Infektiologie - Herausforderungen - Medizinische Universitätsklinik

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Infektiologie - Herausforderungen
¥  > 40 neue Erreger in den letzten 20 Jahren
entdeckt
¥  steigende Anzahl immunsupprimierter
Patienten
¥  zunehmende Resistenzentwicklung von
Krankheitserregern
¥  weltweite Migration u. Massentourismus
Global DALYs Caused by the 25 Leading
Diseases and Injuries in 1990 and 2010.
Murray et al. N Engl J Med. 2013;369:448-57
Importierte virale Infektionen in Europa
SZ 2012
Ebola-Ausbruch 2014
SZ 2014
RUHR-UNIVERSITÄT - MEDIZINISCHE UNIVERSITÄTSKLINIK - KNAPPSCHAFTSKRANKENHAUS BOCHUM
MERS – Fälle weltweit
Ärzteblatt 2015
RUHR-UNIVERSITÄT - MEDIZINISCHE UNIVERSITÄTSKLINIK - KNAPPSCHAFTSKRANKENHAUS BOCHUM
Bakterielle Infektionen
¥  Hauptursache infektbedingter Todesfälle
¥  Neu-entdeckte Bakterienarten
–  Borrelia burgdorferi (1981)
–  Helicobacter pylori (1982)
–  Ehrlichia chaffeensis (1987)
¥  zunehmende Resistenzentwicklung
–  Methicillin-resistenter Staph. aureus (MRSA)
–  Vancomycin-resistente Enterokokken (VRE)
–  ESBL-produzierende gram neg. Keime
Fallvorstellung 1
!  23 jähr. Frau ohne wesentliche Vorerkrankungen
!  am Vortag Zeichen eines leichten Infektes
!  Am Aufnahmetag akut hohes Fieber, schwerstes
Krankheitsgefühl und Hämatomentwicklung
!  Vorstellung in auswärtigem KH -> Intubation,
Beatmung -> Verlegung KK3
Befund
!  Intubiert, beatmet, katecholaminpflichtig
!  Sugillationen am gesamten Körper
!  Labor:
Leukos 5100/µl, Hb 12.1 g/dl, Thrombos 40.000/µl
Krea 1.9 mg/dl, TP 2.1 g/dl, CK 276 U/l, LDH 225
U/l, CRP 7 mg/dl, Quick < 10%, Fibrinogen < 30
mg/dl
ven. BGA pH 7.18, BE –15.6 mmol/l
Meningokokken
!  Etwa 370 Meningokokkenfälle/Jahr in D.
!  Versch. Serotypen A, B, C, W-135, Y
!  5-10% der Bevölkerung kolonisiert im NasenRachenraum
!  Impfstoff gegen Serogruppe B seit 2013
verfügbar (Bexsero®)
!  Therapie: Penicillin, Ceftriaxon
!  Letalität 5-10%
Meningokokken – Serotypen Deutschland
Infektionsepidemiologisches Jahrbuch 2012
Meningitis – Erreger
Sepsis
¥  Nachweis einer systemischen Wirtsreaktion (SIRS)
¥  Hypo- (<36°C) oder Hyperthermie (>38°C)
¥  Tachykardie (>90/min)
¥  Tachypnoe (> 20/min)
¥  Leukozytose > 12.000/µl oder Leukopenie < 4000/µl
¥ Nachweis eines infektiösen Ursprungs der Inflammation
Schwere Sepsis : Sepsis mit Organdysfunktion
Septischer Schock: Sepsis mit Schock
Sepsis – Erreger
Annane et al. Lancet 2005;365:63-78
Sepsis – Pathophysiologie
Annane et al. Lancet 2005;365:63-78
Fallvorstellung 2
¥  46 jährige Frau
¥  seit Vortag akut einsetzende AZ-Verschlechterung
–  atemabhängige thorakalen Schmerzen
–  Atemnot
–  unproduktiver Husten
–  Fieber mit Schüttelfrost
¥  VE:
–  COPD
–  Hyperthyreose
¥  Medikation:
–  DA, Singulair, Theophyllin, Prednisolon 5 mg, Carbimazol
¥  Sonstiges:
–  30 Zigaretten seit 25 Jahren
Befund
¥  deutlich reduzierter AZ, Tachypnoe
¥  RR 110/70, Puls 140, Temp 39.9°C
¥  periphere 02-Sättigung 97% unter 2 l 02
¥  blutig tingiertes Sputum
¥  links basal abgeschwächtes AG
¥  Leukos 30.700/µl, CRP 21 mg/dl
CAP - Therapieüberlegungen
¥  effektiv
¥  kostengünstig
¥  sinnvoll
¥  initial fast immer empirisch
Ambulant erworbene Pneumonie - Erreger
Streptococcus pneumoniae
Haemophilus influenzae
Legionella spp.
