Antiseptika - Konsensusdokument 2004
Werbung
Konsensus Konsensusempfehlung zur Auswahl von Wirkstoffen für die Wundantiseptik* Schlüsselwörter: Wundantiseptik, Povidon-Iod, Octenidindihydrochlorid, Polihexanid, lokale Antibiotika Zusammenfassung Auf der Grundlage einer kritischen Sichtung des aktuellen Schrifttums werden unter Berücksichtigung klinischer Erfahrungen die derzeit hauptsächlich zur antiseptischen Prophylaxe und Therapie von Wundinfektionen eingesetzten Wirkstoffe einer vergleichenden Bewertung unterzogen. Bezüglich der Anwendung an akuten infizierten bzw. kolonisierten Wunden ergibt sich als Fazit eine prinzipielle Gleichwertigkeit von PVP-Iod- und Octenidinbasierten Antiseptika, wobei die Besonderheiten und Stärken beider Wirkstoffe differenziert herausgestellt werden. Für chronische schlecht heilende Wunden ist Polihexanid als Mittel der 1. Wahl anzusehen. Zur Wundantiseptik ungeeignete Mittel werden als Orientierungshilfe erwähnt. Inhaltsverzeichnis 1. Zielsetzung 2. Indikationen für eine Wundantiseptik 3. Geeignete Wirkstoffe zur Wundantiseptik 3.1. Wirkstoffe zur kurzzeitigen Anwendung auf Grund mikrobieller Kontamination (z. B. nach Trauma) oder auf koloniosierten oder infizierten akuten Wunden 3.2. Wirkstoffe zur wiederholten Anwendung auf chronischen schlecht heilenden bzw. empfindlichen Wunden 4. Weitere Wirkstoffe und Methoden 5. Obsolete oder entbehrliche Wirkstoffe 6. Literatur 7.Verfasser *In gekürzter Form im Journal of Wound Care im Druck. 110 ZfW Nr.3/04 1. Zielsetzung Auf der Basis des aktuellen Wissensstandes einschließlich klinischer Erfahrungen sollen von Experten verschiedener Disziplinen und Länder evidenzorientierte Empfehlungen zum gezielten Einsatz antiseptischer Substanzen an akuten und chronischen Wunden gegeben werden. Als limitierendes Problem stellte sich heraus, dass bisher keine randomisierten klinisch kontrollierten Doppelblindstudien mit allgemein anerkannten Zielparametern im direkten Vergleich zweier Verfahren der antiseptischen Wundbehandlung existieren, die eine Bewertung über die spezifische Studie hinaus ermöglichen. Als ein erster Schritt in diese Richtung kann eine prospektive monozentrische randomisierte kontrollierte und in Parallelgruppen durchgeführte partiell offene klinische Studie gewertet werden, in der ein Hydrogel mit liposomalem PVP-Iod bzw. ein Chlorhexidin-haltiger Gazeverband auf nicht infizierten frischen Mesh graft–Transplantaten für 3 d (bei Brandwunden) bzw. 5 d (bei anderen Wunden) bei 21 bzw. 14 Patienten angewendet wurden. Hierbei erwies sich das Hydrogel dem Gazeverband in der Neoepithelisation bei gleichzeitig höherer Wirksamkeit als signifikant überlegen32. In Anbetracht der insgesamt unbefriedigenden Datenlage auf dem Gebiet der Wundantiseptik werden nachfolgend jene Wirkstoffe herausgearbeitet, die den Ansprüchen wie sichere Breitspektrumwirkung, rascher Wirkungseintritt, Wirksamkeit bei organischen Belastungen, Wundverträglichkeit, fehlende Allergenität, kein Risiko anaphylaktischer Reaktionen, keine resorptive Risiken sowie fehlende Resistenzentwicklung am besten gerecht werden. Dabei fußen die Schlussfolgerungen in erster Linie auf in vitro Befunden zu Wirksamkeit und Verträglichkeit sowie auf klinischen Erfahrungen. 2. Indikationen für eine Wundantiseptik Wundantiseptika sind nur nach sorgfältiger Indikationsstellung anzuwenden. Andernfalls können Störungen der Wundheilung resultieren62. Eine geringgradige mikrobielle Kontamination bzw. Kolonisation von Wunden ist praktisch der Regelfall, zeitabhängig auch im eröffneten Operationsfeld, und nach allgemeiner Einschätzung meist irrelevant für den Wundheilungsverlauf. Eine Ausnahme ist z. B. die Wundkolonisation mit MRSA, die bei einer Keimträgersanierung hospitalisierter Patienten in jedem Fall mitbehandelt werden muss, weil sonst von hier ausgehend eine Rekolonisation je nach Abwehrlage, Virulenz und eingebrachter Erregermenge unvermeidbar ist57. Ebenso besteht bei der verbrennungsmedizinischen Versorgung von Patienten die Notwendigkeit einer frühen Prävention von Wundinfektionen bei zu erwartender Kontamination großer Wundflächen. Obwohl die thermische Wunde primär nahezu frei von Bakterien ist, stellen das abgestorbene Gewebe und die einsetzende Exsudatbildung einen idealen Nährboden für Bakterien und Pilze dar69. Die u. a. mit Krankheitserregern verunreinigte traumatische Wunde sowie die infizierte Wunde, die im allgemeinen mit einer klinischen Symptomatik einhergeht, müssen aus folgenden Gründen antiseptisch behandelt werden: • Solange eine Wunde kolonisiert ist, kann sich eine Infektion entwickeln. • Solange eine Wunde infiziert ist, kommt der Wundheilungsprozess nicht bzw. verzögert (Defektheilung) zum Abschluss. • Die Wundinfektion kann sich weiter ausbreiten und im ungünstigsten Fall in eine Sepsis münden. • Eine Wunde mit Kolonisation oder Infektion durch multiresistente Erreger Konsensus (z. B. MRSA) muss saniert werden, um eine Weiterverbreitung der Erreger zu verhindern. Bei der Wundinfektion ist zwischen der primären und der sekundären Wundinfektion zu unterscheiden. Traumatische Verletzungen, vor allem Bisswunden, Verkehrsunfälle und Stichverletzungen, sind primär über den Mechanismus Kontamination – Verschleppung der Erreger in die Tiefe – Infektion hochgradig infektionsgefährdet. Aus diesem Grund ist die antiseptische Primärversorgung verschmutzter Verletzungswunden Voraussetzung zur Prophylaxe einer Wundinfektion. Als Sonderfall der primären Infektion sind postoperative Wundinfektionen anzusehen, die im allgemeinen während des Eingriffs erworben werden. Bei der sekundären Wundinfektion wird eine bereits bestehende Wunde infiziert (z. B. chronische Ulzera, sekundär heilende Wunden, Verbrennungswunde). Bei diagnostizierter Wundinfektion sind vom Prinzip her folgende Grundsätze einzuhalten: • Lokal begrenzte Infektionen werden mit Antiseptika behandelt. • Wundinfektionen mit beginnender Allgemeininfektion sowie manifeste systemische Infektionen (Sepsis) werden mit systemischen Antiinfektiva ggf. in Kombination mit Antiseptika behandelt. Eine Ausnahme machen bestimmte Infektionen, bei denen mit einer raschen lebensbedrohlichen Generalisierung zu rechnen ist, wie z. B. die Staphylokokkeninfektion als Karbunkel im Abflussgebiet zum ZNS führender Venen- und Lymphgefäße (meist im Oberkieferbereich) sowie die Streptokokken-bedingte akute nekrotisierende Fasziitis. Diese Formen werden grundsätzlich frühzeitig hochdosiert systemisch und zusätzlich antiseptisch behandelt. In allen Fällen ist das Primat der chirurgischen Herdsanierung zu beachten. 3 Geeignete Wirkstoffe zur Wundantiseptik 3.1 Wirkstoffe zur kurzzeitigen Anwendung auf Grund mikrobieller Kontamination (z. B. nach Trauma) oder auf kolonisierten oder infizierten akuten Wunden Kriterien für diesen Einsatzbereich sind eine sichere mikrobiozide Wirkung gegen die infrage kommenden Erreger, eine rasche Wirkungsentfaltung und eine ausreichende objektive und subjektive Verträglichkeit ohne relevante Nebenwirkungen1,2. Das Prinzip der Versorgung traumatischer bzw. infizierter Wunden besteht im chirurgischen Debridement von nekrotischem oder verletztem Gewebe mit nachfolgender Antiseptik und geeigneter Wundabdeckung 1-4. Leider wird immer wieder der Fehler begangen, eine belegte Wunde primär antiseptisch zu behandeln oder Granulation und Epithelisierung pharmakologisch (durch Salben und Wundauflagen) fördern zu wollen, ohne die Wunde zuvor chirurgisch, enzymatisch oder bei Problemwunden ggf. auch biochirurgisch (Madentherapie) zu debridieren. Finden sich im Spätstadium einer Wundheilungsstörung trockene Nekrosen, ist jegliche lokale Behandlung außer der chirurgischen Nekrosektomie als falsch zu bezeichnen. Ist die Wunde sauber, also frei von Belägen und Schorfbildung, soll die Granulation gefördert werden. Ist der Wundgrund vollständig granuliert, sollte die Epithelisierung