Abstrich-
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Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Inhaltsverzeichnis: (Strg + Klicken, um der Verknüpfung zu folgen) 1 Allgemeine Hinweise zu Abnahme, Transport und Zwischenlagerung mikrobiologischer Untersuchungsmaterialien 2 Annahmezeiten 3 Blutkultur 4 Liquorkultur 5 Abstrich Wunde, Körperhöhle 6 Punktate 7 Abstrich Auge 8 Abstrich Urethra, Glans Penis etc. 9 Abstrich Cervix/Vagina 10 Abstrich Rektum 11 Abstrich Rachen/Tonsillen 12 Nase, Nasennebenhöhle 13 Abstrich Ohr 14 Tracheal-/Bronchialsekret 15 Sputum 16 Magensaft 17 Katheterspitzen 18 Stuhl 19 Harn 20 Diagnostik von Mykobakterien archiviert: Nein Seite 1 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Allgemeine Hinweise zu Abnahme, Transport und Zwischenlagerung mikrobiologischer Untersuchungsmaterialien Materialgewinnung Materialentnahme möglichst vor Verabreichung einer antimikrobiellen Therapie (Antibiotika können im Untersuchungsmaterial das Keimwachstum hemmen) Bei direkter Entnahme des Untersuchungsmaterials vom Infektionsort Kontamination mit Normalflora soweit als möglich vermeiden. Entnahme einer ausreichenden Menge Untersuchungsmaterial (1 –2 ml eines nativen Sekretes sind günstiger als ein Abstrichtupfer) Exakte Beschriftung von Probe und Zuweisungsschein bei der Gewinnung von mehreren Proben eines Patienten, max 2 Proben pro Begleitschein. Probentransport Verwendung eines geeigneten Materialbehälters / Transportmedium Sicherstellung eines kontaminationsfreien und bruchsicheren Transports Möglichst raschen Transport in das mikrobiologische Labor sicherstellen Probenzwischenlagerung Während der Öffnungszeiten sollte das Untersuchungsmaterial sollte so rasch wie möglich (innerhalb von 1 Stunde) ins mikrobiologische Labor gebracht werden. Außerhalb der Öffnungszeiten ist eine Zwischenlagerung nach folgenden Regeln erforderlich: Materialien mit Standortflora, welche die eigentlichen Krankheitserreger überwuchern kann, immer im Kühlschrank lagern, (z. B.Sputum, Stuhl etc...). Native Materialien von physiologischerweise sterilen Abnahmeorten (Liquor, Pleura) sollten ebenfalls bei Raumtemperatur gelagert werden, um ein Überleben kälteempfindlicher Keime, wie z. B. Meningokokken, Gonokokken oder Haemophilus zu gewährleisten. archiviert: Nein Seite 2 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Material Liquor Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Zwischenlagerung und Transport weißem Rascher Transport ins mikrobiol. Labor! Röhrchen bei Zimmertemperatur aufbewahren Zusätzliche BacTec Peds Plus Flasche bei außerhalb der Dienstzeiten bzw. bei Raumtemperatur aufbewahren. längerer Zwischenlagerung zusätzlich mind. 0,5 ml Liquor in einer Flasche Für serologische Untersuchungen (z.B. AKBacTec PedsPlus Nachweis gegen Borrelien, FSME, etc...) Liquor gekühlt lagern und transportieren, immer Serum mituntersuchen – Serologiezuweisungsschein! Blutkultur BacTec, Fa. Becton Dickinson Rascher Transport ins mikrobiol. Labor! Set bestehend aus 2 Bis dahin nicht bebrüten sondern bei Zimmertemperatur lagern! Blutkulturflaschen (aerob und anaerob) für Erwachsene 8 – 10 ml Vor Auskühlung geschützt transportieren. Blut; für Kinder 1 Flasche BacTec PedsPlus 1-3 ml Blut Flaschen nicht belüften Abstrich Sterile Tupfer mit Abstrich Zwischenlagerung für 24 bis max. 48 Stunden bei von Wunde, (Gel)Transportmedium; Zimmertemperatur KörperTupfer ins (Gel)Transportmedium höhle einstechen, Biopsie in steriles Röhrchen + 2 GewebeMöglichst kurze Zwischenlagerung bei proben Tropfen sterilem 