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Leistungsverzeichnis

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LA BOR ENDERS
Prof. Dr. med. Gisela Enders & Kollegen MVZ
Medi z i ni sc h e D i a gnost ik
Untersuchungsprogramm
2017 / 2018
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STUTTGART
Rosenbergstraße 85 · 70193 Stuttgart
Email: [email protected]
Internet: www.labor-enders.de
Telefon (Zentrale)
Telefax (Zentrale)
07 11/63 57-0
07 11/63 57-202
Bakteriologie / Mykologie
Endokrinologie
Klinische Chemie / Hämatologie
Hygiene
Infektionsserologie
Forensische Toxikologie
Molekularbiologie
Molekular- / Pharmakogenetik
Mutterschaftsvorsorge
Parasitologie / Tbc-Diagnostik
Pränataldiagnostik
Versandmaterial, Fahrdienst
07 11/63 57-152
07 11/63 57-210
07 11/63 57-211
07 11/63 57-153
07 11/63 57-0
07 11/63 57-110
07 11/63 57-140
07 11/63 57-266
07 11/63 57-0
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ESSLINGEN
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Rosenbergplatz
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Inhaltsverzeichnis
Dienstzeiten und Telefonnummern ................................................................ 3
Stichwortverzeichnis ................................................................................. 5
Allgemeines ......................................................................................... 19
Abkürzungen ................................................................................ 19
Allgemeine Hinweise ....................................................................... 21
Schnelldiagnostik ........................................................................... 25
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge ................................................... 27
Infektionsserologie / Virologie ............................................................. 27
Mutterschaftsvorsorge / Pränataldiagnostik .............................................. 93
Infektionserreger nach Symptomen ...................................................... 97
Infektionserreger bei neonatalen Symptomen ......................................... 107
Nukleinsäure-Diagnostik .......................................................................... 111
Infektiologie (Molekularbiologie) ......................................................... 111
Molekulargenetik .......................................................................... 113
Immunologie / Autoimmunerkrankungen ....................................................... 117
Zelluläre Immunologie .................................................................... 117
Immunglobuline / Komplementsystem .................................................. 120
Entzündungsaktivität ...................................................................... 121
Autoantikörper ............................................................................. 122
Rheumaserologie .......................................................................... 138
Autoimmunerkrankungen (Profile) ....................................................... 139
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie ............................................. 151
Funktionstests ............................................................................. 151
Endokrinologie ............................................................................. 156
Andrologie .................................................................................. 166
Gerinnung .................................................................................. 167
Hämatologie ................................................................................ 174
Blutgruppenserologie ..................................................................... 178
Kardiale Marker ........................................................................... 179
Klinische Chemie .......................................................................... 180
Proteine / Transportproteine im Serum ................................................. 188
Liquordiagnostik ........................................................................... 189
Diabetes-Diagnostik ....................................................................... 191
Allergiediagnostik .......................................................................... 191
Vitamine & Spurenelemente ............................................................. 192
Knochenstoffwechsel ..................................................................... 195
Tumormarker ............................................................................... 196
Medikamente ............................................................................... 199
Urindiagnostik (ohne Infektionserreger) ................................................ 208
Stuhl-Diagnostik (ohne Infektionserreger) .............................................. 213
Forensische Toxikologie .......................................................................... 215
Urinanalytik ................................................................................. 215
Serumanalytik .............................................................................. 220
Haaranalytik ................................................................................ 224
Mikrobiologie ....................................................................................... 227
Allgemeine Bakteriologie ................................................................. 227
Mykobakterien-Diagnostik (Tbc) ......................................................... 237
Mykologie ................................................................................... 240
Parasitologie ............................................................................... 240
Hygieneuntersuchungen .................................................................. 251
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
1
2
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Dienstzeiten und Telefonnummern
Stuttgart
Allgemeine Dienstzeiten:
- Montag - Freitag
- Samstag
Probenannahme:
- Montag - Freitag
- Samstag
Blutentnahme:
- Montag - Freitag
8:00 - 19:00 Uhr
8:00 - 13:00 Uhr
8:00 - 19:00 Uhr
8:00 - 12:00 Uhr
9:00 - 15:30 Uhr
Befundauskunft Zentrale
0711 6357-0
Infektionsserologie / Virologie
Frau Prof. Dr. med. Gisela Enders
Sekretariat
PD Dr. med. M. Enders
Dr. med. F. Tewald
Dr. med. M. Müller
Dr. med. S. Rauch
0711 6357-121
0711 6357-120
0711 6357-117
0711 6357-119
0711 6357-250
0711 6357-228
Klinische Chemie / Endokrinologie
Dr. med. R. Alkier
Dr. med. K.-J. Lüthgens
0711 6357-211
0711 6357-210
Drogen und Medikamente
Dr. rer. nat. V. Dangel
0711 6357-110
Immunhämatologie
Dr. med. S. Rauch
0711 6357-228
Mikrobiologie
Dr. med. T. Regnath
Dr. med. P. Schäfer
Dr. rer. nat. U. Bührlen
0711 6357-150
0711 6357-151
0711 6357-152
Parasitologie
Prof. Dr. Dr. P. Kimmig
Dr. med. F. Tewald
0711 6357-139
0711 6357-119
Molekularbiologie
Dr. rer. nat. G. Schalasta
Dr. rer. nat. M. Schmid
0711 6357-140
0711 6357-142
Molekulargenetik
Frau Dr. rer. nat. T. Stumpp
0711 6357-266
Zelluläre Immunologie / Durchflusszytometrie
Dr. rer. biol. hum. T. Meier
0711 6357-131
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
3
Dienstzeiten und Telefonnummern
Probeneingang
Dr. rer. nat. M. Bläse
0711 6357-267
Qualitätsmanagement
Frau Dr. rer. nat. G. Wagner (QMB)
Frau Dr. rer. nat. D. Dirmeier (Stellvertretung)
0711 6357-214
0711 6357-214
Probenabholung, Transportkoordination und Versandmaterial
Herr Schmauß
0711 6357-104
Nachforderungen / Auftragsergänzungen
per Fax
oder per Telefon
Abrechnung
Rechnungsabteilung für Krankenhäuser,
Laborärzte und stationäre Privatpatienten
Rechnungsabteilung für ambulante
Privatpatienten und IGeL-Leistungen
Kassenabrechnung
Verwaltung
Verwaltung, Herr Schneider
Personalabteilung, Frau P. Wagner
Buchhaltung, Herr Heide
EDV-Abteilung
0711 6357-206
0711 6357-218/223
0711 6357-235
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0711 6357-237
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Esslingen
Probenannahme:
- Montag - Sonntag
0:00 - 24:00 Uhr
Sprechstunden:
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9:00 - 12:00 / 14:00 - 16:00 Uhr
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Durchwahl Prof. Dr. med. R. Braun
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0711 3103-3260
0711 3103-3251
0711 3103-3250
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Impressum
17. Auflage, Stand: 24.03.2017 10:46
Verantwortlich für Inhalt und Redaktion: Dr. med. F. Tewald.
Alle Rechte vorbehalten. Nachdruck, auch nur auszugsweise, nur mit Genehmigung der Verfasser.
© Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
4
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
A
A-DNAse B, 138
Abacavir-Überempfindlichkeit, 114
Abklatschplatten (Hygieneuntersuchung), 252
Aborte, habituelle, 96
Abstriche (Hygieneuntersuchung), 252
Abszessabstrich (Mikrobiologie), 230
Abszesse im Zahn-/Kieferbereich, 233
ACE (Angiotensin Converting Enzyme), 180
Acetylcholinesterase im Fruchtwasser, 156
Acetylcholinrezeptor-AK, 122
AChR-AK (Acetylcholinrezeptor-AK), 122
Acrodermatitis chronica atrophicans, 32
ACTH (Adrenocorticotropes Hormon), 156
ACTH-Stimulationstest (Kurztest), 151
Addison-Krankheit, 142
Adenovirus-Infektionen, 27
ADH (Antidiuretisches Hormon), 156
Adrenalin im Plasma, 162
Adrenalin im Urin, 161
Adrenocorticotropes Hormon (ACTH), 156
AFP (alpha-Fetoprotein), 157
AFP (Tumormarker), 196
AFP im Fruchtwasser, 157
Afrikanisches Zeckenstichfieber, 77
AGNA (SOX1)-AAK, 135
AHA (Histone-AAK), 128
AIDS (HIV), 61
AIH (Autoimmunhepatitis), 139
AKS (Antikörpersuchtest), 178
Aktinomyzeten (Mikrobiologie), 235
Albumin im Liquor, 189
Albumin im Serum, 188
Albumin im Urin, 208
Aldosteron, 156
Aldosteron, frei im Urin, 157
Aldosteron-18-Glucuronid im Urin, 157
Aldosteron-Suppressionstest, 151
Alkal. Phosphatase, Plazenta-Isoenzym, 197
Alkalische Phosphatase (AP), 181
Alkalische Phosphatase, Isoenzyme, 182
Alkohol(metabolit) im Haar, 224
Alkoholmarker (EtG) im Urin (Bestätigung), 217
Alkoholmarker (EtG) im Urin (Screening), 215
allergenspezifisches IgE (RAST), 191
alpha-1-Antitrypsin im Serum, 180
alpha-1-Antitrypsin-Defizienz, 114
alpha-1-Antitrypsin-Genotypisierung, 114
alpha-1-Fetoprotein (AFP), 157
alpha-1-Fetoprotein im Fruchtwasser, 157
alpha-1-Fetoprotein, Tumormarker, 196
alpha-1-Mikroglobulin im Urin, 209
alpha-1-Protease-Inhibitor, 180
alpha-1-Protease-Inhibitor-Genotyp, 114
alpha-2-Makroglobulin im Urin, 209
alpha-Glucosidase im Seminalplasma, 166
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
alpha-HBDH, 184
alpha-Tocopherol (Vitamin E), 194
ALT (GPT), 184
Aluminium im Serum, 181
AMA (antimitochondriale AAK), 123
AMH (Anti-Müller-Hormon), 157
Amikacin, 199
Aminoacyl-tRNA-Synthetase-AAK, 129
Aminolävulinsäure, delta-, 212
Aminosäuren im Serum, 181
Aminosäuren im Urin, 209
Amiodaron, 199
Amitriptylin, 199
AMLA (Herzmuskel-AAK), 128
Ammoniak im Plasma, 181
Amöbiasis, 240
AMPA-Rezeptor-AAK, 123
Amphetamine im Serum (Bestätigung), 221
Amphetamine im Serum (Screening), 220
Amphetamine im Urin (Bestätigung), 217
Amphetamine im Urin (Screening), 215
Amphiphysin-AAK, 123
Amphotericin B, 199
Amylase, 181
Amylase, Isoenzyme, 181
Amyloid, beta- im Liquor, 190
Amyloid-A-Protein im Serum (SAA), 122
ANA (antinukleäre AAK), 123
Anämieabklärung, 175
Anaplasma phagocytophilum, 42
ANCA, perinukleär (p-ANCA), 131
ANCA, zytoplasmatisch (c-ANCA), 124
Ancylostoma duodenale (Hakenwurm), 248
Androstandiol-Glucuronid, 157
Androstendion, 157
Anforderungsscheine, 21
Angioneurotisches Ödem, hereditäres, 121
Angiotensin Converting Enzyme (ACE), 180
ANNA-1, 128
ANNA-2, 133
ANNA-3, 131
Anti-Faktor Xa-Aktivität, 170
Anti-Jo-1-Syndrom, 139
Anti-Müller-Hormon, 157
Anti-Phospholipid-Autoantikörper, 125
Anti-Phospholipid-Syndrom, 124
Anti-Streptodornase B (A-DNAse B), 138
Anti-Synthetase-Syndrom, 139
Antidiuretisches Hormon (ADH), 156
Antiglobulintest, direkt (DAT), 179
Antiglobulintest, indirekt (IAT), 178
Antikörpersuchtest, 178
Antimitochondriale AAK (AMA), 123
Antinukleäre AAK (ANA), 123
Antiphospholipidsyndrom, 139
Antistaphylolysin (ASTAL), 138
Antistreptolysin O (ASL), 138
Antithrombin-Aktivität, 172
Antithrombin-III-Aktivität (AT III), 172
5
Stichwortverzeichnis
Antitrypsin, 180
AP (Alkalische Phosphatase), 181
AP, knochenspezifisch, 195
AP, Plazenta-Isoenzym, 197
AP-Isoenzyme, 182
APC-Ratio, 172
APC-Resistenz, 172
APC-Resistenz, Genotyp, 116
Apolipoprotein A1 (HDL-Protein), 182
Apolipoprotein B (LDL-Protein), 182
APS (Anti-Phospholipid-S.), 124, 125, 172
APS (Antiphospholipidsyndrom), 139
Aquaporin 4-AAK, 123
Arbovirosen, 28
Aripiprazol, 199
Arthritiden, Arthralgien (DD), 106
Arthritis rheumatoide, 146
Arthropode-borne Viruses (Arboviren), 28
ASCA (Saccharomyces-AK), 134
Ascaris lumbricoides (Spulwurm), 248
Asialoglycoprotein-Rezeptor-AAK, 123
ASL (Antistreptolysin O), 138
ASLA (Herzmuskel-AAK), 128
ASMA (Glatte Muskulatur-AAK), 127
Aspergillose (Mikrobiologie), 240
Aspergillus-Antigen, 29
Aspergillus-Infektionen, 28
AST (GOT), 184
ASTAL (Antistaphylolysin), 138
AT-III-Aktivität, 172
Atypische Cholinesterase, 183
Atypische Mykobakterien, 238
Augeninfektionen (DD), 106
Augeninfektionen (Mikrobiologie), 235
Autoimmunhämolytische Anämie, 140
Autoimmunhepatitis (Diagnostik), 139
B
B-type natriuretic peptide (BNP), 180
Babesien, 241
Bakterielle Ruhr (Shigellose) , 82
Bakterien (Nukleinsäurediagnostik), 112
BAL (Mikrobiologie), 228
BAL (Zelldifferenzierung), 119
Banden, oligoklonale, im Liquor, 189
Bang, Morbus (Brucellose), 33
BAP, 195
Barbiturate im Serum (Bestätigung), 221
Barbiturate im Serum (Screening), 220
Barbiturate im Urin (Bestätigung), 217
Barbiturate im Urin (Screening), 215
Bartonellen, 29
Basale Mastzell-Tryptase, 192
Basalmembran-AAK (-Glomerulum), 127
Basedow'sche Erkrankung, 142
Bazilläre Angiomatose, 29
Becherzell-AAK, 124
Befundmitteilung, 25
6
Belegzellen-AAK (Parietalzellen-AAK), 132
Bence-Jones-Protein i. S. (Kappa), 188
Bence-Jones-Protein i. S. (Lambda), 189
Bence-Jones-Proteine im Urin, 209
Benzodiazepine im Serum (Bestätigung), 222
Benzodiazepine im Serum (Screening), 220
Benzodiazepine im Urin (Bestätigung), 217
Benzodiazepine im Urin (Screening), 215
Benzoylecgonin im Serum (Bestätigung), 222
Benzoylecgonin im Serum (Screening), 220
Benzoylecgonin im Urin (Bestätigung), 217
Benzoylecgonin im Urin (Screening), 216
beta-2-Glykoprotein-1-AAK, 124
beta-2-Mikroglobulin im Serum, 196
beta-2-Mikroglobulin im Urin, 208
beta-Amyloid im Liquor, 190
beta-Crosslaps, 195
beta-hCG, 158
Betäubungsmittel Haaranalytik (MPU), 224
Bilharziose, 249
Bilirubin (gesamt), 182
Bilirubin direkt, 182
Biotin (Vitamin H), 195
BK-Virus (Polyomaviren), 75
BKS (BSG), 121
Blasenbilharziose (Mikrobiologie), 249
Blut im Stuhl, 213
Blut-Liquor-Schranke (nach Reiber), 189
Blutbild, groß, 174
Blutbild, klein, 174
Blutgruppe, 178
Blutgruppenbestimmung, genetisch, 115
Blutkörperchensenkungsgeschw., 121
Blutkultur, 228
Blutprodukte (Hygieneuntersuchung), 254
Blutsenkung (BSG), 121
Blutungsneigung, Abklärung, 170
Blutzucker, 191
BNP, 180
Bocavirus, 59
Bordetella parapertussis, 30
Bordetella pertussis, 30
Bornholm-Krankheit, 44
Borreliose, 32
Boutonneuse-Fieber (Rickettsien), 77
BP180-AAK, 124
BP230-AAK, 124
brain-natriuretic pept., N-term. (BNP), 180
Brill-Zinsser-Krankheit (Rickettsien), 77
Bromazepam, 199
Bromid, 200
Bronchialsekret (Mikrobiologie), 228
Bronchiolitis, neonatal (DD), 109
Brucellose, 33
Brugia malayi, 247
BSG, 121
Bullöses Pemphigoid, 140
Buprenorphin im Serum (Bestätigung), 223
Buprenorphin im Urin (Bestätigung), 217
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Buprenorphin im Urin (Screening), 215
C
c-ANCA, 124
C-Peptid, 158
C-reaktives Protein, 121
C-reaktives Protein, hochsensitiv, 121
C. difficile-Toxin, 231
C1-Esterase-Inhibitor (Aktivität), 121
C1-Esterase-Inhibitor (Konzentration), 121
C2-Komplement, 121
C3-Komplement, 121
C4-Komplement, 121
CA 125, 196
CA 15-3, 196
CA 19-9, 196
CA 72-4, 197
Calcitonin, 164
Calcium im Serum, 182
Calcium im Urin, 209
Calcium-Sensing-Rezeptor-AAK, 131
Calciumkanal (P/Q-Typ)-AAK, 137
Caliciviren, 71
Calprotectin im Stuhl, 214
Campylobacter-Antigen (Mikrobiologie), 232
Campylobacter-Infektionen, 34
Candida-Infektionen (Serologie), 34
Cannabinoide im Serum (Bestätigung), 222
Cannabinoide im Serum (Screening), 220
Cannabinoide im Urin (Bestätigung), 217
Cannabinoide im Urin (Screening), 216
CAP, 24
Captopril-Test, 152
Carbamazepin, 200
Carcino-embryonales Antigen (CEA), 197
Cardiolipin-AAK, 125
Carnitin im Seminalplasma, 166
Carnitin, frei im Serum, 182
CASPR2-AAK, 125
Cat scratch disease (Katzenkratzkrankh.), 29
CCP-AAK, 125
CD38 auf CD8-T-Lymphozyten, 118
CD4-T-Lymphozyten, 118
CDT, 223
CEA (Carcino-embryonales Antigen), 197
Cervixabstrich (Mikrobiologie), 234
CFS (Chronic Fatigue Syndrome), 105
CGA (Chromogranin A), 197
CH-100-Aktivität, 120
CH-50-Aktivität siehe CH100, 120
CHE (Cholinesterase), 183
Chikungunya-Virus, 34
Chlamydia pneumoniae, 35
Chlamydia psittaci, 36
Chlamydia trachomatis, 36
Chlorid im Serum, 183
Cholesterin, 183
Cholesterin, HDL, 185
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Cholesterin, LDL, 186
Cholinesterase (CHE), 183
Cholinesterase im Fruchtwasser, 156
Cholinesterase, atypische, 183
Chromogranin A (CGA), 197
Chromosomenanalyse, 97
Chron.-entzündl. demyelin. PNP, 140
Churg-Strauss-Syndrom (Vaskulitis), 148
Ciclosporin A, 200
CIDP, 140
Citrat im Seminalplasma, 166
Citrat im Urin, 209
Citrullin-AAK (Anti-CCP), 125
CK (Creatinkinase) gesamt, 179
CK-Isoenzyme, 180
CK-MB (herzspezifisch), 180
CLIA, 24
Clobazam, 200
Clomipramin, 200
Clonazepam, 200
Clonidin-Test, 152
Clostridientoxine (Mikrobiologie), 231
Clostridium difficile, 232
Clostridium tetani, 37
Clozapin, 200
CMV (Cytomegalie-Virus), 39
CO-Hämoglobin, 175
Cobalamin, 193
Cocain im Serum, 220
Cocain im Serum (Bestätigung), 222
Cocain im Urin (Bestätigung), 217
Cocain im Urin (Screening), 216
Coeruloplasmin, 188
Colitis ulcerosa (Autoantikörper), 140
College of American Pathologists (CAP), 24
Coombstest, direkt (DCT), 179
Coombstest, indirekt (AKS), 178
Coronavirus (NL63), 38
Cortisol im Serum, 158
Cortisol im Urin, 158
Corynebacterium diphtheriae, 38
Cotinin im Urin, 218
Coxiella burnetii, 38
Coxsackie-ECHO-Viren, 44
Coxsackie-Viren, 44
Creatinkinase (CK) gesamt, 179
Crithidia luciliae-(ds-DNS-AAK), 125
CRMP5/CV2-AAK, 125
Crohn, Morbus (AAK), 143
Crosslaps, 195
Crosslinks (Pyridinoline) im Urin, 195
CRP, 121
CRP, hochsensitiv (hsCRP), 121
Cryptococcus neoformans (Antigen), 227
Cryptococcus neoformans (Kultur), 227
Cryptococcus-neoformans-DNA, 227
CTx, 195
CV2 (CRMP5)-AAK, 125
Cyclisches citrulliniertes Peptid-AAK, 125
7
Stichwortverzeichnis
Cyclosporin A, 200
CYFRA 21-1, 197
Cystatin C, 183
Cytochrom P450-AK (LKM-AAK), 129
Cytomegalie-Virus, 39
D
D weak (Rhesus), genetisch, 115
D-Dimere, 174
D-Xylose-Belastungstest, 153
Darmbilharziose, 249
Darminfektionen (Mikrobiologie), 231
DAT (direkter Antiglobulintest), 179
DCT, 179
Dehydroepiandrosteron, 158
Dehydroepiandrosteron-Sulfat, 158
delta-Aminolävulinsäure, 212
Delta-Virus (Hepatitis D), 55
Dengue-Fieber, 42
Dermatophyten (Mikrobiologie), 240
Dermatophytendiagnostik (PCR), 240
Desinfektionsmittel (Hygieneunters.), 254
Desmoglein-AAK, 132
Desoxypyridinolin im Urin, 195
Dexamethason-Hemmtest, 153
DHEA, 158
DHEA-S, 158
DHF (Dengue-hämorrhagisches Fieber), 42
DHT (Dihydrotestosteron), 159
Diabetes mellitus (Autoantikörper), 140
Diazepam, 201
Dibucainzahl, 183
Dicker Tropfen (Malaria), 246
Differenzial-Blutbild, 174
Digitoxin, 201
Digoxin, 201
Dihydropyrimidin-Dehydrogenase, 114
Dihydrotestosteron (DHT), 159
DIN EN ISO 15189, 24
DIN EN ISO/IEC 17025, 24
Diphtherie, 38
Direktes Bilirubin, 182
DNAse-B-Antikörper (Streptokokken), 138
DNER-AAK, 136
DNS-AAK, ds-, 125
Dobrava-Virus, 50
Dopamin im Urin, 161
Doppelstrang-DNS-AAK (ds-DNS-AAK), 125
Down-Risiko im 1. und 2. Trimester, 164
Doxepin, 201
DPD , 114
Drei-Tage-Fieber, 59
ds-DNS-AAK, 125, 125
DSS (Dengue-Schock-Syndrom), 42
Dystrophie, neonatal (DD), 108
E
E1 (Estron), 159
8
E2 (Estradiol), 159
E3 (freies Estriol), 159
EBV (Epstein-Barr-Virus), 45
Echinokokkose, 242
ECHO-Viren, 44
ECP (eosinophiles kationisches Protein), 191
Ecstasy im Serum (Bestätigung), 221
Ecstasy im Serum (Screening), 220
Ecstasy im Urin (Bestätigung), 217
Ecstasy im Urin (Screening), 215
EHEC, 43
EHEC (Mikrobiologie), 232
Ehrlichiose, 42
Eisen im Serum, 192
Eisen im Urin, 210
Eisenbindungskapazität, 177
Eisenresorptionstest, 154
Eiweiß, gesamt im Serum, 188
Eiweiß, gesamt im Urin, 210
Elastase 1 im Serum, 187
Elastase, pankreatisch im Stuhl, 214
Elektrophorese, Serum-Eiweiß-, 189
Elephantiasis, 247
Elispot Tuberkulose, 239
Elpho, 189
EMA-Test (Sphärozytose), 176
ENA-AAK (extrahierb. nukleäre Ag), 126
Endokarditis (DD), 102
Endokrinologie (Schnelldiagnostik), 26
Endomysium-AAK, 126
Endoskope (Hygieneuntersuchung), 254
Endotoxin-/Pyrogennachweis (Hygiene), 254
Entamoeba histolytica, 240
Enteritis (Schnelldiagnostik), 25
Enteritis, neonatal (DD), 109
Enterobius vermicularis (Oxyuren), 248
Enterohämorrhag. E. coli (EHEC), 43
Enteroviren, 44
Enzephalitis, postinfektiös (DD), 101
Enzephalomyelitis (DD), 100
eosinophiles kationisches Protein (ECP), 191
Epstein-Barr-Virus-Infektion (EBV), 45
Erb-Oppenheim-Goldflam-Syndrom, 143
Ersttrimester-Screening, 164
Erythema infectiosum (Parvovirus B19), 73
Erythema migrans, 32
Erythropoietin, 159
Erythroviren (Parvoviren), 73
Erythrozyten, fetale im mütterlichen Blut, 118
Erythrozytenverteilungsbreite, 176
Estradiol, 159
Estriol, 159
EtG (Ethylgluc.) im Urin (Bestätigung), 217
EtG (Ethylgluc.) im Urin (Screening), 215
Ethosuximid, 201
Ethylglucuronid im Urin (Bestätigung), 217
Ethylglucuronid im Urin (Screening), 215
Exanthema subitum (HHV6), 59
Exantheme (DD), 102
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Exantheme, lokalisiert (DD), 103
extrahierb. nukleäre Ag (ENA), AAK gg., 126
Extremitätenfehlbildungen (DD), 108
F
F-Zellen, 118
Fadenwürmer, 247
Faktor II-Mutationsanalyse, 116
Faktor IX, 170
Faktor V-Mutation Typ Leiden, 116
Faktor VIII, 169
Faktor VIII-Ristocetin-Cofaktor, 169
Faktor Xa-Aktivität, Anti-, 170
Faktoren, weitere (Gerinnung), 170
Familiäres Mittelmeerfieber, 114
Fasciola hepatica, 243
Fehlbildungen (DD), 107
Feigwarzen, 71
Felbamat, 201
Fentanyl im Serum (LCMSMS), 223
Fentanyl im Urin (LCMSMS), 218
Ferritin, 177
Ferritinindex, 177
fetale Erythrozyten im mütterlichen Blut, 118
Fette im Stuhl, 214
Fibrinogen, 168
Fievre boutonneuse (Rickettsien), 77
Filarien, 243
Filarien-AK, 247
FK 506 (Tacrolimus), 206
Fleckfieber (Rickettsien), 77
Flussblindheit, 247
FMF (Familiäres Mittelmeerfieber), 114
Folat, 194
Folsäure, 194
Francisella tularensis, 47
freie Granulozyten-Antikörper, 126
freie Kappa-Leichtketten i. S., 188
freie Lambda-Leichtketten i. S., 189
freie Leichtketten (BJP) im Urin, 209
freies Aldosteron im Urin, 157
freies Carnitin im Serum, 182
freies Hämoglobin im Plasma, 178
Fructose im Seminalplasma, 167
Fructose-Intoleranz (hereditär), 114
Frühsommer-Meningoenzephalitis, 48
FSH (Follikel-stimulierendes Hormon), 159
FSME (Frühsommer-Meningoenzephal.), 48
fT3, 164
fT4, 164
FTA-ABS (Syphilis), 83
Fuchsbandwurm (E. multilocularis), 242
G
G6PDH (Glucose-6-Phopshat-Dehyd.), 176
GABA-b-Rezeptor-AAK, 126
Gabapentin, 202
GAD-65-AAK (GADA), 127
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
GADA (Glutamat-Decarbox.-AAK), 127
Galaktomannan-Test, 29
Gallensäuren im Serum, 183
gamma-GT, 184
Gamma-Trace-Protein (Cystatin C), 183
Ganciclovir, 202
Gangliosid-AAK, 127
Gasser-Syndrom, 43
Gastrin, 159
Gastritis, atrophische (Autoantikörper), 140
GB-Virus C, 49
GBM-AAK (Glomerul. Basalmemb.-AAK), 127
Gehörgangsabstrich (Mikrobiologie), 233
Gelenkinfektionen (Mikrobiologie), 236
Gelenkpunktat (klinische Chemie), 187
Gelenkpunktat (Mikrobiologie), 236
Genitalherpes (HSV 2), 57
Genitalinfektionen (Mikrobiologie), 233
Gentamicin, 202
Gerinnungsfaktor IX, 170
Gerinnungsfaktor VIII, 169
Gerinnungsfaktor-Xa-Aktivität, Anti-, 170
Gerinnungsfaktoren, weitere, 170
Gesamt-IgE im Serum, 191
Gesamt-Triglyceride, 187
Gesamtbilirubin, 182
Gesamteiweiß im Serum, 188
Gesamteiweiß im Urin, 210
Gesamthämolyt. Kompl.-Akt. (CH100), 120
Gesamtproteine im Urin, 210
Geschirrspülmaschinen (Hygiene), 253
Gestose (HELLP), 95
Gewebstransglutaminase-AAK, 136
Gewinnung von plättchenarmem Plasma, 167
GGT, 184
GHB (Ganmmahydroxybutyrat), 218
Giardia lamblia, 244
Giardiasis, 244
Glaskörperpunktat (Mikrobiologie), 235
Glatte Muskulatur-AAK (SMA), 127
GLDH, 184
Gliadin-AK im Serum, 127
Glomerul.-Basalmemb.-AAK (GBM-AK), 127
Glucagon, 159
Glucose, 191
Glucose im Urin, 210
Glucose-6-Phosphat-Dehyd. (G6PDH), 176
Glukagon, 159
Glukose, 191
Glutamat-Decarboxylase-AAK, 127, 128
Glutamat-Rezeptoren vom AMPA-Typ, 123
Glutamat-Rezeptoren vom NMDA-Typ, 131
Glutensens. Enteropathie (Antikörper), 149
Glycin-Rezeptor-AAK, 128
Glykoprotein-1-AAK, beta-2-, 124
GnRH-Test, 154
Goldflam-Syndrom (Myasthenie), 143
Gonokokken, 49
Gonorrhoe, 235
9
Stichwortverzeichnis
GOT (AST), 184
GPT (ALT), 184
Granulozyten-AAK, perinukl. (p-ANCA), 131
Granulozyten-AAK, zytopl. (c-ANCA), 124
Granulozyten-AK, freie, 126
Granulozytenfunktionstest, 117
Grippe (Influenza), 64
Großer Leberegel, 243
Großes Blutbild, 174
Guillain-Barré-Syndrom, 141
Gürtelrose, 88
H
H+/K+-ATPase-AAK, 132
Haaranalytik Alkohol (MPU), 224
Haaranalytik Betäubungsmittel (MPU), 224
Haaranalytik Opioide (MPU), 225
habituelle Aborte, 96
Haemophilus influenzae Typ b, 49
Ham-Test (PNH-Diagnostik), 118
Hämochromatose, 114
Hämodialyseflüssigkeiten (Hygiene), 254
Hämoglob.-Haptoglob.-Komplex im Stuhl, 213
Hämoglobin , 175
Hämoglobin im Stuhl, 213
Hämoglobin, frei im Plasma, 178
Hämoglobin-Elektrophorese, 178
Hämolytisch-urämisches Syndrom, 43
Hämophilie-Diagnostik, 170
Hand-Fuß-Mund-Krankheit, 44
Hantaan-Virus, 50
Hantaviren, 50
Haptoglobin, 177
Harnsäure im Serum, 184
Harnsäure im Urin, 210
Harnsediment, 213
Harnstein-Analyse, 210
Harnstoff im Serum, 184
Harnstoff im Urin, 210
Harnwegsinfektionen (Mikrobiologie), 230
Hasenpest (Tularämie), 47
Hashimoto-Thyreoiditis, 148
Hautabstrich (Mikrobiologie), 229
HAV (Hepatitis A), 52
Hb, frei im Plasma, 178
Hb-Elektrophorese, 178
HbA1c-Fraktion, 191
HBDH, alpha-, 184
HbF-Zellen, 118
HBsAg, 53, 53
HBV (Hepatitis B), 53
hCG (humanes Chorion-Gonadotropin), 158
hCG (Tumormarker), 196
HCV (Hepatitis C), 55
HDL-Cholesterin, 185
HDV (Hepatitis D), 55
Helferzellen, 118
Helicobacter pylori, 51, 236
10
HELLP-Syndrom, 95
Heparin-ind. Thrombopenie Typ II (HIT II), 179
Hepatitiden, infektiös (DD), 99
Hepatitis A, 52
Hepatitis B, 53
Hepatitis C, 55
Hepatitis D, 55
Hepatitis E , 56
Hepatitis G (GB-Virus C), 49
Hepatitis, neonatal (DD), 110
hereditäres angioneurotisches Ödem, 121
hereditäres Quincke-Ödem (C1-Inhib.), 121
Herpangina Zahorsky (Coxsackie-Viren), 44
Herpes zoster (VZV), 88
Herpes-gestationis-Faktor, 132
Herpes-simplex-Virus 1/2 (HSV 1/2), 57
Herzmuskel-AAK, 128
HEV (Hepatitis E), 56
hGH (human Growth Hormon, STH), 165
HHV6 (Humanes Herpes-Virus Typ 6), 59
HHV7 (Humanes Herpes-Virus Typ 7), 60
HHV8 (Humanes Herpes-Virus Typ 8), 61
Hib (Haemophilus influenzae Typ b), 49
HIES (Hydroxy-Indol-Essigsäure), 162
HIPA-Test (HIT II), 179
Histidyl-tRNA-Synthetase-AAK, 129
Histiozyten, 119
Histone-AAK, 128
HIT II, 179
HIV, 61
HLA Klasse I-Antigene (A,B,C), 115
HLA Klasse II-Antigene (DR, DQ), 115
HLA-B*27, 115
HLA-B*57:01, 114
HLA-DQ2/DQ8, 116
HLA-Typisierung, 114
HMPV (Metapneumovirus), 62
HNO-Infektionen (Mikrobiologie), 232
hochsensitives CRP, 121
Holo-TC, 194
Holotranscobalamin, 194
Homocystein, 173
Homovanillinsäure im Urin (HVA), 162
hPLAP, 197
HPV (humane Papilloma-Viren), 71
hsCRP (hochsensitives CRP), 121
HSV 1/2 (Herpes-simplex-Virus 1/2), 57
HSV Typ 1/2-IgG-AK, 57, 58
HSV-IgG-Immunoblot, 57
HTC, 194
hTG, 165
HTLV 1/2 (Humane T-Zell-Leukämie-V.), 58
Hu-AAK, 128
Human Placental Alkaline Phosphatase, 197
Humane Papilloma Viren (HPV), 71
Humane T-Zell-Leukämie-V. 1/2 (HTLV), 58
Humanes Bocavirus, 59
Humanes Chorion-Gonadotr. (beta-hCG), 158
Humanes Chorion-Gonadotr. (TM), 196
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV6), 59
Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV7), 60
Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV8), 61
Humanes Immundefiz. Virus (HIV), 61
Humanes Metapneumovirus (HMPV), 62
Humanes Parechovirus, 73
Hundebandwurm (E. granulosus), 242
Hundespulwurm (Toxocara canis), 250
HUS (Hämolyt.-uräm. Syndrom), 43
HVA im Urin (Homovanillinsäure), 162
HVS im Urin (Homovanillinsäure), 162
Hydrocodon im Serum (LCMSMS), 223
Hydrocodon im Urin (LCMSMS), 219
Hydromorphon im Serum (LCMSMS), 223
Hydromorphon im Urin (LCMSMS), 219
Hydroxy-Indol-Essigsäure (5-HIES), 162
Hydroxyprogesteron, 163
Hydroxyprogesteron, 17-alpha-, 163
I
IA2-Autoantikörper, 137
IAA (Insulin-AAK), 129
IAT (indirekter Antiglobulintest), 178
ICA (Inselzell-AAK), 129
Idiopatische membranöse GN, 141
IFE (Immunfixationselpho im Serum), 188
IgA im Liquor, 189
IgA im Serum, 120
IgA, sekretorisch, 120
IgE im Serum, gesamt, 191
IgE-RAST, 191
IGeL (Abrechnung), 23
IGeL in Schwangerschaft, 94
IGF-1 (Insulin-like Growth Factor 1), 160
IGF-BP3, 160
IgG im Liquor, 189
IgG im Serum, 120
IgG im Urin, 210
IgG-Subklassen, 120
IgM im Liquor, 189
IgM im Serum, 120
IGRA, 238
IL-28B , 115
IL-2R (löslicher Interleukin-2-Rezeptor), 122
IL-6 (Interleukin 6), 122
Imipramin, 202
Immunfixationselektrophorese im Serum, 188
Immunglobulin A im Liquor, 189
Immunglobulin A im Serum, 120
Immunglobulin A, sekretorisch (scIgA), 120
Immunglobulin E im Serum, 191
Immunglobulin G im Liquor, 189
Immunglobulin G im Serum, 120
Immunglobulin G im Urin, 210
Immunglobulin M im Liquor, 189
Immunglobulin M im Serum, 120
Immunglobulin-G-Subklassen, 120
Immunglobuline, 120
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunhyperthyreose, 142
Immunstatus, zellulärer, 118
Immunstatusbestimmung, 63
Impferfolgskontrolle, 63
Infektionen, pränatale, 94
Influenza-Viren, 64
INH (Isoniazid), 202
Inhibin B, 160
INR (International Normalized Ratio), 168
Inselzell-AAK (ICA), 129
Insulin, 160
Insulin-Auto-AK (IAA), 129
Insulin-like Growth Factor 1 (IGF-1), 160
Insulin-Rezeptor-AAK, 129
Insulinom-Abklärung, 154
Insulinresistenz-Index (HOMA), 159
Intaktes Proinsulin, 163
Interferon-gamma-release Assay (IGRA), 238
Interleukin 28B, 115
Interleukin 6, 122
Interleukin-2-Rezeptor, löslicher, 122
Interzellularsubstanz-AAK, 132
Intraoperativer Abstrich (Mikrobiologie), 230
Intrinsic-Faktor-AAK, 129
Iod, 192
Irinotecan (Pharmakogenetik), 116
Isoelektrische Fokussierung, Liquor, 189
Isoenzyme der Amylase, 181
Isoenzyme der AP, 182
Isoenzyme der CK, 180
Isoenzyme der LDH, 185
Isoniazid, 202
Itraconazol, 202
J
JC-Virus (Polyomaviren), 75
JCA, 141
JIA, 141
Jo-1-AAK, 129
Jod, 192
Juvenile idiopathische Arthritis, 141
K
K.-o.-Tropfen, GHB, 218
Kala Azar (Leishmaniose), 245
Kalium im Serum, 185
Kalium im Urin, 210
Kälteagglutinine, 179
Kälteautoantikörper, 179
Kaposi-Sarkom (HHV8), 61
Kappa-Leichtketten, 188
Karyotypisierung, 97
Katecholamine im Plasma, 161
Katecholamine im Urin, 160
Katzenkratzkrankheit, 29
KCE (Keratokonjunktivitis epid.), 27
Keratokonjunktivitis epid. (Adenoviren), 27
Ketamin im Serum (Bestätigung), 223
11
Stichwortverzeichnis
Ketamin im Urin (Bestätigung), 219
Keuchhusten, 30
Kinderlähmung (Poliomyelitis), 75
Kleihauer-Bethke-Test, 118
kleines Blutbild, 174
knochenspezifische AP, 195
Kochsalzausscheidung im Urin, 211
Kokain im Serum (Bestätigung), 222
Kokain im Serum (Screening), 220
Kokain im Urin (Bestätigung), 217
Kokain im Urin (Screening), 216
Kokainmetabolit im Serum (Bestätigung), 222
Kokainmetabolit im Serum (Screening), 220
Kokainmetabolit im Urin (Bestätigung), 217
Kokainmetabolit im Urin (Screening), 216
Komplementaktivität, gesamth. (CH100), 120
Komplementsystem, 120
Konjunktivalabstrich (Mikrobiologie), 235
Konjunktivitis, neonatal (DD), 109
Kreatinin im Serum, 185
Kreatinin im Urin, 213
Kreatinin-Clearance, 211
Krupp, 38
Kryofibrinogen, 189
Kryoglobuline, 189
Kryptosporidien, 245
Ku-Antigen-AAK, 129
Kupfer im Serum, 192
Kupfer im Urin, 192
L
LA (Lupus-Antikoagulans), 172
La/SSB-AAK, 135
Lactat im Plasma, 185
Lactat-Dehydrogenase (LDH), 185
Lactoferrin im Stuhl, 214
Lactose-Intoleranz Mutationsanalyse, 115
Lactose-Toleranz-Test, 155
Laktat im Plasma, 185
Lambda-Leichtketten im Serum, 189
Lambert-Eaton-Syndrom, 142
Lambliasis, 244
Lamotrigin, 203
LC1-AAK, 130
LCM-Virus, 66
LDH (Lactat-Dehydrogenase), 185
LDH-Isoenzyme, 185
LDL-Cholesterin, 186
Leber-Nieren-Mikrosomen-AAK, 129
Lebercytosol-Antigen-1-AAK, 130
Leberegel, großer, 243
Legionärskrankheit, 64
Legionellen, 64
Legionellen im Wasser (Hygiene), 252
Legionellen-Antigen im Urin, 228
Leichtketten, freie (BJP) im Urin , 209
Leichtketten, Typ Kappa i. S., 188
Leichtketten, Typ Lambda i. S., 189
12
Leiden-Mutation (Faktor V), 116
Leishmaniose, 245
Leptospirose, 65
Leukämie-/Lymphomtypisierung, 118
Levetiracetam, 203
LGI1-AAK, 130
LH (luteinisierendes Hormon), 162
LH-RH-Test, 154
LH/FSH-Stimulationstest, 154
Lipase, 186
Lipid-beladene Makrophagen, 119
Lipid-Elektrophorese, 186
Lipoprotein (a), 186
Lipoprotein-Elektrophorese, 186
Liquorkultur (Mikrobiologie), 227
Listerien, 66
Lithium, 203
LKM-AAK (Leber-Nieren-Mikros.-AAK), 129
Loa loa, 247
Lorazepam, 203
löslicher Interleukin-2-Rezeptor (sIL2-R), 122
Löslicher Transferrin-Rezeptor, 192
Lp (a) (Lipoprotein a), 186
LSD im Serum (Bestätigung), 222
LSD im Serum (Screening), 221
LSD im Urin (Bestätigung), 218
LSD im Urin (Screening), 216
LTT (Lactose-Toleranz-Test), 155
Lues, 82
Lupus-Antikoagulans, 172
Lupus-Inhibitoren (Lupus-Antikoagulans), 172
luteinisierendes Hormon, 162
Lyme Disease, 32
Lymphadenitis (DD), 103
Lymphadenopathie-Syndrom (DD), 104
Lymphogranuloma inguinale/venereum, 36
Lymphozyt. Choriomeningitis-Virus, 66
Lyssa (Tollwut), 84
M
M. Addison, 142
M. Bang (Brucellose), 33
M. Basedow, 142
M. Bechterew, 115
M. Bornholm, 44
M. Crohn (Autoantikörper), 143
M. Meulengracht, 116
M. Pfeiffer (EBV), 45
M. Wegener (Vaskulitis), 148
M. Weil (Leptospirose), 65
M. Whipple, 88
Ma1-AAK, 130
Ma2/Ta-AAK, 130
Magnesium im Serum, 186
Magnesium im Urin, 211
Magnesium, intraerythrozytär, 186
MAK (TPO-AK), 136
Makro-CK, 186
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Malaria, 246
Malaria-Diagnostik, 246
Maltafieber (Brucellose), 33
Masern, 67
Mastzell-Tryptase, 192
MEFV (Familiäres Mittelmeerfieber), 114
Meningitis (DD), 100
Meningitis, neonatal (DD), 108
Meningokokken, 68
Mesuximid (N-Desmethylmesuximid), 203
Metanephrine im Plasma, 161
Metanephrine im Urin, 162
Metapneumovirus, 62
Methadon im Serum (Bestätigung), 222
Methadon im Serum (Screening), 221
Methadon im Urin (Bestätigung), 218
Methadon im Urin (Screening), 216
Methämoglobin, 175
Methotrexat, 116
Methsuximid, 203
Methylentetrahydrofolat-Reduktase, 116
Methylphenidat, 203
MGT-30 (Titin)-AAK, 130
Mi-2-Autoantikörper, 130
Midazolam, 203
Mikroangiopathie, thrombotische, 43
Mikroglobulin, beta-2, 196
Mikroglobulin, beta-2 im Urin, 208
Mikroskopische Polyangiitis (Vaskulitis), 148
Mikrosomale SD-AK (TPO-AK), 136
Mikrozephalie (DD), 108
Miller-Fischer-Syndrom, 142
Mischkollagenose (Autoantikörper), 142
Missbildungen (DD), 107
Mitochondriale AAK (AMA), 123
Mittelmeerfleckfieber (Rickettsien), 77
Mittelstrahlurin, 208
Morbus Addison, 142
Morbus Bang (Brucellose), 33
Morbus Basedow, 142
Morbus Bechterew, 115
Morbus Bornholm, 44
Morbus Crohn (Autoantikörper), 143
Morbus Meulengracht, 116
Morbus Pfeiffer (EBV), 45
Morbus Whipple, 88
Morphin/Opiate (Bestätigung), 222
Morphin/Opiate im Serum (Screening), 221
Morphin/Opiate im Urin (Bestätigung), 218
Morphin/Opiate im Urin (Screening), 216
MPO-AAK (Myeloperoxidase-AAK), 131
MRSA-DNA , 252
MTHFR-Mutationsanalyse, 116
Müdigkeitssyndrom (DD), 105
Multifokale Motorneuropathie, 143
Mumps, 68
Murines Fleckfieber (Rickettsien), 77
MuSK-AAK, 133
Muskelspezifische Tyrosinkinase-AAK, 133
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mutterschaftsvorsorge, 93
MuVo (Mutterschaftsvorsorge), 93
Myasthenia gravis (Autoantikörper), 143
Mycoplasma genitalium, 69
Mycoplasma hominis, 69
Mycoplasma pneumoniae, 70
Myelin assoz. Glycoprotein-AAK, 131
Myeloperoxidase-AAK (MPO-AAK), 131
Mykobakterien-Diagnostik, 237
Mykoplasmen (Mikrobiologie), 234
Myoglobin im Serum, 186
Myoglobin im Urin, 211
Myokarditis (DD), 102
Myokarditis, neonatal (DD), 109
Myoklonus, 143
Myositis (DD), 107
N
Nachweis parodontopathogener Erreger, 233
Naples-Virus (Sandfly Fever), 81
Nasennebenhöhlen (Mikrobiologie), 232
Natrium im Serum, 187
Natrium im Urin, 211
Nebennierenrinden-AAK, 131
Nebenschilddrüsen-AAK, 131
Necator americanus (Hakenwurm), 248
Neisseria gonorrhoeae, 49
Neisseria meningitidis, 68
Nematoden, 243, 247
Nematoden-AK IFT, 247
Neopterin, 122
Nephropathia epidemica, 50
Neuroborreliose, 32
Neuronspezifische Enolase (NSE), 197
Neuronukleäre AAK Typ 1 (Hu), 128
Neuronukleäre AAK Typ 2 (Ri), 133
Neuronukleäre AAK Typ 3, 131
Neutralisationsteste, 71
Neutrophilen-AAK, zytoplasm. (c-ANCA), 124
NH3 im Plasma, 181
Nierenstein-Analyse, 210
Nierenversagen (DD), 105
Nikotin-Metabolit im Urin, 218
NL63-Coronavirus, 38
NMDA-Rezeptor-AAK, 131
NMO (Aquaporin 4)-AAK, 123
NMP 22 (Nukleäres Matrix-Protein 22), 197
NNR-AAK (Nebennierenrinden-AAK), 131
Noradrenalin im Plasma, 162
Noradrenalin im Urin, 161
Norbuprenorphin im Serum (Bestätigung), 223
Norbuprenorphin im Urin (Bestätigung), 217
Normetanephrin im Urin, 161
Noroviren, 71
Nortilidin im Serum (Bestätigung), 224
Nortilidin im Urin (Bestätigung), 219
Norwalk-like-Virus, 71
Norzolpidem im Serum (Bestätigung), 224
13
Stichwortverzeichnis
Norzolpidem im Urin (Bestätigung), 219
Norzopiclon im Serum (Bestätigung), 224
Norzopiclon im Urin (Bestätigung), 220
NSE (Neuronspezifische Enolase), 197
nt-pro-BNP, 180
NT-Screening, 164
Nukleäres Matrix-Protein 22 (NMP 22), 197
Nukleosomen-AAK, 131
O
oGTT (oraler Glucose-Toleranz-Test), 155
OH-Progesteron, 17-, 163
okkultes Blut im Stuhl, 213
Olanzapin, 204
oligoklonale Banden im Liquor, 189
Onchocerca volvolus, 247
Opiate im Serum (Bestätigung), 222
Opiate im Serum (Screening), 221
Opiate im Urin (Bestätigung), 218
Opiate im Urin (Screening), 216
Opioide Haaranalytik (MPU), 225
Opsoklonus, 143
oraler Glucose-Toleranz-Test (oGTT), 155
Orchitis (DD), 107
Orient-Beule (Leishmaniose), 245
Ornithose (C. psittaci), 36
Osmolalität im Serum, 187
Osmolalität im Urin, 211
Osmotische Resistenz, 176
Ostase, 195
Östradiol, 159
Östriol, 159
Östron, 159
Oxalsäure im Urin, 211
Oxazepam, 204
Oxcarbazepin, 204
Oxycodon im Serum (LCMSMS), 223
Oxycodon im Urin (LCMSMS), 219
Oxymorphon im Serum (LCMSMS), 223
Oxymorphon im Urin (LCMSMS), 219
P
p-ANCA, 131
PAI-1-Polymorphismus, 116
Panarteriitis nodosa (Autoantikörper), 143
Pankreas-Acinusepithel-AAK, 132
Pankreatische Elastase 1 im Serum, 187
Pankreatische Elastase 1 im Stuhl, 214
Pankreatitis, infektiös (DD), 107
Papageienkrankheit (C. psittaci), 36
Papilloma-Viren, humane (HPV), 71
PAPP-A, 164
Pappataci-Fieber, 81
Paracetamol, 204
Parainfluenza-Viren, 72
Paraneoplastische Syndrome, 143
Parapertussis, 30
Parathormon, intakt (PTH), 162
14
Parathormon-related Protein (PTHrP), 198
Parechoviren, 73
Paresen infektiöser Genese (DD), 101
Parietalzellen-AAK, 132
Parodontitis, 233
Parotitis epidemica (Mumps), 68
Parotitis, infektiös (DD), 107
Paroxys. nächtl. Hämoglobinurie (PNH), 118
partielle Thromboplastinzeit (PTT), 168
Parvovirus B19, 73
PBC (Autoantikörper), 145
PCA-1 (Yo-AAK), 137
PCA-2-AAK, 133
PCT (Procalcitonin), 122
PE 1 (Pankr. Elastase 1) im Stuhl, 214
Pemphigoid-gestationis-AAK, 132
Pemphigus foliaceus, 144
Pemphigus vulgaris (Autoantikörper), 144
Pemphigus-AAK, 132
Penis-/Vulva-Läsionen (DD), 105
Periprothet. Infektion (Mikrobiologie), 236
Pertussis (Keuchhusten), 30
Pfeiffersches Drüsenfieber (EBV), 45
Pharyngitis (DD), 97
Phencyclidin im Serum (Bestätigung), 222
Phencyclidin im Serum (Screening), 221
Phencyclidin im Urin (Bestätigung), 218
Phencyclidin im Urin (Screening), 216
Phenobarbital, 204
Phenytoin, 204
Phosphat im Serum, 187
Phosphat im Urin, 212
Phosphatase, alkalische (AP), 181
Phosphatase, alkalische, Isoenzyme, 182
Phospholipase A2-Rezeptor-AAK, 132
Phospholipid-Autoantikörper, 132
Phyllochinone, 195
Pilze (Nukleinsäurediagnostik), 113
Pilze im Stuhl (Mikrobiologie), 232
Pilzinfektionen der Haut (Mikrobiologie), 240
Placental Growth Factor (PlGF), 163
PLAP, 197
Plasma, plättchenarm, 167
Plasmathrombinzeit (PTZ), 168
Plasminogen-Akt.-Inhib.Polymorph., 116
Plasmodien, 246
plättchenarmes Plasma, 167
Plazenta-Isoenzym der AP, 197
Pleurodynie (DD), 107
PlGF, 163
PM-Scl-AAK, 132
PML (progr. multifok. Leukenzephalop.), 75
Pneumocystis carinii (P. jirovecii), 75
Pneumocystis jirovecii, 75
Pneumokokken, 75
Pneumonie (DD), 98
Pneumonie, neonatal (DD), 109
PNH-Diagnostik, 118
PNS, 143
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Poliomyelitis, 75
Poly-/Dermatomyositis (Auto-AK), 145
Polyneuropathie, 140
Polyomaviren, 75
Polyradikulitis (DD), 101
Porphobilinogen, 212
Porphyrie-Diagnostik, 212
Porphyrine im Urin, gesamt, 212
Porphyrine, Differenzierung, 212
Post-partum-Thyreoiditis, 145
pp65-Antigen, 41
Präeklampsie, 95
Pränatale Diagnostik, 94
pränatale Infektionen, 94
Pregabalin, 204
Pregnancy-associated Plasma Protein A, 164
Price-Jones-Kurve, 176
Primär skleros. Cholangitis (Auto-AK), 145
Primäre biliäre Zirrhose (Autoantikörper), 145
Primidon, 205
Probenkennzeichnung, 22
Probentransport, 24
Procalcitonin, 122
Progesteron, 163
Progesteron, 17-OH-, 163
Progressive syst. Sklerose (Auto-AK), 145
Proinsulin, intakt, 163
Prolaktin, 163
Prostata-spezifisches Antigen (PSA), 198
Protein C-Aktivität, 171
Protein C-Antigen, 173
Protein S, Antigen gesamt, 173
Protein S-100, 198
Protein, Retinol-bindendes im Urin, 212
Protein-Elektrophorese im Serum, 189
Proteinase-3-(PR3)-AAK, 133
Proteindifferenzierung im Urin, 208
Proteine, gesamt im Urin, 210
Prothrombin-Mutationsanalyse, 116
Protozoen (Nukleinsäurediagnostik), 113
PSA (Prostata-spezifisches Antigen), 198
PSA im Seminalplasma, 167
PSC (Auto-AK), 145
Pseudokrupp, 49, 72
Pseudomonas-aeruginosa-Antikörper, 76
Psittakose (Chlamydia psittaci), 36
PSS (Auto-AK), 145
PTH, intakt (Parathormon), 162
PTHrP (Parathormon-related Protein), 198
PTT (partielle Thromboplastinzeit), 168
PTZ (Plasmathrombinzeit), 168
Purkinjezell-AAK Typ1, 137
Purkinjezellantigen Typ2-AAK, 133
Purkinjezellen (Tr)-AAK, 136
Pustelabstrich (Mikrobiologie), 230
Puumala-Virus, 50
Pyridinoline im Urin, 195
Pyridoxin, 193
Pyrimethamin, 205
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Pyruvat, 187
Q
Q-Fieber, 38
Qualitätsmanagement, 24
Quantiferontest , 239
Quetiapin, 205
Quick (TPZ), 168
Quincke-Ödem, hereditäres (C1-Inhib.), 121
R
Rabies (Tollwut), 84
Rachen-/Tonsillenabstrich (Mikrobiologie), 233
RAJI-Zelltest, 138
Rapamycin (Sirolimus), 205
Rapid-progressive GN (Autoantikörper), 146
RAST (allergenspezifisches IgE), 191
RBP (Retinol-bindendes Protein) im Urin, 212
Reiber-Schema (Blut-Liquor-Schranke), 189
Renin, 163
Resistenz d. Fakt.V g. akt. Prot.C (APCR), 172
Resistenz, osmotische, 176
Respirationstraktinfekte (Mikrobiologie), 228
Respiratory Syncytial Virus (RSV), 76
Ret-Hb, 176
Retikulozyten, 176
Retinol, 193
Retinol-bindendes Protein im Urin, 212
Rezeptor-Tyrosinkinase-AAK, 133
RF, 138
Rh-Faktor (Rhesus-Faktor), 178
Rhesus D weak, 115
Rhesus-Typisierung, genetisch, 115
Rheumafaktor, 138
Rheumatoide Arthritis (Autoantikörper), 146
Rheumatoides Epitop, 115
Rhinoviren, 77
Ri-AAK, 133
Riboflavin, 193
ribosomales P-Protein (Ribosomen-AAK), 133
Ribosomen-AAK, 133
Rickettsia africae, 77
Rickettsia conorii, 77
Rickettsia rickettsii, 77
Rickettsien, 77
Rifampicin, 205
Rinderbandwurm, 250
Ringelröteln (Parvovirus B19), 73
Risperidon, 205
Ristocetin-Cofaktor, 169
RNP-AAK, 137
RNP70-AAK, 133
Ro/SSA-AAK, 135
Rocky-Mount.-Spotted Fever (Rickettsien), 77
Rotaviren, 79
Röteln, 80
RPI (Retikulozyten-Reproduktions-Index), 175
RPR, 83
15
Stichwortverzeichnis
RSV (Respiratory Syncytial Virus), 76
Rubella, 80
S
S-100-Protein, 198
SAA (Serum-Amyloid A), 122
Saccharomyces-cerevisiae-AK, 134
Salmonellen, 81
Sammelurin, 208
Sammelurin (24h), 208
Sandfly Fever, 81
Säure-Serum-Test (ersetzt d. PNH-Diag.), 118
SCC (Squamous Cell Carc.-assoc.-Ag), 198
Schilddrüsen-AAK, 134
Schilddrüsen-Diagnostik, 164
Schistosomen, 249
Schnelldiagnostik, 25
Schweinebandwurm, 250
scIgA (Immunglob. A, sekr.), 120
Scl-70-AAK, 134
SD-AK (Schilddrüsen-AAK) , 134
Sediment, Urin, 213
Selen, 193
Seoul-Virus, 50
Sepsis (Mikrobiologie), 228
Sepsis, neonatal (DD), 108
Serotonin im Plasma, 165
Serum-Amyloid A (SAA), 122
Serumeiweiß-Elektrophorese, 189
Sexualhormon-bindendes Glob.(SHBG), 165
sFlt-1, 165
sFlt-1/PlGF-Quotient, 165
shared epitope, 115
Sharp-Syndrom, 142
SHBG (Sexualhormon-bindendes Glob.), 165
Shigellose, 82
Sicca-Syndrom (Autoantikörper), 146
Sichelzellanämie (Hb-Elpho), 178
Sichelzelltest, 178
Sicilian Virus (Sandfly Fever), 81
Siderophagen, 119
sIL2-R (löslicher Interleukin-2-Rezeptor), 122
Sin-nombre-Virus, 50
Sirolimus (Rapamycin), 205
Sjögren-Syndrom (Autoantikörper), 146
Skelettmuskulatur-AAK, 134
Sklerodermie (Auto-AK), 145
SLA (soluble-liver-Ag-AAK), 135
SLE (Autoantikörper), 147
Slow-Virus-Krankheiten, 104
Sm-AAK, 134
SMA (Glatte Muskulatur-AAK), 127
Soluble-liver-Ag (SLA-)-AK, 135
Somatomedin C (IGF-1), 160
Somatotropes Hormon (STH), 165
Soordiagnostik (Mikrobiologie), 240
SOX1-AAK, 135
sp-100-AAK, 135
16
Spannungsgesteuerte Calciumkanal-AAK, 137
Spannungsgesteuerte Kaliumkanal-AAK, 137
Spermatozoen-AAK, 135
Spermiogramm, 166
Sphärozytose (EMA-Test), 176
Sprue (Antikörper), 149
Sputum (Mikrobiologie), 229
Squamous Cell Carc.-assoc.-Ag (SCC), 198
ss-DNA-AAK, 135
SSA-AAK, 135
SSB-AAK, 135
SSPE (Masern), 67
Stachelzell- (Desmoglein)-AAK, 132
Status, Urin, 213
Steinanalyse, 210
Sterilisatoren (Hygieneuntersuchung), 253
Sterillösungen (Hygieneuntersuchung), 254
sTfR (löslicher Transferrinrezeptor), 192
STH (Somatotropes Hormon), 165
Stiff-Person-Syndrom (Profil), 147
STORCH, 94
Streptokokken, beta-hämolysierende, 234
Streptokokken-DNAse, 138
Strongyloides stercoralis, 248
Subakut skleros. Panenzephal. (Masern), 67
Subutex® im Serum (Bestätigung), 223
Subutex® im Urin (Bestätigung), 217
Subutex® im Urin (Screening), 215
Sulfadiazin, 206
Sultiam, 206
Synovialdiagnostik, 187
Syphilis, 82, 83
Syst. Lupus erythem. (Autoantikörper), 147
T
T-Helferzellen, 118
T-SPOT.TB, 239
T3, freies, 164
T4, freies, 164
Ta-AAK, 130
Tacrolimus, 206
Taenien, 250
TAK (Thyreoglobulin-AAK), 136
Tartrat-res. Saure Phosphat. 5b , 195
Tau-Protein im Liquor, 190
TB-Elispot, 239
TBE (Tick-borne Encephalitis, FSME), 48
Teicoplanin, 206
Temazepam, 206
Temgesic® im Serum (Bestätigung), 223
Temgesic® im Urin (Bestätigung), 217
Temgesic® im Urin (Screening), 215
Testosteron, 166
Testosteron, freies, 166
Tetanus, 37
TG (Thyreoglobulin), 165
Thalassämie-Abklärung (Hb-Elpho), 178
Theophyllin, 206
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Stichwortverzeichnis
Thiamin, 193
Thiopurin-Methyltransferase, 115
Thrombinzeit, 168
Thrombophiliediagnostik, 171
Thromboplastinzeit (Quick, TPZ), 168
Thromboplastinzeit, partielle (PTT), 168
Thromboserisiko, Abklärung, 171
Thrombozyten, 169
Thrombozyten-AAK, 136
Thrombozytenfunktionstest, 169
Thrombozytopenie, autoimmune , 148
Thyreoglobulin (TG), 165
Thyreoglobulin-AAK (TAK), 136
Thyreoiditis post partum, 145
Thyreoiditis, chronisch lymphozytär, 148
Thyreoperoxidase-AK, 136
Thyroxin, freies, 164
Tick-borne Encephalitis (FSME), 48
Tilidin im Serum (Bestätigung), 224
Tilidin im Urin (Bestätigung), 219
Tissue Polypeptide Antigen (TPA), 198
Titin-AAK (MGT-30-AAK), 130
Tobramycin, 206
Tocopherol (Vitamin E), 194
Tollwut, 84
Topiramat, 207
Topoisomerase-I-AAK (Scl-70-AAK), 134
TORCH, 94
Toscana-Virus (Sandfly Fever), 81
Toxocara canis, 250
Toxoplasmose, 85
TPA (Tissue Polypeptide Antigen), 198
TPMT, 115
TPO-AK, 136
TPPA (Luessuchreaktion), 82
TPZ (Thromboplastinzeit, Quick), 168
Tr-AAK, 136
Tr-PCA-AAK, 136
Trachealsekret (Mikrobiologie), 229
Tracheobronchitis, Krupp (DD), 98
TRAK (TSH-Rezeptor-AK), 136
Tramadol im Serum (Bestätigung), 224
Tramadol im Urin (Bestätigung), 219
Transferrin, 177
Transferrin im Urin, 213
Transferrin-Rezeptor, löslicher, 192
Transferrinsättigung, 177
Transglutaminase-AK, 136
TRAP-5b, 195
Treponema pallidum, 82
TRH-Test, 164
Trichinella spiralis, 251
Trichinose, 251
Trichomonas vaginalis, 251
Trichomoniasis , 251
Trichuris trichura (Peitschenwurm), 249
Triglyceride, gesamt, 187
Trijodthyronin, freies, 164
Trimipramin, 207
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Trinkwasser (Hygiene), 252
Tripper (Gonorrhoe), 235
Trisomie-21-Risikoabschätzung, 164
Tropheryma-whipplei-DNA, 88
Troponin T, 180
TropT (Troponin T), 180
Tryptase, 192
TSH nach Stimulation, 164
TSH, basal, 164
TSH-Rezeptor-AK (TRAK), 136
Tsutsugamushi-Fleckfieber (Rickettsien), 77
tTG, 136
Tuberkulose (Diagnostik), 237
Tularämie (Hasenpest), 47
Turner-Syndrom, 97
TWAR (C. pneumoniae), 35
Typhus (Salmonellen), 81
Tyrosinphosphatase-AAK (IA2), 137
U
U1-RNP-AAK, 137
U3-nRNP/Fibrillarin-AAK, 137
uE3 (freies Estriol), 159
Ullrich-Turner-Syndrom, 97
Unteraufträge, 24
Untersuchungsdauer (Bakteriologie), 227
Ureaplasma parvum, 88
Ureaplasma urealyticum, 88
Ureaplasmen (Mikrobiologie), 234
Uricult (Mikrobiologie), 231
Urin, nativ (Mikrobiologie), 230
Urinsediment, 213
Urinstatus, 213
V
Vaginalabstrich (Mikrobiologie), 234
Valproinsäure, 207
Vancomycin, 207
Vanillinmandelsäure im Urin (VMA), 162
Varizella-Zoster-Virus (VZV), 88
Vaskulitis (Autoantikörper), 148
Vasopressin (ADH), 156
VDRL, 83
Versand, 24
VGCC (P/Q Typ)-AAK, 137
VGKC (CASPR2), 125
VGKC (LGI1), 130
Vigabatrin, 207
Viren (Nukleinsäurediagnostik), 111
Viruslast, HBV, 54
Viruslast, HCV, 55
Viruslast, HIV, 62
Vitamin A, 193
Vitamin B 1, 193
Vitamin B 12, 193
Vitamin B 2, 193
Vitamin B 6, 193
Vitamin C, 194
17
Stichwortverzeichnis
Vitamin D, (25-OH), 194
Vitamin D, 1,25(OH)2, 194
Vitamin E (alpha-Tocopherol), 194
Vitamin H (Biotin), 195
Vitamin K, 195
VMA im Urin (Vanillinmandelsäure), 162
VMS im Urin (Vanillinmandelsäure) , 162
von-Willebrand-Faktor (VWF), 169
VWF (von-Willebrand-Faktor), 169
VZV (Varizella-Zoster-Virus), 88
Zolpidem im Urin (Bestätigung), 219
Zonisamid, 207
Zopiclon (therapeutisch), 207
Zopiclon im Serum (Bestätigung), 224
Zopiclon im Urin (Bestätigung), 220
Zoster (VZV), 88
Zwergfadenwurm (S. stercoralis), 248
Zystitis, hämorrhagisch (DD), 105
Zystizerkose, 250
Zytogenetik, 97
W
Wachstumshormon (STH), 165
Wachstumshormon- (STH-) Stim.-Test, 155
Wärmeautoantikörper, 179
Wasserproben (Hygieneuntersuchung), 252
weak D, 115
Weiterleitung, 24
West-Nil-Virus, 90
Whipple, Morbus, 88
Willebrand-Faktor (VWF), 169
Windpocken (VZV), 88
WNV (West-Nile-Virus), 90
Wolhynisches Fieber, 29
Wuchereria bancrofti, 247
Wundinfektionen (Mikrobiologie), 229
Wundstarrkrampf (Tetanus), 37
Würmer, 243, 247
X
XTC/Ecstasy im Serum (Bestätigung), 221
XTC/Ecstasy im Serum (Screening), 220
XTC/Ecstasy im Urin (Bestätigung), 217
XTC/Ecstasy im Urin (Screening), 215
Xylose im Blut, 188
Xylose im Urin, 213
Xylose-Belastungstest, 153
Y
Yersiniosen, 91
Yo-AAK, 137
Z
Zahorsky-Krankheit (Coxsackie-Viren), 44
Zeckenfieber (Rickettsien), 77
Zeckenübertragene Erkrankungen, 92
Zellkern-AAK (ANA), 123
Zentromere-AAK, 138
Zervizitis, Vulvovaginitis (DD), 105
Ziegenpeter (Mumps), 68
Zika-Virus, 92
Zink im Seminalplasma, 167
Zink im Serum, 193
Zirkulierende Immunkomplexe, 138
ZNS-Infektionen (Mikrobiologie), 227
Zöliakie, 116
Zöliakie (Antikörper), 149
Zolpidem im Serum (Bestätigung), 224
18
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Allgemeines
Abkürzungen
AAK
AAS
Ag
Aggl
AK
BAL
CEDIA
CLIA
CMIA
DNA/DNS
EA
ECL
ECLIA
EIA
ELA
Elispot
ELPHO
ENZ
F
FEIA
FPIA
FTA-ABS
GC
HAH (HHT)
HPLC
HYBR
IEF
IFT
IGeL
IHAT
ILMA
IRMA
ISAGA
ISE
LCMSMS
LIA
LTT
M-EIA
MEIA
MS
NAT
NT
OMIM
PCR
RAST
RIA
RNA/RNS
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Autoantikörper
Atom-Absorptions-Spektrometrie
Antigen
Agglutination
Antikörper
Bronchoalveoläre Lavage
Cloned Enzyme Donor Immuno Assay
Chemilumineszenz Immuno Assay
Chemilumineszenz-Mikropartikel-ImmunoAssay
Desoxyribonukleinsäure
Early Antigen
Elektrochemolumineszenz
Elektrochemilumineszenz Immuno Assay
Enzyme Immuno Assay
Enzyme Linked Antigen Assay
Enzyme Linked Immuno Spot Technique
Elektrophorese
enzymatische Bestimmung
Fremdleistung
Fluoreszenz-Enzym-Immuno-Assay
Fluoreszenz-Polarisations-Immuno-Assay
Fluoreszenz-Treponema-Absorptionstest
Gaschromatographie
Haemagglutinations-Hemmtest
Hochleistungs-Flüssigkeitschromatographie
Hybridisierung
Isoelektrische Fokussierung
Immunfluoreszenztest
Individuelle Gesundheitsleistung
Indirekter Hämagglutinationstest
Immunoluminometrischer Assay
Immunoradiometrischer Assay
Immunosorbent Agglutinations Assay
Ionenselektive Elektrode
Flüssigkeitchromatographie-Tandem-Massenspektrographie
Lumineszenz Immuno Assay
Lactose-Toleranz-Test
Membran Enzym Immunoassay
Mikropartikel-verstärkter Immunoassay
Massenspektrographie
Nukleinsäure amplifizierende Technik
Neutralisationstest
Online Mendelian Inheritance in Man
Polymerase chain reaction
Radio-allergo sorbent Test
Radio Immuno Assay
Ribonukleinsäure
19
Allgemeines
RRA
SDA
SNP
Tm
TMA
TPPA
TRACE
VDRL
WB
ZT
20
Radio Rezeptor Assay
Strand Displacement Amplification
Single Nucleotide Polymorphism
Schmelzpunktanalyse
Transcription Mediated Amplification
Treponema pallidum Partikelagglutinationstest
Time Resolved Amplified Cryptate Emission
Veneral Disease Research Laboratory Test
Western Blot
Zyklustag
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Allgemeines
Allgemeine Hinweise
Vorwort
Sehr geehrte Frau Kollegin, sehr geehrter Herr Kollege!
