Leistungsverzeichnis Allg. Teil

I n h a lt s v e r z e i c h n i s
Allgemeines
Das Ärzteteam�� 3
Kompetente Auskunft�� 4
Mitgliedschaften�� 6
Qualitätsmanagement�� 7.
Lageplan�� 517
F a c h i n f o r m at i o n e n
A.Hinweise zur Präanalytik�� 9
B.Mikrobiologische Untersuchungen�� 19
C. Verzeichnis gebräuchlicher Abkürzungen�� 33
D. Alphabetisches Untersuchungsverzeichnis�� 39
E.Allergie�� 421
F. Auszug aus dem Infektionsschutzgesetz (IfSG)�� 431
G.Virusinfektionen�� 439
H. Diagnostik in Gravidität und Perinatalperiode�� 441
I.Tumormarker�� 449
J.Autoantikörper�� 461
K.Schilddrüsendiagnostik�� 469
L.Gerinnungsuntersuchungen�� 473
M.Funktionstests�� 479
N.Index�� 511
1
Das Ärzteteam
Partner
Rufnummer
E-mail
Tätigkeitschwerpunkte
Dr. med. Thomas Lehners
FA für Mikrobiologie, Virologie
und Infektionsepidemiologie
0511-85622-130
[email protected]
Bakteriologie, Mykologie, Virologie,
Parasitologie, Antibiotikatherapie,
Molekularbiologie, Hygiene
Dr. med. Michael Weimann
FA für Laboratoriumsmedizin
0511-85622-140
[email protected]
Klinische Chemie, Hämatologie,
Hämostaseologie, Blutgruppen,
Proteinchemie, Drogen, TDM*
Dr. med. Veronika Imse
FÄ für Laboratoriumsmedizin
0511-85622-150
[email protected]
Endokrinologie, Tumormarker,
Autoimmunität, Allergie, TDM*,
Drogenscreening, Blutgruppen
Dr. med. Silvia Lehners
FÄ für Laboratoriumsmedizin
0511-85622-160
[email protected]
Klinische Chemie, Hämostaseologie,
Hämatologie, TDM*, Immunologie,
Serologie, Allergie, Autoimmunität,
Med. Mikrobiologie, Molekularbiologie
TDM* = Therapeutic Drug Monitoring
3
K omp e t e n t e A u s k u n f t
Verwaltung/Organisation
Rufnummer
E-mail
Zentrale / Befundauskunft
0511-85622-0
[email protected]
Zentrale Fax-Nr.
0511-85622-710
Auftragserfassung
Claudia Thisius
0511-85622-310
0511-85622-314
[email protected]
[email protected]
Verwaltung
Christa Heinen
0511-85622-360
0511-85622-180
[email protected]
[email protected]
0511-85622-330
[email protected]
0511-85622-340
0511-85622-341
[email protected]
[email protected]
EDV/Technik
Thomas Göttsch
Christian Scholz
0511-85622-290
0511-85622-292
0511-85622-294
[email protected]
[email protected]
[email protected]
Einsenderbetreuung
Cinzia Napoleoni
Tanja Wiegmann
Kristina Zymelka
0511-85622-350
0172-5151991
0162-1314483
0172-5657562
[email protected]
[email protected]
[email protected]
[email protected]
Qualitätsmanagement
Aurelia Hannig
0511-85622-372
[email protected]
[email protected]
Materialversand
0511-85622-355 / -310
[email protected]
Abrechnung:
- gesetzliche Krankenkassen
Manuela Richter
So-Ming Wong
- Krankenhäuser/Privatkassen
Hanna Cano
4
K omp e tDe a
n st eÄA
ru
z tsektuenafm
t
Diagnostische Bereiche
Rufnummer
E-mail
Sprechstunde / Blutentnahme
Maria L. Cabeza
0511-85622-300 / -310
[email protected]
[email protected]
Probeneingang
Mareen Bruschkewitz
0511-85622-200
[email protected]
[email protected]
Klinische Chemie/Hämatologie/
Gerinnung
Bianca Wittbold
Sabrina Meyer
[email protected]
0511-85622-230
Serologie/Immunologie
Nicole Winkler
0511-85622-240
[email protected]
[email protected]
AAS/HPLC
Lilia Makarov
0511-85622-581
[email protected]
[email protected]
Mikrobiologie
Dr. rer. nat. Simone Jacob
Birgit Paul
Molekularbiologie
Heidi Koschine
0511-85622-170
0511-85622-260
[email protected]
[email protected]
[email protected]
0511-85622-280
[email protected]
[email protected]
Hygiene
Heidi Koschine
0511-85622-270
[email protected]
[email protected]
5
Mitgliedschaften
PDeutsche
Vereinte Gesellschaft für Klinische Chemie und
Laboratoriumsmedizin e.V. (DGKL)
PDeutsche
Gesellschaft für Hygiene und Mikrobiologie e.V.
(DGHM)
Arbeitsgemeinschaft niedergelassener Ärzte
in der Versorgung HIV-Infizierter (NieAGNÄ)
PPaul-Ehrlich-Gesellschaft
PINSTAND
PGesellschaft
für Thrombose- und Hämostaseforschung (GTH)
PDeutsche
Gesellschaft für Transfusionsmedizin und
Immunhämatologie (DGTI)
PDeutsche
PNiedersächsische
für Chemotherapie e.V. (PEG)
e.V.
PECAT
Foundation (International External Quality Assessment
Programme in Thrombosis and Haemostasis)
PG-EQUAS
(The German External Quality Assessment Scheme)
Gesellschaft für Endokrinologie (DGE)
PDeutschsprachige
Mykologische Gesellschaft
PDeutsche
Gesellschaft für Parasitologie
PDeutsche
Gesellschaft für Ernährung (DGE)
PDeutsche
Gesellschaft für Ernährungsmedizin (DGEM)
Arbeitsgemeinschaft niedergelassener Ärzte
in der Versorgung HIV-Infizierter (DAGNÄ)
PBerufsverband
Deutscher Laborärzte e.V.
PBerufsverband
der Ärzte für Mikrobiologie und
Infektionsepidemiologie e.V. (BÄMI)
PDELAB
e.V.
PDeutsche
6
PEuropean
Society of Clinical Microbiology and Infectious
Diseases (ESCMID)
PEuropean
Society of Endocrinology (ESE)
PAmerican
Association for Clinical Chemistry (AACC)
PAmerican
Society for Microbiology (ASM)
s a
Än
rz
ea
mt
Q u a l i t äDta
sm
atgeetm
en
Das Medizinische Labor Hannover wurde 2005 für den Bereich
Medizinische Laboratoriumsdiagnostik gemäß der Norm DIN
EN ISO 15189 durch die Deutsche Akkreditierungsstelle Chemie
(DACH) erstakkreditiert.
Die Reakkreditierung fand im Jahr 2010 durch die Deutsche
Akkreditierungsstelle (DAkkS) statt.
Die Urkunde mit Anlagen finden Sie auf unserer Homepage
(www.mlh.de) im Internet.
Mit Hilfe des Qualitätsmanagementsystems sollen die diagnostischen Möglichkeiten laufend optimiert sowie ein hoher Leistungsstandard erhalten werden. Ständige Fortbildung des gesamten
Laborteams sichert den hohen Anspruch an Qualität auch in der
Zukunft.
Für Fragen und Anregungen zu diesem Themenbereich steht
Ihnen unsere Qualitätsmanagement-Beauftragte (QMB) gerne zur
Verfügung.
Messunsicherheit:
Die Messunsicherheit beschreibt die Streuung von Messergebnissen. Bei jedem Einzelprozess innerhalb des Analysenganges treten
gemäß statistischer Grundsätze Abweichungen vom wahren Wert
auf. Zur Feststellung und Minimierung von Abweichungen und
Schwankungen werden regelmäßige Überprüfungen bezüglich
Präzision und Richtigkeit der Messergebnisse durchgeführt.
Auskünfte zur Messunsicherheit der quantitativen Prüfverfahren
werden auf Anfrage jederzeit gern erteilt.
Interne Qualitätssicherung:
Die hausinternen Qualitätskontrollen werden gemäß der Richtlinien der Bundesärztekammer zur Qualitätssicherung in medizinischen Laboratorien (RiLiBÄK) durchgeführt.
Untersuchungsverfahren außerhalb der Akkreditierung:
Diese Verfahren sind im alphabetischen Teil des Untersuchungsprogramms sowie in den Befunden mit der Bemerkung „nicht
akkreditierbare Methode“ gekennzeichnet.
Unterauftragsvergabe:
Im alphabetischen Verzeichnis des Untersuchungsprogramms
mit ° bzw. in den Befunden mit * gekennzeichnete Untersuchungen werden als Fremdleistungen durch kooperierende
Laboratorien erbracht. Ein Verzeichnis der Unterauftragnehmer
stellen wir Ihnen auf Anfrage gerne zur Verfügung.
Externe Qualitätssicherung:
Die externe Qualitätskontrolle erfolgt durch die regelmäßige
Teilnahme an Ringversuchen der folgenden Organisationen:
PInstitut für Standardisierung und Dokumentation im Medizinischen Laboratorium e.V. (INSTAND)
PDeutsche Vereinte Gesellschaft für Klinische Chemie und
Laboratoriumsmedizin e.V. (DGKL)
PLandesgesundheitsamt Baden-Württemberg
7
A . Hi n w e i s e z u r P r ä a n a ly t ik
Die präanalytische Phase hat entscheidenden Einfluss auf
die Qualität der Analytik im Labor sowie die Interpretation
der erhobenen Befunde. Aus diesem Grunde bitten wir um
Beachtung der folgenden Hinweise. Bitte zögern Sie nicht, bei
offenen Fragen telefonisch Kontakt mit unserem Laborteam
aufzunehmen. Wir beraten Sie gerne zu allen Fragen der
optimalen Probenentnahme1. Bitte übermitteln Sie uns mit
der Untersuchungsanforderung auch Hinweise zur Klinik des
Patienten (Diagnosen, Medikation) sowie zu externen Voruntersuchungen. Diese Informationen erleichtern die Einordnung
der erhobenen Resultate und erlauben häufig erst eine exakte
Befundinterpretation.
1. Einsendung von Untersuchungsmaterial:
Im Untersuchungsprogramm sind für jeden Analyten das
erforderliche Material und die optimalen Abnahmebedingungen
verzeichnet. Das benötigte Abnahme- und Versandmaterial
stellen wir Ihnen kostenfrei zur Verfügung. Verwenden Sie bitte
unsere Materialanforderungsscheine, die jederzeit im Labor
bestellt werden können.
Falls der Versand oder Transport einer Probe gefroren erfolgen
muss, verwenden Sie bitte unsere Kühlboxen, die wir Ihnen auf
Anforderung ebenfalls zur Verfügung stellen.
Die Einsendung der Untersuchungsproben erfolgt entweder
über unseren Fahrdienst oder auf dem Postweg.
Der Patient ist vom anfordernden Arzt rechtzeitig über die notwendigen Verhaltensregeln vor der Probennahme zu informieren. Zur Vermeidung von Fehlinterpretationen der Laborergebnisse sollte die Probennahme nach 12-stündiger Nahrungskarenz
und eingeschränkter körperlicher Aktivität möglichst morgens
zwischen 7.00 Uhr und 9.00 Uhr sowie vor Anwendung potentiell störender diagnostischer und therapeutischer Maßnahmen
erfolgen. Ggf. wird ein der jeweiligen Analytik angemessener
Zeitabstand eingehalten (z.B. entsprechende Diätvorschrift
siehe Untersuchungsverfahren in alphabetischer Ordnung in
Kapitel D, Funktionstests, Kapitel M). Beim Therapeutischen
Drug Monitoring (TDM) wird das Konzentrationsmaximum nach
Arzneimittelgabe (siehe Einzelparameter im alphabetischen
Untersuchungsverzeichnis) und die Steady State Phase vor der
folgenden Gabe berücksichtigt.
2. Beschriftung der Proben und Begleitscheine:
Zur Sicherung der Identität der eingesandten Probe bitte
Namen, Vornamen und Geburtsdatum des Patienten auf dem
Probengefäß (nicht dem Versandbehälter) sowie dem Begleitschein vermerken; bei Patienten mit wenig geläufigen Vornamen
ist die zusätzliche Angabe des Geschlechts notwendig.
Bitte geben Sie zusätzlich Abnahmetag und Uhrzeit an;
diese Information ist insbesondere bei Mehrfachentnahmen,
bestimmten Hormonuntersuchungen (z.B. Cortisol) sowie für die
Auswertung von Funktionstesten unverzichtbar.
Bitte die gewünschte Untersuchung, Materialart, Absender
sowie Angaben zu Diagnose und Pharmakotherapie unbedingt
auf dem Begleitschein vermerken.
Verwenden Sie bei Kassenpatienten bitte nur vollständig
ausgefüllte Überweisungsscheine (Muster 10). Ein zusätzlicher
Begleitschein ist nicht notwendig.
Bei Privatpatienten und IGeL-Anforderungen bitten wir um
Angabe der vollständigen Anschrift des Patienten. Der Patient
muss über die geplante Laboruntersuchung informiert werden
und dieser per Unterschrift zustimmen. Dies gilt insbesondere
für Untersuchungen, die unter das Gendiagnostikgesetz (GenDG)
fallen, und denen der Patient ausdrücklich und schriftlich zustimmen muss (Nachweis der Einwilligung nach § 8 GenDG).
1Auf unserer Homepage (www.mlh.de) steht Ihnen außerdem unser Handbuch zur
Primärprobenentnahme zur Einsicht, sowie zum Download zur Verfügung.
9
A . H i n w e i s e z u r P r ä a n a ly t i k
3. Entnahme von Probenmaterial:
Die Blutproben für die unterschiedlichen Analysen werden mittels spezieller Entnahmeröhrchen mit entsprechenden Zusätzen
gewonnen. Dabei ist folgende Reihenfolge empfehlenswert:
1.Blutkultur
2.Röhrchen ohne Zusatz
3.Citratblut
4.Heparinblut
5.EDTA-Blut
6.Na-Fluorid-Blut (Glykolysehemmer)
7.Spezialröhrchen für weitere Untersuchungen
(siehe Einzelparameter im alphabetischen Teil)
Die Farbcodierungen der Entnahmeröhrchen divergieren in
Abhängigkeit vom jeweiligen Hersteller, die entsprechenden
Firmenangaben sind zu beachten.
Die im alphabetischen Teil des Leistungsverzeichnisses angegebenen Mengen wurden für Einzelanalysen ermittelt. Bei
Anforderung mehrerer Untersuchungen aus identischem Untersuchungsmaterial sind ca. 5 ml Serum bzw. Plasma bzw. 10 ml
EDTA- oder Heparinblut ausreichend.
Venöse Blutentnahme:
Übereinstimmung der perönlichen Angaben des Patienten mit der Angabe auf dem Anforderungsformular wird
überprüft
Pder Patient sollte die Körperlage (sitzend oder liegend) mindestens 15 min vor der Blutentnahme eingenommen haben
Pdie zur Blutentnahme erforderlich Materialien liegen bereit
Pes folgt die Inspektion zur Suche einer geeigneten Punktionsstelle, in dem der Patient die Faust schließt
Pdie
10
Pdie
Punktionsstelle wird desinfiziert
Staubinde wird angelegt
PPunktion und Füllung der Blutentnahmeröhrchen. Sicherheitskanülen bzw. -butterflies verwenden!
PZur Vermeidung von Nachbluten und beim Herausziehen der
Nadel wird ein Tupfer auf die Punktionsstelle gedrückt und
für 15–20 Sekunden komprimiert.
Pdie
Kapilare Blutentnahme:
PPassende Safety-Einmal-Lanzette nach Nadelgröße und
Einstichtiefe auswählen
PSchutzkappe abdrehen
PSafety-Lanzette gegen die ausgewählte und desinfizierte
Punktionsstelle halten, Auslöseknopf drücken
PSafety-Lanzette in eine geeignete Entsorgunsgsbox geben
PDurch vorsichtiges Massieren des Fingers, des Ohrläppchens
oder der Ferse in Richtung Punktionsstelle erhalten Sie die
erforderliche Blutmenge
PBlut mit passender End-to-End-Kapillare aufnehmen (z.B.:
Glukose 20 µl, HbA1C: 10µl)
PTupfer auf die Punktionsstelle drücken und für 15–20 Sekunden komprimieren.
A . Hi n w e i s e z u r P r ä a n a ly t ik
Serum:
Die Mehrzahl der Untersuchungen wird im
Serum durchgeführt. Soweit nicht ausdrücklich angegeben, sollte nach Möglichkeit
kein Vollblut versandt werden. Bei der
Bestimmung von z.B. Kalium, Phosphat,
LDH, Aldolase oder auch bei Hormonen
und Antikörpern können bei Versand von
Vollblut, bedingt durch Hämolyse, falsch
erhöhte Werte im Serum gemessen werden.
Vollblut:
Diese Monovetten® sollten nur für spezielle
Untersuchungen verwendet werden (z.B.
Blutgruppenbestimmung).
Citrat-Blut:
Hauptsächlich für die Bestimmung der
Gerinnungsparameter erforderlich sowie für
Spezialanalysen (z.B. C1-Esterase-InhibitorAktivität; APC-Resistenz). Die Monovette
unbedingt bis zur Markierung aufziehen
(andernfalls stimmt das Mischungsverhältnis
Blut/Antikoagulans nicht) und gut durchmischen (siehe auch 4.).
EDTA-Blut:
Zur Bestimmung des Blutbildes, aber auch
für Spezialanforderungen (z.B. ACTH,
Lymphozytendifferenzierung, molekulargenetische Untersuchungen) vorgesehen. Die
Monovetten® enthalten EDTA, daher Röhrchen nach der Materialentnahme mehrfach
umwenden, jedoch nicht schütteln.
Heparinblut:
NH4-Heparinat-Röhrchen sowie LithiumHeparinat-Röhrchen werden nur für
Spezialanforderungen benötigt (siehe
alphabetischer Teil des Untersuchungsverzeichnisses). Monovette® nach der Entnahme mehrfach umwenden, jedoch nicht
schütteln.
Na-Fluorid-Blut:
Monovette® wird z.B. zur Glucose- und
Fructosebestimmung aus Vollblut oder zur
Bestimmung von Laktat verwendet. NaF
dient als Glykolysehemmer und erlaubt die
korrekte Bestimmung leicht abbaubarer
Kohlenhydrate. Die Röhrchen beinhalten
zusätzlich ein Antikoagulanz. Probe nach
Entnahme gut mischen, jedoch nicht
schütteln.
EGTA-Blut:
Glutathion-Röhrchen, z.B. zur Katecholaminbestimmung im Plasma notwendig; bitte
achten Sie auf gute Durchmischung nach
Probenentnahme, jedoch nicht schütteln.
NaHSO4-Blut:
Zur Bestimmung der sauren Phosphatase
und Prostataphosphatase (enzymatische
Aktivität). Probenröhrchen mit 1 ml Serum
füllen und gut mischen, jedoch nicht
schütteln.
11
A . H i n w e i s e z u r P r ä a n a ly t i k
Kapillarblut:
Bestimmung von Glucose und HBA1c im
Kapillarblut (Hämolysat); hierzu bitte jeweils
spezielles Entnahmematerial anfordern.
24-h-Sammelurin:
Viele klinisch-chemische und endokrinologische Urinanalysen werden aus 24-h-Sammelurin durchgeführt, da die gemessenen
Konzentrationen auf die Tagesausscheidung
der Analyten bezogen werden, um Einflüsse
der Flüssigkeitszufuhr und -ausscheidung zu
eliminieren. Der Patient wird persönlich und
über ein dem Sammelbehälter angefügtes
Informationsblatt über die Verfahrensweise
der Probengewinnung informiert.
Der Urin wird in einem sauberen, lichtgeschützten Gefäß gesammelt (ggfs. nach
vorheriger Zugabe von Salzsäure zur
Stabilisierung gemäß Angaben bei den entsprechenden Analyten). Die Sammelperiode
beginnt nach dem Morgenurin und endet
12
mit dem Morgenurin des nächsten Tages.
Nach Ende der Sammelperiode werden ca.
30 ml des gut durchmischten Urins abgefüllt
und unter genauer Angabe des Sammelvolumens eingeschickt.
(Ein spezielles Entnahmeset für die
Gewinnung von Sammelurin, bestehend
aus Urinbecher, Sammelgefäß mit HCl 20%
(grüner Deckel) bzw. ohne Zusatz (gelber
Deckel) und Aliquot-Röhrchen stellen wir
auf Anfrage zur Verfügung.) Da die Analytik
von Katecholaminen und 5-Hydroxyindolessigsäure (5-HIES) im 24-h-Sammelurin durch
bestimmte Lebensmittel sowie Medikamente
gestört werden kann, haben wir zur
Optimierung der Präanalytik spezielle Informationsblätter für Arzt und Patient erstellt,
die wir auf Anfrage gerne zur Verfügung
stellen.
A . Hi n w e i s e z u r P r ä a n a ly t ik
4. Gerinnungsuntersuchungen:
Die optimale Blutentnahme ist eine der wichtigsten Voraussetzungen für die Erstellung valider Ergebnisse in der Gerinnungsdiagnostik!
Die folgenden Empfehlungen hierzu entsprechen der DIN 58905.
Die „richtige“ Blutentnahme:
P Die Blutentnahme sollte stressarm erfolgen
P Der Staudruck sollte zwischen systolischem und diastolischem Blutdruck liegen und die Stauzeit sollte möglichst kurz sein (≤ 1min!)
P die verwendete Nadel sollte großlumig sein (21 G)
Pdie ersten 2-3 ml Blut sollten für andere Analysen verwendet werden (Serumgewinnung etc.; eine punktionsbedingte Freisetzung
von Gewebsthromboplastin beeinflusst die Testergebnisse)
P das Blut muss bis zur Markierung aufgezogen werden (richtiges Mischungsverhältnis Citrat : Blut = 1 : 10)
P das Probenmaterial soll sofort nach der Entnahme 2-3 mal geschwenkt werden (optimale Vermischung von Citrat und Blut)
P der Probentransport in das Labor muss am gleichen Tag erfolgen
Falsch ist:
P Zu schnelles Aspirieren (hierdurch kommt es zu Hämolyse und Schaumbildung)
P Unterfüllung oder Überfüllung des Röhrchens (falsche Blut-Citrat-Relation)
PHeftiges Schütteln oder keine Durchmischung (kann zur Gerinnung der Probe führen)
Benötigtes Probenmaterial:
Untersuchung
Gerinnungsstatus (z.B. PTT, Quick,
Fibrinogen)
Thrombophilie-Diagnostik
Thrombozyten-Funktionstest
Heparin-Induzierte-ThrombozytopenieDiagnostik
Probe
ca. 3 ml frisches Citratblut
ca. 9 ml Citratblut
ca. 2 ml EDTA-Blut
1 Serummonovette
ca. 9 ml Citrat-/Spezialblut
ca. 9 ml Citratblut,
1 Serummonovette
Bemerkung
Bestimmung in tiefgefrorenen Plasma
proben nur zur Überprüfung der Stabilität
Für Details: siehe Information Thrombose –
Risiko
Blutentnahme nur im Labor!
Tel. Vorankündigung/Rücksprache mit
Laborarzt notwendig
13
A . Hi n w e i s e z u r P r ä a n a ly t ik
Probentransport:
Grundsätzlich muss Blut für Gerinnungstests schnellstmöglichst (!) ungekühlt und ohne Zentrifugation im Labor eintreffen
(Ausnahme: Homocystein).
Ein Postversand von Citratblut ist nur für von-Willebrand-Faktor, FXIII, AT, Heparinspiegel und HIT-Diagnostik (Heparininduzierte
Thrombopenie) möglich. Im Übrigen darf nur tiefgefrorenes Citratplasma verschickt werden, ggfs. bitte tel. Rücksprache.
5. Funtionsteste
Vor der Durchführung von Funktionstesten ist der Patient über Verhaltensweisen (Diäten ect.) und Risiken aufzuklären. Hierzu ist z.B.
für die Durchführung von oralen Belastungstesten eine Absprache ca.1 Woche vor der geplanten Untersuchung erforderlich.
Für den Test „Fructosemalabsorption“ unterschreibt der Patient eine Einverständniserklärung.
6. Identifizierung und Prüfung eingehender Aufträge
Unsere Proben werden durch Kurierdienste in das Labor gebracht oder per Post entsprechend den jeweils gültigen Transportvorschriften verschickt.
Spezielle Anforderungen an den Transport (z. B. Kühlung, Warmhaltung, Sofortlieferung) sind – sofern notwendig – dem alphabetischen Untersuchungsverzeichnis zu entnehmen.
Die in unserer Praxis eingehenden Aufträge werden auf Korrektheit bezüglich Etikettierung, Auftagserteilung, Material und Durchführbarkeit des Auftrages geprüft. Dies betrifft auch Untersuchungen, die an Auftragslaboratorien vergeben werden. Bei Unklarheiten
wird Rücksprache mit dem Einsender gehalten und es erfolgt eine Abklärung mit der Laborleitung. Es werden ausschließlich Untersuchungsmethoden durchgeführt, für die das Labor die entsprechende personelle und technische Befähigung hat.
Annahmekriterien:
Die Proben und Aufträge werden auf Vollständigkeit geprüft, ob zu jedem Auftrag das geeignete Material vorhanden ist und ob die
Analysierbarkeit der Probe gewährleistet ist. Auf den Anforderungsbelegen müssen mindestens folgende Angaben vorhanden sein:
14
Art der Primärprobe und ggf. anatomischer Herkunfsort
Klinische Angaben, Alter und Geschlecht des Patienten
A . Hi n w e i s e z u r P r ä a n a ly t ik
Datum und Uhrzeit der Entnahme
Anforderer (Name, LANR; BSNR, postalische Anschrift)
Angeforderte Untersuchungen
Für Kassenpatienten außerdem die für die korrekte Abrechnung benötigten Angaben wie Kassen- und Versichertennummer etc.
und die Angabe der Diagnose.
Die Proben werden im Laboratorium mit Datum und Uhrzeit des Eingangs der Probe sowie einem Barcodeetikett versehen. Proben
mit falschem oder ohne den erforderlichen Zusatz werden nicht akzeptiert und der Auftrag wird entsprechend kommentiert. Gleiches
gilt für Proben, bei denen die Anforderungen an die Präanalytik nicht berücksichtigt wurden, z. B. Proben, die nicht temperiert in das
Labor gebracht wurden. In diesen Fällen wird mit dem Einsender telefonisch Rücksprache gehalten.
Wenn nach Rücksprache mit dem einsendenden Arzt die Untersuchung dennoch auf ausdrücklichen Wunsch des Einsenders entgegen
dem Vorgehen des Labors durchgeführt werden soll (z. B. unersetzbare bzw. kritische Primärprobe wie Liquor oder Biopsie), wird dies
auf dem Befund dokumentiert und die dafür verantwortliche Person (z.B. einsendender Arzt) ebenfalls im Befundbericht ausgewiesen.
Laboranforderungsbeleg:
Die Anforderung von Laboruntersuchungen ist grundsätzlich eine ärztliche Handlung, die den Charakter einer ärztlichen Verordnung
trägt. Sie bedarf grundsätzlich der Schriftform (Laboranforderungskarte, Überweisungsschein o.ä.) und prinzipiell der Unterschrift des
Arztes. Mit der Unterschrift bestätigt der Arzt u.a.:
Die Indikation bzw. die Fragestellung der Anforderung
Die Repräsentanz des Untersuchungsmaterials
Die Richtigkeit spezieller Daten wie Diagnose, bisherige Medikamentengaben usw.
Die Identität zwischen dem Namen auf dem Untersuchungsgefäß und dem Patienten, von dem das Untersuchungsmaterial gewonnen wurde.
Fehlen die diagnostische Fragestellung, Diagnose, Angaben zur Sammelzeit und Menge, Alter, Geburtsdatum, Geschlecht, Schwangerschaftswoche u.v.a.m., kann zwar ein Laborergebnis erstellt werden, jedoch können die Plausibilität, die Einordnung in entsprechende
Referenzbereiche, weiterführende Berechnungen etc. nicht durchgeführt werden.
15
A . Hi n w e i s e z u r P r ä a n a ly t ik
Telefonische Nachmeldung von Anforderungen/Aufbewahrungszeiten:
Telefonische Nachmeldungen von Anforderungen sind untersuchungsabhängig innerhalb einer bestimmten Zeit möglich. Nach
Abschluss der Analysen werden die Proben in Abhängigkeit von der Stabilität aufbewahrt und danach entsorgt. In dieser Zeit können
weitere Untersuchungen sowie Kontrolluntersuchungen nach Rücksprache mit der Leitung nachgefordert werden. Die Stabilität des
gelagerten Materials bezüglich der nachgeforderten Untersuchung wird geprüft. Mündliche (Nach-)Anforderungen werden duch unsere Aufragserfassung in unserem Laborinformationssystem unter „Diagnosen“ dokumentiert und auf dem Original-Überweisungsschein/
Auftragsformular nachgetragen.
Proben
Blutbildausstriche, gefärbt
Bereich
Hämatologie
Aufbewahrungszeit
6 Monate
Temperatur
Raumtemperatur
Citratplasma
Gerinnung
Tiefgefrorenes (!) Citratplasma
nach Rücksprache bzw.
Aufbewahrungsanforderung
Gerinnung
7 Tage nur (!) zur
Identifikation
2 Wochen
Citrat-Vollblut
Blutsenkung
7 Tage
EDTA-Vollblut
Hämatologie
7 Tage
Vollblut (Blutkuchen und
Serum getrennt), EDTA-Vollblut
(Erythrozyten und Plasma
getrennt)
Blutgruppenserologische
Untersuchungen
2 Wochen
Raumtemperatur nur (!) zur
Identifikation
Im – 20°C Tiefkühlschrank
(- 70°C für längere
Aufbewahrungszeiten)
Raumtemperatur nur (!) zur
Identifikation
Raumtemperatur nur (!) zur
Identifikation
Kühlschrank
NaF-Röhrchen/-Plasma
Kohlenhydratstoffw.
1 Woche
16
Kühlschrank (Stabilität der Glucose
2 Tage), danach nur (!) zur
Identifikation
A . Hi n w e i s e z u r P r ä a n a ly t ik
Serum
Immunologie
7 Tage
Kühlschrank
Serum-/ LiHep.-Plasma
Klinische-Chemie
7 Tage
Kühlschrank
Serum, Urin, etc.
Toxikologie
4 Wochen
Tiefkühlschrank
Malariapräparate
Mikrobiologie
3 Monate
Raumtemperatur
Untersuchungsmaterial (Abstrich,
Sekret, Sputum, Stuhl, Urin, etc.)
Mikrobiologie
7 Tage
Kühlschrank
Hinweis: Aufbewahrungszeiten über die Stabilität der Probe hinaus dienen nur zur Identifikation.
Notfallanalytik:
Notfall-/EILT-Proben werden von Ihnen als Einsender mit dem von uns zur Verfügung gestellten sog. „Roten Aufkleber“ („Notfall/EILT!)
gekennzeichnet, in gesonderte, ebenfalls „Rote Versandbeutel“ aus Kunststoff gelegt. Werden derart gekennzeichnete EILT-Proben dem
Fahrdienst mitgegeben, werden sie nach Eintreffen in unserem Labor vorrangig bearbeitet. D.h.: Da der Fahrdienst nicht jede Praxis
isoliert anfahren kann, sondern in der Regel seine Tour einhalten muss, erfolgt nur eine beschleunigte Bearbeitung. Dabei kann man mit
Bearbeitungszeiten inklusive Erfassung, Analyse und Faxen des Befundes von 2 Stunden rechnen.
Für Proben, die als Notfall in kürzester Zeit in unserem Labor analysiert werden sollen, müssen Sie immer telefonisch ein Taxi oder einen
sog. „Schnellen Fahrradboten“ bei uns anfordern!
Zeitkritische Untersuchungen werden, falls erforderlich, wie Notfalluntersuchungen behandelt und bei entsprechender Kennzeichnung
und/oder nach tel. Ankündigung vorrangig analysiert.
17
A . H i n w e i s e z u r P r ä a n a ly t i k
Zurückweisung von Primärproben/Nichtbearbeitung:
Primärproben müssen, üblicherweise durch das Anforderungsformular, auf eine identifizierte Person rückverfolgbar sein. Primärproben,
bei denen ein Nachweis der Identität fehlt, dürfen durch unser Labor nicht angenommen oder bearbeitet werden! Der Einsender wird
grundsätzlich benachrichtigt, wenn die eingesandten Proben wegen Ungewissheit über die Identität nicht bearbeitet werden können.
Im Befundbericht wird die Art des Problems (z. B. Transportbedingungen nicht eingehalten) ausgewiesen und ggf. darauf hingewiesen,
dass das Ergebnis mit Vorsicht zu interpretieren ist.
Mögliche Ursachen für Veränderungen in der Probe: Stoffwechsel der Blutzellen, Verdunstung, chemische Reaktionen, mikrobiologische Zersetzung, osmotische Prozesse, Lichteinflüsse, Gasdiffusion u. a..
Mögliche Gegenmaßnahmen: Schneller Transport (falls erforderlich), angemessene Kühlung (beachte alphabetisches Untersuchungsverzeichnis), verschlossene Einweg-Probengefäße (Verdunstung), Glykolyse vermeiden durch Verwendung von Probenröhrchen mit Glykolyseinhibitoren (NaF-Röhrchen), Lichteinwirkung vermeiden (z.B. kein Konzentrationsverlust von Bilirubin in speziellen Mikrogefäßen
für Neugeborene, dunkle Urinsammelgefäße für Porphyrinnachweis, etc.)., Kühlung von Urinproben, sorgfältiges Durchmischen der
Proben nach dem Auftauen bzw. nach dem Sammeln.
Sichere Entsorgung des bei der Probennahme verwendeten Materials:
Die Entsorgung der verwendeten Sicherheitskanülen oder –butterflies erfolgt in dichte, durchstichresistente Behälter, die entsprechend
gekennzeichnet sind. Bei Verwendung von Mikroblutentnahmesystemen wie z. B. „Butterflies“ wird das gesamte Blutentnahmesystem
entsorgt.
Ein „Recapping“, d. h. das Wiederaufstecken von Nadeln auf Schutzköcher, ist nicht statthaft.
Evtl. nicht benötigte Probenröhrchen mit Blut und anderen Körperflüssigkeiten stellen ein Infektionsrisiko dar und werden ebenfalls in
bruch- und stichfesten Behältern direkt in Ihrer Praxis entsorgt. Bitte sorgen Sie in Ihrer Praxis bzw. auf Ihrer Station für eine ordnungsgemäße Entsorgung der Sammelgefäße!
18
B . M ik r obio l ogi s c h e U n t e r s u c h u n g e n
Unser Labor verfügt über ein breites Spektrum an mikrobiologischen Untersuchungsverfahren. Die eingesendeten Untersuchungsmaterialien werden für die von Ihnen gewünschten Untersuchungen mittels der am besten geeigneten Untersuchungverfahren untersucht. Die Verfahrensweisen richten sich in der
Regel nach den Empfehlungen der jeweiligen wissenschaftlichen
Fachgesellschaften. Beim kulturellen Nachweis eines Krankheitserregers wird von uns, neben der Differenzierung nach Gattung
und Art, eine Resistenzbestimmung gegen die gebräuchlichsten
Antiobiotika durchgeführt. Um den bestmöglichen Untersuchungsgang auswählen zu können, bitten wir Sie um Angaben
zu Materialentnahmeort und –zeitpunkt, dem Untersuchungsziel
und der Diagnose bzw. Symptomatik.
Wir stellen Ihnen alle erforderlichen Entnahme- und Versandmaterialien zur Verfügung:
Universalröhrchen: Steril, für Untersuchung von Urin,
Punktaten, Liquor sowie Serum und
Vollblut.
Abstrichtupfer(dick/dünn) Steril, für Abstriche unterschiedlicher
mit Transportmedium:
Art wie Nase, Rachen, Ohr, Auge und
Genitalbereich. Abstrichtupfer ohne
Transportmedien sollten wegen der
hohen Absterberate der Keime wäh
rend des Transports nicht verwendet
werden.
Blutkulturflaschen: Zur Anzucht von aeroben und
anaeroben Keimen.
Die Flaschen sind ebenfalls zum
Transport anderer flüssiger, primär
steriler Materialien wie Liquor oder
Pleurapunktat geeignet, insbesondere bei Verdacht auf Infektion durch
empfindliche Keime wie Meningokok
ken oder Haemophilus .
Für die Untersuchungsanforderung können Sie unseren Begleitschein für mikrobiologische Untersuchungen verwenden, auf
dem die wichtigsten Materialien und Untersuchungen bereits
vorgedruckt sind und nur angekreuzt werden müssen.
Routinemäßig sind die nachfolgend aufgeführten Untersuchungsverfahren verfügbar. Sollten Sie die gewünschte Untersuchung hier nicht finden, so bitten wir Sie, mit uns Kontakt
aufzunehmen. Sollten wir das gewünschte Verfahren tatsächlich
nicht durchführen, sind wir Ihnen gerne behilflich, nach einem
alternativen Verfahren zu suchen und ggf. ein Speziallabor
für seltene Erreger zu vermitteln. Wir stehen als Fachärzte
für Mikrobiologie, Virologie, Infektionsepide
miologie und
Laboratori
umsmedizin allen Kolleginnen und Kollegen jederzeit für mikrobiologisch-infektiologi
sche sowie hygienische
Fragen, auf Wunsch auch im Krankenhaus oder in der Praxis,
zur Verfügung.
Ohne TransportmediumPCR und weitere spezielle
Untersuchungsverfahren
Stuhlröhrchen: Steril, mit Plastiklöffelchen.
Sputumröhrchen: Steril, mit großer Öffnung.
19
B. Mikrobiologische Untersuchungen
1. Bakteriologische Standarduntersuchung
P mikroskopisch
P kulturell
P Resistenzbestimmung
2. Gezielte Untersuchung auf
P ß-hämolys. Streptokokken
P Anaerobier
P Gardnerella vaginalis
P Diphtherie
P Gonokokken
P Helicobacter pylori
P Mykoplasmen/Ureaplasmen
P Legionellen
3. Darmpathogene Erreger
P Salmonellen/Shigellen
P Campylobacter
P Yersinien
P EHEC
P (darmpathogene) E.coli
P Clostridium difficile (Toxin)
P Aeromonaden
P Adenoviren
P Rotaviren
P Noroviren
4. Tuberkulose / atypische Mykobakterien (MOTT)
P mikroskopisch
P kulturell (konventionell und BACTEC)
P PCR (Polymerase-Kettenreaktion)
P Resistenzbestimmung
20
5. Direktnachweise
P Chlamydien (PCR)
P Gonokokken (PCR)
P Influenza A, B
P Pertussis (PCR)
P Herpes simplex Typ 1 / 2 (PCR)
6. Pilzinfektionen
Sprosspilze
P Hautpilze
P Schimmelpilze
P Pneumocystis jiroveci
P
7. Parasiten:
P Amöben
P Cryptosporidien
P Lamblien
P Leishmanien
P Malaria
P Mikrosporidien
P Schistosomen (Bilharziose)
P Trichomonaden
P Trypanosomen
P Wurmeier/Wurmglieder
8. Sterilisations- und Desinfektionskontrolle:
PSporenpäckchen und Testkörper mit zugehörigem Dokumen
tationsmaterial werden von uns zur Verfügung gestellt
Die nachstehenden Hinweise wurden in Anlehnung an die
Verfahrensrichtlinien der Deutschen Gesellschaft für Hygiene
und Mikrobiologie erstellt.
B . M ik r obio l ogi s c h e U n t e r s u c h u n g e n
1. Abstriche:
PMit Abstrichtupfer Material unter Sicht von verdächtigen
Stellen entnehmen und in beigefügtes Röhrchen mit Trans
portmedium einbringen. Tupfer nie trocken einsenden, da
Anzucht anspruchsvoller Keime anschließend nicht mehr
gelingt.
PLagerung sowie anschließender Transport bei
Raumtemperatur.
a. Augenabstrich:
PProbenentnahme muss vor Beginn jeglicher Antibiotika- oder
Lokalanästhetikatherapie erfolgen. Lokalanästhetika enthal
ten häufig antibakterielle Additive!
PSind beide Augen betroffen, sollten beide Seiten getrennt
untersucht werden.
PUnteres Augenlid herunterziehen, um die Konjunktiva
freizulegen.
PMaterial mit Wattetupfer von Bindehautoberfläche entneh
men und sofort in Transportmedium einbringen.
b. Gehörgangsabstrich:
PMaterial unter Sicht (Otoskop) von entzündeten Bereichen
mit Tupfer entnehmen und in Transportmedium einbringen.
PBei trockenen Entzündungsformen Tupfer zuvor mit steriler
NaCl anfeuchten!
PBerührung unauffälliger Hautbereiche vermeiden
(Kontamination!).
PBei Verdacht auf Otomykose sollten auch Hautschuppen von
der Wand des Gehörgangs mit einem sterilen Spatel entnommen und trocken in einem Universalröhrchen eingesandt
werden.
PBei akuter Otitis media kann Sekret vom Tubenausgang im
Pharynx mittels Tupfer entnommen werden. Bei Trommel
felldefekten gelingt die Entnahme meist auch aus dem
Gehörgang.
c. Larynxabstrich:
PNur bei isolierten Affektionen im Bereich von Larynx und
Epiglottis. Besteht parallel eine Tracheobronchitis, ist der
Gewinnung von Tracheal- bzw. Bronchialsekret der Vorzug
zu geben.
PDurchführung mit Spiegel oder Lupenendoskop. Material
entnahme mittels dünnem Tupfer. Transportmedium
verwenden!
d. Urethralabstrich:
POptimale Entnahme morgens vor dem ersten Wasserlassen,
Entnahme vor Ablauf einer Stunde nach dem letzten Was
serlassen nicht sinnvoll.
PAusfluss aus der Urethra, falls vorhanden, mit Tupfer aufneh
men und in Transportmedium einbringen.
PAndernfalls Tupfer mit dünnem Stiel ca. 2 cm in die Urethra
einführen und nach vorsichtigem Drehen in Transportme
dium einbringen.
e. Vaginalabstrich:
PMittels Abstrichtupfer Material zum Nachweis von Mycoplas
men, Gardnerella, Sprosspilzen sowie von B-Streptokokken in
der Schwangerschaft entnehmen und im Transportmedium
einsenden.
(zum GO-Nachweis spezielle Hinweise unter 10.d beachten)
f. Zervixabstrich:
PNach Spekulumeinstellung Zervix mit separatem Wattetupfer
trockenwischen. Leichte Kompression der Portio führt
zum Austritt endozervikalen Sekrets (zur GO-Diagnostik
geeignet).
21
B. Mikrobiologische Untersuchungen
2. Blutkulturen:
a. Vorbereitungen:
PBlutkulturflasche(n) auf Raumtemperatur oder Körper
temperatur erwärmen. Unbedingt zwei Blutkulturflaschen
- für aerobe und anaerobe Kultur - getrennt beimpfen (bitte
genau beschriften!). Die entsprechenden Systeme stellen wir
auf Anfrage zur Verfügung.
b. Hautdesinfektion und Blutentnahme:
PHaut im Bereich der Punktionsstelle sorgfältig reinigen und
entfetten.