0,9%igem NaCl, um Zimmertemperatur, max. 24 Stunden vor Austrocknung zu schützen. Punktat Geringe Menge: in das Zwischenlagerung im Transportmedium: bei Transportröhrchen spritzen Zimmertemperatur, max. 48 Stunden Trachealsekret Schleimhautabstr. Katheterspitzen qualitativ Katheterspitzen quantitativ Stuhl Harn archiviert: Nein Abnahme Steriles Röhrchen mit Verschluß, VACUETTE Größere Menge: steriles Röhrchen mit Schraubverschluss oder Spritze mit steriler Verschlusskappe. ev. Blutkulturflasche zusätzlich Tracheal-Saugset, Spitzröhrchen Möglichst kurze Zwischenlagerung bei Zimmertemperatur, max. 24 Stunden Sterile Tupfer mit Geltransportmedium Nährbouillon – Röhrchen Schädlerbouillon Fa. bioMerieux (im Kühlschrank lagern und vor Gebrauch anwärmen) Steriles Röhrchen mit 1ml steriler phys. NaCl-Lösung Zwischenlagerung im Transportmedium: bei Zimmertemperatur, max. 48 Stunden Wärmeschrank bei 37C oder Zimmertemperatur und vor Auskühlung geschützt transportieren Sauberes Stuhlgefäß Uricult (Eintauch-Objektträgerkultur) oder Harnröhrchen mit Stabilisatorzusatz (Vacuette Urin, 10 ml) Zwischenlagerung: im Kühlschrank bei 4C Uricult im Brutschrank bei 36° für 24 bis max. 48 Std. bebrüten, ansonsten bei Raumtemperatur aufbewahren Harnröhrchen mit Stabilisatorzusatz bei Raumtemperatur für 24(– 48) Std. stabil BK-Flasche bei Zimmertemperatur bei 4°C im Kühlschrank Zwischenlagerung bei Raumtemperatur, bei längerer Lagerung im Kühlschrank Seite 3 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Richtiges Ausfüllen des MPA-Zuweisungsscheines: Ein sorgfältig ausgefüllter Begleitschein ermöglicht erst die korrekte Befunderstellung und Interpretation! Ausführliche Patientendaten Patientendaten aus dem MPA übernehmen. Auswahl von Material und Entnahmetechnik Unbedingt notwendig für den gezielten Einsatz von Nährmedien zum Nachweis von klinisch relevanten Infektionserregern. Bitte leserlich schreiben! Gewünschte Untersuchung wählen Zur Berücksichtigung von Spezialuntersuchungen, die nicht routinemäßig durchgeführt werden und daher eigens angefordert werden müssen (siehe Einsendemodus). Spezielle Fragen formulieren, bei Unklarheiten bitte Rücksprache mit dem Labor. Datum und Uhrzeit der Probenentnahme Zur Beurteilung der Verwertbarkeit und adäquaten Verarbeitung des Materials. Angabe der Diagnose Spezifische Verarbeitung Zusatzuntersuchungen. zur gezielten Suche nach bestimmten Erregern und eventuelle Angabe der Grunderkrankung Zur besseren Befundinterpretation Angabe der antimikrobiellen Therapie Zur gezielten Resistenzaustestung Ergebnisse früherer Einsendungen Jedenfalls sollten auswärtige Kulturergebnisse angegeben werden. archiviert: Nein Seite 4 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Zusammenfassung: Je frischer das Untersuchungsmaterial, je korrekter die Abnahme und je vollständiger der Begleitschein ausgefüllt ist, umso aussagekräftiger ist der bakteriologische Befund! Annahmezeiten Mo – Do Fr Sa 7.00 – 15.00 7.00 – 13.00 8.00 – 10.00 Für Fragen stehen die Mitarbeiter des mikrobiologischen Labors unter der Telefonnr. (050554) 62 – 26350 oder 26351 jederzeit gerne zur Verfügung. archiviert: Nein Seite 5 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Blutkultur Verwendetes System Untersuchungsziel Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Befunderstellung archiviert: Nein BacTec, Fa. Becton Dickinson Set bestehend aus 2 Blutkulturflaschen (aerob und anaerob) für Erwachsene 5 – 10 ml Blut; für Kinder 1 Flasche BacTec PedsPlus 1-3 ml Blut Flaschen nicht belüften Kultureller Nachweis von Mikroorganismen