Unser Leistungsverzeichnis für 2017/2018 ist neu überarbeitet und liegt Ihnen in gewohnter
Form vor. Es liefert Ihnen wichtige Zusatzinformationen zu den von uns angebotenen Untersuchungen wie zum Beispiel die benötigte Menge an Untersuchungsmaterial, die Ansatzhäufigkeit, präanalytische Besonderheiten und die Normwerte/Nachweisgrenzen für Erwachsene. Alters- und geschlechtsabhängige Normwerte können Sie dem Befund entnehmen.
Für konstruktive Kritik sind wir Ihnen sehr dankbar. Sie können diese an Herrn Dr. Tewald
(0711/6357-119) weiterleiten.
Wir hoffen auf weitere gute Zusammenarbeit.
Ihr Labor Enders
Anforderungsscheine
Unsere Untersuchungsaufträge sind im Kopfbereich den Überweisungsscheinen angepasst,
wodurch der Eindruck mittels Patientenchipkarte möglich ist. Patientendaten bitte mit Adrema
oder in Blockschrift lesbar eintragen.
Bei Kassenpatienten auf dem Überweisungsschein sämtliche gewünschte Untersuchungen
eintragen.
Unsere Anforderungsscheine stehen Ihnen auch unter http://www.labor-enders.de/
formulare.html zur Verfügung.
Da die Scheine eingescannt werden, bitten wir Sie zur Vermeidung von Einlesefehlern auf eine
ausreichende Druckqualität (Schwärzung) zu achten.
Bitte Absenderangaben nicht vergessen (Stempel).
Bei Privatpatienten und IGeL-Untersuchungen bitte vollständige Postanschrift der Patienten
für die Rechnungszustellung angeben.
Anforderungsschein I (Infektiologie)
Bei Infektionsverdacht: Anamnese wie Erkrankungsbeginn, Symptome, Schwangerschaft
(vollendete Schwangerschaftswoche und Tage), Vorbefunde, bisherige Therapie, Auslandsaufenthalte, passive oder aktive Impfungen zusätzlich auf unserem Untersuchungsauftrag I (Infektiologie) angeben.
Anforderungsschein II (Klinische Chemie)
Der Untersuchungsauftrag II dient der Anforderung klinisch-chemischer, endokrinologischer und weiterer Parameter. Hier sind auch die Abnahmebedingungen für die einzelnen
Parameter vermerkt.
Anforderungsschein für die Forensische Toxikologie
Dieses Formular enthält Anforderungen zur Bestimmung von Betäubungsmitteln im Rahmen der forensischen Toxikologie aus Serum (Fahrtüchtigkeit) und Urin (Fahreignung).
Anforderungsschein für gynäkologische Endokrinologie
Dieser Anforderungungsschein ist speziell für die Fragestellung der gynäkologischen Endokrinologie entwickelt worden. Bitte geben Sie hier die für die Interpretation des Befundes
notwendigen klinischen Angaben an.
Weitere Anforderungsscheine
Weitere Formulare für spezielle Fragestellungen wie z.B. Down-Screening, HPV-Diagnostik, Untersuchung von Zecken, Molekulargenetik / Pharmakogenetik usw. sind
ebenfalls erhältlich bzw. auf unserer Internetseite herunterladbar. Für alle humangenetischen Untersuchungen ist eine Einwilligungserklärung nötig, die bei uns angefordert oder
im Internet heruntergeladen werden kann.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
21
Allgemeines
Probenkennzeichnung
Jedes Röhrchen (nicht die Versandhülle!) bitte mit Namen, Vornamen und Geburtsdatum
des Patienten sowie dem Abnahmedatum und Zeitpunkt beschriften. Alternativ empfehlen wir
die Verwendung unserer Barcode-Etiketten. Damit entfällt die Beschriftung mit Namen und
Geburtsdatum. Bei mehreren Proben, z.B. Tagesprofil o.ä., auf den Röhrchen in jedem Fall
zusätzlich den Abnahmezeitpunkt angeben. Bei (mehreren) Abstrichproben, Punktaten etc.
bitte den Entnahmeort kennzeichnen. Bei Sondermaterialien wie z.B. Fetalblut, Fruchtwasser, Urin, Brochoalveoläre Lavage (BAL) oder gefrorenen Materialien (Heparin-Plasma, EDTAPlasma, Serum) zusätzlich die Materialart angeben, da wir diese Materialarten im Labor durch
Begutachtung nicht eindeutig identifizieren können.
Untersuchungsmaterial
für Infektionsserologie, Hämatologie, Klinische Chemie, Endokrinologie, Mutterschaftsvorsorge, Pränataldiagnostik
Serum (Monovette, weiße Kappe)
30 Min. stehend gerinnen lassen, 10 Min. bei 2500 - 3000 g zentrifugieren, Überstand
(Serum) in Probenröhrchen überführen und wie angegeben versenden bzw. lagern.
Serum in Gelmonovette (braune Kappe)
30 Min. stehend gerinnen lassen, 10 Min. bei 2500 - 3000 g zentrifugieren und wie angegeben versenden bzw. lagern. Kein Abkippen notwendig.
Vollblut (geronnen)
Blut abnehmen, sofort in Probenröhrchen mit Schraubverschluss geben bzw. Blut mit (Gel)Monovette, Vakutainer ohne gerinnungshemmende Zusätze abnehmen und darin belassen.
Nicht einfrieren (Hämolyse). Ausnahme: zentrifugierte Gelmonovetten
EDTA-Blut
Blut mit EDTA-Monovette abnehmen, sofort gut durchmischen.
Plasma
EDTA-, Heparin-, Citrat- oder NaF-Vollblut durchmischen, sofort 15 Min. bei ca. 2500 - 3000
g zentrifugieren, Überstand (Plasma) in Probenröhrchen überführen (mit Pipette abpipettieren dabei 2 mm vor dem Blutkuchen stoppen; nicht abkippen) und wie angegeben versenden bzw. lagern.
plättchenarmes Plasma (s. S. 167)
Blutausstrich
1-2 gleichmäßig dünne Blutausstriche anfertigen, 10 min. lufttrocknen und beschriften.
Nicht fixieren! In Versandhülle für Objektträger verschicken.
Urin (ohne Infektionsdiagnostik)
Ein Urinsediment sollte immer aus einem frischen Mittelstrahlurin durchgeführt werden.
Die Bestimmung der klinisch-chemischen Parameter sollte i. d. R. aus einem 24h-Sammelurin erfolgen. Bei der Bestimmung aus einem Spontanurin muss der Wert auf Gramm
Kreatinin bezogen werden, Tagesschwankungen können so nicht adäquat berücksichtigt
werden.
Mittelstrahlurin (s. S. 208)
Sammelurin (s. S. 208)
Präanalytik-Fibel
Genauere Angaben zur Präanalytik finden Sie in unserer Präanalytik-Fibel, die Sie von
unserer Internetseite herunterladen können.
Untersuchungsmaterial für Blutgruppenserologie
Für die Blutgruppenbestimmung inkl. Antikörpersuchtest und direktem Antiglobulintest
(direktem Coombstest)
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Allgemeines
EDTA-Blut
Blut mit EDTA-Monovette abnehmen, sofort gut durchmischen.
Monovetten immer mit Name, Vorname und Geburtsdatum beschriften oder unsere
kostenlos zur Verfügung stehenden Barcode-Etiketten verwenden.
Untersuchungsmaterial für Virusnachweis
Virusnachweis mittels Zellkultur, Schnellanzucht und Antigen-ELISA
Für virologische und bakteriologische oder parasitologische Untersuchungen bitte getrennte Proben in separaten Entnahmegefäßen einsenden.
Bitte verwenden Sie:
- Für Liquor, Urin, Sekrete, Gelenkpunktat, Sputum, bronchoalveoläre Lavage,
Fruchtwasser und Aszites sterile Blutröhrchen ohne Zusätze (weiße Kappe)
- Für Biopsieproben sterile Röhrchen mit Zusatz von ca. 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung.
- Für Stuhlproben Stuhlröhrchen (braune Kappe)
- Für Genital-, Augen- und Rachenabstriche Röhrchen mit Virustransportmedium (grüne Kappe). Für Augenabstriche die Tupfer mit steriler physiologischer Kochsalzlösung
anfeuchten. Abstrich abnehmen, Tupfer in Virustransportmedium eintauchen, Stiel abbrechen und das Röhrchen fest verschließen.
- Für den HPV-Nachweis im Genitalabstrich bitte die speziellen Entnahme/Transportsysteme verwenden.
Beachten :
Proben bis zum Versand kühlen und wenn möglich gekühlt (Kühlkissen, Styroporbehälter)
- nicht gefroren! - versenden.
Für pränatale Diagnostik: Versand per Eilsendung (Postexpress). Der gekühlte und schnelle Transport dient zur Vermeidung falsch negativer Befunde.
Informationen zu Entnahme- und Transportbedingungen sowie entsprechendes Versandmaterial können bei uns angefordert werden.
Untersuchungsmaterial für Bakteriologie, Mykologie, Parasitologie
Bitte Transportzeiten beachten, ggf. per Eilzustellung versenden. Versandinformationen und
geeignete Versandmaterialien können kostenfrei angefordert werden. Siehe auch mikrobiologischer Teil des Untersuchungsprogramms.
Untersuchungsmaterial für Immunologie / Immunzytologie
EDTA-Blut bzw. Heparin-Blut per Eilboten versenden, da die Proben nicht älter als 24h sein
sollten. Probenentnahme und sofortiger Versand von Montag bis Donnerstag. Proben bitte
telefonisch ankündigen.
Untersuchungsmaterial für Molekularbiologie / Molekulargenetik (NAT)
NAT (z.B. PCR,TMA) sind sehr sensitive Techniken. Um Kontaminationen, d.h. falsch-positive
Ergebnisse zu vermeiden, sollten Proben (Blut, Liquor etc.) unter Verwendung frischer Einmalhandschuhe entnommen und in separate Probengefäße (EDTA-Röhrchen oder Monovetten) eingebracht werden. Das Wiederöffnen der Gefäße und Umfüllen ist strikt zu vermeiden,
ebenso der Gebrauch von Heparinröhrchen.
Heparin hemmt die PCR-Reaktion!
Eine vollständig ausgefüllte und vom Arzt und Patienten unterschriebene Einverständniserklärung des Patienten bzw. dessen gesetzlichen Vertreters ist zu allen genetischen
Untersuchungen erforderlich!
IGeL
Die Kosten für Individuelle Gesundheits-Leistungen werden Ihren Patienten privat zum 1,0
fachen Satz der GOÄ in Rechnung gestellt. Ausführliche Informationen finden Sie in unserem
gesonderten IGeL-Programm.
Bitte aktuelle Adresse des Patienten angeben!
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Allgemeines
Versand und Probentransport
Fahrdienst
Nach Vereinbarung werden Proben beim Einsender durch unseren Fahrdienst abgeholt
und fachgerecht zum Labor transportiert.
Probenversand
Soweit keine speziellen Hinweise auf die Art und Weise des Versandes angegeben sind,
kann die Probe als Briefpost in unseren Versandtüten (sind bereits vorfrankiert) versandt
werden.
Kurierservice
Auf Wunsch veranlassen wir eine tägliche Probenabholung durch unseren Kurierservice
oder per Postexpress im gesamten Bundesgebiet.
Weiterleitung / Unteraufträge
Wir behalten uns vor, Untersuchungen im Sinne einer qualitativ hochwertigen Laboranalytik,
soweit sie nicht im eigenen Laboratorium verfügbar sind, in einem anderen Labor durchführen
zu lassen. Hierbei handelt es sich ausschließlich um Labore, welche die hohen Qualitätsanforderungen nach DIN EN ISO/IEC 17025 bzw. DIN EN ISO 15189 erfüllen.
Diese von unserem Labor nicht selbst durchgeführten Analyte werden im Leistungsverzeichnis
mit (F) gekennzeichnet.
Auf Anfrage kann Name und Anschrift des jeweiligen Fremdlabors mitgeteilt werden.
Qualitätsmanagement
Das 1979 von Frau Prof. Dr. Gisela Enders gegründete medizinische Labor ist nach DIN EN
ISO 15189 und DIN EN ISO/IEC 17025 akkreditiert.
Zusätzlich war das Labor von 2004 bis März 2016 durch das College of American Pathologists
(CAP) akkreditiert und nach dem Qualitätsstandard der amerikanischen „Clinical Laboratory
Improvement Amendments“ (CLIA) zertifiziert.
Unser Labor nimmt auch weiterhin an Ringversuchen des College of American Pathologists
(CAP) teil und vervollständigt so seine Qualitätskontrolle.
Akkreditierungs-Historie:
2001: Erstakkreditierung nach DIN EN ISO/IEC 17025
seit 2006: DIN EN ISO 15189 und DIN EN ISO/IEC 17025
seit 2009: DIN EN ISO/IEC 17025 für Betäubungsmittelanalytik für forensische Zwecke
von 2004 - 03/2016: CAP (College of American Pathologists)
von 2005 - 03/2016: CLIA (Clinical Laboratory Improvement Amendments)
Normbereiche, Nachweisgrenzen und Befundinterpretation
Normbereiche werden auf unserem Befundbericht in Abhängigkeit von Geschlecht, Alter,
Schwangerschaftswoche und Zyklustag angegeben. Die Interpretationen der Untersuchungsergebnisse entsprechen dem neuesten Kenntnisstand. Sie beziehen sich auf die jeweils angegebenen Normbereiche bzw. internationalen Standards und werden mit den jeweiligen Analysewerten angegeben. Im Bereich der Infektionsserologie ist die Angabe allgemeingültiger
Normbereiche nicht immer möglich bzw. sinnvoll. Hier werden deshalb die Nachweisgrenzen
angegeben. Unsere regelmäßig aktualisierten Infos zur jeweiligen Fragestellung, z. B. Infektion in der Schwangerschaft, bei Neugeborenen, Kindern, Erwachsenen, Impfungen, rationale
Chemotherapie u. a. m. fügen wir unseren entsprechenden Befunden bei.
Messunsicherheit
Die Messunsicherheit beschreibt die Streuung von Messergebnissen. In jedem Abschnitt der
Analyse bis zur abschließenden Messung treten Abweichungen vom wahren Wert auf. Wir
ergreifen kontinuierlich Maßnahmen und führen regelmäßig Kontrollen durch, um Abweichungen und Schwankungen zu minimieren.
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Allgemeines
Unabdingbar hierfür ist auch Ihre Mithilfe:
Bitte geben Sie uns Informationen zu Probenabnahmebedingungen und Lagerung!
Wir möchten Sie darauf hinweisen, dass wir jederzeit Auskünfte zur Messunsicherheit auf
Anfrage erteilen, damit die medizinische Interpretation labordiagnostischer Ergebnisse sinnvoll und patientenorientiert erfolgen kann.
Befundmitteilung
Schriftliche Befunde werden in der Regel durch unseren Fahrdienst oder per Post zugestellt.
Auf Wunsch erfolgt die Befundübermittlung (zusätzlich bzw. ausschließlich) per Fax bzw. durch
Datenfernübertragung (Mailbox) nach Absprache. Wichtige Untersuchungsergebnisse wie z.
B. Immunstatus bei Infektionskontakt, Medikamentenspiegel und beta-hCG bei Schwangeren, positive Blutkulturen, positive Liquorbefunde, Nachweis von Enteritiserregern und andere
wichtige Ergebnisse sowie von Ihnen besonders gekennzeichnete Aufträge werden schnellstmöglich telefonisch mitgeteilt bzw. gefaxt. Bitte Telefonnummer bzw. Fax-Nummer, unter der
Sie am entsprechenden Tag zu erreichen sind, nicht vergessen!
Schnelldiagnostik
Schnelldiagnostik (Untersuchungsdauer)
Die in diesem Kapitel aufgeführten Tests werden bei zeitgerechtem Probeneingang am selben
Tag analysiert. Unabhängig davon werden selbstverständlich der Großteil an klinisch-chemischen und endokrinologischen Parametern am selben Tag bestimmt.
Bordetella pertussis PCR (s. S. 31)
Mo-Fr bis 12.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: tiefer Nasen- oder Rachenabstrich, Trachealsekret)
Indikation: V.a. Pertussis
CMV (pp65-Ag) (s. S. 39)
Mo-Fr bis 14.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: EDTA-Blut)
Indikation: Bei Immunsupprimierten und V. a. Reaktivierung
Enteritis (Schnelldiagnostik)
Mo-Fr bis 14.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
Stuhlprobe zur Abklärung bei akuter Enteritis (des Kleinkindes)
Rotavirus (s. S. 79)
Noroviren (s. S. 71)
Adenovirus (s. S. 27)
Hepatitis B (HBsAg) (s. S. 53)
Mo-Fr bis 16.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
Indikation: Nadelstichverletzungen und kurz vor Geburt bei unbekanntem HBV-Status
HIV-Test (s. S. 61)
Mo-Fr bis 14.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr (Bei dringender Indikation)
HSV 1/2 PCR (s. S. 58)
Mo-Fr bis 12.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: Liquor, Abstrich)
Indikation: V. a. Herpes-Enzephalitis
Varizellen-AK (s. S. 88)
Mo-Fr bis 16.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: Serum, Vollblut)
Indikation: Bei Kontakt in der Schwangerschaft, in Kliniken und bei Immunsuppression
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Allgemeines
Influenza-Virus RT-PCR (s. S. 64)
Mo-Fr bis 12.00, Sa bis 10.00
(Material: Rachenabstrich, bei Kindern Nasenabstrich)
Indikation: V. a. Influenza-Infektion
Pneumocystis jirovecii (s. S. 75)
Mo-Fr bis 14.00 Uhr
(Material: BAL)
Indikation: Pneumonie bei Immunsupprimierten
RSV RT-PCR (s. S. 77)
Mo-Fr bis 12.00 Uhr, Sa bis 10.00 Uhr
(Material: Trachealsekret)
Indikation: Pneumonie, Tracheitis, Bronchiolitis (insbesondere bei Säuglingen, Kleinkindern)
Malariadiagnostik (s. S. 246)
Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
(Mikroskopisch und Schnelltest)
Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malaria-Endemiegebieten
Ammoniak (s. S. 181)
Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
(Material: EDTA-Plasma)
Indikation: dekompensierte Leberinsuffizienz
PCT (Procalcitonin) (s. S. 122)
Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
Verdacht auf Sepsis, Verlaufskontrolle unter antibiotischer Therapie
Endokrinologie
Mo-Fr bis 18.00 Uhr, Sa bis 12.00 Uhr
Indikation: Schwangerschaftsüberwachung; V. a. Extrauteringravidität; nach Abrasio
beta-hCG (s. S. 158)
Östradiol (E2) (s. S. 159)
LH (s. S. 162)
Progesteron (s. S. 163)
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Infektionsserologie / Virologie
Acrodermatitis chronica atrophicans (s. S. 32)
(Borreliose)
Adenovirus-Infektionen
Bis heute sind mehr als 50 humanpathogene Serotypen identifiziert. Adenoviren infizieren
Schleimhäute und sind verantwortlich für akute, hoch fieberhafte respiratorische Infekte, Pharyngotonsillitiden, infektiöse Keratokonjunktivitiden, Gastroenteritiden, hämorrhagische Zystitiden u. a.
Inkubationszeit: 2 - 10 Tage
Die Diagnose wird vor allem durch den Erregernachweis gestellt.
Der Erregernachweis im Konjunktivalabstrich ist meldepflichtig (Keratokonjunktivitis epidemica, hoch kontagiös)!
Adenovirus-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pharyngitis, Atemwegserkrankung, Lymphadenitis, Keratokonjunktivitis, hämorrhagische Zystitis, Polyhydramnion, Enteritis (bei Kleinkindern)
Referenzbereich: <10 U/ml
Adenovirus-IgA-AK EIA
Material: Serum 500 ml, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pharyngitis, Atemwegserkrankung, Lymphadenitis, Keratokonjunktivitis, hämorrhagische Zystitis, Polyhydramnion, Enteritis (bei Kleinkindern)
Referenzbereich: <11 U/ml
Adenovirus-Antigennachweis im Stuhl
Material: Stuhl erbsgroß
Methode: Ag-EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Gastroenteritis (vor allem bei Kleinkindern)
Referenzbereich: negativ
Adenovirus-Schnellanzucht
auf Hep2-Zellen
Probenmaterial in Virustransportmedium (grüne Kappe) einsenden.
Material: Rachenabstrich, Bronchiallavage, Bronchialsekret, Augenabstrich
Methode: Schnellkultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pharyngitis, Atemwegserkrankung und Keratokonjunktivitis
Adenovirus-Anzucht in Zellkultur
Anzucht auf Graham (293)-Zellen und diploiden Fibroblasten
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Rachenabstrich, Stuhl, Urin, Fruchtwasser
Methode: Kultur
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 7 Tage)
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Adenovirus-DNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Stuhl erbsgroß, Liquor 0,5 ml, Fruchtwasser 2-5 ml (nativ),
Augenabstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Adenovirus-Infektion
Referenzbereich: negativ
Afipia felis (Katzenkratzkrankheit siehe Bartonellen) (s. S. 29)
(Früher als Erreger der Katzenkratzkrankheit vermutet. Möglicherweise doch für einen kleinen
Teil der Erkrankungen verantwortlich, jedoch ist keine Serologie verfügbar.)
AIDS (s. S. 61)
Amöbiasis (Entamoeba histolytica) (s. S. 240)
Anaplasmose (s. S. 42)
Die granulozytäre Form der Ehrlichiose wird jetzt als Anaplasmose bezeichnet.
Ancylostoma duodenale (s. S. 247)
Hakenwurm.
Arbovirosen (arthropode-borne viruses)
Eine inhomogene Gruppe von mehr als 300 Viren.
Hierzu gehören Alphaviren, Flaviviren, Bunyaviren und das Genus Orbivirus der Reoviridae.
Im weiteren Sinne werden auch (nicht durch Arthropoden übertragene) Viren der Arenaviridae,
Filoviridae und Rhabdoviridae als Arboviren bezeichnet.
Die Übertragung erfolgt in der Regel über Mücken (Culicinae, Aedes, Anopheles, Culicoides,
Phlebotomus) oder Zecken (Ixodoidea, Dermacentor, Haemaphysalis).
Dengue-Virus (s. S. 42)
FSME-Virus (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 48)
Zika-Virus (s. S. 92)
West-Nil-Virus (WNV) (s. S. 90)
Lyssa-Virus (Tollwut) (s. S. 84)
Pappatacifieber-Virus (Sandflyfever) (s. S. 81)
Chikungunya-Virus (CHIKV) (s. S. 34)
Ascaris lumbricoides (s. S. 247)
Spulwurm.
Aspergillus-Infektionen
Aspergillen wachsen auf verwesendem organischen Material (z. B. Pflanzenabfälle). Die Sporen werden in der Regel inhaliert (z. B. defekte Belüftungssysteme). Der Pilz kann eine allergische bronchopulmonale Aspergillose, ein Aspergillom oder beim immunsupprimierten Patienten eine invasive bzw. systemische Aspergillose verursachen. In >90% der Fälle wird eine
Erkrankung durch A. fumigatus verursacht.
Aspergillus fumigatus-AK IHAT
Erfasst werden auch AK gegen A. niger, A. nidulans, A. terreus, A. flavus
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IHAT
Ansatz: 3 - 4 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Aspergillom i. d. Lunge, NNH-Mykose
Referenzbereich: <1:80 Titer
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Aspergillus (Galaktomannan)-Antigen EIA
Bronchial- und Absaugsekrete sind ungeeignet! Untersuchung nur in einer bronchoalveolären Lavage (BAL) möglich.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, Bronchoalveoläre Lavage 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. invasive Aspergillose
Referenzbereich: <0,5 Index
Mikrobiologischer Nachweis von Aspergillus sp. (s. S. 240)
(kulturell und mikroskopisch)
Aspergillus-flavus-DNA
Material: Bronchiallavage, Sputum, Trachealsekret (jeweils 2 ml), Lungenbiopsie nativ
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. invasive Aspergillose
Referenzbereich: negativ
Aspergillus-fumigatus-DNA
Material: Bronchiallavage, Sputum, Trachealsekret (jeweils 2 ml), Lungenbiopsie nativ
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. invasive Aspergillose
Referenzbereich: negativ
Babesiose (s. S. 241)
Bartonellen
Die Katzenkratzkrankheit (cat scratch disease) wird durch Bartonella henselae verursacht (seltener eventuell auch durch Afipia felis).
Bartonella henselae wird überwiegend durch Biss- und Kratzwunden von Katzen übertragen. Hauptsymptom ist eine überwiegend einseitige, regionäre Lymphadenitis. Im Verlauf
der Erkrankung können Kopfschmerzen, Gliederschmerzen, Appetitlosigkeit und/oder Übelkeit auftreten. Weitere Symptome können Arthralgien, Exantheme, Thrombopenie und Parotisschwellung sein.
Bartonella quintana ist der Erreger des Wolhynischen Fiebers (sehr selten).
Die Übertragung von B. quintana erfolgt über den Kot von Kleiderläusen.
Beide Erreger können beim Immunsupprimierten die bazilläre Angiomatose verursachen, bei
der es zu einer vasoproliferativen Störung der Haut, Schleimhäute, Lymphknoten und der inneren Organe kommt.
Inkubationszeit (Katzenkratzkrankheit): variabel 2 - 4 Wochen
Bartonella-henselae-IgG-AK IFT
Katzenkratzkrankheit
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Bartonellose, Katzenkratzkrankheit, Lymphadenitis, bazilläre Angiomatose
Referenzbereich: <1:64 Titer
Bartonella-henselae-IgM-AK IFT
Katzenkratzkrankheit
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Bartonellose, Katzenkratzkrankheit, Lymphadenitis, bazilläre Angiomatose
Referenzbereich: <1:20 Titer
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Bartonella-quintana-IgG-AK IFT
Wolhynisches Fieber (in Deutschland selten)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Plötzlich einsetzende Fieberschübe von etwa 3-5 Tagen Dauer, Arthralgien,
Kopfschmerzen
Referenzbereich: <1:64 Titer
Bartonella-quintana-IgM-AK IFT
Wolhynisches Fieber (in Deutschland selten)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Plötzlich einsetzende Fieberschübe von etwa 3-5 Tagen Dauer, Arthralgien,
Kopfschmerzen
Referenzbereich: <1:20 Titer
Bartonella-henselae/quintana-DNA
Material: Biopsie nativ (z.B. von Haut oder Lymphknoten), Abstrich trocken oder in sterilem
Röhrchen mit 1 ml NaCl (z.B. von Wunde oder Haut)
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Bartonellose, Katzenkratzkrankheit, bazilläre Angiomatose
Referenzbereich: negativ
Bazilläre Angiomatose (s. S. 29)
(Bartonellen-Infektion bei Immunsupprimierten)
Bilharziose (s. S. 249)
BKV (s. S. 76)
BK-(Polyoma-)Virus
Bordetella parapertussis
Gramnegative aerobe Stäbchen, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Der Erreger
verursacht ein Pertussis-ähnliches Krankheitsbild. Die Erkrankung verläuft in der Regel leichter
als Infektionen mit B. pertussis.
Inkubationszeit: 7 - 14 Tage
Serologie siehe Bordetella pertussis (s. S. 30)
Die serologische Diagnostik erfolgt mittels Antikörpernachweis gegen Filamentöses Hämagglutinin. Das Fehlen von Pertussis-Toxin-AK deutet auf eine Infektion mit B. parapertussis hin.
Bordetella-parapertussis-DNA
Material: Abstrich (Nase, Rachen) trocken oder in unserem speziellen Pertussis-Transportmedium (weiße Kappe), Trachealsekret 2 ml
Methode: PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Tracheitis, Bronchitis, pertussiformer Husten. Früher Nachweis des Erregers,
auch bei Kontaktfällen (im Sinne einer Umgebungsuntersuchung) in der Inkubationszeit.
Erregernachweis nach antibiotischer Anbehandlung, bei geimpften Personen.
Referenzbereich: negativ
Bordetella pertussis (Keuchhusten)
Gramnegative aerobe Stäbchen, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Die Erkrankung ist sehr ansteckend, vor allem ungeimpfte Säuglinge bis 6 Monate können schwer erkran-
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
ken. Die Erkrankung verläuft in drei Stadien, Stadium catarrhale, Stadium convulsivum, Stadium decrementi. Antikörper sind meist erst 2-3 Wochen nach Beginn des konvulsiven Stadiums
nachweisbar. Die frühzeitige Diagnostik erfolgt mittels Erregernachweis (PCR).
Inkubationszeit: 7 - 14 (- 20) Tage
B. pertussis-(Pertussis-Toxin)-IgG-AK EIA
Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver!
Zur Beurteilung der Serologie ist die Angabe der Impfanamnese erforderlich!
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion mit B. pertussis, Impferfolgskontrolle (eingeschränkt)
Referenzbereich: altersabhängige Normwerte, siehe Befund. Einheit: IE/ml
B. pertussis-(Pertussis-Toxin)-IgA-AK EIA
Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver!
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Pertussis, stakkatoartiger Husten z. T. mit Erbrechen, Bronchitis, Tracheitis; bei Neugeborenen: Pneumonie
Referenzbereich: altersabhängige Normwerte, siehe Befund IE/ml
Bordetellen-(FHA)-IgG-AK EIA
Antikörper gegen Filamentöses Hämagglutinin
Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver!
Zur Beurteilung der Serologie ist die Angabe der Impfanamnese erforderlich!
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion mit Bordetellen (B. pertussis oder B. parapertussis), Impferfolgskontrolle (eingeschränkt)
Referenzbereich: altersabhängige Normwerte, siehe Befund. Einheit: IE/ml
Bordetellen-(FHA)-IgA-AK EIA
Antikörper gegen Filamentöses Hämagglutinin
Antikörper sind meist erst ca. 2-3 Wochen nach Erkrankungsbeginn nachweisbar. Bei akuter Erkrankung ist der PCR-Nachweis aus dem Nasopharygealabstrich sensitiver!
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion mit Bordetellen (B. pertussis oder B. parapertussis)
Referenzbereich: altersabhängige Normwerte, siehe Befund. Einheit: IE/ml
Bordetella-pertussis-DNA
Material: Abstrich (Nase, Rachen) trocken oder in unserem speziellen Pertussis-Transportmedium (weiße Kappe), Trachealsekret 2 ml
Methode: PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Pertussis, pertussiformer Husten. Früher Nachweis des Erregers, auch
bei Kontaktfällen (im Sinne einer Umgebungsuntersuchung) in der Inkubationszeit. Erregernachweis nach antibiotischer Anbehandlung bei geimpften Personen.
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Borreliose (Lyme disease)
Häufigste von Zecken übertragene Krankheit der nördlichen Hemisphäre. Die Erkrankung wird
durch die Spirochäte Borrelia burgdorferi sensu lato verursacht. In Europa existieren mehrere
Subspezies die als humanpathogen gelten: B. afzelii, B. garinii, B. burgdorferi sensu stricto,
B. spielmannii und B. bavariaensis. Als möglicherweise humanpathogen gelten: B. bissettii, B.
lusitaniae und B. valaisiana.
Die Erkrankung verläuft in Stadien. 1. früh-lokalisiert (Tage bis Wochen nach Zeckenstich):
Erythema migrans; 2. früh-disseminiert (Wochen bis Monate nach Stich): z. B. Meningitis, Karditis, Radikulitis; 3. spät-disseminiert (Monate bis Jahre nach Stich): Acrodermatitis chronica
atrophicans, Lyme-Arthritis, chronische ZNS-Infektionen.
Inkubationszeit: Erythema migrans: 1 - 3 (6) Wochen, Folgestadien: Monate bis Jahre
Borrelien-IgG-AK EIA
In der Frühphase der Erkrankung weniger sensitiv, jedoch im Vergleich zu früheren Tests
verbessert durch Zusatz von rekombinantem VlsE (Variable major protein-like sequence
Expressed) zum Vollantigen.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich, Erythema migrans, Facialisparese, Arthralgien, Meningitis, Radikulitis, Acrodermatitis chronica atrophicans (ACA)
Referenzbereich: <6 U/ml
Borrelien-IgM-AK EIA
Ein negatives Ergebnis schließt eine Infektion in der Frühphase nicht aus!
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich, Erythema migrans, Facialisparese, Arthralgien, Meningitis, Radikulitis
Referenzbereich: <1,0 Index
Borrelien-IgG-AK Immunoblot
Rekombinante Antigene mehrerer Spezies inklusive VlsE (Variable major protein-like
sequence Expressed)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Borrelien-IgM-AK Immunoblot
Rekombinante Antigene mehrerer Spezies inklusive VlsE
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Borrelien-IgG EIA, Liquor/Serum (Antikörperindex)
Es wird ein Liquor-/Serumpaar vom selben Abnahmetag benötigt.
Material: Liquor 500 µl, Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute/chronische Neuroborreliose
Referenzbereich: <1,5 Antikörperindex (AI)
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Borrelien-IgM EIA, Liquor/Serum (Antikörperindex)
Es wird ein Liquor-/Serumpaar vom selben Abnahmetag benötigt.
Material: Liquor 500 µl, Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute/chronische Neuroborreliose
Referenzbereich: <1,5 Antikörperindex (AI)
Borrelien-DNA
Spezieller Anforderungsschein für Zecken im Internet unter http://www.labor-enders.de
Material: Biopsie nativ, Liquor 500 µl, Punktat nativ, Zecke nativ mit Klebstreifen (gemäß
Anforderungsschein für Zecken)
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. akute (Liquor bei V. a. Meningitis) bzw. chronische (Hautbiopsie bei V. a.
ACA, Synoviabiopsie bei V. a. Lyme-Arthritis) Infektion mit Borrelien
Referenzbereich: negativ
Brucellose
Maltafieber, M. Bang
Brucellen sind sehr widerstandsfähige gramnegative Bakterien. Erregerreservoire sind Schafe/Ziegen (B. melitensis), Rinder (B. abortus) und Schweine (B. suis). Meist eingeschleppte
Infektion z. B. aus dem Mittelmeerraum (Genuss von rohem Käse oder Milch), Mexiko, Südamerika; auch berufliche Exposition (Landwirte, Tierärzte, Hirten). Die Brucellose kann subklinisch, akut oder chronisch verlaufen. Symptome einer akuten Brucellose sind: trockener
Husten, Nachtschweiß, Arthralgien, Gewichtsverlust, Muskelschmerzen, später Fieberschübe.
Unbehandelt kommt es zu einem undulierenden, remittierenden Fieber oder septischer Kontinua. Weitere intestinale Symptome, Lymphadenitis und Blutbildveränderungen können hinzukommen und im Rahmen eines chronischen Verlaufes auch zu Neurobrucellose führen.
Inkubationszeit: sehr variabel (eine Woche bis mehrere Monate), im Mittel 2 - 3 Wochen
Meldepflichtige Erkrankung!
Brucellen-AK Immunocapture-Agglutinationstest
Erfasst werden: Brucella abortus, B. melitensis und B. suis
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Agglutination
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Infektionsverdacht, Fieber, trockener Husten
Referenzbereich: <1:320 Titer
Brucellen IgG-AK EIA
Erfasst werden: Brucella abortus, B. melitensis undB. suis
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Infektionsverdacht, Fieber, trockener Husten
Referenzbereich: <20 U/ml
Brucellen IgM-AK EIA
Erfasst werden: Brucella abortus, B. melitensis und B. suis
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Infektionsverdacht, Fieber, trockener Husten
Referenzbereich: <15 U/ml
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Mikrobiologischer Nachweis z. B. in der Blutkultur (s. S. 228)
Campylobacter-Infektionen
Gemeinsam mit den Salmonellen häufigster bakterieller Erreger einer akuten infektiösen Enteritis. In Ausnahmefällen kann es zu Meningitis, Sepsis, Abszessen, Pneumonie, Guillain-Barré-Syndrom oder postinfektiöser Arthritis kommen. Die Übertragung erfolgt fäkal-oral, durch
kontaminierte Lebensmittel (z. B. rohe Milch, Eier, Fleisch) sowie durch Kontakt mit infizierten
Tieren (Abort beim Schaf und Rind; Enteritis bei Tieren). Saisonale Häufung von Infektionen
mit Campylobacter spp. in den Sommermonaten.
Inkubationszeit: 2 - 7 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Campylobacter-IgG-AK EIA
Erfasst werden: C. jejuni, C. coli
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: reaktive Arthritis, Guillain-Barré-Syndrom
Referenzbereich: <20 U/ml
Campylobacter-IgA-AK EIA
Erfasst werden: C. jejuni, C. coli
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: reaktive Arthritis, Guillain-Barré-Syndrom
Referenzbereich: <20 U/ml
Mikrobiologische Stuhluntersuchung auf Campylobacter (s. S. 231)
Candida-Infektionen
Candida spp. gehören zu den Hefepilzen; über 90% der Erkrankungen werden durch C. albicans verursacht. Die Übertragung erfolgt vertikal durch Schmierinfektion (z. B. Hände, Windeln, Stuhl), iatrogen (z. B. Katheter).
Infektionen besonders bei immunsupprimierten Patienten.
Candida-AK IHAT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: IHAT
Ansatz: 3 - 4 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Soor, Pneumonie, Oesophagitis (n. Beatmung) insbesondere bei Immunsupprimierten; Vaginitis, Vulvitis
Referenzbereich: <1:160 Titer
Candida (Mannan)-Antigen EIA
Material: Serum 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Soor, Pneumonie, Oesophagitis (nach Beatmung) insbesondere bei Immunsupprimierten; Vaginitis, Vulvitis, V. a. Candidose, Fungämie
Referenzbereich: <1,40 U/ml
Chikungunya-Virus
Das Chikungunya-Virus (CHIKV) ist ein behülltes RNA-Virus und gehört zur Gattung Alphavirus aus der Familie der Togaviridae. Beim Menschen verursacht es das Chikungunya-Fieber.
Vorkommen in Afrika, Indien und Südostasien, in den letzten Jahren starke Ausbreitung des
Erregers, u. a. auf die Inseln im Indischen Ozean. Übertragung durch Stechmücken der Gat-
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
tung Aedes. Der Erreger verursacht eine fieberhafte Erkrankung mit Gelenkbeschwerden. Antikörper sind 5 Tage nach Symptombeginn nachweisbar, vorher kann die Diagnose nur durch
RT-PCR aus EDTA-Plasma gestellt werden.
Inkubationszeit: 3 - 7 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
(F)
Chikungunyavirus-IgG-AK IFT
Material: Serum 1 ml, Vollblut 2 ml
Methode: IFT
Referenzbereich: <1:10 Titer
(F)
Chikungunyavirus-IgM-AK IFT
Material: Serum 1 ml, Vollblut 2 ml
Methode: IFT
Referenzbereich: <1:10 Titer
Chlamydia pneumoniae
Chlamydophila pneumoniae (Zeitweise verwendete Nomenklatur)
Zunächst als C. psittaci (TWAR) Stamm bezeichnet.
Obligat intrazelluläre Bakterien, häufigste Ursache einer atypischen Pneumonie im Jugendalter. Weitere Manifestationen sind: Sinusitis, Pharyngitis, Otitis media. Eine kardiale Beteiligung
ist möglich. Die Übertragung erfolgt aerogen (Tröpfcheninfektion) von Mensch zu Mensch. Ca.
50% der Erkrankungen verlaufen subklinisch, Reinfektionen kommen vor. Eine Beteiligung
von C. pneumoniae an der Arteriosklerose wird diskutiert.
Inkubationszeit: ungefähr 30 Tage (gelegentlich kürzer)
Chlamydia-pneumoniae-IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pneumonie, trockener Husten, Bronchitis, Pharyngitis
Referenzbereich: <1:32 Titer
Chlamydia-pneumoniae-IgA-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Pneumonie, trockener Husten, Bronchitis, Pharyngitis
Referenzbereich: <1:32 Titer
Chlamydia-pneumoniae-IgG-AK Immunoblot
Immunoblot erfasst Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP,
CPAF, YwbM
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Chlamydia-pneumoniae-IgA-AK Immunoblot
Immunoblot erfasst Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP,
CPAF, YwbM
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Chlamydia-pneumoniae-DNA
Material: Sputum, Bronchialsekret, Trachealsekret (jeweils 2 ml), Abstrich trocken oder in
sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Atypische Pneumonie, V. a. Chlamydien-Pneumonie
Referenzbereich: negativ
Chlamydia psittaci (Psittakose, Ornithose)
Erreger der Papageienkrankheit (Psittakose) bzw. Ornithose (bei Nicht-Papageien). Übertragung durch Vogelkot (Staub). Der Erreger verursacht eine atypische Pneumonie. Selten letale
Verläufe.
Inkubationszeit: 7 - 14 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Chlamydia-psittaci-IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Atypische Pneumonie besonders nach Kontakt mit Ziervögeln
Referenzbereich: <1:16 Titer
Chlamydia-psittaci-IgA-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Atypische Pneumonie besonders nach Kontakt mit Ziervögeln
Referenzbereich: <1:16 Titer
Chlamydia-psittaci-IgG-AK Immunoblot
Immunoblot erfasst Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Chlamydia-psittaci-IgA-AK Immunoblot
Immunoblot erfasst Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP, CPAF
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
(F)
Chlamydia-psittaci-DNA
Material: Sputum, Trachealsekret, Bronchialsekret (jeweils 2 ml), Abstrich trocken oder in
sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Atypische Pneumonie, besonders bei Kontakt mit Vögeln.
Referenzbereich: negativ
Chlamydia trachomatis
Es existieren verschiedene Serovare unterschiedlicher Pathogenität:
A-C (Auge), D-K und L1-L3 (Genitaltrakt). Die Übertragung erfolgt durch Schmierinfektion,
sexuellen Kontakt oder perinatal. Häufigste sexuell übertragbare Erkrankung weltweit. L1-
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
L3 verursachen das Lymphogranuloma inguinale/venerum. Die chronische Infektion mit C.
trachomatis kann zu Vernarbung der Adnexe und damit zu Sterilität führen. Durch Infektion des kleinen Beckens kann es zu Verwachsungen des Peritoneums kommen. Folge sind
chronische Unterbauchbeschwerden. Bei Neugeborenen können Pneumonien vorkommen
(10-20%). Periinfektiös kann eine reaktive Arthritis auftreten.
Chlamydia-trachomatis-IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Cervicitis, Urethritis, Adnexitis, Sterilität, chronische Unterbauchbeschwerden,
Arthritis, Pneumonie (beim Neugeborenen)
Referenzbereich: <1:16 Titer
Chlamydia-trachomatis-IgA-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Cervicitis, Urethritis, Adnexitis, Sterilität, chronische Unterbauchbeschwerden,
Arthritis, Pneumonie (beim Neugeborenen)
Referenzbereich: <1:16 Titer
Chlamydia-trachomatis-IgG-AK Immunoblot
Immunoblot erfasst Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP,
CPAF, HSP60
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Chlamydia-trachomatis-IgA-AK Immunoblot
Immunoblot erfasst Antikörper gegen rekombinante Antigene MOMP, OMP2, TARP,
CPAF, HSP60
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Chlamydia-trachomatis-RNA
Material: Urin (2 ml frischer Erstrahlurin) in APTIMA-Urintransportgefäß, Cervixabstrich
in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit blauem Schaft), Urethralabstrich
in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit blauem Schaft), Augenabstrich in
APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit weißem Schaft), Ejakulat 1 ml (nativ)
Methode: TMA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. genitale Chlamydien-Infektion: Cervicitis, Urethritis, Adnexitis, Konjunktivitis, Pneumonie (beim Neugeborenen), Mutterschaftsvorsorge, Screening im Rahmen der
Empfängnisregelung (bis zum vollendeten 25. Lebensjahr)
Referenzbereich: negativ
Clostridium tetani (Tetanus)
Synonym: Wundstarrkrampf
Grampositives anaerobes Bakterium, resistent gegen Hitze und gebräuchliche Antiseptika. Bei
jeder Verletzung besteht das Risiko einer Schmierinfektion, besonders wenn Schmutz, Erd-
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
reich oder Faeces in die Wunde gelangen. Der Tetanus wird üblicherweise in vier Formen eingeteilt: generalisiert, lokalisiert, zephalisch (d. h. am Kopf lokalisiert) und neonatal. Ein überstandener Tetanus hinterlässt keine dauerhafte Immunität.
Inkubationszeit: 3 Tage bis 3 Wochen (abhängig von der Eintrittspforte auch länger)
Erkrankung und Krankheitsverdacht sind meldepflichtig!
Mikrobiologischer Nachweis von C. tetani (s. S. 229)
Tetanus-Antitoxin
Nur geeignet zum AK-Nachweis nach Impfung; bei Infektionsverdacht: Toxinnachweis im
Spezial-Referenzlabor
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung
Referenzbereich: <0,01 IE/ml
CMV (s. S. 39)
Cytomegalie-Virus
Coronavirus (NL63)
Coronavirus-(NL63)-RNA
Material: Bronchiallavage 1 ml, Rachenabstrich trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium (grüne Kappe), Trachealsekret 2 ml, Stuhl erbsgroß
Methode: RT-PCR
Indikation: V. a. Infektion bei akuter Atemwegssymptomatik
Referenzbereich: negativ
Corynebacterium diphtheriae (Diphtherie)
Grampositives Stäbchen; die Übertragung erfolgt aerogen, einziges Erregerreservoir ist der
Mensch. Man unterscheidet lokal begrenzte Formen, wie die Rachen-, Nasen- und Kehlkopfdiphtherie (Krupp), die mit lokalen Lymphknotenschwellungen und Fieber einhergehen, von
den malignen systemischen Formen, die durch das Diphtherietoxin verursacht werden. Diese
systemischen Formen führen zur Schädigung von Herz, Nieren und ZNS. Es kommt zu schlaffen Lähmungen, z. B. Augenmuskel- und Facialisparesen wie auch Paresen der Schluck- und
Zwerchfellmuskulatur.
Inkubationszeit: 2 - 5 (1 - 7) Tage
Erkrankung und Verdacht sind meldepflichtig!
Diphtherie-Toxin-AK NT
Nur geeignet zum AK-Nachweis nach Impfung; bei V. a. Infektion Erregernachweis (Kultur)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 5 Tage)
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung
Referenzbereich: <0,010 IE/ml
Kultureller Nachweis von C. diphtheriae (s. S. 232)
Coxiella burnetii (Q-Fieber)
Sehr widerstandsfähiges gramnegatives Bakterium aus der Familie der Rickettsien. Übertragung durch infizierte Tiere (hauptsächlich Schaf, Rind, Ziege) über deren Kot und Nachgeburten (Staub), Wolle, Häute etc. und durch Inhalation von erregerhaltigem Staub. Chronische
Infektionen (z.B. Endokarditis) sind selten, werden aber oft nicht erkannt. Hier sind Schwangere besonders gefährdet, bei ihnen wird die Infektion häufig chronisch. Bei einer Coxiella-burnetii-Infektion in der Schwangerschaft besteht ein erhöhtes Abortrisiko. Es kann zu Frühgeburt
und/oder intrauteriner Wachstumsretardierung kommen.
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Inkubationszeit: 2 - 4 Wochen
Eine Infektion mit C. burnetii ist meldepflichtig!
Q-Fieber IgG Phase II AK IFT
Phase II-Antikörper: Sind in jeder Krankheitsphase nachweisbar, auch bei einer
zurückliegenden Infektion.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Schüttelfrost, Kopfschmerz, Myalgie, Schweißausbruch, Husten
Referenzbereich: <1:16 Titer
Q-Fieber IgM Phase II AK IFT
Phase II-Antikörper: Hinweis auf akute Infektion
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Schüttelfrost, Kopfschmerz, Myalgie, Schweißausbruch, Husten
Referenzbereich: <1:16 Titer
Q-Fieber IgG Phase I AK IFT
Phase I-Antikörper: Treten im Verlauf der (chronischen) Infektion auf
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Chronifizierung
Referenzbereich: <1:16 Titer
Q-Fieber IgM Phase I AK IFT
Phase I-Antikörper: Treten im Verlauf der (chronischen) Infektion auf
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Chronifizierung
Referenzbereich: <1:16 Titer
Coxsackie-Viren (Enteroviren) (s. S. 44)
Cytomegalie-Virus (CMV)
CMV gehört zur Familie der Herpesviren (Humanes Herpes-Virus Typ 5). CMV ist die häufigste
Ursache prä- und perinataler Virusinfektionen. Mehr als 90% der Infektionen mit CMV verlaufen
subklinisch. Übertragung horizontal über Speichel, Urin, Zervixsekret, Blut oder Blutprodukte
sowie transplantierte Organe und vertikal (konnatale Infektion). Reaktivierungen (vor allem bei
Immunsupprimierten) und Reinfektionen (mit neuem Stamm) kommen vor.
Inkubationszeit: variabel, 3 - 12 Wochen
CMV-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich
Indikation: unspezifische Symptome, rezidivierendes Fieber, Lymphadenitis
In Schwangerschaft: Screening, auffälliger US, grippaler Infekt
Beim Neugeborenen: pränatale/frühpostnatale Auffälligkeiten
Bei Immunsuppression: Retinitis, Hepatitis, Pneumonie
Referenzbereich: <200 mPEIU/ml
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
CMV-IgG-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik; auch bei unspezifischen Symptomen, rezidivierendes Fieber, Lymphadenitis
In der Schwangerschaft: auffälliger US, grippaler Infekt
Beim Neugeborenen: prä/postnatale Auffälligkeiten
Bei Immunsuppression: Retinitis, Hepatitis, Pneumonie
Referenzbereich: <6 AU/ml
CMV-IgM-AK ELA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl, fetales
EDTA-Blut 500 µl
Methode: ELA
Ansatz: täglich
Indikation: Verdacht auf akute Infektion; unspezifische Symptome, rezidivierendes Fieber,
Lymphadenitis
In Schwangerschaft: auffälliger Ultraschall, auffällige mütterliche Serologie, grippaler Infekt
Beim Neugeborenen: pränatale/frühpostnatale Auffälligkeiten
Referenzbereich: <0,9 Index
CMV-IgM-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch bei Verdacht auf akute Infektion; unspezifische Symptome, rezidivierendes Fieber, Lymphadenitis
In der Schwangerschaft: auffälliger US, auffällige mütterliche Serologie, grippaler Infekt,
Beim Neugeborenen: prä/postnatale Auffälligkeiten
Referenzbereich: <0,85 Index
CMV-IgG-AK Avidität
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Aviditätstest
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V. a. CMV-Infektion)
Referenzbereich: siehe Befund
CMV-IgG-AK Avidität CMIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V.a. CMV-Infektion)
Referenzbereich: siehe Befund
CMV-AK Neutralisationstest
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V. a. CMV-Infektion)
Referenzbereich: <1:4 Titer
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
CMV-IgG-AK rekombinanter Blot
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes (bei V. a. CMV-Infektion)
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
CMV-IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor 200 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: <8 mPEIU/ml
CMV-pp65-Antigen-Nachweis
Nachweis von pp65-Antigen in Leukozyten mittels direkter Immunfluoreszenz
Material muss innerhalb 24 h verarbeitet werden!
Material: EDTA-Blut 10 ml, EDTA-Blut (beim Kind) 4 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. CMV-Reaktivierung unter immunsuppressiver Therapie oder bei Immundefekt
Referenzbereich: negativ
CMV-Schnelltest (EA-Nachweis)
Schnellanzucht (Dauer 24 h)
Material nativ (oder in sterilem Röhrchen), bei Abstrichen bitte Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Urin, Fruchtwasser, Rachenabstrich, Trachealsekret
Methode: Schnellkultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. CMV-Infektion, prä-, frühpostnatale CMV-Infektion
Referenzbereich: negativ
CMV-Anzucht in Zellkultur
auf diploiden Fibroblasten
Material nativ oder in Virustransportmedium (grüne Kappe) versenden.
Material: Urin, Fruchtwasser, Trachealsekret, Rachenabstrich
Methode: Kultur
Ansatz: täglich
Indikation: V. a. CMV-Infektion, prä-, frühpostnatale CMV-Infektion
Referenzbereich: negativ
CMV-DNA
Material: EDTA-Blut, Vollblut, Nabelschnurblut (jeweils 2-3 ml), Fruchtwasser 2-5 ml, Urin
5-10 ml, Liquor 500 µl, Abstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. CMV-Infektion (besonders in Schwangerschaft und bei Neugeborenen);
bei Immunsuppression: Retinitis, Hepatitis, Pneumonie
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Dengue-Fieber
Das Dengue-Virus gehört zur Familie der Flaviviren, es existieren 4 Serotypen. Vorkommen
weltweit in tropischen und warmen Gebieten, die Übertragung erfolgt durch Aedes Mücken.
Es treten zwei Verlaufsformen auf:
1. Klassisches Dengue-Fieber (DF), fieberhafte Erkrankung meist selbstlimitierend.
2. Dengue-hämorrhagisches Fieber (DHF) bzw. bei schwerem Verlauf mit Dengue-SchockSyndrom (DSS).
Inkubationszeit: 3 - 6 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Dengue-Virus-IgG-AK EIA
Der Test erfasst alle 4 Serotypen, kann zwischen diesen aber nicht differenzieren.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Gelenk-, Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre Schmerzen, nach Aufenthalt in Südostasien, der Karibik, Südamerika, Australien
Referenzbereich: <0,8 Index
Dengue-Virus-IgM-AK EIA
Der Test erfasst alle 4 Serotypen, kann zwischen diesen aber nicht differenzieren.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Gelenk-, Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre Schmerzen, nach Aufenthalt in Südostasien, der Karibik, Südamerika, Australien
Referenzbereich: <0,8 Index
Dengue-Virus-Antigennachweis EIA
NS1-Antigennachweis positiv in den ersten 14 Tagen der Erkrankung (Sensitivität vergleichbar mit der Erreger PCR).
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Gelenk-, Muskelschmerzen, flüchtiges Exanthem, retrobulbäre Schmerzen, nach Aufenthalt in Südostasien, der Karibik, Südamerika, Australien
Referenzbereich: <0,8 Index
Diphtherie (s. S. 38)
EBV (s. S. 45)
Epstein-Barr-Virus
Echinokokken (s. S. 242)
ECHO-Viren (Enteroviren) (s. S. 44)
(ECHO: entero-cytopathogenic-human-orphan)
Ehrlichiose und Anaplasmose
Die humane granulozytäre Anaplasmose (HGA) wird durch den Erreger Anaplasma phagocytophilum (früher Ehrlichia phagocytophila) verursacht, die humane monozytäre Ehrlichiose
(HME) durch das gramnegative Bakerium Ehrlichia chaffeensis. Diese befallen die humanen
Monozyten, wohingegen die Anaplasmen die humanen Granulozyten infizieren. Das Verbreitungsgebiet der beiden Erkrankungen liegt entsprechend dem Vorkommen der Schildzecke
Amblyomma americanum für HME auf dem amerikanischen Kontinent und dem Vorkommen
von Ixodes ssp. für HGA sowohl in vielen Ländern Zentral- und Nordeuropas als auch in Ame-
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
rika. Die Erreger verursachen ein Influenza-ähnliches Krankheitsbild. Häufig verläuft die Infektion aber auch subklinisch. In der ersten Erkrankungswoche kann zusätzlich zur Serologie ein
Erreger-Nachweis im Blutausstrich oder mittels PCR versucht werden. Kreuzreaktionen zwischen den beiden Erregerarten kommen vor.
Inkubationszeit: ungefähr 7 (1-21) Tage
Anaplasma phagocytophilum-IgG-AK IFT
Erreger der humanen granulozytären Anaplasmose (HGA, früher humane granulozytäre
Ehrlichiose)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich (ohne Erythema migrans), Kopfschmerzen, Muskelschmerzen,
Übelkeit, Leukopenie, Thrombozytopenie, erhöhter Serum-Aminotransferasespiegel
Referenzbereich: <1:64 Titer
Anaplasma phagocytophilum-IgM-AK IFT
Erreger der humanen granulozytären Anaplasmose (HGA, früher humane granulozytäre
Ehrlichiose)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich (ohne Erythema migrans), Kopfschmerzen, Muskelschmerzen,
Übelkeit, Leukopenie, Thrombozytopenie, erhöhter Serum-Aminotransferasespiegel
Referenzbereich: <1:20 Titer
Ehrlichia chaffeensis-IgG-AK IFT
Erreger der humanen monozytären Ehrlichiose (HME)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Zeckenstich (ohne Erythema migrans), Kopfschmerzen, Muskelschmerzen,
Übelkeit, Leukopenie, Thrombozytopenie, erhöhter Serum-Aminotransferasespiegel
Referenzbereich: <1:128 Titer
(F)
Anaplasmen/Ehrlichien-DNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zur Akutdiagnostik bei klin. apparentem Verlauf nach Zeckenstich
Referenzbereich: negativ
Enterohämorrhagische E. coli (EHEC, HUS)
Hämolytisch-urämisches Syndrom
Enterohämorrhagische E.-c.-Stämme (u. a. O157) bilden ein Zytotoxin (Verotoxin) und können
besonders bei Kleinkindern eine thrombotische Mikroangiopathie u. a. mit akutem Nierenversagen auslösen.
Meldepflichtige Erkrankung!
(F)
Escherichia coli O157 IgG Immunoblot
Material: Serum 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. HUS (hämolytisch-urämisches Syndrom, Gasser-Syndrom)
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
(F)
Escherichia coli O157 IgM Immunoblot
Material: Serum 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. HUS (hämolytisch-urämisches Syndrom, Gasser-Syndrom)
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Stuhluntersuchung auf EHEC (s. S. 232)
Enteroviren (Coxsackie-, ECHO- , Enteroviren)
Das Genus Enterovirus beinhaltet mehr als 80 humane Serotypen, die entsprechend der neuen
Klassifikation in 4 Spezies geteilt sind: Humanes Enterovirus A, B, C und D.
Eine präzise Zuordnung von Erreger-Serotyp und Krankheit ist nicht möglich, obwohl bekannt
ist, dass z. B. die Hand-Fuß-Mund-Krankheit häufig durch Coxsackie A-Viren und die Bornholm-Krankheit durch Coxsackie B-Viren verursacht werden.
Nicht-Polio-Enteroviren sind für eine Fülle verschiedenster Krankheitsbilder verantwortlich. Am
häufigsten sind unspezifische, fieberhafte Erkrankungen der oberen Luftwege mit Kopf- und
Muskelschmerzen, Pharyngitis, Tonsillitis, Laryngitis, Lymphadenopathie und Bronchitis. Gastrointestinale Beschwerden wie Brechdurchfall stehen nicht im Vordergrund. Saisonale Häufung in den Sommer- und Herbstmonaten.
Inkubationszeit: 3 - 6 (2 - 35) Tage.
Der Erregernachweis z. B. aus Stuhl oder Liquor ist die Methode der Wahl.
Enterovirus-IgG-AK EIA
Das ELISA-Testsystem enthält eine Antigenpräparation aus ECHO-Virus Typ 6 und Coxsackie-Virus Typ B5. Diese sind als ausreichend kreuzreagierend beschrieben, um auch
Infektionen durch andere Enterovirus-Serotypen zu erfassen.
Material: Vollblut 1 ml, Serum 500 µl, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthem, Hand-Fuß-Mund-Krankheit, Meningitis, Myokarditis, Facialisparese,
Gastroenteritis, Myalgien, Myokarditis, Pleurodynie (Bornholm-Krankheit)
Referenzbereich: <11 U/ml
Enterovirus-IgM-AK EIA
Das ELISA-Testsystem enthält eine Antigenpräparation aus ECHO-Virus Typ 6 und Coxsackie-Virus Typ B5. Diese sind als ausreichend kreuzreagierend beschrieben, um auch
Infektionen durch andere Enterovirus-Serotypen zu erfassen.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthem, Hand-Fuß-Mund-Krankheit, Meningitis, Myokarditis, Facialisparese,
Gastroenteritis, Myalgien, Myokarditis, Pleurodynie (Bornholm-Krankheit)
Referenzbereich: <10 U/ml
Enterovirus-Schnellanzucht
auf Colonkarzinom-, Hep2- und RD-Zellen
Material: Liquor mindestens 0,5 ml, Stuhl erbsgroß, Rachenabstrich in Virustransportmedium (grüne Kappe), Fruchtwasser mindestens 1 ml
Methode: Schnellkultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: seröse Meningitis, Myokarditis, Exanthem, Pleuritis, Hand-Fuß-Mund-Krankheit,
Facialisparese, Gastroenteritis, Myalgien, Enteritis
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Enterovirus-Anzucht in Zellkultur
auf Colonkarzinom-, RD- und Hep2-Zellen
Material: Stuhl erbsgroß, Liquor 500 µl, Rachenabstrich in Virustransportmedium (grüne
Kappe), Abstrich in Virustransportmedium (grüne Kappe), Fruchtwasser 1 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 6-7 Tage)
Indikation: seröse Meningitis, Myokarditis, Exanthem, Pleuritis, Hand-Fuß-Mund-Krankheit,
Facialisparese, Gastroenteritis, Myalgien, Enteritis
Enterovirus-RNA
Der Test erfasst folgende Viren: Coxsackie-, ECHO- und Polio-Viren. Nicht erfasst werden
Parechoviren.
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml, Liquor 500 µl, Stuhl erbsgroß, Biopsie nativ,
Rachenabstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: seröse Meningitis; unklare Peri-, Myokarditis, akute/chronische Kardiomyopathie; Enteritis
Referenzbereich: negativ
Humane Parechovirus-RNA (s. S. 73)
Früher bezeichnet als ECHO-Virus 22/23
Epstein-Barr-Virus-Infektion (M. Pfeiffer)
Das Epstein-Barr-Virus gehört zur Familie der Herpesviren (Humanes Herpes-Virus Typ 4).
Es verursacht die infektiöse Mononukleose. Charakteristisch sind die mononukleären Zellen
im Blutbild. Nach einer durchgemachten Infektion persistiert das Virus lebenslang in ruhenden
B-Zellen (v. a. im Knochenmark). Hier kann EBV jederzeit reaktiviert werden. Solche Reaktivierungen verlaufen bei immunkompetenten Patienten in der Regel klinisch inapparent, sie
gehen mit einer Virusausscheidung im Speichel und häufig auch nachweisbarer EBV-DNA im
Blut einher. Selten kommen lymphoproliferative Erkrankungen (bei Immunsupprimierten) und
Tumoren (Burkitt-Lymphom, Nasopharynx-Ca) vor.
Inkubationszeit: 10 - 30 Tage
EBV (VCA)-IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Pfeiffer'sches Drüsenfieber, infektiöse Mononukleose, multiple Lymphknotenschwellung, Angina, Hepatitis, polyklonale B-Zell-Lymphome?; bei Immunsuppression:
Reaktivierung möglich
Referenzbereich: <1:32 Titer
EBV (VCA)-IgG-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch bei V.a. Pfeiffer'sches Drüsenfieber, infektiöse Mononukleose, multiple Lymphknotenschwellung, Angina, Hepatitis, polyklonale B-Zell-Lymphome?; bei Immunsuppression: Reaktivierung möglich
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
EBV (VCA)-IgM-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Pfeiffer'sches Drüsenfieber, infektiöse Mononukleose, multiple Lymphknotenschwellung, Angina, Hepatitis, polyklonale B-Zell-Lymphome?; bei Immunsuppression:
Reaktivierung möglich
Referenzbereich: <1:32 Titer
EBV (VCA)-IgM-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch bei V.a. akute Infektion mit EBV
Referenzbereich: negativ
EBV-Nuclear-Antigen (EBNA1)-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss akute, kürzliche Infektion innerhalb der letzten 6-8 Wochen
Referenzbereich: <9 AU/ml
EBV-Nuclear-Antigen (EBNA1)-IgG-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch bei Ausschluss akute/kürzliche Infektion innerhalb der
letzten 6-8 Wochen
Referenzbereich: negativ
EBV-IgG-AK Immunoblot
(Verwendung rekombinanter Antigene)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Abklärung unklarer serologischer Befunde
Referenzbereich: siehe Befund
EBV-IgG-Avidität Immunoblot
(Verwendung rekombinanter Antigene)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes bei unklaren serologischen Befunden
Referenzbereich: siehe Befund
EBV-IgM-AK Immunoblot
(Verwendung rekombinanter Antigene)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Abklärung unklarer serologischer Befunde
Referenzbereich: siehe Befund
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
EBV-Early-Antigen-IgG-AK IFT
(EA-d und EA-r)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. reaktivierte EBV-Infektion; V. a. EBV-assoziiertes lymphoproliferatives
Syndrom, Nasopharynx-Ca, Burkitt-Lymphom
Zusatztest
Referenzbereich: <1:16 Titer
EBV Early-Antigen-IgA-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Nasopharynx-Carcinom
Referenzbereich: <1:16 alpha-Titer
EBV (VCA)-IgA-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: EBV-assoziierter Tumor (z.B. Nasopharynx-CA), auch als "Tumormarker"
Referenzbereich: <1:16 Titer
EBV (VCA)-IgG-AK IFT im Liquor
Bitte immer eine zeitgleich entnommene Serumprobe zur Bestimmung des spezifischen
Antikörperindex (AI) mit einsenden.
Material: Liquor 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: <1:4 Titer
EBV-DNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Liquor 500 µl, Rachenabstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Reaktivierung, z. B. bei Immunsuppression
Referenzbereich: negativ
Erythema (chronicum) migrans (s. S. 32)
Borreliose
Fasciola hepatica (Großer Leberegel) (s. S. 243)
Fleckfieber (s. S. 77)
Rickettsien
Francisella tularensis (Tularaemie)
Gramnegatives Bakterium; vor allem in Osteuropa und Nordamerika bei Nagern verbreitete
Zoonose ("Hasenpest"), selten in Deutschland. Die Infektion erfolgt bei Tieren durch Arthropoden, beim Menschen durch Kontakt mit lebenden oder toten infizierten Tieren (Wildzubereitung) sowie seltener durch Inhalation von infektiösem Material. Kleine Hautdefekte können
auch als Eintrittspforte fungieren.
Inkubationszeit: 3 - 5 (1 - 14) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Francisella tularensis IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektion über Wildbretzubereitung, sehr selten, ulzeroglanduläres/okuloglanduläres Bild, selten Pneumonie
Referenzbereich: <10 U/ml
Francisella tularensis IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektion über Wildbretzubereitung, sehr selten, ulzeroglanduläres/okuloglanduläres Bild, selten Pneumonie
Referenzbereich: <10 U/ml
Frühsommer-Meningoenzephalitis (FSME-Virus)
Das FSME-Virus gehört zu den Flaviviren, die Übertragung erfolgt durch Zecken. Hochendemiegebiete in Deutschland sind Baden-Württemberg, Bayern sowie die südlichen Teile von
Hessen und Thüringen. In Europa vor allem Österreich, Polen, Schweden und Russland.
Zweiphasiger Verlauf:
1. Phase: nach Zeckenstich Fieber, Kopfschmerzen, Besserung nach ca. 1 Woche.
2. Phase: hohes Fieber, Meningitis, Meningoenzephalitis, Enzephalomyelitis.
Inkubationszeit: 7 (- 20) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
FSME-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung, Zeckenstich, Meningitis, Enzephalitis, Sommergrippe, nach Aufenthalt in Endemiegebieten
Referenzbereich: <120 vieu/ml
FSME-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: V. a. akute Infektion mit FSME-Virus
Referenzbereich: <0,8 Index
FSME-Virus-IgG-AK EIA im Liquor
Material: Liquor 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: <1,0 vieu/ml
FSME-Virus-RNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Liquor 500 µl, Zecke nativ mit Klebstreifen (gemäß Anforderungsschein für Zecken)
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. FSME
Referenzbereich: negativ
FSME (s. S. 48)
Frühsommer-Meningoenzephalitis
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Fuchsbandwurm (s. S. 242)
Echinococcus multilocularis, alveoläre Echinokokkose.
GB-Virus C (Hepatitis G)
GB-Virus C (GBV-C) wurde früher als Hepatitis-G-Virus bezeichnet, verursacht jedoch keine
Hepatitis. Es handelt sich um ein Flavivirus, das mit dem Hepatitis-C-Virus verwandt ist. Die
Übertragung ist vermutlich durch Blutkontakt, sexuell und von der Mutter auf das Kind möglich. Bislang konnte jedoch keine Krankheit mit diesem Virus in Verbindung gebracht werden,
die pathogene Bedeutung ist daher unklar. Eine Koinfektion mit GBV-C verbessert bei HIVinfizierten Patienten die Prognose.
GBV-C (Hepatitis-G-Virus) RNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung im Rahmen einer HIV-Infektion
Referenzbereich: negativ
Gonokokken (Neisseria gonorrhoeae)
Gramnegative Diplokokken, ausschließlich humanpathogen. Übertragung durch sexuellen
Kontakt sowie perinatal.