PAnschließend Desinfektionsmittel mit sterilem Tupfer einrei
ben und zwei Minuten einwirken lassen.
PNach Lufttrocknung Vene oder Arterie mit Einmalspritze
oder Blutentnahmebesteck punktieren.
PBei Erwachsenen ca. 10 ml Blut pro Flasche entnehmen. Für
Kinder sind spezielle Blutkulturflaschen (Blutmenge
ca. 1-3 ml) verfügbar. Nach Entfernen der Abdeckkappe
Septum mit 70%-igem Alkohol desinfizieren.
Bei Blutentnahme mit einer Spritze eine frische, sterile
Kanüle zum Inokulieren der Blutkulturflasche benutzen.
Blutkulturflaschen nicht belüften.
PExakte Beschriftung der Flasche(n) unter Angabe von Name,
Vorname, Datum und Uhrzeit.
c. Lagerung – Transport:
PBeimpfte Flaschen bis zum Transport ausschließlich bei
Raumtemperatur aufbewahren, nicht in den Brutschrank
stellen!
PSo rasch als möglich in das Labor bringen.
22
d. Hinweise:
PMit der Anzahl der entnommenen Proben steigt die Häufig
keit eines Erregernachweises aus der Blutkultur. Das Anlegen
von mehr als 5 Blutkulturen von einem Patienten ist in der
Regel nicht sinnvoll.
PDie Entnahme einer einzigen Probe reicht für den sicheren
Nachweis einer Bakteriämie bzw. Fungämie nicht aus.
PDie erste Blutentnahme sollte nach Möglichkeit vor Thera
piebeginn erfolgen.
Bei bereits begonnener antibiotischer Therapie sollten wäh
rend der ersten 48 Stunden insgesamt 4 Proben jeweils kurz
vor einer Antibiotikagabe entnommen werden.
PBei den meisten bakteriellen Endokarditiden sind die Erreger
kontinuierlich im Blut vorhanden, in größerer Menge jedoch
nur im Fieberanstieg. Es ist deshalb für eine erfolgreiche
Erregeranzucht sehr wichtig, das Blut so früh wie möglich in
der Fieberperiode zu entnehmen.
3. Bronchialsekret - Trachealsekret:
Bronchialsekret wird instrumentell mit oder ohne Spülung aus
den tiefen Atemwegen gewonnen.
a. Bronchoskopiematerial:
PMittels bronchoskopischer Technik wird die Kontamination
des Untersuchungsmaterials durch die Flora des MundRachen-Raums gemindert, kann aber aufgrund einer
Verschleppung der dort ansässigen Mikroorganismen bei
Einführung des Gerätes nicht sicher ausgeschlossen werden.
PDie Sekretgewinnung soll möglichst ohne Spülung mittels
Aspiration durch das Bronchoskop erfolgen. Ist ausreichende
Materialgewinnung so nicht möglich, sollte ausschließlich
mit steriler Ringer-Laktat-Lösung und nicht mit physiologi
scher Kochsalzlösung (bakterizide Wirkung möglich!) gespült
werden.
B . M ik r obio l ogi s c h e U n t e r s u c h u n g e n
POptimal
erfolgt die bronchoskopische Gewinnung von Unter
suchungsmaterial für mikrobiologische Untersuchungen
durch Bürstenbiopsie, da diese Methode am häufigsten
signifikante Keimnachweise ermöglicht. Das gewonnene
Material sollte möglischst rasch zum Labor transportiert
werden.
b. Transtracheale Aspiration:
PDie Kontamination mit Oropharyngealflora wird mit großer
Sicherheit vermieden.
PAnwendung zwingend indiziert bei schweren Anaerobier
infektionen und nekrotisierender Pneumonie.
PInsertionsstelle
und nähere Umgebung gründlich
desinfizieren.
PKatheter mit steriler Pinzette entfernen und zu untersu
chende Abschnitte in ein steriles Leerröhrchen einbringen.
PKatheter bis ca. 10 cm Länge: etwas unterhalb der Inser
tionsstelle mit steriler Schere abschneiden und diese Kathe
terspitze steril in Röhrchen einbringen.
PKatheter über 10 cm Länge: Zusätzlich zur Katheterspitze
ein ca. 5 cm langes Stück distal der Insertionsstelle heraus
schneiden und ebenfalls steril einsenden.
c. G
ewinnung von Untersuchungsmaterial aus Trachealtubus
bzw. Tracheostoma:
PBei Tubus- bzw. Kanülenwechsel sterilen Absaugkatheter
einführen, Sekret aspirieren und in ein steriles Röhrchen
einbringen. Ein Abschneiden der Katheterspitze mit steriler
Schere und Einsendung in einem mit Transportmedium
gefüllten Röhrchen ist ebenfalls möglich.
PNach intratrachealer Intubation bzw. Anlegen eines
Tracheostomas kommt es rasch zu einer Besiedlung der
tiefen Atemwege mit Oropharyngealflora. Dies muss bei der
Interpretation der Untersuchungsergebnisse berücksichtigt
werden.
PFür mikrobiologische Diagnostik Material direkt nach Gewin
nung in ein steriles Röhrchen einbringen und bei Raumtem
peratur transportieren.
5. Liquor:
PVor Punktion sorgfältige Hautdesinfektion entsprechend der
Vorgehensweise bei der Entnahme von Blutkulturen (siehe
unter 2 b).
PNach der Lumbal- oder Subokzipitalpunktion die ersten 2–5
Tropfen verwerfen (Abtrennung von Desinfektionsmittel,
Gewebsflüssigkeit und Blut). Anschließend 5-10 ml Liquor in
einem, besser zwei sterilen Röhrchen auffangen. Röhrchen
unter sterilen Kautelen verschließen.
PSofortiger Transport der bei Raumtemperatur (nicht im Kühl
schrank!) zu lagernden Probe in das Labor, da empfindliche
Erreger (v.a. Meningokokken) bereits nach kurzer Zeit
absterben.
PBei Verdacht auf eitrige Meningitis empfiehlt sich das
Einbringen eines Teils des Materials in eine (vorgewärmte)
Blutkulturflasche. Anschließend Lagerung der Flasche bei
36°C im Brutschrank und eiliger Transport in das Labor.
4. Intravasale Katheter:
PBei Verdacht auf Kathetersepsis oder Entzündung im
Bereich der Insertionsstelle ist häufig die Entfernung und
nachfolgende mikrobiologische Untersuchung des Katheters
indiziert.
6. Sputum:
(auf Anforderung Kurzinformationsblatt (Patienteninformation)
bei uns erhältlich)
PHäufigstes Untersuchungsmaterial zur mikrobiologischen
Diagnostik von Infektionen der Lunge und tiefen Atemwege.
23
B. Mikrobiologische Untersuchungen
Durch die praktisch unvermeidbare Speichelbeimengung
kommt es regelmäßig zu einer Verunreinigung der Probe
mit Oropharyngealflora. Zur Erzielung verwertbarer Befunde
sind an die Gewinnung von Sputum daher besonders hohe
Anforderungen zu stellen.
PAm geeignetsten ist Morgensputum, d.h. Sekret aus den tie
fen Atemwegen, das sich während der Nacht angesammelt
hat und nach dem Erwachen abgehustet wird.
Folgende Hinweise müssen beachtet werden:
PVor der ersten Expektoration nicht den Mund ausspülen
(Gefahr der Kontamination mit atypischen Mykobakterien
aus Leitungswasser).
PSekret in einen sterilen Sputumbecher abhusten. Gefäß
verschließen, ohne Innenrand oder Verschlusskappeninnenflä
che zu berühren. Becher korrekt beschriften.
PFür raschen Transport in das Labor sorgen.
PIst eine spontane Sputumgewinnung nicht möglich, empfiehlt sich ein Provokationsversuch durch Inhalation eines
etwa 45°C warmen, hypertonen Aerosols (z.B. 10 % NaClLösung in 15 % Propylenglykol)
7. Stuhl - Rektalabstrich - Analabstrich:
ist das geeignete Untersuchungsmaterial.
Rektalabstriche sollen aufgrund der zu erwartenden gerin
gen Ausbeute nur dann entnommen werden, wenn kein
Stuhl zu gewinnen ist. Abstrichtupfer nach Entnahme sofort
in Transportmedium einbringen.
PUntersuchung von Stuhl auf pathogene Darmkeime grund
sätzlich an drei verschiedenen Tagen, da der Erregernachweis
in einer einzigen Probe nicht immer gelingt.
PStuhl
24
PStuhlentleerung
in ein sauberes Gefäß, das keine Seifenoder Desinfektionsmittelreste enthalten darf, Urinbeimen
gungen müssen unbedingt vermieden werden.
PÜberführen eines doppeltbohnengroßen Stücks in ein
Stuhlröhrchen. Größere Stuhlmengen treiben aufgrund der
auftretenden Gasbildung den Deckel aus dem Röhrchen. Bei
dünnflüssigem Stuhl ca. 0,5 bis 1 ml des Materials einsenden.
PJede einzelne Stuhlprobe zügig in das Labor transportieren,
nicht sammeln. Empfindliche Keime wie Shigellen sterben
schon nach kurzer Zeit ab.
PSind dem Stuhl Eiter- oder Schleimflocken aufgelagert oder
finden sich blutige Anteile, sollten diese sehr bakterienhal
tigen Strukturen mit Wattetupfern entnommen und nach
Einbringen in ein Transportmedium getrennt untersucht
werden.
PBei Verdacht auf Typhus und Paratyphus ist die (parallele)
Entnahme von Blutkulturen, vor allem in der ersten Krank
heitswoche, in jedem Falle notwendig.
Analabklatsch (Nachweis von Enterobius vermicularis (Oxyuren)-Eiern)
PMaterialgewinnung frühmorgens durchführen.
PDie Wurmeier werden im äußeren Analbereich abgelegt. Nach Spreizen der Perianalfalten glasklaren Klebefilm über
die Analöffnung und die flachgezogenen Perianalfalten
kleben.
PKlebefilm mit den anhaftenden Wurmeiern abziehen und
auf Objektträger aufkleben.
PObjektträger mit Patientendaten beschriften und in Trans
porthülse zur mikroskopischen Untersuchung in das Labor
einsenden.
B . M ik r obio l ogi s c h e U n t e r s u c h u n g e n
8. Urin:
a. Mittelstrahlurin (MSU):
PMethode der Wahl für die orientierende bakteriologische
Urinuntersuchung (außer bei Vorliegen einer Phimose).
PAm besten geeignet ist Morgenurin, da hier besonders hohe
Keimzahlen zu erwarten sind. In jedem Falle sollte die letzte
Miktion länger als drei Stunden zurückliegen. Keine Infu
sionstherapie vor Urinentnahme durchführen (Verdünnungs
effekt), Probe vor Chemotherapiebeginn entnehmen.
PTritt innerhalb von drei Tagen keine Besserung ein, so ist zur
Erkennung resistenter Erreger unter Antibiotikatherapie eine
Kontrolluntersuchung notwendig.
Gewinnung von MSU (Mittelstrahlurin) beim Mann:
PHände mit Seife waschen und mit Einmalhandtuch
abtrocknen.
PVorhaut mit der einen Hand vollständig zurückziehen, mit
der anderen Hand Glans penis mittels eines in sauberes Wasser getauchten Tupfers reinigen, dann mit einem zweiten
Tupfer in gleicher Weise nachreinigen. Orificium urethrae
mit einem dritten Tupfer trocknen.
PErste Urinportion (ca. 50 ml) in die Toilette oder ein Gefäß
entleeren, dann - ohne den Harnstrahl zu unterbrechen
- etwa 5 ml Urin im vorher griffbereit abgestellten Transport
gefäß auffangen, und zwar unter strikter Vermeidung einer
Verunreinigung des Gefäßrandes durch Hand, Kleidung etc.
Verschluß sofort aufsetzen und Probe bis zur Weiterleitung
in das Labor im Kühlschrank bei 4°C lagern.
Gewinnung von MSU (Mittelstrahlurin) bei der Frau:
mit Seife waschen und mit Einmalhandtuch
abtrocknen.
PMit einer Hand die Labien spreizen und geöffnet halten, bis
die Uringewinnung abgeschlossen ist.
PVulva mit der anderen Hand mittels eines in sauberes Wasser
getauchten Tupfers durch Wischen von vorn nach hinten
reinigen, dann mit einem zweiten Tupfer in gleicher Weise
nachreinigen.
PBereich um das Orificium urethrae mit trockenem dritten
Tupfer trocknen und diesen in den Introitus vaginae einle
gen, um einen möglichen Harnreflux und damit eine Verun
reinigung durch Fluor auszuschließen.
PErste Urinportion (ca. 50 ml) ablaufen lassen, dann - ohne
den Harnstrahl zu unterbrechen - etwa 5 ml Urin im Einweg
becher auffangen und zwar unter strikter Vermeidung einer
Verunreinigung des Gefäßrandes durch Hand, Oberschenkel,
Vulva oder Kleidung. Tupfer anschließend aus der Scheide
entfernen.
PUrin in Transportröhrchen füllen, Verschluß aufsetzen. Probe
bis zur Weiterleitung in das Labor im Kühlschrank bei 4°C
lagern.
PHände
b. Katheterurin:
Eine Indikation zur Gewinnung von Katheterurin ist unter fol
genden Umständen gegeben:
PDie einwandfreie Gewinnung von Mittelstrahlurin ist nicht
möglich.
PBlasenpunktion kommt nicht in Betracht.
PGrundsätzlich sind Einwegkatheter zu verwenden, ein
gewisses Risiko der Keimeinschleppung bleibt jedoch beste
hen. Eine sorgfältige Reinigung des Genitale muß vor dem
Eingriff durchgeführt werden (s. MSU). Das Risiko einer
25
B. Mikrobiologische Untersuchungen
Keimeinschleppung wird insbesondere bei der Frau nur
dann ausreichend gemindert, wenn spezielle Untersuchungs
einrichtungen (gynäkologischer Untersuchungsstuhl) zur
Verfügung stehen.
PDauerkatheterträger: Urin für mikrobiologische Untersuchun
gen darf keinesfalls aus dem Urinbeutel entnommen werden. Die Entnahme erfolgt nach sorgfältiger Desinfektion
per Katheterpunktion im proximalen Abschnitt.
c. Blasenpunktionsurin:
Blasenpunktion setzt eine gefüllte Blase voraus.
Im Bereich der Punktionsstelle ist eine Entfernung der
Schamhaare sowie eine Hautdesinfektion erforderlich. Die
Methode schließt die Gefahr einer Kontamination des Urins
nahezu aus und ist daher aus bakteriologischer Sicht die
sicherste Grundlage eines aussagekräftigen Befundes. Zu
berücksichtigen ist jedoch, daß dabei keine hinreichende
Sicherheit einer Erkennung der Infektion infravesikal gelegener Abschnitte der Harnwege (z.B. Prostatitis, Urethritis)
gegeben ist.
PBei der ambulanten Betreuung von Patienten in der Praxis
wird diese Methode aufgrund der organisatorischen Pro
bleme (Wartezeit bis zur Prallfüllung der Blase) Sonderfällen
vorbehalten sein müssen.
PDie
Als Indikation gelten:
PProbleme hinsichtlich einwandfreier Gewinnung von Mittel
strahl- und Katheterurin (z.B. Phimose).
PWiederholt uneinheitlicher bakteriologischer und zellulärer
Befund.
PMehrfach fragliche Ergebnisse der quantitativ-bakteriolo
gischen Untersuchung, insbesondere bei Mischinfektionen.
26
d. Uringewinnung bei Säuglingen und Kleinkindern:
PHäufig ist die Verwendung von Kunststoffklebebeuteln
unverzichtbar:
PVor Aufkleben gründliche Reinigung der Dammregion ohne
Verwendung von Desinfektionsmitteln vornehmen, da sonst
ein bakterizides Milieu im Beutel entstehen kann.
PBakteriologische Befunde sollten zurückhaltend interpretiert
werden.
PWiederholte Kontrollen empfehlenswert.
9. Wundsekrete - Punktate - OP.-Material:
a. Material aus geschlossenen Prozessen:
PMaterialgewinnung durch Punktion und Aspiration mit
einer Spritze unter aseptischen Bedingungen. Material in
steriles Röhrchen einbringen, Lagerung und Transport bei
Raumtemperatur.
PBei Verdacht auf Anaerobier verbleibt das Material in der
am Ansatzkonus zu verschließenden Spritze. Anschließend
sofortiger Transport bei Raumtemperatur in das Labor. Keine
Kühlschranklagerung, da Anaerobier sehr kälteempfindlich
sind. Alternativ ist auch das Einspritzen des Materials in
eine vorgewärmte Blutkulturflasche möglich. Anschließend
sofortiger Transport in das Labor oder Lagerung der Probe
bei 36°C im Brutschrank. Diese Vorgehensweise eignet sich
besonders für Pleura- und Peritonealpunktate.
PFür die optimale mikrobiologische Punktatdiagnostik sollten
bei ausreichender Flüssigkeitsmenge je 5-10 ml in aerobe
und anaerobe Blutkulturflaschen injiziert sowie gleichzeitig
10 ml in sterilem Universalröhrchen eingesandt werden.
PBestimmung des spezifischen Gewichts sowie des Gesamt
eiweißes im Punktat sowie Kristallnachweise und ähnliche
Untersuchungen sind aus Transportmedien nicht möglich.
B . M ik r obio l ogi s c h e U n t e r s u c h u n g e n
b. Material aus offenen Prozessen:
PSekret vom Wundrand mit Abstrichtupfer entnehmen und
in Transportmedium einbringen. Weiterhin kann auch etwas
Geschabsel vom Wundrand in ein steriles Röhrchen mit
steriler physiologischer Kochsalzlösung eingebracht werden.
10. G
ewinnung von Material für
Spezialuntersuchungen:
a. Chlamydien-Diagnostik:
PChlamydien können auf üblichen Nährböden nicht kultiviert
werden, die Anzucht gelingt nur in Zell- und Gewebekultu
ren. Ein kultureller Chlamydien-Nachweis ist daher sehr
aufwendig und sollte nur in Ausnahmefällen angefordert
werden.
PEinfach und schnell gelingt der Direktnachweis mittels PCR
(benötigtes Versandmaterial wird auf Anforderung zur
Verfügung gestellt).
Der PCR-Nachweis verfügt über eine sehr hohe Spezifität und
Sensitivität, daher ist auch ein einfacher Nachweis aus dem
Urin möglich und die häufig schmerzhafte Abstrichentnahme
aus Urethra oder Zervix ist nicht mehr erforderlich.
PNatürlich wird auf Wunsch auch weiterhin Abstrichmaterial
untersucht. Hierbei ist zu beachten, dass sich Chlamydien
innerhalb der von ihnen infizierten Epithelzellen befinden.
Das Untersuchungsmaterial muss daher zellreich sein.
Eiter und Exsudate sind somit zur Chlamydien-Diagnostik
ungeeignet.
PCR-Nachweis:
PHierzu kann eine Urinprobe oder ein trockener Abstrichtupfer eingeschickt werden. Ein paralleler GonokokkenDirektnachweis aus derselben Probe ist möglich.
Zervixabstrich:
PMit einem Tupfer Ausfluss und überflüssigen Schleim vom
Ostium und der umliegenden Schleimhaut entfernen. Tupfer
verwerfen.
PProbenentnahmetupfer 1 – 1,5 cm in den Zervikalkanal
einführen, bis die Tupferspitze gerade den squamös-kolumnä
ren Übergang passiert hat. Tupfer ca. 30 Sekunden innerhalb
des Zevrixkanals drehen, um genügend Epithelzellen zu
gewinnen.
PAbstrichtupfer vorsichtig entfernen, ohne die Vaginal
schleimhaut zu berühren.
PAlternativ kann die Materialentnahme mit einer ZytologieBürste durchgeführt werden. Bürste etwas über die Hälfte
in den Zervikalkanal einführen und langsam eine ganze
Drehung vornehmen.
Cave: Bürstenabstrich nicht in der Schwangerschaft!
PPCR: Es werden normale bakteriologische Abstrichtupfer
verwendet (nicht im Transportmedium, sondern trocken
einsenden, siehe oben).
Urethralabstrich:
PDurch die PCR-Chlamydiendiagnostik aus dem Urin wird sich
der belastende Urethralabstrich in vielen Fällen erübrigen
(siehe oben).
PPatient sollte vor Probenentnahme mindestens eine Stunde
nicht uriniert haben.
PDünnen Abstrichtupfer 2–4 cm tief in die Urethra einführen.
Tupfer 2–3 Sekunden eingeführt lassen und vorsichtig rotie
ren, um ausreichend Epithelzellen abzulösen.
PTupfer entfernen und je nach angewandter Methode wie im
Abschnitt „Zervixabstrich“ beschrieben fortfahren.
27
B. Mikrobiologische Untersuchungen
Bindehautabstrich:
PSind beide Augen betroffen, so sollte bei beiden Augen eine
Probenentnahme mit getrennter Untersuchung erfolgen.
PEiter und Exsudat, falls vorhanden, vorsichtig mit einem
Tupfer entfernen. Tupfer anschließend verwerfen.
PDünnen Tupfer trocken oder mit etwas steriler physiolo
gischer NaCl-Lösung befeuchtet unter leichtem Druck auf
der Konjunktivaloberfläche des unteren und oberen Lides
drehen, es muss Epithelzellmaterial gewonnen werden!
PTupfer je nach angewandter Methode wie oben beschrieben
weiterverarbeiten.
b. Cholera-Diagnostik:
PAufgrund spezieller Anforderungen an Gewinnung und
Transport des Untersuchungsmaterials ist vor Einsendung die
telefonische Kontaktaufnahme mit dem Labor unbedingt
erforderlich.
PFlüssiger Stuhl, Schleimflocken oder Rektalabstriche müssen
in einem Spezialtransportmedium (alkalisches Peptonwasser)
per Eiltransport eingesandt werden.
c. Diphtherieverdacht:
PBei Verdacht auf Diphtherie muss die Materialgewinnung
unverzüglich, auf jeden Fall vor Beginn einer Therapie mit
Antibiotika oder lokalen Antiseptika erfolgen. (Bereits bei
begründetem V. a. Diphtherie ist eine sofortige Antitoxingabe indiziert!)
PRachenabstrich: Vorhandene Membranen mit Tupfer abstrei
chen, nach Möglichkeit Membranen mit Pinzette abheben
und Untersuchungsmaterial von der meist sehr bakterien
haltigen Unterseite gewinnen. Tupfer im Transportmedium
einsenden.
PJe nach klinischer Situation weitere Abstriche von Nase, Haut
oder Nabel entnehmen.
28
PParallel
muss immer ein luftgetrockneter Objektträgeraus
strich vorgenommen und der Objektträger in einer Schutz
hülle eingesandt werden.
d. Gonorrhoe-Diagnostik:
PNeben dem konventionellen Gonokokken-Nachweis mittels
Mikroskopie und Kultur ist heute zusätzlich ein molekular
biologisches Verfahren (PCR) zum Direktnachweis verfügbar
(siehe auch Chlamydien). Diese Methode weist Gonokokken
im Vergleich zu den konventionellen Verfahren mit wesentlich verbesserter Empfindlichkeit nach.
PCR-Nachweis:
PHierzu kann entweder eine Urinprobe eingeschickt werden
oder ein trockener Abstrichtupfer verwendet werden.
PEin paralleler Chlamydien-Direktnachweis aus derselben
Probe ist möglich und auch empfehlenswert, da nicht selten
eine Doppelinfektion vorliegt.
Konventionelle Diagnostik:
PNeben einem Abstrichtupfer im Transportmedium immer
zwei luftgetrocknete Ausstriche auf Objektträgern
einsenden.
Urethralabstrich:
PDie sehr sensitive PCR-Methode erlaubt die Untersuchung
einer Urinprobe und ersetzt in der Regel die schmerzhafte
Abstrichentnahme (siehe oben).
PProbengewinnung frühestens eine Stunde nach der letzten
Miktion.
PMänner: Ausfluss, falls vorhanden, mit Abstrichtupfer aufnehmen, ggfs. Eiter aus Harnröhre von proximal nach distal
ausstreichen, andernfalls dünnen Abstrichtupfer einige cm in
die Urethra einführen und vorsichtig drehen.
B . M ik r obio l ogi s c h e U n t e r s u c h u n g e n
PFrauen:
Nach Abwischen der äußeren Urethra mit sterilem
Tupfer Harnröhre von vaginal komprimieren und ggfs. austre
tendes Sekret mit dem Tupfer aufnehmen.
Lässt sich so kein Sekret gewinnen, dünnen Abstrichtupfer
ca. 2 cm in die Urethra einführen und vorsichtig drehen.
Zervixabstrich:
PEndocervix mit Spekulum einstellen, aufliegendes Sekret mit
sterilem Tupfer entfernen, Zervix komprimieren und austretendes Sekret mit Tupfer aufnehmen.
Bartholinischer Abszess:
PNach Drüsenkompression Exsudat auffangen, ggfs. Abszess
steril punktieren.
Rektalabstrich:
PMaterialentnahme aus dem rektalen Kryptenbereich.
Gelenkpunktat:
Verdacht auf gonorrhoische Arthritis Gelenk unter
sterilen Kautelen punktieren; Punktat umgehend in vorgewärmte Blutkulturflasche injizieren und sofort in das Labor
einsenden.
PBei
der späten Serokonversion zur Diagnose der akuten Malaria
vollständig ungeeignet.
PBlutentnahme möglichst im Fieberanstieg (bei hoher Para
sitendichte) vornehmen.
Untersuchungsmaterial: EDTA-Blut
Die Herstellung von dicken Tropfen und dünnen
Ausstrichen erfolgt im Labor.
f. Mykologische Untersuchungen:
Dermatomykosen (Haut-Haare-Nägel):
PAbstriche sind zur Untersuchung auf Dermatophyten grund
sätzlich nicht geeignet.
PVor der eigentlichen Materialgewinnung grobe Krusten und
Schuppen entfernen.
PMaterial aus bakteriell superinfizierten Bereichen sollte nicht
zur mykologischen Untersuchung gelangen.
PVersand des Untersuchungsmaterials in trockenem Zustand
in sterilen Gefäßen.
PKein Transportmedium verwenden!
Hautmykose:
PHautoberfläche
Blutkultur:
PBei Verdacht auf generalisierte Infektion bzw. GonokokkenEndokarditis mehrere Blutkulturen, wie unter 2. beschrieben,
entnehmen.
mit 70%-igem Alkohol abtupfen und
trocknen lassen.
PAus der Randzone zwischen krankem und gesundem Gewe
be ca. 20-40 Hautschuppen mit Skalpell oder scharfem Löffel
abschaben (im Zentrum der Läsion sind die Erreger häufig
schon abgestorben).
e. Malaria-Diagnostik (Direktnachweis):
PDer mikroskopische Direktnachweis von Plasmodien im Blut
ist die Methode der Wahl. Ein serologischer Nachweis einer
früher durchgemachten Infektion ist möglich, aber aufgrund
Haarmykose:
PVerdächtige Haare und Haarstümpfe mit Epilationspinzette
aus der Randzone des Infektionsherdes gewinnen. Reichlich
Material einsenden.
29
B. Mikrobiologische Untersuchungen
Nagelmykose:
PSorgfältige Entfernung aller leicht ablösbaren Nagel- und
Gewebsanteile.
PNach Vorreinigung mit 70 %-igem Alkohol Abtragung von
ca. 30 - 40 feinen Nagelspänen mittels Skalpell, scharfem
Löffel o.ä..
PExtrahierte Nägel sollten als Ganzes zur Untersuchung
gelangen.
Schleimhautmykosen (z.B. Soor):
PHier gelten die allgemeinen Richtlinien zur Gewinnung von
Material für bakteriologische Untersuchungen, wie oben
beschrieben.
Lungenmykose:
PHohe diagnostische Aussagekraft besitzt z.B. durch Bronchos
kopie gewonnenes Bronchialsekret.
Ist Bronchialsekret nicht verfügbar, kann auch Morgenspu
tum an mehreren, aufeinanderfolgenden Tagen untersucht
werden. Wenige Tage vor Beginn der Sputumgewinnung
sollte zur Vermeidung einer Kontamination eine Reduktion
der oropharyngealen Pilzflora mittels lokaler Antimykotika
durchgeführt werden.
Nierenmykose:
PUntersuchung von Blasenpunktionsurin ist Methode der
Wahl zum Nachweis einer Nierenmykose.
PDie Verwendung von Katheter- oder Mittelstrahlurin birgt
ein erhebliches Kontaminationsrisiko.
30
Fungämie - Sepsis:
PAbnahme von 4-5 venösen Blutkulturen, wie unter 2. beschrieben, an aufeinanderfolgenden Tagen.
PErgänzend kann ein direkter Antigennachweis z.B. für
Candida spp. im Serum geführt werden, der insbesondere
zum Nachweis einer Sprosspilzsepsis eine gegenüber der
Blutkulturdiagnostik deutlich höhere Sensitivität aufweist.
PIm Falle einer Sepsis werden die Erreger regelmäßig renal
ausgeschieden, so dass eine zusätzliche mykologische
Urinuntersuchung eine wichtige Ergänzung der Diagnostik
darstellen kann.
g. Mykoplasmen- / Ureaplasmen-Diagnostik:
Urogenitalinfektionen:
PDirekter Erregernachweis ist die Methode der Wahl. Ein
Antikörpernachweis ist ohne diagnostische Bedeutung.
PUrogenitalabstriche müssen wegen der großen Empfind
lichkeit der Mykoplasmen gegenüber Umwelteinflüssen in
ein Transportmedium eingebracht werden.
PUrin kann bei Einsendung im Spezialtransportmedium (wird
auf Anfrage vom Labor zur Verfügung gestellt) zum Direkt
nachweis Verwendung finden.
PEine parallele Untersuchung hinsichtlich anderer pathogener
Erreger ist im Zusammenhang mit einer Mykoplasmen
diagnostik unbedingt notwendig.
Infektionen des Respirationstrakts:
PDer serologische Nachweis einer Infektion mit Mycoplasma
pneumoniae ist aufgrund der guten Aussagekraft des
Verfahrens auch heute noch die Methode der Wahl, obwohl
bereits Direktnachweise mittels PCR zur Verfügung stehen.
B . M ik r obio l ogi s c h e U n t e r s u c h u n g e n
h. Pertussis- Diagnostik (Keuchhusten):
PIm Stadium catarrhale sowie im beginnenden Stadium
convulsivum lassen sich die Erreger zuverlässig mit molekularbiologischen Verfahren (PCR) nachweisen.
PTrockene Abstrichtupfer für die PCR werden auf Anforderung zur Verfügung gestellt.
Auch die Speziesdifferenzierung der angezüchteten Myko
bakterien wird heute durch den Einsatz moderner molekularbiologischer Nachweisverfahren erheblich vereinfacht und
beschleunigt.
Folgende Körperflüssigkeiten sind zur Tuberkulosediagnostik
geeignet:
Nasopharyngealabstrich:
PDünnen Dacrontupfer durch das Nasenloch via unterer
Nasengang bis in den Retropharynx einführen, mehrfach
drehen, auch wenn dadurch ein Hustenstoß ausgelöst wird.
Wenn möglich, Material von beiden Seiten gewinnen.
Poder: Nasopharyngealsekret mittels Sonde, die durch den
unteren Nasengang in den Retropharynx eingeführt wird,
gewinnen und in steriler Kochsalzlösung oder Phosphatpuffer einsenden.
Sputum - Bronchialsekret:
PSpontan oder nach Provokation aus den tiefen Atemwegen
hervorgebrachtes Sekret wird in einem sterilen Gefäß aufge
fangen. Mindestens 2 ml einsenden.
PDurchführung an drei aufeinanderfolgenden Tagen. Mittels
Bronchoskopie gewonnenes Sekret in einem sterilen
Röhrchen einsenden. Material nach Gewinnung sofort ein
schicken, nicht sammeln!
i. Tuberkulose-Diagnostik:
PBei allen Untersuchungen auf Tuberkulose ist es aufgrund
der häufig nur geringen Keimzahlen wichtig, genügend
Material für die Untersuchung zur Verfügung zu stellen.
Neben der konventionellen Diagnostik unter Verwendung
fester Nährmedien (Zeitbedarf ca. 6-8 Wochen) ist es heute
möglich, mit Hilfe verschiedener Nachweisverfahren aus
Flüssigmedien positive Kulturergebnisse und Resistenzbe
stimmungen bereits nach wesentlich kürzerer Zeit (1-3
Wochen) zu erhalten.
Neben den kulturellen Verfahren ist der Direktnachweis von
Tuberkulosebakterien über sensitive PCR-Methoden innerhalb von wenigen Tagen möglich. Für die anschließende
Resistenzbestimmung muss jedoch zusätzlich eine Tuberkulosekultur duchgeführt werden.
Magennüchternsekret - Magenspülwasser:
PDie Untersuchung von Magennüchternsekret oder Magen
spülwasser ist nur dann sinnvoll, falls nicht ausreichend
Sputum oder Bronchialsekret (z.B. bei Kindern) gewonnen
werden kann.
PMagensaft des nüchternen Patienten wird mittels Sonde
gewonnen und in einem Spezialröhrchen für die Tbc-Magen
saftdiagnostik eingesandt. Durch das Transportmedium wird
saurer Magensaft abgepuffert, der andernfalls ein Absterben
der Mykobakterien verursachen kann. Die oft erwähnte
„Säurefestigkeit“ der Mykobakterien bezieht sich ausschließlich auf das Färbeverhalten dieser Keimgattung.
PLässt sich mittels einfacher Aspiration nicht genügend Unter
suchungsmaterial gewinnen, so kann zuvor mit physiolo
gischer Kochsalzlösung gespült und anschließend erneut
aspiriert werden.
31
B. Mikrobiologische Untersuchungen
Morgenurin:
P
Untersuchung des ersten nach der Nachtruhe entleerten Urins.
Nach Einschränkung der Flüssigkeitszufuhr am Vorabend
(Konzentration!) wird der Morgenurin unter Vermeidung von
Verunreinigungen in einem sterilen Gefäß aufgefangen.
PDas Mindestvolumen für die Untersuchung beträgt 100 ml.
PDie Untersuchung von Sammelurin ist im Rahmen der
Tbc-Diagnostik nicht sinnvoll (Verunreinigung durch
Kontaminanten).
Venenblut:
PZur Mykobakterienkultur aus peripherem Blut werden
mindestens 10 ml Heparinblut (Na.-Heparinat-Röhrchen)
benötigt. Alternativ kann die gleiche Menge Na.-Citrat-Blut
eingesandt werden. EDTA-Blut ist ungeeignet!
Menstrualblut:
PDas während der Menstruation aufgefangene blutige Sekret
wird zu gleichen Teilen mit sterilem Aqua dest. versetzt, vom
entstandenen Hämolysat 10 ml zur Untersuchung einsenden.
Liquor:
PMaterialentnahme,
wie unter 5. beschrieben durchführen
und mindestens 5 ml in sterilem Röhrchen einsenden.
Stuhl:
PMaterialentnahme, wie unter 7. beschrieben durchführen
und in gewöhnlichem Stuhlröhrchen einsenden.
Andere Materialien (z.B. Sekrete, Punktate etc.):
PMaterialien steril entnehmen und in einem sterilen Röhrchen
ohne Zusätze einsenden. Das Einbringen von Punktaten
oder Sekreten in Transportmedien ist im Rahmen der Tuber
kulosediagnostik mit Ausnahme der Magensaftuntersuchung
nicht sinnvoll.
32
j. Virologische Diagnostik:
Bei V. a. Virusinfektionen gibt es zwei unterschiedliche
Nachweismethoden:
Direkter Erregernachweis:
PAnzucht und Identifizierung (schneller Transport und
Kühlung erforderlich, Abstriche in Virus-Transport-Medium, Sekrete, Blut, Liquor, Punktate etc. nativ in sterilen
Röhrchen).
PAntigennachweis mittels Enzymimmunoassay (EIA).
PVirus-DNA/RNA-Nachweis
unter Anwendung molekularbiologischer Methoden (PCR).
Indirekter Erregernachweis:
PDurch den Nachweis von spezifischen Antikörpern der
Klassen IgA, IgG und IgM im Serum. Allgemein verbindliche
Norm- oder Referenzwerte existieren nicht, da die Antikör
perbildung individuell unterschiedlich stark ausgeprägt ist.
Daher ist häufig die Abnahme eines Serumpaares zur Fest
stellung eines signifikanten Titeranstieges innerhalb eines
Intervalles von ca. 14 Tagen erforderlich (siehe auch Kapitel
Virusinfektionen).
C . V e r z e i c h n i s g e b r ä u c h l i c h e r Abk ü r z u n g e n
AAPAlanin-Aminopeptidase
AASAtom-Absorptions-Spektrometrie
ABOA-B-Null-System
ACAAnti-Cardiolipin-Ak.
ACE
Angiotensin-I-Converting Enzyme
AChRA
Ak. gegen Acetylcholin-Rezeptoren
ACPA
Anti-cytoplasmatische Ak. (syn.ANCA)
ACTH
Adrenocorticotropes Hormon
ADH
Antidiuretisches Hormon, Vasopressin
ADNase-B
Anti-Desoxyribonuclease B
AESAtom-Emissions-Spektrometrie
AFPAlpha-1-Fetoprotein
AgAntigen
AgglAgglutination
AHyAnti-Hyaluronidase
AIDS
Acquired immunodeficiency syndrome
AkAntikörper
AlAluminium
ALAT
Alanin-Aminotransferase (GPT)
ALP
Alkal. Leukozyten-Phosphatase
ALSAminolävulinsäure
AMA
Antimitochondriale Ak.
AMPAdenosinmonophosphat
ANA
Antinukleäre Ak.
ANCA
Anti-Neutrophilen-Cytoplasma-Ak. (syn ACPA)
ANF
Aninukleäre Faktoren (ANA)
ANP
Alkal. Neutrophilen-Phosphatase
AP
Alkalische Phosphatase
APC
Aktiviertes Protein C
aPTT
aktiv. partielle Thromboplastinzeit
APUD
amin precursor uptake and decarboxylation
Arbo-VirenArthropode-borne-Viren
ARC
AIDS related complex
ARDS
Adult Respiratory Distress-Syndrome
AsArsen
ASAT
Aspartat-Aminotransferase (GOT)
ASCA
Anti-Saccharomyces cerevisiae-Ak.
ASGPRAsialoglykoproteinrezeptor
ASLAnti-Streptolysin-Reaktion
ASMA
Ak. gegen glatte Muskulatur
ASTAnti-Streptolysin-Titer
ASTAAnti-Staphylolysin-Ak.
AT
Antithrombin (syn. AT III)
AUGold
B2GPI
Beta-2-Glykoprotein I
BAT
Biolog. Arbeitsstoff-Toleranzwert
BKSBlutkörperchensenkungsgeschwindigkeit
(syn. BSG)
BPI
Bacterial Permeability Increasing Protein
BSG
Blutkörperchensenkungsgeschwindigkeit
(syn. BKS)
C1-INHC1-Esterase-Inhibitor
C1q
Komplementprotein C1q
C3C3-Komplement
C4C4-Komplement
CaCalcium
cAMP
cyclisches Adenosinmonophosphat
cANCA
cytoplasmat. Anti-Neutrophilen-Cytoplasma-Ak.
CCPCyclisches Citrulliniertes Peptid
CdCadmium
CD 3T-3-Lymphozyten
CD 4T-4-Lymphozyten (Helferzellen)
CD 8T-8-Lymphozyten (Suppressorzellen)
CDTCarbohydrate deficient transferrin
CEACarcino-Embryonales Antigen
CENP
Zentromer-assoziierte Proteine
33
C. Verzeichnis gebräuchlicher Abkürzungen
CH 50
Komplement, gesamthämolytisch
CHECholinesterase
CKCreatin-Kinase
ClChlorid
CLAChemilumineszenz-Assay
CLLChronisch-lymphatische Leukämie
CMLChronisch-myeloische Leukämie
CMTCardiolipin-Mikroflockungstest(syn. VDRL)
CMVCytomegalie-Virus
CoCobalt
CO-HbCarboxy-Hämoglobin
CrChrom
CRFCorticotropin-Releasing Factor
CRPC-reaktives Protein
CuKupfer
DCDünnschicht-Chromatographie
DDDifferentialdiagnose
DDTDichlor-Diphenyl-Trichlorethan
DHEADehydroepiandrosteron
DHEASDehydroepiandrosteron-Sulfat
DHTDihydrotestosteron
DISK
Diskontinuierlich (Elektrophorese)
DNase B
Anti-Streptokokken-DNase-B
DNA
Desoxyribonukleinsäure (syn. DNS)
DPA
Dipropylacetat (syn. Valproinsäure)
DPTDiphtherie-Pertussis-Tetanus
ds-DNADoppelstrang-DNA
DTDiphtherie-Tetanus
D-WeakSchwaches D-Antigen weak D
(Rhesusfaktor, früher Du)
34
E1Östron
E2Östradiol
E3Östriol
EAEarly Antigen
EBKEisenbindungskapazität
EBVEpstein-Barr-Virus
ECHOEnteric-cytopathogenic-human-orphan-(Viren)
ECLIAElektrochemilumineszenz Immuno-Assay
ECPEosinophiles kationisches Protein
EDTAEthylen-Diamin-Tetraessigsäure
EHECEnterohämorrhagische E. coli
EIAEnzymimmunoassay
EIECEnteroinvasive E. coli
ELISAEnzyme linked immunosorbent assay
ENAExtrahierbares nucleäres Antigen
EPECEnteropathogene E. coli
EPOErythropoetin
ETECEnterotoxische E. coli
FACS
Fluorescence Activated Cell Sorter
FeEisen
FIFärbeindex
FISHFluoreszenz-in-situ-Hybridisierung
FPIAFluoreszenz-Polarisations-Immunoassay
FPSA
Freies Prostataspezifisches Antigen
FSH
Follikelstimulierendes Hormon
FSMEFrühsommer-Meningoencephalitis
FSPFibrin(ogen)-Spaltprodukte
FT3
freies Trijodthyronin
FT4
freies Thyroxin
FTA ABS
Fluoreszenz-Treponema-Ak.-Absorptionstest
C . V e r z e i c h n i s g e b r ä u c h l i c h e r Abk ü r z u n g e n
G6PDHGlucose-6-Phosphat-Dehydrogenase
GADGlutamin Decarboxylase
GBMAGlomeruläre Basalmembran-Ak.