angeregt werden. Für die Versorgung verunreinigter Verletzungen ist bei guter Zugängigkeit und intakter Gewebeperfusion im allgemeinen eine einmalige Antiseptik ausreichend. Bei klinisch manifester Wundinfektion ist die Antiseptik nur so lange durchzuführen, wie Zeichen einer Wundinfektion vorliegen, d. h. im allgemeinen nicht länger als 2-6 Tage5. Povidon-Iod Povidon-Iod wirkt zuverlässig mikrobiozid gegen grampositive und gramnegative Bakterien, Pilze und Protozoen, bei län- gerer Einwirkungszeit auch sporozid12 und zusätzlich gegen eine Reihe von Viren13,14. Ein Vorteil der Iodophore ist die rasch einsetzende mikrobiozide Wirkung (ohne organische Belastung in vitro innerhalb von 30 s), die sich nicht vom Octenidin unterscheidet7,9,15-17. Die Wirkung hält etwa solange an, wie die Anwesenheit von Iod durch Braunfärbung angezeigt wird. In Abhängigkeit von der Belastung sind folgende Besonderheiten zu beachten. Sowohl bei PVP-Iod als auch bei der Kombination Octenidin/Phenoxyethanol bleibt noch in der Verdünnung von 1:20 bei 1 h Einwirkungszeit die Wirkung in Gegenwart von 0,2 % bovinem Serumalbumin sowie in Gegenwart von Knorpel erhalten, wobei die Wirkung von PVP-Iod bei der Albuminbelastung gegen S. aureus 34 lg-Stufen höher ist17,19. Auch bei Zusatz von 10% defibriniertem Schafblut werden von PVP-Iod die Wirkungsanforderungen problemlos erfüllt17. Bei experimenteller Belastung mit 10 % bovinem Serumalbumin sowie mit der Kombination 4,5 % defibriniertes Schafblut + 4,5 % bovines Serumalbumin + 1 % Muzin verlängert sich bei PVP-Iod die erforderliche Einwirkungszeit für die Keimabtötung > 5 lg auf 10 min17. Bei der Kombination Octenidin/Phenoxyethanol verlängert sich bei den Belastungen mit 10 % defibriniertem Schafblut, 10 % bovinem Serumalbumin, 1 % Muzin sowie der Kombination 4,5 % defibriniertes Schafblut + 4,5 % bovines Serumalbumin + 1 % Muzin die Einwirkungszeit gegenüber C. albicans ebenfalls auf 10 min, wobei bei der 1 %igen Muzinbelastung innerhalb von 10 min nur eine Reduktion von 3,6 lg erreicht wird17. Bei Iodophoren sind im Unterschied zu Octenidin keine Wirkungslücken (Bakteriensporen, Protozoen) vorhanden7,11,18. In vitro konnte gezeigt werden, dass die Iodophore neben ihrer mikrobioziden Wirkung auch die Fähigkeiten besitzen, die Aktivität und Expression mikrobieller Toxine zu inhibieren. Es wurden u. a. die Hemmung einer überschießenden Mediatorfreisetzung aus humanen Immuneffektorzellen, ein verringerter Einstrom von aktivierten Entzündungszellen und eine Inak- ZfW Nr.3/04 111 Konsensus tivierung gewebezerstörender Enzyme nachgewiesen. Dadurch erreichen die Iodophore neben der antiseptischen Wirksamkeit eine zusätzliche Wirkqualität20,21. Iodophore sind besser gewebeverträglich als die Kombination Octenidin/Phenoxyethanol oder als Chlorhexidin-haltige Präparate und werden derzeit nur von Polihexanid und Taurolin an Gewebeverträglichkeit übertroffen22-25. Daher sind Iodophore als Wirkstoff der Wahl für die kurzzeitige Anwendung bei Infektionen oder verschmutzten traumatischen Akutwunden anzusehen6-8, können aber auch zur kurzfristigen Spülung tiefer Wunden einschließlich Körperhöhlen (z. B. bei Pleuraempyem, intra- und retroperitonelane Abszessen), in diesem Fall 1:10 verdünnt, mit guten Resultaten angewendet werden26-28. Eine weitere Anwendungsmöglichkeit ist die lokale Applikation z. B. vor der Resektion von Darmabschnitten und nach Anastomosierung28. Auf Verbrennungswunden ist wegen des Risikos der Transplantatabstoßung32 die Anwendung nach erfolgter Transplantation nicht zu empfehlen (Alternative ist z. B. Polihexanid). Auf Grund tierexperimenteller und klinischer Studien soll eine Peritoneallavage wegen des Risikos von Unverträglichkeiten (Ablagerung von PVP im RES der Leber, Zerstörung des Mesothels mit Verwachsungen, Verschiebungen des Säure-Basen-Haushalts) nicht mit Povidon-Iod durchgeführt werden18,76. Als weitere Anwendungsmöglichkeit ist für Iodophore der Einsatzes in der präund postoperativen Antiseptik gegeben. Bei präoperativen Eingriffen am Auge ist Povidon-Iod derzeit Mittel der 1. Wahl10,64,72-74. Eine besondere Situation ist bei erforderlichen Sofortmaßnahmen zur Infektionsprophylaxe bei akzidentellen Stichoder Schnittverletzungen mit Gefährdung durch HIV, HBV oder HCV gegeben. Nach der ersten Phase des Blutenlassens ist die Kombination von je 39 w/w % Ethanol/2-Propanol mit Povidon-Iod als Mittel der 1. Wahl einzuordnen75. Am Kaninchen ist 0,5 % Povidon-Iod intraartikulär gut verträglich30, was durch In-vitro-Befunde am Knorpel des adulten Rindes bestätigt wird31, so dass sich hier 112 ZfW Nr. 3/04 eine neue Anwendungsmöglichkeit für Iodophore eröffnet. Tierexperimentell wirken Iodophore nicht allergen, sehr selten sind Allergien beim Menschen möglich11. Die früher häufig beobachteten Hautreizungen und Schmerzzustände nach Iodeinsatz sind auf die inzwischen obsolete Zubereitung „Iodtinktur“ (Iod/Iodid in Ethanol) zurückzuführen. Genotoxische, karzinogene und teratogene Gefährdungen sind nicht bekannt11. Durch die Einarbeitung von PovidonIod in eine liposomale Zubereitung konnte bei gleicher Wirksamkeit die Gewebeverträglichkeit signifikant verbessert werden. Tendentiell war in vitro sogar eine Proliferationsförderung nachweisbar32. Dadurch eröffnen sich neue Anwendungsmöglichkeiten für Iodophore31,32. Bei allen Anwendungen ist die Iodresorption auf Grund der damit verbundenen potentiellen Schilddrüsengefährdung zu beachten und das Nutzen-Risiko-Verhältnis für die Anwendung abzuwägen. Anwendungsgebiete von Povidon-IodLösung gemäß Fach- und Gebrauchsinformation: • Zur einmaligen Anwendung: - Desinfektion der intakten äußeren Haut. - Antiseptik der Schleimhaut wie z. B. vor Operationen, Biopsien, Injektionen, Punktionen, Blutentnahmen und Blasenkatheterisierungen. • Zur wiederholten, zeitlich begrenzten Anwendung: - Antiseptische Wundbehandlung (z.B. Dekubitus, Ulcus cruris), Verbrennungen. - infizierte und superinfizierte Dermatosen. • Hygienische und chirurgische Händedesinfektion. Anwendungsgebiete von Povidon-IodSalbe gemäß Fach- und Gebrauchsinformation: Zur wiederholten, zeitlich begrenzten Anwendung als Antiseptikum bei geschädigter Haut wie z. B. Dekubitus (Druckgeschwür), Ulcus cruris (Unterschenkelgeschwür), oberflächlichen Wunden und Verbrennungen, infizierten und superinfizierten Dermatosen. Bei der Anwendung von Iodophoren müssen folgende Kontraindikationen beachtet werden: Hyperthyreote Schilddrüsenerkrankungen, Dermatitis herpetiformis Duhring, Überempfindlichkeit gegen Iod, Anwendung vor und nach Radioiodtherapie. In der praktischen Anwendung ist darauf zuachten, dass bei einer Verunreinigung von Textilien eine frühzeitige Entfernung von Flecken anzustreben ist. Im allgemeinen lassen sich Iodophore mit warmem Wasser und Seife entfernen. In hartnäckigen Fällen kann zur Fleckenentferung Salmiakgeist oder Natriumthiosulfatlösung (Fixiersalz) verwendet werden. Bei folgenden Situationen ist die Anwendung sorgfältig abzuwägen und ggf. die Schilddrüsenfunktion zu kontrollieren: blande Knotenstrumen – bei Ausschluss einer Autonomie ist die Anwendung unbedenklich -, Gravidität, Stillzeit, großflächige Anwendung bei Früh- und Neugeborenen sowie bei Säuglingen bis zum 6. Lebensmonat. Bei Arzneizubereitungen auf PVP-IodBasis ist zu berücksichtigen, dass in Abhängigkeit von der Galenik und der Wirkstoffkonzentration im Produkt der Anteil an frei verfügbarem Iod variieren kann, was von Einfluss auf die Wirkung im jeweiligen Anwendungsbereich ist. Deshalb sollte bei der Produktauswahl die Qualität der Standardisierung zertifiziert sein. Zum Beispiel ist für Betaisodona® eine gleichbleibende pharmazeutische Qualität über den gesamten Zeitraum der Haltbarkeit (5 Jahre) auch nach Anbruch garantiert. Octenidindihydrochlorid Octenidindihydrochlorid ist ein oberflächenaktiver Wirkstoff, der entweder in Kombination mit 