Leistungsverzeichnis zur Virusdiagnostik

Dokument-Nr.:
Gültig seit:
Nächste Prüfung:
Dokumentenart:
VIR-10423-12-VA
02.11.2016
02.11.2017
Verfahrensanweisung
Virologie Leistungsverzeichnis
Institut für Virologie
Universitätsklinikum Bonn (UKB)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Direktor:
Univ.-Prof. Dr. med. Christian Drosten
Leistungsverzeichnis zur Virusdiagnostik
Nationales Konsiliarlabor für Coronaviren
Stand 10/2016
Die jeweils aktuellste Version des Leistungsverzeichnisses finden Sie auf unserer Homepage
(www.virology-bonn.de und über http://www.ukb.uni-bonn.de → Institute)
Ansprechpartner: Prof. Dr. Anna Maria Eis-Hübinger
Freigabebereich: Institut für Virologie
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Herausgeber:
Institut für Virologie
Universitätsklinkum Bonn
Prof. Dr. Anna M. Eis-Hübinger
Dr. Souhaib Aldabbagh
Sigmund-Freud-Str. 25
D-53127 Bonn
e-mail: [email protected]
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Inhaltsverzeichnis
1.
Anschrift, Anfahrt, Lageplan
5
2.
Dienstzeiten, Telefonnummern, Ansprechpartner
7
3.
Abkürzungen
8
4.
Hinweise zur Probenentnahme, -transport und -lagerung
10
4.1
Entnahme von Untersuchungsproben
10
4.2
Allgemeine Hinweise zu Transportgefäß, Transportzeit sowie Kriterien
für die Ablehnung von Untersuchungsaufträgen
11
Probenmaterial-bezogene Hinweise zu Transportgefäß, Probenlagerung
sowie Mindestprobenmenge
12
5.
Untersuchungsanforderung und Anforderungsformular
15
6.
Diagnostisches Angebot (Kurzfassung), Untersuchungsfrequenz und
minimale Bearbeitungsdauer
19
Diagnostisches Angebot (Langfassung)
26
Adenoviren
Astroviren
BK Polyomavirus
Bocaviren
Chikungunya Virus
Coronaviren
Cytomegalievirus
Dengue Virus
Enteroviren
Enzephalitis-Panel
Epstein-Barr Virus
Frühsommer-Meningoenzephalitis-Virus
Gastroenteritis-Panel
Gelbfieber Virus
Hantaviren
Hepatitis A Virus
Hepatitis B Virus
Hepatitis C Virus
Hepatitis D Virus
Hepatitis E Virus
Herpes simplex Virus 1 und 2
Humane Papillomviren
Humanes Herpesvirus 6
Humanes Herpesvirus 7
Humanes Herpesvirus 8
Humanes Immundefizienzvirus 1 und 2
26
26
27
27
27
27
28
29
29
29
30
31
31
31
32
32
33
34
34
35
35
36
36
36
37
38
4.3
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Seitenzahl
7.
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'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Humanes Metapneumovirus
Humanes Parechovirus
Humanes T-lymphotropes Virus 1 und 2
Influenza A und B Virus
Japanisches Enzephaltitis Virus
JC Polyomavirus
Lymphozytäres Choriomeningitis Virus
Masernvirus
Molluscum contagiosum Virus
Mumpsvirus
Norovirus
Parainfluenza Viren
Parvovirus B19
Respiratorisches Panel
Respiratory Syncytial Virus
Rhinoviren
Rotavirus
Rötelnvirus
Sandfliegenfieber-Virus
Sapovirus
Varizella-Zoster Virus
West Nil Virus
Zika Virus
38
39
39
39
40
40
41
41
41
42
42
43
43
44
44
44
45
45
46
46
47
46
48
8.
Differentialdiagnostische Orientierungshilfe
49
9.
Konsiliarlabor für Coronaviren
56
10.
Hinweise bei V. a. Infektion mit hochinfektiösem Virus (Klasse 4-Virus)
57
11.
Meldepflicht nach dem Infektionsschutzgesetz
58
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Dokument-Nr.:
1.
VIR-10423-12-VA
Anschrift, Anfahrt, Lageplan
Anschrift
Universitätsklinikum Bonn (UKB)
Institut für Virologie
Gebäude 63
Sigmund-Freud-Str. 25
D-53127 Bonn
Telefon: +49 (0)228 287 15881, +49 (0)228 287 15522
Fax.: +49 (0)228 287 14433, +49 (0)228 287 19144
http://www.virology-bonn.de
Telefonzentrale Klinikum: +49 (0)228 2870
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Anfahrtsbeschreibung
Mit dem Auto:
BAB 565 bis zur Abfahrt Bonn-Poppelsdorf
Die Ausfahrt führt direkt auf die Reuterstraße (Richtung Bad Godesberg).
1. Ampel rechts in den Jagdweg (ab hier Ausschilderung "Venusberg, Kliniken" folgen)
Immer geradeaus auf die Johannes-Schule zu
An der Schule links den Berg hinauf
An der nächsten Kreuzung rechts und dann immer der Straße nach
Fahrzeug im Parkhaus Nord oder auf den als Besucherparkplätze ausgewiesenen Parkplätzen direkt vor
dem Institut abstellen
Ab Flughafen Köln-Bonn:
Mit dem Taxi sind es ca. 30 Minuten Fahrzeit bis zum Universitätsklinikum Bonn/Venusberg.
Alternativ fährt die Buslinie „Airport Express SB60“ (Köln Bonn Airport - Hbf. Bonn) zum
Hauptbahnhof Bonn.
Vom Hauptbahnhof:
Vom Bahnsteig direkt in den U-Bahn-Tunnel Richtung Busbahnhof
Bussteig A1 ansteuern; gelegentlich auch Abfahrt an Bussteig A2
Linie 600 oder 601 in Richtung Kliniken/Venusberg
Haltestelle „Hauptpforte Kliniken“ oder „Kliniken Nord“ aussteigen.
oder
Ankunft Bonn Hbf und Weiterfahrt mit dem Taxi:
Taxistand am Bahnhof-Hauptausgang rechts
Ziel: Universitätsklinikum Venusberg, bis vor das Institut, Gebäude 63
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Lageplan
Lage des Instituts für Virologie im UKB
Luftbild UKB
Freifläche
Helikopter-Landeplatz
Hauptpforte
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Straßenkarte
63
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Dokument-Nr.:
2.
VIR-10423-12-VA
Dienstzeiten, Telefonnummern, Ansprechpartner
Reguläre Dienstzeiten
Montag – Freitag
Samstag
Wichtige Telefonnummern
Diagnostik-Sekretariat (Befundauskunft)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Probeneingangslabor
Fachliche Beratung:
8:00 Uhr – 18:30 Uhr
8:00 Uhr – 13:00 Uhr
Tel.:
Fax.:
Tel.:
Tel.:
+49 (0)228 287 1 5881
+49 (0)228 287 1 4433
+49 (0)228 287 1 5953
+49 (0)228 287 1 6986
+49 (0)228 287 1 3186
Rufbereitschaftszeiten und Telefonnummern (für dringende Fälle)
Montag – Freitag
18:30 Uhr – 24:00 Uhr
Samstag
13:00 Uhr – 24:00 Uhr
Sonn- und Feiertag
9:00 Uhr – 24:00 Uhr
Telefon:
+49 (0)228 287 1 3050 (bitte lange klingeln)
+49 (0)228 287 1 1802 (dito)
+49 (0)151 58 233 110 (dito)
Sollte der Anruf einmal nicht direkt angenommen werden, bitte Nachricht mit
Rückruf-Nummer hinterlassen bzw. wenige Minuten später erneut anrufen.
Ansprechpartner für virologische Beratungen
Prof. Dr. Christian Drosten
Prof. Dr. Anna M. Eis-Hübinger
Dr. Souhaib Aldabbagh
Sandra Pietzonka
Tel. +49 (0)228 287 1 1055
Tel. +49 (0)228 287 1 6986
Tel. +49 (0)228 287 1 6986
Tel. +49 (0)228 287 1 3186
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Dokument-Nr.:
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
3.
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Abkürzungen
Ag
BAL
BKPyV
CLIA
CMIA
CMV
DNA
EBNA-1
EBV
ECLIA
EDTA
ELA
ELISA
ELFA
FSME V.
HAV
HBV
HCV
HDV
HEV
HHV 6
HHV 7
HHV 8
HIV
HMPV
HPV
HPeV
HSV
HTLV
Hyb.
IfSG
IFT
IgA
IgG
IgM
IU
JCPyV
KBR
LCMV
LIA
NS
MERS
MCV
MS
PCR
qual.
Antigen
Bronchoalveoläre Lavage
BK Polyomavirus
Chemiluminescence immunoassay
Chemiluminescence microparticle immunoassay
Cytomegalievirus
Deoxyribonucleic acid (Desoxyribonukleinsäure)
Epstein-Barr Virus nuclear antigen
Epstein-Barr Virus
Electrochemiluminescence immunoassay
Ethylendiamintetraessigsäure
Enzyme-labeled antigen based immunoassays
Enzyme-linked immunosorbent assay
Enzyme-linked fluorescent assay
Frühsommer-Meningoenzephalitis-Virus
Hepatitis A Virus
Hepatitis B Virus
Hepatitis C Virus
Hepatitis D Virus
Hepatitis E Virus
Humanes Herpesvirus 6
Humanes Herpesvirus 7
Humanes Herpesvirus 8
Humanes Immundefizienzvirus
Humanes Metapneumovirus
Humanes Papillomvirus
Humanes Parechovirus
Herpes simplex Virus
Humanes T-lymphotropes Virus
Hybridisierung
Infektionsschutzgesetz
Immunfluoreszenztest
Immunglobuline der Klasse A
Immunglobuline der Klasse G
Immunglobuline der Klasse M
International Unit
JC Polyomavirus
Komplementbindungsreaktion
Lymphozytäres Choriomeningitis Virus
Line immunoassay
Nicht-Strukturprotein
Middle East Respiratory Syndrome
Molluscum contagiosum Virus
Multiple Sklerose
Polymerase chain reaction (Polymerase-Kettenreaktion)
Qualitative Bestimmung; hier Testung auf Nachweisbarkeit von Virusgenomen ohne
Angabe der Viruskonzentration im positiven Fall
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Dokument-Nr.:
RNA
RKI
RSV
RT-PCR
Seq.
Quantitative Bestimmung, hier der Virusgenom-Konzentration in IU oder Genomkopien pro Milliliter
Ribonucleic acid (Ribonukleinsäure)
Robert Koch-Institut, Berlin
Respiratory Syncytial Virus
Polymerase-Kettenreaktion nach Reverser Transkription
Sequenzierung
UKB
v.
V.
V.a., V. a.
VZV
WNV
ZNS
Universitätsklinikum Bonn
..virus, ..viren
Virus
Verdacht auf
Varizella-Zoster Virus
West Nil Virus
Zentralnervensystem
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
quant.
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Dokument-Nr.:
4.
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Hinweise zur Probenentnahme, -transport und -lagerung
Die Effizienz der Labordiagnostik hängt in hohem Maße von der Qualität des Untersuchungsmaterials und den Bedingungen beim Materialtransport ab.
4.1.
Entnahme von Untersuchungsproben
Allgemeine Hinweise
HIV-Untersuchungen dürfen nur mit Einverständnis des Patienten durchgeführt werden.
HIV-RNA-Bestimmung („Viruslast“) im Blut: EDTA-Blut oder EDTA-Plasma einsenden
(mindestens 2-5 mL), kein Serum.
Dringliche HIV-RNA-, HBV-DNA-, HCV-RNA-Bestimmungen: EDTA-Blut oder EDTAPlasma (mindestens 2-5mL) einsenden, kein Serum; u U. nur qualitative Bestimmung.
Kein Heparin-Blut für PCR-Zwecke einsenden.
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Antikörper-Untersuchungen: Serum (Vollblut ohne Zusätze, „Serum-Monovette“) ist für alle
Antikörper-Untersuchungen tauglich.
Liquor: Soll im Liquor zur Feststellung einer Virus-spezifischen intrathekalen AntikörperSynthese der Antikörper-Index (AI) bestimmt werden, ist die Einsendung einer zum Liquor
zeitgleich entnommenen Serumprobe („Serum-Monovette“) notwendig. Zusätzlich ist in
Liquor und Serum die quantitative Bestimmung von Albumin und Gesamt-IgG zu veranlassen.
Die Resultate dieser Untersuchungen sind uns mitzuteilen. UKB-intern: Untersuchungen im
Zentrallabor veranlassen (Stichwort „Reiber“), Resultate werden vom Zentrallabor an uns
weitergeleitet.
Kennzeichnung der Untersuchungsproben: Alle Probengefäße müssen mit Vor- und Nachnamen sowie Geburtsdatum des zu Untersuchenden kennzeichnet sein. Sofern mehrere Probengefäße eingesandt werden, ist zusätzlich auf jedem Gefäß die Art des darin befindlichen Untersuchungsmaterials festzuhalten (z. B. Urin, Liquor). UKB-intern: Patientenetikett aus KAS
verwenden mit Name, Vorname, Geb.-datum, Geschlecht, Fall-Nr..
Mindestprobenmenge: s. Seiten 12-14.
Die Untersuchung von post mortem-Blut kann zu falsch-positiven oder falsch-negativen Ergebnissen führen. Entsprechenden Befunde werden unter Vorbehalt erstellt.
Für Untersuchungen im Rahmen von klinischen Studien ist eine vorherige Absprache mit uns
erforderlich (Telefon: 0228 287 16986). Untersuchungsaufträge im Rahmen von Gutachten
müssen als solche gekennzeichnet sein.
Bei UKB-internen Nadelstichverletzungen: Bitte Hinweise des Betriebsärztlichen Dienstes
beachten; s. UKB Intranet → Personalforum → Betriebsarzt → Nadelstichverletzungen
Spezielle Hinweise
Bei der Entnahme von Patientenproben sind Einmalhandschuhe zu tragen. Bei Gefahr von Aerosol-
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Dokument-Nr.:
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Bildung/des Verspritzens sind zusätzlich Mundschutz und Schutzbrille zu tragen.
Patientenproben mit sterilem Abnahme-Besteck entnehmen und in sterilen Transportgefäßen befördern. Verletzungsträchtige Abnahme-Instrumente wie Kanüle, Skalpell nach Probenentnahme nicht
in die Schutzhülle zurückstecken (Verletzungsgefahr), sondern direkt in geeignete Sammelbehälter
entsorgen. Die Sammelbehälter dürfen nicht überfüllt und nur in geschlossenem Zustand
transportiert werden.
Abstriche am Auge nicht mit trockenem Tupfer nehmen – Verletzungsgefahr des Auges.
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
4.2
Allgemeine Hinweise zu Transportgefäß, Transportzeit sowie Kriterien für die
Ablehnung von Untersuchungsaufträgen
Transportgefäß
Die Untersuchungsproben müssen in für infektiöses Material geeigneten, auslaufdichten Gefäßen
und in einer flüssigkeitsdichten Umverpackung mit Saugeinlage transportiert werden. Begleitpapiere sind außerhalb der Umverpackung beizufügen.
Bei UKB-internem Transport: Als Umverpackung ist der mit UN3373 gekennzeichnete KlarsichtFolienbeutel mit Huckepacktasche zu verwenden.
Transportzeit
Es ist stets für den schnellst möglichsten Transport des Untersuchungsmaterials ins Labor zu
sorgen, insbesondere dann, wenn Virus oder Virusbestandteile nachgewiesen werden sollen. Hier
sollte nach Möglichkeit eine ungekühlte Transportzeit von 6-8 Stunden nicht überschritten werden.
Können Proben nicht am Abnahmetag verschickt werden, ist eine Lagerung bei +4 bis +8 oC
vorzunehmen. Bei mehr als 2-tägiger Zwischenlagerung von Blutproben, Serum/Plasma vom
Blutkuchen/Zellfraktion abtrennen und Serum/Plasma bei +4 bis +8 oC kühlen. Proben für den
kulturellen Virusnachweis nicht einfrieren. In besonderen Fällen empfiehlt sich vor Transport eine
telefonische Absprache mit dem Labor zwecks Erhalts der Probenqualität. Weitere Hinweise: s.
Tabelle Seite 13.
Kriterien für die Ablehnung von Untersuchungsaufträgen
Untersuchungsaufträge müssen leider abgelehnt werden bei:
- ausgelaufenem Material,
- nicht eindeutig einer Person zuzuordnendem Untersuchungsmaterial,
- zu geringem Probenvolumen,
- für die gewünschte Untersuchung unbrauchbarem Material,
- zu hohe Blutbeimengung im Liquor bei Antikörper-Index-Bestimmung.
Der Einsender wird von uns informiert.
Proben, die ohne Untersuchungsauftrag eingehen, werden ca. 5 Tage aufbewahrt um eine
nachträgliche Auftragsanforderung zu ermöglichen.
