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Oelgeschläger, Michael | Regulation und Funktion von TGF-ß-Signalen in der frühen ...
Tätigkeitsbericht 2007
Entwicklungs- und Evolutionsbiologie/Genetik
Regulation und Funktion von TGF-ß-Signalen in der frühen
Embryonalentwicklung
Oelgeschläger, Michael;
Max-Planck-Institut für Immunbiologie, Freiburg
Abteilung – Entwicklungsbiologie
Korrespondierender Autor
Oelgeschläger, Michael
E-Mail: [email protected]
Zusammenfassung
Proteine der transformierenden Wachstumsfaktor-beta-Familie (TGF-ß) regulieren eine Vielzahl von
zellulären Prozessen. TGF-ß-Moleküle steuern die Differenzierung von Zellen wie auch deren Proliferation, und Mutationen in Komponenten des TGF-ß-Signalübertragungsweges wurden in verschiedenen Tumoren bereits identifiziert. Zusätzlich sind diese Wachstumsfaktoren von zentraler Bedeutung
für frühe embryonale Entwicklungsprozesse. Wissenschaftler am Max-Planck-Institut für Immunbiologie haben mithilfe von Mikroarray-Analysen neue Gene identifiziert, durch die TGF-ß-Aktivitäten
in der frühen Embryonalentwicklung vermittelt werden.
Abstract
Abstract
Proteins of the transforming growth factor-beta (TGF-ß) family regulate a plethora of cellular processes. TGF-ß proteins regulate cellular differentiation as well as proliferation and mutations in
the TGF-ß signal transduction pathway have been identified in various tumours. In addition, TGF-ß
activity is of central importance for early embryonic development. Scientists at the Max-PlanckInstitute of Immunobiology have identified new TGF-ß regulated genes that mediate TGF-ß activities
during early embryonic development.
Einleitung
In der Embryonalentwicklung wird eine Vielzahl an Zellarten zeitlich und räumlich koordiniert gebildet. Dabei spielen Wachstumsfaktoren eine zentrale Rolle. Sie werden in den extrazellulären Raum
abgegeben und stimulieren durch die Bindung an membranständige Rezeptoren intrazelluläre Signalkaskaden, die Genexpression steuern. Diese signalabhängige Regulation der Genexpression erlaubt die
Koordinierung von Zellproliferation, Zellwanderung und Zelldifferenzierung in komplexen Geweben,
insbesondere da Zellen unterschiedlich auf das Signal reagieren, je nachdem welche Kombinationen
an Rezeptoren und intrazellulären Mediatoren in der Zelle vorliegen. Der TGF-ß-Signalübertragungsweg ist von zentraler Bedeutung für die Determinierung verschiedener Zelltypen in der Embryonalentwicklung von Wirbeltieren. Aber auch im erwachsenen Organismus ist eine präzise Steuerung von
TGF-ß-Signalen notwendig, besonders weil Mutationen in Komponenten der TGF-ß-Signalkaskade
zur Bildung von malignen Tumoren führen [1].
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Der TGF-ß-Signalübertragungsweg
Proteine der TGF-ß-Familie binden an Proteinkomplexe in der Zellmembran, die aus den so genannten
Typ II- und Typ I-Rezeptoren bestehen. Die Bindung des TGF-ß-Liganden stimuliert die Aktivierung
des Typ I-Rezeptors durch den Typ II-Rezeptor. Der aktivierte Typ I-Rezeptor phosphoryliert und aktiviert intrazelluläre Proteine der SMAD-Familie, die Rezeptor assoziierten Smads (R-Smads). Diese
binden nun an Smad-4 und steuern im Zellkern zusammen mit einer Reihe zusätzlicher
Transkriptionsfaktoren (TF) spezifische Gentranskription (Abb. 1A).
Die TGF-ß-Familie kann dabei in zwei Gruppen eingeteilt werden, die Bone morphogenetic proteinGruppe (BMP) und die Nodal-Gruppe. Die BMP-Gruppe aktiviert mithilfe spezifischer Typ I-Rezeptoren die R-Smads Smad-1, Smad-5 und Smad-8, während die Nodal-Gruppe Smad-2 und Smad-3
aktiviert [2]. Durch die Aktivierung spezifischer Smad-Proteine stimulieren die beiden TGF-ß-Gruppen sehr unterschiedliche Prozesse. In der frühen Embryonalentwicklung sind Nodal-Proteine vor
allem für die Bildung des Mesoderms notwendig, aus dem ein Großteil der inneren Organe entsteht.