im Blut Verdacht auf Bakteriämie oder Fungämie Fieber V.a. Sepsis Schwere Pneumonie V.a. Endocarditis, bitte auch auf dem Begleitschein vermerken, längere Bebrütungszeit erforderlich Organabszesse Osteomyelitis, Spondylodiscitis Menigitis Typhus abdominalis V.a. Katheter-, Shuntsepsis Frische Punktion, möglichst vor Beginn der antimikrobiellen Therapie, ansonsten möglichst am Ende eines Antibiotika-Dosierungsintervalls Ausreichende Hautdesinfektion: mit triefend nassem Tupfer Desinfektionsmittel verdunsten lassen (ca. 1 Minute) Nicht mehr palpieren! Schutzkappe der BK-Flasche entfernen, Membran desinfizieren, Flasche nicht belüften Ziel der ausreichenden Desinfektion: keine Kontamination und somit kein falsch positives Ergebnis Ziel des Verdunstens des Desinfektionsmittels: kein falsch negatives Ergebnis Abnahmezeitpunkt und Ort der Punktion auf BK-Flaschen und Begleitschein vermerken Vor Behandlungsbeginn, ansonsten möglichst am Ende eines Antibiotika – Dosierungsintervalls 2-3 Kulturen in rascher Folge Intervalle: bei akuter Sepsis 10 min., bei unklarem Fieber u. Endocarditis 1 Stunde. Falls Patient weiter septisch u. keine pos. Rückmeldung innerhalb 24 h – ev. erneute Abnahme Möglichst nicht aus liegendem Venenkatheter Kontaminationsgefahr – Ausnahme: bei V.a. Kathetersepsis: gleichzeitig je 1 BK-Set über verdächtigen Katheter und 1 Set über periphere Punktion mit jeweils gleichen Blutvolumina ; Fragestellung Kathetersepsis auf dem Begleitschein anführen! Punktion eines implantierten Systems: Desinfektion mit alk. Desinfektionsmittel Einwirkzeit mind. 3 Minuten Immer möglichst raschen Transport in das mikrobiologische Labor veranlassen. Bis dahin nicht bebrüten sondern bei Zimmertemperatur lagern! Vor Auskühlung geschützt transportieren. Positive Blutkulturergebnisse werden telefonisch mitgeteilt, ein negatives Ergebnis wird in der Regel nach 7 Tagen ausgegeben. Seite 6 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Liquorkultur Verwendetes System Untersuchungsziel Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Steriles Röhrchen mit weißem Verschluß, VACUETTE Bei längerer Zwischenlagerung: zusätzlich mind. 0,5 ml Liquor in einer Flasche BacTec PedsPlus Mikroskopischer und kultureller Nachweis von Mikroorganismen im Liquor Verdacht auf bakterielle Meningitis Zur Überwachung bei liegender Drainage Verdacht auf Shuntinfektion Bei Verdacht auf Meningitis oder Shuntinfektion immer auch Blutkultur abnehmen! Vor Punktion bzw. Manipulation korrekte Händedesinfektion, Desinfektion der Entnahmestelle, mögl. vor Beginn einer antimikrobiellen Therapie abnehmen mind.1 ml in 1 steriles Röhrchen (für Kultur und Grampräparat) Immer möglichst raschen Transport in das mikrobiologische Labor veranlassen. Für mikrobiologische Untersuchungen Röhrchen bei Zimmertemperatur aufbewahren (z.B. V.a. bakt. Meningitis) Zusätzliche BacTec PedsPlus-Flasche bei Zimmertemperatur Für serologische Untersuchungen (z.B. AK-Nachweis gegen Borrelien, FSME, etc...) Liquor gekühlt lagern und transportieren, immer Serum mituntersuchen – Serologiezuweisungsschein! Für zytologische Untersuchungen Liquor gekühlt lagern – Zytologiezuweisungsschein! Befunderstellung Spezielle Fragestellungen Für molekularbiologische Untersuchungen (PCR) Liquor gekühlt lagern und transportieren – Molekularbiologiezuweisungsschein! Positive Kulturergebnisse werden telefonisch mitgeteilt. Ein negatives Ergebnis wird in der Regel nach 7 Tagen ausgegeben. Spezielle Erreger (z. B: Tuberkelbakterien, Kryptokokken etc...) werden nicht routinemäßig kultiviert – für