigste Wurmparasit, durchnittliche Prävalenz 10%
Material: Analklebestreifen
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: analer Juckreiz (keine Herz-Lungenwanderung!)
Ancylostoma duodenale u. N. americanus (Hakenwürmer) Mikroskopie
Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V.a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Material: Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: Die eindringenden Larven verursachen juckende Hautveränderungen.
Lungenpassage: Husten, Dyspnoe. Darmphase: Anämie, gastrointestinale Symptomatik
Strongyloides stercoralis (Zwergfadenwurm) Mikroskopie
Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen. Bei einem Hyperinfektionssyndrom sind Larven auch im Sputum,
selten auch im Liquor zu finden. Aufgrund der eingeschränkten Sensitivität des direkten
Erregernachweises im Stuhl sollte zusätzlich der indirekte Nachweis im Serum
durchgeführt werden.(Kreuzreaktionen vor allem mit Filariosen).
Material: Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
257
Mikrobiologie
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: Husten, Dyspnoe. Darmphase: gastrointestinale Symptomatik , Gastroenteritis,
Bluteosinophilie.
Darm-Nematoden-AK IFT
Antigen: Strongyloides
Ascaris, Hakenwürmer, Strongyloides
Material: Serum
Menge: 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: unklare Abdominalschmerzen, Übelkeit, Nüchternerbrechen, Eosinophilie
Referenzbereich: negativ
Trichuris trichura (Peitschenwurm) Mikroskopie
Da Parasiten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen. Hinweis: Trichuris trichura ist in warmen Ländern neben Ascaris der
am weitesten verbreitete Darmparasit des Menschen.
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: Abdominalschmerzen, Übelkeit, Erbrechen, Durchfall (keine
Herz-Lungen-Passage!)
Schistosomiasis
Synonym: Bilharziose
Geographische Verbreitung: Der Erreger der Bilharziose (Saugwürmer, Trematoda) sind mit
verschiedenen Arten in tropischen Ländern verbreitet. Die Zahl der Infizierten beträgt
weltweit ca. 200 Millionen.
InFektion: Die Infektion erfolgt beim Waten/Baden in Süßgewässer durch Penetration der
Parasitenlarven (Zerkarien) durch die intakte Haut. Die Adultwürmer sitzen in den Venen von
Darm bzw. Blase, die Eiablage beginnt nach 5-10 Wochen (Präpatenz).
Symptome: Darmbilharziose: Blutbeimengungen im Stuhl, Darmulzerationen, Colonpolypen.
Blasenbilharziose: Hämaturie, Proteinurie.
Diagnose: Die Diagnose beruht in erster Linie auf den Nachweis der Eier im Stuhl bzw. Urin.
Die Serologie hat ihren Stellenwert insbesondere während der Präpatenzzeit, in der noch
keine Eier ausgeschieden werden, bei schwachen, älteren Infektionen, bei denen ein
Einachweis schwierig, bzw. nicht mehr möglich ist.
Blasenbilharziose (Urin-Mikroskopie)
Bei V.a. Blasenbilharziose sind mehrfache Untersuchungen empfehlenswert, wobei die
Eiausscheidung um die Mittagszeit und nach körperlicher Anstrengung am höchsten ist.
Falls Urin nicht innerhalb von 1-2 h untersucht werden kann, 1ml 37% Formalin pro 100 ml
Urin zugeben; Lagerung gekühlt.
Falls Urin nicht innerhalb von 1-2 h untersucht werden kann, 1ml 37% Formalin pro 100 ml
Urin zugeben; Lagerung gekühlt.
Die Serologie hat wie bei der Darmbilharziose ihren Stellenwert insbesondere während der
Präpatenzzeit, in der noch keine Eier ausgeschieden werden, bei schwachen und älteren
Infektionen bei denen ein Einachweis schwierig bzw nicht mehr möglich ist.
