Vom Ei zum Embryo: Die erste Weiche stellt der Zufall - Max

Dietrich, Jens-Erik; Hiiragi, Takashi | Vom Ei zum Embryo: Die erste Weiche stellt der Zufall
Tätigkeitsbericht 2007
Vom Ei zum Embryo: Die erste Weiche stellt der Zufall
Dietrich, Jens-Erik; Hiiragi, Takashi;
Max-Planck-Institut für molekulare Biomedizin, Münster
Korrespondierender Autor
Hiiragi, Takashi
E-Mail: [email protected]
Zusammenfassung
Die Natur hat es Säugern nicht leicht gemacht. Zwar gehen sie wie jedes Wirbeltier aus einer befruchteten Eizelle hervor. Doch anders als bei Fisch oder Frosch kann der Embryo allein nicht gedeihen.
Nur wenn es ihm nach wenigen Teilungen gelingt, sich mit seinen äußeren Zellen in der Gebärmutter
einzunisten, wächst aus den inneren ein Fötus heran. Lange war unklar, wann die Embryo-Zellen erstmals verschiedene Wege einschlagen. Forscher des MPI für molekulare Biomedizin sind der Antwort
jedoch ein gutes Stück näher gekommen.
Abstract
Nature hasn’t made things easy for mammals. Admittedly, as any other vertebrate – they develop from
a fertilised egg, but unlike fish or frogs, the embryo cannot prosper by itself. Only if it succeeds, after
having divided a couple of times, in implanting with its outer cells in the womb, its inner cells will
create a foetus. It has long been unclear as to when and how the cells of an embryo pursue various
lineages. Scientists of the MPI for Molecular Biomedicine in Münster have now advanced a great deal
towards unravelling this mystery.
Einleitung
Der Start ins Leben eines Menschen beginnt mit einer Verschmelzung: Kurz nachdem ein Spermium
in eine reife Eizelle eingedrungen ist, treffen die Chromosomen von Ei- und Samenzelle aufeinander.
Etwa 30 Stunden danach teilt sich die befruchtete Eizelle zum ersten Mal – ein Vorgang, der sich
von nun an etwa alle 20 Stunden wiederholt. Aus zwei werden vier, acht und schließlich 16 Zellen
(Abb. 1). Noch ist die Zellkugel gegenüber der Eizelle, die gerade einmal einen Zehntelmillimeter
misst, kaum gewachsen. Doch drei bis vier Tage nach der Befruchtung erreicht der Embryo die Gebärmutter: Ein Flüssigkeitsstrom sowie Härchen im Eileiter haben ihn dorthin befördert.
Abb. 1: Vom Ei zum Embryo: Bevor sich eine befruchtete Eizelle (1. Bild von links) in die Gebärmutter einnisten
kann, muss sie sich mehrfach teilen (2. Bild von links: 2-Zell-Stadium; 3. Bild: 4-Zell-Stadium, 4. Bild: 8-ZellStadium) und eine charakteristische Hohlkugel bilden (rechtes Bild). Bei der Maus – wie hier gezeigt – ist die
so genannte Blastozyste binnen viereinhalb Tagen nach der Befruchtung zur Implantation bereit.
Urheber: Max-Planck-Institut für molekulare Biomedizin/Dietrich;Hiiragi,
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In diesem Stadium kommt Bewegung in die Kugel: Flüssigkeit dringt in ihr Inneres und drückt die
Embryo-Zellen auseinander. Der Embryo heißt nun Blastozyste und besteht schon aus etwa 64 Zellen. Sie werden flacher und kompakter und bilden schließlich eine Hohlkugel aus zwei Zellschichten:
dem äußeren Trophoblasten und dem inneren Embryoblasten. Damit hat sich im Embryo die erste
entscheidende Weichenstellung vollzogen. Zumindest grob sind jetzt schon die Aufgaben unter den
Zellen verteilt [1]: aus dem Trophoblasten wird die äußere Embryonalhülle und später ein Teil des
Mutterkuchens (Plazenta), der den Keim umgibt und ihn mit Sauerstoff und Nährstoffen versorgt, und
aus einem Teil der inneren Zellen, von denen sich embryonale Stammzellen ableiten lassen, entwickelt
sich das Kind. Diese Zellen verfügen über eine faszinierende Eigenschaft namens Pluripotenz – die
Fähigkeit, jeden der mehr als 200 verschiedenen Zelltypen des Körpers zu bilden.
Nach etwa fünf Tagen besteht die Blastozyste aus gut 100 Zellen. Um weiter wachsen und gedeihen
zu können, muss sie sich in der Gebärmutter, dem Uterus, einnisten und Kontakt mit dem Blutkreislauf
der Mutter aufnehmen. Dazu sondern die Trophoblast-Zellen Enzyme ab, die einige Zellen in der
obersten Schicht der Gebärmutterschleimhaut auflösen. Der Embryo kann sich nun in das Bindegewebe
der Schleimhaut schieben. Über ihm wachsen neue Hautzellen und schließen die „Wunde“.
Während dieses Einnistens nimmt der Embryo Proteine, Zucker, Fette und Reste der zerstörten
Schleimhaut auf. Das hat Folgen: Sein Durchmesser wächst auf mehr als das Doppelte. Im Trophoblasten entstehen kleine, mit Blut gefüllte Hohlräume (Lakunen). Schließlich lösen die Zellen des
Trophoblasten die mütterlichen Blutgefäße in der Gebärmutterschleimhaut teilweise auf. Am Ende
der zweiten Woche kann daraufhin mütterliches Blut in die Lakunen einströmen und sie durch kleine
Blutgefäße wieder verlassen. Auf diese Weise wird der Embryo von nun an rund neun Monate lang
von der Mutter mit allen lebensnotwendigen Ressourcen versorgt.
Die entscheidende Schicht
Was so ausgeklügelt und perfekt abgestimmt klingt, ist tatsächlich eine Meisterleistung der Evolution.
Eine maßgebliche Rolle spielt dabei der Trophoblast, eine Struktur, die nur bei höheren Säugetieren
vorkommt und deshalb auch ein Schlüsselmerkmal dieser Tierklasse ist. Diese Zellschicht ermöglicht
nicht nur die Einnistung des Embryos in die Gebärmutter. Die Plazenta, die daraus hervorgeht, bildet
auch eine immunologische Barriere und erlaubt dadurch ein langes Heranwachsen der Nachkommen
im Mutterleib.
Doch wie entstehen die ersten Unterschiede zwischen den Zellen? Woher wissen sie, welche von ihnen
nach innen wandern und den Organismus und welche die Plazenta bilden sollen? Genau diesen Fragen
gehen die Forscher der Nachwuchsgruppe von Takashi Hiiragi in Untersuchungen an befruchteten
Eizellen von Mäusen auf den Grund. Auf den ersten Blick haben die Nager mit dem Menschen zwar
nicht allzu viel gemein. Dennoch ähneln sich ihre Gene, Organe und Zellen so weit, dass sich viele der
daraus gewonnenen Erkenntnisse zumindest teilweise auch auf den Menschen übertragen lassen.
Um den Antworten auf ihre Fragen auf die Spur zu kommen, haben Hiiragi und Jens-Erik Dietrich in
zahlreichen Experimenten analysiert, wann die ersten Unterschiede zwischen den Zellen im frühen
Maus-Embryo auftauchen. Zunächst haben die Wissenschaftler dazu die Eigenschaften und die Position der einzelnen Zellen im frühen Embryo im Verlauf der Zellteilungen verfolgt.
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Die Menge macht’s
Dazu untersuchten Hiiragi und Dietrich, in welchen Mengenverhältnissen drei Proteine namens Oct4,
Cdx2 und Nanog in den einzelnen Zellen vorliegen. Alle drei Faktoren sind als wichtige Regulatoren
der Embryonalentwicklung bekannt [2–4]. Zudem wusste man bereits, dass die Proteine im 8-ZellStadium, wenn sich die befruchtete Eizelle drei Mal geteilt hat, noch in allen Zellen zu finden sind [1].
Schon wenige Teilungen später, wenn die Blastozyste bereits aus 64 bis 128 Zellen besteht und zwei
klar unterscheidbare Zellschichten ausgebildet hat, sind die Eiweiße jedoch nur noch in der inneren
Zellmasse (Oct4 und Nanog), oder aber ausschließlich in den äußeren Zellen (Cdx2), dem Trophoblasten, zu finden. Diesen markanten Unterschied machten sich die Forscher zunutze, um die molekularen Mechanismen aufzuklären, die das Schicksal der Zellen im Embryo in den ersten Lebenstagen
festlegen (Abb. 2).
Abb. 2: Frühzeitige Lagerbildung: Bei der Entwicklung vom 16-Zell-Stadium (links) über die mittlere (Mitte) zur
späten Blastozyste (rechts) sortieren sich die Zellen (rot: Zellhüllen) eines Maus-Embryos scheinbar von selbst.
Gesteuert wird der Vorgang jedoch durch Veränderungen im Innern der Zellen. Das zeigt der Vergleich einer
Anfärbung des Proteins Cdx2 (obere Bildreihe; weiß) mit einer Färbung des Erbmaterials DNA (untere Bildreihe,
weiß). Zunächst sind die Cdx2-Mengen in den Zellen noch variabel. Zellen, die außen liegen, enthalten aber
schon etwas mehr Cdx2 als jene weiter innen. Im nächsten Stadium (Mitte) bilden nur noch jene Zellen Cdx2,
die außen liegen. In der späten Blastozyste (rechts) ist der erste Sortierungsprozess abgeschlossen – die Zellen
im Innern der Hohlkugel sind nur in der DNA-Färbung richtig erkennbar.
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In einem ihrer Experimente isolierten die Max-Planck-Forscher dazu einzelne Zellen aus Mausembryonen, die sich gerade im 8-Zell-Stadium befanden [5, 6]. Anschließend brachten die Forscher
die isolierten Zellen in der Kulturschale dazu, sich ein oder zwei weitere Male zu teilen. Aus einigen
der Zellen gingen zwei gleich große Tochterzellen hervor. Sie hatten sich also symmetrisch geteilt.
Die anderen Zellen dagegen hatten sich asymmetrisch geteilt und zwei unterschiedlich große Tochterzellen gebildet.
Ungleiche Töchter
Welcher Mechanismus darüber entscheidet, ob sich eine Zelle symmetrisch oder asymmetrisch teilt,
ist unklar. Fest steht jedoch, dass mit der asymmetrischen Teilung im Inneren der Zellen eine entscheidende biochemische Veränderung eintritt [5]. Wie die Proteinanalysen der Forscher zeigten, enthielten
zwar Tochterzellen – ob symmetrisch oder asymmetrisch geteilt – in etwa dieselbe Menge an Nanog.
Bei den in den Zellen enthaltenen Mengen an Cdx2 zeigte sich jedoch ein deutlicher Unterschied:
Wenn sich eine Zelle asymmetrisch geteilt hatte, fand sich in der größeren Tochterzelle stets eine
höhere Konzentration an Cdx2 als in der kleineren [6].
Zudem bildeten die Zellen, nachdem sie sich zwei Mal in der Kulturschale geteilt hatten, Mini-Blastozysten aus vier Zellen. Die Zellen, die außen lagen, wiesen dabei stets mehr Cdx2 auf als die inneren
(Abb. 3). Die Forscher schließen aus dieser Beobachtung, dass zunächst die Art der Zellteilung darüber entscheidet, wie hoch die Cdx2-Konzentation in den Zellen ist. Das Proteinmuster, das sich daraus
ergibt, bestimmt anschließend darüber, ob sich die Zelle ins Innere oder aber an die äußere Oberfläche
der wachsenden Blastozysten-Kugel bewegt.
Abb. 3: Aus dem 8-Zell-Stadium isolierte Zellen teilen sich und organisieren sich selbst zu „Mini-Blastozysten“:
Zellen mit viel Cdx2 (weiß, links) orientieren sich eher außen. Das Protein Nanog (weiß, Mitte) beeinflusst die
Position der Zellen nicht. Die Ränder der einzelnen Zellen sind rot angefärbt. Rechts: DNA-Färbung (weiß).
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Erstaunlicherweise, so stellten die Forscher fest, ist die Anzahl der Zellen eines Embryos, die eine
asymmetrische Teilung durchlaufen, sehr variabel. Offenbar, so vermuten die Forscher, ist diese
Variabilität in der Art der Zellteilung für die Bildung der Blastozyste unerheblich. Die Prozesse, die
die Proteinmuster in den Zellen bestimmen, sind in ihrer Regulation demnach enorm flexibel.
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Der Zufall stellt die Weichen
Hiiragis und Dietrichs Befunde widerlegen damit eine von etlichen Wissenschaftlern gehegte Annahme, dass in jeder Eizelle bereits zum Zeitpunkt ihrer Befruchtung eine Teilungsachse und damit auch
alle weiteren Teilungsschritte in ihrer Geometrie festgelegt sind [7]. Die jüngsten Ergebnisse sprechen
nach Ansicht der Münsteraner Forscher vielmehr dafür, dass die Zellen des frühen Embryos ihr jeweiliges „molekulares Profil“ nach dem Zufallsprinzip erhalten [8].
Tatsächlich ist es damit der Zufall, der die Weichen für die gesamte weitere Entwicklung stellt. Erst
sind die Konzentrationsunterschiede der maßgeblichen Proteine noch gering, bald werden sie immer
größer, bis am Ende eine klare Polarität entsteht: Jene Zellen, die im Laufe der Blastozystenbildung
nach außen driften, entwickeln sich zum Trophoblasten, der ein Teil der Plazenta wird und nach der
Geburt mit ihr untergeht [6]. Sehr interessant sind auch die embryonalen Stammzellen, die sich aus
dem Inneren der Blastozyste ableiten lassen.
Seit langem weiß man, dass aus jeder dieser Stammzellen jeder der mehr als 200 verschiedenen
Zelltypen des Körpers hervorgehen kann. Noch ist allerdings weitgehend ungeklärt, auf welchen
molekularen Faktoren diese so genannte Pluripotenz beruht. Das herauszufinden, ist jedoch nicht nur
für Grundlagenforscher interessant. Würde es zum Beispiel gelingen, ausgereifte Körperzellen wieder gezielt in solche Alleskönner zu verwandeln, böten sich auch enorme Chancen für die Medizin.
Erstmals könnte es dann möglich werden, bislang unheilbare Krankheiten wie Parkinson oder Diabetes
mithilfe patienteneigener, gesunder Ersatzzellen zu behandeln.
Zell-Klau mit unklaren Folgen
Möglicherweise geben die Untersuchungen der Münsteraner Max-Planck-Forscher aber bald auch
noch Antworten auf eine ganz andere Frage. In vielen Ländern nehmen Reproduktionsmediziner seit
Jahren im Rahmen der künstlichen Befruchtung genetische Tests an Embryonen vor. Bei dieser so
genannten Präimplantationsdiagnostik (PID), die in Deutschland verboten ist, wird dem wenige Tage
alten Embryo im Labor eine einzelne Zelle für die Gen-Analyse entnommen. Ergibt der Test einen
ungünstigen Befund, wird der Keimling nicht in die Gebärmutter der Frau eingesetzt und man lässt
ihn absterben. Finden sich im Erbgut des Embryos keine Defekte, wird er in den Uterus eingesetzt.