diese sind größere Liquormengen erforderlich. Auf der Zuweisung gesondert anfordern! Für serologische Untersuchungen (z.B. AK-Nachweis gegen Borrelien, FSME, etc...) Liquor gekühlt lagern und transportieren, immer Serum mituntersuchen – Serologiezuweisungsschein! Für zytologische Untersuchungen gekühlt lagern – Zytologiezuweisungsschein! archiviert: Nein Seite 7 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Abstrich Wunde, Körperhöhle Verwendetes System Abstrich Sterile Tupfer und BBL Port-A-Cul Geltransportmedium oder Novocult; Copan ESwab-Flocktupfer (verbesserte KeimRückgewinnungsrate) für kritische Materialien (z.B. OPAbstriche) Aspirat in steriles Röhrchen mit weißem Verschluß, VACUETTE, oder Spritze mit steriler Verschlußkappe; Biopsie in steriles Röhrchen + 2 Tropfen sterilem 0,9%igem NaCl, um vor Austrocknung zu schützen Untersuchungsziel Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Mikroskopischer und kultureller Nachweis von relevanten Mikroorganismen Verdacht auf infektiöses Geschehen Wunde reinigen, Sekret mit festem Druck entnehmen. Bei großflächigen Wunden Abstrich vom Wundrand an der Grenze zum gesunden Gewebe ergiebiger, da Eiter und Detritus auch Kolonisationskeime enthält. Aseptische Probenentnahme durch Punktion und Sekretaspiration ergibt aussagekräftigere Befunde als Abstrich. Decubitus: Oberfläche mit sterilem Aqua dest. gründlich reinigen, danach Biopsie bzw. Aspirat (ev. Nach Einspritzen von sterilem Aqua dest.) von Basis oder Rand Tupfer in (Gel)Transportmedium einstechen Punktat in Spritze mit sterilem Verschluß transportieren oder in das Transportröhrchen spritzen – nicht einstechen ins Medium. Zwischenlagerung im Transportsystem: bei Zimmertemperatur, max. 48 Stunden Ohne Transportmedien (Aspirate, Biopsie): Möglichst kurze Zwischenlagerung bei Zimmertemperatur, max. 24 Stunden Immer Angabe der Lokalisation vermerken; Maximal 2 Abstriche pro Begleitschein! archiviert: Nein Seite 8 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Punktate Verwendetes System Untersuchungsziel Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Geringe Menge: (Gel)Transportmedium Größere Menge: steriles Röhrchen mit Schraubverschluss oder Spritze mit steriler Verschlusskappe. ev. Blutkulturflasche zusätzlich (BacTec PedsPlus) Mikroskopischer und kultureller Nachweis von Mikroorganismen in normalerweise keimfreien Körperbereichen Verdacht auf infektiöses Geschehen Punktionsstelle desinfizieren und trocknen lassen, Aspiration mit steriler Spritze Geringe Mengen können auf das Gel des Transportröhrchens gespritzt werden. Größere Mengen in Spritze ohne Luftbeimengung belassen und mit steriler Verschlusskappe versehen oder in steriles Röhrchen mit Schraubverschluss. ev. Blutkulturflasche zusätzlich beimpfen. (Möglicherweise bessere Ausbeute, jedoch keine Angaben zur Keimzahl möglich, Überwuchern durch Kontaminationskeime) Zwischenlagerung im Transportmedium bei Zimmertemperatur für 24 bis max. 48 Stunden In Röhrchen oder Spritze möglichst kurze Zwischenlagerung bei Zimmertemperatur, max. 24 Stunden. Blutkulturflasche bei Zimmertemperatur belassen Immer Angabe der Lokalisation vermerken. Abstrich Auge Verwendetes System Sterile Tupfer und BBL Port-A-Cul Geltransportmedium oder Novocult Copan ESwab-Flocktupfer (verbesserte KeimRückgewinnungsrate) Untersuchungsziel Indikation Nachweis einer bakteriellen Genese Konjunktivitis, Keratitis, Ulcus cornae Gewinnung Kulturabstriche vor, Hornhautgeschabsel nach Eintropfen des Lokalanästheticums gewinnen Konjunktiva: mit angefeuchtetem Tupfer abrollen