Mycoplasma pneumoniae
Chlamydia spp.
Staphylococcus aureus
Enterobacteriaciae
Pseudomonas aeruginosa
Mycobacterium tuberculosis
Coxiella burnetii
Moraxella catarrhalis
Influenza A Virus
Andere Viren
Unbekannt
35-80%
5-6%
2-15%
2-14%
4-15%
3-14%
6-12%
4-9%
<1-5%
2-4%
<1%
10-15%
5-10%
15-40%
Garau, Calba Lancet 2008
CAP - Prädisponierende Faktoren
ATS Am J Respir Crit Care Med 2001
CAP - Wertigkeit diagnostischer Verfahren
Ruiz et al. Am J Respir Crit Care Med
1999
CAP - Schweregrade
CURB
¥  Verwirrtheit
¥  Harnstoff-N > 20 mg/dl
¥  Atemfrequenz ≥ 30/min
¥  Blutdruck (syst. ≤ 90 mmHg, diast.≤ 60 mmHg)
CRB-65
¥  Verwirrtheit
¥  Atemfrequenz ≥ 30/min
¥  Blutdruck (syst. ≤ 90 mmHg, diast. ≤ 60 mmHg)
¥  Alter ≥ 65
Mortalität
0 Punkte
1%
1/2 Punkte
8%
3/4 Punkte
34%
Pneumonie - Komplikationen
¥  Lungenabszeß
¥  Pleuraempyem
¥  Sepsis
Therapieempfehlungen CAP
PEG 1999
Pneumonie - Verlauf unter Therapie
¥  bei jungen Militärrekruten mit
Pneumokokkenpneumonie
–  Entfieberung nach 2.5 d, Husten und
auskultatorisches Rasseln nach 8 d
–  Normalisierung der Leukos nach 4 d
¥  Normalisierung des Röntgenbildes
typischerweise länger (in
Ausnahmen bis 4-10 Wochen)
Pneumokokken
¥  gram positive Kokken
¥  identifiziert 1881 in Frankreich (Pasteur) u. USA
(Sternberg)
¥  Mikrobiologie:
–  vergrünendes Wachstum auf Blutagar
–  Wachstumshemmung durch Optochin
¥  90 Serotypen
¥  Kapsel wichtiger Pathogenitätsfaktor
¥  Nasopharynx besiedelt bei 5-10% gesunder
Erwachsener u. 20-40% gesunder Kinder
¥  Übertragung durch engen Kontakt
¥  häufigster Erreger von CAP, bakterieller Otitis
media, Sinusitis u. Meningitis in Erwachsenen
Pneumokokken - PCN Resistenz
¥  erstmals in den 60igern in Australien u.
Papua Neu Guinea aufgetreten
¥  Einteilung
–  sensibel
MHK < 0.06 µg/ml
–  intermediär
MHK 0.1 - 1.0 µg/ml
–  resistent
MHK > 2 µg/ml
¥  1999 25 - 35% Resistenz in USA
Verbreitung penicillinresistenter
Pneumokokken
Rosseau, Suttorp Internist 2000
PCN-Wirksamkeit - Plasmaspiegel und
MHK
Craig CID 2001
Fallvorstellung 3
¥  63-jähriger Patient, 178 cm, 80 kg
¥  BSV L5/S1 -> OP geplant
¥  VE: keine
¥  Med: Schmerzmittel
¥  Routine Röntgen Tx präoperativ
Diagnostik ?