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Dokument-Nr.:
4.3
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Probenmaterial-bezogene Hinweise zu Transportgefäß, Probenlagerung sowie
Mindestprobenmenge
Detaillierte Hinweise zu den unterschiedlichen Untersuchungsmaterialien: s. Tabelle Seite 13.
Allgemeine Hinweise zur Mindestprobenmenge
Die Mindestmenge an Probenmaterial richtet sich nach der Anzahl durchzuführender Untersuchungen. Sollen mehrere Untersuchungen durchgeführt werden, ist eine entsprechend größere
Probenmenge erforderlich, insbesondere bei Antikörper-Bestimmungen. Bitte berücksichtigen Sie,
dass bei Untersuchungen aus Serum und Plasma die Entnahme mindestens der doppelten
Blutmenge erforderlich ist, da die zelluläre Fraktion nicht verwendet wird.
Circa-Angaben pro Untersuchungsparameter:
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Antikörper-Untersuchungen
HIV, Hepatitis A, B, C Virus
0,2 mL Serum oder Plasma
Sonstige Viren
0,1 mL Serum, EDTA-Plasma, Liquor
Virusgenom-Untersuchungen
HIV
0,9 mL EDTA-Plasma
HBV, HCV
Jeweils 0,9 mL EDTA-Plasma oder Serum
Resistenztest HIV, HBV, HCV
(antivirale Chemotherapie)
Separates 10 mL EDTA-Röhrchen oder separate
10 mL „Serummonovette“
Sonstige Viren
0,4-0,5 mL Untersuchungsmaterial*
*Dieses Volumen ist ausreichend für ca. 5 Virusgenom-Testungen. Bei größeren
Untersuchungsaufträgen entsprechend mehr Untersuchungsmaterial einsenden.
Bei Liquor erhöht die Untersuchung größerer Probenvolumina (0,5–0,8 mL) die
Nachweisrate.
Trockene Abstrichtupfer oder solche mit geringerem Volumen an Transportflüssigkeit werden von uns auf das benötigte Volumen aufgefüllt.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Hinweise zu Transportgefäß, Probenlagerung und Mindestprobenmenge bei den einzelnen
Untersuchungsmaterialien
Untersuchungsmaterial
Gefäß und Lagerung
Mindestmenge an
Probenmaterial
Liquor, Augenkammerwasser
Nativ, in sterilem Probengefäß. Proben vor
Transport kühl (+4 - +8 °C) halten.
0,3 mL,
optimal 0,5-1 mL
Augen-,
Nase-,
Rachen-,
Haut-,
Genitalabstriche,
etc.
Nach Möglichkeit spezielle sterile Abstrichbestecke verwenden
(Copan flocked swabs; Cervixbürste). Sind diese Abstrichbestecke
nicht verfügbar, Probenentnahme mit sterilem Tupfer vornehmen u.
Tupfer in sterilem Transportgefäß, gefüllt mit max. 0,5 mL steriler
0,9%-iger NaCl einsenden, ggf. auch trockener Tupfer.
Keine Transportgefäße mit Gelmedium für bakteriologische Zwecke
verwenden.
Nasopharyngealsekret,
Rachenspülwasser
(mit steriler, isotoner
NaCl-Lösung gurgeln
lassen),
Sputum,
Trachealsekret,
Bronchiallavage
Nativ, in sterilem Probengefäß. Proben vor
Transport kühl (+4 - +8 °C) halten.
Bläschenpunktat
Tuberkulin-Spritze mit ~0,5 mL 0,9%-iger steriler NaCl in steriles
Transportgefäß spülen.
Punktate (außer
Bläschenp.),
Aszites
Nativ, in sterilem Probengefäß. Proben vor
Transport kühl (+4 - +8 °C) halten.
Serum
„Serum-Monovette“ oder –Vacutainer (für
alle serologischen Untersuchungen tauglich).
1-2-5-10 mL1
EDTA-Blut
EDTA-Monovette oder –Vacutainer.
1-2-5-10 mL1
0,4-0,5 mL,
optimal 1-2 mL
1 mL
Blut: UKB-interne und UKB-nahe Einsender: Blut im Original-Entnahmegefäß belassen, nicht
einfrieren. Bei Postversand: Serum, Plasma gewinnen und einsenden.
_________________________________________________________________________________
1
Die Mindestmenge an Probenmaterial richtet sich nach der Anzahl durchzuführender Untersuchungen. Sollen mehrere Untersuchungen durchgeführt werden, ist eine größere Probenmenge
erforderlich, insbesondere bei Antikörper-Bestimmungen. Detaillierte Hinweise: s. Allg. Hinweise
zur Mindestprobenmenge auf Seite 12.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Fortsetzung
Hinweise zu Transportgefäß, Probenlagerung und Mindestprobenmenge bei den einzelnen Untersuchungsmaterialien
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Untersuchungsmaterial
Gefäß und Lagerung
Mindestmenge an
Probenmaterial
Urin
Nativ, in sterilem Probengefäß.
Proben vor Transport kühl (+4 - +8 °C) halten.
2 mL
Stuhl
Stuhlröhrchen.
Proben vor Transport kühl (+4 - +8 °C) halten.
Bohnengroßes
Stück oder 2 mL
Biopsie
Nativ einsenden in sterilem Transportgefäß, ggf. in
1-2 mL steriler 0,9%-iger NaCl (kleine Biopsate).
Biopsat nicht in Formalin lagern. Sofortiger Transport,
ansonsten vor Transport kühl (+4 - +8 °C) halten.
Paraffin-eingebettetes Gewebe kann u. U. untersucht
werden (bitte vorherige Rücksprache).
Stecknadelkopfgroßes
Gewebsstück
Knochenmarkpunktat
EDTA-Monovette oder -Vacutainer.
Vor Transport kühl (+4 - +8 °C) halten.
1-2 mL
Erbrochenes
Nativ, in sterilem Probengefäß.
1 mL
Muttermilch
Nativ, in sterilem Probengefäß.
Proben vor Transport kühl (+4 - +8 °C) halten.
2 mL
Fruchtwasser
Nativ, in sterilem Probengefäß.
Proben vor Transport kühl (+4 - +8 °C) halten.
2 mL
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Dokument-Nr.:
5
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Untersuchungsanforderung und Anforderungsformular
Anforderungsformulare erhalten Sie UKB-intern aus dem KAS (s. u.) oder durch Ausdruck der
Seiten 17 und 18 in diesem Leistungsverzeichnis.
Aufruf des Anforderungsscheins im KAS kann auf folgenden Wegen erfolgen:
Mit der rechten Maustaste das Kontextmenü starten → in der Stationsgraphik "KAS Formulare"
und dann "Virologie" auswählen
oder
in der Patientensuche den entsprechenden Fall suchen und dann "KAS Formulare" und "Virologie"
auswählen.
Das Anforderungsformular muss folgende Informationen enthalten:
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
- Einsender-Angaben: Klinik, Station, behandelnder Arzt/Ärztin, Telefon- und Fax-Nummer;
Externe Einsender bitte unbedingt komplette Einsender-Adresse inkl. Tel.-/Faxnummer angeben.
- Patienten-Angaben: Vor- und Nachname, Geburtsdatum, Geschlecht (UKB-Patienten: KASSchein verwenden mit Barcode-lesbarer Fall-, Kostenstellen- und UKB-Nummer), Kostenträger
(bei externen Auftraggebern ggf. mit Überweisungsformular; bei Privatpatienten mit Rechnungsanschrift).
- Datum und Uhrzeit der Probenentnahme (wichtig zur Erkennung von Verzögerungen beim
Probentransport da von Einfluss auf die Untersuchungsergebnisse).
- Art des Untersuchungsmaterials (Kästchen ankreuzen oder handschriftlich).
- Angeforderte Untersuchungen: Rahmenauftrag mit Stufendiagnostik (Kästchen vor Virusnamen)
oder dezidierte Einzelparameter-Anforderung (eingerückte Kästchen)
- Bei Notfall- und Eilanforderungen das Notfall-Kästchen markieren (deutliche Kennzeichnung der
Probe als dringliche Anforderung oder telefonische Vorankündigung der Probe beschleunigt die
Bearbeitung).
- Klinische Angaben zum Patienten oder Verdachtsdiagnose. Ohne klinische Angaben und Angaben zu Besonderheiten (z. B. Nadelstichverletzung, Immunsuppression, Bluttransfusion- oder
Immunglobulin-Gabe, Schwangerschaftswoche, kürzliche Auslandsanamnese) ist die sinnvolle
Bearbeitung der Probe und Beurteilung der Resultate eingeschränkt.
Nachträglich sind weitere Untersuchungsanforderungen möglich über Tel. 0228 287 15881.
Das Original-Probengefäß wird ca. 1 Woche aufbewahrt. Ausreichendes Probenvolumen vorausgesetzt, werden von allen Untersuchungsproben Restvolumina für ≥ 5 Jahre tiefgekühlt (-20 °C)
archiviert (z. B. bei Serum/Plasma 1-1,5 mL). Reste von Virusnukleinsäure-Präparationen werden bei
-20 oder -80 °C ≥ 3 Jahre aufbewahrt. In diesen Zeiträumen sind nachträgliche Zusatzuntersuchungen
möglich.
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Bei selten nachgefragten Untersuchungen, die nicht in unserem Labor durchgeführt werden, leiten
wir das Untersuchungsmaterial nach Rücksprache mit Ihnen an Spezial-Laboratorien weiter.
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Untersuchungsanforderungsformular für Nicht-UKB-Einsender: s. Seiten 17 und 18.
Erläuterung zu Untersuchungsblöcken
Die Untersuchungsblöcke „Enzephalitis-Panel“, „Gastroenteritis-Panel“ und „Respiratorisches
Panel“ beinhalten die Untersuchung folgender Einzelparameter:
Untersuchungsblock
Einzelparameter
Enzephalitis-Panel
HSV-DNA, VZV-DNA und Enterov.-RNA [(RT-)PCR]
Gastroenteritis-Panel
Rotav.-, Norov.-, Sapov.-, Astrov.-RNA und Adenov.-DNA
[(RT-)PCR]
Respiratorisches Panel
Influenza A u. B V.-, RSV-, HMPV-, Rhinov.-, Enterov.-,
Parainfluenzav. 1-4-, Coronav. (NL63, OC43, 229E u.
HKU1)-, Parechov.-RNA und Adenov.-DNA [(RT-)PCR]
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'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
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6.
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Diagnostisches Angebot (Kurzfassung), Untersuchungsfrequenz und
minimale Bearbeitungsdauer
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Die nachfolgende Tabelle gibt das Standard-Untersuchungsintervall an.
Untersuchungsparameter [Methodik]
Untersuchungsintervall
Minimale
Bearbeitungsdauer
Adenovirus-Antikörper [KBR]
Adenovirus-DNA [PCR (quant.)]
Adenovirus-Typisierung [PCR; Seq.]
3x /Woche
Arbeitstäglich
Bei Erfordernis
2 Tage
4 Std.
3 Arbeitstage
Astrovirus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
Arbeitstäglich
4 Std.
BK Polyomavirus-DNA [PCR (quant.)]
Arbeitstäglich
4 Std.
Humane Bocaviren 1/2-DNA [PCR, semiquant.] Bei Anforderung
4 Std.
Chikungunya Virus-IgG [IFT]
Chikungunya Virus-IgM [IFT]
Chikungunya Virus-RNA [RT-PCR]
Bei Anforderung
Bei Anforderung
Bei Anforderung
3 Std.
3 Std.
4 Std.
CMV-IgG [CMIA, ELISA]
CMV-IgG-Avidität [ELISA; ELFA]
CMV-IgM [CMIA, ELA]
CMV-Antikörper [KBR
CMV-DNA [PCR (quant.)]
CMV GCV, CDV, FOS-Resistenztest
[UL97, UL54; PCR, Seq.]
Arbeitstäglich
Bei Anforderung,
3-5x /Woche
3x /Woche
Arbeitstäglich
Bei Anforderung
2-3 Std.
2 Std.
2 Std.
2 Tage
4 Std.
3 Arbeitstage
Coronavirus HKU-1, OC43, NL63,
229E-RNA [RT-PCR, semiquant.]
MERS-Coronavirus-IgG/IgM [IFT]
MERS-Coronavirus-RNA [RT-PCR]
Arbeitstäglich
4 Std.
Bei Anforderung
Bei Anforderung
4 Std.
4 Std.
Seite 19 von 64
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Untersuchungsparameter [Methodik]
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Dengue Virus-IgG [IFT]
Dengue Virus-IgM [IFT, ELISA]
Dengue Virus-NS1-Antigen [Immunchr.]
Dengue Virus-RNA [RT-PCR]
Dengue Virus-Typisierung [RT-PCR]
Untersuchungsintervall
Bei Anforderung
Bei Anforderung
Bei Anforderung
Bei Anforderung
Bei positivem RNA-Befund
Minimale
Bearbeitungsdauer
2 Std.
2 Std.
1 Std.
4 Std.
3 Arbeitstage
Ebola Virus [RT-PCR] (nicht bei „Begründetem Bei Anforderung
Verdachtsfall“ nach RKI-Definition)
4-6 Stunden
EBV-IgG anti-VCA [IFT, CMIA, ELISA]
EBV-IgG [LIA]
EBV-IgG-Avidität [LIA]
EBV-IgM anti-VCA [IFT, ELA, CMIA]
EBV-IgM [LIA]
EBV anti-EBNA-1-IgG [ELISA, CMIA]
EBV-DNA [PCR (quant.)]
3-5x /Woche
2-3x /Woche
2x /Woche
3-4x /Woche
3-5x /Woche
3-5x /Woche
Arbeitstäglich
2 Std.
3 Std.
3 Std.
3 Std.
3 Std.
3 Std.
4 Std.
Enterovirus-Antikörper [KBR]
Enterovirus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
Enterovirus-Typis. [RT-PCR, Seq.]
3x /Woche
Arbeitstäglich
1-2x /Woche
2 Tage
4 Std.
3 Arbeitstage
Enzephalitis-Panel [(RT-)PCR]
Untersuchungsparameter s. Seite 16
Arbeitstäglich
4 Stunden
FSME Virus IgG [ELISA, IFT]
FSME Virus-IgM [ELISA, IFT]
FSME Virus-RNA [RT-PCR]
1-2 x /Woche
1-2x /Woche
Bei Anforderung
3 Std.
3 Std.
4 Std.
Gastroenteritis-Panel [(RT-)PCR, semiquant.]
Untersuchungsparameter s. Seite 16
Arbeitstäglich
6 Std.
Gelbfieber Virus-IgG [IFT]
Gelbfieber Virus-IgM [IFT]
Gelbfieber Virus-RNA [RT-PCR]
Bei Anforderung
Bei Anforderung
Bei Anforderung
3 Std.
3 Std
4 Std.
Seite 20 von 64
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Untersuchungsparameter [Methodik]
Untersuchungsintervall
Minimale
Bearbeitungsdauer
Hantavirus-IgG [IFT]
Hantavirus-IgG [LIA]
Hantavirus-IgM [IFT]
Hantavirus-IgM [LIA]
Hantavirus-RNA [RT-PCR]
2-3x /Woche
2x /Woche
2-3x /Woche
2x /Woche
Arbeitstäglich
3 Std.
4 Std.
3 Std.
4 Std.
2 Tage
HAV-IgG [CMIA, ECLIA, ELFA, CLIA]
HAV-IgM [CMIA, ECLIA]
HAV-RNA [RT-PCR]
Arbeitstäglich
Arbeitstäglich
Arbeitstäglich
2 Std.
2 Std.
4 Std.
HBV s-Antigen [CMIA, ECLIA, CLIA]
HBs-Antigen-Neutralisation [CMIA]
Anti-HBs [CMIA, ECLIA]
Anti-HBc [CMIA, ECLIA, CLIA]
Anti-HBc IgM [ECLIA]
HBe-Antigen [CMIA, ECLIA]
Anti-HBe [CMIA, ECLIA]
HBV-DNA [PCR (quant.)]
HBV-DNA [PCR, qual.] (für eilige Untersuchungen, geringere Sensitivität als PCR (quant.))
HBV-Genotypis. u Resistenzt. [PCR, Seq.]
Arbeitstäglich
Bei Erfordernis
Arbeitstäglich
Arbeitstäglich
4x /Woche
Arbeitstäglich
Arbeitstäglich
2-3x /Woche
Bei Erfordernis
2 Std.
2 Std.
2 Std.
2 Std.
2 Std.
2 Std.
2 Std.
6 Std.
4 Std.
Bei Anforderung
3 Arbeitstage
Anti-HCV [CMIA, ECLIA, ELFA]
Anti-HCV [LIA]
HCV-Core-Antigen [CMIA]
HCV-RNA [RT-PCR (quant.)]
HCV-RNA [RT-PCR, qual.] (f. eilige Untersuchungen, geringere Sensitivität als RT-PCR
(quant.))
HCV-Genotypisierung [RT-PCR, Seq.]