Material: Urin
Menge: mind. 10ml
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Indikation: V. a. Blasenbilharziose
258
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Darmbilharziose (Stuhl-Mikroskopie)
Da Parasiten nicht dauernd in für die Diagnose ausreichender Zahl ausgeschieden
werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit
einem Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen. Die serolog. Diagnostik kann bei
Neuinfektionen den einzigen diagnostischen Hinweis während der 1-3 monatigen
Präpatenzzeit geben.
Material: Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Schistosomen-AK IFT (Adultwurm-Antigen)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V.a. kürzliche Schistosomen-Infektion, blutiger Stuhl, Hämaturie nach Aufenthalt
in Bilharziose-Gebieten (gesamter Tropengürtel)
Referenzbereich: <1:10 Titer
Schistosomen-AK IFT (Zerkarien-Antigen)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V.a. kürzliche Schistosomen-Infektion, blutiger Stuhl, Hämaturie nach Aufenthalt
in Bilharziose-Gebieten (gesamter Tropengürtel)
Referenzbereich: <1:10 Titer
Taenia sp. (Rinder/Schweinebandwurm)
Geographisches Vorkommen: weltweit, abhängig von der Form der Rinder-bzw.
Schweinehaltung.
Infektion: Die Infektion erfolgt durch orale Aufnahme von Finnen (Zystizerken) in rohem oder
ungenügend gegartem Fleisch, was zum Auftreten adulter Bandwürmer im Darm des
Menschen führt.
Symptome: Meist keine klinische Symptomatik oder unspezifische Beschwerden:
Gewichtsverlust, Diarrhoe und/oder Obstipation, Pruritus ani, ’Hungerschmerz’.
Diagnose: Mikroskopischer Nachweis der im Stuhl befindlichen Proglottiden bzw. Eier, eine
Artdiagnostik ist anhand der Ei-Morphologie nicht möglich
Rinder-/Schweinebandwurm (Stuhldiagnostik-Mikroskopie)
Da Parasiten nicht dauerend in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Material: Stuhl
Menge: Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1-2 Tage)
Taenien-AK Blot (Zystizerkose) (F)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V.a. Zystizerkose
Referenzbereich: negativ s
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
259
Mikrobiologie
Taenien-AK Blot (Zytizerkose) im Liquor (F)
Material: Liquor
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. Zystizerkose des ZNS
Referenzbereich: negativ s
Toxokarose
Toxocara canis (Hundespulwurm
Geographische Verbreitung: weltweit
Infektion: Die Übertragung erfolgt durch orale Aufnahme der Wurmeier, direkt vom Tier oder
indirekt z.B. durch Erde (Sandkasten), betroffen sind v.a. Kinder. Beim Menschen entwickeln
sich keine adulten Würmer, es entstehen lediglich Larven, die bis zu einem Jahr durch das
Gewebe wandern können (Larva migrans visceralis)
Symptome: Häufiger als angenommen kommt es zu länger anhaltenden Störungen des
Allgemeinbefindens mit unklaren Schmerzen, Anorexie, Hepatomegalie und Fieber. Typisch
ist auch eine Lungenbeteiligung mit Husten und asthmatischen Beschwerden. Bei Befall des
ZNS kommt es zu einer disseminierten Enzephalitis, als Komplikation kann eine diffuse
subakute Neuroretinitis hinzukommen, die typischerweise nur an einem Auge auftritt.
Diagnose: Der Nachweis einer Toxokarose ist nur auf serologischem Weg möglich.
Toxocara IgG-AK EIA (F)
EIA mit ES-Antigen
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V.a. Toxokarose: Eosinophilie, Abdominalschmerzen, Husten, Asthma,
einseitige Augeninfektionen , Chorioretinitis
Referenzbereich: negativ
Toxoplasmose (s. S. 67 )
Trichinose
Geographische Verbreitung: weltweit
Infektion: Die Infektion erfolgt über die Aufnahme eingekapselter Larven über ungenügend
erhitzes Fleisch (meistens Schweinefleisch). Seit Einführung der Fleischbeschau sind
Erkrankungen durch Trichinella spiralis in Deutschland sehr selten geworden.
