1 Wildtiere und ihre Bedeutung als Überträger von Zoonosen

Zoonosen - Definitionen
Amt der Steiermärkischen Landesregierung
Bezirkshauptmannschaft Murau Veterinärreferat
Wildtiere
und ihre Bedeutung
als Überträger von Zoonosen
Armin Deutz
Amtstierärztliche
Weiterbildung, 14.11.2013
One World – One Health
62% aller Erreger
von HumanInfektionen
sind Zoonosen
54% aller
Erreger von
HaustierInfektionen
können
Wildtiere
infizieren
44% aller
Erreger von
HumanInfektionen
können
Wildtiere
infizieren
? % aller Erreger von Wildtier-Infektionen
können Haustiere (Nutztiere) infizieren ?
Welche Wildtiere?
 Wildwiederkäuer
 Wildschwein
 „Sämtliche Krankheiten bzw.
Infektionen, die auf natürlichem Weg
direkt oder indirekt zwischen Tieren
und Menschen übertragen werden
können“
 Kontaktzoonosen: hervorgerufen durch
Tierkontakte
 Foodborne Diseases: hervorgerufen durch
Genuss von Lebensmittel oder Wasser
Tollwutfälle – Europa, 2009, FLI
Haustiere
Rabies – Bulletin - Europe
Wildtiere
Tollwut 2013: Griechenland, Kroatien, Niederlande, Polen,
Rumänien,
(FLI,
2010)
Ungarn, Slowakische Republik
Risikogruppen - Wildtierzoonosen
 Jäger, Tierpräparatoren
 Landwirte, Tierhalter
 Hasenartige
 Tierärzte
 Nagetiere
 Schlachthofarbeiter
 Raubsäuger inkl. Neozoen
 Laborpersonal
 Insektenfresser, Fledertiere
 Freizeitsportler
 Wildvögel (Zugvögel!)
 (Arthropoda), Exoten, …
 Konsumenten, …
 YOPIS (young, old, pregnant, immunosuppressed)
1
Übertragungsmöglichkeiten
Risikofaktoren
 Wilddichten
 Wildfütterung
 Klimawandel
 Migrationen, Neozoen
 Eroberung neuer Lebensräume („Stadtfüchse“, -“sauen“)
 Freilandhaltung von Haustieren, Farmwild
 Globalisierung des Handels mit Wildtieren und
Wildtierprodukten
 Unwissenheit, fehlende Untersuchungen, …
Beispiel: Zoonosen beim Feldhasen
Zoonose
1. Virale Zoonosen
FSME (Metazoonose)
2. Bakterielle Zoonosen
Campylobacteriose
Leptospirose
Brucellose
Tularämie
Borreliose (Metazoonose)
Pseudotuberkulose, Yersiniose
Pasteurellose
Staphylokokkose/-Enterotoxikose
Streptokokkose
Q-Fieber
Chlamydiose
Listeriose
3. Parasitäre Zoonosen
Fasciolose
Toxoplasmose
Erreger
Togaviridae
C. jejuni, coli; (lari)
Leptospira spp.
Brucella suis (Biovar 2)
Francisella tularensis
Borrelia burgdorferi
Y. pseudotub., Y. enterocolitica
Pasteurella multocida
Staphylococcus aureus
Streptococcus spp.
Coxiella burnetti
Chlamydia psittaci
Listeria mnocytogenes
Fasciola hepatica
Toxoplasma gondii
Zoonosen beim Feldhasen
(n = 630), Steiermark
(Deutz u. Hinterdorfer, 1999)
Übertragung
Zoonose
n
%
Pseudotuberkulose
Pasteurellose
Brucellose (B. suis)
Staphylokokkose
Streptokokkeninfektion
Listeriose
Toxoplasmose
Tularämie
Salmonellose
148
37
35
22
7
5
4
2
1
23,5
5,9
5,6
3,5
1,1
0,8
0,6
0,3
0,2
Zecken
LM, SI
K (bes. Urin), SH
K (bes. Wunden)
K, A, blutsaugende Insekten
Zecken
LM (rohes Fleisch?)