Inkubationszeit: 2 - 5 (7) Tage
Mikrobiologischer Nachweis von N. gonorrhoeae (s. S. 235)
Neisseria-gonorrhoeae-RNA
Material: Urin (2 ml frischer Erstrahlurin) in APTIMA-Urintransportgefäß, Cervixabstrich
in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit blauem Schaft), Urethralabstrich
in APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit blauem Schaft), Augenabstrich in
APTIMA-Probentransportgefäß (Träger mit weißem Schaft), Ejakulat 1 ml (nativ)
Methode: TMA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: männliche Urethritis, Zervizitis, Adnexitis, inguinale Lymphadenitis
Referenzbereich: negativ
Granulozytäre Anaplasmose (s. S. 42)
(vormals Ehrlichiose)
Gürtelrose (Zoster) (s. S. 88)
Reaktivierte Infektion mit Varizella-Zoster-Virus.
Haemophilus influenzae Typ b
Gramnegative Stäbchen, die aerogen oder durch direkten Kontakt übertragen werden. Invasive Erkrankungen werden in den meisten Fällen durch H. influenzae Kapseltyp b verursacht.
In den ersten beiden Lebensjahren liegt der Häufigkeitsgipfel der Hib-Meningitis, im 3. bis 4.
Jahr derjenige der Hib-Epiglottitis (bakt. Pseudokrupp).
Inkubationszeit: wenige Tage
Bei V. a. Infektion ist der Erregernachweis die Methode der Wahl.
Meldepflichtige Erkrankung!
Haemophilus influenzae Typ b IgG-AK EIA
Nur geeignet vor und nach Impfung! Nicht zur Diagnose einer Infektion geeignet.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus; bei Symptomen: Erregernachweis
Referenzbereich: <0,15 µg/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Mikrobiologischer Nachweis von H. influenzae (s. S. 228)
Hand-Fuß-Mund-Krankheit (s. S. 44)
Enteroviren (Coxsackie A6, A8, A16, Entero 71)
Hantaviren (Hantaan, Puumala, Dobrava, Seoul u. a.)
In Deutschland überwiegend Infektionen mit Puumalaviren (Nephropathia epidemica). Erregerreservoir sind hauptsächlich Wühlmäuse und Ratten; Endemiegebiet: z. B. Schwäbische
Alb.
Weitere Hantaviren sind u. a. die Typen Hantaan (Südostasien, Südeuropa), Dobrava (Balkanstaaten, Ostdeutschland) und Seoul (Ostasien, selten weltweit).
Eine weitere Gruppe von Hantaviren (Sin Nombre, Black Creek Canel, New York, Andes, Laguna Negra und weitere) verursacht das Hantavirus pulmonary syndrome (HPS), welches in
Nord- und Südamerika vorkommt. Es besteht eine hohe Kreuzreaktivität zwischen den einzelnen Typen.
Inkubationszeit: 10 - 30 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Hantaan/Dobrava-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie,
Hämoptysis
Referenzbereich: <1,0 Index
Hantaan/Dobrava-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie,
Hämoptysis
Referenzbereich: <1,0 Index
Puumala-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Nephropathia epidemica, hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis
Referenzbereich: <1,0 Index
Puumala-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Nephropathia epidemica, hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom, Nierenversagen, Pneumonie, Hämoptysis
Referenzbereich: <1,0 Index
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Hanta-Virus-IgG-AK Immunoblot
(Verwendung rekombinanter Antigene)
Es werden Antikörper gegen folgende Subtypen nachgewiesen: Hantaan, Seoul, Dobrava,
Puumala, Sin Nombre.
Wegen ausgeprägter Kreuzreaktionen ist eine Differenzierung in der Akutphase oft nicht
möglich.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei positivem EIA und bei V. a. Infektion mit Dobrava-Virus
Referenzbereich: negativ
Hanta-Virus-IgM-AK Immunoblot
(Verwendung rekombinanter Antigene)
Es werden Antikörper gegen folgende Subtypen nachgewiesen: Hantaan, Seoul, Dobrava,
Puumala, Sin Nombre.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei positivem EIA und bei V. a. Infektion mit Dobrava-Virus
Referenzbereich: negativ
HAV (s. S. 52)
Hepatitis A
HBV (s. S. 53)
Hepatitis B
HCV (s. S. 55)
Hepatitis C
HDV (s. S. 55)
Hepatitis D
Helicobacter pylori
Gramnegatives Bakterium, dessen wichtigstes Erregerreservoir die menschliche Magenschleimhaut ist. Ca. 90% aller Ulcera oder Schleimhautentzündungen bei Erwachsenen werden durch H. pylori verursacht. Die Übertragung erfolgt vermutlich oro-oral oder fäkal-oral.
Rezidive (ca. 2%) kommen nach Eradikation des Erregers vor. Infolge der chronischen Infektion kann sich ein MALT-Lymphom entwickeln.
H. pylori-Antigennachweis im Stuhl (s. S. 236)
Der Helicobacter pylori-Antigennachweis im Stuhl ist eine Alternative zum Atemtest mit
annähernd gleicher Sensitivität und Spezifität. Die Probengewinnung ist jedoch wesentlich
unkomplizierter.
Helicobacter pylori-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: chronische Gastritis, Duodenalulcus
Referenzbereich: <10 U/ml
Helicobacter pylori-IgA-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: chronische Gastritis, Duodenalulcus
Referenzbereich: <10 U/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Helicobacter pylori-IgG-AK Blot
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ
Helicobacter pylori-IgA-AK Blot
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ
H. pylori-PCR (einschl. Clarithromycinresistenz) (s. S. 237)
Mikrobiologische Untersuchung auf Helicobacter (s. S. 236)
Hepatitis A
Hüllenloses RNA-Virus aus der Familie der Picornaviren. Die Übertragung erfolgt fäkal-oral.
Besonders in der Inkubationszeit ist der Stuhl hochinfektiös. In Deutschland auftretende Fälle
sind meist Einschleppinfektionen aus Ländern mit unzureichender Hygiene.
Inkubationszeit: 28 (14 - 48) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Immunisierung möglich, Indikation siehe STIKO-Empfehlungen.
Hepatitis-A-Gesamt-AK CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ikterus, Hepatitis, Auslandsaufenthalt, Immunstatus, Impferfolgskontrolle
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-A-IgG-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, EDTA-Blut 1 ml, Vollblut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch bei Ikterus, Hepatitis, Auslandsaufenthalt, Immunstatus, Impferfolgskontrolle
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-A-IgM-AK CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute/kürzliche Infektion mit Hepatitis A-Virus
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-A-IgM-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, EDTA-Blut 1 ml, Vollblut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch bei V. a. akute/kürzliche Infektion mit Hepatitis A-Virus
Referenzbereich: negativ
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Hepatitis-A-Virus-RNA
Material: Stuhl erbsgroß, EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. akute Infektion, Virämie, Kontakt (Inkubation), Nachweis der Infektiosität
Referenzbereich: negativ
Hepatitis B
Umhülltes DNA-Virus aus der Familie der Hepadnaviren. Die Übertragung erfolgt vorwiegend
parenteral durch Blutkontakt (z. B. Nadelstichverletzungen), sexuellen Kontakt, perinatal, selten intrauterin. Chronische Verläufe kommen vor, dann besteht ein deutliches Risiko für die
Entwicklung einer Leberzirrhose oder eines hepatozellulären Karzinoms (HCC).
Therapieoptionen mit alpha-Interferonen und/oder mit Nukleosid-/Nukleotidanaloga bestehen.
Inkubationszeit: 90 (40 - 180) Tage
Meldepflichtige Erkrankung! (akute Infektion)
HBsAg (Hepatitis B Surface Antigen) CLIA
Auch als Schnelltest nach telefonischer Rücksprache (siehe Schnelldiagnostik)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Infektion, Infektionsstatus besonders in Gravidität
Referenzbereich: negativ
HBsAg (Hepatits B Surface Antigen) CMIA
Material: Serum 500 µl, EDTA-Blut 1 ml, Vollblut 1 ml, Nabelschnurblut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 4 Stunden)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch bei V. a. Infektion, Infektionsstatus besonders in Gravidität
Referenzbereich: negativ
HBsAg (Hepatitis B Surface Antigen) quantitativ CLIA
Material: Serum 500 µl, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verlaufskontrolle unter Therapie
Referenzbereich: negativ
Anti-HBs-AK CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: vor bzw. nach Impfung gegen Hepatitis B Virus, Impfschutz, Nachweis mit antiHBc bei ausgeheilter Hepatitis B
Referenzbereich: <10 U/l
Anti-HBs-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, EDTA-Blut 1 ml, Vollblut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch vor bzw. nach Impfung gegen Hepatits-B-Virus, Impfschutz, Nachweis mit Anti-HBc bei ausgeheilter Hepatits B
Referenzbereich: <10 mU/ml
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Anti-HBc-Gesamt-AK CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektionsverdacht, Abgrenzung: Z.n. Impfung bzw. Wildviruskontakt
Referenzbereich: negativ
Anti-HBc-Gesamt-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 4 Stunden)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch bei Infektionsverdacht, Abgrenzung: Z.n. Impfung bzw.
Wildviruskontakt
Referenzbereich: negativ
Anti-HBc-IgM-AK CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektionsverdacht, Abklärung einer akuten bzw. chronischen Infektion
Referenzbereich: negativ
HBe-Antigen CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Bestimmung der Infektiosität bei positivem HBs-Antigen, Progressionsmarker
bei chronischer Infektion, Entscheidungshilfe bzgl. Therapie
Referenzbereich: negativ
Anti-HBe-AK CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Infektiosität, abgelaufene Hepatitis B
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-B-Viruslast
Material: EDTA-Blut 5 ml, Vollblut 5 ml
Methode: TMA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Grad der Infektiosität, Entscheidungshilfe bzgl. Therapie, Therapiemonitoring
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-B-Virus Genotypisierung
Material: EDTA-Blut 5 ml, Vollblut 5 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Entscheidungshilfe bzgl. Therapie, Epidemiologie
Hepatitis-B-Resistenzbestimmung (genotypisch)
Material: EDTA-Blut 5 ml, Vollblut 5 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Versagen der antiviralen Therapie, Resistenzbestimmung vor antiviraler Therapie. Bei Infektion trotz Impfung zur Beantwortung der Frage, ob eine Vaccine-EscapeMutante vorliegt.
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Hepatitis C
Umhülltes RNA-Virus aus der Familie der Flaviviren.
Die Übertragung erfolgt überwiegend parenteral (z.B. durch Blutkontakt, i.v. Drogenabusus,
Nadelstichverletzung), eine perinatale Transmission ist möglich, jedoch selten. Akute Infektionen verlaufen häufig subklinisch. Chronische Verläufe sind häufig und haben ein deutliches
Risiko für die Entstehung einer Leberzirrhose oder eines hepatozellulären Karzinoms. Therapieoptionen mit alpha-Interferon, Ribavirin und Proteaseinhibitoren bestehen.
Inkubationszeit: 8 (2 - 26) Wochen
Meldepflichtige Erkrankung! (Neuinfektionen oder bislang nicht gemeldete Infektionen).
Hepatitis-C-Antikörper CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektionsverdacht, insbesondere bei Risikopatienten (Drogen), Nadelstichverletzung bzw. nach früherer Transfusion
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-C-Antikörper CMIA
Material: Serum 500 µl, EDTA-Blut 1 ml, Vollblut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik, auch bei Infektionsverdacht, insbesondere bei Risikopatienten (Drogen), Nadelstichverletzungen bzw. nach früherer Transfusion
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-C-IgG Immunoblot
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: erforderlicher Bestätigungstest bei nachgewiesenen Antikörpern im EIA
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-C-Virus-RNA qualitativ
Material: EDTA-Blut 5 ml, Vollblut 5 ml
Methode: TMA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V.a. replizierende Hepatitis C, Ausschluss akute Hepatitis C
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-C-Viruslast
Material: EDTA-Blut 5 ml, Vollblut 5 ml
Methode: TMA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Therapiemonitoring/Dynamik unter Therapie, Quantifizierung der Infektiosität
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-C-Virus Genotypisierung
Material: EDTA-Blut 5 ml, Vollblut 5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Entscheidungshilfe bzgl. Therapie, epidemiologische Klärung
Interleukin 28B (Pharmakogenetik) (s. S. 115)
Hepatitis D
RNA-Virus, das vom HBsAg umhüllt wird und zur Replikation auf das Hepatitis-B-Virus angewiesen ist. Die Superinfektion verschlechtert die Prognose der Hepatitis B deutlich. Die Über-
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
tragungswege sind ähnlich wie bei Hepatitis B, jedoch meist parenteral (i. v. Drogenabusus).
Meist chronische Verläufe, Therapieoptionen wie bei der chronischen Hepatitis B mit jedoch
deutlich geringerem Erfolg.
Meldepflichtige Erkrankung! (akute Infektion)
Hepatitis-D-Gesamt-AK EIA
Untersuchung nur sinnvoll bei HBsAg-positiven Patienten
Material: Serum 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung bei Erstdiagnose einer Hepatitis B, foudroyant verlaufende Hepatitis,
V. a. Superinfektion bei chronischer Hepatitis B-Infektion (HBsAg-Träger).
Bei positiven AK wird die Bestimmung der Hepatitis-D-Virus-RNA empfohlen.
Referenzbereich: negativ
(F)
Hepatitis-D-Virus-RNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. replizierende Hepatitis D, Superinfektion bei chronischer Hepatitis B
(HBsAg-Träger)
Referenzbereich: negativ
Hepatitis E
Nicht umhülltes RNA-Virus aus der Familie der Caliciviren. Die Übertragung erfolgt fäkaloral. In Deutschland sowohl Einschleppinfektionen aus Ländern mit unzureichender Hygiene
als auch autochthone Infektionen (Zoonose: Schweine, Wildschweine u.a.). Genotypabhängig
sind fulminante und chronische Verläufe vor allem bei ausgeprägter Immunsuppression und
Schwangeren möglich.
Inkubationszeit: 3 - 8 Wochen
Meldepflichtige Erkrankung!
Hepatitis-E-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Hepatitis/Ikterus
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-E-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Hepatitis/Ikterus, Hinweis auf frische Infektion.
Referenzbereich: negativ
Hepatitis-E-Virus-RNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml, Stuhl erbsgroß
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung Hepatitis/Ikterus, Nachweis der Infektiosität
Referenzbereich: negativ
Hepatitis G (GB-Virus C) (s. S. 49)
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Herpes-simplex-Virus Typ 1, 2
Infektionen mit HSV Typ 1 betreffen meist Haut und Schleimhaut (z.B. Stomatitis aphthosa)
oberhalb des Nabels, während HSV Typ 2 meist im Genitalbereich nachweisbar ist. In den
letzten Jahren nimmt der Anteil von HSV-1-Infektionen im Genitalbereich stetig zu. Rekurrierende Infektionen äußern sich meist als Herpes labialis oder Herpes genitalis. Bei perinataler
Übertragung: Herpes neonatorum.
Weitere Manifestationen: Konjunktivitis, Enzephalitis, Ekzema herpeticatum, Hepatitis
Unter Immunsuppression schwere Verläufe (auch Reaktivierungen) möglich.
Inkubationszeit: wenige Tage bis Wochen
HSV Typ 1/2 IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich
Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis; bei Kleinkindern und Säuglingen: Enzephalitis,
Krampfanfälle, Hepatitis, Herpes neonatorum
Referenzbereich: <1:230 alpha-Titer
HSV Typ 1/2 IgM-AK EIA
Vor Entbindung bei V. a. Herpes genitalis Erregernachweis (Zellkultur, PCR) vorrangig.
Kleinkinder: Rachenabstrich, Augenabstrich zum Erregernachweis
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich
Indikation: V. a. akute Infektion mit HSV, Stomatitis, Herpes labialis, Herpes genitalis, Enzephalomyelitis, Hepatitis, Herpes neonatorum
Referenzbereich: <0,9 Index
HSV-IgG-AK Immunoblot
Der Test ermöglicht die Unterscheidung zwischen HSV-1- und/oder HSV-2-Antikörpern.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Differenzierung zwischen Infektion mit HSV Typ 1 und Typ 2 (z.B. "first episode"
Typ 2 bei vorbestehender Typ-1-Infektion)
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
HSV Typ 1/2 IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst Ergebnis verfälscht wird. Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der Serum-AK.
Material: Liquor 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: negativ alpha-Titer
HSV Typ 1/2 Schnellanzucht
auf diploiden Fibroblasten
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Abstrich
Methode: Schnellkultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis, Herpes-Konjunktivitis, Stomatitis
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
HSV Typ 1/2 Anzucht in Zellkultur
auf diploiden Fibroblasten
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Abstrich
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-7 Tage)
Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis, Herpes-Konjunktivitis, Stomatitis
HSV Typ 1/2 DNA
Abstriche von Bläschen bzw. Effloreszenzen im Genitalabstrich.
Material: Abstrich trocken, in 1 ml NaCl oder in Virustransportmedium (grüne Kappe), Liquor
0,5 ml, EDTA-Blut 2-3 ml, Fruchtwasser 2-5 ml
Methode: PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Herpes labialis, H. genitalis (präpartal), Herpes neonatorum, V. a. Herpes-Enzephalitis bzw. Meningitis
Referenzbereich: negativ
HEV (s. S. 56)
Hepatitis E
HGV (s. S. 49)
Hepatitis G, GB-Virus C
HHV 6 (s. S. 59)
Humanes Herpes Virus Typ 6
HHV 7 (s. S. 60)
Humanes Herpes Virus Typ 7
HHV 8 (s. S. 61)
Humanes Herpes Virus Typ 8
HIV-1, HIV-2 (s. S. 61)
Humanes Immundefizienz Virus
HPV (s. S. 71)
Humanes Papilloma-Virus
HSV 1/2 (s. S. 57)
Herpes simplex-Virus
HTLV-1/-2 (s. S. 58)
Humane T-Zellleukämieviren 1-2
Humane T-Zell-Leukämie-Viren (HTLV)
Viren aus der Familie der Retroviridae. HTLV-1 ist Verursacher einer T-Zell-Leukämie bei
Erwachsenen und wird mit einer progressiven demyelinisierenden Myelopathie (mit spastischen Paresen) assoziiert.
HTLV-1 ist endemisch in Japan, Zentralafrika, Neuguinea und der Karibik. Übertragung durch
Blutprodukte, i. v.-Drogenmissbrauch, Stillen.
HTLV-2 ist endemisch bei nord- und südamerikanischen Indianern. In Europa Vorkommen bei
i.v.-Drogenabhängigen. HTLV-2-Infektionen zeigen in der großen Mehrheit keine Pathogenität. Klinisch manifeste Infektionen können verschiedene Krankheitsbilder verursachen (wie bei
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
HTLV-1): U.a. tropische spastische Paraparese-ähnliche Erkrankungen sowie Leukämien und
pulmonale Erkrankungen.
HTLV-3 und HTLV-4 wurden erstmals 2005 bei Afrikanern aus Kamerun nachgewiesen.
Epidemiologische Daten aus den USA von 2010 liefern bisher keinen Hinweis auf eine weltweite Verbreitung von HTLV-3/4. Spezifische Tests für HTLV-3/4 sind im Routinelabor noch
nicht verfügbar. Das 2005 neu beschriebene HTLV-3 sollte nicht mit HIV verwechselt werden,
welches kurz nach seiner Entdeckung in den 1980er Jahren ebenfalls als HTLV-3 bezeichnet
wurde.
HTLV-1/2-AK CMIA
Material: Serum 600 µl, EDTA-Blut 1 ml, Vollblut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Spenderdiagnostik, Suchtest zum Ausschluss einer HTLV1/2-Infektion
Referenzbereich: negativ
(F)
HTLV-1/2-AK Blot (Bestätigungstest)
Material: Serum 1 ml, Vollblut 2 ml, EDTA-Blut 2 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Indikation: Bestätigungstest bei reaktivem HTLV-Suchtest
(F)
HTLV-1/2-RNA
Material: EDTA-Blut 5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Unklare HTLV-Serologie, Neugeborene HTLV-positiver Mütter
Referenzbereich: negativ
Humanes Bocavirus
Dieses neue Parvovirus wurde im Jahr 2005 am Karolinska-Institut in Stockholm entdeckt.
Heute weiß man, dass es Infektionen der tiefen Atemwege bei Kleinkindern verursacht, deren
frühe Symptome denen einer Infektion mit Influenzaviren, RSV, Coronaviren oder den ebenfalls erst vor wenigen Jahren entdeckten humanen Metapneumoviren ähneln. Koinfektionen
mit diesen wurden beschrieben. In ersten Studien konnte bei bis zu 10% der wegen akuter
Respirationstrakt-Erkrankung hospitalisierten Kleinkinder DNA des humanen Bocavirus nachgewiesen werden.
Humanes Bocavirus DNA
Material: Bronchiallavage, Trachealsekret (jeweils 2 ml), Rachenabstrich trocken oder in
Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Infektion bei akuter Atemwegssymptomatik
Referenzbereich: negativ
Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV 6)
Exanthema subitum, 3-Tage-Fieber
Die Erkrankung ist durch hohes Fieber von drei Tagen Dauer und einem anschließend auftretenden, feinfleckigen Exanthem gekennzeichnet. Die Infektion erfolgt im frühen Kindesalter, schon bei Dreijährigen beträgt die Durchseuchungsrate ca. 90%. Die Übertragung erfolgt
meist durch infektiösen Speichel. Wie alle Herpesviren persistiert HHV Typ 6 lebenslang. Bei
Immunsupprimierten kann es zu Komplikationen kommen.
Inkubationszeit: 5 - 15 Tage
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Humanes Herpes-Virus Typ 6 IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthema subitum bei Kindern <4 Jahre, Hepatitis, Roseola sine eruptione,
Otitis, mononukleoseähnliches Syndrom, Meningoenzephalitis?
Referenzbereich: <1:16 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 6 IgM-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Infektion, Exanthema subitum bei Kindern <4 Jahre, Hepatitis,
Roseola sine eruptione, Otitis, mononukleoseähnliches Syndrom, Meningoenzephaltitis?
Referenzbereich: <1:16 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 6 IgG IFT im Liquor
Material: Liquor 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: <1:4 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV 6) DNA
Material: Biopsie nativ, EDTA-Blut 2-3 ml, Liquor 0,5 ml
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei V. a. HHV 6-Infektion, z. B. bei Immunsupprimierten
Referenzbereich: negativ
Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV 7)
Die Übertragung des Virus sowie das Krankheitsbild ähneln stark der Infektion mit HHV 6. Die
Möglichkeit von HHV 7 als Erreger der Pityriasis rosea wird diskutiert.
Humanes Herpes-Virus Typ 7 IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthema-subitum-ähnliches Bild im frühen Jugendalter
Referenzbereich: <1:16 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 7 IgM-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Exanthema-subitum-ähnliches Bild im frühen Jugendalter
Referenzbereich: <1:16 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV 7) DNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei V. a. HHV 7-Infektion, z. B. bei Immunsupprimierten
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV 8)
HHV 8 verursacht das Kaposi-Sarkom. Darüber hinaus ist das Virus mit bestimmten B-ZellLymphomen (body-cavity-based-lymphoma) und der Castleman-Erkrankung assoziiert. Alle
drei Krankheiten treten bevorzugt bei Immunsupprimierten, insbesondere bei HIV-Infizierten
auf.
Humanes Herpes-Virus Typ 8 IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Kaposi-Sarkom, Castleman-Erkrankung, Angiosarkom, body cavity based lymphoma (BCBL), multiples Myelom, Posttransplantationstumor
Referenzbereich: <1:100 Titer
Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV 8) DNA
Material: Biopsie nativ, EDTA-Blut 2-3 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Kaposi-Sarkom, Castleman-Erkrankung, Angiosarkom, Posttransplantationstumor
Referenzbereich: negativ
Humanes Immundefizienz Virus (HIV)
Retroviren, meist Infektionen mit HIV-1, sehr selten HIV-2. Infektionen verlaufen immer chronisch (d.h. lebenslang). Effektive Therapieoptionen bestehen (immer Kombinationstherapie),
eine Heilung ist weiterhin nicht erreichbar. Ungenügend behandelt ist der Verlauf gekennzeichnet durch einen zunehmenden Immundefekt mit dem Auftreten von opportunistischen Infektionen und Malignomen (AIDS).
Übertragung durch Sexualkontakt, Blutkontakt (Nadelstichverletzungen und i.v.-Drogengebrauch), perinatal.
Anonyme Meldepflicht des Labors.
HIV-Test (HIV-1/2 AK + p24-Ag)
Proben werden nur für die Fragestellung einer evtl. Postexpositionsprophylaxe eilig bearbeitet. Hierfür ist eine telefonische Ankündigung der Proben erwünscht.
Sensitiver Suchtest, ein reaktives Ergebnis muss durch einen Bestätigungstest verifiziert
werden.
Beachte "diagnostisches Fenster": Test frühestens nach 2 Wochen möglich, sichere Aussage des Tests erst 6 Wochen nach dem Risikokontakt.
Material: Serum 0,5 ml, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: Ausschluss einer HIV-Infektion.
Referenzbereich: negativ
HIV-Test (HIV1/2 AK + p24 Ag) CMIA
Spenderdiagnostik, Sensitiver Suchtest, ein reaktives Ergebnis muss durch einen Bestätigungstest verifiziert werden.
Beachte: "Diagnostisches Fenster": Test frühestens nach 2 Wochen möglich, sichere Aussage des Tests 6 Wochen nach Risikokontakt.
Material: Serum 500 µl, EDTA-Blut 1 ml, Vollblut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Indikation: Spenderdiagnostik sowie Ausschluss einer HIV-Infektion
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
61
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
HIV-Antikörperbestätigungstest (Immunoblot)
HIV1/2 recomLINE BLOT (MIKROGEN)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung eines reaktiven HIV-Suchtests, serologische Bestätigung einer
HIV-1- oder HIV-2-Infektion
Referenzbereich: negativ
HIV-1 Viruslast
Material: EDTA-Blut 5 ml
Methode: TMA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verlaufs- und Therapiekontrolle bei HIV-Infektion, Nachweis/Ausschluss einer
HIV-1-Infektion bei kürzlichem Kontakt sowie bei Neugeborenen von HIV-1-positiven Müttern, nach Risikokontakt ab 10. Tag p.i.
Referenzbereich: negativ
(F)
HIV-2-RNA
Material: EDTA-Blut 5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: unklare HIV-Serologie, Therapiekontrolle, Neugeborene von HIV-2 positiven
Müttern.
Referenzbereich: negativ
HIV-1 Genotypische Resistenzbestimmung
Getestete Genbereiche: Reverse Transkriptase, Protease und Integrase
Material: EDTA-Blut 5 ml
Methode: Sequenzierung
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Resistenzbestimmung vor antiretroviraler Therapie, Versagen der antiretroviralen HIV-1-Therapie
Abacavir Überempfindlichkeit vor HIV-Therapie (HLA-B*57:01) (s. S. 114)
CD4/CD8-Bestimmung (kl. zellulärer Immunstatus) (s. S. 118)
CD38 auf CD8-T-Lymphozyten (AIDS-Prognosemarker) (s. S. 118)
Humanes Metapneumovirus (HMPV)
Das humane Metapneumovirus (HMPV) wurde im Jahre 2001 von der niederländischen
Arbeitsgruppe van den Hoogen et al. entdeckt. 2003 konnte das Virus erstmals auch in
Deutschland als Erreger respiratorischer Erkrankungen (Bronchiolitis) vor allem bei kleinen
Kindern nachgewiesen werden. Es gehört in dieselbe Virusfamilie wie das Respiratory Syncytial Virus (RSV, Paramyxoviridae) und verursacht auch ein ähnliches Krankheitsbild. Genetisch können zwei Subtypen (A und B) unterschieden werden.
Die Diagnose wird vor allem durch den Erregernachweis gestellt.
Humanes Metapneumovirus (HMPV) RNA
Material: Bronchiallavage, Trachealsekret (jeweils 2 ml), Rachenabstrich trocken oder in
Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Infektion
Referenzbereich: negativ
Hundebandwurm (s. S. 242)
Echinococcus granulosus, zystische Echinokokkose
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Hundespulwurm (s. S. 250)
Toxocara canis
Immunstatusbestimmung
Vor bzw. nach Impfung und nach Kontakt, besonders in der Schwangerschaft und bei medizinischem Pflegepersonal sowie vor Immunsuppression
CMV (Cytomegalie-Virus) IgG EIA (s. S. 39)
Vor Sterilitätsbehandlung, bei Kontakt in der Schwangerschaft, bei medizinischem Personal, bei Müttern von Frühgeborenen (wg. der Frage des Stillens)
Diphtherie-Toxin-AK NT (s. S. 38)
Epstein Barr-Virus IgG EIA (s. S. 45)
besonders bei Kontakt in der Schwangerschaft
FSME Virus IgG EIA (s. S. 48)
Haemophilus influenzae b IgG EIA (s. S. 49)
Hepatitis A-AK (s. S. 52)
nach Kontakt (z. B. in der Schwangerschaft und bei medizinischem Personal), bei geimpften Kindern/Erwachsenen und nach Auslandsaufenthalt
(Immunglobulingabe oder Inkubationsimpfung möglich)
Hepatitis B (anti-HBs) (s. S. 53)
bei Kontakt in der Schwangerschaft, bei medizinischem Personal, Kindern und Erwachsenen
(Immunglobulingabe möglich)
Herpes-simplex-Virus IgG EIA (s. S. 57)
bei Kontakt in der Schwangerschaft
Influenza-Virus-AK NT (s. S. 64)
Masern-Virus IgG EIA (s. S. 67)
bei Kontakt in der Schwangerschaft (Immunglobulingabe möglich), medizinisches Personal
mit Kontakt
Masernvirus-AK NT (s. S. 68)
Mumps-Virus IgG EIA (s. S. 68)
bei Kontakt in der Schwangerschaft, medizinisches Personal mit Kontakt
Parvovirus B19 IgG EIA (s. S. 73)
bei Kontakt in der Schwangerschaft, Pflegepersonal mit Kontakt
Pertussis IgG EIA (s. S. 30)
Pneumokokken IgG EIA (s. S. 75)
nur bei Bestimmung vor und nach Impfung sinnvoll!
Polio NT (s. S. 75)
Röteln HAH (s. S. 80)
Vor der Schwangerschaft und bei Kontakt sollten die Antikörper bestimmt werden (ggf. mit
den entsprechenden Verlaufskontrollen), bei medizinischem Personal mit Kontakt
Rötelnvirus-IgG EIA (s. S. 80)
Tetanus IgG EIA (s. S. 37)
Toxoplasma gondii IgG CLIA (s. S. 85)
bei Kontakt zu Infektionsquelle in der Schwangerschaft und vor Sterilitätsbehandlung
VZV (Varizella-Zoster-Virus) IgG EIA (s. S. 88)
bei Kontakt in der Schwangerschaft, immunsupprimierten Patienten (Immunglobulingabe
möglich) und medizinisches Personal mit Kontakt
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Influenza A-, B-Virus
Im Winter treten gehäuft Infektionen mit Influenza A- und B-Viren auf. Alle etwa 10-30 Jahre
können durch Antigenshift Pandemien auftreten. Jährliche Impfung (im Herbst) mit dem jeweils
aktuellen Impfstoff besonders bei älteren Menschen, Immunsupprimierten und Personen mit
viel Publikumsverkehr (z. B. Personal von Arztpraxen, Pflegepersonal auf Intensivstationen) ist
empfehlenswert. Im akuten Stadium ist der Erregernachweis aus Rachen- oder Nasenabstrich
die Methode der Wahl.
Inkubationszeit: 2 - 3 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Influenza-Virus-Anzucht in Zellkultur
auf MDCK- und HepG-2-Zellen
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Nasopharyngealabstrich, Rachenabstrich
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 7 Tage)
Indikation: V. a. Influenza-Infektion
Referenzbereich: negativ
Influenza A-, B-Virus RNA
Material: Rachenabstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe), Trachealsekret 2 ml, Liquor 0,5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Influenza-Infektion
Referenzbereich: negativ
Influenza-Virus-AK NT
Der Test wird mit den im Impfstoff enthaltenen Influenzaviren (A/H1N1, A/H3N2 und beide
B-Linien) durchgeführt.
Material: Serum 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Immunstatus vor bzw. nach Impfung
Referenzbereich: siehe Befund Titer
JCV (s. S. 71)
JC-(Polyoma-)Virus
Kala Azar (s. S. 245)
Viscerale Form der Leishmaniose
Kaposi-Sarkom (s. S. 61)
Humanes Herpes Virus Typ 8
Katzenkratzkrankheit (s. S. 29)
Bartonella henselae
Keuchhusten (s. S. 30)
Bordetella pertussis
Kinderlähmung (s. S. 75)
Poliomyelitis
Legionellen
Legionellen werden durch Inhalation erregerhaltiger Aerosole übertragen (infiziertes Wasser,
z. B. Duschen oder Klimaanlagen).
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Sie verursachen eine Erkrankung, die durch grippeähnliche Symptome und Pneumonie
gekennzeichnet ist. Nosokomiale Infektionen kommen vor, eine Isolierung der Infizierten ist
nicht notwendig, da Übertragungen von Mensch zu Mensch bisher nicht beschrieben sind. Die
Methode der Wahl ist der Erregernachweis (z. B. Antigen im Urin), da Antikörper erst mehrere
Wochen nach Erkrankungsbeginn zuverlässig nachweisbar sind.
Inkubationszeit: 2 - 10 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Legionellen-IgG-AK IFT
Pool I: L. pneumophila Serogruppe 1-6, Pool II: L. pneumophila Serogruppe 7-14,
Pool III: L. bozemanii, dumoffii, germanii, longbeachae, micdadei, jordanis.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Pneumonie, grippeähnliche Symptome, Thoraxschmerzen, häufiger bei Immunsuppression und länger hospitalisierten Patienten; Leber-/Nierenbeteiligung; Krankenhaushygiene
Referenzbereich: <1:64 Titer
Legionellen-Antigennachweis im Urin (s. S. 228)
Legionella-pneumophila-DNA
Material: Sputum, Bronchiallavage, Trachealsekret (jeweils 2 ml), Urin 5-10 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Pneumonie; Krankenhaushygiene
Referenzbereich: negativ
Legionellenkultur aus der BAL (s. S. 228)
Leishmanien (s. S. 245)
Leptospirose
Leptospiren sind Spirochäten, die durch Mikroverletzungen über die Schleimhäute, aber auch
durch die intakte Haut in den Körper gelangen können. Urin von infizierten Tieren ist die hauptsächliche Infektionsquelle für den Menschen (insbesondere durch Kontakt mit kontaminierten
Gewässern). Symptome sind: Fieber, Kopfschmerz, Schüttelfrost und Muskelschmerzen. Epidemiologisch stellen Ratten weltweit das wichtigste Erregerreservoir dar. Risikogruppen sind
Veterinäre, Kanalarbeiter, Fischer, Wassersportler, Landwirte und Camper.
Inkubationszeit: 7 -13 (2 - 26) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Leptospiren-AK Mikroagglutination
L. canicola, L. copenhageni, L. sejroe, L. grippothyphosa, L. pomona, L. bratislava, L. ballum, L. bataviae
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Agglutination
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Myalgien, Wadenschmerzen, Hepatitis, Nephritis, Meningitis, hohes Bilirubin, mäßig erhöhte Transaminasen
Referenzbereich: <1:100 Titer
(F)
Leptospiren-DNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Urin 5 ml, Liquor 1 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Leptospirose
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Listerien
Gramnegative Stäbchen, die mit dem Kot ausgeschieden werden. Erregerreservoir sind meistens Tiere. Die Infektion mit Listerien erfolgt in der Regel über kontaminierte Lebensmittel
(z. B. Milch und Milchprodukte). Eine Listerien-Infektion in Schwangerschaft kann zu Abort,
Totgeburt oder einem geschädigten Kind führen; ZNS-Syndrome besonders bei älteren und
geschwächten Personen.
Bei V. a. Infektion ist der direkte Erregernachweis die Methode der Wahl.
Inkubationszeit: Tage bis Wochen
Meldepflichtige Erkrankung!
Listeriolysin-O-IgG-AK EIA
Erregernachweis vorrangig!
Material: Serum 500 µl, EDTA-Plasma 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion; Infektion eher bei Immungeschwächten, gelegentlich in Gravidität: grippeähnliche Symptome, Schüttelfrost, vorzeitige Wehen, hohes CRP (Immer Erregernachweis ansteben!)
Referenzbereich: < 0,85 Index
Listeria-monocytogenes-DNA
Material: Genitalabstrich trocken oder in sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl, EDTA-Blut 2-3
ml, Liquor 500 µl
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion; Infektion eher bei Immungeschwächten, gelegentlich in Gravidität: grippeähnliche Symptome, kurz Schüttelfrost, vorzeitige Wehen, hohes CRP, ZNSSyndrome, besonders bei älteren und geschwächten Patienten
Referenzbereich: negativ
Listerienanzucht aus der Blutkultur (s. S. 228)
(Anzucht auch aus Liquor, Stuhl und Cervixabstrich möglich)
Lues (s. S. 82)
Syphilis
Lyme Disease (s. S. 32)
Borreliose
Lymphozytäres Choriomeningitis-Virus (LCMV)
Das LCM-Virus gehört zur Familie der Arenaviren. In Nagetieren ist das Virus weitverbreitet.
Die Übertragung auf den Menschen erfolgt meist über die Hausmaus und den Goldhamster. In
Schwangerschaft kann eine Infektion mit LCMV zu schweren kindlichen Schädigungen führen
(z. B. Hydrozephalus, Mikrozephalus).
Inkubationszeit: 6 - 13 Tage
LCM-Virus-IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 µl, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Hamsterkontakt (Neukauf eines Spieltieres), Nagerkontakt, Meningitis, Enzephalitis, in Grav: Gefahr der Fruchtschädigung
Referenzbereich: <1:16 Titer
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
LCM-Virus-IgM-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: Mo, Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Hamsterkontakt (Neukauf eines Spieltieres), Nagerkontakt, Meningitis, Enzephalitis, in Grav: Gefahr der Fruchtschädigung
Referenzbereich: <1:16 Titer
LCM-Virus RNA
(Methode nicht nach DIN EN ISO 15189 akkreditiert)
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Liquor 500 µl, Fruchtwasser 2-5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. LCMV-Infektion
Referenzbereich: negativ
Malaria (s. S. 246)
Maltafieber (s. S. 33)
Brucella melitensis
Masern
Das Masern-Virus gehört zu den Paramyxoviren, wird durch Tröpfcheninfektion übertragen
und ist hochkontagiös. Komplikation: Pneumonie, Enzephalitis (Häufigkeit 1:500 - 1:2000). Bei
Personen mit T-Zell-Defekt letaler Ausgang der Pneumonie häufig. Eine weitere, sehr seltene
ZNS-Komplikation ist die subakut-sklerosierende Panenzephalitis (SSPE). Charakteristisch für
eine SSPE sind sehr hohe IgG-AK-Titer in Serum und Liquor ohne nachweisbare IgM-AK und
ohne Nachweis von Masern-RNA im Liquor.
Inkubationszeit: 8 - 12 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Masern-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung, Fieber, trockener Husten, Konjunktivitis, Kopliksche Flecken, makulopapulöses Exanthem, Enzephalitis; V. a. SSPE
Referenzbereich: <150 mIU/ml
Masern-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Masern-Infektion
Referenzbereich: <2,0 Index
Masern-Virus IgG-AK Avidität
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Aviditätstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest bei Immunstatus, bei unplausiblem IgM und zur Bestätigung einer
frischen bzw. abgelaufenen Infektion.
Referenzbereich: siehe Befund %
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Masern-Virus-IgG-AK im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung, V. a. SSPE, MRZ-Reaktion bei V.a. MS
Referenzbereich: negativ mIU/ml
Masern-Virus-AK NT
Material: Serum 500 µl
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung
Referenzbereich: <1:10 Titer
Masern-Virus-RNA
Material: Abstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe), EDTA-Blut 2-3 ml,
Liquor 500 µl, Urin 5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Maserninfektion (Rachenabstrich und Urin empfohlen)
Referenzbereich: negativ
Masern-Virus Genotypisierung
Besondere Fragestellung: Bestimmung des vorliegenden Masern-Genotyps zur Abklärung,
z.B. der geographischen Herkunft des Isolates.
Diese Untersuchung führen wir nicht selbst durch, können diese jedoch veranlassen.
Meningokokken (Neisseria meningitidis)
Gramnegative Diplokokken, die Übertragung erfolgt durch Tröpfcheninfektion. Der Erkrankungsgipfel liegt bei Kindern zwischen dem 6. und 12. Lebensmonat. Bei V. a. Infektion ist der
Erregernachweis die Methode der Wahl.
Inkubationszeit: 1 - 10 (meist unter 4) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Kultureller Nachweis in der Blutkultur (s. S. 228)
(Anzucht auch aus Liquor möglich)
Mittelmeerfieber (s. S. 33)
Brucella melitensis
Morbus Bang (s. S. 33)
Brucella abortus
Morbus Bornholm (s. S. 44)
Synonym: Myalgia epidemica
Coxsackie B-Viren
Morbus Pfeiffer (Mononukleose) (s. S. 45)
Mumps
Synonym: Parotitis epidemica, Ziegenpeter.
Das Mumps-Virus gehört zu den Paramyxoviren und wird durch Tröpfcheninfektion übertragen. Komplikationen: Orchitis, Pankreatitis, Meningitis (bis 10% mit Parotitis, 40-50% ohne
Parotitis!). Reinfektionen kommen vor, jedoch sind dann IgM-AK meist nicht nachweisbar.
Inkubationszeit: 16 - 18 (12 - 25) Tage
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Mumps-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus vor/nach Impfung, Fieber, Parotitis, selten Meningitis, Pankreatitis,
Orchitis (in/nach Pubertät); bei Frauen: Oophoritis
Referenzbereich: <16 U/ml
Mumps-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Infektion mit Mumps
Referenzbereich: <2,0 Index
Mumps-Virus IgG-AK Avidität
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Aviditätstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest bei Immunstatus, bei unplausiblem IgM und zur Bestätigung einer
frischen bzw. abgelaufenen Infektion.
Referenzbereich: siehe Befund %
Mumps-Virus-IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung
Referenzbereich: negativ U/ml
Mumps-Virus-RNA
Material: Rachenabstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe), EDTA-Blut
2-3 ml, Liquor 500 µl, Urin 5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Mumps-Infektion
Referenzbereich: negativ
Mycoplasma hominis / genitalium
M. hominis und M. genitalium sind Erreger des Urogenitaltrakts bei Erwachsenen (meist asymptomatische Besiedlung). Die Übertragung erfolgt durch sexuellen Kontakt und perinatal auf
das Neugeborene. Nur ein geringer Teil dieser Neugeborenen erkrankt jedoch symptomatisch
(postpartales Fieber, selten Meningitis).
Erregernachweis vorrangig!
Kultureller Nachweis von M. hominis (s. S. 233)
Mycoplasma-hominis-DNA
Material: Genitalabstrich trocken oder in sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl, Urin 2 ml, Ejakulat 1 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Genitalinfektion, postpartales Fieber beim Neugeborenen
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Mycoplasma-hominis-AK NT
M. hominis kommt in geringer Keimzahl als Standortflora im Genitaltrakt vor!
Unter Antibiotikatherapie können bei diesem Test falsch-positive Ergebnisse auftreten.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: unspezifischer Genitalinfekt, nicht gonorrhoische Urethritis beim Mann, Vaginitis, Cervicitis, Bartholinitis, Infektion der Nieren, postinfektiös reaktive Arthritiden; bei Ngb:
postpartales Fieber
Referenzbereich: <1:16 Titer
Mycoplasma-genitalium-DNA
(Methode nicht nach DIN EN ISO 15189 akkreditiert)
Bei Neugeborenen respiratorische Sekrete bzw. Abstriche gewinnen.
Material: Genitalabstrich trocken oder in sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl, Urin 5 ml, Trachealsekret 2 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: negativ
Mycoplasma pneumoniae
Zellwandlose Bakterien, die durch Tröpfcheninfektion übertragen werden. Erreger verursacht
eine Respirationstrakterkrankung, teilweise mit atypischer Pneumonie. Weitere Organmanifestationen (z. B. ZNS) sind möglich. Eine durchgemachte Infektion hinterlässt keine bleibende Immunität.
Inkubationszeit: 1 - 4 Wochen
Mycoplasma-pneumoniae-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss einer akuten Infektion
Referenzbereich: <9 AU/ml
Mycoplasma-pneumoniae-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss einer akuten Infektion
Referenzbereich: <0,90 Index
Mycoplasma-pneumoniae-IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest, V. a. Mykoplasmen-Infektion
Referenzbereich: <1:64 Titer
Mycoplasma-pneumoniae-IgG-AK IFT im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. ZNS-Beteiligung, Enzephalitis
Referenzbereich: <1:1 Titer
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Kultureller Nachweis von M. pneumoniae (s. S. 228)
Mycoplasma-pneumoniae-DNA
Material: Liquor 0,5 ml, Sputum, Bronchiallavage, Trachealsekret, Bronchialsekret (jeweils
2 ml), Abstrich (Nase, Rachen) trocken oder in sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Atypische Pneumonie, Bronchitis, Meningoenzephalitis, Otitis media
Referenzbereich: negativ
Neisseria gonorrhoeae (s. S. 49)
Gonokokken
Neisseria meningitidis (s. S. 68)
Meningokokken
Neutralisationsteste
Mittels Neutralisationstest (NT) werden protektive (neutralisierende) Antikörper gegen Infektionserreger bestimmt. Für die Prüfung der vorhandenen Immunität ist nicht immer eine einfache Methode wie z. B. ein Enzym-Immuno-Assay (EIA) geeignet, da der Schutz bei manchen Infektionen nur mit den neutralisierenden Antikörpern korreliert. Das betrifft insbesondere
die Immunität gegen Poliovirus und Diphtherie. Auch für die Beurteilung des Immunstatus bei
anderen Infektionen ist der NT trotz des Aufwands die Methode der Wahl.
CMV-AK NT (s. S. 40)
Diphtherie-Toxin-AK NT (s. S. 38)
Influenza-Virus-AK NT (s. S. 64)
Masern-Virus-AK NT (s. S. 68)
Polio-Virus-AK NT (s. S. 75)
Zika-Virus-AK NT (s. S. 93)
Noroviren
RNA-Viren aus der Familie der Caliciviridae, die häufig fieberhafte, hartnäckige Durchfallerkrankungen hervorrufen. Sie treten vor allem in den Herbst- und Wintermonaten auf. Erkrankungsgipfel Oktober bis Februar.
Inkubationszeit: 1 - 3 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Norovirus-RNA
Material: Stuhl erbsgroß, Erbrochenes
Methode: RT-PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Gastroenteritis
Referenzbereich: negativ
Orientbeule (s. S. 245)
Kutane Leishmaniose
Ornithose (s. S. 36)
Papageienkrankheit
Papilloma-Viren (HPV)
Papilloma-Viren verursachen eine Vielzahl von verrukösen Erkrankungen. Besondere Bedeutung haben die "onkogenen" (high risk) Papilloma-Viren (z. B. Typen: 16, 18, 31, 33), die an
der Entstehung von Zervix-, Vulva-, Penis- und Analkarzinomen beteiligt sind.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Papilloma-Viren (High-Risk) RNA, Nachweis der viralen Onkogene E6/E7
Benutzen Sie bitte das spezielle Aptima oder SurePath Entnahme-/Transportsystem
(Bestellung unter 0711-6357104).
Material: Genitalabstrich
Methode: TMA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: auffälliger zytologischer Befund, V.a. HPV-Infektion
Referenzbereich: negativ
Papilloma-Viren (High-Risk HPV) DNA und Typisierung
Benutzen Sie bitte das spezielle Sure Path Entnahme-/Transportsystem (Bestellung unter
0711-6357104).
Material: Genitalabstrich
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: auffälliger zytologischer Befund, V.a. HPV-Infektion
Referenzbereich: negativ
Papilloma-Viren (High-Risk und Low-Risk) DNA und Typisierung
Benutzen Sie bitte das spezielle SurePath Entnahme-/Transportsystem (Bestellung unter
0711-6357104).
Material: Biopsie nativ, Genitalabstrich
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: auffälliger zytologischer Befund, V.a. HPV Infektion. Abklärung des/der vorliegenden HPV Genotyps/Genotypen
Papovaviren (Polyoma-, Papillomaviren) (s. S. 75)
Pappataci-Fieber (s. S. 81)
Sandfly Fever
Parainfluenza-Viren Typ 1,2,3
Parainfluenza-Viren gehören zur Familie der Paramyxoviridae, die durch Tröpfcheninfektion
übertragen werden. Typ 1 und Typ 2 treten meist in jährlichen Zyklen auf (Gipfel im Herbst),
während Typ 3 ganzjährig endemisch ist. Parainfluenza-Viren sind meist die Erreger des viralen Pseudokrupp.
Der Erregernachweis aus Rachen- oder Nasenabstrich ist die Methode der Wahl.
Inkubationszeit: 2 - 4 Tage
Parainfluenza-1,2,3-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Infektion des oberen und unteren Respirationstrakts, bei Kindern Hauptursache des Pseudokrupp, bei Erwachsenen milde katarrhalische Infekte der oberen Luftwege,
Bronchitis
Referenzbereich: <8,5 U/ml
Parainfluenza-1,2,3-IgA-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Indikation: s. Parainfluenza-1,2,3-IgG-AK
Referenzbereich: <8,5 U/ml
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Parainfluenza-Virus-Anzucht in Zellkultur
auf LLCMK2-Zellen
Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Rachenabstrich, Nasenabstrich, Trachealsekret, Bronchiallavage
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 7 Tage)
Indikation: V. a. Parainfluenza-Infektion
Referenzbereich: negativ
Parainfluenza-Virus Typ 3 RNA
Material: Liquor 0,5 ml, Bronchiallavage 2 ml, Rachenabstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V.a. Infektion mit Parainfluenza-Virus Typ 3
Referenzbereich: negativ
Parechoviren
Parechoviren gehören zur Familie der Picornaviridae. Bisher wurden sechs humane Parechoviren identifiziert: Das humane Parechovirus 1 (vormals ECHO-Virus 22), das humane
Parechovirus 2 (vormals ECHO-Virus 23) und die humanen Parechoviren 3-6.
Humane Parechoviren verursachen in der Regel eine leichte Gastroenteritis bzw. Respirationstrakterkrankung, werden jedoch auch mit Fällen von Meningoenzephalitis in Verbindung
gebracht. Die Infektion ist klinisch häufig nicht von einer Enterovirus-Infektion zu unterscheiden.
Es besteht bereits in den ersten Lebensjahren eine hohe Durchseuchung, da diese Viren weit
verbreitet sind.
Humane Parechovirus-RNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml, Liquor 0,5 ml, Stuhl erbsgroß, Biopsie nativ,
Rachenabstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: seröse Meningitis; unklare Peri-, Myokarditis, akute/chronische Kardiomyopathie; Enteritis
Referenzbereich: negativ
Parvovirus B19 (Ringelröteln, Erythema infectiosum)
Ringelröteln (5th disease, Erythema infectiosum) zählen zu den meist mild verlaufenden Exanthemerkrankungen im Kindesalter. Übertragung durch Tröpfcheninfektion. Höchste Kontagiosität ca. 7 Tage vor Exanthembeginn. Im Erwachsenenalter verlaufen etwa 30% der Fälle ohne
Symptome. Patienten mit hämolytischen Anämien können im Rahmen der Erstinfektion eine
transiente aplastische Krise entwickeln. Akute und chronisch verlaufende Arthritiden (v. a. im
Erwachsenenalter bei Frauen) sind beschrieben. Bei Schwangeren kann die Infektion zum
intrauterinen Fruchttod und/oder Hydrops fetalis führen. Selten kann eine Myokarditis oder
Enzephalitis/Enzephalopathie auftreten.
Inkubationszeit: 8 - 14 Tage
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
73
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Parvovirus-B19-IgG-AK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl, fetales
EDTA-Blut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus; girlandenförmiges Exanthem häufig am Stamm beginnend und
an den Wangen, juckend; aplastische Krise bei V. a. Infektion; Hydrops fetalis.
Referenzbereich: <3 IU/ml
Parvovirus-B19-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl, fetales
EDTA-Blut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Girlandenförmiges Exanthem häufig am Stamm beginnend und an den Wangen,
juckend; aplastische Krise bei V. a. Infektion; Hydrops fetalis.
Referenzbereich: <0,9 Index
Parvovirus-B19-IgG-AK Blot (recomLine)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Parvovirus-B19-IgM-AK Blot (recomLine)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: Line Assay
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Parvovirus-B19 IgG Avidität
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Aviditätstest
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes nur in Kombination mit
dem Parvovirus Blot und dem Parvovirus-B19-DNA Nachweis mittels PCR
Referenzbereich: s. Befund %
Parvovirus-B19-DNA
Der Test erkennt die humanen Erythrovirus-Genotypen 1, 2 und 3.
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml, fetales EDTA-Blut 500 µl, Fruchtwasser 2-5 ml,
Biopsie nativ
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung einer akuten Infektion; Infektion in der Schwangerschaft; Hydrops
fetalis. Differentialdiagnose bei Myokarditis (besonders bei Kindern und Jugendlichen)
Referenzbereich: negativ
Pfeiffersches Drüsenfieber (s. S. 45)
(EBV-Infektion)
Picorna-Viren (s. S. 44)
Enteroviren
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Plasmodium falciparum, malariae, ovale, vivax (s. S. 246)
PML (Progressive multifokale Leukenzephalopathie) (s. S. 75)
JC-Polyoma-Virus
Pneumocystis jirovecii
P. jirovecii (vormals P. carinii) wird den Pilzen zugeordnet. Bei abwehrgeschwächten Patienten verursacht der Erreger eine schwere Pneumonie. Typische Symptome sind trockener Husten, Dyspnoe und Fieber. Die Durchseuchungsrate ist schon im frühen Kindesalter sehr hoch.
Heute kommen Erkrankungen praktisch nur bei immunsupprimierten Patienten vor.
Pneumocystis jirovecii (carinii) DNA
Material: Bronchiallavage, Sputum, Trachealsekret (jeweils 2 ml), Biopsie nativ
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Interstitielle plasmazelluläre Pneumonie, trockener Husten, Dyspnoe insbesondere bei Immunsuppression (HIV)
Referenzbereich: negativ
Pneumokokken
Der Erreger Streptococcus pneumoniae wird durch Tröpfcheninfektion übertragen. Weltweit
häufigster Erreger von Bakteriämien, besonders bei alten Menschen, Immunsupprimierten:
Pneumonien, Meningitiden, Otitiden und Sinusitiden. Seltenere Infektionen sind Endokarditis,
Arthritis und Peritonitis. Bei V. a. eine Pneumokokken-Infektion ist der Erregernachweis die
Methode der Wahl.
Pneumokokken-IgG-AK
Bestimmung nur im Rahmen der Impfung sinnvoll!
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: vor/nach Impfung, bei Symptomen: Erregernachweis vorrangig!
Referenzbereich: <3,3 mg/l
Kultureller Nachweis von S. pneumoniae im Respirationstrakt (s. S. 228)
(Weitere Materialien: Liquor, Blutkultur)
Poliomyelitis (Kinderlähmung)
Poliomyelitisviren gehören zu den Enteroviren. Infektionen verlaufen überwiegend asymptomatisch. Im Rahmen der klassischen Poliomyelitis tritt eine schlaffe, meist asymmetrische Lähmung auf. In Europa ist die Poliomyelitis praktisch ausgerottet.
Inkubationszeit: 7 - 14 (3 - 35) Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Polio-Neutralisationstest (WHO)
Antikörperbestimmung gegen Typ I und III
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: Mi, Fr (Bearbeitungszeit: 5 Tage)
Indikation: Immunitätsbestimmung nach Poliomyelitis-Impfung, wichtig vor Auslandsaufenthalt.
Referenzbereich: <1:8 Titer
Polyomaviren (BKV, JCV)
Polyomaviren gehören wie die Papillomaviren zur Familie der Papovaviridae. Die Übertragung
erfolgt vermutlich durch Tröpfcheninfektion und die Durchseuchung ist bereits im Kindesalter
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
sehr hoch. Bei immunsupprimierten Patienten kann BK-Virus zu einer hämorrhagischen Zystitis und bei Transplantierten zur Abstoßung des Transplantates führen, JC-Virus ist der Erreger
der progressiven multifokalen Leukenzephalopathie (PML).
BK-(Polyoma)-Virus DNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml, Urin 5-10 ml
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: (haemorrhagische) Zystitis, Verlaufskontrolle nach Nierentransplantation
Referenzbereich: negativ
JC-(Polyoma)-Virus DNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml, Liquor 0,5 ml, Urin 5-10 ml
Methode: PCR (auch quantitativ)
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: PML (Progressive multifokale Leukenzephalopathie), Slow-Virus-Disease
Referenzbereich: negativ
Pseudomonas-aeruginosa-Antikörper
Diese Untersuchungen sind nur bei Patienten mit Cystischer Fibrose (Mukoviszidose) indiziert.
Sie sind nicht zur Diagnostik akut verlaufender Erkrankungen durch Pseudomonas aeruginosa
geeignet (direkter Erregernachweis!).
IgG gegen alkalische Protease (P. aeruginosa)
Material: Serum 500 µl
Methode: EIA
Referenzbereich: <1:500 Titer
IgG gegen Elastase (P. aeruginosa)
Material: Serum 500 µl
Methode: EIA
Referenzbereich: <1:500 Titer
(F)
(F)
IgG gegen Exotoxin A (P. aeruginosa)
Material: Serum 500 µl
Methode: EIA
Referenzbereich: <1:500 Titer
(F)
Bakteriologische Untersuchung aus respiratorischen Sekreten (s. S. 228)
Psittakose (s. S. 36)
Papageienkrankheit
Puumalaviren (s. S. 50)
Q-Fieber (s. S. 38)
Rabies, Lyssa, Tollwut (s. S. 84)
Respiratory Syncytial Virus (RSV)
RSV gehört zu den Paramyxoviren, die Übertragung erfolgt durch Tröpfcheninfektion. Hauptursache der Hospitalisation bei Säuglingen. Das Virus ist einer der wichtigsten und häufigsten
Erreger von kindlichen Atemwegserkrankungen, vor allem bei Säuglingen (schwere Pneumonien). Eine Otitis media ist meist die Folge einer RSV-Infektion. Es gibt 2 Subtypen (A und B),
der Häufigkeitsgipfel von Erkrankungen durch RSV liegt in den Wintermonaten. Reinfektionen
kommen häufig vor und verlaufen überwiegend als Infektion der oberen Luftwege ("common
cold").
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Die Diagnose wird vor allem durch den Erregernachweis gestellt.
Inkubationszeit: 3 - 6 Tage
Respiratory Syncytial Virus (RSV) IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: bei Säuglingen: Bronchiolitis; Krupp, Pneumonie
Referenzbereich: <10 U/ml
Respiratory Syncytial Virus (RSV) IgA-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: bei Säuglingen: Bronchiolitis; Krupp, Pneumonie
Referenzbereich: <10 U/ml
Respiratory Syncytial Virus (RSV) RNA
Material: Bronchiallavage, Trachealsekret (jeweils 2 ml), Rachenabstrich trocken oder in
Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Infektion
Referenzbereich: negativ
Rhinoviren
Rhinoviren gehören zu den Picornaviridae. Die Übertragung erfolgt z. B. über kontaminierte
Hände oder durch Tröpfcheninfektion. Mit über 100 Serotypen sind sie weltweit verbreitet und
treten gehäuft in den Wintermonaten auf. Im Unterschied zu den Enteroviren sind sie säureempfindlich. Neben dem banalen Schnupfen ("common cold") kann das Virus auch (besonders
bei Kindern) zu Atemwegserkrankungen (Bronchitis, Bronchopneumonie) führen. Die nur kurz
dauernde, typenspezifische Immunität erklärt die häufig wiederkehrenden Schnupfenepisoden
im Leben jedes Menschen.
Rhinovirus-RNA
Material: Bronchiallavage, Trachealsekret (jeweils 2 ml), Rachenabstrich trocken oder in
Virustransportmedium (grüne Kappe)
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion
Referenzbereich: negativ
Rickettsien (R. conorii, R.rickettsii, R.africae u.a.)
Rickettsien sind kleine, gramnegative, obligat intrazelluläre Bakterien. Sie verursachen eine
Vielzahl von vor allem reisemedizinisch relevanten Erkrankungen.
Darunter sind z.B. das Mittelmeer-Zeckenstichfieber (Boutonneuse-Fieber, R. conorii), das
afrikanische Zeckenstichfieber (R. africae), das klassische (epidemische) Fleckfieber (R.
prowazeckii), das murine Fleckfieber (R. typhi), das Felsengebirgsfleckfieber (Rocky-Mountain-Spotted Fever, R. rickettsii) und das Tsutsugamushi-Fleckfieber (Japanisches Fleckfieber,
ausgelöst durch O. tsutsugamushi).
Läuse, Zecken und Flöhe dienen als Vektoren, aber auch Milben (beim Tsutsugamushi-Fieber)
können als Überträger fungieren.
Die Mikroorganismen sind weltweit verbreitet, in Europa kommen sie meist in den Mittelmeerländern vor.
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Das Tsutsugamushi-Fieber wird durch O. tsutsugamushi (früher Rickettsia tsutusugamushi)
verursacht. Dieser Erreger wird mit unserer Rickettsien-Serologie nicht erfasst. In den letzten
Jahren konnten weitere durch Zecken übertragene Rickettsien (R. slovaca, R. helvetica, R.
raoultii u.a.) identifiziert werden. Diese kommen auch in Mitteleuropa vor. Aufgrund von Kreuzreaktionen sollten diese Erreger mit erfasst werden.
Schwere Organmanifestationen wie Pneumonien, Meningitis, Sepsis und Myokarditis sind selten.
Bitte beachten: Das routinemäßige Screening beinhaltet den Nachweis von Antikörpern
gegen R. conorii/ R. africae!
Besteht bei einem Patienten der Verdacht auf Rocky-Mountain- oder murines Fleckfieber, bitte
explizit „Antikörper auf R. rickettsii/ R. typhi“ anfordern unter Angabe der Symptomatik, der
Reiseanamnese etc.:R. rickettsii wird durch Zecken übertragen und ist auf den nordamerikanischen Kontinent beschränkt, R. typhi wird durch den Rattenfloh übertragen und kommt weltweit
vor. Das durch R. prowazekii übertragene Fleckfieber wird mittels Kreuzreaktionen mit dem
Antigen R. typhi erfasst. Die Übertragung erfolgt über Läuse und tritt in den USA, in Europa
und in Afrika auf. Latente Infektionen mit R. prowazekii können nach Jahren bis Jahrzehnten
rezidivieren (Brill-Zinsser-Erkrankung).
Inkubationszeit: 7-21 Tage
Meldepflicht: nur R. prowazekii
Rickettsia conorii/R. africae -IgG IFT
Die Antikörperuntersuchung beinhaltet zwei Testansätze.
Im ersten Ansatz werden Antikörper gegen den Erreger des Mittelmeer-Zeckenstichfiebers
nachgewiesen, im zweiten Ansatz gegen den Erreger des Afrikanischen Zeckenstichfiebers.
Erfasst werden wegen auftretender Kreuzreaktionen R. conorii, R. africae, R. akari, R. massiliae, R. sibirica und andere.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Eschar, makulopapulöses Exanthem, Vektorexposition, Reiseanamnese: Mittelmeer, (Süd-)Afrika
Referenzbereich: <1:64 Titer
Rickettsia conorii/R. africae -IgM IFT
Die Antikörperuntersuchung beinhaltet zwei Testansätze.
Im ersten Ansatz werden Antikörper gegen den Erreger des Mittelmeer-Zeckenstichfiebers
nachgewiesen, im zweiten Ansatz gegen den Erreger des Afrikanischen Zeckenstichfiebers.
Erfasst werden wegen auftretender Kreuzreaktionen R. conorii, R. africae, R. akari, R. massiliae, R. sibirica und andere.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, Eschar, makulopapulöses Exanthem, Vektorexposition, Reiseanamnese: Mittelmeer, (Süd-)Afrika
Referenzbereich: <1:64 Titer
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Rickettsia rickettsii/R. typhi/R. prowazekii-IgG IFT
Die Antikörperuntersuchung beinhaltet zwei Testansätze.
Im ersten Ansatz werden Antikörper der Zeckenstichfieber-Gruppe (spotted fever group)
nachgewiesen. Erfasst werden R. rickettsii, R. australis, R. helvetica, R. slovaca, R. raoulti.
Im zweiten Ansatz werden Antikörper der Typhus-Gruppe (klassischer Typhus, typhus
murinus) nachgewiesen. Erfasst werden wegen auftretender Kreuzreaktionen R. typhi/
mooseri, R. prowazekii.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, makulopapulöses Exanthem, Vektorexposition, Kopfschmerz, Konjunktivitis, Hepatitis nach Vektorexposition.
Referenzbereich: <1:128 Titer
Rickettsia rickettsii/R. typhi/R. prowazekii-IgM IFT
Die Antikörperuntersuchung beinhaltet zwei Testansätze.
Im ersten Ansatz werden Antikörper der Zeckenstichfieber-Gruppe (spotted fever group)
nachgewiesen. Erfasst werden R. rickettsii, R. australis, R. helvetica, R. slovaca, R. raoulti.
Im zweiten Ansatz werden Antikörper der Typhus-Gruppe (klassischer Typhus, typhus
murinus) nachgewiesen. Erfasst werden wegen auftretender Kreuzreaktionen R. typhi/
mooseri, R. prowazekii.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Fieber, makulopapulöses Exanthem, Vektorexposition, Kopfschmerz, Konjunktivitis, Hepatitis nach Vektorexposition.
Referenzbereich: <1:128 Titer
(F)
Rickettsien-PCR
Bei positivem PCR-Befund wird mittels Sequenzierung die Art bestimmt.
Material: EDTA-Blut 2-3 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Akutdiagnostik nach Zeckenstich
Referenzbereich: negativ
Rinderbandwurm (s. S. 250)
Ringelröteln (s. S. 73)
Rotaviren
Rotaviren sind weltweit die häufigste Ursache von Durchfallerkrankungen bei Kindern (besonders Säuglingen) und treten vor allem in den Winter- und Frühlingsmonaten auf, Gipfel im
März/April. In mehr als der Hälfte der Fälle sind unspezifische respiratorische Symptome zu
beobachten. Die Übertragung erfolgt fäkal-oral, Reinfektionen kommen vor, da eine durchgemachte Infektion nur eine serotypspezifische Immunität hinterlässt.
Inkubationszeit: 1 - 3 Tage
Die Erkrankung ist meldepflichtig!
Rotavirus-Antigennachweis im Stuhl
Material: Stuhl erbsgroß
Methode: Ag-EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Rotavirus-Infektion, akute Diarrhoe
Referenzbereich: negativ
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Rotavirus-RNA-Nachweis im Stuhl
Material: Stuhl erbsgroß
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Rotavirus-Infektion, akute Diarrhoe
Referenzbereich: negativ
Röteln
Das Rötelnvirus gehört zur Familie der Togaviren. Die Übertragung des Rötelnvirus erfolgt
durch Tröpfcheninfektion und pränatal. Postnatal erworbene Röteln verlaufen im allgemeinen
leicht, bis zu 50% der Infektionen bei Kindern sind sogar asymptomatisch. Das Virus ist hoch
teratogen, je früher in der Schwangerschaft eine Primärinfektion stattfindet, desto schwerer
sind die kindlichen Schädigungen. Reinfektionen kommen vor. Als Spätfolge kann eine progressive Rötelnpanenzephalitis (ähnlich der SSPE) auftreten.
Inkubationszeit: 14 - 21 Tage
Anonyme Meldepflicht einer Rötelnembryopathie!
Röteln-Virus-AK HAH
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl
Methode: HAH (HHT)
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus (besonders in Gravidität), vor/nach Impfung, nach Kontakt
Referenzbereich: <1:8 Titer
Röteln-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl, fetales
EDTA-Blut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich
Indikation: Bestimmung der Immunitätslage vor/nach Impfung (vor Grav.)
Referenzbereich: <4,0 IE/ml
Röteln-Virus-IgM-AK CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl, fetales
EDTA-Blut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Abklärung einer akuten Infektion
Referenzbereich: <20 AU/ml
Röteln-Virus-IgG-AK EIA Avidität
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Aviditätstest
Ansatz: täglich
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: siehe Befund %
Röteln-Virus-IgG-AK Immunoblot
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: siehe Befund
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Röteln-Virus-IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: ZNS-Beteiligung, MRZ-Reaktion bei V.a. MS
Referenzbereich: <0,14 IE/ml
Röteln-Virus-RNA
Material: Rachenabstrich trocken oder in Virustransportmedium (grüne Kappe), Urin 5-10
ml, Liquor 500 µl, Abortmaterial nativ, fetales EDTA-Blut 0,5 ml, Fruchtwasser 2-5
ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Rötelninfektion vor allem in Gravidität (Pränatale Diagnostik) und bei V.
a. konnatale Infektion
Referenzbereich: negativ
Röteln-Virus Genotypisierung
Besondere Fragestellung: Bestimmung des vorliegenden Röteln-Genotyps zur Abklärung
z.B. der geographischen Herkunft des Isolates.
Diese Untersuchung führen wir nicht selbst durch, können diese jedoch veranlassen.
Salmonellen
Salmonellen werden durch kontaminierte Lebensmittel (meist Eier, Geflügel) übertragen, aber
auch fäko-orale Infektionen sind beschrieben. In Abhängigkeit von der klinischen Symptomatik
unterscheidet man: akute Enteritis oder Enterokolitis, Bakteriämie, Typhus und typhoide Form.
Vor allem bei jüngeren Kindern wird eine verlängerte Ausscheidung beobachtet. Hauptreservoir der Erreger sind insbesondere Tiere, die zum Verzehr gehalten werden.
Inkubationszeit: 5 - 72 Stunden, Typhus: 1 - 3 Wochen, Paratyphus: 1 - 10 Tage
Salmonellosen sind meldepflichtig!
