Immunogenetik Berit Jungnickel Institut für Klinische Molekularbiologie und Tumorgenetik GSF-Forschungszentrum für Umwelt und Gesundheit München [email protected] Übersicht: Das Immunsystem Angeborenes und adaptives Immunsystem Angeborenes Immunsystem: erste Welle der Verteidigung unspezifische, vorgeformte Zellen/Moleküle Adaptives Immunsystem: spezifische Antwort auf Pathogen Zellen mit spezifischen Antigenrezeptoren Etablierung von immun. Gedächtnis Zellen des adaptiven Immunsystems Antigenpräsentierende Zellen: nehmen Antigen auf, prozessieren es präsentieren Antigen(fragmente) z.B. dendritische Zellen T-Lymphozyten: B-Lymphozyten: produzieren Antikörper können Antigen präsentieren werden durch Antigen aktiviert können Zellen vernichten (CD8+ T-Zellen) können B-Zellen aktivieren (CD4+ T-Helfer-Zellen) Antigenrezeptoren / Antikörper B-Zellrezeptor / Antikörper T-Zellrezeptor Übersicht: T-Zellentwicklung und Selektion Übersicht: B-Zellentwicklung und Selektion Entwicklung des primären Repertoires: V(D)J-Rekombination Organisation der Immunglobulingene human immunoglobulin loci L: leader - V: variable - D: diversity - J: joining - C: constant V(D)J-Rekombination Rekombinationssignalsequenzen 12-RSS: 12 bp spacer oder 23-RSS: 23 bp spacer „12/23 rule“: es werden nur 12/23-Kombinationen rekombiniert RAG-Proteine / Rekombination Verknüpfung der Enden Prozessierung der Enden: Artemis Artemis ist strukturspezifische Endonuklease spaltet u.a. hairpin-Strukturen, wie z.B. in coding ends = Auflösung der coding ends, überhängende Enden Prozessierung der Enden: TdT ??!! P-Nukleotide (Palindrom): durch assymetrische Aufspaltung des Hairpins N-Nukleotide: durch Einfügen von Nukleotiden (Terminale deoxynukleotidyltransf.) Severe combined immunodeficiency (SCID) Immundefekt: Keine B-und T-Zellen Oder aber wenige... Tw. Signalling-Defekte Tw. Rekombinationsdefekte Chromosomentranslokationen bei V(D)J-Rekombination z.B. bcl-2 Translokation im Follikulären Lymphom im Immunglobulingen: Bruch durch V(D)J-Rekombination dereguliert bcl-2 Expression durch Immunglobulinenhancer bcl-2 = antiapoptotisches Gen, verhindert Zellsterben führt zu langem Überleben der Tumorzellen 5´-UT 3´-UT Bcl2-ORF Fused transcript IgH Bcl2-ORF IgH AAA(A)n RAG und Transposition Katalytischer Mechanismus der RAG-Enzyme ähnelt Transposition Transpositionsmechanismus kann Chromosomentranslokationen erklären Positive Selektion: Funktionelle Antigenrezeptoren VDJH productive DJH DJH 50 % ~ 50 % DJH (1/3) VDJ VDJHH productive (2/3) non-productive ~ VDJ VDJHH DJH VDJH (1/3) (2/3) non-productive VDJ VDJHH VDJ VDJHH -> cell death ausserdem negative Selektion: Zellen mit autoreaktiven Antigenrezeptoren machen „receptor editing“ (weitere V-J-Rekombination auf Leichtkettenlokus) oder Apoptose Entwicklung des sekundären Antikörper-Repertoires: Die Keimzentrumsreaktion B-Zellaktivierung Kontakt mit Antigen und T-Zellen „Stimulation and Costimulation“ aktiviert B-Zellen (Proliferation) nur 1 Signal: Anergie / Apoptose Keimzentren in sekundären lymphoiden Organen (Tonsillen, Lymphknoten) Plasmazellen: Produktion optimierter Antikörper Memoryzellen: Langfristiger Schutz Genetische Ereignisse in Keimzentren Klassenwechselrekombination Naive B-Zellen: (vor Antigenkontakt) Memory B-Zellen/ Plasmazellen: (nach Antigenkontakt) switch-Regionen repetitive Sequenzen sehr G/C-reich bilden bei Transkription R-loop mit Transkript d.h. RNA-DNA-Hybrid und einen DNA-Einzelstrang Aktivierungsinduzierte Cytidindeaminase (AID) hochexprimiert in Keimzentrumszellen und aktivierten B-Zellen essentiell für Klassenwechselrekombination (und Hypermutation) kann Klassenwechselrekombination (+Hypermutation) induzieren wirkt