Hornhautgeschabsel: mit sterilem Spatel Läsion abschaben und mit angefeuchtetem Tupfer aufnehmen Transport/Zwischenlagerung archiviert: Nein bei Zimmertemperatur 20C Seite 9 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Abstrich Urethra, Glans Penis etc. Verwendetes System Sterile Tupfer und BBL Port-A-Cul Geltransportmedium oder Novocult Untersuchungsziel Indikation Nachweis einer bakteriellen Genese Urethritis Balanitis V.a. STD, Gonokokken, Mykoplasmen Abnahme frühestens 1 Stunde nach letzter Miktion; Reinigung des äußeren Genitales mit feuchtem Tupfer ohne Desinfektionsmittel, danach Sekretabnahme mittels Abnahmetupfer, Tupfer dabei in die Urethra einführen. bei Zimmertemperatur 20C, bei Verdacht auf Gonokokken Probe sofort ins Labor bringen Chlamydiennachweis erfolgt molekularbiologisch. Eigenes Abnahmebesteck (Fa. Roche, Amplicor STD) verwenden, keine Tupfer mit Gelmedium oder Harn in Harnröhrchen ohne Stabilisatorzusatz (Gelbe Kappe, gelber Ring) einsenden – Zuweisungsschein Molekularbiologie Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Spezielle Fragestellungen Abstrich Cervix/Vagina Verwendetes System Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Spezielle Fragestellungen Sterile Tupfer und BBL Port-A-Cul Geltransportmedium oder Novocult vermehrter Ausfluß Aufsteigende Infektion während Schwangerschaft V.a. bakterielle Vaginose, Vaginitis, Zervizitis Pilzinfektion Abtupfen von überschüssigem Sekret/Ausfluß Abstrich aus Cervikalkanal entnehmen bei Verdacht auf Gonokokken Probe sofort ins Labor bringen Chlamydiennachweis erfolgt molekularbiologisch. Eigenes Abnahmebesteck (Fa. Roche, Amplicor STD) verwenden, keine Tupfer mit Gelmedium oder Harn in Harnröhrchen ohne Stabilisatorzusatz (Gelbe Kappe, gelber Ring) einsenden – Zuweisungsschein Molekularbiologie Abstrich Rektum Verwendetes System Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung archiviert: Nein Sterile Tupfer und BBL Port-A-Cul Geltransportmedium oder Novocult nur wenn Stuhlgewinnung nicht möglich Tupfer bis hinter den Schließmuskel einschieben und mehrmals drehen im Kühlschrank Seite 10 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Abstrich Rachen/Tonsillen Verwendetes System Sterile Tupfer und BBL Port-A-Cul Geltransportmedium oder Novocult Copan ESwab-Flocktupfer (verbesserte KeimRückgewinnungsrate) Indikation bei Verdacht auf bakterielle Infektion Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Spezielle Fragestellungen Möglichst vor Beginn einer antimikrobiellen Therapie, Tupfer anfeuchten, Zunge nach unten drücken, Tupfer fest über Rachenhinterwand/Tonsillen streichen Möglichst rasch in die Pathologie, sonst bei Zimmertemperatur. Diphterie, Angina Plaut-Vincenti extra auf dem Überweisungsschein angeben! Kultur auf Pertussis wird nicht mehr durchgeführt. Ein molekularbiologischer Nachweis an einem externen Labor ist möglich. Nasennebenhöhle Verwendetes System Sterile Tupfer und BBL Port-A-Cul Geltransportmedium oder Novocult Indikation Staph. aureus und MRSA Screening Geplante transnasale OP Sinusitis Tupfer mit sterilem 0,9%igem NaCl anfeuchten und Septum-Schleimhaut abstreichen Punktat in steriles Röhrchen Gewebe in steriles Röhrchen mit 0,5 ml sterilem 0,9%igem NaCl (ohne Formalin) Möglichst rasch in die Pathologie, sonst bei Zimmertemperatur Gewinnung Transport/Zwischenlagerung archiviert: Nein Seite 11 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Abstrich Ohr Verwendetes System Sterile Tupfer und BBL Port-A-Cul Geltransportmedium oder Novocult Copan ESwab-Flocktupfer (verbesserte KeimRückgewinnungsrate) Indikation Otitis externa/media Bei therapieresistenter Otitis und Pilzverdacht unbedingt Vermerk auf der Zuweisung Otitis externa: Tupfer im Gehörgang rotieren Otitis media: Punktat; Gewinnung bei rupturiertem Trommelfell mittels Mini-Abstrichtupfer Transport/Zwischenlagerung Möglichst rasch in die Pathologie, sonst bei Zimmertemperatur Tracheal-/Bronchialsekret Verwendetes System Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Spezielle Fragestellungen archiviert: Nein Tracheal-Saugset, Spitzröhrchen V.a. bakterielle Infektion des unteren Respirationstraktes Monitoring bei intubierten Patienten V.a. Pneumonie V.a. Pneumocystis carinii – BAL Abnahme durch endotracheales Absaugen mittels sterilem Tachealsaugset, Bronchoskopie, geschützter Bürstenabstrich oder bronchoalveoläre Lavage idealerweise vor oder spätestens 12 Stunden nach Beginn der Antibiotikatherapie. Bei schwer verlaufender Pneumonie zusätzlich Blutkultur abnehmen. Möglichst rasch in die Pathologie, sonst bei 4C im Kühlschrank. V.a. TBC, Pneumocystis carinii, Legionellen gesondert vermerken Seite 12 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Sputum Verwendetes System Indikation Sputumbecher Bronchitis V.a. Pneumonie V.a. atypische Pneumonie am Begleitschein vermerken Gewinnung putrides Morgensputum: vor dem Frühstück (Zahnersatz entfernen), Mund mit Wasser gut spülen (kein Mundwasser verwenden) Sekret aus der Tiefe in Sputumbecher aushusten Günstig nach Provokation durch Inhalieren von 3%igerNaClLösung und/oder Abklopfen Speisereste verfälschen das Ergebnis, Speichel ist nicht repräsentativ. Transport/Zwischenlagerung Spezielle Fragestellungen Möglichst rasch in die Pathologie, sonst bei 4°C im Kühlschrank TBC-Diagnostik ausdrücklich auf dem Zuweisungsschein anfordern (Ziehl-Neelsen Färbung zum Nachweis von säurefesten Stäbchen, Kultur auf Mykobakterien) Magensaft Verwendetes System Tracheal-Saugset (Spitzröhrchen) Indikation Keimnachweis bei Neugeborenen V.a. TBC am Zuweisungsschein anfordern Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Spezielle Fragestellungen Entnahme aus Magensonde durch Aspirieren Möglichst rasch in die Pathologie, sonst bei 4°C im Kühlschrank TBC-Diagnostik auf dem Zuweisungsschein anfordern Eigenes Transportgefäß mit Säurepuffer verwenden! (Anzufordern in der Pathologie) archiviert: Nein Seite 13 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Magenbiopsie (Helicobacter) Verwendetes System Portagerm Pylori Transportmedium Indikation Rezidivierende Helicobacter-pylori-assoziierte Gastritis Gewinnung • je eine Biopsie aus Antrum und Corpus • die Biopsien für Kultur und Resistenztestung sollten vor den histologischen Proben entnommen werden, um eine Kontamination im Sinne einer Wachstumshemmung durch Formalin zu vermeiden. Aus dem gleichen Grund sollte auf den Einsatz von Entschäumern verzichtet werden Die Biopsien vollständig in das Transportmedium (Portagerm Pylori) versenken und innerhalb von 24h an das Labor senden Da Helicobacter pylori ein anspruchsvoll zu kultivierendes Bakterium mit einer langen Generationszeit ist, kann die Bestimmung und Resistenztestung bis zu 4 Wochen dauern. Transport/Zwischenlagerung Spezielle Fragestellungen Katheterspitzen qualitiativ Verwendetes System Für Routineeinsendung ohne infektiologische Fragestellung Nährbouillon – Röhrchen Schädlerbouillon Fa. bioMerieux (im Kühlschrank lagern und vor Gebrauch anwärmen) Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung archiviert: Nein bei V.a. Katheter-assoziierte Infektion Überwachung bei zentralen