Meldepflichtige Erkrankung! Symptome: Darmphase: Gastroenteritis (Erbrechen, Durchfall)
Muskelbefall: Muskelschmerzen, Ödeme, Eosinophilie, Intoxikationsphase: Myokarditis,
Enzephalitis
Diagnose: Der mikroskopische Larvennachweis ist heute obsolet, die Labor -Diagnose erfolgt
nur noch auf serologischem Weg.
Trichinella spiralis-AK IFT
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Erbrechen, Diarrhoe, Muskelschmerzen, Augenödeme, Eosinophilie
Referenzbereich: <1:10
Trichinella spiralis-AK Blot (F)
Material: Serum, Vollblut
Menge: 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Erbrechen, blutige Diarrhoe, Muskelschmerzen, Augenödeme
Referenzbereich: negativ
260
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Trichomoniasis
Trichomonas vaginalis
Geographische Verbreitung: weltweit
Infektion: Sexuelle Übertragung, Schleimhautparasit im Urogenitalbereich
Symptome: weißlich schaumiger vaginaler Fluor, Brennen beim Wasserlassen und
Harndrang, beim Mann häufig asymptomatische Infektion
Diagnose: Mikroskopischer Nachweis in Genitalabstrich, Kultur
Trichomonas vaginalis Abstrich/Kultur
Genitalabstriche werden nach Abnahme direkt in spezielles Kulturmedium überführt (im
Versand anfordern: 0711/6357-104). Die Kulturen werden für 48-72 h bebrütet und
anschließend mikroskopiert
Material: Genitalabstrich
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-3 Tage)
Indikation: vaginaler Fluor, Brennen beim Wasserlassen
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
261
Mikrobiologie
Hygieneuntersuchungen
Beinhaltet alle wesentlichen Untersuchungen in den Bereichen Krankenhaushygiene,
Wasseruntersuchung und Sterilkontrollen. Versandmaterialien (Abklatsche, Tupfer,
Bioindikatoren, Probenahmegefäße) und Anforderungsscheine sowie Informationen zu
Transport und Lagerung der Proben sind in der Hygiene-Abteilung (Tel. 0711 / 6357-153) zu
beziehen.
Mikrobiologische Untersuchung von Abklatschplatten (Rodacpl.)
Die Untersuchung beinhaltet die quantitative Auswertung (KBE/Platte) und auf Anforderung
eine Differenzierung in Keimgruppen (z. B. Staphylokokken, Enterobacteriaceae,
Pseudomonaden) oder in Spezies (z. B. S. aureus, E. coli, P. aeruginosa).
Material: Abklatschplatte
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-6 Tage)
Indikation: Überprüfung von Desinfektionsmaßnahmen auf glatten Oberflächen, flächigen
Materialien (z. B. Wäsche)
Mikrobiologische Untersuchung von Abstrichen
Die Untersuchung beinhaltet die qualitative Auswertung einschl. Anreicherung mit
Differenzierung in Keimgruppen (z.B. Staphylokokken, Enterobacteriaceae,
Pseudomonaden) oder in Spezies (z.B. S.aureus, E.coli, P.aeruginosa).
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-6 Tage)
Indikation: Überprüfung von Desinfektionsmaßnahmen an schwer zugänglichen Stellen, von
denen keine Abklatsche gemacht werden können.
Mikrobiologische Untersuchung von Trinkwasser nach TVO
Wasser bzw. Trinkwasser durch geschulte Probenehmer entnehmen, hierbei ist die aktuelle
Probenahmeanleitung zu beachten.
Pro zu untersuchender Parameter 100 ml Probe einsenden.