HCV-Resistenztest [NS3, NS5A, NS5B; RTPCR, Seq.]
Arbeitstäglich
2x /Woche
Bei Anforderung
2-3x /Woche
Bei Erfordernis
2 Std.
5 Std.
3 Std.
6 Std.
4 Std.
1-2x /Woche
3 Arbeitstage
1-2x /Woche
3 Arbeitstage
Anti-HDV [ELISA]
HDV-RNA [RT-PCR (quant.)]
1-2x /Woche
1x /Woche
4 Std.
5 Std.
Seite 21 von 64
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Untersuchungsparameter [Methodik]
Untersuchungsintervall
Minimale
Bearbeitungsdauer
Anti-HEV-IgG [ELISA]
Anti-HEV-IgG [LIA]
Anti-HEV-IgM [ELISA]
Anti-HEV-IgM [LIA]
HEV-RNA [RT-PCR]
2-3x /Woche
2x /Woche
2-3x /Woche
2x /Woche
3-4x /Woche
4 Std.
4 Std.
4 Std.
4 Std.
4 Std.
Anti-HIV-1/2, p24-Antigen [CMIA, ECLIA,
ELFA]
Anti-HIV-1/2 IgG [LIA]
HIV-1 p24-Antigen [ECLIA]
HIV-1 RNA [RT-PCR (quant.)]
HIV-RNA [RT-PCR, qual.] (f. eilige Untersuchungen, geringere Sensitivität als PCR (quant.))
HIV-Resistenztest [RT-PCR, Seq.]
HIV-1 Corezeptor-Bestimmung [RT-PCR, Seq.]
Arbeitstäglich
2 Std.
2-3x /Woche
3-4x /Woche
2-3x /Woche
Bei Erfordernis
5 Std.
2 Std.
2x /Woche
Bei Anforderung
3 Arbeitstage
3 Arbeitstage
HSV-Antikörper [KBR]
HSV-1/2-IgG [ELISA]
HSV-2-IgG [ELISA]
HSV-1/2-IgM [ELISA]
HSV-DNA [PCR (quant.)]
3x /Woche
3-4x /Woche
1-2x /Woche
3-4x /Woche
Arbeitstäglich
2 Tage
4 Std.
2 Std.
4 Std.
4 Std.
HTLV-1/2-Antikörper [CMIA]
HTLV-1/2 [LIA]
Arbeitstäglich
Bei Erfordernis
2 Std.
2 Tage
HMPV-RNA [RT-PCR, semiquant.]
Arbeitstäglich
4 Std.
Humane Papillomviren [PCR, Hyb.]
1x /Woche
1 Tag
Humanes Herpesvirus 6-IgG [IFT, ELISA]
Humanes Herpesvirus 6-IgM [IFT, ELISA]
Humanes Herpesvirus 6-DNA [PCR (quant.)]
2x /Woche
2x /Woche
Arbeitstäglich
2 Std.
4 Std.
4 Std.
Humanes Herpesvirus 7-DNA [PCR,
Arbeitstäglich
4 Std.
Humanes Herpesvirus 8-IgG [IFT]
Hum.-Herpesvirus 8-DNA [PCR, semiquant.]
2x /Woche
Arbeitstäglich
2 Std.
4 Std.
6 Std.
4 Std.
Seite 22 von 64
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Untersuchungsparameter [Methodik]
Untersuchungsintervall
Minimale
Bearbeitungsdauer
Influenza A Virus-Antikörper [KBR]
Influenza A Virus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
Influenza A Virus-Typis. [RT-PCR, Seq.]
Influenza B Virus-Antikörper [KBR]
Influenza B Virus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
3x /Woche
Arbeitstäglich
1-2x /Woche
3x /Woche
Arbeitstäglich
2 Tage
4 Std.
3 Arbeitstage
2 Tage
4 Std.
Japan. Enzephalitis Virus-IgG [IFT]
Japan. Enzephalitis Virus-IgM [IFT]
Japan. Enzephalitis Virus-RNA [RT-PCR]
Bei Anforderung
Bei Anforderung
Bei Anforderung
3 Std.
3 Std.
4 Std.
JC Polyomavirus-DNA [PCR (quant.)]
Arbeitstäglich
4 Std.
LCM Virus-Antikörper [KBR]
LCM-Virus-RNA [RT-PCR]
Bei Anforderung
Bei Anforderung
2 Tage
4 Std.
Masernvirus-Antikörper [KBR]
Masernvirus-IgG [ELISA]
Masernvirus-IgM [ELISA, IFT]
Masernvirus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
3x /Woche
3-4x /Woche
3-4x /Woche
Arbeitstäglich
2 Tage
4 Std.
4 Std.
4 Std.
Molluscum contagiosum Virus [PCR]
Bei Anforderung
2 Tage
Mumpsvirus-Antikörper [KBR]
Mumpsvirus-IgG [ELISA]
Mumpsvirus-IgM [ELISA, IFT]
Mumpsvirus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
3x /Woche
3-4x /Woche
3-4x /Woche
4x /Woche
2 Tage
4 Std.
4 Std.
4 Std.
Norovirus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
Arbeitstäglich
4 Std.
Seite 23 von 64
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Untersuchungsparameter [Methodik]
Untersuchungsintervall
Minimale
Bearbeitungsdauer
Parainfluenza Virus 1-Antikörper [KBR]
Parainfluenza Virus 1-3 IgG [ELISA]
Parainfluenza Virus 1-3 IgA [ELISA]
Parainfl. Virus 1-RNA [RT-RNA, semiquant.]
Parainfluenza Virus 2-Antikörper [KBR]
Parainfl. Virus 2-RNA [RT-RNA, semiquant.]
Parainfluenza Virus 3-Antikörper [KBR]
Parainfl. Virus 3-RNA [RT-RNA, semiquant.]
Parainfl. Virus 4-RNA [RT-RNA, semiquant.]
3x /Woche
1-2x /Woche
1-2x /Woche
Arbeitstäglich
3x /Woche
Arbeitstäglich
3x /Woche
Arbeitstäglich
Arbeitstäglich
2 Tage
2 Std.
2 Std.
4 Std.
2 Tage
4 Std.
2 Tage
4 Std.
4 Std.
Humanes Parechovirus-RNA [RT-PCR]
Humanes Parechov.-Typisier. [RT-PCR, Seq.]
Arbeitstäglich
Bei Anforderung
4 Std.
3 Arbeitstage
Parvovirus B19-IgG [ELISA]
Parvovirus B19-IgG [LIA]
Parvovirus B19-IgG-Avidität [LIA]
Parvovirus B19-IgM [ELISA]
Parvovirus B19-DNA [PCR (quant.)]
Parvovirus B19-Genotypisierung [PCR]
3-4x /Woche
Bei Erfordernis
Bei Erfordernis
3-4x /Woche
Arbeitstäglich
Bei Anforderung
4 Std.
4 Std.
5 Std.
4 Std.
4 Std.
2 Arbeitstage
PARV4-DNA [PCR, semiquant.]
PARV4-Genotypisierung [PCR]
Bei Anforderung
Bei Erfordernis
5 Std.
2-3 Arbeitstage
Poliovirus-1-3-Antikörper [NT]
1x monatlich
3-4 Tage
Respiratorisches Panel [(RT-)PCR, semiquant.] Arbeitstäglich
Untersuchungsparameter s. Seite 16
4 Std.
Seite 24 von 64
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Untersuchungsparameter [Methodik]
Untersuchungsintervall
Minimale
Bearbeitungsdauer
Rhinovirus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
Arbeitstäglich
4 Std.
Rötelnvirus-IgG [ELISA, CMIA]
Rötelnvirus-IgG-Avidität [ELISA]
Rötelnvirus-IgM [ELISA, CMIA]
Rötelnvirus-RNA [RT-PCR]
3x /Woche
Bei Erfordernis
3-4x /Woche
4x /Woche
2 oder 4 Std.
3 Std.
3 Std.
1 Tag
Rotavirus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
Arbeitstäglich
4 Std.
RSV-Antikörper [KBR]
RSV-IgG [ELISA]
RSV-IgA [ELISA]
RSV-RNA [RT-PCR, semiquant.]
3x /Woche
1-2x /Woche
1-2 x /Woche
Arbeitstäglich
2 Tage
2 Std.
2 Std.
4 Std.
Sandfliegenfieber-Virus-IgG [IFT]
Sandfliegenfieber-Virus-IgG [LIA]
Sandfliegenfieber-Virus-IgM [IFT]
Sandfliegenfieber-Virus-IgM [LIA]
Bei Anforderung
Bei Erfordernis
Bei Anforderung
Bei Erfordernis
3 Std.
4 Std.
3 Std.
4 Std.
Sapovirus-RNA [RT-PCR, semiquant.]
Arbeitstäglich
4 Std.
VZV-Antikörper [KBR]
VZV-IgG [ELISA]
VZV-IgM ELISA]
VZV IgA [ELISA, IFT]
VZV-DNA [PCR (quant.)]
3x /Woche
3-4x /Woche
3-4x /Woche
2-3x /Woche
Arbeitstäglich
2 Tage
4 Std.
4 Std.
4 Std.
4 Std.
Virus-Isolierung [Zellkultur]
Kein Standard-Test
Bei Erfordernis
7-21 Tage
West-Nil-Virus-IgG [IFT]
West-Nil-Virus-IgM [IFT]
West-Nil-Virus-RNA [RT-PCR]
Bei Anforderung
Bei Anforderung
Bei Anforderung
4 Std.
4 Std
4 Std
Zika Virus IgG [IFT/ELISA]
Zika Virus IgM [IFT/ELISA]
Zika Virus RNA [RT-PCR]
Bei Anforderung
Bei Anforderung
Bei Anforderung
4 Std.
4 Std
4 Std
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Dokument-Nr.:
7
VIR-10423-12-VA
Diagnostisches Angebot (Langfassung)
WICHTIG: Die nachfolgenden Ausführungen, insbesondere die Angaben zur Indikation, beschränken sich auf die häufigsten klinischen Fragestellungen. Die Tabelle ist kein kurzgefasstes
Lehrbuch der Klinischen Virologie. Für Auskünfte/Beratungen stehen wir gerne zur Verfügung
(Telefonnummer 0228 287 16986, 0228 287 13590, 0228 287 15881).
Adenovirus (AdV)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Indikation
DNA
[PCR
(quant.)]
Material
Anmerkungen
Atemwegsinfektion
(Pneumonie)
Rachenabstrich, -spülwasser, Trachealsekret,
BAL
Keratokonjunctivitis
KonjunktivalAbstrich
Diarrhoe, v.a bei
Kindern
Stuhl
Akute hämorrh.
Zystitis
Urin
Disseminierte Infektion, vorwiegend unter
Immunsuppression
EDTA-Blut
Antikörper
[KBR]
s.o.
Serum
Erreger-Persistenz ist bei der Interpretation zu berücksichtigen.
Untersuchung im „Respiratorischen Panel“ und „Gastroenteritis-Panel“ enthalten. Auch
als Einzeltest anforderbar.
AdV-Typisierung [PCR, Seq.]
möglich (je nach Typ u. U. als
Fremdleistung).
Aussagewert limitiert.
KBR erfasst IgM und IgG (insb.
IgG3).
Astrovirus (AstV)
Indikation
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
Gastroenteritis bei
Säuglingen, Kleinkindern,
gelegentlich bei Senioren
Material
Stuhl
Anmerkungen
Inapparente Infektion möglich.
Wiederholte Astrovirus-Infektionen
mit verschiedenen Typen möglich.
Untersuchung im „GastroenteritisPanel“ enthalten. Auch als Einzeltest
anforderbar.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
BK Polyomavirus (BKPyV)
DNA
[PCR
(quant.)]
Indikation
Material
V. a. Nephropathie nach
Nierentransplantation,
hämorrh. Zystitis nach KMT
Serum,
EDTAPlasma,
(Urin)
Anmerkungen
Hohe/ansteigende Viruskonzentrationen signifikant.
Humane Bocaviren (HBoV)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Indikation
DNA
[PCR,
semiquant.]
Material
Infektionen des Respirationstrakts, Bronchiolitis,
Pneumonie bei Kindern,
Immunsupprimierten
Anmerkungen
Nasen-/Rachenabstrich oder –spülwasser, Trachealsekret,
BAL, Serum (s.
Anmerkungen)
Inapparente Infektion möglich.
Wird häufig zusammen mit anderen Viren von Atemwegserkrankungen nachgewiesen.
Methodik erfasst HBoV1 und 2. Primärinfektion häufig mit
Virämie.
Material
Anmerkungen
Serum,
Liquor
Negativ ab ca. 2. Krankheitswoche.
Chikungunya Virus (CHIKV)
Indikation
RNA
[RT-PCR]
Fieber, Arthralgie/Myalgie
nach Aufenthalt in Endemiegebieten in Asien und Afrika
IgG, IgM
[IFT]
s. o.,
V.a. abgelaufene Infektion
Serum,
EDTA-Plasma
Kreuzreaktivität mit anderen
Alphaviren möglich.
Coronaviren (CoV), HKU1, OC43, NL63, 229E
zu MERS-CoV: s. Seite 55 und www.virology-bonn.de
Indikation
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
Atemwegsinfektion
Material
Nasen-/Rachenabstrich,
Rachenspülwasser, Trachealabstrich/-sekret, BAL
Anmerkungen
Positiver Befund belegt Infektion.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Cytomegalievirus (CMV)
Indikation
Transplantationsnachsorge
Therapieüberwachung
immunsupprimierter Patienten
DNA
[PCR (quant.)]
Kammerwasser
Pneumonie
Trachealabstrich,
-sekret, BAL
Liquor
V. a. ZNS-Infektion
Colitis
Konnatale Infektion
Anmerkungen
EDTA-Blut
Retinitis
V. a. Infektion in
Schwangerschaft/
Fetale Infektion
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Material
Asymptomatische Ausscheidung
möglich.
Biopsat
EDTA-Blut
Viruspersistenz im Organismus bei
der Interpretation der Resultate
berücksichtigen.
Fruchtwasser,
Fetalblut
Urin, Blut,
Speichel
Knochenmark
Muttermilch
Resistenzbestimmung*
[PCR, Seq.]
IgG, IgM
IgG-Avidität
[ELISA, ELA,
CMIA, KBR]
Intrathekale
Antikörpersynthese
[ELISA]
V.a. ChemotherapeutikaResistenz
s. o.,
V.a. floride CMV-Infektion,
Bestimmung des Infektionsstatus
V. a. ZNS-Infektion
s. PCR
Serum**,
EDTA-Plasma
Liquor und Serum
(zeitgleiche
Entnahme; s. auch
Erläuterung S. 10)
Viruskonzentration ≥ 1000 IU CMVDNA/mL in Untersuchunsmaterial erforderlich. Bei Konzentrationen < 1000 IU/
mL kann die Untersuchung fehlschlagen.
**KBR nur mit Serum durchführbar.
KBR erfasst IgM und IgG (insb. IgG3).
KBR für Bestimmung des Infektionsstatus ungeeignet.
Fehlendes IgM schließt aktive Infektion
nicht aus. Polyklonale IgM-Stimulierung
und Kreuzreaktivität mit IgM gegen andere Herpesviren möglich.
Bei Immunsuppression kann die Antikörperantwort verzögert sein. Zur engmaschigen Überwachung von CMV-Infektionen ist die Serologie ungeeignet.
CMV-IgG-Aviditätstestung zur Eingrenzung des Infektionszeitpunkts.
Hochavide IgG machen eine CMVPrimärinfektion in den letzten 3 Monaten
vor Blutentnahme unwahrscheinlich.
In Liquor u. Serum ist zusätzlich die
quantitative Bestimmung von Albumin
und Gesamt-IgG in klinisch-chemischem
Labor erforderlich. Erhöhte AntikörperIndex-Werte sprechen für CMV-assoz.
ZNS-Infektion. Erhöhte Werte fallen nur
langsam ab. Bei erheblichen Blutbeimengungen (≥5-8T Erys/μL) im Liquor ist die
Untersuchung nicht sinnvoll.
* UL97 = CMV-Kinase (Monophosphorylierung), UL54 = CMV-Polymerase
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Dengue Virus (DENV)
Indikation
RNA
[RT-PCR]
NS1-Antigen
[Immunchr.]
IgM, IgG
[ELISA]
Material
Unklares Fieber, Exanthem nach
Tropenaufenthalt
Serum, EDTAPlasma, Liquor
Serum,
EDTA-Blut
s. o.,
Frage nach zurückliegender
Infektion
Serum,
EDTA-Plasma
Anmerkungen
Positiv in 1. Krankheitswoche.
Reaktiv bis max. 21. Krankheitstag.
Resultat innerhalb 1 h.
IgM/IgG nachweisbar ab 3.-5./5.-7.
Krankheitstag. Nach Infektion/Impfung mit anderen Flaviviren kreuzreagierende Antikörper nicht selten.