2% Phenoxyethanol oder als alleiniger Wirkstoff (in Kosmetika) eingesetzt wird. Die mikrobiozide Wirkung erstreckt sich gleichermaßen gegen grampositive und gramnegative Bakterien sowie Pilze; zusätzlich werden bestimmte Virusspezies erfasst. Allerdings ist keine sporozide und keine protozoozide Wirkung vorhanden11,34. Bei Anwendung von Verdünnungen z. B. zu Spülungen sind unabhängig vom Konsensus Antiseptikum die Herstellervorgaben zur Sicherung der Effektivität und zur Vermeidung von Nebenwirkungen zu beachten8. So variiert im Unterschied zu Iodophoren die Einwirkungszeit einer 1:1 Verdünnung Octenidin/Phenoxyethanol-basierter Antiseptika ohne organische Belastung in Abhängigkeit vom MRSA-Stamm zwischen 30 s und > 5 min68. Bei weiteren vegetativen Erregern tritt die volle Wirkung erst nach 5 min ein65. Es gibt keine Hinweise auf karzinogene, mutagene, teratogene, embryotoxische und fertilitätsbeeinträchtigende Wirkungen11. Bei Anwendung auf Wunden und vaginal ist keine Resorption nachweisbar11. Bei dermaler Applikation am Versuchstier ergaben sich analog wie bei einem PVP-Iod-basierten Antiseptikum keine Hinweise auf systemische Nebenwirkungen einschließlich neurotoxischer Reaktionen102. Damit ergeben sich beim derzeitigen Wissensstand keine toxischresorptiven Risiken. Die Zyto- und Gewebetoxizität der handelsüblichen Kombination von Octenidin und Phenoxyethanol ist höher als von Iodophoren oder Polihexanid und entspricht etwa der von Chlorhexidin25. Diesem Befund stehen klinische Erfahrungsberichte einer erfolgreichen antiseptischen Primärversorgung von Schürf-, Biss- und Schnittwunden, der Anwendung 1:1 verdünnter Lösung bei Verbrennungswunden sowie 1:5 verdünnter Lösung zur Abdominalspülung entgegen35. Das könnte durch in vitro-Befunde seine Erklärung finden, wonach Bestandteile von Octenisept® mit Zellen bzw. Proteinen starke Wechselwirkungen eingehen und Komplexe bilden, eine ungewöhnliche, bisher nicht beschriebene Wechselwirkung eines Antiseptikums mit Zellen/Matrixbestandteilen/Geweben. Das könnte sich in vivo günstig auf die Verträglichkeit auswirken, indem durch solche Komplexe eine bakterielle Kolonisation beeinträchtigt werden kann (Müller et al. in Vorb.). Die Abklärung dieser Befunde ist nur durch eine randomisierte Doppelblindstudie möglich. In vitro war in einem Vollblutmodell ohne und mit LPS-Gabe keine Stimulation von TNF-α nachweisbar. Ohne LPS-Zugabe war keine Freisetzung von PDGF-AB (Wachstumsfaktor), mit LPS dagegen dosisabhängig eine Stimulierung nachweisbar101. Da die Iodophore etwa 3 Jahrzehnte früher (1956) als der Wirkstoff Octenidin in die klinische Praxis eingeführt wurden, erklärt sich die vergleichsweise größere Anzahl an Publikationen einschließlich unterschiedlicher Bewertungen der Iodophore. Anwendungsgebiete von Octenidin in Kombination mit Phenoxyethanol gemäß Fach- und Gebrauchsinformation: • Zur wiederholten, zeitlich begrenzten antiseptischen Behandlung von Schleimhaut und angrenzender Haut vor diagnostischen Eingriffen und operativen Maßnahmen – im Ano-Genitalbereich von Vagina, Vulva, Glans penis, auch vor Katheterisierung der Harnblase – in der Mundhöhle, zur zeitlich begrenzten unterstützenden Therapie von Interdigitalmykosen sowie adiuvanten antiseptischen Wundbehandlung. Kontraindikationen: Präparate auf Basis von Octenidin in Kombination mit Phenoxyethanol sollten nicht zu Spülungen in der Bauchhöhle (z. B. intraoperativ) und der Harnblase und nicht am Trommelfell angewendet werden. Sie sollen nicht bei Unverträglichkeit gegen einen der Wirkstoffe oder einen der sonstigen Bestandteile des Arzneimittels angewendet werden. Für Octenidin wurde die Kontraindikation „zur Anwendung bei Kindern unter 8 Jahren“ 2003 durch das BfArM gestrichen. Für Octenidin- oder Povidon-Iod-haltige Präparate sollten Okklusivanwendungen, z. B. in Verbindung mit Verbänden oder speziellen Wundauflagen, nur nach Herstellerempfehlung (mit Gutachten) durchgeführt werden. 3. 2 Wirkstoffe zur wiederholten Anwendung auf chronischen schlecht heilenden bzw. empfindlichen Wunden Zielsetzung ist die Unterbrechung des circulus vitiosus „Kolonisation – Infektion – Rekolonisation – Reinfektion - Wundheilungsverzögerung“. Das Therapieziel bei der Behandlung chronischer Wunden ist die Beseitigung lokaler oder systemischer die Wundheilung hemmender Faktoren. Neben der Behebung von Mangelzuständen wie Mangelernährung und Durchblutungsstörungen, der optimalen Behandlung der Grundkrankheit, der Abklärung einer möglichen wundheilungsstörenden Medikation, der Bekämpfung von Allgemeininfektionen oder Wundinfektionen und der Beseitigung von Nekrosen und Wundschorf durch Debridement zählt die Schaffung eines optimalen Wundmilieus zur Förderung der Wundheilung insbesondere durch wundstadienadäquate Wundauflagen zu den wichtigsten Therapieprinzipien. Falanga36 hat das Konzept der chirurgischen Wundbehandlung in einem Algorithmus, der die derzeit hierfür bekannten Gesichtspunkte umfassend berücksichtigt, zusammengefasst und jeden Teilbereich einer kritischen Wertung unterzogen. In der Plastischen Chirurgie kommt als Besonderheit hinzu, dass die Möglichkeit der Beurteilung der Wundoberfläche entscheidend für die Indikationsstellung einer u. U. erforderlichen operativen Intervention ist. Wegen des Risikos einer Narbenbildung mit Kontrakturentwicklung sind grundsätzlich bei länger dauernder konservativer antiseptischer Behandlung überschießende Granulationsprozesse unerwünscht. Polihexanid Die mikrobiozide Wirkung von Polihexanid tritt erreger- und konzentrationsabhängig vergleichsweise langsam ein (0,04%ig in vitro innerhalb von 5–20 min). Polihexanid ist nicht viruzid und sporozid wirksam. Die akanthamöbozide Wirkung wird bei der Therapie der Akanthamöbenkeratitis genutzt11,16,33,37,67. Auf Grund der guten Gewebeverträglichkeit, die ihre Ursache in der selektiven Wirkung gegenüber sauren Lipiden bakterieller Zellmembranen bei nur geringer Beeinflussung neutraler Lipide humaner Zellmembranen hat38, und der klinisch offensichtlichen Wundheilungsförderung ist Polihexanid als Mittel der 1. Wahl für schlecht heilende chronische bzw. für sehr empfindliche Wunden (z. B. Verbren- ZfW Nr.3/04 113 Konsensus nungswunden 2. Grades) sowie für Lavagen einzuordnen11,25,39-46. Kurzfristig ist auch die Anwendung von Povidon-Iod oder Octenidin vertretbar, z. B. auf Verbrennungswunden vor Transplantation oder auf Ulzera zur Anfangssanierung. Da im Vergleich zu Polihexanid die Wundheilung nicht gefördert wird, kann die weitere Sanierung mit Polihexanid-haltigen Zubereitungen fortgesetzt werden. Eine Aussage über die Resorption des Wirkstoffes Polihexanid und damit über die Risiken einer systemischen Aufnahme bei einer längerzeitigen Anwendung auf der Wunde kann derzeit nicht abschließend gemacht werden, da die bisher zur Verfügung stehenden Analysemethoden nicht ausreichend sensitiv sind (Erfassungsgröße > 10 ppm). Erste experimentelle Arbeiten sprechen für die Kompatibilität von Polihexanid mit verschiedenen Mitteln der modernen feuchten Wundbehandlung (insbesondere Alginate und Hydrofaser, –pers. Mitt. U.Brunner, G. Kammerlander, T. Eberlein, C. Putz, T. Nolte, H.