Material: Wasser, Trinkwasser
Menge: 100 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-5 Tage)
Indikation: Mikrobiologische Qualitätskontrolle von Trinkwasser
Mikrobiologische Untersuchung von Wasserproben
Die Untersuchung von Trinkwasser, Schwimm- und Badebeckenwasser erfolgt entsprechend
den jeweiligen Richtlinien. Auf Anforderung werden auch Einzeluntersuchungen (z. B.
Keimzahlbestimmung, Untersuchung auf P. aeruginosa u. a.) durchgeführt. Die Probenahme
muss von geschulten Personen unter Beachtung der aktuell gültigen Probenahmeanleitung
durchgeführt werden.
Material: Wasser ohne genauere Bezeichnung
Menge: 100 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-5 Tage)
Indikation: Mikrobiologische Qualitätskontrolle von Wasserproben.
Mikrobiologische Untersuchung von Wasserproben auf Legionellen
Die Untersuchung wird nach TVO 2011 und ggf. Empfehlungen des UBA durchgeführt und
beurteilt; sie beinhaltet eine Anreicherung durch Membranfiltration
Wasserproben zur Untersuchung auf Legionellen durch geschulte Probenehmer entnehmen,
hierbei ist die aktuelle Probenahmeanleitung zu beachten.
Material: Wasser ohne genauere Bezeichnung
Menge: 150 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 7-14 Tage)
Indikation: Mögliche Kontamination eines Wasserleitungssystems mit Legionellen.
262
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
MRSA-DNA (Schnelltest)
Das von uns eingesetzte molekularbiologische Verfahren bietet die Möglichkeit des
simultanen Nachweises sowohl des Resistenzgens (mecA), als auch einer
Speziesspezifischen chromosomalen DNA-Region. Dies ermöglicht die Abgrenzung von
mecA-Gen exprimierenden "Nicht-S-aureus-Staphylokokken-Stämmen".
Während der Nachweis der Oxacillinresistenz mittels konventioneller Methoden in der Regel
2-3 Tage benötigt, ermöglicht der DNA-Schnelltest dies innerhalb eines Tages.
Abstriche (trocken oder in 1ml physiol. NaCl)
Material: Hautabstrich, Wundabstrich, Rachenabstrich, Nasenabstrich
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 6 Stunden)
Referenzbereich: negativ
Mikrobiologische Überprüfung von Desinfektionsgeräten
Je nach Desinfektionsgerät und -verfahren werden unterschiedliche Bioindikatoren
eingesetzt (Desinfizierende Reinigung bei >90◦ /Chemothermische Reinigung bei >60◦ C:
Enterococcus faecium entspr. RKI-Anforderungen; Endoskopwaschautomaten: Enterococcus
faecium; Dampfdesinfektion (z.B. Matratzen/Bettgestelle): Bacillus subtilis bei 105◦ C EWZ
>5min bzw. E. faecium bei 75◦ C EWZ >20min (nach DIN 58949), Bettenwaschanlagen: E.
faecium (nach DIN 58955 bzw. AKBWA).
Hinweis: Transportkontrolle (TK) nicht mitsterilisieren; ansonsten ist die Untersuchung nicht
beurteilbar und muss wiederholt werden.
Anzahl in Abhängigkeit von der Gerätegröße
Material: Bioindikator
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Indikation: Periodische Prüfung von Desinfektionsgeräten/-anlagen nach RKI-Empfehlung;
außerordentliche Prüfung nach Inbetriebnahme des Geräts oder nach Reparaturen bzw.
Umbauten.
Mikrobiologische Überprüfung von Sterilisatoren
Je nach Sterilisationsverfahren werden unterschiedliche Bioindikatoren eingesetzt
(Bioindikator für Dampfsterilisation nach DIN 58946 Teil 3; Bioindikator für
Heißluftsterilisation nach DIN 58947 Teil 3.
Hinweis: Transportkontrolle (TK) nicht mitsterilisieren; ansonsten ist die Untersuchung nicht
beurteilbar und muss wiederholt werden. Indikatoren gekühlt lagern. Die Mindestanzahl der
Bioindikatoren pro Prüfung richtet sich nach dem Fassungsvermögen der Geräte.