GCGaschromatographie
GC-MSGaschromatographie-Massenspektrometrie
GFRGlomeruläre Filtrationsrate
GLDHGlutamat-Dehydrogenase
Gn-RHGonadotropin-releasing-hormone
GOGonorrhoe
GOTGlutamat-Oxalacetat-Transaminase (syn. ASAT)
GPTGlutamat-Pyruvat-Transaminase (syn. ALAT)
GGTGamma-Glutamyl-Transpeptidase (Transferase)
GHGrowth Hormone (STH, HGH)
GSEGluten-Sensitive-Enteropathie
HAHämagglutination
HAHHämagglutinations-Hemmtest
HANEHereditäres angioneurotisches Ödem
HATHämagglutinationstest
HAVHepatitis-A-Virus
HbA1cHämoglobin A1c-Fraktion
HBcHepatitis-B-core-Antigen
HBDHHydroxybutyrat-Dehydrogenase
HbEHämoglobingehalt eines Erythrozyten
HBeHepatitis-B-envelope-Antigen
HbF
Fetales Hämoglobin
HBsHepatitis-B-Surface-Antigen
HBVHepatitis-B-Virus
HCHHexachlorcyclohexan (u.a. Lindan)
HCBHexachlorbenzol
HCGHumanes Choriongonadotropin
HCVHepatitis-C-Virus
HDLHigh-Density-Lipoproteins
HDVHepatitis-D-Virus
HEVHepatitis-E-Virus
HgQuecksilber
HGHHuman-Growth-Hormone
HGVHepatitis-G-Virus
HHTHämagglutinations-Hemmtest
HIESHydroxy-Indolessigsäure
HIGHämolyse-in-Gel-Test
HIVHumanes-Immundefizienz-Virus
HkHämatokrit
HLAHumanes-Leukozyten-Antigen
HMAHerzmuskel-Ak.
HPLHumanes-Placenta-Lactogen
HPLCHigh-Pressure (-Performance)Liquid-Chromatography
HPTHyperparathyreoidismus
HSHarnsäure
HSVHerpes-simplex-Virus
HTLVHumanes-T-Zell-Leukämie-Virus
HUSHämolytisch-urämisches Syndrom
HVSHomovanillinsäure
IA2Inselzellantigen 2
IAAInsulin-Auto-Ak.
ICAInselzell-Ak.
ICP/MSInduktiv gekoppeltes
Plasma/Massenspektrometrie
ICSHInterstitial cell stimulating hormone
IEInternationale Einheit
IEFIsoelektrische Fokussierung
IFIntrinsic factor
IFTImmunfluoreszenztest
IgImmunglobulin
35
C. Verzeichnis gebräuchlicher Abkürzungen
IGeLIndividuelle Gesundheitsleistung
IGF-IInsulin-like-growth-factor I (syn. Somatomedin)
IGFBP-3Insulin-like-growth-factor-binding protein 3
IHAIndirekte Hämagglutination
IHATIndirekter Hämagglutinationstest
IIFTIndirekter Immunfluoreszenztest
ILInterleukin
INRInternational normalized ratio
IRInfrarot-Spektroskopie
IRMAImmunradiometrischer Assay
ISAGAImmunosorbent agglutination assay
ISEIonenselektive Elektrode
ITPIdiopathische thrombozytopenische Purpura
IU
international unit
JJod
KKalium
KBRKomplement-Bindungsreaktion
LAPLeucin-Arylamidase
LBMALungenbasalmembran-Ak.
LC1Lebercytosol Antigen Typ 1
LCMLymphozytäre Choriomeningitis
LC/MSLiquid Chromatographie/Massenspektrometrie
LCRLigase chain reaction
LDHLactat-Dehydrogenase
LDLLow-Density-Lipoproteins
LELupus erythematodes
LHLuteinisierendes Hormon
LH-RHLH-Releasing hormone
LIALumineszenz Immunoassay
LKMLiver-kidney-microsomes
36
LMALebermembran-Ak.
LPSLipopolysaccharid
Lp-XLipoprotein X
LSDLysergsäurediäthylamid
LSRLues-Suchreaktion
LTTLaktose-Toleranz-Test
LTTLymphozyten-Transformationstest
MAKMax. Arbeitsplatz-Konzentration
MAKMikrosomale Ak.
MBKMinimale bakterizide Konzentration
MCAMucin-like cancer associated Ag.
MCHMittlere korpuskuläre Hb-Menge
MCHCMittlere korpuskuläre Hb-Konz.
MCDTMixed connective tissue disease
MCVMittleres korpuskuläres Volumen
MEIAMikropartikel Enzymimmunoassay
Met-HbMethämoglobin
MgMagnesium
MHKMinimale Hemmstoffkonzentration
MnMangan
MSMassenspektrometrie
MSMultiple Sklerose
NaNatrium
NaClKochsalz
NaFNatrium-Fluorid
NiNickel
NNRNebennierenrinde
NSENeuronspezifische Enolase
NTNeutralisationstest
OGTTOraler Glucose-Toleranztest
C . V e r z e i c h n i s g e b r ä u c h l i c h e r Abk ü r z u n g e n
PPhosphat
PAGEPolyacrylamidgel-Elektrophorese
p-ANCA
perinucleäre Anti-Neutrophilen-Cytoplasma-Ak.
PAP
Prostataspezifische saure Phosphatase
PbBlei
PBGPorphobilinogen
PCAParietalzell-Ak.
PCB
Polychlorierte Biphenyle
PCPPentachlorphenol
PCRPolymerase-chain-reaction
PHA
Passive Hämagglutination
PHIPhosphohexose-Isomerase
PIAPolarisations-Immunoassay
PKUPhenylketonurie
PLTPsittakose-Lymphogranulom-Trachom
PNH
Paroxysmale nächtliche Hämoglobinurie
PSA
Prostataspezifisches Antigen
PTHParathormon
PTT
Partielle Thromboplastinzeit
PTZ
Plasmathrombinzeit (syn. Quick)
RARheumatoide Arthritis
RASTRadio-Allergo-Sorbent-Test
REO-VirenRespiratory enteric orphan Viren
RFRheumafaktor
RhRhesusfaktor
RIARadio-Immunoassay
RIDRadiale Immundiffusion
RIPRadioimmunopräzipitationstest
RNPRibonukleoprotein
RNARibonukleinsäure
RSVRespiratory-Syncytial-Virus
SARSSevere-Acute-Respiratory-Syndrome
SCCSquamous cell carcinoma
SeSelen
SHBGSexualhormon-bindendes Globulin
SKMASkelettmuskel-Ak.
SLAsolubile-liver-antigen
SLESystemischer Lupus erythematodes
SMAsmooth-muscle-Ak.
SM-CSomatomedin C (syn. IGF I)
SPSaure Phosphatase
SPPSaure Prostata-Phosphatase
SSASjögren-Syndrom assoziiertes Antigen A
SSBSjögren-Syndrom assoziiertes Antigen B
SSPE
subakute sklerosierende Panencephalitis
SSWSchwangerschaftswoche
ss-DNAEinzelstrang-DNA
STHSomatotropes Hormon
T3Trijodthyronin
T4Thyroxin
TAKThyreoglobulin-Antkörper
TBGThyroxin-bindendes Globulin
TGThyreoglobulin
TGBThyreoglobulin
THCTetrahydrocannabinol
TKThymidinkinase
TNFTumor Necrosis Factor
TPATissue Polypeptide Antigen
TPETyphus-Paratyphus-Enteritis
TPHATreponema-pallidum-Hämagglutinationstest
TPPATreponema-pallidum-Partikelagglutinationstest
TPZThromboplastinzeit (syn. Quick-Test)
TRAKTSH-Rezeptor-Ak.
37
C. Verzeichnis gebräuchlicher Abkürzungen
TRHThyreotropin-releasing hormone
TSHThyreoidea stimulierendes Hormon
TZThrombinzeit
UUnit
VCAVirus-Capsid-Antigen
VDRL
Veneral Disease research laboratory
VIP
Vasoaktives intestinales Peptid
VLDL
Very low density lipoproteins
VMSVanillinmandelsäure
VZVVarizella-Zoster-Virus
38
WB
Western Blot
WHOWeltgesundheitsorganisation
ZnZink
ZNSZentralnervensystem
°Fremdleistung
E . A l l e r gi e
1. Einzelallergene
(spezifische IgE-Ak.):
tBaumpollen/Sträucher
t 01
Ahorn
t 02Erle/Grauerle
t 03
Birke
t 04Hasel
t 05
Buche
t 06
Wacholder (Sadebaum)
t 07Eiche
t 08
Ulme
t 09Olive
t 10
Walnuss
t 11
Platane (ahornblättr.)
t 13
Jasmin
t 14
Pappel (amerikan.)
t 16
Kiefer
t 17
Kastanie (Esskastanie)
t 18Eukalyptus
t 19Mimose
t 20Liguster
t 21
Flieder
t 22
Weißdorn
t 23
Zypresse
t 25Goldregen
t 26Holunder
t 27Linde
t 28Robinie
t 70Maulbeerbaum
t 71
Zeder
t 72
Palme (Königspalme)
t 73
Australische Kiefer
t 901Esche
t
t
t
t
903Hainbuche
904Salweide
905
Palmenpollen
906
Jasmin, falscher
w
Kräuter- u. Blumenpollen
w 01
Ambrosie (beifußblättrige)
w 02
Ambrosie (ausdauernde)
w 03
Ambrosie (dreilappige)
w 04
Ambrosie (falsche)
w 05
Wermuth
w 06
Beifuß
w 07Margerite
w 08Löwenzahn
w 09Spitzwegerich
w 10
Weißer Gänsefuß
w 11Salzkraut
w 12Echte Goldrute
w 13Spitzklette
w 14
Amarant (Fuchsschwanz)
w 15Melde
w 16Schlagkraut
w 17
Aster
w 18Sauerampfer
w 19Glaskraut (Parietaria officinalis)
w 20
Brennessel
w 21Glaskraut (Parietaria judaica)
w 22Chrysantheme
w 23
Dahlie
w 24Luzerne
w 25
Kamille (echte)
w 26Narzisse
w 27Nelke
w 28Rose
w 29Sonnenblume
w 30Tulpe
w 31Heidekraut
w 32Raps
w 34
Klee
w 35Geranie
w 36
Primel
w 40Hyazinthe
w 45
Forsythie
w 100Huflattich
w 901Hahnenfuß
w 902Hopfen
w 905Segge
w 207Lupine
wa 16 Weidenröschen
g
g
g
g
g
g
g
g
g
g
g
g
g
g
g
g
g
g
Gräser- u. Getreidepollen
01Ruchgras
02Hundszahngras
03
Knäuelgras
04
Wiesenschwingel
05Lolch/Raygras
06
Wiesenlieschgras
07Schilf
08
Wiesenrispengras
09
Weißes Straußgras
10Mohrenhirse (Sorgho/Sudangras)
11Trespe
12Roggen
13
Wolliges Honiggras
14Hafer
15
Weizen
16
Wiesenfuchsschwanz
17Glatthafer
421
E. Allergie
g
g
g
g
g
g
g
g
18Gerste
19
Kammgras
20Mais
21
Quecke
22
Bahiagras
70Haargerste
901Straußgras
902Trespe (weiche)
d
Milben/Stäube
d 01Dermatophagoides
pteronyssinus
(Hausstaubmilbe)
d 02Dermatophagoides farinae
(Mehlmilbe)
d
d
d
d
d
d
d
h
03
Dermatphagoides microceras
70
Acarus siro (Vorratsmilbe)
71Lepidoglyphus destructor
72Tyrophagus putreus
73Glycophagus domesticus
74Euroglyphus maynei
201
Blomia tropicalis
04Hausstaub (Allergopharma)
e
e
e
e
e
e
e
e
e
e
Epithelien/Haare/Federn
01
Katzenepithel u. -schuppen
02Hundeepithel
03
Pferdeschuppen
04Rinderepithel
05Hundeschuppen
06Meerschweinchenepithel
08Nerzepithel
10
Papageienfedern
11Taubenfedern
422
e 50
Zierfinkenfedern
e 70Gänsefedern
e 71Mäuseepithel
e 73Rattenepithel
e 78
Wellensittichfedern
e 80
Ziegenepithel
e 81Schafepithel
e 82
Kaninchenepithel
e 83 Schweineepithel
e 84Hamsterepithel
e 85Hühnerfedern
e 86Entenfedern
e 92Truthahnfedern
e 96Gänsedaunen
e 201
Kanarienvogelfedern
e 203Chinchillaepithel
ea 205 Fuchsepithel
e 206
Kamelepithel
e 207Nymphensittichfedern
eSerum- , Urin- u. Kotproteine
e 07Taubenkot
e 13Taubenserumprotein
e 14
Kanarienvogelserumprotein
e 15Hühnerserumprotein
e 16
Papageienserumprotein
e 51
Zierfinkenkot
e 72Mäuseurinprotein
e 74Rattenurinprotein
e 75Rattenserumprotein
e 76Mäuseserumprotein
e 77
Wellensittichkot
e 79
Wellensittichserumprotein
e 87Ratte (Epithel und Proteine)
e 88Maus (Epithel und Protein)
e 89Mäusekot
e 90Rattenkot
e 91Nymphensittichkot
e 98
Papageienkot
e 99
Kanarienvogelkot
ea 211Rinderserum
e 212Rinderserumalbumin
iInsekten
i 01
Bienengift
i 03
Wespengift (Vespula spp.)
i 06
Küchenschabe
i 08Hummel
i 09Reismehlkäfer
i 70
Feuerameise
i 71Stechmücke
i 73Rote Mückenlarve
i 74
Wasserflöhe
i 75Hornisse (europäisch)
i 901Taubenzecke
i 902Rote Baumspinne
i 903
Kleidermotte
ia 903 Küchenschabe (amerikanisch)
cMedikamente
c 01
Penicilloyl G
c 02
Penicilloyl V
c 03Chymopapain
c 70Insulin (Schwein)
c 71Insulin (Rind)
c 72
ACTH
c 73Insulin (Human)
c 201Cephalosporin
E . A l l e r gi e
c
c
c
c
c
c
c
c
c
c
c
c
c
c
c
202Trimethoprim
203Sulfamethoxazol
204
Amoxicillin
205
Ampicillin
206
Doxycyclin
207
Acetylsalicylsäure
208
Pyrazolon
209
Paracetamol/Phenacetin
210
Furosemid
211Tetracyclin
212Erythromycin
213Gentamicin
267
Bromelain
901Haemaccel
902Gelifundol
fNahrungsmittel
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
Milch und Milchprodukte
02Milcheiweiß (Kuh)
60Camembert
63Roquefort
70Schweizer Käse
76
Alpha-Lactalbumin
77
Beta-Lactoglobulin
78
Kasein
81Cheddarkäse
82Schimmelkäse
150Edamer Käse
201Gouda Käse
203Milch (gekocht)
204Muttermilch
205
Joghurt
206
Kefir
f 207
Parmesankäse
fa 208Schafskäse
f 209
Ziegenkäse
f 236Molke
f 910Nutramigen
f 911
Pregestimil
f 912
Alfare
f 913
Pregomin
f 914
Beba HA
f 915
Aptamil
f 916Humana H.A.
f 917Humana SL
Fleisch
f 26Schweinefleisch
f 27Rindfleisch
f 57Entenfleisch
f 58Gänsefleisch
f 59
Pferdefleisch
f 83Hühnerfleisch
f 88Lammfleisch
f 130
Putenfleisch
f 221Rehfleisch
f 222
Wildschweinfleisch
Hühnerei
f 01Eiklar (Hühnereiweiß)
f 67Ovalbumin
f 68Ovomucoid
f 75Eigelb
f 245
Vollei
Gemüse
f 12Erbse
f 14Sojabohne
f 15
Weiße Bohne
f 25Tomate
f 31
Karotte
f 35
Kartoffel
f 38Spinat
f 39
Kohl
f 47
Knoblauch
f 48
Zwiebel
f 61
Blumenkohl (gekocht)
f 62
Blumenkohl (roh)
f 64
Kresse
f 65Linse
f 66
Porree
f 85Sellerie
f 86
Petersilie
f 96
Avocado
f 100
Kopfsalat
f 121Maisgemüse
f 127Champignon
f 132Grüne Bohne
f 133Gurke
f 134
Broccoli
f 135
Kürbis
f 136Rote Beete
f 137Spargel
f 163
Kohlrabi
f 218
Paprika
f 301
Aubergine
f 302
Austernpilz
f 303Chinakohl
423
E. Allergie
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
306
Fenchel
308Grünkohl
309Radieschen
310Rettich
311Rosenkohl
312Rotkohl
314Sauerampfer (roh)
315Sauerkraut
316Schwarzwurzel
317
Wirsing
318
Zucchini
319
Artischocken
901
Peperoni
Obst
f 30Grapefruit
f 33Orange
f 34Mandarine
f 44Erdbeere
f 49
Apfel
f 50
Weintraube
f 72
Ananas
f 73
Kirsche
f 84
Kiwi
f 87Melone
f 91Mango
f 92
Banane
f 94
Birne
f 95
Pfirsich
f 122
Pflaume
f 162Nektarine
f 208
Zitrone
f 271
Aprikose
424
f 272
Blaubeere
f 273
Brombeere
f 274
Feige
fa 275Himbeere
f 276
Johannisbeere
f 277
Preiselbeere
f 278Rhabarber
fa 279Rosine
f 280Sauerkirsche
f 281Stachelbeere
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
f
Fische und Meeresfrüchte
03
Dorsch/Kabeljau
21Hering
22
Forelle
23
Krabbe
24Garnele
37Miesmuschel
40Thunfisch
41Lachs
42Schellfisch
55
Aal
56Rotbarsch
71Languste
80Hummer
101
Venusmuschel
152Scholle
231
Auster
232Hecht
233
Karpfen
234
Krebs
235Makrele
237Sardine
f
f
f
f
238Seezunge
239Tintenfisch
805Sardelle
902Heilbutt
Cerealien und Mehle
f 04
Weizenmehl
f 05Roggenmehl
f 06Gerstenmehl
f 07Hafermehl
f 08Maismehl
f 09Reis (roh)
f 10Sesamschrot
f 11
Buchweizenmehl
f 51Sojaschrot
f 53Guarkernmehl
f 79Gluten (Gliadin)
f 98Leinsamenschrot
f 251
Dinkel
f 252Gries
f 253Hirse
f 255
Johanniskernmehl
fa 256 Kartoffelmehl
f 257
Kokosflocken
f 258Rizinus
f 259Sago
f 260
Weizenschrot
f 903Gerstenkleie
f 904Maiskleie
f 905Roggenkleie
f 906
Weizenkleie
f 907Rizinusschrot
f 918Langkornreis (gekocht)
E . A l l e r gi e
f 919Rundkornreis (gekocht)
f 909Gelatine (Rind)
Nüsse und Ölsaaten
f 13Erdnuss
f 17Haselnuss
f 18
Paranuss
f 19Esskastanie
f 20Mandel
f 36
Kokosnuss
f 103
Pecannuss
f 104
Pistazie
f 105Cashew-Nuss
f 256
Walnuss
sGewürze
s 01
Anis
s 02Curry-Mischung
s 03
Kümmel
s 04Lorbeerblatt
s 05Muskatnuss
s 06
Paprika (Gewürz)
s 07
Pfeffer
s 09Oregano
s 10
Basilikum
s 11
Dill
s 12
Vanille
s 201
Bohnenkraut
s 202
Koriander
s 203Ingwer
s 206Majoran
s 207Mohn
s 211Rosmarin
s 212Thymian
f 220
Zimt
s 902
Kamille
Sonstige Nahrungsmittel
f 45
Bäckerhefe
f 89Senf
f 90Malz
f 93
Kakao
f 97
Kamillentee
f 99Tee (schwarz)
f 102
Kaffee
f 105Schokolade
f 125
Pfefferminz-Tee
f 126
Pfefferminz-Kräuter
f 128Schnecke
f 131Schwarze Olive
f 332
Backhilfsmittel
f 333Honig
f 334Hopfen
f 336
Weinessig
f 337
Weinhefe
f 801Gummibärchen
f 908Gelatine (Schwein)
k
Beruf und Hobby
k 01
Acylon
k 02
Baumwolle (bearbeitet)
k 04
Dreschstaub
k 05
Flachs
k 07Heustaub
k 14
Kapok
k 15
Kunstseide (Rayon)
k 16Leinen
k 17Nylon
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
k
20Schafwolle (bearbeitet)
21Schafwolle (unbearbeitet)
22Seide
23Strohstaub
25Terylene
26
Weizendrusch
31
Ahornholz
32
Buchenholz
33Eichenholz
34Eschenholz
35
Fichtenholz
36
Kiefernholz
38Macoreholz
39Mahagoniholz
42Raminholz
44Tannenholz
70Grüne Kaffebohne
73
Wildseide
74Rohseide
75Isocyanat TDI
76Isocyanat MDI
77Isocyanat HDI
78
Äthylenoxid
79
Phthalsäure-Anhydrid
80
Formaldehyd
81
Ficus sp.
82Latex (Neotex)
83
Baumwollsamen
84Sonnenblumensamen
86Trimellitsäure-Anhydrid (TMA)
87
Alpha-Amylase
203
Phospholipase
208Lysozym
425
E. Allergie
k
k
k
k
k
263Lakritz
270
Alkalase
903
POD-Enzym
904GOD-Enzym
905HSA-Scheiben
mSchimmelpilze und Hefen
m 01
Penicillium notatum
m 02Cladosporium herbarum
m 03
Aspergillus fumigatus
m 04Mucor racemosus
m 05Candida albicans
m 06
Alternaria tenuis
m 07
Botrytis cinerea
m 08Helminthosporium halodes
m 09
Fusarium moniliforme
m 10Stemphylium botryosum
m 11Rhizopus nigricans
m 12
Aureobasidium pullulans
m 13
Phoma betae
m 14Epicoccum purpurascens
m 15Trichoderma viride
m 16Curvularia lunata
m 17Cladosporium fulvum
m 18
Fusarium culmorum
m 19
Aspergillus versicolor
m 20Mucor mucedo
m 21
Aspergillus clavatus
m 22Mucor spinosus
m 23Neurospora sitophila
m 24
Paecilomyces spp.
m 25
Penicillium brevicompactum
m 27
Penicillium commune
426
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
m
28
Penicillium expansum
29
Aspergillus repens
30
Penicillium roqueforti
33
Aspergillus niger
34Serpula lacrymans
35Sporobolomyces roseus
36
Aspergillus terreus
37Trichophyton mentagrophytes
39Trichophyton verrucosum
40
Aspergillus amstelodami
42
Ustilago nuda/tritici
43
Brauereihefe
44
Bäckerhefe
45Chaetomium globosum
47
Aspergillus nidulans
48
Aspergillus oryzae
205Trichophyton rubrum
901Microsporum canis
902 Pullularia pullulans
oSonstige
o 202
Fischfutter Artemia salina
o 203
Fischfutter Tetramin
o 204
Fischfutter Daphnia
Hinweis: Bitte bei Kindern unter sechs
Jahren maximal 15 Allergene pro
Untersuchungsauftrag und pro Quartal
anfordern (Befreiungsziffer 32009 nicht
vergessen!)
Bei Erwachsenen bitte maximal
8 Allergene pro Untersuchungsauftrag
und pro Quartal anfordern (laut
Änderung EBM seit 01.10.09)
E . A l l e r gi e
2. Gruppenallergene (spezifische IgE-Ak.):
dp 01
Milben
ex
ex
ex
ex
Epithelien
Haustiere
Nutztiere
Nagermischung
01
02
03
70
ep 71
ex 72
ex 901
Federn
Käfigvogelfedern
Tierepithelien I
ex 902
ex 903
fp 01
fp 02
fp 03
fp 05
fx 07
fx 08
fx 10
fp 13
fp 15
fx 15
fx 16
fp 73
fx 901
Tierepithelien II
Mischung Federn
Nüsse
Meeresfrüchte
Getreide/Cerealien
Kleinkindernahrung
Gemüse II
Gemüse III
Früchte II
Nahrungsmittel
Obst
Geflügel (Fleisch)
Käse
Fleisch
Mehlmischung
Blomia tropicalis, Dermatophagoides farinae, Dermatophagoides microceras, Dermatophagoides pteronyssinus, Euroglyphus maynei, Glycophagus domesticus,Lepidoglyphus
destructor, Tyrophagus putreus
Hundeschuppen, Katzenepithel und –schuppen, Pferdeschuppen, Rinderepithel
Hundeepithel, Katzenepithel, Hamsterepithel, Meerschweinchenepithel
Kaninchenepithel, Pferdeschuppen, Rinderepithel, Schafepithel
Goldhamsterepithel, Kaninchenepithel, Meerschweinchenepithel, Mäuseepithel,
Rattenepithel
Gänsefedern, Hühnerfedern, Entenfedern, Truthahnfedern
Kanarienvogelfedern, Papageienfedern, Wellensittichfedern, Zierfinkenfedern
Goldhamsterepithel, Hundeepithel, Kaninchenepithel, Katzenepithel und –schuppen,
Meerschweinchenepithel
Pferdeschuppen, Rinderepithel, Schafwolle (unbehandelt), Schweineepithel, Ziegenepithel
Entenfedern, Gänsefedern, Hühnerfedern
Erdnuss, Haselnuss, Kokosnuss, Mandel, Paranuss
Dorsch, Garnele, Lachs, Miesmuschel, Thunfisch
Buchweizen, Hafer, Mais, Sesamsamen, Weizen
Dorsch, Erdnuss, Hühnereiweiß, Milcheiweiß (Kuh), Sojabohne, Weizen
Kohl, Paprika (Gemüse), Spinat, Tomate
Champignon, Selleriewurzel, Sojabohne, Zwiebel
Ananas, Birne, Erdbeere, Zitrone
Erbse, Karotte, Kartoffel, Weiße Bohne
Apfel, Banane, Orange, Pfirsich
Entenfleisch, Gänsefleisch, Hühnerfleich, Putenfleisch
Cheddarkäse, Edamer Käse, Schimmelkäse, Schweizer Käse
Hühnerfleisch, Lammfleisch, Rindfleisch, Schweinefleisch
Hafermehl, Maismehl, Roggenmehl, Weizenmehl
427
E. Allergie
fx 903
Nahrungsmittel-Screening
gp 01
gp 04
gx 901
Gräser (Frühblüher)
Gräser (Spätblüher)
6-Gräser (Allergopharma)
gx 902
Gräser-Getreide-Mix
hp 01
ip 08
Hausstäube
Inhalationsallergene
kx 01
kx 02
kx 03
kx 04
mp 01
Synthetische Stoffe
Stoffe/Fasern
Getreidestäube
Weichhölzer
Schimmelpilz-Mischung
mx
mx
mx
mx
Schimmelpilze II
Aspergilli I
Aspergilli II
Penicillia
02
06
07
08
mx 901
Mischung Schimmelpilze I
mx 902
Mischung Schimmelpilze II
sx 01
sx 02
tp 05
Gewürze
Gewürze II
Bäume (Frühblüher)
428
Erdnuss, Haselnuss, Hühnerei (gesamt), Kabeljau (Dorsch), Krabbe, Kuhmilcheiweiß, Maismehl, Sojabohne, Tomate, Weizenmehl
Knäuelgras, Lieschgras, Lolch, Wiesenrispengras, Wiesenschwingel
Lolch, Roggen, Ruchgras, Schilf, Wolliges Honiggras
Honiggras, Knäuelgras, Raygras (Lolch), Wiesenlieschgras, Wiesenrispengras,
Wiesenschwingel
Honiggras, Knäuelgras, Raygras (Lolch), Wiesenlieschgras, Wiesenrispengras, Wiesenschwingel, Gerste, Hafer, Roggen, Weizen
Dermatophagoides farinae, Greer, Küchenschabe, Dermatophagoides pteronyssinus
Beifuß, Birke, Cladosporium herbarum, Dermatophagoides pteronyssinus, Hundeschuppen,
Katzenepithel, Lieschgras, Roggen
Acylon, Kunstseide (Rayon), Nylon, Terylene
Baumwolle (bearbeitet), Jute, Schafwolle (bearbeitet), Seide
Dreschstaub, Heustaub, Strohstaub, Weizendrusch
Buchenholz, Kiefernholz
Alternaria tenuis, Aspergillus fumigatus, Candida albicans, Cladosporium herbarum, Penicillium notatum
Rhizopus nigricans, Mucor spinosus, Pullularia pullulans, Neurospora sitophila
Aspergillus fumigatus, Aspergillus clavatus, Aspergillus amstelodami, Apergillus nidulans
Aspergillus versicolor, Aspergillus repens, Aspergillus niger, Apergillus terreus
Penicillium notatum, Penicillium brevicompactum, Penicillium expansum, Penicillium
roqueforti
Alternaria tenuis, Botrytis cinerea, Curvularia lunata, Fusarium moniliforme, Helminthosporium halodes, Cladosporium herbarum
Aspergillus fumigatus, Mucor mucedo, Penicillium notatum, Pullularia pullulans, Rhizopus
nigricans, Serpula lacrymans
Anis, Curry-Mischung, Kümmel, Knoblauch
Muskatnuss, Paprika (Gewürz), Pfeffer, Senf
Erle, Hasel, Pappel, Salweide, Ulme
E . A l l e r gi e
tp 06
tx 901
tx 902
wp 03
wx 05
wx 06
Bäume (Spätblüher)
Bäume (Mittelblüher)
Bäume-Mischung
Kräutermischung 3
Blumen I
Blumen II
Ahorn, Birke, Buche, Eiche, Walnuss
Birke, Rotbuche, Eiche, Platane
Erle, Birke, Hasel
Beifuß, Brennessel, Echte Goldrute, Spitzwegerich, Weißer Gänsefuß
Aster, Chrysantheme, Dahlie, Hyanzinthe
Margerite, Primel, Rose, Tulpe
Hinweis:Mischallergene weisen eine etwas geringere Empfindlichkeit auf als Einzelallergene.
3. Symptombezogene Allergiediagnostik mittels verschiedener Profile
Für verschiedene Symtomkomplexe können Sie folgende Allergie-Profile in Form von Aufklebern im Labor anforden und diese auf den
Untersuchungsauftrag aufkleben:
Ekzem
f01 Eiklar (Hühnereiweiß)
f02 Milcheiweiß (Kuh)
f03 Dorsch/Kabeljau
f04 Weizenmehl
f13 Erdnuss
f14 Sojabohne
f17 Haselnuss
d01 D. pteronyssinus
Gastro Erwachsene
f03 Dorsch/Kabeljau
f04 Weizenmehl
f13 Erdnuss
f14 Sojabohne
f17 Haselnuss
f24 Garnele (Shrimps)
f84 Kiwi
f85 Sellerie
Asthma/Rhinnitis saisonal/perennial
d01 D. pteronyssinus
e01 Katzenepithel/-schuppen
e02 Hundeepithel
mp01 Schimmelpilze
g06 Lieschgras
t03 Birke
w01 Ambrosie/beifußblättrig
w06 Beifuß
429
E. Allergie
Gastro Kinder
f01 Eiklar (hühnereiweiß)
f02 Milcheiweiß
f03 Dorsch/Kabeljau
f04 Weizenmehl
f13 Erdnuss
f14 Sojabohne
f31 Karotte
f85 Sellerie
Kinder-Profil
g06 Lieschgras
t03 Birke
w06 Beifuß
e01 Katzenepithel/-schuppen
e02 Hundeepithel
d01 D. pteronyssinus
m06 Alternaria tenius (alternata)
f01 Eiklar (Hühnereiweiß)
f02 Milcheiweiß (Kuh)
f03 Dorsch/Kabeljau
f04 Weizenmehl
f13 Erdnuss
f14 Sojabohne
f31 Karotte
f85 Sellerie Hinweis zu den CLA-Allergen-Panels:
Beachten Sie! Die Panel-Teste bzw. CLA-Teste (Atopy Panel 20,
Inhalation 20 und Nahrungsmittel 20) werden wegen zu geringer
Anforderungsmenge ab 01.10.10 nicht mehr in unserem Hause
durchgeführt!
430
F. A u s z u g a u s d e m I n f e k t io n s s c h u t z g e s e t z ( I f S G )
Meldewesen
§ 6 Meldepflichtige Krankheiten
(1)Namentlich ist zu melden:
1. der Krankheitsverdacht, die Erkrankung sowie der Tod an
a)Botulismus
b)Cholera
c)Diphtherie
d)humaner spongiformer Enzephalopathie, außer f amiliärhereditärer Formen
e) akuter Virushepatitis
enteropathischem hämolytisch-urämischem Syndrom (HUS)
f)
g) virusbedingtem hämorrhagischen Fieber
h)Masern
i)Meningokokken-Meningitis oder -Sepsis
j)Milzbrand
k)Poliomyelitis (als Verdacht gilt jede akute schlaffe Lähmung, außer wenn traumatisch bedingt)
l)Pest
m)Tollwut
n)Typhus abdominalis/Paratyphus
sowie die Erkrankung und der Tod an einer behandlungsbedürftigen Tuberkulose, auch wenn ein bakteriologischer
Nachweis nicht vorliegt,
2.der Verdacht auf und die Erkrankung an einer mikrobiell
bedingten Lebensmittelvergiftung oder an einer akuten
infektiösen Gastroenteritis, wenn
a)eine Person betroffen ist, die eine Tätigkeit im Sinne des
§ 42 Abs. 1 ausübt,
b)zwei oder mehr gleichartige Erkrankungen auftreten, bei
denen ein epidemischer Zusammenhang wahrscheinlich
ist oder vermutet wird,
3. der Verdacht einer über das übliche Ausmaß einer Impfreaktion hinausgehenden gesundheitlichen Schädigung,
4. die Verletzung eines Menschen durch ein tollwutkrankes,
-verdächtiges oder -ansteckungsverdächtiges Tier sowie die
Berührung eines solchen Tieres oder Tierkörpers,
5. soweit nicht nach den Nummern 1 bis 4 meldepflichtig, das
Auftreten
a) einer bedrohlichen Krankheit oder
b) von zwei oder mehr gleichartigen Erkrankungen, bei
denen ein epidemischer Zusammenhang wahrscheinlich
ist oder vermutet wird, wenn dies auf eine schwerwiegende Gefahr für die Allgemeinheit hinweist und Krankheitserreger als Ursache in Betracht kommen, die nicht in
§ 7 genannt sind.
Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8 Abs. 1 Nr. 1, 3 bis
8, § 9 Abs. 1, 2, 3 Satz 1 oder 3 oder Abs. 4 zu erfolgen.
(2) Dem Gesundheitsamt ist über die Meldung nach Absatz 1 Nr.
1 hinaus mitzuteilen, wenn Personen, die an einer behandlungsbedürftigen Lungentuberkulose leiden, eine Behandlung verweigern oder abbrechen. Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8
Abs. 1 Nr. 1, § 9 Abs. 1 und 3 Satz 1 oder 3 zu erfolgen.
(3) Dem Gesundheitsamt ist unverzüglich das gehäufte Auftreten
nosokomialer Infektionen, bei denen ein epidemischer Zusammenhang wahrscheinlich ist oder vermutet wird, als Ausbruch
nichtnamentlich zu melden. Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß
§ 8 Abs. 1 Nr. 1, 3 und 5, § 10 Abs. 1 Satz 3, Abs. 3 und 4 Satz 3
zu erfolgen.
§ 7 Meldepflichtige Nachweise von Krankheitserregern
(1) Namentlich ist bei folgenden Krankheitserregern, soweit
nicht anders bestimmt, der direkte oder indirekte Nachweis
431
F. A u s z u g a u s d e m I n f e k t i o n s s c h u t z g e s e t z ( I f SG )
zu melden, soweit die Nachweise auf eine akute Infektion
hinweisen:
1. Adenoviren; Meldepflicht nur für den direkten Nachweis im
Konjunktivalabstrich
2. Bacillus anthracis
3. Borrelia recurrentis
4. Brucella sp.
5. Campylobacter sp., darmpathogen
6. Chlamydia psittaci
7. Clostridium botulinum oder Toxinnachweis
8. Corynebacterium diphtheriae, Toxin bildend
9. Coxiella burnetii
10. Cryptosporidium parvum
11. Ebolavirus
12. a) Escherichia coli, enterohämorrhagische Stämme (EHEC)
b) Escherichia coli, sonstige darmpathogene Stämme
13. Francisella tularensis
14.FSME-Virus
15. Gelbfiebervirus
16. Giardia lamblia
17. Haemophilus influenzae; Meldepflicht nur für den direkten
Nachweis aus Liquor oder Blut
18. Hantaviren
19. Hepatitis -A-Virus
20. Hepatitis -B-Virus
21. Hepatitis -C-Virus; Meldepflicht für alle Nachweise, soweit
nicht bekannt ist, dass eine chronische Infektion vorliegt
22. Hepatitis -D-Virus
23. Hepatitis -E-Virus
24. Influenzaviren; Meldepflicht nur für den direkten Nachweis
25. Lassavirus
26. Legionella sp.
27. Leptospira interrogans
432
28. Listeria monocytogenes; Meldepflicht nur für den direkten
Nachweis aus Blut, Liquor oder anderen normalerweise
sterilen Substraten sowie aus Abstrichen von Neugeborenen
29. Marburgvirus
30. Masernvirus
31. Mycobacterium leprae
32. Mycobacterium tuberculosis/africanum, Mycobacterium
bovis; Meldepflicht für den direkten Erregernachweis sowie
nachfolgend für das Ergebnis der Resistenzbestimmung,
vorab auch für den Nachweis säurefester Stäbchen im
Sputum
33. Neisseria meningitidis; Meldepflicht nur für den direkten
Nachweis aus Liquor, Blut, hämorrhagischen Hautinfiltraten
oder anderen normalerweise sterilen Substraten
34. Norwalk-ähnliches Virus; Meldepflicht nur für den direkten
Nachweis aus Stuhl
35. Poliovirus
36. Rabiesvirus
37. Rickettsia prowazekii
38. Rotavirus
39. Salmonella Paratyphi; Meldepflicht für alle direkten
Nachweise
40. Salmonella Typhi; Meldepflicht für alle direkten Nachweise
41. Salmonella, sonstige
42. Shigella sp.
43. Trichinella spiralis
44. Vibrio cholerae O 1 und O 139
45. Yersinia enterocolitica, darmpathogen
46. Yersinia pestis
47. andere Erreger hämorrhagischer Fieber.
Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8 Abs. 1 Nr. 2, 3, 4
und Abs. 4, § 9 Abs. 1, 2, 3 Satz 1 oder 3 zu erfolgen.
F. A u s z u g a u s d e m I n f e k t io n s s c h u t z g e s e t z ( I f S G )
(2) Namentlich sind in dieser Vorschrift nicht genannte Krankheitserreger zu melden, soweit deren örtliche und zeitliche
Häufung auf eine schwerwiegende Gefahr für die Allgemeinheit
hinweist. Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß
§ 8 Abs. 1 Nr. 2, 3 und Abs. 4, § 9 Abs. 2, 3 Satz 1 oder 3 zu
erfolgen.
(3) Nichtnamentlich ist bei folgenden Krankheitserregern der
direkte oder indirekte Nachweis zu melden:
1. Treponema pallidum
2. HIV
3. Echinococcus sp.
4. Plasmodium sp.
5. Rubellavirus; Meldepflicht nur bei konnatalen Infektionen
6. Toxoplasma gondii; Meldepflicht nur bei konnatalen
Infektionen.
Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8 Abs. 1 Nr. 2, 3 und
Abs. 4, § 10 Abs. 1 Satz 1, Abs. 3, 4 Satz 1 zu erfolgen.
§ 8 Zur Meldung verpflichtete Personen
(1) Zur Meldung oder Mitteilung sind verpflichtet:
1. im Falle des § 6 der feststellende Arzt; in Krankenhäusern
oder anderen Einrichtungen der stationären Pflege ist für die
Einhaltung der Meldepflicht neben dem feststellenden Arzt
auch der leitende Arzt, in Krankenhäusern mit mehreren
selbständigen Abteilungen der leitende Abteilungsarzt, in
Einrichtungen ohne leitenden Arzt der behandelnde Arzt
verantwortlich,
2. im Falle des § 7 die Leiter von Medizinaluntersuchungsämtern und sonstigen privaten oder öffentlichen Untersuchungsstellen einschließlich der Krankenhauslaboratorien,
3. im Falle der §§ 6 und 7 die Leiter von Einrichtungen der
pathologisch-anatomischen Diagnostik, wenn ein Befund
4.
5.
6.
7.
8.
erhoben wird, der sicher oder mit hoher Wahrscheinlichkeit
auf das Vorliegen einer meldepflichtigen Erkrankung oder
Infektion durch einen meldepflichtigen Krankheitserreger
schließen lässt,
im Falle des § 6 Abs. 1 Nr. 4 und im Falle des § 7 Abs. 1 Nr.
36 bei Tieren, mit denen Menschen Kontakt gehabt haben,
auch der Tierarzt,
im Falle des § 6 Abs. 1 Nr. 1, 2 und 5 und Abs. 3 Angehörige
eines anderen Heil- oder Pflegeberufs, der für die Berufsausübung oder die Führung der Berufsbezeichnung eine
staatlich geregelte Ausbildung oder Anerkennung erfordert,
im Falle des § 6 Abs. 1 Nr. 1, 2 und 5 der verantwortliche
Luftfahrzeugführer oder der Kapitän eines Seeschiffes,
im Falle des § 6 Abs. 1 Nr. 1, 2 und 5 die Leiter von Pflegeeinrichtungen, Justizvollzugsanstalten, Heimen, Lagern oder
ähnlichen Einrichtungen,
im Falle des § 6 Abs. 1 der Heilpraktiker.
(2) Die Meldepflicht besteht nicht für Personen des Not- und
Rettungsdienstes, wenn der Patient unverzüglich in eine ärztlich
geleitete Einrichtung gebracht wurde. Die Meldepflicht besteht
für die in Absatz 1 Nr. 5 bis 7 bezeichneten Personen nur, wenn
ein Arzt nicht hinzugezogen wurde.
(3) Die Meldepflicht besteht nicht, wenn dem Meldepflichtigen
ein Nachweis vorliegt, dass die Meldung bereits erfolgte und
andere als die bereits gemeldeten Angaben nicht erhoben wurden. Satz 1 gilt auch für Erkrankungen, bei denen der Verdacht
bereits gemeldet wurde.
(4) Absatz 1 Nr. 2 gilt entsprechend für Personen, die die Untersuchung zum Nachweis von Krankheitserregern außerhalb des
Geltungsbereichs dieses Gesetzes durchführen lassen.
433
F. A u s z u g a u s d e m I n f e k t i o n s s c h u t z g e s e t z ( I f SG )
(5) Der Meldepflichtige hat dem Gesundheitsamt unverzüglich
mitzuteilen, wenn sich eine Verdachtsmeldung nicht bestätigt
hat.