Venenkathetern aseptische Entnahme: Händedesinfektion Umgebung des Katheters desinfizieren Katheter aseptisch entfernen Spitze steril abschneiden (ca. 4 cm) In der Nährbouillon im Wärmeschrank bei 37C Seite 14 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Katheterspitzen für quantitative Kultur Verwendetes System Für Fragestellung Katheterinfektion Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Interpretation archiviert: Nein Steriles Röhrchen mit weißem Verschluß VACUETTE mit 1 ml sterilem 0,9%igem NaCl,um Austrocknung zu vermeiden. bei V.a. Katheter-assoziierte Infektion Überwachung bei zentralen Venenkathetern Röhrchen mit 1 ml steriler Kochsalzlösung bereitstellen aseptische Entnahme des Katheters: Händedesinfektion Umgebung des Katheters desinfizieren Katheter aseptisch entfernen Spitze steril abschneiden (ca. 4 cm) Ins Röhrchen einbringen (möglichst ohne Berührung der Röhrchenöffnung) Röhrchen stehend lagern Sofort in das mikrobiologische Labor Außerhalb der Dienstzeiten der Pathologie Raumtemperatur, bei längerer Lagerung im Kühlschrank Eine Keimzahl von 103 / ml spricht für eine katheterassozierte Infektion Seite 15 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Stuhl Verwendetes System Untersuchungsziel Indikation Gewinnung Stuhlgefäß Nachweis darmpathogener Keime und Parasiten Standardmäßig erfolgt die Untersuchung auf : Salmonellen Shigellen Yersinien Campylobacter Enterohämorrhagischer E. coli O157 Diarrhoe unklare abdominelle Symptomatik Feststellen des Trägerstatus bei extraintestinalem Salmonellennachweis Hämolytisch-urämisches Syndrom (thrombotischthrombozytopenische Purpura auch ohne Durchfälle) Stuhlmenge mind. erbsengroß, bei flüssigem Stuhl ca. 2 ml Stuhlgefäß max. halbvoll füllen, außen nicht kontaminieren Gut verschließen Routinemäßig ist bei Durchfallserkrankungen 1 Stuhlprobe ausreichend; Wiederholung bei neg. Befund und/oder Nichtansprechen auf Therapie; Bei V.a. Parasiten je 1 Stuhlprobe an 3 aufeinander folgenden Tagen; Rektalabstrich - nur wenn Stuhl nicht zu gewinnen ist! Transport/Zwischenlagerung Spezielle Fragestellungen archiviert: Nein Zwischenlagerung: im Kühlschrank bei 4C Nachweis von Adeno- und Rotaviren, Parasiten Auslandsaufenthalt angeben, (Eosinophilie) Oxyurennachweis: perianaler Tixostreifenabklatsch morgens vor dem Waschen (klaren Tixostreifen nach Abnahme straff auf Objektträger aufkleben) Clostridium difficile (Antibiotika-Enterocolitis), nach antimikrobieller oder Zytostatika-Therapie Noro-Viren: eigenes Stuhlgefäß für PCR mit Zuweisungsschein Molekularbiologie Verotoxin-Nachweis (EHEC) wird laborseitig routinemäßig bei sichtbar blutigen Stühlen und bei Kindern unter 3 Jahren durchgeführt. Bei anderen Konstellationen ist er eigens am Begleitschein anzufordern. Seite 16 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Harn Verwendetes System Indikation Gewinnung Transport/Zwischenlagerung Spezielle FrageStellungen archiviert: Nein Harnröhrchen mit Stabilisatorzusatz (Vacuette, gelbes Röhrchen, gelbe Kappe mit schwarzem Ring) oder Uricult (Eintauch-Objektträgerkultur) V.a. Harnwegsinfekt ideal ist Morgenurin, bzw. mind. 3 Stunden nach der letzten Miktion abgenommen, Harngewinnung vor Beginn einer antimikrobiellen Therapie, Mittelstrahlharn: Reinigung des äußeren Genitales, erste Harnportion ablassen, danach Harn ohne Unterbrechung der Miktion in sterilem Gefäß auffangen; Einmalkatheterharn: Erste Portion nach aseptischer Katheterisierung verwerfen, Harn in sterilem Gefäß auffangen Harn aus Dauerkatheter, Cystofix, etc... Harngewinnung durch Punktion