-M. Seipp). Aufgrund der guten Verträglichkeit und des fehlenden irritativen Potentials ist eine Anwendung unter semiokklusiven oder okklusiven Abdeckungen möglich33. Auf Grund tierexperimenteller Befunde ist die Anwendung von Polihexanid zur Peritonealspülung wegen Unverträglichkeit analog wie für Iodophore beim derzeitigen Wissensstand als kontraindiziert anzusehen47. In gleicher Weise kommt Polihexanid wegen seiner Knorpeltoxizität nicht im für die Wundantiseptik üblichen Konzentrationsbereich von 0,04 und 0,02 % zur antiseptischen Gelenkspülung in Betracht30, wird jedoch 0,005 % bei noch ausreichend antiseptischer Effektivität in vitro von Knorpel toleriert103. In Deutschland und Österreich ist Polihexanid als arzneilicher Rohstoff zur Fertigung einer Gebrauchslösung für die Wundantiseptik erhältlich. In der Schweiz ist er als Konzentrat und als Gebrauchslösung registriert. Außerdem ist eine Wundspüllösung mit UndecylenamidpropylBetain als oberflächenaktive Substanz und Polihexanid (Kombinationspräparat) als 114 ZfW Nr. 3/04 „Konservierungsmittel“ zur Reinigung, Feuchthaltung und Keimausschwemmung von Wunden erhältlich, die als Medizinprodukt der Klasse II deklariert ist. Mit dem Einsatz eines Arzneiwirkstoffs in einer pharmakologisch wirksamen Konzentration in einem Medizinprodukt wird eine Entwicklung eingeleitet, die im Interesse der Patientensicherheit kritisch zu bewerten ist (Kramer et al., in Vorb.). Neuere Rezepturen (PolihexanidAugentropfen, Polihexanid-Augensalbe, Polihexanid-Nasenspray, PolihexanidGurgellösung) unterstreichen die wachsende Bedeutung dieser gut wirksamen verträglichen Substanz. Anwendungsgebiete gemäß Gebrauchsanweisung: Zur Reinigung und Dekontamination, zum Befeuchten und zum Feuchthalten von Wunden und Wundverbänden. Als Kontraindikationen für Polihexanid-Präparate gelten Allergien auf den Wirkstoff bzw. die Inhaltsstoffe der angewandten Zubereitungsform, Anwendung auf hyalinem Knorpel, im Bereich des ZNS, im Mittel- und Innenohr, im Innenauge, bei Retentionsgefahr und innerhalb der ersten vier Schwangerschaftsmonate. Im weiteren Schwangerschaftsverlauf, in der Stillperiode sowie bei Säuglingen und Kleinkindern soll die Anwendung nur bei zwingender Indikation erfolgen11. Polihexanid darf nicht in Kombination mit anionischen Tensiden und anderen wundreinigenden Seifen, Salben, Ölen, Enzymen u. ä. angewendet werden. Taurolidin Der Wirkstoff Taurolidin weist zwei Besonderheiten auf. Aufgrund des Wirkungsmechanismus einer langsamen Formaldehydabspaltung79 in vitro wird die erforderliche bakteriozide Wirksamkeit (Reduktionsfaktor >5 lg) erst nach Einwirkungszeiten zwischen 6 und 24 h entfaltet37. Dabei bleibt die Wirkung in Gegenwart von Eiweißen und Blut erhalten Zusätzlich zur antiseptischen Wirkung reagiert Taurolin unter Freisetzung der Methylolgruppen von Taurultam und Taurinamid mit der Bakterienzellwand (Mureine), den Lipopolysacchariden bakterieller Endotoxine und den Polypepti- den bakterieller Exotoxine. Tierexperimentell konnte gezeigt werden, dass die intraperitoneale oder systemische Gabe von Taurolidin sowohl die sepsisinduzierten Serumspiegel von TNF-alpha und Interleukin-1 senkt als auch die Überlebensrate nach Peritonitisinduktion signifikant erhöht77,78,79,80,82. Daher wirkt Taurolin in vivo besser als in vitro97. Sofern die für die Wirkungsentfaltung benötigte Einwirkungszeit von Taurolidin (> 6 h) gewährleistet ist, steht der Anwendung dieses Wirkstoffs aus toxikologischen Gründen nichts im Weg, da toxische Wirkungen einer Behandlung mit Taurolin als 2 %ige Lösung nicht beschrieben sind. Allerdings ist die Schmerzauslösung zu beachten. Auf Grund fehlender Zytotoxizität25 kommt Taurolin zur antiseptischen Spülung von Körperhöhlen in Betracht, z. B. zur kontinuierlichen SpülSaug-Drainage der lavagebedürftigen Peritonitis, als Monotherapie oder in Kombination mit systemischen antimikrobiellen Chemotherapeutika. Taurolidin wird aufgrund der geringen Molekülgröße rasch resorbiert, woraus eine Wirksamkeit auch in der tela subserosa resultiert. Toxikologisch ergeben sich daraus keine Konsequenzen. 4.Weitere Wirkstoffe und Methoden Zusätzlich zu den vorher beschriebenen Maßnahmen werden bei Problempatienten (z.B. im nicht operationsfähigen Zustand) ergänzende Maßnahmen benötigt, auf die hier nur in tabellarischer Form verwiesen wird (Tab.1). In diesem Zusammenhang zeichnet sich die Madentherapie (auch als Biochirurgie bezeichnet) als neuer Hoffnungsträger für Problemlösungen im Gesamtkonzept der chirurgischen Wundbehandlung ab53. Etwa 80 % derartig behandelter chronischer Wunden wurden innerhalb einer Woche komplett debridiert, ohne das gesundes Gewebe in Mitleidenschaft gezogen wird84,87. Die Madentherapie war konventionellen Behandlungsverfahren signifikant überlegen und wird von den Patienten in der Regel ohne Abscheu Konsensus Tabelle 1 Weitere geeignete Möglichkeiten zur Therapie kolonisierter bzw. infizierter Wunden. Wirkdauer pro Einzelapplikation/Nebenwirkungen Mittel / Methode Minuten bis Stunden Stunden bis 1Tag Stunden bis Tage (1-7 Tage) X (je nach Produkt - unterschiedlich lange Wirksamkeit) Silberhaltige Wundauflagen48,50 Spezielles zur lokalen Infektionsbehandlung Vakuumversiegelung mit Polyurethanschaumstoff51 X (vom Hersteller empfohlener täglicher Wechsel bei Wundinfektion) Vakuumversiegelung mit Polyvinylalkoholschaumstoff51 X Fliegenlarven83,84,88 X (1-4 Tage) (evt. kombiniert mit Lavage) (Lucilia sericata) angenommen85,86. Obwohl die Madentherapie von den meisten Patienten gut toleriert wurde, ist über eine zeitweilige Schmerzhaftigkeit während der Anwendung berichtet worden, die in Einzelfällen eine analgetische Behandlung erforderlich machte84. Im direkten Vergleich mit Hydrogelen waren die Therapiekosten der Madentherapie auf Grund beschleunigter Wundheilung, geringeren Materialaufwands und reduzierten Antibiotikaverbrauchs signifikant geringer89. Die Maden bewirken nicht nur ein effektives Debridement, sondern führen in vitro zu einer Keimzahlverminderung um bis zu 5 lg-Stufen (Daeschlein et al., in Vorb.). Die Ursache hierfür dürfte nicht nur die direkte Ingestion der Mikroorganismen sein92. Durch die Lebenstätigkeit der Maden kommt es bei Haltung auf Blutagar zu einer Thiocyanatabgabe, wodurch dessen Gehalt im Agar auf das 2–10fache ansteigt90. In Verbindung mit den Peroxidasesystemen ist damit die Bildung von Hypothiocyanit zu postulieren, einer mikrobiozid hoch wirksamen Verbindung, die u.a. für die Regulation der Mundhöhlenflora maßgeblich ist91. Zusätzlich wurde eine antibiotisch wirksame Substanz in Madenextrakten nachgewiesen93. In Übereinstimmung zu diesen in vitro Befunden konnten mit der Madenthera- pie MRSA-Wundinfektionen erfolgreich behandelt werden94,95. Als weitere Wirkung ist durch Präparationen von Haemolymphe und alimentären Sekreten der Madenlarven eine Stimulierung von Fibroblasten nachweisbar, die 12 % des Ausmaßes der durch epidermalen Wachstumsfaktor induziertern Stimulation erreichte96. 5. Obsolete oder entbehrliche Wirkstoffe Darunter müssen alle Substanzen und Substanzgemische genannt werden, die aus Gründen unsicherer Wirksamkeit, kritischer Zytotoxizität, Irritations- und Allergiepotential, Schmerzinduktion, Resistenzentwicklung und/oder resorptiver Risiken nicht bzw. nicht mehr empfehlenswert für die Anwendung sind bzw. für die der Wirkungsnachweis fehlt. Lokalantibiotika Hierunter werden Antibiotika verstanden, die auf Grund fehlender Resorption und/oder ihrer systemischen Toxizität nur lokal anwendbar sind, z. B. Neomycin, Kanamycin, Mupirocin. Die wesentlichen Gründe, die grundsätzlich eine strikte Ablehnung der lokalen Antibiotikaapplikation an Wunden begründen, sind: • das zu schmale Wirkungspektrum und die unzureichende, im wesentlich nur mikrobiostatische Wirksamkeit der angewendeten Substanzen, die in jüngerer Zeit auch bei Anwendung in der Nasenhöhle zur Sanierung bei MRSAKolonisation deutlich wurde54. • das hohe Risiko der Auslösung von mikrobiellen Resistenzen einschließlich Kreuzresistenzen zu systemisch eingesetzten Antibiotika. • ungenügende oder fehlende Wirksamkeit bei mehrfach resistenten Erregern (z. B. MRSA). • keine remanente Wirksamkeit (z. B. auf Grund lokaler Metabolisierung). • ungenügende Konzentration am Wirkort. • zytotoxisches Potential bei längerfristiger, oft bereits schon bei kurzfristiger Anwendung31. • ausgeprägtes Allergiepotential55. Antimikrobielle Chemotherapeutika Die lokale Anwendung systemischer Antiinfektiva ist in erster Linie wegen des Risikos der mikrobiellen Resistenzentwicklung kontraindiziert56. In jedem Fall muss bei der Therapie von Wundinfektionen