Material: Bioindikator
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Indikation: Periodische Prüfung von Sterilisationsgeräten/-anlagen nach RKI-Empfehlung;
außerordentliche Prüfung nach Inbetriebnahme des Geräts oder nach Reparaturen bzw.
Umbauten.
Mikrobiologische Überprüfung von Maschinen für Krankenhauswäsche
Überprüfung von Desinfektionswaschmaschinen für Wäsche (RAL-RG 992/2;
RKI-Richtlinien); Prüfset: Testkeim E. faecium, 10 Abklatschplatten für Trockenwäsche.
Anzahl in Abhängigkeit von der Gerätegröße
Material: Bioindikator, Abklatschplatte
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Indikation: Funktionskontrolle von Waschmaschinen für Krankenhauswäsche
Mikrobiologische Überprüfung von Geschirrspülmaschinen
Überprüfung von Mehrtanktransportgeschirrspülmaschinen nach DIN 10510; Prüfset enthält
8 Bioindikatoren + 2 Transportkontrollen, 10 Abklatschplatten für Spülgut, 1 Transportgefäß
für Wasser der letzten Reinigungsflotte.
Material: Bioindikatoren/Abklatschplatten/Wasser
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
263
Mikrobiologie
Indikation: Überprüfung von Geschirrspülmaschinen hinsichtlich ihrer antibakteriellen
Leistung
Mikrobiologische Untersuchung von Endoskopen
Die Untersuchung sollte in vierteljährlichen Abständen durchgeführt werden. Im Vordergrund
steht die Untersuchung von Flüssigkeiten, mit denen die Endoskopkanäle nach
Endoskopaufbereitung gespült werden. Von Stellen, die der Reinigung und Desinfektion
schwer zugänglich sind, werden darüber hinaus Abstriche entnommen. Der
Schwämmchentest (Durchzug eines Schaumstoffschwämmchens durch den
Instrumentierkanal) dient in der Regel lediglich der visuellen Kontrolle auf makroskopisch
sichtbare Verunreinigungen. Die Prüfung sollte entsprechend den RKI-Empfehlungen (2002)
durchgeführt werden (im Hygienelabor erhältlich).
Material: Schwämmchen/Spülflüssigkeit/Tupfer
Menge: 20 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5 Tage)
Indikation: Kontrolle der Aufbereitung von Endoskopen
Mikrobiologische Untersuchung von Desinfektionsmittellösungen
Desinfektionsmittel werden i. d. R. in Anwendungskonzentration untersucht. Die
Untersuchung beinhaltet eine Filtration und die Keimzahlbestimmung in 1 ml bei 20◦ C und
36◦ C.
Material: Desinfektionsmittellösung
Menge: 100 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-7 Tage)
Indikation: V. a. bzw. z. A. einer bakteriellen Kontamination von Desinfektionsmittellösungen
Mikrobiologische Untersuchung von Blut/Blutprodukten
Untersuchung von Eigenblut/Eigenplasma/Leukapherisaten auf mikrobielle Kontamination
entsprechend den Empfehlungen des Arbeitskreises Blut am RKI.
Material: Blut/Blutprodukte
Menge: 50 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage)
Indikation: Verdacht auf mikrobiell bedingten Transfusionszwischenfall
Mikrobiologische Untersuchung von Hämodialyseflüssigkeiten
Bitte folgende Terminologie verwenden: Permeat (entmin. Wasser zum Verdünnen von
Hämodialysekonzentraten), Dialysierflüssigkeit (Permeat+Hämodialysekonzentrat), Dialysat
(Dialyseprodukt), Konzentrat (Hämodialysekonzentrat). Die Untersuchung wird entsprechend
den Empfehlungen des Arbeitskreises für angewandte Hygiene in der Dialyse (2005)
durchgeführt.