BMP-Signale hemmen die Bildung von Nervengewebe und stimulieren die Bildung von Epidermis
(Haut) und ventralem Mesoderm, aus dem z.B. Nieren und Blut hervorgehen (Abb. 1B)
Abb. 1A, B: Die TGF-Signalkaskade
A) TGF-ß-Proteine binden an Transmembrankomplexe, die Smad-Proteine innerhalb der Zelle phosphorylieren
und dadurch aktivieren. Smads bilden Komplexe mit Smad-4 und steuern mit zusätzlichen Transkriptionsfaktoren
(TF) spezifische Genexpression.
B) Rezeptorkomplexe, an die BMPs binden, aktivieren Smad-1, Smad-5 und Smad -8 und stimulieren die Bildung
von Haut, Blut und Nierengewebe, während die Bildung von Nervengewebe gehemmt wird. Nodal-Signale
aktivieren Smad-2 und -3, die für die Bildung des Mesoderms und der Etablierung der Links-rechts-Asymmetrie
notwendig sind.
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Die Regulation der Genexpression durch TGF-ß-Signale ist sehr Dosis-abhängig. Bereits kleine Variationen in der BMP- oder Nodal-Konzentration stimulieren die Bildung verschiedener embryonaler
Gewebe. Daher gibt es eine Vielzahl an Mechanismen, durch die TGF-ß-Signale innerhalb und außerhalb der Zelle reguliert werden. Von besonderem Interesse ist die Regulation von BMP-Signalen im
extrazellulären Raum. Genetische Studien im Fischembryo und funktionelle wie auch biochemische
Analysen im Froschembryo haben ein sehr komplexes Netzwerk aus Protein-Protein-Wechselwirkungen identifiziert, durch die die Bindung von BMPs an BMP-Rezeptorkomplexe reguliert wird,
einschließlich des BMP-Antagonisten Chordin, Metalloproteinasen der Tolloid-Familie, sowie Twisted
Gastrulation und Sizzled [2, 3]. Der BMP-Antagonist Chordin bindet BMPs und hemmt dadurch die
Interaktion von BMPs mit Rezeptorkomplexen. Diese Hemmung ist reversibel, da Tolloid Chordin
spalten und BMP wieder freisetzen kann. Twisted gastrulation stimuliert die Bindung von Chordin an
BMP wie auch die Spaltung von Chordin durch Tolloid, während Sizzled die proteolytische Spaltung
von Chordin durch Tolloid hemmt. Verschiedene Komponenten dieses Netzwerks wurden in Mensch,
Maus und Frosch, aber auch in Fliege und Seeanemone gefunden. Dabei stellte man fest, dass – trotz
der Unterschiede in den sich bildenden Strukturen – zumindest einige Proteine dieses regulatorischen
Netzwerkes vergleichbare Funktionen ausüben [4, 5, 6]. Während der frühen Embryogenese wird
Chordin im Frosch, wie auch im Fisch oder der Maus, lokal sezerniert und generiert dadurch einen
BMP-Signalgradienten. Dieser Gradient wird im Embryo auf verschiedene Weise interpretiert. Zum
einen werden Zelltypen konzentrationsabhängig determiniert. Zum anderen steuert der Gradient
gerichtete Zellbewegungen [7], durch die aus dem kugelförmigen Ei ein länglicher Embryo geformt
wird (Abb. 2).
Abb. 2 A, B: Der BMP-Signalgradient
A) Durch lokale Sezernierung von Antagonisten wird im Embryo ein BMP-Signalgradient etabliert, durch den
verschiedene Gewebe im Ektoderm (blau) und Mesoderm (grün) determiniert werden.
B) Einige Stunden später wandern Zellen entlang des BMP-Gradienten von der Bauch- zur Rückenseite und
formen aus einem kugelförmigen Ei einen länglichen Embryo.