ebenso wie bei prophylaktischer Zielsetzung sorgfältig abgewogen werden, ob die Infektion mit hoher Wahrscheinlichkeit durch lokale Applikation prinzipiell geeigneter Wirkstoffe beherrschbar ist oder ob eine adiuvante systemische Anwendung von Antiinfektiva erforderlich ist. Sofern ersteres zutrifft, ist die Anwendung von Antiseptika unter folgenden Voraussetzungen der lokalen Anwendung von systemischen Antiinfektiva bzw. auch von sog. Lokalantibiotika überlegen: • Für Antiseptika mit mikrobiozider Wirkung (z. B. Iodophore, Octenidin, Polihexanid) ist ein Wirkungsvorteil gegenüber den lediglich mikrobiostatisch wirksamen lokalen Antibiotika gegeben. Ein Beispiel hierfür ist das Versagen einer Reihe von Antibiotika zur Sanierung einer MRSA-Kontamination in der Nase54 einschließlich der langen Sanierungsdauer und dem Rekolonisierungsrisiko bei Anwendung von Mupirocin57 ZfW Nr.3/04 115 Konsensus Tabelle 2 Merkmale obsoleter oder entbehrlicher Wirkstoffe zur Wundantiseptik. Wirkstoff Vorteile 8-Chinolinol keine Nachteile Eignung zur Wundantiseptik unzureichend wirksam, mutagen entbehrlich neurotoxisch, allergen, tierexp. carcinogen Chloramin T breites Wirkungsspektr. Schmerzinduktion auf Ulzera, beim derzeitigen Wissensstand keine keine system. Risiken schwach allergen schlüssige Nutzen-Risiko-Bewertung möglich vergleichsweise gering zytotoxisch, Chlorhexidin Remanenz Wirkungsschwächen, zytotoxisch, entbehrlich, keine Anwendung in mutagen, reversible prämaligne Peritonealhöhle Alterationen in der Mundhöhle/Ratte, Anaphylaxie, neurotoxisch, Resorption? Ethanol 10%ig Förderung der 70%ig Brennen Wundheilung in vitro 10%ig als Kombinationspartner für Antiseptika geeignet, 70-80 %ig bei nicht vorhandenen Alternativen (z.B. aufReisen) auch als Monowirkstoff anwendbar Ethacridinlactat keine Allergen, Wundheilungshemmung, obsolet in vitro mutagen, im Vergleich zu modernen Antiseptika deutlich toxischer (sc LD50 etwa 1/20 von PVP-Iod), unzureichend wirksam, Resistenzentwicklung, instabil unter Lichteinwirkung Farbstoffe keine unzureichend wirksam, lokal unverträglich, Nitrofural keine unzureichend wirksam, mutagen, allergen, obsolet z. T. systemische Risiken entbehrlich induzierte benigne Tumoren, Resorption aus Wunden, Resistenzentwicklung möglich organische keine erregerabhängig z. T. unwirksam, Quecksilberverbindungen obsolet systemische Nebenwirkungen, Sensibiliseirung, Umweltbelastung Quats keine unzureichend wirksam, zytotoxisch, resorptive entbehrlich Risiken, Resistenzentwicklung möglich Silbersulfadiazin vorübergehend In vitro unzureichend mikrobiozid wirksam, angenehm kühlend Resistenzentwicklung, zytotoxisch, entbehrlich systemische Risiken, allergen, Bildung störenden Eiweiß-Wundsekret-Komplexes (Schorf) Wasserstoffperoxid 3 % Reinigung intakter Haut unzureichend wirksam, Inaktivierung durch z.B. von Blutresten Blut, zytotoxisch entbehrlich durch O2-Bildung im Gegensatz zur raschen Effektivität von Iodophoren in diesem Anwendungsbereich, die bisher allerdings nur für MSSA nachgewiesen wurde40. • Mit der mikrobioziden Wirkung ist das Fehlen einer bakteriellen Resistenzent- 116 ZfW Nr. 3/04 wicklung gegen Antiseptika ein wesentlicher Vorzug. • Bei richtiger Wirkstoffauswahl sind Antiseptika weniger zytotoxisch als Antibiotika31. • Durch die lokale Applikation werden antiseptisch wirksame Gewebespiegel gewährleistet, ohne dass im übrigen Organismus eine antimikrobiell wirksame Konzentration erreicht wird. Dadurch reduziert sich das Risiko systemischer Nebenwirkungen, wie sie für Konsensus eine Reihe systemischer Antiinfektiva bekannt sind. • Im Unterschied zu den Antibiotika stehen bei modernen Wundantiseptika aufgrund ihrer Struktur Wirkstoffe ohne allergene Risiken zur Verfügung. Antiseptika Die in Tabelle 2 aufgelisteten Antiseptika sind aus verschiedenen Gründen (Wirksamkeit, Verträglichkeit) entweder generell abzulehnen in der Anwendung besonderen Situationen vorbehalten 1,2,5,11,15,16,25,58-60,99,100 oder es ist eine abschließende Nutzen-Risiko-Rechnung noch nicht möglich. Chloramin T (Tosylchloramidnatrium, N-Chlor-4-methylbenzensulfonamidNatrium) ist ein Halogenabspalter, der bakteriozid, ab 0,5–1 % viruzid und ab 5 % fungistatisch v. a. gegen Dermatophyten wirkt, dagegen keine Sporozidie aufweist99,104. Die Wirksamkeit kann durch Zugabe von Milch- und Zitronensäure gesteigert werden. Die hohe antimikrobielle Wirkung beruht auf der Hemmung der bakteriellen Proteinsynthese durch Chlor und Sauerstoffradikale104,107. Überraschenderweise bleibt die Wirkung in Gegenwart von 4,5 % Serumalbumin, 4,5 % Blut und 1 % Muzin, geprüft im quantitativen Suspensionstest, erhalten, d. h. in vitro tritt bei 1 % Anwendungskonzentration und 15 min Einwirkungszeit nicht der erwartete Wirkungsverlust ein105. Die Verträglichkeit ist für Schleimhaut und Peritoneum als gut einzuschätzen und übertrifft Octenidin und Chlorhexidin in vitro sowohl im Modell für chronische Wunden25 (zerteiltes Peritoneum der neonaten Ratte) als auch im Modell zur Körperhöhlenspülung25 (intaktes Peritoneum). Nach 1 und 10 min Exposition auf intaktem Peritoneum wies Chloramin T 0,1 % keinen signifikanten Unterschied in der Wachstumsrate im Vergleich zur Ringer-Lösung auf (Kramer et al., in Vorb.). Im Modell für chronische Wunden ergab sich für 0,02%ige Chloramin-T-Lösung im Vergleich zu Ringerlösung bei 1 min bzw. 5 min eine Wachstumsrate von 60%, was zwar signifikant geringer war als bei 0,2 % Lavasept, aber signifikant höher als bei Chlorhexidin- und Octenidin-basierten Präparaten5. Auf Grund dieser Ergebnisse erfährt die klinische Anwendung zur Peritoneallavage104 unter Verträglichkeitsaspekten ihre Bestätigung. Bei Anwendung auf infizierten Ulcera cruris war allerdings Chloramin T 1% auf Grund stärkerer Schmerzinduktion und geringerer Gewebeverträglichkeit N-Chlortaurin signifikant unterlegen106. Ob die Bildung von Chlorüberzügen durch fixierte N-Cl-Bindungen an der obersten Hornhautschicht107 auch für Wunden relevant ist, wurde bisher nicht untersucht. Systemische toxische Reaktionen sind nicht bekannt99,104,107. Eine dermale Resorption ist im pH-Bereich 7–9 nicht zu befürchten107. Für die Resorption aus Wunden konnte keine Studie recherchiert werden. Chloramin T ist als schwach allergen einzustufen. Mutagenität kann nicht sicher ausgeschlossen werden99. Zusätzlich scheint Chloramin T eine tumorzellzerstörende Wirkung zu haben104. Silbersulfadiazin, ein Komplex aus Silber und Sulfadiazin, einem Sulfonamid, wird z. T. noch zur Behandlung von Verbrennungswunden vor operativer Nekroseabtragung angewendet. Da die NutzenRisiko-Relation zunehmend kritischer gesehen wird, erscheint eine ausführlichere Einschätzung angebracht. Es ist davon auszugehen, dass bei mikrobiostatisch wirkenden Mitteln wie Silbersulfadiazin nur bei niedrigen Keimbelastungen (< 105 KbE/g Gewebe) eine Wirksamkeit erwartet werden kann. Die Zytotoxizität59,60 dieses Wirkstoffs dürfte die Ursache der Verzögerung der epidermalen Regeneration in Verbindung mit passageren Zeichen einer Dermatitis-ähnlichen Reaktion mit Spongiose, Parakeratose und Pseudokarzinomatose58 sein. Auf Wundoberflächen bildet sich ein schwer löslicher Salbe/Eiweiß-Komplex, der bei Verbrennungswunden eine optische Wundbeurteilung unmöglich macht. Dadurch ist die Verbrennungstiefe visuell nicht mehr erfassbar. Der Schorf bleibt für längere Zeit fest mit der Wundfläche verbacken und verursacht gerade bei kritischen zweitgradigen Verbrennungen häufig eine zu späte Indikationsstellung für die ggf. erforderliche operative Versorgung, was in der Folge entweder Narben hinterlässt oder bedingt durch Exzision einen höheren Verlust von noch vitalem Gewebe einschließlich eines höheren Blutverlustes verursacht. Außerdem entsteht bei längerer Anwendung unter den Schorfrändern eine Mazeration mit Besiedlung dieser Wundareale durch hoch resistente sog. Nasskeime wie