§ 9 Namentliche Meldung
(1) D
ie namentliche Meldung durch eine der in § 8 Abs. 1 Nr. 1, 4
bis 8 genannten Personen muss folgende Angaben enthalten:
1. Name, Vorname des Patienten
2. Geschlecht
3. Tag, Monat und Jahr der Geburt
4. Anschrift der Hauptwohnung und, falls abweichend:
Anschrift des derzeitigen Aufenthaltsortes
5. Tätigkeit in Einrichtungen im Sinne des § 36 Abs. 1 oder 2;
Tätigkeit im Sinne des § 42 Abs. 1 bei akuter Gastroenteritis,
akuter Virushepatitis, Typhus abdominalis/ Paratyphus und
Cholera
6. Betreuung in einer Gemeinschaftseinrichtung gemäß § 33
7. Diagnose beziehungsweise Verdachtsdiagnose
8. Tag der Erkrankung oder Tag der Diagnose, gegebenenfalls
Tag des Todes
9. wahrscheinliche Infektionsquelle
10. Land, in dem die Infektion wahrscheinlich erworben wurde;
bei Tuberkulose Geburtsland und Staatsangehörigkeit
11. Name, Anschrift und Telefonnummer der mit der Erregerdiagnostik beauftragten Untersuchungsstelle
12. Überweisung in ein Krankenhaus beziehungsweise Aufnahme in einem Krankenhaus oder einer anderen Einrichtung
der stationären Pflege und Entlassung aus der Einrichtung,
soweit dem Meldepflichtigen bekannt
13. Blut-, Organ- oder Gewebespende in den letzten sechs
Monaten
14. Name, Anschrift und Telefonnummer des Meldenden
434
15. bei einer Meldung nach § 6 Abs. 1 Nr. 3 die Angaben nach §
22 Abs. 2.
Bei den in § 8 Abs. 1 Nr. 4 bis 8 genannten Personen beschränkt
sich die Meldepflicht auf die ihnen vorliegenden Angaben.
(2) Die namentliche Meldung durch eine in § 8 Abs. 1 Nr. 2 und
3 genannte Person muss folgende Angaben enthalten:
1. Name, Vorname des Patienten
2. Geschlecht, soweit die Angabe vorliegt
3. Tag, Monat und Jahr der Geburt, soweit die Angaben
vorliegen
4. Anschrift der Hauptwohnung und, falls abweichend:
Anschrift des derzeitigen Aufenthaltsortes, soweit die Angaben vorliegen
5. Art des Untersuchungsmaterials
6. Eingangsdatum des Untersuchungsmaterials
7. Nachweismethode
8. Untersuchungsbefund
9. Name, Anschrift und Telefonnummer des einsendenden
Arztes beziehungsweise des Krankenhauses
10. Name, Anschrift und Telefonnummer des Meldenden.
Der einsendende Arzt hat bei einer Untersuchung auf Hepatitis
C dem Meldepflichtigen mitzuteilen, ob ihm eine chronische
Hepatitis C bei dem Patienten bekannt ist.
(3) Die namentliche Meldung muss unverzüglich, spätestens
innerhalb von 24 Stunden nach erlangter Kenntnis gegenüber
dem für den Aufenthalt des Betroffenen zuständigen Gesundheitsamt, im Falle des Absatzes 2 gegenüber dem für den
Einsender zuständigen Gesundheitsamt erfolgen. Eine Meldung
darf wegen einzelner fehlender Angaben nicht verzögert
werden. Die Nachmeldung oder Korrektur von Angaben hat
unverzüglich nach deren Vorliegen zu erfolgen. Liegt die Hauptwohnung oder der gewöhnliche Aufenthaltsort der betroffenen
F. A u s z u g a u s d e m I n f e k t io n s s c h u t z g e s e t z ( I f S G )
Person im Bereich eines anderen Gesundheitsamtes, so hat das
unterrichtete Gesundheitsamt das für die Hauptwohnung, bei
mehreren Wohnungen das für den gewöhnlichen Aufenthaltsort
des Betroffenen zuständige Gesundheitsamt unverzüglich zu
benachrichtigen.
(4) Der verantwortliche Luftfahrzeugführer oder der Kapitän
eines Seeschiffes meldet unterwegs festgestellte meldepflichtige
Krankheiten an den Flughafen- oder Hafenarzt des inländischen
Ziel- und Abfahrtsortes. Die dort verantwortlichen Ärzte melden
an das für den jeweiligen Flughafen oder Hafen zuständige
Gesundheitsamt.
(5) Das Gesundheitsamt darf die gemeldeten personenbezogenen Daten nur für seine Aufgaben nach diesem Gesetz verarbeiten und nutzen. Personenbezogene Daten sind zu löschen,
wenn ihre Kenntnis für das Gesundheitsamt zur Erfüllung der in
seiner Zuständigkeit liegenden Aufgaben nicht mehr erforderlich ist, Daten zu § 7 Abs. 1 Nr. 21 spätestens jedoch nach drei
Jahren.
§ 10 Nichtnamentliche Meldung
(1) Die nichtnamentliche Meldung nach § 7 Abs. 3 muss folgende Angaben enthalten:
1. im Falle des § 7 Abs. 3 Nr. 2 eine fallbezogene Verschlüsselung gemäß Absatz 2
2. Geschlecht
3. Monat und Jahr der Geburt
4. erste drei Ziffern der Postleitzahl der Hauptwohnung
5. Untersuchungsbefund
6. Monat und Jahr der Diagnose
7. Art des Untersuchungsmaterials
8. Nachweismethode
9. wahrscheinlicher Infektionsweg, wahrscheinliches
Infektionsrisiko
10. Land, in dem die Infektion wahrscheinlich erworben wurde
11. Name, Anschrift und Telefonnummer des Meldenden
12. bei Malaria Angaben zur Expositions- und Chemoprophylaxe.
Der einsendende Arzt hat den Meldepflichtigen insbesondere
bei den Angaben zu den Nummern 9, 10 und 12 zu unterstützen. Die nichtnamentliche Meldung nach § 6 Abs. 3 muss die
Angaben nach den Nummern 5, 9 und 11 sowie Name und
Anschrift der betroffenen Einrichtung enthalten.
(2) Die fallbezogene Verschlüsselung besteht aus dem dritten
Buchstaben des ersten Vornamens in Verbindung mit der Anzahl
der Buchstaben des ersten Vornamens sowie dem dritten Buchstaben des ersten Nachnamens in Verbindung mit der Anzahl
der Buchstaben des ersten Nachnamens. Bei Doppelnamen wird
jeweils nur der erste Teil des Namens berücksichtigt; Umlaute
werden in zwei Buchstaben dargestellt. Namenszusätze bleiben
unberücksichtigt.
(3) Bei den in § 8 Abs. 1 Nr. 3 und 5 genannten Personen
beschränkt sich der Umfang der Meldung auf die ihnen vorliegenden Angaben.
(4) Die nichtnamentliche Meldung nach § 7 Abs. 3 muss innerhalb von zwei Wochen gegenüber dem Robert Koch-Institut
erfolgen. Es ist ein vom Robert Koch-Institut erstelltes Formblatt
oder ein geeigneter Datenträger zu verwenden. Für die nichtnamentliche Meldung nach § 6 Abs. 3 gilt § 9 Abs. 3 Satz 1 bis 3
entsprechend.
(5) Die Angaben nach Absatz 2 und die Angaben zum Monat
der Geburt dürfen vom Robert Koch-Institut lediglich zu der
Prüfung verarbeitet und genutzt werden, ob verschiedene Meldungen sich auf dieselbe Person beziehen. Sie sind zu löschen,
435
F. A u s z u g a u s d e m I n f e k t i o n s s c h u t z g e s e t z ( I f SG )
sobald nicht mehr zu erwarten ist, dass die damit bewirkte
Einschränkung der Prüfungen nach Satz 1 eine nicht unerhebliche Verfälschung der aus den Meldungen zu gewinnenden
epidemiologischen Beurteilung bewirkt, jedoch spätestens nach
zehn Jahren.
§ 23 Nosokomiale Infektionen, Resistenzen
(1) Leiter von Krankenhäusern und von Einrichtungen für ambulantes Operieren sind verpflichtet, die vom Robert Koch-Institut
nach § 4 Abs. 2 Nr. 2 Buchstabe b festgelegten nosokomialen
Infektionen und das Auftreten von Krankheitserregern mit
speziellen Resistenzen und Multiresistenzen fortlaufend in einer
gesonderten Niederschrift aufzuzeichnen und zu bewerten. Die
Aufzeichnungen nach Satz 1 sind zehn Jahre aufzubewahren.
Dem zuständigen Gesundheitsamt ist auf Verlangen Einsicht in
die Aufzeichnungen zu gewähren.
(2) Beim Robert Koch-Institut wird eine Kommission für Krankenhaushygiene und Infektionsprävention eingerichtet. Die Kommission gibt sich eine Geschäftsordnung, die der Zustimmung
des Bundesministeriums für Gesundheit bedarf. Die Kommission
erstellt Empfehlungen zur Prävention nosokomialer Infektionen
sowie zu betrieblich-organisatorischen und baulich-funktionellen
Maßnahmen der Hygiene in Krankenhäusern und anderen
medizinischen Einrichtungen. Die Empfehlungen der Kommission werden von dem Robert Koch-Institut veröffentlicht. Die
Mitglieder der Kommission werden vom Bundesministerium
für Gesundheit im Benehmen mit den obersten Landesgesundheitsbehörden berufen. Vertreter des Bundesministeriums für
Gesundheit, der obersten Landesgesundheitsbehörden und des
Robert Koch-Institutes nehmen mit beratender Stimme an den
Sitzungen teil.
436
§ 42 Tätigkeits- und Beschäftigungsverbote
(1) Personen, die
1. an Typhus abdominalis, Paratyphus, Cholera, Shigellenruhr,
Salmonellose, einer anderen infektiösen Gastroenteritis oder
Virushepatitis A oder E erkrankt oder dessen verdächtig sind,
2. an infizierten Wunden oder an Hautkrankheiten erkrankt
sind, bei denen die Möglichkeit besteht, dass deren Krankheitserreger über Lebensmittel übertragen werden können,
3. die Krankheitserreger Shigellen, Salmonellen, enterohämorrhagische Escherichia coli oder Choleravibrionen ausscheiden
dürfen nicht tätig sein oder beschäftigt werden
a) beim Herstellen, Behandeln oder Inverkehrbringen der
in Absatz 2 genannten Lebensmittel, wenn sie dabei mit
diesen in Berührung kommen, oder
b) in Küchen von Gaststätten und sonstigen Einrichtungen
mit oder zur Gemeinschaftsverpflegung.
Satz 1 gilt entsprechend für Personen, die mit Bedarfsgegenständen, die für die dort genannten Tätigkeiten verwendet werden,
so in Berührung kommen, dass eine Übertragung von Krankheitserregern auf die Lebensmittel im Sinne des Absatzes 2 zu
befürchten ist. Die Sätze 1 und 2 gelten nicht für den privaten
hauswirtschaftlichen Bereich.
(2) Lebensmittel im Sinne des Absatzes 1 sind
1. Fleisch, Geflügelfleisch und Erzeugnisse daraus
2. Milch und Erzeugnisse auf Milchbasis
3. Fische, Krebse oder Weichtiere und Erzeugnisse daraus
4. Eiprodukte
5. Säuglings- und Kleinkindernahrung
6. Speiseeis und Speiseeishalberzeugnisse
F. A u s z u g a u s d e m I n f e k t io n s s c h u t z g e s e t z ( I f S G )
7. Backwaren mit nicht durchgebackener oder durcherhitzter
Füllung oder Auflage
8. Feinkost-, Rohkost- und Kartoffelsalate, Marinaden, Mayonnaisen, andere emulgierte Soßen, Nahrungshefen.
(3) Personen, die in amtlicher Eigenschaft, auch im Rahmen ihrer
Ausbildung, mit den in Absatz 2 bezeichneten Lebensmitteln
oder mit Bedarfsgegenständen im Sinne des Absatzes 1 Satz
2 in Berührung kommen, dürfen ihre Tätigkeit nicht ausüben,
wenn sie an einer der in Absatz 1 Nr. 1 genannten Krankheiten
erkrankt oder dessen verdächtig sind, an einer der in Absatz 1
Nr. 2 genannten Krankheiten erkrankt sind oder die in Absatz 1
Nr. 3 genannten Krankheitserreger ausscheiden.
(5) Das Bundesministerium für Gesundheit wird ermächtigt,
durch Rechtsverordnung mit Zustimmung des Bundesrates den
Kreis der in Absatz 1 Nr. 1 und 2 genannten Krankheiten, der in
Absatz 1 Nr. 3 genannten Krankheitserreger und der in Absatz
2 genannten Lebensmittel einzuschränken, wenn epidemiologische Erkenntnisse dies zulassen, oder zu erweitern, wenn dies
zum Schutz der menschlichen Gesundheit vor einer Gefährdung
durch Krankheitserreger erforderlich ist. In dringenden Fällen
kann zum Schutz der Bevölkerung die Rechtsverordnung ohne
Zustimmung des Bundesrates erlassen werden. Eine auf der
Grundlage des Satzes 2 erlassene Verordnung tritt ein Jahr nach
ihrem Inkrafttreten außer Kraft; ihre Geltungsdauer kann mit
Zustimmung des Bundesrates verlängert werden.
(4) Das Gesundheitsamt kann Ausnahmen von den Verboten
nach dieser Vorschrift zulassen, wenn Maßnahmen durchgeführt
werden, mit denen eine Übertragung der aufgeführten Erkrankungen und Krankheitserreger verhütet werden kann.
437
G . Vi r u s i n f e k t io n e n
1. Infektlokalisationen viraler Erkrankungen
Respirations
trakt
Adenoviren
Coxsackie-Vieren
Cytomegalie-Virus
ECHO-Viren
Epstein-Barr-Virus
FSME-Virus
Herpes-simplex-Virus
HAV / HBV / HCV
HIV
Influenza-Viren
LCM-Virus
Masern-Virus
Mumps-Virus
Norwalk-(Noro-) Virus
Parainfluenza-Viren
Parvovirus B19
Polio-Viren
Röteln-Virus
RS-Virus
Rota-Viren
Varizella-Zoster-Virus






Leber
Herz
ZNS

















Gelenke










GITrakt




()

Haut




Auge




Lymphknoten/
Hämatolog.
System
Pankreas




































439
G. Virusinfektionen
2. Serologische Diagnostik viraler Erkrankungen
Folgende Indikationen bestehen für die Durchführung einer viro
logisch-serologischen Untersuchung:
Nachweis einer akuten, primären oder erst kürzlich erworbenen Infektion
Nachweis einer prä- oder perinatal erworbenen Infektion
Nachweis einer reaktivierten Infektion
Nachweis einer Immunität gegenüber Erregern viraler
Erkrankungen
Eine Beurteilung von Antikörperbestimmungen bei akuten
viralen Erkrankungen ist in der Regel nur unter Berücksichtigung
des Titerverlaufs im Abstand von 7–14 Tagen möglich. Gleiches
gilt analog für den Anstieg der Antikörperkonzentration
(z.B. IU/ml oder mIU/ml).
Zu Beginn einer Erkrankung viraler Genese finden sich häufig
nicht oder nur gering erhöhte Titer. Gegenüber vielen viralen
Erregern ist der Nachweis spezifischer IgM-Antikörper möglich
(z.B. Epstein-Barr-Virus, Röteln-Virus, Varizella-Zoster-Virus etc.).
Das Vorhandensein dieser Antikörperklasse weist auf das Vorlie
gen einer akuten Infektion hin.
Bei einer Einzelblutprobe kann bei einer akuten Virusinfektion
nur der Verdacht auf das Vorliegen der Infektion ausgesprochen
werden. Die Einzelprobe reicht jedoch für die Feststellung
aus, ob ein Zustand nach Infektion bzw. Impfung (Immunität)
vorliegt. Ein signifikanter Titeranstieg (2 oder mehr Verdünnungsstufen) im Intervall weist auf eine frische bzw. reaktivierte
Virusinfektion hin.
440
Beispiel:
1. Untersuchung:
2. Untersuchung:
Ak-Titer = 1:8
Ak-Titer = 1:64
Bewertung:Titeranstieg um mehr als 2 Verdünnungsstufen
spricht für frische bzw. reaktivierte Infektion.
Gelegentlich weisen sehr hohe IgG–Ak-Titer auch auf eine reaktivierte Infektion hin (Beispiel: HSV-Ak > 1:1000), ohne dass ein
IgM-Ak-Nachweis möglich ist.
Eine akute kann von einer früher durchgemachten Infektion
häufig auch durch den Nachweis niedrig-avider (im Gegensatz
zu hoch-aviden) Antikörpern unterschieden werden.
Kreuzreaktionen zwischen Antikörpern gegen „verwandte“
Viren sind möglich (z.B. HSV 1-, HSV 2–Antikörper), werden allerdings mit zunehmend verbesserter Testspezifität seltener.
H . D i a g n o s t ik i n G r a v idi t ä t u n d P e r i n ata l p e r iod e
1. Mutterschaftsvorsorge: (gemäß Mutterschafts-Richtlinien, 2009)
a.Obligate Untersuchungen während der Schwangerschaft:
Untersuchung
Lues-Suchreaktion
Röteln-HAH
Suchtest irreguläre Ak.
Blutgruppe, Rh-Faktor D
HIV-Ak.-Test
HBs-Ag.-Nachweis
Chlamydia trachomatis
Material
Serum
Serum
Serum/Vollblut
Vollblut
Serum
Serum
(Erststrahl-) Urin
Zeitpunkt
4. – 8. SSW
4. – 8. SSW
4. – 8. SSW u. 24.-27. SSW
4. – 8. SSW
4. – 8. SSW
nach der 32. SSW
4. – 8. SSW
Bemerkung
TPHA
Immunität: Titer ≥ 1:32
Einwilligung erforderlich
nahe am Geburtstermin
Direktnachweis (NAT)
b. Weitere infektiologische Untersuchungen bei begründetem Verdacht:
Erkrankung
Material
Parameter
Bemerkung
Cytomegalie (CMV)
Serum
CMV IgG/IgM-Ak.
* Immunstatus sinnvoll vor oder
früh in der Schwagerschaft (IGEL)
Herpes-simplex (HSV)
Serum
HSV I/HSV II IgG/IgM-Ak.
LCM-Virus
Serum
LCM IgG/IgM-Ak.
Listeriose
Serum/Stuhl
Ak.-/Direktnachweis
Masern
Serum
Masern IgG/IgM-Ak.
Mumps
Serum
Mumps IgG/IgM-Ak.
Ringelröteln (Parvovirus B19)
Serum
Parvo-B19 IgG/IgM-Ak.
* s.o.
Streptokokken-Infektion
Vaginalabstrich
B-Streptokokken-Nachweis
Toxoplasmose
Serum
Toxo IgG/IgM/IgA-Ak.
zum Ende der Schwangerschaft
(35. –37. SSW)
* s.o.
Varizellen (VZV)
Serum
VZV IgG/IgM-Ak.-Nachweis
* s.o.
Lympho-Chorio-Meningitis
441
H . D i a g n o s t ik i n G r a v idi t ä t u n d P e r i n ata l p e r iod e
2. Laboruntersuchungen bei Verdacht auf Risikoschwangerschaft:
Risiko
Parameter/Diagnostik
Bemerkung
Ektope Schwangerschaft (EUG)
β-hCG, ggf. Progesteron im Verlauf
(mind. 2 Proben im Abstand von
2 – 7 Tagen),
vaginaler Ultraschall
Normal ist in den ersten 7 SSW eine Verdoppelung der
ß-hCG-Werte ca. alle 2 – 2,5 Tage (Positiver Vorhersagewert eines normalen Anstiegs zum Ausschluß einer
EUG 94.7 %).
Bei der EUG werden in ca. 80% der Fälle entsprechend der
SSW zu niedrige ß-HCG-Werte gemessen und es erfolgt
ein zu langsamer und geringer Anstieg von ß-hCG. Auch
Progesteron für eine Frühgravidität zu niedrig (< 10
ng/ml).
Abortus imminens,
V.a. Frühabort
β-hCG, Progesteron (ggf. Östradiol) im
Verlauf, AFP
vaginaler Ultraschall
Bei V.a. Frühabort sind die ß-hCG-Werte meist zu niedrig,
steigen zu langsam an oder fallen bereits ab. Progesteron
ebenfalls zu niedrig (< 10 ng/ml), ggf. auch Östradiol
niedrig. Niedrige AFP-Werte nach der 10. SSW sprechen
für eine irreversible Störung der Gravidität.
Beim Abortus imminens ist AFP erhöht bei erniedrigten
ß-hCG-Werten.
Offener Neuralrohrdefekt
(Spina bifida, Anencephalie)
AFP in der 16.-21. SSW
Erhöhung des AFP-Wertes bzw. des MoM (Multiple of
mediane) auf einen Wert > 2,5 (-fach) im mütterlichen
Serum (ggf. Ultraschalluntersuchung und AFP-Kontrolle,
bei 2. Mal erhöhtem AFP-Wert u. unauffälliger Sonographie ggf. Amniozentese u. Bestimmung von AFP und
Acetylcholinesterase im Fruchtwasser).
V.a. Plazentainsuffizienz bzw.
fetale Gefährdung
Fetometrie, Dopplersonographie,
Bestimmung der Fuchtwassermenge,
CTG, Stresstest, evt. Plazentagrading
Die Bestimmung von Östriol und humanem plazentaren
Laktogen (hPL) zur Einschätzung der fetalen Gefährdung
ist heute nicht mehr zu empfehlen (Messwerte korrelieren
eher mit der Plazentamasse).
Kein hPL, Östriol!
442
H . D i a g n o s t ik i n G r a v idi t ä t u n d P e r i n ata l p e r iod e
Risiko
Schwangerschaftsgestose
PPraeklampsie
PHELLP-Syndrom
Parameter/Diagnostik
Ges.-Eiweiß im 24h-Urin, Kreatinin,
Harnsäure, GOT, GPT, Blutbild,
Gerinnung
HELLP zusätzl.: LDH, Bilirubin, ggf.
D-Dimere, Fibrinogen, Haptoglobin
Fetometrie, Dopplersonographie
Diabetes mellitus Typ I,
Gestationsdiabetes
Glucose, HbA1C
(oraler) Glucose-Toleranztest (OGTT)
mit 50 g bzw. 75 g Glucose,
Urinstatus
Fetometrie (ab 30. SSW 10-tägig)
Pränatales Screening auf
Down-Syndrom
P 1. Down-Frühscreening
P
2. Triple-Diagnostik
Laufende 11. – 14. SSW bzw. voll.
10. – 13. bzw. 11+0 – 13+6 SSW:
Freies Beta-HCG, PAPP-A im Serum
sonographische Messung der NT
(nuchale Transluzenz)
Laufende 15. – 21. SSW bzw. voll.
14. – 20. bzw. 14+0 – 19+6 SSW:
AFP, ß-hCG, freies Östriol im Serum
Bemerkung
Symptome: Hypertonie (RR > 140/90 mmHg), Ödeme,
Proteinurie
PPraeklampsie: Proteinurie > 0.3 g/24h, Harnsäure > 6.0
mg/dl, GOT u. GPT ↑, Thrombozytopenie (> 75 x109 /l)
P
HELLP-Syndrom zusätzl: Hämoglobin ↓, Thrombozytopenie (< 100 x 109 /l, schwere Fälle < 50 x 109 /l) Hkt > 38%
Hämolysezeichen: GPT u. LDH ↑ (2-3fach), Bilirubin ↑,
Thrombinzeit ↓, D-Dimere ↑, Fibrinogen <150mg / dl,
Haptoglobin ↓
Zur Diagnostik neben Nüchternglucose erst 50 g, ggf. dann
75 g OGTT (siehe Kapitel M „Funktionstests“).
Bei Diabetes mellitus Typ I oder Gestationsdiabetes optimale Stoffwechseleinstellung wichtig: HbA1C-Kontrolle
alle 4 Wochen (Assoziation zwischen Fehlbildungsrate und
HbA1C-Konzentration im 1. Trimester), der HbA1C-Wert sollte
im Referenzbereich für Gesunde liegen,
Urinstatus alle 2 Wochen
Unter Einbeziehung von mütterlichem Alter, SSL, BIP,
Gewicht, ethnischer Herkunft, insulinpflichtigem Diabetes,
Ein- oder Mehrlingsgravidität erfolgt eine integrierte statistische Auswertung und die Berechnung der Wahrscheinlichkeit für ein Kind mit Down-Syndrom zusammen mit den
jeweiligen gemessenen Parametern bzw. zusammen mit der
NT beim Down-Frühscreening.
P 1. Down-Frühscreening: Detektionsrate für das DownSyndrom 86 % bei einer falsch-positiv-Rate von 5 %
P 2. Triple-Diagnostik: Detektionsrate für das Down-Syndrom 69 % bei einer falsch-positiv-Rate von 5 %.
Es werden z.T. auch andere Markerkombinationen wie AFP
+ hCG + freies Östriol + Inhibin A eingesetzt.
443
H . D i a g n o s t i k i n G r a v i d i t ä t u n d P e r i n ata l p e r i o d e
Risiko
Parameter/Diagnostik
Bemerkung
Chromosomenanomalien
Chromosomenanalyse mittels
PChorionzottenbiopsie (9. – 13. SSW)
P Amnionzellkultur (ab 14. SSW)
nach Amniozentese
Bei 3 % der Neugeborenen treten Fehlbildungen und
Krankheiten aufgrund genetischer Faktoren auf. Am
häufigsten werden Untersuchungen zur Diagnostik
von Chromosomenanomalien wie z.B. Down-Syndrom,
Klinefelter-Syndrom, YY-Syndrom 47, Triple X 47 und dem
Turner-Syndrom durchgeführt.
Stoffwechselerkrankungen
Biochemische Analytik, PolymeraseKettenreaktion aus Amnionzellkultur
Erkennung angeborener Stoffwechselstörungen wie z.B.
G-6-PDH-Mangel, Ahornsiruperkrankung, Hypophosphatämie, M. Gaucher, M. Fabry etc.
3. Diagnostik prä- und perinataler Infektionen beim Neugeborenem:
Infektion
Röteln-Virus
444
Erregernachweis
Virusnachweis mittels PCR
aus Rachenabstrich, Urin u.
Liquor innerhalb 6 – 8 Monaten
postnatal.
Serologische Diagnostik
Nachweis von IgM-Ak. im ersten
Lebenshalbjahr; Persistenz von IgGAk. im HAH oder EIA ab
6. Lebensmonat über das
1. Lebensjahr hinaus.
Hinweise
Zum Ausschluss einer pränatalen
Röteln-Infektion reicht ein einmaliger
negativer IgM-Ak.-Nachweis zum
Geburtszeitpunkt nicht aus, ggfs. Verlaufsbeobachtung der IgG-Ak.
H . D i a g n o s t ik i n G r a v idi t ä t u n d P e r i n ata l p e r iod e
Infektion
Cytomegalie-Virus
Erregernachweis
Virusnachweis mittels CMVDNA oder Early Antigen im
Urin (bzw. Speichel) in den
ersten 2 Lebenswochen.
Differenzierung zwischen präoder früh- postnataler Infektion
(Muttermilch) mit CMV-DNANachweis aus Guthrie-Karte
(Einverständnis der Eltern) Early
Antigen-Nachweis auch aus Rachenabstrich, respiratorischen
Sekreten, CMV- PCR aus EDTABlut, Serum, Liquor.
Herpes-simplex-Virus HSV1 und 2 –DNA-Nachweis
mittels PCR im Augenabstrich,
Rachenabstrich, Bläscheninhalt,
EDTA-Blut, Urin,bei neurologischen Symptomen auch aus
Liquor. Virusanzucht ebenfalls
möglich.
Varizella
Virusnachweis mittels PCR aus
Zoster-Virus
Bläscheninhalt u. Liquor oder
Anzucht in Zellkultur aus Bläscheninhalt und Rachenabstrich
bzw. –sekret.
Serologische Diagnostik
Hinweise
Je nach Infektionszeitpunkt
erhöhte oder ansteigende IgMund IgG-Ak. im EIA.
Häufigste prä- und perinatale
Virusinfektion.
Untersucht werden sollten Kinder von
Müttern mit CMV-Primärinfektion
in der Schwangerschaft und alle
Kinder mit auffälligem Neugeborenen
- Hörscreening
Nachweis von (ansteigenden) IgGund IgM-Ak. mittels EIA erst in der
4. Lebenswoche, auch aus Liquor
(gemäß Reiber-Schema).
Hauptsächlich peripartale Infektion im
Geburtskanal.
Nachweis von IgG- und IgM-Ak. in
den ersten 4 – 6 Tagen nach Exanthembeginn; nach intrauteriner
Infektion häufig IgM-Ak. negativ,
Diagnose meist nur durch (über
den 6. – 7. Lebensmonat hinaus)
persistierende IgG-Ak. möglich.
Hohes Risiko einer schweren neonatalen
Varizelleninfektion bei Ausbruch des
mütterlichen Varizellenexanthems
5 Tage vor bis 2 Tage nach der
Entbindung.
445
H . D i a g n o s t i k i n G r a v i d i t ä t u n d P e r i n ata l p e r i o d e
Infektion
Erregernachweis
Serologische Diagnostik
Hinweise
Hepatitis B-Virus
Evtl. Virusnachweis mittels PCR.
Hauptsächlich peri- oder frühpostnatale
Infektion, daher bei Kindern HBs-Ag.positiver Mütter grundsätzlich aktivpassive Simultanimpfung innerhalb 6 h
nach Geburt.
Humanes Immundefizienz-Virus
(HIV 1/2)
Parvovirus B 19
(Ringelröteln)
Qualitativer und quantitativer
Virus-RNA-Nachweis mittels
PCR; p24-Antigen-Nachweis.
Qualitativer und quantitativer
Parvovirus B19 DNA-Nachweis
mittels PCR in Fruchtwasser,
Gewebsbiopsie und EDTA-Blut
(fetal oder postnatal).
Direkter Erregernachweis
mittels PCR aus Fruchtwasser,
Liquor und EDTA-Blut (fetal
oder postnatal).
Antikörper- und AntigenNachweise:
(HBs-Ag., HBe-Ag., Anti-HBc, AntiHBc-IgM, Anti-HBs). Nicht geimpfte
peri- oder früh postnatal infizierte
Neugeborene werden innerhalb
von 3 Monaten HBs-Ag. positiv
Ak.-Verlaufskontrolle mittels EIA u.
Immunoblot ab dem
18. Lebensmonat.
IgM-Ak. in der Regel nur im Fetalblut nachweisbar, bei Neugeborenen Nachweis von persistierenden
IgG-Ak. über 6 Monate post partum
bis zum vollendeten 2. Lebensjahr.
IgM-Ak.-Persistenz nach
Erstinfektion ca. 18-24 Monate,
mittels IgG-Aviditätsbestimmung
bessere Eingrenzung des Infektionszeitpunktes bei Schwangeren
möglich. IgM-Ak. im Fetalblut nur
in 50 %, postnatal in ca. 70 % der
Fälle nachweisbar; vergleichendes
IgG/IgM-Profil (Blot) aus mütterl.
und Neugeborenen-Serum,
Nachweis von persistierenden
IgG-Ak. über den 6. Lebensmonat
hinaus.
Ak.-Nachweis auch im Liquor
möglich( gemäß Reiber-Schema)
Toxoplasma gondii
446
Die Transmissionsrate Mutter-Kind
beträgt ca. 25 – 50 %, am häufigsten ist
die perinatale Infektion.
Meist Fetopathie. Risiko eines Hydrops
fetalis mit intrauterinem Fruchttod
ca. 4 – 9 %
Frühzeichen: erhöhtes AFP im mütterlichen Serum.
Ausschließlich Fetopathie,
Embryopathien kommen nicht vor,
(hohes Risiko in der 24. – 30. SSW), ggfs.
antibiotische Therapie
Kongenital infizierte, bei Geburt
asymptomatische Kinder weisen vor
allem okuläre Spätschäden auf.
H . D i a g n o s t ik i n G r a v idi t ä t u n d P e r i n ata l p e r iod e
Infektion
Erregernachweis
Treponema pallidum Direkter Erregernachweis mit(Syphilis, Lues)
tels PCR aus Liquor, Abstrichen,
Biopsien und EDTA-Blut (fetal
oder postnatal).
Listeria
monocytogenes
Direkter Erregernachweis
mittels kultureller Anzucht
aus Blut, Abstrichen, Urin,
Amnionflüssigkeit, Abortmaterial, Lochien, bei Neugeborenen auch aus Ohrabstrich und Liquor. Auch PCR
aus Liquor, Stuhl und EDTA-Blut
möglich.
Kultureller Nachweis aus nicht
sterilen Abstrichmaterialien
(Rektum, Vagina) nicht
sinnvoll, da 5% aller Gesunden
Träger sind !
Serologische Diagnostik
Hinweise
Bei positivem TPPA Test (Ausschluss
untersuchung) und Bestätigung
durch FTA-ABS.-IgG zusätzlicher
Nachweis kindlicher IgM-Ak. postnatal mittels FTA-ABS.-IgM u./o. Immunoblot als Hinweis auf Lues connata.
Lipoid-Ak.(VDRL, Cardiolipin-KBR)
sprechen zusätzlich für aktive,
behandlungsbedürftige Infektion.
Serologische Diagnostik gegenüber
dem direkten Erregernachweis
nachrangig, kann aber bei kulturnegativen ZNS-Infektionen
positiv sein. Titer über 1:200 oder
mehr als zweifacher Titeranstieg in
der Widal-Reaktion gegen
O- und H-Antigene sind
diagnostisch bedeutsam. Häufige
Kreuzreaktionen mit Entero- und
Staphylokokken
Intrauterine, transplazentare Infektion
selten vor dem 4. Gestationsmonat.
Serologischer Ausschluss einer Lues connata bei allen Kindern von Müttern mit
Syphilisanamnese notwendig, da häufig
uncharakteristische Symptomatik.
Therapie der Schwangeren bzw. des
Neugeborenen mit Penicillin als Mittel
der Wahl.
Meist transplazentare Infektion
während mütterlicher Bakteriämie im
Rahmen einer Erstinfektion. 70-80 % der
betroffenen Kinder sind Frühgeborene
im 3. Trimenon, 25 % Totgeburten.
Therapie der Schwangeren mit Ampicillin, Neugeborene mit Ampicillin u.
Gentamicin
447
I . T u mo r m a r k e r
1. Tumormarker, Indikation, weitere erfasste maligne Erkrankungen, Erhöhung bei benignen Erkrankungen und physiologischen
Zuständen
Tumormarker
Indikation
5-Hydroxyindolessigsäure
(5-HIES)
Karzinoid
AFP
Hepatozelluläres Karzinom,
(Alpha-1-Fetoprotein) Keimzelltumoren (Hoden,
Ovar, extragonadal)
Alkal. Plazenta-Phosphatase (PLAP)
Beta-2-Mikroglobulin
Keimzelltumoren, insbesondere Seminome (72%)
Lymphoproliferative
Erkrankungen wie Multiples
Myelom, Non-Hodgkin-Lymphom, Hodgkin-Lymphom,
chron. lymphatische Leukämie, AML, CML
weitere maligne
Erkrankung
Magenkarzinom,
kolorektales Karzinom,
Gallengangs-, Pankreasu. Bronchialkarzinom
(oft zusammen mit
Lebermetastasen)
Hoden- Ovarialtumoren
benigne Erkrankung/physiol. Zustände,
Bemerkungen
P Chron. Intermittierende inkomplette Ileuszu
stände, peptische Ulcera
P bestimmte Nahrungsmittel, Medikamente
(s. alphabet. Teil)
P Akute u. chron. Hepatitis, alkoholbedingte Hepatitis, Leberzirrhose
PRauchen,
Schwangerschaft
P Niereninsuffizienz,
bei Dialysepatienten, tubulointerstitieller Nierenschaden (z.B. bei Schwermetallvergiftung), Erkankungen mit erhöhtem
Zellumsatz wie Infektionen (z.B. AIDS, Hepatitis),
Autoimmunerkrankungen, Leberzirrhose
449
I. Tumormarker
Tumormarker
Indikation
Beta-HCG (ß-hCG)
Trophoblastentumoren (Blasenmole, Chorionkarzinom)
Keimzelltumoren (Hoden,
Ovar), extragonadale
Keimzelltumoren
CA 125
Ovarialkarzinom, Zweitmarker beim Pankreaskarzinom
(nach CA 19 – 9)
CA 15-3
Mammakarzinom (zusammen mit CEA), Zweitmarker
beim Ovarialkarzinom
(nach CA 125)
450
weitere maligne
benigne Erkrankung/physiol. Zustände,
Erkrankung
Bemerkungen
PNiereninsuffizienz
Kolon-, Bronchial-,
PGravidität, Postmenopause (< 10 mIE/ml),
(epitheliales) Ovarial-,
Mamma-, Pankreas-, geleHypogonadismus
gentlich Dünndarm- und
Nierenkarzinom, Hepatom
Endometrium-, Bronchial-,
Leberzell-, Gallengangs-,
Magenkarzinom,
kolorektales Karzinom,
bei Lebermetastasen,
Zervix-, Collum- und
Mammakarzinom
Endometrium-, Corpus-,
Bronchial-, Magen-, Pankreas- und Leberkarzinom
P(akute)
Adnexitis, Endometriose, Peritonitis,
Pankreatitis, Cholelithiasis, Cholezystitis, akute u.
chronisch-aktive Hepatitis, Leberzirrhose, Ikterus,
Autoimmunerkrankungen, Herz- u. Niereninsuffizienz, benigne Adnextumoren, Meigs-Syndrom,
Leiomyom, nach Kochenmarks-Transplantation
PMenstruation, Gravidität
PDialysepflichtige Niereninsuffizienz, HIV-Infektion,
chron.-entzündliche Lebererkrankungen, Bronchial-, Pankreas-, Rheumaerkrankungen, Tuberkulose, Mammaerkrankungen (z.B. Myomastopathie,
Fibroadenom), benigne Thoraxerkrankungen
PGravidität, Stillperiode
I . T u mo r m a r k e r
Tumormarker
Indikation
CA 19-9
Pankreaskarzinom, hepatobiliäres Karzinom (Leber-,
Gallengangskarzinom),
Magenkarzinom, Zweitmarker beim kolorektalen
Karzinom (nach CEA) und
beim Ovarialkarzinom (nach
CA 125)
CA 50
Pankreas-, Kolon-, Rektum-,
Magen- und Endometrium
karzinom, Therapie- und
Verlaufskontrolle
CA 549
Mammakarzinom, (zusammen mit CA 15–3 und CEA
CA 72-4
weitere maligne
Erkrankung
Bronchial-, Mammaund Corpuskarzinom,
Lebermetastasen
Ovarial-, Endometrium-, Bronchial- und
Prostatakarzinom
Magenkarzinom als ErstGallengangs-, Ösophamarker (zusammen mit CEA, gus-, Pankreas-, Kolon-,
CA19-9), Zweitmarker beim Mamma-, Endometriummuzinösen Ovarialkarzinom u. Zervixkarzinom
(zusammen mit CA 125)
benigne Erkrankung/physiol. Zustände,
Bemerkungen
PChole(docho)lithiasis, Cholezystits, Cholangitis,
obstr. Ikterus, toxische u. chron. aktive Hepatitis,
Leberzirrhose, Leberzellnekrose, Mukoviszidose,
aktive oder chronisch-aktive Pankreatitis,
Milz-, Leber-, Pankreas u. bronchogene Zysten,
multizystisches Mesotheliom des Peritoneums,
Lungenfibrose, Divertikulitis, benigne Hydro- u.
Pyonephrose
PMenstruation, Gravidität
PPankreatitis, Leberzirrhose, Colitis ulcerosa
PCA 50 ist ein mit dem CA 19-9 verwandter Tumormarker, welcher im Gegensatz zu CA 19–9 auch
bei Lewis-a/b-negativen Patienten exprimiert
wird und in diesen Fällen bestimmt werden
sollte. Eine gleichzeitige Bestimmung von CA 50
und CA 19-9 ist nicht sinnvoll.
PLeber-, Lungen-, Prostata- und
Ovarialerkrankungen
PLeberzirrhose,
Pankreatitis, Lungenerkrankungen, rheumatische Erkrankungen, Ovarialerkrankungen, Ovarialzysten, gastrointestinale
Erkrankungen
451
I. Tumormarker
Tumormarker
Calcitonin (CT)
CEA (Carcinoembryonales-Antigen)
Chromogranin A
(CgA)
CYFRA 21-1
452
Indikation
weitere maligne
benigne Erkrankung/physiol. Zustände,
Erkrankung
Bemerkungen
Medulläres SchilddrüNeuroendokrine Tumoren, PNiereninsuffizienz, Hashimoto-Thyreoiditis, Hypergastrinämie, primären
senkarzinom, Familienz.B. Karzinoide, InsuliHyperparathyreoidismus
screening bei MEN Typ 2,
nome, VIPome, kleinzelPGravidität, unter oralen Kontrazeptiva
Phäochromozytom
lige Bronchialkarzinome
Pentzündliche Lebererkrankungen, alkoholische
Kolorektales Karzinom,
Magen-, Ösophagus-,
Leberzirrhose, Pankreatitis, entzündliche ErkranDifferentialdiagnose von
Pankreas-, Gallenwegs-,
kungen des Gastrointestinaltraktes, z.B. M.