Bisher geht man davon aus, dass der Zell-Klau dem Embryo in der Regel nicht schadet. Denn inzwischen wurden schon etliche PID-Kinder geboren. Sicher wissen kann es bisher jedoch niemand. Denn
verlässliche Statistiken über Fehlgeburten und fehlgeschlagene In-vitro-Fertilisationen gibt es bislang
nicht [9].
Fraglich ist zudem, wie es um jene Zelle steht, die für den Gentest entnommen und zur Analyse
zwangsläufig zerstört werden muss: Bisher nämlich kann niemand wissen, ab welchem Teilungsschritt
die einzelnen Zellen des Embryos ihre Totipotenz verlieren [9]. Darunter versteht man die Fähigkeit,
in geeigneter Umgebung zu einem kompletten Individuum heranwachsen zu können.
Mehrere Untersuchungen deuten darauf hin, dass jede der vier oder acht Zellen, die nach der zweiten
und dritten Teilung entstanden sind, noch totipotent ist [8, 10]. Weitere Untersuchungen wie jene von
Hiiragi und Dietrich werden jedoch zeigen müssen, ab wann das Schicksal der Zellen endgültig festgelegt ist.
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Literaturhinweise
[1] Y. Yamanaka, A. Ralston, R. O. Stephenson, J. Rossant:
Cell and molecular regulation of the mouse blastocyst.
Developmental Dynamics 235, 2301–2314 (2006).
[2] J. Nichols, B. Zevnik, K. Anastassiadis, H. Niwa, D. Klewe-Nebenius, I. Chambers, H. Schöler,
A. Smith:
Formation of pluripotent stem cells in the mammalian embryo depends on the POU transcription
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Cell 95, 379–391 (1998).
[3] D. Strumpf, C. A. Mao, Y. Yamanaka, A. Ralston, K. Chawengsaksophak, F. Beck, J. Rossant:
Cdx2 is required for correct cell fate specification and differentiation of trophectoderm in the
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Development 132, 2093–2102 (2005).
[4] K. Mitsui, Y. Tokuzawa, H. Itoh, K. Segawa, M. Murakami, K. Takahashi, M. Maruyama,
M. Maeda, S. Yamanaka:
The homeoprotein Nanog is required for maintenance of pluripotency in mouse epiblast
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Cell 113, 631–642 (2003).
[5] M. H. Johnson, C. A. Ziomek:
The foundation of two distinct cell lineages within the mouse morula.
Cell 24, 71–80 (1981).
[6] J.-E. Dietrich, T. Hiiragi:
Stochastic patterning in the mouse pre-implantation embryo.
Development 134, 4219–4231 (2007).
[7] G. Vogel:
Embryology. Embryologists polarized over early cell fate determination.
Science 308, 782–783 (2005).
[8] V. B. Alarcon, Y. Marikawa:
Spatial alignment of the mouse blastocyst axis across the first cleavage plane is caused by
mechanical constraint rather than developmental bias among blastomeres.
Molecular Reproduction and Development, Jan 14, Epub ahead of print (2008).
[9] PID, PND, Forschung an Embryonen.
Aufsätze, Berichte, Diskussionsbeiträge, Kommentare im Deutschen Ärzteblatt.
Beiträge aus den Jahren 2000 bis 2003. 3., erweiterte Auflage der Dokumentation.
www.aerzteblatt.de/dossiers/embryonenforschung
[10] M. H. Johnson, J.M. McConnell:
Lineage allocation and cell polarity during mouse embryogenesis.
Seminars in Cell & Developmental Biology 15, 583–597 (2004).
Drittmittelfinanzierung
Diese Forschung wurde durch das Schwerpunktprogramm 1109 der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG) und die Lalor Foundation (T.H.) gefördert. Ein Teil der Arbeiten wurde am Max-PlanckInstitut für Immunbiologie (Freiburg) durchgeführt.
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