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Enteroviren (Coxsackie A, B-V., Echo-V., Poliov. 1-3, sonstige Enteroviren)
Rhinoviren: s. Seite 44
Indikation
Meningitis, M.-enzephalitis
RNA
[RT-PCR]
Material
Anmerkungen
Liquor, Stuhl
Herpangina
Rachenabstrich, -spülwasser
Hand-Mund-Fuß-Erkrankung
Bläscheninhalt, Stuhl
Exantheme, „Sommer(Blut)
grippe“, Myalgien, Myokarditis,
Pleurodynie
Hämorrh. Konjunktivitis
Neugeborenen-Inf.
Konjunktivalabstrich
Stuhl, Rachenabstrich,
Blut, Trachealsekret, BAL
Untersuchung im „Respiratorischen Panel“ enthalten. Auch als
Einzeltest anforderbar.
Inapparente Infektionen häufig.
Längerfristige Ausscheidung im
Stuhl möglich. Methodik erfasst
Polioviren.
Virustypisierung [RT-PCR, Seq.]
möglich.
Biopsat
Antikörper
[KBR]
V.a. akute Enterovirus-Infektion
(ausgenommen Poliovirus-Inf.)
PoliovirusAntikörper
[NT]
Frage nach Poliovirus-Immunität
Serum,
Liquor
Antikörper-Kreuzreaktivität zwischen verschiedenen Virustypen,
keine typenspezischen Resultate.
KBR erfasst IgM und IgG (insb.
IgG3). Aussagewert sehr limitiert.
Serum
Enzephalitis-Panel
RNA, DNA
[(RT-)PCR]
Indikation
Material
V.a. akute
Meningitis/Enzephalitis
Liquor
Anmerkungen
Umfasst die Untersuchungen auf
HSV, VZV, Enteroviren.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Epstein-Barr Virus (EBV)
Indikation
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
DNA
[PCR (quant.)]
VCA-IgG,
-IgM,
EBNA-1-IgG
IgG-Avidität
[IFT, ELA,
CMIA, LIA]
Material
V.a. Infektiöse Mononukleose,
protrahierte EBV-Infektion,
Posttransplantations - und
HIV-assoz. Lymphome (auch
ZNS), EBV-Reaktivierung, Xlinked proliferat. Syndrome,
unklare EBV-Serologie, Nasopharynx-Ca.
V.a. Infektiöse Mononukleose, EBV-Status vor Transplant., V.a. EBV-Reaktivierung bei immunsupprimierten Patienten
Intrathekale
Antikörpersynthese
V. a. ZNS-Infektion
[ELISA]
EDTA-Blut,
Serum,
Liquor
Serum,
EDTAPlasma
Liquor und Serum
(zeitgleiche Entnahme); s. auch
Erläuterung S. 10)
Anmerkungen
Je nach Krankheitsbild müssen Werte
im Verlauf interpretiert werden.
Bei V.a. Post-Transplantationslymphom
(PTLD) bitte EDTA-Blut einsenden.
≥10% der Primärinfektionen ohne IgM.
Anti-EBNA-1-IgG-Nachweis macht
eine EBV-Primärinfektion in den letzten
4-6 Wochen vor Blutentnahme unwahrscheinlich. Gelegentlich kreuzreaktiver
EBV-IgM-Befund bei CMV-IgM. EBVIgG-Aviditätstestung zur Eingrenzung
des Infektionszeitpunkts. Hochavide
IgG machen eine EBV-Primärinfektion
in den letzten 10-12 Wochen vor Blutentnahme unwahrscheinlich.
In Liquor u. Serum ist zusätzlich die
quantitative Bestimmung von Albumin
und Gesamt-IgG in klinisch-chemischem Labor erforderlich. Erhöhte
Antikörper-Index-Werte sprechen für
EBV-assoz. ZNS-Infektion. Erhöhte
Werte fallen nur langsam ab. Bei erheblichen Blutbeimengungen (≥5-8T
Erys/μL) im Liquor ist die Untersuchung nicht sinnvoll.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Frühsommer-Meningoenzephalitis (FSME)-Virus
Indikation
V. a. akute Infektion nach
IgG, IgM
Aufenthalt in Endemiegebiet
[ELISA, IFT]
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
RNA
[RT-PCR]
V. a. akute Infektion
Material
Anmerkungen
Liquor,
Hirngewebe (post
mortem)
IgG und IgM bei neurologischen
Symptomen meist nachweisbar.
Kreuzreaktion mit anderen Flaviviren
möglich (z. B. Dengue-V., nach Gelbfieber-V.-Impfung).
Liquor-Antikörper fehlen in 50% zum
Zeitpunkt erster neurol. Symptome.
Durch FSME-Impfung induzierte
IgM-Antikörper können über Monate
nachweisbar sein.
Bei neurologischen Symptomen kein
Virus mehr im Blut und meist auch
nicht mehr im Liquor nachweisbar.
Material
Anmerkungen
Stuhl
Umfasst die Untersuchungen auf
Adeno-, Astro-, Noro-, Rota-, Sapoviren. Differenzierung zwischen Norovirus Genogruppe I und II. SapovirusGenotypisierung auf Anforderung
möglich.
Serum,
EDTA-Plasma,
Liquor
Gastroenteritis-Panel
Indikation
RNA, DNA
[(RT-) PCR]
V. a. akute Gastroenteritis
Gelbfieber Virus
Indikation
RNA
[RT-PCR]
IgG, IgM
[IFT]
Hepatitis, Fieber, Enzephalitis nach
Aufenthalt in Endemie-Gebieten in
Afrika, Südamerika
s.o.,
Frage nach zurückliegender Infektion
Material
Serum
Anmerkungen
Positiv bis ca. Mitte 2. Krankheitswoche.
Serum, EDTAPlasma, Liquor
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Hantavirus
Indikation
IgG, IgM
[IFT, LIA]
Material
Anmerkungen
Fieber, Kopf-, Rückenschmerzen, Protein-, Hämaturie, Oligurie, Thrombozytopenie, Serumkreatinin-Erhöhung, HFRS
Serum,
EDTA-Plasma
IgM und IgG (meist) bei Beginn der
Symptomatik vorhanden. Erfasst werden die Virustypen Puumala, Dobrava, Seoul, Sin Nombre, Hantaan.
Hantav.-Typisierung über Antikörper
wegen Kreuzreaktivität nicht immer
möglich. (HFRS = Hämorrhagisches
Fieber mit renalem Syndrom)
s.o.
EDTA-Plasma,
Leukozyten,
Nierenbiopsie
RNA-Nachweis nur in Frühphase der
Erkrankung möglich.
RNA
[RT-PCR]
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Hepatitis A Virus (HAV)
Indikation
Material
IgG, IgM
[CMIA,
ECLIA,
CLIA,
ELFA]
V. a. akute Hepatitis, Frage nach
durchgemachter Infektion, Impfstatus (Immunität)
Serum,
EDTA-Plasma
RNA
[RT-PCR]
V.a. akute Infektion, Bestimmung der Infektiosität, Ausschluß florider Infektion, Erkennung von Infektketten
Stuhl,
Serum,
EDTA-Plasma
Anmerkungen
Falsch-positives IgM möglich, zur
Abklärung hier RT-PCR. IgM kann
in den ersten Krankheitstagen fehlen. IgM kann über Monate persistieren u. nach Impfung nachweisbar
sein. IgG-Angabe in mIU/mL möglich.
Ausscheidung im Stuhl ~ 1-2 Wochen vor bis 4 (selten 8) Wochen
nach Symptombeginn.
Krankheitsverdacht, Erkrankung
sowie Tod sind nach §6 IfSG durch
feststellenden Arzt namentlich meldepflichtig.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Hepatitis B Virus (HBV)
Indikation
Material
HBsAg
[CMIA,
ECLIA,
CLIA]
Serum,
EDTA-Plasma
V. a. akute oder chronische
Hepatitis, Verlaufs-, Therapiekontrolle
HBeAg
[CMIA,
ECLIA]
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Anti-HBc IgG
[CMIA,
ECLIA,CLIA]
Anti-HBc IgM
[ECLIA]
Anti-HBs
[CMIA,
ECLIA]
Serum,
EDTA-Plasma
Anmerkungen
Bei Einsendung von Serum von Patienten
unter Antikoagulanzien: Blutentnahme
möglichst vor Antikoagulanzgabe. HBsAgTräger sind als potentiell infektiös anzusehen. Frühester serologischer Infektionsparameter, Screening-Parameter (neben
Anti-HBc), fehlt bei okkulter HBV-Infektion und Escape-Mutation. HBsAg-Angabe
in IU/mL möglich. „Bestätigungstest“ folgt
bei abklärungsbedürftigem Befund.
HBeAg-Bestimmung nur bei positivem
HBsAg sinnvoll. Verlaufsparameter.
HBeAg-Nachweis häufig mit hoher Infektiosität verbunden, bei HBV präcore/coreMutanten nicht nachweisbar.
Frage nach erfolgter Infektion
(Screening-Parameter)
Serum,
EDTA-Plasma
Marker für erfolgte Infektion. Initial
falsch-positives Messergebnis möglich.
Bei HIV- oder HCV-Koinfektion isoliertes
Anti-HBc möglich.
Frage nach aktiver Infektion
Serum,
EDTA-Plasma
Bei akuter Inf. positiv, gel. auch bei chron.
Inf., Marker für Virusreplikation.
Frage nach Immunität (Impfkontrolle), ausgeheilter Infektion, Therapiekontrolle
Serum,
EDTA-Plasma
Nachweis von Immunität/Rekonvaleszenz.
Angabe in IU/L. Kann nach sehr lange zurückliegender Infektion unter die Nachweisgrenze fallen.
Anti-HBe
[CMIA,
ECLIA]
Verlaufskontrolle der Infektion,
Abschätzung des Aktivitätsgrads, Therapiekontrolle
Serum,
EDTA-Plasma
Transient (Monate bis Jahre) nachweisbar
bei ausheilender Inf.; bei chronischer Inf.
meist mit geringer Virusreplikation verbunden. Hinweis auf reduzierte Infektiosität, bei HBe-Minus-Mutanten allerdings
hochgradige Virämie möglich.
DNA
[PCR (quant.)]
Frage nach Virämie, aktiver Infektion, Infektiosität, Therapiekontrolle, V.a. Präcore-/
Core-/HBs-Escape-Mutante
Serum,
EDTA-Plasma
Angabe in IU HBV-DNA/mL
(untere Quantifizierungsgrenze 10 IU/mL)
Genotypisier.,
Resistenztest
[PCR, Seq.]
Feststellung des HBV-Genotyps, Empfindlichkeitstestung
gegenüber Nukleos/tid-Analoga, Feststellung von EscapeMutanten
Serum,
EDTA-Plasma
(separates 10 mL
Röhrchen)
Genom-Sequenzierung in der RT-Domäne
des pol-Gens/SHB-Gens; Vorhersage für
NRTI.
Verdacht einer akuten Infektion, akute Erkrankung sowie Tod sind nach §6 IfSG
durch feststellenden Arzt namentlich meldepflichtig.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Hepatitis C Virus (HCV)
Indikation
IgG
[CMIA,
V.a. akute oder chronische
ECLIA, LIA] Hepatitis, Screening-Parameter
RNA
[RT-PCR
(quant.)]
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Genotyp.,
Resistenztest
[RT-PCR,
Seq.]
Nachweis von aktiver Infektion,
Infektiosität, Therapiekontrolle
Material
Serum,
EDTA-Plasma
Serum,
EDTA-Plasma
Therapieschema, Virusresistenz
Serum,
gegen Protease- und Polymerase- EDTA-Plasma
Inhibitoren
(separates 10
mL Röhrchen)
Anmerkungen
Antikörper i.d.R. ab 7./8. Woche nach
Viruskontakt nachweisbar, in Einzelfällen auch später. Erstmalig reaktives
Anti-HCV erfordert Bestätigung
durch methodisch differente Verfahren, möglichst auch in einer erneut
abgenommenen Blutprobe (Ausschluss v. Verwechselung).
Angabe in IU HCV-RNA/mL.
(untere Quantifizierungsgrenze 12 IU/
mL)
Genotypisierung in NS5B- und CoreRegion.
NS3-, NS5A- und NS5B-Teilsequenzierung, Empfindlichkeitsvorhersage
für Protease- und Polymerase-Inhibitoren.
Verdacht einer akuten Infektion,
akute Erkrankung sowie Tod sind
nach §6 IfSG durch feststellenden
Arzt namentlich meldepflichtig.
Hepatitis D Virus (HDV)
Indikation
Antikörper
[ELISA]
RNA
[RT-PCR
(quant.)]
Material
Anmerkungen
Screeningparameter,
V.a. Superinfektion bei zuvor
symptomlosem HBV-Träger,
fulminante Hepatitis
Serum
I.d.R. nur bei Nachweis von HBsAg
erforderlich (ausgenommen akute
HBV-HDV-Simultan-Infektion und
fulminante Hepatitis). Nachweis
von HDV-IgG bei Simultan-Infektion erst in später Infektionsphase.
Nach ausgeheilter Simultan-Infektion verlieren sich häufig die HDVAntikörper innerhalb von Monaten
bis wenigen Jahren.
Nachweis von aktiver Infektion,
Infektiosität, Therapiekontrolle
Serum,
EDTA-Plasma
Bei HBV-HDV-Simultan-Infektion
deutlich vor HDV-IgG nachweisbar.
Verdacht einer akuten Infektion,
akute Erkrankung sowie Tod sind
nach §6 IfSG durch feststellenden
Arzt namentlich meldepflichtig.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Hepatitis E Virus (HEV)
Indikation
IgG, IgM
[ELISA,
LIA]
RNA
[RT-PCR]
Material
V.a. akute oder chron.
Hepatitis, Infektionsstatus
Serum,
EDTA-Plasma
V.a. floride Infektion
Serum, Stuhl,
(Liquor)
Anmerkungen
Unter Immunsuppression verzögerte
Antikörper-Antwort. Reaktive IgMResultate sollten mittels RT-PCR kontrolliert werden. Isoliert positive IgMResultate können unspezifischer Natur
sein.
Unter Immunsuppression protrahierter/
chronifizierter Infektionsverlauf möglich.
Verdacht einer akuten Infektion, akute
Erkrankung sowie Tod sind nach §6
IfSG durch feststellenden Arzt namentlich meldepflichtig.
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Herpes simplex Virus 1 und 2 (HSV 1, HSV 2)
Indikation
DNA
[PCR, quant.]
HSV-1/2IgG, -IgM,
HSV-2-IgG
[ELISA,
KBR]
Intrathekale
Antikörpersynthese
[ELISA]
V.a. Meningo-/Enzephalitis,
HSV-verdächtige Haut-/Schleimhaut-Effloreszenzen, Keratitis,
disseminierte Infektion (bei Immunsuppression), HSV-Hepatitis, -Ösophagitis, -Pneumonie;
V.a. konnatale Infektion
V. a. disseminierte Infektion,
konnatale Infektion, HSVHepatitis, -Pneumonie, Frage
nach erfolgter Infektion
(Infektionsstatus)
V.a. ZNS-Infektion
Material
Liquor, Bläscheninhalt, Abstriche,
Augenkammerwasser, Biopsie
(Blut)
Anmerkungen
Differenzierung zwischen HSV 1 und 2.
Blut-Untersuchungen meist nur bei Immunsupprimierten, V.a. generalisierte Inf.,
V.a. Herpes neonatorum angezeigt.
Genotypische Resistenzbestimmung als
Fremdleistung (vorherige Rücksprache erforderlich). In diesen Fällen empfiehlt sich
zusätzlich der Versuch einer Virusisolierung per Zellkultur.
Serum*,
EDTA-Plasma
Wenn möglich direkten Erregernachweis
anstreben.
*KBR nur mit Serum durchführbar. KBR
nicht geeignet zur Feststellung des Serostatus. Erfasst IgM und IgG (insb. IgG3).
Lokale Rezidive meist ohne HSV-IgM.
Kreuzreaktivität zu VZV, seltener zu anderen Herpesviren, möglich. HSV 2-spezifische IgG (Anti-gG-2) können im Einzelfall erst mehrere Wochen nach HSV 2-Primärinfektion nachweisbar werden.
Liquor und
Serum
(zeitgleiche
Entnahme); s.
auch Erläuterung
S. 10)
In Liquor u. Serum ist zusätzlich die quantitative Bestimmung von Albumin und Gesamt-IgG in klinisch-chemischem Labor
erforderlich. Antikörper treten im Liquor
in ~ 2. Krankheitswoche auf. Erhöhte
Antikörper-Index-Werte sprechen für
HSV-assoz. ZNS-Infektion. Erhöhte Werte
fallen nur langsam ab. Bei erheblichen
Blutbeimengungen (≥5-8T Erys/μL) im
Liquor ist die Untersuchung nicht sinnvoll.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Humane Papillomviren (HPV)
Indikation
DNA
[PCR, Hyb.]