Diagnostik:
¥  Mikroskopie
–  Voraussetzung 5.000 – 10.000
Bakterien/ml
–  Sensitivität pro Sputumprobe 50 – 80%
¥  Kultur
–  Voraussetzung 10 – 100 Bakterien/ml
–  Sensitivität > 90%
¥  PCR
–  Sensitivität 66 – 90%
Tb – Inzidenz
Tb – Inzidenz Deutschland
¥  ca. 4.500 Neuerkrankungen/Jahr
(Inzidenz 12.1/100.000, im Ausland
geborene 45.2/100.000)
¥  58% offene Lungentuberkulose
¥  26% ohne Bakteriennachweis
¥  17% extrapulmonale Tuberkulose
Tuberkulin Test
¥  nach Mendel-Mantoux (nicht Tine Test!)
¥  gereinigtes Tuberkulin (PPD = prurified protein
derivative)
¥  GT 10 0.1 ml streng intrakutan am Unterarm (entspricht
5 TU PPD in den USA)
¥  hergestellte Lösung 24 h verwendbar
¥  Ablesen nach 48 h (bis zu einer Woche möglich)
¥  gemessen wird Induration (nicht Erythem oder Ödem)
¥  Angabe in mm (nicht nur positiv)
¥  Sensitivität bei Pat. mit normalem Immunstatus fast
100%, im klinischen Alltag ca. 80%, bei Miliartbc in 50%
negativ
¥  Spezifität ca. 99%
¥  falsch positiv nach BCG-Impfung
Tuberkulin Test
Test unterscheidet nicht zwischen
aktiver und durchgemachter Infektion
Gamma-Interferon Test
¥  QuantiFERON-TB Gold-Test, ELISPOT-TB
¥  neues Testverfahren zur Diagnostik der Tuberkulose
¥  Vermutlich bessere Sensitivität als Tuberkulin-Test,
jedoch falsch neg. Tests bei Immunschwäche möglich.
¥  Bessere Spezifität als Tuberkulin-Test, kein Einfluss
durch BCG-Impfung.
Tb – Therapieregime
Fallvorstellung 4
¥  54 j. Pat. mit multiplen VE
¥  Aktuell Fieber bis 39°C seit 2 d
¥  BK -> Anruf Mikrobiologie MRSA
¥  Was tun?
Staph. aureus - Struktur
Lowry NEJM 1998
Staphylococcus aureus - Erkrankungen
¥  Lokale Infektionen
-> Abszess
¥  System. Infektionen
-> Fremdkörperinfektionen, Pneumonien,
Sepsis
¥  Toxin vermittelte Erkrankungen
-> Lebensmittelvergiftungen, Toxic-shocksyndrome
Staph. aureus – Träger &
Übertragungswege
¥  Träger:
- ca. 20% gesunder Erwachsener (nasal!)
- ca. 60% intermittierend besiedelt
- 50% davon tragen Staph. aureus an den Händen
Risikogruppe: Diabetes mellitus, Hämodialyse,
i.v.Drogen, HIV
¥  Übertragung:
- > 85% über die Hände (Hautkontakte)
- Aerosole (großflächige Wunden, Bronchialbaum)
- Kontaminierte Flächen / Gegenstände / Kleidung
- Endogen (Träger erhöhte Infektionsraten)
Resistenzentwicklung
¥  Natürliche Resistenz -> Penicillin bei
Mykoplasmen
¥  Erworbene Resistenz
–  Übertragbare Resistenzgene (Plasmide,
Transposons)
–  Akkumulation von Resistenzmutationen
⇒ Selektionsdruck durch Antibiotikaeinsatz
Staph. aureus – Resistenzentwicklung
1958 50-85% Penicillinresistenz
1959 Herstellung Penicillinase-fester Penicilline
(Methicillin, Oxacillin, Flucloxacillin)
1961 erstmals Oxacillin-resistente Stämme (mecA
Gen)
1996 intermed. Vancomycinresistenz (Japan) VISA
1997 bereits 3 VISA Fälle in USA
2002 erste Vancomycin-Resistenz in USA (VRSA)
2003 Fälle von c-MRSA (PV-Leukozidin als
Pathogenitätsfaktor)
MRSA-Rate – Europa
¥  niedrige Prävalenz: Niederlande / Skandinavien (<1%)
¥  hohe Prävalenz: Südeuropa (30-80%)
¥  Deutschland 2011: 20,8% (1990: 1,7%, 1998: 15,2%))
MRSA Rate – USA
MRSA-Diagnostik
¥  Kultur: hohe Sensitivität, lange Dauer (2d)
¥  PCR: mittlere Sensitivität, Ergebnis innerhalb 24h
¥  Screening Risikopatient :
PCR/Kultur Nase (sofern vorhanden Wunde, Durchtrittsstelle PEG, Blasenfistel)
¥  bei pos. Nachweis im Screening: erweitertes
Screening mit Rachen, Leistenkultur
¥  nach Sanierung: Kultur
Sanierung:
¥  Mupirocin NS (Turixin) 3x/d (5 Tage)
¥  Ganzkörperwaschung (Chlorhexidinseife) 3 d
¥  Keine Indikation f. systemische Antibiotikatherapie
bei Kolonisation
MRSA-Prävention & Therapie
¥  Prävention: Allgemeine Hygienemaßnahmen
(Händedesinfektion!!!)