Lebertumoren, medulläres
Bronchial-, Ovarial- und
Crohn, Colitis ulcerosa, Divertikulitis, entzündSchilddrüsenkarzinom,
Zervixkarzinom
liche Lungenerkrankungen
Zweitmarker beim MammaPRaucher haben im Mittel höhere CEA-Werte als
karzinom (zusammen mit
Nichtraucher (ca. 10 ng/ml bis 20 ng/ml)
CA 15–3)
Pbeim Phäochromozytom zusammen mit KatechoPhäochromozytom, Ganglio
lamine u. (Nor-) Metanephrine im Urin sowie
neurinom, Neuroblastom,
ggf. im Plasma, Vanillinmandelsäure,
neuroendokriner Tumor
Homovanillinsäure und ggf. mit NSE
mit/ohne HormonproduktiPbeim Karzinoid zusammen mit 5-HIES u.
on (z.B. (Bronchus-) KarziSerotonin und ggf. NSE
noid, Gastrinom etc.), kleinPErhöhung von CgA bei Niereninsuffizienz
zelliges Bronchialkarzinom
Bronchialkarzinom,
Zervix-, Ovarial-, Mamma-, PLungenerkrankungen, gynäkologische u. gastrointestinale Erkrankungen, Niereninsuffizienz
bevorzugt nicht-kleinPankreas-, Magen-,
zelliges BronchialkarziKolon-und Leberkarzinom PGravidität (39./40. SSW), iatrogen (z.B. bei OP,
nach Intubation, längerer Überdruckbeatmung),
nom, Adenokarzinom,
sowie Karzinome im
nach massiven Trauma (z.B. Prellungen,
Plattenepithelkarzinom,
HNO-Bereich
Lungenquetschung)
Harnblasenkarzinom
I . T u mo r m a r k e r
Tumormarker
Indikation
Tumoren des sympathoadrenergen Systems,
Neuroblastom,
Phäochromozytom
M2-PK (Pyruvatkinase Nierenzellkarzinom (a),
Typ Tumor M2)
Lungenkarzinom (b),
Pankreaskarzinom (c),
Seminom (d), gastrointestionalen Tumoren (e)
(immer zusammen mit den
primären/sekundären
Markern) zur
Verlaufskontrolle
- Screening auf gastrointestinale Tumoren im Stuhl
(vor allem kolorektales CA)
Neopterin
hämatologische Neoplasien
weitere maligne
Erkrankung
Homovanillinsäure
Lungen- und Prostatakarzinom, gynäkologische
und gastrointestinale
Tumoren
benigne Erkrankung/physiol. Zustände,
Bemerkungen
PStress, bestimmte Nahrungsmittel und Medikamente (siehe alphabet. Teil)
M2-PK u. prim./sek. Marker:
(a)M2-PK , CEA, TPA
(b)M2-PK, NSE, CYFRA 21-1, CEA (kleinzelliges)
M2-PK ,CYFRA 21-1, CEA (Adeno-CA)
M2-PK, CYFRA 21-1, SCC, CEA
(Plattenepithel-CA)
(c)M2-PK, Ca 19-9, CEA
(d)M2-PK, β-hCG
(e)M2-PK, CA 19-9, CEA
P Erhöhungen von M2-PK bei entzündlichen,
benignen Prozessen (z.B. M. Crohn etc.) sowie
bei Adenomen und Polypen
P Infektionen (vor allem HIV, TBC etc.), Autoimmun- und entzündliche Erkrankungen (z.B.
rheumatoide Arthritis, SLE, M. Crohn etc.),
bei Abstoßungsreaktion und Infektion nach
Organtransplantation
453
I. Tumormarker
Tumormarker
Neuronen-spezifische
Enolase, NSE
NMP22 (Nuclear
Matrix Protein)
Progastrin-RP
(Pro-GRP)
Parathormon-related
Peptide (PTHrP) u.
mid-C-regional
454
Indikation
weitere maligne
benigne Erkrankung/physiol. Zustände,
Erkrankung
Bemerkungen
Medulläres Schilddrüsenkar- PLungenerkrankungen, zerebrale Erkrankungen
Kleinzelliges Bronchialkarzinom, Karzinome aller Sta(z.B. Meningitis, Hirnischämie,- infarkt, Epilepzinom, neuroendokrinen
dien 22% (nicht-pulmonale)
sien, Jakob-Creutzfeldt-Erkrankung, SchizoTumoren und APUDOMen
Lymphome, Leukämien, bei
phrenie etc.), Urämie, bei Gravidität mit fetalen
(z.B. Gastrinom, VIPom,
primären Gehirntumoren,
Neuralrohrdefekten
Insulinom, Karzinoid).
Hirnmetastasen, malignen
Neuroblastom
Melanom, Phäochrmozytom im Liquor, Nierenkarzinom, Mammakarzinom,
epitheliale u. selten nicht
epitheliale Tumoren
PFalsch erhöht Werte für NMP22 bei Patienten
Harnblasenkarzinom
mit Dauerkatheter, bei Nierensteinen und
Harnwegsinfektionen (Bitte Spezialgefäß für
Spontanurinprobe anfordern!)
PHohe Werte bei eingeschränkter Nierenfunktion,
kleinzellige
V.a. kleinzelliges
neuroendokrine
Bronchialkarzinom, DD:
höhere Werte bei gastrointestinalen (z.B. LeberzirKarzinome (z.B. Prostata,
unklarer Lungenrundrhose, Hepatitis etc.), urologischen Erkrankungen u.
herde, V.a. tumorindizierte
Ösophagus), medulläres
bei infektiösen Prozessen, geringe Erhöhungen d.
Polyneuropathie, Nachsorge Schildrüsenkarzinom,
Werte bei Erkrankungen der Brustdrüse (z.B. Mastivereinzelt hohe Werte
u. Therapiekontrolle
tis, Mastopathie etc.), der Lunge (z.B. TB, Sarkoidobeim nicht-kleinzelligen
kleinzelliger Bronchialse, COPD etc.) u. bei Autoimmunerkrankungen (oh.
karzinome
Bronchialkarzinom
Nierenbeteiligung)
PHyperparathyreoidismus
Tumorhypercalciämie bei soli- Plattenepithel-, Harnden Tumoren, insbesondere
blasen- und ÖsophagusMamma-, Nieren- und kleinkarzinom, bei malignen
zelligem Bronchialkarzinom
hämatologischen Erkran- Prognostischer Faktor für die gungen (eher untergeordEntwicklung von Knochenme- nete Rolle)
tastasen (z.B. Mamma- und
Bronchialkarzinom)
I . T u mo r m a r k e r
Tumormarker
Indikation
PSA, freies PSA
(Prostataspezifisches
Antigen)
Prostatakarzinom
S 100 Protein (S 100)
Melanom
hohe Tumorspezifität,
keine nennenswerten
Erhöhungen bei anderen
malignen Tumoren,
Marker der Neuro
destruktion im ZNS
SCC (Squamous cell
carcinoma antigen)
Plattenepithelkarzinom
von Zervix, Lunge, Ösophagus, Analkanal- und
Kopf-Nacken-Karzinom
Mamma-, Endometrium-,
Corpus-, Ovar-, Vulva- u.
Vaginalkarzinom, bei
Hautkarzinom, bei
Analkarzinom
Serotonin
Karzinoid (ggf. bei V.a.
Foregut- und MidgutKarzinoide Serotonin im
plättchenreichen Plasma)
Malignome mit hoher Proliferationsrate, Lymphome,
Myelome, Leukämien (z.B.
ALL, CML)
Karzinoid
Thymidinkinase
weitere maligne
Erkrankung
benigne Erkrankung/physiol. Zustände,
Bemerkungen
PProstatahyperplasie, akute Prostatitis akute
Leberfunktionsstörungen
PErhöhung von PSA nach Manipulationen an der
Prostata (z.B. DRU), nach Prostatabiopsie und
akutem Harnverhalt.
PPSA steigt mit zunehmenden Alter an
PErhöhungen bis 2.0 µg/l bei schweren bakteriellen Infekten (z.B. Intensivpatient), deutliche
Erhöhungen bei Herzinfarkt, geringe Erhöhungen bei Leberzirrhose und Niereninsuffizienz.
PErhöhung auch bei Neurodestruktion und
Neurodegeneration, z.B. cerebrale Ischämie oder
Blutung, Schädel-Hirn-Trauma, vereinzelt bei der
Alzheimer- u. der Jakob-Creutzfeld-Erkrankung,
bei multipler Sklerose, psychiatrischen Erkrankungen, beim Guillain-Barre-Syndrom
PLeberzirrhose, Pankreatitis, Niereninsuffizienz- u.
versagen, chron. Lungenerkrankungen (z.B.
chron.-obstruktive Bronchitis, Tuberkulose), gynäkologischen Erkrankungen (z.B. Uterus myomatosus), HNO-Erkrankungen, Hauterkrankungen (z.B.
Psoriasis, Ekzemen, Pemphigus)
PChron. intermittierende inkomplette Ileuszustände, peptische Ulcera
Pbestimmte Nahrungsmittel, Medikamente (siehe
alphabet. Teil)
PVirusinfektionen (z.B. CMV, EBV etc).
PVitamin-B12- u. Folsäuremangel
PAnstieg unter Zidovudin-Therapie bei
HIV-Infektion
455
I. Tumormarker
Tumormarker
Indikation
Thyreoglobulin (TGB)
Verlaufskontrolle des
differenzierten Schilddrüsenkarzinoms (follikulär,
papillär) nach totaler
Schilddrüsenablatio (OP,
Radiojodtherapie).
Proliferationsmarker bei
verschiedenen malignen
Tumoren, insbesondere bei
diagnostizierten Harnblasen-, Mamma-, Ovarial- und
Lungenkarzinom sowie
bei gastrointestinalen
Karzinomen
Phäochromozytom,
Neuroblastom
TPA (Tissue-Polypeptid-Antigen)
Vanillinmandelsäure
456
weitere maligne
Erkrankung
benigne Erkrankung/physiol. Zustände, Bemerkungen
Pvariable
TGB-Erhöhungen bei Struma (nodosa), autonomen Adenom und M. Basedow
PDestruierende Thyreoiditis (TGB erhöht,
Hyperthyreose).
PThyreotoxicosis factitia (TGB erniedrigt!).
Pankreas-, Leberzell-,
Hoden-, Prostata- und
Schilddrüsenkarzinom
sowie bei HNO-Tumoren
Pdekompensierte
Leberzirrhose (sehr hohe Werte!),
entzündliche Erkrankungen von Leber, Lunge, Gastro
intestinal- und Urogenitaltrakt, Niereninsuffizienz,
Dialysepatienten, Diabetes mellitus.
PTPA ist im 3. Trimenon einer Gravidität sowie
ca. 4 – 6 Wochen postoperativ ebenfalls erhöht
PTPA sollte immer in Kombination mit den prim./sek.
Tumormarkern bestimmt werden
PStress, bestimmte Nahrungsmittel und Medikamente
(siehe alphabet. Teil)
I . T u mo r m a r k e r
2. Tumorerkrankungen und geeignete Tumormarkerkombinationen bzw. typische Metabolite und weitere Marker
Tumor
Analkarzinom
Bronchialkarzinom
Pkleinzellig
Pnicht-kleinzellig:
– Adeno, großzellig
– Plattenepithel-CA
– Unbekannt
Gallengangskarzinom
Harnblasenkarzinom
Hirntumor, Hirnmetastasen
Hodentumoren
Hypophysentumor
PAdenome (davon ca.
23% endokrin-inaktive
Tumoren)
Phormon-sezernierende
Karzinome
Karzinoid
geeignete Tumormarker, Metabolite
SCC, CEA
weitere Marker/Kommentar
ProGRP, NSE, CYFRA 21-1, CEA
TPA, M2-PK, ACTH, Calcitonin, PTHrP, CgA
CYFRA 21-1, CEA
CYFRA 21-1, SCC, CEA
CYFRA 21-1, NSE, CEA, ProGRP
CA 19-9, CEA
CYFRA 21-1, NMP22, TPA
CEA (Liquor u. Serum)
AFP, ß-HCG, PLAP
TPA, M2-PK, CA 125
M2-PK
Prolaktin (50%), HGH (ca. 22%), ACTH (ca. 5%),
TSH (0.4 – 1%), LH u. FSH (ca. 0.3%)
meist ACTH, HGH, Prolaktin
5-HIES, Serotonin im Urin, CgA im Serum
(bei 80% der Karzinoide)
CA 125, AFP
CEA, PTHrP
NSE, S 100 (Liquor u. Serum)
AFP u. ß-hCG immer parallel bestimmen!
(siehe auch unter Keimzelltumoren)
Ggf. Bestimmung der Zielhormone IGF-I,
Cortisol, fT3, fT4, Östradiol, Testosteron
und Durchführung von Stimulationstesten
(siehe Kapitel M „Funktionstests“)
NSE im Serum ist bei 39% der gastrointestinalen Karzinoide erhöht, NSE im Serum
(> 12.5 µg/l/) bei 34% der APUDOMen
457
I. Tumormarker
Tumor
Keimzelltumoren
PSeminome (ca 50%)
PNichtseminome
weitere Marker/Kommentar
PLAP, M2-PK, NSE
NSE insbesondere beim metastasierenden
Seminom (68-73%); ß-hCG (nur ca.
10-22%),
(ca. 50%)
– Embryonales Karzinom
(40%)
–P
olyembryom (30%)
–D
ottersacktumoren (5%)
– Trophoplastische Tumoren (Chorion-CA, tropho
blast. Plazenta-TU)
– Malignes Teratom
– Mischformen
Knochentumor (Sarkom,
Metastasen)
Kolon-Rektumkarzinom
Leberzellkarzinom
Phepatozelluläres
Karzinom
Pcholangiozelluläres-/
Adenokarzinom
PLebermetastasen
458
geeignete Tumormarker, Metabolite
ß-hCG, AFP
AFP
ß-hCG, AFP
ß-hCG, AFP
ß-hCG, AFP
ß-hCG, AFP
ß-hCG, AFP
Knochenspezifische alk. Phosphatase bzw. Ostase, Osteocalcin im Serum
(Desoxy-)Pyridinoline im Urin
CEA, CA 19-9
Empfehlung immer parallele Bestimmung
von ß-hCG und AFP!
CEA, TPA, PTHrP (prognostischer Faktor
für Knochenmetastasen beim Mamma- u.
Bronchialkarzinom)
TPA, M2-PK im Stuhl, ggf. CA 50 (bei
Lewis-a/b-negativen Pat.), evt. CA 72-4, CA
125, AFP
AFP, CEA
CA 125, ggf. Erythropoetin
CA 19-9, CEA
CA 15-3
CEA u. Tumormarker 1. Wahl des Primärtumors
I . T u mo r m a r k e r
Tumor
Lymphoproliferative
Erkrankungen
PAML, CML, CLL
geeignete Tumormarker, Metabolite
weitere Marker/Kommentar
ß2-Mikroglobulin, Thymidinkinase, Neopterin
Immunphänotypisierung
PHogkin-
ß2-Mikroglobulin, Thymidinkinase, Neopterin
Immunphänotypisierung
PMultiples
Myelom/
Plasmozytom
Magenkarzinom
Paraproteine im Serum u. Urin, freie Leichtketten im
Serum, ß2-Mikroglobulin, Thymidinkinase
CA 72-4, CA 19-9, CEA
Malignome
Kopf-Hals-Bereich
Mammakarzinom
SCC, CEA
Malignes Melanom
Nebennierenrindentumor
PNNR-Karzinom
S 100
Cortisol, DHEAS, Aldosteron
zusätzlich Vorstufen 17-OH-Progesteron, Androstendion,
Desoxycorticosteron
ggf. Renin
ggf. Renin, freies Cortisol im Urin, Östradiol, Testosteron (bei entsprechender Klinik)
PAndrogen/Östrogen
Östradiol, Testosteron
ggf. Cortisol (z.T. Kosekretion)
u.
Non-Hodgkin-Lymphome
produzierender NNR-Tumor
Nebenschilddrüsenkarzinom
CA 15-3, CEA, TPA
ggf. CA 50 (bei Lewis-a/b-negativen Pat.),
M2-PK, evt. AFP, CA 125, CA 15-3
Bei HNO-Tumoren ggf. CYFRA 21.1
CA 549 (kein Vorteil gegenüber CA 15-3),
ggf. CA 125, HER-2/neu-Protin, PTHrP
PTH
459
I. Tumormarker
Tumor
Neuroblastom
Neuroendokrine Tumoren
APUDome
PKarzinoide
PGastrinom
PInsulinom
PGlukagonom
PVIPom
Nierenkarzinom
Ösophaguskarzinom
Ovarialkarzinom
Pepithelial
Pmuzinös
Pankreaskarzinom
Phäochromozytom
Prostatakarzinom
Schilddrüsenkarzinom
Pmedullär (C-Zell-)
Ppapillär,
follikulär
Uteruskarzinom
PAdeno-CA (Endometrium)
PZervix –CA
(Plattenepithel)
PChorion-CA/Blasenmole
460
geeignete Tumormarker, Metabolite
weitere Marker/Kommentar
Vanillinmandelsäure, Homovanillinsäure, Dopamin, Noradrenalin im Urin, (Nor-)Metanephrin im Plasma,
NSE u.CgA im Serum
NSE u. 5-HIES haben eine bessere Spezifität
und CgA eine höhere Sensitiviät u. geringere Spezifität
5-HIES, Serotonin im Urin, CgA im Serum
NSE im Serum
Gastrin, NSE, CgA
Insulin, C-Peptid, NSE
Glukagon
VIP, NSE
CEA, M2-PK, TPA
NSE, PTHrP, Erythropoetin
CEA, SCC
CA 72-4 (Adenokarzinom)
CA 125, CA 72-4, CA 15-3
CA 72-4, CA 125, CA 19-9
CA 19-9, CEA, M2-PK
Katecholamine u. (Nor-) Metanephrine im Urin sowie ggf.
im Plasma Vanillinmandelsäure Homovanillinsäure, CgA
Gesamt-PSA, freies PSA, PSA-Ratio
CA 19-9, CEA, TPA
CA 15-3, CEA, TPA
CA 125, CA 50 (bei Lewis-a/b-negativen Pat.)
NSE
Calcitonin, CEA
NSE, ggf. Pentagastrin-Test (siehe Kapitel
M „Funktionstests“)
CEA, TPA, ggf. Thyreoglobulin nach TSHStimulation (siehe alphabet. Teil)
Thyreoglobulin (nur nach vollständiger SD-Ablatio)
CA 125, CEA
SCC, CEA
ß-hCG
PAP
TPA, CA 19-9
J . A u t o a n t ikö r p e r
1. Indikationen für Autoantikörperbestimmungen
(modifiziert nach L. Thomas, Labor und Diagnose, 7. Aufl. 2008)
Krankheits
gruppe
Diagnose
Nachweishäufigkeit
> 50 % (> 90%)
Nachweishäufigkeit
30-50 %
Nachweishäufigkeit
10-30 %
Kollagenosen
Systemischer Lupus erythematodes
ANA, dsDNS, SS-A/Ro,
Nukleosomen
ANA, Histone, ANCA,
MPO-ANCA
ANA, SS-A/Ro
ANA, SS-A/Ro
Sm, Histon-Ak
Ribosomen
Medikamenten-induzierter LE
Neonataler Lupus erythematodes
Subakuter kutaner Lupus
erythematodes
Sharp-Syndrom, MCTD,
Mischkollagenose
Systemische Sklerose/Sklerodermie
CREST-Syndrom
Polymyositis
Sklerodermie/PolymyositisÜberlappungssyndrom
Dermatomyositis
Dermatomyositis/Polymyositis
Rheumatoide Arthritis (adult)
Primäres Sjögren-Syndrom
Systemische
Vaskulitis
Wegenersche Granulomatose
Mikroskopische Polyarteriitis
ANA, U1-snRNP
ANA
Histone
SS-B/La
SS-B/La, Cardiolipin,
Lupusantikoagulanz
SS-A/Ro
Diffuse Form: Scl-70
(=Topoisomerase-I)
CENP (Zentromer), ANA
ANA
Jo-1
ANA
ANA
ANA
RF, CCP
ANA, SS-A/Ro, SS-B/La,
RF
c-ANCA/Proteinase 3
p-ANCA/Myeloperoxidase
Jo-1, Mi-2
Jo-1
ANA, RA33
c-ANCA/Proteinase 3
SS-B/La
RNA-Polymerase I, II, III
CENP A-F (=Zentromer)
M2
PM-Scl-100, Mi-2
PM-Scl-100, Ku
Mi-2
Histon
Ku
ANA
ANA
461
J. Autoantikörper
Krankheits
gruppe
Diagnose
Nachweishäufigkeit
> 50 % (> 90%)
Muskel
erkrankungen
Myasthenia gravis
AchRA
Lambert-Eaton-Myasthenie
Calciumkanal P/Q,
J-Conotoxin MVIIC
Inflammatorisch idiopathische
Myopathie
Gastrointes
tinale
Erkrankungen
Chron.-atrophische Gastritis
Zoeliakie
Leber
erkrankungen
Morbus Crohn
Colitis ulcerosa
Autoimmune Hepatitis
Primär biliäre Zirrhose
Primär sklerosierende Cholangitis
462
Gewebs-Transglutaminase, Gliadin, EMA
ASCA
p-ANCA
Typ I: SMA, ASGPR,
ANCA, Actin
Typ I: LKM1
AMA (M2)
p-ANCA
Nachweishäufigkeit
30-50 %
Nachweishäufigkeit
10-30 %
Calciumkanal N
Ryanodin-Rezeptor,
Titin, Rezeptor-Tyrosin
kinase, Kaliumkanal,
Skelettmuskel
Calciumkanal L
Zytoplasmatische
Aminoacyl-tRNASynthetasen: Jo-1, PL-7,
PL-12, EJ, OJ
PCA/(Parietalzellen)
H+/K+-ATPase
Intrinsic Faktor
Mi-2, SRP
ANA
SLA/LP
LC1 (Lebercytosol-Ag1)
ANA
SMA, ANA
J . A u t o a n t ikö r p e r
Krankheits
gruppe
Diagnose
Nachweishäufigkeit
> 50 % (> 90%)
Nachweishäufigkeit
30-50 %
Endokrino
pathie
Diabetes mellitus Typ I
(Neuerkrankung)
Hypothyreote Autoimmunthyreoiditis
ICA, GADA
IAA, IA-2
TPO (Thyreoidea-Peroxidase-) Ak (=MAK)
Thyreoglobulin-Ak
(TAK)
TPO (Thyreoidea-Peroxidase-) Ak (=MAK)
Struma/ Hypothyreose
Schilddrüsenhyperplasie (M.Basedow)
Neuropathien
TRAK
(TSH-Rezeptor-Ak)
TPO (Thyreoidea-Peroxidase-) Ak (=MAK)
Guillain-Barré-Syndrom
Miller-Fisher-Syndrom
Akute multifokale motorische Neuropathie (MMN)
Stiff-Person-Syndrom
Nachweishäufigkeit
10-30 %
Thyreoglobulin-Ak
(=TAK)
GM1
GD1a, GalNAc-GD1a,
Asialo-GM1
GQ1b
GM1
GADA
Amphiphysin 1 und 2,
IA-2, SMA, ANA
463
J. Autoantikörper
2. Differentialdiagnose systemischer entzündlich-rheumatischer Erkrankungen
Basisparameter
P Blutsenkung (BSG)
P c-reaktives Protein (CRP)
P Ak gegen cyclisches citrulliniertes Peptid (CCP)
P Blutstatus
P Harnsäure
P Antistreptolysintiter (ASL)
RF
(IgM)
CCP-Ak
HLA-Typ
Rheumatoide
Arthritis
+++
+++
Reaktive Arthritis
Morbus Reiter
Morbus Bechterew
Systemischer Lupus
erythematodes (SLE)
–
–
–
(+)
Medikamenten
induzierter Lupus
erythematodes
(+)
DRB1*0101
DRB1*0401
DRB1*0404
B 27
B 27
B 27
B8
DR2(DRB1*1501)
-DR3
DRB1*1501
DR3
DQ2
–
DR4
464
(+)
Erweiterte Diagnostik
P Eiweißelektrophorese
P Urinstatus/Rheumafaktor (RF)
P Punktatanalyse
P Komplementfaktoren (CH50 etc.)
P weitere Akute Phase Proteine (Ferritin, Haptoglobin,
Fibrinogen)
P Eisen, Kupfer
P Alkalische Phosphatase (AP), Calcium, Phosphat
P Antistaphylolysin (AST), Antistreptokokken-DNase B
Immun
komplexe
Kryoglobuline
AntiStrepto
kokkenAk
Infektions
serologie
ANA
(Antinukleäre Ak)
Weitere spez.
Antikörper:
(+)
–
–
+
Histon, RA33
–
–
–
+
(+)
–
–
–
–
–
+
+/–
–
falsch pos.
Luesreaktion
–
–
–
–
+++
–
–
–
dsDNS, Sm,
Histon, SS-A/Ro,
Ribosomen,
Nukleosomen
+++
Histon,
MPO-ANCA
J . A u t o a n t ikö r p e r
RF
(IgM)
Systemische Sklerose
Sklerodermie/
(+)
CREST-Syndrom
MCTD/Sharp-Syndrom
+
Dermatomyositis
Polymositis
Dermatomyositis
Polymyositis
Rheumatisches Fieber
Sjögren-Syndrom
Idiopathische entzündliche Myositis
–
+++
–
CCP-Ak
HLA-Typ
B8
DR3
DR5
DR1 DR5
DR4 DR11
DR8
DR3
DR4
Immun
komplexe
Kryoglobuline
(+)
AntiStrepto
kokkenAk
Infektions
serologie
ANA
(Antinukleäre Ak)
–
–
+++
+++
(+)
–
–
+++
DR3
++
++
DR3
++
–
DR2/3
B8 (Frauen)
–
(+)
(+)
++
–
–
++
–
–
–
–
Weitere spez.
Antikörper:
Scl-70/Topo-I
(pulmonale
Form), CENP A-F
(akrale Form,
ACA), RNAP-I–III
CENP, M2
SnRNP/U1-RNP
SS-A/Ro, SS-B/La
Mi-2, Jo-1
PM-Scl-100
Mi-2, Jo-1
Jo-1, Mi-2
–
SS-A/Ro, SSB/La, Ku
Amino
acyl-tRNASynthetase,
Mi-2, SRP
weitere Autoantikörper mit geringerer Nachweishäufigkeit siehe Kapitel K1.
465
J. Autoantikörper
3. Charakteristische Autoantikörper bei Erkrankungen bestimmter Organsysteme
Organsystem
Herzmuskel
Lunge
Haut
Erkrankung
Neonataler Herzblock
Postmyokardinfakt-/Kardiotomie(Dressler-) Syndrom
Häufig Antikörper gegen
SS-A/Ro, SS-B/La
Lungenhämorrhagien
Pulmorenales Syndrom
Goodpasture Syndrom
Interstitielle Pneumonie
Alveolitis
Lungenfibrose
Alveolen-Basalmembran
Glomerulus-Basalmembran
ANCA
Histidyl-tRNA-Synthetase (Jo-1)
Aminoacyl-tRNA-Synthetasen
Topoisomerase I (Scl-70)
Angioneurotisches Ödem II
Bullöse Dermatosen
Medikamenteninduziert
Paraneoplastisch
C1-Esterase-Inhibitor
Epidermale Basalmembran
BPAG1 und 2 (Kollagen XII)
Desmoplakin I/II
Descollin I/II
Laminin 5
Epidermale Basalmembran
BPAG1 und 2
Transglutaminase-(IgA)
Gliadin-(IgA)
Bullöses Pemphigoid und
Herpes gestationis
Dermatitis herpetiformis Duhring
Epidermolysis bullosa
Pemphigus foliaceus
Pemphigus herpetiformis
466
Seltener Antikörper gegen
Herzmuskel
Epidermale Basalmembran
Kollagen VII
Stachelzelldesmosomen
Desmoglein I
Desmoplakin I/II
Desmoglein 1 und 3
ANA
Zentromer
Retikulin
J . A u t o a n t ikö r p e r
Organsystem
Haut
(Fortsetzung)
Erkrankung
Pemphigus, paraneoplastisch
Pemphigus vulgaris
Schleimhautpemphigoid
Urticaria - Vasculitis,
hypokomplementämische
Häufig Antikörper gegen
Desmoplakin I/II, Desmocollin I/II, BPAG
1, Desmoglein 1 und 3
Stachelzelldesmosomen
Desmoglein 3
Epidermale Bassalmembran
BPAG 1 und 2
C1q
Schilddrüse
Inplausible T3-/T4-Werte
Nebennieren
Morbus Addison
Steroid-21-Hydroxylase
Nebennierenrinde
Steroid-17-Hydroxylase
Side-chain-cleavage-enzyme
Niere und
Harnwege
Rapid progressive Glomerulonephritis
Glomerulus-Basalmembran
ANCA
ANA
Glomerulus Basalmembran
C3-Nephritis-Faktor
Goodpasture Syndrom
Glomerulonephritis,
membranoproliferative
Nephritis
Seltener Antikörper gegen
T3/T4
H+/K+-ATPase
Steroidhormon-Zellen
Thyreoglobulin
Tubulus-Basalmembran
467
K . S c h i l dd r ü s e n di a g n o s t ik
Diagnose
fT3
fT4
TSH basal
Euthyreote Struma
n
n
n
Subklinische Hypothyreose
n
n
Hypothyreose
⇓/n
⇓
Hypothalamisch-hypophysäre Hypothyreose
Autoimmunthyreoiditis
(Hashimoto)
Subakute Thyreoiditis
(lymphozytär)
⇓/n
⇓
(⇑)
4-10 µIU/ml
⇑
> 10 (20)
µIU/ml
⇓
n/⇓
n/⇓
⇑
n/⇑
n/⇑
(⇓)
⇑/(n)
⇑/n
⇓/(⇓)
< 0.1 – 0.5
µIU/ml
Non-thyroidal-illness (NTI),
Low-T3-Syndrom
Subklinische Hyperthyreose
⇓
n/⇓
n
n
Hyperthyreose
(M. Basedow)
Autonomie (uni-/noduläre
Struma)
⇑
⇑
⇑
n
Subakute Thyreoiditis
TSH n.
TRH
n
Klinische
Schilddrüsenfunktion
n
⇑
n/⇓
⇑
⇓
⇓
⇓
⇑
n/⇓
n/⇓
(⇓)
n/⇑
milde Hyperthyreose für
wenige Monate
⇑/n
1-6 Monate Hyperthyreose, vorübergehend (2-8
Mo.) Hypothyreose, dann
Euthyreose
n(?)
(⇓)
< 0.4 µIU/ml
⇓
< 0.1 µIU/ml
(⇓)
< 0.4 µIU/ml
⇓
n/⇑
⇓
⇑
⇓
n/(⇑)
Autoantikörperdiagnostik
MAK(TPO-Ak) 10-15%
MAK (TPO-Ak.) 50-80% , TAK
10-20%
MAK (TPO-Ak.) 80%, TAK
10-20%
MAK (TPO-Ak.) > 90%,
TAK 60-80%,TRAK 15-33%
MAK (TPO-Ak) u. TAK ca.
60% (eher niedrig)
TRAK 85-95%, TAK 12-30%
MAK (TPO-Ak) 45-80%
469
K. Schilddrüsendiagnostik
Diagnose
fT3
fT4
TSH basal
⇑
⇑
(⇑)/⇑
⇑
⇑
n/⇑
1 – 20 µIU/ml
⇓/n/⇑
n/⇓
n/⇓
⇑/n(⇓)
Jod-Mangel
n/(⇑)
⇓
Jodhaltige Kontrastmittel
Gravidität: 1. Trimenon
2. u. 3. Trimenon
Hyperemesis gravidarum
(⇓)
⇑
n/(⇓)
⇑
n/(⇑)
n/⇓
⇑/(n)
⇑
⇑
n bzw.⇑
versus
adult
⇓/(⇓)
< 0.1 – 0.5
µIU/ml
n/(⇑) /⇑
6 – 150
µIU/ml
n
n/(⇓)
n/(⇑)
(⇓)
0.2 – 0.5
µIU/ml
(⇓)
0.1 – 0.4
µIU/ml
n/⇑
<15- 20
µIU/ml (< 30
Tage)
(⇓)
0.1 – 0.5
µIU/ml
(⇑)/⇑
5 – 30 µIU/ml
TSH-produzierendes
Adenom
Schilddrüsenhormonresistenz (hypophysär, peripher,
generalisiert)
Thyreotoxikose
Blasenmole
Neugeborene
⇑
Glukokortikoide
(hochdosiert)
⇓
n bzw.
⇑
versus
adult
n
NNR-Insuffizienz
n/⇓
n
470
TSH n.
TRH
(⇓)
⇑
Klinische
Schilddrüsenfunktion
⇑
n/⇓
n
n/(⇑)
n/(⇓)
n/(⇑)
⇑
Innerhalb der ersten 24
h abrupter TSH–Anstieg
durch Kältereiz, dann
Abfall.
n
n
Autoantikörperdiagnostik
K . S c h i l dd r ü s e n di a g n o s t ik
Diagnose
Akute Psychose, Depression
Psychiatrische Erkrankung
fT3
fT4
TSH basal
n/
(⇑ od. ⇓)
n/(⇑)
n/⇓
n
(⇓)/n/(⇑)
0.4 – 10
µIU/ml
(⇓)/n/(⇑)
0.4 – 10
µIU/ml
TSH n.
TRH
Klinische
Schilddrüsenfunktion
n
Autoantikörperdiagnostik
n
* Quelle: in Anlehnung an Williams Textbook of Endokrinology 10th Ed. 2002; L. Thomas, „Labor und Diagnose“, 7. Auflage, 2008
TRAK
MAK
TAK
-
-
-
Autoantikörper gegen TSH-Rezeptor
Autoantikörper gegen Thyroidea-Mikrosomen bzw. Antikörper gegen Thyroidea-Peroxidase (TPO-Ak.)
Autoantikörper gegen Thyreoglobulin
471
L. Gerinnungsuntersuchungen
1. Differentialdiagnose der Blutgerinnungsstörungen
Quick
aPTT
TZ
N
Thrombozyten
N
(In-vitro)-Blutungszeit
N
N
N
N
N
N
N
Path.
N
N
N
Path.
Path. / N
N
N
N
Path.
Path.
Path.
Path.
N
N
N
Path. / N
N
N
Path. / N
N
Path.
N
N
N
N
Path.
Path.
N
N
N
Path.
Path.
Path.
N
N
Path.
Path.
Path.
Path.
Path.
Interpretation
VonWillebrand-Syndrom (vWS), FXIII-Mangel, milde angeborene
Koagulopathie, Plasmininhibitormangel, Thrombophilien, Antiphospholipidsyndrom, milde Thrombozytenfunktionsstörung
VonWillebrand-Syndrom; angeborene und erworbene Thrombozytenfunktionsstörung, (evtl. Faktor XIII-Mangel)
Bernard Soulier Syndrom, vWS Typ 2B,
HIT (Heparin-induzierte Thrombopenie)
Heparineffekt, evtl. auch durch LMWH und Hirudin
HIT, angeb. oder erworbenes vWS, Faktor XI–Mangel
F VIII- od. IX-Mangel (Hämophilie A od. B), Einige Konduktorinnen
von Hämoph. A oder B, F XI-, XII-Mangel, Präkallikrein-, HMWKMangel, vonWillebrandSyndrom, Heparinwirkung, Lupusantikoagulanz, andere erworbene Inhibitoren
Vitamin K –Mangel, Cumarintherapie,
Leberzellschaden, Normalbefund bei Neugeborenen,
isolierter F VII-Mangel bei Frauen mit Menorrhagie
Erworbene Verminderung des Prothrombinkomplexes (Faktor II, VII,
IX und X), isolierte angeborene Verminderung von F II,
V oder X, Vit. K-Mangel, Cumarintherapie, Leberzellschaden,
noch Normalbefund bei Neugeborenen
Heparinspiegel >1IE/ml Plasma, überlappende Heparin/ Cumarin
therapie, Dys- und Hypofibrinogenämie (<0.6 g/l), Hyperfibrinolyse,
Serum statt Plasma, Monoklonale Gammopathie (Thrombinin
hibitor), physiologisch bei Neugeborenen
Störung der Fibrinbildung u. Thrombozytenfunktion (z. B. disseminierte intravasale Koagulation)
473
L. Gerinnungsuntersuchungen
2. Thrombophilie
Die Disposition zu venösen thromboembolischen Erkrankungen ist bei den genetischen Defekten unterschiedlich stark ausgeprägt und
erhöht sich bei Kombinationsdefekten:
Risikofaktor
Heterozygote APC –Resistenz
(Faktor V Leiden)
Heterozygote Prothrombin-Mutation
Heterozygoter
Protein C-Defekt
Heterozygoter
Protein S-Defekt
Heterozygoter
Antithrombin-Defekt
Heterozygote Faktor V Leiden und
Prothrombinmutation (Compound
–Defekt)
Homozygote APC-Resistenz
(Faktor V Leiden)
Homozygote Prothrombin-Mutation
Kombination heterozygoter Protein
C- oder S-.Mangel und heterozygoter
Faktor V Leiden
Homozygoter
Protein C-Mangel
Homozygoter
Protein S-Mangel
Homozygoter
Antithrombin-Mangel
474
Prävalenz
Häufigkeit bei
Thrombosepatienten
(Erstereignis)
3 – 7 %
20 %
Relatives Risiko
(erhöhte Thrombose
neigung verglichen mit
Nichtbetroffenen)
Ca. 7-fach
2 %
0.2 %
6 %
3 %
Ca. 3-fach
Ca. 7-fach
unbekannt
1 – 2 %
Ca. 6-fach
0.02
– 0.17 %
-
1 %
Ca. 10-fach
-
Ca. 10 – 50 fach
0.02
– 0.1 %
0.01 %
-
2 %
Ca. 80-fach
Unbekannt
-
Ca. 50-fach
> 50 fach
-
-
-
-
Neonatale Purpura
fulminans,
Cerebrale Venenthrombose
-
-
Bestimmte Formen sind
nicht lebensfähig
Thrombose-Risiko
– Kategorie
Gering – mäßig!
Mäßig!
Hoch!
Extrem erhöht!
L. Gerinnungsuntersuchungen
Die funktionellen Gerinnungsteste unterliegen vielen in-vivo- und in-vitro- Einflüssen, so dass der Zeitpunkt der Blutabnahme und die
Probenvorbereitung für die Diagnostik entscheidend sind:
Risikofaktor
APC-Resistenz
Labortest
Funktioneller
Gerinnungstest/
Faktor V Leiden
Molekulargene
tischer Nachweis
Prothrombin-Mutation Molekulargene
tischer Nachweis
Protein C - Mangel
Funktioneller oder
chromogener Test
und Immunoassay
Protein S - Mangel
Funktioneller oder
chromogener Test
und Immunoassay
AntithrombinFunktioneller oder
Mangel
chromogener Test
und Immunoassay
Persist. Faktor
Funktioneller
VIII-Erhöhung
Gerinnungstest
Homocystein
Immunoassay
Diagnosezeitpunkt
Auch bei frischer Thrombose!
Einmaliger Nachweis ausreichend!
Auch bei frischer Thrombose!
Einmaliger Nachweis ausreichend!
Auch bei frischer Thrombose!
Einmaliger Nachweis ausreichend!
Leberfunktions
1 Monat nach Absetzen der
störung
Antikoagulation
1–2 maliger Nachweis
Schwangerschaft, 1 Monat nach Absetzen der
Pille
Antikoagulation
APC-Resistenz
2–3 maliger Nachweis
Heparinisierung, 1 Monat nach Absetzen der
Leberfunktions
Antikoagulation
störung
2–3 maliger Nachweis
Schwangerschaft, 1 Monat nach Absetzen der Antikoagulation 2–3 maliger Nachweis
Pille
Hämolyse!
Auch bei frischer Thrombose
Lupusantikoagulanz
Antikoagulation
Cardiolipin - Ak
ß2-Glykoprotein I-Ak
D-Dimer
Funktionelle
Gerinnungstests
Immunoassay
Immunoassay
LatexImmunoassay
Test-Interferenz
Bei frischer Thrombose, nach
Gefäßverschluß zweimaliger
Nachweis im Abstand von (6)–12
Wochen; Kontrolle 1 Monat nach
Absetzen der Antikoagulation
akute EntzünBei V.a.frische Thrombose sowie
dungen, chronische ggf. im Verlauf zur Einschätzung
Erkankungen,
des Rezidivrisikos
postoperativ
Probenmaterial
Tiefgefrorenes Citratplasma oder
Frisches Citratblut
EDTA-Blut
EDTA-Blut
Tiefgefrorenes Citratplasma oder
Frisches Citratblut
Tiefgefrorenes Citratplasma oder
Frisches Citratblut
Tiefgefrorenes Citratplasma oder
Frisches Citratblut
Tiefgefrorenes Citratplasma oder
Frisches Citratblut
EDTA-Plasma (Zentrifugation
innerhalb 1h nach Blutentnahme)
Frisches Citratblut oder tiefgefrorenes Citratplasma (doppelt
zentrifugiert) und Serum
Siehe Antiphospholipidsyndrom
Tiefgefrorenes Citratplasma oder
Frisches Citratblut
475
L. Gerinnungsuntersuchungen
3. Antiphospholipidsyndrom
Das Antiphospholipidsyndrom ist vor allem assoziiert mit
venösen Phlebothrombosen, habituellen Aborten und
Thromboembolien cerebraler arterieller Gefäße mit unterschiedlicher neurologischer Symptomatik, insbesondere transitorisch
ischämischen Attacken und cerebralem Insult.
Hauptmerkmal sind die erhöht nachweisbaren CardiolipinAntikörper, die erstmals bei Patienten mit Systemischem Lupus
erythematodes festgestellt wurden und zu falsch positiver
Luesserologie sowie paradoxerweise in vitro verlängerter PTT
führen. Diese Autoantikörper sind gegen negativ geladene Phospholipide gerichtet, insbesondere gegen ß2-Glykoprotein. Sie
sind auch bei anderen autoimmunologischen Erkrankungen wie
rheumatoider Arthritis, idiopathischer thrombozytopenischer
Purpura, hämolytischen Anämien aber auch Infektionskrankheiten wie Scharlach, Mumps und Hepatitis etc. nachweisbar und
können fluktuieren. Verschiedene Studienergebnisse belegen
auch eine Korrelation zwischen Prothrombin-Antikörpern und
rezidivierenden Aborten.
Die Diagnose wird nach den revidierten Sapporo-Kriterien
(Journal of Thrombosis and Haemostasis 4: 295 – 306, Sydney
2005) definiert durch die klinische Symptomatik einer
Venösen (Phlebo-)Thrombose oder arterieller oder „small
vessel“-Thromboembolie
(bestätigt durch angiologische, dopplersonographische oder
histologische Verfahren) mit vorwiegend cerebraler Symptomatik (mehrere TIA-Episoden, cerebralen Insult, unklaren
fokalen neurologischen Störungen)
P
Schwangerschaftserkrankungen
wie habituellen Aborten:
≥ 1 Abort in oder nach der 10. SSW, ≥ 1 Frühgeburt in
oder vor der 34.SSW oder ≥ 3 konsekutive Aborte vor der
10. SSW.
und pathologischen Laborbefunden wie
P
zweimalig
P
P
erhöhte Anticardiolipin-Antikörper (IgG oder
IgM) im Abstand von mindestens (6)–12 Wochen oder
zweimalig erhöhte ß2-Glykoprotein I-Ak (IgG oder IgM)
im Abstand von mindestens (6)–12 Wochen
zweimalig positiver Lupusantikoagulanztest im Abstand
von mindestens (6)–12 Wochen
Lupusantikoagulanz-Diagnostik nach den „Guidelines of the
International Society on Thrombosis and Hemostasis“
(Thromb Haemost 1995; 74; 1185-90)
PVerlängerung eines phospholipidabhängigen Gerinnungstests (Durchführung von mindestens 2 Suchtesten)
PNachweis der Inhibitoraktivität im Patientenplasma
(keine Korrektur der verlängerten Gerinnungszeit im Plasmatauschversuch) Nachweis der Phospholipidabhängigkeit
(Bestätigungsteste mit erhöhtem Phospholipidzusatz zur
Korrektur der Gerinnungszeit) Ausschluß eines spezifischen
Faktorenmangels oder –inhibitors
P
oder
476
Benötigtes Probenmaterial: tiefgefrorenes Citratplasma (doppelt
zentrifugiert zur Plättchenreduktion < 10/nl) oder frisches
Citratblut und Serum (funktionelle Gerinnungstests und Immunoassay), Bestimmung vor allem bei frischem arteriellem oder
venösen Gefäßverschluß, Kontrolle nach ca. 6 Wochen.