K, A
K (Wunden)/LM (Toxine)
K
A, K, (Zecken?)
K, A
LM, (Geonose)
LM
LM
Pseudotuberkulose
Brucellose
Abkürzungen: A ... Aeosol, K ... Kontakt, LM ... Lebensmittel, SH ... Schleimhaut-, SI ... Schmierinfektion
Zoonosen-Richtlinie
Aktuelle Diskussionen um Wildtierzoonosen
 Trichinose (Wildschwein, Marderhund, ..)
 Tularämie (Feldhase)
Kategorie
A
Zoonosen und Zoonoseerreger
Überwachungspflichtige Zoonosen und Zoonoseerreger
Brucellose, Campylobacteriose, Echinokokkose, Listeriose, Salmonellose,
 Brucellose (Feldhase,
Wildschwein)
 EHEC,VTEC, STEC (Wild-Wdk.)
(2003/99/EG)
Trichinellose, Tuberkulose (verursacht durch Mycobacterium bovis),
Verotoxinbildende Escherichia coli
B
Je nach epidemiologischer Situation überwachungspflichtige Zoonosen und
 Tuberkulose (Dachs, Rot-/Schwarzwild)
Zoonoseerreger
 Echinokokkose (Fuchs)
1. Virale Zoonosen: Calicivirus, Hepatitis-A-Virus, Influenzavirus, Tollwut und
 Tollwut (Fuchs, Fledermäuse, ..)
durch Arthropoden (z. B. Zecken, Stechmücken) übertragene Viren
 Ehrlichiose und Q-Fieber (Schalenwild)
2. Bakterielle Zoonosen: Borrelliose, Botulismus, Leptospirose, Psittakose,
 Chlamydiose, NCD, West-Nile-Virus, Influenza (Vögel)
Tuberkulose (ausgenommen Tuberkulose gem. Abschnitt A), Vibriose, Yersiniose
3. Parasitäre Zoonosen: Anisakiase, Cryptosporidiose, Zystizerkose, Toxoplasmose
 Dirofilariose (Fuchs?)
2
Motive der Überwachung von
Wildkrankheiten / Zoonosen
Populations-Parameter
 Wildökologische Motive - Bedrohung von Arten
• Dichte
 Landwirtschaftliche - Reservoir Haustierseuchen
Primäre Populations-Parameter
 Handelspolitische - Nachweis Seuchenfreiheit
• Geburtsrate
• Sterberate
• Migrationsraten
 Public health Motive - Reservoir für Zoonosen
Räumliche Eigenschaft
Zeitliche Eigenschaften
Schätzung/Erfassung von Populationsgrößen!?
“gesund” oder “krank”?
Paratuberkulose: Zoonose ja/nein?
Träger/Ausscheider von Zoonoseerregern sind
häufig klinisch vollkommen unauffällig
IKK-Seuchenzug 2006,
Niedere Tauern
Untersuchung prädisponierter Personen
 152 Landwirte
 149 Jäger
 147 Schlachthofarbeiter
 137 Tierärzte
 50 Personen als Kontrollgruppe
 635 Probanden (untersucht auf 27 Zoonosen)
IKK: auch
Zoonose!
2006: Ende Nov. Fliegen auf 2.000m
 Untersuchungsstellen: AGES Mödling, Institut für
Virologie der UVW, Abt. Med. Parasitologie des
Hygieneinstitutes Uni Wien, Hygieneinstitut Graz
(Deutz et al., 2003)
3
Seroprävalenzen bakterielle Zoonosen
(Deutz et al., 2003)
Borreliose (49% der Jäger pos.!):
25
21
15
Erythema chronicum migrans
(ca. 70%); Fieber, Gelenks-, Muskel-,
Kopf- und Nackenschmerzen, Meningitis, Fazialisparesen, Extremitätenlähmungen, Verhaltensstörungen,
kardiale Symptome, Arthritiden (Knie!),
Acrodermatitis chronica atrophicans
Tierärzte
Landwirte
Schlachthofarbeiter
Jäger
Kontrollgruppe
20
Seropositive in %
Borreliose, Ehrlichiose
13
10
10
Ehrlichiose (18% der Jäger pos.!):
5
3
0
1
3
0
4 4
3
0
0 0 0 0
0 0 0
1
0
0 0 0
0
0
Ch. psittaci
Leptospira sp.