Salmonellen-AK EIA
Nachgewiesen werden IgG-, IgA- und IgM-Antikörper gegen S. enteritidis und S. typhimurium.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Reaktive Arthritis
Referenzbereich: <0,9 Index
Kultureller Nachweis von Salmonellen (s. S. 231)
Sandfly Fever (Pappataci-Fieber)
Es existieren verschiedene Serotypen: Sicilian, Naples, Toscana. Das Sandmücken-Fieber-Virus, welches zu den Bunyaviren gehört, kommt im Mittelmeerraum bis Pakistan vor, der
Serotyp Toscana bisher nur in einigen Regionen Italiens, Portugals, Spaniens und Zyperns.
Erregerreservoir sind Nutztiere und Mäuse, die Übertragung erfolgt durch Stiche von Sandmücken.
Inkubationszeit: 3 - 5 Tage
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
81
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Sandmückenfieber-IgG/IgM-AK Immunoblot
(Verwendung rekombinanter Antigene)
Nachweis von Antikörpern gegen Sandmücken-Fieber-Virus vom Typ Toscana (miterfasst
werden Sicilian- und Naplesvirus)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: hohes Fieber, Kopfschmerzen, Konjunktivitis, Arthralgien, aseptische Meningitis; nach Aufenthalt im Mittelmeerraum (Italien, Spanien, Portugal, Kroatien), Nord-Afrika,
Asien
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Schistosomiasis (s. S. 249)
Schweinebandwurm (s. S. 250)
Shigellose (S. sonnei, S. flexneri)
Synonym: bakterielle Ruhr
Gramnegative Stäbchen, die meist fäkal-oral übertragen werden. Die Shigellose ist durch akute, schleimige oder blutige Durchfälle, Fieber und extraintestinale Symptome charakterisiert.
Shigellen sind hochinfektiös und vermögen bis zu 30 Tage außerhalb des Wirts zu überleben. Infektionen werden häufig im Rahmen eines Auslandsaufenthaltes durch kontaminiertes
Trinkwasser oder kontaminierte Speisen verursacht.
Inkubationszeit: 1 - 7 Tage
Meldepflichtige Erkrankung!
Kultureller Nachweis von Shigellen (s. S. 231)
STORCH-Serologie (s. S. 94)
Subakute sklerosierende Panenzephalitis (SSPE) (s. S. 67)
(Masern-Infektion)
Syphilis (Lues)
Die Syphilis (Lues, harter Schanker) ist eine systemische Erkrankung, die durch die Spirochäte
Treponema pallidum verursacht wird. Hauptübertragungswege sind Sexualkontakte und die
transplazentare Infektion des Feten. Die Erkrankung verläuft in verschiedenen Stadien (Primärstadium, Sekundärstadium, Tertiärstadium). Unbehandelt entwickeln etwa 40% der Patienten klinisch manifeste Spätkomplikationen (Gummen, kardiovaskuläre Syphilis, progressive Paralyse, Tabes dorsalis). Serologisch kann die venerische Syphilis nicht von nicht-venerischen Treponematosen (z.B. Yaws, Pinta u.a.) unterschieden werden.
Inkubationszeit: 14 (3 - 90) Tage
Anonyme Meldepflicht des Labors!
TPPA (Luessuchreaktion)
Der Treponema-pallidum-Partikel-Assay (TPPA) entspricht in seiner Wertigkeit dem TPHA
(Treponema-pallidum-Hämagglutinations-Assay).
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Agglutination
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Syphilisausschlussdiagnostik (Screeningtest, Luessuchreaktion); Mutterschaftsvorsorge bei Schwangerschaftsfeststellung.
Referenzbereich: <1:80 Titer
82
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Syphilis TP Test
Verwendung rekombinanter Treponema pallidum Antigene
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Nachweis treponemenspezifischer Gesamtantikörper.
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
VDRL (Venereal Disease Research Laboratory Test)
Objektträger-Test
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, Liquor 500 µl
Methode: Präzipitation
Ansatz: 3 - 4 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Entzündungsaktivität bei Verdacht auf Syphilis bzw. Therapiebedürftigkeit.
Referenzbereich: <1:1 Titer
RPR (Rapid Plasma Reagin Test)
Kartentest
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Präzipitation
Ansatz: 3 - 4 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Entzündungsaktivität bei Verdacht auf Syphilis.
Referenzbereich: <1:1 Titer
FTA-ABS-IgG IFT
Fluoreszenz-Treponema-Antikörper-Absorptions-Test
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, Liquor 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 3 - 4 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Syphilisbestätigungstest bei reaktivem Suchtest.
Referenzbereich: <1:10 Titer
FTA-ABS-19S-IgM IFT
Fluoreszenz-Treponema-Antikörper-Absorptions-Test
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 3 - 4 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Nachweis einer behandlungsbedürftigen Treponema pallidum-Infektion.
Referenzbereich: <1:10 Titer
Treponema-pallidum-IgG-AK Immunoblot
Verwendung spezifischer Treponema pallidum Antigene
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Syphilisbestätigungstest bei reaktivem Suchtest und grenzwertigen Befunden
in der Immunfluoreszenz.
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Treponema-pallidum-IgM-AK Immunoblot
Verwendung spezifischer Treponema pallidum Antigene
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Nachweis einer behandlungsbedürftigen Treponema pallidum-Infektion.
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
83
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Neurosyphilistest (modifizierter ITpA-Index)
Intrathekaler Treponema pallidum Antikörper-Index
Immer Serum/Liquor-Paar (gleiches Entnahmedatum) einsenden. Zusätzlich wird die
Bestimmung des Gesamt-IgG und Albumin in Serum und Liquor durchgeführt.
Material: Liquor 1 ml, Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Agglutination
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Berechnung des intrathekalen T. pallidum Antikörper (ITpA)- Index zum Nachweis bzw. Ausschluss einer T. pallidum-spezifischen Antikörpersynthese im ZNS bei Verdacht auf Neurosyphilis.
Referenzbereich: <2,0 ITpA-Index
Treponema-pallidum-DNA
Material: Abortmaterial nativ, Abstrich trocken oder in sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl,
Biopsie nativ, EDTA-Blut 2-3 ml, fetales EDTA-Blut 500 µl, Urin 2-5 ml, Liquor 1
ml, Genitalabstrich trocken oder in sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl, Fruchtwasser
2-5 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Genitalulkus und V. a. Syphilis (Abstrich), V. a. Neurosyphilis (Liquor),
V. a. konnatale Syphilis (Fruchtwasser, EDTA-Blut, Liquor, Sekrete (Rhinitis), Urin).
Bei Patienten mit Immunsuppression (HIV) ggf. auch EDTA-Blut, Abstriche und Biopsiematerial im Sekundärstadium bei unklaren serologischen Befunden.
Referenzbereich: negativ
Tetanus (s. S. 37)
Tollwut (Rabies, Lyssa)
Weltweit verbreitete Erkrankung der Tiere (Baden-Württemberg seit 2005 tollwutfrei). Die
Virusübertragung auf den Menschen findet meist durch Biss- und Kratzwunden statt. Die
Krankheit endet tödlich. Kadaver tollwutkranker Tiere sind als infektiös zu betrachten.
Inkubationszeit: 10 Tage bis Monate (je nach Bisslokalisation)
Meldepflicht von Erkrankung, V. a. Erkrankung, Berührung mit Speichel eines verdächtigen
Tieres oder Kadavers sowie jede Verletzung durch ein solches Tier! Dies gilt auch für den
Kontakt mit ausgelegten Impfködern.
Bei Infektionsverdacht Kontaktaufnahme mit folgenden Stellen:
Konsiliarlaboratorium für Tollwut
Universitätsklinikum Essen, Institut für Virologie
Virchowstraße 179, 45147 Essen
Ansprechpartner: Herr Prof. Dr. R. S. Roß
Tel.: 02 01.7 23-35 61, Fax: 02 01.7 23-59 29
oder:
Friedrich-Loeffler-Institut, Bundesforschungsinstitut für Tiergesundheit, Institut für
Epidemiologie, Nationales und O.I.E. Referenzlabor für Tollwut. WHO Collaborating
Centre for Rabies Surveillance and Research
Südufer 10, 17493 Greifswald - Insel Riems
Tel.: +49 (38 351) 7-1659 / -1660
Fax: +49 (38 35)1 7-1275
Ansprechpartner: Drs. Thomas Müller/Conrad Freuling
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
(F)
Tollwut-AK (RFFIT)
Antikörpernachweis nur zur Feststellung des Impferfolges!
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: vor/nach Impfung
Referenzbereich: <0,5 IU/ml
TORCH-Serologie (s. S. 94)
Toxocarose (s. S. 250)
Toxoplasmose
Die Toxoplasmose ist eine häufige Infektionskrankheit, die in der Mehrzahl der Fälle asymptomatisch verläuft. Erreger ist der intrazelluläre Parasit Toxoplasma gondii. Infektionsquellen
sind rohe bzw. zu wenig gebratene, geräucherte Fleisch- oder Wurstwaren, unpasteurisierte Milch, Rohmilchprodukte, erregerkontaminierte Erde (durch Katzenkot) bei Gartenarbeiten
bzw. ungesäuberte Nahrungsmittel (Salat, Gemüse, Fallobst). Geringeres Risiko bedeutet der
direkte Kontakt zu Katzen.
In der Schwangerschaft kann eine Primärinfektion zu schweren Schädigungen (Hydrozephalus, intrazerebrale Verkalkungen, Retinochorioiditis) beim Feten oder selten zum Abort führen.
Beim Immunsupprimierten kann die Toxoplasmose als opportunistische Infektion mit Myokarditis, Enzephalitis oder Pneumonie lebensbedrohend sein.
Inkubationszeit: wahrscheinlich 2 - 4 Wochen
Anonyme Meldepflicht bei konnataler Toxoplasmose.
Toxoplasma gondii IgG-AK CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Toxoplasmose, Screening in der Schwangerschaft und vor Sterilitätsbehandlung, grippeähnliche Symptome, Lymphadenitis, Katzenkontakt, Verzehr von rohem
Fleisch
Referenzbereich: <7,0 IU/ml
Toxoplasma gondii IgG-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V.a. Toxoplasmose, Spenderdiagnostik
Referenzbereich: negativ
Toxoplasma gondii IgM-AK CLIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Toxoplasmose
Referenzbereich: <8,0 AU/ml
Toxoplasmose gondii IgM-AK CMIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V.a. akute Toxoplasmose, Spenderdiagnostik
Referenzbereich: negativ
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
85
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasma gondii IgG-AK Avidität
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Aviditätstest
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: s. Befund Index
Toxoplasma gondii IgM-AK ISAGA
Material: Serum 200 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 1 ml, fetales EDTABlut 200 µl
Methode: ISAGA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: In der Schwangerschaft: Zusatztest zur Bestätigung positiver IgM-AK im CLIA.
Beim Neugeborenen: V. a. pränatale Toxoplasmose.
Referenzbereich: Erwachsene, Kinder >2J: <1:512; Kinder <2J: <1:20 Titer
Toxoplasma gondii IgG-AK Immunoblot (recomLine)
Verwendung rekombinanter Antigene
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Identifikation phasenspezifischer Antikörper
Referenzbereich: s. Befund
Toxoplasma gondii IgG-AK Avidität Immunoblot (recomLine)
Verwendung rekombinanter Antigene
Durchführung nur in Kombination mit T. gondi IgG-AK Blot
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: s. Befund
Toxoplasma gondii IgM-AK Immunoblot (recomLine)
Verwendung rekombinanter Antigene
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Plasma 1 ml
Methode: Line Assay
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Identifikation phasenspezifischer Antikörper
Referenzbereich: s. Befund (qualitativ)
Toxoplasma gondii IgA-AK ISAGA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, Nabelschnurblut 1 ml, fetales EDTA-Blut 500 µl
Methode: ISAGA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest bei V. a. akute, reaktivierte oder pränatale Toxoplasmose
Referenzbereich: <1:16 Titer
Toxoplasma gondii IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Toxoplasmose, Zusatztest
Referenzbereich: <1:32 Titer
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasma gondii IgG-AK IFT im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Es wird ein Liquor-/Serumpaar vom selben Abnahmetag benötigt.
Material: Liquor 100 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. ZNS-Beteiligung bzw. Ausschluss pränatale Infektion beim Neugeborenen
Referenzbereich: <1:2 Titer
Toxoplasma gondii IgG-AK Profil (Mutter/Kind; Augentoxoplasmose)
Immer mütterliches Blut und Nabelschnurblut einsenden; außerdem Folgeblut des Neugeborenen in der 6. und 12. Lebenswoche. Bei Untersuchung des Augenkammerwassers
wird Serum vom selben Abnahmetag benötigt.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 1 ml, Augenkammerwasser 200 (mind. 20) µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei V. a. pränatale Toxoplasmose; Nachweis der spezifischen Synthese intraokulärer IgG-Antikörper bei aktiver Retinochorioiditis
Referenzbereich: s. Befund (qualitativ)
Toxoplasma gondii IgM-AK Profil (Mutter/Kind)
Immer mütterliches Blut und Nabelschnurblut einsenden; Kontrolle des Neugeborenen bis
zur 4. Lebenswoche.
Material: Serum 500 (min 100) µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei V. a. pränatale Toxoplasmose
Referenzbereich: s. Befund (qualitativ)
Toxoplasma gondii DNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, fetales EDTA-Blut 500 µl, Liquor 500 µl, Fruchtwasser 2-5 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Bei V. a. Primärinfektion/auffälligem US (Hydrozephalus, intrazerebrale Verkalkungen) Entnahme von Fruchtwasser und ggf. fetalem Blut; Zusatztest bei V. a. konnatale
Toxoplasmose, bei Immunsuppression mit ZNS-Befall
Referenzbereich: negativ
Toxoplasma gondii-spezifische T-Lymphozyten
Nachweis erregerspezifischer T-Lymphozyten durch Messung Interferon-gamma sezernierender Lymphozyten nach Antigenstimulation in vitro.
Abnahme Mo bis Mi, die Probe sollte unser Labor innerhalb von 24 Stunden erreichen.
Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Vorherige telefonische Anmeldung erbeten! Nur Heparinblut möglich! Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden.
Material: Heparinblut 7,5; Säuglinge 2-3 ml
Methode: Elispot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Nachweis einer zellulären Immunantwort gegen Toxoplasma gondii, z. B. bei
unklarer Serologie, V. a. pränatale Toxoplasmose.
Referenzbereich: negativ
Toxoplasmose Medikamentenspiegelbestimmung: Pyrimethamin (s. S. 205)
Zeitpunkt der 1. Spiegelbestimmung am 10.-12. Behandlungstag empfohlen.
Indikation: Überprüfung von Compliance, Resorption und Kumulation.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasmose Medikamentenspiegelbestimmung: Sulfadiazin (s. S. 206)
Zeitpunkt der 1. Spiegelbestimmung am 10.-12. Behandlungstag empfohlen. Blutentnahme
3-4 Stunden nach der morgendlichen Tabletteneinnahme.
Indikation: Überprüfung von Compliance und Resorption.
Trichinose (s. S. 251)
Tropheryma whipplei (Morbus Whipple) DNA
(F)
Material: Dünndarmbiopsie nativ, Liquor 2 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf Morbus Whipple
Referenzbereich: negativ
Tularämie (s. S. 47)
TWAR (Chlamydia pneumoniae) (s. S. 35)
Ureaplasmen
Die Patient(inn)en sind meist symptomlos. Bei Neugeborenen von infizierten Müttern beträgt
die Transmissionsrate intra partum bis zu 50%. Reife Neugeborene erkranken selten, unreife
Neugeborene (postpartales Fieber, selten Meningitis).
Erregernachweis vorrangig!
Ureaplasma-urealyticum-AK NT
U. urealyticum kommt in geringer Keimzahl als Standortflora im Genitaltrakt vor!
Unter Antibiotikatherapie können falsch-positive Ergebnisse auftreten.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Unspezifische Genitalinfektion, Urethritis, Vaginitis, postinfektiöse reaktive
Arthritis, erhöhte Frühgeburtlichkeit; bei Ngb.: Pneumonie, postpartales Fieber
Referenzbereich: <1:16 Titer
Kultureller Nachweis von Ureaplasma sp. (s. S. 233)
Ureaplasma-urealyticum-DNA/Ureaplasma-parvum-DNA
Material: Genitalabstrich trocken oder in sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl, Urin 5-10 ml,
Ejakulat 1 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: unspezifische Genitalinfektion, Urethritis, Vaginitis, postinfektiöse reaktive
Arthritis, erhöhte Frühgeburtlichkeit; bei Ngb. (Trachealsekret): Pneumonie, postpartales
Fieber
Referenzbereich: negativ
Varizella-Zoster-Virus (Windpocken, Zoster)
Das Varizella-Zoster-Virus (VZV) verursacht als Primärinfektion die Windpocken und bei Reaktivierung eine Gürtelrose (Zoster). Bei Neugeborenen und Immunsupprimierten sind schwere
Verläufe möglich. Bei Windpocken in der Frühschwangerschaft können Missbildungen (Kongenitales Varizellen Syndrom) auftreten. Bei VZV-Kontakt von seronegativen Schwangeren ist
eine Postexpositionsprophylaxe möglich.
Inkubationszeit: 14 (8 - 21) Tage, nach Immunglobulingabe auch länger
Meldepflicht des Labors!
88
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl, fetales
EDTA-Blut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Immunstatus; direkter Kontakt zu Windpocken, besonders in der Schwangerschaft (zeitgerechte Immunglobulingabe möglich) und um Geburtstermin
Referenzbereich: <50 mIU/ml
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK EIA (ultrasensitiv)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Serologische Bestimmung niedriger Antikörpertiter, vor allem nach Impfung
Referenzbereich: siehe Befund mIU/ml
Varizella-Zoster-Virus-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml, Nabelschnurblut 500 µl, fetales
EDTA-Blut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Windpockenerkrankung
Referenzbereich: <2,0 Index
Varizella-Zoster-Virus-IgA-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. reaktivierte VZV-Infektion (Zoster), typisch segmental begrenzte Bläschen
begleitet von schmerzhafter Neuritis; Paresen, Parästhesien auch ohne Hauterscheinungen, Zosterenzephalitis; bei Immunsuppression schwere Verläufe möglich
Referenzbereich: <1,0 Index
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK Avidität
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Aviditätstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: siehe Befund %
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK Avidität (ultrasensitiv)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Aviditätstest
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest zur Eingrenzung des Infektionszeitpunktes
Referenzbereich: siehe Befund %
Varizella-Zoster-Virus-IgG-AK EIA im Liquor
Liquor sollte klar und ohne Blutbeimengung sein, da sonst das Ergebnis verfälscht wird.
Untersuchung nur sinnvoll bei gleichzeitiger Abnahme einer Blutprobe zur Bestimmung der
Serum-AK.
Material: Liquor 200 µl
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: ZNS-Beteiligung, MRZ-Reaktion bei V.a. MS
Referenzbereich: <2,0 mIU/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Varicella-Zoster-Virus-Anzucht in Zellkultur
auf diploiden Fibroblasten
Bläscheninhalt, Rachenabstrich, Rachensekret immer gekühlt (+4°C) per Eilsendung einsenden. Für virologische Untersuchungen aus Abstrichmaterial bitte ausschließlich Virustransportmedium (grüne Kappe) verwenden.
Material: Bläscheninhalt, Rachenabstrich
Methode: Kultur
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 7 Tage)
Indikation: V.a. Windpocken
Varizella-Zoster-Virus-DNA
Material: Bläscheninhalt, Fruchtwasser 2-5 ml, Liquor 500 µl
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Windpocken, ZNS-Beteiligung, Abklärung eines unklaren vesikulären
Exanthems
Referenzbereich: negativ
VZV (s. S. 88)
Varizella-Zoster-Virus
West-Nil-Virus (WNV)
Das West-Nil-Virus ist ein behülltes RNA-Virus der Flaviviridae-Familie, das sowohl in tropischen als auch in gemäßigten Gebieten vorkommt. Das Virus infiziert hauptsächlich Vögel,
kann aber auch auf Menschen, Pferde und andere Säugetiere übergreifen.
Das Virus wird durch Stechmücken übertragen. Hauptverbreitungsgebiete sind Afrika, Indonesien, Israel und Indien. In Nordamerika ist es die gemeine kleine Hausmücke (Culex pipiens)
und ein Hybrid aus Culex pipiens und Culex molestus.
Beim Menschen ergeben sich in 80% der Fälle keine Symptome durch die Infektion. In anderen
Fällen ergeben sich Grippe-ähnliche Symptome, bekannt als West-Nil-Fieber. Das Virus ist in
der Lage, die Blut-Hirn-Schranke zu passieren, und kann dadurch eine Enzephalitis oder eine
Meningitis auslösen (in 0,7% der Fälle). Beide Fälle können tödlich enden.
Inkubationszeit: 2 - 14 Tage
Meldepflicht des Labors!
(F)
West-Nil-Virus-AK IgG IFT
Cave: Kreuzreaktionen mit anderen Viren der Flavivirus-Gruppe (z.B. FSME-Virus) sind
möglich.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Infektion mit West-Nil-Virus, Auslandsaufenthalt
Referenzbereich: <1:40 Titer
(F)
West-Nil-Virus-AK IgM IFT
Cave: Kreuzreaktionen mit anderen Viren der Flavivirus-Gruppe (z.B. FSME-Virus) sind
möglich.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Infektion mit West-Nil-Virus
Referenzbereich: <1:40 Titer
90
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
(F)
West-Nil-Virus-RNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Vollblut 2-3 ml, Liquor 500 µl
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Myalgien, Kopfschmerzen, makulopapulöses Exanthem, Lymphadenopathie
nach Aufenthalt in Risikogebieten.
Referenzbereich: negativ
Windpocken (s. S. 88)
Varizella-Zoster-Virus
Wundstarrkrampf (s. S. 38)
Tetanus
Yersiniosen (Y. enterocolitica, Y. pseudotuberculosis)
Gramnegative Stäbchen, die durch kontaminierte Nahrung aufgenommen werden. Die Ausscheidung der Yersinien mit dem Stuhl kann viele Wochen nach Ende der Diarrhoe fortbestehen. Insbesondere bei HLA B27-positiven Patienten kann es post infectionem zu Arthritiden,
Erythema nodosum und Arthralgien kommen.
Inkubationszeit: 1 - 14 Tage
Meldepflichtige Erkrankung (bei akuter Enteritis)!
Yersinia-IgG-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Yersiniose (Enteritis, pseudoappendizitische Symptomatik) bzw. yersinienbedingte Komplikationen (reaktive Arthritis, Erythema nodosum, akute Glomerulonephritis, Myokarditis)
Referenzbereich: <20 U/ml
Yersinia-IgM-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Yersiniose (Enteritis, pseudoappendizitische Symptomatik) bzw. yersinienbedingte Komplikationen (reaktive Arthritis, Erythema nodosum, akute Glomerulonephritis, Myokarditis)
Referenzbereich: <20 U/ml
Yersinia-IgA-AK EIA
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. akute Yersiniose (Enteritis, pseudoappendizitische Symptomatik) bzw. yersinienbedingte Komplikationen (reaktive Arthritis, Erythema nodosum, akute Glomerulonephritis, Myokarditis)
Referenzbereich: <20 U/ml
Yersinia-enterocolitica-IgG Blot
Antigen: Lysat aus Yersinia-enterocolitica-Stämmen, durch Kreuzreaktionen werden aber
in der Regel auch Antikörper gegen Yersinia pseudotuberculosis und Y. pestis detektiert
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei positivem Ergebnis im EIA
Referenzbereich: negativ
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
91
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Yersinia-enterocolitica-IgA Blot
Antigen: Lysat aus Yersinia-enterocolitica-Stämmen, durch Kreuzreaktionen werden aber
in der Regel auch Antikörper gegen Yersinia pseudotuberculosis und Y. pestis detektiert.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zusatztest bei positivem Ergebnis im EIA
Referenzbereich: negativ
Kultureller Nachweis von Yersinien (s. S. 231)
Zeckenübertragene Erkrankungen
Borreliose (Lyme Disease) (s. S. 32)
FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 48)
Seltene Erkrankungen:
Ehrlichiose / Anaplasmose (s. S. 42)
Babesiose (s. S. 241)
Rickettsiose (s. S. 77)
Zika Fieber
Das Zika Fieber wird durch Viren verursacht, die hauptsächlich durch Mücken (Aedes) übertragen werden. In jüngster Zeit wurden auch in einzelnen Fällen die Übertragung der Viren
mittels Sexualverkehr und somit die Übertragung von Mensch-zu-Mensch beobachtet. Die
gesundheitlichen Beschwerden ähneln denen des Dengue-Fiebers. Meistens kommt es bei
der Erkrankung zu einem Hautausschlag mit Fieber, Augenrötung und Gelenkschmerzen. Der
Hautausschlag besteht durchschnittlich für sechs Tage, die Krankheitsbeschwerden halten
durchschnittlich 3-7 Tage an. Meistens verläuft die Infektion mit dem Zika-Virus jedoch milde
und ohne Komplikationen. Ebenso ist es möglich, dass die Infektion unbemerkt und beschwerdefrei abläuft. Das Virus steht in Verdacht Schädelfehlbildungen bei Embryonen zu verursachen. Die Folge sind Säuglinge, die mit zu kleinem Kopfumfang geboren werden (sog. Mikrozephalie) und meist geistige Behinderungen davon tragen.
Zwischenzeitlich wurden Zika-Virus-Infektionen in verschiedenen Ländern Afrikas, Asiens und
v.a. auch Lateinamerikas beobachtet.
Inkubationszeit: 1-2 Wochen
Meldepflicht des Labors!
Zika-Virus-IgG-AK
(Antigen: rekombinantes NS1)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss Infektion mit Zika-Virus (frühestens 3 Wochen nach Symptombeginn
oder Rückkehr aus Risikogebiet)
Referenzbereich: <0,8 Index
Zika-Virus-IgM-AK
(Antigen: rekombinantes NS1)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf Infektion mit Zika-Virus (bei Symptomen bzw. 2 Wochen nach
Rückkehr aus Risikogebiet)
Referenzbereich: <0,8 Index
92
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Zika-Virus-Neutralisationstest
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Neutralisationstest
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 7 Tage)
Indikation: Verdacht auf Zika-Virus-Infektion. Bestätigungstest
Referenzbereich: <1:16 Titer
Zika-Virus-RNA
Material: fetales EDTA-Blut 500 µl, EDTA-Blut 2-3 ml, Urin 5-10 ml, Fruchtwasser 2-5 ml
Methode: RT-PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss Infektion mit Zika-Virus
Referenzbereich: negativ
Zoster (Herpes Zoster) (s. S. 88)
Reaktivierte Infektion mit Varizella-Zoster-Virus
Mutterschaftsvorsorge / Pränataldiagnostik
Mutterschaftsvorsorge
Für die serologischen Untersuchungen bitte eine Monovette Serum/Vollblut einsenden. Bitte
zusätzlich eine EDTA-Monovette 7,5 ml für die Blutgruppenbestimmung sowie den Antikörpersuchtest abnehmen.
Obligat im 1. Trimenon
Bestimmung der Blutgruppe und des Rh-Faktors (s. S. 178)
(sofern nicht schon bekannt)
Antikörpersuchtest (s. S. 178)
Röteln-Immunstatus (s. S. 80)
(sofern keine zwei Rötelnimpfungen im Impfpass dokumentiert sind!)
Luessuchreaktion (TPPA) (s. S. 82)
HIV-Screening (s. S. 61)
(bei Einverständnis der Schwangeren)
Chlamydia trachomatis aus Urin (ggf. Cervixabstrich) (s. S. 36)
Nicht obligat im 1. Trimenon
(Bei Risikopatienten und Sterilitätsbehandlung Bestimmung des Immunstatus vor der
Schwangerschaft sinnvoll.)
Toxoplasmose-Screening (s. S. 85)
(ohne medizinische Indikation IGeL)
Cytomegalie-Screening (s. S. 39)
(bei Risikoberufen, z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin)
Parvovirus B19 (Ringelröteln) (s. S. 73)
(bei Risikoberufen, z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin)
Varizella-zoster-Virus (Windpocken) (s. S. 88)
(bei Risikoberufen, z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin)
Obligat im 3. Trimenon
Antikörpersuchtest (s. S. 178)
Hepatitis B (HBsAg) (s. S. 53)
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
IGeL-Untersuchungen in der Schwangerschaft
Die Kosten für Individuelle Gesundheits-Leistungen (IGeL) werden Ihren Patientinnen privat
in Rechnung gestellt. Grundsätzlich können Sie jeden Parameter auch einzeln anfordern. Die
Abrechnung erfolgt dann direkt mit Ihren Patientinnen zum 1,0-fachen Satz der GOÄ. Bitte
aktuelle Adresse der Patientin angeben.
Bei Risikoberufen z. B. Erzieherin, Lehrerin, Kinderärztin vor Schwangerschaft und bei Kontakt
CMV (IgG-AK ggf. IgM-AK) (s. S. 39)
Parvovirus B19 (IgG-AK ggf. IgM) (s. S. 73)
VZV (IgG-AK ggf. IgM-AK) (s. S. 88)
Toxoplasmose-Screening (IgG-AK, ggf. IgM-AK) (s. S. 85)
Abklärung pränataler Infektionen (TORCH, STORCH)
Syphilis (T. pallidum) (s. S. 82)
Toxoplasmose (s. S. 85)
Others (weitere Erreger, siehe unten)
Röteln (s. S. 80)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
Herpes simplex Virus Typ 1/2 (s. S. 57)
Varizella-zoster-Virus (s. S. 88)
Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCMV) (s. S. 66)
Zika-Virus (s. S. 92)
Listerien (s. S. 66)
Parvovirus B19 (s. S. 73)
Enteroviren (z. B. Coxsackie-Virus) (s. S. 44)
HIV (s. S. 61)
B-Streptokokken (s. S. 234)
Borreliose (s. S. 32)
Pränatale Diagnostik
Ansprechpartner für spezielle Fragen:
Herr PD Dr. Martin Enders: 0711/6357-120
Fragen zu molekularbiologischen Untersuchungen:
Herr Dr. Schalasta: 0711/6357-140
Fragen zum Down-Screening:
Herr Dr. Lüthgens: 0711/6357-210
Herr Dr. Alkier: 0711/6357-211
Bei Entnahme nie Heparin benutzen, auch nicht zum Benetzen der Punktionsnadel! Fruchtwasser nie zentrifugieren!
Chorionzottenbiopsie (11. - 18. SSW)
Biopsie (10 - 20 mg) z.B in RPMI-Medium (ohne Heparin!) oder in steriler 0,9%iger NaClLösung
Fruchtwasser (ab 17. SSW; optimal in SSW 19)
Fruchtwasser (5-10 ml) nativ, in sterilem Röhrchen, nicht zentrifugieren!
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Fetalblut (ab 22 - 23. SSW)
Fetalblut in EDTA -Röhrchen einsenden
Fetaler Aszites
Punktat (4 - 8 ml) nativ in sterilem Röhrchen versenden
Bei auffälligem Ultraschall (auch nach SSW 23)
wie oben beschrieben
Präeklampsie-Risiko (sFlt-1/PlGF-Quotient) (s. S. 165)
ein erhöhter sFlt-1/PlGF-Quotient kann der klinischen Manifestation einer Präeklampsie bis zu
4 Wochen vorausgehen.
HELLP-Syndrom
Unter dem "HELLP-Syndrom" versteht man eine schwere Verlaufsform der Präeklampsie, die
gekennzeichnet ist durch:
Klinisch: Oberbauchschmerzen, Übelkeit bzw. Erbrechen, Kopfschmerzen, allgemeines
Krankheitsgefühl, arterielle Hypertonie.
Laborchemisch: Trias aus Hämolyse (H emolysis), erhöhten Leberwerten (E levated L iver
Enzymes) und Thrombozytopenie (L ow P latelets).
Auftreten meist bei über 25jährigen Schwangeren zwischen Mitte 2. Trimenon und einigen
Tagen nach Geburt, im Median in der 34. SSW.
Im Sinne einer effizienten Stufendiagnostik können primär Parameter angefordert werden, die
für die Diagnosestellung als Suchtest unverzichtbar sind, da sie das Krankheitsbild definieren
(Stufe 1). Zur weiteren Abklärung (zum Beispiel Einschätzung des Schweregrads, Abgrenzung
von Differenzialdiagnosen) sind die Parameter der Stufe 2 geeignet.
Für ein "HELLP-Labor" bitte in jedem Fall EDTA-Blut und Serum einsenden, für die weiterführende Diagnostik der Stufe 2 (z. B. Verlaufskontrolle bei bereits nachgewiesenem HELLPSyndrom) auch Urin und gefrorenes Citratplasma. Sinnvolle Laboruntersuchungen:
Stufe 1
Blutbild, groß, mit mikroskopischer Differenzierung (s. S. 174)
Wegweisend sind eine Thrombozytopenie (immer <150.000/µl, meist sogar <100.000) und
evtl. der Nachweis von Fragmentozyten im Blutausstrich (in ca. 70% der Fälle). Die Thrombozytenzählung ist die wichtigste Untersuchung bei V. a. HELLP-Syndrom, sie ermöglicht z. B. die Abgrenzung zur akuten Virushepatitis und zur intrahepatischen Schwangerschafts-Cholestase. Hämatokritwerte über 38% gelten im Rahmen einer Präeklampsie als
prognostisch ungünstig (Hämokonzentration).
Haptoglobin im Serum (s. S. 177)
hoch sensitiver und spezifischer Hämolyse-Marker, bei Hämolyse und damit auch beim
HELLP-Syndrom erniedrigt .
GOT (AST) im Serum (s. S. 184)
typischerweise moderat (jedoch meist mehr als 2- bis 3-fach) erhöht.
Bitte kein Vollblut, sondern Serum einsenden.
GPT (ALT) im Serum (s. S. 184)
typischerweise moderat (jedoch meist mehr als 2- bis 3-fach) erhöht.
LDH im Serum (s. S. 185)
durch die Hämolyse erhöht auf >600 U/l, allerdings weniger spezifisch als Haptoglobin.
Ermöglicht die Abgrenzung zur akuten Schwangerschaftsfettleber, bei der die LDH unter
600 U/l bleibt.
Bitte zur Vermeidung falsch-hoher Werte durch in-vitro-Hämolyse unbedingt Serum und
kein Vollblut einsenden.
Stufe 2
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Gesamteiweiß-Kreatinin-Quotient im Urin (s. S. 210)
dient dem Nachweis einer bei Präeklampsie sehr häufig auftretenden Proteinurie (Quotient
>100 mg/g Kreatinin), daher auch differenzialdiagnostisch hilfreich. Kann in seltenen Fällen
beim HELLP-Syndrom normal sein, bei über 90% der Patientinnen findet man aber erhöhte
Werte.
Kreatinin im Serum (s. S. 185)
zur Erkennung einer z. T. als Komplikation auftretenden Niereninsuffizienz. Aus Serum-Kreatinin, Alter und Geschlecht ist die Abschätzung der glomerulären Filtrationsrate
(GFR) anhand der vereinfachten MDRD-Formel möglich. Dazu bitte Kreatinin und "GFR
nach vereinfachter MDRD-Formel" anfordern, die Berechnung wird dann von uns automatisiert und kostenlos vorgenommen.
gamma-GT im Serum (s. S. 184)
leicht erhöht oder normal, stark erhöhte Werte sprechen eher für eine intrahepatische
Schwangerschafts-Cholestase oder eine akute Schwangerschaftsfettleber.
Bilirubin im Serum (s. S. 182)
Im Vergleich zu Haptoglobin eingeschränkte Sensitivität (ca. 50%), bildet das Ausmaß einer
ausgeprägten Hämolyse aber besser ab. In der frühen Krankheitsphase oft noch normal.
Sehr hohe Bilirubin-Konzentrationen sprechen eher gegen ein HELLP-Syndrom, ebenso
wie ein hoher Anteil an direktem Bilirubin.
Bei erhöhtem Gesamt-Bilirubin bitte ggf. direktes Bilirubin nachfordern.
Harnsäure im Serum (s. S. 184)
Im Gegensatz zur normalen Schwangerschaft (Harnsäure <5 mg/dl) bei Präeklampsie
erhöht, kann das erste Zeichen einer beginnenden Präeklampsie sein.
D-Dimere (Citratplasma, gefroren) (s. S. 174)
in der Regel erhöht. Beurteilung i. R. d. HELLP-Syndromes jedoch erschwert, da die 97.
Perzentile zum Ende der Schwangerschaft auf 2822 µg/l FEU ansteigt (Norm der Nichtschwangeren (<500 µg/l FEU). Hier ist eher der hohe negative prädiktive Wert eines niedrigen Spiegels zu verwerten.
Quick-Wert (s. S. 168)
zu Beginn der Erkrankung meist normal, in der späten Krankheitsphase oft erniedrigt.
Abklärung habitueller Aborte
Von diesem Problem (definiert als 3 oder mehr aufeinander folgende Aborte) sind etwa 1%
der Paare mit Kinderwunsch betroffen. Als häufigste Ursachen wurden anatomische Anomalien, Chromosomenaberrationen, Gerinnungsstörungen, Autoimmunerkrankungen und endokrine Dysfunktionen beschrieben. Infektionskrankheiten kommen i.d.R. nicht als Auslöser in
Betracht, da sie normalerweise nicht mehrere Aborte verursachen. Empfohlene Laboruntersuchungen:
Phospholipid-Antikörper und Lupus-Antikoagulans (s. S. 139)
Bei etwa 15% der Frauen mit habituellen Aborten findet sich als Ursache ein Antiphospholipidsyndrom. Da zudem eine evidenzbasierte Therapie zur Verfügung steht, sollte jede
Frau mit habituellen Aborten unbedingt auf das Vorliegen eines Antiphospholipidsyndroms
untersucht werden.
Parameter: Antikörper gegen Phospholipide (Cardiolipin und beta-2-Glykoprotein I) und
Lupus-Antikoagulans
Material: Serum und gefrorenes Citrat-Plasma
Menge: je 600 µl
Antinukleäre Antikörper (ANA, IFT) (s. S. 123)
Material: Serum
Menge: 500 µl
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Antithrombin-III-Aktivität (s. S. 172)
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
APC-Resistenz (s. S. 172)
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Bei Ratio < 1,9 zusätzlich Faktor-V-Leiden-Mutationsanalyse zur Bestätigung durchführen
(Material: EDTA-Vollblut).
Homocystein (s. S. 173)
Material: EDTA-Plasma, Citrat-Plasma, Serum
Menge: 200 µl
Protein-C-Aktivität (s. S. 171)
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Protein-S-Aktivität (s. S. 172)
Material: Citrat-Plasma, gefroren
Menge: 500 µl
Prothrombin-(Faktor II)-Mutationsanalyse PCR (s. S. 116)
Material: EDTA-Vollblut
Menge: 2 ml
Progesteron (s. S. 163)
Ausschluss einer Lutealinsuffizienz bei rezidivierenden Aborten im 1. Trimenon
Material: Serum
Menge: 500 µl
TSH (s. S. 164)
Ausschluss einer Hypothyreose
Material: Serum
Menge: 500 µl
(F)
Chromosomenanalyse
Bei habituellen Aborten ist eine Chromosomenanalyse beider Partner angezeigt. Bei etwa
4 % der betroffenen Paare wird eine Chromosomenanomalie gefunden.
Heparin-Vollblut bei Raumtemperatur lagern und verschicken, weder kühlen noch einfrieren!
Material: Heparinblut 10 ml
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Wochen)
Indikation: V. a. Chromosomenstörung, habituelle Aborte, unerfüllter Kinderwunsch u. a.
Infektionserreger nach Symptomen
Pharyngitis/Angina (Erreger)
Eine Vielzahl von Erregern können eine Pharyngitis verursachen. Die wichtigsten Erreger, die
wir im Labor nachweisen können, sind hier aufgeführt.
RSV (s. S. 76)
vor allem bei Kleinkindern
Adenoviren (s. S. 27)
Säuglinge, Kinder, seltener Erwachsene
Bakterielle Erreger (s. S. 228)
z. B. Streptokokken Gruppe A, Haemophilus influenzae
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Influenza-Viren (s. S. 64)
bei Kindern und Erwachsenen
Parainfluenza (s. S. 72)
bei Kindern und Erwachsenen
Chlamydia pneumoniae (s. S. 35)
bei Jugendlichen und Erwachsenen
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
Herpes-simplex-Virus Typ 1 (s. S. 57)
bei Kindern, seltener bei Erwachsenen
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 45)
Candida albicans (s. S. 34)
vor allem bei Immunsupprimierten
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
vor allem bei Immunsupprimierten
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 82)
Tracheobronchitis, Krupp, Bronchiolitis
Haemophilus influenzae (s. S. 232)
RSV (s. S. 76)
vor allem bei Kleinkindern
Humanes Metapneumovirus (s. S. 62)
Humanes Bocavirus (s. S. 59)
Parainfluenza (s. S. 72)
Bordetella pertussis (s. S. 30)
Bordetella parapertussis (s. S. 30)
seltener
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
Chlamydia pneumoniae (s. S. 35)
bei Jugendlichen und Erwachsenen
Adenoviren (s. S. 27)
Influenza-Viren (s. S. 64)
Masern-Virus (s. S. 67)
C. diphtheriae (s. S. 38)
Pneumonie (Erreger)
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
Bakterielle Erreger (s. S. 228)
z. B. Moraxella catarrhalis, Pneumokokken, Haemophilus influenzae
Adenoviren (s. S. 27)
RSV (s. S. 76)
vor allem bei Kleinkindern
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Humanes Metapneumovirus (s. S. 62)
Humanes Bocavirus (s. S. 59)
Chlamydia pneumoniae (s. S. 35)
Chlamydia trachomatis (s. S. 36)
beim Neugeborenen
Influenza-Viren (s. S. 64)
bei Kindern und Erwachsenen
Parainfluenza (s. S. 72)
Pneumokokken (s. S. 228)
seltenere Erreger:
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
Masern-Virus (s. S. 67)
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 45)
Bordetella pertussis (s. S. 30)
Legionellen (s. S. 64)
Chlamydia psitacci (Ornithose) (s. S. 36)
Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 38)
Bei Immunsupprimierten
Pneumocystis jirovecii (s. S. 75)
Aspergillus (s. S. 28)
Candida (s. S. 34)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
Tuberkulose (s. S. 237)
Hepatitiden (Erreger)
Eine Hepatitis kann als Begleitsymptomatik bei vielen Infektionen auftreten. Die wichtigsten
Hepatitiserreger sind hier aufgeführt:
Hepatitis A (s. S. 52)
Hepatitis B (s. S. 53)
Hepatitis C (s. S. 55)
Hepatitis E (s. S. 56)
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 45)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
seltenere Erreger:
Adenoviren (s. S. 27)
Brucellen (s. S. 33)
Hepatitis D (s. S. 55)
bei gleichzeitiger Hepatitis B
Coxsackie A-, -B-Viren (s. S. 44)
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 38)
Herpes-simplex-Virus (s. S. 57)
Listerien (s. S. 66)
Leptospiren (s. S. 65)
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 82)
Yersinien (s. S. 91)
Meningitis (Erreger)
Coxsackie B-, ECHO-Viren (s. S. 44)
Borrelia burgdorferi (s. S. 32)
Haemophilus influenzae (s. S. 227)
Meningokokken, Pneumokokken (s. S. 227)
Mumps-Virus (s. S. 68)
Listerien (s. S. 66)
seltenere Erreger:
Adenovirus (s. S. 27)
Coxsackie A-Viren (s. S. 44)
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 45)
FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 48)
HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 59)
Herpes-simplex-Virus (s. S. 57)
LCM (Lympho-Chorio-Meningitis-Virus) (s. S. 66)
Tuberkulose (s. S. 237)
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
Enzephalomyelitis akut, chronisch (Erreger)
Herpes-simplex-Virus Typ 1/2 (s. S. 57)
FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 48)
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
Masern-Virus (s. S. 67)
Mumps-Virus (s. S. 68)
Röteln-Virus (s. S. 80)
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
seltenere Erreger:
Borrelia burgdorferi (s. S. 32)
HIV (s. S. 61)
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
Leptospiren (s. S. 65)
Listerien (s. S. 66)
100
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Treponema pallidum (s. S. 82)
Toxoplasma gondii (s. S. 85)
bei Immunsupprimierten
HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 59)
bei Immunsupprimierten
Enzephalitis, postinfektiös (Erreger)
Masern-Virus (s. S. 67)
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
seltenere Erreger:
Borrelia burgdorferi (s. S. 32)
Röteln-Virus (s. S. 80)
HIV-1 (s. S. 61)
Toxoplasma gondii (s. S. 85)
Polyradikulitis (Erreger)
Borrelia burgdorferi (s. S. 32)
Campylobacter (s. S. 34)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 45)
FSME (Frühsommer-Meningoenzephalitis) (s. S. 48)
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
seltenere Erreger:
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
Influenza-Viren (s. S. 64)
Masern-Virus (s. S. 67)
Röteln-Virus (s. S. 80)
Mumps-Virus (s. S. 68)
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
Coxiella burnettii (Q-Fieber) (s. S. 38)
Zika-Virus (s. S. 92)
Paresen (Erreger)
Borrelia burgdorferi (s. S. 32)
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
Herpes-simplex-Virus (s. S. 57)
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
Brucellen (s. S. 33)
HIV-1 (s. S. 61)
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101
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Polio-Virus (s. S. 75)
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 82)
Masern-Virus (SSPE) (s. S. 67)
Coxiella burnettii (Q-Fieber) (s. S. 38)
Endokarditis (Erreger)
Bakterielle Erreger (s. S. 228)
z. B. Streptokokken, Staphylokokken, Enterokokken
Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 38)
Legionellen (s. S. 64)
Influenza-Viren (s. S. 64)
Myokarditis (Erreger)
Coxsackie-B-Viren (s. S. 44)
Influenza-Viren (s. S. 64)
Parvovirus B19 (s. S. 73)
seltenere Erreger:
Coxsackie A- und ECHO-Viren (s. S. 44)
Borrelia burgdorferi (s. S. 32)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
vor allem bei Immunsupprimierten
Chlamydia pneumoniae (s. S. 35)
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
Coxiella burnetii (Q-Fieber) (s. S. 38)
Tuberkulose (s. S. 237)
C. diphtheriae (s. S. 38)
Mumps-Virus (s. S. 68)
Adenovirus (s. S. 27)
Exantheme (Erreger)
feinfleckig makulopapulös:
Röteln-Virus (s. S. 80)
Masern-Virus (s. S. 67)
HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 59)
Streptokokken (s. S. 229)
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
Parvovirus B19 (s. S. 73)
Adenoviren (s. S. 27)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 45)
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
102
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 82)
HHV 7 (Humanes Herpes Virus Typ 7) (s. S. 60)
Rickettsien (s. S. 77)
vesikulär:
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
Herpes-simplex-Virus (s. S. 57)
Coxsackie A-Viren (s. S. 44)
hämorrhagisch:
Neben verschiedenen importierten hämorrhagischen Fieberviren der Alpha- und Flaviviren (z.B. Gelbfieber, Dengue), der Bunyavirus-Gruppe und den Filoviren (Marburg-, Ebola-Virus) kommen weitere in Europa verbreitete Erreger in Frage.
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
schwere Verläufe bei Immunsupprimierten und bei Patienten mit ausgeprägter Neurodermitis
Masern-Virus (s. S. 67)
Enterovirus Typ 71 (s. S. 44)
Rickettsien (s. S. 77)
Zika-Virus (s. S. 92)
Lokalisierte Exantheme (Erreger)
Neben den unten genannten Erregern verursachen weitere Viren lokalisierte Exantheme (z.
B. Warzen): Papilloma-Viren, Molluscum contagiosum-Virus.
Seltener: Melkerknoten-Virus (Rind), Orf-V. (Schaf, Katze), Vesikulo-Stomatitis-V. (Pferd,
Rind, Schwein)
Borrelia burgdorferi (s. S. 32)
Erythema migrans, Acrodermatitis chronica atrophicans
HSV (Herpes simplex-Virus) (s. S. 57)
Stomatitis aphthosa, Lippenherpes, Genitalherpes
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
Herpes Zoster (Gürtelrose)
Hepatitis B (s. S. 53)
Gianotti-Crosti-Syndrom (an den Extremitäten)
Coxsackie A-Viren (s. S. 44)
Hand-Fuß-Mund-Krankheit
Rickettsien (Zeckenstichfieber) (s. S. 77)
Nekrose an der Stichstelle (Tache noire, Eschar), makulopapulöses Exanthem, gelegentlich auch petechial
Lymphadenitis (Erreger)
Die wichtigsten (vor allem viralen) Erreger
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 45)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
generalisiert, teilweise auch lokal, z.B. cervikal
HIV (s. S. 61)
generalisiert
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103
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasma gondii (s. S. 85)
generalisiert, auch lokalisiert
Röteln-Virus (s. S. 80)
nuchal, postaurikulär (auch generalisiert)
Brucellen (s. S. 33)
generalisiert (selten)
Mykobakterien (auch atypische Mykobakterien) (s. S. 237)
generalisiert oder lokalisiert
Bartonella henselae (s. S. 29)
cervical, im Abflussbereich einer Extremität
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
cervical (eher selten)
Adenoviren (s. S. 27)
cervical, abdominal
Yersinien (s. S. 91)
abdominal (Lymphadenitis mesenterialis)
Chlamydia trachomatis (s. S. 36)
inguinal (Lymphogranuloma venereum)
HSV Typ 2 (Herpes simplex 2) (s. S. 57)
inguinal (im Rahmen einer akuten Infektion oder Reaktivierung)
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 82)
im Primärstadium lokalisiert (inguinal); im Spätstadium generalisiert
N. gonorrhoeae (s. S. 49)
inguinal (im Rahmen einer Genitalinfektion)
Mycoplasma hominis (s. S. 69)
inguinal (im Rahmen einer Genitalinfektion; selten)
Ureaplasma urealyticum (s. S. 88)
inguinal (im Rahmen einer Genitalinfektion; selten)
Lymphadenopathie-Syndrom (Erreger)
HIV-1, HIV-2 (s. S. 61)
HTLV-1, HTLV-2 (s. S. 58)
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 45)
seltener
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
seltener
HHV 6 (Humanes Herpes Virus Typ 6) (s. S. 59)
seltener (bei Kindern)
HHV 7 (Humanes Herpes Virus Typ 7) (s. S. 60)
Slow-Virus-Krankheiten (Slow Virus Diseases)
Masern-Virus (s. S. 67)
SSPE (Subakut-sklerosierende Panenzephalitis)
Röteln-Virus (s. S. 80)
PRP (Progressive Rötelnpanenzephalitis)
104
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
HIV-1, HIV-2 (s. S. 61)
AIDS (acquired immunodeficiency syndrome)
JC-(Polyoma)-Virus (s. S. 75)
PML (Progressive multifokale Leukenzephalopathie)
Spongiforme Enzephalopathien
Prionenerkrankungen
wie z.B. BSE, CJD, Kuru
Nierenversagen (Erreger)
(mit und ohne hämorrhag. Fieber), neben den genannten gibt es noch etliche importierte Infektionserkrankungen als Ursache.
Hantaviren (s. S. 50)
EHEC (s. S. 231)
Leptospiren (s. S. 65)
Malaria (s. S. 246)
Hämorrhagische Zystitis (Erreger)
Adenoviren (s. S. 27)
BK-(Polyoma)-Virus (s. S. 75)
seltenere Erreger:
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
vor allem bei Immunsupprimierten
Schistosomen (s. S. 249)
Tuberkulose (s. S. 237)
Penis-/ Vulva-Läsionen (Erreger)
Herpes-simplex-Virus Typ 1/2 (s. S. 57)
Papilloma-Viren (s. S. 71)
Treponema pallidum (s. S. 82)
Vulvovaginitis; Zervizitis (Erreger)
Bakterielle Erreger (s. S. 233)
Gardnerella vaginalis (bakterielle Vaginose), Anaerobier, Streptokokken Gruppe B, N.
gonorrhoeae, M. hominis, U. urealyticum
Chlamydia trachomatis (s. S. 36)
Candida albicans (s. S. 233)
Papilloma-Viren (s. S. 71)
Herpes-simplex-Virus Typ 2 (1) (s. S. 57)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
vor allem bei Immunsupprimierten
Trichomonas vaginalis (s. S. 251)
Müdigkeitssyndrom (CFS)
Für das chronische Müdigkeitssyndrom werden verschiedene Ursachen diskutiert. Vor Diagnosestellung sollten verschiedene Infektionserkrankungen ausgeschlossen werden, die im
Verlauf ein ähnliche Symptomatik auslösen können.
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105
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
Hepatitis B (s. S. 53)
EBV (Epstein-Barr-Virus) (s. S. 45)
HIV (s. S. 61)
Borrelia burgdorferi (s. S. 32)
Coxiella burnettii (s. S. 38)
Anaplasma phagocytophilum (s. S. 42)
Augenerkrankungen (Erreger)
Adenoviren (s. S. 27)
Keratokonjunktivitis epidemica (auch hämorrhagisch)
Bakterielle Erreger (s. S. 235)
Konjunktivitis (z. B. H. influenzae, Pneumokokken, Streptokokken, Staphylokokken, Gonokokken)
Chlamydia trachomatis (s. S. 36)
Konjunktivitis bei Neugeborenen, seltener auch danach
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
(Chorio-)Retinitis bei Immunsupprimierten
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
Verschiedene Viren dieser Gruppe verursachen eine hämorrhagische Konjunktivitis bzw.
auch Keratitis.
Herpes-simplex-Virus (s. S. 57)
Konjuktivitis bzw. Keratitis durch HSV Typ 1, seltener HSV Typ 2
Masern-Virus (s. S. 67)
Konjunktivitis bzw. Keratitis
Toxoplasma gondii (s. S. 85)
Retinochorioiditis bei Immunsupprimierten
Toxocara canis (s. S. 250)
Retinitis
Onchozerka volovulus (s. S. 247)
Flussblindheit, Hornhauttrübung
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
Keratitis
Zika-Virus (s. S. 92)
Arthritiden, Arthralgien (Erreger)
Die septische Arthritis ist hier nicht berücksichtigt. Es handelt sich vorwiegend um parainfektiöse und reaktive Arthritiden.
Borrelia burgdorferi (s. S. 32)
Hepatitis B (s. S. 32)
Parvovirus B19 (s. S. 73)
Röteln-Virus (s. S. 80)
Salmonellen (s. S. 81)
Yersinien (s. S. 91)
106
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Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
seltenere Erreger:
Brucellen (s. S. 33)
Campylobacter (s. S. 34)
Chlamydia trachomatis (s. S. 36)
Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
Shigellen (s. S. 82)
Mycoplasma hominis (s. S. 69)
Ureaplasma urealyticum (s. S. 88)
N. gonorrhoeae (s. S. 49)
Pleurodynie (Erreger)
Coxsackie B-Viren (s. S. 35)
Leptospiren (s. S. 65)
Myositis (Erreger)
Neben der Myositis treten bei vielen Infektionserkrankungen im Verlauf Myalgien auf.
Influenza-Viren (s. S. 64)
Coxsackie-Viren (s. S. 44)
Trichinen (s. S. 251)
Leptospiren (s. S. 65)
Parotitis (Erreger)
Mumps-Virus (s. S. 68)
Adenoviren (s. S. 27)
Epstein-Barr-Virus (EBV) (s. S. 45)
Mycoplasma pneumoniae (s. S. 70)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
Parainfluenza-Viren (s. S. 72)
Pankreatitis (Erreger)
Mumps-Virus (s. S. 68)
Coxsackie-Viren (s. S. 44)
Orchitis (Erreger)
Mumps-Virus (s. S. 68)
Brucellen (s. S. 33)
Entero-Viren (s. S. 44)
Infektionserreger bei neonatalen Symptomen
Kongenitale anatomische Defekte (Fehlbildungen)
Röteln-Virus (s. S. 80)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
seltenere Erreger:
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107
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Toxoplasma gondii (s. S. 85)
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
Treponema pallidum (s. S. 82)
Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCMV) (s. S. 66)
HSV (Herpes-simplex-Virus) (s. S. 57)
Zika-Virus (s. S. 92)
Mikrozephalie, intrakranielle Verkalkungen
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
Toxoplasma gondii (s. S. 85)
Zika-Virus (s. S. 92)
seltenere Erreger:
Röteln-Virus (s. S. 80)
LCM (Lympho-Chorio-Meningitis-Virus) (s. S. 66)
HSV (Herpes-simplex-Virus) (s. S. 57)
HIV (Humanes-Immundefizienz-Virus) (s. S. 61)
Dystrophie, petechiale Blutungen, Hepatosplenomegalie, Exanthem
Röteln-Virus (s. S. 80)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
seltenere Erreger:
Toxoplasma gondii (s. S. 85)
Treponema pallidum (s. S. 82)
Extremitätenfehlbildungen
Hautskarifikation, hypoplastische Gliedmaßen (mit Augen- und ZNS-Auffälligkeiten)
VZV (Varizella-Zoster-Virus) (s. S. 88)
Sepsis, neonatal, disseminiert (und ähnliche Symptome)
Coxsackie B-Viren Typ 3,4 (s. S. 44)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
Herpes-simplex-Virus Typ 2 (s. S. 57)
Streptokokken (s. S. 235)
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 82)
seltenere Erreger:
weitere Coxsackie-ECHO-Viren (s. S. 44)
Herpes-simplex-Virus Typ 1 (s. S. 57)
Plasmodium spp. (s. S. 246)
Listerien (s. S. 66)
Meningitis / Enzephalitis, neonatal (Erreger)
Streptokokken Gruppe B (s. S. 227)
108
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Listerien (s. S. 66)
E. coli (s. S. 227)
Herpes-simplex-Virus Typ 1/ 2 (s. S. 57)
Toxoplasma gondii (s. S. 85)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
Enteroviren (s. S. 44)
seltenere Erreger:
Röteln-Virus (s. S. 80)
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 82)
LCM (Lympho-Chorio-Meningitis-Virus) (s. S. 66)
Myokarditis, neonatal (Erreger)
Coxsackie B-Viren (s. S. 44)
Parvovirus B19 (s. S. 73)
seltenere Erreger:
Coxsackie A- und ECHO-Viren (s. S. 44)
Röteln-Virus (s. S. 80)
Konjunktivitis, neonatal (Erreger)
Chlamydia trachomatis (s. S. 36)
N. gonorrhoeae (s. S. 49)
Streptokokken (s. S. 235)
seltenere Erreger:
Adenoviren (s. S. 27)
Haemophilus influenzae (s. S. 235)
(bei Kleinkindern)
Pneumonie / Bronchiolitis, neonatal (Erreger)
Chlamydia trachomatis (s. S. 36)
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
Mycoplasma hominis (s. S. 69)
Parainfluenza-Virus Typ 3 (s. S. 72)
RSV (s. S. 76)
seltenere Erreger:
Ureaplasma urealyticum (s. S. 88)
Parainfluenza-Viren Typ 1, 2 (s. S. 72)
Adenoviren (s. S. 27)
T. pallidum (Syphilis) (s. S. 82)
Enteroviren (s. S. 44)
Enteritis, neonatal, früh postnatal (Erreger)
Neben den aufgeführten Erregern kommen eine Vielzahl von Viren und Bakterien in Frage.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
109
Serologie / Virologie / Mutterschaftsvorsorge
Rotavirus (s. S. 79)
Adenoviren (s. S. 27)
Noroviren (s. S. 71)
seltenere Erreger:
Clostridium difficile (s. S. 231)
Hepatitis / Hepatosplenomegalie, neonatal (Erreger)
Neben den genannten Viren, kann eine Begleithepatitis bei verschiedenen Infektionen auftreten.
CMV (Cytomegalie-Virus) (s. S. 39)
Herpes-simplex-Virus (s. S. 57)
Toxoplasma gondii (s. S. 85)
Bakterielle Erreger (s. S. 228)
z. B. Streptokokken Gruppe B, E. coli, Listerien u. a.
seltenere Erreger:
Treponema pallidum (s. S. 82)
Röteln-Virus (s. S. 80)
Entero-Virus (s. S. 44)
HIV (Humanes-Immundefizienz-Virus) (s. S. 61)
Plasmodien spp. (s. S. 246)
110
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Nukleinsäure-Diagnostik
Infektiologie (Molekularbiologie)
Bei den in der Nukleinsäurediagnostik eingesetzten Techniken nehmen die empfindlichen
Nukleinsäure-Amplifikationsverfahren, auch kurz NAT (Nukleinsäure amplifizierende Technik)
genannt, eine herausragende Stellung ein. Sowohl die hohe Empfindlichkeit als auch die Komplexität dieser Verfahren (z. B. PCR) sind eine große Herausforderung für das Testlabor.
Laborbedingte Probleme in Form falsch positiver oder falsch negativer Ergebnisse, verursacht
durch Kontamination oder Inhibition, gehören heute, dank des zunehmenden Einsatzes automatisierter, geschlossener und standardisierter Verfahren sowie geeigneter Kontrollen, weitgehend der Vergangenheit an. Jedoch ist auch die fortschrittlichste Technik auf das richtige
Untersuchungsmaterial sowie eine gute Präanalytik angewiesen. Wir bitten daher, nachstehend aufgeführte Punkte unbedingt zu beachten:
Untersuchungsproben immer mit Einmalhandschuhen entnehmen und in separate, mit
Geburtsdatum, Namen und Vornamen des Patienten beschriftete, sterile Probengefäße einbringen. Das Wiederöffnen dieser Gefäße und Umfüllen ist zu vermeiden. Die Proben sollten
bald möglichst verschickt werden.
Nicht jedes Untersuchungsmaterial ist geignet! Bitte beachten Sie die im Leistungsverzeichnis
unter den jeweiligen Untersuchungsparametern aufgelisteten Untersuchungsmaterialien.
Heparin-haltiges Untersuchungsmaterial (z. B. heparinisiertes Blut) ist für die PCR-Analyse
ungeeignet.
Heparin hemmt die PCR-Reaktion! Dies gilt auch für fetales EDTA-Blut, wenn zur Antikoagulation die Punktionsnadel vor Cordozentese mit Heparin benetzt wurde.
* Nach DIN EN ISO 15189 nicht akkreditiert.
Viren
Adenovirus DNA (PCR) (s. S. 28)
BK-(Polyoma)-Virus DNA (PCR) (s. S. 76)
Coronaviren (NL63) RNA (RT-PCR) (s. S. 38)
Cytomegalie-Virus DNA (PCR) (s. S. 41)
Enteroviren RNA (RT-PCR) (s. S. 45)
Epstein-Barr-Virus DNA (PCR) (s. S. 47)
Erythroviren (siehe Parvoviren) (s. S. 74)
FSME-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 48)
Hepatitis-A-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 53)
Hepatitis-B-Virus-DNA Viruslast (TMA) (s. S. 54)
Hepatitis-B-Virus-DNA Genotypisierung (PCR) (s. S. 54)
Hepatitis-B-Virus-DNA (PCR/Sequenzierung) (s. S. 54)
Surface-Gen / Polymerase-Gen
Hepatitis-C-Virus RNA qualitativ (TMA) (s. S. 55)
Hepatitis-C-Virus RNA Viruslast (TMA) (s. S. 55)
Hepatitis-C-Virus RNA Genotypisierung (RT-PCR) (s. S. 55)
Hepatitis-D-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 56)
Hepatitis-E-Virus-RNA (RT-PCR) (s. S. 56)
Hepatitis-G-Virus (GBV-C) RNA (RT-PCR) (s. S. 49)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
111
Nukleinsäure-Diagnostik
Herpes-simplex-Virus Typ 1 DNA (PCR) (s. S. 58)
Herpes-simplex-Virus Typ 2 DNA (PCR) (s. S. 58)
HIV-1 RNA (TMA) (s. S. 62)
HIV-1 Resistenz (RT-PCR / Sequenzierung) (s. S. 62)
HIV-2 RNA (RT-PCR) (s. S. 62)
HTLV-1/2 RNA (RT-PCR) (s. S. 59)
Humanes Bocavirus DNA (PCR) (s. S. 59)
Humane Papilloma-Viren RNA (TMA) (s. S. 72)
Humane Papilloma-Viren DNA (PCR) (s. S. 72)
Humane Papilloma-Viren DNA (Genotypisierung) PCR (s. S. 72)
Humanes Herpes-Virus Typ 6 (HHV 6) DNA (PCR) (s. S. 60)
Humanes Herpes-Virus Typ 7 (HHV 7) DNA (PCR) (s. S. 60)
Humanes Herpes-Virus Typ 8 (HHV 8) DNA (PCR) (s. S. 61)
Humanes Metapneumovirus RNA (RT-PCR) (s. S. 62)
Influenzavirus RNA (RT-PCR) (s. S. 64)
JC-(Polyoma)-Virus DNA (PCR) (s. S. 76)
Lympho-Chorio-Meningitis-Virus (LCM) RNA (RT-PCR)* (s. S. 67)
Masern-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 68)
Mumps-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 69)
Noroviren RNA (RT-PCR) (s. S. 71)
Parainfluenza-Virus Typ 3 RNA (RT-PCR) (s. S. 73)
Parechovirus RNA (RT-PCR) (s. S. 73)
Parvovirus B19 DNA (PCR) (s. S. 74)
Polyomaviren (siehe BK bzw. JC) (s. S. 75)
Respiratory Syncytial-Virus (RSV) RNA (RT-PCR) (s. S. 77)
Rhinoviren RNA (RT-PCR) (s. S. 77)
Rickettsien DNA (PCR) (s. S. 79)
Rotavirus RNA (RT-PCR) (s. S. 80)
Rubellavirus RNA (RT-PCR) (s. S. 81)
Varizella-Zoster-Virus DNA (PCR) (s. S. 90)
West-Nil-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 91)
Zika-Virus RNA (RT-PCR) (s. S. 93)
Bakterien
Anaplasmen-/Ehrlichien-DNA (PCR) (s. S. 43)
Atypische Mykobakterien DNA (PCR) (s. S. 238)
Bartonellen DNA (PCR) (s. S. 30)
Bordetellen DNA (PCR) (s. S. 30)
112
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Nukleinsäure-Diagnostik
Borrelien DNA (PCR) (s. S. 33)
Chlamydia trachomatis RNA (TMA) (s. S. 37)
Clostridium difficile (Toxin A + B) DNA (PCR) (s. S. 232)
(Real-Time, qualitativ)
Chlamydia pneumoniae DNA (PCR) (s. S. 36)
Chlamydophila psittaci DNA (PCR) (s. S. 36)
E.-granulosus DNA (PCR) (s. S. 242)
E.-multilocularis DNA (PCR) (s. S. 243)
Helicobacter pylori DNA (PCR) (s. S. 237)
Legionellen DNA (PCR) (s. S. 65)
Leptospiren DNA (PCR) (s. S. 65)
Listerien DNA (PCR) (s. S. 66)
MRSA DNA (PCR) (s. S. 252)
Mycoplasma genitalium DNA (PCR)* (s. S. 70)
Mycoplasma hominis DNA (PCR) (s. S. 69)
Mycoplasma pneumoniae DNA (PCR) (s. S. 238)
Mykobakterien DNA (PCR) (s. S. 238)
Mykobakterien DNA (SDA) (s. S. 238)
Neisserien RNA (TMA) (s. S. 49)
Parodontopathogene Keime DNA (PCR) (s. S. 233)
Rickettsien-PCR (s. S. 79)
Bei positivem PCR-Befund wird mittels Sequenzierung die Art bestimmt.
Treponemen DNA (PCR) (s. S. 84)
Tropheryma whipplei DNA (PCR) (s. S. 88)
Ureaplasmen DNA (PCR) (s. S. 88)
Protozoen, Pilze
Aspergillus fumigatus DNA (PCR) (s. S. 29)
Aspergillus flavus DNA (PCR) (s. S. 29)
Babesien DNA (PCR) (s. S. 242)
Cryptococcus neoformans DNA (PCR) (s. S. 227)
Dermatophytendiagnostik DNA (PCR) (s. S. 240)
Leishmanien DNA (PCR) (s. S. 246)
Pneumocystis jirovecii (vormals: P. carinii) DNA (PCR)* (s. S. 75)
Toxoplasma DNA (PCR) (s. S. 87)
Molekulargenetik
Nach dem Gendiagnostikgesetz ist für alle molekulargenetischen Untersuchungen eine Einwilligungserklärung notwendig. Es soll auf die für die Durchführung genetischer Beratungen in
Zusammenhang mit genetischen Untersuchungen ab 01.02.2012 erforderliche spezielle Quali-
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113
Nukleinsäure-Diagnostik
fikation zur fachgebundenen genetischen Beratung gemäß GEKO-Richtlinie hingewiesen werden.
alpha-1-Antitrypsin-Defizienz
(F)
OMIM: 107400
Gen: AAT1 (M/S/Z-Allel)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Abklärung eines alpha-1-Antitrypsin-Mangels
Chromosomenanalyse / Zytogenetik (s. S. 97)
Dihydropyrimidin-Dehydrogenase
OMIM: 612779
Gen: DPD (Exon 14 Skipping-Mutation)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit 5-Fluorouracil, Capecitabin
Familiäres Mittelmeerfieber (FMF)
OMIM: 249100
Gen: Pyrin [MEFV] (alle 10 Exons)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: rekurrierendes Fieber, Bauchschmerzen, V. a. Familiäres Mittelmeerfieber, familiäre Belastung
Hämochromatose
OMIM: 235200
Gen: HFE (H63D, C282Y)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: deutlich erhöhte Ferritin-Werte, V. a. Hämochromatose, familiäre Belastung
Hereditäre Fructose-Intoleranz
OMIM: 229600, 612724
Gen: ALDOB [Aldolase] (A149P, A174D, N334K, delta4E4)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: V. a. Fructose-Intoleranz bei z. B. Hypoglykämie nach Fructose-Einnahme, Gedeihstörungen
HLA-Typisierung
Indikation bei individueller Bewertung bestimmter Krankheiten und Medikamenteneinwirkungen.
HLA-B*57:01
Das Auftreten einer Hypersensitivitätsreaktion unter Abacavirtherapie ist mit dem genetischen Marker HLA-B*57:01 assoziiert. Nach den Richtlinien der European AIDS Clinical
Society (Version 3, Juni 2008) wird die Bestimmung des HLA-B*57:01 bei allen HIV-infizierten Patienten empfohlen.