¥  Systemische Therapie (nur bei Infektion):
-  First line Therapie: Vancomycin
- Neue Substanzgruppen:
-  Oxazolidinone (Linezolid (Zyvoxid®))
-  Streptogramine (Quinu- u. Dalfopristin
(Synerzid®))
Vancomycin-Resistenz
¥  erste Vancomycinresistenz bei Enterokokkus
faecium 1988 (Gene vanA-vanG)
¥  Diskussion über Mechanismus der VancomycinResistenz bei MRSA: Transfer des vanA Gens von
Enterokoken auf Staphylokokken?
¥  vanA-Gen – Transposon Tn1546 - Teil eines
Plasmids mit Multiresistenz f. Gentamycin,
Trimethoprim, Penicillin, Vancomycin (pLW 1043)
Fallvorstellung 4
!  19 jähr. Frau ohne wesentliche Vorerkrankungen
!  Akut aufgetretene wässrige Durchfäle z.T. mit Blut verbunden
mit diffusen abdominellen krampfartigen Schmerzen
!  Familienanamnese: Bruder mit Morbus Crohn
!  Leicht reduz. AZ, unauffälliger EZ
!  RR 100/60 mm Hg, Puls 80/min, Temp. 37.0°C
!  Abd. weich mit diffusem Druckschmerz und gesteigerten
Darmgeräuschen
!  Labor:
Leukos 19.900/µl, Kalium 3.1 mmol/l, GOT 54 U/l, GPT 73 U/l,
LDH 216 U/l, CRP 11.6 mg/dl
Akute Gastroenteritis
!  2% der Bevölkerung pro Jahr
!  Mehrzahl selbstlimitierend
!  50% weniger als 24 Stunden
!  Sekretorische Diarrhoen
!  Toxin-vermittelt, keine Zerstörung der Mukosa (Vibrio
cholerae, Staph. aureus, Viren)
!  Inflammatorische Diarrhoen
!  Invasion der Mukosa (Shigellen, Campylobacter)
Differentialdiagnose nach
Inkubationszeit
Altersverteilung
Campylobacterinfektionen
Yersinieninfektionen
Robert-Koch-Institut 2007
Gemeldete Darmpathogene Erreger in Deutschland
2013/4
! 
! 
! 
! 
! 
! 
! 
! 
! 
! 
! 
! 