bei Überexpression mutagen und kanzerogen deaminiert Cytidin in einzelsträngiger DNA in Transkriptionsblasen AID und Basenexzisionsreparatur beim Klassenwechsel normale BasenExzisionsreparatur: beim Klassenwechsel: Hyper-IgM-Syndrome Hyper-IgM: Immundefekt hoch IgM, keine IgG, IgA, IgE Therapie: Ig-Präparate von Spendern HyperIgMSyndrom HyperIgMSyndrom HyperIgMSyndrom HyperIgMSyndrom HyperIgMSyndrom 1: CD40L-Defekt 2: AID-Defekt 3: CD40-Defekt 4: UNG-Defekt 5: NEMO-Defekt Hyper-IgM-2: Mutationen im AID-Gen kein Klassenwechsel keine Hypermutation grosse Keimzentren Chromosomentranslokationen beim Klassenwechsel Burkitt-Lymphom: Translokation von c-myc in Immmunglobulinlocus X Deregulation von c-myc durch Ig-enhancer dereguliertes Wachstum IgH-Gen 14;q32 5` JH Sµ Eµ 8 (12%) Cµ Cδ 22 (32%) Sγ Cγ 13 (19%) 3` Sα Cα 25 (37%) Somatische Hypermutation Mutationen nur in der variablen Region Mutationsrate 10(-3) / bp / Zellteilung Zufällige Mutationen, Selektion nötig für Affinitätsreifung Letztendlich fokussiert auf CDRs (Antigenbindung) Hypermutationstargeting: Transkription Transkription der variablen Regionen ist wichtig Aber: gesamte konstante Region wird auch transkribiert, mutiert nicht Mutationsdomäne: 1-2 kb „downstream of promotor“ Immunglobulin-Enhancer (intronischer und 3‘-Enhancer) sind entscheidend Position (aber nicht Art) des Promotors ist wichtig Normales Targeting: bei „transplatiertem“ Promotor: AID-Funktion bei der somatischen Hypermutation SHM C G Phase 1 Phase 1A T A C G SHM AID DNA synthesis U G transitions Phase 2 Msh2 UNG patch repair introducing mutations at A/T pairs Phase 1 B C G T A A T G C transitions and transversions DNA synthesis G AP-endonuclease G AP-Lyase polymerase ligase C G repair Mehrere parallele Mutagenesewege Frage: Warum??? (noch unklar) Fehlerhafte DNA-Polymerasen bei der Hypermutation • • • Polymerase ι: Fehlerrate 10-4; Polymerase ζ: Fehlerrate 10-2; Polymerase η: Fehlerrate 10-1; • • Defekt in XPV-Patienten: weniger A/T-Mutationen D.h. verschiedene Polymerasen wirken redundant „Fehl“targeting der Hypermutation: Lymphome Diffuse large B cell lymphoma (DLCL): eine Reihe von Onkogenen trägt Mutationen im Bereich 1-2 kb nach dem Promotor im selben Bereich findet man auch Translokationen in diesen Genen B-Zelllymphome im Menschen Immunogenetik und Lymphomentstehung Immunglobulin-Genkonversion Ig-Genkonversion: Reparatur AID-induzierter Brüche durch homologe Rekombination mit „upstream pseudogenes“ – Transfer von Sequenzstücken Ig-Genkonversion und Hypermutation können parallel ablaufen, oder aber je nach Spezies oder Entwicklungsstand der B-Zelle getrennt AID-Funktionen bei der sekundären Immunantwort SHM C G Phase 1 Phase 1A T A C G SHM AID DNA synthesis U G transitions Phase 2 Msh2 UNG patch repair introducing mutations at A/T pairs Phase 1 B C G T A A T G C transitions and transversions DNA synthesis G AP-endonuclease G Klassenwechsel Ig-Genkonversion AP-Lyase polymerase ligase C G repair Rada et al. 2004 Proteine der APOBEC-Familie - Apobec-1: mRNA-editierendes Enzym 6666 C A apoB100 mRNA Translation CF Cholesterol Carrier Protein APO BEC -1 6666 U apoB48 mRNA - AID: DNA-deaminierendes Enzym Klassenwechsel, Hypermutation, Genkonversion - Apobec-3G: DNA-deaminierendes Enzym Abwehrfaktor bei der HIV-Infektion Triglycerid Carrier Protein APOBEC3G und die HIV-Infektion Apobec-3G ist in T-Zellen exprimiert, bei HIV-Infektion deaminiert es bei der reversen Transkription die cDNA Zweitstrangsynthese führt zu vielen Mutationen...HIV defekt Vif = viral infectivity factor HIV-Protein, das die APOBEC-3G- Funktion blockiert...produktive Infektion ist möglich Mechanismen der Antigenrezeptordiversifizierung (Übersicht)