P.aeruginosa, die oft schwer beherrschbar sind. Als Konsequenz muss häufiger operativ interveniert werden, um schwerwiegende Defektheilungen sowie ggf. eine Generalisierung der Infektion zu verhindern. Diese Situation wird immer wieder bei Sekundärzuweisungen von Brandverletzten mit länger als 5 d bestehender Vorbehandlung unter Silbersulfadiazin beobachtet (Eisenbeiß, pers. Mitt.). Grundsätzlich ist gerade im Bereich der Behandlung von Problemwunden wie beispielsweise bei Brandverletzungen eine eher kurzfristige Vorbehandlungsphase sinnvoll, unter der das Wundareal nach Debridement lokal einerseits antiseptisch behandelt sein sollte, aber jederzeit beurteilungsfähig bleiben muss. Daher ist der Einsatz von Silbersulfadiazin behandlungstaktisch für den Heilungsverlauf eher von protrahierendem Charakter und mangels Beurteilungsfähigkeit von Veränderungen im Wundareal unerwünscht. Diese Form der Lokalbehandlung bedingt zusätzlich oft eine unnötig höhere Belastung von Patienten und Personal durch häufigere Verbandwechsel und der z. T. schmerzhaften Ablösung als beispielsweise die Anwendung von Lavasept-Fettgaze (Eisenbeiß, pers. Mitt.). Als systemische Nebenwirkungen wurden passagere Leukopenien, die speziell bei Patienten mit Immunabwehrschwäche unerwünscht sind, und selten Exantheme beobachtet1. Bei Anwendung auf Brandwunden wurden Silberkonzentrationen im Blut bis 440 µg/l und im Urin bis 12 µg/l bestimmt, die toxikologisch und allergologisch relevant werden können (Leber, Niere, ZNS)71. Als Konsequenz wird bei Anwendung dieses Wirkstoffs ein Monitoring der Silberresorption im Blut und/oder Urin empfohlen71. Bei Patienten mit Sulfonamid-Überempfindlichkeit und Niereninsuffizienz verbietet sich die Anwendung von Silbersulfadiazin. ZfW Nr.3/04 117 Konsensus Beim Einsatz von Silbersulfadiazin ist ferner zu berücksichtigen, dass neben der Möglichkeit einer Resistenzentwicklung gegen Silberionen eine Kreuzresistenz gegenüber systemisch angewandten Sulfonamiden auftreten kann98. Als Fazit ergibt sich die Schlussfolgerung, dass die Anwendung von Silbersulfadiazin zumindest bei Verbrennungen entbehrlich ist, da es bessere Alternativen gibt. Auch bei Anwendung von Silbernitrat auf chronischen Wunden vor Deckung mit Spalthauttransplantaten wurden im Unterschied zur Wundvorbereitung mit Polihexanid tiefreichende Nekrosen mit einem flächenhaft ausgebildeten Ödem des Koriums bzw. des Fettgewebes sowie Fibrinaustritte induziert. Im oberflächlich abgeschiedenen Fibrin war eine leichte Infiltration durch Rundzellen und Granulozyten erkennbar. Die tiefen Gefäße zeigten eine Endothelzellschwellung, eine Leukostase und eine leukozytoklastische Durchwanderung der Gefäßwände, die Ausdruck einer toxischen Substanzreaktion sein dürfte. Die unmittelbar an der Oberfläche gelegene Schicht bestand praktisch nur noch aus einer Nekrosezone mit granulozytärer Infiltration70. Abschließend ergibt sich beim gegenwärtigen Wissenstand die Schlussfolgerung, dass die Empfehlungen zwar die Grundlage für eine Entscheidungshilfe bieten, aber keinen Anspruch auf vollständige Darstellung aller für die Entscheidungsfindung relevanten wissenschaftlichen Daten erheben können. 5. Kramer A, Bergemann R, Bruck J, Kammerlander G, Metelmann HR, Roth B, Rudolph P (1999): Indikationen und Auswahlkriterien für lokale Wundantiinfektiva und Wundauflagen im Rahmen der chirurgischen Wundbehandlung. Loseblattsammlung Hygiene in Krankenhaus und Praxis ,1999; I–20.5, ecomed Landsberg, p 1–16. 6. Daróczy J (2002): Antiseptic efficacy of local disinfecting povidone-iodine (Betadine®) therapy in chronic wounds of lymphedematous patients. Dermatology, 2002; 204, supp 1: 75–78. 7. Görtz G, Reimer K, Neef H: Entwicklung, Eigenschaften und Bedeutung von PVP-Iod. In: Topische Infektionstherapie und Prophylaxe, 1996: 3–7. 8. Mlangeni D, Daschner F: Povidine-iodine: Evaluation of povidone-iodine as an antiseptic. Antiinfective Drugs Chemother 1995; 13, 3:161–167. 9. Michel D, Zäch GA, von Arx P, Geng V: Wachstumshemmende Wirksamkeit von Antiseptika im Suspensionstest in vitro auf Methicillin-resistente Staphylococcus aureus-Stämme (MRSA), Pseudomonas aeruginosa und Escherichia coli. In: Topische Infektionstherapie und Prophylaxe 1996: 9–12. 10. Kramer A, Behrens-Baumann W: Prophylactic use of topical anti-infectives in ophthalmology. Ophthalmologica 1997; 211, Supp 1:68–76 26. Neef H, Meyer M, Fischbeck O: Erfahrungen in der therapeutischen und prophylaktischen Anwendung von PVP-Iod im Thoraxbereich. In: Topische Infektionstherapie und Prophylaxe 1996: 51–56. 28. European Tissue Repair Society: Iodine revisited. ETRS Bull 1997; 4 (1): 2–5. 13. Esanu V, Profeta A: Antiviral Antiseptics. In: Kramer A, Krasilnikow AP, Weuffen W, Berencsi G, Gröschel D, Kemter BP (Hrsg) Handbuch der Antiseptik, Bd. II/3, Antibakterielle, antifungielle und antivirale Antiseptik – ausgewählte Wirkstoffe (Hrsg. Kramer A, Weuffen W, Krasilnikow AP, Gröschel D, Bulka E, Rehn D), Fischer, Stuttgart, New York 1987 ; 98–122- 29. Görtz G: PVP-Iod zur Prophylaxe und Therapie von Infektionen in der Allgemein- und Viszeralchirurgie. In: Topische Infektionstherapie und Prophylaxe 1996: 61–68. 14. Wutzler P, Sauerbrei A, Klöcking R, Straube E, Schacke M, Thust R, Fleischer W, Reimer K: Virucidal and chlamydicidal activities of povidone-iodine liposome complex. Ophthalmic Res 2000; 32: 118–125. 15. Kramer A, Rudolph P, Pitten FA, BehrensBaumann W, Reimer K, Glück U: Antiseptika im Kampf mit den Keimen. Pharm Ztg 2000; 145, 2:11–19. 16. Werner HP: Die mikrobizide Wirksamkeit ausgewählter Antiseptika. Hyg Med 1992; 17, 2:51–59. 18. Hierholzer G, Görtz G: PVP-Jod in der operativen Medizin. Grundlagen, klinische Anwendung und Ergebnisse. In: PVP-Jod in der operativen Medizin 1984: S.280. 2. Kramer A, Wendt M, Werner HP: Möglichkeiten und Perspektiven der klinischen Antiseptik. mhp Wiesbaden, 1995. 19. Müller G, Kramer A (2003): In vitro action of combinations of selected antimicrobial agents and adult bovine articular cartilage (sesamoid bone). Chem-Biol Interactions 2003; 45: 331–336. ZfW Nr. 3/04 25. Kramer A, Adrian V, Rudolph P, Wurster S, Lippert H: Explantationstest mit Haut und Peritoneum der neonatalen Ratte als Voraussagetest zur Verträglichkeit lokaler Antiinfektiva für Wunden und Körperhöhlen. Chirurg 1998; 69, 8:840–845. 12. Gershenfeld L: Povidone-iodine as a sporicide. Am J Pharm 1962; 134: 78–81. 1. Kramer A, Heeg P, Harke HP, Rudolph H, Koch S, Jülich WD, Hingst V, Merka V, Lippert H: Wundantiseptik 1993. In: Klinische Antiseptik: p 163–191. 118 24. Kramer A, Adrian V, Rudolph P, Kühl H: In-Vitro-Prüfung der Verträglichkeit ausgewählter antiseptischer Wirkstoffe bzw. Präparate. In: Kramer A, Wendt M, Werner HP (Hrsg) Möglichkeiten und Perspektiven der Klinischen Antiseptik. mhp-Verlag, Wiesbaden 1995: 41–48. 27. Stobernack A, Achatzy R: Behandlungskonzepte zur Infektionsvermeidung und Therapie infektiöser Komplikationen in der Thorax- und Gefäßchirurgie. In: Topische Infektionstherapie und Prophylaxe 1996: 57–59. Literatur 4. Dräger E, Winter H: Surgical debridement versus enzymatic debridement. In: Baharestani M, Goltrup F, Holstein P, Vansceidt W (eds) The clinical relevance of debridement. Springer, Berlin Heidelberg, 1999. 23. Kramer A, Adrian V: Antiseptika als Alternative zu systemischen Antiinfektiva mit Ergebnissen zur Gewebeverträglichkeit im Explantationstest als einem weiterentwickelten In-vitroPrüfmodell. In: Hierholzer G, Reimer K, Weissenbacher ER (Hrsg) Topische Infektionstherapie und Prophylaxe, Thieme, Stuttgart – New York 1996, 19–23. 11. Kramer A: Antiseptika und Händedesinfektionsmittel. In: Korting HC, Sterry W (Hrsg) Therapeutische Verfahren in der Dermatologie Blackwell Wissenschaft Berlin 2001; 273–294. 