V.a. anogenitale HPV-Infektion,
zervikale Präkanzerose, Adenokarzinom, ergänzend zu PAPAbstrich, Kontrolluntersuchung
nach Therapie
Material
Cerxixbürste
Anmerkungen
Erfasst und differenziert HPVTypen 6, 11, 16, 18, 31, 33, 35, 39,
42, 44, 45, 51, 52, 53, 54, 56, 58,
59, 61, 62, 66, 67, 68, 70, 72, 73,
81, 82, 83, 84, 90, 91. Kutane HPVTypen werden nicht erfasst.
Humanes Herpesvirus 6 (HHV 6)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Indikation
IgG, IgM
[IFT; ELISA]
DNA
[PCR
(quant.)]
Material
V. a. Exanthema subitum/Reaktivierung, Mononukleose-ähnl.
Serum,
Krankheitsbild bei ImmunsupEDTAprimierten. Enzephalitis, HepaPlasma
titis (selten)
Fieber bei Immunsupprimierten,
Panzytopenie, DD zu CMVbedingten Erkrankungen bei
Immunsupprimierten, V.a. ZNSInfektion
Serum,
EDTA-Blut
Liquor,
Knochenmark
Anmerkungen
IgM-Nachweis oft unsicher, ggf. Nachweis über IgG-Anstieg. Kreuzreaktivität
mit CMV, seltener mit anderen Herpesviren, möglich. IgM nach polyklonaler
Stimulation möglich.
Differenzierung zwischen Spezies A und
B. Bei hohen Viruskonzentrationen in
multiplen Untersuchungsproben V.a.
chromosomal integriertes HHV 6-Genom
(zur Abklärung Untersuchung von Haarwurzeln).
Humanes Herpes Virus 7 (HHV 7)
Indikation
DNA
[PCR,
semiquant.]
Führt nur selten zu Erkrankung,
Exanthema subitum-ähnl., Mononukleose-ähnl. Bild
Material
Serum,
EDTA-Blut
Anmerkungen
Bei der Interpretation Viruspersistenz
nach Primärinfektion berücksichtigen.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Humanes Herpesvirus 8 (HHV 8)
Indikation
DNA
[PCR,
semiquant.]
Anmerkungen
V.a. HHV 8-assoz. Kaposi-Sarkom, Multizentr. CastlemanErkrankung u. andere HHV 8assoz. Erkrankungen
Virämie spricht für aktive Infektion,
EDTA-Blut,
Negativer Biopsat-Befund spricht
Serum, Knochenmit hoher Wahrscheinlichkeit gegen
mark, Biopsie
HHV 8-assoz. Erkrankung.
Feststellung des Serostatus bei
Personen mit Infektionsrisiko,
V.a. HHV 8-assoz. Kaposi-Sarkom, Multizentr. CastlemanErkrankung u. andere HHV 8assoz. Erkrankungen, Überwachung immunsupprimierter HHV
8-infizierter Personen
Serum,
EDTA-Plasma
Einige Monate vor klinischer Manifestation deutlicher AntikörperAnstieg
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
IgG
[IFT]
Material
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Humanes Immundefizienzvirus 1 und 2 (HIV 1/2)
Indikation
Anmerkungen
V. a./Ausschluss einer HIVInfektion, „HIV-Suchtest”
Serum
EDTA-Plasma
Kombinierter HIV-1/2-Antikörper-/HIV-1Protein (p24)-Nachweis. Frühstens nach
der 2. Woche postexpositionell reaktiv.
Bei V. a. kürzliche Infektion und negativem Resultat Verlaufskontrolle erforderlich, ggf. bis zu 6 Monaten nach Exposition, oder RNA-Testung. Erstmalig reaktive Befunde müssen in methodisch differentem Verfahren abgesichert sein, möglichst auch in einer erneut abgenommenen
Blutprobe (Ausschluss v. Verwechselungen). Maternale Ak können im kindlichen
Blut bis zum 21. Lebensmonat und länger
nachweisbar bleiben.
Anti-HIV1/2-IgG
[LIA]
„Bestätigungstest“, Diskrimierung
von HIV-1/2-Antikörpern, Feststellung der Antikörper-Spezifität
Serum
EDTA-Plasma
Sensitivität geringer als HIV-1/2-Antikörper-/HIV-1-Protein (p24)-Test.
HIV-1-RNA
[RT-PCR
(quant.)]
„Viruslast“-Bestimmung, Therapiekontrolle, V.a. konnatale Infektion,
Infektion in der Frühphase, HIVEnzephalopathie
Plasma
(KEIN Serum)
Liquor
Früher Infektionsmarker, RNA ab Tag 1014 post inf. nachweisbar (untere Quantifizierungsgrenze 40 Kopien/mL). HIV-2RNA-Bestimmung als Fremdleistung.
HIV-1SubtypBestimmung,
Resistenztest,
X4/R5Tropismus
[RT-PCR,
Seq.]
Therapiekontrolle, V. a. Resistenzassoz. Mutationen, vor Therapie mit
CCR5-Corezeptor-Antagonisten
Anti-HIV1/2-IgG +
p24-Antigen
[CMIA,
ECLIA,
ELFA]
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Material
Serum,
EDTA-Blut
Viruskonzentration ≥1000 Kopien/mL erforderlich. Bei Konzentrationen < 1000
Kopien/mL kann die Untersuchung fehlschlagen. Testung gegenüber NRTIs,
NNRTIs, PIs, INIs; V3-Region
Neu-Infektionen sind nach § 7 IfSG durch
den feststellenden Arzt unmittelbar dem
RKI kodiert (gelbes Formular) meldepflichtig.
Humanes Metapneumovirus (HMPV)
Indikation
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
V. a. Atemwegsinfektion bei Kindern, immunsupprimierte Erwachsene, Bronchitis, Bronchiolitis,
Pneumonie; Symptomatik ähnlich
RSV-Infekt
Material
Nasen-/Rachenabstrich, -spülwasser,
Trachealsekret, BAL,
Biopsat
Anmerkungen
Untersuchung im „Respiratorischen
Panel“ enthalten. Auch als Einzeltest anforderbar.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Humanes Parechovirus (HPeV)
Indikation
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
Neugeborenen-Sepsis, -Meningoenzephalitis (Klinik ähnl. Enterovirus-Inf.), respiratorische, milde
gastrointestinale Erkrankungen bei
Kindern
Material
Anmerkungen
Liquor, Rachenabstrich, -spülwasser,
Trachealsekret, BAL,
EDTA-Blut, Serum,
Stuhl
HPeV-Typierung [RTPCR, Seq.] bei positivem Resultat möglich.
Humanes T-lymphotropes Virus 1 und 2 (HTLV-1, -2)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Indikation
Antikörper
[CMIA, LIA]
Material
Screening auf HTLV-Antikörper, V. a. Adulte T-ZellSerum,
Leukämie/Lymphom (ATLL),
EDTAHTLV-1-assoziierte Myelopathie
Plasma
(HAM)/tropische spastische
Paraparese (TSP)
Anmerkungen
Virus-Vorkommen v.a. in Karibik, Südamerika, Japan, Subsahara-Afrika, Rumänien, etc. und i.v.-Drogenkonsumenten. Ein reaktives Resultat im CMIA
sollte im LIA bestätigt werden. LIA für
Diskriminierung zwischen HTLV 1- und
2-Antikörpern. RT-PCR erfolgt als
Fremdleistung.
Influenza A und B Virus
Indikation
Material
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
Akute fiebrige
respiratorische
Symptome, V.a.
Pneumonie im
Winterhalbjahr
Nasen-/Rachenabstrich, -spülwasser, Trachealsekret, Sputum,
BAL, Biopsat
Antikörper
[KBR]
V.a. Influenza
Serum
Anmerkungen
Differenzierung zwischen Infl. A Viren
und Infl. B Viren. Typisierung der Infl. A
V. nach H und N möglich. Untersuchung
im „Respiratorischen Panel“ enthalten.
Auch als Einzeltest anforderbar.
Feststellung der Oseltamivir/ZanamivirResistenz-vermittelnden Mutation H275Y/
I233R möglich.
Diagnostikum 2. Wahl, für schnelle Diagnose eines akuten respiratorischen Infekts
ungeeignet. Benötigt Serum vom Erkrankungsbeginn sowie nach 10-14 Tagen
(Titeranstieg). KBR erfasst IgM und IgG
(insb. IgG 3; Aussagewert limitiert).
Differenzierung zwischen Inf. A und B V.
Im Einzelfall können hohe Titer längerfristig persistieren.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Japanisches Enzephaltitis Virus (JEV)
Indikation
IgG, IgM
[IFT]
Material
Enzephalitis, Fieber nach Aufenthalt in Endemiegebieten
(Süd-, Südost- und Ostasien)
RNA
[RT-PCR]
s.o.
Anmerkungen
Serum,
EDTA-Plasma
Kreuzreaktivität mit anderen Flaviviren möglich.
Liquor,
(Serum), Biopsie
Positiv nur in früher Infektionsphase (bis ca. 5. Krankheitstag).
JC Polyomavirus (JCPyV)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Indikation
DNA
[PCR
(quant.)]
V.a. PML bei Immunsupprimierten, HIV-Infizierten, Patienten unter
Tysabri®-, Rituximab®Therapie
Material
Liquor,
Serum,
EDTA-Blut,
Biopsie
Anmerkungen
Ein negatives Resultat im Liquor schließt
PML nicht sicher aus. Ergänzende Serumoder Plasma-Untersuchung sinnvoll (Nachweisrate im Serum/Plasma ca. 50%). Ein
positives Resultat muss in Zusammenschau
mit der Klinik und bildgebenden Verfahren
interpretiert werden. Gelegentlich Nachweis
geringer Viruskonzentrationen bei Personen
ohne PML.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Lymphozytäres Choriomeningitis Virus (LCM-Virus): s. Seite 23
Masernvirus (MeV)
Indikation
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
IgG, IgM
[ELISA, IFT,
KBR]
Intrathekale
Antikörpersynthese
[ELISA]
RNA
[RT-PCR]
Material
Anmerkungen
V.a. Masern-Exanthem, -Enzephalitis, Meningoenz., -Pneumonie; Immunstatus
Serum*
EDTA-Plasma
*KBR nur mit Serum durchführbar (Aussagewert
sehr limitiert). KBR nicht geeignet zur Feststellung des Serostatus. KBR erfasst IgM und IgG
(insb. IgG3).
Bei V.a. frische Infektion sollte ver-sucht
werden, Diagnose durch RT-PCR abzusichern.
IgM u. IgG kann bei Exanthembeginn noch
fehlen. IgM kann über Monate persistieren. IgM
kann bei Immunsupprimierten fehlen. IgM auch
nach Impfung nachweisbar. Falsch-positives IgM
möglich (z.B. bei frischer EBV-Infektion).
Subakute sklerosierende Panenzephalitis (SSPE)
Liquor
Hohe IgG-Konzentrationen bei SSPE
V.a. Masernenzephalitis, SSPE,
chronische ZNSErkrankung (MS)
V. a. frische
Masernv.Infektion
Liquor und
Serum
(zeitgleiche
Entnahme); s.
auch Erläuterung S. 10)
Rachen-/Wangenabstrich,
EDTA-Blut,
BAL, Urin,
Liquor
In Liquor u. Serum ist zusätzlich die quantitative
Bestimmung von Albumin und Gesamt-IgG in
klinisch-chemischem Labor erforderlich. Antikörper treten im Liquor in ~ 2. Krankheitswoche
auf. Erhöhte Antikörper-Index-Werte sprechen
für Masernv.-assoz. ZNS-Infektion. Erhöhte
Werte fallen nur langsam ab. Bei erheblichen
Blutbeimengungen (≥5-8T Erys/μL) im Liquor
ist die Untersuchung nicht sinnvoll. Bei Mult.
Sklerose in ~ 90% intrathekale Antikörper-Synthese (MRZ-Reaktion).
Zügiger Probentransport ins Labor sicherstellen.
Bei akuter post-infektiöser Masernenzephalitis
lässt sich i.d.R. kein Virus im Liquor nachweisen. Bei akut-progressiv infektiöser Masernenzeph. (unter Immunsuppression) meist hohe
Viruskonzentrationen nachweisbar.
Verdacht einer akuten Infektion, akute Erkrankung sowie Tod sind nach §6 IfSG durch feststellenden Arzt namentlich meldepflichtig.
Molluscum contagiosum Virus: s. Seite 23
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Mumpsvirus (MuV)
Indikation
RNA
[RT-PCR]
V.a. Mumps (Parotitis,
Meningitis, Enzephalitis,
Orchitis, Pankreatitis)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
s.o.,
IgG, IgM
Frage nach Immunität,
[ELISA, IFT,
durchgemachter InfekKBR]
tion
Intrathekale
Antikörpersynthese
[ELISA]
V.a. Mumpsmeningitis,
-enzephalitis
Material
Anmerkungen
Liquor, Speichel,
Wangenschleimhautabstrich, Urin
Zügiger Probentransport ins Labor sicherstellen. Virusnachweis im Urin bis zu 2
Wochen nach Symptombeginn.
Serum*,
EDTA-Plasma,
Liquor
*KBR nur mit Serum durchführbar (Aussagewert sehr limitiert). KBR nicht
geeignet zur Feststellung des Serostatus.
KBR erfasst IgM und IgG (insb. IgG3).
IgM meist schon bei Beginn der Symptomatik im Blut nachweisbar. IgM kann
mehrere Monate persistieren. Bei ZNSSymptomatik IgM im Liquor in 50% nachweisbar. Kreuzreaktivität mit Parainfluenza
Virus 2 (4) möglich.
Liquor und Serum
(zeitgleiche
Entnahme; s. auch
Erläuterung S. 10)
In Liquor u. Serum ist zusätzlich die quantitative Bestimmung von Albumin und Gesamt-IgG in klinisch-chemischem Labor
erforderlich. Antikörper treten im Liquor
in ~ 2. Krankheitswoche auf. Erhöhte Antikörper-Index-Werte sprechen für
Mumpsv.-assoz. ZNS-Infektion. Erhöhte
Werte fallen nur langsam ab. Bei erheblichen Blutbeimengungen (≥5-8T Erys/
μL) im Liquor ist die Untersuchung nicht
sinnvoll.
Norovirus
Indikation
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
V. a. akute Gastroenteritis
Material
Stuhl,
Erbrochenes
Anmerkungen
Differenzierung zwischen Norovirus Genogruppe I und II. Untersuchung im Gastroenteritis-Panel
enthalten. Auch als Einzeltestung
anforderbar.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Humane Parainfluenza-Viren (HPIV)
Indikation
Nasopharyngealabstrich, -spülwasser, Trachealsekret, Sputum,
BAL
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
IgG, IgA
[ELISA,
KBR]
Material
Fieberhalfter Infekt
oberer/unterer Atemwege bei
Säuglingen, Kleinkindern,
Pseudokrupp-ähnliche Sympt.,
Bronchiolitis, Pneumonie unter
Immunsuppression, zumeist im
Herbst, Winter
Serum*
EDTA-Plasma
Anmerkungen
Differenzierung zwischen Typen 1,
3, 2, 4. Untersuchung im „Respiratorischen Panel“ enthalten. Auch als
Einzeltest anforderbar.
Wenn möglich, Erregernachweis
vorziehen.
Testung auf HPIV-1, -2, -3, jedoch
Kreuzreaktivität innerhalb HPIVs
und u. U. zu Mumpsvirus (HPIV-2).
* KBR nur mit Serum durchführbar.
KBR erfasst IgM und IgG (insb.
IgG3). Bei hohem KBR-Titer Verdacht auf kürzliche Infektion. Serokonversion oder 4-facher Titer-Anstieg im Serumpaar ist Hinweis auf
frische Infektion.
Parvovirus B19 (B19V)
Indikation
IgG, IgM
[ELISA,
LIA]
DNA
[PCR
(quant.)]
V.a. Ringelröteln (Erythema
infectiosum), B19V-assoziierte Anämie, Arthralgie,
Infektion in der Schwangerschaft, selten Myokarditis,
Hepatitis, Enzephalitis,
Immunstatus
V.a. Infektion in der Schwangerschaft, fetale Anämie/
Hydrops (Pränataldiagnostik),
Abort, V. a. B19V-assoz.
Anämie, aplastische Krise,
protrahierte Infektion,
chron./persist. Infektion bei
Immundefizienz, Abklärung
unklarer serol. Befunde
Material
Serum,
EDTA-Plasma
Serum, EDTABlut, Nabelschnurblut,
Fruchtwasser,
Abortmaterial,
Liquor,
Knochenmark,
Biopsie
Anmerkungen
In der frühen Krankheitsphase kann
IgG fehlen. Falsch-positives IgM möglich, z.B. bei EBV-Inf., Abklärung
durch DNA-Untersuchung sinnvoll.