C. burnetii
Brucella sp.
F. tularensis
Fieber, Kopf- u. Rückenschmerzen, Erbrechen, Nieren- und
Leberfunktionsstörungen, Panzytopenie
Infektion auch über Blutkontakte?
Viele Zoonosen verlaufen „grippeähnlich“
> hohe Dunkelziffern!
Brucellose (B. suis)
Tularämie
 1 seropositiver (1:40) Jäger
und 1 Jäger mit Titer von 1:20
 Risiko: Schwarzwild- und
Feldhasenkontakte
 Von 128 untersuchten Stück Schwarzwild
(99 Sera auswertbar) waren 7 (7%) seropositiv
 Von 630 Feldhasen (Stmk.) gelang bei 35 (5,6%) der
Erregernachweis (B. suis)
Tularämie
 In Ö ca. 10 - 15 Humanfälle/Jahr
(hohe Dunkelziffer vermutet!)
 Infektionswege: Feldhasenkontakt
(Schleimhautinfektion, aerogen),
Lebensmittel- bzw. Trinkwasserinfektion,
Vektoren (blutsaugende Insekten)
 Krankheitsbild: vielfältig, je nach
Eintrittspforte, Infektionsdosis und Erregerstamm:
(ulzero)glandulär, oculär, oropharyngeal, intestinal,
pulmonal, typhoidal
 F. tularensis gilt als potenzielle Biowaffe! (Kategorie A)
Tularämie
 5 seropositive (3,4%) Jäger
und 7 mit Titern < 1:80 (4,7%)
 Risiko: Feldhasenkontakte
 Bekannte Endemiegebiete
in Ostösterreich
 Geringe minimale Infektionsdosis
 Infektion durch intakte Haut möglich, Aerosole!
 Verbreitungsgebiet klimaabhängig, Ausweitung des
Endemiegebietes
4
Verstärktes Auftreten der Tularämie bei:
 Wintertemperatur über + 0,5 °C
 Maitemperatur unter 14 °C
 Sommerniederschlag > 180 mm
 Jahresniederschlag < 720 mm
Leptospirosen
 10 % Jäger
4 % Landwirte
4 % Schlachthofarbeiter
3% Tierärzte seropositiv
 Risiko: Schweine-, Schwarzwild-, Nager- und Feldhasenund Hundekontakte
 Von 108 untersuchten Stück
Schwarzwild waren 26 (24%)
seropositiv (L. bratislava, grippo-
typhosa, icterohämorrhagiae, hardjö)
(Deutz et al., 2002)
E. multilocularis („Fuchsbandwurm“) und
T. spiralis bei Füchsen, Steiermark
Ergebnisse parasitäre Zoonosen
Mürz
90
80
Seropositive in %
70
60
79
73
67
64
Tierärzte
Landwirte
Schlachthofarbeiter
Jäger
Kontrollgruppe
55
48
50
40
34
30
25
22
17
20
Mur
1517
11
10
10
2
1
5 4 5
0
0
3 3
0
0 0 0 0 0
0
T. gondii
T. canis/cati
A. suum
E. multiloc.
E. granulos.
F. hepatica
pos. Fälle (
neg. Fälle
T.s.,
E.m.)
(Lassnig, 1996; Deutz et al., 1995)
5
Nachuntersuchungen
Toxokarose
(Echinococcus spp.)
Serologie: von 152
Landwirten/Innen:
E. m.: 8 pos./grw.
E. g.: 4 pos./grw.
(insges. 10 Probanden p/g)
Ultraschall, CT:
3 Probanden (weibl.,
37, 43, 49 J.) mit
Leberzysten, Bestätigung
von Echinokokkenzysten
(Serologie: 2 E. m., 1 E. g.)