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Identifizierung von BMP-Zielgenen
Der südafrikanische Krallenfrosch Xenopus laevis wird häufig für die Analyse von Signalkaskaden
und deren Wechselwirkung mit bekannten oder neuen Proteinen eingesetzt. Die Froscheier sind sehr
groß (1.5 mm im Durchmesser) und ermöglichen eine Vielzahl embryologischer Manipulationen. Zusätzlich legt ein Weibchen über 2000 Eier am Tag, die eine fast unerschöpfliche Quelle für die Isolation von DNA, RNA oder Proteinen darstellen. Durch Mikroinjektion von frühen Froschembryonen mit
synthetischer mRNA oder chemischer Behandlung, z.B. mit Lithiumchlorid, können Signale stimuliert
oder gehemmt werden und ausreichende Mengen an RNA aus verschiedenen embryonalen Stadien
isoliert werden, die eine vergleichende Analyse mithilfe von Mikroarray-Chips erlauben. Die Arbeitsgruppe um Michael Oelgeschläger hat eine Reihe von neuen Genen identifiziert, die durch BMPSignale transkriptional reguliert werden und verschiedene BMP-Aktivitäten im frühen Froschembryo
vermitteln. Dafür wurde RNA aus frühen Froschembryonen isoliert, in denen BMP-Aktivität durch
Mikroinjektion synthetischer mRNA oder chemischer Behandlung entweder stimuliert oder gehemmt
worden war und mithilfe von Mikroarray-Analysen verglichen. Die Expression der isolierten Gene
korrelierte dabei sehr gut mit BMP-Aktivität. Vor allem in frühen Embryonalstadien wird der BMP-Signalgradient durch die Expression dieser Gene deutlich sichtbar. BMP-Signalgradienten determinieren
während der Gastrulation, in der Mesoderm in den Embryo einwandert, die dorsal-ventrale (RückenBauch) Körperachse. In der dorsalen oder Rückenseite des Embryos wird während der Neurulation
die Neuralplatte gebildet, aus der das zentrale Nervensystem hervorgeht. Da in der Neuralplatte kaum
BMP-Aktivität nachzuweisen ist, werden in diesem Bereich vor allem Gene transkribiert, deren
Expression durch BMP- Signale gehemmt wird, während Transkripte BMP-aktivierter Gene von der
Neuralplatte ausgeschlossen sind (Abb. 3).
Abb. 3: Expression BMP-regulierter Gene
Die Expression von Genen, die durch BMP-Signale stimuliert werden, ist von der Rückseite während der Neurulation ausgeschlossen (A, B), wo ausschließlich Gene exprimiert werden, die durch BMP-Signale gehemmt
werden (C, D). Die Expression von xTspan-1 während der Gastrulation macht den BMP-Signalgradienten sichtbar (E). LiCl-Behandlung hemmt BMP-Aktivität, sodass xTspan-1-mRNA nun gleichmäßig im ganzen Embryo
nachweisbar ist (F). Die roten Gradienten stellen die BMP-Aktivität für die jeweiligen embryonalen Stadien
schematisch dar.
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Eines der Gene, die durch BMP-Signale in ihrer Expression gehemmt werden, kodiert für ein Transmembranprotein, xTspan-1. Durch Mikroinjektion synthetischer mRNA konnte gezeigt werden, dass
xTspan-1 Zelladhäsion und Zellmigration reguliert [8]. Dies wurde unter anderem durch sogenannte
Reaggrations-Assays nachgewiesen. Dafür wurde ein Aggregat aus unbehandelten embryonalen Zellen
und xTspan-1 injizierten Zellen, die zusätzlich einen fluoreszierenden Marker exprimierten, hergestellt.
Die xTspan-1-positiven Zellen mischten sich nicht mit den unbehandelten Zellen, sondern sammelten
sich an der Oberfläche des Aggregats an. Dieser Effekt konnte durch Ko-Injektion von mRNAs, die für
Zelladhäsionsproteine der Cadherin-Familie kodierten, aufgehoben werden. Diese Ergebnisse weisen
auf eine Hemmung der Zelladhäsion durch xTspan-1 hin, die unter anderem durch reduzierte Cadherin-Aktivität in den xTspan-1 exprimierenden Zellen erklärt werden kann. Zusätzlich wurde mithilfe
von Morpholino-Oligomeren, die spezifisch die Proteinsynthese von endogenem xTspan-1 hemmen,
nachgewiesen, dass xTspan-1 für die Differenzierung von neuronalen Vorläufer-zellen notwendig ist
(Abb. 4).