Bei aplastischer Krise bei Symptombeginn noch keine Antikörper nachweisbar. Mütterliches IgM kann zum Zeitpunkt fetaler Auffälligkeiten bereits
fehlen.
Persistenz des Virusgenoms in zahlreichen Geweben bei der Interpretation
der Befunde beachten. Geringgradige
Virämie über Wochen bis Monate auch
bei Immunkompetenten möglich.
Genotyp-Bestimmung möglich.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Respiratorisches Panel
Indikation
RNA, DNA
[(RT-) PCR,
semiquant.]
Material
V.a. akute Infektion der
Atemwege (ergänzende Hinweise s. bei einzelnen Viren)
Nasopharyngealabstrich, -spülwasser, Trachealsekret, BAL
Anmerkungen
Umfasst die Untersuchungen auf
Influenza A u. B V., RSV, Rhinov.,
Enterov., HMPV, Parainfluenza V. 14, Coronav. (HKU1, OC43, NL63,
229E), Parechov. und Adenov.
Respiratory Syncytial Virus (RSV)
Indikation
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
Rhinitis, Husten, Fieber,
Bronchitis, Bronchiolits,
Asthma-ähnl. Symptomatik bei Säuglingen u.
Kleinkindern, immunsupprimierten Erwachsenen, Senioren, v.a. in
Herbst, Winter
Material
Anmerkungen
Negatives Resultat schließt
Nasopharyngealabstrich, RSV-Infektion nicht sicher aus.
Untersuchung im „Respirato-spülwasser, Trachealrischen Panel“ enthalten. Auch
sekret, BAL
als Einzeltest anforderbar.
IgG, IgA
[ELISA,
KBR]
s. o.
Serum*
EDTA-Plasma
Wenn möglich, Erregernachweis vorziehen.
*KBR erfasst IgM und IgG
(insb. IgG3). Hoher KBR-Titer
kann als Verdacht auf kürzliche
Infektion interpretiert werden.
Reinfektionen oft ohne IgANachweis. IgG-Serokonversion
bei Serumpaar ist Hinweis auf
frische Infektion.
Humane Rhinoviren (HRV)
Indikation
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
V. a. Common cold, bei Kindern Bronchitis, Bronchopneumonie, Asthma-, COPDExazerbation, schwere Verläufe bei Immunsupprimierten
Material
Anmerkungen
Untersuchung im „Respiratorischen Panel“ enthalten.
Nasen-/RachenabAuch als Einzeltest anforderstrich, -spülwasser,
bar. Negatives Resultat
Trachealsekret, BAL schließt HRV-Infektion nicht
sicher aus.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Rotavirus
Indikation
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
V.a. akute Diarrhoe mit Erbrechen
bei Kindern (v.a. Säuglingen), gelegentlich mit respir. Symptomen,
gelegentlich bei Senioren; überwiegend im Winter, Frühjahr
Material
Anmerkungen
Stuhl
Untersuchung im „Gastroenteritis-Panel“ enthalten. Auch
als Einzeltest anforderbar.
Rötelnvirus (Rubella Virus, RUBV)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Indikation
IgG, IgM
IgG-Avidität
[ELISA,
CMIA]
Intrathekale
Antikörpersynthese
[ELISA]
RNA
[RT-PCR]
V. a. Röteln-Exanthem,
-Arthralgie, Infektion in
der Schwangerschaft,
fetale Infektion; Immunstatus
Material
Anmerkungen
Serum,
EDTA-Plasma,
Nabelschnurblut
IgM kann bei Symptombeginn, Reinfektion fehlen. Falsch-positives IgM
möglich (z.B. bei akuter EBV-, B19Inf.). IgM kann gelegentlich über Monate
persistieren. Bei V.a. konnatale Infektion
PCR aus Urin, Serum sinnvoll. Aviditätstestung zur Eingrenzung des Infektionszeitpunkts. Hochavide Antikörper
machen eine RUBV-Primärinfektion in
den letzten 4-6 Wochen vor Blutentnahme hoch unwahrscheinlich.
V. a. Rötelnvirus-assoz. Liquor und Serum In Liquor u. Serum ist zusätzlich die
Enzephalitis, Meningo(zeitgleiche
quantitative Bestimmung von Albumin
encephalitis, Enzephalo- Entnahme)
und Gesamt-IgG in klinisch-chemischem
myelitis, chronischLabor erforderlich. Antikörper treten im
Liquor in ~ 2. Krankheitswoche auf. Erentzündlicher ZNShöhte Antikörper-Index-Werte sprechen
Erkrankung (MS)
für RUBV-assoz. ZNS-Infektion. Erhöhte
Werte fallen nur langsam ab. Bei erheblichen Blutbeimengungen (≥5-8T Erys/
μL) im Liquor ist die Untersuchung nicht
sinnvoll. Bei Mult. Sklerose in ~ 90%
intrathekale Antikörper-Synthese (MRZReaktion).
V.a. Infektion in der
Rachenspülwasser, Urin,
Zügiger Probentransport ins
Schwangerschaft, PräSerum, EDTA-Blut, BiopLabor sicherstellen.
nataldiagnostik, Abort;
sie (Chorionzotten), NabelV.a. konnatale Infekschnurblut, Fruchtwasser,
tion, Abklärung unklarer Gewebe, Liquor
serologischer Befunde
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Sandfliegenfieber-Virus
Indikation
IgG, IgM
[IFT, LIA]
Material
V.a. Meningitis, Meningoenzephalitis (TOSV), Fieber, Kopf-, Muskel-,
Gelenkschmerzen, Exanthem
(SFSV, SFNV, SFCV), nach
Aufenthalt in Endemie-Gebiet.
Serum,
EDTAPlasma
Anmerkungen
Vorkommen im europäischen
Mittelmeerraum. Erkennt Toscana
V. (TOSV) und Serotypen Sandfly
fever Naples V. (SFNV), Sandfly
fever Sicilian V. (SFSV) u. Sandfly fever Cyprus V. (SFCV).
Akute EBV-Inf. kann zu falsch
positiven Resultaten führen.
Sapovirus
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Indikation
RNA
[RT-PCR,
semiquant.]
Erbrechen, Bauchschmerzen,
seltener Fieber, Diarrhoe, bei
Kindern
Material
Stuhl
Anmerkungen
Untersuchung im „GastroenteritisPanel“ enthalten. Auch als Einzeltest
anforderbar. Bestimmung der Genogruppe möglich.
Varizella-Zoster Virus (VZV): s. Seite 47
West Nil Virus (WNV)
Indikation
IgG, IgM
[IFT]
RNA
[RT-PCR]
Fieber, Kopf-, Muskelschmerzen, z.T. mit Exanthem, Meningitis, Enzephalitis, Paresen,
nach Aufenthalt in Endemiegebiet (Afrika, Asien, Nordamerika)
Material
Serum,
EDTA-Plasma,
Serum, Liquor
Anmerkungen
Bei akuter Erkrankung häufig
Kreuzreaktivität mit anderen
Flaviviren, z. B. GelbfieberVirus, FSME-V.
Virus nur in sehr früher
Krankheitsphase nachweisbar.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Varizella-Zoster Virus (VZV)
Indikation
DNA
[PCR (quant.)]
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
IgG, IgM, IgA
[ELISA, IFT,
KBR]
Intrathekale
Antikörpersynthese
[ELISA]
Material
V.a. VZV-assoz. Enzephalitis, Meningoencephalitis,
Cerebellitis (Primärinf.)
Retinitis, Windpocken,
Zoster, Infektion in der
Schwangerschaft, kongenitales Varizellensyndrom,
Pneumonie
V.a. Windpocken, Gürtelrose, gelegentlich auch
ohne Effloreszenzen
(Zoster sine herpete), Enzephalitis, Meningoencephalitis, Paresen; Parästhesien, Infektion in
Schwangerschaft, Immunstatus
Liquor, Augenkammerwasser,
BAL, Bläschenpunktat,
Rachenabstrich, EDTABlut, Fruchtwasser, Biopsie
*Serum,
EDTA-Plasma,
Liquor,
Nabelschnurblut
V. a. VZV-assoz. ZNS-Infektion, chronisch-entzündliche ZNS-Erkrankung,
z. B. MS
Liquor und
Serum
(zeitgleiche
Entnahme; s.
auch Erläuterung S. 10)
Anmerkungen
Blut-Untersuchung i. d. R. nur bei
Immunsupprimierten (Gefahr einer
disseminierten Inf.) angezeigt.
*KBR nur mit Serum durchführbar. KBR
nicht geeignet zur Feststellung des Serostatus. KBR erfasst IgM und IgG (insb.
IgG3). Serumpaar erforderlich (ein in der
Frühphase und ein bei Varizellen ab
Mitte 2. Krankheitswoche / bei Zoster
Ende 1./Beginn 2. Krankheitswoche entnommenes Zweitserum. Hoher Titer in
zeitentsprechend entnommenen Einzelserum kann aussagekräftig sein.
IgM kann in den ersten Krankheitstagen
bei Windpocken fehlen. IgM kann bei
Zoster gänzlich fehlen. VZV-IgA bei
Zoster häufig nachweisbar. IgG können
bei Windpocken in den ersten Krankheitstagen fehlen. Kreuzreaktivität zu
HSV möglich.
In Liquor u. Serum ist zusätzlich die
quantitative Bestimmung von Albumin
und Gesamt-IgG in klinisch-chemischem
Labor erforderlich. Antikörper treten im
Liquor in ~ 2. Krankheitswoche auf. Erhöhte Antikörper-Index-Werte sprechen
für VZV-assoz. ZNS-Infektion. Erhöhte
Werte fallen nur langsam ab. Bei erheblichen Blutbeimengungen (≥5-8T Erys/
μL) im Liquor ist die Untersuchung nicht
sinnvoll. Bei Mult. Sklerose in ~ 90%
intrathekale Antikörper-Synthese (MRZReaktion).
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Zika Virus (ZikV)
Indikation
IgG, IgM
[IFT/ELISA]
Anmerkungen
Serum,
EDTA-Plasma,
ggf. Liquor
Antikörper ab 8tem Tag nach
Symptombeginn zu erwarten.
Häufig Kreuzreaktivität mit
anderen Flaviviren, z. B. Dengue V., Gelbfieber V. (Impfanamnese beachten). Bitte Angabe des Reiselands.
Serum und Urin
und Speichel, ggf.
Liquor
Die Untersuchung unterschiedlicher Proben erhöht die Nachweis-Chance ab dem 8ten Tag
nach Symptombeginn.
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
RNA
[RT-PCR]
Fieber, Exanthem, Kopf-,
Gelenk-, Muskelschmerzen,
nicht-eitrige Konjunktivitis,
selten Guillain-Barré-Syndrom, fetale Komplikationen
(Hirnanomalien inkl. Mikrozephalie, evtl. Abort) nach
Aufenthalt in Endemiegebiet
(Amerika, Südost-Asien,
Pazifik-Inseln, Ost-Afrika)
Material
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Dokument-Nr.:
8
VIR-10423-12-VA
Differentialdiagnostische Orientierungshilfe
Alphabetisch, nach Manifestationsorgan
(nur häufige vorkommende Erreger aufgeführt)
Auge
Blepharitis
Lid-, Konjunktivalpapillome
Kerato-/Konjunktivitis
Keratitis
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Retinitis
Uveitis, Chorioditis, Iridozyklitis,
Iritis
Konnatale Fehlbildungen (einschl.
Optikusatrophie)
HSV, VZV, Molluscum contag. V.
HPV 6, HPV 11
Adenov. (auch hämorrh. Konjunkt.), HSV, VZV, Enterov.
(hämorrh. Konj.), Coxsackie V. (hämorrh. K.), Influenza V.,
Parainfl. V., EBV, Masernv., Mumpsv., Rötelnv., Molluscum contag. V., selten: Hantav., Gelbfieber V., Dengue V.,
Filov., Zika V.
HSV, Adenov., VZV, Masernv., Mumpsv., Rötelnv., Orfv.
CMV (Immunsuppr., konnatal), VZV, HSV, EBV, HIV,
Coxsackie-V., Mumpsv.
CMV, EBV, VZV, HSV, Echo-Viren, Mumpsv.
Rötelnv., CMV, VZV
Bewegungsapparat
Arthralgie/Arthritis
Myositis, Myalgie
Tropische spastische Paraparese (TSP)
Parvovirus B19, Rötelnv., Mumpsv., Coxsackie V., HCV;
Enterov., Echo V., HBV, Hantav., Dengue V., Gelbfieber V.
Chikungunya V., O´Nyong-Nyong-V., Zika V., HTLV 1,
Poliov.
Influenza V., Coxsackiev. (Bornholmsche Erkrankung), Echo
V., Poliov., RSV, Parainfluenza V., Adenov., HAV, Hantav.,
HIV, Gelbfieber V., Dengue V., Zika V.
HTLV-1, HTLV-2 (TSP-ähnliche Erkrankung)
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Blutbildveränderungen
Anämie
Leukopenie, Lymphopenie
Parvov. B19, EBV, CMV, HHV 6
Masernv., Enterov. (Lymphopenie), CMV, HIV, Gelbfieber V.,
Dengue V.,
Thrombozytopenie
CMV (unter Immunsuppression, pränatale Inf.), Hantav., Parvov.
B19, Viren von Hämorrhag.-Fieber-Erkrankungen wie Dengue V.
(meist als Re-Infektion), Krim-Kongo Fieber V., Henanfieber V.
(China)
Panzytopenie
CMV, EBV, Parvov. B19, HHV 6
Atypische mononukleäre Zellen EBV, CMV, Parvov. B19, Enterov., HTLV-1
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Gastrointestinaltrakt (ab Ösophagus abwärts; Nase u. Mund s. Respirationstrakt)
Ösophagitis
Papillom, Karzinom
Gastritis
Enteritis, Diarrhoe
Kolitis, Proktitis,
Schleimhautulzera
Hämorrhagien
Hepatitis
CMV (unter Immunsuppression), HSV (bei AIDS), HIV
Humane Papillomviren
Adenov. (unter Immunsuppression, Kinder), CMV (unter
Immunsuppression)
Rotav., Norov., Adenov., Astrov., Sapov., Parechov., Influenza V.
(Kinder), Masernv.
CMV (unter Immunsuppr.), HSV (bei AIDS)
CMV (unter Immunsuppr.), Viren von Hämorrhag.-FieberErkrankungen wie Krim-Kongo Fieber V., Lassa V., Rift-Valley Fieber
V., Filov., Gelbfieber V., Hantav.
S. Leber
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Geschlechtsorgane
Prostatitis
Orchitis,Oophoritis (Adnexitis)
Condylomata accuminata (Feigwarzen)
Molluscum contagiosum (Dellwarze)
Zervixkarzinom / Dysplasien
Vulva-, Vagina-, Penis-, Analkarzinome
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Vesikuläre (u. U. ulzerierende) Läsionen
der Genitalmukosa
Sexuell übertragbare V.
HSV 2 u. 1
Mumpsv.
HPV 6, 11; weniger häufig: HPV 16, 30, 45 u.a.
Molluscum contag. V. (Pockenv.)
HPV 16, 18, 31, 33, 45; weniger häufig: HPV 33, 35, 39,
51, 52, 53 und andere HPV-Typen
HPV 16, 18; weniger häufig: HPV 31, 33, 45, 56 und
andere HPV-Typen
HSV 2, HSV 1 VZV (Zoster, selten)
HSV 2 u. 1, HBV, HIV, HPV, Molluscum contagiosum
V., CMV, HTLV, Adenov. (einzelne Typen), HCV
(selten), Zika V. (selten)
Haut
Vesikuläre Effloresz.
Exanthem (Enanthem)
Petechien, Purpura
Nicht vesikuläre Effloresz.
Warzen, Condylomata
Epidermodysplasia
verruciformis
Kaposi-Sarkom
Ekchymosen
Ikterus
HSV, VZV, Enterov., Coxsackie V., Echov., Pockenv. (z. B. Kuh-,
Affenpocken)
Parvov. B19, HHV 6, Coxsackiev., Echov., Parechov., Masernv.
(Roseolen), EBV, CMV, VZV (hämorrhag.), Dengue V., HIV (akute
Inf.), Zika V.
Hantav., Dengue V., Gelbfieber V., HCV, HBV, Chikungunya V.,
Krim-Kongo Fieber V., Rötelnv. (selten)
Molluscum contag. V. (Dellwarze), Orf V. (Ecthyma contagiosum,
Pockenv.),
Diverse Humane Papillomvirustypen
Diverse Humane Papillomvirustypen
HHV 8
Viren von Hämorrhag.-Fieber-Erkrankungen wie Krim-KongoFieber V., Lassa V., Rift-Valley Fieber V., Filov., Gelbfieber V.,
Hantav.