L. Gerinnungsuntersuchungen
4. VonWillebrand–Stufendiagnostik
Suchtests
(In vitro-) Blutungszeit (PFA)
Basistests
vWF:Ag (vWF-Antigen)
APTT
VWF:RCo (Ristocetin Cofaktor)
Thrombozytenzahl
Faktor VIII-Aktivität
Spezialtests
RIPA (Ristocetin-induzierte
Plättchenaggregation)
vWF : VIIIB
(FVIII-Bindungsaktivität des vWF)
VWF - Multimere
VWF: CBA (Collagen-Bindungsaktivität)
Klassifikation des vonWillebrand-Syndroms
Typ1
Häufigkeit
Klinischer
Schweregrad
Konzentration
und Funktion des
vWF
VWF - Multimere
Typ 2A
47%
leicht
TypM
Typ 2N
51 %
variabel
Proportional ernie Funktion ausgeprägter
drigt auf
erniedrigt als Konzentra
20 – 50% des
tion des vWF-Ag
Normalbereiches
normal
Typ 2B
Erhöhte
Empfindlichkeit
bzgl. niedriger
Ristocetin-Konz.
Fehlen oder relative Verminderung der
großen und/oder mittelgroßen Multimere
Typ 3
< 1%
schwer
Gestörte
Gestörte
PlättchenFVIII-Binabhängige
dung
vWF-Funktion
normale Multimere
nicht nachweisbar
nicht nachweisbar
477
M . F u n k t io n s t e s t s
ACTH-Belastungstest (Kurztest)
Indikation:a) Verdacht auf Nebennierenrindeninsuffizienz, DD: primäre oder sekundäre Nebennierenrindeninsuffizienz
b) Verdacht auf nicht klassisches Adrenogenitales Syndrom (AGS) bzw. late-onset-AGS oder heterozygotes AGS
(meist 21-Hydroxylase-Mangel, selten 3-ß-Dehydrogenase- oder 11-ß-Hydroxylase-Mangel oder sehr selten andere
Steroidbiosynthesedefekte), DD: schwere Formen von Hirsutismus und Virilisierung
Parameter:a) Cortisol (ggf. Aldosteron) im Serum, bei DD: primäre/sekundäre Nebennierenrindeninsuffizienz ggf. ACTH im
EDTA-Plasma (am besten EDTA-Blut zentrifugieren, Plasma abheben und einfrieren, vorher Kühlboxen beim Labor
anfordern! Bitte Kunstoffröhrchen verwenden!)b) Cortisol, 17-Hydroxyprogesteron (ggf. Testosteron, DHEAS,
11-Desoxycorticosteron) im Serum.
Durchführung :Erste Blutentnahme nüchtern, dann Gabe von 250 µg ACTH (1 Amp. Synacthen) i.v. (Säuglinge bis zu 12 Monaten
erhalten 125 µg ACTH) und anschließende Blutentnahme 60 Minuten nach der Injektion. Bei Frauen am besten in der
frühen Follikelphase (3.-6. Zyklustag) morgens zw. 8.00 und 10.00 Uhr, Ovulationshemmer sind vorher abzusetzen.
Kontraindikation: Addison-Krise, Vorbehandlung mit ACTH oder Sensibilisierung gegen ACTH (z.B. bei BNS-Anfällen
unter ACTH-Therapie).
Nebenwirkungen: Hungergefühl.
Beurteilung:a) Bei einem Anstieg des Cortisols über 20 µg/dl (550 nmol/l) ist eine Nebennierenrindeninsuffizienz mit hin
reichender Sicherheit ausgeschlossen, wobei die maximal erreichte Plasmakonzentration und nicht der relative
Anstieg entscheidend ist. Bei ungenügendem Anstieg von Cortisol und niedrigen ACTH-Spiegeln liegt eine
sekundäre oder tertiäre Nebennierenrindeninsuffizienz bzw. eine Störung der Hypothalamus-HypophysenNNR-Achse vor und eine weitere Diagnostik (z.B. CRH-Test, Insulinhypoglykämie-Test, Metopiron-Test) sollte
durchgeführt werden. Bei einer primären Nebennierenrindeninsuffizienz ist Cortisol basal erniedrigt oder niedrignormal, ACTH basal erhöht und es erfolgt kein Anstieg von Cortisol nach ACTH-Gabe. Als zusätzliches diagnostisches
Kriterium kann Aldosteron untersucht werden, da im Falle einer primären Nebennierenrindeninsuffizienz auch
der Anstieg der Aldosteron-Konzentation ausbleibt (ggf. Bestimmung NNR-Auto-Antikörper). Hingegen sich ein
ausreichender Anstieg von Aldosteron um mind. 50 ng/l (133 pmol/l) bei der sekundären Nebennierenrinden
insuffizienz zeigt, da das Renin-Angiotensin-System erhalten ist.
b) 21-Hydroxylase-Mangel: Bei der klassischen Form des AGS ist 17-Hydroxyprogesteron basal meist > 10 µg/l ( z.T.
> 100 µg/l). Im Fall des nicht klassischen AGS bzw. beim late-onset-AGS sind die 17-Hydroxyprogesteronwerte basal
leicht bis deutlich erhöht sowie nach ACTH-Gabe > 10 µg/l (6 –12% der erwachsenen Frauen mit Hirsutismus). Bei
den heterozygoten Formen des AGS liegen die 17-Hydroxyprogesteronwerte basal meist im Normbereich und der
Anstieg des 17-Hydroxyprogesterons ist nach ACTH-Gabe > 2.6 µg/l (2.6 ng/ml) bzw. erfolgt um das 3-fache und
mehr.
479
M. Funktionstests
Der Quotient aus 17-Hydroxyprogesteron und 11- Desoxycorticosteron liegt bei den heterozygoten Formen im
Erwachsenenalter nach Stimulation mit ACTH > 12.
3-ß-Hydroxysteroid-Dehydrogenase-Mangel: Basale Erhöhung von 17-alpha-Hydroxypregnenolon und überschießender Anstieg des Wertes nach ACTH-Gabe sowie moderater Anstieg des 17-Hydroxyprogesteronwertes und
Anstieg von DHEAS, wobei die basalen DHEAS-Werte ebenfalls erhöht sind.
11-ß-Hydroxylase-Mangel: Erhöhung von 11-Desoxycorticosteron und 11-Desoxycortisol sowie nach ACTH-Gabe
Anstieg der Parameter.
Aldosteron-Suppressionstest (Kochsalzbelastungstest)
Indikation:DD: Hyperaldosteronismus, DD: Nachweis eines Aldosteron-produzierenden Nebennierenadenoms
Parameter:Aldosteron im Serum, Renin (EDTA-Blut ungekühlt!), Natrium, Kalium
Durchführung:Nach Bettruhe ab Mitternacht erste Blutentnahme nüchtern zwischen 7.00 und 9.00 Uhr, Gabe von 2000 ml 0.9%-ige
NaCL-Lösung per infusionem über 4 Stunden, danach zweite Blutentnahme. Kontrolle von Blutdruck u. Puls stündlich bei guter linksventrikulärer Funktion, bei unklarer linksventrikulärer Funktion halbstündliche Kontrollen.
Achtung: Vor dem Test Bestimmung von Natrium, Kalium, Kreatinin, kleines Blutbild, ggf. Echokardiographie zur
Einschätzung der linksventrikulären Funktion sowie Ausgleich einer evtl. vorhandenen Hypokaliämie.
Einhaltung einer Normalkost mit 100 – 150 mmol Natrium (3 – 4.5 g Kochsalz) pro die. Störende Medikamente
z.B. Betablocker, Diuretika und ACE-Hemmer sollten, falls medizinisch vertretbar, mindestens 1-2 Wochen vorher
abgesetzt werden. Spironolacton (u.a. kaliumsparende Diuretika) sowie Amilorid sollten bereits 6 Wochen vor dem
Test abgesetzt werden. Hingegen Alpha-Blocker, Calciumkanalblocker und Vasodilatoren zur Blutdrucksenkung
eingesetzt werden können. Störenden Einfluß haben auch Antiphlogistika (z.B. Aspirin, Ibuprofen, Indomethacin),
Aminoglykosid-Antibiotika, Antazida wie Carbenoxolon, Herzglykoside, Heparin, Kortikosteroide, Lakritze in größeren Mengen, Laxantien, Lithium und Ovulationshemmer, weshalb ein Absetzen der Präparate ca. 1 Woche vorher
sinnvoll ist. Bei Frauen empfiehlt sich eine Durchführung des Testes in der ersten Zyklushälfte.
Kontraindikation: schwere Hypertonie, Herzinsuffizien, Hypervolämie, entgleister arterieller Hypertonus
Beurteilung:Normal ist ein Abfall der Aldosteronkonzentration auf ca. < 50 % der Basalwerte bei einem im Normbereich
liegenden basalen Wert. Im Fall eines sekundären Hyperaldosteronismus (z.B. renovaskuläre Hypertonie bzw. bei
Natriumretention) erfolgt bei basal erhöhten Werten von Aldosteron und Renin ebenfalls ein deutlicher Abfall
der Aldosteronkonzentration sowie eine Normalisierung des Reninwertes. Bei Vorliegen eines Aldosteron produzierenden Nebennierenadenoms (Conn-Syndrom) bleibt dieser Abfall aus bzw. bleibt die Aldosteronkonzentration
erhöht bei niedrigen oder niedrig-normalen Reninwerten. Liegen die Aldosteronkonzentration nach der Belastung
> 100 ng/l spricht dies für einen primären Hyperaldosteronismus. Bei Aldosteronkonzentration < 50 ng/l nach Bela480
M . F u n k t io n s t e s t s
stung kann hingegen ein primärer Hyperaldosteronismus mit hoher Wahrscheinlichkeit ausgeschlossen werden. Im
Graubereich bei Aldosteronkonzentration nach Belastung (> 50 – 99 ng/l) ist eine weitere Diagnostik erforderlich.
Bei erniedrigten basalen Reninwerten ist der Test nicht sinnvoll.
Aldosteron-Orthostase-Test
Indikation:DD: Hyperaldosteronismus, DD: Nebennierenhyperplasie/Aldosteron-produzierendes Nebennierenadenom
Parameter:Aldosteron im Serum, Renin im EDTA-Blut (ungekühlt!), fakultativ 18-Hydroxycorticosteron (18-OHB) im Serum
Durchführung:Ab Mitternacht Bettruhe und erste Blutentnahme um 8.00 Uhr zur Bestimmung von Aldosteron, Renin und fakultativ
18-Hydroxycorticosteron. Danach sollte der Patient 2 - 4 Stunden herumlaufen oder stehen (Orthostase), anschließend
erfolgt eine zweite Blutentnahme im Sitzen.
Achtung: Einhaltung einer Normalkost mit 100 – 150 mmol Natrium (3 – 4.5 g Kochsalz) pro die. Störende Medikamente
z.B. Betablocker, Diuretika, ACE-Hemmer, Renin-Inhibitoren und AT-Antagonisten sollten, falls medizinisch vertretbar,
mindestens 1-2 Wochen vorher abgesetzt werden. Bei Spironolacton, Eplerenon und Drospirenon ist eine Pause
von > 2 – 4 Wochen nötig. Störenden Einfluß haben auch Antiphlogistika (z.B. Aspirin, Ibuprofen, Indomethacin),
Aminoglykosid-Antibiotika, Antazida wie Carbenoxolon, Herzglykoside, Heparin, Kortikosteroide, Lakritze in größeren
Mengen, Laxantien, Lithium und Ovulationshemmer, weshalb ein Absetzen der Präparate ca. 1 Woche vorher sinnvoll
ist. Bei Frauen empfiehlt sich eine Durchführung des Testes in der ersten Zyklushälfte.
Beurteilung:Beim Gesunden Anstieg von Renin und Aldosteron auf ca. 150 – 310 % des Basalwertes nach Bettruhe,
18- Hydroxycorticosteron steigt ebenfalls an (ca. 50 – 200 %). Renin ist bei allen Formen des primären
Hyperaldosteronismus supprimiert und steigt durch die Orthostase nur leicht oder gar nicht an. Beim idiopathischen
Hyperaldosteronismus (Nebennierenhyperplasie ) sind Aldosteron und 18-Hydroxycorticosteron basal hochnormal
oder leicht erhöht und zeigen nach Orthostase einen deutlichen Anstieg, wobei Aldosteron um etwa ein Drittel
ansteigt und der maximale 18-0HB-Wert noch unter 1000 ng/l liegen sollte. Beim Aldosteron produzierenden
Nebennierenadenom (Conn-Syndrom) sind Aldosteron und 18-Hydroxycorticosteron basal bereits z.T. deutlich
erhöht und fallen nach Orthostase ab oder bleiben unverändert hoch, wobei der 18-OHB-Wert größer als 1000 ng/l
ist. Eine hohe Spezifität für ein Adenom besteht bei einem Abfall des Aldosteronwertes > 100 ng/l. Im Falle einer
makronodulären Nebennierenhyperplasie mit Hypoaldosteronismus sowie bei dem glukokortikoid-supprimierbaren
Hyperaldosteronismus verhalten sich Aldosteron und 18-Hydroxycorticosteron ähnlich wie beim Aldosteron
produzierenden Nebennierenadenom (Conn-Syndrom). Beim sekundären Hypoaldosteronismus (z.B. Glukokortokoid
supprimierbarer Aldosteronismus, apparenter Mineralokortikoidexzess, Liddle-Syndrom, adrenogenitales Syndrom
etc.) sind Renin und Aldosteron basal gering erniedrigt oder niedrig normal und steigen nach Orthostase nicht oder
subnormal an.
481
M. Funktionstests
Arginin-Cl-Test (Wachstumshormon-Stimulationstest)
Indikation:V.a. Wachstumshormonmangel (z.B. Hypophyseninsuffizienz) bzw. Minderwuchs bei Kindern
Parameter:Human-growth-hormon (HGH) bzw. Somatotropes Hormon (STH) im Serum
Durchführung:Erste Blutentnahme nüchtern, dann Gabe von Arginin-Hydrochlorid-Lösung (0.5 g/kg Körpergewicht, Maximaldosis
30g) 1:10 verdünnt mit physiologischer Kochsalzlösung ca. 30 min. über einen Verweilkatheter als Infusion.
Blutentnahmen – 30, 0, 30, 45, 60, 90 und 120 min. nach Beginn der Infusion.
Kontraindikation: Schwere Leber- und Nierenerkrankungen und/oder Azidose
Nebenwirkungen: Späthypoglykämie (vor allem b. dystrophen Kindern, unterernährten Erwachsenen), Verstärkung
einer Azidose, selten Erbrechen
Beurteilung:Normal ist eine HGH-Konzentrationen 30- 60 min. nach Infusion > 10 ng/ml. Sind die Werte nach Infusion < 5 ng/
ml liegt ein schwerer HGH-Mangel vor. Liegen die HGH-Werte im Bereich 5 – 10 ng/ml so kann ein partieller HGHMangel bestehen.
Calcitonin-Stimulationstest bzw. Pentagastrin-Stimulationstest
Indikation:V.a. medulläres Schilddrüsenkarzinom sowie zur Nachsorge und Verlaufskontrolle (nicht mehr zum Familien-Screening bei V.a. MEN-2 (Multiple endokrine Neoplasie Typ 2) oder beim familiären medullären Schilddrüsenkarzinom!)
Parameter:Calcitonin im Serum (Probe gerinnen lassen und innerhalb von 30 min. zentrifugieren, Serum abheben und tiefgefroren einsenden, Kühlboxen vorher anfordern!)
Durchführung:Erste Blutentnahme nüchtern, Gabe von 0.5 µg Pentagastrin/kg Körpergewicht i.v., weitere Blutentnahmen nach
2 und 5 min. (Pentagastrin ist derzeit nur über die internationale Apotheke erhältlich.).
Beurteilung:Der Referenzbereich für die basalen Werte ist bei Frauen < 5 ng/l (pg/ml), für Männer < 8,4 ng/l (pg/ml) sowie für
Calcitonin nach Stimulation mit Pentagastrin nach 2 min für Frauen < 26,2 ng/l (pg/ml) und für Männer < 37,8 ng/l
(pg/ml) entsprechend der 95% Perzentile (Calcitonin-Assay, Immulite 2000, Fa. Siemens, siehe Doyle et. al „Potency
and Tolerance of Calcitonin Stimulation with High Dose Calcium Versus Pentagastrin in Normal Adults,
J Clin Endocrinol Metab, Aug 2009, 94 (8):2970-2974). Patienten mit medullärem Schilddrüsenkarzinom zeigen nach
Pentagastrin-Gabe einen stärkeren Calcitonin-Anstieg als Normalpersonen, wobei die Endkonzentrationen meist >
100 ng/l (pg/ml) liegen. Bei basalen Werten von >100 ng/l (pg/ml) besteht auch ohne Stimulation der Verdacht auf
ein medulläres Schilddrüsenkarzinom. Bei klinisch manifesten medullärem Schilddrüsenkarzinom sind die CalcitoninWerte oft 10 – 10000fach erhöht.
Postoperativ normale basale Calcitoninwerte, welche sich nicht durch Pentagastrin stimulieren lassen, sprechen für
eine Heilung des Patienten. Erneut erhöhte Calcitoninwerte bzw. erneute Stimulierbarkeit von Calcitonin bei den
(jährlichen) Verlaufskontrollen sprechen für ein Rezidiv bzw. eine Metastasierung.
482
M . F u n k t io n s t e s t s
Beim Familien-Screening bei V.a. MEN-2 oder beim familiären medullären Schilddrüsenkarzinom wird heute anstatt
des Calcitonin-Testes eine molekulargenetische Untersuchung auf Mutation im RET-Protoonkogen (Sensitivität von
98 %) empfohlen. Diese molekulargenetische Untersuchung sollte auch bei Vorliegen eines Phäochromozytoms ohne
Neurofibromatose I oder von Hippel-Lindau-Erkrankung durchgeführt werden (50 % der MEN 2-Patienten entwickeln ein Phäochromozytom).
Captopril-Stimulationstest
Indikation:DD: Hyperaldosteronismus, DD: Aldosteron-produzierendes Nebennierenadenom (Conn-Syndrom)/sekundärer Hyperaldosteronismus, V.a. Nierenarterienstenose
Parameter:Aldosteron im Serum, Renin im EDTA-Blut (ungekühlt!)
Durchführung:Ab Mitternacht Bettruhe und erste Blutentnahme nüchtern zwischen 7.00 und 9.00 Uhr in liegender Körperhaltung,
bei ambulanter Durchführung nach mind. 90 min. Ruhepause, Gabe von 25 mg Captopril (z.B. Lopirin) oral, zweite
Blutentnahme zur Aldosteron- und Reninbestimmung nach 120 min. in liegender Haltung (regelmäßige Blutdruckkontrolle ca. alle 15 min).
Achtung: Einhaltung einer Normalkost mit 100 – 150 mmol Natrium (3 – 4.5 g Kochsalz) pro die. Störende Medikamente z.B. Beta-Blocker, Diuretika, ACE-Hemmer, Spironolacton (u.a. kaliumsparende Diuretika) sollten, falls
medizinisch vertretbar, mindestens 2 Wochen vorher abgesetzt werden. Störenden Einfluß haben auch andere
Antihypertensiva (z.B. Calciumantagonisten, Clonidin etc.), Beta-Blocker (z.B. Atenolol, Carvedilol, Propanolol etc.),
Antiphlogistika (z.B. Aspirin, Ibuprofen, Indomethacin), Aminoglykosid-Antibiotika, Antazida wie Carbenoxolon,
Herzglykoside, Heparin, Kortikosteroide, Lakritze in größeren Mengen, Laxantien, Lithium und Ovulationshemmer,
weshalb ein Absetzen der Präparate ca. 1 Woche vorher sinnvoll ist. Bei Frauen empfiehlt sich eine Durchführung
des Testes in der ersten Zyklushälfte.
Beurteilung:Beim Gesunden keine Änderung der Reninkonzentration und leichter Abfall der Aldosteronwerte auf Werte < 150
ng/l (400 pmol/l). Beim sekundären Hyperaldosteronismus fällt der Aldosteronspiegel ähnlich wie bei Gesunden
deutlich ab. Im Falle eines Aldosteron-produzierendes Nebennierenadenoms (Conn-Syndrom) hingegen erfolgt kein
Abfall oder nur ein subnormaler Abfall des Aldosterons (meist nicht unter 150 ng/l).
Der Reninwert steigt bei der Nierenarterienstenose nach Captopril um das dreifache des Basalwertes bzw. auf mehr
als 200 % des Ausgangswertes an. Bei der essentiellen Hypertonie zeigt sich ein normaler Aldosteronabfall und kein
deutlicher Anstieg der Reninkonzentration (< 150 %).
Anmerkung: Die Wertigkeit dieses Testes wird von verschiedenen Autoren unterschiedlich beurteilt.
483
M. Funktionstests
Clomifen-Test
Indikation:Subklassifizierung von Amenorrhoen bei positivem Gestagentest, Überprüfung der hypothalamisch-hypophysären
Funktion
Parameter:Östradiol, LH, FSH und Progesteron im Serum
Durchführung:Einnahme von 100 mg Clomifen pro die (z. B. 2 Tabl. Pergotime tgl.) vom 5. bis zum 9. Tag nach einer Gestageninduzierten Blutung, Blutentnahmen am 3., 12. (LH, Östradiol) und am 21. Zyklustag (Östradiol, Progesteron) sowie
zusätzliche Follikulometrie.
Beurteilung:Östradiolanstieg und Follikelwachstum spricht für eine geringfügige hypothalamisch-hypophysäre Störung und eine
ausreichende Stimulation der Ovarien.
Clonidintest-Suppressions-Test
Indikation:V.a. Phäochromozytom, DD: Grenzwertig hohe bzw. erhöhte Plasmakatecholamin- oder
Plasmametanephrinkonzentrationen (d.h. Erhöhungen bis etwa zum Doppelten des oberen Referenzwertes)
Parameter:Adrenalin, Noradrenalin, Dopamin im EGTA-Plasma, Nor- u. Metanephrin im EDTA-Plasma, Serum tiefgefroren (siehe
Hinweise zur Präanalytik im alphabet. Teil)
Durchführung:Erste Blutentnahme nüchtern nach ca. 12 Stunden Nahrungskarenz und Bettruhe nach 24 Uhr. Legen einer
Verweilkanüle 30 min. vor der von Gabe von 0,3 mg Clonidin oral, anschließend Blutentnahme nach 180 min zur
Bestimmung der Plasmakatecholamine und –metanephrine, Blutdruck- und Pulskontrolle alle 30 min. während der
Untersuchung. Der Patient sollte während des gesamten Tests liegen.
Achtung: Antihypertensive Therapie mindestens 48 Std., am besten 7 Tage vor Testbeginn absetzen (siehe
Hinweise im alphabet. Teil) und unbedingt Streß vor und während der Untersuchung vermeiden. Bei intolerablen
Blutdruckwerten systolisch > 180 mm Hg und diastolisch > 110 mm Hg ggf. weitere Gabe von langwirksamen
Calciumantagonisten.
Kontraindikation: Hypotension, Hypovolämie, Bradycardie, aktuelle Beta-Blockertherapie
Beurteilung:Normal ist ein Absinken der Plasmakatecholamin- und Plasmametanephrinkonzentrationen in den Referenzbereich
bzw. ein Abfall der Werte um > 40 %. Deutlich erhöhte Basalwerte und eine fehlende Suppression der
Plasmakatecholamin- und Plasmametanephrinkonzentrationen nach Clonidin sprechen für ein Phäochromozytom.
Der Clonidintest ist nur bei basal erhöhten Werten verwertbar (Treffsicherheit von > 95%).
484
M . F u n k t io n s t e s t s
Cortisol-Tagesprofil
Indikation:
Diagnose des Cushing-Syndroms
Parameter:Cortisol im Serum
Durchführung:Blutentnahmen für die Cortisolbestimmung um 8.00, 12.00, 18.00 und 24.00 Uhr, alternativ Speichelproben
Beurteilung:Normalwerte im Serum vor 10 Uhr: 3,7 – 19,4 µg/dl, nach 17 Uhr: 2-,9 – 17, 3 µg/dl (laborinterner
Referenzbereich); Cortisolwert im Serum < 5 µg/dl (*< 3 ug/dl) um 24 Uhr, Cortisol im Speichel < 0,1 µg/dl. Eine
aufgehobene zirkadiane Rhythmik und Cortisolwerte > 5 µg/dl (*> 3 ug/dl) um 24 Uhr sprechen für ein CushingSyndrom und eine weitere Diagnostik mittels Dexamethason-Hemmtest, CRH-Test sowie ggfs. Bestimmung des freien
Cortisols im 24h-Sammelurin und des ACTH-Spiegels im EDTA-Blut sollte erfolgen.
Anmerkung: Der Cortisolspiegel und auch der nächtliche Cortisolnadir können durch starken psychischen oder
physischen Streß (z. B. OP, starke Schmerzen), nach Nahrungsaufnahme (Cortisolanstieg 1 h postprandial im Mittel ca.
90 % mittags und ca. 50 % abends), bei schweren Allgemeinerkrankung, Infektionen, Diabetes mellitus, Adipositas,
Anorexia nervosa, endogener Depression, Alkoholismus sowie unter Östrogeneinfluß (z.B. orale Kontrazeptiva,
Substitution, Gravidität) zu hoch liegen. Die Konzentrationen an freiem Cortisol im 24h-Sammelurin oder im Speichel
sind jedoch normal.
* lt. Müller O A, Cushing-Syndrom, Rationelle Diagnostik und Therapie in Endokrinologie, Diabetologie und
Stoffwechsel, Herausgeber Deutsche Gesellschaft für Endokrinologie, Redaktion Lehnert H, Georg Thieme Verlag
Stuttgart 2009 (3. Auflage): 24 - 28
Corticotropin-Releasing-Hormon (CRH)-Test
Indikation:Differentialdiagnose des Cushing-Syndroms, V.a. Hypophysenvorderlappen-Insuffizienz (z.B. nach Beendigung einer
Glukokortikoidtherapie), DD: sekundäre und tertiäre Nebennierenrindeninsuffizienz
Parameter:ACTH im EDTA-Plasma (am besten EDTA-Blut zentrifugieren, Plasma abheben und einfrieren, vorher Kühlboxen beim
Labor anfordern! Bitte Kunststoffröhrchen verwenden!), Cortisol im Serum
Durchführung:Legen eines Verweilkatheters, Blutentnahme am ruhenden nüchternen Patienten nach einer Ruhepause von 2 h,
langsame Injektion von 100 µg humanem CRH (durch Verweilkanüle) oder 1 µg/kg Körpergewicht (bei Kindern,
wobei der Test für Kinder nicht offiziell zugelassen ist!), Blutentnahme 15, 30, 45, 60 und 90 min nach Injektion.
Nebenwirkungen: Die meisten Patienten entwickeln nach CRH-Gabe ein Hitzegefühl mit Flush, auch ein leichter
Blutdruckabfall und Geschmacksmissempfindungen sind möglich.
485
M. Funktionstests
Anmerkung: Die Testdurchführung ist nicht standardisiert, wobei jedoch eine Durchführung nach entsprechender
Ruhepause (2 h) am Nachmittag oder Abend günstiger ist, da ACTH und Cortisol zu diesem Zeitpunkt niedriger sind
und der zu erwartende Anstieg nach CRH-Gabe deutlicher ausfällt. Der Test kann auch im Rahmen eines kombinierten Releasing-Hormon-Tests (CRH, GHRH, GnRH, TRH) durchgeführt werden.
Beurteilung:Beim Gesunden zeigt ACTH nach CRH-Gabe einen deutlichen Anstieg um mindestens 50 % und Cortisol im Serum
steigt meist um > 7 µg/dl (200 nmol/l) an. Ein fehlender Anstieg von ACTH und Cortisol bei normalen bis extrem
niedrigen Basalwerten spricht für einen hypophysären ACTH-Mangel (sekundäre Nebennierenrindeninsuffizienz).
Ein geringer Anstieg von ACTH bei normalen oder niedrigen basalen Werten für ACTH und Cortisol schließt eine
Hypophyseninsuffizienz nicht aus, ggf. sollte in diesem Fall ein Metopiron-Test durchgeführt werden. Bei der terti
ären oder hypothalamischen Nebennierenrindeninsuffizienz zeigt sich nach CRH-Gabe eine gute Stimulierbarkeit
der ACTH-Sekretion, wobei die Stimulierbarkeit des Cortisols abhängig ist vom Grad der Nebennieren-Atrophie und
der Insulin-Hypoglykämietest negativ ausfällt (kein Anstieg von ACTH und Cortisol). Beim hypophysären CushingSyndrom mit meßbaren oder erhöhten basalen ACTH-Spiegel sollte bei deutlicher Cortisol-Stimulierbarkeit ein
signifikanter Anstieg der ACTH-Konzentration um mindestens 35 % über den Ausgangswert erfolgen. Auch ein
deutlicher Anstieg der Cortisolkonzentration (> 14-20 %) bei basal normal oder erhöhten Cortisolwerten, gilt in
neueren Studien als gutes Kriterium für das Vorliegen eines zentralen Cushing-Syndroms. Bei etwa 10% der Fälle
erfolgt jedoch kein Anstieg von ACTH nach CRH-Gabe und zur weiteren Abklärung kommt die Durchführung eines
kombinierten CRH-/Vasopressin-Testes zusammen mit einem Dexamethason-Kurztest (8 mg) in Frage (diagnostische
Sicherheit dann 100 %). Eine fehlende Stimulierbarkeit von ACTH und Cortisol nach CRH-Gabe bei basal erhöhten
oder hoch normalen ACTH-Spiegeln spricht für ein ektopes ACTH-Syndrom (DD: fehlender Anstieg auch beim
zentralen Cushing-Syndrom z.B. bei Makroadenom.) Bei basal und nach CRH-Gabe nicht messbaren ACTH-Spiegeln
und gleichzeitig nicht stimulierbarem Cortisol liegt ein adrenales Cushing-Syndrom vor (Tumor oder bilaterale mikrooder makronoduläre Nebennierenrinden-Hyperplasie).
Desferoxamintest
Indikation:V.a. Hämochromatose, Hämosiderose
Parameter:Eisen im Sammelurin
Durchführung:Morgens Blase entleeren und Urin verwerfen, Gabe von 500 mg Desferoxamin (Desferal) i.m., 6 Stunden Sammelurin
(Dauer bitte angeben), ca. 10 ml Urin aus der Sammelmenge einsenden (Angabe der Sammelmenge!)
Beurteilung:Physiologisch ist eine Ausscheidung 500 - 1000 µg /6 h (1 mg/6 h). Werte zwischen 4000 – 6000 µg/6 h (4 – 6 mg/6h)
weisen auf eine Hämochromatose hin, Werte > 10000 µg/6 h (> 10 mg/6 h) sprechen eindeutig für eine Hämochromatose. Bei einer Hämosiderose liegen die Werte meist im Bereich 1000 – 2000 µg/6 h (1 – 2 mg/6 h).
486
M . F u n k t io n s t e s t s
Dexamethasonhemmtest
(Kurztest mit niedriger Dosis / hoher Dosis)
Indikation:(Differential-)Diagnose des Cushing-Syndroms
Parameter:Cortisol im Serum
Durchführung:Erste Blutentnahme nüchtern um 8.00 Uhr, dann Gabe von (1-) 2 mg (bzw. 8 mg) Dexamethason um 23.00 Uhr und
zweite Blutentnahme am nächsten Morgen 8.00 Uhr nüchtern.
Beurteilung:
Kurztest mit niedriger Dosierung (2 mg): Der Plasmacortisolspiegel ist bei Gesunden nach Gabe von 2 mg Dexamethason supprimiert auf Werte < 3 µg/dl bzw. < 83 nmol/l (< 1,8 µg/dl bzw. < 50 nmol/l*) und schließt ein Cushing-Syndrom
mit hoher Wahrscheinlichkeit aus. Beim endogenen Cushing-Syndrom liegen die Werte > 3 µg/dl bzw. > 83 nmol/l
(> 1,8 µg/dl bzw. > 50 nmol/l*). Bei einer hohen Sensitivität von 98% hat dieser Test jedoch eine eingeschränkten
Spezifität, da in bis zu 15% der Fälle falsch-positive Ergebnisse auftreten z.B. bei Patienten mit Adipositas, schweren
Begleiterkrankungen, Anorexia nervosa, schweren Depressionen und Angstzuständen, Alkoholismus, chronischem
Nierenversagen, erhöhten Östrogenwerten (Gravidität, orale Kontrazeptiva, Östrogensubstitution) und bei Einnahme
von Phenytoin, Barbituraten und anderen Antikonvulsiva.
Aufgrunddessen sollte der niedrigdosierte Dexamethason-Kurztest nicht als alleiniges Kriterium zur Diagnose eines
Hypercortisolismus herangezogen werden und zusätzlich z.B. eine Bestimmung von Cortisol um 24 Uhr (in Serum
oder Speichel) und/oder die Bestimmung des freien Cortisols im 24h-Sammelurin erfolgen. Bei fehlender Suppression
sollte zur weiteren Differentialdiagnostik ein Dexamethosen-Test mit hoher Dosierung (8 mg) durchgeführt werden.
Kurztest mit hoher Dosierung (8 mg): Eine Suppression der Cortisolkonzentration auf < 50 % des Ausgangswertes zeigt sich
in der Mehrzahl der Fälle bei einem zentralen Cushing-Syndrom. Zeigt sich eine ungenügende Suppression nach 8 mg Dexamethason und besteht weiterhin der Verdacht auf ein zentrales Cushing-Syndrom, sollte der Test mit höheren Dosen (z.B. 12
mg/max. 32 mg im Einzelfall) wiederholt werden. Beim adrenalen Cushing-Syndrom (autonomer Nebennierenrindentumor)
tritt jedoch keine Suppression auf, bei ektoper ACTH-Produktion ist eine Suppression < 50% sehr selten. In etwa 20 % der
Fälle gelingt eine sichere Differenzierung zwischen zentralem Cushing-Syndrom und ektoper ACTH-Produktion auch mittels
hochdosiertem Dexamethason-Suppressions-Test nicht, jedoch nach kombinierter Durchführung eines DexamethasonCRH-Tests fast immer. Zur weiteren Abklärung bzw. zur Differenzierung zwischen hypophysärem Cushing-Syndrom und
ektoper ACTH-Sekretion sollte bei fehlender Suppression im hochdosiertem Dexamethason-Test und nicht ausreichender
Stimulation von ACTH und Cortisol nach CRH eine bilaterale Katheterisierung des Sinus petrosus inferior mit gleichzeitiger
CRH-Stimulation zur Bestimmung von ACTH bilateral aus dem Sinus petrosus inferior und einer peripheren Vene erfolgen.
Anmerkung: Die Langzeitteste mit Dexamethason bieten im Vergleich zu den Kurzzeittesten keine Vorteile.
* lt. Mönig et al., Dynamische Funktionstests in der Endokrinologie, Rationelle Diagnostik und Therapie in Endokrinologie, Diabetologie und Stoffwechsel, Herausgeber Deutsche Gesellschaft für Endokrinologie, Redaktion Lehnert
H, Georg Thieme Verlag Stuttgart 2009 (3. Auflage): 488 – 533
487
M. Funktionstests
Durstversuch (Zwei-Stufen-Test)
Indikation:Indikation Differentialdiagnose des zentralen Diabetes insipidus, DD: Polydipsie und bei bestätigter Polyurie
(Urinausscheidung > 30 ml/kg/Körpergewicht/Tag und nach Ausschluß eines Diabetes mellitus, einer Hyperkalziämie,
Hypokaliämie, einer polyurischen Nierenerkrankung oder einer medikamenteninduzierten Polyurie (z.B. Lithium)
Parameter:Serum- und Urinosmolalität, Natrium im Serum, fakultativ Antidiuretisches Hormon (ADH) im EDTA-Plasma (ggfs.
8.00, 12.00, 16.00 Uhr) (EDTA-Blut möglichst nach ca. 30 min. zentrifugieren, EDTA-Plasma einfrieren und Transport
in Spezialkühlboxen zum Labor!). Die Durchführung des Tests sollte unter stationären Bedingungen erfolgen.
Durchführung:Die Durchführung des Testes sollte unter stationären Bedingungen erfolgen.
1.) Beginn morgens um 6.00 Uhr mit Bestimmung des Körpergewichtes, Blutentnahme und Urinprobe zur Bestimmung von Serum- und Urinosmolalität sowie von Natrium. Danach 12-stündige Durstphase und 2-stündige Kontrollen der Urinosmolalität, der Harnmenge, des Körpergewichts sowie stündlich von Blutdruck und Puls. Am Ende
des Durstversuches erneute Bestimmung von Serum-und Urinosmolalität, Natrium und fakultativ von ADH sowie
nochmalige Messung der Harnmenge, des Körpergewichts sowie von Blutdruck und Puls.
Achtung: Abbruch des Testes bei Verlust von mehr als 3 – 5% des Ausgangskörpergewichtes, Anstieg Serumnatrium
auf Werte von 145-148 mmol/l, sowie bei Hypotonie und/oder Exsikkose bzw. unerträglichem Durst und/oder Tachycardie, Fieber.
2.) Bei pathologischem Testergebnis bzw. um 16.00 Uhr zur weiteren differentialdiagnostischen Abklärung Gabe von exogenem Desmopressin (4 ug i.v. oder 10 µg intranasal, z.B. Minirin) und erneute Bestimmung der Serum- und Urinosmolalität sowie fakultativ von ADH im EDTA-Plasma bzw. Weiterführung des Testablaufes für 3 – 4 Stunden (zweite Stufe).
Kontraindikation: Serumnatrium > 148 mmol/l bzw. erhöhte Serum-Osmolalität, Dehydration. (Bei Kindern
Urinvolumen deutlich > 2ml/ KG/h!)
Beurteilung:Normalpersonen konzentrieren beim Durstversuch den Urin auf ca. 900 – 1200 mosmol/kg und die Serumosmolalität ist < 295
mosmol/kg. Bei Patienten mit psychogener/primärer Polydipsie ist das maximale Urinkonzentrationsvermögen eingeschränkt
auf 450 – ca. 700 mosmol/kg. Nach Gabe von Desmopressin am Endes des Durstversuches erfolgt bei Normalpersonen und
Patienten mit psychogener Polydipsie kein weiterer Anstieg der Urinosmolalität. Beim kompletten zentralen Diabetes insipidus liegt die Urinosmolalität meist < 250 mosmol/kg, die Serumosmolalität ist > 295 mosmol/kg und nach Desmopressin-Gabe
steigt die Urinosmolalität signifikant um > 30 mosmol/kg/h an bzw. es erfolgt ein mittlerer Anstieg von 183% auf eine Urinosmolalität von 445-600 mosmol/kg. Beweisend für einen zentralen Diabetes insipidus sind niedrige ADH-Konzentrationen am
Ende des Durstversuches bei einer Serumosmolalität von > 300 mosmol/kg. Beim partiellen zentralen Diabetes insipidus erfolgt
in Stufe 1 ein geringer Anstieg der Urinosmolalität mit steigender Serumosmolalität sowie nach Desmopressin-Gabe ein stärkerer Anstieg um > 9 - < 50% auf mittlere Werte von 550 – 800 mosmol/kg. Im Falle eines renalen Diabetes insipidus findet
sich ebenfalls eine Serumosmolalität von > 295 mosmol/kg, meist nur ein Anstieg der Urinosmolalität um < 10 mosmol/h oder
gar keiner beim Durstversuch und nach Desmopressingabe findet sich kein weiterer Anstieg der Urinosmolalität.
488
M . F u n k t io n s t e s t s
Eisenresorptionstest
Indikation:Überprüfung der intestinalen Resorption bei Eisenmangelanämie
Parameter:Eisen im Serum
Durchführung:Erste Blutentnahme nüchtern, dann orale Gabe von 200 mg zweiwertigem Eisen (z.B. 2 Kps. Ferro sanol duodenal)
und weitere Blutentnahmen nach 2 und 4 Stunden.
Beurteilung:Normal ist ein Anstieg des Eisenspiegels um 30 – 40% des Ausgangswertes. Bei Eisenmangelanämie und intakter
intestinaler Resorption Anstieg der Serumeisen-Konzentration von niedrigen Ausgangswerten auf > 200 µg/dl
(36 µmol/l) nach 2 - 4 Stunden. Bei Vorliegen einer Resorptionstörung und bei Infekt- oder Tumoranämie erfolgt
kein oder nur ein geringer Anstieg der Eisenkonzentration ausgehend von geringen Ausgangswerten. Hohe
Ausgangswerte und ein ebenfalls geringer Anstieg der Eisenkonzentration finden sich bei Hämochromatose und
hämolytischen Anämien.
Fludrocortisontest
Indikation:DD: Hyperaldosteronismus/ Aldosteron produzierendes Nebennierenadenom (Conn-Syndrom)
Parameter:Aldosteron im Serum
Durchführung:Erste Blutentnahme nach ausreichend Bettruhe (mind. ab 24 Uhr) zur Bestimmung des basalen Aldosteronwertes.
Danach über 4 Tage alle 6 h Gabe von 4 x 0.1 mg Fludrocortison (Astonin H) und am 5. Tag Blutentnahme morgens
(7.00 – 9.00 Uhr) zur Bestimmung von Aldosteron.
Achtung: Einhaltung einer Normalkost mit 100 – 150 mmol Natrium (3 – 4.5 g Kochsalz) pro die. Störende Medikamente z.B. Beta-Blocker, Diuretika, ACE-Hemmer, Spironolacton (u.a. kaliumsparende Diuretika) sollten, falls
medizinisch vertretbar, mindestens 2 Wochen vorher abgesetzt werden. Störenden Einfluß haben auch andere
Antihypertensiva (z.B. Calciumantagonisten, Clonidin etc.), Beta-Blocker (z.B. Atenolol, Carvedilol, Propanolol etc.),
Antiphlogistika (z.B. Aspirin, Ibuprofen, Indomethacin), Aminoglykosid-Antibiotika, Antazida wie Carbenoxolon,
Herzglykoside, Heparin, Kortikosteroide, Lakritze in größeren Mengen, Laxantien, Lithium und Ovulationshemmer,
weshalb ein Absetzen der Präparate ca. 1 Woche vorher sinnvoll ist. Bei Frauen empfiehlt sich eine Durchführung
des Testes in der ersten Zyklushälfte.
Beurteilung:Beim Gesunden erfolgt ein Abfall des Aldosteronwertes auf < 50% des Basalwerte, ebenso beim glukokortikoidsupprimierbaren Hyperaldosteronismus. Im Falle eines primären Hyperaldosteronismus zeigt sich kein Abfall der
Aldosteronkonzentration, der Aldostronwert liegt meist oberhalb von 50 mg/l.
489
M. Funktionstests
Fruktosebelastung
Indikation:Fruktosemalabsorption
Parameter:H2 - (Wasserstoff -) Konzentration in der Ausatemluft (Durchführung z.B. in unserer Sprechstunde) und Glukose im
NaF-Blut (die Fruktose - Messung ist aufgrund des hepatischen Stoffwechsels im Rahmen des Fruktosemalabsorptionstestes häufig nicht aussagekräftig und wird daher routinemäßig nicht mehr durchgeführt).
Durchführung:Erste Blutentnahme und Atemprobe nüchtern, dann orale Gabe von 25 g Fruktose (in ca. 300 ml Wasser oder Tee);
anschließend weitere Atemproben nach 15, 30, 60, 90 und 120 min.