Material: EDTA-Blut 1 ml
Methode: Allel-spezifische PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Ausschluss einer Hypersensitivitätsreaktion vor Abacavirtherapie
Referenzbereich: negativ
114
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Nukleinsäure-Diagnostik
HLA-B*27
Bestimmung mittels PCR.
Material: EDTA-Blut 5 ml
Methode: PCR
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: z.A. Morbus Bechterew
(F)
HLA Klasse I-Antigene (A, B, C)
Material: EDTA-Blut 5 ml
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: molekulare HLA-Typisierung, HLA-Assoziation mit bestimmten Krankheiten
(F)
HLA Klasse II-Antigene (DR, DQ)
Material: EDTA-Blut 5 ml
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: molekulare HLA-Typisierung, HLA-Assoziation mit bestimmten Krankheiten
(F)
Rheumatoides Epitop (HLA-DR-Subtypisierung)
"shared epitope"
OMIM: 142857
Gen: HLA-DRB1
Material: EDTA-Blut 5 ml
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Nachweis des rheumatoiden Epitopes bei Patienten mit rheumatischer Arthritis
als prognostischer Marker für den Verlauf und die Schwere der Erkrankung
Interleukin 28B
OMIM: 607402
Gen: IL28B (rs12979860)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Therapie mit pegIFN-alpha + Ribavirin
Hepatitis-C-Diagnostik (s. S. 55)
Lactose-Intoleranz
OMIM: 223100
Gen: LCT [Lactase] (C-13910T, G22018A)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: V. a. Lactoseintoleranz bei z. B. abdominellen Schmerzen, Übelkeit und Meteorismus oder bei auffälligem Lactose-Toleranztest.
Morbus Meulengracht (Gilbert-Syndrom) (s. S. 116)
Rhesus weak D
OMIM: 111680
Gen: RHD
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: molekulargenetische Rhesus-Typisierung bei unklaren serologischen Befunden
Thiopurin-Methyltransferase
OMIM: 187680
Gen: TPMT (*2, *3A, *3B, *3C)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
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115
Nukleinsäure-Diagnostik
Indikation: Therapie mit Azathioprin, 6-Mercaptopurin, 6-Thioguanin
Thrombophiliediagnostik
Faktor V-Leiden
OMIM: 227400
Gen: Koagulationsfaktor V (A506G)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: Thrombophilie-Abklärung, familiäre Belastung, nachgewiesene APC-Resistenz
Methylentetrahydrofolat-Reduktase
OMIM: 236250 und 607093
Gen: MTHFR (C677T)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Abklärung einer Hyperhomocysteinämie, familiäre Belastung, Methotrexat-Therapie
Plasminogen-Aktivator-Inhibitor 1 (PAI-1)
OMIM: 173360
Gen: PAI-1 (4G/5G)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: bei Auftreten vermehrter thrombo-embolischer Ereignisse und V. a. erhöhte
PAI-1-Aktivität
Prothrombin (Faktor II)
OMIM: 176930
Gen: Koagulationsfaktor II [Prothrombin] (G20210A)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 2 x pro Woche
Indikation: Thrombophilie-Abklärung, familiäre Belastung
UDP-Glucuronosyltransferase 1A1
OMIM: 191740
Gen: UGT1A1 (*28, TA7/TA7)
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Morbus Meulengracht, Gilbert-Syndrom, unkonjugierte Hyperbilirubinämie, Irinotecan-Therapie
Zöliakie
OMIM: 212750
Gen: HLA-DQA1*, HLA-DQB1*
Material: EDTA-Blut 2 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V. a. oder Ausschluss von Zöliakie, familiäre Belastung, bei fraglicher Serologie,
Assoziation mit HLA-DQ2/DQ8
116
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Zelluläre Immunologie
Granulozytenfunktionen
Ausschluss/Abklärung von Granulozytenfunktionsdefekten (z. B. chronische Granulomatose).
Bestimmung der oxidativen Burstreaktion sowie der Phagozytoseaktivität von neutrophilen
Granulozyten und Monozyten. Bei erhöhter Infektanfälligkeit, rezidivierenden Infekten (Bakterien, Pilze), rekurrierenden eitrigen Infektionen, Abszessbildungen im Bereich der Haut oder
an inneren Organen, Wundheilungsstörungen.
Vorherige telefonische Anmeldung erbeten!
Abnahme: Mo bis Mi, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten.
Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden.
Material: Heparinblut 5 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss eines Granulozytenfunktionsdefektes.
Referenzbereich: siehe Befund
Granulozytenadhäsion
Bestimmung der Adhäsionsmoleküle CD11b, CD15s und CD18 bei Verdacht auf eine Adhäsionsstörung der Granulozyten. Klinisch liegt bei LAD-Patienten meist eine erhöhte Infektneigung und eine Leukozytose vor.
Telefonische Voranmeldung wird erbeten.
Material: EDTA-Blut 2,7 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: siehe Befund
Lymphozytendifferenzierung
Die Lymphozytendifferenzierung ist indiziert bei einer HIV-Infektion, rezidivierenden oder chronischen Infektionen, erhöhter Infektanfälligkeit und Verdacht auf primäre oder sekundäre
Immundefekte. Als Zusatzinformation bei Infektionskrankheiten (Erkrankungsverlauf z.B. bei
CMV-, EBV-Infektionen, Toxoplasmose), Transplantationen (Abstoßungsreaktion bei z.B. Nierentransplantation oder KMT), Tumorerkrankungen, Immunsuppression (Monitoring bei Chemotherapie, Zytostase, T-Zell-Depletion), Immunstimulationstherapie (Monitoring bei z.B. IL-2Therapie), allergischen und Autoimmunerkrankungen (z.B. rheumatischer Formenkreis, chron.
aktive Hepatitis, Morbus Crohn, Multiple Sklerose), chronischem Müdigkeitssyndrom (CFS).
Großer zellulärer Immunstatus
Leukozytendifferenzierung, B-, T-, NK-, CD4-T-Helfer-, CD8-T-, aktivierte Zellen
Weitere Oberflächenmarker/Subpopulationen auf Anforderung
Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten
Material: EDTA-Blut 2,7 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung eines zellulären Immundefekts
Referenzbereich: siehe Befund
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Kleiner zellulärer Immunstatus
Leukozytendifferenzierung, CD4-T-, CD8-T-Lymphozyten.
Weitere Oberflächenmarker auf Anforderung.
Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten
Material: EDTA-Blut 2,7 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verlaufskontrolle bei HIV-Infektion
Referenzbereich: siehe Befund
CD38 auf CD8-T-Lymphozyten
Das CD38 ist ein Aktivierungsmarker der Lymphozyten, seine Expression auf der Oberfläche der Zellen bestimmt den Grad der HIV-spezifischen Aktivierung der CD8-T-Lymphozyten. Je stärker diese Expression des CD38 auf den CD8-T-Lymphozyten ausgeprägt ist,
desto höher ist das AIDS-Risiko des Patienten.
Material: EDTA-Blut 2,7 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Prognosemarker für AIDS-Erkrankung bei HIV-Patienten.
Referenzbereich: s. Befund
Leukämie-/Lymphomtypisierung
Immunophänotypisierung bei V.a. eine chronisch lymphatische Leukämie (CLL). Durchflusszytometrische Bestimmung der CD5/CD19/CD23-positiven B-Lymphozyten sowie der
Leichtkettenrestriktion (Klonalität).
Vorherige telefonische Anmeldung erbeten!
Abnahme: Mo - Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten
Material: EDTA-Blut 2,7 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
PNH-Diagnostik
Nachweis der GPI-verankerten Oberflächenmoleküle CD55/CD59 auf Erythrozyten sowie
CD14/CD24/FLAER auf Leukozyten.
Material: EDTA-Blut 2,7 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Ausschluss einer paroxysmalen nächtlichen Hämoglobinurie (PNH).
Referenzbereich: s. Befund
Fetale Erythrozyten
Nachweis und Quantifizierung fetaler Erythrozyten im mütterlichen Blut. Methode ist vergleichbar dem Test nach Kleihauer und Bethke, jedoch deutlich spezifischer, da auch mütterliche
Zellen mit fetalem Hämoglobin (F-Zellen) unterschieden werden können. HbF-Zellen sind bei
ca. 30% der Schwangeren im Verlauf der Schwangerschaft und bei ca. 50% nach Entbindung
nachweisbar.
EDTA-Vollblut bei Raumtemperatur verschicken, weder kühlen noch einfrieren!
Material: EDTA-Blut 2,7 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Nachweis oder Ausschluss einer fetomaternalen Transfusion. Kontrolle der Anti-DProphylaxe bei Rh(D)-negativen Müttern mit Rh(D)-positiven Neugeborenen.
Referenzbereich: <0,5 Promille
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Immunologie / Autoimmunerkrankungen
BAL-Diagnostik
Zelldifferenzierung in der bronchoalveolären Lavage (BAL)
Differenzierung der Zellen einer BAL anhand von gefärbten Zytospinpräparaten. Bei erhöhtem Anteil an Lymphozyten kann eine weitere durchflusszytometrische Differenzierung je
nach Fragestellung erfolgen. Die Zellanalytik der BAL ist abhängig von der Qualität des
erhaltenen Materials. Bei signifikanter Blutbeimengung, niedrigen Zellzahlen oder überwiegend bronchialer Herkunft der BAL ist eine Beurteilung nur eingeschränkt möglich.
Abnahme: Mo-Do, Versand gekühlt mit Fahrdienst oder Eilboten.
Material: Bronchoalveoläre Lavage 20 ml
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung von Lungenerkrankungen.
Referenzbereich: s. Befund
Lymphozytendifferenzierung in der BAL
Durchflusszytometrische Differenzierung der T-Lymphozyten bei erhöhtem Lymphozytenanteil in der BAL. Weitere Oberflächenmarker (z.B. B- und NK-Zellen) sind auf Anforderung
möglich. Die Validität der durchflusszytometrischen Messungen in der BAL ist durch Daten
der Literatur belegt.
Abnahme: Mo-Do, Versand gekühlt mit Fahrdienst oder Eilboten.
Material: Bronchoalveoläre Lavage 20 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung von Lungenerkrankungen (z. B. Sarkoidose, exogen allergische
Alveolitis).
Referenzbereich: s. Befund
Siderophagen
Mikroskopischer Nachweis von Hämosiderin-haltigen Makrophagen (Siderophagen, Herzfehlerzellen) in der BAL.
Material: Bronchoalveoläre Lavage 10 ml
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung von alveolären Hämorrhagiesyndromen.
Referenzbereich: <5 %
Lipidbeladene Makrophagen
Sudan-III-Färbung von Zytospinpräparaten der BAL zum Nachweis von extra- und intrazellulärem Fett (lipidbeladene Makrophagen).
Material: Bronchoalveoläre Lavage 10 ml
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Bei V.a. auf chronische Aspiration z.B. bei Kindern oder bei Patienten mit Lipidpneumonie, die durch Inhalation ölhaltiger Substanzen entstehen kann. Quantifizierung der
lipidbeladenen Makrophagen mit dem LLAM (lipid-laden alveolar macrophages) Score.
Referenzbereich: s. Befund
Histiozyten (CD1a)
Material: Bronchoalveoläre Lavage 10 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Nachweis von Histiozyten (CD1a-positive Zellen) in der BAL bei V. a. pulmonale
Langerhanszell-Histiozytose.
Referenzbereich: <3 %
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119
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
TB-Elispot (T-SPOT.TB) (s. S. 238)
Indirekter Nachweis von M. tuberculosis durch Bestimmung der erregerspezifischen T-Lymphozyten mit der ELISPOT-Methode.
Toxoplasma gondii-spezifische T-Lymphozyten (s. S. 87)
Immunglobuline / Komplementsystem
Immunglobuline
IgG im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich
Referenzbereich: 6,8-15,3 g/l
IgG-Subklassen 1-4
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund g/l
IgA im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich
Referenzbereich: 0,75-3,74 g/l
(F)
IgA, sekretorisch (scIgA)
Zur Vermeidung von Eintrocknung muss die Gefäßgröße so gewählt werden, dass das
Gefäß nach dem Befüllen möglichst wenig Luft enthält.
Material: Speichel 2 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: 20-200 mg/l
IgM im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich
Referenzbereich: 0,4-1,88 g/l
IgE (Immunglobulin E) (s. S. 191)
Immunfixationselektrophorese (IFE) (s. S. 188)
Bence-Jones Proteine (freie Leichtketten) (s. S. 209)
oligoklonale Banden im Liquor (s. S. 189)
Komplementsystem
(F)
CH-100-Aktivität (gesamthämolytische Komplementaktivität )
Ersetzt die CH-50-Bestimmung
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: Serum, gefroren 500 µl
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 40-200 U/ml
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Immunologie / Autoimmunerkrankungen
(F)
C1-Esterase-Inhibitor (Aktivität)
Basisdiagnostik
Material: Citrat-Plasma, gefroren 500 µl
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. hereditäres angioneurotisches Ödem (hereditäres Quincke-Ödem)
Referenzbereich: 60-130 %
(F)
C1-Esterase-Inhibitor (Konzentration)
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verminderte C1-Esterase-Inhibitor-Aktivität
Referenzbereich: 0,17-0,44 g/l
(F)
C2-Komplement
Material: Serum 1 ml
Methode: Nephelometrie
Referenzbereich: 80-120 %
C3-Komplement
Material: Serum 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: 0,75-1,35 g/l
C4-Komplement
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: 0,1-0,4 g/l
Entzündungsaktivität
Blutbild, groß (s. S. 174)
Blutsenkung
Citratblut im Verhältnis 1:5
Material: Citratblut 2,7 ml
Methode: BSG nach Westergren
Ansatz: täglich
Referenzbereich: 1. Stunde M: 15 F: 20 mm
CRP (C-reaktives Protein)
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: <5,0 mg/l
CRP, hochsensitiv
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich
Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos
Referenzbereich: <2,1 mg/l
Ferritin (s. S. 177)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
121
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Interleukin-2-Rezeptor, sIL2-R
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren, das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen und tieffrieren.
Material: Serum, gefroren 0,5 ml
Methode: ILMA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Nachweis einer Aktivierung des zellulären Immunsystems
Referenzbereich: 158-623 kU/l
Interleukin 6
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren, das Serum direkt danach vom Blutkuchen trennen und tieffrieren.
Material: Serum, gefroren 0,5 ml
Methode: ILMA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Nachweis einer Aktivierung des zellulären Immunsystems
Referenzbereich: <5,9 ng/l
Neopterin
(F)
Nur aus gefrorenem Serum sinnvoll, das sofort nach Durchgerinnung abzentrifugiert und von
den Zellen getrennt wurde. Serum bitte auch lichtgeschützt einsenden.
Material: Serum 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abstoßungsreaktion
Referenzbereich: <10 nmol/l
Procalcitonin (PCT)
Material: Serum 500 µl
Methode: TRACE (Kryptor)
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Diagnose und Monitoring einer Sepsis, Abschätzung der Notwendigkeit einer Antibiotika-Therapie, Differentialdiagnose zentrales Fieber versus Sepsis bei Schädel-Hirn-Trauma.
Referenzbereich: <0,1 µg/l
SAA (Serum-Amyloid A)
(F)
Abstoßungsreaktion
Material: Serum 200 µl
Methode: LIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Autoantikörper
Acetylcholinrezeptor (AChR)-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: RRA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Myasthenia gravis
Referenzbereich: <0,4 nmol/l
Aminoacyl-tRNA-Synthetase-AAK (s. S. 129)
Sammelbegriff für alle Autoantikörper, welche gegen Aminoacyl-tRNA-Synthetasen gerichtet
sind. Jo-1-AAK sind die am häufigsten nachweisbaren Aminoacyl-tRNA-Synthetase-AAK.
122
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
AMPA-Rezeptor-AAK
(F)
Glutamatrezeptoren vom AMPA-Typ (AMPA1, AMPA2)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, Liquor 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Limbische Enzephalitis, paraneoplastisches Syndrom (z. B. kleinzelliges Lungenkarzinom [SCLC], Schilddrüsenkarzinom, Mammakarzinom)
Referenzbereich: <1:10 Titer
Amphiphysin-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastisches Syndrom (SCLC, Mammakarzinom), Stiff-Person-Syndrom,
Limbische Enzephalitis, zerebelläres Syndrom, parabeblastische Neuropathien
Referenzbereich: <1:10 Titer
Aquaporin 4-AAK
(F)
NMO (Neuromyelitis optica)-AAK
Material: Serum 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Opticus neuritis, Spinale Myelitis, V.a. Opticospinale Enzephalomyelitis (NMO, Neuromyelitis optica), Devic-Syndrom
Referenzbereich: <1:10 Titer
ANA-IFT (Screen)
Antinukleäre AAK, Antinukleäre Faktoren. Zahlreiche verschiedene Muster können vorliegen
(homogen, gesprenkelt, Zentromere und andere). Einem positiven ANA-Befund sollten weitere
Tests zur Bestimmung der ANA-Spezifität folgen. Nicht alle ANA können differenziert werden,
da zahlreiche Zielantigene bisher nicht bekannt sind.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. systemische Autoimmunerkrankungen oder Autoimmunerkrankungen der
Leber, arzneimittel-induzierter Lupus, juvenile chronische Arthritis
Referenzbereich: <1:80 Titer
Antimitochondriale AAK (AMA)
Bei positivem IFT-Befund wird eine Differenzierung der AK-Spezifität gegen Mitochondrien Typ
2 mittels EIA durchgeführt
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. primäre biliäre Zirrhose (PBC)
Referenzbereich: <1:80 Titer
Asialoglycoprotein-Rezeptor-AAK
(F)
ASGPR gehört zu der Lebermembran-Antikörper-Gruppe
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: RIP
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: AK der Lebermembran-AK-Gruppe treten oft bei Autoimmunhepatitiden auf (bis
40%), sind jedoch nicht spezifisch, da diese auch bei anderen Lebererkrankungen vorkommen.
Referenzbereich: <10,0 AK-Ratio
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
123
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Basalmembran-AAK
Glomeruläre Basalmembran-AAK (s. S. 127)
Epidermale Basalmembran-AAK (s. S. 126)
Becherzell-AAK
(F)
AAK gegen schleimbildende Zellen des Dickdarmes
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Colitis ulcerosa
Referenzbereich: <1:10 Titer
beta-2-Glykoprotein-1-IgG-AAK
Phospholipid-AAK, Apolipoprotein H-AAK, ß2-GPI-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung
Referenzbereich: <7 U/ml
beta-2-Glykoprotein-1-IgM-AAK
Phospholipid-AAK, Apolipoprotein H-AAK, ß2-GPI-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung
Referenzbereich: <7 U/ml
BP180 (NC16A)-AAK
(F)
Bullöses Pemphigoid 180kDa-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Blasenbildende Hauterkrankung, bullöses Pemphigoid
Referenzbereich: <1:10 Titer
BP230-AAK
(F)
Bullöses Pemphigoid 230kDa-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Blasenbildende Hauterkrankung, Bullöses Pemphigoid
Referenzbereich: negativ
c-ANCA
Antineutrophile zytoplasmatische Autoantikörper (zytoplasmatisches Muster)
Material: Serum 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Wegenersche Granulomatose, mikroskopische Polyangiitis, Churg-Strauss-Syndrom
Referenzbereich: <1:10 Titer
Calcium-Sensing-Rezeptor-AAK (s. S. 131)
Nebenschilddrüsen-AAK
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Cardiolipin-IgG-AAK
Phospholipid-AAK, aCL
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung
Referenzbereich: <10 GPL-U/ml
Cardiolipin-IgM-AAK
Phospholipid-AAK, aCL
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Antiphospholipidsyndrom, habituelle Aborte, Thromboseneigung
Referenzbereich: <25 MPL-U/ml
CASPR2-AAK
(F)
(Contactin-Associated Protein 2), VGKC (Spannungsgesteuerte Kaliumkänale)
Material: Serum 500 µl, Liquor 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Limbische Enzephalitis, Neuromyotonie, Morvan-Syndrom
Referenzbereich: <1:10 Titer
Crithidia luciliae-AK (ds-DNS-AAK)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V.a. SLE, Abklärung bei positivem ds-DNS-EIA
Referenzbereich: <1:10 Titer
CRMP5/CV2-AAK
(F)
Collapsin response mediator protein 5-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (kleinzelliges Bronchialkarzinom, Thymom und andere Tumoren), paraneoblastische Neuropathie, Chorea-Symptomatik, Optikusneuritis, zerebelläre Symptomatik
Referenzbereich: negativ
Cyclisches citrulliniertes Peptid (CCP)-AAK
Material: Serum 300 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich
Indikation: V. a. rheumatoide Arthritis, vor allem auch in der Frühphase der Erkrankung (höhere
Sensitivität und Spezifität im Vergleich zu RF)
Referenzbereich: <7 kU/l
ds-DNS-AAK
Doppelstrang-DNA-AAK, nDNA-AAK, nDNS-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf eine systemische Autoimmunerkrankung.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
125
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Zusatztest bei positivem ANA-(Hep2)-AAK IFT-Befund (homogene Kernfluoreszenz, positive
Färbung der Chromosomen im Mitosestadium)
Referenzbereich: <10 IU/ml
Desmoglein 1-AAK
(F)
Dsg1-AAK, Desmosomen-AAK, (Stachelzell-AAK)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Bullöse Hauterkrankungen, Pemphigus foliaceus
Referenzbereich: <1:10 Titer
Desmoglein 3-AAK
(F)
Dsg3-AAK, Desmosomen-AAK, (Stachelzell-AAK)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Bullöse Hauterkrankungen, Pemphigus vulgaris
Referenzbereich: <1:10 Titer
ENA-Screen
AAK gegen extrahierbare nukleäre Antigene (ENA).
Screeningtest auf U1-RNP, RNP70, Sm, SSA, SSB, Scl70, Jo1-AK, CenB.
Einem positiven ENA-Profil-Befund sollte die Bestimmung der AK-Spezifität gegen einzelne
ENA-Antigene folgen.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf eine systemische Autoimmunerkrankung.
Zusatztest bei positivem ANA-(Hep2)-AAK IFT-Befund (gesprenkelte oder homogene Kernfluoreszenz)
Referenzbereich: <0,7 Ratio
Endomysium-IgA-AAK
(Der IFT weist AAK gegen Gewebs-Transglutaminase nach.)
Material: Serum 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Glutensensitive Enteropathie (Zöliakie, Sprue), Dermatitis herpetiformis Duhring
Referenzbereich: <1:10 Titer
Epidermale Basalmembran-AAK
BP230-AAK (s. S. 124)
BP180 (NC16A)-AAK (s. S. 124)
Fibrillarin-AAK (s. S. 137)
U3-n RNP-AAK
Freie Granulozyten-Antikörper
(F)
Material: Serum 2 ml
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: V. a. Autoimmunneutropenie
GABA-b-Rezeptor-AAK
(F)
(Gamma-Aminobuttersäureb-Rezeptoren)
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Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Material: Serum 500 µl, Liquor 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Limbische Enzephalitis, paraneoblastisch
Referenzbereich: <1:10 Titer
GAD-AAK (Diabetes mellitus) (s. S. 127)
Glutamat-Decarboxylase-AAK
GAD-AAK (Neuronale AAK) (s. S. 127)
Glutamat-Decarboxylase-AAK
Gangliosid-AAK (IgG, IgM)
(GM1-, GM2-, GM3-, GD1a-, GD1b-, GT1b-, GQ1b-AAK)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Guillain-Barré-Syndrom, multifokale Neuropathie, sensorische Neuropathie,
Miller-Fisher Syndrom
Referenzbereich: negativ
Gewebstransglutaminase-AAK (s. S. 136)
tTG
Glatte-Muskulatur-AAK (Actin)
ASMA (Anti-smooth-muscle-antibodies)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Autoimmunhepatitis
Referenzbereich: <1:80 Titer
Gliadin-AK, IgA (desaminiert)
Material: Serum 200 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Zöliakie
Referenzbereich: <7 kU/l
Gliadin-AK, IgG (desaminiert)
Material: Serum 200 µl
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Zöliakie
Referenzbereich: <7 kU/l
Glomeruläre-Basalmembran-(GBM)-AAK
GBM-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Rapid progressive Glomerulonephritis, Goodpasture-Syndrom
Referenzbereich: <7 U/ml
Glutamat-Decarboxylase-AAK (Diabetes-Diagn.)
(F)
GAD65-AAK, GAD-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
127
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Methode: RIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diabetes mellitus Typ 1
Referenzbereich: <0,7 kU/l
Glutamat-Decarboxylase-AAK (Neuronale AAK)
(F)
GAD65-AAK, GAD-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, Liquor 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Limbische Enzephalitis, Cerebelläre Ataxie, Stiff-Person-Syndrom, PERM (Progessive Enzephalitis mit Rigor und Myoklonien)
Referenzbereich: <1:10 Titer
Glycin-Rezeptor-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation:
Limbische Enzephalitis, PERM (Progressive Enzephalomyelitis mit Rigor und Myoklonien),
Stiff-Person-Syndrom
Referenzbereich: <1:10 Titer
H+/K+-ATPase-AAK (s. S. 132)
Parietalzellen-AAK
Herzmuskel-AAK
(F)
myokardiale-AAK, antimyolemnale AAK (AMLA) und antisarkolemnale AAK (ASLA)
Material: Serum 300 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Myokardschädigungen, Streptokokkeninfektion, selten bei Myokarditis
Referenzbereich: <1:10 Titer
Histidyl-tRNA-Synthetase-AAK (s. S. 129)
Jo-1-AAK
Histone-AAK
(F)
Anti-Histon-AAK (AHA)
Material: Serum 100 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf systemische Autoimmunerkrankung, arzneimittelinduzierter Lupus.
Referenzbereich: <20 RE/ml
Hu-AAK
(F)
Neuronennukleäre AAK (Hu), ANNA-1
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndr. (kleinzelliges Bronchialkarzinom, Prostatakarzinom,
Neuroblastom); Limbische Enzephalitis, Enzephalomyelitis, Neuropathien, zerebell. Syndrom
Referenzbereich: <1:10 Titer
IA2 (s. S. 137)
Tyrosinphosphatase-AAK
128
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Inselzellen (ICA)-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diabetes mellitus Typ 1
Referenzbereich: <1:10 Titer
Insulin-Autoantikörper (IAA)
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: RIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Diabetes mellitus Typ 1
Referenzbereich: <10 % Bindung
Insulin-Rezeptor-Autoantikörper
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: RIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Insulinpflichtiger Diabetes mellitus
Referenzbereich: <10 Ratio
Intrinsic-Faktor-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. chronisch atrophische Gastritis, perniziöse Anämie
Referenzbereich: <20 RE/ml
Jo-1-IgG-AAK
Histidyl-tRNA-Synthetase-AAK, HRS-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Myositis, Abklärung idiopathischer fibrosierender Alveolitiden.
Referenzbereich: <7 U/ml
Kälteagglutinine (s. S. 179)
Ku-Antigen-Autoantikörper
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: RIP
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Polymyositis/Sklerodermie-Overlap-Syndrom.
Referenzbereich: <10 AK-Ratio
Leber-Nieren-Mikrosomen (Typ1)-AAK
LKM 1-AAK, Cytochrom P450-AAK
Bei positivem IFT weitere Abklärung mittels ELISA.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Autoimmunhepatitis
Referenzbereich: <1:80 Titer
Leber-Pankreas-AAK (s. S. 135)
SLA/LP-AAK
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
129
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Lebercytosol-Antigen-1-AAK
(F)
LC1-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Autoimmunhepatitis
Referenzbereich: negativ
LGI1-AAK
(F)
(Leucin-rich Glioma inactivated 1), VGKC (Spannungsgesteuerte Kaliumkänale)
Material: Serum 500 µl, Liquor 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Limbische Enzephalitis, Faziobrachiale dystone Anfälle
Referenzbereich: <1:10 Titer
Lupus-Antikoagulans (s. S. 172)
Ma2/Ta-AAK
(F)
(Ma1 wird miterfasst)
Material: Vollblut 1 ml, Serum 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (Hodentumoren, kleinzelliges Bronchialkarzinom),
Hirnstammenzephalitis, Limbische Enzephalitis, OMS, paraneoblastische Neuropathien.
Referenzbereich: <1:10 Titer
MAK siehe TPO-AAK (s. S. 136)
MGT-30 (Titin)-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Myasthenia gravis
Referenzbereich: negativ
Mi-2-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Polymyositis, Zusatztest bei positivem ANA-Befund (granuläres Muster)
Referenzbereich: <10 Ratio
Mitochondrien-AAK (s. S. 123)
AMA
Mitochondrien-AAK Typ M2
siehe Antimitochondriale AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Primäre biliäre Zirrhose, Zusatztest bei positivem AMA-IFT-Befund
Referenzbereich: <1,0 Index
MuSK (s. S. 133)
Rezeptor-Tyrosinkinase-AAK
130
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Myelin assoziiertes Glykoprotein-AAK
(F)
Material: Serum 300 µl, Liquor 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Demyelinisierende Neuropathien mit monoklonalem IgM
Referenzbereich: <1000 (Liquor <100) U/ml
Myeloperoxidase (MPO)-AAK
MPO-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. eine Vaskulitis.
Referenzbereich: <3,5 U/ml
Nebennierenrinden-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: RIP
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. NNR-Insuffizienz
Referenzbereich: <10,00 AK-Ratio
Nebenschilddrüsen-AAK
(F)
(Calcium-Sensing-Rezeptor-Autoantikörper)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: RIP
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Erworbener Hypoparathyreodismus, autoimmunes polyglanduläres Syndrom
Referenzbereich: <10 Ratio
Neuronukleäre Autoantikörper Typ 3-AAK
(F)
ANNA-3
Material: Serum 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoblastische Neuropathien, Limbische Enzephalitis, Kleinhirndegeneration.
Referenzbereich: <1:10 Titer
NMDA-Rezeptor-AAK
(F)
(Glutamat-Rezeptoren vom NMDA-Typ)
Material: Serum 500 µl, Liquor 300 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Limbische Enzephalitis, Paraneoblastisches Syndrom
Referenzbereich: <1:10 Titer
Nukleosomen-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Lupus erythematodes
Referenzbereich: <20 RE/ml
p-ANCA
Antineutrophile zytoplasmatische Autoantikörper (perinukleäres Muster)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
131
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Methode: IFT
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Vaskulitis, Colitis ulcerosa
Referenzbereich: <1:10 Titer
Pankreas-Acinusepithel-AAK
(F)
AAK gegen exokrines Pankreas
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: M. Crohn
Referenzbereich: <1:10 Titer
Parietalzellen-AAK
Belegzellen-AAK, H+/K+-ATPase-AAK
(Parallel wird immer auch ein IFT durchgeführt)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. chronisch atrophische Gastritis, perniziöse Anämie
Referenzbereich: <20 E/ml / <1:10 Titer
Pemphigoid-gestationis-AAK
(F)
Herpes-gestationes-Faktor
AAK gegen epidermale und plazentare Basalmembran (Pemphigoid-Antigen-AAK, BP
180/230-AAK) werden mit und ohne Komplement an Gefrierschnitten von Haut und Plazenta
untersucht.
Material: Serum 300 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Pemphigus gestationis
Referenzbereich: negativ
Pemphigus (Desmoglein)-AAK
Desmoglein 3-AAK (s. S. 126)
Desmoglein 1-AAK (s. S. 126)
Phospholipid-Autoantikörper
Cardiolipin-IgG-AK (s. S. 125)
Cardiolipin-IgM-AK (s. S. 125)
beta-2-Glycoprotein 1-IgG-AAK (s. S. 124)
beta-2-Glycoprotein 1-IgM-AAK (s. S. 124)
Lupus-Antikoagulans (s. S. 172)
Phospholipase A2-Rezeptor-AAK
(F)
PLA2-Rezeptor-AAK
Material: Serum 500 µl
Methode: IFT
Indikation: Idiopathische membranöse Glomerulonephritis
Referenzbereich: <1:10 Titer
PM-Scl-AAK
(F)
PM-Scl p75- und PM-Scl p100-AAK, PM-1-AAK, Gruppe der nukleolären AAK
132
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Polymyositis/Sklerodermie.
Referenzbereich: <10 Ratio
Proteinase-3 (PR3)-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 6 Stunden)
Indikation: Wegener-Granulomatose.
Referenzbereich: <2 U/ml
PCA-2-AAK
(F)
(Purkinjezellantigen Typ2-AAK)
Material: Serum 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Praneoblastische Syndrome, zerebelläre Ataxie, Hirnstammenzephalitis, limbische
Enzephalitis
Referenzbereich: <1:10 Titer
Recoverin-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (Retinopathie)
Referenzbereich: negativ
Rezeptor-Tyrosinkinase (MuSK)-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Myasthenia gravis
Referenzbereich: <0,4 U/ml
Ri-AAK
(F)
Neuronenkerne-AAK(Ri), ANNA2
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (SCLC, Mammakarzinom), Opsoklonus-Myoklonus-Syndrom, Hirnstammenzephalitis, zerebelläres Syndrom
Referenzbereich: <1:10 Titer
Ribosomen-AAK
(F)
ribosomales P-Protein
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. systemischer Lupus erythematodes
Referenzbereich: <1,0 U/ml
RNP70-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
133
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Mischkollagenose (MCTD), SLE
Referenzbereich: <7 U/ml
Saccharomyces cerevisiae-IgA-AK
(F)
werden auch ASCA genannt
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. M. Crohn
Referenzbereich: <1:100 Titer
Saccharomyces cerevisiae-IgG-AK
(F)
werden auch ASCA genannt
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. M. Crohn
Referenzbereich: <1:1000 Titer
Saccharomyces cerevisiae-IgM-AK
(F)
werden auch ASCA genannt
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. M. Crohn
Referenzbereich: <1:100 Titer
Schilddrüsen-Autoantikörper
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 136)
TAK (Thyreoglobulin-AAK) (s. S. 136)
TPO-AK (früher MAK) (s. S. 136)
Scl-70-AAK
Topoisomerase-I-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. systemische Sklerodermie, Raynaud-Symptomatik
Referenzbereich: <7 U/ml
Skelettmuskulatur-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Myasthenia gravis (Goldflamkrankheit)
Referenzbereich: <1:10 Titer
Sm-AAK
Einzelbestimmung bei positivem ENA-Screen
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
134
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Indikation: SLE
Referenzbereich: <7 U/ml
soluble-liver-Ag (SLA-)-AAK
Leber-Pankreas-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Autoimmunhepatitis
Referenzbereich: <20 U/ml
SOX1-AAK
(F)
(Sry-like High Mobility Group Box-Protein-1), AGNA (anti-glia nukleäre AAK)
Material: Vollblut 1 ml, Serum 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneblastisches Syndrom, zerebelläre Ataxie, Neuropathie, Myastenie
Referenzbereich: negativ
sp-100-AAK
(F)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. primäre biliäre Zirrhose. Zusatztest bei positivem ANA-(Hep2)-AAK IFTBefund (Fluoreszenzmuster: nukleäre Dots ).
Referenzbereich: negativ
Spermatozoen-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: Infertilität
Referenzbereich: <55,00 RE/ml
ss-DNA-AAK
(F)
Einzelstrang-DNA-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: <20 U/ml
SSA-(Ro)-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: SLE, primäres Sjögren-Syndrom, V. a. auf neonatalen LE
Referenzbereich: <7 U/ml
SSB-(La)-AAK
Einzelbestimmung bei positivem ENA-Screen
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: SLE, primäres Sjögren-Syndrom
Referenzbereich: <7 U/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
135
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Stachelzell-Desmosomen-AAK (s. S. 132)
Pemphigus-AAK
TAK (Thyreoglobulin-AAK)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Thyroiditis
Referenzbereich: <280 kU/l
Thrombozyten-AAK
(F)
Direkter Nachweis von freien und Thrombozyten-gebundenen Antikörpern.
Frisches EDTA-Blut nicht älter als 24 Stunden. Blutmenge abhängig von der Thrombozytenzahl: bei Werten <20/nl ist die benötigte Menge 20ml, ansonsten 10 ml EDTA-Blut.
Material: EDTA-Blut s.o.
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung von Thrombozytopenien
Thyreoperoxidase-AK (TPO-AK, früher MAK)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Autoimmunthyreoiditis
Referenzbereich: <60 kU/l
Titin-AAK (s. S. 130)
MGT-30-AAK
Topoisomerase 1-AAK (s. S. 134)
Scl-70-AAK
Tr-AAK
(F)
Purkinjezellantigen (Tr)-AAK, Tr-PCA, DNER (Delta/Notch-like epidermal growth factor-related
receptor)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (M. Hodgkin)
Referenzbereich: <1:10 Titer
TRAK (TSH-Rezeptor-AK)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Hyperthyreose, V. a. M. Basedow
Referenzbereich: <1,0 IU/l
tTG (Gewebstransglutaminase)-IgG-AK
(Zielantigen der Endomysium-Ak)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Zoeliakie
Referenzbereich: <5 kU/l
136
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
tTG (Gewebstransglutaminase)-IgA-AK
(Zielantigen der Endomysium-Ak)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V.a. Zöliakie
Referenzbereich: <5 kU/l
Tyrosinphosphatase-AAK (IA2)
(F)
Inselzellantigen-2-AAK, IA2A, ICA512
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: RIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Diabetes mellitus Typ 1
Referenzbereich: <0,75 kU/l
U1-RNP-AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: SLE
Referenzbereich: <5 U/ml
U3-n RNP/Fibrillarin-AAK
(F)
Gruppe der nukleolären AAK
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Sklerodermie, Raynaud-Symptomatik
Referenzbereich: <7 U/ml
VGCC (P/Q Typ)-AAK
(F)
(Voltage-gated calcium channel), spannungsabhängiger P/Q-Calcium-Kanal
Material: Serum 500 µl, Liquor 300 µl
Methode: RIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische neurologische Syndrome, LEMS (Lambert-Eaton-Myasthenie-Syndrom)
Referenzbereich: <25 pmol/l
VGKC (spannungsabhängige Kaliumkanäle)
CASPR2 (s. S. 125)
(Contactin-associated Protein 2)
LGI1-AAK (s. S. 130)
(Leucin-rich Glioma inactivated 1)
Yo-AAK
(F)
Purkinjezellantigen-AAK (PCA-1)
Material: Serum 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Paraneoplastische Syndrome (Ovar-, Mamma- und Uterus-Karzinom), Kleinhirndegeneration, zerebelläres Syndrom, Limbische Enzephalitis
Referenzbereich: <1:10 Titer
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
137
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Zentromere (CENB)-AAK
gehört zu der Gruppe ANA
AAK gegen Zentromere werden normalerweise im ANA-IFT mit einem typischen Muster
erfasst.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, EDTA-Blut 1 ml
Methode: FEIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. systemische Sklerodermie, CREST-Syndrom, Abklärung unklarer IFT-Befund
oder positiver ENA-Screen.
Referenzbereich: <7 U/ml
Zic4-AAK
(F)
Zinkfinger-4-Protein-AAK
Material: Serum 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: negativ
Rheumaserologie
A-DNAse B (Anti-Streptodornase)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich
Indikation: Nachweis einer abgelaufenen Streptokokken A-Infektion (keine schützenden AK)
Referenzbereich: <200 kU/l
anti-Streptokokken-Hyaluronidase
(F)
Material: Serum 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche
Indikation: Nachweis einer abgelaufenen Streptokokken A-Infektion (keine schützenden AK)
Referenzbereich: <1:300 Titer
Antistaphylolysin
Material: Serum 500 µl
Methode: Agglutination
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2 IE/ml
Antistreptolysin O (ASL)
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich
Indikation: Nachweis einer akuten oder abgelaufenen Streptokokken A-Infektion
Referenzbereich: <200 IU/ml
CRP (s. S. 121)
RAJI-Zelltest (Zirkulierende Immunkomplexe)
(F)
Material: Serum 400 µl
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Rheumafaktor
RF werden oft nachgewiesen (70-80%), sind aber nicht spezifisch. Ein positiver Befund ist
somit ohne entsprechende klinische Symptome für eine Rheumatoide Arthritis nicht aussagekräftig.
138
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: <20 IU/ml
Rheumatoides Epitop (HLA-DR-Subtypisierung) (s. S. 115)
Autoimmunerkrankungen (Profile)
Anti-Synthetase-Syndrom
Anti-Jo-1-Syndrom, Sonderform der Polymyositis. (Weitere Antikörper gegen andere Aminoacyl-tRNA-Synthetasen z.B. PL-7 oder PL-12.)
ANA-IFT (s. S. 123)
AAK mit zytoplasmatischer Fluoreszenz
Jo-1-AAK (s. S. 129)
pathognomonisch, hochspezifisch
Antiphospholipidsyndrom (APS)
Gruppe von Antikörpern, die gegen negativ geladene Phospholipide indirekt gerichtet sind.
Assoziierte Erkrankungen: Venöse oder arterielle Thrombosen, rezidivierende Aborte, Autoimmunthrombozytopenie.
Zwei Formen: primäres APS ohne weitere Anzeichen für ein autoimmunes Geschehen; sekundäres APS assoziiert mit Autoimmunerkrankungen (vor allem SLE).
Cardiolipin-IgG-AK (s. S. 125)
Cardiolipin-IgM-AK (s. S. 125)
beta-2-Glycoprotein 1-IgG-AAK (s. S. 124)
beta-2-Glycoprotein 1-IgM-AAK (s. S. 124)
Lupus-Antikoagulans (s. S. 172)
(Es wird gefrorenes Citratplasma benötigt)
Autoimmunhepatitis
Autoantikörperbestimmung nach Ausschluss viraler Hepatitiden
Die Typenklassifizierung gründet sich auf den Nachweis von Autoantikörpern und hat weder
einen pathophysiologischen Hintergrund noch eine Auswirkung auf die Therapie.
Typ 1: Die ANA-positive AIH mit oder ohne AAK gegen glatte Muskulatur (Anti-Actin).
Typ 2: LKM-positive AIH, ca. 5 % aller AIHs
(Typ 3:) SLA(LP)-positive AIH wird heute zur AIH Typ1 gezählt, ca. 10% aller AIHs
ANA-IFT (s. S. 123)
AAK mit homogener und gesprenkelter Fluoreszenz
Prävalenz 50-70%, nicht spezifisch
Gesamt-IgG (s. S. 120)
IgG-Erhöhung 60-90%
Glatte Muskulatur-AAK (s. S. 127)
Prävalenz 50-60%,
spezifisch bei hohem Titer
LKM-AAK (s. S. 129)
pathognomonisch für die AIH Typ 2, hochspezifisch
SLA(LP)-AAK (s. S. 135)
AIHS mit SLA/LP-AAK werden heute zur AIH Typ 1 gezählt, hochspezifisch
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139
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
p-ANCA (s. S. 131)
MPO-negativ
Prävalenz bis zu 50%,
nicht spezifisch
Lebercytosol-Antigen-1-AAK (s. S. 130)
Asialoglycoprotein-Rezeptor (ASGPR) (s. S. 123)
Die ASGPR-AAK sind nicht spezifisch für eine Autoimmunhepatitis, da sie auch bei viralen
und toxischen Lebererkrankungen vorkommen können. Allerdings scheint es, dass ASGPR-AAK-Titer mit der Aktivität des Entzündungsprozesses korreliert. Der Test wird zur Therapieüberwachung empfohlen.
Autoimmunhämolytische Anämie
Direkter Antiglobulintest (direkter Coombstest) (s. S. 179)
Kälteagglutinine (s. S. 179)
Bullöses Pemphigoid
Bullöses Pemphigoid: BP180-AAK
Vernarbendes Schleimhautpemphigoid: BP230-AAK
Pemphigoid gestationis: Komplement-aktivierende BP180-, BP230-AAK
BP180 (NC16A)-AAK (s. S. 124)
BP230-AAK (s. S. 124)
Komplement-aktivierende BP180/230-AAK (s. S. 132)
Chronisch-entzündliche demyelinisierte Polyneuropathie (CIDP)
Gangliosid-AAK (s. S. 127)
Prävalenz 35%
Chronische atrophische Gastritis / perniziöse Anämie
Parietalzellen-AAK (s. S. 132)
Prävalenz 80-90%, wenig spezifisch
Intrinsic-Faktor-AAK (s. S. 129)
Prävalenz 40-75%, hochspezifisch
Vitamin B12 (s. S. 193)
Colitis ulcerosa
p-ANCA (s. S. 131)
MPO-negativ
Prävalenz 60-80%, nicht spezifisch
Becherzell-AAK (s. S. 124)
Prävalenz 20-30%, spezifisch
Calprotectin im Stuhl (s. S. 214)
Lactoferrin im Stuhl (s. S. 214)
Dermatitis herpetiformis (M. Duhring) siehe Zöliakie (s. S. 149)
Assoziation mit der glutensensitiven Enteropathie
Diabetes mellitus Typ 1
AAK-Bestimmung zur Risikoabschätzung bei klinisch Gesunden mit familiärer Belastung. AAK
werden in der Vorphase und bei Erkrankungsbeginn vor allem bei Kindern mit hoher Prävalenz
140
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
von 80-100% nachgewiesen. Mit zunehmendem Alter nimmt die Häufigkeit des Nachweises
ab. Risiko bei Nachweis von einem AAK 0-15%, bei drei oder vier AAK 60-100%.
Zur sicheren Differenzierung zwischen einem aktuell vorliegenden Typ I- oder Typ II-Diabetes
ist eine Bestimmung des C-Peptid-Spiegels zu empfehlen.
Insulin-Autoantikörper (IAA) (s. S. 137)
IAA sind am häufigsten nachweisbaren AAK bei Kindern unter 5 Jahren.
Tyrosinphosphatase-AAK (IA2) (s. S. 137)
IA2-AAK weisen eine gute Korrelation zur Diabetesmanifestation in den nächsten Jahren
auf.
Inselzell-AAK (ICA) (s. S. 129)
ICA und GADA persistieren etwas länger als IAAK und IA2-AAK und können deshalb auch
noch Jahre nach dem Manifestationsbeginn nachgewiesen werden.
Glutamatdecarboxylase-AAK (GADA) (s. S. 127)
C-Peptid (s. S. 158)
Enzephalitis und Hirnstammenzephalitis
In 10% mit Tumor (kleinzelliges Bronchialkarzinom, Thymom, Mammakarzinom, Keimzelltumor (Hoden, Ovar), Merkelzellkarzinome der Haut, Lymphom) vergesellschaftet.
Hu-AAK (s. S. 128)
Amphiphysin-AAK (s. S. 123)
CRMP5/CV2-AAK (s. S. 125)
Ma2/Ta-AAK (s. S. 130)
Goodpasture Syndrom (siehe rapid-progressive Glomerulonephritis
(RPGN) (s. S. 146)
Sonderform der RPGN mit Lungenblutung
Guillain-Barré-Syndrom
Gangliosid-AAK (s. S. 127)
Myelin assoziiertes Glykoprotein-AAK (MAG) (s. S. 131)
Prävalenz 20%
Pemphigoid gestationis (Herpes gestationis)
Pemphigoid-gestationis-AAK (s. S. 132)
Idiopatische membranöse Glomerulonephritis
Phospholipase A2-Rezeptor-AAK (s. S. 132)
Prävalenz 70%, hochspezifisch
Juvenile idiopathische Arthritis (JIA)
Juvenile rheumatoide Arthritis (JRA), Juvenile chronische Arthritis (JCA)
ANA-IFT (s. S. 123)
AAK mit homogener und gesprenkelter Kernfluoreszenz
Prävalenz bei Patienten mit Uveitis 70%, bei Patienten ohne Uveitis 30%, nicht spezifisch.
Cyclisches citrulliniertes Peptid (CCP)-AAK (s. S. 125)
Im Gegensatz zur RA bei Erwachsenen werden CCP-AAK bei Kindern nur selten gefunden
(2-5% aller JIA-Fälle). Nur die Gruppe von Kindern mit RF-positiver polyartikulärer juveniler
Arthritis weist eine AK-Prävalenz von ca. 75% auf.
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141
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
IgM-Rheumafaktoren (s. S. 138)
Prävalenz von IgM-RF 20-60%, sie sind aber wenig spezifisch. Ein positiver Befund ist
somit ohne entsprechende klinische Symptome für eine JCA nicht aussagekräftig.
Lambert-Eaton-Myasthenie-Syndrom
VGCC, Calciumkanal (P/Q-Typ)-AAK (s. S. 137)
Prävalenz bis zu 100%, hochspezifisch
SOX1-AAK (s. S. 135)
Limbische Enzephalitis
In 20% mit Tumor (kleinzelliges Bronchialkarzinom, Thymom, Mammakarzinom, Keimzelltumor (Hoden, Ovar), Lymphom, Prostatakarzinom) vergesellschaftet.
Intrazelluläre Antigene:
(Bestimmung im Serum sinnvoll)
Hu-AAK (s. S. 128)
Ma2/Ta-AAK (s. S. 130)
Amphiphysin-AAK (s. S. 123)
Ri-AAK (s. S. 133)
CRMP5/CV2-AAK (s. S. 125)
Oberflächenantigene:
(Bestimmung in Serum und Liquor sinnvoll)
NMDA-Rezeptor-AAK (s. S. 131)
VGKC (Spannungsabhängige Kaliumkanäle)-AAK (s. S. 137)
GABA-b-Rezeptor-AAK (s. S. 126)
AMPA-Rezeptor-AAK (s. S. 123)
Miller-Fischer-Syndrom
Gangliosid-AAK (s. S. 127)
GQ1b-AAK, Prävalenz 80%
Mischkollagenose (MCTD, Sharp-Syndrom)
Kombination von Symptomen des SLE, der Sklerodermie und der Dermatomyositis/Polymyositis.
ANA-IFT (s. S. 123)
gesprenkeltes Muster
ENA-Screentest ( RNP-AAK) (s. S. 126)
U1-RNP-AAK (RNP-AAK)
Prävalenz 100%, hochspezifisch
Morbus Addison
Nebennierenrinden-AAK (s. S. 131)
Prävalenz 60-100%, hoch spezifisch
Morbus Basedow
Thyreoglobulin-AK (TAK) (s. S. 136)
Prävalenz 10-30%
Thyreoperoxidase-AK (TPO) (s. S. 136)
Prävalenz ca. 40%
142
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Immunologie / Autoimmunerkrankungen
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 136)
Prävalenz bis 98%, hochspezifisch
Morbus Crohn
p-ANCA (s. S. 131)
MPO-negativ
Prävalenz 5-25%, nicht spezifisch
Pankreas-Acinusepithel-AAK (exokrine Pankreas-AAK) (s. S. 132)
Prävalenz 40%, spezifisch
Saccharomyces cerevisiae-AK (ASCA) (s. S. 134)
Prävalenz 60%, spezifisch
Calprotectin im Stuhl (s. S. 214)
Lactoferrin im Stuhl (s. S. 214)
Multifokale Motorneuropathie
Gangliosid-AAK (s. S. 127)
GM1, Prävalenz 40%
Myasthenia gravis
Acetylcholinrezeptor-AAK (s. S. 122)
Prävalenz: Bei der okulären Myasthenie und der juvenilen Form 60%,
bei der generalisierten Myasthenie 75-95%; hochspezifisch.
Skelettmuskulatur-AAK (s. S. 134)
Prävalenz 30%, mittlere Spezifität. Hohe Titer weisen auf ein Thymom und eine schwere
Verlaufsform hin.
MGT-30 (Titin)-AAK (s. S. 130)
Bei mehr als 95% der Myastheniepatienten mit Thymom finden sich zusätzlich Titin-AK.
Rezeptor-Tyrosinkinase (MuSK)-AAK (s. S. 133)
AAK kommen bei 70% der AchR-AAK negativen Patienten mit Myasthenia gravis vor, hochspezifisch
Opsoklonus / Myoklonus
Bei Erwachsenen in 20% mit einem Tumor (kleinzelliges Bronchialkarzinom, Mammakarzinom, Keimzelltumor des Hodens und Ovars), bei Kindern in 50% mit Neuroblastomen vergesellschaftet.
Ri (ANNA2)-AAK (s. S. 133)
Hu-AAK (s. S. 128)
Ma2/Ta-AAK (s. S. 130)
Panarteriitis nodosa (renale Verlaufsform)
p-ANCA (s. S. 131)
MPO-positiv
Prävalenz 5-15%, spezifisch
Paraneoplastische Syndrome
Neurologische PNS
Subakute sensorische Neuropathie (Hu-, Amphiphysin-, CRMP5-,Ma2/Ta-AAK)
Subakute Kleinhirndegeneration (Hu-,Yo-,CRMP5, Ri, Amphiphysin-,Tr- Ma2/Ta, VGCCAAK)
Senomotorische Neuro-/Radikulopathie (Hu-, Amphiphysin-, CRMP5-, Ma2/Ta-, SOX1-AAK)
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143
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Enzephalomyelitis und Hirnstammenzephalitis (Hu-, CRMP5-, Amphiphysin-, Ma2/Ta-AAK)
Limbische Enzephalitis (Hu-, Ma2/Ta-, CRMP5-, Ri- Amphiphysin-, NMDA-R-, VGKC- GABAb-, AMPA-R-AAK)
Autonome Neuropathie (Hu-, Peripherin-AAK)
karzinomassoziierte Retinopathie (Recoverin-AAK)
Lambert-Eaton-Myasthenie-Syndrom (SOX1,- VGCC-AAK)
Opsoklonus/Myoklonus (Ri-, Hu-,Ma2/Ta-, NMDA-R-AAK)
Stiff-Person-Syndrom (Amphiphysin-, GAD-AAK)
Gut charakterisierte, paraneoplastische Autoantikörper:
intrazelluläre Antigene, Assoziation mit einem Tumor in >95%
Hu-AAK (s. S. 128)
40% der paraneoplastischen Autoantikörper
Yo (PCA-1)-AAK (s. S. 137)
15% der paraneoplastischen Autoantikörper
CRMP5/CV2-AAK (s. S. 125)
5% der paraneoplastischen Autoantikörper
Ma2/Ta-AAK (s. S. 130)
5% der paraneoplastischen Autoantikörper
Ri (ANNA2)-AAK (s. S. 133)
5% der paraneoplastischen Autoantikörper
Amphiphysin-AAK (s. S. 123)
5% der paraneoplastischen Autoantikörper
Recoverin-AAK (s. S. 133)
Teilcharakterisierte, paraneoplastische Autoantikörper:
prädiktiver Wert bezüglich Paraneoplasie unklar
Tr (PCA-Tr)-AAK (s. S. 136)
Zic4-AAK (s. S. 138)
SOX1 (AGNA)-AAK (s. S. 135)
PCA-2-AAK (s. S. 133)
ANNA-3-AAK (s. S. 131)
Fakultativ paraneoplastische Autoantikörper:
(Antikörper, die mit oder ohne Tumor auftreten), neuronale Oberflächenantigene
NMDA-Rezeptor-AAK (s. S. 131)
LGI1-AAK (VGKC) (s. S. 130)
CASPR2-AAK (VGKC) (s. S. 125)
GABA-b-Rezeptor-AAK (s. S. 126)
AMPA-Rezeptor-AAK (s. S. 123)
VGCC, Calciumkanal (P/Q-Typ)-AAK
Pemphigus vulgaris / Pemphigus foliaceus
Desmoglein 3-AAK (s. S. 126)
(Pemphigus vulgaris)
Desmoglein 1-AAK (s. S. 126)
(Pemphigus foliaceus)
144
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Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Polymyositis / Dermatomyositis
ANA-IFT (s. S. 123)
AAK mit: zytoplasmatischer Fluoreszenz (Jo-1), granulärer und nukleolärer Kernfluoreszenz (Mi-2, Ku und Pm-Scl)
Jo-1-AAK (s. S. 129)
Prävalenz 30-50%, hochspezifisch
Diagnostischer Marker für die Polymyositis
Mi-2-AAK (s. S. 130)
Prävalenz 10-15%, spezifisch
Ku-AAK (s. S. 129)
Prävalenz 5-25%, spezifisch
PM-Scl-AAK (s. S. 132)
Prävalenz 10-20%, spezifisch
Post-partum-Thyreoiditis
Schwangere Patientinnen mit positivem AAK-Nachweis im dritten Trimester haben ein erhöhtes Risiko für eine Post-partum-Thyreoiditis.
TAK und/oder TPO
Prävalenz 80%
TAK (Thyreoglobulin-AAK) (s. S. 136)
Thyreoperoxidase-AK (TPO) (s. S. 136)
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 164)
selten
Primär sklerosierende Cholangitis
80% Assoziation mit der Colitis ulcerosa
p-ANCA (s. S. 131)
MPO negativ
Prävalenz 80%, nicht spezifisch
ANA-IFT (s. S. 123)
Prävalenz 50%, nicht spezifisch
Primäre biliäre Zirrhose
Gesamt-IgM (s. S. 120)
IgM-Erhöhung 70%
Antimitochondriale AAK (s. S. 123)
Prävalenz 90%, in hohen Titern hochspezifisch
AMA vom Typ 2 gelten als charakteristische Marker der PBC.
Sp100-AAK (s. S. 135)
ANA-IFT: Fluoreszenzmuster nukleäre Dots.
Prävalenz 16%, spezifisch
Andere AK
ANA (gesprenkeltes, homogenes Muster, Zentromere und Kernmembran) 50%, ANCA
<10%, SMA (niedriger Titer) 10%
Progressive systemische Sklerose (Sklerodermie, PSS)
diffuse Form, limitierte Form oder CREST-Syndrom, Polymyositis/Sklerodermie-Overlap-Syndrom, systemische Sklerose bei MCTD.
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145
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
ANA-IFT (s. S. 123)
AAK mit antinukleolärer Fluoreszenz: Fibrillarin, PM-Scl, Scl-70, RNA-Polymerase und
andere.
Zentromer-AAK: Prävalenz bei der diffusen Form 3-10%, bei der limitierten Form 60-80%,
nicht spezifisch
ENA-Screentest (Scl-70- und RNP-AAK) (s. S. 126)
Scl-70-AAK
Prävalenz 50-70%, hochspezifisch
vor allem bei diffuser Form, schwere systemische Verläufe
U1-RNP-AAK (RNP-AAK)
Prävalenz 10-30%, hochspezifisch
sprechen für eine Mischkollagenose
PM-Scl-AAK (s. S. 132)
Prävalenz 20%, spezifisch
spricht für Overlap mit Polymyositis
Ku-AAK (s. S. 129)
Prävalenz 5-25%, spezifisch
spricht für Overlap mit Polymyositis
Rapid-progressive Glomerulonephritis (RPGN)
Typ I: Goodpasture Syndrom
Glomeruläre Basalmembran-AAK (Prävalenz 95%, hochspezifisch)
Typ II: Immunkomplex
Verschiedene Krankheitsbilder: SLE, Purpura Schönlein-Henoch, Varianten der postinfektiösen und idiopathischen GN
Typ III: Pauci immun
M. Wegener, mikroskopische Polyangiitis, Churg-Strauss-Syndrom, Pauci-immune RPGN
Glomeruläre Basalmembran-AAK (s. S. 127)
Prävalenz 95%, hochspezifisch
c-ANCA (s. S. 124)
PR3-positiv, hochspezifisch
p-ANCA (s. S. 131)
MPO-positiv, hochspezifisch
Rheumatoide Arthritis
CCP-AK (s. S. 125)
Prävalenz 70-80%, hochspezifisch für die RA
Sensomotorische Neuro-/Radikulopathie
In 10% mit Tumor (kleinzelliges Bronchialkarzinom, Thymom, Lymphom) vergesellschaftet.
Hu-AAK (s. S. 128)
Amphiphysin-AAK (s. S. 123)
CRMP5/CV2-AAk (s. S. 125)
Ma2/Ta-AAK (s. S. 130)
SOX1-AAK (s. S. 135)
Sjögren-Syndrom
Es wird zwischen isolierten (primären) Formen und sekundären bei anderen Autoimmunerkrankungen (RA, SLE, Sklerodermie, PBC, Autoimmunhepatitis u.a.) unterschieden.
146
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Immunologie / Autoimmunerkrankungen
ANA-IFT (s. S. 123)
AAK mit gesprenkelter Kernfluoreszenz (SSA- und SSB-AAK)
Prävalenz 95-100%, nicht spezifisch.
ENA-Screentest (SSA -und SSB-AAK) (s. S. 126)
SSA-AAK: Prävalenz 96%, spezifisch
SSB-AAK: Prävalenz 70%, spezifisch
Stiff-Person-Syndrom
In 5% mit Tumor (Mammakarzinom, kleinzelliges Bronchialkarzinom) vergesellschaftet.
Intrazelluläre Antigene:
(Bestimmung aus Serum sinnvoll.)
Amphiphysin-AAK (s. S. 123)
Intrazelluläre, nicht paraneoplastische Ag.:
(Bestimmung in Serum und Liquor sinnvoll)
GAD-AAK (s. S. 128)
Subakute Kleinhirndegeneration
In 50% mit Tumor (kleinzelliges Bronchialkarzinom, Mammakarzinom, Keimzelltumor (Ovar,
Hoden), Thymom, Lymphom) vergesellschaftet
Intrazelluläre Antigene:
(Bestimmung im Serum sinnvoll)
Hu-AAK (s. S. 128)
Yo-AAK (s. S. 137)
CRMP5/CV2-AAK (s. S. 125)
Ma2/Ta-AAK (s. S. 130)
Ri-AAK (s. S. 133)
Tr-AAK (s. S. 136)
Amphiphysin-AAK (s. S. 123)
PCA2-AAK (s. S. 133)
ANNA3-AAK (s. S. 131)
Zic4-AAK (s. S. 138)
Oberflächenantigene:
(Bestimmung in Serum und Liquor sinnvoll)
VGCC (P/Q Typ)-AAK (s. S. 137)
Subakute sensorische Neuropathie
In 20% mit Tumor (kleinzelliges Bronchialkarzinom, Thymom, Lymphom, Mammakarzinom
oder Keimzelltumor) vergesellschaftet.
Hu-AAK (s. S. 128)
Amphiphysin-AAK (s. S. 123)
CRMP5/CV2-AAK (s. S. 125)
Ma2/Ta-AAK (s. S. 130)
Systemischer Lupus erythematodes (SLE)
Sonderformen des SLE: neonatale Lupus-Syndrome (neonataler Lupus, kongenitaler Herzblock), subakuter kutaner LE, sekundäres Sjögren-Syndrom, sekundäres Anti-Phospholipid-Syndrom, Arzneimittel-induzierter Lupus.
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147
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
ANA-IFT (s. S. 123)
AAK mit: homogener Kernfluoreszenz (DNS, Histone, Nukleosomen), gesprenkelter Fluoreszenz (ENA-Antigene SSA,SSB, Sm und RNP), pleomorpher nukleärer Fluoreszenz
(PCNA bzw. Cyclin-AAK), zytoplasmatischer Fluoreszenz (Ribosomen)
ds-DNA-AAK (s. S. 125)
Markerantikörper für den SLE (ACR-Kriterien)
Prävalenz: SLE aktiv mit Nierenbeteiligung 90%, SLE aktiv ohne Nierenbeteiligung 50-70%,
SLE inaktiv <40%.
ENA-Screentest (SSA-, SSB-, RNP-und Sm-AAK ) (s. S. 126)
Sm-AAK: Prävalenz 10-30%, diagnostischer Marker des SLE mit einer hohen Spezifität
99%.
SSA-AAK: Prävalenz 40%, spezifisch
SSB-AAK: Prävalenz 10%, spezifisch
U1-RNP-AAK: Hinweis auf MCTD; Prävalenz 40%, hochspezifisch
Histon-AAK (s. S. 128)
Prävalenz 30-50%, spezifisch
Nukleosomen-AAK (s. S. 131)
Nukleosomen-AAK sind spezifische frühdiagnostische Marker für den SLE (65% bei inaktivem, 100% bei aktivem LE). Sie werden auch bei dsDNS-AAK-negativen Patienten gefunden.
Ribosomen-AAK (s. S. 133)
Prävalenz 10-20%, hochspezifisch
Phospholipid-AAK (siehe APS) (s. S. 139)
Cardiolipin-AAK, beta-2-Glykoprotein 1-AAK und Lupus-Antikoagulans
Prävalenz 40%, spezifisch für sekundäres APS
Thrombozytopenie, autoimmune
Thrombozyten-AAK (s. S. 136)
Phospholipid-AAK (s. S. 132)
Thyreoiditis, chronisch lymphozytär
Thyreoperoxidase-AK (TPO) (s. S. 136)
Prävalenz >90%, spezifisch
Thyreoglobulin-AK (TAK) (s. S. 136)
Prävalenz 20-50%
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 136)
Prävalenz 10-20%, spezifisch
Vaskulitis, relevante Autoantikörper
c-ANCA (s. S. 124)
PR3-positiv
Prävalenz: M. Wegener 95%, Churg-Strauss-Syndrom 10-20%; hochspezifisch
p-ANCA (s. S. 131)
MPO-positiv
Prävalenz: Churg-Strauss-Syndrom 60-75%, klassische Panarteriitis nodosa 5-15%,
mikroskopische Polyangiitis 60-90%, M. Wegener 10%; hoch spezifisch
Wegener-Granulomatose s. Vaskulitis (s. S. 148)
148
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Immunologie / Autoimmunerkrankungen
Wärmeautoantikörper
Direkter Antiglobulintest (direkter Coombstest) (s. S. 179)
Antikörpersuchtest (s. S. 178)
Zöliakie (glutensensitive Enteropathie, Sprue)
Gewebstransglutaminase-AK (tTG-AK) (s. S. 136)
Zielantigen der Endomysium-Antikörper, Prävalenz 98%, hochspezifisch
Endomysium-AAK (s. S. 126)
Prävalenz 80-100%, hochspezifisch
Gliadin-AK IgA und IgG (GAF-3x) (s. S. 127)
HLA-DQ2/DQ8 (Zöliakie-Prädisposition) (s. S. 116)
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149
150
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Funktionstests
Der folgende Teil stellt häufig eingesetzte Funktionstests vor. Funktionstests sind oft wesentlich aussagekräftiger als Basalwerte. Für eine labormedizinische Diskussion bzw. medizinische, individuelle Interpretation der Befunde ist es unverzichtbar, dass Sie: 1. die klinische
Fragestellung angeben 2. Angaben zur Testdurchführung machen (Bezeichnung des Funktionstests) 3. die Proben genau kennzeichnen (Abnahmezeitpunkt). Bei Fragen bitte bereits
in der Phase der Testplanung anrufen! Anleitungen für weitere Funktionstests finden Sie im
Internet unter www.labor-enders.de oder gern auf telefonische Anfrage: Tel. 0711/63 57-210
oder -211.
ACTH-Stimulationstest (Kurztest)
Indikation
1. Diagnostik der NNR-Insuffizienz
2. Diagnostik eines late-onset AGS
Prinzip
Stimulation der NNR durch ACTH
Durchführung
Diagnostik der NNR-Insuffizienz
Testbeginn 7-9 Uhr, der Patient sollte nüchtern sein und es während des Testablaufs bleiben
1. Basale Blutprobe (2-5 ml Vollblut ohne Zusätze) abnehmen, abzentrifugieren und kennzeichnen.
2. 25 IE (0,25 mg) synthetisches ACTH (Synacthen®) i. v. applizieren.
3. 60 Min. danach zweite Blutprobe (2-5 ml) abnehmen und kennzeichnen.
4. 120 Min. danach dritte Blutprobe (2-5 ml) abnehmen und kennzeichnen.
5. Alle Serumproben zur Cortisol-Bestimmung einsenden.
Diagnostik eines late-onset-AGS
Testdurchführung am 3. - 7. ZT morgens. Eine antiandrogene Therapie bzw. eine Corticoidgabe muss mindestens eine Woche zuvor beendet werden.
1. Basale Blutprobe (2-5 ml Vollblut ohne Zusätze) abnehmen, abzentrifugieren und kennzeichnen.
2. 25 IE (0,25 mg) synthetisches ACTH (Synacthen®) i. v. applizieren.
3. 60 Min. danach zweite Blutprobe (2-5 ml) abnehmen, abzentrifugieren und kennzeichnen.
4. Beide Serumproben zur 17-OH-Progesteron-Bestimmung einsenden.
Cortisol (s. S. 158)
17-OH-Progesteron (s. S. 163)
Aldosteron-Suppressionstest
Indikation
DD des Hyperaldosteronismus
Prinzip
Prüfung der Supprimierbarkeit der Aldosteron-Sekretion durch NaCl-Infusion
Durchführung
Testbeginn 7-9 Uhr, der Patient sollte nüchtern sein und es während des Testablaufs bleiben.
1. Basale Blutprobe nach mind. 20-minütigem Liegen (5 ml Vollblut ohne Zusätze zentrifugieren und Serum tieffrieren) abnehmen
2. 2000 ml 0,9% NaCl über 4 Std. infundieren.
3. Danach 2. Blutprobe abnehmen, zentrifugieren und Serum tieffrieren.
4. Beide Proben kennzeichnen und zur Aldosteronbestimmung einsenden.
Aldosteron (s. S. 156)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
151
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Captopril-Test
Indikation
1. Diagnostik der Nierenarterienstenose, Abgrenzung zum essentiellen Hypertonus
2. Diagnostik des primären Hyperaldosteronismus (PHA)
Prinzip
Prüfung der Stimulierbarkeit der Renin-Sekretion; Prüfung der Supprimierbarkeit der Aldosteron-Sekretion bei primärem Hyperaldosteronismus
Durchführung bei Abgrenzung Nierenarterienstenose gegen essentiellen Hypertonus
1. Blutentnahme für Renin und Aldosteron basal nach mind. 30-minütigem Liegen (EDTAPlasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren)
2. Einnahme von 25 mg Captopril
3. Blutentnahme 30 Minuten nach Einnahme von Captopril für Renin und Aldosteron (EDTAPlasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren)
Durchführung z. A. des primären Hyperaldosteronismus (PHA)
1. Blutentnahme für Renin und Aldosteron basal nach mind. 30-minütigem Liegen (EDTAPlasma, tiefgefroren und Serum, tiefgefroren)
2. Einnahme von 25 mg Captopril
3. Blutentnahme nach 1 und 2 Stunden für Renin und Aldosteron (EDTA-Plasma, tiefgefroren
und Serum, tiefgefroren)
Aldosteron (s. S. 156)
Renin (s. S. 163)
Clonidin-Test
Clonidin ist ein alpha-adrenerger Agonist, der zentral angreift und die Freisetzung von Katecholaminen unterdrückt. Beim Phäochromozytom ist ein Anstieg der Plasmakatecholamine nicht
durch die Erhöhung der Sympathikusaktivität, sondern autonom, d. h. durch Diffusion der
vermehrt gebildeten Katecholamine in den Kreislauf unter Umgehung der normalen Speicherungs- und Freisetzungsmechanismen, bedingt.