Material: Dialyseflüssigkeiten
Menge: 100 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Indikation: Mikrobiologische Kontrolle von Dialysegeräten bzw. Dialyseflüssigkeiten
Mikrobiologische Untersuchung von Sterillösungen (F)
Untersuchung von steril hergestellten Lösungen auf Keimfreiheit mittels Direktbeschickung
und Membranfiltration nach Ph.Eur.4.Ausgabe Grundwerk 2002.
Material: Sterillösungen
Menge: 100 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage)
Indikation: Mikrobiologische Qualitätskontrolle von steril hergestellten Flüssigkeiten.
264
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Endotoxin-/Pyrogennachweis
(F)
Nachweis von Endotoxinen/Pyrogenen durch den Limulus-Amöbozyten-Lysat-Test
Pyrogenfreies Abnahmesystem verwenden; Proben nach Entnahme sofort tieffrieren.
Material: Dialyseflüssigkeiten
Menge: 100 ml
Methode: Limulus-Assay
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3-6 Tage)
Indikation: Prüfung von Flüssigkeiten zur Hämodialyse bei Neuinbetriebnahme von
Dialysegeräten oder zur Abklärung pyrogener Reaktionen bei unauffälliger Keimzahl
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
265
Mikrobiologie
266
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung
Biozidprüfungen
Die Biozidprüfungen sollen Auskunft über die mikrobiziden Eigenschaften des zu prüfenden
Produkts bei unterschiedlichen Konzentrationen, Einwirkzeiten sowie - falls erforderlich Prüftemperaturen geben. Zusätzlich wird die Kinetik der Desinfektionsmittelwirkung unter
unterschiedlichen Belastungen (z. B. Eiweiß bzw. Blut) erfasst, die für das
Anwendungsverfahren sinnvoll sind. Die Wirksamkeit der Prüfprodukte wird in einem
zwei-stufigen Verfahren getestet: Zunächst erfolgt ein Suspensionsversuch
(Phase-2/Stufe-1-Test). Der Suspensionsversuch gibt Aufschluss darüber, bei welchen
Konzentrationen, Kontaktzeiten und Prüftemperaturen das Prüfprodukt unter praxisnahen
Bedingungen untersucht werden soll. Diese abschließende Untersuchung
(Phase-2/Stufe-2-Test) soll zeigen, ob das Desinfektionsmittel unter praxisnahen
Bedingungen wirksam ist. Je nach Wirksamkeitsspektrum des Desinfektionsmittels können
die Testorganismen gewählt werden wie z. B. bakterizid, begrenzt viruzid (behüllte Viren),
viruzid (unbehüllte Viren) oder sporozid.
Bakterizidie und Levurozidie
Suspensionsversuch (Phase 2 / Stufe 1)
VAH-Standardmethode 8
Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel mittels
qualitativem Suspensionsversuch
Prüfkeime obligat:
Escherichia coli (NCTC 10538, DSM 11250), Proteus mirabilis (ATCC 14153, DSM 788),
Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939)
Prüfkeime optional:
Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus faecium (ATCC 6057, DSM
2146), Enterococcus hirae (ATCC 10541, DSM 3320), Candida albicans (ATCC 10231,
DSM 1386)
Material: Biozide
VAH-Standardmethode 9 / prEN 13727: 2009-11
Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel mittels
quantitativem Suspensionsversuch (Phase 2 Stufe 1)
Prüfkeim: Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus faecium (ATCC
6057, DSM 2146), Enterococcus hirae (ATCC 10541, DSM 3320), Escherichia coli (NCTC
10538, DSM 11250), Proteus mirabilis (ATCC 14153, DSM 788), Pseudomonas
aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939), Candida albicans (ATCC 10231, DSM 1386)
Material: Biozide
Praxisnaher Versuch (Phase 2 / Stufe 2)
Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung
nach VAH-Standardmethode 14
Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel auf nicht