Okuläre Larva migrans (OLM-Syndrom)
 48 % Landwirte (ELISA)
34 % Tierärzte
26 % Schlachthofarbeiter
17% Jäger seropositiv
(„Normalbevölkerung“: 1 - 2%)
 Füchse: ca. 50%
Spulwurmträger
 Risiko: Schmierinfektionen
ausgehend von Hund/Katze
oder Fuchs, Kontaminationen von Gemüsegärten
und Kinderspielplätzen (Problem Stadtfüchse?)
Odds ratio Toxokarose
Weitere Krankheitsbilder (z.B.
Asthma, Rheuma,
Epilepsie) werden
als Folge von
ToxokaraInfestationen
(LMV) vermutet
(DEUTZ et al., 2005)
Retinagranulom,
Mensch
Larve aus
Retinagranulom
Seroprävalenz
Toxocara
Landwirte
Kontrollg
total
67
1
68
negativ
85
49
134
total
152
50
202
²-Test
Pearson Chi-Square
Borreliose
Ehrlichiose
Filariose
FSME
Value
df
Significance
29,832
1
0,00000
Risk Estimate
95% Confidence Interval
Jäger
(Seroprävalenz Westernblot:
17%)
Value
> Odds ratio 9 (= 9faches Lower
Risiko)
38,624
5,198
Upper
286,991
Durch Arthropoden übertragene Krankheiten
Virus
Babesiose
© Bayer Animal Health GmbH
(Landwirte – Kontrollgruppe)
positiv
Odds Ratio
Durch Arthropoden übertragene Krankheiten/Zoonosen
(„Hunde-/Katzenspulwurm“)
Wirte/Reservoir
FSME-Virus
Mäuse, Vögel, Reh-/Rotwild
West-Nile-Virus
Vögel, Pferde, Frösche, Mäuse
Bluetongue-Virus
Wiederkäuer
Batai-Virus
Wildvögel, Hasenartige, Nagetiere
Zoonose
Vorkommen in Europa
ja
fast europaweit
ja
SK, H, A, Südeuropa
nein
fast europaweit
ja
Skandinavien, MittelEU
Tahyna-Virus
ja
A, Tschechien, F
Uukuniemi-Virus
ja
Norwegen
Eyach-Virus
Nagetiere?
ja
NL, F, Tschechien
Tribec-Virus
Kleinnager, Hasenartige
ja
?
Lipovnik-Virus
?
ja
?
Louping-ill
Bahanja-Virus
Vögel, Säuger
ja
Rickettsiosen
Semliki-ForestKomplex-Virus
?
ja
Tschechien, Italien,
Österreich, Portugal,
Spanien, Polen
Tularämie u.v.m.
Zoonosen MU 04-12
Lednice-Virus
Vögel
?
Sindbis-Virus
ja
Leishmaniase
6
Hantavirus-Infektionen in Österreich
Infektionsgefährdete Gebiete
werden im Alpenraum größer
Hantavirus,
Wasserspitzmaus, Murau
(Aberle, 2011)
„Neue Krankheiten“, z.B.WNV-Infektionen
Empfänglich: Vögel, Pferde,
Mensch
1999 Raum New York; in den
USA ca. 1.000 Tote
ab 2004 in Ungarn
(Stamm Lineage 2)
2008 in Österreich bei
Vögeln (90% Habichte)
übertragen durch
Stechmücken
WNV-Infektionen
(783 Fälle, davon EU 226 Fälle, Stand 6.11.2013)
Verbreitung H. marginatum
(Krim Kongo Hämorrhagisches Fieber)
7
Fuchs als „Indikator“
Fuchs als „Indikator“
Trichinella britovi:
385 Füchse und 110 Feldhasen:
1.546 Fuchsköpfe untersucht
Tularämie: 7,5% Füchse
serologisch und 4,5% Hasen
kulturell positiv
(2003/04) > 24 positiv (1,55%)
(KROIS et al., 2005)
Brucellose: 3,1% Füchse serologisch und 2,7% Hasen
(HÖFLECHNER-PÖLTL, 1999)