Indikation
V.a. Phäochromocytom
Prinzip
Prüfung der Supprimierbarkeit der Katecholamine
Durchführung (Schnelltest)
Mindestens 24 Std. vor Beginn antihypertensive Therapie unterbrechen, ausgenommen sind
Calciumantagonisten bei intolerablem Blutdruck (systolisch über 180 mmHg, diastolisch über
110 mmHg)
1. Nach 12stündiger Bettruhe und Fasten Legen einer Dauerkanüle mindestens 30 min. vor
Testbeginn.
2. Anschließend einmalige orale Gabe von 0,3 mg Clonidin.
3. Blutentnahme (EDTA-Plasma, tiefgefroren) basal, nach 1, 2 und 3 Std. zur Bestimmung von
Adrenalin und Noradrenalin.
Durchführung über Nacht
1. Am Tag sammelt der Patient von 9-21 h Urin zur Katecholaminbestimmung (Sammelgefäß
1). Dafür geht der Patient um 9 Uhr morgens zur Toilette und verwirft den zu diesem Zeitpunkt
gelassenen Urin. Alle weiteren Urinproben werden nun gesammelt. Zusatz von Salzsäure nach
dem 1. Urin nicht vergessen. Um 21 Uhr gibt der Patient zum letzten Mal den Urin in das
Sammelgefäß 1.
2. Um 21 h werden 0,3 mg Clonidin oral verabreicht.
3. Von 21-7 h am nächsten Morgen den Nacht-Urin sammeln (Sammelgefäß 2). Zusatz von
Salzsäure nach dem 1. Urin nicht vergessen. Um 9 Uhr morgens am nächsten Tag leert der
Patient zuletzt seine Blase und gibt den Urin in das Sammelgefäß 2.
Gemessen wird in beiden Sammelurinen die auf Kreatinin-bezogene Katecholaminausscheidung.
152
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Katecholamine im Urin (s. S. 160)
Katecholamine im Plasma (s. S. 161)
D-Xylose-Belastungstest
Indikation
Malabsorptionssyndrom, V. a. Störungen der funktionellen Integrität des oberen Dünndarmes
Prinzip
Zur Beurteilung der intestinalen Kohlenhydratresorption
Durchführung
Die Untersuchung erfolgt am nüchternen, ruhenden Patienten
D-Xylosebestimmung im Blut
1. Mit Fluorid-Monovette Basale NaF-Blutprobe entnehmen und beschriften.
2. Orale Gabe von 25 g D-Xylose (Kinder: 15 g/m² Körperoberfläche), die in 500 ml (bei Kindern
in entsprechend weniger) Leitungswasser gelöst sind. Innerhalb von einer halben Stunde sollte
die gesamte Flüssigkeit getrunken werden.
3. Nach 1 Stunde zweite NaF-Blutprobe entnehmen und beschriften.
D-Xylosebestimmung im Urin
1. Vor Testbeginn muss die Blase entleert werden.
2. Orale Gabe von 25 g D-Xylose (Kinder: 15 g/m² Körperoberfläche), die in 500 ml (bei Kindern
in entsprechend weniger) Leitungswasser gelöst sind. Die Hälfte der Flüssigkeit sollte sofort,
der Rest innerhalb maximal der nächsten Stunde getrunken werden.
3. Nach der Xylosegabe 5 Stunden lang den Urin gewissenhaft sammeln, Volumen messen
und im Kühlschrank aufbewahren.
Xylose i. Urin (s. S. 213)
Xylose (s. S. 188)
Dexamethason-Hemmtest
Da Dexamethason, wie andere synthetische Corticosteroide, die endogene Cortisolproduktion
supprimiert, gleichzeitig aber in den kommerziellen immunologischen Testsystemen mit Cortisol kaum Kreuzreaktivität zeigt, werden unter Dexamethasongabe in der Regel erniedrigte
Cortisolspiegel gemessen. Bei Vorliegen eines M. Cushing ist der Cortisolspiegel dagegen nur
eingeschränkt supprimierbar.
Indikation
1. Diagnostik des Cushing-Syndroms (1 mg Dexamethason-Kurztest)
2. DD des Cushing-Syndroms (8 mg Dexamethason-Langzeittest)
Prinzip
Prüfung der Supprimierbarkeit der Cortisolsekretion durch Dexamethason
Durchführung (Kurztest)
1. Am ersten Tag dem nüchternen Patienten zwischen 7-8 Uhr 2-5 ml Blut (Serum) zur Bestimmung von Cortisol abnehmen.
2. Um 21-23 Uhr des selben Tages 1 mg Dexamethason per os geben (Kinder 300 µg/qm
Körperoberfläche (Hindmarsh PC, Brook CG: Single dose dexamethasone suppression test in
children: dose relationship to body size. Clin Endocrinol 1985;23:67-70)).
3. Am zweiten Tag wieder zwischen 7-8 Uhr die zweite Blutprobe abnehmen
4. Proben kennzeichnen und zur Cortisolbestimmung einsenden.
Durchführung (Langzeit-Test)
1. Am ersten Tag dem nüchternen Patienten zwischen 7-9 Uhr 2-5 ml Blut (Serum) abnehmen.
2. Alle 6 Std. über 2 Tage je 2 mg Dexamethason per os geben.
3. Am 3. Tag (oder letzten) die 2. Blutprobe zwischen 7-9 Uhr abnehmen.
4. Proben kennzeichnen und zur Cortisolbestimmung einsenden.
Cortisol (s. S. 158)
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153
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Eisenresorptionstest
Indikation
Zur Feststellung eines latenten Eisenmangels oder einer Eisenresorptionsstörung.
Prinzip
Der nach oraler Gabe einer Eisen (II)-Verbindung festzustellende Anstieg des Eisenspiegels
im Serum korreliert mit dem Ausmaß des Eisenmangels. Bei Gesunden erfolgt ein nur geringer
Anstieg des Eisenspiegels im Serum (bis ca. 180 µg/dl). Bei Eisenmangelanämien und intakten Resorptionsverhältnissen steigt der Serumeisenspiegel von erniedrigten Ausgangswerten
nach 2-4 Std. auf 200 µg/dl und darüber an. Bei Infekt- und Tumoranämien sowie Resorptionsstörungen erfolgt keine oder nur eine geringgradige Anhebung des Serumeisenspiegels.
Durchführung
Der Patient muss nüchtern sein und während der Versuchszeit Bettruhe einhalten. 1 Std. nach
Einnahme des Eisenpräparates kann er frühstücken.
1. Nach Abnahme von 2 ml Blut für den Vergleichswert 200 mg zweiwertiges Eisen (Handelspräparat) per os verabreichen.
2. Je 2, 4 (und 6) Std. nach der Eisengabe erfolgt eine Blutentnahme zur Serumeisenbestimmung.
Eisen (s. S. 192)
GnRH-Test (LH/FSH-Stimulationstest mit LH-RH)
Indikation
Nachweis/Ausschluss einer Hypophysenvorderlappen-Insuffizienz im Regelkreis HVL - Gonaden
Prinzip
Stimulation der Ausschüttung von LH bzw. FSH mit Gonadotropin-releasing Hormon (LH-RH)
Durchführung
Morgens, bei Frauen in der Lutealphase des Zyklus
1. 5 ml Venenblut zur Bestimmung der Basalwerte von LH und FSH entnehmen.
2. 100 µg Gn-RH (Relefact LH-RH®) i. v. applizieren.
3. Nach 30 und 60 Min. erneut Blut zur Bestimmung des LH und FSH entnehmen.
LH (luteinisierendes Hormon) (s. S. 162)
FSH (Follikel-stimulierendes Hormon) (s. S. 159)
Insulinom-Abklärung
Indikation
Z. A. eines Insulinoms bei unklaren Hypoglykämien
Prinzip
Nachweis einer durch autonome Proinsulin/Insulin-Sekretion unter Nahrungskarenz entstehenden Hypoglykämie.
In der unten beschriebenen Kombination ist selten ein längerer Hungerversuch erforderlich,
um ein Insulinom zu diagnostizieren. Intaktes Proinsulin weist die höchste Sensitivität für die
Insulinomdiagnostik auf.
Durchführung
1. Morgens nüchtern Blutzucker (Glucose) bestimmen.
2. Liegen die Glucosewerte jetzt schon unter 50 mg/dl (= 2,8 mmol/l), Blut abnehmen (Serum
sofort nach dem Durchgerinnen zentrifugieren und tieffrieren) und daraus Insulin, C-Peptid und
intaktes Proinsulin bestimmen lassen und den Test abbrechen.
3. Liegt der Glucosespiegel über 50 mg/dl, den Patienten weiterhin nüchtern lassen und alle
60 min bzw. bei Auftreten von Zeichen einer Hypoglykämie erneut den Blutzucker (Glucose)
bestimmen.
4. Wenn der Glucosespiegel 50 mg/dl unterschreitet, erneut Blut abnehmen (Serum sofort nach
dem Durchgerinnen zentrifugieren und tieffrieren) und daraus Insulin, C-Peptid und intaktes
Proinsulin bestimmen lassen.
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
5. Wird auch nach 24 h ein Glucosewert von 50 mg/dl nicht unterschritten, wird der Test beendet.
Lactose-Toleranz-Test
Indikation
V. a. Lactoseintoleranz d. h. Lactasemangel der Dünndarmschleimhaut
Prinzip
Prüfung der Lactaseaktivität (spaltet das Disaccharid Lactose in die Monosaccharide Galactose und Glucose) der Dünndarmschleimhaut über den Anstieg der Blutglucose nach einer
definierten Lactosegabe
Durchführung
1. Dem nüchternen Patienten venös citrat-gepuffertes Blut (Glucoexact®-Monovette oder
Venosafe®-Röhrchen) zur Glucosebestimmung entnehmen.
2. 50 g Laktose in 400 ml Wasser per os geben.
3. 60, 90 und 120 Minuten danach nochmals Blut zur Glucosebestimmung entnehmen, Proben
kennzeichnen.
Glucose (s. S. 191)
Oraler Glucose-Toleranz-Test (oGTT)
Indikation
1. V. a. latenten Diabetes mellitus
2. V. a. Gestationsdiabetes
3. V. a. Insulinresistenz (z.B. bei PCO)
Prinzip
Messung des Anstiegs der Blutglucose und ggf. von Insulin nach einer definierten Glucosegabe
Durchführung
Bei allen aufgeführten Tests darf der Patient nach der Glucosegabe nicht umherlaufen,
sondern sollte sitzen oder liegen.
Bei V. a. latenten Diabetes mellitus oder Insulinresistenz
1. Dem nüchternen Patienten venös Blut zur Glucosebestimmung (Glucoexact-Monovette)
entnehmen.
2. 75 g Glucose in 300 ml Wasser (z.B. Dextro-O.G.-T. Saft®) per os geben
(Kindern 7 ml = 1,75 g Glucose) pro kg KG.
3. 120 Minuten danach nochmals Blut zur Glucosebestimmung entnehmen, Proben kennzeichnen.
Z. A. eines Gestationsdiabetes
A) Screening mit 50 g Glucose
1. Der Patient muss hierfür nicht nüchtern sein.
2. 50 g Glucose in 200 ml Wasser (z. B. 200 ml des Dextro-O.G.T.-Safts®) per os geben.
3. 60 Minuten danach venös Blut zur Glucosebestimmung (Glucoexact-Monovette) entnehmen.
B) oGTT mit 75 g Glucose (empfohlenes Verfahren)
1. Abnahme von Blut zur Nüchtern-Glucose-Bestimmung (Glucoexact-Monovette).
2. 75 g Glucose (z. B. eine Flasche Dextro-O.G.T.-Saft®) per os geben.
3. 60 und 120 Minuten danach nochmals Blut (Glucoexact-Monovette) zur Glucosebestimmung entnehmen. Proben kennzeichnen.
Glucose (s. S. 191)
Wachstumshormon-(STH-) Stimulationstest
Indikation
Z. A. eines hypophysären Minderwuchses.
Prinzip
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
155
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Stimulation durch Hypoglykämie, Arginin, Clonidin u. a. führen bei nicht-funktionsgestörter
Hypophyse zu verstärkter Ausschüttung von STH.
Durchführung
Stimulation durch Insulin-bedingte Hypoglykämie
Hypoglykämie führt bei normaler Funktion des HVL zu kräftiger (gegenregulatorischer) Ausschüttung von STH. Bitte genaue Testvorschrift anfordern! Hinweis: beim Insulin-Hypoglykämie-Test kann gleichzeitig die sekretorische Kapazität der Achse HVL-NNR geprüft werden
(Bestimmung von ACTH und Cortisol). Der Test muss unter kontinuierlicher medizinischer
Überwachung durchgeführt werden.
Stimulation durch Argininhydrochlorid
1. Blutabnahme zur Bestimmung von STH, basal.
2. Gabe von 0,5 g/kg KG Argininhydrochlorid, verdünnt 1:10 mit physiologischer NaCl-Lösung
morgens nüchtern.
3. Abnahme von STH nach 30, 60 und 90 Minuten.
STH (s. S. 165)
Endokrinologie
Acetylcholinesterase (ACHE) im Fruchtwasser
(F)
Material: Fruchtwasser 2 ml
Methode: ELPHO
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Indikation: V. a. Neuralrohrdefekt
Referenzbereich: negativ
ACTH (Adrenocorticotropes Hormon)
Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 300 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung der adreno-corticotropen Achse. DD des Hypercortisolismus, Abklärung
einer NNR-Insuffizienz.
Referenzbereich: 7-67 ng/l
ADH (Antidiuretisches Hormon, Vasopressin)
(F)
Zur Beurteilung ist die parallele Bestimmung der Serumosmolalität notwendig.
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und
von den Zellen getrennt wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: V. a. Diabetes insipidus
Referenzbereich: <8 ng/l
Aldosteron
gleichzeitige Bestimmung von Renin empfohlen.
Nur aus Serum bestimmbar, das 15 Minuten nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Der Patient sollte vor der Blutentnahme mind. 15 Minuten liegen. Verschiedene Antihypertensiva und Diuretika (insbesondere Spironolacton) sollten bereits Wochen vor der Bestimmung
abgesetzt werden. Eine Liste mit den möglichen Antihypertensiva finden Sie im Internet unter
www.labor-enders.de
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: CLIA
156
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 24 Stunden)
Indikation: Abklärung der NNR-Funktion. V. a. prim./sek. Hyperaldosteronismus (Conn-Syndrom, Nierenarterienstenose), V. a. M. Addison. Abklärung eines arteriellen Hypertonus.
Referenzbereich: nach 15-minütigem Liegen: 20-160 ng/l
Aldosteron, frei im Urin
(F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Urin nicht ansäuern! Gekühlt sammeln. Ein Aliquot von ca. 5 ml Urin nach dem Sammeln
abtrennen und tieffrieren.
Material: 24 h-Sammelurin, gefroren 2 ml
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Hyperaldosteronismus
Referenzbereich: 0,1-0,4 µg/24h
Aldosteron-18-Glucuronid im Urin
(F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Urin nicht ansäuern! Gekühlt sammeln. Ein Aliquot von ca. 5 ml Urin nach dem Sammeln
abtrennen und tieffrieren.
Material: 24 h-Sammelurin, gefroren 1 ml
Methode: LIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Hyperaldosteronismus
Referenzbereich: 1,2-28 µg/24h
alpha-Fetoprotein (AFP)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. hepatozelluläres Karzinom.
Schwangerschaft: Abklärung Neuralrohrdefekt-Risiko
Referenzbereich: Schwangerschaft siehe Befund; nicht-schwangere Erwachsene und Kinder
ab 10 Monate: <7,5 kU/l
alpha-Fetoprotein (AFP) im Fruchtwasser
(F)
bitte das Gestationsalter (SSW + Tag) exakt angeben
Material: Fruchtwasser 5 ml
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Neuralrohrdefekt
Referenzbereich: s. Befund (je nach SSW) kU/l
Androstandiol-Glucuronid
(F)
Material: Serum 500 µl
Methode: ELISA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: M: 1,5-14,8 F: prämenopausal: 0,2-4,6, postmenopausal: 0,6-3,7 µg/l
Androstendion
Material: Serum 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Anti-Müller-Hormon (AMH)
Material: Serum 500 µl
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
157
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung der Fertilität bzw. der ovariellen Restfunktion, V. a. PCO-Syndrom,
Tumormarker des Granulosazelltumors des Ovars
Referenzbereich: Normbereich alters- und geschlechtsabhängig. Ausführliche Normbereiche
können im Internet unter www.labor-enders.de eingesehen werden oder telefonisch unter Tel.
0711/6357-210 erfragt werden. Frauen im fertilen Alter: 1 - 8, postmenopausal: < 0,1, Erwachsene Männer: 1,5-4,3 µg/l
beta-hCG (humanes Chorion-Gonadotropin)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: Schwangerschaft siehe Befund, nicht schwanger: <2 U/l
C-Peptid
Blutentnahme nach 12stündiger Nahrungskarenz. Das Serum direkt nach dem Durchgerinnen
vom Blutkuchen trennen.
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: (nüchtern) 0,37-1,47 nmol/l
Calcitonin (s. S. 164)
Cortisol im Serum
Z. A. einer NNR-Insuffizienz Abnahme um 8:00 h, Tagesprofil: 8:00 h, 12:00 h, 16:00 h, 20:00
h, (24:00 h). Bei V. a. Hypercortisolismus ist insbesondere die Entnahme um 24:00 Uhr zu
empfehlen.
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: 60-250 (morgens 8:00 h), Tagesprofil und nach Dexamethason: siehe
Befund. Einheit: µg/l
Cortisol, freies im Urin
(F)
Bitte Sammelmenge angeben
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 10 ml
Methode: RIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 14-97 µg/24h
DHEA
(F)
da DHEA in vivo quantitativ in DHEA-S metabolisiert wird, sollte der Bestimmung von DHEAS der Vorzug gegeben werden.
Material: Serum 500 µl
Methode: RIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
DHEA-S
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: alters- und geschlechtsabhängig, s. Befund µg/l
158
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Dihydrotestosteron
(F)
Material: Serum 2 ml
Methode: RIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Erythropoietin
(F)
Material: Serum 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 4,3-29 U/l
Estradiol (E2)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund ng/l
Estriol, freies (freies E3)
Material: Serum 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Marker für Screening auf Trisomie 21 im zweiten Trimester.
Referenzbereich: Schwangerschaft: siehe Befund. Männer und nicht-schwangere Frauen:
<0,07 µg/l
Estron (E1)
(F)
Material: Serum 500 µl
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: s. Befund ng/l
FSH (Follikel-stimulierendes Hormon)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund U/l
Gastrin
(F)
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <115 ng/l
Glucagon
(F)
Abnahme nach 12stündiger Nahrungskarenz. Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar,
das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 1 ml
Methode: RIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Referenzbereich: <209 ng/l
HOMA-Index
Bestimmung von Insulin und Glucose nach mind. 12 Stunden Nüchternheit vor Blutentnahme.
Der Patient darf lediglich Wasser oder ungesüßten Tee trinken.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
159
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Bitte gefrorenes Serum und citrat-gepuffertes Blut (Glucoexact(R)) einsenden, welches gleichzeitig gewonnen wurde.
Material: Serum, gefroren 500 µl, Glucoexact 500 µl
Methode: berechnet
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: < 2,0 unauffällig; 2,0-2,5 grenzwertig; >2,5 Insulinresistenz
IGF-1 (Insulin-like Growth Factor 1, Somatomedin C)
Material: Serum, gefroren 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: alters- und geschlechtsabhängig, s. Befund µg/l
IGF-BP3 (IGF-bindendes Protein 3)
Material: Serum, gefroren 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Inhibin A
Material: Serum 300 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verlaufskontrolle eines Granulosazell-Tumors
Referenzbereich: s. Befund ng/l
Inhibin B
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum 300 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung Fertilität, Verlaufskontrolle eines Granulosazell-Tumors
Referenzbereich: alters- und geschlechtsabhängig, s. Befund ng/l
Insulin
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: Serum, gefroren 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: (nüchtern) 2,5-20 mU/l
Katecholamine
(F)
Katecholamine im Urin
(Adrenalin, Noradrenalin, Dopamin)
Bitte Sammelmenge angeben.
Obligates Ansäuern mit 10 ml Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt
nach der ersten Miktion!
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert 10 ml
Methode: RIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Phäochromozytom
Referenzbereich: siehe Einzelwerte
160
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
(F)
Adrenalin im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt
nach der ersten Miktion!
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert 10 ml
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: Erwachsene: <20 µg/24h
(F)
Noradrenalin im Urin
Bitte Sammelmenge angeben
Obligates Ansäuern mit 10 ml Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt
nach der ersten Miktion!
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert 10 ml
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: Erwachsene: <90 µg/24h
(F)
Dopamin im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt
nach der ersten Miktion!
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert 10 ml
Methode: RIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: Erwachsene: <600 µg/24h
(F)
Metanephrine im Plasma
Untersucht werden Metanephrin und Normetanephrin
Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, welches unmittelbar nach Blutentnahme durch Zentrifugation gewonnen und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 800 µl
Methode: RIA
Ansatz: 3 - 4 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 24 Stunden)
Indikation: sensitivster Marker für ein Phäochromozytom
Referenzbereich: Metanephrin <90, Normetanephrin <180 ng/l
(F)
Normetanephrin im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt
nach der ersten Miktion!
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert 10 ml
Methode: RIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <600 µg/24h
(F)
Katecholamine im Plasma
(Adrenalin, Noradrenalin)
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert
und von den Zellen getrennt wurde. Falls kein sofortiges Tieffrieren möglich ist, muss ein
spezielles Stabilisator-Röhrchen eingesetzt werden, welches Sie unter Tel. 0711/6357-104
bestellen können.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 1,5 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Phäochromozytom
Referenzbereich: siehe Einzelwerte
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
161
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
(F)
Adrenalin im Plasma
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert
und von den Zellen getrennt wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 1,5 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 30-90 ng/l
(F)
Noradrenalin im Plasma
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert
und von den Zellen getrennt wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 1,5 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 165-460 ng/l
(F)
Hydroxyindolessigsäure (5-HIES)
Obligates Ansäuern mit 10 ml reiner Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Cave: keine Salzsäure verwenden!
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <8,0 mg/24h
(F)
Homovanillinsäure im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml reiner Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Cave: keine Salzsäure verwenden!
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <8,0 mg/24h
(F)
Vanillinmandelsäure im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml reiner Essigsäure von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt nach der ersten Miktion! Cave: keine Salzsäure verwenden!
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: <8,0 mg/24h
(F)
Metanephrine im Urin
Obligates Ansäuern mit 10 ml HCl 33%ig von Beginn der Sammelperiode an. Zugabe direkt
nach der ersten Miktion!
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert
Methode: RIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <350 µg/24h
LH (luteinisierendes Hormon)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund U/l
Parathormon, PTH (intakt)
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den
Zellen getrennt wurde bestimmbar.
162
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Material: EDTA-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: 12-45 ng/l
PlGF (Placental Growth Factor)
Bitte immer die SSW angeben.
Nur Serum einsenden, welches vom Blutkuchen getrennt wurde. Stabilität bei Raumtemperatur
3 Tage.
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Früherkennung der Präeklampsie im Rahmen des Screenings im 1. Trimenon.
Diagnose bzw. Ausschluss der Präeklampsie in der zweiten Schwangerschaftshälfte zusammen mit sFlt-1.
Zusatzmarker im Rahmen des Ersttrimester-Screenings auf Trisomie 21 (Zertifizierung der
FMF London erforderlich)
Referenzbereich: s. Befund ng/l
Progesteron
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Corpus luteum-Insuffizienz
Referenzbereich: s. Befund µg/l
17-OH-Progesteron
Progesteron wird vom Test mitgemessen, daher muss die Abnahme außerhalb der Lutealphase erfolgen!
Material: Serum 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Adrenogenitales Syndrom (AGS), auch late-onset AGS
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Proinsulin, intakt
(F)
Material: EDTA-Plasma, gefroren 1 ml
Methode: ELISA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Indikation: V. a. Insulinom
Referenzbereich: <11 pmol/l
Prolaktin
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Prolaktinom, Galaktorrhoe, Hyperandrogenämie
Referenzbereich: s. Befund µg/l
PTHrP (PTH-related Protein) (s. S. 198)
Renin
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und
von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 1,5 ml
Methode: CLIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Referenzbereich: (in Ruhe) 2,5-36 ng/l
Risikoabschätzung für Trisomie 21 im 1. Trimester
mittels Bestimmung von PAPP-A und freier beta-Kette des hCG.
Obligate Angaben für das zertifizierte Ersttrimester-Screening: Geburtsdatum der Mutter, SSL,
NT, Gewicht der Patientin, Datum der Blutabnahme und des Ultraschalls.
Die Berechnung des Risikos unter Einschluss der Nackentransparenz ist nur für Kollegen, die
durch die FMF London oder FMF-Deutschland zertifiziert sind, möglich. Für genauere Informationen Tel. 0711/6357-210 oder -211 oder im Internet unter www.labor-enders.de
Das Serum muss direkt nach dem Durchgerinnen vom Blutkuchen getrennt und vor Erwärmung über 25°C geschützt werden. Das Serum muss unser Labor binnen 48 Stunden (max.
72 Std.) erreichen.
Material: Serum 500 µl
Methode: TRACE (Kryptor)
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: Risikoabschätzung für das Vorliegen einer fetalen Trisomie 21, 18 und 13.
Zeitfenster: SSL 45 bis 84 mm, entsprechend SSW 11+1 bis SSW 14+0 (nach Robinson).
Schilddrüsen-Diagnostik
TSH, basal
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: 0,3-4,0 mU/l
fT3 (Trijodthyronin, frei)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: 1,8-4,6 ng/l
fT4 (Thyroxin, frei)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: 9,4-18 ng/l
TG (Thyreoglobulin) (s. S. 165)
TRH-Test (TSH, basal und nach Stimulation)
Material: Serum 2x 500 µl
Referenzbereich: Anstieg um 2,5 - 25 mU/l
MAK siehe TPO-AAK (s. S. 136)
TAK (Thyreoglobulin-AAK) (s. S. 136)
TPO-AK (s. S. 136)
TRAK (TSH-Rezeptor-AK) (s. S. 136)
Calcitonin
C-Zell-Karzinom der Schilddrüse
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: CLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: M: <11,4 F: <6,4 ng/l
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
TG (Thyreoglobulin)
Schilddrüse (papilläres Ca)
Material: Serum 500 µl
Methode: TRACE (Kryptor)
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <60 µg/l
Serotonin im Plasma
(F)
besser: HIES im 24 h-Urin, da hiermit ein Zeitraum von 24 Std. abgedeckt wird.
Nur aus gefrorenem EDTA-Plasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den
Zellen getrennt wurde oder aus gefrorenem Serum, das sofort nach Durchgerinnen abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde, bestimmbar.
2-3 Tage vor der Blutentnahme sollte auf folgende Lebens- und Genussmittel verzichtet werden: Schokolade, Bananen, Nüsse, Tomaten, Ananas, Auberginen, Avocados, Melonen, Mirabellen, Pflaumen, Johannisbeeren, Stachelbeeren, Auberginen, Kiwis, Alkohol, Nikotin, Kaffee
und Tee.
Folgende Medikamente sollten nach Möglichkeit vor der Blutabnahme abgesetzt werden, da
sie zu erhöhten Serotoninspiegeln führen können:
Paracetamol, Cumarine, Mephenesin, Phenobarbital, Azetanilid, Ephedrin, Amphetamine,
Pentolamin, Phenazetin, Methocarbamol.
Material: Serum, gefroren 500 µl, EDTA-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Karzinoid
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Sexualhormon-bindendes Globulin (SHBG)
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Hyperandrogenämie, Diagnostik des PCO-Syndroms, Abschätzung des freien
Anteils des Testosterons
Referenzbereich: M: 10-55, F: 30-90 nmol/l
sFlt-1
Bitte immer die SSW angeben.
Nur Serum einsenden, welches vom Blutkuchen getrennt wurde. Stabilität bei Raumtemperatur
3 Tage.
Material: Serum 300 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Präeklampsie
Referenzbereich: s. Befund ng/l
sFlt-1/PlGF-Quotient
Bitte immer die SSW angeben.
Methode: berechnet
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Präeklampsie.
Referenzbereich: < 38 (Graubereich bis SSW 34: 38 - 85, ab SSW 35: 38 - 110)
STH (Somatotropes Hormon / hGH)
Material: Serum 500 µl
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Methode: CLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <7 µg/l
Testosteron
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: M: 3,0-9,0 F: 0,1-0,55 µg/l
Testosteron, frei
(F)
Wegen der größeren Präzision, der höheren Aussagekraft und der schnelleren Verfügbarkeit
empfehlen wir statt der Bestimmung des freien Testosterons die Bestimmung des GesamtTestosteron-Spiegels in Kombination mit SHBG mit Berechnung des Freien Androgenindex
(FAI). Diese Bestimmungen werden täglich durchgeführt.
Material: Serum 1 ml
Methode: RIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: s. Befund ng/l
Andrologie
Spermiogramm
Beurteilung des Ejakulates nach WHO-Kriterien (WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen - 5th edition, 2010). Mikroskopische Untersuchung des
Ejakulates mit Bestimmung der Anzahl, Motilität und Morphologie der Spermatozoen. Bestimmung von Fructose, Citrat, Zink und alpha-Glucosidase im Seminalplasma.
Diagnostik nur möglich, wenn das Sperma im Labor gewonnen wurde.
Telefonische Terminvereinbarung erforderlich (0711 / 6357-0).
Material: Sperma
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: Abklärung bei unerfülltem Kinderwunsch, vor IVF, nach Sterilisation.
Referenzbereich: s. Befund
alpha-Glucosidase im Seminalplasma
Material: Seminalplasma 1 ml, Sperma 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Funktion der Epididymis bei Abklärung von Infertilität
Referenzbereich: >19 mU/Ejakulat
Carnitin im Seminalplasma
(F)
Material: Seminalplasma 500 µl, Sperma 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Nebenhodenfunktion im Rahmen einer Fertilitätsabklärung
Referenzbereich: >220 µmol/l
Citrat im Seminalplasma
Material: Seminalplasma 1 ml, Sperma 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Funktion der Prostata bei Abklärung von Infertilität
Referenzbereich: 250-800 mg/dl
166
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Fructose im Seminalplasma
Material: Seminalplasma 1 ml, Sperma 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Beurteilung der Funktion der Samenbläschen bei Abklärung von Infertilität
Referenzbereich: >13 µmol/Ejakulat
PSA im Seminalplasma
Material: Seminalplasma 500 µl, Sperma 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zur Beurteilung der Prostatafunktion bei Abklärung der Fertilität
Referenzbereich: 570-1420 mg/l
Zink im Seminalplasma
Material: Seminalplasma 1 ml, Sperma 1 ml
Methode: AAS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Beurteilung der Funktion der Prostata bei Abklärung einer Infertilität
Referenzbereich: >78 mg/l
DHEA-S (Dehydroepiandrosteron-Sulfat) (s. S. 158)
FSH (Follikel-stimulierendes Hormon) (s. S. 159)
LH (luteinisierendes Hormon) (s. S. 162)
SHBG (Sexualhormon-bindendes Globulin) (s. S. 165)
Testosteron (s. S. 166)
Gerinnung
Gewinnung und Versand von plättchenarmem Plasma
Die Punktion ist direkt und streng intravenös durchzuführen, um eine Beimengung von
Gewebsflüssigkeit und damit eine Aktivierung des Gerinnung zu verhindern.
• Citratblut möglichst unmittelbar nach der Blutentnahme bei mindestens 2500 g 15 min bei
Raumtemperatur (15-25°C) zentrifugieren.
• Das Citratplasma wird mit genügend Abstand zum Buffy Coat (Leukozyten- und Thrombozytenschicht zwischen Plasma und Erythrozyten) abpipettiert.
• Das Plasma in diesem Sekundärröhrchen unmittelbar nach der ersten Zentrifugation unter
den gleichen Bedingungen nochmals zentrifugieren.
• Die Probe sofort unter sorgfältiger Trennung vom Sediment in ein für tiefe Temperaturen
geeignetes Kunststoffröhrchen überführen und bei -20°C oder kälter lagern.
Die Probe muss das Labor gefroren erreichen und darf auf dem Transportweg nicht auftauen.
Die meisten Fahrzeuge unseres Fahrdienstes führen Trockeneis mit sich, sodass die Probe
dem Fahrer nur – als gefrorene Probe deklariert – übergeben werden muss. Bei Postversand
oder Fahrdiensten, die unser Labor über Nacht erreichen, muss die Probe in Versandbehältern
für gefrorenen Versand von Blutproben verschickt werden. Diese sind bei unserem Versand
erhältlich.
Siehe auch:Witt I, Beeser H, Müller-Berghaus G. Minimalanforderungen zur Gewinnung von
Citratplasma für hämostaseologische Analysen. Lab Med 1995; 19: 143-5 und DIN 58905-1.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
INR (International Normalized Ratio)
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 250 µl, Citratblut 500 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Monitoring einer Therapie mit Vitamin-K-Antagonisten (z. B. Marcumar).
Referenzbereich: Therapeutisch je nach Indikation 2,5-4,5
Quick, Thromboplastinzeit (TPZ)
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 250 µl, Citratblut 500 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: präoperativ, Leberfunktionsprüfung, Blutungsneigung. Bei Monitoring einer Therapie mit Vitamin-K-Antagonisten sollte die INR verwendet werden.
Referenzbereich: >70 (Erw.) %
PTT
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 250 µl, Citratblut 500 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: präoperativ, bei Blutungsneigung, Monitoring einer Therapie mit unfraktioniertem
Heparin (UFH). Falls die aPTT verlängert ist, kommen außer einer fehlerhaften Präanalytik
primär folgende Ursachen in Frage: Mangel an Faktor VIII, Faktor IX, Faktor XI, Faktor XII,
das Vorliegen eines Lupus-Antikoagulans sowie ein von-Willebrand-Syndrom (VWS). Eine
normale aPTT schließt ein VWS jedoch nicht aus!
Referenzbereich: Erw.: 25-43 s
Plasmathrombinzeit (PTZ)
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 250 µl, Citratblut 500 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Dysfibrinogenämie, Fibrinogenmangel, Verbrauchskoagulopathie
Referenzbereich: 15-21 s
Fibrinogen
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 8 Std. alt) Citratblut.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 250 µl, Citratblut 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verbrauchskoagulopathie, Abklärung des kardiovaskulären Risikos.
168
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Cave: In der Schwangerschaft und in der Akut-Phase liegen die Fibrinogenspiegel höher! Ggf.
CRP mitbestimmen lassen.
Referenzbereich: 150-400 mg/dl
Thrombozyten
Bei V. a. EDTA-induzierte Pseudothrombopenie sollte parallel zum EDTA-Blut eine ThromboExact-Monovette eingesandt werden.
Material: EDTA-Blut 300 µl, Thrombozyten-Spezialmedium (ThromboExact) 300 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: V. a. Thrombopenie, prä- und postoperativ, Petechien, unter Heparin-Therapie bei
V. a. HIT II
Referenzbereich: 140-450 Tsd./µl
Thrombozytenfunktionstest
Die Bestimmung muss spätestens 4 Stunden nach Blutentnahme erfolgen. Dabei sollte das
Citratblut möglichst wenig alteriert werden. Bitte, falls möglich, Blutabnahme im Labor anstreben.
Material: Citratblut 5 ml
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Thrombozytenfunktionsstörung, präoperativ bei vorheriger ASS-Therapie
Referenzbereich: s. Befund
Faktor VIII
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlung zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: Chromogen
Ansatz: bei Bedarf, Eilproben bitte telefonisch ankündigen (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 4 Stunden)
Indikation: verlängerte aPTT, Monitoring einer Hämophilie A.
Cave: In der Schwangerschaft und in der Akut-Phase liegen die Faktor-VIII-Spiegel höher!
Daher ist die parallele Bestimmung des CRP zu empfehlen.
Referenzbereich: 50-150 %
VWF (von-Willebrand-Faktor)
Wird immer in Kombination mit Faktor VIII und der von-Willebrand-Faktor-Aktivität bestimmt.
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. von-Willebrand-Syndrom, Blutungsneigung (z. B. Hämatomneigung, Hypermenorrhoe), verlängerte aPTT
Referenzbereich: 50-200 %
von-Willebrand-Faktor-Aktivität
Wird immer in Kombination mit Faktor VIII und dem von-Willebrand-Faktor bestimmt.
Nur Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
169
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ansatz: bei Bedarf, Eilproben bitte telefonisch ankündigen (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 4 Stunden)
Indikation: V. a. von-Willebrand-Syndrom, Blutungsneigung (z. B. Hämatomneigung, Hypermenorrhoe), verlängerte aPTT
Cave: In der Schwangerschaft liegt die von-Willebrand-Faktor-Aktivität höher!
Dies trifft auch für die Akut-Phase zu. Daher ist die parallele Bestimmung des CRP zu empfehlen.
Referenzbereich: 47-173 (Erw.) %
Faktor IX
(F)
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 1 ml
Methode: Koagulometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: verlängerte PTT, Monitoring einer Hämophilie B, Blutungsneigung
Referenzbereich: 70-120 %
Anti-Faktor Xa-Aktivität
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Cave: Abnahme 3-4 Stunden nach subkutaner Injektion des NMH!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: Chromogen
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Monitoring einer Therapie mit kurzkettigen Heparinen (NMH/LMWH), direkten Inhibitoren des Faktor Xa. Für die Verwendung der korrekten Bezugskurve muss bei Überwachung
einer DOAC-Therapie immer die eingesetzte Substanz angeben werden.
In unserem Labor ist neben NMH und Orgaran z. Z. (Stand 1. Q./2017) nur die Bestimmung
des Rivaroxabanspiegels möglich.
Referenzbereich: Abhängig von Art und Dosierung des Antikoagulans, in der Schwangerschaft
bei intermediärer Dosierung: 0,4-0,6 U/ml
Faktoren, weitere
(F)
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und
tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Telefonische Rücksprache vor Versand erbeten
Dr. Alkier: 0711 / 63 57-211
Fr. Dr. König 0711 / 63 57-268
Werden mehrere seltene Faktoren angefordert, ist das Citratplasma in entsprechend vielen
Fraktionen einzufrieren, da die Bestimmung u. U. in verschiedenen Laboren durchgeführt wird.
Material: Citrat-Plasma, gefroren 1 ml
Kryofibrinogen (s. S. 189)
Blutungsdiagnostik
Bei V. a. eine hämophile Gerinnungsstörung empfehlen wir i. d. R. zunächst eine Basisdiagnostik bestehend aus:
• Quick, aPTT, Fibrinogen, CRP
• Faktor VIII, IX und XIII, von-Willebrand-Faktor
• Thrombozytenfunktionstest
170
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Sind Parameter auffällig, wird die entsprechende Stufendiagnostik (z. B. weitere Einzelfaktoren, Multimeranalyse des VWF) angeschlossen.
Klinische Zeichen einer Blutungsneigung sind z. B.:
•
•
•
•
•
Hämatome ohne adäquates Trauma
rez. Nasen- oder Zahnfleischbluten
Nachblutungen nach operativen Eingriffen
verstärkte Blutung nach Entbindung
regelmäßige starke Regelblutungen
Für eine Stufendiagnostik wird folgendes Material benötigt:
• Citrat-Monovetten, nativ bei RT gelagert
• 3 getrennt eingefrorene Citratplasmen aus je einer 2,7 ml Citratmonovette
• 1 Serum-Monovette
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Das Material muss wegen des Thrombozytenfunktionstestes das Labor binnen 4
Stunden erreichen.
Thrombophiliediagnostik
Bei V. a. Thrombophilie empfehlen wir, i. d. R. zunächst nur die Basisdiagnostik, bestehend aus
•
•
•
•
•
den Aktivitäten von Protein C, Protein S und Antithrombin,
der APC-Resistenz,
dem Lupus-Antikoagulans,
dem Homocysteinspiegel und
der Prothrombin-Mutation, durchzuführen.
Sind Parameter auffällig, wird die entsprechende Stufendiagnostik durchgeführt.
Für eine Thrombophilie-Stufendiagnostik wird folgendes Material benötigt:
•
•
•
•
1 EDTA-Monovette (Prothrombin-Mutation und ggf. Faktor-V-Mutation)
3 getrennt eingefrorene Citratplasmen aus je einer 2,7 ml Citratmonovette
1 Serum-Monovette für Cardiolipin- und beta2-Glykoprotein-Ak
Einverständniserklärung für genetische Diagnostik, incl. Unterschrift von Arzt und Patient
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Basisdiagnostik
Folgende Parameter gehören in unserem Labor zur Basisdiagnostik der Thrombophilieabklärung:
Protein-C-Aktivität
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: Chromogen
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, familiäre Belastung.
Bei mangelnder Aktivität besteht erhöhte Thrombosegefahr. Zur weiteren
Abklärung sollte dann die Proteinmenge bestimmt werden.
Referenzbereich: >70 %
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
171
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Protein-S-Aktivität
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, familiäre Belastung.
Bei mangelnder Aktivität besteht erhöhte Thrombosegefahr. Zur weiteren
Abklärung sollte dann die Proteinmenge bestimmt werden.
Referenzbereich: M: >69 %, F: >58 %
APC-Resistenz
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie.
Bei einer APC-Resistenz unter 2,3 ist das Vorliegen einer Faktor-V-Punktmutation G1691A
(Typ Leiden) wahrscheinlich. Es sollte eine genetische Untersuchung (Faktor-V-Leiden-Genotyp) angeschlossen werden.
Bei familiärer Belastung sollte direkt die genetische Untersuchung angefordert werden.
Referenzbereich: >2,3 Ratio
Antithrombin-Aktivität
Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und tiefgefroren wurde oder frisches (< 4 Std. alt) Citratblut.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie, familiäre Belastung, bei
Verbrauchskoagulopathie.
Bei mangelnder Aktivität besteht erhöhte Thrombosegefahr. Zur weiteren
Abklärung sollte dann die Proteinmenge bestimmt werden.
Referenzbereich: >80 %
Lupus-Antikoagulans
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 600 µl
Methode: Koagulometrie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Basisdiagnostik i. R. d. Abklärung einer Thrombophilie bzw. eines Antiphospholipidsyndroms als erworbene Thrombophilie (z. B. bei habituellen Aborten, Z. n. Thrombose).
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
172
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Homocystein
Nur aus EDTA-Plasma, Serum oder Citrat-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme
abzentrifugiert und von den Zellen getrennt wurde. Serum ist prinzipiell schlecht geeignet,
da der Zeitpunkt der Zentrifugation kritisch ist: Wird zu früh zentrifugiert, gerinnt das Serum
nach; bei zu später Zentrifugation erhält man falsch-hohe Resultate.
Der Patient muss vor der Blutentnahme 12 Stunden nüchtern bleiben.
Material: EDTA-Plasma 200 µl, Citrat-Plasma 200 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung einer Thrombophilie, Abklärung des kardiovaskulären Risikos, Verlaufskontrolle unter Folateinnahme. Bei Werten >18 µmol/l besteht ein Thromboserisiko.
Referenzbereich: <10 µmol/l
Prothrombin-Gen-Mutation (Faktor II) (PCR) (s. S. 116)
Thrombophilie-Stufendiagnostik
Ist ein Parameter der Basisdiagnostik positiv, sollte der entsprechende Parameter
der Stufendiagnostik angeschlossen werden.
Protein-C-Antigen
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 200 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung einer verminderten Protein-C-Aktivität
Referenzbereich: >74 %
Protein-S-Antigen, gesamt
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 200 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung einer verminderten Protein-S-Aktivität
Referenzbereich: 60-120 %
Protein-S-Antigen, frei
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Bitte die Empfehlungen zur Gewinnung von plättchenarmem Plasma berücksichtigen!
Material: Citrat-Plasma, gefroren 300 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung einer verminderten Protein-S-Aktivität
Referenzbereich: 0,54-1,29 IU/ml
Faktor-V-Leiden-Mutation (PCR) (s. S. 116)
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173
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
(F)
Antithrombin-Konzentration
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde.
Material: Citrat-Plasma 300 µl, Serum 300 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Zur weiteren Abklärung bei verminderter Antithrombin-III-Aktivität
Referenzbereich: 19-31 mg/dl
MTHFR-Gen-Mutation (PCR) (s. S. 116)
PAI-1-Gen-Mutation (PCR) (s. S. 116)
Phospholipid-AAK (s. S. 132)
Bei habituellen Aborten und Z. n. Thrombose Teil der Basisdiagnostik, ansonsten bei positivem Lupusantikoagulans.
D-Dimere
Das Messwertergebnis wird in in FEU = Fibrin Equivalent Units berichtet
Nur aus Citratplasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen getrennt
und tiefgefroren wurde; Bestimmung aus frischem (< 8 Std. alt) Citratblut unter Vorbehalt
möglich.
Material: Citrat-Plasma, gefroren 600 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: Z. A. einer akuten Thrombose: normale Spiegel schließen eine akute Thrombose nahezu aus. Bei Patienten über 50 Lj steigt die obere Norm an (Richtwert: Alter x 10).
Verlaufskontrolle, in der Schwangerschaft aufgrund der physiologisch hohen Spiegel
nicht zu empfehlen (die 5. Perzentile steigt zum Ende der Schwangerschaft auf 685 µg/
l FEU, die 95. Perzentile auf 2584 µg/l FEU an).
Referenzbereich: <500 µg/l FEU
Hämatologie
Blutbild, klein
(umfasst: Erythrozyten, Leukozyten, Hb, Hk, MCV, MCH, MCHC und Thrombozyten)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung bei RT.
Material: EDTA-Blut 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Änämie, Verlaufskontrolle eine Fe-Substitution, Entzündung, nach Chemotherapie
Blutbild, groß
(umfasst: kleines Blutbild und maschinelles Differenzial-Blutbild, bei Auffälligkeiten zus. mikroskopisches Differenzial-Blutbild)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung bei RT.
Material: EDTA-Blut 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Änämie, Verlaufskontrolle eine Fe-Substitution, Entzündung, nach Chemotherapie
Differenzial-Blutbild, manuell
(Leukozytendifferenzierung, Beurteilung der Erythrozytenmorphologie)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden alt ist, Lagerung bei RT.
Material: EDTA-Blut 500 µl, Kapillarblutausstrich, nativ 500 µl
174
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Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Anämieabklärung, Abklärung einer Leukozytose / Leukopenie, bei V. a. Leukämie,
Sichelzellanämie, Thalassämie oder andere Hämoglobinopathien
Lymphozytendifferenzierung (s. S. 117)
siehe großer zellulärer Immunstatus
Hämoglobin
Material: EDTA-Blut 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Änämie, Verlaufskontrolle einer Fe- oder Vitamin B12-Substitution
Referenzbereich: w: 12,0-15,4, m: 13,5-17,2 g/dl
Methämoglobin
(F)
Haltbarkeit in Blut: etwa 1 Stunde bei RT, 48 Stunden bei Lagerung im Kühlschrank bei 2 –
15°C
Haltbarkeit in Hämolysat: in Kunststoffröhrchen bei -10°C ca. 4 Wochen haltbar
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte.
Material: EDTA-Blut 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: bei G-6-PDH-Mangel und unter evtl. Therapie mit folgenden Medikamenten (die
Liste erhebt keinen Anspruch auf Vollständigkeit): Acetanilid, Anilin, Arsen, Benzol-Derivate,
Chlorate, Chloroquin, Dapson, Dinitrophenol, Lidocain, Metoclopramid, Methylenblau, Nitrate
und Nitrite (inkl. Nitroglycerin), Nitrofuran, Nitroprussid, Paraquat, Phenacetin, Phenol, Phenytoin, Prilocain, Primaquin, Rauchgas-Inhalation, Sulfonamide, Trinitrotoluol.
CO-Hämoglobin
(F)
Während des Transportes vor direkter Sonneneinstrahlung schützen.
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte.
Material: EDTA-Blut 600 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Bei V. a. Belastung mit CO (Kohlenmonoxid)
Referenzbereich: Nichtraucher < 3%, Raucher < 10%, BAT: 5%
Anämieabklärung
Retikulozyten-Reproduktions-Index (RPI)
Bei Anforderung eines Blutbildes mit Retikulozyten wird der RPI automatisch berechnet.
Material: EDTA-Blut 500 µl
Methode: berechnet
Ansatz: täglich
Indikation: Bei sinkendem Hämatokrit nimmt die Erythropoetin-stimulierte Reaktivität der
Erythropoese zu. Bei hyperreaktiver Erythropoese ist die Reifungszeit der Retikulozyten im
Knochenmark proportional zur Absenkung des Hämatokrits verkürzt, während die Verweildauer im periphere Blut zunimmt, da die Retikulozyten das Knochenmark früher verlassen.
Diese Hämatokrit-abhängig verlängerte Verweildauer im Blut wird durch Berechnung des
RPI berücksichtigt.
Referenzbereich: Abhängig vom Grad der Anämie Ratio
Blutbild, groß (s. S. 174)
(umfasst: kleines Blutbild und Differenzial-Blutbild)
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175
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Retikulozyten
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte, Lagerung bei RT.
Material: EDTA-Blut 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: V. a. verminderte oder gesteigerte Erythropoese
Referenzbereich: 30-100 Tsd./µl
Retikulozyten-Hb
mittlerer Hb-Gehalt der Retikulozyten
Das Retikulozyten-Hämoglobin reflektiert den Hb-Gehalt der jungen Erythrozyten.
An einem verminderten bzw. erhöhtem Ret-Hb lässt sich ein latenter Fe-, Vitamin B12oder Folatmangel früh erkennen.
Umgekehrt ist an der Normalisierung des Ret-Hb das Ansprechen auf die entsprechende
Substitution schon nach wenigen Tagen ersichtlich. Sowohl die Diagnose als auch das
Ansprechen der Therapie ist somit durch das Ret-Hb sehr viel früher möglich als über das
MCH, das den mittleren Hb-Gehalt aller Erythrozyten widerspiegelt.
Material: EDTA-Blut 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunden)
Indikation: Nachweis eines latenten Fe-Mangels bzw. eine Vitamin B12/Folsäuremangels
früher Nachweis des Ansprechens auf eine Fe-, Vitamin B12 oder Folsäure-Substititution
Referenzbereich: 28-35 pg
Price-Jones-Kurve
(Erythrozytenverteilungskurve)
Wurde inzwischen durch die von den Blutbildautomaten gemessene Erythrozytenverteilungsbreite (RDW) ersetzt, die mit jedem Blutbild mitgeliefert wird.
Material: EDTA-Blut 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Mikro-, Makro- oder Anisozytose, Sphärozytose
Referenzbereich: s. Befund
Osmotische Resistenz (der Erythrozyten)
Lithium-Heparinat-Blut
Material: Lithium-Heparinat-Blut 7,5 ml
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Hämolyse, V. a. Sphärozytose
Referenzbereich: s. Befund
EMA-Test (der Erythrozyten) bei V. a. Sphärozytose
Bei den meisten Formen einer hereditären Sphärozytose ist die Bindung des Fluoreszenzfarbstoffes EMA (Eosin-5-Maleimid) an die Erythrozytenmembran deutlich verringert. Die
Sensitivität des Tests beträgt 90 - 95%, die Spezifität 95 - 99%.
Material: EDTA-Blut 1 ml
Methode: Durchflusszytometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V.a. hereditäre Sphärozytose (Synonym: angeborene Kugelzellanämie).
Referenzbereich: >75 %
Glucose-6-PDH (im Erythrozyten)
Material: EDTA-Blut 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Favismus (G-6-PDH-Mangel-bedingte Hämolyse)
Referenzbereich: 146-376 pU/Ery
176
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ferritin
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Eisenmangel, V. a. chronische Entzündung. V. a. Hämochromatose
Referenzbereich: M: 23-290 F: 23-260 µg/l
(F)
Ferritin-Index
gleichzeitige Bestimmung des löslichen Transferrin-Rezeptors und CRP erforderlich
Material: Serum 1 ml
Methode: berechnet
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zusatztest zur Diagnose eines Eisenmangels im Rahmen einer Anämie im Rahmen chronischer Erkrankungen oder bei chronischer Entzündung.
Die Diagnostik des funktionellen Eisenmangels ist bei inflammatorischen Zuständen und
der Anämie chronischer Erkrankungen schwierig, weil Ferritin und die Transferrinsättigung
durch die Akute-Phase-Reaktion beeinflusst werden. Der Quotient aus dem sTfR-Wert und
dem Logarithmus des Ferritinwertes (sTfR/log Ferritin), auch als Ferritinindex bezeichnet,
hat sich demgegenüber als ein brauchbarer Indikator der Eisenversorgung der Erythropoese erwiesen.
Bestimmt man zusätzlich zum Ferritin-Index noch den Hämoglobingehalt der Retikulozyten, können anhand der Lage des Datenpunktes im Diagramm das Stadium des Eisenstoffwechsels identifiziert werden.
Referenzbereich: >1,5 (bei CRP-Werten <5 mg/l); >0,8 (bei CRP >5 mg/l)
Transferrin
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Diagnostik und Therapiekontrolle von Eisenmangel und Eisenüberladung
Referenzbereich: 1,74-3,48 g/l
Transferrinsättigung
Material: Serum 1 ml
Methode: berechnet
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: weiterführende Diagnostik und Therapiekontrolle von Eisenmangel und Eisenüberladung
Referenzbereich: 6-45 %
Eisenbindungskapazität (total)
Material: Serum 1 ml
Methode: berechnet
Ansatz: täglich
Indikation: V.a. Eisenresorptionsstörung oder Eisenüberladung
Referenzbereich: 259-388 µg/dl
Vitamin B12 (s. S. 193)
Folsäure (s. S. 194)
Erythropoetin (s. S. 159)
Haptoglobin
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: V. a. intravasale Hämolyse
Referenzbereich: siehe Befundbericht g/dl
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
177
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Hb-Elektrophorese
(HbA2, HbF, HbS, HbC, HbE u.a.)
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte
Material: EDTA-Blut 1 ml
Methode: IEF und HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Hämoglobinopathie oder Thalassämie
Referenzbereich: s. Befund
Sichelzelltest
Zum Nachweis von HbS sollte zusätzlich eine Hb-Elektrophorese durchgeführt werden.
EDTA-Blut, das nicht älter als 24 Stunden sein sollte.
Material: EDTA-Blut 500 µl
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. HbS-Anlage oder HbS-Krankheit
Referenzbereich: s. Befund
PNH-Diagnostik (CD55, CD59) (s. S. 118)
Ham-Test (Säure-Serumtest) s. PNH-Diagnostik (s. S. 118)
Freies Hämoglobin
Aus EDTA-Plasma, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen getrennt
wurde oder aus Serum, das sofort nach Durchgerinnen abzentrifugiert und von den Zellen
getrennt wurde.
Material: Serum 1 ml, Heparinplasma 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer intravasalen Hämolyse (s. auch Haptoglobin), auch i. R. der QK
bei Eigenblutspenden
Referenzbereich: <2 mg/dl
Direkter Antiglobulintest (direkter Coombstest) (s. S. 179)
Zellulärer Immunstatus (s. S. 117)
Blutgruppenserologie
Blutgruppe, Antikörpersuchtest
Die Blutgruppenbestimmung umfasst die AB0-Blutgruppe sowie Antigen D (Rh-Faktor), in
Abhängigkeit von der Fragestellung auch die Rh-Formel, Antigen K und weitere Blutgruppenmerkmale.
Bei auffälligem Antikörpersuchtest erfolgt die Antikörperdifferenzierung, ggf. auch die Titerbestimmung.
Gemäß Richtlinien Hämotherapie ist für blutgruppenserologische Untersuchungen ein gesondertes Probenröhrchen abzunehmen. Das Probenröhrchen muss mit Name, Vorname und
Geburtsdatum beschriftet sein (alternativ Barcodenummer zulässig).
Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut (dann auch für Folgeuntersuchungen wie Antikörperdifferenzierung ausreichend). Die Einsendung geringerer Probenvolumina (Kinder, schlechte Venenverhältnisse) ist möglich, bei auffälligen Befunden kann dann jedoch gelegentlich die Nachforderung einer neuen Probe erforderlich werden. Im Einzelfall ist auch die Einsendung von Vollblut
möglich (Serumröhrchen, immer jedoch einschließlich Blutkuchen).
Material: EDTA-Blut 7,5 ml
Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl.
Ansatz: täglich
Indikation: Mutterschaftsvorsorge.
178
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
weak D (PCR) (s. S. 115)
Direkter Antiglobulintest (DAT, syn. direkter Coombstest DCT)
Bei positivem direktem Antiglobulintest erfolgt die weitere Abklärung mittels monospezifischem
direkten Antiglobulintest sowie bedarfsweise Antikörperelution und Antikörperdifferenzierung.
Bevorzugt 7,5 ml EDTA-Blut (dann auch für Folgeuntersuchungen wie Antikörperdifferenzierung und Elution ausreichend). Bei Kindern reichen 500 µl EDTA-Blut in der Regel aus. Bei V.
a. medikamenteninduzierte Autoimmunhämolyse bitte Rücksprache halten (zusätzlich 7,5 ml
Vollblut, 7,5 ml Urin sowie Probe des Medikaments erforderlich).
Material: EDTA-Blut 7,5 ml
Methode: Gel-Zentrifug. und Aggl.
Ansatz: täglich
Indikation: Morbus haemolyticus neonatorum, hämolytische Anämie, V. a. Wärmeautoantikörper.
Wärmeautoantikörper (s. S. 179)
Bitte Antikörpersuchtest und direkten Antiglobulintest (direkten Coombstest) anfordern. Material: 7,5 ml EDTA-Blut.
Kälteagglutinine
Die Untersuchung ist nicht akkreditierbar.
Bei positivem Kälteautoantikörper-Screening wird eine Kälteautoantikörper-Differenzierung
zur Bestimmung von Spezifität, Titer und Temperaturamplitude angeschlossen.
Das EDTA-Blut muss nicht warm gehalten werden.
Material: EDTA-Blut 7,5 ml
Methode: Agglutination
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Raynaud-Phänomen/Akrozyanose
Referenzbereich: <1:32 Titer
Heparin-induzierte Thrombozytopenie Typ II (HIT II)
Nachweis von Antikörpern gegen PF4/Heparin. Initialer Test per PaGIA (DiaMed), bedarfsweise Bestätigung mittels HIPA-Test (letzterer als Fremdleistung).
Angaben zu Heparintherapie, Verlauf der Thrombozytenzahl und thromboembolischen Komplikationen in Form des sog. 4T-Scores wünschenswert, z. B. über das Formular zur HIT II
auf unserer Website unter "Anforderungsscheine" (alternativ über unsere Versandabteilung
erhältlich).
Material: Serum 7,5 ml
Methode: PaGIA
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Thrombozytenabfall unter Heparintherapie.
Thrombozyten-AAK (s. S. 136)
Ham-Test (Säure-Serumtest) s. PNH-Diagnostik (s. S. 118)
heute durch die Bestimmung von CD55 und CD59 ersetzt.
Fetale Erythrozyten im mütterlichen Blut (s. S. 118)
Bei V.a. feto-maternale Transfusion in der Schwangerschaft.
Kardiale Marker
CK (Creatinkinase) gesamt
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
179
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Indikation: V. a. Muskelerkrankung oder Herzmuskelschaden
Referenzbereich: M: <200 F: <180 U/l
CK-Isoenzyme
(F)
Material: Serum 2 ml
Methode: ELPHO
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer CK-Erhöhung
Referenzbereich: s. Befundbericht IU/l
CK-MB (herzspezifisch)
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Myokardinfarkt, Abklärung einer CK-Erhöhung
Referenzbereich: <25 U/l
CRP, high sensitive (s. S. 121)
GOT
Homocystein
LDH (s. S. 185)
Myoglobin (s. S. 186)
nt-pro-BNP
Material: Serum 300 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Ausschluss bzw. Verlaufskontrolle Herzinsuffizienz.
DD pulmonale vs. kardiale Dyspneu
Referenzbereich: s. Befund ng/l
Troponin T
hochsensitiver Test
Material: Serum 300 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden)
Indikation: V. a. akuten Myokardinfarkt
Referenzbereich: <0,03 µg/l
Klinische Chemie
ACE (Angiotensin converting enzyme)
Abnahme unter ACE-Hemmertherapie nicht sinnvoll
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Granulomatöse Erkrankungen der Lunge (z. B. Sarkoidose)
Referenzbereich: 20-70 U/l
alpha-1-Antitrypsin (alpha-1-Protease-Inhibitor)
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
180
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Indikation: V. a. alpha-1-Antitrypsin-Mangel
Referenzbereich: 1,0-3,2 g/l
ALT (GPT) (s. S. 184)
Aluminium im Serum
(F)
Abnahme in Spezialröhrchen (Neutralmonovette)
Material: Serum 2 ml
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Monitoring einer Therapie mit Phosphatbindern bei Hämodialyse, V. a. Intoxikation
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Aminosäuren i. Urin (s. S. 209)
Aminosäuren im Serum
(F)
Serum sofort nach Gewinnung einfrieren
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diagnostik von Stoffwechselerkrankungen mit Störungen im Aminosäurestoffwechsel
Referenzbereich: s. Befund
Ammoniak im Plasma
(F)
Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Leberinsuffizienz
Referenzbereich: 27-90 µg/dl
Amylase
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Pankreatitis, auch erhöht bei Parotitis
Referenzbereich: 28-100 U/l
Amylase-Isoenzyme
(F)
Material: Serum 2 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: Abklärung erhöhter Amylase-Werte, Ausschluss Makro-CK
Referenzbereich: s. Befund
Anti-Streptolysin O (s. S. 138)
Antihyaluronidase (s. S. 138)
Antistaphylolysin (s. S. 138)
AP (Alkalische Phosphatase)
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Gallenwegserkrankung, Abklärung Knochenstoffwechsel, Ausschluss osteo-
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
181
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
blastär wachsende Knochenmetastasen
Referenzbereich: Erwachsene M: 40-129; F: 35-104 U/l
AP (alkalische Phosphatase)-Isoenzyme
(F)
Material: Serum 1 ml
Methode: ELPHO
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung AP-Erhöhung
Referenzbereich: s. Befund
Apolipoprotein A1 (HDL-Protein)
(F)
Material: Serum 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung Arterioskleroserisiko
Referenzbereich: M: 1,0-2,0 F: 1,1-2,3 g/l
Apolipoprotein B (LDL-Protein)
(F)
Material: Serum 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung Arterioskleroserisiko
Referenzbereich: M: 0,55-1,65 F: 0,6-1,45 g/l
AST (GOT) (s. S. 184)
Bilirubin direkt
Probe bitte lichtgeschützt einsenden
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Abklärung einer Bilirubinerhöhung (intra-/prä-/posthepatisch)
Referenzbereich: <0,3 mg/dl
Bilirubin gesamt
Probe bitte lichtgeschützt einsenden
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: Abklärung Ikterus/Hyperbilirubinämie Hämolyse/Cholestase
Referenzbereich: Neugeborene und Säuglinge bis zum 14. Lebenstag: altersabhängiger
Normbereich (siehe Befund). Danach: <1,1 mg/dl
BSG (n. Westergreen) (s. S. 121)
Calcium im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Ausschluss Störung im Calciumstoffwechsel, Basisuntersuchung zusammen mit
Phosphat im Serum.
Referenzbereich: 2,2-2,6 mmol/l
Carnitin, frei im Serum
(F)
Material: Serum 500 µl
Methode: EIA
182
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: V. a. Myopathie
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Chlorid im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Störungen des Säure-Basen-Haushaltes oder der Natrium- und Wasser-Bilanz z.
B. bei chronischen Erbrechen
Referenzbereich: 98-107 mmol/l
Cholesterin
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. oder Verlaufskontrollen einer Fettstoffwechselstörung
Referenzbereich: Erwachsene <240, wünschenswert <200 mg/dl
Cholinesterase (CHE)
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Abklärung hepatische Funktion. Ausschluss CHE-Variante. Siehe hierzu auch unter
Dibucainzahl.
Referenzbereich: M: 5000-14000 F: 4000-14000 U/l
CK, gesamt (s. S. 179)
CK-MB (s. S. 180)
CRP (s. S. 121)
Cystatin C
von Muskelmasse unabhängiger Marker für die Nierenfunktion. Eine leichte Einschränkung der
Nierenfunktion wird zuverlässiger angezeigt als mittels Serum-Kreatinin, welches hier häufig
noch unauffällig ist.
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Niereninsuffizienz
Referenzbereich: Erwachsene <0,93 mg/l
Dibucainzahl (atypische CHE)
(F)
Material: Serum 2000 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Vorliegen einer atypischen CHE
Referenzbereich: s. Befund
Gallensäuren, gesamt
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum 1 ml
Methode: enzymatisch
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
183
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Indikation: Ausschluss Cholestase, Abklärung Pruritus
Referenzbereich: <10 µmol/l
gamma-GT
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Abklärung Leberschädigung jeglicher Art (toxisch, nutritiv, infektiös u. a.)
Referenzbereich: M: <60 F: <40 U/l
GLDH
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Weitergehende Abklärung Leberschädigung.
Referenzbereich: M: <6,4 F: <4,8 U/l
Glucose (s. S. 191)
GOT (AST)
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Hämolyse, Hepatopathie
Referenzbereich: M: <50 F: <35 U/l
GPT (ALT)
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Abklärung Leberschaden (infektiös, toxisch u. a.)
Referenzbereich: M: <50 F: <35 U/l
Harnsäure im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Hyperurikämie
Referenzbereich: M: <7,0 F: <5,7 mg/dl
Harnstoff im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Abklärung einer Niereninsuffizienz
Referenzbereich: 17-49 mg/dl
HbA1c (s. S. 191)
HBDH (alpha-HBDH)
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
184
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Abklärung erhöhte LDH-Werte, V. a. hämolyt. Anämie
Referenzbereich: 72-182 U/l
HDL-Cholesterin (enzymatisch)
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos
Referenzbereich: M: >35 F: >45 mg/dl
Kalium im Serum
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum 500 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Hypertonie, Herzrhythmusstörungen, Einnahme von Diuretika und Laxantien, Niereninsuffizienz, Durchfälle, Erbrechen, Störungen im Säure-Basen-Haushalt, Hypo- und Hyperaldosteronismus
Referenzbereich: 3,5-5,1 mmol/l
Kreatinin im Serum (enzymatisch oder Jaffé)
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Abklärung einer Niereninsuffizienz, Verlaufskontrolle
Referenzbereich: M: <1,2, F: <1,0 mg/dl
Kreatinin-Clearance (s. S. 211)
1 ml eines 24h-Sammelurins und 500 μl Serum des gleichen Tages. Zur Berechnung bitte
auch Körperlänge, Gewicht und Sammelmenge angeben.
Lactat im Plasma
Material: Natriumfluorid-Blut 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich
Indikation: Ausschluss Lactazidose
Referenzbereich: 0,5-2,2 mg/l
LDH (Lactat-Dehydrogenase)
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Hämolyse, Lymphome, allg. Maker des Zellzerfalls
Referenzbereich: <250 U/l
LDH-Isoenzyme
(F)
Probe bei Raumtemperatur lagern und verschicken, weder kühlen noch einfrieren!
Material: Serum 1 ml
Methode: ELPHO
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer unklaren LDH-Erhöhung
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
185
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Referenzbereich: s. Befund
LDL-Cholesterin
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos
Referenzbereich: <150, optimal <100 mg/dl
Lipase
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Pankreatitis
Referenzbereich: <60 U/l
Lipoprotein (a)
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung des kardiovaskulären Risikos
Referenzbereich: <30 mg/dl
Lipoprotein-Elektrophorese
Serum nicht einfrieren!
Material: Serum 2 ml
Methode: ELPHO
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Klassifikation von Fettstoffwechselstörungen nach Fredrickson
Magnesium im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Ausschluss Magnesium-Mangel, Monitoring einer Mg-Therapie
Referenzbereich: 0,66-1,07 mmol/l
Magnesium, intraerythrozytär
(F)
Material: EDTA-Blut 500 µl
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Ausschluss Magnesium-Mangel, Monitoring einer Mg-Therapie
Referenzbereich: 1,85 - 2,63 mmol/l
Makro-CK
(F)
wird im Rahmen der CK-Isoenzymbestimmung untersucht (s. dort)
Material: Serum 1 ml
Methode: ELPHO
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer unklaren CK-Erhöhung
Referenzbereich: s. Befund
Myoglobin im Serum
Material: Serum 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Ausschluss Rhabdomyolyse
186
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Referenzbereich: M: <76 F: <64 µg/l
Natrium im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Ausschluss Hypo-/Hypernatriämie
Referenzbereich: 130-145 mmol/l
Osmolalität im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Gefrierpunktosmometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Diabetes insipidus
Referenzbereich: 280-300 mosm/kg
Osmolalität im Urin (s. S. 211)
Pankreatische Elastase im Serum
(F)
Material: Serum 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Pankreatitis
Referenzbereich: <3,5 µg/l
Pankreatische Elastase im Stuhl (s. S. 214)
PCT (Procalcitonin) (s. S. 122)
Phosphat im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Abklärung des Knochenstoffwechsels, Niereninsuffizienz
Referenzbereich: 0,8-1,45 mmol/l
Pyruvat
(F)
Material: Natriumfluorid-Plasma 2 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Vitamin B1-Mangel, Leberinsuffizienz, Urämie
Referenzbereich: 3,6-5,9 mg/l
Synovialdiagnostik
bestehend aus mikroskopischer Untersuchung sowie LDH, Gesamteiweiß, Glucose, Laktat,
Harnsäure, AP, RF IgG
Bitte natives und in EDTA antikoaguliertes Punktat einsenden.
Material: Punktat 2+2 ml
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung eines Gelenkergusses
Referenzbereich: s. Befund
Triglyceride, gesamt
Normwerte gelten nur nach einer 12-stündigen Nahrungskarenz
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
187
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Indikation: Abklärung einer Fettstoffwechselstörung
Referenzbereich: <200 mg/dl
Troponin T (s. S. 180)
Xylose im Blut
(F)
Optimal: Natriumfluoridblut
Alternativ: Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt
danach vom Blutkuchen trennen.