porösen Oberflächen - praxisnaher Versuch zur Flächendesinfektion (Phase 2/ Stufe 2)
Prüfkeim: Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus hirae (ATCC
10541, DSM 3320), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939), Candida albicans
(ATCC 10231, DSM 1386)
Material: Biozide
Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung
nach VAH-Standardmethode 15 / EN 14561: 2006-08
Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel mittels
quantitativem Keimträgerversuch (Phase 2/ Stufe 2)
Prüfkeim: Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus hirae (ATCC
10541, DSM 3320), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939), Candida
albicans (ATCC 10231, DSM 1386)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
267
Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung
Material: Biozide
Hygienische Händedesinfektion
nach VAH-Standardmethode 11 / prEN 1500: 2011-04
Prüfung der bakteriziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel - praxisnaher Versuch
mit Probanden zur hygienischen Händedesinfektion (Phase 2/ Stufe 2)
Prüfkeim: Escherichia coli (NCTC 10538, DSM 11250)
Oberflächenversuch mit mechanischer Behandlung
nach CEN/TC 216/WG1 (Working draft WI00216049_April 2011)
Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Praxisversuch zur Prüfung
der bakteriziden und levuroziden Wirkung auf Oberflächen mit vorgetränkten Mops im
humanmedizinischen Bereich - Prüfverfahren und Anforderungen (Phase 2/ Stufe 2)
Prüfkeim: Staphylococcus aureus (ATCC 6538, DSM 799), Enterococcus hirae (ATCC
10541, DSM 3320), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 15442, DSM 939), Candida albicans
(ATCC 10231, DSM 1386)
Material: Biozide, Tücher
In-house Methode
Prüfung der bakteriziden und levuroziden Wirkung von Wirksubstanzen im quantitativen
Keimträgerversuch mit unterschiedlichen Prüfmaterialien bzw. Oberflächen
Prüfkeim: keine Vorgaben
Material: Biozide
Viruzidie
Suspensionsversuch (Phase 2 / Stufe 1)
Leitlinie der DVV/RKI: Bundesgesundheitsbl. (2008, 51, 937-945)
Leitlinie der Deutschen Vereinigung zur Bekämpfung:der Viruskrankheiten (DVV) e.V. und
des Robert Koch-Instituts (RKI) zur Prüfung von chemischen Desinfektionsmitteln auf
Wirksamkeit gegen Viren in der Humanmedizin Fassung vom 1. August 2008
Testviren: Poliovirus Typ 1 Stamm Lsc-2ab, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid 75,
Simianvirus (SV) 40 Stamm 777, Vacciniavirus Stamm Elstree (bzw. MVA), BVDV Stamm
NADL
Material: Biozide
prEN 14476: 2011-12
Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Suspensionsversuch
Viruzidie für in der Humanmedizin verwendete chemische Desinfektionsmittel und
Antiseptika - Prüfverfahren und Anforderungen (Phase 2, Stufe 1)
Testviren: Poliovirus Typ 1 Stamm Lsc-2ab, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid 75
Material: Biozide
Praxisnaher Versuch (Phase 2 / Stufe 2)
Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung nach DVV/RKI
Leitlinie der Deutschen Vereinigung zur Bekämpfung der Viruskrankheiten (DVV) e.V. zur
quantitativen Prüfung der viruziden Wirksamkeit chemischer Desinfektionsmittel auf
nicht-porösen Oberflächen (Anwendung im Bereich Humanmedizin)
Testviren: Murines Parvovirus (MVM) Stamm Crawford, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid
75, murines Norovirus Berlin 06/06/DE Isolat S99, Vacciniavirus Stamm Elstree (bzw. MVA)
Material: Biozide
Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung
nach CEN/TC 216/WG1
(Working draft WI00216037_June2008)
Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Oberflächen-Versuch zur
Bestimmung der viruziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel in Humanmedizin Prüfverfahren ohne mechanische Behandlung und Anforderungen (Phase 2/Stufe 2)
Testviren: Murines Parvovirus (MVM) Stamm Crawford, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid
75, murines Norovirus Berlin 06/06/DE Isolat S99
Material: Biozide
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung
Oberflächenversuch ohne mechanische Behandlung nach OECD
Prüfung der viruziden Wirksamkeit chemischer Desinfektionsverfahren mit praxisnahen
Prüfmodellen; Flächentest ohne Mechanik (Validation of Efficacy Methods for
Antimicrobials used on Hard Surfaces. Draft Report 2009-11-20)
Testvirus: Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid 75
Material: Biozide
DVG-Richtlinie 2007
Prüfung der viruziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel für den Bereich Tierhaltung
und Lebensmittel, DVG-Richtlinie für die Prüfung von Desinfektionsverfahren und
chemischen Desinfektionsmitteln (2007)
Testviren: bovines Enterovirus (ECBO) Typ 1, Reo-Virus Typ I, Newcastle disease-Virus,
Vacciniavirus Stamm Elstree
Material: Biozide
Oberflächenversuch mit mechanischer Behandlung
nach CEN/TC 216/WG1
Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Praxisversuch zur Prüfung
der viruziden Wirkung auf Oberflächen mit vorgetränkten Mops im humanmedizinischen
Bereich - Prüfverfahren und Anforderungen (Phase 2/ Stufe 2)
Testviren: Murines Parvovirus (MVM) Stamm Crawford, Adenovirus Typ 5 Stamm Adenoid
75, murines Norovirus Berlin 06/06/DE Isolat S99, Vacciniavirus Stamm Elstree (bzw. MVA)
Material: Biozide, Tücher
In-house Methoden
Screening-Untersuchungen mit unterschiedlichen Prüfviren
Testvirus: keine Angaben
Material: Biozide
Untersuchungen der antiviralen Aktivität
über CPE-Inhibitions-Assay mit unterschiedlichen Prüfviren
Testvirus: keine Angaben
Material: Antivirale Produkte
Prüfung der viruziden Wirkung von Wirksubstanzen
im quantitativen Keimträgerversuch mit unterschiedlichen Prüfmaterialien bzw.
Oberflächen
Testvirus: keine Angaben
Material: Biozide
Prüfung der viruziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel
- praxisnaher Versuch mit Probanden zur hygienischen Händedesinfektion (Phase 2/
Stufe 2)
Testvirus: murines Norovirus Berlin 06/06/DE Isolat S99
Material: Biozide
Sporozidie
Suspensionsversuch gemäß EN 13704:2002-05
Chemische Desinfektionsmittel - Quantitativer Suspensionversuch zur Bestimmung der
sporiziden Wirkung chemischer Desinfektionsmittel in den Bereichen Lebensmittel,
Industrie, Haushalt und öffentliche Einrichtungen - Prüfverfahren und Anforderungen
(Phase 2 / Stufe 1)
Prüfkeim: Clostridium difficile Ribotyp 027, NCTC 13366
Material: Biozide
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Mikrobiologisch-hygienische Biozidprüfung
Oberflächenversuch mit mechanischer Behandlung
nach CEN/TC 216/WG1 Working draft
Chemische Desinfektionsmittel und Antiseptika - Quantitativer Praxisversuch zur Prüfung
der sporoziden Wirkung auf Oberflächen mit vorgetränkten Mops im humanmedizinischen
Bereich - Prüfverfahren und Anforderungen (Phase 2/ Stufe 2)
Prüfkeim: Clostridium difficile Ribotyp 027, NCTC 13366
Material: Biozide, Tücher
In-house Methode
Prüfung der sporoziden Wirkung von Wirksubstanzen im quantitativen Keimträgerversuch
mit unterschiedlichen Prüfmaterialien bzw. Oberflächen
Prüfkeim: Clostridium difficile Ribotyp 027, NCTC 13366
Material: Biozide
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR