Viren mit einzelsträngigem, segmentiertem RNA-Genom in Negativstrang-Orientierung (-)RNA Viren Familien Bekannter Vertreter Orthomyxoviridae Influenzavirus Bunyaviridae Hantaanvirus Arenaviridae Lassavirus Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Zoonosen (-)RNA Viren Krankheiten und Infektionen, die natürlicherweise zwischen Wirbeltiere und Menschen übertragen werden können. Erreger können von Insekten übertragen werden. Definition der” World Health Organization” Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Minus-Strang RNA Viren (-)RNA Viren Gemeinsamkeiten •Einzelstrang RNA Genom mit negativer Polarität; •RNA muss erst umgeschrieben werden (transkribiert) werden, bevor sie zur Synthese von Proteinen verwendet werden kann. •Genome kodieren für eine RNA-abhängige RNA Polymerase, die für die Synthese von mRNAs und für die Replikation des viralen Genoms verantwortlich ist. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Expression und Replikation von viralen segmentierten (-) Strang RNA Genome Protein (-)RNA Viren Expression Translation mRNA (+) 5’ C 3’ Transkription RNA-Genom (-) 3’ 5’ Replikation RNA (+) 5’ 3’ RNA-Genom (-) 3’ 5’ Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Expression und Replikation von viralen ambisense Genomsegementen (-)RNA Viren Protein Translation mRNA (+) RNA-Genom (-) RNA (+) 5’ C ORF1 Molekulare Virologie 3’ 3’ 5’ 5’ 3’ Transkription Replikation RNA-Genom (-) Intergenic sequences 3’ 3’ ORF 2 C 5’ Translation mRNA (+) 5’ © 2010 by Ruth Brack-Werner „Stehlen“ von 5‘Cap-Strukturen von zellulären mRNAs (Cap-Snatching) (-)RNA Viren Die CAP-Struktur spielt eine essentielle Rolle 1. Splicing der mRNA; 2. Export der mRNA aus dem Zellkern; 3. Translation der mRNA; 4. Schutz der mRNA vor Abbau 5’Ende der mRNA Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner „Capping“ bei Orthomyxo-, Bunya- und (-)RNA Viren Arenviren http://pathmicro.med.sc.edu/mhunt/RNA-HO.htm Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Orthomyxoviridae (-)RNA Viren Ortho: “ Echt, richtig” (im Gegensatz zu Paramyxoviren) Myxo: “Schleim” Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Humanpathogene Beispiele aus der Familie der Orthomyxoviridae Familie Orthomyxoviridae Genus Influenzavirus A Influenzavirus B Influenzavirus C Thogotovirus Isavirus 1 Molekulare Virologie (-)RNA Viren Wirt Mensch, Vogel, Sugetiere (u.a. Schwein, Pferd) Mensch, Robben Mensch, Schwein † bertragung durch Zecken auf Sugetiere; Lachs1; Verursacht infektiöse Anämie der Lachse © 2010 by Ruth Brack-Werner Orthomyxoviridae: Aufbau der Viruspartikel (-)RNA Viren 130-200* 100* 500* 20-60* 3000* Je 30-60* 1000* Ungefähre *Anzahl Moleküle pro Virion (Influenza A) Molekulare Virologie Fields Virology 4th edition, 2002, Chapter 41, Lippincott, Williams and Wilkins, 2002 Fig. 46-1 © 2010 by Ruth Brack-Werner Orthomyxoviridae (-)RNA Viren (elektronen mikroskopische Aufnahme) www.influenzacentre.org/ images.htm Unterschiedliche Grössen und Formen von Influenzaviren (pleomorph). Sphären: 50-120 nm Durchmesser Filamente: 20 nm Durchmesser; 200-300 (bis zu 3000!) nm lang Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Genomsegmente des Influenza A Virus Segment Lnge (kB) Proteine Ges. mRNA Name Berechn. Funktion 1 2 3 4 2,341 2,341 2,233 1,778 2,320 2,320 2,211 1,757 PB2 PB1 PA HA MW (kD) 85,7 86,5 84,2 61,5 5 1,565 1,540 NP 56,1 6 1,413 1,392 NA 50,1 7 1,027 8 0,890 1,005 0,315 0,868 M1 M2 NS1 27,7 11,0 0,395 NS2 14,2 Polymerase Anheftung an und Fusion mit Wirtszelle; HauptAntigene Determinante Bindet an RNA: Umschaltung zw. mRNA/Genom Synthese Neuraminidase; Antigene Determinante Matrix H+ Kanal Regulationsfaktor; hemmt zellul. mRNA Prozess. u. IFN Antwort Kernexport von RNPs Membranproteine der Orthomyxoviridae: (-)RNA Viren Generelle Merkmale Fields Virology 4th edition, 2002, Chapter 46, Lippincott, Williams and Wilkins, 2002 Fig. 46-6 Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Hämagglutinin-Trimer (-)RNA Viren HämagglutininTrimer 16 verschiedene Antigen-Typen Anheftung des Virus an die Zellmembran Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner http://www.bme.jhu.edu/~kjyarema/monosaccharides/natural%20si alic%20acids/natural%20sialic_acids.htm Sialylsäuren dienen als Rezeptoren für die Anheftung von Orthomyxoviren (-)RNA Viren Molekulare Virologie Haüfigste Form der Sialylsäure beim Menschen © 2010 by Ruth Brack-Werner (-)RNA Viren http://www.bme.jhu.edu/~kjyarema/monosaccharides/natural%20si alic%20acids/natural%20sialic_acids.htm Sialylsäuren sind weitverbreitet auf Zelloberflächen Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviren: Hämagglutinin (HA) (-)RNA Viren (1) Kontakvermittlung zwischen Wirtszelle und Virus: Binden an Sialyl-Säuren auf Zelloberflächenmoleküle; (2) Freisetzung der Nukleokapside im Zellinneren: Vermittelt nach pH-abhängiger Konformationsänderung die Fusion der Virus-Membran mit der Endosomen-Membran. (3) Haupt-Antigen des Virus: Haupt Zielprotein für die Bindung von neutralisierenden Antikörpern (verhindert Bindung des Virus an zelluläre Rezeptoren). (4) Verschiedene Subtypen: 16 HA Subtypen des Influenza A virus; unterschiedliche Antigenität, Aminosäuresequenzen, Rezeptorerkennung und Spaltbarkeit durch Proteasen. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteolytische Aktivierung von HA: Spezifität der Spaltregion für Wirts-Proteasen (-)RNA Viren bestimmt Pathogenität von Vogel-Influenzaviren. (z.B. Furin) Horimoto T and Kawaoka Y. 2005. Nature Reviews Microbiology 3, 591-600. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviren: Neuraminidase (NA) (-)RNA Viren (1) Abspaltung von Sialyl-Säure Resten; • Verhindert in infizierten Zellen die Anheftung des Virus an der Zellmembran und fördert damit die Freisetzung des Virus; • Verhindert Verkleben der Viruspartikel? • Fördert Transport des Virus durch die Mucin-Schicht am Epithel des Atmungstraktes. (2) Virus-Antigen; (3) Verschiedene Subtypen. 9 NA Subtypen des Influenza A virus; Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviren: Neuraminidase (NA) (-)RNA Viren Influenza Virus adhäriert an Flimmerepithelzelle Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviridae: M2 Amantadin (-)RNA Viren (1) Tetramer (2) Ionenkanal (H+) (3) Reguliert pH Wert in der unmittelbaren Virusumgebung: • Ansäuerung des Virusinneren im Endosom => Freisetzung der Nukleokapside • Verhindert pH-bedingte Konformationsänderungen von HA Fields Virology 4th edition, 2002, Chapter 46, Lippincott, Williams and Wilkins, 2002 Fig. 46-13 Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviren: Matrixprotein (M1) (-)RNA Viren (1) Stablisiert die Lipidhülle; (2) Wechselwirkungen: • untereinander; • mit den nach innen gerichteten Teilen der Lipidproteine (HA, NA,M2); • mit den Nukleokapsiden. (3) Fördern die Verpackung der Nukleokapside in die entstehenden Viruspartikel. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviren: Nukleokapsid (NP) (-)RNA Viren (1) RNA Bindung (reich an Argininen); (2) Beteiligung am Import der Nukleokapside in den Kern (NLS). (3) Reguliert RNA Synthese: Wichtig für die Umstellung von mRNA Synthese auf die Genomreplikation. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviren: Polymeraseproteine (PB1,PB2,PA) (-)RNA Viren (1) RNA-abhängige RNA polymerase: Hetero-trimerer Proteinkomplex; (2) Assoziiert mit den Enden der Genomsegmente; (3) Jedes Protein hat Kernlokalisationssignale; (4) Funktionen der einzelnen Proteine: • PB2: Herstellung des Primers für die mRNA Synthese (“cap snatching”); • PB1: Polymeraseaktivität, Elongation; • PA: Wichtig für die Synthese der Virusgenome; spielt möglicherweise eine Rolle für die Primer-unabhängige Initiation der cRNA (+) bzw. vRNA (-) Synthese. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviren: Polymerase Proteine sind ein Teil des Ribonukleoproteins (RNP) Molekulare Virologie (-)RNA Viren © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviren: Nichtstrukturproteine (NS1; NEP) (-)RNA Viren (1) NS1: • Bisher nur in infizierten Zellen nachgewiesen; • Hemmt Kernexport und Splicing von zellulären mRNAs; • Verhindert die Expression von Interferongenen und die Aktivierung von NF-kappaB. (2) Nuclear Export Protein (ehemals NS2 genannt): • Export der Nukleokapside aus dem Zellkern in das Zytoplasma; • In geringer Kopienzahl im Viruspartikel nachweisbar; (3) Weitere Nichtstrukturproteine: • PB1-F2 (Influenza A); akkumuliert in Mitochondrien; induziert Apoptose. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Proteine der Orthomyxoviridae: Nuclear Export Protein (-)RNA Viren Nukleokapsid Fields Virology 4th edition, 2002, Chapter 46, Lippincott, Williams and Wilkins, 2002 Fig. 46-21 Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Influenza mRNA Synthese durch den viralen Polymerasekomplex (PB1,PB2,PA) (-)RNA Viren 1 5 2 6 3 4 Principles of Virology, 2004. Flint SJ, Enquist LW, Racaniello VR,Skalka AM, 2nd edition. ASM Press. Fig. 6.11. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Influenzavirus mRNA Synthese: Splicing (-)RNA Viren RF 0 RF 0 RF +1 RF +1 Segment 7 Fields Virology 4th edition, 2002, Chapter 46, Lippincott, Williams and Wilkins, 2002 Fig. 46-9 Molekulare Virologie Segment 8 Fields Virology 4th edition, 2002, Chapter 46, Lippincott, Williams and Wilkins, 2002 Fig. 46-14 © 2010 by Ruth Brack-Werner 1. Anheftung; Endozytose; pH ca. 5 2. Membranfusion; Freisetzung der Nukleokapside 3. Import der Nukleokapside in den Zellkern 4.-6. Virale mRNA synthese, splicing, Export der mRNA i.d. Zytoplasma 7. Synthese von HA, NA, M2 am ER 8.-9. Synthese der anderen Protein im Zytolasma 10. Import von PA,PB1,PB2 und NP in d. Kern; 11.-12. Synthese d. +RNA Matritze und -RNA Genome 10b. Import von von M1 und NS in den Kern; Zusammenbau d. Nukleokapside 14. Export in d. Zytoplasma 15.-16. Einbau von HA, NA und M2 in die Zellmembran; 17.-18. Assoziation der Nukleokapside mit Hüllproteine über M1. 19. Abknospung des Virus. Principles of Virology, 2004. Flint SJ, Enquist LW, Racaniello VR,Skalka AM, 2nd edition. ASM Press. Appendix Fig. 9 Influenzavirus A Reservoirs (-)RNA Viren The reservoir of influenza A viruses. The working hypothesis is that wild aquatic birds are the primordial reservoir of all influenza viruses for avian and mammalian species. Transmission of influenza has been demonstrated between pigs and humans (solid lines). There is extensive evidence for transmission between wild ducks and other species, and the five different host groups are based on phylogenetic analysis of the nucleoproteins of a large number of different influenza viruses. (From Fields Virology, 4th ed, Knipe & Howley, eds, Lippincott Williams & Wilkins, 2001, Fig. 47-3.) Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Endemie, Epidemie, Pandemie: Definitionen Molekulare Virologie (-)RNA Viren © 2010 by Ruth Brack-Werner Influenzavirus A,B oder C (-)RNA Viren Virustyp Verbreitung Wirt Genomsegmente A Pandemien Epidemien Mensch Tier 8 B Epidemien Mensch 8 C Sporadisch, eher harmlos Mensch 7 Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Voraussetzungen für eine Pandemie (-)RNA Viren 1) Neues humanpathogenes Virus 2) Großteil der Bevölkerung nicht immun 3) Leicht von Mensch zu Mensch übertragbar ⇒ Infektionsketten möglich Indexpatient Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Genetische Variabilität des Influenzavirus (-)RNA Viren (1) Antigenic Shift: Neusortierung von Segmenten in Wirten die mit zwei verschiedenen Influenzavirustypen infiziert sind. (2) Antigenic Drift: Langsamere Veränderung des Virus durch Mutationen in vorhandenen Genen; Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Influenza / Rekombination (-)RNA Viren Bei gleichzeitiger Infektion einer Zelle mit zwei verschiedenen Influenza-Viren können Genom-Segmente ausgetauscht werden. Es entstehen neue rekombinante Viren mit veränderten antigenen Eigenschaften, gegen die in der menschlichen Population keinerlei Immunität besteht. Hämagglutinin Molekulare Virologie Neuraminidase © 2010 by Ruth Brack-Werner Influenzavirus A Ausbrüche: HA, NA, PB1 HA, PB1 Direkte Übergang eines Vogelvirus auf den Menschen (Antigenic drift) Horimoto T and Kawaoka Y. 2005. Nature Reviews Microbiology 3, 591-600. Erwerb von Gensegmenten aus Vogelviren Vogelgrippe Erkrankungen und Todesfälle (-)RNA Viren Stand 16.10.06: 467 gemeldete Fälle (weltweit), davon 282 Tote (60%) Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Influenza / Symptomatik (-)RNA Viren 1. Plötzlicher Beginn nach kurzer Inkubationszeit (1-3 Tage) 2. Hohes Fieber (bei Kindern >39°C) mit Kältegefühl 3. Schweres Krankheitsgefühl (Kopf-, Muskel-, Gliederschmerzen) 4. Symptome des gesamten Respirationstrakts (Schnupfen, Husten, Sputumproduktion) 5. Langdauernde Rekonvaleszenz (über Wochen Leistungsschwäche) Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Influenza / Diagnosik (-)RNA Viren Klinische Diagnose: Hohe Treffsicherheit in Epidemiezeiten Labordiagnose: 1. Nachweis viraler Antigene (Immunfluoreszenz oder Enzymtest im Nasensekret, schnell) 1. Nachweis viraler RNA mittels PCR (im Rachenspülwasser, 1-2 Tage, teuer) 1. Züchtung aus Rachenspülwasser (zur Charakterisierung des Virus) 4. Antikörper-Titeranstieg gegen Influenza A oder B Nukleoprotein (2. Serum nach 10-14 Tagen, für Akutdiagnostik zu langsam) Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Prophylaxe und Therapie der Influenza A Infektion mit Amantadin (-)RNA Viren (1) Wirkungsweise: Blockiert M2 Ionenkanal (2) Resistenz durch ein bis wenige Mutationen; (H5N1 Isolate aus Thailand u. Vietnam resistent gegen Amantadin) (3) Pharmakologie: • • • • Gute orale Resorption; Maximaler Serumspiegel: 2-4 Std. Maximaler Gewebespiegel: 48 Std Halbwertszeit: 20 Std. (4) Effektivität: • • Prophylaxe: Verhindert in 70-80% d. Fälle Erkrankungen Therapie: Fiebersenkung: 50%. Verkürzung der Krankheit um 13 Tage. (5) Nebenwirkungen (7-33%) • • ZNS: verminderte Alkoholtoleranz; Halluzinationen, Angst, Schlaflosigkeit; Durchfall Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Prophylaxe und Therapie der Influenza A Infektion mit Neuraminidase Inhibitoren (-)RNA Viren (1) Medikamente: • • Zanamivir-Spray (Relenza TM); nur lokal anwendendbar. Oseltamivir-Tabletten (= Tamiflu TM) (2) Resistenz durch ein bis wenige Mutationen. (3) Effektivität: • • • Nur zur Prophylaxe: Gabe vor Auftreten der Krankheit bzw. innerhalb von 48 Stunden nach Krankheitsbeginn. Verhindert in 70-80% d. Fälle Erkrankungen Erste Fälle von resisten Viren traten in zwei an Vogelgrippe erkrankten vietnamesischen Mädchen auf. (4) Nebenwirkungen • • Übelkeit: 12%; Erbrechen: 2.5%. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Influenza / Impfempfehlung (-)RNA Viren Alle Personen > 60 Jahre Personen mit Herz-, Lungenerkrankungen Immunsupprimierte Medizinisches Personal Menschen mit häufigem Kontakt zu grossen und/oder wechselnden Personengruppen Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Problem bei der Impfstoffherstellung gegen Influenza: Resistenz gegen welchen Stamm? (-)RNA Viren http://www.vaccineinfo.net/immunization/vaccine/influenza/index.shtml Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Herstellung eines Impfstoffes gegen Influenza Impfstoffe gegen Grippe (1) Zwei Typen: • • Inaktiviertes Virus (Spritze) Attenuiertes Virus (Nasen-Spray) (2) Jeder Impfstoff enthält zwei Influzenza A Virus Typen (je nach den zur Zeit vorherrschenden Typen und ein Influenza Virus B Typ. http://www.cdc.gov/flu/protect/keyfacts.htm Zusammenfassung der Merkmale von Orthomyxoviren (-)RNA Viren 1. Viruspartikel mit Lipidhülle; HA vermittelt Anheftung und Fusion mit der Zellmembran der Wirtszelle ; 2. Einzelstrang RNA Genom mit negativer Orientierung; 8 (7) Genomsegmente 3. mRNA Synthese und Replikation des Genoms im Zellkern 4. mRNA Synthese : “cap-snatching”; Splicing. 5. Genetische Variabilität durch Austausch von Gensegmenten (antigenic shift) und Mutation einzelner Gene (antigenic drift). 6. Vögel bilden ein Reservoir für Influenza A. Direkte Übertragung des Vogelvirus auf den Menschen möglich. 7. Therapie und Prophylaxe: • Antivirale Wirkstoffe: Amantadin, Tamiflu; • Impfstoff. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Bunyaviren Gattung Tier-Vektor Orthobunyavirus Mcken; Phlebovirus Mcken, Sandfliegen Nairovirus Hantavirus Tospovirus1 Nagetiere Thysano ptera (-)RNA Viren Human-Pathogene Vertreter (Beispiele) California-Encephalitis Virus; La-Crosse-Virus; Tahynav irus Rift Valley Fever Virus Sandfly Fev er Virus CCHF-Virus HantaanvirusSin Nombre Virus Seoul Virus Puumala Virus Keine: Pflanzenviren http://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/2/2f/Thysanoptera.jpg Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Bunyaviridae: Aufbau der Viruspartikel (-)RNA Viren Aus Molekulare Virologie, Modrow S, Falke D, Truyen U, 2. Auflage; Abb. 16.6, S. 344 Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Bunyaviridae: Proteine (-)RNA Viren Aus Molekulare Virologie, Modrow S, Falke D, Truyen U, 2. Auflage; Tab. 16.7, S. 347 Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Bunyaviridae: Replikationszykus (-)RNA Viren Schnell replizierende Viren (6h) (1) Zelleintritt • Hantavirus-Rezeptor: Integrine mit ß3-Kette; • Aufnahme über Rezeptor-vermittelte Endozytose • Freisetzung der Nukleokapside durch pH-abhängige Membranfusion (2) Replikation: • Ausschliesslich im Zytoplasma; • mRNA Synthese in Nukleokapsiden; • • mRNAs haben “Cap” aber kein polyA-Schwanz Umschalten von Transkription auf Replikation durch Bindung von N-Protein an die RNA (verhindert Capping) Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Bunyaviridae: (-)RNA Viren Transkription, Translation und Genomreplikation Hantaanvirus Aus Molekulare Virologie, Modrow S, Falke D, Truyen U, 2. Auflage; Abb. 16.7, S. 344 Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Bunyaviridae: (-)RNA Viren Transkription, Translation und Genomreplikation Phlebovirus Aus Molekulare Virologie, Modrow S, Falke D, Truyen U, 2. Auflage; Abb. 16.7, S. 344 Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Zelluläres sekretorisches System (-)RNA Viren http://www.microscopy.fsu.edu/cells/celldigestion/celldigestion.h tml Molekulare Virologie fig.cox.miami.edu/~cmallery/ 150/cells/sf5x8b.jpg © 2010 by Ruth Brack-Werner Bunyaviridae: Replikationszyklus/Zusammenbau (-)RNA Viren Zusammenbau und Ausknospung an Bestandteilen des zellulären sekretorischen Systems; • G-Polyprotein wird im rauhen ER synthetisiert • Co-translationelle Spaltung von G in G1 und G2 und Glykosylierung; • Transport von G1 und G2 zum Golgi-Komplex (erfordert G1 + G2) und Retention; • Ausknospung der Viren in Vesikel; Lipidhülle des Virus stammt von intrazellulären Membranen des Golgi-Apparats ab Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Humanpathogene Bunyaviren (-)RNA Viren Genus Virus Krankheit Tierreserv Übertragung Orthobunyavirus California Encephalitis Virus Encephalitits Nagetiere, Kaninchen Mückenstiche Phlebovirus Rift Valley Fever Virus Fieber, Kopfschmerzen, Myalgien, Photophobie Kühe Mückenstiche oder Aerosole von infizierten Tieren Hantavirus Hantaanvirus Hemorrhag. Fieber m. nephropathischem Syndrom (HFRS) Koreanische Feldmaus durch Urin und Kot von infizierten Tieren (Einatmen von Aerosolen) Hantavirus Sin Nombre Virus Hantavirus pulmonary syndrome Deer mouse durch Urin und Kot von infizierten Tieren Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Humanpathogene Bunyaviren: Hantaaviren (-)RNA Viren http://www.cdc.gov/Ncidod/diseases/hanta/hps/noframes/phys/printtechsection.htm Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Hantavirus Pulmonary Syndrome (-)RNA Viren Clinical Presentation Häufig Kann vorkommen Selten Fieber Schwindel Schnupfen Muskelschmerzen Gelenkschmerzen Halsweh Übelkeit/Erbrechen Husten Kurzatmigkeit (im späteren Lauf der Krankheit) Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Hemorrhagisches Fieber mit nephropathischem Syndrom (-)RNA Viren • Inkubationszeit durchschnittlich 1-2 Wochen; • Plötzliches hohes Fieber, Frösteln, Muskelschmerzen; Können mit Kopf- und Rückenschmerzen verbunden sein. • Hemorrhagische Symptome: punktförmige Blutungen in d. Augenbindehaut und in Schleimhautbereichen (30% d. Fälle) • Blutdruckabfall (Schockzustände in 15% d. Fälle; können tödlich verlaufen); • Bei Normalisierung des Blutdrucks verminderte Nierenfunktion; • Überwindung der Krankheit wird durch verstärkte Urinbildung (3-6 l/Tag) eingeläutet • Normalisierung der Elektrolytwerte kann bis zu 3 Monate andauern. Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Arenaviridae Genus Gruppe Arenavirus AltweltViren NeuweltViren HumanPathogene Vertreter (Beispiele) Lymphozyt re Choriomeningitis Virus (LCMV) Lassavirus TierReservoirs Geographische Verbreitung Ratten, Muse Europa, Amerika (Nord- und Sd), Asien Ratten, Muse Juninvirus Ratten, Muse Ratten, Muse Ratten, Muse Ratten, Muse, Fledermaus West-Afrika: Nigeria, Liberia, Guinea, Sierra Leone Argentinien Guanaritovirus Machupoviren Sabiavirus Molekulare Virologie (-)RNA Viren Venezuela Bolivien Brasilien © 2010 by Ruth Brack-Werner Arenaviridae: Aufbau der Viruspartikel (-)RNA Viren “Arena”: Partikel sehen “sandig” aus, aufgrund von inkorportierten Ribosomen Aus Molekulare Virologie, Modrow S, Falke D, Truyen U, 2. Auflage; Abb. 16.8, S. 344 Molekulare Virologie http://pathmicro.med.sc.edu/mhunt/arenavirus%20tacaribe.jpg © 2010 by Ruth Brack-Werner Arenaviridae Proteine Protein Grösse kD Funktion Lokalisation im Virion Modifizierung Interaktionspartner NP 60-68 Haupt NukleokapsidProtein Nukleokapsid Kann phosphorylier t werden Virale genomische RNA GPC Vorläufer von GP1 und GP2 GP1 40-46 Zellkontakt Membran assoziiert; Spitze des Stachels N-Glykosyliert GP2 GP2 35 Fusion mit Zellmembran Membran; TransMembran Domäne; Nterm. Domäne nach aussen N-Glykosyliert GP1, NP,andere GP2 Moleküle (Bildung von Homo-Tetramere L 180-250 RNA-abhäng. RNAPolym. Nukleokapsid Nicht bekannt RNA; Weitere Partner unbek. Z 11 ? ? ? Bindet Zn 2+ RINGFinger Motiv Arenaviridae verursachte Krankheiten bei Menschen: (-)RNA Viren Genus Gruppe Arena- AltweltViren virus NeuweltViren Molekulare Virologie HumanPathogene Vertreter (Beispiele) Lymphozyt re Choriomeningitis Virus (LCMV) Lassavirus Juninvirus Guanaritovirus Machupoviren Sabiavirus Krankheit Leichte Grippehnliche Erkrankung Hemorrhagisches Fieber © 2010 by Ruth Brack-Werner http://bepast.org/docs/photos/lassa%20fever/Lassa%20fever%20map%20west%20Africa.gif (-)RNA Viren Verbreitung Tierreservoir) Rattenart Inkubationszeit: Krankheit: Symptome: Mortalität Molekulare Virologie bis zu 3 Wochen; hämorrhagisches Fieber hohes Fieber, Halsschmerzen, Rachenentzündung, Schleimhautblutungen, Hepatitis, Encephalitis 15-20% http://www15.bnihamburg.de/bni/bni2/neu2/inc/forschunggruppen/forschunggruppen_pics/viro/LassaMastomys.jpg Lassa Fieber © 2010 by Ruth Brack-Werner Unterschiede: Viren mit einzelsträngigem, segmentiertem RNA-Genom in (-)RNA Viren negativstrang-Orientierung Arenaviridae Bunyaviridae Influenzaviridae Gattungen 1 5 5 Genomsegmente Ambisense Segm. 2 ja 3 nur Phleboviren 8 nein Arboviren* nein ja nein Replikationsort i.d. Zelle Zytoplasma Zytoplasma Zellkern Ausknospung Zellmembran Golgi-Membran Zellmembran *Arboviren: Arthropod borne viruses Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner Gemeinsamkeiten: Viren mit einzelsträngigem, segmentiertem RNA-Genom in (-)RNA Viren negativstrang-Orientierung Behüllt; Segmentierte Genome; RNA-abhängige RNA Polymerase; Cap-Snatching Tier-Reservoirs Molekulare Virologie © 2010 by Ruth Brack-Werner