des Katheters; Einmalplastikklebebeutel bei Säuglingen: Sorgfältige Reinigung der Genito-Anal-Region erforderlich Gewinnungsart immer angeben Harnröhrchen mit Stabilisatorzusatz bei Raumtemperatur 24 - (max. 48 Stunden), Uricult im Brutschrank bei 35-37°C, nicht länger als 24 Stunden bebrüten, dann Raumtemperatur Antigenschnelltest auf Legionella und Pneumokokken extra anfordern Seite 17 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus Diagnostik von Mykobakterien Methode Mikroskopie: Ziehl-Neelsen Präparat Kultur auf Löwenstein-Jensen-Medium Untersuchungsziel Nachweis von Mycobacterium tuberculosis complex Gewinnung Sputum ist das aus den tieferen Atemwegen spontan oder durch Provokation hervorgebrachte Sekret. Menge: soviel wie möglich, nicht mehr als 10 ml, kein Speichel, Morgensputum Anzahl: 3 Sputa gewonnen an 3 aufeinander folgenden Tagen. Das erste Sputum nach Gewinnung von Bronchialsekret oder Bronchoalveolärer Lavage erweist sich als besonders ergiebig. Bronchialsekrete und Trachealsekrete sind die instrumentell mit oder ohne Spülung gewonnenen Sekrete der tieferen Atemwege. Magenspülwasser ist der mittels einer Sonde beim nüchternen Patienten durch Spülung mit sterilem Isotonen NaCl (0,9%) gewonnene Mageninhalt (bei Kindern, wenn kein Sputum möglich). Eigenes Transportgefäß mit Säurepuffer verwenden! (Anzufordern in der Pathologie) Morgenurin (Erststrahlharn) Menge: 30 – 100 ml Anzahl: 3 Harne gewonnen an 3 aufeinander folgenden Tagen. Gewebeproben, Abstriche, Punktate sollen vor dem Verdunsten geschützt und in sterilen Gefäßen versandt werden. Bei Gefahr einer Austrocknung Zusatz einer geringen Menge von sterilem Aqua destillata oder physiologischer Kochsalzlösung Liquor: Menge: soviel wie möglich (nach Möglichkeit nicht weniger als 2ml), Versand in sterilen Gefäßen Transport/Zwischenlagerung Spezielle Fragestellungen Befunderstellung archiviert: Nein Zwischenlagerung: im Kühlschrank bei 4C Annahmezeiten für IGRA: MO 07:00 – DO-13:00 Direktnachweis mittels PCR gesondert anfordern Ein negatives Kulturergebnis wird nach 6 Wochen ausgegeben. Seite 18 von 19 Checkliste Einsendung von mikrobiologischem Untersuchungsmaterial (auswärtig) Bereich: Mikrobiologie Version: 4.0 Status: Approved Gültigkeitsbereich: NMC Institut für Pathologie und Mikrobiologie 2 am Neuromed Campus ELI-Spot Test (IGRA-Test zum Nachweis einer latenten Tuberkulose) Verwendetes System Indikation der T-Spot TB Test ist ein Interferon-gamma-Release-Assay (IGRA). Dabei wird die spezifische Immunantwort von sensibilisierten T-Lymphozyten auf bestimmte mykobakterielle Antigene quantitativ gemessen. z.B: o Screening von Risikopatienten auf (latente) Tuberkulose, o Ausschluss einer latenten Tuberkulose vor Durchführung einer immunsuppressiven Therapie o Bei klinischem Verdacht auf Tuberkulose, auch extrapulmonal (zusätzlich zum direkten Erregernachweis) Je nach Indikation zusätzlich oder alternativ zum Hauttest Gewinnung o o Abnahmeröhrchen: Lithium-Heparin oder Heparin-Röhrchen Erforderliche Menge: Erwachsene, Kinder ab 10 Jahre:8 ml oder 2x4ml Kinder 2 bis 9 Jahre: 4 ml Kinder bis 2 Jahre: 2 ml Transport/Zwischenlagerung o o o Röhrchen nach Abnahme mehrmals schwenken Zwischenlagerung bei Raumtemperatur – nicht kühl lagern! Probe muss am Abnahmetag möglichst rasch (bis spätestens 13:00 Uhr) in der Pathologie einlangen. Probenannahme nur von Montag bis Donnerstag möglich. Keine Annahme vor Wochenenden und Feiertagen! o o Erstellt: Karin Altendorfer Fachlich geprüft und freigegeben: OA Dr. Stefan Doppler archiviert: Nein Seite 19 von 19