17. Pitten FA, Werner HP, Kramer A: A standardized test to assess the impact of different organic challenges on the antimicrobial activity of antiseptics. J Hosp Inf, im Druck 3. Baharestani M: The clinical relevance of debridement In: Baharestani M, Goltrup F, Holstein P, Vanscheidt W (eds) The clinical relevance of debridement. Springer, Berlin Heidelberg, 1999. 22. Kramer A, Adrian V, Adam C: Vergleich der Toxizität von Lavasept und ausgewählten Antiseptika. Hyg Med 1993; 18, 1:9–16. 20. König B, König W, Reimer K: Jod – die Stellung eines alten Desinfektionsmittels in der modernen Infektiologie. Dtsch Med Wochenschr 1997; 122, 5:141. 21. König B, Reimer K, Fleischer W, König W: Effects of Betaisodona on parameters of host defense. Dermatology 1997; 195, supp 2:42–48. 30. Ganzer D, Völker L, Follak N, Wolf E, Granzow H: Reaktion des hyalinen Gelenkknorpels und der Synovialis auf eine intraartikuläre Instillation von verschiedenen Antiinfektiva. Arthroskopie 2001; 14: 31-44. 31. Kramer A, Below H, Behrens-Baumann W, Müller G, Rudolph P, Reimer K: New aspects of the tolerance of the antiseptic povidone-iodine in differnet ex vivo models. Dermatology 2002; 204, supp 1:86–91. 32. Reimer K, Vogt PM, Brögmann B, Hauser J, Roßbach O, Kramer A, Rudoph P, Bosse B, Schreier H, Fleischer W: An innovative topical drug formulation for wound healing and infection treatment: in vitro and in vivo investigations of a povidone iodine liposome hydrogel. Dermatology 2000; 201: 235–241. 33. Bruck JC, Koch S, Kramer A: Klinische und histologische Untersuchungen zur Wirksamkeit von Lavasept auf granulierenden bzw. epithelisierenden Wunden. Hyg Med Suppl. 2000; 1: 46. 34. Harke HP, Streek M: Octenidin - ein neuer antimikrobieller Wirkstoff. Hyg Med 1989; 14: 372–374. 35. Schülke & Mayr GmbH: Adjuvante und unterstützende Wundversorgung mit Octenisept®. Firmenschrift 1086/I/5.0/5/97/vDuN. 36. Falanga V: Classifications for wound bed preparation and stimulation of chronic wounds. Wound Repair Regen 2000; 8: 347–350. 37. Skripitz R, Werner HP: Bakterizide Langzeitwirkung ausgewählter Antiseptika. Hyg Med 1994; 19, 4: 199–204. Konsensus 38. Ikeda T, Tazuki S, Watanabe M: Interaction of biologically active molecules with phospholipid membranes. 1. Fluorescence depolarization studies on the effect of polymeric biocide bearing biguanide groups in the main chain. Biochem Biophys Acta 1983; 735: 380–386. 39. Kallenberger A, Kallenberger C, Willenegger H: Experimentelle Untersuchungen zur Gewebeverträglichkeit von Antiseptika. Hyg Med 1991; 16, 10:383–395. 40. Kramer A, Glück U, Heeg P, Werner HP: Antiseptik. In: Krankenhaus- und Praxishygiene 2001: 252-268. 41. Sellmer W: Lokaltherapeutika, speziell Antiseptika, in der Behandlung chronischer Wunden – eine aktuelle Bewertung. Med Praxis 2001; 2: 20–30. 42. Roth B, Müller J, Willenegger H: Intraoperative Wundspülung mit einem neuartigen lokalen Antiseptikum. Helv Chir Acta 1985; 52: 61–65. 43. Willenegger H: Lokale Antiseptika in der Chirurgie – eine Wiedergeburt? Unfallchir 1995; 20: 94–110. 44. Willenegger H: Klinische Erfahrungen mit einem neuen Antiinfektivum. Arbeitstagungen Liesetal 1992 und 1993. Hyg Med 1994; 19, 4: 227–233. 45. Kramer A, Willenegger H: Editorial. Perioperative Antibiotikaprophylaxe – dominierende Möglichkeit zu Infektionsprophylaxe bei chirurgischen Eingriffen? Hyg Med 1994; 19, 4: 180–182. 46. Schmit-Neuerburg KP, Bettag Ch, Schlickewei W, Fabry W, Hanke J, Renzing-Köhler K, Hirche H, Kock H-J: Wirksamkeit eines neuartigen Antisepticum in der Behandlung kontaminierter Weichteilwunden. Chirurg 2001; 72: 61–71. 47. Berg A: Einfluss der peritonealen Spülung mit dem Antiinfektivum Polihexanid/Lavasept‚ auf die experimentell induzierte Peritonitis beim Meerschweinchen. Diss Med Fak Univ Greifswald 2000. 48. Furr JR, Russel AD, Turner TD, Adrews A: Antibacterial activity of Actisorb Plus, Actisorb and SILVER nitrate. J Hosp Infect 1994; 27: 201–208. 49. Rudolph P, Werner HP, Kramer A: Untersuchungen zur Mikrobizidie von Wundauflagen Hyg Med 2000; 25: 184–186. 50. Müller G, Winkler Y, Kramer A: Antibacterial activity and endotoxin-binding capacity of Actisorb® Silver 220. J Hosp Inf 2003; 53: 211–214. 51. Lippert H (Hrsg), Kramer A, Piatek S, Schulz HU, Tautenhahn J (Mitarb): Wundatlas: Wunde, Wundbehandlung und Wundheilung. Barth, Heidelberg 2001. 52. Gallenkemper G: Biochirurgie in der Behandlung von Problemwunden Teil 1 und 2. ZfW 1999; Nr. 10/2 6–10 und 38–40. 53. Fleischmann W, Russ M, Moch D, Marquardt C: Biochirurgie – Sind Fliegenmaden wirklich die bessere Chirurgie. Chirurg 1999; 70:1340–1346. 54. Hingst V, Vergetis W: Antiseptische Sanierung von Staphylococcus aureus-Keimträgern in der Nase. In: Kramer A, Gröschel D, Heeg P, Hingst V, Lippert H, Rotter M, Weuffen W (Hrsg) Klinische Antiseptik. Springer, Berlin Heidelberg New York 1993, 233–245. 55. Kimura M, Kawada A: Contact sensitivityinduced by neomycin with cross-sensitivity to other aminoglycoside antibiotics. Contact Dermatitis 1998; 39: 148–15015. 56. Lyon BR, Skurray R: Antimicrobial resistance of staphylococcus aureus: genetic basis. Microbiol Rev 1987; 51, 1:88–134. 57. Zastrow KD, Kramer A: Recommendations for Isolation and Antiseptic Sanitation of Patients with MRSA Colonisation or Infection. In: Kramer A, Behrens-Baumann W (eds): Antiseptic Prophylaxis and Therapy of Ocular Infections Karger, Basel 2001, 250–262. 58. Hoekstra MJ, Hupkens P, Dutrieux RP, Bosch MM, Brans TA, Kreis RW: A comparative burn wound model in the New Yorkshire pig for the histopathological evaluation of local therapeutic regimens: silver sulfadiazine cream as a standard. Br J Plast Surg 1993; 46, 7:585–589. 59. Zapata-Sirvent RL, Hansbrough JF: Cytotoxicity to human leukocytes by topical antimicrobial agents used for burn care. J Burn Care Rehabil 1993; 14: 132–140. 60. McCauley RL, Li YY, Chopra V, Herndon DN, Robson MC: Cytoprotection of human dermal fibroblasts against silver sulfadiazine using recombinant growth factors. J Surg 1994; 56: 378–384. 61. Görtz G: PVP-Iod zur Prophylaxe und Therapie von Infektionen in der Allgemein- und Viszeralchirurgie. In: Hierholzer G, Reimer K, Weissenbacher ER (Hrsg) Topische Infektionstherapie und Prophylaxe. Thieme, Stuttgart New York 1996, 61–68. 62. Kramer A: Replik zum Artikel "Aktuelles Präparatespektrum und Anwendungsempfehlungen für die Wundantiseptik" im Hygiene Monitor 8/99. Hygiene Monitor Jahrgang 1999; 5: 12/99. 63. Grassberger M: Wundbehandlung mit Fliegenlarven Teil 1 und Teil 2. Hygiene Monitor Jahrgang 8: 11/2002 und 12/2002. 64. Behrens-Baumann W, Kramer A: Pre-, Intraand Postoperative Antisepsis in Eye Surgery. In: Kramer A, Behrens-Baumann W (eds) Antiseptic Prophylaxis and Therapy in Ocular Infections. Karger, Basel 2002, 212–222. 65. www.octenisept.Schuelke-Mayr.de 66. Werner HP, Kramer A: Mikrobiologische Anforderungen an lokale Antiinfektiva unter spezieller Berücksichtigung der antiinfektiven Wundbehandlung. In: Kramer A, Wendt M, Werner HP (Hrsg) Möglichkeiten und Perspektiven der klinischen Antiseptik. mhp, Wiesbaden 1995, 26–30. 67. Kramer A, Rudolph P: Efficacy and Tolerance of Selected Antiseptic Substances in Respect of Suitability for Use on the Eye. In: Kramer A, Behrens-Baumann W (eds) Antiseptic Prophylaxis and Therapy in Ocular Infections. Karger, Basel 2002, 117–144. 68. Harke HP: Moderne Schleimhautantiseptika – Octenidindihydrochlorid. Vorgestellt auf dem 2. Ulmer Hygiene-Symposium 1997. 69. Tompkins RG, Burke JF: Infections of Burn Wounds. In: Bennet JV, Brachman PS (eds) Hospital Infections. 3th ed, Little Bronm Boston 1992: 711–730. 70. Bruck JC, Koch S, Kramer A: Klinische Untersuchungen zur Wirksamkeit von Lavasept auf granulierendem bzw. epithelisierenden Wunden. Hyg Med 1998; 23, supp 2:46. 73. Binder C, de Kaspar HM, Engelbert M, Klaus V, Kampik A: Bakterielle Keimbesiedelung der Konjunktiva mit Propionibacterium acnes vor und nach Polyvidon-Jod-Applikation vor intraokularen Eingriffen. Ophthalmologe 1989; 95:438–441. 