Beurteilung:Normal sind H2-Atemwerte < 20 ppm. Bei Fruktosemalabsorption H2-Werte nach 30 min >20 ppm, frühere H2 –
Anstiege und erhöhte Nüchtern - H2-Werte können z.B. eine bakterielle Überwucherung des Dünndarms bzw.
eine verkürzte Magen-Zökum-Transit–Zeit anzeigen. Die Glucosebestimmungen dienen dem Ausschluss von
Hypoglykämien.
Aufgrund gefährlicher Hypoglykämien bei hereditärer Fruktoseintoleranz führen wir den Test nur nach Anamnese,
Aufklärungsgespräch und Indikationsstellung des behandelnden Arztes durch. Besteht der V.a. hereditäre Fruktoseintoleranz , sollte statt der Fruktosebelastung besser der Fruktose-Aldolase-B-Gentest im EDTA-Blut durchgeführt
werden. Bei nachgewiesener hereditärer Fruktoseintoleranz ist die Fruktosebelastung kontraindiziert.
Gastrin-Stimulation (Sekretin-Provokationstest)
Indikation: V.a. Gastrinom (Zollinger-Ellison-Syndrom), Erhöhte Nüchterngastrinwerte (> 60 bis ≥ 1000 ng/l) DD: G-ZellHyperplasie, Achlorhydrie (atrophisches Gastritis, pernizöse Anämie), Niereninsuffizienz (Kreatintin > 3.4 mg/dl (300
µmol/l), Z.n. Magenresektion, Helicobacter pylori-Infektion.
Parameter: Gastrin im Serum, Proben gerinnen lassen u. innerhalb von 30 min. zentrifugieren, Serum abheben und einfrieren
(Kühlboxen im Labor anfordern!)
Durchführung:Abnahme von zwei basalen Blutproben nüchtern nach mind. 12 h Nahrungskarenz im Abstand von 15 min (- 15, 0),
dann Gabe von 2 IE Sekretin/kg Körpergewicht i.v. (z.B. Secrelux), weitere Blutentnahmen nach 2, 5, 10, 15 und 30
Minuten
Achtung: Antacida, Anticholinergica, H2-Rezeptorantagonisten mind. 24 h und Protonenpumpenhemmer mind. 5
(-7) Tage vorher absetzen!. Cave: Glukokortikoide, Östrogene, Gestagene, Opiate und Anticholinergika können die
Wirkung des Sekretins im Test abschwächen.
Nebenwirkungen: Während des Testes können Hitzewallungen, Übelkeit, Bauchschmerzen und Schwindel auftreten.
Kontraindikation: Akute Pankreatitis oder akuter Schub einer chronischen Pankreatitis!
490
M . F u n k t io n s t e s t s
Beurteilung:Normal ist ist ein geringer oder fehlender Anstieg von Gastrin nach Stimulation sowie anschließend ein Abfall der
Werte. Bei einem Gastrinom kommt es nach Sekretin-Gabe zu einem Gastrin-Anstieg um mehr als 200 ng/l (pg/ml)
(Differenz basaler Gastrinwert zu stimulierten Gastrinkonzentrationen.) nach etwa 2-10 min bzw. zu einem Anstieg
der Gastrinkonzentrationen auf mehr als 100 % des Ausgangswertes. Der Test fällt in ca. 10% der Fälle falsch-negativ
aus bzw. es kommt nicht zu einem entsprechenden Anstieg trotz Gastrinom. Bei negativem Ausgang des Testes zur
weiteren Differentialdiagnostik ggf. Säuresekretionsanalyse (DD: siehe Indikation).
GH-RH-Stimulationstest
Indikation:V.a. (partielle) Hypophyseninsuffizienz, DD: hypothalamisch oder hypophysär bedingter Mangel an
Wachstumshormon (HGH, STH).
Hinweis: Der GH-RH-Test kann nicht zur primären Diagnostik des Wachstumshormonmangels angewendet werden
(siehe unter Wachstumshormon-Stimulationsteste).
Der GH-RH-Test wird auch im Rahmen des globalen Hypophysen-Stimulationstestes angewendet (siehe dort).
Parameter:Human-growth-hormone (HGH) bzw. somatotropes Hormon (STH) im Serum
Durchführung:Morgens nüchtern nach mind. 12 h Nahrungskarenz legen eines venösen Zuganges. nach mind. 1 h Ruhezeit
erste Blutentnahme (= – 15 min.) und zweite Blutentnahme (= 0 min.). Gabe von 1 µg GHRH/kg Körpergewicht
(Erwachsene 100 µg) als Bolus i.v., weitere Blutentnahmen nach 15, 30, 60, 90 und ggf. 120 min..
Nebenwirkungen: Kurzfristige Flush-Symptomatik (ca. 14% d. Patienten), Blässe, eigenartiger Geschmack im Mund,
Kopfschmerzen, Übelkeit und selten Überempfindlichkeitsreaktionen.
Beurteilung:Normal ist ein Anstieg von HGH auf Werte > 10 ng/ml (> 15 ng/ml*). Bei einem fehlenden Anstieg von HGH bzw.
HGH-Werten nach Stimulation < 5 bzw 10 ng/ml (< 15 ng/ml*) liegt eine hypophysäre Störung vor. Beim Erwachsenen
sollten zum Nachweis eines isolierten HGH-Mangels jeweils zwei Provokationsteste durchgeführt werden. Liegen
gleichzeitig weitere Ausfälle von Hypophysenhormonen vor, wird die Durchführung von nur einem Provokationstest
als ausreichend empfohlen (lt. Konsensusrichtlinien der Growth Hormone Research Society). Erfolgt nach GH-RHStimulation ein Anstieg von HGH auf Werte > 10 ng/ml (> 15 ng/ml*) oder höher oder erfolgt ein subnormaler
Anstieg von HGH mit einem späten Maximum, so spricht dies für eine hypothalamische Störung bzw. Insuffizienz.
* lt. Mönig et al., Dynamische Funktionstests in der Endokrinologie, Rationelle Diagnostik und Therapie in
Endokrinologie, Diabetologie und Stoffwechsel, Herausgeber Deutsche Gesellschaft für Endokrinologie, Redaktion
Lehnert H, Georg Thieme Verlag Stuttgart 2009 (3. Auflage): 488 – 533
Anmerkung: Bei einer hypothalamischer Störung während der längere Zeit keine Stimulation der Hypophyse mit
GH-RH erfolgte, kann es trotz intakter Hypophysenfunktion zu einer ungenügenden Sekretion von HGH nach GH-RH
491
M. Funktionstests
kommen. In diesem Fall sollte der GH-RH-Test erst nach mehrfacher Gabe von GH-RH 1 µg/kg Körpergewicht
s.c. über z.B. 5 Tage durchgeführt werden. In einzelnen Fällen wird bei gesunden Erwachsenen kein adäquater
HGH-Anstieg nach GH-RH beobachtet.
Glukagon-Test
Indikation:V.a. Insulinom
Parameter:Glucose im Kapillarblut, Insulin und C-Peptid im hämolysefreien Serum (auch EDTA- oder Heparinplasma,
innerhalb von 30 min. Zentrifugation der Probe, Serum bzw. Plasma abheben, bei Insulin möglichst gekühlter
Transport (4–8 °C), besser tiefgefroren, vorher Kühlboxen im Labor anfordern!)
Durchführung:Der Patient sollte sich 3 Tage kohlenhydratreich ernähren. Erste Blutentnahme nach 8 Stunden Nahrungskarenz,
anschließend Gabe von 1 mg Glukagon i.v. verdünnt in 10 ml physiologischer NaCl-Lösung und nach 1, 5, 10, 15 und
30 min. Blutentnahmen zur Bestimmung der oben genannten Parameter.
Beurteilung:Normal ist ein Anstieg von Insulin bis 200 mU/l und von C-Peptid auf Werte zw. 2.7 – 5.7 µg/l nach Glukagongabe. Bei
Patienten mit einem Insulinom liegen die Insulin-Werte über 200 mU/l und der maximale Anstieg von C-Peptid liegt
> 2.5 µg/l nach Glukagongabe. Wählt man als Kriterium einen Insulingipfel > 130 mU/l oder nach nächtlichem Fasten
von > 100 mU/l gegenüber dem Basalwert, beträgt die diagnostische Sensitivität des Testes 50-80% für ein Insulinom.
Fehlerquellen: Falsch-negative Ergebnisse bei Einnahme von Hydrochlorothiazid, Diphenylhydantoin und Diazoxid.
Falsch-positive Ergebnisse bei Einnahme von Tolbutamid und Aminphyllin sowie bei Adipositas.
Anmerkung: Test nach neueren Erkenntnissen obsolet. Zur Diagnose wird ein oraler Glukose-Toleranztest mit Messung von Glucose und Insulin sowie ein Hungerversuch (Messung von Glucose, Insulin und ggf. C-Peptid) empfohlen
(siehe unter „Hungerversuch“).
492
M . F u n k t io n s t e s t s
Glucose-H2-Atemtest
Indikation:V.a. bakterielle Fehlbesiedlung des Dünndarms / verkürzte Magen-Zökum-Transitzeit. Abklärung unklarer Diarrhoen,
Meteorismus, Flatulenz, Übelkeit, postprandiales Völlegefühl. Der Glucose-H2-Atemtest kann ggfs. auch kurzfristig
nach Antibiotikatherapie, Koloskopie oder einer anderen Untersuchung mit Darmlavage durchgeführt werden.
Parameter :H2-(Wasserstoff)-Konzentration in der Ausatemluft (Durchführung z.B. in unserer Sprechstunde) und Glucose im
NaF-Blut
Durchführung :Erste Blutentnahme und Atemprobe nüchtern, dann orale Gabe von 50 g Glucose (Kinder erhalten 1g/kg Körper
gewicht, maximal 25g) in ca. 300 ml Wasser oder Tee; anschließend weitere Atemproben nach 15, 30, 60, 90 und
120 min sowie Glucosemessungen nach 60 und 120 min.
Beurteilung :Normal sind H2-Atemwerte < 20 ppm. Frühe H2-Anstiege < 30 min und erhöhte Nüchtern - H2-Werte können z.B.
eine bakterielle Überwucherung des Dünndarms bzw. eine verkürzte Magen-Zökum-Transit – Zeit anzeigen. Die
Glucosebestimmungen dienen der Plausibilitätskontrolle. Häufig tritt nach chronischer Pankreatitis mit exokriner
Pankreasinsuffizienz postoperativ eine bakterielle Fehlbesiedlung des Dünndarms auf, die z.B. antibiotisch therapiert werden kann.
(Oraler) Glucose-Toleranztest (OGTT)
Indikation:Klinischer Verdacht auf gestörte Glucosetoleranz oder gestörte Nüchternglucose bzw. IFG (Impaired Fasting Glucose,
venöses Plasma ≥ 100 und < 126 mg/dl vorrangig (kapilläres Vollblut ≥ 90 und < 110 mg/dl), V.a. Diabetes mellitus,
Personen ≥ 45 Jahre mit einem Body Mass Index (BMI) von ≥ 25 kg/m 2 und Personen ≥ 45 Jahre mit einem Body
Mass Index (BMI) von ≤ 25 kg/m 2 mit zusätzlichen Risikofaktoren, bei V.a. Gestationsdiabetes (siehe unten).
Parameter:Glucose im NaF-Blut bzw. venösem Plasma (kapilläres Vollblut nur bedingt verwenden)
Durchführung:Erste Blutentnahme morgens nüchtern beim sitzenden oder liegenden Patienten nach mind. 10 - 16 Stunden Nahrungskarenz (kein Alkohol und kein Rauchen vor dem Test, kein Rauchen während des Testes), orale Gabe von 75 g
Glucose in ca. 250 - 300 ml Wasser oder Tee (Kinder erhalten 1,75 g/kg Körpergewicht (max. 75 g) in einem Zeitraum
von ca. 3 – 5 min., weitere Blutentnahme nach 60 und 120 min. (Der 60-Minutenwert ist nicht obligatorisch).
Achtung: Voraussetzung für eine verlässliche Aussage des oralen Glucose-Toleranztestes ist vor Testbeginn eine
ausreichende Zufuhr von Kohlenhydraten (> 150 g pro die) sowie eine normale körperliche Aktivität (z. B. kein Z.n.
Bettlägerigkeit oder nach übermäßiger körperlicher Anstrengung). Weiterhin sollten störende Medikamente sofern
möglich abgesetzt werden und ein Abstand von mindestens drei Tagen zur Menstruation eingehalten werden.
Störfaktoren, die die Glucosetoleranz beeinflussen können: Medikamente wie Epinephrin, Glukokortikoide,
hormonelle Kontrazeptiva, Laxantien, nicht-steroidale Antirheumatika, Nikotinsäure, Nitrazepam, Phenothiazine,
Phenazetin, Saluretika (insbesondere Thiazide), Schilddrüsenhormone; besondere Umstände wie Hungerzustand und
493
M. Funktionstests
lange Bettlägerigkeit, Schwangerschaft, starker Stress (z. B. OP, Tauma etc.), Erkrankungen wie Magen-Darm-Erkrankungen, Z.n. Magenresektion, metabolische Azidose (Urämie), Hypokaliämie, Hypomagnesiämie, Hyperlipidämie,
akute oder chronische Lebererkrankungen, hochgradige Herzinsuffizienz, Hyperthyreose.
Beurteilung:Beurteilung der Glucosewerte:
Glucose nüchtern, normal
Impaired Fasting Glucose (IFG) bzw. gestörte
Glucosetoleranz
Diagnose Diabetes, wenn Glukose nüchtern
Impaired Glucose Tolerance (IGT), wenn 2.Std.-Wert
OGTT
Diagnose Diabetes, wenn 2-Std.-Wert OGTT
Venöses Plasma (NaF) mg/dl (mmol/l)
< 100 (5.6)
> 100 (5.6)
< 126 (7.0)
> 126 (7.0)
> 140 (7.8)
< 200 (11.1)
> 200 (11.1)
Kapilläres Vollblut mg/dl (mmol/l)
< 90 (5.0)
> 90 (5.0)
< 110 (6.1)
> 110 (6.1)
> 140 (7.8)
< 200 (11.1)
> 200 (11.1)
(lt. AWMF-Leitlinien-Register, Nr. 057/002K bzw. Kerner W, Brückel J, Definition, Klassifikation und Diagnostik des Diabetes mellitus, Diabetologie 2008; 3
Suppl 2: S. 131-133, ADA-Bericht 1997 in Diabetes Care;7:1183-97, Alberti et. al. in Diabet Med 1998;15:539-53 und WHO 1985)
Achtung! Neue Empfehlung Diabetes Risiko Test primär mit HbA1c-Wert:
Laut Literatur kann bei einen HbA1c-Wertes ≥ 6.5% die Diagnose Diabetes mellitus mit ausreichender Spezifität
gestellt werden. Bei einem HbA1c-Wert < 5.7% kann ein Diabetes mellitus mit ausreichender Sensitivität ausgeschlossen werden. Bei einem HbA1c-Wert im Bereich von 5.7 – 6.4% sollte zusätzlich der OGTT mit 75 g unter Verwendung von Na-F-Blut bzw. venösem Plasma durchgeführt werden. Sofern die Nüchternglucosewerte zw. 100-125
mg/dl und/oder der 2-Std.-Wert im Bereich 140-199 mg/dl liegt, sollte in einem Jahr ein neuer Diabetes Risiko Test
erfolgen. Eine Aufklärung über das Diabetesrisiko und eine „Lifestyle-Intervention“ empfehlen sich. Der HbA1cWert kann nicht zur Diabetesdiagnose eingesetzt werden, wenn mit einer Verfälschung der Werte zu rechnen ist
(z.B. Hämoglobinstrukturvarianten, bei erhöhter oder erniedrigter Lebensdauer der Erythrozyten (wie hämolytische
Anämie, Eisenmangelanämie, Leber- u. Nierenerkrankungen), Urämie, Dauertherapie mit Acetylsalicylsäure,
Ascorninsäure, Vitamin E, Gravidität).
494
(lt. Kerner W, Brückel J, Definition, Klassifikation und Diagnostik des Diabetes mellitus, Diabetologie 2010; 5: S. 109-112.)
M . F u n k t io n s t e s t s
(Oraler) Glucose-50g-Screening-Test in der Gravidität (24. – 28 SSW) bzw. zusätzlicher OGTT mit 75 g (Two-Step-Verfahren)
Nach den neuesten Veröffentlichungen bzw. Richtlinien zum Gestationsdiabetes (GDM)* sollte bei Vorliegen von
Risikofaktoren (z.B. Alter ≥ 45 Jahre, BMI ≥ 30 kg/m2 präkonzeptionell, körperliche Inaktivität, Eltern oder Geschwister mit Diabetes mellitus, Angehörige einer ethnischen Risikopopulation (Asiatinnen, Lateinamerikanerinen, AfroAmerikanerinnen, Araberinnen, Türkinnen), Geburt eines Kindes ≥ 4500 g, GDM in der Vorgeschichte, arterielle
Hypertonie (RR ≥ 140/90 mmHg) bzw. unter Therapie derselben, Dyslipidämie präkonzeptionell (HDL < 35 und/oder
Triglyceride > 250 mg/dl), PCO-Syndrom, Prädiabetes (IFG, IGT, HbA1c ≥ 5.7 %) bei früherem Test, klinische Zustände
welche mit Insulinresistenz assoziiert sind (z.B. Acanthosis nigricans), anamnestisch KHK, pAVK, cerebral-arterielle
Durchblutungsstörung, Einnahme kontrainsulinärer Medikamente (z.B. Glukokortikoide) bei der Erstvorstellung vor
der 24. SSW bereits ein GDM ausgeschlossen werden. Danach wird generell bei allen Schwangeren entweder gleich
ein OGTT mit 75 g durchgeführt oder zunächst ein OGTT mit 50 g und bei Bedarf (Kriterien siehe weiter unten) im
Anschluß ein OGTT mit 75 oder 100 g durchgeführt.
Indikation:Klinischer Verdacht auf Gestationsdiabetes und/oder erhöhtes Risiko für Diabetes mellitus, sowie generell bei allen
Schwangeren in der 24. – 28. SSW.
Parameter:Glucose im NaF-Blut bzw. venösem Plasma
Durchführung:Die Testdurchführung ist unabhängig vom Tageszeitpunkt und der letzten Mahlzeit. Die Patientin erhält oral 50 g
Glucose in ca. 200 ml Wasser oder Tee in einem Zeitraum von ca. 3 – 5 min., danach Blutentnahmen nach
60 und 120 min.
Anmerkung: Die Patientin sollte während der Testdurchführung am besten sitzen und nicht rauchen.
Beurteilung: Sofern die Glucosewerte im venösen Plasma nach 60 min. > 135 mg/dl liegen, sollte ein oraler Glucose-Toleranztest
mit 75 g Glucose über 2 Stunden angeschlossen werden und zuvor die Nüchternglucose bestimmt werden.
(*Quelle: Gestationsdiabetes mellitus (GDM), Evidenzbasierte Leitlinie zu Diagnostik, Therapie u. Nachsorge der
Deutschen Diabetes-Gesellschaft (DDG) und der Deutschen Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe (DGGG)
S3-Leitlinie (AWMF-Leitlinie 057/008), Herausgeber DDG: M.Kellerer, S.Matthaei; Herausgeber DGGG: R.Kreienberg;
Autoren: H.Kleinwechter, U.Schäfer-Graf, C.Bührer, I.Hoesli, F.Kainer, A.Kautzky-Willer, B.Pawlowski, K.Schunck,
T.Somville, M.Sorger, Erstveröffentlichung 08/2011)
(Oraler) Glucose-Toleranztest (OGTT) mit 75 g in der Gravidität (24. – 28. SSW)
Indikation:Positiver bzw. pathologischer OGTT mit 50 g, klinischer Verdacht auf Gestationsdiabetes bzw. im 1. Trimenon bei
besonders gefährdeten Frauen (Alter ≥ 45 Jahre, Adipositas, arterielle Hypertonie, Gestationsdiabetes in vorheriger
495
M. Funktionstests
Gravidität, Typ 2 Diabetes mellitus bei Verwandten 1. Grades, Z.n. Geburt eines Kindes ≥ 4500 g, Z.n. Abort etc.,
siehe auch Risikofaktoren unter „oraler Glucose-50g-Screening-Test in der Gravidität “). Generell bei allen Schwangeren in der 24.-28. SSW.
Parameter:Glucose im NaF-Blut bzw. venösem Plasma
Durchführung:Erste Blutentnahme morgens nüchtern beim sitzenden Patienten nach mind. 8 Stunden Nahrungskarenz, orale Gabe
von 75 g Glucose in ca. 250 - 300 ml Wasser oder Tee in einem Zeitraum von ca. 3 – 5 min., weitere Blutentnahme
nach 60 und 120 min (kein Alkohol und kein Rauchen vor dem Test, kein Rauchen während des Testes!)
Anmerkung: Vorraussetzung für eine verlässliche Aussage des OGTT ist vor Testbeginn eine ausreichende Zufuhr von
Kohlehydraten (> 150 g pro die) sowie ein Testbeginn nach 6.00 und vor 9.00 Uhr morgens. Während des Tests muss
die Schwangere nahe dem Testlabor sitzen, darf nicht liegen oder sich unnötig bewegen und es sollen keine anderen Untersuchungen in dieser Zeit durchgeführt werden.
Standardbedingungen: Keine außergewöhnliche körperliche Belastung, normale, individuelle Ess- und
Trinkgewohnheiten, Keine akute Erkrankung/Fieber/Hyperemesis/ärztlich verordnete Bettruhe. Keine Einnahme
oder parenterale Applikation kontrainsulinärer Medikation am Morgen vor dem Test (z.B. Cortisol, L-Thyroxin,
ß-Mimetika, Progesteron). Nach Induktion der fetalen Lungenreife mit Betamethason wegen drohender Frühgeburt
müssen mindesten 5 Tage nach der letzten Injektion vergangen und die Schwangere zumindest teilmobilisiert sein,
bevor der oGTT angesetzt wird. Keine Voroperation am oberen Magen-Darm-Trakt (z.B. bariatrische Chirurgie mit
ablativ-malabsorptiven Verfahren), hier kommen als Alternative der i.v.-GTT beim Diabetologen oder BlutglukoseEinzelmessungen, besonders nüchtern, zum Einsatz. Keine außergewöhnliche körperliche Belastung.
Beurteilung:Ein Gestationsdiabetes liegt vor, bei Erreichen oder Überschreiten von mindestens einem der drei Grenzwerte im
venösen Plasma.
Pathologische Glucosewerte :
Glucose nüchtern
Wert nach 60 min.
Wert nach 120 min.
Venöses Plasma (NaF)
mg/dl (mmol/l)
> 92 (5.1)
> 180 (10.0)
> 153 (8.5)
(lt. Kerner W, Brückel J, Definition, Klassifikation und Diagnostik des Diabetes mellitus, Diabetologie 2010; 5: S. 109-112; Gestationsdiabetes mellitus (GDM), Evidenzbasierte Leitlinie zu Diagnostik, Therapie u. Nachsorge der Deutschen Diabetes-Gesellschaft
(DDG) und der Deutschen Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe (DGGG) S3-Leitlinie (AWMF-Leitlinie 057/008), Herausgeber
DDG: M.Kellerer, S.Matthaei; Herausgeber DGGG: R.Kreienberg; Autoren: H.Kleinwechter, U.Schäfer-Graf, C.Bührer, I.Hoesli, F.Kainer,
A.Kautzky-Willer, B.Pawlowski, K.Schunck, T.Somville, M.Sorger, Erstveröffentlichung 08/2011)
496
M . F u n k t io n s t e s t s
hCG-Test (Leydigzell-Funktions-Test)
Indikation:Differentialdiagnose Anorchie oder Kryptorchismus durch Überprüfung der endokrinen Kapazität der Testes.
Differentialdiagnose von primärem und sekundärem männlichem Hypogonadismus.
Parameter:Testosteron im Serum
Durchführung:Erste Blutentnahme zwischen 8.00 und 10.00 Uhr morgens, anschließend i.m.-Gabe von 5000 IE hCG (z.B. Choragon,
Predalon, Pregnesin, Primogyl) sowie bei Kindern 5000 IE hCG/m2 Körperoberfläche (max. 5000 IE) und erneute
Blutentnahmen nach 48 und/oder 72 Std.
Beurteilung:Normal ist ein 1.5-2.5-facher Anstieg über basal bei Männern bis zum ca. 60. Lebensjahr bzw. ein Anstieg auf
Werte > 9 ng/ml. Im Kindesalter vor Pubertätsbeginn sollten die Werte auf > 1 ng/ml (3.5 nmol/l) ansteigen. Beim
Kryptorchismus bzw. beim primären Hypogonadismus erniedrigter Anstieg bei bereits vorher messbaren Testosteronkonzentrationen (Wert nach HCG-Gabe < 1 ng/ml). Erhöhter Anstieg beim sekundären Hypogonadismus sowie völlig
fehlender Anstieg bei Anorchie.
Helicobacter-Atemtest
Indikation:V.a. Helicobacter-Besiedlung bei chronischer Gastritis Typ B, Ulcus ventriculi, Ulcus duodeni, Erfolgskontrolle ca. 4-6
Wochen nach Eradikationstherapie.
Parameter:C13-/C12-Kohlendioxid - Differenz (Delta - Wert) in der Ausatemluft (Röhrchen durch unseren Materialversand
erhältlich).
Durchführung:Zwei Röhrchen werden für den Ausgangswert (Nullwert) mit Atemluft wie folgt befüllt: Verschlußkappe aufschrauben, einen Trinkhalm bis auf den Grund des Röhrchens stecken, normal einatmen, die Luft ca. 5 - 10 sec. anhalten,
durch den Trinkhalm ausatmen und dabei den Trinkhalm langsam nach oben aus dem Röhrchen herausziehen. Röhrchen verschließen. Wiederholung der Prozedur mit dem 2. Röhrchen. Das C13-Harnstoff-haltige Pulver (ca. 75mg)
durch Zugabe kalter Flüssigkeit (Apfel- oder Orangensaft) auflösen: die Lösung muß vollständig getrunken werden,
ggfs. den Bodensatz durch Nachfüllen der Flüssigkeit auflösen und ebenfalls trinken. 30 min nach Einnahme der
C13-Harnstoff nochmals 2 Röhrchen mit Atemluft befüllen
Beurteilung:Normal:
< 5 Promille
Schwach positiv:
5-8 Promille
Leicht positiv:
8-12 Promille
Mittelgradig positiv: 12-16 Promille
Stark positiv:
>16 Promille
497
M. Funktionstests
Hungerversuch
Indikation:V.a. Insulinom
Parameter:Glucose im NaF- oder Kapillarblut, Insulin und C-Peptid im hämolysefreien Serum (auch EDTA- oder Heparinplasma,
innerhalb von 30 min. Zentrifugation der Probe, Serum bzw. Plasma abheben, möglichst gekühlter
Transport (4–8 °C), besser tiefgefroren, vorher Kühlboxen im Labor anfordern!), ggf. Proinsulin (tiefgefroren)
Durchführung:Beginn des Testes in der Regel mit der letzten Nahrungsaufnahme. Blutentnahmen für die Glucosebestimmung zu
Beginn nüchtern sowie tagsüber alle 2 Stunden und nachts alle 4 Stunden bis zum Abfall der Glucosewerte ≤ 60 mg/
dl, dann Verkürzung des Blutentnahmeintervalles auf eine 1 h und Blutentnahme für Glucose, Insulin, C-Peptid (ggf.
Proinsulin). Beendigung des Hungerversuches bei Glucosewerten < 40 mg/dl im Kapillarblut bzw. bei Glucosewerten
≤ 45 mg/dl im NaF-Blut bzw. bei Anzeichen einer Hypoglykämie. Am Ende des Testes nochmals Blutentnahme zur
Bestimmung von Glucose, Insulin, C-Peptid (ggf. Proinsulin). Anschließend Gabe von 1 mg Glukagon i.v. und Bestimmung der Glucose im NaF-Blut nach 10, 20 und 30 min..
Achtung: Durchführung des Testes nur unter stationären Bedingungen und bei sofortiger Möglichkeit einer Infusion
mit 20 % Glucose-Lösung! Absetzen aller nicht dringend erforderlichen Medikamente vor Testbeginn!
Nahrungskarenz für ca. 48 – 72 Stunden, wobei der Patient sich in den wachen Stunden bewegen kann und Kalorien- und Koffein-freie Getränke erlaubt sind.
Beurteilung:Bei Gesunden sollten die Glucosewerte nach 72 h nicht unter < 40 mg/dl im Kapillarblut bzw. nicht unter ≤ 45 mg/
dl im NaF-Blut abfallen. Der Insulinspiegel fällt auf sehr niedrige Werte < 6 mU/l, die C-Peptid-Werte fallen ebenfalls
auf Werte < 0.7 µg/l ab, der Insulin-Glucose-Quotient bleibt konstant bzw. sinkt nach 24 Stunden auf Werte < 0.25
ab. Bei Patienten mit Insulinom liegen die Glucosespiegel nach 72 h i.d.R. < 40 mg/dl im Kapillarblut bzw. ≤ 45 mg/
dl im NaF-Blut mit entsprechenden klinischen Symptomen bei deutlichem Anstieg des Insulininspiegels auf Werte > 6
mU/l und des C-Peptidwerts auf Werte > 0.7 µg/l) sowie Anstieg des Insulin-Glucose-Quotienten auf Werte > 0.33. Die
Mehrheit der Insulinom-Patienten haben Insulinwerte von 6 – 70 mU/l, wobei etwa 10% der Insulinompatienten mit
einer Hypoglykämie Insulinwerte < 6 mU/l hatten Bei Insulinom-Patienten tritt eine Hypoglykämie zu 98% der Fälle
innerhalb von 72 h ein. Die diagnostische Sicherheit des Hungerversuches wird durch die zusätzliche Glukagongabe
und den folgenden Verlauf der Glucosewerte noch erhöht. Bei normalen Patienten ohne einen Hyperinsulinismus
sind nach 72 h die Glykogenreserven der Leber erschöpft und nach Glukagongabe erfolgt kein signifikanter Anstieg
der Glucosewerte. Steigen jedoch die Glucosewerte nach Glykagongabe um 25 mgg/dl an, spricht dies für einen
pathologischen Hyperinsulinismus.
Bei faktieller Insulinzufuhr sind die C-Peptid-Werte niedrig, hingegen bei Einnahme von Sulfonylharnstoffen die
C-Peptid-Werte und der Insulinspiegel erhöht sind, so dass sich ggf. ein Nachweis dieser Substanzen im Serum
empfiehlt.
498
M . F u n k t io n s t e s t s
Fehlerqellen: Falsch-positive Ergebnisse beim Insulin-Glucose-Quotienten ergeben sich bei Patienten mit Insulinresistenz, so dass hier die Absolutwerte Berücksichtigung finden. Weiterhin zu beachten ist, dass Frauen in den zweiten
24 Stunden Glucosespiegel < 40 mg/dl haben können, ohne dass ein Insulinom vorliegt.
(Globaler) Hypophysenstimulationstest mit Releasing-Hormonen
Indikation:V.a. partielle oder komplette Hypophysenvorderlappeninsuffizienz verschiedenster Genese (entzündliche, degenerative Prozesse, Tumore, angeborene Störungen, Sheehan-Syndrom, Z.n. neurochirugischen Eingriff)
Parameter:Cortisol, LH, FSH, Prolaktin, STH im Serum, ACTH im EDTA-Plasma (am besten EDTA-Blut zentrifugieren, Plasma
abheben und einfrieren, vorher Kühlboxen beim Labor anfordern! Bitte Kunststoffröhrchen verwenden!)
Durchführung:Morgens, nüchtern, zunächst Legen eines sicheren venösen Zugangs und vor Injektion erste Blutentnahme für die
basalen Werte, dann Gabe von je 100 µg CRH, GHRH, LHRH und 200 µg TRH nacheinander i.v. und nach 15, 30, 60
und 90 erneute Blutentnahmen. Bestimmung von Prolaktin, LH, FSH und TSH nur zu den Zeitpunkten 0 und 30 min.
Die Bestimmung von HGH sollte in allen Proben erfolgen.
Kontraindikation: Überfunktion der Hypophyse, große Hypophysentumoren (Tumornekrose?), instabile Angina
pectoris, frischer Myokardinfarkt, schwere obstruktive Atemwegserkrankung (jeweils für TRH-Stimulation)
Nebenwirkungen: Flushsymptomatik, Harndrang, hämorrhagische Infarzierung von Hypophysenadenomen (jeweils
auf TRH selten).
Anmerkung: Bei V.a. Nebenniereninsuffizienz nach Ende des Testes Gabe von 30 mg Hydrocortison.
Beurteilung:Diagnose von kompletten und partiellen HVL-Insuffizienzen unter Berücksichtigung der peripheren Hormonwerte
ggf. auch Prüfung einzelner Funktionen. Beurteilung ACTH und Cortisol siehe unter CRH-Test, LH und FSH siehe
unter LH-RH-Test, TSH siehe unter TRH-Stimulationstest, Prolaktin siehe unter Prolaktin-Stimulationstest (TRH-Test),
HGH bzw. STH siehe unter GH-RH-Test.
Fehlerqellen: Bei Adipositas kann der HGH-Anstieg abgeschwächt sein. Bei einer Hyperthyreose unter thyreostatischer Therapie kann TSH nach TRH noch bis zu 6 Monaten nach Therapiebeginn nicht stimulierbar sein. Bei Einnahme von Kontrazeptiva oder unter Testosteronsubstitution ist ein verminderter LH-/FSH-Anstieg zu erwarten.
Insulinhypoglykämie-Test
Indikation:Überprüfung der Hypophysenvorderlappenfunktion bezüglich der HGH-, ACTH- (Cortisol-) und Prolaktin-Sekretion
unter Einschluss der Hypothalamusfunktion, DD: hypothalamische oder hypophysäre Ursache für eine HVL-Insuffizienz,
V.a. auf HGH-Mangel bzw. Minderwuchs (Goldstandard).
499
M. Funktionstests
Parameter:Human growth hormone (HGH, STH), Cortisol und Prolaktin im Serum, ACTH im EDTA-Blut (am besten EDTA-Blut
zentrifugieren, Plasma abheben und einfrieren, vorher Kühlboxen beim Labor anfordern! Bitte Kunststoffröhrchen
verwenden!), Glucose im NaF-Blut oder im kapillären Vollblut, bei V.a. HGH-Mangel nur HGH allein ausreichend.
Durchführung:Morgens, nüchtern Legen eines sicheren venösen Zuganges, erste Blutentnahme bei 0 min., danach Injektion von 0.1
– 0.15 IE/kg Körpergewicht (bei Kindern 0.05 IE/kg Körpergewicht) Normalinsulin bzw. Altinsulin (Dosierung abhängig vom zuvor bestimmten Glucosewert bzw. ggf. höhere Dosis bei Akromegalie, Adipositas oder Cushing-Syndrom
z.B. 0.2 – 0.3 IE/kg Körpergewicht.) und anschließend weitere Blutentnahmen im Abstand von 30 min. für 2 h oder
nach 15, 30, 45, 90 u. 120 min., unmittelbar anschließend orale Nahrungsaufnahme und weitere Beobachtung des
Patienten für ca. 1 Stunde. Der Test ist nur aussagekräftig, wenn die Glucosewerte < 40 mg/dl (< 2.2 mmol/l) liegen
bzw. wenn die Glucosekonzentration auf 50 % des Ausgangswertes absinkt.
Achtung!: Durchführung des Testes unter ärztlicher Aufsicht am liegenden Patienten, am besten unter stationären
Bedingungen und bei sofortiger Möglichkeit einer Infusion mit 50 ml einer 20 % Glucose-Lösung oder einer Gabe
von Glukagon! Innerhalb der ersten 5 – 30 min. nach Insulingabe treten häufig eine leichte Übelkeit, Blässe,
Schwitzen oder sogar eine leichte Benommenheit auf. Bei Auftreten von neuroglykopenischen Symptomen wie
Verwirrtheit und Desorientierung Abbruch des Testes und Gabe einer 20 %igen Glucoselösung. Unter Umständen
unmittelbar vor der Glucoseinjektion noch Blutentnahme zur Bestimmung der Hormone. In Abhängigkeit vom
klinischen Zustand des Patienten kann der Test ggf. nach Glucosegabe zu Ende geführt werden.
Kontraindikation: Der Test ist bei zerebralem Anfallsleiden, koronarer Herzerkrankung, Vitium cordis, Herzrhythmusstörungen, bei Neugeborenen, Säuglingen und Kleinkindern < 4 Jahre und im Alter > 65 Jahre kontraindiziert.
Beurteilung:Bei Gesunden gilt ein Anstieg des Cortisolspiegel um > 8 µg/dl (> 200 nmol/l) und ein maximaler Cortisolswert
> 20 µg/dl (550 nmol/l) bzw. der Anstieg des Cortisolspiegel um mindestens 50 % als normal. Auch beim ACTH sollte
ein Anstieg der Werte um mindestens 50 % bzw. auf Werte > 150 ng/l erfolgen. Die HGH-Konzentration sollten zum
Ausschluß einers hypophysären HGH-Mangels im Kindesalter nach 30-45 min. auf Werte > 10 ng/ml ansteigen, wobei
HGH-Werte > 20 ng/ml einen Mangel absolut ausschließen. HGH-Werte von 5 – 9 ng/ml weisen auf eine partiellen,
HGH-Werte < 5 ng/ml auf einen kompletten HGH-Mangel hin. Bei Erwachsenen hat keine gesunde Person im Insulinhypoglykämie-Test einen HGH-Gipfelwert von < 5 ng/ml und ein HGH-Anstieg ≤ 3 ng/ml gilt als sicherer Nachweis
eines schweren HGH-Mangels. Zusammen spricht ein fehlender Anstieg von HGH und ACTH für eine hypothalamische Schädigung, wenn nach Gabe von Relasing-Hormonen im Hypophysenstimulationstest ein Anstieg der Hormone
erfolgt. Bei primär oder gleichzeitig bestehender hypophysärer Schädigung bleibt auch dieser Hormonanstieg aus.
500
M . F u n k t io n s t e s t s
Kochsalzinfusionstest
Indikation:DD: psychogene Polydipsie, partieller zentraler Diabetes insipidus, partieller nephrogener Diabetes insipidus
(sog. Goldstandard der DD Polydipsie/Polyurie auch Hickey-Hare-Test gennannt).
Parameter:Serumosmolalität und ggf. Natrium im Serum, Antidiuretisches Hormon (ADH) im EDTA-Blut (EDTA-Blut möglichst
nach ca. 30 min. zentrifugieren, EDTA-Plasma einfrieren und Transport in Spezialkühlboxen zum Labor!)
Durchführung:Infusion einer 5%igen Kochsalzlösung (0.06 ml/kg/min.) über 2 Stunden, Blutentnahmen zum Zeitpunkt 0, 30, 60, 90,
120 min.
Nebenwirkungen: Während des Testes können Kopfschmerzen, Schwindelgefühle und Benommenheit auftreten.
Kontraindikation: Dehydration und/oder Natriumwerte > 150 - 155 nmol/l bzw. Abbruch des Testes!
Beurteilung:Normaler Anstieg der ADH-Konzentration auf 3 – 8 ng/l (basal 0.3 – 0.8 ng/l) bei Gesunden und bei psychogener
Polydipsie. Beim zentralen Diabetes insipidus erfolgt trotz einer Serumosmolalität > 295 mosmol/kg kein Anstieg der
ADH-Konzentration sowie beim partiellen Diabetes insipidus ein subnormaler oder verzögerter Anstieg von ADH.
Im Falle eines nephrogenen Diabetes insipidus ist die Serumosmolalität (> 295 mosmol/kg) basal bereits erhöht, ADH
ebenfalls bereits basal erhöht und es erfolgt ein weiterer deutlicher bis überschießender Anstieg von ADH nach
NaCl-Infusion.
Kreatinin-Clearance
Indikation:Nierenfunktionseinschränkungen z.B. bei Hypertonie, Diabetes, Gicht, Nierensteinen, chronischer Nierenanamnese.
Pathologische Werte auch bei normalem Serumkreatinin möglich.
Parameter:Kreatinin im Serum und Sammelurin
Durchführung:Sammeln des Urins über 24-h z.B. von 7.00 bis 7.00 Uhr, Blutentnahme idealerweise zu Beginn und zum Ende der
Sammelperiode zur Mittelwertbildung.
Beurteilung:Feststellung einer reduzierten Kreatinin-Clearance mit Hilfe der Clearanceformel (Ergebnis wird berechnet), altersund geschlechtsabhängige Normwerte siehe Befundbericht.
Laktose-Belastung, Laktosetoleranztest
Indikation:V.a. Laktosemalabsorption durch primären oder sekundären Laktasemangel
Parameter:Glucose im NaF-Blut oder Kapillarblut, H2-Konzentration in der Ausatemluft
Durchführung:
Erste Blutentnahme und Atemprobe nüchtern, dann orale Gabe von 50 g Laktose (in 300 ml Wasser oder Tee),
bei Kindern 2 g/kg Körpergewicht maximal 50 g, anschließend weitere Blutentnahmen und Atemproben nach
15, 30, 60, 90 und 120 min.
501
M. Funktionstests
Beurteilung:Normal sind H2-Atemwerte < 20 ppm und ein Glucose-Anstieg im venösen Vollblut > 20 mg/dl (im Kapillarblut >
25 mg/dl) bezogen auf den Ausgangswert. Treten H2-Atemwerte >20 ppm nach 30 min und später auf , bestehen
gastrointestinale Symptome und fehlt ein Blutglucoseanstieg, so besteht sehr wahrscheinlich eine Laktoseintoleranz.
(Bei v.a. primäre Laktoseintoleranz kann auch der Laktase-Gen-Test im EDTA-Blut durchgeführt werden)
LH-RH-Test (GnRH-Test)
Indikation:V.a. Hypogonadismus und Ovarialinsuffizienz; DD: zwischen niedrig normalen und pathologischen FSH- und
LH-Werten, DD: hypophysärer oder hypothalamischer Hypogonadismus, DD: Pseudopubertas praecox (gonadotropinunabhängige bzw. periphere PP) oder Pubertas praecox vera (gonadotropinabhängig bzw. zentrale PP) oder
praemature Pubarche, DD: konstitutionelle Pubertas tarda bzw. Entwicklungsverzögerung (KEV) und idiopathischer
hypogonadotroper Hypogonadismus, Einsatz im Rahmen eines (globalen) Hypophysenstimulationstests bei V.a.
(partielle) Hypophyseninsuffizienz.
Parameter:LH, FSH im Serum
Durchführung:Zunächst Blutentnahme, dann Gabe von 100 µg LH-RH i.v. (z.B. LHRH-Ferring, Relefact LHRH 0.1) bei Erwachsenen
(bei Frauen können auch 25 µg eingesetzt werden), weitere Blutentnahmen nach 30 bei Frauen und nach 45 oder
60 min. bei Männern. Bei Kindern werden 60 µg/m2 Körperoberfläche bzw. mindestens 25 µg und maximal 100 µg
LHRH injiziert und es erfolgt nur eine weitere Blutentnahme nach 30 min.. Im Falle eines länger bestehenden hypothalamisch bedingten Hypogonadismus ggf. Testwiederholung nach 36-stündiger pulsatiler Applikation von LHRH
(5 µg alle 90 min. von 18 Uhr bis 6.00 Uhr am übernächsten Tag).