Material: Natriumfluorid-Blut 2 ml, Serum 2 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: i. R. des D-Xylose-Belastungstestes
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Proteine / Transportproteine im Serum
Proteine im Urin siehe Urindiagnostik
Albumin im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Leberinsuffizienz, Nephropathie
Referenzbereich: 35-55 g/l
beta-2-Mikroglobulin (s. S. 196)
Bence-Jones Proteine (freie Leichtketten) (s. S. 209)
beta-Amyloid (1-42) im Liquor (s. S. 190)
Coeruloplasmin
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. M. Wilson
Referenzbereich: 0,17-0,60 g/l
Elektrophorese (Serum-Eiweiß-) (s. S. 189)
Gesamteiweiß im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: V. a. Nephropathie, Leberinsuffizienz
Referenzbereich: 64-83 g/l
Immunfixationselektrophorese im Serum
Material: Serum 1 ml
Methode: IFE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Gammopathie
Immunglobuline (s. S. 120)
Kappa-Leichtketten, frei, monoklonal im Serum
Material: Serum 1 ml
Methode: Nephelometrie
188
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verlaufskontrolle bei Multiplem Myelom bzw. einer einer Gammopathie
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Kryofibrinogen
Die Untersuchung ist nicht akkreditierbar.
Das Blut muss bei 37 °C abzentrifugiert und das Plasma noch bei 37 °C von den Zellen
getrennt werden!
Material: Citrat-Plasma 1 ml
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V.a. Paraproteinämie
Referenzbereich: negativ
Kryoglobuline
Die Untersuchung ist nicht akkreditierbar.
Das Blut muss bei 37 °C durchgerinnen und muss bei 37 °C abzentrifugiert und das Serum
noch bei 37 °C vom Blutkuchen getrennt werden!
Material: Serum 1 ml
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V.a. Paraproteinämie
Referenzbereich: negativ
Lambda-Leichtketten, frei, monoklonal im Serum
Material: Serum 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verlaufskontrolle bei Multiplem Myelom bzw. einer einer Gammopathie
Referenzbereich: s. Befund
Serumeiweiß-Elektrophorese
Material: Serum 200 µl
Methode: ELPHO
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Ausschluss und Verlaufskontrolle einer Gammopathie, Bei V.a. Hepatopathie, Dysproteinämien, Abklärung und Verlaufskontrolle entzündlicher Prozesse
Referenzbereich: s. Befund
SHBG (Sexualhormon-bindendes Globulin) (s. S. 165)
Tau-Protein im Liquor (s. S. 190)
Liquordiagnostik
Blut-Liquor-Schranke (nach Reiber)
Beurteilung der Blut-Liquor-Schranke und der intrathekalen Ig-Synthese nach Reiber (beinhalten Albumin, IgG, IgA und IgM jeweils im Serum und im Liquor). Der Befund wird im sog. Reiber-Schema dargestellt.
Benötigt wird ein Serum-Liquor-Paar, das zur gleichen Zeit abgenommen wurde.
Material: Liquor je 500 µl, Serum je 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Im Rahmen der Meningitis- und Enzephalitis-Diagnostik
Referenzbereich: s. Befund
Oligoklonale Banden im Liquor
Nachweis einer intrathekalen IgG-Synthese mittels isoelektrischer Fokussierung
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
189
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Benötigt wird ein Serum-Liquor-Paar, das zur gleichen Zeit abgenommen wurde.
Material: Liquor je 500 µl, Serum je 500 µl
Methode: IEF
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V.a. E. disseminata, Enzephalitis, Meningitis
Referenzbereich: negativ
Zellzahl im Liquor
Eine Differenzierung der Zellen im Liquor ist nur bis 2 Stunden nach Abnahme möglich. Danach
fällt die Anzahl der Granulozyten relevant ab.
Material: Liquor 500 µl
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 30 Minuten)
Indikation: V.a. Infektion des ZNS, bei hämatologischen Erkrankungen mit Befall des ZNS
Referenzbereich: <5 /µl
Eiweiß im Liquor
Material: Liquor 300 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V. a. Infektion des ZNS
Referenzbereich: 10-50 mg/dl
Glucose im Liquor
Material: Liquor 300 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V.a. Infektion des ZNS
Referenzbereich: 50-70 mg/dl
Lactat im Liquor
Material: Liquor 300 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Stunden, Eilprobe: 1 Stunde)
Indikation: V.a. Infektion des ZNS
Referenzbereich: <2,6 mmol/l
LDH im Liquor
Material: Liquor 300 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: V.a. Infektion des ZNS, bei hämatologischen Erkrankungen mit Befall des ZNS
beta-Amyloid (1-42)
(F)
Polypropylenröhrchen für Abnahme und Transport verwenden. Lagerung und Transport bei
2-8 °C. Für Lagerung länger als 1 Woche die Proben bei -20 °C einfrieren.
Material: Liquor 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: Abklärung eines neurodegenerativen Prozesses (z. B. M. Alzheimer)
Referenzbereich: >500 ng/l
Tau-Protein
(F)
Zur Abklärung Alzheimer-Demenz sollte die kombinierte Bestimmung mit dem beta-Amyloid
(1-42) im Liquor erfolgen.
190
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Polypropylenröhrchen für Abnahme und Transport verwenden. Lagerung und Versand gekühlt
bei 2-8°C; Für Lagerung länger als 1 Woche die Proben bei -20°C einfrieren.
Material: Liquor 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: Abklärung eines neurodegenerativen Prozesses (z. B. M. Alzheimer)
Referenzbereich: siehe Befund ng/l
Diabetes-Diagnostik
Glucose
Optimal: Glucoexact oder ähnliches mit Citrat gepuffertes Abnahmesystem (z. B. Terumo
Venosafe), alternativ Natriumfluoridblut (hier Abfall der Glucosekonzentration um 5-10% in den
ersten 4 Stunden).
Material: Glucoexact 500 µl, Natriumfluorid-Blut 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle eines Diabetes mellitus, V. a. Insulinom
Referenzbereich: nüchtern <100, Schwangere nüchtern <92 mg/dl
HbA1c-Fraktion
Material: EDTA-Blut 500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle eines D. mellitus
Referenzbereich: IFCC-Standard: 20-42 mmol/mol prozentual: 4,0-6,0 %
C-Peptid (s. S. 158)
Insulin (s. S. 160)
GAD-AAK (Glutamatdecarboxylase-AAK) (s. S. 127)
ICA (Inselzell-AAK) (s. S. 129)
IAA (Insulin-Autoantikörper) (s. S. 129)
Allergiediagnostik
ECP (eosinophiles kationisches Protein)
(F)
Vollblut nach exakt einer Stunde zentrifugieren und sofort danach vom Blutkuchen trennen.
Material: Serum 500 µl
Methode: RAST
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Atopische Dermatitis, Verlaufskontrolle des allergischen Asthma bronchiale
Referenzbereich: <13,3 µg/l
IgE im Serum, gesamt
Material: Serum 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Allergie, Verlaufskontrolle einer allergischen Erkrankung
Referenzbereich: altersabhängig, Erwachsene <100 kU/l
IgE, allergenspezifisch im Serum (RAST)
(Einzel-Allergene und Mischungen siehe RAST-Anforderungsbogen)
250 µl + je 50 µl pro weiterem Allergen
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
191
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Material: Serum mind. 250 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. allergische Diathese
Referenzbereich: negativ kU/l + Rastklassen
Mastzell-Tryptase
Der Tryptase-Spiegel korreliert gut mit der Histamin-Ausschüttung der Mastzellen und ist aufgrund der längeren Halbwertszeit und der höheren Stabilität der Histamin-Bestimmung im
Plasma vorzuziehen.
Blutentnahme 15-180 Minuten nach anaphylaktischer Reaktion, Serum nach 1 Stunde vom
Blutkuchen trennen und kühlen
Material: Serum 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Mastozytose, V. a. vermehrte Histaminausschüttung.
Referenzbereich: <11,4 µg/l
Zoeliakie-Diagnostik (s. S. 149)
(Gliadin-, Endomysium-, tTG-AK)
Vitamine & Spurenelemente
Eisen im Serum
Bestimmung von Ferritin aussagekräftiger!
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Im Rahmen des Eisenresorptionstests, V.a. Eisenmangelanämie (besser: Ferritin)
Referenzbereich: M: 59-158, F: 37-145 mg/dl
Löslicher Transferrin-Rezeptor
(F)
zusammen mit Ferritin ist die Berechnung des sog. "Ferritinindex" möglich. Dieser erlaubt eine
valide Aussage über die Eisenversorgung auch bei Vorliegen von Entzündungen oder Tumorerkrankungen.
Material: Serum 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung der Eisenversorgung
Referenzbereich: 0,8-1,8 mg/l
Jod im Spontanurin
(F)
Material: Spontanurin 10 ml
Ansatz: 1 x pro Woche
Indikation: V.a. Jodintoxikation bzw. Jodmangel
Referenzbereich: >150 µg/gKrea
Kupfer im Serum
Material: Serum 1 ml
Methode: AAS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verdacht auf M. Wilson, Kupfermangel bei eisenrefraktärer Anämie
Referenzbereich: Erwachsene M: 560-1100, F: 680-1700 µg/l
Kupfer im Urin
(F)
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml
192
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Methode: AAS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf M. Wilson
Referenzbereich: <60 µg/24h
Selen im Serum
Material: Serum 500 µl
Methode: AAS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Haarausfall, brüchige Nägel, Abwehrschwäche
Referenzbereich: 46-143 µg/l
Zink im Serum
Material: Serum 1 ml
Methode: AAS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Haarausfall, brüchige Nägel
Referenzbereich: 0,7-1,2 mg/l
Vitamin A (Retinol)
Verdacht auf Vitamin A-Mangel
Nur aus Serum bestimmbar, das 15 Minuten nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Lichtgeschützter Transport!
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: 0,2-1,2 mg/l
Vitamin B 1 (Thiamin)
Material: EDTA-Blut 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: bei unklaren neurologischen Symptomen wie Paresen, Neuritis, Areflexie
Referenzbereich: 28-85 µg/l
Vitamin B 2 (Riboflavin)
Material: EDTA-Blut 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abklärung bei Rhagaden, Pruritus
Referenzbereich: 136-370 µg/l
Vitamin B 6 (Pyridoxin)
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Haut- und Schleimhautentzündungen, Neuritis
Referenzbereich: 5-30 µg/l
Vitamin B 12 (Cobalamin)
Bei älteren Patienten korreliert Holo-Transcobalamin (HTC) besser mit den intrazellulären Vitamin B12-Spiegeln als der Serumspiegel von Vitamin B12.
Material: Serum 500 µl
Methode: ECL
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
193
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Makrozytose, V. a. perniziöse Anämie
Referenzbereich: 200-1000 ng/l
Holo-Transcobalamin
Bei Transcobalamin (TC) handelt es sich um das Vitamin-B12-Bindeprotein. Der Komplex aus
TC und Vitamin B12 wird als Holo-TC bezeichnet.
In Falle eines latenten Vitamin-B12-Mangels braucht der Körper die plasmatischen und intrazellulären Speicher auf. In dieser Phase ist Holo-TC der einzige auffällige Marker. Methylmalonsäure und Homocystein steigen erst bei manifestem Vitamin-B12-Mangel an.
Bei älteren Patienten korreliert HTC besser mit den intrazellulären Vitamin-B12-Spiegeln als
der Serumspiegel von Vitamin B12.
Material: Serum 500 µl
Methode: M-EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Makrozytose, V. a. perniziöse Anämie, Hyperhomocysteinämie, Frühmarker bei der
Diagnostik eines Vitamin-B12-Mangels, vor allem bei älteren Patienten dem Vitamin-B12-Serum-Spiegel überlegen.
Referenzbereich: >35 pmol/l
Folsäure
Vitamin B 9
Material: Serum, gefroren 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Indikation: Makrozytose, V. a. perniziöse Anämie
Referenzbereich: >4,5 µg/l
Vitamin C
(F)
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugiert, von den Zellen getrennt und in einem SPEZIALRÖHRCHEN tiefgefroren wurde. Der Versand muss tiefgefroren (ca. -20°C) und lichtgeschützt erfolgen. Haltbarkeit bei Raumtemperatur
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 2-20 mg/l
25-OH-Vitamin D
Material: Serum 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Ausschluss eines Vitamin D-Mangels
Referenzbereich: 20-50 µg/l
1,25(OH)2-Vitamin D
Material: Serum 1,5 ml
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Beurteilung der Vitamin-D-Versorgung bei höhergradiger Niereninsuffizienz sowie
Therapiekontrolle unter Behandlung mit 1,25-Vitamin D oder 1-alpha-Präparaten
Referenzbereich: bis 20 Jahre: 35 - 90; 21 - 50 Jahre: 35 - 80, > 50 Jahre: 30 - 70 ng/l
Vitamin E (alpha-Tocopherol)
Nur aus Serum bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert und von den Zellen
getrennt wurde.
194
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Lichtgeschützter Transport!
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: 4-18 mg/l
Vitamin H (Biotin)
(F)
Material: Serum 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Haarausfall
Referenzbereich: >100 ng/l
Vitamin K im Serum (Phyllochinone)
(F)
Serum bitte lichtgeschützt und tiefgefroren einsenden, Blutentnahme nüchtern
Material: Serum, gefroren 4 ml
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Knochenstoffwechsel
beta-Crosslaps (CTx) im Plasma
(F)
Wegen der ausgeprägten Tagesrhythmik sollte die Abnahme morgens nüchtern vor 08:15h
erfolgen. Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von
den Zellen getrennt, und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 3 x pro Woche
Indikation: V. a. vermehrten Knochenabbau, Abklärung einer Osteoporose
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Ostase (knochenspezifische AP, BAP)
(F)
Marker der Osteoblasten-Aktivität
Material: Serum 1 ml
Methode: IRMA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer Osteoporose
Referenzbereich: M: 7,5-26 F: 6-23 µg/l
PTH, intakt (Parathormon, intakt) (s. S. 162)
Pyridinoline im Urin
(F)
Crosslinks, Knochenabbau-Marker
optimal: Bestimmung aus dem 1. Morgenurin
Material: Urin 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Früherkennung eines vermehrten Knochenabbaus, insbesondere bei Frauen 1-3
Jahre nach der Menopause.
Referenzbereich: s. Befund
TRAP-5b
(F)
Das Serum muss innerhalb von 2 Std. nach Blutentnahme vom Blutkuchen abgetrennt und
tiefgefroren werden.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
195
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Beurteilung des Knochenabbaus/-umbaus bei Dialysepatienten
Referenzbereich: s. Befund
1,25(OH)2-Vitamin D (s. S. 194)
25-OH-Vitamin D (s. S. 194)
Tumormarker
alpha-Fetoprotein (AFP)
Keimzelltumoren, hepatozelluläres Karzinom
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: <7,5 kU/l
BAP (bone specific AP) siehe Ostase (s. S. 195)
V. a. Knochenmetastasen
beta-2-Mikroglobulin im Serum
Plasmozytom und andere Lymphome
Material: Serum 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Verlaufskontrolle von Plasmozytomen
Referenzbereich: bis 39 Jahre: < 2, bis 59 Jahre: < 2,4, darüber < 3,0 mg/l
beta-hCG (humanes Chorion-Gonadotropin)
Keimzelltumoren, Chorionkarzinom
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: <10 U/l
CA 125
Ovar
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: <38 kU/l
CA 15-3
Mamma
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: <25 kU/l
CA 19-9
Pankreas, Tumoren des Gastro-Intestinaltraktes
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
196
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Referenzbereich: <32 kU/l
CA 72-4
mucinöses Ovarial-Karzinom, Magen-Karzinom
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <6,9 kU/l
CEA (Carcino-embryonales Antigen)
Tumoren des Gastro-Intestinaltraktes, der Lunge, allgemeiner Proliferationsmarker
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: <5 µg/l
Chromogranin A (CGA)
neuroendokrine Zellen, bei V. a. Phäochromocytom
Material: Serum 500 µl
Methode: CLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <100 µg/l
CYFRA 21-1
Plattenepithelien, Lunge
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <3,3 µg/l
Human Placental Alkaline Phosphatase (hPLAP)
(F)
Keimzelltumoren, insb. Seminome
Material: Serum 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <100 mU/l
Inhibin A (s. S. 160)
Granulosazell-Tumor (Ovar)
Inhibin B (s. S. 160)
Granulosazell-Tumor (Ovar)
Knochenspez. alk. Phosphatase (siehe Ostase) (s. S. 195)
bei V. a. osteoblastär wachsende Knochenmetastasen
NMP 22 (Nukleäres Matrix-Protein 22)
(F)
Harnblase
9 ml Spontanurin (8-12 h), der sofort nach dem Gewinnen in ein Gefäß mit speziellem Stabilisator gegeben wird (anzufordern unter 0711 / 6357-104).
Material: Urin, stabilisiert 9 ml
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <10 kU/l
NSE (Neuronspezifische Enolase)
kleinzelliges Bronchial-Ca
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
197
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Vollblut sofort nach dem Durchgerinnen abzentrifugieren und das Serum direkt danach vom
Blutkuchen trennen.
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <13 µg/l
Ostase (s. S. 195)
V. a. Knochenmetastasen
Prostataphosphatase (PAP)
Ersetzt durch PSA, freies PSA
Die Bestimmung wurde eingestellt, da sie neben der Bestimmung von PSA und freiem PSA
keine Bedeutung mehr hat!
PSA (Prostata-spezifisches Antigen)
Prostata
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden)
Referenzbereich: altersabhängige Normwerte, s. Befund µg/l
PSA, frei
Prostata
Material: Serum 500 µl
Methode: ECLIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: beurteilt wird lediglich der Quotient (fPSA/PSA)
PTHrP (Parathormon-related Protein)
(F)
Paraneoplastische Hypercalcämie
Nur aus EDTA-Plasma bestimmbar, das sofort nach Abnahme abzentrifugiert, von den Zellen
getrennt und tiefgefroren wurde.
Material: EDTA-Plasma, gefroren 1 ml
Methode: ILMA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: <1,3 pmol/l
S-100-Protein
(F)
malignes Melanom
Material: Serum, gefroren 800 µl, Liquor, gefroren 800 µl
Methode: ILMA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: Serum: <0,11 Liquor: <1,0 µg/l
SCC
Plattenepithel (Lunge, Zervix, HNO)
Material: Serum 500 µl
Methode: MEIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2,5 µg/l
TPA (Tissue Polypeptide Antigen)
(F)
allgemeiner Proliferationsmarker
Material: Serum 500 µl
Methode: ILMA
198
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: <95 U/l
Medikamente
Amikacin
(F)
Bestimmung des Bergspiegels ca. 5-30 Minuten nach Beendigung der Infusion bzw. ca. 45-75
Minuten nach i.m.-Injektion.
Material: Serum, gefroren 500 µl, EDTA-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: LCMSMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Monitoring der Amikacin-Therapie
Referenzbereich: < 40 mg/l (nach 0,5h) mg/l
Amiodaron
Blutentnahme-Zeitpunkt: 5 - 7 Stunden nach Einnahme (Spitzenspiegel)
Eliminationshalbwertszeit: 25-100 Tage
Material: Serum 500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 0,5-2,5 mg/l
Amitriptylin
(F)
Bestimmt wird die Summe aus Amitriptylin und dem Metaboliten Nortriptylin (aktiver Metabolit).
Die Eliminationshalbwertszeit beträgt für Amitriptylin ca. 31-45 Stunden und für Nortriptylin ca.
18-56 Stunden.
Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe.
Bitte beachten Sie, dass bei Verwendung von gelhaltigen Röhrchen die Resultate niedriger
ausfallen können. Wir empfehlen, das Blut 30 min nach Abnahme zu zentrifugieren, das Serum
abzutrennen und in ein zweites Neutral-Röhrchen zu überführen.
Material: Serum, gefroren 500 µl, EDTA-Plasma, gefroren 500 µl
Methode: LCMSMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: 80-200, toxisch 500 µg/l
Amphotericin B
(F)
Material: Serum, gefroren 500 µl, EDTA-Plasma, gefroren 500 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: Bergspiegel: 1,5 - 2,0; toxisch: > 5 mg/l
Aripiprazol
Blutentnahme vor der nächsten Medikamentengabe (Talspiegel).
Die Verwendung von gelhaltigen Entnahmesystemen führt zu niedrigeren Messwerten im Vergleich zu Röhrchen ohne Gelzusatz. Bei der Verwendung von Gelröhrchen bitte das Blut binnen 30 min nach Abnahme zentrifugieren, das gewonnene Serum abtrennen und in ein zweites Neutral-Röhrchen überführen.
Bei Gabe von 5 mg/d 50 - 100 µg/l
Bei Gabe von 15 mg/d 150 - 250 µg/l
Bei Gabe von 30 mg/d 300 - 450 µg/l
Material: Serum 500 µl
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Bromazepam
Eliminationshalbwertszeit ca. 12 Std.
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
199
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Blutentnahme-Zeitpunkt: unmittelbar vor nächster Gabe
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: therapeutisch 50-200 ng/ml
Bromid im Serum
(F)
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 1000-1500 mg/l, bei schweren Epilepsien bis 2250 mg/l, physiologisch <10 mg/l, toxisch >2500 mg/l
Carbamazepin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 6-18 Stunden vor nächster Dosis, Talspiegel vor nächster Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 10-25 Stunden (Dauertherapie)
Der Metabolit Carbamazepin-10,11-Epoxid wird mitbestimmt.
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 4,0-12,0 mg/l
Ciclosporin A (monokl. AK)
(F)
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe. Spitzenspiegel 2 Std. +/- 15 Min nach
Einnahme. Eliminationshalbwertszeit: 6,3 Stunden; 10,7 (Nieren-Tx), 20,3 (Leber-Tx).
Material: EDTA-Blut 500 µl
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 4 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Clobazam
(F)
Eliminationshalbwertszeit: 10-50 Stunden, für die Metabolite bis 120 Stunden.
Material: Serum 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 100-400 µg/l
Clomipramin
(F)
Eliminationshalbwertszeit: 19-37 Stunden
Blutentnahme: vor nächster Medikamenteneinnahme
Material: Serum 2 ml
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 90 - 250; toxisch ab 400 µg/l
Clonazepam
Eliminationshalbwertszeit: 20 - 40 Stunden
Blutentnahme: vor nächster Medikamenteneinnahme
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10-60 µg/l
Clozapin
Metabolit Norclozapin wird mitbestimmt.
200
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Regelmäßige Blutbildkontrollen erforderlich.
Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 6-26 Stunden
Material: Serum 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 50 - 700 µg/l
Diazepam
Eliminationshalbwertszeit: 48-60 Std.
Metabolit Nordiazepam wird mitbestimmt
Blutentnahme: vor nächster Medikamenteneinnahme
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 200 - 500 µg/l
Digitoxin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 8-24 Stunden nach letzter Einnahme
Eliminationshalbwertszeit: 6-8 Tage
Material: Serum 500 µl
Methode: ECL
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 13-25 µg/l
Digoxin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 8-24 Stunden nach letzter Einnahme
Eliminationshalbwertszeit: 1-2 Tage
Material: Serum 500 µl
Methode: ECL
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Stunden, Eilprobe: 2 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 0,6-1,2, toxisch ab 2,0 µg/l
Doxepin
(F)
Eliminationshalbwertszeit: 8 - 25 Std., Metabolit Nordoxepin: 34 - 68 Std.
Der Metabolit Nordoxepin wird mitbestimmt.
Material: Serum 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 50-250 µg/l
Ethosuximid
Eliminationshalbwertszeit: 30-60 Stunden (Erwachsene), 20-55 Stunden (Kinder)
Material: Serum 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 40 - 100 (steady state) mg/l
Felbamat
Eliminationshalbwertszeit: 22 Stunden
Material: Serum 300 µl
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10-100 mg/l
FK 506 siehe Tacrolimus (s. S. 206)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
201
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Gabapentin
Eliminationshalbwertszeit: 6 Stunden
Material: Serum 500 µl
Methode: GC/MS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch >2,0 mg/l
Ganciclovir
Bestimmung von Tal- und Spitzenspiegeln empfohlen
Blutentnahme-Zeitpunkt für Talspiegel (i.v., oral): vor nächster Gabe
Blutentnahme-Zeitpunkt für Spitzenspiegel:
30-60 Min. nach Gabe von Ganciclovir (i.v.)
2-3 Stunden nach Gabe von Ganciclovir (oral)
3 Stunden nach Gabe von Valganciclovir (oral)
Eliminationshalbwertszeit: 3 Stunden (i.v.)
Material: EDTA-Plasma 200 µl, Serum 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 6 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund mg/l
(F)
Gentamicin
Bestimmung von Tal- und Spitzenspiegeln empfohlen
Blutentnahme-Zeitpunkt für Talspiegel: vor nächster Gabe
Blutentnahme-Zeitpunkt für Spitzenspiegel:
30-60 min nach Infusionsende, 60 min nach Injektion (i.m.).
Eliminationshalbwertszeit: 2,5 Stunden (Neugeborene ca. 4 Stunden)
Material: Serum 500 µl
Methode: FPIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Haloperidol
Material: Serum 500 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: 1-10 µg/l
Imipramin
(F)
Der Metabolit Desipramin wird mitbestimmt.
Eliminationshalbwertszeit: 6-20 Stunden
Material: Serum 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 150-250, toxisch ab 400 µg/l
Isoniazid
(F)
Material: Serum 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 1-8 mg/l
Itraconazol
(F)
Material: Serum 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
202
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Referenzbereich: therapeutisch 0,4-2,0 mg/l
Lacosamid
Eliminationshalbwertzeit 11-15 Stunden
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 5-10 mg/l
Lamotrigin
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe
Eliminationshalbwertszeit: 25 Stunden (15-35 Stunden)
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Levetiracetam
Blutentnahme Zeitpunkt: vor nächster Gabe.
Eliminationshalbwertzeit: 6 - 9 Stunden
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch: 3-34 mg/l
Lithium
Blutentnahme-Zeitpunkt: 12 Stunden nach der letzten Einnahme
Eliminationshalbwertszeit: 14-33 Stunden
Material: Serum 500 µl
Methode: AAS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 4 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 0,3-1,3 mmol/l
Lorazepam
Eliminationshalbwertszeit: 14 Stunden
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 20-250 µg/l
Mesuximid (N-Desmethylmesuximid)
Blutentnahme-Zeitpunkt: 3-5 Stunden nach der letzten Einnahme
Bestimmung des Metaboliten Des-N-Methylmesuximid
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10 - 40 mg/l
Methylphenidat
(F)
Material: Serum 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 8-30 µg/l
Midazolam
Eliminationshalbwertszeit: 1,5-2,5 Stunden
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
203
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 80-250 µg/l
Olanzapin
Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe.
Methode: LCMS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: bei durchschnittlicher Gabe von 11 mg/Tag (2,5-40 mg) therapeutisch:
2,5-105 mg/l - im Mittel 25 mg/l
Oxazepam
Eliminationshalbwertszeit: 5-15 Stunden
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 200-1500 µg/l
Oxcarbazepin
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel unmittelbar vor der nächsten Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 8-10 Stunden.
Der Metabolit 10-OH-Carbazepin wird mitbestimmt..
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 0,5-3,0 mg/l
Paracetamol
(F)
Blutentnahme-Zeitpunkt: 1 Stunde nach letzter Gabe
Eliminationshalbwertszeit: 2 Stunden
Material: Serum 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 5,0-25,0 mg/l
Phenobarbital
Eliminationshalbwertszeit: 50-120 Stunden (Erwachsene), 40-70 Stunden (Kinder)
Material: Serum 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 15-40 mg/l
Phenytoin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 2-4 Stunden (i.v.). oral unerheblich, da lange Elimination.
Eliminationshalbwertszeit: 6-24 Stunden (Verlängerung bei höheren Plasmakonzentrationen!)
Material: Serum 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10-20 mg/l
Pregabalin
Eliminationshalbwertszeit: ca. 6 Std.
Material: Serum 1 ml
Methode: GC/MS
204
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 2-5 mg/l
Primidon
Blutentnahme-Zeitpunkt: steady state, vor nächster Gabe
Eliminationshalbwertszeit: 8 Stunden
Material: Serum 200 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 3 - 4 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 4 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 4,0-10,0 mg/l
Pyrimethamin
Eliminationshalbwertszeit: 80-100 Stunden
Material: Serum 500 µl, EDTA-Plasma 500 µl
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: zur Malariaprophylaxe 200-500, zur Toxoplasmosetherapie: 700-1300 µg/l
Quetiapin
Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe
Eliminationshalbwertszeit: 3-9 Stunden
Material: Serum 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 40-170 µg/l
Rifampicin
(F)
Nur aus Serum bestimmbar, das spätestens 2 Stunden nach Blutentnahme zentrifugiert, von
den Blutzellen getrennt und tiefgefroren wurde. Die Probe muss zu jeder Zeit lichtgeschützt
transportiert werden.
Material: Serum, gefroren 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 0,1-10 mg/l
Risperidon
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe
Eliminationshalbwertszeit: ca. 3 Stunden.
Der Metabolit 9-Hydroxy-Risperidon wird mitbestimmt.
Material: Serum 1 ml
Methode: LCMS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 2-30 ng/ml
Rufinamid
Eliminationshalbwertzeit: 5-11 Stunden
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: 5-45 mg/l
Sirolimus (Rapamycin)
(F)
Das EDTA-Vollblut (!) sollte nach Entnahme so bald wie möglich gekühlt oder tiefgefroren
werden. Lagerung und Versand lichtgeschützt.
Material: EDTA-Blut 2 ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
205
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: siehe Befundbericht µg/l
Sulfadiazin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 3-4 Stunden nach morgendlicher Gabe
Eliminationshalbwertszeit: 8-17 Stunden
Material: Serum 300 µl, EDTA-Plasma 300 µl
Methode: LCMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: Toxoplasmosetherapie: 50-150 mg/l
Sultiam
Eliminationshalbwertszeit: 3 - 30 Stunden
Anstieg des Phenytoinspiegels bei gleichzeitiger Gabe
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 6,0-10,0, toxisch: >20 mg/l
Tacrolimus, FK 506
(F)
Blutentnahme-Zeitpunkt : unmittelbar vor der nächsten Dosis.
Eliminationshalbwertszeit: 16 Stunden (Nieren-Tx), 12 Stunden (Leber-Tx)
Material: EDTA-Blut 500 µl
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 4 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund µg/l
Teicoplanin
(F)
Material: Serum 500 µl
Methode: FPIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Referenzbereich: therapeutisch 5-60 mg/l
Temazepam
Eliminationshalbwertszeit: 5 - 13 Std.
Material: Serum 200 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 200 - 800, toxisch ab 1000 ng/ml
Theophyllin
Blutentnahme-Zeitpunkt: 1 Stunde nach letzter Gabe (Retardpräparate 4 Stunden)
Eliminationshalbwertszeit: 3-12 Stunden (Erwachsene), 2-6 Stunden (Kinder)
Material: Serum 200 µl
Methode: CMIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 4 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 8,0-20,0 mg/l
Tobramycin
(F)
Blutentnahme-Zeitpunkt: Spitzenspiegel 30 Min nach Infususionsende (i.v.); Talspiegel vor
nächster Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 2 Stunden
Material: Serum 500 µl
Methode: FPIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 1 Tag)
206
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Topiramat
Die Serumkonzentration sollte im Zusammenhang mit der klinischen Symptomatik beurteilt
werden.
Blutentnahme-Zeitpunkt: vor nächster Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 20-30 Stunden nach letzter Einnahme
Material: Serum 200 µl
Methode: GC/MS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch: 2,4-8 mg/l
Trimipramin
(F)
Eliminationshalbwertszeit: 10-40 Stunden
Material: Serum 2 ml
Methode: HPLC
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 20-200, toxisch ab 500 µg/l
Valproinsäure
Blutentnahme-Zeitpunkt: Talspiegel vor nächster Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 14 Stunden
Material: Serum 300 µl
Methode: GC/MS
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag, Eilprobe: 4 Stunden)
Referenzbereich: therapeutisch 50-100 mg/l
Vancomycin
(F)
Blutentnahme-Zeitpunkt: Spitzenspiegel 1 Stunde nach Infusionsende, Talspiegel vor nächster
Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 4-10 Stunden (Erwachsene), 2-3 Stunden (Kinder), 6-10 Stunden
(Neugeborene).
Material: Serum 300 µl
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: s. Befund mg/l
Vigabatrin
Blutentnahme-Zeitpunkt : 2-4 Stunden nach Gabe.
Eliminationshalbwertszeit: 4 Stunden, auf das Doppelte verlängert bei wiederholter Gabe.
Material: Serum 1 ml
Methode: GC/MS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch bei Abnahme 2-4 Stunden nach Einnahme 3,0-25,0 mg/l
Zonisamid
Eliminationshalbwertszeit: ca. 60 Std.
Material: Serum
Methode: HPLC
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 15-40 mg/l
Zopiclon
Material: Serum 500 µl
Methode: LCMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: therapeutisch 10-60 mg/l
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
207
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Urindiagnostik (ohne Infektionserreger)
Ein Urinsediment sollte immer aus einem frischen Mittelstrahlurin durchgeführt werden.
Die Bestimmung der klinisch-chemischen Parameter sollte i. d. R. aus einem 24h-Sammelurin erfolgen. Bei der Bestimmung aus einem Spontanurin muss der Wert auf Gramm Kreatinin bezogen werden, Tagesschwankungen können so nicht adäquat berücksichtigt werden.
Mittelstrahlurin
Bitte weisen Sie die Patienten vor der Miktion auf die folgenden Vorgaben zur Gewinnung von
Mittelstrahlurin hin:
•
•
•
•
•
die letzte Blasenentleerung soll mindestens 3 Stunden zurück liegen
Vor Uringewinnung bitte Hände sorgfältig waschen
Geschlechtsteile sorgfältig reinigen
Harnstrahl für ca. 3 Sekunden (erste Portion) ins WC-Becken laufen lassen.
Danach etwa 10 - 20 ml in dem bereitgestellten Behälter/Becher auffangen, ohne den Harnstrahl zu unterbrechen
• Restlichen Urin in das WC-Becken entleeren
• Urinprobe kühl lagern (4-8°C).
24h-Sammelurin
Die Blase enthält zum Zeitpunkt der Miktion den kompletten Urin, den die Nieren seit der letzten Miktion produziert haben. Um zu gewährleisten, dass der Sammelurin einen Zeitraum von
genau 24h abdeckt, die Patienten vor dem Sammeln auf die folgenden Vorgaben zur Gewinnung von 24h-Sammelurin aufmerksam machen:
•
•
•
•
Zu Beginn der Sammelperiode ist die Blase in die Toilette zu entleeren
danach jede Miktion komplett in das Sammelgefäß geben
Falls ein Zusatz (z. B. HCl) gefordert wird, diesen direkt nach der 1. Miktion zusetzen
die letzte Miktion erfolgt genau 24h nach der letzten Miktion in die Toilette
beta-2-Mikroglobulin im Urin
Material: Urin 500 µl
Methode: Turbidimetrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Marker der tubulären Nierenschädigung, Alpha-1-Mikroglobulin ist für diese Diagnostik besser geeignet
Referenzbereich: < 0,3 mg/l
Proteindifferenzierung im Urin
anhand von alpha-1-Mikroglobulin (ggf. zus. Retinol-bindendes Protein RBP) zur Beurteilung
der tubulären Schädigung sowie Albumin, Transferrin und IgG zur Beurteilung der glomerulären Schädigung.
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: Urin 1,5 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung Proteinurie
Referenzbereich: s. Befund
Albumin im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml, Spontanurin 1 ml
208
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Zur Beurteilung einer glomerulären Schädigung
Referenzbereich: <30 mg/24h
alpha-1-Mikroglobulin im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml, Spontanurin 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: z. A. einer tubulären Schädigung
Referenzbereich: <15 mg/24h
alpha-2-Makroglobulin im Urin
(F)
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml, Urin 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: postrenale Schädigung
Referenzbereich: <10 mg/24h
Aminosäuren im Urin
(F)
Urin möglichst bald nach Gewinnung einfrieren
Material: Urin 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diagnostik von Stoffwechselerkrankungen mit Störungen im Aminosäurestoffwechsel
Referenzbereich: s. Befund
Bence-Jones-Proteine (freie Leichtketten) im Urin
Material: Urin 1000 µl
Methode: IFE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: weitere Abklärung einer Gammopathie
Referenzbereich: s. Befund
Calcium im Urin
Bitte Urin während oder nach der Sammlung mit HCl ansäuern (Verhinderung der Bildung von
Calcium-Kristallen). Bitte die Sammelmenge angeben. Alternativ ist ein Bezug auf das UrinKreatinin möglich.
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert, gefroren 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung Hypo- oder Hypercalcämie, Marker des allg. Knochenstoffwechsels, V.
a. Hypo- oder Hyperparathyreoidismus, Abklärung Nephrocalcinose, V. a. Hypercalciurie bei
Vitamin-D-Intoxikation oder granulomatösen Erkrankungen, Nieren-/Harnleiterstein-Abklärung
Referenzbereich: M: 2,0-8,0 F: 2,0-7,0 mmol/24h
Citrat im Urin
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Beurteilung der Lithogenität des Urins
Referenzbereich: >500 mg/24h
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
209
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Eisen im Urin
(F)
Material: Urin 10 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: <100 µg/l
Gesamteiweiß im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml, Urin 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Proteinurie, Verlaufskontrolle
Referenzbereich: <120 mg/24h
Glucose im Urin quantitativ
Material: Urin 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Glucosurie
Referenzbereich: <0,15 g/l
Harn-, Nierenstein-Analyse
(F)
Material: Harnstein, Nierenstein
Methode: Infrarot-Spektroskopie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: Abklärung einer Urolithiasis
Referenzbereich: s. Befund
Harnstoff im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 500 µl, Urin 500 µl
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Diagnose und Verlaufsbeurteilung einer Niereninsuffizienz
Referenzbereich: 17-34 g/24h
Harnsäure im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml, Urin 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Hyperuricosurie, Abklärung Nephro-/Urolithiasis
Referenzbereich: 0,5-0,8 g/24h
IgG im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml, Urin 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Zur Beurteilung einer glomerulären Schädigung
Referenzbereich: <9,0 mg/24h
Kalium im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 500 µl, Urin 500 µl
Methode: ISE
210
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung Hypokaliämie
Referenzbereich: 25-125 mmol/24h
Kochsalzausscheidung im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml, Urin 1 ml
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: 5,0-10,0 g/24h
Kreatinin-Clearance
1 ml eines 24 h-Sammelurins und 500 µl Serum des gleichen Tages. Zur Berechnung bitte
auch Körperlänge, Gewicht und Sammelmenge angeben.
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze, Serum
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Beurteilung der glomerulären Filtrationsrate
Referenzbereich: altersabhängige Normbereiche ml/min
Magnesium im Urin
(F)
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml, Urin 1 ml
Methode: Flammenphotometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung Hypomagnesiämie, V. a. vermehrter renaler Magnesiumverlust
Referenzbereich: 3,0-5,0 mmol/24h
Myoglobin im Urin
Material: Urin 500 µl
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden, Eilprobe: 3 Stunden)
Indikation: Abschätzen einer Rhabdomyolyse
Referenzbereich: <7 µg/l
Natrium im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 500 µl, Urin 500 µl
Methode: ISE
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abschätzung der renalen Natrium-/Kochsalzausscheidung
Referenzbereich: 40-220 mmol/24h
Osmolalität im Urin
Material: Urin 500 µl
Methode: Gefrierpunktosmometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Diabetes insipidus
Referenzbereich: 50-1200 mosm/kg
Oxalsäure im Urin
(F)
Bitte Sammelmenge angeben.
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert 5 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung einer Urolithiasis
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
211
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Referenzbereich: s. Befund mg/24h
Phosphat im Urin
Bitte Urin während der Sammlung mit 6-molarer HCl ansäuern (Verhinderung der Bildung von
Phosphat-Kristallen). Bitte die Sammelmenge angeben. Alternativ ist ein Bezug auf das UrinKreatinin möglich.
Material: 24 h-Sammelurin, angesäuert 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Abklärung Knochenstoffwechsel, V. a. renalen Phosphatverlust (Phosphatdiabetes)
Referenzbereich: 13-42 mmol/24h
Porphyrie-Diagnostik
(F)
Porphobilinogen
Bitte Sammelmenge angeben.
Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden.
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf Schwermetallvergiftung (z. B. Blei), akute und chronische hepatische Porphyrien
Referenzbereich: <2,0 mg/l
(F)
delta-Aminolävulinsäure
Bitte Sammelmenge angeben.
Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden.
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf Schwermetallvergiftung (z. B. Blei), akute hepatische Porphyrien
Referenzbereich: 0,1-4,5 mg/l
(F)
Porphyrine, gesamt
Bitte Sammelmenge angeben.
Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden.
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf Schwermetallvergiftung (z. B. Blei), akute und chronische hepatische Porphyrien, Arzneimittelschädigung der Leber
Referenzbereich: <100 mg/24h
(F)
Porphyrine, Differenzierung
Bitte Sammelmenge angeben.
Der Urin muss lichtgeschützt und kühl sowohl gesammelt als auch transportiert werden.
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml
Methode: HPLC
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Diffenzialdiagnostik bei erhöhter Gesamt-Porphyrin-Ausscheidung
Referenzbereich: s. Befund mg/24h
Pyridinoline im Urin (s. S. 195)
Retinol-bindendes Protein im Urin
(F)
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 500 µl, Urin 500 µl
212
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Z. A. einer tubulären Schädigung
Referenzbereich: <1,0 mg/24h
Transferrin im Urin
Bitte Sammelmenge angeben (alternativ Bezug auf Gramm Kreatinin möglich).
Material: 24 h-Sammelurin ohne Zusätze 1 ml, Urin 1 ml
Methode: Nephelometrie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Zur Beurteilung einer glomerulären Schädigung
Referenzbereich: <1,0 mg/24h
Urinsediment
der Urin sollte nicht älter als 12 Stunden sein
Material: frischer Urin 2 ml
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Suchtest bei V. a. Erkrankungen der ableitenden Harnwege sowie bei V. a. Nierenerkrankung
Referenzbereich: s. Befund
Urinstatus
bestehend aus Trockenchemie und Urin-Sediment
Material: Urin 2 ml
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Suchtest auf Erkrankungen der Nieren und der ableitenden Harnwege
Referenzbereich: s. Befund
Xylose im Urin
(F)
Material: 5 h-Sammelurin, ohne Zusätze 2 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: I. R. des D-Xylose-Belastungstests
Referenzbereich: s. Befund g/5h
Kreatinin im Urin
Material: Urin 1 ml
Methode: Photometrie
Ansatz: täglich
Indikation: Marker für Konzentration eines Spontanurins, Berechnung der Kreatinin-Clearance
Referenzbereich: 0,2-4,0 g/l
Stuhl-Diagnostik (ohne Infektionserreger)
Blut im Stuhl, immunologisch
hochempfindliche, quantitative Messung von Hämoglobin und/oder Hämoglobin-Haptoglobin-Komplex im Stuhl mit einem immunologischen Verfahren.
Bitte den Stuhl nur im Spezialröhrchen einsenden, welches eine Lösung enthält, mit welcher
das Hb und HbHp vor dem Abbau geschützt wird.
Diese Röhrchen können unter Tel. 0711/6357-104 bestellt werden.
Material: Stuhl im Spezialröhrchen
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Z. A. einer Blutungsquelle im Kolon, als Screeningmethode zur Krebsvorsorge.
Referenzbereich: < 2,0 µg/g Stuhl
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
213
Klinische Chemie / Hämatologie / Endokrinologie
Lactoferrin im Stuhl
Spezifisches Protein der Leukozyten. Bei entzündlichen Darmerkrankungen (M. Crohn, Colitis
ulcerosa) werden in der Regel erhöhte Werte im Stuhl gemessen. Die Konzentration im Stuhl
korreliert mit dem Grad der Entzündung.
Material: Stuhl 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle von entzündlichen Darmerkrankungen
Referenzbereich: < 7 µg/g Stuhl
Calprotectin im Stuhl
Calprotectin ist wie Lactoferrin ein Protein der Leukozyten. Bei entzündlichen Darmerkrankungen (M. Crohn, Colitis ulcerosa) werden in der Regel erhöhte Werte im Stuhl gemessen. Die
Konzentration im Stuhl korreliert mit dem Grad der Entzündung.
Material: Stuhl 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Diagnostik und Verlaufskontrolle von entzündlichen Darmerkrankungen
Referenzbereich: < 50 µg/g Stuhl
Pankreatische Elastase im Stuhl
Material: Stuhl 1 g
Methode: EIA
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. exokrine Pankreasinsuffizienz
Referenzbereich: >200 µg/g Stuhl
Fette im Stuhl (quantitativ)
(F)
Um Inhomogenitäten des Materials auszugleichen, wird empfohlen, drei an verschiedenen
Tagen gewonnene Stuhlproben einzusenden. (Proben zwischenzeitlich kühl lagern)
Material: Stuhl 1 g
Methode: Photometrie
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Malabsorption und Maldigestion
Referenzbereich: <2,0 %
214
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
Urinanalytik
Unser Labor ist nach DIN EN ISO/IEC 17025:2005 für die Untersuchung von Blut, Urin und
Haaren für forensische Zwecke mit Gutachten akkreditiert. Die Untersuchung der Urinproben
erfolgt nach den Vorgaben der CTU-Kriterien (Urteilsbildung in der medizinisch- psychologischen Fahreignungsdiagnostik: Beurteilungskriteren (3. Auflage 2013); W. Schubert, R. Mattern Kirschbaum Verlag.
Für die forensische Analytik muss eine eindeutige und vollständige Kennzeichnung von Probe
und Untersuchungsauftrag mit Namen, Vornamen, Geburtsdatum sowie Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme erfolgen.
Alkoholmarker (EtG) im Urin (Screening)
Ethylglucuronid (EtG) ist ein direkter Phase II-Metabolit des Alkoholabbaus aus der hepatischen Glucuronidierung mit anschließender renaler Elimination. Es schließt die diagnostische
Lücke zwischen Blutalkohol (aktueller Konsum) und CDT (ca. 3 Wochen). Die Nachweisbarkeit
beträgt - abhängig von der konsumierten Menge Alkohol - ca. 1,5 - 3 Tage und tritt frühestens
2 - 3,5 Stunden nach Erreichen der maximalen Blutalkoholkonzentration auf.
Material: Urin 2 ml
Methode: EIA
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Alkoholkonsum in den letzten 24 - 72 Std.
Referenzbereich: bei Alkoholabstinenz <0,1 mg/l
Amphetamine im Urin (Screening)
Zur Gruppe dieser Stimulantien gehören z.B. Amphetamin (Speed), Methamphetamin und
Ecstasy / XTC (3,4-Methylendioxy-N-methylamphetamin; MDMA) und andere Derivate, die
sich vom Phenylethylamin ableiten.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Barbiturate im Urin (Screening)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: < 100 ng/ml
Benzodiazepine im Urin (Screening)
Diazepam, Nordiazepam, Oxazerpam, Temazepam, Hydroxy-Alprazolam, Bromazepam,
Hydroxy-Bromazepam, 7-Aminoflunitrazepam, Lorazepam, Hydroxy-Midazolam, 7-Aminoclonazepam.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Buprenorphin im Urin (Screening)
Subutex®, Temgesic®
Der Metabolit Norbuprenorphin wird im Suchtest mit erfasst.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
215
Forensische Toxikologie
Cannabinoide im Urin (Screening)
Haschisch, Marihuana
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <5 ng/ml
Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Urin (Screening)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
LSD im Urin (Screening)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <0,2 ng/ml
Methadon im Urin (Screening)
Methadonmetabolit EDDP
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Opiate im Urin (Screening)
erfasst werden: Morphin, Codein, Dihydrocodein.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Opioide im Urin (Screening)
erfasst werden: Buprenorphin, Norbuprenorphin, Tilidin, Nortilidin, Oxycodon, Tramadol, ODesmethyltramadol, Fentanyl, Norfentanyl.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: s. Befund
Phencyclidin im Urin (Screening)
Syn. "Angels Dust"
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Bestätigungsanalyse für ein positives Drogenscreening im Urin
Für die Drogenanalytik fordert die Gesellschaft für Toxikologische und Forensische
Chemie (GTFCh) die Bestätigung eines immunologisch positiven Ergebnisses
(Suchtest) durch ein alternatives Untersuchungsverfahren nach
physikalisch-chemischem Reaktionsprinzip (Bestätigungsanalyse).
Diese Untersuchung wird aus derselben Probe durchgeführt. Positive Befunde,
die nicht durch eine andere unabhängige Untersuchung manifestiert wurden,
sind forensisch nicht verwertbar.
216
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme gekennzeichnet sein.
6-Mono-Acetylmorphin (Heroin-Metabolit)
Nachweis eines Heroinkonsums.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2 ng/ml
Alkoholmarker (EtG) im Urin
Bestätigungsanalyse bei positivem EtG-Screening oder als Methode der ersten Wahl, bei Personen, die beruflich Lösungsmitteln exponiert sind (z. B. Isopropanol)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Alkoholkonsum in den letzten 24 - 72 Std.
Referenzbereich: bei Alkoholabstinenz <0,1 mg/l
Amphetamine im Urin
Amphetamin, Metamphetamin, MDA, MDMA, MDEA, MBDB, PMA, PMMA, BDB, Ephedrin
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Barbiturate im Urin
(F)
Material: Urin 1 ml
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: s. Befund
Benzodiazepine im Urin
Diazepam, Nordiazepam, Oxazerpam, Temazepam, Alprazolam, Hydroxy-Alprazolam, Bromazepam, Hydroxy-Bromazepam, 7-Amino-Flunitrazepam, Lorazepam, Hydroxy-Midazolam,
Clonazepam, 7-Amino-Clonazepam, Midazolam, Hydroxy-Midazolam, Flunitrazepam, 7-Amino-Flunitrazepam, Flurazepam, Lorazepam.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Buprenorphin im Urin
Buprenorphin (Subutex®, Temgesic®) und Norbuprenorphin (aktiver Metabolit)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Cannabinoide im Urin
Haschisch, Marihuana
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Urin
Material: Urin 1 ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
217
Forensische Toxikologie
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
LSD im Urin
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: < 0,2 ng/ml
Methadon im Urin
Methadon und Methadon-Metabolit (EDDP)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <50 ng/ml
Opiate im Urin
Es werden Morphin, Codein und Dihydrocodein bestimmt. Opioide und 6-Monoacetylmorphin
werden in dieser Untersuchung nicht erfasst.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <25 ng/ml
Phencyclidin im Urin
Syn. "Angels Dust"
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Substanzen, die im Urin ausschließlich quantitativ (d.h. ohne Screening)
bestimmt werden.
Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme gekennzeichnet sein.
Cotinin (Nikotinmetabolit) im Urin
(F)
Material: Urin 5 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Referenzbereich: Nichtraucher <50, Passivraucher < 100 µg/l, Raucher > 250 µg/l µg/l
Fentanyl im Urin
Fentanyl und Norfentanyl (Metabolit)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche
Referenzbereich: < 1 ng/ml
Gammahydroxybutyrat (GHB) / K.o.-Tropfen
im Urin längstens 6 - 12 Stunden nach Aufnahme nachweisbar.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (, Eilprobe: 8 Stunden)
Referenzbereich: <6 mg/l
218
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
Hydrocodon im Urin
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: < 10 ng/ml
Hydromorphon im Urin
Nachweis einer Hydromorphon Einnahme.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: <10 ng/ml
Ketamin im Urin
Ketamin und Norketamin (Metabolit)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: < 1 ng/ml
Oxycodon im Urin
Nachweis einer Oxycodon Einnahme.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: < 10 ng/ml
Oxymorphon im Urin
Nachweis einer Oxymorphon-Einnahme (zugelassenes Medikament nur in USA).
Oxymorphon ist auch Metabolit von Oxycodon.
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: <10 ng/ml
Tilidin im Urin
Tilidin und Nortilidin (Metabolit)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Tramadol im Urin
Tramadol und N- bzw. O-Desmethyl-Tramadol (Metabolite)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Zolpidem im Urin
Zolpidem und Norzolpidem (Metabolit).
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <5 ng/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
219
Forensische Toxikologie
Zopiclon im Urin
(F)
Material: Urin 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: siehe Befund
Serumanalytik
Unser Labor ist nach DIN EN ISO/IEC 17025:2005 für die Untersuchung von Blut, Urin und
Haaren für forensische Zwecke mit Gutachten akkreditiert. Die Untersuchung der Urinproben
erfolgen nach den Vorgaben der CTU-Kriterien (Urteilsbildung in der medizinisch- psychologischen Fahreignungsdiagnostik: Beurteilungskriteren (3. Auflage 2013); W. Schubert, R. Mattern Kirschbaum Verlag.
Für die forensische Analytik muss eine eindeutige und vollständige Kennzeichnung von Probe
und Untersuchungsauftrag mit Namen, Vornamen, Geburtsdatum sowie Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme erfolgen.
Amphetamine im Serum (Screening)
Zur Gruppe dieser Stimulantien gehören z.B. Amphetamin (Speed), Methamphetamin, Ecstasy /XTC (3,4-Methylendioxy-N-methylamphetamin; MDMA) und andere Derivate, die sich vom
Phenylethylamin ableiten.
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Barbiturate im Serum (Screening)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: <100 ng/ml
Benzodiazepine im Serum (Screening)
Diazepam, Nordiazepam, Oxazerpam, Temazepam, Midazolam, OH-Midazolam, Alprazolam,
OH-Alprazolam, Bromazepam, Flunitrazpam, Norflunitrazepam, 7-Aminoflunitrazepam, Clonazepam, 7-Aminoclonazepam, Flurazepam, Nitrazepam, Lorazepam, Tetrazepam.
Material: Serum 1 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Cannabinoide im Serum (Screening)
Haschisch, Marihuana
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Kokain / Benzoylecgonin im Serum / NaF Blut (Screening)
Falls sich bei positivem Suchtest eine Bestätigungsanalyse aus forensischer
Fragestellung ergibt, muss initial bei der Blutentnahme auf die Verwendung
von Natriumfluorid-Röhrchen geachtet werden, da Kokain ohne Fixierung in vitro weiter zu
Benzoylecgonin verstoffwechselt wird.
Material: Natriumfluorid-Blut 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
220
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
Referenzbereich: <10 ng/ml
LSD im Serum (Screening)
Material: Serum 1000 µl
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <0,25 ng/ml
Methadon im Serum (Screening)
Der Methadon-Metabolit (EDDP) wird mitbestimmt.
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Opiate im Serum (Screening)
Screening auf Morphin, Codein, Dihydrocodein und 6-Monoacetylmorphin. Methadon wird mit
diesem Test nicht erfasst!
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Phencyclidin im Serum (Screening)
Syn. "Angels Dust"
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2,0 ng/ml
Bestätigungsanalyse für ein positives Drogenscreening im Serum
Für die Drogenanalytik fordert die Gesellschaft für Toxikologische und Forensische
Chemie (GTFCh) die Bestätigung eines immunologisch positiven Ergebnisses
(Suchtest) durch ein alternatives Untersuchungsverfahren nach
physikalisch-chemischem Reaktionsprinzip (Bestätigungsanalyse).
Diese Untersuchung wird aus derselben Probe durchgeführt. Positive Befunde,
die nicht durch eine andere unabhängige Untersuchung manifestiert wurden,
sind forensisch nicht verwertbar.
Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme gekennzeichnet sein.
6-Monoacetylmorphin
Nachweis eines Heroinkonsums
Material: Natriumfluorid-Blut 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: < 2
Amphetamine im Serum
Amphetamin, Metamphetamin, MDA, MDMA, MDEA, MBDB, PMA, PMMA, BDB, Ephedrin
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Barbiturate im Serum
(F)
Material: Serum 2 ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
221
Forensische Toxikologie
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: s. Befund
Benzodiazepine im Serum
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Cannabinoide im Serum
Haschisch, Marihuana
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
Kokain / Benzoylecgonin (Kokainmetabolit) im Serum
Kokain wird in vitro abgebaut. Bei der Blutentnahme ist auf die Verwendung
von Fluorid-enthaltenden Spezialröhrchen zu achten.
Material: Natriumfluorid-Blut 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2 Kokain; < 10 Benzoylecgonin ng/ml
LSD im Serum
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: < 0,2 ng/ml
Methadon im Serum
Methadon und Methadon-Metabolit (EDDP)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Opiate im Serum
Gemessen werden werden Morphin, Codein und Dihydrocodein. Opioide und 6-Monoacetylmorphin werden mit dieser Untersuchung nicht erfasst.
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Phencyclidin im Serum
Syn. "Angels Dust"
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <2,0 ng/ml
Substanzen, die im Serum ausschließlich quantitativ (d.h. ohne Screening)
bestimmt werden.
Untersuchungsauftrag und Probe müssen beide vollständig mit Namen, Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme gekennzeichnet sein.
222
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
Buprenorphin im Serum
Buprenorphin (Subutex®, Temgesic®) und Norbuprenorphin (aktiver Metabolit)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <1 ng/ml
CDT (Carbohydrate Deficient Transferrin)
CDT steigt an, wenn mehr als 60 g Ethanol täglich konsumiert werden.
Material: Serum 500 µl
Methode: HPLC
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: V. a. Alkoholabusus
Referenzbereich: <1,7%, Graubereich bis 2,5 %
Fentanyl im Serum
inkl. Norfentanyl (Metabolit)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: <1 ng/ml
Hydrocodon im Serum
inkl. Hydromorphon (Metabolit)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: < 10 ng/ml
Hydromorphon im Serum
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: bei Bedarf
Referenzbereich: < 10 ng/ml
Ketamin im Serum
Ketamin und Norketamin (Metabolit)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: < 1 ng/ml
Oxycodon im Serum
inkl. Oxymorphon (Metabolit)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: < 10 ng/ml
Oxymorphon im Serum
Nachweis einer Oxymorphon Einnahme (zugelassenes Medikament nur in USA). Oxymorphon
ist auch Metabolit von Oxycodon.
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: < 10 ng/ml
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
223
Forensische Toxikologie
Tilidin im Serum
Tilidin und Nortilidin (Metabolit)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Tramadol im Serum
Tramadol und N- bzw. O-Desmethyl-Tramadol (Metabolite)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <10 ng/ml
Zolpidem im Serum
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Referenzbereich: <5 ng/ml
Zopiclon im Serum
(F)
Material: Serum 2 ml
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: s. Befund
Haaranalytik
Unser Labor ist nach DIN EN ISO/IEC 17025:2005 für die Untersuchung von Blut, Urin und
Haaren für forensische Zwecke mit Gutachten akkreditiert. Die Untersuchung der Urinproben
erfolgen nach den Vorgaben der CTU-Kriterien (Urteilsbildung in der medizinisch- psychologischen Fahreignungsdiagnostik: Beurteilungskriteren (3. Auflage 2013); W. Schubert, R. Mattern Kirschbaum Verlag.
Für die forensische Analytik muss eine eindeutige und vollständige Kennzeichnung von Probe
und Untersuchungsauftrag mit Namen, Vornamen, Geburtsdatum sowie Datum und Uhrzeit
der Probenentnahme erfolgen.
Alkohol(metabolit) im Haar
Bestimmt wird Ethylglucuronid (Alkoholmetabolit) im Kopfhaar. Die Haarproben werden am
Hinterhauptshöcker (Probe und Rückstellprobe) als bleistiftdicker Strang entnommen.
Untersucht werden Haarabschnitte von max. 3 cm Länge, entsprechend einem Wachstumszeitraum von ca. 3 Monaten. Die Haare dürfen für die Untersuchung auf ETG weder gefärbt /
getönt noch gebleicht sein.
Material: Kopfhaar 100 mg
Methode: LCMSMS
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche
Referenzbereich: < 0,007 ng/mg
Betäubungsmittel im Haar
Die Untersuchung der Kopfhaare erfolgt auf die Substanzgruppen: Cannabinoide, Opiate,
Kokain, Amphetamine und Derivate, Methadon und Benzodiazepine.
Die Haarproben werden am Hinterhauptshöcker (Probe und Rückstellprobe) als bleistiftdicker
Strang entnommen. Untersucht werden Haarabschnitte von max. 6 cm Länge, entsprechend
einem Wachstumszeitraum von ca. 6 Monaten.
Material: Kopfhaar 100 mg
Methode: LCMSMS
224
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Forensische Toxikologie
Ansatz: 2 x pro Woche
Referenzbereich: siehe Befund
Opioide Analgetika im Haar
Die Untersuchung der Kopfhaare auf opioide Analgetika erfolgt auf die Substanzen: Buprenorphin, Tilidin, Oxycodon, Tramadol, Fentanyl und deren Metabolite. Die Haarproben werden am
Hinterhauptshöcker (Probe und Rückstellprobe) als bleistiftdicker Strang entnommen. Untersucht werden Haarabschnitte von max. 6 cm Länge, entsprechend einem Wachstumszeitraum
von ca. 6 Monaten.
Material: Kopfhaar 100 mg
Methode: LCMSMS
Ansatz: 1 x pro Woche
Referenzbereich: siehe Befund
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
225
226
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Allgemeine Bakteriologie
Untersuchungsdauer in der Bakteriologie
In der Regel ist nach Übernachtbebrütung ein Vorbefund (Erregernachweis) verfügbar. Der
Endbefund mit Erregeridentifizierung und Antibiogramm liegt i.d.R. spätestens 4 Tagen ab
Probeneingang vor. Bei Mischkulturen mit mehreren Erregern kann dieser Zeitraum um 1-2
Tage überschritten werden.
Bei einer Reihe von langsam wachsenden Erregern, bzw. bei Materialien, in denen mit solchen
Erregern gerechnet werden muss, sind längere Kultivierungszeiten erforderlich (Aktinomyzeten: 5-10 d; Dermatophyten: 21 d; Hefepilze: 2-6 d; Helicobacter pylori: 5-10 d; Legionellen:
5-10 d; Mycoplasma hominis/Ureaplasma species: 4-6 d; Erreger periprothetischer Infektionen: bis zu 14 d)
Mikrobiologische Diagnostik von ZNS-Infektionen
Liquorkultur
Die Untersuchung beinhaltet mikroskopische Präparate (Gram, Methylenblau).
Liquorprobe teilen (2/3 in BK-Flasche, bevorzugt BK-Flasche P-Pädiatrie oder aerobe BKFlasche) für Kultur;
1/3 in steriles Röhrchen mit Schraubverschluss für Mikroskopie).
Unverzüglicher Transport ins Labor; Abkühlung vermeiden.
Material: Liquor 2 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5 Tage)
Indikation: V. a. bakterielle Meningitis
Cryptococcus neoformans-Kultur
Die Untersuchung umfasst den mikroskopischen Direktnachweis (Tuschepräparat) und
eine Kultur auf Spezialmedium (Dauer: max 10 Tage).
Liquorprobe in sterilem Schraubgefäß unverzüglich ins Labor transportieren; parallel immer
Antigennachweis in Liquor und Serum durchführen!
Material: Liquor 2 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: V. a. Meningitis beim Immunsupprimierten
(F)
Cryptococcus neoformans-Antigen
Zusätzlich immer Kultur und Mikroskopie anfordern.
Liquorprobe in sterilem Schraubgefäß unverzüglich ins Labor transportieren.
Material: Liquor/Serum 1 ml
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Meningitis beim Immunsupprimierten
(F)
Cryptococcus-neoformans-DNA
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Liquor 1 ml, Biopsie nativ, Bronchialsekret 2 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Meningitis beim Immunsupprimierten
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
227
Mikrobiologie
Mikrobiologische Diagnostik bei Sepsis / Bakteriämie
Blutkultur
Die Untersuchung beinhaltet die Kultur in einem automatisierten System, sowie im positiven
Fall ein mikroskop. Präparat, die Erregeridentifizierung und die Empfindlichkeitsprüfung.
Die Flaschen werden 5 Tage bebrütet (Ausnahme: bei Endokarditis 14 Tage). Relevante
positive Befunde werden telefonisch mitgeteilt.
Punktionsstelle sorgfältig desinfizieren, Desinfektionslösung antrocknen lassen. Jeweils
5-10 ml Blut in je eine aerobe und eine anaerobe Flasche spritzen. Aerobe Flasche nicht
belüften! BK-Flaschen bei Raumtemperatur lagern und transportieren. Die Flaschen müssen innerhalb von 48 h im Labor eintreffen.
Material: Beimpfte Blutkulturflaschen 10 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5 Tage)
Indikation: V. a. Bakteriämie/Sepsis
Mikrobiologische Diagnostik von Respirationstraktinfektionen
Legionellen-Antigen im Urin
Die Untersuchung auf Legionellen-Ag im Urin ist neben dem NAT-Nachweis (z. B. PCR)
im Respirationstraktsekret die einzige Möglichkeit für eine schnelle Legionellendiagnostik.
Die Sensitivität des Ag-Nachweises beträgt ca 80-85% für Legionella pneumophila ST 1.
Andere Serotypen bzw. andere Legionellenspezies werden nicht zuverlässig nachgewiesen. Legionellen-Ag ist auch noch nach Therapiebeginn nachweisbar.
Lagerung gekühlt
Material: Urin 5 ml
Methode: Ag-EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Legionellose
Bronchialsekret
Die kulturelle Untersuchung umfasst schnell wachsende bakterielle Verursacher von Atemwegsinfektionen (z. B. Pneumokokken, Haemophilus, Pseudomonas, Enterobakteriazeen)
und Hefepilze. Nicht erfasst werden Legionellen, Chlamydien, Mykoplasmen, Mykobakterien, Pneumocystis jirovecii und Viren (s. jeweils spezielle Untersuchungen)
Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluss; Lagerung gekühlt
Material: Bronchialsekret
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V.a. Infektion des unteren Respirationstraktes
BAL-Flüssigkeit
Die kulturelle Untersuchung umfasst schnell wachsende bakterielle Verursacher von Atemwegsinfektionen (z. B. Pneumokokken, Haemophilus, Pseudomonas, Enterobakteriazeen, ggf. obligate Anaerobier) und Hefepilze. Die Erregerzahl wird in KBE/ml angegeben.
Gewünschte Untersuchung auf Mykobakterien, P. jirovecii (bei Immunsuppression), Viren,
Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila und Chlamydia pneumoniae bitte ausdrücklich vermerken. Diese Erreger werden vorwiegend mit NAT (z. B. PCR) nachgewiesen.
Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluss; Lagerung gekühlt
Material: Bronchiallavage 10 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Infektion des unteren Respirationstraktes
228
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Trachealsekret
Die kulturelle Untersuchung umfasst schnell wachsende bakterielle Verursacher von Atemwegsinfektionen (z. B. Pneumokokken, Haemophilus, Pseudomonas, Enterobakteriazeen) und Hefepilze. Die Erregerzahl wird semiquantitativ angegeben. Gewünschte Untersuchung auf Mykobakterien, Viren, Mycoplasma pneumoniae, Legionella pneumophila und
Chlamydia pneumoniae bitte ausdrücklich vermerken. Diese Erreger werden vorwiegend
mit NAT (z. B. PCR) nachgewiesen.
Versand in sterilem Gefäß mit Schraubverschluss; Lagerung gekühlt
Material: Trachealsekret
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Infektion des unteren Respirationstraktes bei mechanischer Ventilation
Sputum
Erfasst werden alle relevanten bakteriellen Atemwegsinfektionserreger mit Ausnahme von
obligaten Anaerobiern, Legionellen, Chlamydien, Tuberkuloseerregern. Sproßpilze und P.
jiroveci bitte gezielt anfordern.
Mundspülung mit Leitungswasser vor Expektoration; Versand in sterilem Gefäß mit
Schraubverschluss; Lagerung gekühlt
Material: Sputum
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Infektion des unteren Respirationstraktes
Sputum bei Cystischer Fibrose
Die kulturelle Untersuchung umfasst bakterielle Erreger von Atemwegsinfektionen bzw.
-Kolonisation (einschl. Pseudomonas spp., Burkholderia spp. und verschiedene Nonfermenter). Bei P. aeruginosa wird auch die Koloniemorphologie berücksichtigt und auf dem
Befund angegeben (z. B. Kapselbildner). Bei bakteriellen Erregern, die mit phänotypischen
Verfahren nicht sicher identifiziert werden können kann bei Kostenübernahme durch den
Auftraggeber eine genotypische Identifizierung in einem Speziallabor veranlasst werden.
Die Untersuchung beinhaltet eine Pilzkultur, insbes. zum Nachweis von Aspergillus spp.. Im
Standardansatz nicht erfasst werden obligate Anaerobier, Legionellen, Chlamydien, Mykoplasmen, Mykobakterien und P. jirovecii. Bitte ggf. gezielt anfordern.
Material: Sputum
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V.a. Infektion bzw. Kolonisation des Respirationstraktes bei Patienten mit Cystischer Fibrose
Pneumocystis jirovecii DNA (PCR) (s. S. 75)
Mikrobiologische Diagnostik von Haut-, Weichteil- und Wundinfektionen
Hautabstrich
Die Untersuchung umfasst nur die Kultur von aeroben Bakterien. Bei V. a. Hautsoor bitte
entsprechenden Vermerk auf dem Untersuchungsschein.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei V.a. Dermatomykose Hautschuppen
einsenden (in sterilem Röhrchen), bei Abstrichen ist die Sensitivität ungenügend.
Material: Abstrich
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Hautinfektion (z.B. Impetigo, infiz. Ekzem)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
229
Mikrobiologie
Wundabstrich/Intraoperativer Abstrich
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligater Anaerobiern.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); bei gasbildender Weichteilinfektion (V.
a. Gasbrand) bitte telefonische Ankündigung und Vermerk auf Untersuchungsschein.
Material: Wundabstrich
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Wundinfektion
Pustelabstrich
Erfasst werden grundsätzlich nur aerobe Bakterien.