Campylobacter
Cholera
Escherichia coli
EHEC (HUS)
Giardiasis
Krytosporidiose
Noroviren
Rotaviren
Salmonellen
Shigellen
Typhus, Paratyphus
Yersinien
2014
2013
70.972
1
8.415
1.650 (85)
4.019
1.725
75.040
32.399
16.222
552
84
2.458
63.636
1
7.838
1.621 (76)
4.145
1.564
89.322
48.309
18.986
578
146
2.590
Robert Koch Institut
RUHR-UNIVERSITÄT - MEDIZINISCHE UNIVERSITÄTSKLINIK - KNAPPSCHAFTSKRANKENHAUS BOCHUM
Stuhluntersuchung
!  Keine Diagnostik wenn Vorstellung ≤ 24 h
!  Immer bei:
!  Fieber, „kranken Pat.“, immunkompromitierten Pat.,
Ausbrüchen, blutigen Diarrhoen, Diarrhoen länger als 3 d
!  1 Stuhlkultur auf pathogene Keime (+ in 1.5-5.6%)
!  Salmonellen, Campylobacter, Yersinien, Shigellen
!  bei blutigen Stühlen zusätzlich enterohämorrhagische E. coli
(EHEC)
!  bei Antibiotikaeinnahme in den letzten 6 Wo. -> 1 x Stuhl auf
Clostridium difficile Toxin
!  Bei Ausbrüchen zus. Noroviren (PCR)
!  Bei Kindern ggf. Rotaviren (PCR)
Übertragung/Isolation
!  Fäkal-oral mit der Nahrung oder Trinkwasser
(Gegenstände)
!  Mensch-zu-Mensch möglich bei:
Typhus, Shigellen, Noro- und Rotaviren
!  Risikofaktoren:
!  Immunsuppression
!  Alter (Säuglinge, Ältere)
!  Säuresuppression (PPI)
!  Isolation erforderlich bei:
Clostridium difficile, Noroviren
!  Ansonsten eigener Toilettenstuhl ausreichend
Therapie
!  Symptomatisch:
!  Flüssigkeitssubstitution
!  ggf. Schmerzmittel
!  ggf. Loperamid (nicht bei kritisch kranken
Pat. oder V.a. EHEC (= blutige Diarrhoen))
!  in der Regel keine Antibiose
!  Ausnahmen:
!  immunsupprimierter Patient
!  schweres Krankheitsbild
!  Typhus, Shigellose, (Campylobacter)
Prophylaxe
!  Hygiene
!  Zubereitung von Lebensmitteln
!  Umgang mit Erkrankten
!  Umsichtiger Umgang mit Antibiotika
!  Desinfektion im Haushalt wenig sinnvoll
!  Probiotika ?
Meldepflicht an das Gesundheitsamt
!  In der Regel Erregernachweis durch Mikrobiologisches Institut
!  Krankheitsverdacht, Erkrankung und Tod: Cholera,
Typhus, Paratyphus
!  Krankheitsverdacht und Erkrankung: mikrobiell
bedingte Lebensmittelvergiftung oder akute infektiöse
Gastroenteritis, wenn:
!  1 Person im Lebensmittelbereich ist
!  mind. 2 gleichartige Erkrankungen mit epidemiol.
Zusammenhang auftreten
Clostridium difficile assoziierte Diarrhoen
!  Durch Toxin A/B von Clostridium difficile
(gram pos. Stäbchen, Sporenbildner)
hervorgerufen
!  Für etwa 20% der antibiotikaassoziierten
Diarrhoen verantwortlich
!  Infektion über Sporen (sehr umweltresistent)
!  Mehrzahl im Krankenhaus erworben (= nosokomial)
!  Überwiegend nach vorangegangener Antibiotikatherapie (bis
zu 6 Wo. nach Absetzen der Antibiose)
!  Keim im Stuhl von 3% gesunder Erwachsener und 20%
Krankenhauspat. nachweisbar
!  Seit 2003 gehäuft Infektionen mit hochvirulentem Stamm
Ribotyp 027 (2007 erste Fälle in D.)
Clostridium difficile - Inzidenz
Reichardt et al. DMW 2007;223-8
C. diff. ass. Diarrhoen - Inzidenz
Kelly C and LaMont J. N Engl J Med 2008;359:1932-1940
C. diff. ass. Diarrhoen - Ribotyp 027
Kelly C and LaMont J. N Engl J Med 2008;359:1932-1940
Clostridium difficile assoziierte Diarrhoen
!  Klinik:
variabel von asymptomatisch bis Sepsis
typisch akut einsetzende Diarrhoen, z.T. blutig mit
Bauchschmerzen, Fieber, häufig Leukozytose -> tox.