S. Leber, Pankreas
Seite 51 von 64
Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Herz und Gefäße
Myokarditis, Perikarditis,
Rhythmusstörungen
Vaskulitis
Konnater Herzfehler
Hypertonie
Hypotonie
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Hämorrhagien
Enterov., Influenza A V., Mumpsv., Parvov. B19, EBV, CMV,
Rötelnv., Adenov., FSME V. (Begleiterkrankung)
HBV, HCV, Parvov. B19, VZV
Rötelnv. (nach intrauteriner Infektion)
Hantav. (während Oligurie-Phase)
Hantav., Gelbfieber V. (Schockstadium), Tollwut V.
(Blutdruckschwankungen), Viren von Hämorrhag.-FieberErkrankungen (s. Haut/ Ekchymosen)
Dengue V. (meist Zweit-Infektion), Gelbfieber V. , Krim-Kongo
Fieber V., Hantav., sonstige Viren von Hämorrhag.-FieberErkrankungen (s. Haut/ Ekchymosen)
Immunorgane, Lymphadenopathie
Lymphadenopathie
Splenomegalie
Immunsuppression
Adulte T-Zell-Leukämie
Burkitt-Lymphom, B-Zell-Lymphome,
Post-Transplantationslymphome (PTLD)
Body cavity-based lymphoma, Primary
effusion lymphoma, Castleman-Syndrom
Thymitis
Hauptsächlich generalisiert: HIV 1 u. 2, EBV, HTLV1 u. -2, Filoviren.
Hauptsächlich lokalisiert: EBV (zervikal), CMV,
Rötelnv. (nuchal, postaurikulär), HSV (Leiste, meist
HSV 2), Adenov., tierische Pockenv.
EBV, CMV, Mumpsv., Filov.
HIV, Masernv., CMV
HTLV-1
EBV
HHV 8
Mumpsv.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Leber, Pankreas
Hepatitis (akut, protrahiert, oder
chronisch), Hepatomegalie, z.T.
mit Ikterus
Leberzirrhose, -karzinom
Reye-Syndrom (bei Kindern)
Pankreatitis
Inselzellzerstörung
HAV, HBV, HCV, HDV (in Kombination mit HBV), HEV;
seltener: CMV, EBV, HSV, VZV, Adenov., Coxsackie V.,
Enterov. (Kinder), Parechov. (Neonaten), Echov., Mumpsv.,
Parvovirus B19, HHV 6, Rötelnv., FSME V., Gelbfieber V.,
sonstige Viren von Hämorrhag.-Fieber-Erkrankungen wie KrimKongo Fieber V., Lassa V., Rift-Valley Fieber V., Filov.,
HBV, HCV, HDV
Influenza V. (meist nach Gabe von Acetylsalicylsäure)
Coxsackie V.., Mumpsv., CMV (bei AIDS)
Mumpsv., Coxsackie V., Enterov., Rötelnv. (pränatale Inf.)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Niere, Harnwege
Nephritis, Nephropathie
Akutes Nierenversagen, Oligurie
Ureterstenose
Zystitis
Urethritis
Urethra-Kondylome, -Papillome
BKPyV (nach NTX), CMV (v. a. nach NTX), Adenov.
(meist nach NTX), Hantav., HBV (Glomerulonephritis),
HCV (Glomerulonephritis), Mumpsv.,
Hantav., Lassa V., Gelbfieber V.
BKPyV
Adenov., CMV, BKV (hämorrh., unter Immunsuppression),
HSV (meist HSV 2)
HPV 6, 11, 16
Ohren
Otitis media
Innenohrschäden
Zoster oticus
RSV, Influenza A V. (Kinder), Parainfluenza V., Masernv.,
Enterov., Adenov., Rhinov.
CMV (intrauterine Inf.), Rötelnv. (intrauterine Inf.), Mumpsv.
(post-inf.), VZV
VZV
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Respirationstrakt
Rhinitis, Schnupfen („Common
Cold“)
Enanthem
Gingivostomatitis
Nasale, orale, laryngeale
Papillome
Nasopharynxkarzinom (NPC)
Oropharynx-, TonsillenKarzinome
Tonsillitis
Laryngitis, Laryngotracheitis,
Pseudokrupp
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Pharyngitis
Parotitis
Thyreoditis
Tracheitis, Tracheobronchitis
Bronchitis, Bronchiolitis
Pneumonie
Pleurodynie
Rhinov. (> 100 Typen), Entero-, Coronav., Coxsackie A/B-V.,
Echov., RSV (ältere Kinder), HMPV, Parainfluenza V.,
Influenza V., Adenov., Parechov.
Masernv., VZV, Filov.
HSV (Primärinfektion), Coxsackie V. (Herpangina)
Humane Papillomv. 6, 11, 16, und andere
EBV
Humane Papillomv. 16, 18, 33, und andere
EBV, CMV, HIV
Adeno-, Rhinov., RSV, HMPV, Influenza V., Parainfluenza V.,
Coxsackie V., Enterov., Echov., VZV, Masernv., HSV (bei
Immunsuppression), FSME V.
Adenov., Enterov., Influenza V., Parainfluenza V., Rhinov.,
Coronav., RSV, Enterov., Coxsackie V., EBV, HSV, CMV,
Masernv., Rötelnv., Hantav., FSME V. (Frühphase)
Mumpsv., CMV, Enterov.
Mumpsv.
Influenza A Viren (hämorrhagisch)
RSV, HMPV, Parainfluenza V., Masernv., FSME V.
RSV, HMPV, Influenza V., Parainfluenza V., Rhinov., Enterov.,
Coxsackie A/B V., Echov., Coronav., Adenov., Bocav.,
Masernv., Rötelnv.
Influenza V., RSV, HMPV, Parainfluenza V., Adenov., Rhinov.,
Enterov., Coxsackie A V., Echov., Bocav., Coronav., Masernv..
Besonders unter Immunsuppression: HSV, CMV, VZV (meist
bei Erwachsenen und Schwangeren), BKPyV
Coxsackie B V.
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Dokument-Nr.:
VIR-10423-12-VA
Schwangerschaft, Neugeborenes
CMV, Parvov. B19, Rötelnv. (selten), HEV, Mumps. (?), Zika V.
(?)
Hydrops fetalis
Parvov. B19, CMV
Embryopathien/Fehlbildungen, CMV, VZV (selten), Rötelnv., HIV, LCMV., HSV (selten), Zika
Entwicklungsstörungen
V.
Neonatale Hepatitis, HepatoCMV, HSV, Enterov., Coxsackie V., Parechov., VZV, Rötelnv.,
splenomegalie
HIV, HEV
Neonatale Sepsis, Sepsis-like
CMV, HSV (Herpes neonatorum) VZV (konnatale Varizellen)
Enterov., Coxsackie V., Echo V., Parechov., Adenov.
Neonatale Meningitis, EnzeHSV, CMV, Enterov., Coxsackie V., Echov., Parechov., Rötelnv.
phalitis
(selten), LCMV. (selten)
Risiko für Gravida (vermehrt
VZV (Pneumonie), HIV, HEV (fulminante Hepatitis ?)
Komplikation bei Infektion)
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Abort, Frühgeburt, Kindstod
ZNS, Nervensystem
Meningitis, Meningismus,
Meningoenzephalitis
Enzephalitis
Chronische Enzephalitis,
Enzephalopathie
Postinfektiöse Enzephalitis
Myelitis, Enzephalomyelitis
Myelopathie
Polyradikulitis (GuillainBarré-Syndr.)
Paresen, Paralysen
Facialisparese/Hörsturz
Enterov., Coxsackie V., Echov., Parechov. (Kinder), Poliov.,
Adenov., Masernv., Sandfliegenfieber-V., HSV 2, VZV, Mumpsv.,
FSME V., EBV, Hantav., HIV, BKPyV, Parvov. B19, Rötelnv.,
HHV 6, Dengue V., West Nil V., Japanisches Enzephalitis V.,
LCMV.
HSV 1, VZV, Enterov., Parechov. (Kinder), Poliov., Adenov.,
CMV (unter Immunsuppression), FSME V., Masernv., EBV, HIV,
JCPyV, West Nil V., Influenza V., Tollwut V.
HIV, JCPyV (PML), VZV (bei HIV-Infizierten), Masernv. (SSPE;
MIBE), Rötelnv. (konnatal, fortschreitende Panenzephalitis)
Masernv., Rötelnv., VZV, HIV
HSV, VZV, CMV (bei HIV-Infizierten), EBV, FSME V.,
Coxsackie V., Echov., HIV, HHV 6, Rötelnv., Masernv.,
HTLV-1 (Tropische spastische Paraparese)
CMV, EBV, FSME V., Coxsackie V., Echov., Enterov., Influenza
A V., VZV, HIV, Masernv., Rötelnv., Mumpsv., HEV, Zika V.
(selten)
Coxsackie V., Echov., Enterov., Poliov., HSV, VZV, HIV,
Masernv.
VZV, HSV, Mumpsv.
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Dokument-Nr.:
9.
VIR-10423-12-VA
Konsiliarlabor für Coronaviren
Das Institut für Virologie am Universitätsklinikum Bonn ist seit dem 1.10.2013 vom Robert-KochInstitut (RKI) ernanntes Konsiliarlabor für Coronaviren.
Unser diagnostisches Labor nimmt humane Proben bei Verdacht auf Infektionen mit Coronaviren
und differentialdiagnostisch relevanten viralen Erregern entgegen.
Bei bereits auswärtig erfolgten Untersuchungen bieten wir auf Nachfrage eine Bestätigung dieser,
bzw. weitergehende Untersuchungen an.
Bei Verdacht auf eine Infektion mit dem Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus (MERSCoV) sind weitere Informationen für die Labordiagnostik auf der Webseite des Instituts für
Virologie, Bonn (www.virology-bonn.de) einsehbar.
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Weitere Informationen über geeignetes Probenmaterial, empfohlene Laborverfahren, das Vorgehen
bei Verdacht auf eine MERS-CoV-Infektion, Hinweise auf Verpackung und Probenversand sowie
die aktuelle Falldefinition stehen auf der Website des Robert-Koch-Instituts (www.rki.de) zur
Verfügung.
Geeignetes Probematerial bei Verdacht auf eine Infektion mit Coronaviren sind:
Für die Diagnostik mittels Nukleinsäureamplifikationstechnik:
1. Material aus dem oberen Respirationstrakt (z.B. Rachenspülwasser, Nasopharynxaspirat,
Rachenabstrich (in 0,5 mL phys. Kochsalzlösung oder Medium für die Virusdiagnostik).
2. Material aus den unteren Atemwegen (z. B. Sputum, endotracheales Aspirat oder
bronchoalveoläre Lavage)
Für Diagnostik basierend auf Antikörper (IgM/IgG)-Nachweis:
Serumproben (gewonnen in der 1. Woche nach Symptombeginn, sowie eine 2. Serumprobe,
gewonnen mindestens 14 Tage nach Symptombeginn, ideal nach 21 Tagen).
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Dokument-Nr.:
10.
VIR-10423-12-VA
Hinweise bei V. a. Infektion mit hochinfektiösem Virus (Klasse-4-Virus)
Proben, bei denen der begründete Verdacht besteht, dass sie Viren der Risikogruppe 4 entsprechend
der Einstufung biologischer Arbeitsstoffe enthalten, können in unserem Institut nicht untersucht
werden (Schutzstufe-BSL4-Laboratoratorium erforderlich).
Bei begründetem Verdacht auf Infektionen mit Risikogruppe-4-Viren nehmen Sie bitte direkt
Kontakt mit den spezialisierten Laboren auf (s. u.) oder/und kontaktieren Sie uns.
'RNXPHQWHQ1U9,59$1¦FKVWH3U¾IXQJ
Liste der humanpathogenen Klasse-4-Viren:
Ebolavirus (hämorrhagisches Fieber)
Guanaritovirus (Venezuelanisches hämorrhagisches Fieber)
Hendravirus (Zoonose [Fledermäuse, Pferd]; Atemwegserkr., Meningitis/Enzephalitis)
Juninvirus (Argentinisches hämorrhagisches Fieber)
Virus des Hämorrhagischen Krim-Kongo-Fiebers
Lassavirus (hämorrhagisches Fieber)
Lujovirus (hämorrhagisches Fieber)
Machupovirus (Bolivianisches hämorrhagisches Fieber)
Marburgvirus (hämorrhagisches Fieber)
Nipahvirus (Zoonose [Fledermäuse, Schweine]; Atemwegserkr., Enzephalitis)
Pockenviren Variola-Major- und Variola-Minor-Virus
Sabiavirus (Brasilianisches hämorrhagisches Fieber)
Spezialisierte Einrichtungen für Viren der Risikogruppe 4:
Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin
Abteilung für Virologie
Prof. Dr. S. Günther
Bernhard-Nocht-Str. 74
D-20359 Hamburg
Bei Notfällen: Tel. 040 428 180 (24 Stunden täglich)
www.bni-hamburg.de
Philipps-Universität Marburg
Institut für Virologie
Professor Dr. S. Becker
Hans-Meerwein-Str. 2
D-35043 Marburg
Bei Notfällen: Tel.: 0177 310 81 96 (24 Stunden täglich)
www.uni-marburg.de/fb20/virologie
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Dokument-Nr.:
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VIR-10423-12-VA
Meldepflicht nach dem Infektionsschutzgesetz (IfSG)
Kurz-Hinweis für Kliniker:
§ 6-Meldungen haben durch den behandelnden Kliniker zu erfolgen.
§ 7-Meldungen werden von uns als Labor getätigt.
Gemäß § 9 Abs. 3 muss die Meldung unverzüglich, spätestens jedoch innerhalb von 24 Stunden
nach erlangter Kenntnis dem zuständigen Gesundheitsamt gemeldet werden.
Bei. HIV-Neuinfektion sind Sie gehalten (§ 7 Abs. 3), das Ihnen von uns zugesandte, teilausgefüllte Formblatt zu vervollständigen und an die im Formblatt angegebene Adresse des RobertKoch-Instituts weiterzuleiten.
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Weitere Angaben zum Infektionsschutzgesetz (z.B. Falldefinitionen, Meldebögen, Belehrungsbögen, Angaben zu nosokomialen Infektionen, Literaturhinweise) finden sich unter
http://www.rki.de > Infektionsschutz > Infektionsschutzgesetz.
Auszug aus dem
Gesetz zur Verhütung und Bekämpfung von Infektionskrankheiten beim Menschen
Infektionsschutzgesetz (IfSG)
3. Abschnitt
Meldewesen
und
IfSG-Meldepflicht-Anpassungsverordnung
§6
§7
§8
§9
§ 10
Meldepflichtige Krankheiten
Meldepflichtige Nachweise von Krankheitserregern
Zur Meldung verpflichtete Personen
Namentliche Meldung
Nichtnamentliche Meldung
§ 6 Meldepflichtige Krankheiten
(1) Namentlich ist zu melden:
1. der Krankheitsverdacht, die Erkrankung sowie der Tod an
a)
Botulismus
b)
Cholera
c)
Diphtherie
d)
humaner spongiformer Enzephalopathie, außer familiär-hereditärer Formen
e)
akuter Virushepatitis
f)
enteropathischem hämolytisch-urämischem Syndrom (HUS)
g)
virusbedingtem hämorrhagischen Fieber
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Masern
Meningokokken-Meningitis oder –Sepsis
Milzbrand
Mumps
Pertussis
Poliomyelitis (als Verdacht gilt jede akute schlaffe Lähmung, außer wenn traumatisch
bedingt)
n)
Pest
o)
Röteln einschließlich Rötelnembryopathie
p)
Tollwut
q)
Typhus abdominalis/Paratyphus
r)
Varizellen
Zoonotische Influenza
sowie die Erkrankung und der Tod an einer behandlungsbedürftigen Tuberkulose, auch wenn ein
bakteriologischer Nachweis nicht vorliegt,
sowie Erkrankung sowie Tod an einer Clostridium-difficile-Infektion mit klinisch schwerem Verlauf
(für Definition des schweren Verlaufs s. IfSG-Meldepflicht-Anpassungsverordnung)
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h)
i)
j)
k)
l)
m)
2. der Verdacht auf und die Erkrankung an einer mikrobiell bedingten Lebensmittelvergiftung oder
an einer akuten infektiösen Gastroenteritis, wenn
a)
eine Person betroffen ist, die eine Tätigkeit im Sinne des § 42 Abs. 1 ausübt,
b)
zwei oder mehr gleichartige Erkrankungen auftreten, bei denen ein epidemischer Zusammenhang wahrscheinlich ist oder vermutet wird,
3. der Verdacht einer über das übliche Ausmaß einer Impfreaktion hinausgehenden gesundheitlichen
Schädigung,
4. die Verletzung eines Menschen durch ein tollwutkrankes, -verdächtiges oder –ansteckungsverdächtiges Tier sowie die Berührung eines solchen Tieres oder Tierkörpers,
5. soweit nicht nach den Nummern 1 bis 4 meldepflichtig, das Auftreten
a)
einer bedrohlichen Krankheit oder
b)
von zwei oder mehr gleichartigen Erkrankungen, bei denen ein epidemischer Zusammenhang
wahrscheinlich ist oder vermutet wird,
wenn dies auf eine schwerwiegende Gefahr für die Allgemeinheit hinweist und Krankheitserreger als
Ursache in Betracht kommen, die nicht in § 7 genannt sind.
Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8 Abs. 1 Nr. 1, 3 bis 8, § 9 Abs. 1, 2, 3 Satz 1 oder 3 zu
erfolgen.
(2) Dem Gesundheitsamt ist über die Meldung nach Absatz 1 Nr. 1 hinaus mitzuteilen, wenn
Personen, die an einer behandlungsbedürftigen Lungentuberkulose leiden, eine Behandlung
verweigern oder abbrechen. Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8 Abs. 1 Nr. 1, § 9 Abs. 1 und 3
Satz 1 oder 3 zu erfolgen.
(3) Dem Gesundheitsamt ist unverzüglich das gehäufte Auftreten nosokomialer Infektionen, bei
denen ein epidemischer Zusammenhang wahrscheinlich ist oder vermutet wird, als Ausbruch
nichtnamentlich zu melden. Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8 Abs. 1 Nr. 1, 3 und 5, § 10
Absatz 6 zu erfolgen.
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§ 7 Meldepflichtige Nachweise von Krankheitserregern
(1) Namentlich ist bei folgenden Krankheitserregern, soweit nicht anders bestimmt, der direkte oder
indirekte Nachweis zu melden, soweit die Nachweise auf eine akute Infektion hinweisen:
1.
Adenoviren; Meldepflicht nur für den direkten Nachweis im Konjunktivalabstrich
2.
Bacillus anthracis
3.
Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis
4.
Borrelia recurrentis
5.
Brucella sp.
6.
Campylobacter sp., darmpathogen
Chikungunya-Virus
7.
Chlamydia psittaci
8.
Clostridium botulinum oder Toxinnachweis
9.
Corynebacterium diphtheriae, Toxin bildend
10.
Coxiella burnetii
Dengue-Virus
11.
humanpathogene Cryptosporidium sp.
12.
Ebolavirus
13.
a) Escherichia coli, enterohämorrhagische Stämme (EHEC)
b) Escherichia coli, sonstige darmpathogene Stämme
14.
Francisella tularensis
15.
FSME-Virus
16.
Gelbfiebervirus
17.
Giardia lamblia
18.
Haemophilus influenzae; Meldepflicht nur für den direkten Nachweis aus Liquor oder Blut
19.
Hantaviren
20.
Hepatitis-A-Virus
21.
Hepatitis-B-Virus
22.
Hepatitis-C-Virus; Meldepflicht für alle Nachweise, soweit nicht bekannt ist, dass eine
chronische Infektion vorliegt
23.
Hepatitis-D-Virus
24.
Hepatitis-E-Virus
25.
Influenzaviren; Meldepflicht nur für den direkten Nachweis
26.
Lassavirus
27.
Legionella sp.
28.
humanpathogene Leptospira sp.
29.
Listeria monocytogenes; Meldepflicht nur für den direkten Nachweis aus Blut, Liquor oder
anderen normalerweise sterilen Substraten sowie aus Abstrichen von Neugeborenen
30.
Marburgvirus
31.
Masernvirus
32.
Mumpsvirus
33.
Mycobacterium leprae
34.
Mycobacterium tuberculosis/africanum, Mycobacterium bovis; Meldepflicht für den
direkten Erregernachweis sowie nachfolgend für das Ergebnis der Resistenzbestimmung;
vorab auch für den Nachweis säurefester Stäbchen im Sputum
35.
Neisseria meningitidis; Meldepflicht nur für den direkten Nachweis aus Liquor, Blut,
hämorrhagischen Hautinfiltraten oder anderen normalerweise sterilen Substraten
36.
Norwalk-ähnliches Virus; Meldepflicht nur für den direkten Nachweis aus Stuhl
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37.
Poliovirus
38.
Rabiesvirus
39.
Rickettsia prowazekii
40.
Rotavirus
41.
Rubellavirus
42.
Salmonella Paratyphi; Meldepflicht für alle direkten Nachweise
43.
Salmonella Typhi; Meldepflicht für alle direkten Nachweise
44.
Salmonella, sonstige
45.
Shigella sp.
46.
Trichinella spiralis
47.
Varizella-Zoster-Virus
48.
Vibrio cholerae O 1 und O 139
49.
Yersinia enterocolitica, darmpathogen
50.
Yersinia pestis
West-Nil-Virus
51.
andere Erreger hämorrhagischer Fieber
Zika Virus und sonstige Arboviren
Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8 Abs. 1 Nr. 2, 3, 4 und Abs. 4, § 9 Abs. 1, 2, 3 Satz 1 oder 3
zu erfolgen.
- Direkter Nachweis folgender Krankheitserreger:
1. Staphylococcus aureus, Methicillin-resistente Stämme (MRSA); Meldepflicht für den
Nachweis aus Blut oder Liquor,
2. Enterobacteriaceae mit Carbapenem-Nichtempfindlichkeit oder bei Nachweis einer
Carbapenemase-Determinante, mit Ausnahme der isolierten Nichtempfindlichkeit gegenüber
Imipenem bei Proteus spp., Morganella spp., Providencia spp. und Serratia marcescens;
Meldepflicht bei Infektion oder Kolonisation,
3. Acinetobacter spp. mit Carbapenem-Nichtempfindlichkeit oder bei Nachweis einer
Carbapenemase-Determinante; Meldepflicht bei Infektion oder Kolonisation.
(2) Namentlich sind in dieser Vorschrift nicht genannte Krankheitserreger zu melden, soweit deren
örtliche und zeitliche Häufung auf eine schwerwiegende Gefahr für die Allgemeinheit hinweist. Die
Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8 Abs. 1 Nr. 2, 3 und Abs. 4, § 9 Abs. 2, 3 Satz 1 oder 3 zu
erfolgen.
(3) Nichtnamentlich ist bei folgenden Krankheitserregern der direkte oder indirekte Nachweis zu
melden:
1.
Treponema pallidum
2.
HIV
3.
Echinococcus sp.
4.
Plasmodium sp.
5.
Toxoplasma gondii; Meldepflicht nur bei konnatalen Infektionen.
Die Meldung nach Satz 1 hat gemäß § 8 Abs. 1 Nr. 2, 3 und Abs. 4, § 10 Abs. 1 Satz 1, Abs. 3, 4
Satz 1 zu erfolgen.
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§ 8 Zur Meldung verpflichtete Personen
(1) Zur Meldung oder Mitteilung sind verpflichtet:
1.
im Falle des § 6 der feststellende Arzt; in Krankenhäusern oder anderen Einrichtungen der
stationären Pflege ist für die Einhaltung der Meldepflicht neben dem feststellenden Arzt auch
der leitende Arzt, in Krankenhäusern mit mehreren selbständigen Abteilungen der leitende
Abteilungsarzt, in Einrichtungen ohne leitenden Arzt der behandelnde Arzt verantwortlich,
2.
im Falle des § 7 die Leiter von Medizinaluntersuchungsämtern und sonstigen privaten oder
öffentlichen Untersuchungsstellen einschließlich der Krankenhauslaboratorien,
3.
im Falle der §§ 6 und 7 die Leiter von Einrichtungen der pathologisch-anatomischen
Diagnostik, wenn ein Befund erhoben wird, der sicher oder mit hoher Wahrscheinlichkeit auf
das Vorliegen einer meldepflichtigen Erkrankung oder Infektion durch einen meldepflichtigen
Krankheitserreger schließen lässt,
4.
im Falle des § 6 Abs. 1 Nr. 4 und im Falle des § 7 Abs. 1 Nr. 36 bei Tieren, mit denen
Menschen Kontakt gehabt haben, auch der Tierarzt,
5.
im Falle des § 6 Abs. 1 Nr. 1, 2 und 5 und Abs. 3 Angehörige eines anderen Heil- oder
Pflegeberufs, der für die Berufsausübung oder die Führung der Berufsbezeichnung eine
staatlich geregelte Ausbildung oder Anerkennung erfordert,
6.
(weggefallen)
7.
im Falle des § 6 Abs. 1 Nr. 1, 2 und 5 die Leiter von Pflegeeinrichtungen, Justizvollzugsanstalten, Heimen, Lagern oder ähnlichen Einrichtungen,
8.
im Falle des § 6 Abs. 1 der Heilpraktiker.
(2) Die Meldepflicht besteht nicht für Personen des Not- und Rettungsdienstes, wenn der Patient
unverzüglich in eine ärztlich geleitete Einrichtung gebracht wurde. Die Meldepflicht besteht für die
in Absatz 1 Nr. 5 bis 7 bezeichneten Personen nur, wenn ein Arzt nicht hinzugezogen wurde.
(3) Die Meldepflicht besteht nicht, wenn dem Meldepflichtigen ein Nachweis vorliegt, dass die
Meldung bereits erfolgte und andere als die bereits gemeldeten Angaben nicht erhoben wurden. Satz
1 gilt auch für Erkrankungen, bei denen der Verdacht bereits gemeldet wurde.
(4) Absatz 1 Nr. 2 gilt entsprechend für Personen, die die Untersuchung zum Nachweis von
Krankheitserregern außerhalb des Geltungsbereichs dieses Gesetzes durchführen lassen.
(5) Der Meldepflichtige hat dem Gesundheitsamt unverzüglich mitzuteilen, wenn sich eine
Verdachtsmeldung nicht bestätigt hat.
§ 9 Namentliche Meldung
(1) Die namentliche Meldung durch eine der in § 8 Abs. 1 Nr. 1, 4 bis 8 genannten Personen muss
folgende Angaben enthalten:
1.
Name, Vorname des Patienten
2.
Geschlecht
3.
Tag, Monat und Jahr der Geburt
4.
Anschrift der Hauptwohnung und, falls abweichend: Anschrift des derzeitigen Aufenthaltsortes
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Tätigkeit in Einrichtungen im Sinne des § 23 Absatz 5 oder 6 oder § 36 Abs. 1 oder 2;
Tätigkeit im Sinne des § 23 Absatz 5 oder 6 oder § 42 Abs. 1 bei akuter Gastroenteritis, akuter
Virushepatitis, Typhus abdominalis/Paratyphus und Cholera
6.
Betreuung in einer Gemeinschaftseinrichtung gemäß § 33
7.
Diagnose beziehungsweise Verdachtsdiagnose
8.
Tag der Erkrankung oder Tag der Diagnose, gegebenenfalls Tag des Todes
9.
wahrscheinliche Infektionsquelle
10. Land (in Deutschland: Landkreis oder kreisfreie Stadt), in dem die Infektion wahrscheinlich
erworben wurde; bei Tuberkulose Geburtsland und Staatsangehörigkeit
11. Name, Anschrift und Telefonnummer der mit der Erregerdiagnostik beauftragten Untersuchungsstelle
12.
Überweisung in ein Krankenhaus beziehungsweise Aufnahme in einem Krankenhaus oder
einer anderen Einrichtung der stationären Pflege und Entlassung aus der Einrichtung, soweit
dem Meldepflichtigen bekannt
13. Blut-, Organ-, Gewebe- oder Zellspende in den letzten sechs Monaten
14. Name, Anschrift und Telefonnummer des Meldenden
15. bei einer Meldung nach § 6 Abs. 1 Nr. 3 die Angaben nach § 22 Abs. 2.
Bei den in § 8 Abs. 1 Nr. 4 bis 8 genannten Personen beschränkt sich die Meldepflicht auf die ihnen
vorliegenden Angaben.
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5.
(2) Die namentliche Meldung durch eine in § 8 Abs. 1 Nr. 2 und 3 genannte Person muss folgende
Angaben enthalten:
1.
Name, Vorname des Patienten
2.
Geschlecht, soweit die Angabe vorliegt
3.
Tag, Monat und Jahr der Geburt, soweit die Angaben vorliegen
4.
Anschrift der Hauptwohnung und, falls abweichend: Anschrift des derzeitigen Aufenthaltsortes, soweit die Angaben vorliegen
5.
Art des Untersuchungsmaterials
6.
Eingangsdatum des Untersuchungsmaterials
7.
Nachweismethode
8.
Untersuchungsbefund
9.
Name, Anschrift und Telefonnummer des einsendenden Arztes beziehungsweise des
Krankenhauses
10.
Name, Anschrift und Telefonnummer des Meldenden.
Der einsendende Arzt hat bei einer Untersuchung auf Hepatitis C dem Meldepflichtigen mitzuteilen,
ob ihm eine chronische Hepatitis C bei dem Patienten bekannt ist.
(3) Die namentliche Meldung muss unverzüglich erfolgen und spätestens innerhalb von 24 Stunden
nach erlangter Kenntnis dem für den Aufenthalt des Betroffenen zuständigen Gesundheitsamt, im
Falle des Absatzes 2 dem für den Einsender zuständigen Gesundheitsamt vorliegen. Eine Meldung
darf wegen einzelner fehlender Angaben nicht verzögert werden. Die Nachmeldung oder Korrektur
von Angaben hat unverzüglich nach deren Vorliegen zu erfolgen. Liegt die Hauptwohnung oder der
gewöhnliche Aufenthaltsort der betroffenen Person im Bereich eines anderen Gesundheitsamtes, so
hat das unterrichtete Gesundheitsamt das für die Hauptwohnung, bei mehreren Wohnungen das für
den gewöhnlichen Aufenthaltsort des Betroffenen zuständige Gesundheitsamt unverzüglich zu
benachrichtigen.
(4) (weggefallen)
(5) Das Gesundheitsamt darf die gemeldeten personenbezogenen Daten nur für seine Aufgaben nach
diesem Gesetz verarbeiten und nutzen. Personenbezogene Daten sind zu löschen, wenn ihre Kenntnis
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für das Gesundheitsamt zur Erfüllung der in seiner Zuständigkeit liegenden Aufgaben nicht mehr
erforderlich ist, Daten zu § 7 Abs. 1 Nr. 21 spätestens jedoch nach drei Jahren.
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§ 10 Nichtnamentliche Meldung
(1) Die nichtnamentliche Meldung nach § 7 Abs. 3 muss folgende Angaben enthalten:
1.
im Falle des § 7 Abs. 3 Nr. 2 eine fallbezogene Verschlüsselung gemäß Absatz 2
2.
Geschlecht
3.
Monat und Jahr der Geburt
4.
erste drei Ziffern der Postleitzahl der Hauptwohnung
5.
Untersuchungsbefund
6.
Monat und Jahr der Diagnose
7.
Art des Untersuchungsmaterials
8.
Nachweismethode
9.
wahrscheinlicher Infektionsweg, wahrscheinliches Infektionsrisiko
10.
Land, in dem die Infektion wahrscheinlich erworben wurde
11.
Name, Anschrift und Telefonnummer des Meldenden
12.
bei Malaria Angaben zur Expositions- und Chemoprophylaxe.
Der einsendende Arzt hat den Meldepflichtigen insbesondere bei den Angaben zu den Nummern 9,
10 und 12 zu unterstützen.
(2) Die fallbezogene Verschlüsselung besteht aus dem dritten Buchstaben des ersten Vornamens in
Verbindung mit der Anzahl der Buchstaben des ersten Vornamens sowie dem dritten Buchstaben
des ersten Nachnamens in Verbindung mit der Anzahl der Buchstaben des ersten Nachnamens. Bei
Doppelnamen wird jeweils nur der erste Teil des Namens berücksichtigt; Umlaute werden in zwei
Buchstaben dargestellt. Namenszusätze bleiben unberücksichtigt.
(3) Bei den in § 8 Abs. 1 Nr. 3 und 5 genannten Personen beschränkt sich der Umfang der Meldung
auf die ihnen vorliegenden Angaben.
(4) Die nichtnamentliche Meldung nach § 7 Abs. 3 muss innerhalb von zwei Wochen gegenüber
dem Robert Koch-Institut erfolgen. Es ist ein vom Robert Koch-Institut erstelltes Formblatt oder ein
geeigneter Datenträger zu verwenden.
(5) Die Angaben nach Absatz 2 und die Angaben zum Monat der Geburt dürfen vom Robert KochInstitut lediglich zu der Prüfung verarbeitet und genutzt werden, ob verschiedene Meldungen sich
auf dieselbe Person beziehen. Sie sind zu löschen, sobald nicht mehr zu erwarten ist, dass die damit
bewirkte Einschränkung der Prüfungen nach Satz 1 eine nicht unerhebliche Verfälschung der aus
den Meldungen zu gewinnenden epidemiologischen Beurteilung bewirkt, jedoch spätestens nach 30
Jahren.
(6) Die nichtnamentliche Meldung nach § 6 Absatz 3 muss die Angaben nach Absatz 1 Nummer 5,
9 und 11, Monat und Jahr der einzelnen Diagnosen sowie Name und Anschrift der betroffenen
Einrichtung enthalten. Absatz 3 ist anzuwenden. § 9 Absatz 3 Satz 1 bis 3 gilt entsprechend.
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