kulturell positiv
Tularämie/Brucellose: Mandibularlymphknoten von
903 Füchsen kulturell untersucht (2007/08) >>
10 Füchse F. tularensis-, 4 B. suis- und 3 B. microti-pos.
Trichinella sp. (Übersichtsarbeit):
Österreichweit insgesamt 5.565 Füchse untersucht >
Nachweise in 31 von 121 Bezirken; Prävalenzen in 12
Bezirken zwischen 0,01 und 2%, in 15 zwischen 2,01
und 5% und in 4 zwischen 5,01 und 9,48%
(DUSCHER et al., 2005)
(HOFER et al., 2009)
Fuchs als „Indikator“
Alaria alata (Dunkerscher
Muskelegel), 2,5-6 x 0,5-2 mm,
2 Zwischenwirte (Süßwasserschnecke / Amphibien),
Weitere Krankheiten (Seuchen), Fuchs
Staupe (Zusammenhang mit MS?)
Räude > Mensch > „Scheinräude“
paratenischer Wirt Wildschwein
> Zoonose
1.980 Füchse aus Österreich
untersucht > 0,2 – 22,1% positiv
(Duscher, 2011)
Wildfleisch als Infektionsquelle?
•
•
•
•
•
•
•
•
•
Campylobacteriose
Salmonellose
Trichinose
Brucellose, Tularämie
Pseudotuberkulose
Yersiniose
Botulismus
Taeniasis
Verotoxinbildende E. coli, Hepatitis E, ..
Enterohämorrhagische E. coli (EHEC)
 Erste Krankheitsfälle 1981/82 in Nordamerika, 1994
weltweit Krankheitsfälle
 Hauptinfektionsquellen: Rindfleisch, Rohmilch aber
auch Obst, Gemüse, Apfelsaft usw.
 Schmierinfektionen durch Mensch- und Tierkontakte
 BfR: Risiko Reh- und Rotwild
 Infektionsdosis: 10 bis 100 Keime
 EHEC (O157 H7) auch in 1,5% heimischer
Rohmilchproben nachgewiesen (DEUTZ et al., 1999)
8
STEC/EHEC in Gams- und Hirschwürsteln
4 Rückrufaktionen von österr. Wildwürsten im Winter 2011/12
Hepatitis E
 Krankheitsbild ähnlich Hep A
 BRD: 15% der untersuchten
Wildschweine positiv
 Risiko: nicht durchgegarte
Leber!
 Symptome: Müdigkeit, Abgeschlagenheit,
Kopfschmerzen, Appetitlosigkeit, Gewichtsverlust,
Muskel- und Gelenkbeschwerden, Druckgefühl im
Oberbauch, Gelbsucht, Dunkelfärbung des Urins,
Hellfärbung des Stuhls)
Forderungen, Strategien
Vorbeugemaßnahmen – Jäger
 Einhaltung hygienischer Grundsätze
 Trichinenuntersuchung
 Keine „Rituale“
 Handschuhe beim Aufbrechen
 Anfeuchtes des Balges (Abbalgen)
 Risiko Rohprodukte
 Regelmäßiges Entwurmen von Hunden
 Keine rohen Abfälle verfüttern
 Reduktion Zeckenbefall
 Sektion verdächtiger Tiere, Veränderungen abklären
 Information über Risiken, Vorsorgeuntersuchung
 Verstärkte Kooperation Human-/Veterinärmedizin
 Keine Hysterie!
Gute alte Zeit?
 Bewusstsein für neue Erreger/Krankheiten muss
erhöht werden (Jäger, Tierhalter, TÄ, Behörden,
Untersuchungsstellen), Austausch von Daten
 Zoonotisches Potential nicht vergessen
(75% aller neuen Krankheiten sind Zonosen!)
 Gezielte Querschnittsuntersuchungen
 Systematische Erfassung von Fällen (human/veterinär)
 Beiträge zur Ökologie von Erregern, Vektoren und
Zwischenwirten; Einfluss des Klimawandels beachten
 Zoonosen sind häufig Medienereignisse!?
Besten Dank für ihre Aufmerksamkeit
9