Beurteilung:Bei Frauen ist für LH ein Anstieg auf > 2-8-fache Werte (Anstieg der LH-Konzentrationen in Abhängigkeit von
der Zyklusphase und Androgenstatus z.B. überschießender LH-Anstieg bei Hyperandrogenämie) und bei FSH auf
Werte > 2-3fach normal. Männer zeigen einen 1.5-f bis 3-fachen Anstieg bei LH und bei FSH oft nur einen geringen
Anstieg bis auf 1.5-fach erhöhte Basalwerte. Ein völliges Fehlen eines Anstieg nach Vorbehandlung mittels pulsatiler
LHRH-Applikation beweist eine hypophysäre Insuffizienz. Bei hypothalamischen Hypogonadismus zeigt sich nach der
pulsatilen Vorbehandlung mit LH-RH ein Anstieg der Gonadotropine.
Bei Kindern ist der Anstieg von LH abhängig vom chronologischen Alter und vom Pubertätsstadium, wobei ein LH/
FSH-Quotient < 1 bei den stimulierten Werten normal ist bzw. einem praepubertärem Zustand entspricht. Ein LH/
FSH-Quotient > 1 (entspricht dem Quotienten bei Erwachsenen) findet sich bei der zentralen Pubertas praecox,
nicht jedoch bei der Pseudopubertas praecox und der praematuren Pubarche. Bei konstitutioneller Pubertas tarda
bzw. Entwicklungsverzögerung (KEV) ist ein LH/FSH-Anstieg nachweisbar, hingegen beim idiopathischen hypogonadotropen Hypogonadismus ein LH/FSH-Anstieg ausbleibt und eine Testwiederholung nach pulsatiler LHRH-Gabe
durchgeführt werden sollte.
502
M . F u n k t io n s t e s t s
Metopiron-Kurztest
Indikation:V.a. sekundäre/tertiäre Nebennierenrindeninsuffizienz bei Erkrankungen der Hypophyse und/oder des Hypothalamus
Parameter:11-Desoxycortisol und Cortisol im Serum, ACTH im ACTH-Plasma (am besten EDTA-Blut zentrifugieren, Plasma abheben und einfrieren, vorher Kühlboxen beim Labor anfordern! Bitte Kunststoffröhrchen verwenden!)
Durchführung:Um 23.00 oder 24.00 Uhr Einnahme von 30 mg Metopiron/kg Körpergewicht (in Kapseln à 250 mg/maximal 2 g)
zusammen mit einer kleinen Mahlzeit (z.B. 1 Glas Milch und 1 Scheibe Brot) und am nächsten Morgen Blutentnahme
um 8.00 Uhr.
Achtung: Durchführung am besten nur unter stationären Bedingungen, da bei Patienten mit niedrigen basalen
Cortisolwerten eine akute NNR-Insuffizienz auftreten kann.
Kontraindikationen: Neugeborene, Säuglinge, Kleinkinder (Hypoglykämierisiko!)
Beurteilung:Ein Anstieg des 11-Desoxycortisols von sehr niedrigen Werten (< 1 ug/l bzw. 1 –2 nmol/l) auf Werte > 70 ug/l (180
nmol/l), ein Abfall des Cortisols auf Werte < 8 ug/dl und ein Anstieg von ACTH > 200 ng/l nach Metopiron-Gabe ist
normal. Ein subnormaler Anstieg von 11-Desoxycortisol spricht für eine primäre oder sekundäre Nebenniereninsuffizienz (Differenzierung nicht möglich), ein normaler bis übermäßger Anstieg (>220-fach) für ein zentrales CushingSyndrom und ein ausbleibender Anstieg für einen autonomen NNR-Tumor oder eine ektope ACTH-Produktion. Die
gemeinsame Bestimmung von 11-Desoxycortisol, Cortisol und ACTH erlaubt eine sichere Bewertung von hypothalamisch-hypophysären Störungen der Hypophysen-NNR-Achse. Der Metopiron-Test entspricht in seiner Wertigkeit dem
Insulinhypoglykämie-Test, wobei für den Patienten weniger Nebenwirkungen und Risiken bestehen.
Fehlerqellen: Vortäuschung eines zentralen Cushing-Syndroms durch vermehrte Bildung von 11-Desoxycortisol
nach Metopiron-Gabe bei großen hormonaktiven NNR-Tumoren. Unter Einnahme von Medikamenten, die zu einer
Enzyminduktion in der Leber führen (z.B. Phenytoin, Carbamazepin, Phenobarbital, Rifampicin etc.) kommt es durch
eine Beschleunigung des Metopiron-Metabolismus zu einer unzureichenden Hemmung der 11ß-Hydroxylase. Diese
Medikamente sollten vor dem Test abgesetzt werden. Falls nicht möglich, weist bei diesen Patienten ein morgendlicher Cortisolwert < 10 µg/dl dennoch auf eine ausreichende Suppression durch Metopiron und somit auf einen
auswertbaren Test hin. Auch bei ca. 4% der Gesunden führt ein beschleunigter Metopironabbau zu falsch negativen
Testergebnissen, erkennbar am unzureichenden Abfall von Cortisol (Cortisol > 7,5 ug/dl).
503
M. Funktionstests
Prolaktin-Stimulationstests (Metoclopramid, TRH)
Indikation:V.a. latente Hyperprolaktinämie (meist nur nächtliche Prolaktinerhöhung bei noch normalen Tagesspiegeln von Prolaktin), welche bei Frauen zu Zyklusstörungen wie Oligomenorrhoe, zu Anovulation, Corpus luteum-Insuffizienz und
Infertiltität führen kann, wiederholte Messung von leicht erhöhten Prolaktinspiegeln (20 – 30 ng/ml bzw. 424 – 636
mIE/l) nach Auschluß einer latenten Hypothyreose und bei unauffälliger Medikamentenanamnese (keine Therapie
mit prolaktinfreisetzenden Medikamenten wie Neuroleptika, Antidepressiva, Antihypertonika, Östrogene etc.).
Parameter:Prolaktin im Serum
1. Metoclopramid-Test (Paspertin-Test):
Durchführung:Blutentnahme nüchtern 2 – 4 h nach dem Aufstehen bzw. zwischen 8.00 und 10.00 Uhr für den basalen Prolaktinspiegel, Gabe von 10 mg Metoclopramid (MCP, Paspertin) i.v., 2. Blutentnahme nach 30 min. (ggf. auch nach 45 u.
60 min.). Bei Frauen sollte der Test in der frühen Follikelphase (3.-6. Zyklustag) oder in der Mitte der Lutealphase
(20.-22. Zyklustag) durchgeführt werden.
Nebenwirkungen: Müdigkeit (cave: Fahrtüchtigkeit!), Kopfschmerzen, Schwindel, Diarrhoe, allergische Reaktion.
Beurteilung:Normal ist ein basaler Prolaktinspiegel < 20 ng/ml (424 mIU/l) sowie ein Anstieg von Prolaktin auf einen Wert <
200 ng/ml (< 4240 mIU/l) in der Follikelphase (Lutealphase < 424 ng/ml bzw. 9000 mIU/l) nach Metoclopramid. Bei
normalem basalen Prolaktinspiegel und erhöhtem Anstieg von Prolaktin nach Metoclopramid liegt eine latente
Hyperprolaktinämie vor. Ist der basale als auch der stimulierte Prolaktinspiegel erhöht, liegt eine manifeste Hyperprolaktinämie vor.
Anmerkung: Die Relevanz einer durch den Metoclopramid-Test entdeckten latenten Hyperprolaktinämie ist heute
umstritten. Auch spielt die Bedeutung dieses Testes heute in der gynäkologischen Endokrinologie eine eher untergeordnete Rolle.
2. TRH-Test:
Durchführung:Blutentnahme nüchtern 2 – 4 h nach dem Aufstehen bzw. zwischen 8.00 und 10.00 Uhr für den basalen Prolaktinspiegel, Gabe 200 µg TRH (z.B. TRH Ferring, Antepan, Relefact TRH 200), 2. Blutentnahme nach 30 min. (ggf. auch
nach 45 u. 60 min.). Bei Frauen sollte der Test in der frühen Follikelphase (3.-6. Zyklustag) oder in der Mitte der
Lutealphase (20.-22. Zyklustag) durchgeführt werden.
Kontraindikation und Nebenwirkungen: siehe unter TRH-Stimulations-Test.
Beurteilung:Normal ist ein basaler Prolaktinspiegel < 20 ng/ml (424 mIU/l) sowie ein Anstieg von Prolaktin auf Werte zwischen
100 - 200 ng/ml (2120 - 4240 mIU/l) nach TRH-Gabe. Bei normalem basalen Prolaktinspiegel und erhöhtem Anstieg
von Prolaktin nach Metoclopramid liegt eine latente Hyperprolaktinämie vor. Ist der basale als auch der stimulierte
Prolaktinspiegel erhöht, liegt eine manifeste Hyperprolaktinämie vor.
504
M . F u n k t io n s t e s t s
Quecksilber-Mobilisationstest (DMPS-Mobilisations-Test)
Indikation:V.a. Quecksilberbelastung durch Amalgam
Parameter:Kupfer und Quecksilber im Spontanurin
Durchführung:Gabe von 10 mg DMPS (Dimaval)/kg Körpergewicht als Kapsel oral oder 3 mg DMPS/kg Körpergewicht i.v., anschließend sollte der Patient 150 ml Flüssigkeit oral aufnehmen, gewinnen von 10-20 ml Spontanurin nach 30-45 min.
nach Gabe von DMPS i.v. bzw. nach 2 h nach oraler Gabe von DMPS.
Kontraindikation: Eingeschränkte Nierenfunktion (Kreatinin im Serum > 2.5 mg/d).
Nebenwirkungen: Nach i.v.-Injektion von Dimaval kann es bei ca. 1 % der Patienten zu einer flüchtigen Hautreaktion
kommen. Cave: vegetativ sehr labile Patienten können einen Kollaps erleiden.
Beurteilung:Eine Quecksilberausscheidung > 50 µg/g Kreatinin spricht für eine Quecksilberbelastung durch Amalgam. Bei geringer Quecksilberausscheidung < 50 µg/g Kreatinin und stark erhöhten Kupferwerten (> 2500 µg/g Kreatinin) ist ein
erneuter DMPS-Test zu empfehlen (zur weiteren Mobilisation der Quecksilberdepots).
TRH-Stimulationstest
Indikation:V.a. hypophysäre oder hypothalamische Störung (DD: sekundäre und tertiäre Hypothyreose), bei Patienten mit einer
„non-thyroidal illnes (NTI) und gleichzeitigem Verdacht auf eine Schilddrüsenerkrankung, (Test zur Stimulation von
Prolaktin siehe unter Prolaktin-Stimulationstest, TRH-Test).
Parameter:TSH im Serum
Durchführung:Erste Blutentnahme nüchtern, dann Gabe von 200 µg (400 µg) TRH i.v. bei Erwachsenen (bei Kindern 7 ug/kg
Körpergewicht) in 2 min und 2. Blutentnahme nach 30 min (nur bei Erwachsenen alternativ nasale Applikation von
2 mg TRH und Blutentnahme nach 30 min bis zu 2 Std. oder orale Gabe von 40 mg TRH und Blutentnahme nach 3-4
Std.). Zur Differenzierung zwischen hypophysärer (sekundärer) und hypothalamischer (tertiärer) Hypothyreose sind
weitere Blutentnahmen nach 60, 90 und 120 min. erforderlich (bei tertiärer Hypothyreose TSH-Maximun verzögert
erst nach 90 -120 min.).
Kontraindikation: schwere Überempfindlichkeitsreaktion bei vorheriger TRH-Gabe, instabile Angina
pectoris, erhöhte Krampfbereitschaft, ausgeprägte Bronchialobstruktion, akuter Herzinfarkt, bekanntes
Hypophysenmakroadenom.
Nebenwirkungen: > 10% Wärme-Hitzegefühl, Übelkeit bis Erbrechen, Harndrang, milde Kopfschmerzen, Benommenheit, Mißempfindungen (Abdominal- u. Beckenorgane), < 1% Engegefühl in der Brust, Mißempfindungen an
den Extremitäten, Geschmacksstörung, Mundtrockenheit, Hungergefühl, Puls- und Blutdruckanstieg.
505
M. Funktionstests
Beurteilung:
Normal ist ein TSH-Wert von 2-25 µIU/ml (nach oraler Gabe bis 30 µIU/ml). Sofern auch die peripheren Schilddrüsenhormone im Normbereich liegen, ist eine Funktionsstörung des Regelkreises Hypophyse/Schilddrüse ausgeschlossen.
Eine fehlende TSH-Antwort (< 2 µIU/ml) bei erniedrigten T4- und T3-Werten kann auf eine sekundäre bzw. hypophysär bedingte Hypothyreose hinweisen. Im Falle einer hypophysären Störung ist der TSH-Anstieg bei großen Hypophsentumoren oft erniedrigt oder niedrig normal. Eine Ausnahme können supraselläre Tumoren darstellen, hier
kann der TSH-Anstieg nach TRH gelegentlich normal oder sogar erhöht sein. Bei Vorliegen einer hypothalamischen
Störung zeigt sich ein Anstieg von TSH, der jedoch verzögert sein kann. Eine fehlende TSH-Antwort und normale T4und T3-Werte bei klinischer Euthyreose könnten für eine Störung des Regelkreises Hypophyse/Schilddrüse bei beg.
thyreoidaler Autonomie oder bei Frühform eines M. Basedow sprechen (DD: Therapie mit Schilddrüsenhormonen).
Erhöhte T4- und T3-Werte bei fehlender TSH-Antwort sind ein Hinweis auf eine klinisch manifeste Hyperthyreose
(DD: Therapie mit Schilddrüsenhormonen). Ein TSH-Anstieg > 25 µIU/ml (nach oraler Gabe bis 30 µIU/ml) bei erniedrigten T4-und T3-Werten zeigt eine manifeste Hypothyreose an. Normale T4- und T3-Werte bei einer überschießenden
TSH-Antwort könnten ein Hinweis auf eine latente Hypothyreose, eine Jodverwertungsstörung, auf einen extremen
Jodmangel oder eine Frühform der chronischen Thyreoiditis sein.
Fehlerquellen: Bei jeder Beurteilung müssen auch folgende extrathyroidale Faktoren berücksichtigt werden:
– Unter Östrogenzufuhr zeigt sich eine veränderte TSH-Antwort.
– Eine verminderte TSH-Anwort kann vorliegen beim Cushing-Syndrom, unter Glukokortikoidtherapie, bei einem
Wachstumshormonexzess, bei Hypercalzämie, bei totalem Fasten, bei schweren extrathyreoidalen Erkrankungen,
bei psychiatrischen Kankheiten, unter der Gabe von Schilddrüsenhormonen und unter verschiedenen Medikamenten wie Dopamin oder Psychopharmaka.
– Eine verstärkte TSH-Antwort kann vorliegen beim M. Addison, bei einem Mangel von Wachstumshormon oder
unter Einnahme von Metoclopramid.
Wachstumshormon-Hemmtest (HGH, STH) mittels (oralem) Glucose-Toleranztest (OGTT) mit 75 g
Indikation:V.a. HGH-Exzess bzw. Akromegalie, Hochwuchs im Kindesalter
Parameter:Human-growth-hormone (HGH) bzw. somatotropes Hormon (STH) im Serum
Durchführung:Wie OGTT mit 75 g Glucose: Erste Blutentnahme morgens nüchtern beim sitzenden oder liegenden Patienten nach
mind. 10 - 16 Stunden Nahrungskarenz (kein Alkohol und kein Rauchen vor dem Test, kein Rauchen während des
Testes), orale Gabe von 75 g Glucose in ca. 250 - 300 ml Wasser oder Tee (Kinder erhalten 1,75 g/kg Körpergewicht
(max. 75 g) in einem Zeitraum von ca. 3 – 5 min., weitere Blutentnahme nach 30, 60, 90 und 120 min. (ggf. bis zu
3h).
506
M . F u n k t io n s t e s t s
Achtung: Voraussetzung für eine verlässliche Aussage des oralen Glucose-Toleranztestes ist vor Testbeginn eine
ausreichende Zufuhr von Kohlenhydraten (> 150 g pro die) sowie eine normale körperliche Aktivität (z. B. kein Z.n.
Bettlägerigkeit oder nach übermäßiger körperlicher Anstrengung). Weiterhin sollten störende Medikamente sofern
möglich abgesetzt werden und ein Abstand von mindestens drei Tagen zur Menstruation eingehalten werden.
Weitere Störfaktoren siehe unter (oraler) Glucose-Toleranztest (OGTT).
Beurteilung:Mit ansteigenden Blutglucosewerten erfolgt eine Suppression des HGH-Spiegels. Zum Ausschluß einer Akromegalie
sollte der HGH-Spiegel zu einem beliebigen Zeitpunkt nach Glucoseeinnahme auf einen Wert < 1 ng/ml supprimiert
werden (bei ultrasensitiven Testen < 0.3 ng/ml). Eine fehlende Suppression oder ein paradoxer Anstieg von HGH
zusammen mit einem erhöhtem IGF-I-Wert spricht für eine Akromegalie.
Bei Akromegalie unter Somatostatinanaloga sollte zum Nachweis einer „biochemischen Heilung“ HGH nach Glucosegabe bzw. OGTT < 1 ng/ml liegen und der IGF-I-wert normalisiert sein. Eine Akromegalie kann ausgeschlossen
werden, wenn eine Zufalls-HGH-Bestimmung bei < 0.4 ng/ml liegt und der IGF-I-Wert für Alter und Geschlecht im
Normbereich liegt.
Fehlerquellen: Ungenügende oder. fehlende Suppression und/oder paradoxer Anstieg von HGH im OGTT bei Lebererkrankungen, Niereninsuffizienz, Diabetes mellitus, Fehlernährung, Anorexie, Gravidität, Streß und Östrogentherapie. Die Sensitivität des Testes liegt bei etwa 90%.
Wachstumshormon-Stimulationstest (HGH-, STH-Stimulationstest)
Indikation:V.a. HGH-Mangel bzw. Minderwuchs im Kindesalter, V.a. (partielle) Hypophyseninsuffizienz
Parameter:Human-growth-hormone (HGH) bzw. somatotropes Hormon (STH) im Serum
Der Goldstandard für eine Stimulation von HGH ist der Insulinhyopglykämie-Test (Einzelheiten siehe dort). GH-RHStimulationstest und Arginin-Cl-Test siehe dort.
Weitere Provokationsteste zur Stimulation von HGH sind z.B. GHRH+Arginin-Test, Clonidin-Test, Test nach körperlicher Belastung:
Prinzip:
GHRH+Arginin-Test: GHRH stimuliert die HGH-Sekretion aus der Hypophyse, während Arginin gleichzeitig die Somatostatin-Sekretion hemmt, welche normalerweise eine Hemmung der HGH-Sekretion bewirkt. Der GHRH+ArgininTest gilt als dem Insulinhypoglykämie-Test diagnostisch gleichwertig!
Durchführung:Blutentnahme am Patienten nach mind. 12 h Nahrungskarenz am besten morgens zw. 8.00-9.00 Uhr, Gabe von
1 µg GHRH/kg Körpergewicht als Bolus i.v. und von 0.5 g Arginin/kg Körpergewicht (max. 30 g) in 500 ml 0.9%-NaCLLösung über 30 min., weitere Blutentnahmen 15, 30, 45, 60 und 90 min. nach Bolusgabe von GHRH .
Nebenwirkungen: Bei ca. 20% der Patienten treten (kurze) Gesichtsrötungen sog. Flushs auf,häufig bei älteren
Kindern.
507
M. Funktionstests
Kontraindiaktion: Entgleister Diabetis mellitus
Anmerkung: Bei einer hypothalamischen Störung, während der längere Zeit keine Stimulation der Hypophyse mit
GHRH erfolgte, kann es trotz intakter Hypophysenfunktion zu einer ungenügenden Sekretion von HGH nach GH-RH
kommen. In diesem Fall sollte der GH-RH-Test erst nach mehrfacher Gabe von GH-RH 1 µg/kg Körpergewicht
s.c. über z.B. 5 Tage durchgeführt werden (ansonsten falsch-positver Test).
Beurteilung :
Achtung: für Erwachsene gelten andere Cut-off-Werte als für Kinder (siehe unter Beurteilung am Ende):
BMI
< 25 kg/m2: 11 ng/ml
BMI 25-30 kg/m2: 8 ng/ml
BMI
> 30 kg/m2: 4 ng/ml
Ein HGH-Anstieg unter diese Cut-off-Werte spricht für einen hypophysären HGH-Mangel. Bei einem Anstieg von
HGH auf Werte im Bereich 11-16.5 ng/ml kann ein partieller HGH-Mangel vorliegen.
Prinzip:
Clonidin-Test: Katecholaminerge Substanz, welche die HGH-Sekretion der Hypophyse stimuliert.
Durchführung:Blutentnahme am Patienten nach mind. 12 h Nahrungskarenz am besten morgens, Gabe von 0.075 mg/m2 Körperoberfläche Clonidin (Catapresan) oral, weitere Blutentnahmen nach 30, 60, 90, 120 und ggf. nach 150 und 180 min.
Der Patient sollte während und nach dem Test unter Beobachtung stehen.
Nebenwirkung: Somnolenz und Müdigkeit, in 2-3% der Fälle Hypoglykämien. Ein Blutdruckabfall ist erst ab einer
Dosis vom 0.15 mg/m2 Körperoberfläche zu erwarten.
Anmerkung: Der Test sollte über 3 h durchgeführt werden, da die HGH-Stimulation individuell sehr unterschiedlich
sein kann.
Prinzip:
Test nach körperlicher Belastung: Durch körperliche Belastung erschöpfen sich die Kohlenhydrat-und Glykogenreserven, nach ca. 20-30 min. erfolgt daher eine vermehrte Sekretion von HGH und mittels Lipolyse werden Fettsäuren
zur Verbrennung bereitgestellt
Durchführung:Blutentnahme am Patienten nach mind. 12 h Nahrungskarenz am besten morgens, anschließemd körperliche
Belastung für 10 min. auf dem Fahrradergometer (1-2 W/kg KG), durch Treppensteigen oder andere kontrollierbare
Anstrengungen. Nach einer Ruhepause von 20 min. erneute Blutentnahme. Der Test sollte unter Beobachtung
durchgeführt werden
Kontraindikation: Evtl. Herzinsuffizienz und Vitium cordis
Nebenwirkungen: Selten Erschöpfung, Kollaps
.
Anmerkung: Der Test ergibt in 70 – 90 % der Fälle eine klare und zuverlässige Ausssage bei seltenem Auftreten von
Nebenwirkungen. Aufgrund der längeren Dauer des Testes wird dieser seltener durchgeführt. Cave: Bei Kindern mit
konstitutioneller Entwickungsverzögerung zeigt sich in ca. 30 % der Fälle ein ungenügender HGH-Anstieg.
508
M . F u n k t io n s t e s t s
Beurteilung:Normal ist ein Anstieg von HGH auf Werte > 10 ng/ml, wobei ein Anstieg auf HGH-Werte > 20 ng/ml einen HGHMangel ausschließt. Bei HGH-Mangel liegen die HGH-Werte nach Stimulation < 5 ng/ml. HGH-Werte zwischen
5 – 9 ng/ml weisen auf einen partiellen Mangel an HGH hin. Zum sicheren Nachweis eines HGH-Mangels bei V.a.
Minderwuchs, sollten zur Diagnosesicherung die HGH-Werte in zwei Provokationstesten < 10 ng/ml liegen. Beim
Erwachsenen sollten zum Nachweis eines isolierten HGH-Mangels jeweils zwei Provokationsteste durchgeführt
werden. Liegen gleichzeitig weitere Ausfälle von Hypophysenhormonen vor, wird die Durchführung von nur einem
Stimulationstest als ausreichend empfohlen (lt. Konsensusrichtlinien der Growth Hormone Research Society).
(D-) Xylose-Toleranztest
Indikation:V.a. Malabsorptionssyndrom, V.a. Störung der funktionellen Integrität des oberen Dünndarmes.
Parameter:quantitative D-Xyloseausscheidung im 5-h-Sammelurin, D-Xylose im NaF-Blut (Serum)
Durchführung:Der nüchterne Patient trinkt nach Blasenentleerung 25 g D-Xylose in 300 ml Wasser (und zusätzlich 300 ml Wasser
oder Tee zur ausreichenden Diurese). Anschließend beginnt die 5-stündige Sammelperiode des Urins und es werden
nach 15, 60 und 120 min. Blutproben entnommen.
Nebenwirkungen: Symptome der Kohlenhydratintoleranz wie Blähungen, Diarrhoe, Flatulenz und Nausea.
Beurteilung:Normal liegen die Werte für D-Xylose vor Belastung im Urin < 30 mg/d und nach D-Xylose-Gabe sollten mehr als
16 % ausgeschieden werden. Im Serum und NaF-Blut ist ein D-Xylose-Wert < 0.1 mg/dl nüchtern normal und nach
D-Xylose-Belastung sollten die Werte nach 15 min > 10 und nach 1 h > 20 mg/dl und 2 h > 30 mg/dl liegen. Eine
ungenügende D-Xylose-Ausscheidung im Urin bzw. ein ungenügender Anstieg der D-Xylose im Serum spricht für
eine Erkrankung des Duodenums/Jejunums, wobei ein normaler Test eine intestinale Malabsorption nicht ausschließt. Der D-Xylose-Test kann eine Kohlenhydratresorptionsstörung (Monosaccaride) im proximalen Dünndarm
erfassen (nicht detektiert werden primäre Kohlenhydratintoleranzen, z.B. Lactase- oder Saccharase-IsomaltaseMangel) und dient der Abgrenzung pankreasbedingter Maldigestion. Bei einer chronischen Pankreatitis ist der
D-Xylose-Test normal. Ein pathologischer D-Xylose-Test und eine Steatorrhoe weisen auf eine Malabsorption hin,
wobei die häufigste Ursache die einheimische Sprue (Zöliakie) darstellt. Seltenere Erkrankungen mit pathologischem
D-Xylose-Test sind Amyloidose, Z.n. Dünndarmresektion, Bypassoperation, intestinales Lymphom, Sklerodermie,
Strahlenenteritis, M. Whipple, Dermatitis herpetiformis, Karzinoid-Syndrom, Zollinger-Ellison-Syndrom, Malabsorption bei Mucosaschädigung durch Pharmaka wie Neomycin. Bei einem pathologischen D-Xylose-Test zusammen mit
einer erhöhten Stuhlfettausscheidung und einer auffälligen Zottenmorphologie sollte an eine bakterielle Überbesiedlung des Dünndarmes gedacht werden.
Fehlerquellen: Der D-Xylose-Test wird falsch-positiv durch unvollständige Urinsammlung, bei inkompletter Blasenentleerung, bei Erbrechen, Alkoholzufuhr oder Nahrungsaufnahme während des Testes, bei Niereninsuffizienz, Aszites,
509
M. Funktionstests
Hypothyreose, perniziöser Anämie, Cholestase, mangelnder Hydration, vermindertem effektivem Zirkulationsvolumen, gestörter Magen-Darmpassage, bakterieller Überbesiedlung des Dünndarmes, bei Einnahme von Aspirin, Phenformin und Indometacin. Der D-Xylose-Test fällt falsch-negativ aus bei chron. Alkoholabusus und bei Leberzirrhose
mit Aszites.
510
N. Index
Alle Untersuchungsverfahren in alphabetischer Ordnung finden Sie in Kapitel D.
Der nachfolgende Index bezieht sich auf zusätzliche Informationen der übrigen Kapitel.
A
Abortus imminens 442
Abstrichtupfer 19
Abszeﬂ, bartholinischer 29
ACTH-Belastungstest 479
Adeno-CA 460
Adenoviren 439
Adrenogenitales Syndrom (AGS) 479
AFP 449
Akromegalie 506
Aldosteron-Orthostase-Test 481
Aldosteron-produzierendes
Nebennierenadenom 480, 481, 483,
489
Aldosteron-Suppressionstest
(Kochsalzbelastungstest) 480
Alkal. Plazenta-Phosphatase 449
Alpha-1-Fetoprotein 449
Amenorrhoe 484
AML 459
Anaerobier 20, 26
Anaerobierinfektionen 23
Analkarzinom 457
Androgen/Östrogen produzierender
NNR-Tumor 459
Antiphospholipidsyndrom 476
475
Antithrombin-Mangel 474, 475
APC-Resistenz 474, 475
APUDome 460
Arginin-Cl-Test 482, 507
Arthritis 464
atypische Mykobakterien 24
Autoantikörper, Indikationen für
Bestimmung 461
Autoimmune Hepatitis 462
Autoimmunthyreoiditis 469
Autonomie der Schilddrüse 469
B
BACTEC 20, 31
Bakteriämie 22
Bartholinischer Abszeﬂ 29
Baumpollen 421
Bechterew-Erkrankung 464
Beta-2-Mikroglobulin 449
Beta-HCG 450
Blasenmole 460, 470
Blasenpunktionsurin 26
Blutentnahme 13
Blutgerinnungsstörungen 473
Blutkultur 19, 29
Bronchialkarzinom 457
Bronchialsekret 22
Bronchoskopiematerial 22
Bürstenbiopsie 23
C
CA 15-3 450
CA 19-9 451
CA 50 451
CA 72-4 451
CA 125 450
CA 549 451
Calcitonin 452
Calcitonin-Stimulationstest 482
Campylobacter 20
Candida spp., Antigennachweis 30
Captopril-Stimulationstest 483
Carcinoembryonales-Antigen 452
Cardiolipin - AK 475
CEA 452
Cerealien und Mehle 424
CgA 452
Chlamydien 20
Chlamydien-Diagnostik 27
cholangiozelluläres Adeno-CA 458
Cholera 28
Chorion-CA 458, 460
Chromogranin A 452
Chromosomenanomalien 444
CLL 459
Clomifen-Test 484
Clonidintest 484
Clonidin-Test 508
Clostridium difficile 20
CML 459
511
N. Index
Colitis ulcerosa 462
Collagenbindungs-Aktivität 477
Conn-Syndrom 483, 489
Corticotropin-Releasing-Hormon-Test
(CRH-Test) 485
Cortisol -Tagesprofil 485
Coxsackie-Viren 439
CREST-Syndrom 461, 465
Cryptosporidien 20
CT 452
Cushing-Syndrom 485
CYFRA 21-1 452
Cytomegalie-Virus 439
E
ECHO-Viren 439
Eisenmangelanämie 489
Eisenresorptionstest 489
Ektope Schwangerschaft 442
Embryonales Karzinom 458
Endokarditis 22
Endokrinopathie 463
Enterobius vermicularis 24
Epiglottis 21
Epithelien 422
Epstein-Barr-Virus 439
Euthyreote Struma 469
D
Dauerkatheterträger 26
Dermatomykosen 29
Dermatomyositis 461, 465
Desferoxamintest 486
Dexamethasonhemmtest 487
Diabetes insipidus 501
Diabetes mellitus 493, 495
Diabetes mellitus Typ I 463
Diphtherie 28
Direktnachweis, Chlamydien 27
Direktnachweise 20
DMPS-Mobilisations-Test 505
Down-Frühscreening 443
Durstversuch (Zwei-Stufen-Test) 488
D-Xyloseausscheidung 509
F
Faktor V Leiden 474, 475
familiären medullären
Schilddrüsenkarzinom 482
Federn 422
Fische und Meeresfrüchte 424
ﬂ-hCG 450
Fleisch 423
Fludrocortisontest 489
freies PSA 455
Frühabort 442
Fruktose-Belastung 490
FSME-Virus 439
Fungämie 22, 30
512
G
Gallengangskarzinom 457
Gardnerella 21
Gardnerella vaginalis 20
Gastrinom 460
Gastrin-Stimulation 490
Gastritis, chron.-atrophisch 462
Gastrointestinale Erkrankungen 462
Gelenkpunktat 29
Gemüse 423
Gerinnungsstatus 13
Gesamteiweiﬂ 26
Gestationsdiabetes 443, 495
Gewürze 425
GHRH+Arginin-Test 507
GH-RH-Stimulationstest 491, 507
Glucose-Toleranztest 493
Glucose-Toleranztest (50g,SSW) 495
Glucose-Toleranztest (75g,SSW) 495
Glukagonom 460
Glukagon-Test 492
GnRH-Test 502
Gonokokken 20
Gonokokken-Direktnachweis 27
Gonokokken-Endokarditis 29
Gonorrhoe 28
Gräser- u. Getreidepollen 421
Gruppenallergene, spezif. IgE-Ak. 427
H
Haare 29, 422
Haarmykose 29
Harnblasenkarzinom 457
Hashimoto-Thyreoiditis 469
Haut 29
Hautmykose 29
Hautpilze 20
hCG-Test 497
Hefen, spez. IgE-Antikörper 426
N. Index
HELLP-Syndrom 443
Heparin-Induzierte-ThrombozytopenieDiagnostik 13
Hepatitis-A-Virus(HAV) 439
Hepatitis-B-Virus(HBV) 439
hepatozelluläres Karzinom 458
Herpes simplex 20
Herpes-simplex-Virus 439
HGH-Exzess 506
HGH-Mangel 499, 507
Hühnerei 423
5-HIES 449
Hirnmetatstasen 457
Hirntumor 457
HIV(Human immunodeficiency-virus 439
Hämochromatose 486
Hämosiderose 486
Hodentumoren 457
Hogkin- u. Non-Hodgkin-Lymphome 459
Homocystein 475
Homovanillinsäure 453
Hungerversuch 498
Hyperaldosteronismus 480, 481, 483, 489
Hyperprolaktinämie 504
5-Hydroxyindolessigsäure 449
Hyperthyreose 469, 506
Hypogonadismus 502
Hypophysenadenom 457
Hypophyseninsuffizienz 503, 507
Hypophysenstimulationstest (global) 499
Hypophysentumor 457
Hypophysenvorderlappeninsuffizienz
485, 499
Hypothalamisch-hypophysäre
Hypothyreose 469
hypothalamisch-hypophysären Funktion
484
Hypothyreose 463, 469, 506
Hypothyreote Autoimmunthyreoiditis
463
I
IgE-Ak., spezifische 421
Infektionen, Respirationstrakt 30
Infektlokalisationen viraler Erkrankungen
439
Inflammatorisch idiopathische Myopathie
462
Influenza-Viren 439
Insekten 422
Insulinhypoglykämie -Test 499
Insulinom 460, 492, 498
J
Jod-Mangel 470
K
Karzinoid 457, 460
Kathetersepsis 23
Katheterurin 25
Keimzelltumoren 458
Knochenmetastasen 458
Knochentumor 458
Kochsalzinfusionstest 501
Kollagenosen 461
Kolon-Rektumkarzinom 458
konstitutionelle Pubertas tarda 502
Kreatinin-Clearance 501
Kristallnachweis 26
Kräuter- u. Blumenpollen 421
L
Laktasemangel 501
Laktosemalabsorption 501
Laktosetoleranztest 501
Lambert-Eaton-Myasthenie 462
LCM-Virus 439
Lebererkrankungen 462
Lebermetastasen 458
Leberzellkarzinom 458
LH-RH-Test 502
Liquor 32
Low-T3-Syndrom 469
Lumbalpunktion 23
Lupusantikoagulanz 475
Lymphoproliferative Erkrankungen 459
M
M2-PK 453
Magenkarzinom 459
Magennüchternsekret 31
Malabsorptionssyndrom 509
Malaria 29
Maldigestion 509
Malignes Melanom 459
Malignes Teratom 458
Malignome Kopf-Hals-Bereich 459
Mammakarzinom 459
Masern-Virus 439
M. Basedow 463, 469
MCTD 461
Medikamente 422
513
N. Index
medulläres Schilddrüsenkarzinom 482
Membranen 28
MEN-2 (Multiple endokrine Neoplasie
Typ 2) 482
Meningitis, eitrige 23
Meningokokken 23
Menstrualblut 32
Metoclopramid-Test 504
Metopiron-Kurztest 503
Milben 422
Milch und Milchprodukte 423
Minderwuchs 482, 499, 507
Mittelstrahlurin 25
Morbus Crohn 462
Morgensputum 24
Morgenurin 25, 32
MSU (Mittelstrahlurin 25
Multimere 477
Multiples Myelom 459
Mumps-Virus 439
Muskelerkrankungen 462
Myasthenia gravis 462
Mycoplasma pneumoniae 30
Mycoplasmen 21
Mykoplasmen 20, 30
Myositis 465
N
Nagelmykose 30
Nahrungsmittel 423
Nasopharyngealabstrich 31
Nebennierenrindeninsuffizienz 479, 485,
503
514
Nebennierenrindentumor 459
Nebenschilddrüsenkarzinom 459
Nebnnierenhyperplasie 481
Neopterin 453
Neuralrohrdefekt 442
Neuroblastom 460
Neuroendokrine Tumoren 460
Neuronen-spezifische Enolase 454
Neuropathien 463
Nägel 29
Nierenarterienstenose 483
Nierenfunktionseinschränkung 501
Nierenkarzinom 460
NMP22 454
NNR-Karzinom 459
Non-thyroidal-illness-Syndrom 469
Norwalk-Virus (Noro-Virus) 439
NSE 454
Nüsse und Ölsaaten 425
Nuclear Matrix Protein 454
O
Obst 424
Ösophaguskarzinom 460
OP.-Material 26
Oropharyngealflora 23
Osteosarkom 458
Otitis media 21
Otomykose 21
Ovarialinsuffizienz 502
Ovarialkarzinom 460
Oxyuren 24
P
Pankreaskarzinom 460
Parainfluenza-Virus 439
Parasiten 20
Parathormon-related Peptide 454
Paratyphus 24
Paspertin-Test 504
Pentagastrin-Stimulationstest 482
Peritonealpunktat 26
Persist. Faktor VIII-Erhöhung 475
Pertussis 20, 31
Phäochromozytom 460
PLAP 449
Plasmodien 29
Plasmozytom 459
Plazentainsuffizienz 442
Pleurapunktat 26
Pneumonie 23
Polio-Viren 439
Polydipsie 501
Polymositis 465
Polymyositis 461
Polyurie 488, 501
Präanalytik 9
Praeklampsie 443
praemature Pubarche 502
Pränatales Screening auf Down-Syndrom
443
Probenentnahme 9
Prolaktin-Stimulationstests 504
Prostatakarzinom 460
Prostataspezifisches Antigen 455
Prostatitis 26
N. Index
Protein C-Defekt 474
Protein C-Mangel 474, 475
Protein S-Defekt 474
Protein S-Mangel 474, 475
Prothrombin-Mutation 474, 475
Prozesse, geschlossene 26
Prozesse, offene 27
PSA 455
Pseudopubertas praecox 502
PTHrP 454
Pubertas praecox vera 502
Punktat 26
Pyruvatkinase Typ Tumor M2 453
Q
Quecksilberbelastung 505
Quecksilber-Mobilisationstest 505
R
Reiter-Syndrom 464
Rektalabstrich 24, 29
Rektalabstriche 24
Respirationstrakts, Infektionen 30
Respiratory-syncytial-Virus(RSV) 439
Rheumatoide Arthritis 461
Ringer-Laktat-Lösung 22
Ristocetin-Cofaktor 477
Rota-Viren 439
Röteln-Virus 439
S
S 100 455
S 100 Protein 455
Sammelurin 12
SCC 455
Schilddrüsenhormon-Resistenz 470
Schilddrüsenkarzinom 460
Schimmelpilze, spez.IgE-Antikörper 426
Schleimhautmykosen 30
Schwangerschaftsgestose 443
Sekretin-Provokationstest 490
sekundärer Hyperaldosteronismus 483
Seminome 458
Sepsis 23, 30
Serotonin 455
Sharp-Syndrom 461, 465
Sheehan-Syndrom 499
Shigellen 24
Sjögren-Syndrom 461
Sklerodermie 461, 465
SLE 461
Soor 30
Sproﬂpilze 20, 21
Sproﬂpilzsepsis 30
Sprue 509
Sputum 19, 31
Sputumgewinnung 24
Squamous cell carcinoma antigen 455
Stadium catarrhale 31
Stadium convulsivum 31
Stoffwechselerkrankungen 444
Stuhl 19, 24, 32
Subakute Thyreoiditis (lymphozytär) 469
Subklinische Hyperthyreose 469
Subklinische Hypothyreose 469
Systemischer Lupus erythematodes, SLE
464
Systemische Sklerose 461, 465
Systemische Vaskulitis 461
System. Lupus erythematodes 461
T
TGB 456
Thrombophilie 474
Thrombose-Diagnostik 13
Thrombozyten-Funktionstest 13
Thymidinkinase 455
Thyreoglobulin 456
Thyreotoxikose 470
Tissue-Polypeptid-Antigen 456
Titerverläufe, Beurteilung 440
TPA 456
Trachealsekret 22
Trachealtubus 23
Transportmedium 19
TRH-Belastungstest 505
TRH-Test 504
Triple-Diagnostik 443
Trophoplastische Tumoren 458
TSH-produzierendes Adenom 470
Typhus 24
U
Ureaplasmen 30
Urethralabstrich 21
Urethritis 26
Urin 25
Urinuntersuchung, mykologische 30
Urogenitalinfektionen 30
Uteruskarzinom 460
515
N. Index
V
Vanillinmandelsäure 456
Varizella-Zoster-Virus 439
Versandmaterial 9
VIPom 460
vonWillebrand - Syndroms 477
W
Wachstumshormonmangel 482
(Wachstumshormon-Stimulationstest)
482
Wegenersche Granulomatose 461
Willebrand 477
Wundsekret 26
X
Xylose-Toleranztest 509
516
Z
Zervixabstrich 27, 29
Zervix-CA 460
Zirrhose, primär biliär 462
Zöliakie 509
Zoeliakie 462
Zytologie-Bürste 27
LAGEPLAN
So finden Sie uns ...
Unsere Praxis ist sehr verkehrsgünstig gelegen
Sie erreichen uns
mit dem Auto über die Hildesheimer Straße, folgen Sie einfach
dem Wegweiser zum TÜV oder
mit den Straßenbahnlinien 1, 2 oder 8, Haltestelle Bothmerstraße und einem kurzen Fußweg von ca. 250m entlang der
Garkenburgstraße (siehe Lageplan)
Probenannahme: Montag bis Freitag
Samstag
Praxiszeiten:
von 7:30 - 18:00 Uhr
von 11:00 - 12:30 Uhr
Montag bis Donnerstag von 8:00 - 9:30 Uhr
Medizinisches Labor Hannover
Postfach 725 · 30007 Hannover · Am TÜV 6 · 30519 Hannover
Tel. 0511.85622-0 · Fax 0511.85622-710 · [email protected]
517