74. Binder C, de Kaspar HM, Klaus V, Kampik A: Präoperative Infektionsprophylaxe mit 1%iger Polyvidon-Jod-Lösung am Beispiel von konjunktivalen Staphylokokken. Ophthalmologe 1999; 96:66663–557. 75. German-Austrian recommendation for post-exposure prophylaxis of HIV infection: AWMF-online Leitlinie 1999. www.AWMF/II/aids004e.htm 76. Görtz G: Intraoperative Spülung mit antiseptischen Lösungen. In: Infektionsverhütung in der Chirurgie 1991: 291–303. 77. Bedrosian I, Sofia RD, Wolff SM, Dinarello CA: Taurolidine, an analogue of the amino acid taurine, suppresses interleukin 1 and tumor necrosis factor synthesis in human peripheral blood mononuclear cells. Cytokine 1991; 3: 568–57. 78. Billing A, Frohlich D, Ruckdeschel G: Der Einfluss von Taurolin auf die körpereigene Abwehr und die Keimelimination bei der menschlichen Peritonitis. Langenbecks Arch Chir 1992; 377: 180–185. 79. Reding R, Pfirrman RW: Taurolidine peritoneal lavage as prophylaxis against infection after elective colorectal surgery [letter; comment]. Br J Surg 1995; 82: 569. 80. Rosman C, Westerveld GJ, van Oeveren W, Kooi K, Bleichrodt RP: Effect of intraperitoneal antimicrobials on the concentration of bacteria, endotoxin, and tumor necrosis factor in abdominal fluid and plasma in rats. Eur Surg Res 1996; 28: 351–360. 81. Traub WH, Leonhard B, Bauer D: Taurolidine: in vitro activity against multiple-antibioticresistant, nosocomially significant clinical isolates of Staphylococcus aureus, Enterococcus faecium, and diverse Enterobacteriaceae. Chemother 1993; 39: 322–330. 82. Willatts SM, Radford S, Leitermann M: Effect of the antiendotoxic agent, taurolidine, in the treatment of sepsis syndrome: a placebocontrolled, double-blind trial. Crit Care Med 1995; 23: 1033–1039. 83. Mumcuoglu K, Ingber A, Gilead L, Stessman J, Friedman R, Schulman H, Bichucher H: Maggot therapy for the treatment of intractable wounds. Int J Dermatol 1999; 38:623–627. 84. Wollina U, Liebold K, Schmidt WD, Hartmann M, Fassler D: Biosurgery supports granulation and debridement in chronic wounds – clinical data and remittance spectroscopy measurement. Int J Dermatol 2002; 41:635–639. 85. Sherman RA: Maggot versus conservative debridement therapy for the treatment of pressure ulcers Wound Rep Regen 2002; 10:208–214. 86. Sherman RA: Maggot therapy for treating diabetic foot ulcers unrsponsive to conventional therapy. Diab Care 2003; 26: 446–451. 87. Sherman RA, Wyle F, Vulpe M: Maggot therapy for treating presssure ulcers in spinal cord injury patients. J Spinal Cord Med 1995; 18:71–74. 71. Maitre S, Jaber K, Perrot JL, Guy C, Cambazard F: Increased serum and urinary levels of silver during treatment with topical silver sulfadiazin. Ann Dermatol Venerol 2002; 129:217–219. 88. Courtenay M, Vhurch JCT, Ryan TJ: Larva therapy in wound management. J Royal Soc Med 2000; 93: 72–74. 72. Hara J, Yasuda F, Higashitsutsumi M: Preoperative disinfection of the conjunctival sac in cataract surgery. Ophthalmologica 1997; 211 (suppl1):62–67. 89. Wayman J, Nirojogi V, Walker A, Sowinski A, Walker MA: The cost effectiveness of larval therapy in venous ulcers. J Tiss Viabil 2000: 10: 91. ZfW Nr.3/04 119 Konsensus 90. Daeschlein G, Below H, Hoffmeister B, Jünger M, Kramer A: Antibakterielle Effekte von Fliegenmaden (Lucilia sericata) in vitro zur Wundbehandlung ZfW Sonderband 2003; 24–25. 91. Weuffen W, Kramer A, Paetzelt H, Lüdde KH: Biologische Bedeutung von Thiocyanat und Schlussfolgerungen für die lokale Infektabwehr. In: Weuffen W, Berencsi G, Gröschel D, Kemter BP, Kramer A, Krasilnikow AP, Handbuch der Antiseptik. 1984; Bd I/4, S 218–257. 92. Thomas S, Ancdrews AM, Hay NP, Bourgoise S: The anti-microbial activity of maggot secretions: results of a preliminary study. J tiss viabil 1999: 9: 127–135. 93. Pavillard ER, Wright EA: An antibiotic from maggots. Nature 1957; 2: 916–917. 94. Dissemond J, Koppermann M, Esser S, Schultewolter T, Goos M, Wagner SN: Therapie eines Methicillin-resistenten Spaphylokokkus aureus (MRSA) im Rahmen der Behandlung eines chronischen Ulkus mittels Biochirurgie. Hautarzt 2002; 53: 608–612. 95. Bonn D: Maggot therapy: an alternative of wound infection. Lancet 2000; 356: 1174. 96. Prete PE: Growth effects of phaenicia sericata larval extracts on fibroblasts: mechanism for wound healing by maggot therapy. Life Sci 1997; 60: 505-51097. 97. Taurolin®: Taurolidin. Chirurgische Spüllösung für die Lokaltherapie von intraabdominellen Infektionen (1988) Thomae (erhältlich beim BPI) 98. Goodman and Gilmans: The Pharmacological Basis of Therapeutics. 6th Ed, MacMillan, New York 1980; , 977. 99. Kramer A: Acriflavinumchlorid, Ethacridinlactat,Tosylchloramidnatrium. In: Bruchhausen v.F, Ebel S, Frahm AW, Holzgrube U, Dannhardt G (Hrsg) Hagers Handbuch der Pharmazeutischen Praxis, Stoffe, Springer, Berlin 1993, Bd 7, 65, 1105. 100. www.cdc.gov/niosh/rtecs/ od481908.html#Q 101. Menke H, Pelzer M, Raff T, Siebert J, Germann G: Ein neues lokales Antiseptikum zur Oberflächenbehandlung bei Schwerstverbrannten. Akt Traumatol 2001;31: 211–215. 102. Kramer A, Mersch-Sundermann V, Gerdes H, Pitten FA, Tronnier H: Toxikologische Bewertung für die Händedesinfektion relevanter antimikrobieller Wirkstoffe. In: Kampf G (Hrgs.): Hände-Hygiene im Gesundheitswesen. 1. ed. Springer, Berlin, Heidelberg 2003: 105–174. 103. Müller G, Kramer A: Effect of selected wound antiseptics on adult articular cartilage (bovine sesamoid bone) in the presence of Escherichia coli and Staphylococcus aureus. J Orthop Res (im Druck). 104. Effenberger T: Chloramin-T-Lösung zur intraoperativen Peritoneallavage. Eine statistische Analyse. Zentralbl Chir 1988; 113: 959–67. 105. Kramer A, Weber U: Prüfbericht A 04048 Chloramin T-Lysoform®-Wundantiseptikum. Hygiene Nord Greifswald, 24.03.2004. 106. Nagl M, Nguyen VA, Gottardi W, Ulmer H, Hopfl R: Tolerability and efficacy of N-chlorotaurine in comparison with chloramine T for the treatment of chronic leg ulcers with a purulent coating: a randomized phase II study. Br J Dermatol 2003; 149: 590–597. 107. Gottardi W: Wäßrige Chloramin T Lösungen als Desinfektionsmittel: Chemische Zusammensetzung, Reaktivität und Toxizität. Arch Pharm 1992;325: 377–84.-+ Verfasser A. Kramer, Inst. für Hygiene und Umweltmedizin der Universität Greifswald (D) G. Daeschlein, Inst. für Hygiene und Umweltmedizin der Universität Greifswald (D) G. Kammerlander,Wund Kompetenz Zentrum® Wilhering/Linz (A) und Kammerlander-WFI Wundmanagement Switzerland Embrach/Zürich (CH) A. Andriessen, Andriessen Consultants, Malden (NL), Thames Valley University, London (GB) C. Aspöck, Inst. für Hygiene und Mikrobiologie am Zentralklinikum St. Pölten (A) R. Bergemann, Institute for Medical Outcome Research GmbH Lörrach (D) T. Eberlein, Wund Kompetenz Zentrum® Wilhering/Linz (A) und Kammerlander-WFI Wundmanagement Switzerland Embrach/Zürich (CH) H. Gerngross, Bundeswehrkrankenhaus Ulm, Abteilung II, Chirurgie (D) G. Görtz, Chir. Klinik I Allgemein- und Viszeralchirurgie, St. Marien-Hospital Lünen (D) P. Heeg, Inst. für Med. Mikrobiologie und Krankenhaushygiene der Universität Tübingen (D) M. Jünger, Klinik und Poliklinik für Hautkrankheiten der Universität Greifswald (D) S. Koch, Pathologisches Institut Humaine-Klinikum Bad Saarow (D) B. König, Inst. für Med. Mikrobiologie der Universität Magdeburg (D) R. Laun, Abt. für Unfall- und Wiederherstellungschirurgie der Klinik für Chirurgie der Universität Greifswald (D) R. U. Peter, Gefäß- und Hautzentrum Ulm-Blaustein (D) B. Roth, Chir. Abt. Bezirksspital Belp (CH) Ch. Ruef, Universitätsspital Zürich, Abt. Infektionskrankheiten und Spitalhygiene (CH) W. Sellmer, Apotheke Allg. Krankenhaus Barmbek Hamburg (D) G. Wewalka, AGES, Institut für Medizinische Mikrobiologie und Hygiene Wien (A) W. Eisenbeiß, Klinik für Plastische Chirurgie, Handchirurgie, Intensiveinheit für Schwerbrandverletzte der Universität Lübeck (D) 120 ZfW Nr. 3/04