Um Kontamination mit Hautflora zu vermeiden, empfiehlt sich bei geschlossenen Pusteln
folgendes Vorgehen:
1. Pusteloberfläche und umgebende Haut desinfizieren (Alkohol)
2. Nach Verdunsten des Alkohols Pustel punktieren
3. Punktat auf Abstrichtupfer geben
4. Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Pustulöse Hautinfektion
Abszessabstrich/-punktat
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligater Anaerobiern.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); bei Abszedierungen im Halsbereich auch
an einschmelzende Lymphadenitis durch Tuberkuloseerreger oder atypische Mykobakterien denken und möglichst Gewebeproben auf Mykobakterien im sterilen Röhrchen einsenden (DD bei Kindern: Katzenkratzkrankheit).
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abszess, Furunkel etc.
Mikrobiologische Diagnostik von Harnwegsinfektionen
Urin (nativ)
Die kulturelle Untersuchung erfasst auch Erreger, die mittels Urikult nicht oder nicht sicher
nachweisbar sind (Candida spp., Mycoplasmen/Ureaplasmen, uropathogene Corynebakterien, Anaerococcus). Bei negativem Ergebnis trotz Vorliegen einer Harnwegsinfektion
(sterile Leukozyturie) ggf. auch nativen Urin auf Mykobakterien einsenden.
Probe gekühlt und ohne Verzögerung ins Labor transportieren. Ggf. Transportröhrchen mit
Stabilisator verwenden.
Material: Urin 5 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Harnwegsinfektion
230
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Uricult
Die Untersuchung erfasst nur die schnell wachsenden häufig vorkommenden uropathogenen Erreger. Bei negativem Ergebnis trotz Vorliegen einer Harnwegsinfektion nativen Urin
einsenden.
Urikult ggf. über Nacht bei 35-37°C bebrüten und danach unverzüglich ins Labor senden.
Verfallsdatum des Urikult beachten und nach Anleitung beimpfen!
Material: Urikult
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Harnwegsinfektion
Mikrobiologische Diagnostik von Darminfektionen
Stuhluntersuchung Stufe 1
Untersuchung auf Salmonellen/Shigellen ("TPE")
Bei Verdacht auf infektiöse Enteritis ist eine Untersuchung ausschließlich auf Salmonellen/Shigellen ("TPE") nicht ausreichend, da seit Jahren Campylobacter der häufigste bakterielle Enteritiserreger in Deutschland ist. Die Untersuchung auf Campylobacter ist in den
Ansätzen "Stufe 2" und "Stufe 3" enthalten.
Material: Stuhl kirschgroß
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Salmonellenenteritis/Shigellenruhr
Stuhluntersuchung Stufe 2
Untersuchung auf Salmonellen/Shigellen/Campylobacter/Yersinien/S. aureus/Aeromonas;
enteropath. E.coli (EPEC) (nur bei Kindern < 3 J)
Material: Stuhl kirschgroß
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. infektiöse Enteritis
Stuhluntersuchung Stufe 3
Untersuchung auf Salmonellen/Shigellen/Campylobacter/Yersinien/S. aureus/Vibrio spp./
Aeromonas spp./Plesiomonas spp.; enteropath. E.coli (EPEC) (nur bei Kindern < 3 J)
Material: Stuhl kirschgroß
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. infektiöse Enteritis nach Auslandsaufenthalt
Stuhluntersuchung auf Clostridientoxine
Als Verursacher einer antibiotikaassozierten Diarrhoe kommt in erster Linie Clostridium-difficile-Toxin (A/B) in Frage. Um eine möglichst hohe Sensitivität zu erreichen wird entsprechend den nationalen und internationalen Empfehlungen eine mehrstufige Diagnostik
durchgeführt (Suchtest: GDH-EIA, Bestätigungstest: Toxin A/B-EIA, bei Diskrepanz ggf.
Toxingen-PCR)
Stuhlproben sollten innerhalb von 24 h im Labor eingehen, da Clostridientoxine instabil
sind; Lagerung gekühlt.
Material: Stuhl kirschgroß
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Antibiotika-assoziierte Diarrhoe (AAD); Diarrhoe während oder bis zu 4
Wochen nach antibiotischer Therapie
Referenzbereich: negativ
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
231
Mikrobiologie
Stuhluntersuchung auf EHEC
Die Untersuchung auf Toxine von enterohämorrhagischen E. coli (EHEC) wird routinemäßig bei mikrobiol. Stuhluntersuchungen von Kinder < 10 J. durchgeführt.
Lagerung gekühlt
Material: Stuhl erbsgroß
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. HUS; V. a. infektiöse Enteritis beim Kind (Cave: Bei HUS ist EHEC u. U.
nicht mehr im Stuhl nachweisbar. Ggf. kann eine Untersuchung auf EHEC-Toxin-Antikörper
im Serum veranlasst werden).
Referenzbereich: negativ
Serologie bei V. a. EHEC, HUS (s. S. 43)
Stuhluntersuchung auf Pilze
Die Untersuchung wird quantitativ durchgeführt (Befundmitteilung in KBE/g Stuhl)
Material: Stuhl erbsgroß
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Indikation: Chron. rezidiv. Candidavaginose. Abdominelle Beschwerden stellen i. d. R. keine Indikation dar.
Stuhluntersuchung auf Campylobacter-Antigen
Die Untersuchung auf Campylobacter-Antigen wird bei makroskopisch auffälligen Stuhlproben (insbes. bei Blut-/Schleimbeimengungen) oder auf gezielte Anforderung durchgeführt. Vorteil gegenüber der Kultur: schnelleres Ergebnis, keine Beeinflussung durch Transport; Nachteil: Nachweis nicht speziesspezifisch, sondern genussspezifisch (Campylobacter species); keine Empfindlichkeitsprüfung möglich. Deswegen parallel Kultur empfehlenswert.
Lagerung gekühlt
Material: Stuhl erbsgroß
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. infektiöse Enteritis; V. a. Campylobacterenteritis
Referenzbereich: negativ
Clostridium difficile Toxingen-DNA
Material: Stuhl erbsgroß
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Verdacht auf Antibiotika-assoziierte Diarrhoe (AAD): Diarrhoe während oder bis
zu 4 Wochen nach antibiotischer Therapie. Die Untersuchung kann zur primären Diagnostik
oder als Zusatztest bei diskrepanten Antigen-Testergebnissen eingesetzt werden.
Referenzbereich: negativ
Mikrobiologische Diagnostik von HNO-Infektionen
Nasennebenhöhlenabstrich/-punktat
Erfasst werden Bakterien einschl. obligater Anaerobiern und Pilze (Sprosspilze, Fadenpilze)
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Nasennebenhöhlenentzündung
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Rachen-/Tonsillenabstrich
Die kulturelle Untersuchung umfasst alle relevanten bakteriellen Erreger von Infektionen
der oberen Atemwege.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei V.a. Diphtherie bitte telef. Vorabinformation (0711 6357152) und entsprechender Vermerk auf dem Begleitschein (Meldepflicht
beachten: Bereits der Verdacht auf Diphtherie ist meldepflichtig nach §6 IFSG).
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Tonsillitis, Pharyngitis
Gehörgangsabstrich
Erfasst werden otopathogene Bakterien einschl. Turicella otitidis. Bei Pat. > 10 Jahre und
Otitis externa zusätzlich Pilze (Sprosspilze, Fadenpilze).
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Otitis media perforata; Otitis externa
Rachenabstrich auf ß-hämolysierende Streptokokken
Erfasst werden die Serotypen A,B,C,F,G
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrich
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Streptokokkentonsillitis/-pharyngitis
V. a. Scharlach
Mikrobiologische Diagnostik von Infektionen im Zahn-/Kieferbereich
Abszessabstrich/-punktat im Zahn-/Kieferbereich
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligater Anaerobiern und Aktinomyzeten
Versand in Transportmedium mit Gel
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abszesse im Zahn-/Kieferbereich
Parodontopathogene Keime DNA
Der kulturelle Nachweis parodontopathogener Erreger ist langwierig und hat eine unzureichende Sensitivität. Deswegen wird vorzugsweise ein molekularbiologisches Verfahren
zum Nachweis der sogenannten Markerkeime eingesetzt.
Zur Probenentnahme sterile Papierspitzen in die Zahntaschen einführen. Versand in sterilen Schraubgefäßen ohne Transportmedium (komplettes Set für Entnahme und Transport
im Labor erhältlich).
Bitte die Zahntaschentiefe angeben!
Material: Sterile Papierspitzen
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Parodontitis
Referenzbereich: negativ
Mikrobiologische Diagnostik von Genitalinfektionen
Chlamydiennachweis (s. S. 36)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Mikrobiologie
Genitalabstrich auf ß-häm. Streptokokken
Erfasst werden die Serotypen A,B,C,F,G. Bei Untersuchung im Rahmen des B-Streptokokkenscreenings am Ende der Schwangerschaft wird ein Aufkleber für den Mutterpass mitgeliefert.
Versand in Transportmedium
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. genitale Streptokokkeninfektion;
B-Streptokokken-Screening in der Schwangerschaft (35.-37.SSW; Abstrich vaginal plus
rektal oder vaginal plus perianal: bitte Vorgaben unbedingt einhalten und auf Auftrag vermerken, da ansonsten die Aussagekraft der Untersuchung bei negativem Ergebnis eingeschränkt ist).
Cervixabstrich auf Bakterien und Pilze
Die Untersuchung umfasst neben dem Grampräparat die Kultur auf aerobe und anaerobe
Bakterien einschl. Mycoplasmen/Ureaplasmen und Hefepilze. (Bei Schwangeren zusätzlich Gonokokken und bei Komplikationen, z.B. vorzeitige Wehentätigkeit, Frühgeburtsbestrebungen, die gezielte Untersuchung auf Listerien).
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf
Anforderungsschein. Bei V. a. Chlamydieninfektion bitte getrennten Tupfer in Spezialmedium zur Chlamydiendiagnostik einsenden).
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Cervicitis; Komplikationen in der Schwangerschaft (vorz. Wehentätigkeit;
Cervixinsuffizienz u. a.)
Genitalabstrich auf Mykoplasmen/Ureaplasmen
Die kulturelle Untersuchung erstreckt sich gezielt auf den Nachweis von Mykoplasmen und
Ureaplasmen. Kulturdauer: 4 Tage
Bei Schwangeren wird ggf. eine Differenzierung zwischen U. parvum und U. urealyticum
durchgeführt (NAT)
Versand im bakteriologischen Transportmedium (Röhrchen mit Gel).
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4 Tage)
Indikation: V. a. bzw. Kontrolle nach Infektion/Kolonisation durch Mykoplasmen oder Ureaplasmen.
Vaginalabstrich auf Bakterien und Pilze
Die Untersuchung umfasst neben dem Grampräparat die Kultur auf aerobe und anaerobe Bakterien und Hefepilze. (Bei Schwangeren zusätzlich Gonokokken und bei Komplikationen, z.B. vorzeitige Wehentätigkeit, Frühgeburtsbestrebungen, zusätzlich die gezielte
Untersuchung auf Listerien).
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf
Anforderungsschein.
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Kolpitis; Komplikationen in der Schwangerschaft (vorz. Wehentätigkeit; Cervixinsuffizienz u.a.)
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Abstrich auf N. gonorrhoeae (Gonokokken)
Bei V. a. Gonorrhoe differentialdiagnostisch auch Chlamydia trachomatis ausschließen
(spezielles Transportmedium), da klinisch nicht sicher zu unterscheiden und häufig Koinfektion!
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf
Anforderungsschein. Gonokokken sind empfindlich gegenüber Abkühlung (Lagerung und
Transport bei Raumtemperatur; Transportzeit max. 24 h). Bei längeren Transportzeiten
ggf. molekularbiologischen Nachweis veranlassen (kann aus dem Chlamydienabstrichset
durchgeführt werden)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. Gonorrhoe, V. a. STD
Genitalabstrich auf Aktinomyzeten
Gezielte Untersuchung auf Aktinomyzeten (insbesondere aus intraoperativen Abstrichen
oder Gewebeproben bei Adnexitis). Kulturdauer: 10 Tage
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel). Bei Schwangerschaft bitte Vermerk auf
Anforderungsschein.
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 10 Tage)
Indikation: V. a. Aktinomykose; Screening vor IUD-Einlage
Mikrobiologische Diagnostik von Augeninfektionen
Glaskörperpunktat
Die kulturelle Untersuchung umfasst schnellwachsende Bakterien (einschl. obligater Anaerobier), Pilzen (einschl. Fadenpilze) und die Mikroskopie.
Eiltransport in sterilem Röhrchen mit Schraubverschluss oder in sicher und steril verschlossener Spritze; Lagerung bei Raumtemperatur
Material: Glaskörperpunktat max. mögliches Volumen
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-7 Tage)
Indikation: V. a. Infektion des Glaskörpers (z.B. postoperativ)
Konjunktivalabstrich
Die kulturelle Untersuchung umfasst alle bakteriellen Konjunktivitis- bzw. Keratitiserreger (bei Neugeborenen einschl. Gonokokken) mit Ausnahme von Chlamydia trachomatis
(molekularbiol. Nachweis). Bei kontaktlinsenassoziierter Konjunktivitis wird zusätzlich eine
Pilzkultur mit verlängerter Bebrütung (7 Tg.) angelegt, um Fadenpilze nachweisen zu können.
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel); Lagerung bei Raumtemperatur
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2-7 Tage)
Indikation: Eitrige Konjunktivitis, Keratitis
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235
Mikrobiologie
Mikrobiologische Diagnostik von Gelenkinfektionen
Gelenkpunktat bei periprothetischer Infektion
Erfasst werden Bakterien einschließlich obligater Anaerobier und langsam wachsender
Verursacher (incl. SCV) von low-grade Infektionen, sowie Candida spp.
Punktat in steriles Röhrchen mit Schraubverschluss geben (mind. 1 ml); bei größeren Volumina zusätzlich Blutkulturflasche beimpfen. Probe am Entnahmetag ins Labor bringen.
Lagerung bei Raumtemperatur.
Material: Punktat 5 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage)
Indikation: V. a. periprothetische Infektion
Gewebeproben bei periprothetischer Infektion
Die kulturelle Untersuchung umfasst Bakterien einschließlich obligater Anaerobier und
langsam wachsender Verursacher (incl. SCV) von low-grade Infektionen, sowie Candida
spp.
Gewebeproben in sterilem Röhrchen mit 0,9% NaCl-Lsg. versenden. Optimale Probengröße: ca. 1 ccm; Zerkleinerung von größeren Proben im Labor erhöht das Kontaminationsrisiko! Sehr kleine Gewebeproben in Transportmedium (Röhrchen mit Gel) einsenden. Proben am Entnahmetag ins Labor bringen. Lagerung bei Raumtemperatur.
Material: Gewebe 3-5 Stück
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage)
Indikation: V. a. periprothetische Infektion
Gelenkpunktat/-abstrich
Die kulturelle Untersuchung umfasst Bakterien einschließlich obligaten Anaerobiern.
Zusätzlich bei Erwachsenen mit spontaner Arthritis: Gonokokken. Eine Untersuchung auf
Mykobakterien wird nur bei entsprechender Anforderung durchgeführt.
Vorzugsweise sollten Punktate bzw. Biopsien eingesandt werden, da diese meist eine bessere Erregerausbeute ermöglichen: Versand in sterilem Röhrchen mit Schraubverschluss,
zusätzlich möglichst Blutkulturflasche beimpfen; Transport/Lagerung bei Raumtemperatur.
Abstriche in Transportmedium einsenden (Gelröhrchen).
Material: Abstrichtupfer/Punktat 5 ml
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V. a. infektiöse Arthritis
Mikrobiologische Diagnostik von Helicobacter-Infektionen
Helicobacter pylori-Antigennachweis
Der Helicobacter pylori-Antigennachweis im Stuhl ist eine Alternative zum Atemtest mit
annähernd gleicher Sensitivität und Spezifität. Der Test eignet sich zur Diagnose und zur
Therapiekontrolle.
Therapiekontrolle ist frühestens 4 Wochen nach Ende der Therapie möglich
Lagerung gekühlt.
Material: Stuhl erbsgroß
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Helicobacter pylori-Infektion; Therapiekontrolle nach H. pylori-Infektion
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Helicobacter-pylori-Kultur
Nur durch die Kultur kann eine parallele Empfindlichkeitsprüfung von Amoxicillin, Metronidazol, Clarithromycin, Doxycyclin, Levofloxacin, Rifampicin u.a. Antibiotika durchgeführt
werden.
Molekularbiologisch kann mittels PCR direkt aus der Biopsie sowohl der Erregernachweis,
als auch der Nachweis von Clarithromycin- bzw. Fluorchinolonresistenzmutationen durchgeführt werden (siehe Helicobacter pylori-PCR)
Versand ausschließlich in speziellem Transportmedium "Port-a-Germ Pylori, Fa. bioMérieux" (bei Bedarf erhältlich unter 0711/6357-154/-152)
Probe muss entsprechend den präanalytischen Vorgaben entnommen werden (bitte VOR
Entnahme im Labor anfordern) und innerhalb von 24h im Labor eingehen (sehr empfindlicher Erreger).
Material: Biopsie
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 10 Tage)
Indikation: Therapieresistente Helicobacter pylori-Infektion; Empfindlichkeitsprüfung
Helicobacter pylori DNA (einschl. Resistenz)
Wegen ausgeprägter Resistenz von H. pylori gegenüber den Standardantibiotika Clarithromycin und Levofloxacin ist es vor allem bei bereits vorbehandelten Patienten empfehlenswert, die Empfindlichkeit des Erregers auf diese Substanzen bereits vor der Primärbehandlung zu prüfen. Da die kulturelle Empfindlichkeitsprüfung aufgrund des dafür benötigten
Zeitraums (5-10 Tage) und der Transportempfindlichkeit von H. pylori für eine schnelle Diagnostik weniger geeignet ist, bietet sich hier der molekularbiol. Nachweis von Erreger und
Clarithromycin- bzw. Fluorchinolonresistenz bzw. -empfindlichkeit direkt aus der Biopsie an
(Postversand (auch mehrtägig) ist möglich, da die nachzuweisende DNS ausgesprochen
stabil ist).
Material: Magenbiopsie nativ (möglichst mehrere aus Antrum und Corpus) in steriles Gefäß
(Schraubverschluss) mit ca. 1 ml NaCl geben, Kulturabstrich
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 8 Stunden)
Indikation: Helicobacter pylori-Schnelldiagnostik
Referenzbereich: Helicobacter pylori-DNS negativ; Resistenzmutation nicht nachgewiesen
Mykobakterien-Diagnostik (Tbc)
Mikrobiologische Diagnostik der Tuberkulose
Die Verdachtsdiagnose einer durch Mykobakterien verursachten Infektionskrankheit kann nur
durch den Nachweis der Erreger mit mikroskopischen, kulturellen und molekularbiologischen
Verfahren bestätigt werden. Wegen der von Probe zu Probe variablen und oft nur sehr geringen
Bakteriendichte sind mindestens drei, möglichst an verschiedenen Tagen gewonnene Proben
zu untersuchen. Die Transportdauer der Proben nach Entnahme beim Patienten sollte 24h
nicht überschreiten. Können Proben nicht sofort verarbeitet oder weitergeleitet werden, sind
sie bei 4°C aufzubewahren.
Mykobakterien-Mikroskopie
Eine mikroskopische Untersuchung erfolgt aus allen klinischen Proben mit Ausnahme von
Stuhl (geringe Sensitivität mit hoher Rate an falsch positiven Befunden).
Die Empfindlichkeit der Mikroskopie ist geringer als die der Kultur, sie ist jedoch das
schnellste und billigste Nachweisverfahren.
Material: Bronchiallavage, Magensaft, Sputum, Trachealsekret, Urin
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. pulmonale oder extrapulmonale Tuberkulose
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
237
Mikrobiologie
Mykobakterien-Kultur
Jede Untersuchung zum Nachweis von Mykobakterien muss eine Kultur beinhalten (Goldstandard)! Durch die Kultur werden sowohl Tuberkulosebakterien als auch atypische Mykobakterien (MOTT) erfasst.
Kulturdauer: im negativen Fall 8 Wochen, bei Erregerwachstum i.d.R. deutlich schneller.
Bitte unbedingt folgende präanalytische Vorgaben beachten!
Sputum: 2-10ml (3x); Gewinnung vor dem Frühstück
Magennüchternsekret: 20-30 ml, Patient nüchtern, spezielle Transportröhrchen verwenden
(werden vom Labor gestellt).
Morgenurin: 30-50ml (3x)
Bronchialsekret: 2-5ml
BAL, Pleurapunktat: 10-30ml
Liquor: 5 ml
Gewebe: in 1ml steriler 0,9% NaCl-Lösung. Kein Formalin!
Weitere Materialien auf Anfrage
Hinweis: Ausführliches Infoblatt über Untersuchungsmaterialien, Gewinnung und Besonderheiten telefonisch unter 0711/6357-154
Material: Bronchiallavage, Magensaft, Sputum, Trachealsekret, Urin
Methode: Kultur
Ansatz: täglich
Indikation: V. a. Tuberkulose; V. a. Infektion durch atypische Mykobakterien (MOTT)
M. tuberkulosis-Komplex DNA
Besonderheiten einzelner Materialien für eine Mykobakterien-PCR: siehe Angaben zur
Mykobakterien-Kultur.
Material: Respirationstraktsekret, Liquor, Magensaft, Punktat, Biopsie nativ, Urin
Methode: SDA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Verdacht auf Tbc, Fieber, Lymphadenitis
Referenzbereich: negativ
(F)
Atypische Mykobakterien DNA
Besonderheiten einzelner Materialien für eine Mykobakterien-PCR: siehe Angaben zur
Mykobakterien-Kultur.
Material: Respirationstraktsekret, Liquor, Magensaft, Punktat, Biopsie nativ, Urin
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Infektion durch atypische Mykobakterien, unklares Fieber bei Immunsuppression, Lymphadenitis
Interferon-gamma-release Assays (IGRA)
In-vitro-Teste zum Nachweis oder Ausschluss einer Infektion mit M. tuberculosis. Die beiden
Teste T-SPOT.TB (Oxford Immunotec) und QuantiFERON-TB Gold In-Tube (QIAGEN) sind
für die TB-Diagnostik in Europa (CE-Zertifizierung) und den USA (FDA-approved) zugelassen.
Beide Teste beruhen auf der Freisetzung des Zytokins Interferon-gamma durch T-Lymphozyten, die Antigene von M. tuberculosis erkennen. Die verwendeten Antigene ESAT-6 und
CFP-10 der IGRA-Teste sind spezifisch für M. tuberculosis (Ausnahmen nur M. kansasii, M.
szulgai, M. marinum, M. gastrii, M. flavescens). Eine frühere BCG-Impfung sowie Exposition
gegenüber den meisten Umweltmykobakterien werden von den IGRA-Testen nicht erkannt,
daraus resultiert eine deutlich höhere Spezifität im Vergleich zum Tuberkulin-Hauttest.
Ein positives Ergebnis der IGRA-Teste zeigt eine Infektion mit M. tuberculosis an. Die Unterscheidung einer aktiven von einer latenten Tuberkulose ist mit den IGRA-Testen aus dem
peripheren Blut nicht möglich. Nach unseren Erfahrungen habe beide IGRA-Teste eine vergleichbare Spezifität, der T-SPOT.TB jedoch eine höhere Sensitivität im Vergleich zum Quan-
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
tiferontest. Die IGRA-Teste sollten immer gemeinsam mit allen anderen diagnostischen TBVerfahren bewertet werden.
T-SPOT.TB
Die Sensitivität zum Nachweis einer Infektion mit M. tuberculosis beträgt bei Patienten mit
mikrobiologisch gesicherter Tuberkulose >90%, die Spezifität ca. >97%. Der Test ist auch
bei Kindern sowie bei Patienten mit Immunschwäche (z.B. HIV, unter immunsuppressiver
Therapie) einsetzbar. Der T-SPOT.TB kann auch aus Pleurapunktat und bronchoalveolärer
Lavage durchgeführt werden, hierfür wird eine vorherige telefonische Anmeldung erbeten.
Abnahme: Mo bis Do, Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten, damit die Probe
spätestens einen Tag nach Abnahme im Labor eintrifft. Der Test ist nur aus Heparinblut
möglich! Bei Kleinkindern benötigen wir 2-3 ml, bei Kindern 5 ml und bei Erwachsenen
7,5 ml Heparinblut. Bitte nur kommerzielle Heparinröhrchen verwenden, diese werden bei
Bedarf von unserem Labor zur Verfügung gestellt.
Material: Heparinblut 7,5 ml
Methode: Elispot
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer Infektion mit M. tuberculosis. Ersetzt/bestätigt den Tuberkulin-Hauttest.
M. avium ELISPOT
Abnahme Mo bis Do, die Probe sollte unser Labor innerhalb von 24 Stunden erreichen.
Versand ungekühlt per Fahrdienst oder Eilboten. Vorherige telefonische Anmeldung erbeten! Nur Heparinblut möglich! Kommerzielle oder von uns erhältliche Heparinröhrchen verwenden.
Material: Heparinblut 7,5 ml
Methode: Elispot
Ansatz: nach Rücksprache (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Abklärung einer Infektion mit nichttuberkulösen Mykobakterien (z.B. M. avium).
Gleichzeitige Testung mit dem T-SPOT.TB wird empfohlen.
(F)
QuantiFERON-TB Gold In-Tube
Für den QuantiFERON-TB Gold In-Tube werden Spezialröhrchen des Herstellers benötigt.
Nach Blutabnahme muss das Material innerhalb von 16 Stunden in unserem Labor eintreffen.
Material: Blut in Spezialröhrchen 3 ml
Methode: EIA
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Woche)
Indikation: Abklärung einer Infektion mit M. tuberculosis. Ersetzt/bestätigt den Tuberkulin-Hauttest.
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Mikrobiologie
Mykologie
Mikrobiologische Diagnostik von Pilzinfektionen der Haut / Schleimhäute
Dermatophytendiagnostik (Kultur)
Die Untersuchung beinhaltet die Pilzkultur auf Spezialmedien und, wenn ausreichend Material vorhanden ist, ein KOH-Präparat.
Zum schnellen Nachweis von Dermatophyten kann auch ein molekularbiol. Verfahren eingesetzt werden (IGeL)
V. a. Dermatomykose: möglichst viele Hautschuppen vom Rand der Läsion entnehmen
(scharfer Löffel); V. a. Onychomykose: möglichst viele Nagelteile/-späne vom Übergang
zwischen befallenem und gesundem Nagel entnehmen (Skalpell, Schere, Kürette); V.a.
Tinea capitis: mykoseverdächtige Haarstümpfe mit Epilierpinzette herausziehen; Partikel
in fest verschlossenem Kunststoffgefäß (z.B. Sputumbecherchen) verschicken
Material: Hautteile
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage)
Indikation: V. a. Tinea unguis (Onychomykose)/ Tinea corporis /Tinea capitis
Dermatophytendiagnostik (PCR)
schneller Nachweis von Dermatomykosen mittels PCR
Material: Haare (10 - 20 Einzelhaare aus dem Randbereich der Läsion), Hautteile (möglichst viele kleine Hautpartikel bzw. Schuppen aus dem Übergang zwischen befallener und gesunder Haut), Nagelteile (möglichst viele kleine Nagelspäne (keine
ganzen Nägel) aus dem Übergang zwischen befallenem und gesundem Nagelbereich)
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Onychomykose, Tinea corporis, Tinea capitis etc.
Soordiagnostik
Versand in Transportmedium (Röhrchen mit Gel)
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur/Mikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: V.a. Soor (Genitalbereich, Mundhöhle, nässende Hautstellen)
Mikrobiologische Diagnostik der systemischen Aspergillose
Bei der systemischen Aspergillose handelt es sich um eine exogene Infektion. Aufgrund der
unzureichenden Sensitivität der einzelnen Nachweisverfahren sollte stets mehrgleisig verfahren werden: kulturelle und mikroskopische (!) Untersuchung von Respirationstraktsekreten;
Antigen- und Antikörpernachweis im Serum, Antigennachweis in BAL
Bei V. a. Aspergillose unbedingt entsprechenden Hinweis auf dem Probenbegleitschein, da
spezielle Kulturbedingungen und Mikroskopietechniken eingesetzt werden müssen.
Parasitologie
Amöbiasis (Entamoeba histolytica)
Geographische Verbreitung: Warme Länder.
Infektion: Die Infektion erfolgt fast ausschließlich durch Ingestion von Zysten über fäkal kontaminiertes Material. Dies führt zu asymptomatischen Verläufen mit Zystenausscheidung, invasiven Verläufen in Form einer Amöbenkolitis und zu hämatogenen Streuungen am häufigsten
in die Leber. Die Zeit zwischen Infektion und Auftreten von Symptomen beträgt Tage bis mehrere Jahre.
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Mikrobiologie
Symptome: Bei intestinaler Amöbiasis meist nur leichte gastrointestinale Beschwerden wie
Druckgefühl, ziehender Schmerz und Übelkeit, meist jedoch kein Fieber. Auftreten von schwerem Krankheitsgefühl mit Fieber sind Anzeichen einer Ausbreitung über den Darm hinaus
(Peritonitis, Leberabszess)
Diagnose: In erster Linie mikroskopischer Nachweis von Zysten, ggf. auch Trophozoiten im
Stuhl, sowie Nachweis von Amöbenantigen in Stuhlproben mittels ELISA. Das empfindlichste
allerdings auch aufwendigste Verfahren stellt die PCR dar. Für invasive Infektionen, vor allem
bei extraintestinalem Befall ist die Serodiagnostik die Methode der Wahl.
Entamoeba histolytica (Stuhldiagnostik-Mikroskopie)
Da Parasitenzysten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V.
a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen
den Proben von 1-2 Tagen.
Eine Differenzierung zwischen der pathogenen E. histolytica und der apathogenen E. dispar ist auf mikroskopischem Wege nicht möglich.
Bei V. a. intestinale Amöbiasis wird zum Nachweis der Trophozoiten nativer Stuhl benötigt,
der nicht älter als ca. 1h ist. Die Entamoeba histolytica-Zysten hingegen sind auch nach
1-2 Tagen noch nachweisbar.
Material: Stuhl (Röhrchen zu einem Drittel gefüllt)
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich
Indikation: blutig-eitrige Dysenterie
Entamoeba histolytica (Stuhldiagnostik-ELISA)
Höhere Sensitivität im Vergleich zur Mikroskopie. Eine Abgrenzung zur avirulenten Form
Entamoeba dispar ist mit dem von uns eingesetzten ELISA nicht möglich. Bei entsprechender Indikation (z.B. Nachweis von Entamoeba histolytica/dispar-Cysten kann die Probe an
ein Speziallabor weitergeleitet werden.
Material: Stuhl (Röhrchen zu einem Drittel gefüllt)
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Babesiose
Babesien gehören wie die Malariaerreger zu den Protozoen, die Übertragung erfolgt durch
Zecken. Die Erkrankungen in Europa sind meist durch B. divergens, in Amerika durch B. microti
bedingt. Sekundärinfektionen durch Bluttransfusionen kommen vor (teils fulminante Verläufe!).
Auch nach der klinischen Ausheilung kann über Monate bis Jahre eine Parasitämie bestehen.
Inkubationszeit: 1 - 4 Wochen
Babesia-microti-IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich, Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichtsabnahme, Anämie, Splenomegalie
Referenzbereich: <1:16 Titer
Babesia-divergens-IgG-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 2 - 3 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Zeckenstich, Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichtsabnahme, Anämie, Splenomegalie
Referenzbereich: <1:16 Titer
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Mikrobiologie
(F)
Babesia-DNA
Bei positivem PCR-Befund wird mittels Sequenzierung die Art bestimmt.
Material: EDTA-Blut 2-3 ml, Zecke nativ
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 2 Tage)
Indikation: Zeckenstich, Fieber, Kopfschmerz, Übelkeit, Gewichtsabnahme, Anämie, Splenomegalie
Referenzbereich: negativ
Echinokokkose (Hunde -/ Fuchsbandwurm)
Geographische Verbreitung: Der Hundebandwurm (Echinococcus granulosus) ist weltweit verbreitet, der Fuchsbandwurm (E. multilocularis) kommt nur auf der nördlichen Hemisphäre vor.
Infektion: Die Übertragung erfolgt fäkal-oral durch Aufnahme der mit dem Kot von Hund bzw.
Fuchs ausgeschiedenen Bandwurmeier (direkter Kontakt mit durch Fäkalreste verunreinigten Tieren, Verzehr von kontaminierten Waldfrüchten oder Fallobst, Aufnahme eierhaltigen
Staubs).
Symptome: Der Hundebandwurm ist der Erreger der zystischen Echinokokkose, die durch
abgegrenzt wachsendes zystenbildendes Larvengewebe charakterisiert ist. Das Larvengewebe von Echinococcus multilocularis wächst dagegen schwammartig, maligne infiltrierend. Der
Parasit entwickelt sich primär ganz überwiegend in der Leber.
Diagnose: Bei Menschen ist der Nachweis von Bandwurmeiern nicht indiziert, da Adultwürmer
nur in den Endwirten Hund und Fuchs vorkommen. Die Labordiagnose wird daher in erster
Linie serologisch durch den Nachweis spezifischer Antikörper oder direkt durch den molekularbiologischen Nachweis Echinococcus-spezifischer DNS im Zystenaspirat gestellt.
Anonyme Meldepflicht!
Echinokokken-AK IFT
Nachweis von AK gegen E. granulosus und E. multilocularis (Eine Differenzierung ist mittels
IFT nicht möglich)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Echinokokkose, Zysten in Leber und Lunge, selten Gehirn; unklare Leberherde
Referenzbereich: <1:10 Titer
E.-multilocularis-AK EIA Em2plus artspezifisch
Alveoläre Echinokokkose
Material: Serum 500 µl, Vollblut 500 µl, EDTA-Blut 500 µl
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Fuchsbandwurm, Zysten in der Leber, selten im Gehirn; unklare Leberherde
Referenzbereich: negativ
(F)
E.-granulosus-DNA
Probengewinnung mittels Feinnadelbiopsie
Material: Biopsie nativ
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Zysten in Leber, Lunge, selten Gehirn; unklare Leberherde
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
(F)
E.-multilocularis-DNA
Probengewinnung mittels Feinnadelbiopsie
Material: Biopsie nativ
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Zysten in Leber, Lunge, selten Gehirn; unklare Leberherde
Referenzbereich: negativ (qualitativ)
Fasciolose
Fasciola hepatica (Großer Leberegel)
Geographische Verbreitung: weltweit bei Pflanzenfressern (Rinder, Schafe) In Deutschland
selten, verbreiteter in Frankreich
Infektion: Die Infektion erfolgt über die Aufnahme der Saugwurm-Larven (Metazerkarien) mit
Salat, Kresse u.a.
Symptome: Nach einer Inkubationszeit von 2-6 Wochen, Perihepatitis, Cholangitis, Cholezystitis
Diagnose: Die Diagnose beruht in erster Linie auf dem Nachweis von Wurmeiern im Stuhl. Die
Serologie hat ihren Stellenwert vor allem während der Präpatenzzeit, in der noch keine Eier
ausgeschieden werden, bei schwachen und älteren Infektionen, bei denen der Einachweis
schwierig bzw. nicht mehr möglich ist.
Fasciolasis-AK IFT
Fasciola hepatica (Großer Leberegel)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: unklare chronische Cholangitis, Cholestase, Ikterus, nach Aufenthalt in
(sub-)tropischen Ländern
Referenzbereich: <1:10 Titer
Fasciola hepatica (Stuhldiagnostik-Mikroskopie)
Da Parasiteneier nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Material: Stuhl (Röhrchen zu einem Drittel gefüllt)
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich
Filarien
Spezies: Filarien sind fadendünne Würmer, die im Gewebe von Tier und Mensch leben. Sie
bilden Larven, die sog. Mikrofilarien, die entweder im Blut zirkulieren oder in der Haut wandern. Sie werden von blutsaugenden Arthropoden aufgenommen, in denen sie sich zu infektiösen Larven entwickeln. Bei den beim Menschen verursachten Filariosen unterscheidet man
3 Gruppen:
Lymphatische Filariosen: Wuchereria bancrofti, Brugia malayi, B. timori
Hautfilariosen: Onchocerca volvulus, Mansonella streptocerca
Loiasis: Loa loa
Geographische Verbreitung: Lymphatische Filariosen kommen mit verschiedenen Arten weltweit in tropischen Regionen vor, die Onchozerkose ist auf Afrika und Südamerika beschränkt,
die Loiasis kommt nur in Zentralafrika vor.
Infektion: Die Übertragung der infektiösen Larven erfolgt durch verschiedene Arten blutsaugender Arthropoden: Stechmücken (Culicidae), Bremsen (Tabanidae), Kriebelmücken (Simuliidae), Gnitzen (Culicoides spec.).
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
243
Mikrobiologie
Symptome: Bei den lymphatischen Filariosen leben die Adultwürmer in den Lymphgefäßen
und verursachen rezidivierende Lymphangitiden, die zu Lymphödemen und im Extremfall zu
Elephantiasis führen können.
Bei den Hautfilariosen wandern die Mikrofilarien in der Haut und führen hier zu Dermatitiden
mit starkem Juckreiz. Später kommt es zu Hautatrophien und Depigmentierungen. Bei der
Onchozerkose besteht die folgenschwerste Komplikation in einer Erblindung (Flussblindheit),
verursacht durch die durch das Auge wandernden Mikrofilarien.
Die Loiasis ist durch im Unterhautbindegewebe wandernde Adultwürmer charakterisiert. Am
Sitz der Würmer bilden sich flüchtige juckende Schwellungen (Kalabarschwellungen), bei Wanderung durch die Augenbindehaut werden die Würmer direkt sichtbar.
Diagnose: Die Verdachtsdiagnose erfolgt i.d.R. auf serologischem Wege. Die Antikörper treten
jedoch u.U. stark verzögert erst nach Monaten auf (Reaktion auf Häutungsflüssigkeiten). Eine
Artdiagnostik ist nicht möglich, hohe Titer weisen jedoch auf einen Gewebs-Nematoden-Befall
hin. Mikrofilarien treten erst nach Monaten bis über 1 Jahr auf, bei Bewohnern nicht endemischer Gebiete (Touristen!) unterbleibt die Mikrofilarämie meist ganz.
Mikrofilarien Mikroskopie
Mikrofilarien im Blut: Wuchereria bancrofti, Brugia spec. (lymphatische Filariosen), Mansonella spec.,Loa Loa (Loiasis, Kalabar-Schwellungen)
Mikrofilarien in der Haut: Onchocerca volvulus, Mansonella streptocerca
Achtung: Die Zirkulation von Mikrofilarien im Blut weist einen Tag-Nacht-Rhythmus auf,
Blutentnahme nur nachts zwischen 21-2 Uhr, bei ozeanischen Arten zwischen 15-17 Uhr.
Bei Hautmanifestationen: skin snip, sofortiger Transport ins Labor
Material: EDTA-Blut 5-10 ml, Biopsie 5-10 ml
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Eosinophilie, Lymphangitis, passagere Weichteilschwellungen
Referenzbereich: negativ
Giardiasis
Synonym: Lambliasis
Geographische Verbreitung: Die Lambliasis ist weltweit verbreitet und wird durch den Flagellaten Giardia lamblia hervorgerufen.
Infektion: Die Infektion erfolgt durch orale Aufnahme von mit Zysten kontaminierten Nahrungsmitteln oder Trinkwasser. Auch Fliegen können als Vektoren Lamblien-Zysten übertragen.
Symptome: Nach einer Inkubationszeit von 3 - 21 Tagen kann es zu Übelkeit, krampfartigen
Bauchschmerzen, Flatulenz und wässrigen nicht-blutigen Durchfällen kommen.
Diagnose: Die Diagnose erfolgt in erster Linie über den mikroskopischen Nachweis von Zysten
bzw. Trophozoiten aus Stuhl oder Duodenalsaft. Neben dem direkten Erregernachweis wird
zur Steigerung der Sensitivität noch ein Lamblien-Antigennachweis (ELISA) durchgeführt.
Giardia lamblia (Mikroskopie)
Da Parasitenzysten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V.
a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen
den Proben von 1-2 Tagen.
Bei gezielter Anforderung auf Giardia lamblia wird zusätzlich zur mikroskopischen Untersuchung ein hochsensitiver Lamblien-Antigennachweis mittels ELISA-Verfahren durchgeführt.
Material: Stuhl (Röhrchen zu einem Drittel gefüllt)
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: nicht nachweisbar (qualitativ)
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Mikrobiologie
Giardia lamblia (Stuhldiagnostik-ELISA)
Giardia lamblia spezifisches Antigen ist auch dann in Stuhlproben mittels ELISA nachzuweisen, wenn keine Zysten oder Trophozoiten mikroskopisch zu sehen sind.
Material: Stuhl (Röhrchen zu einem Drittel gefüllt)
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: negativ
Kryptosporidiose
Geographische Verbreitung: Die Kryptosporidiose wird vor allem durch Cryptosporidium parvum und C. hominis hervorgerufen und kommt weltweit vor.
Infektion: Die Übertragung der infektiösen Oozysten erfolgt oral i.d.R. über fäkal kontaminiertes
Trink- oder Badewasser. Häufig betroffen sind vor allem Kleinkinder bis 7 Jahre und immunsupprimierte Personen. Kryptosporidiosen treten gehäuft in den Sommermonaten auf.
Symptomatik: Nach einer Inkubationszeit von 1-30 Tagen kommt es zu nicht-blutigen Durchfällen verbunden mit Übelkeit, Erbrechen und krampfartigen Bauchschmerzen.
Diagnose: die Diagnose erfolgt in erster Linie über den mikroskopischen Nachweis von Oozysten aus Stuhl. Neben dem direkten Erregernachweis wird zur Steigerung der Sensitivität
zusätzlich noch ein Kryptosporidien-Antigennachweis (ELISA) durchgeführt.
Kryptosporidien (Mikroskopie)
Neben der sehr schnellen mikroskopischen Untersuchung wird ein sehr sensitiver Kryptosporidien-Antigennachweis mittels ELISA-Verfahren durchgeführt.
Material: Stuhl kirschkerngroß
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Kryptosporidien (Stuhldiagnostik ELISA)
Material: Stuhl kirschkerngroß
Methode: EIA
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Leishmaniose
Geographische Verbreitung: Leishmanien (Flagellata) kommen in erster Linie in trocken-heißen Klimazonen der alten und neuen Welt vor.
Infektion: Die Erreger werden durch Stich von infizierten Schmetterlingsmücken (Phlebotomen) übertragen. Als Erregerreservoir dienen v.a. verschiedene Nager, im Mittelmeerraum
Hunde (Zoonose). In Abhängigkeit von Leishmanien-Art und Immunstatus des Wirtes kommt
es zu unterschiedlichen Verlaufsformen:
A) viszerale Leishmaniose (Kala Azar)
B) Kutane Leishmaniose (Orientbeule)
C) Mukokutane Leishmaniose (Espundia)
Symptome:
Viszerale Leishmaniose: Hepatosplenomegalie, Lymphadenopathie, Anämie, Leukopenie,
Thrombozytopenie, interkurrente Infekte
Kutane Leishmaniose: Trockene oder feuchte nur sehr langsam abheilende Ulzera.
Mukokutane Leishmaniose: Ulcera im Haut-Schleimhautbereich mit entstellenden Gewebszerstörungen
Diagnose: Bei der viszeralen Leishmaniose sind Antikörper in hohen Titern nachweisbar, bei
kutaner und mukokutaner Leishmaniose sind Antikörper i.d.R. nur bei größeren Läsionen
messbar. Der mikroskopische Nachweis erfolgt bei viszeraler Leishmaniose aus dem Knochenmark, bei kutaner und mukokutaner Leishmaniose aus den Gewebsläsionen, u.U. nach
Kultur in Insektenmedien.
Für den PCR Nachweis eignen sich Blut sowie Bioptate aus Gewebsläsionen.
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245
Mikrobiologie
Leishmanien-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Reisende aus Tropen, Subtropen: Splenomegalie, Orientbeule, Haut- und
Schleimhautbefall, Ulzerationen.
Referenzbereich: <1:20 Titer
Leishmanien Mikroskopie
Material: Knochenmarkausstrich, Ulkusabstrich
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 3 Tage)
Indikation: Reisende aus Tropen, Subtropen: Splenomegalie, Orientbeule, Haut- und
Schleimhautbefall, OT-Direktabklatsch vom Ulcus
Referenzbereich: <1:64
(F)
Leishmanien-DNA
Material: Biopsie nativ, EDTA-Blut 2-3 ml, Hautabstrich kutan und mukokutan trocken oder
in sterilem Röhrchen mit 1 ml NaCl, Knochenmark 2-3 ml, Urin 5-10 ml
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Reisende aus Tropen, Subtropen, Panzytopenie, Hepatosplenomegalie, Haut/
Schleimhaut-Ulzera
Referenzbereich: negativ
Malaria (Plasmodium spp.)
4 humanpathogene Arten: P. falciparum (Malaria tropica), P. vivax und P. ovale (Malaria tertiana) sowie P. malariae (Malaria quartana). Vorkommen weltweit in den Tropen und Subtropen (Ausnahme: Australien), die Übertragung erfolgt durch Stechmücken (Anopheles). Bedeutendste importierte Tropenkrankheit in Europa.
Inkubationszeit: in der Regel 8 - 12 Tage
Anonyme Meldepflicht!
Malaria-Schnelltest
Suchtest bei Verdacht auf Malaria. Ein negatives Ergebnis schließt das Vorliegen einer
Malaria nicht sicher aus. Bei klinischem Verdacht sollte der Test alle 24 Stunden unabhängig vom Fieberanstieg wiederholt werden.
siehe "Dicker Tropfen"
Material: EDTA-Blut 500 µl, Kapillarblutausstrich, nativ 500 µl
Methode: Ag-Nachweis
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Stunde)
Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malariagebieten
Referenzbereich: negativ
Malaria-Diagnostik (Dicker Tropfen)
Suchtest bei Verdacht auf Malaria. Ein negatives Ergebnis schließt das Vorliegen einer
Malaria nicht sicher aus. Bei klinischem Verdacht sollte der Test alle 24 Stunden unabhängig vom Fieberanstieg wiederholt werden.
Bei V. a. Malaria wird der dicke Tropfen zusammen mit Ausstrich und Schnelltest
durchgeführt!
EDTA-Blut kann bei kurzen Transportzeiten ebenso verwendet werden wie Kapillarblut.
Material: EDTA-Blut 500 µl, Kapillarblutausstrich, nativ 500 µl
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Stunde)
Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malariagebieten
Referenzbereich: negativ
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Mikrobiologie
Malaria-Ausstrich (mikroskopisch)
siehe "Dicker Tropfen"
Material: EDTA-Blut 500 µl, Kapillarblutausstrich, nativ 500 µl
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Stunde)
Indikation: Fieber nach Aufenthalt in Malariagebieten 3 Tage bis 1 Jahr vor Erkrankungsbeginn; Bestimmung der Parasitämie; zur Speziesdiagnose besser geeignet als der dicke
Tropfen
Referenzbereich: negativ
Plasmodien-AK IFT
Die Antikörperbestimmung ist nicht zur Diagnostik bei V. a. akute Malaria geeignet.
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Einsatz im Rahmen epidemiologischer Untersuchungen oder zur Aufdeckung
latenter Infektionen z. B. bei Blut- und Organspendern
Referenzbereich: <1:20 Titer
Necator americanus (s. S. 248)
Nematoden (Darmnematoden)
Spezies: Die Nematoden Ascaris (Spulwurm) Trichuris (Peitschenwurm), Enterobius (Madenwurm), Ancylostoma und Necator (Hakenwürmer), Strongyloides (Zwergfadenwurm) sowie Trichostrongylus leben im Darmlumen.
Geographische Verbreitung: Madenwürmer, Spulwürmer und Peitschenwürmer sind weltweit
verbreitet, Hakenwürmer, Zwergfadenwürmer und Trichostrogylus kommen in subtropischen
und tropischen Gebieten vor.
Infektion: Die Infektionen kommen durch orale Aufnahme von embryonierten Eiern (Ascaris,
Trichuris, Enterobius) oder Larven (Trichostrongylus) zustande, bei Hakenwürmern und Strongyloides dringen infektiöse Larvenstadien durch die Haut in den Menschen ein.
Symptome: Klinische Erscheinungen in Form von allgemeinen gastrointestinalen Symptomen
treten i.d.R. nur bei großer Parasitenzahl auf.
Diagnose: Die Methode der Wahl ist die Untersuchung von Stuhlproben auf Wurmeier bzw.
Larven. Serologische Verfahren sind nur bei Darmnematoden mit einer Herz-Lungen-Wanderung (Ascaris, Hakenwürmern, Strongyloides) ausreichend sensitiv. Wegen starker Kreuzreaktionen ist eine Art -Diagnostik auf serologischem Weg nicht möglich, es ist nur ein Befall mit
Nematoden nachweisbar.
Gewebsnematoden-AK IFT
Antigen: Onchocerca
Filarien: Onchocerca volvulus (Flussblindheit), Wuchereria bancrofti und Brugia spec. (lymphatische Filariose), Loa loa (Loiasis, Kalabar-Schwellungen)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Eosinophilie, Lymphangitis, passagere Weichteilschwellungen, Juckreiz
Referenzbereich: <1:10 Titer
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247
Mikrobiologie
Ascaris lumbricoides (Spulwurm) Mikroskopie
Da Parasiteneier nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Hinweis: Ascaris lumbricoides ist der am meisten verbreitete Darm-Parasit des Menschen.
Material: Stuhl Stuhlröhrchen zu einem Drittel gefüllt
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Lungenpassage: eosinophiles Lungeninfiltrat, Fieber, Pneumonie
Darmphase: Abdominalschmerzen, Erbrechen, Enteritis, Ileus, Eosinophilie
Enterobius vermicularis (Oxyuren, Madenwürmer) Mikroskopie
Mikroskopischer Nachweis der Eier durch Entnahme mit einem durchsichtigen Klebestreifen (z.B. Tesa) aus der Analspalte. Perianalbereich zuvor nicht reinigen. Bei Verdacht sollten mindestens drei diagnostische Versuche mit Hilfe der Klebestreifen-Methode unternommen werden.
Hinweis: Enterobius ist der weltweit häufigste Wurmparasit, durchschnittliche Prävalenz
10%
Material: Analklebestreifen
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: analer Juckreiz (keine Herz-Lungenwanderung!)
Ancylostoma duodenale u. N. americanus (Hakenwürmer) Mikroskopie
Da Parasiteneier nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V.a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Material: Stuhl (Röhrchen zu einem Drittel gefüllt)
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Die eindringenden Larven verursachen juckende Hautveränderungen. Lungenpassage: Husten, Dyspnoe. Darmphase: Anämie, gastrointestinale Symptomatik
Strongyloides stercoralis (Zwergfadenwurm) Mikroskopie
Da Parasitenlarven nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen. Bei einem Hyperinfektionssyndrom sind Larven auch im Sputum,
selten auch im Liquor zu finden. Aufgrund der eingeschränkten Sensitivität des direkten
Erregernachweises im Stuhl sollte zusätzlich der indirekte Nachweis im Serum durchgeführt werden.(Kreuzreaktionen vor allem mit Filarien).
Material: Stuhl (Röhrchen zu einem Drittel gefüllt)
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Husten, Dyspnoe. Darmphase: gastrointestinale Symptomatik , Gastroenteritis,
Bluteosinophilie.
Darm-Nematoden-AK IFT
Antigen: Onchocerca volvulus (kreuzreagierendes Antigen)
Ascaris, Hakenwürmer, Strongyloides
Material: Vollblut 1 ml, Serum 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: unklare Abdominalschmerzen, Übelkeit, Nüchternerbrechen, Eosinophilie
Referenzbereich: <1:10 Titer
248
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Trichuris trichiura (Peitschenwurm) Mikroskopie
Da Parasiteneier nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a.
Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem Abstand zwischen den
Proben von 1-2 Tagen.
Hinweis: Trichuris trichiura ist in warmen Ländern neben Ascaris der am weitesten verbreitete Darmparasit des Menschen.
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Abdominalschmerzen, Übelkeit, Erbrechen, Durchfall (keine Herz-Lungen-Passage!)
Schistosomiasis
Synonym: Bilharziose
Geographische Verbreitung: Die Erreger der Bilharziose (Saugwürmer, Trematoda) sind mit
verschiedenen Arten in tropischen Ländern verbreitet. Die Zahl der Infizierten beträgt weltweit
ca. 200 Millionen.
Infektion: Die Infektion erfolgt beim Waten/Baden in Süßgewässern durch Penetration der
Parasitenlarven (Zerkarien) durch die intakte Haut. Die Adultwürmer sitzen in den Venen von
Darm bzw. Blase, die Eiablage beginnt nach 5-10 Wochen (Präpatenz).
Symptome: Darmbilharziose: Blutbeimengungen im Stuhl, Darmulzerationen, Colonpolypen.
Blasenbilharziose: Hämaturie, Proteinurie.
Diagnose: Die Diagnose beruht in erster Linie auf dem Nachweis der Eier im Stuhl bzw.
Urin.
Die Serologie hat ihren Stellenwert insbesondere während der Präpatenzzeit, in der noch
keine Eier ausgeschieden werden und bei schwachen oder älteren Infektionen, bei denen ein
Einachweis schwierig bzw. nicht mehr möglich ist.
Blasenbilharziose (Urin-Mikroskopie)
Bei V.a. Blasenbilharziose sind mehrfache Untersuchungen empfehlenswert, wobei die
Eiausscheidung um die Mittagszeit und nach körperlicher Anstrengung am höchsten ist.
Falls Urin nicht innerhalb von 1-2 h untersucht werden kann, 1ml 37% Formalin pro 100
ml Urin zugeben; Lagerung gekühlt.
Die Serologie hat wie bei der Darmbilharziose ihren Stellenwert insbesondere während
der Präpatenzzeit, in der noch keine Eier ausgeschieden werden und bei schwachen oder
älteren Infektionen bei denen ein Einachweis schwierig bzw. nicht mehr möglich ist.
Material: Urin mind. 10 ml, Endportion
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V. a. Blasenbilharziose
Darmbilharziose (Stuhl-Mikroskopie)
Da Parasiteneier nicht dauernd in für die Diagnose ausreichender Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem
Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen.
Die serolog. Diagnostik kann bei Neuinfektionen den einzigen diagnostischen Hinweis während der 1-3 monatigen Präpatenzzeit geben.
Material: Stuhl (Röhrchen zu einem Drittel gefüllt)
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
249
Mikrobiologie
Schistosomen-AK IFT (Adultwurm-Antigen)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V.a. kürzliche Schistosomen-Infektion, blutiger Stuhl, Hämaturie nach Aufenthalt
in Bilharziose-Gebieten (gesamter Tropengürtel, Südkorsika)
Referenzbereich: <1:10 Titer
Schistosomen-AK IFT (Zerkarien-Antigen)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V.a. kürzliche Schistosomen-Infektion, blutiger Stuhl, Hämaturie nach Aufenthalt
in Bilharziose-Gebieten (gesamter Tropengürtel, Südkorsika)
Referenzbereich: <1:10 Titer
Taenia sp. (Rinder/Schweinebandwurm)
Geographisches Vorkommen: weltweit, abhängig von der Form der Rinder-bzw. Schweinehaltung.
Infektion: Die Infektion erfolgt durch orale Aufnahme von Finnen (Zystizerken) in rohem oder
ungenügend gegartem Fleisch, was zum Auftreten adulter Bandwürmer im Darm des Menschen führt.
Symptome: Meist keine klinische Symptomatik oder unspezifische Beschwerden: Gewichtsverlust, Diarrhoe und/oder Obstipation, Pruritus ani, 'Hungerschmerz'.
Diagnose: Mikroskopischer Nachweis der im Stuhl befindlichen Proglottiden bzw. Eier, eine
Artdiagnostik ist anhand der Ei-Morphologie nicht möglich
Rinder-/Schweinebandwurm (Stuhldiagnostik-Mikroskopie)
Da Parasiteneier oder Proglotiden nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei V. a. Darmparasitenbefall drei Stuhlproben untersucht werden, mit einem
Abstand zwischen den Proben von 1-2 Tagen.
Material: Stuhl (Röhrchen zu einem Drittel gefüllt)
Methode: Lichtmikroskopie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
(F)
Taenien-AK IFT (Zystizerkose)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, Liquor 500 µl
Methode: IFT
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V.a. Zystizerkose
Referenzbereich: <1:10 Titer
(F)
Taenien-AK Blot (Zystizerkose)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml, Liquor 500 µl
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: V. a. Zystizerkose des ZNS
Referenzbereich: negativ
Toxokarose
Toxocara canis (Hundespulwurm)
Geographische Verbreitung: weltweit
Infektion: Die Übertragung erfolgt durch orale Aufnahme der Wurmeier, direkt vom Tier oder
indirekt z.B. durch Erde (Sandkasten), betroffen sind v.a. Kinder. Beim Menschen entwickeln
sich keine adulten Würmer, es entstehen lediglich Larven, die bis zu einem Jahr durch das
Gewebe wandern können (Larva migrans visceralis)
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Symptome: Häufiger als angenommen kommt es zu länger anhaltenden Störungen des Allgemeinbefindens mit unklaren Schmerzen, Anorexie, Hepatomegalie und Fieber. Typisch ist
auch eine Lungenbeteiligung mit Husten und asthmatischen Beschwerden. Bei Befall des ZNS
kommt es zu einer disseminierten Enzephalitis, als Komplikation kann eine diffuse subakute
Neuroretinitis hinzukommen, die typischerweise nur an einem Auge auftritt.
Diagnose: Der Nachweis einer Toxokarose ist nur auf serologischem Weg möglich.
Toxocara IgG-AK EIA
EIA-Nachweis mit einem exkretorisch-sekretorischen Antigen (ES-Antigen)
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: EIA
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: V.a. Toxokarose: Eosinophilie, Abdominalschmerzen, Husten, Asthma, einseitige Augeninfektionen , Chorioretinitis
Referenzbereich: negativ
Toxoplasmose (s. S. 85)
Trichinose
Geographische Verbreitung: weltweit
Infektion: Die Infektion erfolgt über die Aufnahme eingekapselter Larven über ungenügend
erhitztes Fleisch (meistens Schweinefleisch). Seit Einführung der Fleischbeschau sind Erkrankungen durch Trichinella spiralis in Deutschland sehr selten geworden.
Meldepflichtige Erkrankung!
Symptome: Darmphase: Gastroenteritis (Erbrechen, Durchfall) Muskelbefall: Muskelschmerzen, Ödeme, Eosinophilie, Intoxikationsphase: Myokarditis, Enzephalitis
Diagnose: Der mikroskopische Larvennachweis ist heute obsolet, die Labor -Diagnose erfolgt
nur noch auf serologischem Weg.
Trichinella spiralis-AK IFT
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: IFT
Ansatz: 1 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Indikation: Erbrechen, Diarrhoe, Muskelschmerzen, Augenödeme, Eosinophilie
Referenzbereich: <1:10
(F)
Trichinella spiralis-AK Blot
Material: Serum 500 µl, Vollblut 1 ml
Methode: Immunoblot
Ansatz: bei Bedarf
Indikation: Erbrechen, blutige Diarrhoe, Muskelschmerzen, Augenödeme
Referenzbereich: negativ
Trichomoniasis
Trichomonas vaginalis
Geographische Verbreitung: weltweit
Infektion: Sexuelle Übertragung, Schleimhautparasit im Urogenitalbereich
Symptome: weißlich schaumiger vaginaler Fluor, Brennen beim Wasserlassen und Harndrang,
beim Mann häufig asymptomatische Infektion
Diagnostik: Nukleinsäureamplifikation (NAT)
Hygieneuntersuchungen
Beinhaltet alle wesentlichen Untersuchungen in den Bereichen Krankenhaushygiene, Wasseruntersuchung und Sterilkontrollen. Versandmaterialien (Abklatsche, Tupfer, Bioindikatoren,
Probenentnahmegefäße) und Anforderungsscheine sowie Informationen zu Transport und
Lagerung der Proben sind in der Hygiene-Abteilung (Tel. 0711 / 6357-153) zu beziehen.
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Mikrobiologie
Mikrobiologische Untersuchung von Abklatschplatten (Rodacplatten)
Die kulturelle Untersuchung beinhaltet die quantitative Auswertung (KBE/Platte) und auf
Anforderung eine Differenzierung in Keimgruppen (z. B. Staphylokokken, Enterobacteriaceae,
Pseudomonaden) oder in Spezies (z. B. S. aureus, E. coli, P. aeruginosa).
Material: Abklatschplatte
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-7 Tage)
Indikation: Überprüfung von Desinfektionsmaßnahmen auf glatten Oberflächen, flächigen
Materialien (z. B. Wäsche)
Mikrobiologische Untersuchung von Abstrichen
Die Untersuchung beinhaltet die qualitative Auswertung einschl. Anreicherung mit Differenzierung in Keimgruppen (z.B. Staphylokokken, Enterobacteriaceae, Pseudomonaden) oder in
Spezies (z.B. S.aureus, E.coli, P.aeruginosa).
Bakteriologisches Transportmedium verwenden. Gekühlt lagern.
Material: Abstrichtupfer
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 4-7 Tage)
Indikation: Überprüfung von Desinfektionsmaßnahmen an schwer zugänglichen Stellen, von
denen keine Abklatsche gemacht werden können.
Mikrobiologische Untersuchung von Trinkwasser nach TVO
Die Untersuchung wird nach den jeweils gültigen Richtlinien bzw. Empfehlungen durchgeführt.
Wasser bzw. Trinkwasser muss durch geschulte Probenehmer entnommen werden. Hierbei
ist die aktuelle Probenahmeanleitung zu beachten. Pro Parameter 100 ml Probe einsenden.
Material: Wasser, Trinkwasser 100 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-5 Tage)
Indikation: Mikrobiologische Qualitätskontrolle von Trinkwasser.
Mikrobiologische Untersuchung von Wasserproben
Die Untersuchung von Trinkwasser, Schwimm- und Badebeckenwasser erfolgt entsprechend
den jeweils gültigen Richtlinien bzw. Empfehlungen. Auf Anforderung werden auch Einzeluntersuchungen (z. B. Keimzahlbestimmung, Untersuchung auf P. aeruginosa u. a.) durchgeführt.
Die Probenahme muss von geschulten Personen unter Beachtung der aktuell gültigen Probenahmeanleitung durchgeführt werden.
Material: Wasser ohne genauere Bezeichnung 100 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 3-5 Tage)
Indikation: Mikrobiologische Qualitätskontrolle von Wasserproben.
Mikrobiologische Untersuchung von Wasserproben auf Legionellen
Die Untersuchung wird nach der jeweils gültigen Trinkwasserverordnung und ggf. entsprechend den Empfehlungen des UBA durchgeführt und beurteilt.
Wasserproben zur Untersuchung auf Legionellen dürfen nur durch geschulte Probenehmer
entnommen werden. Dabei ist die aktuelle Probenahmeanleitung zu beachten.
Material: Wasser ohne genauere Bezeichnung 150 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 7-14 Tage)
Indikation: Mögliche Kontamination eines Wasserleitungssystems mit Legionellen.
MRSA-DNA (Schnelltest)
Das von uns eingesetzte molekularbiologische Verfahren bietet die Möglichkeit des simultanen
Nachweises sowohl des Resistenzgens (mecA), als auch einer speziesspezifischen chromo-
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Mikrobiologie
somalen DNA-Region. Dies ermöglicht die Abgrenzung von mecA-Gen exprimierenden "NichtS-aureus-Staphylokokken-Stämmen".
Während der Nachweis der Oxacillinresistenz mittels konventioneller Methoden in der Regel
2-3 Tage benötigt, ermöglicht der DNA-Schnelltest dies innerhalb eines Tages.
Material: Hautabstrich, Wundabstrich, Rachenabstrich, Nasenabstrich (jeweils trocken oder in
sterilem Röhrchen mit 1 ml NaC)
Methode: PCR
Ansatz: bei Bedarf (Bearbeitungszeit: 1 Tag)
Referenzbereich: negativ
Mikrobiologische Überprüfung von Desinfektionsgeräten
Je nach Desinfektionsgerät und -verfahren werden unterschiedliche Bioindikatoren eingesetzt (Desinfizierende Reinigung bei >90°/Chemothermische Reinigung bei >60°C: Enterococcus faecium entspr. RKI-Anforderungen; Endoskopwaschautomaten: Enterococcus faecium;
Dampfdesinfektion [z.B. Matratzen/Bettgestelle]: Bacillus subtilis bei 105°C EWZ >5min bzw.
E. faecium bei 75°C EWZ >20min; Bettenwaschanlagen: E. faecium. Die Untersuchung wird
nach den jeweils gültigen Normen bzw. Empfehlungen durchgeführt.
Transportkontrolle (TK) nicht mitsterilisieren; ansonsten ist die Untersuchung nicht beurteilbar
und muss wiederholt werden. Die Anzahl der Indikatoren ist abhängig von der Gerätegröße.
Material: Bioindikator
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Indikation: Periodische Prüfung von Desinfektionsgeräten/-anlagen nach RKI-Empfehlung;
außerordentliche Prüfung nach Inbetriebnahme des Geräts oder nach Reparaturen bzw.
Umbauten.
Mikrobiologische Überprüfung von Sterilisatoren
Je nach Sterilisationsverfahren werden unterschiedliche Bioindikatoren verwendet. Die Auswahl richtet sich nach der jeweils gültigen Norm.
Hinweis: Transportkontrolle (TK) nicht mitsterilisieren; ansonsten ist die Untersuchung nicht
beurteilbar und muss wiederholt werden. Indikatoren gekühlt lagern. Die Mindestanzahl der
Bioindikatoren pro Prüfung richtet sich nach dem Fassungsvermögen der Geräte.
Material: Bioindikator
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Indikation: Periodische Prüfung von Sterilisationsgeräten/-anlagen nach RKI-Empfehlung;
außerordentliche Prüfung nach Inbetriebnahme des Geräts oder nach Reparaturen bzw.
Umbauten.
Mikrobiologische Überprüfung von Maschinen für Krankenhauswäsche
Überprüfung von Desinfektionswaschmaschinen für Wäsche entsprechend den jeweils gültigen Normen bzw. Richtlinien; Prüfset: Testkeim E. faecium, 10 Abklatschplatten für Trockenwäsche.
Anzahl in Abhängigkeit von der Gerätegröße
Material: Bioindikator, Abklatschplatte
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Indikation: Funktionskontrolle von Waschmaschinen für Krankenhauswäsche
Mikrobiologische Überprüfung von Geschirrspülmaschinen
Überprüfung von Mehrtanktransportgeschirrspülmaschinen; Prüfset enthält 9 Bioindikatoren +
1 Transportkontrolle, 10 Abklatschplatten für Spülgut, 1 Transportgefäß für Wasser der letzten
Reinigungsflotte.
Material: Bioindikatoren/Abklatschplatten/Wasser
Methode: Kultur
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
253
Mikrobiologie
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Indikation: Überprüfung von Geschirrspülmaschinen hinsichtlich ihrer antibakteriellen Leistung
Mikrobiologische Untersuchung von Endoskopen
Die Untersuchung sollte in vierteljährlichen Abständen durchgeführt werden. Im Vordergrund
steht die Untersuchung von Flüssigkeiten, mit denen die Endoskopkanäle nach Endoskopaufbereitung gespült werden. Von Stellen, die der Reinigung und Desinfektion schwer zugänglich sind, werden darüber hinaus Abstriche entnommen. Der Schwämmchentest (Durchzug
eines Schaumstoffschwämmchens durch den Instrumentierkanal) dient in der Regel lediglich
der visuellen Kontrolle auf makroskopisch sichtbare Verunreinigungen. Die Prüfung sollte entsprechend den RKI-Empfehlungen (2002) durchgeführt werden (im Hygienelabor erhältlich).
Material: Spülflüssigkeit/Tupfer 20 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 5 Tage)
Indikation: Kontrolle der Aufbereitung von Endoskopen
Mikrobiologische Untersuchung von Desinfektionsmittellösungen
Desinfektionsmittel werden i. d. R. in Anwendungskonzentration untersucht. Die Untersuchung
beinhaltet eine Filtration. Probenvolumen 100 ml (bzw. 10 ml bei Tuchspendersystemen).
Material: Desinfektionsmittellösung 100 bzw. 10 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 7 Tage)
Indikation: V. a. bzw. z. A. einer bakteriellen Kontamination von Desinfektionsmittellösungen
Mikrobiologische Untersuchung von Leukapheresaten
Untersuchung von Leukapheresaten auf mikrobielle Kontamination entsprechend den Mitteilungen des BMG (V 1607/1997).
Material: Beimpfte Blutkulturflaschen 50 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 10 Tage)
Indikation: Sterilitätskontrolle
Mikrobiologische Untersuchung von Hämodialyseflüssigkeiten
Bitte folgende Terminologie verwenden: Permeat (entmin. Wasser zum Verdünnen von Hämodialysekonzentraten), Dialysierflüssigkeit (Permeat+Hämodialysekonzentrat), Dialysat (Dialyseprodukt), Konzentrat (Hämodialysekonzentrat). Die Untersuchung wird entsprechend den
Leitlinien der Dt. Gesellschaft für angewandte Hygiene in der Dialyse e.V. (3. Aufl. 2013) durchgeführt.
Material: Dialyseflüssigkeiten 100 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 8 Tage)
Indikation: Mikrobiologische Kontrolle von Dialyseflüssigkeiten
Mikrobiologische Untersuchung von Sterillösungen
Untersuchung von steril hergestellten Lösungen auf Keimfreiheit mittels Direktbeschickung
und/oder Membranfiltration.
Material: Sterillösungen 100 ml
Methode: Kultur
Ansatz: täglich (Bearbeitungszeit: 14 Tage)
Indikation: Prozessvalidierung.
Endotoxinnachweis (LAL)
(F)
Nachweis von Endotoxinen durch den Limulus-Amöbozyten-Lysat-Test
Pyrogenfreies Abnahmesystem verwenden; Proben nach Entnahme kühlen (2-8°C).
Material: Dialyseflüssigkeiten 10 ml
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
Mikrobiologie
Methode: Limulus-Assay
Ansatz: 2 x pro Woche (Bearbeitungszeit: 3-6 Tage)
Indikation: Prüfung von Flüssigkeiten zur Hämodialyse bei Neuinbetriebnahme von Dialysegeräten oder zur Abklärung pyrogener Reaktionen bei unauffälliger Keimzahl
Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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Labor Prof. Gisela Enders MVZ GbR
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