Megacolon
!  Diagnose:
Toxinnachweis im Stuhl, ggf. Kultur, ggf. Endoskopie
-> Sensitivität für ELISA ca. 80% -> Wiederholung
sinnvoll
-> bei Sigmoidoskopie in ca. 50% Pseudomembranen
C. diff. ass. Diarrhoen - Therapie
Kelly C and LaMont J. N Engl J Med 2008;359:1932-1940
Clostridium difficile assoziierte Diarrhoen
!  Therapie (für 10 d)
Metronidazol po (3 x 400 mg)
Metronidazol iv (3 x 500 mg)
Vancomycin po (iv. unwirksam) (4 x 125 mg)
-> bei schwerer Erkrankung Vancomycin po +
Metronidazol iv.
!  Im Krankenhaus Isolation der Patienten
!  Bis 20% Rezidive
Meldepflicht an das Gesundheitsamt C. diff.
Eines der folgenden vier Kriterien für einen schweren Verlauf
ist erfüllt:
1. Die Notwendigkeit einer Wiederaufnahme aufgrund einer
rekurrenten Infektion.
2. Verlegung auf eine Intensivstation zur Behandlung der
CDAD oder ihrer Komplikationen.
3. Chirurgischer Eingriff (Kolektomie) aufgrund eines
Megakolon, einer Perforation oder einer refraktären Kolitis.
4. Tod <30 Tage nach Diagnosestellung und CDAD als
Ursache oder zum Tode beitragende Erkrankung.
und/oder:
Nachweis des Ribotyps 027.
Robert-Koch-Institut 2008
Virale Gastroenteritis
!  Rotavirus
!  Calicivirus (Norwalk-like Virus)
!  Adenovirus Typ 40 und 41
!  Astrovirus
Noro-Virus (Norwalk-like Virus)
!  Erstbeschreibung 1970er in Norwalk, Ohio
!  Familie „Caliciviridae“
!  7,6 kb positive Einzelstrang-RNA
!  Infektionsdosis < 100 Viren
!  Hohe Stabilität
!  Hohe genetische und antigenetische Diversität
!  Nur kurzfristige Immunität
27-32 nm
Klassifizierung nach Genogruppen
GG I.1
GG I.2
GG I.6
¥  GG I
Insgesamt >20 Genotypen
GG II.2
¥  GG II
GG II.4
GG II.7
¥  GG III (Jena Virus) -nicht humanpathogen
¥  GG IV
¥  GG V (Maus Virus) - nicht humanpathogen
An das RKI übermittelte NorovirusGastroenteritiden nach Meldewoche,
Deutschland, 2009-2014
Letalität: 0,1%
Symptome der Norovirusinfektion
¥ 
¥ 
¥ 
Erbrechen
Diarrhoen ca. 1 Tag später
Besserung der Symptome nach
ca. 3 Tagen
¥ 
CAVE: das Virus wird in der
Regel noch 7–14 Tage, in
Ausnahmefällen über Wochen
nach der akuten Erkrankung
über den Stuhl ausgeschieden
Noro-Virus (Norwalk-like Virus)
!  Häufigkeit deutlich zunehmend,
Ausbrüche vor allem in Herbst u. Winter
!  Diagnose über Antigennachweis (PCR, EIA)
!  Therapie symptomatisch
!  Isolation der Patienten erforderlich
-> Kontaktisolierung + Mundschutz bei Pat. mit
Erbrechen
!  Erreger im Stuhl und Erbrochenen nachweisbar
!  Spezielles Händedesinfektionsmittel erforderlich
Zusammenfassung
!  Akute Diarrhoen sind häufig
!  Wenn indiziert 1 x Stuhlkultur auf pathogene Keime
!  Bei Antibiose 1 x Stuhl auf Clostridium difficile Toxin
!  Therapie symptomatisch, ggf. Loperamid, ggf.
Antibiose
!  Bei Pat. mit anamnestisch Antibiotika ass. Diarrhoen
-> Probiotika (Lactobacillus GG, Saccharomyces
boulardii) möglicherweise sinnvoll
!  C. diff. Infektionen + Noroviren zunehmende
Bedeutung
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