Abb. 4: xTspan-1 hemmt Zelladhäsion und stimuliert die Bildung von Nervenzellen.
A) Die xTspan-1 exprimierenden Zellen mischen sich nicht mit normalen ektodermalen Zellen. Stattdessen akkumulieren sie auf der Oberfläche des Aggregats, was auf eine reduzierte Zelladhäsion hinweist.
B) Dieser Effekt kann durch Ko-Expression von Cadherinen aufgehoben werden. Zusätzlich verhindert die Hemmung der Proteinsynthese von endogenem xTspan-1 die Bildung von differenzierten Nervenzellen (C; N-tubulin)
als auch neuronalen Vorläuferzellen (D; xdelta-1). Die injizierten Zellen auf der rechten Seite sind grün gefärbt,
da sie zusätzlich ß-Galaktosidase exprimieren. Tspan-1 hemmt Zelladhäsion wie auch Zellmigration und
stimuliert Neuralinduktion; zwei BMP-abhängige Prozesse.
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Dieses Protein ist also an den oben beschriebenen BMP-abhängigen Prozessen beteiligt und stellt eines
der ersten BMP-regulierten Gene dar, das sowohl Zellbewegungen als auch die Differenzierung von
Nervenzellen regulieren kann.
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Ausblick
Diese Arbeiten haben zur Identifizierung einer Vielzahl neuer BMP-regulierter Gene geführt, einschließlich Tspan-1, das an der Regulation von Zellbewegungen und der Differenzierung von
Nervenzellen beteiligt ist. Die weitere Analyse dieser Gene wird unser Verständnis für die molekularen
Mechanismen, durch die BMP-Signale eine Vielzahl an biologischen Aktivitäten in der Embryogenese
wie auch im adulten Organismus steuern, weiter vertiefen. Die überraschend ausgeprägte Ähnlichkeit
von BMP-Aktivitäten in verschiedenen Wirbeltierarten lässt erwarten, dass homologe Gene in
Säugetieren, einschließlich des Menschen, vergleichbare Funktionen ausüben.
Literaturhinweise
[1] P. M. Siegel, J. Massague:
Cytostatic and apoptotic actions of TGF-beta in homeostasis and cancer.
Nature Reviews Cancer 3, 807–821 (2003).
[2] Y. Yamamoto, M. Oelgeschläger:
Regulation of bone morphogenetic proteins in early embryonic development.
Naturwissenschaften 91, 519–534 (2004).
[3] E. M. De Robertis:
Spemann‘s organizer and self-regulation in amphibian embryos.
Nature Reviews Molecular Cell Biology 7, 296–302 (2006).
[4] M. Oelgeschläger, H. Kuroda, B. Reversade, E. M. De Robertis:
Chrodin is required for the Spemann organizer transplantation phenomenon in Xenopus embryos.
Developmental Cell 4, 21–230 (2003).
[5] M. Oelgeschläger, B. Reversade, J. Larrain, S. Little, M. C. Mullins, E. M. De Robertis:
The pro-BMP activity of Twisted gastrulation is independent of BMP binding.
Development 130, 4057–4056 (2004).
[6] M. Oelgeschläger, U. Tran, K. Grubisic, E. M. De Robertis:
Identification of a second Xenopus twisted gastrulation gene.
International Journal of Developmental Biology 48, 57–61 (2004).
[7] D. C. Myers, D. S. Sepich, L. Solnica-Krezel:
Convergence and extension in vertebrate gastrulae: cell movements aaacording to or in search
of identity?
Trends in Genetics 18, 447–455 (2002).
[8] Y. Yamamoto, K. Grubisic, M. Oelgeschläger:
Xenopus Tetraspanin-1 regulates gastrulation movements and neural differentiation in the early
Xenopus embryo.
Differentiation 75, 235–245 (2007).
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